JP5506160B2 - A novel wine yeast obtained by crossing shochu yeast and wine yeast and its production method - Google Patents

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Description

本発明は、優れたアルコール生成能を有する新規で優良なワイン酵母菌株を作出する方法、該作出方法により得られる新規ワイン酵母菌株、及び、その菌株を用いたアルコール飲料の製造方法に関する。また、本発明は、新規で優良な所定の酵母菌株を効率よく作出する方法や、該作出方法により得られる新規で優良な所定の酵母菌株や、該酵母菌株を用いたアルコール飲料の製造方法を提供することにある。   The present invention relates to a method for producing a novel and excellent wine yeast strain having excellent alcohol-producing ability, a novel wine yeast strain obtained by the production method, and a method for producing an alcoholic beverage using the strain. Further, the present invention provides a method for efficiently producing a new and excellent predetermined yeast strain, a new and excellent predetermined yeast strain obtained by the production method, and a method for producing an alcoholic beverage using the yeast strain. It is to provide.

アルコール飲料の醸造には、そのアルコール飲料の種類に応じてそれに適した特有の酵母菌株が使用されている。ワイン酵母として使用されている酵母は、主として味覚特性においてワイン醸造に適した菌株が選抜され、現在に至っている。一方、焼酎醸造に適した株として選抜されてきた焼酎酵母は、比較的高濃度のアルコールを生成することで知られている。焼酎酵母の高いアルコール生成能をワイン酵母に付与することができれば、より高濃度のブドウ果汁の醸造が可能となり、生産されるワインの幅も広がることが期待されている。   In brewing alcoholic beverages, specific yeast strains suitable for the type of alcoholic beverage are used. Yeasts used as wine yeasts have been selected as strains suitable for winemaking mainly in taste characteristics. On the other hand, shochu yeast selected as a strain suitable for shochu brewing is known to produce a relatively high concentration of alcohol. If the high alcohol-producing ability of shochu yeast can be imparted to wine yeast, it will be possible to brew a higher concentration of grape juice and expand the range of wine produced.

焼酎酵母の高いアルコール生成能は、そのアルコール耐性という性質と密接な関係があると考えられている。しかし、非特許文献1に示されるように、酵母のアルコール耐性には多くの遺伝子が関わっているため、遺伝子工学的に焼酎酵母のアルコール耐性に関わる遺伝子群をワイン酵母に導入することでアルコール耐性を向上させるという試みは、多大な労力を要することが予想され、さらにその労力を費やしたとしても実現する可能性は乏しく、現実的とは言えない。   The high alcohol-producing ability of shochu yeast is thought to be closely related to its alcohol tolerance property. However, as shown in Non-Patent Document 1, since many genes are involved in the alcohol tolerance of yeast, by introducing a gene group related to the alcohol tolerance of shochu yeast into wine yeast by genetic engineering, the alcohol tolerance is increased. Attempts to improve the performance are expected to require a great deal of effort, and even if that effort is expended, there is little possibility of realization and it is not realistic.

近年では、優良なワイン酵母を造成するために、人為的な手段による育種、すなわち、突然変異、接合による交雑、プロトプラスト融合、形質転換等の方法による育種が行なわれている。一般的に、別の酵母の持つ有用な形質をワイン酵母に導入する場合、接合による交雑、プロトプラスト融合、形質転換等の方法による育種が採られるが、この中で最も確実な方法は、接合による交雑育種である。これまでに行なわれてきた接合による交雑育種としては、野生キラー酵母と高温発酵性ワイン酵母との交雑育種(非特許文献2)や、硫化水素非生成酵母と凝集能を持ったワイン酵母との交雑育種(非特許文献3)が挙げられる。しかしながら、接合による交雑法においては、交雑により得られた菌体が交雑株であることを判別するために、親株がそれぞれ明らかに異なる形質を有していることが求められるという問題があった。従って、それぞれの親株が明らかに異なる形質を保有していない場合は、交雑株を判別又は検出することが困難であった。   In recent years, breeding by artificial means, that is, breeding by methods such as mutation, mating hybridization, protoplast fusion, transformation, etc., has been carried out in order to create excellent wine yeasts. In general, when introducing a useful trait of another yeast into wine yeast, breeding by methods such as mating hybridization, protoplast fusion, transformation, etc. is taken, but the most reliable method is by mating Cross breeding. Hybrid breeding by conjugation carried out so far includes cross breeding of wild killer yeast and thermofermentable wine yeast (Non-patent Document 2), non-hydrogen sulfide-producing yeast and wine yeast having agglutination ability. Cross breeding (nonpatent literature 3) is mentioned. However, the mating method by conjugation has a problem that the parent strains are required to have distinctly different traits in order to determine that the cells obtained by the mating are hybrid strains. Therefore, when each parent strain does not clearly have a different character, it is difficult to discriminate or detect a hybrid strain.

また、接合能を有する酵母菌株を得る方法としては、例えば特許文献1のように、胞子形成を経て得る方法が一般的である。胞子形成を経た菌株同士を接合させて交雑すると、非特許文献4に示されているように多様な醸造特性を示す株が得られる反面、目的の形質を持ちかつ劣悪な形質を持たない交雑株を選抜するために、多数の交雑株の中から優良な株を選抜する必要がある。   Moreover, as a method of obtaining the yeast strain | stump | stock which has conjugation ability, the method obtained through sporulation like patent document 1, for example is common. When spore-forming strains are joined together and crossed, a strain exhibiting various brewing characteristics is obtained as shown in Non-Patent Document 4, but a hybrid strain having the desired trait and not having an inferior trait Therefore, it is necessary to select a good strain from a large number of hybrid strains.

また、胞子形成を経ずに接合能を有する株を実用酵母から取得し、育種に利用することも試みられている(特許文献2)。このような手法自体は、非特許文献5に示されているように、古くから知られている。しかしながら、この方法では、親株として用いた実用酵母との遺伝的な差異はあまり生じないため、接合能を持った株に多様な醸造特性を期待することはできない。   In addition, it has been attempted to obtain a strain having mating ability without undergoing spore formation from a practical yeast and use it for breeding (Patent Document 2). Such a method itself has been known for a long time as shown in Non-Patent Document 5. However, in this method, genetic differences from the practical yeast used as the parent strain do not occur so much, so it is not possible to expect diverse brewing characteristics for the strain having mating ability.

特開2000−245458号公報 ワイン酵母の交雑育種方法JP, 2000-245458, A Cross breeding method of wine yeast 特開2004−16028号公報 実用酵母の栄養要求性変異株を利用した交配育種JP, 2004-16028, A Cross breeding using the auxotrophic mutant of practical yeast X. L. Hu et. Al., “Genetic dissection of ethanol tolerance in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae.” Genetics 175: 1479-1487 (2007)X. L. Hu et. Al., “Genetic dissection of ethanol tolerance in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae.” Genetics 175: 1479-1487 (2007) S. Hara et. Al., “The breeding of cryophilic killer wine yeasts.” Agric. Biol. Chem. 45: 1327-1334 (1981)S. Hara et. Al., “The breeding of cryophilic killer wine yeasts.” Agric. Biol. Chem. 45: 1327-1334 (1981) R. Romano et. Al., “Improvement of a wine Saccharomyces cerevisiae Strain by a breeding program.” Appl. Environment. Microbiol. 50: 1064-1067 (1985)R. Romano et. Al., “Improvement of a wine Saccharomyces cerevisiae Strain by a breeding program.” Appl. Environment. Microbiol. 50: 1064-1067 (1985) 加藤 拓ら、清酒酵母きょうかい7号の一倍体の取得と醸造特性の解析、日本農芸化学会2007年度大会講演要旨集: 187Taku Kato et al. Acquisition of haploid of sake yeast No. 7 and analysis of brewing characteristics, Abstracts of Annual Meeting 2007 Annual Meeting of Japanese Society of Agricultural Chemistry: 187 N. Nakazawa et. al., “A method for direct selection of mating-component clones from mating-incompetent industrial strains of Saccharomyces cereviae.” J. Ferment. Bioeng., 78: 6-11 (1994)N. Nakazawa et. Al., “A method for direct selection of mating-component clones from mating-incompetent industrial strains of Saccharomyces cereviae.” J. Ferment. Bioeng., 78: 6-11 (1994)

本発明の課題は、優れたアルコール生成能を有する新規で優良なワイン酵母菌株を効率よく作出する方法や、該作出方法により得られ、優れたアルコール生成能を有する新規で優良なワイン酵母菌株や、該酵母菌株を用いたアルコール飲料の製造方法を提供することにある。また、本発明の課題は、新規で優良な所定の酵母菌株を効率よく作出する方法や、該作出方法により得られる新規で優良な所定の酵母菌株や、該酵母菌株を用いたアルコール飲料の製造方法を提供することにある。   An object of the present invention is to efficiently produce a new and excellent wine yeast strain having an excellent alcohol-producing ability, a new and excellent wine yeast strain having an excellent alcohol-producing ability obtained by the producing method, Another object of the present invention is to provide a method for producing an alcoholic beverage using the yeast strain. The subject of the present invention is a method for efficiently producing a new and excellent predetermined yeast strain, a new and excellent predetermined yeast strain obtained by the production method, and production of an alcoholic beverage using the yeast strain It is to provide a method.

本発明者らは、上記課題を解決するため、様々な酵母菌株(9株のワイン酵母、5株の清酒酵母、2株の焼酎酵母、2株の上面発酵酵母)を用いて、852株(79組合せ)の交雑株を作製し、それらの交雑株のアルコール生成能を調べたところ、特にワイン酵母と焼酎酵母を交雑した場合に、高いアルコール生成能を有する新規で優良なワイン酵母菌株を効率よく作出し得ることを見い出し、この知見に基づいて本発明を完成させた。なお、本発明において高アルコール生成能を有する酵母交雑株とは、後述する本発明の実施例4に記載のブドウ果汁を用いた発酵試験における最も高いアルコール生成濃度が、親株よりも高く、かつ、16%以上とすることができる酵母、又は、後述する本発明の実施例4に記載のブドウ果汁を用いた発酵試験における本培養開始18日経過後の培養液の最終アルコール生成濃度が、その濃度が高い方の親株よりも割合として0.1%以上、好ましくは1%以上、さらに好ましくは5%以上とすることができる酵母を意味する。最高アルコール生成濃度又は最終アルコール生成濃度の高い酵母菌株は必然的にアルコール耐性にも優れている。また、本明細書における「マーカーを付与した酵母」には、便宜上、そのマーカーを持たない所定の酵母に人為的にマーカーを付与した酵母の他、単離して得られた、当初からそのマーカーを持つ酵母も含むものとする。なお、本明細書中の「%」は、特に記載がない限り、「質量%」を意味するものとする。   In order to solve the above problems, the present inventors used 852 strains (9 wine yeasts, 5 sake yeasts, 2 shochu yeasts, 2 top fermenting yeasts) using various yeast strains. 79 combinations) and the alcohol-producing ability of these hybrid strains was examined. Particularly when wine yeast and shochu yeast were crossed, a new and excellent wine yeast strain having high alcohol-producing ability was efficiently obtained. Based on this finding, the present invention has been completed. In the present invention, the yeast hybrid strain having high alcohol-producing ability means that the highest alcohol production concentration in the fermentation test using grape juice described in Example 4 of the present invention described later is higher than the parent strain, and The final alcohol production concentration of the culture solution after 18 days from the start of the main culture in the fermentation test using yeast that can be 16% or more or the grape juice described in Example 4 of the present invention described later is It means yeast that can be 0.1% or more, preferably 1% or more, and more preferably 5% or more in proportion to the higher parent strain. Yeast strains having a high maximum alcohol production concentration or high final alcohol production concentration inevitably have excellent alcohol resistance. In addition, for the sake of convenience, the “yeast to which a marker is added” in the present specification includes, in addition to yeast that has been artificially added a marker to a predetermined yeast that does not have the marker, and the marker obtained by isolation from the beginning. It also includes yeast that has it. In this specification, “%” means “% by mass” unless otherwise specified.

すなわち本発明は、(1)接合能を付与した親ワイン酵母と、接合能を付与した親焼酎酵母とを交雑し、交雑株の中から高アルコール生成能を有する交雑株を選抜する、ワイン酵母菌株の作出方法であって、前記接合能を付与した親ワイン酵母が、接合能を付与したWE452株であり、前記接合能を付与した親焼酎酵母が、接合能を付与したきょうかい酵母焼酎用3号株(S−3株)であり、前記親ワイン酵母と前記親焼酎酵母との組合せが、(a)栄養要求性マーカーを付与した親ワイン酵母と、呼吸欠損マーカーを付与した親焼酎酵母との組合せ、(b)呼吸欠損マーカーを付与した親ワイン酵母と、栄養要求性マーカーを付与した親焼酎酵母との組合せ、又は、(c)親ワイン酵母と親焼酎酵母のそれぞれに異なる栄養要求性マーカーを付与した組合せであり、前記(a)又は(b)の組合せで交雑した場合は、該交雑の後、非栄養要求性及び非呼吸欠損の表現型をマーカーとして交雑株を分離し、前記(c)の組合せで交雑した場合は、該交雑の後、非栄養要求性の表現型をマーカーとして交雑株を分離し、前記高アルコール生成能を有する交雑株が、最高アルコール生成濃度又は最終アルコール生成濃度として16.2%以上を達成し得るアルコール生成能を有する交雑株であることを特徴とする、方法に関する。
That is, the present invention is (1) a wine yeast which crosses a parent wine yeast imparted with conjugation ability with a parent shochu yeast imparted with conjugation ability, and selects a hybrid strain having a high alcohol-producing ability from the hybrid strains. A method for producing a strain, wherein the parent wine yeast imparted with the conjugation ability is a WE452 strain imparted with conjugation ability, and the parent shochu yeast imparted with the conjugation ability is used for shochu yeast yeast shochu imparted with conjugation ability No. 3 strain (S-3 strain), wherein the combination of the parent wine yeast and the parent shochu yeast is (a) a parent wine yeast provided with an auxotrophic marker, and a parent shochu yeast provided with a respiratory defect marker A combination of (b) a parent wine yeast imparted with a respiratory defect marker and a parent shochu yeast imparted with an auxotrophic marker, or (c) a different nutritional requirement for each of the parent wine yeast and the parent shochu yeast Sex marker In the case of crossing in the combination of (a) or (b), after the crossing, a hybrid strain is isolated using the phenotype of non-auxotrophic and non-respiratory deficiency as a marker, In the case of crossing in the combination of c), after the crossing, the crossing strain is separated using a non-auxotrophic phenotype as a marker, and the crossing strain having the high alcohol-producing ability is the highest alcohol production concentration or final alcohol production. characterized in that it is a hybrid strain having alcohol production ability can achieve more than 16.2% as the concentration relates mETHODS.

また本発明は、()上記(1)に記載の作出方法によって得られるワイン酵母菌株に関する。
The present invention relates to a wine yeast strain obtained by production method described in (2) above (1).

さらに本発明は、()上記()に記載のワイン酵母菌株を糖質含有物に接種して醸造することを特徴とするアルコール飲料の製造方法に関する。 Furthermore, the present invention relates to ( 3 ) a method for producing an alcoholic beverage characterized by inoculating a saccharide-containing material with the wine yeast strain described in ( 2 ) above.

本発明のワイン酵母菌株の作出方法によると、高アルコール生成能を有する新規で優良なワイン酵母菌株を効率よく作出することができる。また、この作出方法により得られた酵母菌株は、通常のワイン酵母よりもアルコール生成能が高いため、この菌株を利用してアルコール飲料(特にワイン)を醸造すると、アルコール成分が高く、強くリッチな味わいのアルコール飲料(特にワイン)を製造することができる。   According to the method for producing a wine yeast strain of the present invention, a novel and excellent wine yeast strain having a high alcohol-producing ability can be efficiently produced. Moreover, since the yeast strain obtained by this production method has higher alcohol-producing ability than ordinary wine yeast, when an alcoholic beverage (especially wine) is brewed using this strain, the alcohol component is high and it is strongly rich. Taste alcoholic beverages (especially wine) can be produced.

また、本発明の酵母菌株の作出方法によると、その酵母の用途に合わせて、新規で優良な酵母菌株を効率よく作出することができる。また、この作出方法により、例えば通常の酵母よりもアルコール飲料の醸造に有利な性質を有している酵母菌株を作出すれば、その酵母菌株を利用してアルコール飲料を醸造することにより、アルコール飲料の製造効率を改善したり、風味の点でより優れたアルコール飲料を得ることができるなどのアルコール飲料の醸造に有利な効果を享受することができる。   Moreover, according to the production method of the yeast strain of this invention, according to the use of the yeast, a novel and excellent yeast strain can be produced efficiently. In addition, if a yeast strain having properties that are more advantageous for brewing alcoholic beverages than ordinary yeast is produced by this production method, alcoholic beverages are produced by brewing alcoholic beverages using the yeast strains. It is possible to enjoy advantageous effects for brewing alcoholic beverages, such as improving the production efficiency of the product and obtaining an alcoholic beverage that is superior in flavor.

1.本発明の新規ワイン酵母菌株の作出方法
本発明者らは、後述の実施例1の表2〜6に記載されているように、様々な酵母を交雑させ、その交雑株の発酵能を測定した結果、ワイン酵母と焼酎酵母を交雑することによって、高アルコール生成能を有する新規で優良なワイン酵母菌株を効率よく作出し得ることを見い出した。本発明の新規ワイン酵母菌株の作出方法(本発明のワイン酵母菌株の作出方法)は、この知見に基づいている。
1. Method for producing novel wine yeast strain of the present invention The present inventors crossed various yeasts and measured the fermentative ability of the hybrid strain as described in Tables 2 to 6 of Example 1 described later. As a result, it was found that a new and excellent wine yeast strain having a high alcohol-producing ability can be efficiently produced by crossing wine yeast and shochu yeast. The production method of the novel wine yeast strain of the present invention (production method of the wine yeast strain of the present invention) is based on this finding.

本発明のワイン酵母菌株の作出方法としては、接合能を付与した親ワイン酵母と、接合能を付与した親焼酎酵母を交雑し、交雑株の中から高アルコール生成能を有する交雑株を選抜する方法であれば特に制限されず、ここで、本発明においてワイン酵母とは、ブドウ果汁を発酵してワインとすることができる酵母を意味し、焼酎酵母とは、焼酎もろみを発酵して焼酎とすることができる酵母を意味する。なお、より高いアルコール生成能を有する交雑株をより高効率で得る観点からは、親ワイン酵母や親焼酎酵母として、高アルコール生成能を有する株を用いることが好ましい。   As a method for producing a wine yeast strain of the present invention, a parent wine yeast imparted with conjugation ability and a parent shochu yeast imparted with conjugation ability are crossed, and a hybrid strain having a high alcohol-producing ability is selected from the hybrid strains. If it is a method, it will not restrict | limit in particular, Here, wine yeast in this invention means the yeast which can ferment grape juice, and can be made into wine, Shochu yeast is fermenting shochu mash and shochu. Means yeast that can. In addition, from the viewpoint of obtaining a hybrid strain having a higher alcohol-producing ability with higher efficiency, it is preferable to use a strain having a high alcohol-producing ability as the parent wine yeast or the parent shochu yeast.

本発明における上記親ワイン酵母の入手方法としては特に制限されず、ブドウ果汁に接種して発酵させた場合にワインとすることができるかどうかを指標として天然から分離することもできるし、また、例えば低温発酵性、高温発酵性、各種香味性、硫化水素生成性、泡形成性、メタ亜硫酸耐性等の性質においてワイン醸造に適した特性を有する株を、その特性を指標として天然から分離することもできるし、上記特性を有する既存の株から選択することもできる。前述の6つの性質においてワイン醸造に適した特性を持ち、かつ、アルコール生成能の高い既存のワイン酵母として、サッカロミセス・セレビシエWE452株(独立行政法人酒類総合研究所)、サッカロミセス・セレビシエきょうかい酵母ブドウ酒用3号株(財団法人日本醸造協会)等を好適に例示することができる。   The method for obtaining the parent wine yeast in the present invention is not particularly limited, and can be separated from nature as an indicator as to whether it can be wine when inoculated into grape juice and fermented, For example, a strain having characteristics suitable for wine brewing in properties such as low temperature fermentability, high temperature fermentability, various flavors, hydrogen sulfide generation properties, foam formation properties, metasulfite resistance, etc. should be separated from nature using the properties as indicators. It is also possible to select from existing strains having the above characteristics. Saccharomyces cerevisiae WE452 strain (Independent Administrative Institution Liquor Research Institute) and Saccharomyces cerevisiae yeast yeast that have characteristics suitable for wine brewing in the above six properties and have high alcohol-producing ability. A third example for sake (Japanese Brewing Association) can be suitably exemplified.

本発明における上記親焼酎酵母の入手方法としては特に制限されず、焼酎もろみに接種して発酵させた場合に焼酎とすることができるかどうかを指標として天然から分離することもできるし、また、焼酎醸造に適した特性を有する既存の株から適宜選択することもできる。焼酎醸造に適した特性に加えて高アルコール生成能を有する既存の焼酎酵母として、サッカロミセス・セレビシエきょうかい酵母焼酎用3号株(財団法人日本醸造協会)を好適に例示することができる。   The method for obtaining the parent shochu yeast in the present invention is not particularly limited, and can be separated from nature as an indicator as to whether it can be shochu when inoculated and fermented with shochu mash, It can also be appropriately selected from existing strains having characteristics suitable for shochu brewing. As an existing shochu yeast having high alcohol-producing ability in addition to characteristics suitable for shochu brewing, Saccharomyces cerevisiae yeast yeast shochu No. 3 (Japan Brewing Association) can be preferably exemplified.

親ワイン酵母や親焼酎酵母に接合能を付与する方法としては、胞子形成誘導を介して接合能を付与する方法〔例えば、Current Protocols in Molecular Biology, Supplement 19(John Wiley and Sons, Inc., 1992)に記載された方法〕や、胞子形成誘導を経ずに自然突然変異によって接合能を付与する方法を例示することができる。胞子形成誘導を経ずに自然突然変異によって接合能を付与する方法としては、接合型判定に用いるテスター株と共に培養し、該テスター株と交雑する株を選抜する方法〔例えば、Current Protocols in Molecular Biology, Supplement 19(前出)〕を好適に例示することができる。なお、アルコール生成能の優れた交雑株をより高効率で得る観点から、交雑する両親酵母における接合能付与方法として、胞子形成誘導を介する方法、あるいは、胞子形成を経ずに自然突然変異による方法を好ましく例示することができる。具体的な株の組合せとして、胞子形成誘導を介して接合能を付与した株同士、あるいは、胞子形成誘導を経ずに自然突然変異により接合能を付与した株同士、あるいは、胞子形成誘導を介して接合能を付与した株と胞子形成誘導を経ずに自然突然変異により接合能を付与した株の、いずれの組合せであっても良い。   As a method for conferring conjugation ability to parent wine yeast and parent shochu yeast, conjugation ability is imparted through spore formation induction [for example, Current Protocols in Molecular Biology, Supplement 19 (John Wiley and Sons, Inc., 1992 And the method of imparting conjugation ability by spontaneous mutation without inducing sporulation induction. As a method for conferring conjugation ability by spontaneous mutation without inducing sporulation induction, a method of culturing with a tester strain used for mating type determination and selecting a strain that crosses the tester strain [for example, Current Protocols in Molecular Biology , Supplement 19 (supra)]. In addition, from the viewpoint of obtaining a hybrid strain excellent in alcohol-producing ability with higher efficiency, as a method for imparting conjugation ability in parent yeasts to cross, a method through spore formation induction, or a method by spontaneous mutation without spore formation Can be preferably exemplified. Specific combinations of strains include strains that have been imparted with conjugation ability through spore formation induction, strains that have been imparted with conjugation ability by natural mutation without inducing sporulation induction, or through spore formation induction. Any combination of a strain imparted with a conjugation ability and a strain imparted with a conjugation ability by natural mutation without induction of sporulation may be used.

親ワイン酵母と親焼酎酵母を交雑する方法としては、互いに接合し得る状態で両親酵母を混合して培養する方法を好適に例示することができる。互いに接合し得る状態とは、一方の親酵母がa型の接合型を有し、他方の親酵母がα型の接合型を有することをいう。なお、両親酵母のいずれかについて、胞子形成を経た株(胞子由来の株)を用いる場合であって、さらにその株がホモタリックの性質を持つ場合、その株から得られた胞子に由来する株同士が接合して速やかに接合能を失う場合があるため、胞子由来の株は、交雑の相手の株と直接培養することが好ましい。   As a method of crossing the parent wine yeast and the parent shochu yeast, a method of mixing and cultivating the parent yeast in a state where they can be joined to each other can be preferably exemplified. The state that can be joined to each other means that one parent yeast has an a-type joining type and the other parent yeast has an α-type joining type. In addition, in the case of using a spore-formed strain (spore-derived strain) for any of the parent yeasts, and if the strain has homothallic properties, strains derived from spores obtained from the strain In some cases, the spore-derived strain is preferably cultured directly with the strain of the mating partner.

親酵母の接合型を判定する方法としては、a型やα型のテスター株との交雑の有無を指標として行う方法(前出の特許文献2記載の方法等)や、接合型特異的に機能するプロモーターに制御された遺伝子の発現の有無等を指標として行うことができる。接合型特異的に機能するプロモーターとして、a型の接合能を持つ株で特異的に機能するSTE6プロモーターや、α型の接合能を持つ株で特異的に機能するMFalpha1プロモーターを好適に例示することができる。そこで、マーカーとして薬剤耐性プラスミドを用いる場合は、そのプラスミドに、前述の接合型特異的に機能するプロモーターと、その下流にPHO5遺伝子等のレポーター遺伝子をさらに配置すると、レポーター遺伝子の発現(例えば、PHO5遺伝子がコードする酸性ホスファターゼ活性)を指標として酵母の接合型を容易に確認することができる点で好ましい。また、ワイン酵母や焼酎酵母は銅感受性を持つことが多いため、テスター株との交雑の有無の判定を、例えば、テスター株の栄養要求性と、接合能を付与したい株の銅感受性が相補された株の出現の有無によって、判定することも可能である。   As a method for determining the mating type of the parent yeast, a method (eg, the method described in the above-mentioned Patent Document 2) that uses the presence or absence of hybridization with an a-type or α-type tester strain as an index, The presence or absence of expression of a gene controlled by the promoter to be used can be used as an indicator. Preferred examples of the promoter that specifically functions for the mating type include the STE6 promoter that functions specifically in the strain having the a-type mating ability and the MFalpha1 promoter that functions specifically in the strain having the alpha-type mating ability. Can do. Therefore, when a drug resistance plasmid is used as a marker, expression of the reporter gene (for example, PHO5, for example) can be performed by further arranging a promoter functioning specifically in the above-mentioned junction type and a reporter gene such as the PHO5 gene downstream of the plasmid. It is preferable in that the yeast mating type can be easily confirmed using the acid phosphatase activity encoded by the gene as an index. In addition, since wine yeast and shochu yeast are often copper-sensitive, the determination of the presence or absence of hybridization with a tester strain is complemented by, for example, the auxotrophy of the tester strain and the copper sensitivity of the strain to which conjugation is desired. It is also possible to make a judgment based on the presence or absence of a new stock.

本発明のワイン酵母菌株の作出方法においては、親ワイン酵母と親焼酎酵母を交雑した後、交雑株の中から高アルコール生成能を有する交雑株を選抜する。交雑により得られる交雑株と親株とを、より簡便に区別する観点から、親ワイン酵母や親焼酎酵母として、互いに異なるマーカーを付与した酵母を用い、それら各マーカーの表現型を指標として交雑株を効率良く分離することが好ましい。上記マーカーの種類としては、ジェネティシン(G418)やブラストサイジンS(BS)やオーレオバシジンA等の抗生物質などの薬剤の耐性に関する薬剤耐性マーカー;アミノ酸、プリン塩基、ピリミジン塩基などの栄養の要求性に関する栄養要求性マーカー;呼吸欠損マーカー;などの非薬剤の耐性に関する非薬剤耐性マーカーなどを例示することができる。なお、上記マーカーは、それぞれの酵母について複数種ずつ併用してもよい。   In the method for producing a wine yeast strain of the present invention, after crossing a parent wine yeast and a parent shochu yeast, a hybrid strain having a high alcohol-producing ability is selected from the hybrid strains. From the viewpoint of more easily distinguishing between the hybrid strain obtained by crossing and the parent strain, yeasts with different markers are used as parent wine yeast and parent shochu yeast, and the hybrid strain is determined using the phenotype of each marker as an index. It is preferable to separate efficiently. The types of markers include drug resistance markers for resistance to drugs such as antibiotics such as geneticin (G418), blasticidin S (BS) and aureobasidin A; nutritional requirements such as amino acids, purine bases and pyrimidine bases Examples include non-drug resistance markers related to non-drug resistance such as auxotrophic markers for sex; respiratory deficiency markers; and the like. The above markers may be used in combination for each yeast.

両親酵母に付与した各マーカーを指標として交雑株を分離する方法としては、例えば、両親酵母の混合培養物から、上記各マーカーの表現型を共に有するか又は相補する株を分離する方法を例示することができ、前述の分離は、各マーカーの性質に応じた適切な培地で培養することにより行うことができる。例えば薬剤耐性マーカーの場合は、その薬剤を含有する培地を用いることができ、栄養要求性マーカーの場合は、その栄養要求性を持つと生育できず、その栄養要求性を持たないと生育できる培地を用いることができ、呼吸欠損マーカーの場合は、呼吸欠損であると生育できず、呼吸欠損でないと生育できる培地を用いることができる。なお、それぞれの酵母について複数種ずつマーカーを併用した場合は、それらのマーカーすべてを交雑株の分離の際の指標とする必要はなく、両親酵母に特徴的なそれぞれ一つずつ以上のマーカーを適宜選択してそれらの表現型を指標として用いることができる。また、分離した株が実際に交雑株であるかどうかは、親株由来のSNPなどのDNAマーカーが混合されていることや、パルスフィールド・ゲル電気泳動によって親株由来の染色体が混合されていることや、DNA含量が親株よりも増加していることなどを調査することによって、確認することができる。   Examples of a method for isolating a hybrid strain using each marker given to the parent yeast as an index include, for example, a method for isolating a strain having both or complementary phenotypes of the respective markers from a mixed culture of the parent yeast. The aforementioned separation can be performed by culturing in an appropriate medium according to the properties of each marker. For example, in the case of a drug resistance marker, a medium containing the drug can be used, and in the case of an auxotrophic marker, a medium that cannot grow if it has the auxotrophy and can grow if it does not have the auxotrophy In the case of a respiratory defect marker, a medium that cannot grow if it is a respiratory defect and can grow if it is not a respiratory defect can be used. In addition, when multiple types of markers are used in combination for each yeast, it is not necessary to use all of these markers as indicators for the isolation of the hybrid strain. You can select and use those phenotypes as indicators. In addition, whether the separated strain is actually a hybrid strain is determined by the fact that DNA markers such as SNP derived from the parent strain are mixed, or the chromosome derived from the parent strain is mixed by pulse field gel electrophoresis. It can be confirmed by investigating that the DNA content is higher than that of the parent strain.

上記マーカーは、目的に応じて適宜使い分けることができる。例えば、薬剤耐性マーカー遺伝子の導入は、比較的簡便で迅速に行うことができる点で好ましいが、マーカー遺伝子が導入された遺伝子組換え酵母株をアルコール飲料の製造に利用した場合、遺伝子組換え食品の規制や、消費者の不安感の点で問題があるため、準備段階での予備交雑試験(例えば特に好ましいワイン酵母と焼酎酵母の組合せを調べるための交雑試験)に好適に用いることができる。一方、自然変異による栄養要求性マーカーや呼吸欠損マーカーの付与は、マーカー遺伝子の導入に比べて労力と時間を要するが、遺伝子組換え食品とならないため、これらのマーカーは実用化用の酵母菌株を得るための交雑試験に特に好適に用いることができる。したがって、接合能及び異なる薬剤耐性マーカーを付与したワイン酵母と焼酎酵母とを交雑する工程;前記の各薬剤耐性マーカーを指標として交雑株を分離する工程;分離した交雑株から、アルコール生成能の高い交雑株を選抜する工程;及び、選抜された交雑株の非薬剤耐性の野生型親酵母を、それぞれ接合能を付与した親ワイン酵母と、接合能を付与した親焼酎酵母として用いる工程;のすべてを含むことを特徴とするワイン酵母菌株の作出方法を好適に例示することができる。即ち、まずそれぞれ異なる薬剤耐性マーカー遺伝子を保持したプラスミドを導入するなどしてそれぞれ異なる薬剤耐性を付与した任意の2種類の酵母株を作製した後、それらを交雑し、その交雑株の中から前述の各薬剤を含有する培地中で生育できる薬剤耐性株を分離し、分離した株を糖質含有物に接種してその糖質含有物を醸造し、その醸造物のアルコール濃度を測定することでアルコール生成能の高い株を選抜する。このような一連の操作を行うことによって、アルコール生成能の高い交雑株を作出し得る親酵母の有望な組合せを具体的に特定することができる。また、アルコール濃度の測定によるアルコール生成能の高い選抜に加えて、他の指標に関する測定及びそれによる評価、例えば醸造物中の酢酸エチルや酢酸イソアミル等のエステルの生成量を測定することによるエステル生成能の評価や、醸造物の官能を調べることによる官能評価を行うことによって、アルコール生成能の高さに加えて風味にもより優れた交雑株を作出し得る親酵母の有望な組合せを具体的に特定することもできる。次に、選抜された前述の親酵母の有望な特定の組合せについて、それぞれ栄養要求性マーカーと呼吸欠損マーカー、又は、異なる栄養要求性マーカーを付与した酵母株を作製した後、それらを交雑し、その交雑株の中から、両マーカーが相補された株を分離し、分離した株を糖質含有物に接種してその糖質含有物を醸造し、その醸造物のアルコール濃度を測定することで、アルコール生成能が高く、かつ、実用化に適した酵母株を選抜することができる。この選抜株について、さらに、前述のような他の指標に関する測定及びそれによる評価を行うことによって、アルコール生成能の高さに加えて風味にもより優れた実用化用の酵母株を選抜することもできる。以上のような作出方法を用いると、薬剤耐性マーカーの利点と非薬剤耐性マーカー(栄養要求性マーカーや呼吸欠損マーカーなど)の利点を共に享受することができる。具体的には、交雑によりアルコール生成能の高い株が得られる酵母の組合せを、薬剤耐性マーカーを利用して効率良く調べることができ、その酵母の組合せに基づいて、栄養要求性マーカーと呼吸欠損マーカーの組合せ、又は、異なる栄養要求性マーカーの組合せを用いて交雑を行うことにより、遺伝子組換え食品の規制や、消費者の不安感の点で問題がなく、かつ、アルコール生成能の高い新規ワイン酵母菌株を効率良く作出することができる。薬剤耐性マーカーを用いる場合、ジェネティシン耐性マーカーとブラストサイジンS耐性マーカーの組合せを好適に例示することができる。なお、選抜された交雑株の非薬剤耐性の野生型親酵母とは、接合能及び異なる薬剤耐性マーカーを付与したワイン酵母と焼酎酵母の交雑に用いたそれら両酵母において、薬剤耐性マーカーを付与する前の酵母を意味する。   The marker can be appropriately used depending on the purpose. For example, the introduction of a drug resistance marker gene is preferable in terms of being relatively simple and quick, but when a genetically modified yeast strain into which the marker gene has been introduced is used for the production of an alcoholic beverage, a genetically modified food Therefore, it can be suitably used for a preliminary cross test at the preparation stage (for example, a cross test for examining a particularly preferred combination of wine yeast and shochu yeast). On the other hand, the provision of auxotrophic markers and respiratory deficiency markers by natural mutations requires labor and time compared to the introduction of marker genes, but these markers cannot be used for genetically modified foods. It can use especially suitably for the crossing test for obtaining. Therefore, a step of crossing wine yeast and shochu yeast given conjugation ability and different drug resistance markers; a step of separating a hybrid strain using each of the drug resistance markers as an index; and a high alcohol-producing ability from the separated hybrid strain All of a step of selecting a hybrid strain; and a step of using a non-drug-resistant wild-type parent yeast of the selected hybrid strain as a parent wine yeast imparted with a mating ability and a parent shochu yeast imparted with a mating ability, respectively. The method for producing a wine yeast strain characterized by containing That is, first, any two types of yeast strains each imparting different drug resistances are prepared by introducing plasmids each holding a different drug resistance marker gene, and then crossed, and the above-mentioned hybrid strains are selected from the hybrid strains. By separating the drug-resistant strains that can grow in the medium containing each of these drugs, inoculating the separated strains on the saccharide-containing material, brewing the saccharide-containing material, and measuring the alcohol concentration of the brewed product Select strains with high alcohol production ability. By performing such a series of operations, a promising combination of parent yeasts capable of producing a hybrid strain having a high alcohol-producing ability can be specifically identified. In addition to selection for high alcohol-producing ability by measuring the alcohol concentration, measurements on other indicators and evaluations, for example, ester production by measuring the amount of esters such as ethyl acetate and isoamyl acetate in brewed products Specific promising combinations of parent yeasts that can produce hybrid strains that are superior in flavor and in addition to high alcohol-producing ability by performing sensory evaluation by evaluating performance and sensory evaluation of brewed products It can also be specified. Next, for the promising specific combinations of the above-mentioned parent yeasts selected, each of the yeast strains to which an auxotrophic marker and a respiratory defect marker, or a different auxotrophic marker were added, was then crossed, From the hybrid strain, isolate the strain with both markers complemented, inoculate the separated strain into the saccharide content, brew the saccharide content, and measure the alcohol concentration of the brew. It is possible to select a yeast strain having a high alcohol-producing ability and suitable for practical use. For this selected strain, by further measuring and evaluating the other indicators as described above, selecting a yeast strain for practical use that is superior in flavor in addition to high alcohol-producing ability. You can also. By using the production method as described above, it is possible to enjoy both the advantages of drug resistance markers and the advantages of non-drug resistance markers (such as auxotrophic markers and respiratory deficiency markers). Specifically, a yeast combination that yields a strain with a high alcohol-producing ability by crossing can be efficiently examined using a drug resistance marker. Based on the yeast combination, an auxotrophic marker and a respiratory defect By using a combination of markers or a combination of different auxotrophic markers, there is no problem in terms of regulation of genetically modified foods and consumer anxiety, and a novel alcohol-producing ability A wine yeast strain can be produced efficiently. When a drug resistance marker is used, a combination of geneticin resistance marker and blasticidin S resistance marker can be preferably exemplified. In addition, the non-drug-resistant wild-type parent yeast of the selected hybrid strain gives a drug-resistance marker in both yeasts used for crossing wine yeast and shochu yeast that have been given a mating ability and different drug-resistance markers. It means the previous yeast.

また、実用化用のワイン酵母菌株を作出する場合の親株のマーカーの組合せとしては、例えば、栄養要求性マーカーを付与した親ワイン酵母と、呼吸欠損マーカーを付与した親焼酎酵母との組合せや、呼吸欠損マーカーを付与した親ワイン酵母と、栄養要求性マーカーを付与した親焼酎酵母との組合せを好適に例示することができ、呼吸欠損マーカーを付与した親ワイン酵母と、栄養要求性マーカーを付与した親焼酎酵母との組合せをより好適に例示することができるが、互いに異なる栄養要求性マーカー(例えば、リシン要求性とウラシル要求性)を付与した親ワイン酵母と親焼酎酵母との組合せでもよい。なお、この場合の親酵母への接合能の付与方法としては、栄養要求性マーカーを付与した酵母からは胞子形成を誘導することによって、また呼吸欠損マーカーを付与した酵母からは胞子形成を誘導せずに自然突然変異によって、それぞれ接合能を付与することが好ましい。   In addition, as a combination of parent strain markers when producing a wine yeast strain for practical use, for example, a combination of a parent wine yeast provided with an auxotrophic marker and a parent shochu yeast provided with a respiratory defect marker, A combination of a parent wine yeast to which a respiratory deficiency marker is given and a parent shochu yeast to which an auxotrophic marker is given can be suitably exemplified, and a parent wine yeast to which a respiratory deficiency marker is given and an auxotrophic marker are given A combination of the parent wine yeast and the parent shochu yeast provided with different auxotrophic markers (for example, lysine requirement and uracil requirement) may be used. . In this case, conjugation ability to the parent yeast is induced by inducing spore formation from yeast to which an auxotrophic marker has been added, and by inducing spore formation from yeast to which a respiratory defect marker has been added. It is preferable that conjugation ability is imparted by natural mutation.

前述の薬剤耐性マーカーを付与する方法としては、例えば、薬剤を含む培地で培養することによってその薬剤に対する耐性を誘導する方法や、薬剤耐性マーカー遺伝子を含むプラスミド(以下、「薬剤耐性マーカープラスミド」ともいう。)で酵母を形質転換する方法などを例示することができるが、より簡便で高効率で薬剤耐性を付与し得る点で、薬剤耐性プラスミドで酵母を形質転換する方法を好ましく例示することができる。上記の薬剤耐性マーカープラスミドとして、具体的には、図4に示されるpYT74、pYT75、pKN12、pKN13を好適に例示することができる。これら4種類の薬剤耐性マーカープラスミドはすべて、酵母細胞の中で自律的に複製されるために必要なARS1及びCEN3の配列と、ウラシル要求性を相補するURA3遺伝子を有している。ARS1、CEN3及びURA3の各配列はすべてKobayashiらの論文(Mol. Gen. Genet., 251: 707-715, 1996)に記載のプラスミドpYT37より得ることができる。またこれらの4種類のプラスミドのうち、pYT74とpYT75は、薬剤耐性を宿主に付与する遺伝子として、G418耐性を有しており、pKN12とpKN13は、ブラストサイジンS(BS)耐性を有している。G418耐性遺伝子発現カセットは、Yamanoらの論文(J. Biotechnol., 32: 173-178, 1994)に記載のプラスミドpZNEOより得ることができる。このG418耐性遺伝子発現カセットは、出芽酵母由来PGK1遺伝子のプロモーター及びターミネーターによって制御されている。一方、BS耐性遺伝子発現カセットは、Kobayashiらによる学術論文(Agric. Biol. Chem., 55: 3155-3157, 1991)に記載のDNA塩基配列を参考に、pSV2bsr(フナコシ社製)からPCRによりBS耐性遺伝子BSRを増幅し、出芽酵母由来TDH3遺伝子のプロモーター及びPGK1遺伝子のターミネーターに連結することによって作製することができる。   Examples of a method for imparting the above-described drug resistance marker include a method of inducing resistance to a drug by culturing in a medium containing the drug, and a plasmid containing a drug resistance marker gene (hereinafter referred to as “drug resistance marker plasmid”). The method of transforming yeast can be exemplified by the above), but a method of transforming yeast with a drug resistant plasmid is preferably exemplified in that it can impart drug resistance more easily and efficiently. it can. Specific examples of the drug resistance marker plasmid include pYT74, pYT75, pKN12 and pKN13 shown in FIG. These four types of drug resistance marker plasmids all have the URA3 gene that complements the uracil requirement with the sequences of ARS1 and CEN3, which are necessary for autonomous replication in yeast cells. ARS1, CEN3 and URA3 sequences can all be obtained from plasmid pYT37 described in Kobayashi et al. (Mol. Gen. Genet., 251: 707-715, 1996). Among these four types of plasmids, pYT74 and pYT75 have G418 resistance as genes that confer drug resistance to the host, and pKN12 and pKN13 have blasticidin S (BS) resistance. Yes. The G418 resistance gene expression cassette can be obtained from the plasmid pZNEO described in Yamano et al. (J. Biotechnol., 32: 173-178, 1994). This G418 resistance gene expression cassette is controlled by the promoter and terminator of the budding yeast-derived PGK1 gene. On the other hand, a BS resistant gene expression cassette was obtained by PCR using pSV2bsr (manufactured by Funakoshi) by PCR with reference to the DNA base sequence described in an academic paper by Kobayashi et al. (Agric. Biol. Chem., 55: 3155-3157, 1991). The gene can be prepared by amplifying the resistance gene BSR and linking it to a budding yeast-derived TDH3 gene promoter and a PGK1 gene terminator.

前述の薬剤耐性マーカープラスミドでの酵母の形質転換方法としては、プロトプラスト法(Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75: 1929 (1978))、金属処理法(J. Bacteriol., 153: 163 (1983))、電気穿孔法(大嶋泰治編著、学会出版センター発行, 1996)等を例示することができるが、簡便性の観点から、電気穿孔法を好適に例示することができる。   Methods for transforming yeast with the aforementioned drug resistance marker plasmid include protoplast method (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75: 1929 (1978)), metal treatment method (J. Bacteriol., 153: 163 ( 1983)), electroporation (edited by Taiji Oshima, published by the Society Publishing Center, 1996), and the like. From the viewpoint of simplicity, the electroporation can be preferably exemplified.

前述の栄養要求性マーカーを付与する方法としては、突然変異によって、様々なアミノ酸、プリン塩基、ピリミジン塩基等に対する要求性を持つようになった株を選抜する方法を例示することができる。具体的には、所定の酵母株をα−アミノアジピン酸を含む培地で培養して、α−アミノアジピン酸への耐性株を選抜することによって所定の酵母株にリシン要求性マーカーを付与する方法や、所定の酵母株を5−フルオロオロチン酸を含む培地で培養して、5−フルオロオロチン酸への耐性株を選抜することによって所定の酵母株にウラシル要求性マーカーを付与する方法を例示することができる。なお、上記突然変異としては、通常の突然変異処理によって誘導される突然変異であってもよいが、実用化に用いる菌株は自然突然変異により得られた株であることが好ましい。   Examples of the method for imparting the above-mentioned auxotrophic marker include a method of selecting a strain that has become required for various amino acids, purine bases, pyrimidine bases, etc. by mutation. Specifically, a method for imparting a lysine requirement marker to a predetermined yeast strain by culturing a predetermined yeast strain in a medium containing α-aminoadipic acid and selecting a strain resistant to α-aminoadipic acid Or culturing a predetermined yeast strain in a medium containing 5-fluoroorotic acid and selecting a strain resistant to 5-fluoroorotic acid to give a uracil-requiring marker to the predetermined yeast strain be able to. The mutation may be a mutation induced by ordinary mutation treatment, but the strain used for practical use is preferably a strain obtained by natural mutation.

前述の呼吸欠損マーカーを付与する方法としては、グリセロールを唯一の炭素源として含む培地で所定の酵母株を培養し、該培地で生育できない株を選抜することによって、所定の酵母株に呼吸欠損マーカーを付与する方法や、低濃度の臭化エチジウムを含む培地で所定の酵母を培養するか又は自然突然変異させて、ミトコンドリアを欠損させることによって、所定の酵母株に呼吸欠損マーカーを付与する方法を例示することができる。   As a method for imparting the above-mentioned respiratory defect marker, a predetermined yeast strain is cultured in a medium containing glycerol as a sole carbon source, and a strain that cannot grow on the medium is selected, whereby a respiratory defect marker is added to the predetermined yeast strain. And a method of imparting a respiratory defect marker to a predetermined yeast strain by culturing a predetermined yeast in a medium containing a low concentration of ethidium bromide or spontaneously mutating it to delete mitochondria. It can be illustrated.

交雑株の中から高アルコール生成能を有する交雑株を選抜する方法は特に制限されず、例えば交雑株のアルコール生成能を測定し、アルコール生成能が高い株を分離する方法を例示することができる。アルコール生成能の測定方法としては、例えば、適度な量のグルコースやフルクトースを含む培地で、溶存酸素を制限した条件下でのアルコール生成量を、キャピラリー・ガスクロマトグラフィーやF−キット・エタノール(J.K.インターナショナル社製)やアルコメイト(理研計器社製)で測定する方法を好適に例示することができる。また、アルコール生成量を直接測定する代わりに、交雑株の培養前後の培地中の糖度をデジタル糖度計(井内盛栄堂社製)等により測定し、培養により減少した糖の量を算出することによって、アルコール生成量を間接的に調べることもできる。前述のアルコール生成能が高い株としては、後述の実施例4に記載の非薬剤耐性マーカーを用いた交雑において得られた株の発酵試験において、2種類の親株のいずれよりも高いアルコール生成能を有する株を好ましく例示することができ、2種類の親株うちアルコール生成能の高い親株と比較して割合として10%以上高いアルコール生成能を有する株をより好ましく例示することができる。
また、他のアルコール生成能が高い株として、後述する実施例4に記載の非薬剤耐性マーカーを用いた交雑において得られた株の発酵試験における最高アルコール生成濃度又は最終アルコール生成濃度が、好ましくは16.2%以上、より好ましくは16.6%以上、さらに好ましくは17.2%以上、さらにより好ましくは17.6%以上、特に好ましくは18.0%以上、さらに好ましくは18.5%以上、より好ましくは19.0%、さらにより好ましくは19.5%以上、最も好ましくは20%以上の株を挙げることができる。なお、選抜して得られた酵母菌株は、通常のYPD培地等で培養し、継代、維持することができる。また、分離する前述のアルコール生成能が高い株としては、さらにアルコール生成速度が速い株であることが好ましい。
A method for selecting a hybrid strain having a high alcohol-producing ability from the hybrid strain is not particularly limited. For example, a method of measuring the alcohol-producing ability of a hybrid strain and isolating a strain having a high alcohol-producing ability can be exemplified. . As a method for measuring the alcohol-producing ability, for example, the amount of alcohol produced under a condition in which dissolved oxygen is limited in a medium containing an appropriate amount of glucose or fructose can be measured by capillary gas chromatography or F-kit ethanol (J K. International Co., Ltd.) or Alcomate (Riken Keiki Co., Ltd.). Also, instead of directly measuring the amount of alcohol produced, the sugar content in the medium before and after culturing of the hybrid strain is measured with a digital sugar content meter (manufactured by Inoue Seieido Co., Ltd.), etc., and the amount of sugar reduced by cultivation is calculated. The amount of alcohol produced can also be examined indirectly. As a strain having a high alcohol-producing ability as described above, in a fermentation test of a strain obtained by crossing using a non-drug resistant marker described in Example 4 described later, an alcohol-producing ability higher than any of the two types of parent strains is obtained. A strain having an alcohol-producing ability that is 10% or more higher than the parent strain having a high alcohol-producing ability among the two kinds of parent strains can be exemplified more preferably.
In addition, as other strains having high alcohol-producing ability, the highest alcohol production concentration or the final alcohol production concentration in the fermentation test of the strain obtained in the cross using the non-drug resistance marker described in Example 4 described later is preferably 16.2% or more, more preferably 16.6% or more, further preferably 17.2% or more, even more preferably 17.6% or more, particularly preferably 18.0% or more, and further preferably 18.5%. More preferably, 19.0%, even more preferably 19.5% or more, and most preferably 20% or more of the strain can be mentioned. In addition, the yeast strain obtained by selection can be cultured, subcultured and maintained in a normal YPD medium or the like. Moreover, as a strain | stump | stock with the above-mentioned high alcohol-producing ability to isolate | separate, it is preferable that it is a strain | stump | stock with a quicker alcohol production | generation rate.

本発明のワイン酵母菌株の作出方法における特に好ましい態様としては、「WE452株(ワイン酵母)に呼吸欠損マーカーを付与し、かつ、胞子形成を誘導せずに自然突然変異によって接合能を付与した株」と、「サッカロミセス・セレビシエきょうかい酵母焼酎用3号株に栄養要求性マーカーを付与し、かつ、胞子形成を誘導して接合能を付与した株」とを混合培養した後、栄養要求性と呼吸欠損の二つの性質が相補された交雑株を分離し、得られた交雑株の中からアルコール生成能の高い菌株を選抜する方法を例示することができる。この作出方法により得られ、高アルコール生成能を有し、かつ、アルコール生成能以外の特性においてもワイン酵母として優れた酵母菌株として、KT378株(受託番号FERM P−21448の株)を最も好ましく例示することができる。   As a particularly preferable embodiment in the method for producing a wine yeast strain of the present invention, “a strain having a respiratory defect marker added to WE452 strain (wine yeast) and conjugating ability by natural mutation without inducing sporulation” ”And“ a strain that gave an auxotrophic marker to Saccharomyces cerevisiae yeast strain No. 3 for shochu yeast and induced sporulation to conjugate ” A method of isolating a hybrid strain in which two properties of respiratory deficiency are complemented and selecting a strain having a high alcohol-producing ability from the obtained hybrid strain can be exemplified. As a yeast strain obtained by this production method, having a high alcohol-producing ability and excellent as a wine yeast in characteristics other than the alcohol-producing ability, the KT378 strain (strain number FERM P-21448) is most preferably exemplified. can do.

2.本発明の新規酵母菌株の作出方法
本発明の新規酵母菌株の作出方法(本発明の酵母菌株の作出方法)としては、任意の2種類の酵母に接合能及び異なる薬剤耐性マーカーを付与した後にそれら両酵母を交雑する工程、前記の各薬剤耐性マーカーを指標として交雑株を分離する工程、分離した交雑株から、所定の交雑株、例えばアルコール飲料の醸造に有利な性質を有する交雑株を選抜する工程、及び、選抜された交雑株の親株として用いた2種類の非薬剤耐性の野生型酵母にそれぞれ接合能を付与した後に交雑し、交雑株の中から所定の交雑株、例えばアルコール飲料の醸造に有利な性質を有する交雑株を選抜する工程のすべてを含んでいる限り特に制限されず、上記アルコール飲料の醸造に有利な性質としては、高アルコール生成能や高エステル生成能や高アルコール生成速度などを例示することができ、中でも高アルコール生成能や高エステル生成能を好適に例示することができる。また、選抜された交雑株の親株として用いた2種類の非薬剤耐性の野生型酵母とは、異なる薬剤耐性マーカーを付与した両酵母の交雑に用いたそれら両酵母において、薬剤耐性マーカーを付与する前の酵母を意味する。
2. Production method of the novel yeast strain of the present invention Production method of the novel yeast strain of the present invention (production method of the yeast strain of the present invention) includes adding conjugation ability and different drug resistance markers to any two types of yeast. A step of crossing both yeasts, a step of separating the hybrid strain using each of the drug resistance markers as an index, and selecting a hybrid strain having a property advantageous for brewing an alcoholic beverage from the separated hybrid strain. Steps and conjugation to each of the two non-drug-resistant wild-type yeasts used as parent strains of the selected hybrid strains, followed by hybridization, and brewing of a predetermined hybrid strain, such as an alcoholic beverage, from the hybrid strains As long as it includes all of the steps for selecting a hybrid strain having advantageous properties, the properties advantageous for brewing the alcoholic beverage include high alcohol production ability and high energy. Examples include stealth generation ability and high alcohol production rate. Among them, high alcohol production ability and high ester production ability can be preferably exemplified. In addition, two types of non-drug resistant wild-type yeasts used as parent strains of the selected hybrid strains are given drug resistance markers in both yeasts used for crossing both yeasts to which different drug resistance markers have been given. It means the previous yeast.

さらに、本発明における高エステル生成能を有する酵母とは、非薬剤耐性マーカーを用いた交雑において得られた株の以下のエステル生成能確認試験におけるいずれか1種類のエステル(例えば酢酸エチル又は酢酸イソアミル)の最終生成濃度が、その最終濃度が高い親株よりも割合として5%以上、好ましくは10%以上、より好ましくは40%以上、さらに好ましくは70%以上、さらにより好ましくは100%以上とすることができる酵母を意味する。   Furthermore, the yeast having high ester-producing ability in the present invention is any one ester (for example, ethyl acetate or isoamyl acetate) in the following ester producing ability confirmation test of a strain obtained by crossing using a non-drug resistant marker. ) Final product concentration is 5% or more, preferably 10% or more, more preferably 40% or more, even more preferably 70% or more, and even more preferably 100% or more, as a proportion of the parent strain having a high final concentration. It means yeast that can.

(エステル生成能確認試験)
前々培養として、サンプル酵母菌株の菌体をYPD寒天培地上で25℃、1日間培養する。次に、100ml容量の三角フラスコに、グルコース濃度を10%(w/v)としたYPD培地60mLを入れ、そこに前述の前々培養により得られた菌体を一白金耳分植菌した後、25℃で72時間振とう培養することによって前培養を行う。次いで、濾過滅菌したブドウ果汁(白ワイン用ストレート果汁(株式会社果香より入手)と濃縮果汁(株式会社東食より入手)を混合し、40brixに調整し、さらに窒素源として酵母エキス(MERCK社製)を2.3g/L、リン酸水素二アンモニウムを1.3g/Lとなるよう添加したもの)200mLを250ml容量の広口メジューム瓶に入れ、そこにOD600=1.0(約1.0×10cells/mL)となるように前培養後の菌体を植菌し、広口メジューム瓶のフタを緩めた状態にして、MAGNETIC STIRRER F-626N(Fine社製)にて90rpmの回転数で回転させながら20℃で嫌気撹拌培養(本培養)を行う。本培養開始から7日目の培養液について、キャピラリー・ガスクロマトグラフィー(島津製作所社製)を用いて、酢酸エチルや酢酸イソアミル等のエステルの生成量をそれぞれ測定する。
(Ester production ability confirmation test)
As a pre-culture, the cells of the sample yeast strain are cultured on a YPD agar medium at 25 ° C. for 1 day. Next, 60 mL of a YPD medium with a glucose concentration of 10% (w / v) is placed in a 100 ml Erlenmeyer flask, and the cells obtained by the previous culture are inoculated into one platinum loop. Pre-culture is performed by shaking culture at 25 ° C. for 72 hours. Next, filter-sterilized grape juice (straight juice for white wine (obtained from Kasuka Co., Ltd.) and concentrated fruit juice (obtained from Toshoku Co., Ltd.) were prepared, adjusted to 40 brix, and yeast extract (MERCK) as a nitrogen source. Manufactured product) 2.3 g / L and diammonium hydrogen phosphate added to 1.3 g / L) 200 mL was placed in a 250 ml wide-mouthed medium bottle, and OD600 = 1.0 (about 1.0 × 10 7 cells / mL) Inoculate the cells after pre-culture so that the lid of the wide-mouthed medium bottle is loosened, and rotate at 90 rpm with MAGNETIC STIRRER F-626N (Fine) And anaerobic stirring culture (main culture) at 20 ° C. With respect to the culture solution on the seventh day from the start of the main culture, the amount of ester such as ethyl acetate or isoamyl acetate is measured using capillary gas chromatography (manufactured by Shimadzu Corporation).

また、本発明における高アルコール生成速度を有する酵母とは、後述する本発明の実施例4に記載のブドウ果汁を用いた発酵試験における本培養開始18日経過後の培養液のアルコール生成濃度が、その濃度が高い方の親株よりも割合として5%以上、好ましくは10%以上、さらに好ましくは15%以上とすることができる酵母を意味する。   In addition, the yeast having a high alcohol production rate in the present invention means the alcohol production concentration of the culture solution after 18 days from the start of the main culture in the fermentation test using the grape juice described in Example 4 of the present invention described later. It means a yeast that can be 5% or more, preferably 10% or more, more preferably 15% or more as a proportion of the parent strain having a higher concentration.

上記の任意の2種類の酵母としては、特に制限されず、表1の分類に記載されているワイン酵母、清酒酵母、焼酎酵母、上面発酵酵母、下面発酵酵母、ウイスキー酵母、及び、その他の酵母からなる群から選ばれる任意の2種類の酵母を用いることができ、また、これらの酵母は天然酵母、遺伝子組換え酵母、野生型酵母、変異酵母のいずれであってもよい。交雑の組合せとしては、互いに異なる分類の酵母同士の組合せ、例えばワイン酵母と焼酎酵母等の組合せであってもよいし、同じ分類の酵母同士の組合せ、例えばワイン酵母とワイン酵母等の組合せであってもよい。上記の任意の2種類の酵母として、後述の表2〜6における酵母の組合せを例示することができる。また、アルコール飲料の醸造に有利な性質を有する交雑株として、高アルコール生成能を有する交雑株を選抜した場合は、任意の2種類の酵母として、後述の表2〜6において「株数」の欄の背面を灰色で示した酵母の組合せを好ましく例示することができ、中でも、図5に記載された「WE452(胞子)とK11(自然突然変異)」、「WE452(自然突然変異)とS−3(胞子)」、「WE452(胞子)とL2226(胞子)」、「K14(胞子)とS−3(胞子)」、「Geisenheim74(胞子)とDV10(胞子)」の組合せを特に好ましく例示することができ、また、ワイン酵母と焼酎酵母の組合せや、ワイン酵母と清酒酵母の組合せも好ましく例示することができる。ここで、「(胞子)」とは、接合能を付与するために、胞子形成誘導を介した株であることを意味し、「(自然突然変異)」とは、接合能を付与するために、胞子形成誘導を経ずに自然突然変異を利用した株であることを意味する。   The two arbitrary yeasts are not particularly limited, and are described in the classification of Table 1. Wine yeast, sake yeast, shochu yeast, top fermentation yeast, bottom fermentation yeast, whiskey yeast, and other yeasts Any two types of yeast selected from the group consisting of can be used, and these yeasts may be any of natural yeast, genetically modified yeast, wild-type yeast, and mutant yeast. The combination of hybridization may be a combination of yeasts of different classifications, for example, a combination of wine yeast and shochu yeast, or a combination of yeasts of the same classification, for example, a combination of wine yeast and wine yeast. May be. Examples of the two arbitrary yeasts described above include combinations of yeasts in Tables 2 to 6 described later. In addition, when a hybrid strain having a high alcohol-producing ability is selected as a hybrid strain having advantageous properties for brewing alcoholic beverages, the column “Number of strains” in Tables 2 to 6 described below is used as any two types of yeast. The combination of yeasts with the back side of gray is preferably exemplified, and among them, “WE452 (spore) and K11 (natural mutation)”, “WE452 (natural mutation) and S− described in FIG. 3 (spore) ”,“ WE452 (spore) and L2226 (spore) ”,“ K14 (spore) and S-3 (spore) ”,“ Geisenheim 74 (spore) and DV10 (spore) ”are particularly preferably exemplified. Moreover, the combination of wine yeast and shochu yeast, and the combination of wine yeast and sake yeast can also be illustrated preferably. Here, “(spore)” means a strain through the induction of sporulation to impart conjugation ability, and “(natural mutation)” means to confer conjugation ability. This means that the strain uses natural mutation without inducing sporulation.

本発明の酵母菌株の作出方法における接合能の付与方法、薬剤耐性マーカーの付与方法、両酵母の交雑方法、各薬剤耐性マーカーを指標とする交雑株の分離方法、非薬剤耐性の野生型酵母の交雑方法、その交雑株の分離方法、及び、それらの好ましい態様は、前述の本発明のワイン酵母菌株の作出方法と同様である。   Method for conferring conjugation ability, method for imparting drug resistance marker, method for crossing both yeasts, method for isolating hybrid strains using each drug resistance marker as an indicator, method for producing non-drug resistant wild-type yeast The crossing method, the method for separating the crossing strain, and preferred embodiments thereof are the same as the method for producing the wine yeast strain of the present invention described above.

上記のアルコール飲料の醸造に有利な性質を有する交雑株を選抜する方法としては、その性質により左右されるため特に制限されないが、その性質の程度を測定し、その程度が高い菌株を選抜する方法を例示することができる。前記性質が高アルコール生成能である場合のその測定方法は前述したとおりであり、また、前記性質が高エステル生成能である場合は、前述のエステル生成能確認試験で行われているように、所定の酵母菌株の培養液中のエステル成分の濃度をキャピラリー・ガスクロマトグラフィー等で測定する方法を例示することができる。   The method for selecting a hybrid strain having a property advantageous for brewing the alcoholic beverage is not particularly limited because it depends on the property, but a method for measuring the degree of the property and selecting a strain having a high level. Can be illustrated. When the property is a high alcohol-producing ability, the measurement method is as described above, and when the property is a high ester-producing ability, as in the above-described ester producing ability confirmation test, A method for measuring the concentration of the ester component in the culture solution of a predetermined yeast strain by capillary gas chromatography or the like can be exemplified.

本発明の酵母菌株の作出方法における特に好ましい態様としては、任意の2種類の酵母に接合能及び異なる薬剤耐性マーカーを付与した後にそれら両酵母を交雑する工程、前記の各薬剤耐性マーカーを指標として交雑株を分離する工程、分離した交雑株から、アルコール飲料の醸造に有利な性質を有する交雑株を選抜する工程、選抜された交雑株の親株として用いた2種類の非薬剤耐性の野生型酵母の一方に栄養要求性マーカーを、他方に呼吸欠損マーカーあるいは別の栄養要求性マーカーを付与し、かつ、両方に接合能を付与した後にそれら両酵母を交雑した後、非栄養要求性及び非呼吸欠損の表現型をマーカーとして交雑株を分離する工程、及び、交雑株の中からアルコール飲料の醸造に有利な性質を有する交雑株を選抜する工程のすべてを含む作出方法を挙げることができ、より好ましい態様として、前述の異なる薬剤耐性マーカーの組合せとして、ジェネティシン耐性マーカーとブラストサイジンS耐性マーカーとの組合せを用いる態様や、前述の非薬剤耐性の野生型酵母への接合能付与方法として、栄養要求性マーカーを付与した酵母からは胞子形成を誘導することによって、また呼吸欠損マーカーを付与した酵母からは胞子形成を誘導せずに自然突然変異によって、それぞれ接合能を付与する態様を挙げることができる。   As a particularly preferred embodiment in the method for producing a yeast strain of the present invention, a process of crossing both yeasts after imparting conjugation ability and different drug resistance markers to any two types of yeast, using each of the above drug resistance markers as an index A step of separating the hybrid strain, a step of selecting a hybrid strain having advantageous properties for brewing an alcoholic beverage from the separated hybrid strain, and two types of non-drug resistant wild type yeast used as a parent strain of the selected hybrid strain An auxotrophic marker is given to one of the two, a respiratory deficiency marker or another auxotrophic marker is given to the other, and both yeasts are crossed after conjugating ability to both, followed by non-nutritive and non-respiratory All of the steps of isolating a hybrid strain using the deficient phenotype as a marker, and selecting a hybrid strain having a property advantageous for brewing alcoholic beverages from the hybrid strain. As a more preferred embodiment, as a combination of the above-mentioned different drug resistance markers, an embodiment using a combination of geneticin resistance marker and blasticidin S resistance marker, or the above-mentioned non-drug resistant wild type can be used. As a method for imparting conjugation ability to type yeast, by spore formation is induced from yeast to which an auxotrophic marker is imparted, and from a yeast to which a respiratory deficiency marker is imparted, by spontaneous mutation without inducing spore formation, The aspect which each provides a joining ability can be mentioned.

3.本発明の新規酵母菌株
本発明の新規酵母菌株(本発明の酵母菌株)としては、前述の本発明のワイン酵母菌株の作出方法や前述の本発明の酵母菌株の作出方法(以下、両作出方法を合わせて「本発明の作出方法」ともいう。)によって得られる酵母菌株や該酵母菌株を培養して得られる酵母菌株であれば特に制限されないが、アルコール飲料の醸造に有利な性質(高アルコール生成能や高エステル生成能や高アルコール生成速度など)を有する酵母菌株や該酵母菌株を培養して得られる酵母菌株を好ましく例示することができ、高アルコール生成能、高エステル生成能、高アルコール生成速度から選ばれる2つ以上の性質を有している酵母菌株や該酵母菌株を培養して得られる酵母菌株をより好ましく例示することができる。
3. Novel yeast strain of the present invention As the novel yeast strain of the present invention (yeast strain of the present invention), the above-mentioned method for producing the wine yeast strain of the present invention and the above-described method for producing the yeast strain of the present invention (hereinafter, both production methods). In addition, the yeast strain obtained by culturing the yeast strain and the yeast strain obtained by culturing the yeast strain is not particularly limited, but has a property advantageous for brewing alcoholic beverages (high alcohol And yeast strains obtained by culturing the yeast strain and the like, and high alcohol-producing ability, high ester-producing ability, and high alcohol. More preferable examples include yeast strains having two or more properties selected from production rates and yeast strains obtained by culturing the yeast strains.

また、高アルコール生成能を有する酵母菌株としては、後述の実施例4に記載の発酵試験において、2種類の親株のいずれよりも高いアルコール生成能を有する株を好ましく例示することができ、2種類の親株のうちアルコール生成能の高い親株と比較して割合として10%以上高いアルコール生成能を有する株をより好ましく例示することができる。また、他のアルコール生成能が高い株として、後述の実施例4に記載の発酵試験における最高アルコール生成濃度又は最終アルコール生成濃度が、好ましくは16.2%以上、より好ましくは16.6%以上、さらに好ましくは17.2%以上、さらにより好ましくは17.6%以上、特に好ましくは18.0%以上、さらに好ましくは18.5%以上、より好ましくは19.0%、さらにより好ましくは19.5%以上、最も好ましくは20%以上の株を挙げることができる。本発明の好ましい酵母菌株の具体例として、KT378株(受託番号FERM P−21448の株)を特に好ましく例示することができる。   Moreover, as a yeast strain | stump | stock which has high alcohol production ability, the strain which has alcohol production ability higher than any of two types of parent strains can be illustrated preferably in the fermentation test as described in Example 4 mentioned later. Among these parent strains, a strain having an alcohol-producing ability that is 10% or more higher than the parent strain having a high alcohol-producing ability can be exemplified more preferably. Moreover, as other strains having high alcohol-producing ability, the highest alcohol production concentration or the final alcohol production concentration in the fermentation test described in Example 4 described later is preferably 16.2% or more, more preferably 16.6% or more. More preferably 17.2% or more, still more preferably 17.6% or more, particularly preferably 18.0% or more, still more preferably 18.5% or more, more preferably 19.0%, even more preferably Examples include 19.5% or more strains, most preferably 20% or more. As a specific example of a preferable yeast strain of the present invention, KT378 strain (strain number FERM P-21448) can be particularly preferably exemplified.

4.本発明のアルコール飲料の製造方法
本発明のアルコール飲料の製造方法としては、本発明の酵母菌株、好ましくはワイン酵母菌株を糖質含有物に接種して醸造(培養)する方法である限り特に制限されず、ここで「糖質含有物」としては、ブドウ果汁、キウイ果汁、リンゴ果汁、ブルーベリー果汁、アンズ果汁等の果汁や、米、麦、粟、トウモロコシ等の穀類や、サツマイモ等の芋類を例示することができる。上記アルコール飲料としては特に制限されず、ワイン等の果実酒;焼酎;清酒;ビール;ウィスキー;ブランデー;などを例示することができるが、果実酒を好適に例示することができ、中でもワインを特に好適に例示することができる。
4). Production method of alcoholic beverage of the present invention The production method of alcoholic beverage of the present invention is not particularly limited as long as it is a method of inoculating a saccharide-containing material with the yeast strain of the present invention, preferably a wine yeast strain, and brewing (culturing) it. In this case, the “sugar-containing material” includes grape juice, kiwi juice, apple juice, blueberry juice, apricot juice, and other cereals such as rice, wheat, straw, and corn, and sweet potatoes such as sweet potatoes. Can be illustrated. Examples of the alcoholic beverage include, but are not limited to, fruit wine such as wine; shochu; refined sake; beer; whiskey; brandy; and the like. It can illustrate suitably.

以下、ワイン等の果実酒を例に、その製造方法をより具体的に説明する。
本発明の酵母菌株を果汁に直接接種してもよいが、この酵母菌株のスラントから通常のYPD寒天培地で培養した後、得られた菌体を果汁培地に接種し培養して(前培養)、本培養用の種培養液を作製してもよい。この前培養の培養条件としては、25℃で2日間静置培養することを好ましく例示することができる。前述の種培養液を、予め調製した本培養用の果汁液に接種して培養することによって、本培養(本醸造)を行うことができる。本培養用の果汁液は、市販の濃縮果汁とストレート果汁を用いて濃度を調整するなどして調製することができる。本醸造の条件としては、4〜35℃、好ましくは15〜25℃で、8〜14日間培養することを好ましく例示することができる。また、本醸造の途中に補糖を行ってもよい。補糖はグルコースを使用することができ、補糖後の培養液の糖濃度が約20%になるように調整することが好ましい。
Hereinafter, the production method will be described more specifically by taking fruit wine such as wine as an example.
The yeast strain of the present invention may be directly inoculated into fruit juice, but after culturing on a normal YPD agar medium from a slant of this yeast strain, the obtained bacterial cells are inoculated into a juice medium and cultured (preculture) Alternatively, a seed culture solution for main culture may be prepared. A preferred example of the culture condition for the pre-culture is stationary culture at 25 ° C. for 2 days. A main culture (main brewing) can be performed by inoculating the above-described seed culture liquid into a pre-prepared fruit juice for main culture and culturing. The fruit juice for main culture can be prepared by adjusting the concentration using commercially available concentrated fruit juice and straight fruit juice. As conditions for the main brewing, it can be preferably exemplified by culturing at 14 to 35 ° C., preferably 15 to 25 ° C. for 8 to 14 days. Moreover, you may perform a sugar supplement in the middle of this brewing. Glucose can be used as the supplementary sugar, and it is preferable to adjust the sugar concentration of the culture solution after supplementation to about 20%.

醸造する果実酒がワインである場合は、醸造に用いる果汁として、主にブドウ果汁を用いることができるが、その他キウイ、リンゴ、ブルーベリー、アンズ等の果汁なども特に制限されず用いることができる。これらの果汁の分析(比重、直接還元糖、総酸、フェノール、糖度等)は常法に従って行うことができる。また、醸造して得られたワインの分析は、例えば、ワインに含まれるアルコール、直接還元糖、総酸、着色度(420nmの吸光度)、フェノール、硫化水素、低沸点香気成分等を測定し、評価するなどの通常の方法に従って行うことができる。また、良食味のワインか否かは、上記分析結果のみならず、複数の専門パネラーによって味や臭い等を評価することで判定することができる。上記の分析や専門パネラーの評価などに基づいて、本発明の作出方法により得られた菌株から、ワイン等の果実酒の醸造に適している菌株を選抜することができる。なお、本発明のアルコール飲料の製造法においては、本発明の酵母菌株の他に、任意の微生物を併用してもよい。   When the brewed fruit liquor is wine, grape juice can be mainly used as the juice used for brewing, but other fruit juices such as kiwi, apple, blueberry, and apricot can also be used without any particular limitation. Analysis of these fruit juices (specific gravity, direct reducing sugar, total acid, phenol, sugar content, etc.) can be performed according to a conventional method. In addition, the analysis of wine obtained by brewing, for example, measuring alcohol, direct reducing sugar, total acid, coloring degree (absorbance at 420 nm), phenol, hydrogen sulfide, low boiling point aroma components, etc. contained in wine, It can be performed according to a normal method such as evaluation. Further, whether or not the wine has a good taste can be determined not only by the above analysis results but also by evaluating the taste, smell, etc. by a plurality of specialized panelists. Based on the above analysis and the evaluation of specialized panelists, a strain suitable for brewing fruit wine such as wine can be selected from the strains obtained by the production method of the present invention. In addition, in the manufacturing method of the alcoholic beverage of this invention, you may use arbitrary microorganisms together with the yeast strain of this invention.

以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。但し、本発明はこれら実施例にその技術的範囲が限定されるものではない。
(共通実験条件)
酵母の培養は、他に記載のない限り、Current Protocols in Molecular Biology, Chapter 13, Yeast(前出)に記載のYPD培地(非選択的条件)もしくはSD培地(選択的条件)によって行なった。呼吸欠損株を識別する培地としては、YPDG培地とYPG培地(METHODS IN YEAST GENETICS, A Cold Spring Harbor Laboratory Course Manual, 1997 Edition)を用いた。交雑株を選択的に培養する培地としては、SD培地の糖源を2%グルコースから2%グリセロールに変更したSG培地を用いた。また、酵母の接合、胞子形成誘導、ランダム胞子法もすべて、Current Protocols in Molecular Biology, Chapter 13, Yeast(前出)に記載の方法で行なった。
Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples. However, the technical scope of the present invention is not limited to these examples.
(Common experimental conditions)
Unless otherwise stated, yeast was cultured in YPD medium (non-selective condition) or SD medium (selective condition) described in Current Protocols in Molecular Biology, Chapter 13, Yeast (supra). YPDG medium and YPG medium (METHODS IN YEAST GENETICS, A Cold Spring Harbor Laboratory Course Manual, 1997 Edition) were used as a medium for identifying respiratory deficient strains. As a medium for selectively cultivating the hybrid strain, an SG medium in which the sugar source of the SD medium was changed from 2% glucose to 2% glycerol was used. Yeast conjugation, spore formation induction, and random spore method were all performed by the methods described in Current Protocols in Molecular Biology, Chapter 13, Yeast (supra).

(実施例で用いた酵母菌株)
実施例で用いた酵母菌株の情報を表1に記載する。
(Yeast strain used in Examples)
Information on yeast strains used in the examples is listed in Table 1.

なお、KY1381は、発明者の一部が属するキリンホールディングス株式会社が保存している酵母菌株であり、キリンホールディングス株式会社フロンティア技術研究所(〒236−0004神奈川県横浜市金沢区福浦1−13−5)にて入手した。 KY1381 is a yeast strain preserved by Kirin Holdings Co., Ltd., to which a part of the inventor belongs, and Kirin Holdings Co., Ltd. Frontier Technical Research Institute (1-13 Fukuura, Kanazawa-ku, Yokohama, Kanagawa Prefecture 236-0004) Obtained in 5).

[高いアルコール生成能を有する酵母交雑株を作出するための交雑親の組合せの選抜]
(1)実用酵母菌株のアルコール生成能や発酵能の測定
高いアルコール生成能を有する酵母交雑株を作出するための親株の組合せの選抜をまず行った。具体的には、図1に記載された14種類の実用酵母菌株についてブドウ果汁でのアルコール発酵能を以下の方法で調べた。
前々培養として、前述のそれぞれの酵母の菌体を、YPD寒天培地上で25℃、3日間培養した。次いで、直径18mm、高さ165mmの試験管に、グルコース濃度を10%(w/v)としたYPD培地15mLを入れ、そこに前々培養後の菌体を一白金耳分植菌し、25℃で48時間振とう培養することによって前培養を行った。次に、直径25mm、高さ200mmの試験管に、濾過滅菌したブドウ果汁〔白ワイン用ストレート果汁と濃縮果汁を混合して37brixに調整した果汁に、さらに窒素源として1.3g/Lのリン酸水素二アンモニウム及び2.6g/Lのファームテック酵母エキス(Merck社製)を添加したもの〕30mLを入れ、そこにOD600=1.0(約1.0×10cells/mL)となるように前培養後の菌体を植菌し、20℃で14日間、ローテーターRT−550(タイテック社製)にて2.5rpmの回転数で回転培養することによって、発酵試験(本培養)を行った。本培養後の培養液のアルコール濃度をアルコメイト(理研計器社製)にて測定した。その結果を図1に示す。図1から分かるように、清酒酵母は全般的に高いアルコール生成能を示したが、ワイン酵母は株によってばらつきが大きく、焼酎酵母には特に高いアルコール生成能を示す株を見い出すことはできなかった。
[Selection of hybrid parental combinations to produce yeast hybrids with high alcohol production ability]
(1) Measurement of alcohol production ability and fermentation ability of practical yeast strains First, a combination of parent strains for producing a yeast hybrid having high alcohol production ability was selected. Specifically, the alcohol fermentation ability in grape juice was investigated by the following method about 14 types of practical yeast strains described in FIG.
As a pre-culture, each of the aforementioned yeast cells was cultured on a YPD agar medium at 25 ° C. for 3 days. Next, 15 mL of YPD medium with a glucose concentration of 10% (w / v) was placed in a test tube having a diameter of 18 mm and a height of 165 mm, and the cells after the previous culture were inoculated into one platinum loop, and 25 Pre-culture was performed by shaking culture at 48 ° C. for 48 hours. Next, in a test tube having a diameter of 25 mm and a height of 200 mm, filter-sterilized grape juice [mixed straight juice for white wine and concentrated juice to 37 Brix, and 1.3 g / L phosphorus as a nitrogen source] 30 ml of OD600 = 1.0 (about 1.0 × 10 7 cells / mL) added with diammonium oxyhydrogen and 2.6 g / L Farmtech yeast extract (Merck) Inoculate the cells after the pre-culture as above, and perform the fermentation test (main culture) at 20 ° C for 14 days with a rotator RT-550 (manufactured by Taitec Co., Ltd.) at 2.5 rpm. went. The alcohol concentration of the culture solution after the main culture was measured with Alcomate (manufactured by Riken Keiki Co., Ltd.). The result is shown in FIG. As can be seen from FIG. 1, sake yeast generally showed high alcohol-producing ability, but wine yeast varied greatly depending on the strain, and shochu yeast could not find a strain showing particularly high alcohol-producing ability. .

ブドウ果汁で培養した場合のアルコール生成能は、嫌気条件下での40%グルコース濃度の培地での糖消費能と概ね相関関係が存在すると考えられたため、上記のブドウ果汁での発酵試験よりも簡便な親株の選定法として以下の方法により、実用株の発酵能を調べた。
まず前培養として、図2に記載された酵母菌株を含む8種類の実用酵母菌株を、それぞれYPD培地で25℃、1日間、振とう培養した。次いで、100mL容三角フラスコ中に、40%グルコース含有YPD培地(以下、単に「YPD40培地」という。)を60mL入れ、そこに初期OD600=0.16となるように前培養後の菌体を植菌し、25℃で7日間の静置培養を行った。静置培養の後、ビールアナライザー(京都電子工業社製)で外観発酵エキスを測定した。その結果の一部を図2に示す。Geisenheim74が比較的良好な発酵能を示したので、この株と同等の発酵能を示す株を「発酵良」、この株より割合として10%以上発酵能が優れる株を「発酵優」とした。図2の結果において、「発酵良」又は「発酵優」と認められた株について、後述するように交雑株の取得を試みた。
Alcohol-producing ability when cultivated with grape juice is considered to be largely correlated with sugar-consuming ability in a 40% glucose-concentrated medium under anaerobic conditions, so it is simpler than the above-described fermentation test with grape juice. As a method for selecting a parent strain, the fermentability of a practical strain was examined by the following method.
First, as a preculture, 8 types of practical yeast strains including the yeast strain described in FIG. 2 were each cultured with shaking in a YPD medium at 25 ° C. for 1 day. Next, 60 mL of 40% glucose-containing YPD medium (hereinafter simply referred to as “YPD40 medium”) is placed in a 100 mL Erlenmeyer flask, and the cells after preculture are planted therein so that the initial OD600 = 0.16. Bacterial and static culture was performed at 25 ° C. for 7 days. After stationary culture, the appearance fermentation extract was measured with a beer analyzer (manufactured by Kyoto Electronics Industry Co., Ltd.). A part of the result is shown in FIG. Since Geisenheim 74 showed a relatively good fermentability, a strain exhibiting a fermentability equivalent to this strain was designated as “fermentation good”, and a strain having a fermentability superior to this strain by 10% or more as “fermentation excellent”. In the results of FIG. 2, for strains recognized as “fermentation good” or “fermentation excellent”, acquisition of hybrid strains was attempted as described later.

(2)実用株間交雑株の取得
実用株間交雑株取得のスキームを図3に示す。図3から分かるように、2種類の親株(親株Aと親株B)に対して、それぞれ別の薬剤耐性マーカープラスミドを導入し、さらに、両親株に接合能を付与した後、混合培養して接合させ、前述の両方の薬剤耐性を有していることを指標として、交雑株の取得を行った。親株に薬剤耐性を付与するプラスミドとして、pYT74、pYT75、pKN12、pKN13を用いた。これらのプラスミドの模式図を図4に示す。これら4種類のプラスミドはすべて、酵母細胞の中で自律的に複製されるために必要なARS1及びCEN3の配列と、ウラシル要求性を相補するURA3遺伝子を持つが、それらの配列はすべてKobayashiらの論文(Mol. Gen. Genet., 251: 707-715, 1996)に記載のプラスミドpYT37より得た。またこれらの4種類のプラスミドのうち、pYT74とpYT75は、薬剤耐性を宿主に付与する遺伝子として、G418耐性を有しており、pKN12とpKN13は、ブラストサイジンS(BS)耐性を有している。G418耐性遺伝子発現カセットは、Yamanoらの論文(J. Biotechnol., 32: 173-178, 1994)に記載のプラスミドpZNEOより得た。この発現カセットは、出芽酵母由来PGK1遺伝子のプロモーター及びターミネーターによって制御されている。一方、BS耐性遺伝子発現カセットは、Kobayashiらによる学術論文(Agric. Biol. Chem., 55: 3155-3157, 1991)に記載のDNA塩基配列を参考に、pSV2bsr(フナコシ社製)からPCRによりBS耐性遺伝子BSRを増幅し、出芽酵母由来TDH3遺伝子のプロモーター及びPGK1遺伝子のターミネーターに連結することによって作製した。また、酵母の接合型を判定する接合型判定用カセットは、大阪大学大学院工学研究科生命先端工学専攻・原島俊教授より分譲を受けた。このカセットは、中沢が記載しているプラスミドpNN63及びpNN64に含まれるカセットと同一のものである(清酒酵母の研究・90年代の研究、清酒酵母・麹研究会編、財団法人日本醸造協会発行: p95-99, 2003)。pNN63に含まれるSTE6プロモーターに制御されたPHO5遺伝子はa型接合能を持つ株のみで発現されるのに対し、pNN64に含まれるMFalpha1プロモーターに制御されたPHO5遺伝子はα型接合能を持つ株のみで発現される。この性質の違いを利用して、生物分子遺伝学実験法(大嶋泰治編著、学会出版センター発行, 1996)に記載の方法に従って、PHO5遺伝子がコードする酸性ホスファターゼ活性を検出することにより、酵母の接合型の判定を行った。
(2) Acquisition of cross strains between practical strains Fig. 3 shows a scheme for acquiring cross strains between practical strains. As can be seen from FIG. 3, different drug resistance marker plasmids were introduced into two types of parent strains (parent strain A and parent strain B), and after conjugating ability was given to the parent strains, they were mixed and cultured. Then, a cross strain was obtained using the above-mentioned drug resistance as an index. PYT74, pYT75, pKN12, and pKN13 were used as plasmids that confer drug resistance to the parent strain. A schematic diagram of these plasmids is shown in FIG. These four plasmids all have the ARS1 and CEN3 sequences necessary for autonomous replication in yeast cells and the URA3 gene that complements the uracil requirement, all of which are from Kobayashi et al. It was obtained from the plasmid pYT37 described in the paper (Mol. Gen. Genet., 251: 707-715, 1996). Among these four types of plasmids, pYT74 and pYT75 have G418 resistance as genes that confer drug resistance to the host, and pKN12 and pKN13 have blasticidin S (BS) resistance. Yes. The G418 resistance gene expression cassette was obtained from the plasmid pZNEO described in Yamano et al. (J. Biotechnol., 32: 173-178, 1994). This expression cassette is controlled by the promoter and terminator of the budding yeast-derived PGK1 gene. On the other hand, a BS resistant gene expression cassette was obtained by PCR using pSV2bsr (manufactured by Funakoshi) by PCR with reference to the DNA base sequence described in an academic paper by Kobayashi et al. (Agric. Biol. Chem., 55: 3155-3157, 1991). The resistance gene BSR was amplified and ligated to a budding yeast-derived TDH3 gene promoter and a PGK1 gene terminator. The cassette for determining the mating type of yeast was obtained from Prof. Shun Harashima, Department of Life Advanced Engineering, Graduate School of Engineering, Osaka University. This cassette is the same as the one contained in plasmids pNN63 and pNN64 described by Nakazawa (Research on Sake Yeast / Research in the 1990s, Sake Yeast / Sake Study Group, published by Japan Brewing Association: p95-99, 2003). The PHO5 gene controlled by the STE6 promoter contained in pNN63 is expressed only in strains having a-type joining ability, whereas the PHO5 gene controlled by MFalpha1 promoter contained in pNN64 is only available in strains having α-type joining ability. Expressed in Utilizing this difference in properties, the yeast zygote was detected by detecting the acid phosphatase activity encoded by the PHO5 gene according to the method described in the Biomolecular Genetics Experimental Method (edited by Taiji Oshima, published by the Academic Publishing Center, 1996). The type was determined.

前述の薬剤耐性マーカープラスミドでの親株の形質転換は、生物分子遺伝学実験法(大嶋泰治編著、学会出版センター発行, 1996)に記載の方法に従って、電気穿孔法により行なった。得られた形質転換体をYPD培地で静止期まで液体振とう培養を行い、その菌体を寒天培地に塗布し、上述の方法で酸性ホスファターゼ活性を調べて、該活性を発現している株を分離することによって、前述の形質転換体の中から自然突然変異で接合能を取得した株を分離した。分離した菌体を滅菌水に懸濁し、自然突然変異体懸濁液とした。   Transformation of the parent strain with the aforementioned drug resistance marker plasmid was performed by electroporation in accordance with the method described in Biomolecular Genetics Experiment Method (edited by Taiji Oshima, published by the Academic Publishing Center, 1996). The obtained transformant is subjected to liquid shaking culture in a YPD medium until stationary, the cell is applied to an agar medium, the acid phosphatase activity is examined by the method described above, and a strain expressing the activity is obtained. By isolating, the strain that had acquired conjugation ability by natural mutation was isolated from the above-mentioned transformants. The separated cells were suspended in sterilized water to obtain a spontaneous mutant suspension.

一方、胞子を誘導することにより接合能を付与した株の取得は、以下の方法で行なった。
100mL容三角フラスコに10mLの胞子形成用培地(酢酸カリウム 1.0%、Difco Yeast Extract 0.1%、グルコース 0.05%)を入れ、そこに酵母菌体を植菌し、一週間以上25℃で振とう培養を行なった後、培養液を遠心することによって集菌し、得られた菌体を5mLの滅菌水に懸濁し、0.25mLの2mg/mL Zymolyase 100T(生化学工業社製)及び0.01mLのβ-メルカプトエタノールを加え、30℃で一晩振とうした。得られた培養液を遠心して集菌し、その菌体を1mLの1.5% Nonidet P-40(ナカライテスク社製)に懸濁した後、遠心して集菌し、次いで、再び1mLの1.5% Nonidet P-40(ナカライテスク社製)に懸濁し、水浴式超音波発生装置で10分間の処理を行なった後、60℃で10分間処理を行なうことによって胞子以外の細胞を破砕した。この破砕液から再度集菌し、次いで、それを再び1mLの1.5% Nonidet P-40(ナカライテスク社製)に懸濁し、水浴式超音波発生装置で10分間の超音波処理を行なった後、遠心して集菌し、その菌体を滅菌水に懸濁し、胞子懸濁液とした。
On the other hand, acquisition of a strain imparted with conjugation ability by inducing spore was performed by the following method.
Place 10 mL of spore-forming medium (potassium acetate 1.0%, Difco Yeast Extract 0.1%, glucose 0.05%) into a 100 mL Erlenmeyer flask, inoculate the yeast cells, and continue for 25 weeks or more. After culturing with shaking at 0 ° C., the culture solution is collected by centrifugation, and the obtained cells are suspended in 5 mL of sterile water and 0.25 mL of 2 mg / mL Zymolyase 100T (manufactured by Seikagaku Corporation). ) And 0.01 mL β-mercaptoethanol were added and shaken at 30 ° C. overnight. The obtained culture broth was collected by centrifugation, and the cells were suspended in 1 mL of 1.5% Nonidet P-40 (manufactured by Nacalai Tesque), and then collected by centrifugation, and then again 1 mL of 1 Suspended in 5% Nonidet P-40 (manufactured by Nacalai Tesque), treated with a water bath ultrasonic generator for 10 minutes, and then treated at 60 ° C for 10 minutes to disrupt cells other than spores. . Bacteria were collected again from this disrupted solution, then suspended again in 1 mL of 1.5% Nonidet P-40 (manufactured by Nacalai Tesque), and subjected to ultrasonic treatment for 10 minutes with a water bath ultrasonic generator. Thereafter, the cells were collected by centrifugation, and the cells were suspended in sterilized water to obtain a spore suspension.

自然突然変異で接合能を付与した親株や、胞子を誘導することにより接合能を付与した親株を用いた交雑は、2つの親株に由来する胞子懸濁液同士、2つの親株に由来する自然突然変異懸濁液同士、又は、1つの親株に由来する胞子懸濁液と1つの親株に由来する自然突然変異懸濁液、を混合し、YPD液体培地中で一晩静置後、0.4mg/mL ジェネティシン(Gibco BRL社製)及び0.2mg/mL ブラストサイジンS(フナコシ社製)を含むYPD寒天培地に塗布し、両親株に付与した2つの薬剤に対する耐性を指標として交雑株を選抜した。その結果、合計79通りの親株の組合せから、852株の交雑株を得た。   A cross using a parent strain imparted with conjugation ability by natural mutation or a parent strain imparted conjugation ability by inducing spores is caused by spontaneous spore suspensions derived from two parent strains. Mutant suspensions, or a spore suspension derived from one parent strain and a spontaneous mutation suspension derived from one parent strain were mixed and allowed to stand in YPD liquid medium overnight, then 0.4 mg / ML Geneticin (Gibco BRL) and 0.2 mg / mL Blasticidin S (Funakoshi) containing YPD agar medium, and select the hybrids using the resistance to the two drugs given to the parent strain as an index did. As a result, 852 hybrids were obtained from a total of 79 combinations of parent strains.

(3)交雑株の発酵能の一次評価
上記実施例1(2)で得られた交雑株を、上記実施例1(1)記載の方法で静置培養し、発酵能の評価を行なった。発酵能の評価は、デジタル糖度計(井内盛栄堂社製)を用い、糖度の減少を指標として行った。その結果を表2〜6に示す。なお、表中の「親株における接合能の付与方法」の項目におけるNは胞子形成誘導を経ずに接合能を付与したことを表し、Sは胞子形成誘導を経て接合能を付与したことを表し、「×」の左側の記号が親株1の、右側の記号が親株2の接合能の付与方法を表す。また、残存糖度がGeisenheim74より低い株を「発酵良」と評価し、残存糖度がGeisenheim74の0.9倍より低い株を「発酵優」と評価した。また、「発酵優」に該当する株は、「発酵良」としてもカウントした。さらに、発酵優の株が1株以上取得できた交雑組合せについては、「株数」の欄の背面を灰色で示している。
(3) Primary evaluation of the fermentability of the cross strain The cross strain obtained in Example 1 (2) was statically cultured by the method described in Example 1 (1), and the fermentability was evaluated. The evaluation of fermentability was performed using a digital sugar content meter (manufactured by Inoue Seiyodo Co., Ltd.) with the decrease in sugar content as an index. The results are shown in Tables 2-6. In the table, N in the item of “Method for imparting conjugation ability in parent strain” represents that conjugation ability was imparted without undergoing sporulation induction, and S represents that conjugation ability was imparted via sporulation induction. , The symbol on the left side of “x” represents the method of imparting the mating ability of the parent strain 1 and the symbol on the right side of the parent strain 2. A strain having a residual sugar content lower than that of Geisenheim 74 was evaluated as “fermentation good”, and a strain having a residual sugar content lower than 0.9 times that of Geisenheim 74 was evaluated as “fermentation excellent”. In addition, the strain corresponding to “fermentation excellent” was also counted as “fermentation good”. Furthermore, the back of the “Number of strains” column is shown in gray for a hybrid combination in which one or more fermented strains have been acquired.

これら852株の交雑株の中から、「発酵良」の株として228株を、「発酵優」の株として24株を選抜した。「発酵優」の株が得られた親株の組合せは、16組合せであった。   From these 852 hybrids, 228 strains were selected as “fermentation good” strains and 24 strains as “fermentation excellent” strains. There were 16 combinations of parental strains from which the “Fermentation Excellent” strain was obtained.

(4)交雑株の発酵能の二次評価
上記実施例1(3)の一次評価において良好な発酵能を示した交雑株について、ブドウ果汁での発酵能を以下に述べる方法で調べた。
前々培養として、交雑株の菌体を、YPD寒天培地上で25℃、3日間培養した。次に、直径18mm、高さ165mmの試験管にグルコース濃度を10%(w/v)としたYPD培地5mLを入れ、そこに前々培養して得られた菌体を一白金耳分植菌した後、25℃で48時間振とう培養することによって前培養を行った。
(4) Secondary Evaluation of Fermentation Ability of Cross Strains For the cross strains that showed good fermentation ability in the primary evaluation of Example 1 (3) above, the fermentability in grape juice was examined by the method described below.
As pre-culture, the cells of the hybrid strain were cultured on a YPD agar medium at 25 ° C. for 3 days. Next, 5 mL of a YPD medium with a glucose concentration of 10% (w / v) is placed in a test tube having a diameter of 18 mm and a height of 165 mm, and the cells obtained by culturing the YPD medium in advance are then inoculated into one platinum loop. After that, preculture was performed by shaking culture at 25 ° C. for 48 hours.

次いで、濾過滅菌したブドウ果汁(白ワイン用ストレート果汁と濃縮果汁を混合し、37brixに調整し、さらに窒素源として1.3g/Lのリン酸水素二アンモニウム及び2.6g/Lのファームテック酵母エキス(Merck社製)を添加したもの)30mLを直径25mm、高さ200mmの試験管に入れ、そこにOD600=1.0(約1.0×10cells/mL)となるように前培養後の菌体を植菌し、20℃で14日間、ローテーターRT−550(タイテック社製)にて2.5rpmの回転数で回転培養することによって、発酵試験(本培養)を行った。本培養後の培養液のアルコール濃度をアルコメイト(理研計器社製)にて測定した。そのアルコール濃度の測定結果と、その交雑株の親株の組合せを図5に示す。図5に示すとおり、図1で最も高いアルコール生成能を示したDV10株を凌ぎ、最高アルコール生成濃度20%に到達するような高いアルコール生成能を有する酵母を作出・選抜することができた。以上の結果より、WE452株(WE452)ときょうかい酵母焼酎用3号株(S−3(胞子))などの高いアルコール生成能を有する酵母菌株を生じる交雑親の組合せ(図5記載の交雑組合せ)を得ることができた。また、本培養により得られたワインの風味を評価したところ、強くリッチな味わいの、風味に優れたワインであることが判明した。 Next, grape juice sterilized by filtration (mixed straight juice for white wine and concentrated juice, adjusted to 37 brix, 1.3 g / L diammonium hydrogen phosphate and 2.6 g / L Farmtech yeast as nitrogen sources) 30 mL of extract (added with Merck)) was put into a test tube having a diameter of 25 mm and a height of 200 mm, and precultured so that OD600 = 1.0 (about 1.0 × 10 7 cells / mL). The subsequent cells were inoculated, and subjected to a fermentation test (main culture) by rotating at 20 ° C. for 14 days with a rotator RT-550 (manufactured by Taitec Co., Ltd.) at a rotation speed of 2.5 rpm. The alcohol concentration of the culture solution after the main culture was measured with Alcomate (manufactured by Riken Keiki Co., Ltd.). The measurement result of the alcohol concentration and the combination of the parent strain of the hybrid strain are shown in FIG. As shown in FIG. 5, it was possible to produce and select a yeast having a high alcohol production capacity that exceeded the DV10 strain showing the highest alcohol production capacity in FIG. 1 and reached a maximum alcohol production concentration of 20%. From the above results, the combination of the cross parents that produces a yeast strain having a high alcohol-producing ability, such as WE452 strain (WE452) and No. 3 strain for yeast shochu (S-3 (spore)) (cross combination shown in FIG. 5) ) Moreover, when the flavor of the wine obtained by the main culture was evaluated, it was found that the wine had a strong and rich taste and an excellent flavor.

[実用化用の高アルコール生成能を有する酵母交雑株の作出]
実施例1の実験により、高アルコール生成能を有する酵母交雑株を作出するために特に優れた交雑親の組合せが判明した。しかし、実施例1の実験系で得られる交雑株は薬剤耐性マーカープラスミドが導入された組換え酵母であるため、市販用のアルコール飲料の製造に用いるには、遺伝子組換え食品の規制や、消費者の不安感の点で全く問題がないとはいえない。そこで、市販用のアルコール飲料の製造にも適した実用化用の高アルコール生成能酵母交雑株を作出するために、遺伝子組換えではない以下の作出方法を実施した。
[Creation of yeast hybrids with high alcohol production ability for practical use]
The experiment of Example 1 revealed a particularly excellent hybrid parent combination for producing a yeast hybrid having high alcohol-producing ability. However, since the hybrid strain obtained in the experimental system of Example 1 is a recombinant yeast into which a drug resistance marker plasmid has been introduced, it can be used for the production of commercially available alcoholic beverages. It cannot be said that there is no problem at all in terms of anxiety. Therefore, in order to produce a practically high-alcohol-producing yeast hybrid strain suitable for production of alcoholic beverages for commercial use, the following production method that was not genetic recombination was carried out.

(1)酵母の接合能判定に用いるテスター株の取得
まず始めに、酵母の接合能判定に用いるテスター株の取得を行った。具体的には、実験室酵母、サッカロミセス・セレビシエATCC200875 (MATa,leu2) 及びATCC200883 (MATα,trp1,lys2,ura3) を常法によって接合後、胞子形成を誘導し、さらにランダム胞子法によって胞子由来株を得た。得られた株を2mMの硫酸銅を含むSD培地に塗布して培養することによって、それらの株の中から硫酸銅耐性、a型もしくはα型の接合能、及び、栄養要求性(リシン要求性(lys2)またはウラシル要求性(ura3))を持った2株を選抜した。選抜したこれら2株をそれぞれMT1(MATα,ura3)、MT2(MATa,lys2)と命名し、以下の実験においてテスター株として利用した。なお、酵母の株名の後の括弧内の記載は遺伝子型を示す。
(1) Acquisition of tester strain used for determination of yeast conjugation ability First, a tester strain used for determination of yeast conjugation ability was acquired. Specifically, laboratory yeast, Saccharomyces cerevisiae ATCC200875 (MATa, leu2) and ATCC200883 (MATα, trp1, lys2, ura3) were joined by a conventional method, and then sporulation was induced, and a spore-derived strain was further obtained by a random spore method. Got. By applying the obtained strain to an SD medium containing 2 mM copper sulfate and culturing, the copper sulfate resistance, a-type or α-type conjugation ability, and auxotrophy (lysine requirement) from those strains. Two strains having (lys2) or uracil requirement (ura3)) were selected. These two selected strains were named MT1 (MATα, ura3) and MT2 (MATa, lys2), respectively, and used as tester strains in the following experiments. The description in parentheses after the yeast strain name indicates the genotype.

(2)呼吸欠損マーカー及び接合能を付与した親ワイン酵母株の取得
交雑用の親ワイン酵母株として、まず、呼吸欠損マーカーを付与した親ワイン酵母株の取得を行った。具体的には、ワイン酵母として知られているWE452株(独立行政法人酒類総合研究所)を、YPDG培地や、グリセロールを唯一の糖源とするYPG培地で培養し、それらの株の中から、自然変異による呼吸欠損株、すなわち、YPDG培地で小さなコロニーを形成しかつグリセロールを唯一の糖源とするYPG培地で生育できない株を得、KY1793株と命名した。
(2) Acquisition of a parent wine yeast strain imparted with a respiratory defect marker and conjugation ability As a parent wine yeast strain for hybridization, first, a parent wine yeast strain imparted with a respiratory defect marker was obtained. Specifically, WE452 strain (Independent Administrative Institution Liquor Research Institute) known as wine yeast is cultured in YPDG medium or YPG medium using glycerol as the sole sugar source, and from these strains, A respiratory-deficient strain due to spontaneous mutation, that is, a strain that formed a small colony on YPDG medium and could not grow on YPG medium with glycerol as the sole sugar source, was named KY1793 strain.

次いで、KY1793株から、自然突然変異によってさらに接合能を持った株の取得を行った。具体的には、前述のKY1793株をYPD培地で培養後、この培養液をYPD培地で希釈し、1ウェルあたり約10細胞となるように96ウェルプレートに分注し、30℃にて一晩、培養した。培養液の一部を保存し、残りの培養液にテスター株MT2の培養液を加えて混合し、30℃にて一晩、培養した後、1.5mM硫酸銅を含むSD培地(リシンを含んでいない)に塗布し、4日間、30℃にて培養を行なった。この培地で増殖し得ることを指標として利用することによって、MT2株と接合することのできる株、すなわちMATαの接合型を持った株を一株、保存した培養液から分離し、KY2075株と命名した。   Subsequently, a strain having further conjugation ability was obtained from the KY1793 strain by natural mutation. Specifically, after culturing the above-mentioned KY1793 strain in a YPD medium, this culture solution is diluted with a YPD medium, and dispensed into a 96-well plate so that there are about 10 cells per well, and overnight at 30 ° C. And cultured. A part of the culture solution is stored, and the culture solution of the tester strain MT2 is added to the remaining culture solution, mixed, cultured at 30 ° C. overnight, and then SD medium containing 1.5 mM copper sulfate (including lysine). And cultured at 30 ° C. for 4 days. By using the ability to grow on this medium as an indicator, a strain capable of mating with the MT2 strain, ie, a strain having a mating type of MATα, was separated from the stored culture solution and named KY2075 strain. did.

(3)栄養要求性(リシン要求性)マーカー及び接合能を付与した親焼酎酵母株の取得
また、KY2075株の交雑パートナーとして、栄養要求性(リシン要求性)マーカーを付与した親焼酎酵母株の取得を行った。具体的には、サッカロミセス・セレビシエきょうかい酵母焼酎用3号(財団法人日本醸造協会)を、30mg/Lのリシン及び2g/Lのα−アミノアジピン酸を含むSD培地で培養し、それらの株の中から、自然変異によるリシン要求性株、すなわち、前述のSD培地で生育可能なα−アミノアジピン酸への耐性株を得、KY2069株と命名した。次いで、KY2069株から、定法に従って胞子形成を誘導し、ランダム胞子法により胞子を得ることによって、接合能を付与した。
(3) Acquisition of an auxotrophic (lysine auxotrophic) marker and a parent shochu yeast strain imparted with conjugation ability As a cross partner of the KY2075 strain, Acquired. Specifically, Saccharomyces cerevisiae yeast yeast shochu No. 3 (Japan Brewing Association) was cultured in an SD medium containing 30 mg / L lysine and 2 g / L α-aminoadipic acid, and their strains. Among them, a lysine-requiring strain by natural mutation, that is, a strain resistant to α-aminoadipic acid capable of growing on the above-mentioned SD medium was obtained and named KY2069 strain. Subsequently, sporulation was induced from the KY2069 strain according to a conventional method, and conjugation ability was imparted by obtaining spores by the random spore method.

(4)前述の親ワイン酵母株と親焼酎酵母株の交雑
前述のKY2075株(呼吸欠損変異及び接合能を有する親ワイン酵母株)と、前述のKY2069株の胞子(リシン要求性及び接合能を有する親焼酎酵母株)の交雑を行った。具体的には、まず、YPD培地を分注した96ウェルプレートにおいて、KY2069株由来の胞子とKY2075株との混合培養を25℃で24時間行なった。混合培養後の培地を、SG培地(リシンを含まない)に塗布し、それらの株の中から、前述の両株の接合株、すなわち、リシン非要求性かつグリセロールを単独の糖源として生育可能な交雑株を選抜した。選抜した交雑株について、Tamaiら記載の方法でパルスフィールドゲル電気泳動を行なって(Y. Tamai, et. Al., 1998, Yeast 14: 923-933)、核型を調べ、選抜したこれらの株が両親の染色体を併せ持つことを確認した。このようにして、ワイン酵母株(KY2075株)と焼酎酵母株(KY2069株)との交雑株(以下、単に「交雑株」という。)を多数得た。
(4) Crossing of the parent wine yeast strain and the parent shochu yeast strain The KY2075 strain (a parent wine yeast strain having respiratory deficiency mutation and conjugation ability) and the spore (lysine requirement and conjugation ability) of the aforementioned KY2069 strain Having a parent shochu yeast strain). Specifically, first, mixed culture of spores derived from KY2069 strain and KY2075 strain was performed at 25 ° C. for 24 hours in a 96-well plate into which YPD medium was dispensed. The medium after mixed culture is applied to SG medium (without lysine), and from these strains, the above-mentioned conjugated strains, ie, lysine non-required and glycerol can grow as a single sugar source. Selected hybrid strains. The selected hybrid strains were subjected to pulse field gel electrophoresis by the method described by Tamai et al. (Y. Tamai, et. Al., 1998, Yeast 14: 923-933), the karyotype was examined, and these selected strains were selected. Confirmed to have both parents' chromosomes. Thus, a large number of hybrid strains (hereinafter simply referred to as “cross strains”) of wine yeast strains (KY2075 strain) and shochu yeast strains (KY2069 strain) were obtained.

(5)交雑株からの、高アルコール生産酵母株の選抜
前述の交雑株について後述するように小スケールの発酵試験を実施し、交雑株からアルコール生成能の高い株の選抜を行った。具体的には、以下のような方法で行った。
(5) Selection of high-alcohol-producing yeast strains from hybrid strains A small-scale fermentation test was performed as described later for the aforementioned hybrid strains, and strains with high alcohol-producing ability were selected from the hybrid strains. Specifically, the following method was used.

前々培養として、交雑株の菌体を、YPD寒天培地上で25℃、3日間培養した。次に、グルコース濃度を10%(w/v)としたYPD培地(以下、単に「YPD10培地」という。)を15mL入れた直径18mm、高さ165mmの試験管を用意し、前述の前々培養により得られた菌体を一白金耳分、前述の試験管内に植菌した後、25℃で72時間振とう培養することによって前培養を行った。   As pre-culture, the cells of the hybrid strain were cultured on a YPD agar medium at 25 ° C. for 3 days. Next, a test tube having a diameter of 18 mm and a height of 165 mm containing 15 mL of a YPD medium (hereinafter simply referred to as “YPD10 medium”) with a glucose concentration of 10% (w / v) is prepared. After inoculating the microbial cell obtained by the above in one test tube in the aforementioned test tube, preculture was performed by shaking culture at 25 ° C. for 72 hours.

次いで、直径25mm、高さ200mmの試験管に、グルコース濃度を40%(w/v)としたYPD培地(以下、単に「YPD40培地」という。)を30mL入れ、そこにOD600=1.0(約1.0×10cells/mL)となるように前培養後の菌体を植菌し、20℃で16日間、ローテーターRT−550(タイテック社製)にて2.5rpmの回転数で回転培養することによって、発酵試験(本培養)を行った。本培養後の培養液のアルコール濃度をアルコメイト(理研計器社製)にて測定した。その結果の一部を表7に示す。 Next, 30 mL of YPD medium (hereinafter, simply referred to as “YPD40 medium”) with a glucose concentration of 40% (w / v) was placed in a test tube having a diameter of 25 mm and a height of 200 mm, and OD600 = 1.0 ( The cells after pre-culture are inoculated so as to be about 1.0 × 10 7 cells / mL), and at a rotation speed of 2.5 rpm with a rotator RT-550 (manufactured by Taitec Corporation) at 20 ° C. for 16 days A fermentation test (main culture) was performed by rotating culture. The alcohol concentration of the culture solution after the main culture was measured with Alcomate (manufactured by Riken Keiki Co., Ltd.). Some of the results are shown in Table 7.

表7の結果から分かるように、親ワイン酵母であるWE452株由来株(KY2075株)と、親焼酎酵母であるサッカロミセス・セレビシエきょうかい酵母焼酎用3号由来株(KY2069株)との交雑によって、アルコール生成能が親ワイン酵母株(WE452株)や親焼酎酵母(きょうかい酵母焼酎用3号株)よりも優れた株(交雑株)が取得可能であることが示された。得られた交雑株の中でも、アルコール生成能に秀でた株として、KT378株(アルコール濃度18.6%)を選抜した。   As can be seen from the results in Table 7, by crossing the parent wine yeast WE452 strain (KY2075 strain) with the parent shochu yeast Saccharomyces cerevisiae yeast yeast shochu 3 strain (KY2069 strain), It was shown that a strain (crossbred) superior in alcohol-producing ability to the parent wine yeast strain (WE452 strain) and parent shochu yeast (Kyokai yeast shochu No. 3 strain) can be obtained. Among the obtained hybrid strains, KT378 strain (alcohol concentration 18.6%) was selected as a strain excellent in alcohol-producing ability.

[アルコール生成能の高い選抜酵母株(KT378株)の発酵試験]
実施例2で得られた、アルコール生成能の特に高い選抜酵母株(KT378株)の発酵能を調べるために、発酵試験を行った。具体的には、以下のような方法で行った。
[Fermentation test of a selected yeast strain (KT378 strain) with high alcohol-producing ability]
In order to examine the fermentative ability of the selected yeast strain (KT378 strain) having a particularly high alcohol-producing ability obtained in Example 2, a fermentation test was conducted. Specifically, the following method was used.

前々培養として、KT378株の菌体をYPD寒天培地上で25℃、3日間培養した。次に、直径18mm、高さ165mmの試験管に、グルコース濃度を10%(w/v)としたYPD培地15mLを入れ、そこに前述の前々培養により得られた菌体を一白金耳分植菌した後、25℃で48時間の振とう培養することによって前培養を行った。   As a pre-culture, KT378 strain cells were cultured on a YPD agar medium at 25 ° C. for 3 days. Next, 15 mL of YPD medium with a glucose concentration of 10% (w / v) is placed in a test tube having a diameter of 18 mm and a height of 165 mm, and the cells obtained by the above-mentioned pre-culture are added to one platinum loop. After inoculation, preculture was performed by shaking culture at 25 ° C. for 48 hours.

次いで、濾過滅菌したブドウ果汁(白ワイン用ストレート果汁と濃縮果汁を混合し、39brixに調整し、さらに窒素源として1.3g/Lのリン酸水素二アンモニウム及び2.6g/Lのファームテック酵母エキス(Merck社製)を添加したもの)30mLを直径25mm、高さ200mmの試験管に入れ、そこにOD600=1.0(約1.0×10cells/mL)となるように前培養後の菌体を植菌し、20℃で14日間、ローテーターRT−550(タイテック社製)にて2.5rpmの回転数で回転培養することによって、発酵試験(本培養)を行った。本培養後の培養液のアルコール生成濃度をアルコメイト(理研計器社製)にて測定した。その結果の一部を表8に示す。 Next, grape juice sterilized by filtration (mixed straight juice for white wine and concentrated juice, adjusted to 39 brix, further 1.3 g / L diammonium hydrogen phosphate and 2.6 g / L Farmtech yeast as nitrogen sources) 30 mL of extract (added with Merck)) was put into a test tube having a diameter of 25 mm and a height of 200 mm, and precultured so that OD600 = 1.0 (about 1.0 × 10 7 cells / mL). The subsequent cells were inoculated and subjected to a fermentation test (main culture) by culturing at 20 ° C. for 14 days with a rotator RT-550 (manufactured by Taitec Co., Ltd.) at a rotation speed of 2.5 rpm. The alcohol production concentration of the culture solution after the main culture was measured with Alcomate (manufactured by Riken Keiki Co., Ltd.). A part of the results is shown in Table 8.

表8の結果から、KT378株は、実際のブドウ果汁を用いた発酵においても、両親株を凌駕する(WE452株と比較しても約1.25倍)アルコール生成量を示すことが判明した。なお、このKT378株は、独立行政法人産業技術総合研究所(茨城県つくば市東1丁目1番3号)において受託番号FERM P−21448(受託日2007年11月20日)として国内寄託されている。また、本培養により得られたワインの風味を評価したところ、強くリッチな味わいの、風味に優れたワインであることが判明した。   From the results shown in Table 8, it was found that the KT378 strain exhibited an alcohol production amount that surpassed that of the parent strain (about 1.25 times that of the WE452 strain) in fermentation using actual grape juice. This KT378 stock has been deposited domestically as the deposit number FERM P-21448 (the deposit date is November 20, 2007) at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (1-3, East 1-3, Tsukuba City, Ibaraki Prefecture). . Moreover, when the flavor of the wine obtained by the main culture was evaluated, it was found that the wine had a strong and rich taste and an excellent flavor.

[アルコール生成能の高い選抜酵母株の発酵試験2]
実施例2で得られた、アルコール生成能の高い選抜酵母株(KT378株)の発酵能をより詳細に調べるために、KT378株、及び、その親株であるきょうかい酵母焼酎用3号株(S−3株)、WE452株について、以下の方法で発酵試験を行った。
[Fermentation test 2 of selected yeast strains with high alcohol-producing ability]
In order to examine in more detail the fermentation ability of the selected yeast strain (KT378 strain) having a high alcohol-producing ability obtained in Example 2, the strain KT378 and its parent strain, No. 3 strain for yeast yeast shochu (S −3 strain) and WE452 strain were subjected to a fermentation test by the following method.

前々培養として、上記のいずれかの酵母菌株の菌体をYPD寒天培地上で25℃、1日間培養した。次に、直径25mm、高さ200mmの試験管に、グルコース濃度を10%(w/v)としたYPD培地を15mL入れ、そこに前述の前々培養により得られた菌体を一白金耳分植菌した後、25℃で3日間の振とう培養することによって前培養を行った。   As a pre-culture, the cells of any of the above yeast strains were cultured on a YPD agar medium at 25 ° C. for 1 day. Next, 15 mL of YPD medium with a glucose concentration of 10% (w / v) is placed in a test tube having a diameter of 25 mm and a height of 200 mm, and the cells obtained by the above-mentioned pre-culture are added to one platinum loop. After inoculation, preculture was performed by shaking culture at 25 ° C. for 3 days.

次いで、濾過滅菌したブドウ果汁(白ワイン用ストレート果汁と濃縮果汁を混合し、40brixに調整し、さらに窒素源として1.3g/Lのリン酸水素二アンモニウム及び2.6g/Lのファームテック酵母エキス(Merck社製)を添加したもの)30mLを直径25mm、高さ200mmの試験管に入れ、そこにOD600=1.0(約1.0×10cells/mL)となるように前培養後の菌体を植菌し、20℃で18日間、ローテーターRT−550(タイテック社製)にて2.5rpmの回転数で回転培養することによって、発酵試験(本培養)を行った。本培養中の培養液を、培養開始から13日、15日、18日後にそれぞれサンプリングし、そのアルコール濃度をアルコメイト(理研計器社製)にて測定した。その結果の図6に示す。図6の結果から分かるように、培養開始から18日後に、交雑株(KT378株)は、親株のWE452と比較しても割合として15.0%高いアルコール濃度(実測値として17.3vol%)を示した。また、交雑株はアルコール生成の速度についても、親株のいずれよりも高いことが判明した。また、本培養により得られたワインの風味を評価したところ、強くリッチな味わいの、風味に優れたワインであることが判明した。 Next, grape juice sterilized by filtration (mixed straight juice for white wine and concentrated juice, adjusted to 40 brix, 1.3 g / L diammonium hydrogen phosphate and 2.6 g / L Farmtech yeast as nitrogen sources) 30 mL of extract (added with Merck)) was put into a test tube having a diameter of 25 mm and a height of 200 mm, and precultured so that OD600 = 1.0 (about 1.0 × 10 7 cells / mL). The subsequent cells were inoculated, and subjected to a fermentation test (main culture) by rotating at 20 ° C. for 18 days with a rotator RT-550 (manufactured by Taitec Corporation) at a rotation speed of 2.5 rpm. The culture solution during the main culture was sampled on the 13th, 15th, and 18th days from the start of the culture, and the alcohol concentration thereof was measured with Alcomate (manufactured by Riken Keiki Co., Ltd.). The result is shown in FIG. As can be seen from the results in FIG. 6, 18 days after the start of the culture, the hybrid strain (KT378 strain) is 15.0% higher in alcohol concentration (17.3 vol% as an actual measurement value) than the parent strain WE452. showed that. It was also found that the hybrid strain was higher in alcohol production rate than any of the parent strains. Moreover, when the flavor of the wine obtained by the main culture was evaluated, it was found that the wine had a strong and rich taste and an excellent flavor.

実用酵母菌株のアルコール生成能を示す図である。It is a figure which shows the alcohol production ability of a practical yeast strain. 実用酵母菌株のYPD40培地での発酵能を示す図である。It is a figure which shows the fermentative ability in the YPD40 culture medium of a practical yeast strain. 薬剤耐性マーカーを利用した実用株間交雑株の取得スキームを示す図である。It is a figure which shows the acquisition scheme of the cross strain between practical strains using a drug resistance marker. 薬剤耐性を付与するプラスミドの模式図を示す図である。It is a figure which shows the schematic diagram of the plasmid which provides chemical | medical agent resistance. 選抜された交雑株のアルコール生成能を示す図である。It is a figure which shows the alcohol production ability of the selected hybrid strain. 選抜された交雑株のアルコール生成能を経時的に示す図である。It is a figure which shows the alcohol production ability of the selected cross-bred over time.

Claims (3)

接合能を付与した親ワイン酵母と、接合能を付与した親焼酎酵母とを交雑し、交雑株の中から高アルコール生成能を有する交雑株を選抜する、ワイン酵母菌株の作出方法であって、
前記接合能を付与した親ワイン酵母が、接合能を付与したWE452株であり、前記接合能を付与した親焼酎酵母が、接合能を付与したきょうかい酵母焼酎用3号株(S−3株)であり、
前記親ワイン酵母と前記親焼酎酵母との組合せが、(a)栄養要求性マーカーを付与した親ワイン酵母と、呼吸欠損マーカーを付与した親焼酎酵母との組合せ、(b)呼吸欠損マーカーを付与した親ワイン酵母と、栄養要求性マーカーを付与した親焼酎酵母との組合せ、又は、(c)親ワイン酵母と親焼酎酵母のそれぞれに異なる栄養要求性マーカーを付与した組合せであり、
前記(a)又は(b)の組合せで交雑した場合は、該交雑の後、非栄養要求性及び非呼吸欠損の表現型をマーカーとして交雑株を分離し、
前記(c)の組合せで交雑した場合は、該交雑の後、非栄養要求性の表現型をマーカーとして交雑株を分離し、
前記高アルコール生成能を有する交雑株が、最高アルコール生成濃度又は最終アルコール生成濃度として16.2%以上を達成し得るアルコール生成能を有する交雑株であることを特徴とする、方法。
A method for producing a wine yeast strain, wherein a parent wine yeast imparted with conjugation ability and a parent shochu yeast imparted with conjugation ability are crossed, and a hybrid strain having a high alcohol-producing ability is selected from the hybrid strains,
The parent wine yeast imparted with the conjugation ability is a WE452 strain imparted with conjugation ability, and the parent shochu yeast imparted with the conjugation ability is No. 3 strain for yeast yeast shochu imparted with conjugation ability (S-3 strain) ) And
A combination of the parent wine yeast and the parent shochu yeast is (a) a combination of a parent wine yeast imparted with an auxotrophic marker and a parent shochu yeast imparted with a respiratory defect marker, and (b) a respiratory defect marker is imparted. A combination of the parent wine yeast and the parent shochu yeast given the auxotrophic marker, or (c) a combination of the parent wine yeast and the parent shochu yeast given different auxotrophic markers,
When crossed in the combination of (a) or (b), after the crossing, isolate the hybrid strain using the phenotype of non-auxotrophic and non-respiratory deficiency as a marker,
When crossed in the combination of (c), after the cross, isolate the cross strain using a non-auxotrophic phenotype as a marker,
The hybrid strain having a high alcohol-producing ability is a hybrid strain having an alcohol-producing ability capable of achieving a maximum alcohol production concentration or a final alcohol production concentration of 16.2% or more.
請求項1に記載の作出方法によって得られるワイン酵母菌株。 A wine yeast strain obtained by the production method according to claim 1 . 請求項に記載のワイン酵母菌株を糖質含有物に接種して醸造することを特徴とするアルコール飲料の製造方法。 A method for producing an alcoholic beverage comprising inoculating a saccharide-containing material with the wine yeast strain according to claim 2 and brewing it.
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