JP2935791B2 - ラクトバチルス属細菌の検出プライマー - Google Patents
ラクトバチルス属細菌の検出プライマーInfo
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、ラクトバチルス(Lacto
baci11us)属細菌の検出方法に関し、更に詳細にはＰＣ
Ｒ法を用いた迅速かつ高感度な火落菌等のラクトバチル
ス属細菌の検出プライマーに関する。
baci11us)属細菌の検出方法に関し、更に詳細にはＰＣ
Ｒ法を用いた迅速かつ高感度な火落菌等のラクトバチル
ス属細菌の検出プライマーに関する。
【０００２】
【従来の技術】清酒の火落ちを起こす微生物（火落菌）
に関する研究は、北原や野白、百瀬によって分類学的研
究が行われている〔日本醸造協会雑誌、第６５巻、第７
１５〜８０３頁、（１９７０）〕。火落菌はラクトバチ
ルス属に属し、メバロン酸の要求性から真性火落菌と火
落性乳酸菌に分類される。真性火落菌には、ラクトバチ
ルス ヘテロヒオチイ（Lactobacillus heterohiochii)
とラクトバチルス ホモヒオチイ（Lactobacillushomoh
iochii)があり、火落性乳酸菌には、ラクトバチルス
ジャポニカス（Lactobacillus japonicus)、ラクトバチ
ルス プランタルム（Lactobacillus plantarum)、ラク
トバチルス カゼイ（Lactobacillus casei)等が挙げら
れる。火落菌の検出は、火落菌検出培地ＳＩ培地（日本
醸造協会）が市販されており、本培地を用いた培養法に
より検出が行われている。しかし、この検出法には７日
間以上の日数を要する。したがって、火落菌の迅速高感
度検出法が望まれている。一方微生物やウイルスの迅速
高感度検出法としてＰＣＲ法〔メソッズ インエザイモ
ロジー（Methods in Enzymology)、第１５５巻、第３３
５〜３５０頁（１９８７）〕がある。ＰＣＲ法は、検出
する生物の遺伝子の特異的配列を指数的に増幅させる方
法であり、ＰＣＲ法を用いるには検出する生物の遺伝子
情報が必要である。
に関する研究は、北原や野白、百瀬によって分類学的研
究が行われている〔日本醸造協会雑誌、第６５巻、第７
１５〜８０３頁、（１９７０）〕。火落菌はラクトバチ
ルス属に属し、メバロン酸の要求性から真性火落菌と火
落性乳酸菌に分類される。真性火落菌には、ラクトバチ
ルス ヘテロヒオチイ（Lactobacillus heterohiochii)
とラクトバチルス ホモヒオチイ（Lactobacillushomoh
iochii)があり、火落性乳酸菌には、ラクトバチルス
ジャポニカス（Lactobacillus japonicus)、ラクトバチ
ルス プランタルム（Lactobacillus plantarum)、ラク
トバチルス カゼイ（Lactobacillus casei)等が挙げら
れる。火落菌の検出は、火落菌検出培地ＳＩ培地（日本
醸造協会）が市販されており、本培地を用いた培養法に
より検出が行われている。しかし、この検出法には７日
間以上の日数を要する。したがって、火落菌の迅速高感
度検出法が望まれている。一方微生物やウイルスの迅速
高感度検出法としてＰＣＲ法〔メソッズ インエザイモ
ロジー（Methods in Enzymology)、第１５５巻、第３３
５〜３５０頁（１９８７）〕がある。ＰＣＲ法は、検出
する生物の遺伝子の特異的配列を指数的に増幅させる方
法であり、ＰＣＲ法を用いるには検出する生物の遺伝子
情報が必要である。
【０００３】ラクトバチルス属細菌のｒＲＮＡ遺伝子に
ついては、ラクトバチルス ブレビス（Lactobacillus
brevis) 、ラクトバチルス デルブルエキイ（Lactobac
illus delbrueckii)、ラクトバチルス プランタルム、
及びラクトバチルス ビリデセンス（Lactobacillus vi
ridescens)の５ＳｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列が明らかに
されており〔ジャーナル オブ モレキュラー エボル
ーション(Journal ofMolecular Evolution ）、第８
巻、第１４３〜１５３頁（１９７６）、ヌクレイック
アシッズ リサーチ（Nucleic Acids Research）、第１
７巻、第４８７３頁（１９８９）、同第１６巻、第１０
９３８頁（１９８８）、同第８巻、第９７９〜９８７頁
（１９８０）〕、ラクトバチルス カゼイ、ラクトバチ
ルス カンドレリ（Lactobacillus kandleri）、ラクト
バチルス マイナー（Lactobacillus minor)、ラクトバ
チルス コンフサス（Lactobacillus confusus）、ラク
トバチルス ビリデセンス、ラクトバチルス カテナホ
ルメ（Lactobacillus catenaforme)、及びラクトバチル
ス ビツリナス（Lactobacillus vitulinus)の１６Ｓｒ
ＲＮＡ遺伝子の塩基配列が明らかにされている〔ジャー
ナル オブ バクテリオロジー（Journal of Bacteriol
ogy)、第１７１巻、第６４５５〜６４６７頁（１９８
９）、ヌクレイック アシッズ リサーチ 第１８巻、
第３４０１〜３４０２頁（１９９０）、システマティッ
ク アンド アプライド ミクロバイオロジー（System
atic and Applied Microbiology)、第１２巻、第１４５
〜１４９頁（１９８９）〕。そして土屋らはラクトバチ
ルス ブレビスの５ＳｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列をもと
にプライマーを作製し、ＰＣＲ法を用いたビール中のラ
クトバチルス ブレビスの検出方法を報告している〔日
本醸造協会雑誌、第８６巻、第７２０頁（１９９
１）〕。しかし、５ＳｒＲＮＡの塩基配列は微生物の属
を越えて極めて類似しているため、ラクトバチルス ブ
レビス以外の微生物をも誤って検出してしまう可能性が
ある。また、１６ＳｒＲＮＡについても同様に、微生物
の属を越えて極めて類似しているため、ラクトバチルス
属細菌を特異的に検出する目的には不適当である。
ついては、ラクトバチルス ブレビス（Lactobacillus
brevis) 、ラクトバチルス デルブルエキイ（Lactobac
illus delbrueckii)、ラクトバチルス プランタルム、
及びラクトバチルス ビリデセンス（Lactobacillus vi
ridescens)の５ＳｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列が明らかに
されており〔ジャーナル オブ モレキュラー エボル
ーション(Journal ofMolecular Evolution ）、第８
巻、第１４３〜１５３頁（１９７６）、ヌクレイック
アシッズ リサーチ（Nucleic Acids Research）、第１
７巻、第４８７３頁（１９８９）、同第１６巻、第１０
９３８頁（１９８８）、同第８巻、第９７９〜９８７頁
（１９８０）〕、ラクトバチルス カゼイ、ラクトバチ
ルス カンドレリ（Lactobacillus kandleri）、ラクト
バチルス マイナー（Lactobacillus minor)、ラクトバ
チルス コンフサス（Lactobacillus confusus）、ラク
トバチルス ビリデセンス、ラクトバチルス カテナホ
ルメ（Lactobacillus catenaforme)、及びラクトバチル
ス ビツリナス（Lactobacillus vitulinus)の１６Ｓｒ
ＲＮＡ遺伝子の塩基配列が明らかにされている〔ジャー
ナル オブ バクテリオロジー（Journal of Bacteriol
ogy)、第１７１巻、第６４５５〜６４６７頁（１９８
９）、ヌクレイック アシッズ リサーチ 第１８巻、
第３４０１〜３４０２頁（１９９０）、システマティッ
ク アンド アプライド ミクロバイオロジー（System
atic and Applied Microbiology)、第１２巻、第１４５
〜１４９頁（１９８９）〕。そして土屋らはラクトバチ
ルス ブレビスの５ＳｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列をもと
にプライマーを作製し、ＰＣＲ法を用いたビール中のラ
クトバチルス ブレビスの検出方法を報告している〔日
本醸造協会雑誌、第８６巻、第７２０頁（１９９
１）〕。しかし、５ＳｒＲＮＡの塩基配列は微生物の属
を越えて極めて類似しているため、ラクトバチルス ブ
レビス以外の微生物をも誤って検出してしまう可能性が
ある。また、１６ＳｒＲＮＡについても同様に、微生物
の属を越えて極めて類似しているため、ラクトバチルス
属細菌を特異的に検出する目的には不適当である。
【０００４】一方、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子と２３ＳｒＲ
ＮＡ遺伝子の間に構成されているスペーサー領域の遺伝
子は、微生物種に特異的な塩基配列を有することが知ら
れている。本発明者らは特願平４−１１３１５４号明細
書中で各種のラクトバチルス属細菌のスペーサー領域の
塩基配列を決定し、該スペーサー領域をプライマーを用
いて増幅することによってラクトバチルス属細菌を検出
する方法を開示している。
ＮＡ遺伝子の間に構成されているスペーサー領域の遺伝
子は、微生物種に特異的な塩基配列を有することが知ら
れている。本発明者らは特願平４−１１３１５４号明細
書中で各種のラクトバチルス属細菌のスペーサー領域の
塩基配列を決定し、該スペーサー領域をプライマーを用
いて増幅することによってラクトバチルス属細菌を検出
する方法を開示している。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、ラク
トバチルス属細菌に特異的な遺伝子を用いてラクトバチ
ルス属細菌、特に火落菌をＰＣＲ法で検出する方法にお
いて、更に迅速かつ高感度な検出プライマーを提供する
ことにある。
トバチルス属細菌に特異的な遺伝子を用いてラクトバチ
ルス属細菌、特に火落菌をＰＣＲ法で検出する方法にお
いて、更に迅速かつ高感度な検出プライマーを提供する
ことにある。
【０００６】
【課題を解決するための手段】本発明を概説すれば、本
発明はラクトバチルス属細菌を検出するためのプライマ
ーに関する発明であって、配列表の配列番号２２、２
３、又は２４で表される塩基配列からなることを特徴と
する。
発明はラクトバチルス属細菌を検出するためのプライマ
ーに関する発明であって、配列表の配列番号２２、２
３、又は２４で表される塩基配列からなることを特徴と
する。
【０００７】ラクトバチルス（以下、Ｌ．と略称する）
属細菌のｒＲＮＡをコードするＤＮＡは、１６ＳｒＲＮ
Ａ−スペーサー領域−２３ＳｒＲＮＡ−スペーサー領域
−５ＳｒＲＮＡの各ＤＮＡ配列で構成されている。本発
明者らは特願平４−１１３１５４号明細書に記載のごと
く、下記表１に示した１３種類のＬ．属細菌のｒＲＮＡ
をコードしているＤＮＡ配列の一部、すなわち１６Ｓｒ
ＲＮＡ−スペーサー領域−２３ＳｒＲＮＡをコードして
いるＤＮＡ配列の一部を明らかにし、次にＬ．属細菌一
般に共通なＤＮＡ配列及びそれぞれの種に特異的なＤＮ
Ａ配列を見出している。
属細菌のｒＲＮＡをコードするＤＮＡは、１６ＳｒＲＮ
Ａ−スペーサー領域−２３ＳｒＲＮＡ−スペーサー領域
−５ＳｒＲＮＡの各ＤＮＡ配列で構成されている。本発
明者らは特願平４−１１３１５４号明細書に記載のごと
く、下記表１に示した１３種類のＬ．属細菌のｒＲＮＡ
をコードしているＤＮＡ配列の一部、すなわち１６Ｓｒ
ＲＮＡ−スペーサー領域−２３ＳｒＲＮＡをコードして
いるＤＮＡ配列の一部を明らかにし、次にＬ．属細菌一
般に共通なＤＮＡ配列及びそれぞれの種に特異的なＤＮ
Ａ配列を見出している。
【０００８】
【表１】 表 １ 菌 株 培地 培養温度 （真性火落菌） Ｌ．ヘテロヒオチイ IFO13118 SI 30℃ IFO13119 SI 30℃ JCM1198 SI 30℃ Ｌ．ホモヒオチイ IFO13120 SI 30℃ IFO13121 SI 30℃ JCM1199 SI 30℃ （火落性乳酸菌） Ｌ．ジャポニカス IAM10068 803 37℃ Ｌ．プランタルム IAM1216 803 37℃ Ｌ．カゼイ サブスピーシーズ ラムノサス (rhamnosus) IFO3532 804 37℃ Ｌ．カゼイ サブスピーシーズ カゼイ IFO3533 804 37℃ Ｌ．スピーシーズ IFO3954 804 37℃ （一般乳酸菌） Ｌ．ブレビス IFO13110 804 30℃ （火落菌単離株） F-1 SI 30℃
【０００９】培地組成： ＳＩ：ＳＩ培地（日本醸造協会）５ｇ、エタノール１０
ml、蒸留水９０ml ８０３：０．５％ポリペプトン、０．５％イーストエキ
ストラクト、０．５％グルコース、０．２％ラクトー
ス、０．０５％ツィーン(Tween) ８０、０．１％ＭｇＳ
Ｏ4 ／７Ｈ2 Ｏ、ｐＨ６．８〜７．０ ８０４：０．５％ペプトン、０．５％イーストエキスト
ラクト、０．５％グルコース、０．１％ＭｇＳＯ4 ／７
Ｈ2 Ｏ、ｐＨ６．６〜７．０
ml、蒸留水９０ml ８０３：０．５％ポリペプトン、０．５％イーストエキ
ストラクト、０．５％グルコース、０．２％ラクトー
ス、０．０５％ツィーン(Tween) ８０、０．１％ＭｇＳ
Ｏ4 ／７Ｈ2 Ｏ、ｐＨ６．８〜７．０ ８０４：０．５％ペプトン、０．５％イーストエキスト
ラクト、０．５％グルコース、０．１％ＭｇＳＯ4 ／７
Ｈ2 Ｏ、ｐＨ６．６〜７．０
【００１０】更に、遺伝子検出方法として現在最も高感
度で簡便なＰＣＲ法を行うために、Ｌ．属細菌に共通な
ＤＮＡ配列及び種に特異的なＤＮＡ配列の特定領域ＤＮ
ＡをＰＣＲ法で増幅するためのオリゴヌクレオチドプラ
イマーを合成している。本発明者らは更に研究を進め、
Ｌ．属細菌を含有する液体試料中のＬ．属細菌ＤＮＡを
鋳型としてＰＣＲを行い、ＰＣＲの前処理としてＬ．属
細菌をフィルターに捕獲し、次に該細菌を洗浄すること
により液体試料中のＰＣＲ阻害物質が除去され、Ｌ．属
細菌ＤＮＡの特定領域が効率よく増幅、検出されること
を見出し本発明を完成した。
度で簡便なＰＣＲ法を行うために、Ｌ．属細菌に共通な
ＤＮＡ配列及び種に特異的なＤＮＡ配列の特定領域ＤＮ
ＡをＰＣＲ法で増幅するためのオリゴヌクレオチドプラ
イマーを合成している。本発明者らは更に研究を進め、
Ｌ．属細菌を含有する液体試料中のＬ．属細菌ＤＮＡを
鋳型としてＰＣＲを行い、ＰＣＲの前処理としてＬ．属
細菌をフィルターに捕獲し、次に該細菌を洗浄すること
により液体試料中のＰＣＲ阻害物質が除去され、Ｌ．属
細菌ＤＮＡの特定領域が効率よく増幅、検出されること
を見出し本発明を完成した。
【００１１】以下、具体的に本発明を説明する。１６Ｓ
ｒＲＮＡ及び２３ＳｒＲＮＡをコードする遺伝子は微生
物間でよく保存されていることが知られている（表２〜
表５）。
ｒＲＮＡ及び２３ＳｒＲＮＡをコードする遺伝子は微生
物間でよく保存されていることが知られている（表２〜
表５）。
【００１２】
【表２】 表 ２ R16-1の配列：5'-C T T G T A C A C A C C G C C C G T C A-3' Ｌ．カゼイ - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - バチルス ズブチリス - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - (Bacillus subtilis) エシェリヒア コリ - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - (Escherichia coli) マイコバクテリウム ボビス - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - (Mycobacterium bovis) ハロバクテリウム ハロビウ - - - - C - - - - - - - - - - - - - - - ム(Halobacterium halobium) マイコプラズマ カプリコラ - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ム(Mycoplasma capricolum) シュードモナス アエルギノ - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - サ(Pseudomonus aeruginosa) サーマス サーモフィラス - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - (Thermus thermophilus) ハロコッカス モールアエ - - - - C - - - - - - - - - - - - - - - (Halococcus morrhuae) ストレプトミセス リビダン - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ス(Streptomyces lividans) ヘリオバクテリウム クロラ - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ム(Heliobacterium chlorum) フラボバクテリウム ヘパリ - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ナム(Flavobacterium heparinum)
【００１３】
【表３】 表 ３ R16-2の配列：5'-G T G C G G C T G G A T C A C C T C C T-3' Ｌ．カゼイ N N N N N N N N N - - - - - - - - - - - バチルス ズブチリス - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - エシェリヒア コリ C - - - - - T - - - - - - - - - - - - - マイコバクテリウム ボビス - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ハロバクテリウム ハロビ C - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ウム マイコプラズマ カプリコ - - - - - - A - - - - - - - - - - - - - ラム シュードモナス アエルギ C - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ノサ サーマス サーモフィラス - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ハロコッカス モールアエ C - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ストレプトミセス リビダ - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ンス ヘリオバクテリウム クロ - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - ラム フラボバクテリウム ヘパリ - N N N N N N N N - - - - - - - - - - - ナム
【００１４】
【表４】
【００１５】
【表５】 表 ５ R23-2Rの配列：3'-C T T T G T A G A T T C A T G G G C C T-5' R23-2Rの相補配列：5'-G A A A C A T C T A A G T A C C C G G A-3' バチルス ズブチリス - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - エシェリヒア コリ - - - - - - - - - - - - - - - - - C - - ハロバクテリウム ハロビ - - - G - - - - - C - - - - - G G C C - ウム シュードモナス アエルギ - - - - - - - - - - - - - - - - - T - - ノサ サーマス サーモフィラス - - - - - - - - - C - - - - - - - A - - ハロコッカス モールアエ - - - - - - - - - C - - - - - - G - C -
【００１６】上記表２〜表５は原核生物ｒＲＮＡ遺伝子
の保存されている塩基配列、及びそれらから選定したプ
ライマーの塩基配列を示すものであり、表２及び表３は
１６ＳｒＲＮＡ遺伝子の、表４及び表５は２３ＳｒＲＮ
Ａ遺伝子の、それぞれ保存されている塩基配列、及びそ
れらから選定したプライマーの塩基配列を表す。表２〜
表５ではいずれも、保存されている塩基を−で、異なる
塩基をその塩基の記号で、欠損している塩基を＊で、同
定されていない塩基をＮで示した。
の保存されている塩基配列、及びそれらから選定したプ
ライマーの塩基配列を示すものであり、表２及び表３は
１６ＳｒＲＮＡ遺伝子の、表４及び表５は２３ＳｒＲＮ
Ａ遺伝子の、それぞれ保存されている塩基配列、及びそ
れらから選定したプライマーの塩基配列を表す。表２〜
表５ではいずれも、保存されている塩基を−で、異なる
塩基をその塩基の記号で、欠損している塩基を＊で、同
定されていない塩基をＮで示した。
【００１７】例えば、配列表の配列番号１で表されるＲ
１６−１プライマーと配列番号４で表されるＲ２３−２
Ｒプライマーの組合せ、配列番号２で表されるＲ１６−
２プライマーと配列番号３で表されるＲ２３−１Ｒの組
合せでＬ．属細菌のスペーサー領域をＰＣＲ法で増幅す
ることができる。
１６−１プライマーと配列番号４で表されるＲ２３−２
Ｒプライマーの組合せ、配列番号２で表されるＲ１６−
２プライマーと配列番号３で表されるＲ２３−１Ｒの組
合せでＬ．属細菌のスペーサー領域をＰＣＲ法で増幅す
ることができる。
【００１８】これらのプライマーはＤＮＡ合成機により
合成することができ、ＨＰＬＣ等で適宜精製して使用す
ることができる。
合成することができ、ＨＰＬＣ等で適宜精製して使用す
ることができる。
【００１９】ＰＣＲ法については、タックＤＮＡポリメ
ラーゼを含む遺伝子増幅キット及び自動遺伝子増幅装置
が宝酒造社から市販されている。ＰＣＲ法により増幅さ
れたスペーサー領域を含む断片を含む塩基配列を決定す
るためには、例えば増幅断片をＭ１３ファージベクター
にクローニングし、ファージＤＮＡを調製した後、サン
ガー法により決定することができる。
ラーゼを含む遺伝子増幅キット及び自動遺伝子増幅装置
が宝酒造社から市販されている。ＰＣＲ法により増幅さ
れたスペーサー領域を含む断片を含む塩基配列を決定す
るためには、例えば増幅断片をＭ１３ファージベクター
にクローニングし、ファージＤＮＡを調製した後、サン
ガー法により決定することができる。
【００２０】このようにして決定したスペーサー領域の
塩基配列より、Ｌ．属細菌のそれぞれの特異的な領域、
あるいは共通する領域を特定することができる。本発明
者らは、前記明細書において１３種類のＬ．属細菌のス
ペーサー領域の塩基配列を明らかにし、配列表の配列番
号５〜１３に示されるＬ．属細菌に特異的な塩基配列を
決定している。配列表の配列番号５はＬ．ヘテロヒオチ
イ ＪＣＭ１１９８とＬ．ホモヒオチイ ＪＣＭ１１９
９、配列番号６はＬ．ヘテロヒオチイ ＩＦＯ１３１１
８、Ｌ．ヘテロヒオチイ ＩＦＯ１３１１９、Ｌ．ホモ
ヒオチイ ＩＦＯ１３１２０、及びＬ．ホモヒオチイ
ＩＦＯ１３１２１、配列番号７はＬ．ジャポニカス Ｉ
ＡＭ１００６８、配列番号８はＬ．プランタルム ＩＡ
Ｍ１２１６、配列番号９はＬ．カゼイサブスピーシーズ
ラムノサス ＩＦＯ３５３２、配列番号１０はＬ．カ
ゼイ サブスピーシーズ カゼイ ＩＦＯ３５３３、配
列番号１１はＬ．スピーシーズＩＦＯ３９５４、配列番
号１２はＬ．ブレビス ＩＦＯ１３１１０、配列番号１
３は清酒より新たに分離した火落菌分離株Ｆ−１のｒＲ
ＮＡをコードしている遺伝子の塩基配列である。
塩基配列より、Ｌ．属細菌のそれぞれの特異的な領域、
あるいは共通する領域を特定することができる。本発明
者らは、前記明細書において１３種類のＬ．属細菌のス
ペーサー領域の塩基配列を明らかにし、配列表の配列番
号５〜１３に示されるＬ．属細菌に特異的な塩基配列を
決定している。配列表の配列番号５はＬ．ヘテロヒオチ
イ ＪＣＭ１１９８とＬ．ホモヒオチイ ＪＣＭ１１９
９、配列番号６はＬ．ヘテロヒオチイ ＩＦＯ１３１１
８、Ｌ．ヘテロヒオチイ ＩＦＯ１３１１９、Ｌ．ホモ
ヒオチイ ＩＦＯ１３１２０、及びＬ．ホモヒオチイ
ＩＦＯ１３１２１、配列番号７はＬ．ジャポニカス Ｉ
ＡＭ１００６８、配列番号８はＬ．プランタルム ＩＡ
Ｍ１２１６、配列番号９はＬ．カゼイサブスピーシーズ
ラムノサス ＩＦＯ３５３２、配列番号１０はＬ．カ
ゼイ サブスピーシーズ カゼイ ＩＦＯ３５３３、配
列番号１１はＬ．スピーシーズＩＦＯ３９５４、配列番
号１２はＬ．ブレビス ＩＦＯ１３１１０、配列番号１
３は清酒より新たに分離した火落菌分離株Ｆ−１のｒＲ
ＮＡをコードしている遺伝子の塩基配列である。
【００２１】得られた塩基配列を基にそれぞれのＬ．属
細菌の特異的な配列及び共通する配列を特定することが
できる。その結果、配列表の配列番号１４〜２１に示さ
れる特異的配列及び共通配列が得られる。これらの配列
をＰＣＲ法のプライマーとして用いれば、それぞれの
Ｌ．属細菌ＤＮＡを特異的に増幅することができる。あ
るいは一対の共通プライマーですべてのＬ．属細菌ＤＮ
Ａを増幅することができる。表６にそれぞれの菌株とス
ペーサー領域を含む特異的配列、特異的プライマーの関
係を示した。
細菌の特異的な配列及び共通する配列を特定することが
できる。その結果、配列表の配列番号１４〜２１に示さ
れる特異的配列及び共通配列が得られる。これらの配列
をＰＣＲ法のプライマーとして用いれば、それぞれの
Ｌ．属細菌ＤＮＡを特異的に増幅することができる。あ
るいは一対の共通プライマーですべてのＬ．属細菌ＤＮ
Ａを増幅することができる。表６にそれぞれの菌株とス
ペーサー領域を含む特異的配列、特異的プライマーの関
係を示した。
【００２２】
【表６】
【００２３】具体的に説明すれば、配列表の配列番号２
０で表されるＬＡＵ１と配列番号１４で表されるＬＡＫ
４Ｒのプライマー対によりＬ．ヘテロヒオチイ ＪＣＭ
１１９８とＬ．ホモヒオチイ ＪＣＭ１１９９の遺伝子
が、ＬＡＵ１と配列番号１５で表されるＬＡＭ３Ｒのプ
ライマー対によりＬ．ヘテロヒオチイ ＩＦＯ１３１１
８、１３１１９とＬ．ホモヒオチイ ＩＦＯ１３１２
０、１３１２１の遺伝子が、ＬＡＵ１と配列番号１６で
表されるＬＡＪ３Ｒのプライマー対によりＬ．ジャポニ
カス ＩＡＭ１００６８とＬ．プランタルム ＩＡＭ１
２１６の遺伝子が、ＬＡＵ１と配列番号１７で表される
ＬＡＣ４Ｒのプライマー対によりＬ．カゼイ サブスピ
ーシーズ ラムノサス ＩＦＯ３５３２とＬ．カゼイ
サブスピーシーズ カゼイ ＩＦＯ３５３３の遺伝子
が、ＬＡＵ１と配列番号１８で表されるＬＡＢ４Ｒのプ
ライマー対によりＬ．スピーシーズ ＩＦＯ３９５４と
Ｌ．ブレビス ＩＦＯ１３１１０の遺伝子が、配列番号
１９で表されるＬＡＦ１と配列番号２１で表されるＬＡ
Ｕ３Ｒのプライマー対により単離株Ｆ−１の遺伝子が特
異的に増幅され、各菌を特異的に検出することができ
る。また、ＬＡＵ１とＬＡＵ３Ｒのプライマー対により
これらすべてのＬ．属細菌の遺伝子が増幅され、これら
の菌を検出することができる。なお、Ｌ．属細菌におい
てはスペーサー領域にｔＲＮＡをコードする領域が挿入
されている場合があるが、この場合でもこれらのプライ
マーを用いて増幅、検出できる。
０で表されるＬＡＵ１と配列番号１４で表されるＬＡＫ
４Ｒのプライマー対によりＬ．ヘテロヒオチイ ＪＣＭ
１１９８とＬ．ホモヒオチイ ＪＣＭ１１９９の遺伝子
が、ＬＡＵ１と配列番号１５で表されるＬＡＭ３Ｒのプ
ライマー対によりＬ．ヘテロヒオチイ ＩＦＯ１３１１
８、１３１１９とＬ．ホモヒオチイ ＩＦＯ１３１２
０、１３１２１の遺伝子が、ＬＡＵ１と配列番号１６で
表されるＬＡＪ３Ｒのプライマー対によりＬ．ジャポニ
カス ＩＡＭ１００６８とＬ．プランタルム ＩＡＭ１
２１６の遺伝子が、ＬＡＵ１と配列番号１７で表される
ＬＡＣ４Ｒのプライマー対によりＬ．カゼイ サブスピ
ーシーズ ラムノサス ＩＦＯ３５３２とＬ．カゼイ
サブスピーシーズ カゼイ ＩＦＯ３５３３の遺伝子
が、ＬＡＵ１と配列番号１８で表されるＬＡＢ４Ｒのプ
ライマー対によりＬ．スピーシーズ ＩＦＯ３９５４と
Ｌ．ブレビス ＩＦＯ１３１１０の遺伝子が、配列番号
１９で表されるＬＡＦ１と配列番号２１で表されるＬＡ
Ｕ３Ｒのプライマー対により単離株Ｆ−１の遺伝子が特
異的に増幅され、各菌を特異的に検出することができ
る。また、ＬＡＵ１とＬＡＵ３Ｒのプライマー対により
これらすべてのＬ．属細菌の遺伝子が増幅され、これら
の菌を検出することができる。なお、Ｌ．属細菌におい
てはスペーサー領域にｔＲＮＡをコードする領域が挿入
されている場合があるが、この場合でもこれらのプライ
マーを用いて増幅、検出できる。
【００２４】増幅後のＬ．属細菌ＤＮＡの検出は、例え
ばアガロースゲル電気泳動、ポリアクリルアミドゲル電
気泳動、スポット法、及びサザンブロット法を用いて行
うことができる。なお、スポット法、サザンブロット法
の際は増幅領域内でプローブＤＮＡを選択すればよい。
ばアガロースゲル電気泳動、ポリアクリルアミドゲル電
気泳動、スポット法、及びサザンブロット法を用いて行
うことができる。なお、スポット法、サザンブロット法
の際は増幅領域内でプローブＤＮＡを選択すればよい。
【００２５】核酸の増幅方法、例えばＰＣＲ法のための
前処理は次に例示する方法で行うことができる。 （１）液体試料をメンブランフィルターでろ過し、Ｌ．
属細菌を捕獲する。 （２）捕獲したＬ．属細菌を必要に応じて培養する。 （３）工程（２）を行った場合には該培養液をメンブラ
ンフィルターに通し、増殖したＬ．属細菌を再び捕獲す
る。 （４）工程（１）又は（３）で捕獲したＬ．属細菌を洗
浄する。 （５）プロティナーゼＫで処理後９９℃で処理し、ＰＣ
Ｒに供する。
前処理は次に例示する方法で行うことができる。 （１）液体試料をメンブランフィルターでろ過し、Ｌ．
属細菌を捕獲する。 （２）捕獲したＬ．属細菌を必要に応じて培養する。 （３）工程（２）を行った場合には該培養液をメンブラ
ンフィルターに通し、増殖したＬ．属細菌を再び捕獲す
る。 （４）工程（１）又は（３）で捕獲したＬ．属細菌を洗
浄する。 （５）プロティナーゼＫで処理後９９℃で処理し、ＰＣ
Ｒに供する。
【００２６】本発明における液体試料とは例えばＬ．属
細菌を含む酒類、例えば清酒、みりん、ワイン等であ
り、また、Ｌ．属細菌を含む培地等である。
細菌を含む酒類、例えば清酒、みりん、ワイン等であ
り、また、Ｌ．属細菌を含む培地等である。
【００２７】工程（１）で使用するメンブランフィルタ
ーとしては、Ｌ．属細菌を捕獲できるものであれば何で
もよい。メンブランフィルターの材質としては例えばポ
リフッ化ビニリデン、ニトロセルロース、親水性ポリエ
ーテルスルホンが挙げられるが、ポリフッ化ビニリデン
が好適である。メンブランフィルターの孔径はＬ．属細
菌を捕獲できるものであればよく、具体的には０．１〜
０．８μｍ程度である。メンブランフィルターの直径は
特に限定されないが、例えば試料３００mlを用いる場合
は１３〜４７mm程度のものを使用すればよく、ろ過時間
の点から４７mmが好適であるが、１３mm及び２５mmのメ
ンブランフィルターを用いると工程（２）において、該
メンブランフィルターを１．５ml容のマイクロチューブ
に直接納めることができて便利であり、通常、２５mmの
ものが使用される。
ーとしては、Ｌ．属細菌を捕獲できるものであれば何で
もよい。メンブランフィルターの材質としては例えばポ
リフッ化ビニリデン、ニトロセルロース、親水性ポリエ
ーテルスルホンが挙げられるが、ポリフッ化ビニリデン
が好適である。メンブランフィルターの孔径はＬ．属細
菌を捕獲できるものであればよく、具体的には０．１〜
０．８μｍ程度である。メンブランフィルターの直径は
特に限定されないが、例えば試料３００mlを用いる場合
は１３〜４７mm程度のものを使用すればよく、ろ過時間
の点から４７mmが好適であるが、１３mm及び２５mmのメ
ンブランフィルターを用いると工程（２）において、該
メンブランフィルターを１．５ml容のマイクロチューブ
に直接納めることができて便利であり、通常、２５mmの
ものが使用される。
【００２８】工程（２）は液体試料中のＬ．属細菌の数
を増加させるため、あるいは生菌と死菌を区別するため
に行うものである。工程（２）で使用する培地としては
ＳＩ培地が代表的であるが、アルコール濃度１５％の純
米酒１リットル中に酵母エキス１０ｇとシステイン５０
mgを含み、ｐＨは４．２〜４．５に調整した培地（以
下、改良培地と称す）を用いるとＬ．属細菌の生育が早
い上、核酸の増幅反応例えばＰＣＲの反応阻害も低く、
好適である。
を増加させるため、あるいは生菌と死菌を区別するため
に行うものである。工程（２）で使用する培地としては
ＳＩ培地が代表的であるが、アルコール濃度１５％の純
米酒１リットル中に酵母エキス１０ｇとシステイン５０
mgを含み、ｐＨは４．２〜４．５に調整した培地（以
下、改良培地と称す）を用いるとＬ．属細菌の生育が早
い上、核酸の増幅反応例えばＰＣＲの反応阻害も低く、
好適である。
【００２９】工程（３）で使用するメンブランフィルタ
ーとしては工程（１）と同様のものが使用可能である
が、フィルター付遠心チューブを用いればそのまま遠心
することにより簡便に濃縮することができる。
ーとしては工程（１）と同様のものが使用可能である
が、フィルター付遠心チューブを用いればそのまま遠心
することにより簡便に濃縮することができる。
【００３０】工程（４）の洗浄は例えば工程（１）又は
（３）を行った後、そのままメンブランフィルター上で
行うことができる。すなわち、適量の洗浄液を工程
（１）又は（３）後のメンブランフィルターに直接添加
し、次に遠心して濃縮すればよい。工程（４）で使用す
る洗浄液としては、Ｌ．属細菌に付着した、核酸の増幅
反応、例えばＰＣＲ法の阻害物質を除去できるものであ
ればよく、滅菌水のほか、各種の緩衝液、例えばＴＥ緩
衝液（１０mMトリス−ＨＣｌ ｐＨ７．５、０．１mM
ＥＤＴＡ）が挙げられる。
（３）を行った後、そのままメンブランフィルター上で
行うことができる。すなわち、適量の洗浄液を工程
（１）又は（３）後のメンブランフィルターに直接添加
し、次に遠心して濃縮すればよい。工程（４）で使用す
る洗浄液としては、Ｌ．属細菌に付着した、核酸の増幅
反応、例えばＰＣＲ法の阻害物質を除去できるものであ
ればよく、滅菌水のほか、各種の緩衝液、例えばＴＥ緩
衝液（１０mMトリス−ＨＣｌ ｐＨ７．５、０．１mM
ＥＤＴＡ）が挙げられる。
【００３１】なお、工程（２）及び（３）は必要に応じ
て行えばよく、省略してもよい。省略する場合、工程
（４）は上記の方法によるほか、例えば以下のように行
うことができる。すなわち、Ｌ．属細菌を捕獲している
工程（１）のメンブランフィルターをマイクロチューブ
内で滅菌水に浸して、かくはんしてＬ．属細菌を懸濁、
洗浄し、次にそのＬ．属細菌を含む滅菌水を再びメンブ
ランフィルター、例えばフィルター付遠心チューブに通
して、Ｌ．属細菌を捕獲して、工程（５）に供すればよ
い。
て行えばよく、省略してもよい。省略する場合、工程
（４）は上記の方法によるほか、例えば以下のように行
うことができる。すなわち、Ｌ．属細菌を捕獲している
工程（１）のメンブランフィルターをマイクロチューブ
内で滅菌水に浸して、かくはんしてＬ．属細菌を懸濁、
洗浄し、次にそのＬ．属細菌を含む滅菌水を再びメンブ
ランフィルター、例えばフィルター付遠心チューブに通
して、Ｌ．属細菌を捕獲して、工程（５）に供すればよ
い。
【００３２】また、ＰＣＲを行う際にｄＵＴＰとウラシ
ル−Ｎ−グリコシラーゼ（ＵＮＧ）を系に加えることに
より、非特異的増幅を抑えることができ、更に精度の高
い検出を行うことができる。
ル−Ｎ−グリコシラーゼ（ＵＮＧ）を系に加えることに
より、非特異的増幅を抑えることができ、更に精度の高
い検出を行うことができる。
【００３３】本発明者らは上記（１）〜（５）の前処理
を行い、清酒試料中のＬ．属細菌をＰＣＲにて検出し
た。その結果、試料３００ml中に１個のＬ．属細菌を含
むサンプルでも再現性よく検出できた。一方、（４）の
洗浄工程を省略した前処理では試料３００ml中に１００
個のＬ．属細菌を含むサンプルでも検出不可能であっ
た。
を行い、清酒試料中のＬ．属細菌をＰＣＲにて検出し
た。その結果、試料３００ml中に１個のＬ．属細菌を含
むサンプルでも再現性よく検出できた。一方、（４）の
洗浄工程を省略した前処理では試料３００ml中に１００
個のＬ．属細菌を含むサンプルでも検出不可能であっ
た。
【００３４】また、本発明者らは更に精度の高い検出の
ために、各Ｌ．属細菌のスペーサー領域から配列表の配
列番号２２〜２４にそれぞれ示される各Ｌ．属細菌のス
ペーサー領域に特異的なプライマー、ＬＡ１１９８、Ｌ
ＡＦ３Ｒ、ＬＡＣ３Ｒを作成した。各Ｌ．属細菌の分類
と各プライマー及び前出のＬＡＭ３Ｒ（配列番号１５）
の対応を表７に示す。
ために、各Ｌ．属細菌のスペーサー領域から配列表の配
列番号２２〜２４にそれぞれ示される各Ｌ．属細菌のス
ペーサー領域に特異的なプライマー、ＬＡ１１９８、Ｌ
ＡＦ３Ｒ、ＬＡＣ３Ｒを作成した。各Ｌ．属細菌の分類
と各プライマー及び前出のＬＡＭ３Ｒ（配列番号１５）
の対応を表７に示す。
【００３５】
【表７】
【００３６】具体的に説明すれば、配列表の配列番号２
０で表されるＬＡＵ１と配列番号２２で示されるＬＡ１
１９８のプライマー対で真性火落菌、例えばＬ．ヘテロ
ヒオチイ ＪＣＭ１１９８型と火落菌分離株Ｐ−ａ型の
遺伝子が、ＬＡＵ１とＬＡＭ３Ｒのプライマー対で真性
火落菌、例えばＬ．ホモヒオチイ ＩＦＯ１３１２０型
の遺伝子が、ＬＡＵ１と配列表の配列番号２３で示され
るＬＡＦ３Ｒのプライマー対で、火落性乳酸菌、例えば
火落菌分離株Ｆ−１型の遺伝子が、ＬＡＵ１と配列表の
配列番号２４で示されるＬＡＣ３Ｒのプライマー対で火
落性乳酸菌、例えばＬ．カセイ サブスピーシーズ ラ
ムノサス ＩＦＯ３５３２型とＬ．カゼイ サブスピー
シーズ カゼイＩＦＯ３５３３型の遺伝子が増幅され
る。
０で表されるＬＡＵ１と配列番号２２で示されるＬＡ１
１９８のプライマー対で真性火落菌、例えばＬ．ヘテロ
ヒオチイ ＪＣＭ１１９８型と火落菌分離株Ｐ−ａ型の
遺伝子が、ＬＡＵ１とＬＡＭ３Ｒのプライマー対で真性
火落菌、例えばＬ．ホモヒオチイ ＩＦＯ１３１２０型
の遺伝子が、ＬＡＵ１と配列表の配列番号２３で示され
るＬＡＦ３Ｒのプライマー対で、火落性乳酸菌、例えば
火落菌分離株Ｆ−１型の遺伝子が、ＬＡＵ１と配列表の
配列番号２４で示されるＬＡＣ３Ｒのプライマー対で火
落性乳酸菌、例えばＬ．カセイ サブスピーシーズ ラ
ムノサス ＩＦＯ３５３２型とＬ．カゼイ サブスピー
シーズ カゼイＩＦＯ３５３３型の遺伝子が増幅され
る。
【００３７】これらのプライマーは各火落菌のスペーサ
ー領域の遺伝子の塩基配列と一致するため、ユニバーサ
ルプライマーであるＬＡＵ３Ｒよりも更に感度、精度の
高い検出が可能である。また、ＬＡ１１９８、ＬＡＭ３
Ｒ、ＬＡＦ３Ｒ、及びＬＡＣ３Ｒの４種のプライマーを
混合して用いることによりすべての型の火落菌を検出す
ることができる。
ー領域の遺伝子の塩基配列と一致するため、ユニバーサ
ルプライマーであるＬＡＵ３Ｒよりも更に感度、精度の
高い検出が可能である。また、ＬＡ１１９８、ＬＡＭ３
Ｒ、ＬＡＦ３Ｒ、及びＬＡＣ３Ｒの４種のプライマーを
混合して用いることによりすべての型の火落菌を検出す
ることができる。
【００３８】
【実施例】以下、本発明を実施例により更に具体的に説
明するが、本発明はこれらの実施例に限定されない。
明するが、本発明はこれらの実施例に限定されない。
【００３９】実施例１ （１）フィルターの検討 清酒より分離されたＬ．属細菌（伏見１−６株）をエタ
ノール１０％を含むＳＩ液体培地１０mlで３０℃、２４
時間培養した。この培養液中の菌体の数を血球計算盤に
て計数後、１５％エタノールで希釈し、それぞれ１００
個／２０ml、１０個／２０mlの溶液を４本ずつ調製し試
料とした。フィルターとしてミリポア社のＭＦ−ミリポ
ア メンブランフィルター（セルロース混合エステル
製、孔径０．４５μｍ、直径２５mm）、ミリポア社のデ
ュラポア メンブランフィルター（ポリフッ化ビニリデ
ン製、孔径０．４５μｍ、直径２５mm）、ゲルマンサイ
エンス社のスーポア メンブランフィルター（親水性ポ
リスルホン製、孔径０．４５μｍ及び０．２μｍの２種
類、いずれも直径２５mm) の４種類を選択、検討した。
各試料をそれぞれのフィルターでろ過後、該フィルター
を１．５ml容マイクロチューブ内で０．４mlの改良培地
に浸し、１０秒間かくはんした。次に、該改良培地全量
を１％アガーを含むＳＩ培地（エタノール１０％）上に
プレーティング後、該ＳＩ培地を重層し、更に１％アガ
ーを重層し、３０℃で４日間培養し、コロニーの数を調
べた。表８に各試料のコロニー数を示す。
ノール１０％を含むＳＩ液体培地１０mlで３０℃、２４
時間培養した。この培養液中の菌体の数を血球計算盤に
て計数後、１５％エタノールで希釈し、それぞれ１００
個／２０ml、１０個／２０mlの溶液を４本ずつ調製し試
料とした。フィルターとしてミリポア社のＭＦ−ミリポ
ア メンブランフィルター（セルロース混合エステル
製、孔径０．４５μｍ、直径２５mm）、ミリポア社のデ
ュラポア メンブランフィルター（ポリフッ化ビニリデ
ン製、孔径０．４５μｍ、直径２５mm）、ゲルマンサイ
エンス社のスーポア メンブランフィルター（親水性ポ
リスルホン製、孔径０．４５μｍ及び０．２μｍの２種
類、いずれも直径２５mm) の４種類を選択、検討した。
各試料をそれぞれのフィルターでろ過後、該フィルター
を１．５ml容マイクロチューブ内で０．４mlの改良培地
に浸し、１０秒間かくはんした。次に、該改良培地全量
を１％アガーを含むＳＩ培地（エタノール１０％）上に
プレーティング後、該ＳＩ培地を重層し、更に１％アガ
ーを重層し、３０℃で４日間培養し、コロニーの数を調
べた。表８に各試料のコロニー数を示す。
【００４０】
【表８】 表 ８ メンブランフィルター １００個／２０ml １０個／２０ml ──────────────────────────────────── ＭＦミリポアメンブランフィルター ２３ １ デュラポアメンブランフィルター １９７ ２６ スーポアメンブランフィルター １４ ４ （孔径０．４５μｍ） スーポアメンブランフィルター ２１ １ （孔径０．２μｍ） ────────────────────────────────────
【００４１】すなわち、デュラポアメンブランフィルタ
ーが菌体の捕獲効率が優れており、Ｌ．属細菌の検出に
適していた。
ーが菌体の捕獲効率が優れており、Ｌ．属細菌の検出に
適していた。
【００４２】（２）清酒、ＳＩ培地、改良培地によるＰ
ＣＲ反応阻害 試料として、１５％アルコール濃度の吟醸生酒、１０％
エタノールを含むＳＩ培地、１０％の本醸造酒を含む改
良培地を用いた。鋳型としてＬ．カゼイのゲノムＤＮＡ
（最終濃度 ２ng／１００μｌ）、プライマーとしてＬ
ＡＵ１とＬＡＵ３Ｒ（最終濃度 ０．２μM ）を使用
し、各試料を適当量すなわち、 吟醸生酒の場合 ０、５μｌ、１０μｌ、２０μｌ、３
０μｌ、５０μｌ／１００μｌ ＳＩ培地の場合 ０、０．５μｌ、１μｌ、２μｌ、５
μｌ、１０μｌ／１００μｌ 改良培地の場合 ０、５μｌ、１０μｌ、２０μｌ、３
０μｌ、５０μｌ／１００μｌ を含む１００μｌのＰＣＲ反応溶液〔１０mMトリス−Ｈ
Ｃｌ（ｐＨ８．３）、５０mM ＫＣｌ、１．５mM Ｍｇ
Ｃｌ2 、０．００１％（Ｗ／Ｖ）ゼラチン、２．５ユニ
ット／１００μｌ タックポリメラーゼ〕を調製した。
各溶液にミネラルオイル（シグマ社）１００μｌを重層
し、９４℃０．５分、５５℃１分、７２℃１分、３０サ
イクルの条件でＤＮＡサーマルサイクラー（宝酒造社）
を用いてＰＣＲを行った。反応終了後、１０μｌ分をヌ
シーブ（Nusieve)３：１アガロース（ＦＭＣ社）ゲルに
て電気泳動を行い、エチジウムブロマイド染色して増幅
されたＤＮＡを観察した。その結果、吟醸生酒で２０μ
ｌ以上、ＳＩ培地で１μｌ以上、改良培地で５０μｌ以
上の添加でＰＣＲの反応阻害が見られた。すなわち、Ｐ
ＣＲの前段階で用いる培地としてはＳＩ培地よりも改良
培地の方が優れていることが明らかになった。
ＣＲ反応阻害 試料として、１５％アルコール濃度の吟醸生酒、１０％
エタノールを含むＳＩ培地、１０％の本醸造酒を含む改
良培地を用いた。鋳型としてＬ．カゼイのゲノムＤＮＡ
（最終濃度 ２ng／１００μｌ）、プライマーとしてＬ
ＡＵ１とＬＡＵ３Ｒ（最終濃度 ０．２μM ）を使用
し、各試料を適当量すなわち、 吟醸生酒の場合 ０、５μｌ、１０μｌ、２０μｌ、３
０μｌ、５０μｌ／１００μｌ ＳＩ培地の場合 ０、０．５μｌ、１μｌ、２μｌ、５
μｌ、１０μｌ／１００μｌ 改良培地の場合 ０、５μｌ、１０μｌ、２０μｌ、３
０μｌ、５０μｌ／１００μｌ を含む１００μｌのＰＣＲ反応溶液〔１０mMトリス−Ｈ
Ｃｌ（ｐＨ８．３）、５０mM ＫＣｌ、１．５mM Ｍｇ
Ｃｌ2 、０．００１％（Ｗ／Ｖ）ゼラチン、２．５ユニ
ット／１００μｌ タックポリメラーゼ〕を調製した。
各溶液にミネラルオイル（シグマ社）１００μｌを重層
し、９４℃０．５分、５５℃１分、７２℃１分、３０サ
イクルの条件でＤＮＡサーマルサイクラー（宝酒造社）
を用いてＰＣＲを行った。反応終了後、１０μｌ分をヌ
シーブ（Nusieve)３：１アガロース（ＦＭＣ社）ゲルに
て電気泳動を行い、エチジウムブロマイド染色して増幅
されたＤＮＡを観察した。その結果、吟醸生酒で２０μ
ｌ以上、ＳＩ培地で１μｌ以上、改良培地で５０μｌ以
上の添加でＰＣＲの反応阻害が見られた。すなわち、Ｐ
ＣＲの前段階で用いる培地としてはＳＩ培地よりも改良
培地の方が優れていることが明らかになった。
【００４３】（３）液体試料中のＬ．属細菌の検出 伏見１−６株を１０％エタノールを含むＳＩ液体培地１
５mlで３０℃、２日間培養した。この培養液中の菌体数
を血球計算盤にて計数後、１０％アルコール濃度の純米
酒で希釈し、３００μｌ中に０、０．１、１、１０、１
００個の菌数になるよう各サンプルを調製した。次に、
各サンプル３００μｌを、直径２５mm、孔径０．４５μ
ｍのデュラポアメンブランフィルターを用いて吸引ろ過
して菌体をフィルター上に捕獲した。次に、該フィルタ
ーを１．５ml容マイクロチューブ内で０．４mlの改良培
地に浸し、３０秒間かくはんした後そのまま３０℃で２
４時間培養した。次に、該培養液をフィルター付遠心チ
ューブ スプレック(SUPREC)−０１（宝酒造社）に移
し、５０００rpm で１分間遠心し、増幅した菌体をフィ
ルター上に捕獲した。
５mlで３０℃、２日間培養した。この培養液中の菌体数
を血球計算盤にて計数後、１０％アルコール濃度の純米
酒で希釈し、３００μｌ中に０、０．１、１、１０、１
００個の菌数になるよう各サンプルを調製した。次に、
各サンプル３００μｌを、直径２５mm、孔径０．４５μ
ｍのデュラポアメンブランフィルターを用いて吸引ろ過
して菌体をフィルター上に捕獲した。次に、該フィルタ
ーを１．５ml容マイクロチューブ内で０．４mlの改良培
地に浸し、３０秒間かくはんした後そのまま３０℃で２
４時間培養した。次に、該培養液をフィルター付遠心チ
ューブ スプレック(SUPREC)−０１（宝酒造社）に移
し、５０００rpm で１分間遠心し、増幅した菌体をフィ
ルター上に捕獲した。
【００４４】次に、０．４mlの滅菌蒸留水をスプレック
−０１のフィルター上に添加し、５０００rpm で１分間
遠心し、菌体を洗浄した。次に、スプレック−０１のフ
ィルター上に０．１mg／mlプロティナーゼＫを含むＰＣ
Ｒ用緩衝液〔１０mMトリス−ＨＣｌ ｐＨ８．３、５０
mM ＫＣｌ、１．５mM ＭｇＣｌ2 、０．００１％（Ｗ
／Ｖ）ゼラチン〕７８．５μｌを加えて懸濁後０．５ml
容のマイクロチューブに移し、ミネラルオイル６０μｌ
を重層後、６５℃で６０分間処理し、更に９９℃で１０
分間処理して、菌体を破壊し、ＤＮＡを露出させた。一
方、比較対照として０．４mlの減菌蒸留水で洗浄する工
程を省略するサンプルも同時に調製した。
−０１のフィルター上に添加し、５０００rpm で１分間
遠心し、菌体を洗浄した。次に、スプレック−０１のフ
ィルター上に０．１mg／mlプロティナーゼＫを含むＰＣ
Ｒ用緩衝液〔１０mMトリス−ＨＣｌ ｐＨ８．３、５０
mM ＫＣｌ、１．５mM ＭｇＣｌ2 、０．００１％（Ｗ
／Ｖ）ゼラチン〕７８．５μｌを加えて懸濁後０．５ml
容のマイクロチューブに移し、ミネラルオイル６０μｌ
を重層後、６５℃で６０分間処理し、更に９９℃で１０
分間処理して、菌体を破壊し、ＤＮＡを露出させた。一
方、比較対照として０．４mlの減菌蒸留水で洗浄する工
程を省略するサンプルも同時に調製した。
【００４５】次に、各サンプルに２１．５μｌのＰＣＲ
反応液〔５０mMトリス−ＨＣｌ ｐＨ８．３、２５０mM
ＫＣｌ、７．５mM ＭｇＣｌ2 、０．００５％（Ｗ／
Ｖ）ゼラチン、１mM ｄＵＴＰ、１mM ｄＡＴＰ、１mM
ｄＧＴＰ、１mM ｄＣＴＰ、１μM ＬＡＵ−１プラ
イマー、１μM プライマー、０．１２５Ｕ／μｌアンプ
リタック（Ampri Taq)、０．００５Ｕ／μｌ ＵＮＧ）
を加えＤＮＡサーマルサイクラーにてＰＣＲを行った。
プライマーとしては配列表の配列番号２４で示されるＬ
ＡＣ３Ｒを新たに作成して使用した。ＰＣＲの条件は、
４５℃で１０分、９５℃で１０分を１サイクル、更に９
４℃で０．５分、５５℃で１分、７２℃で１分のサイク
ルを４０サイクル行った。反応後、反応液の１０μｌを
ヌシーブ３：１アガロースゲルにて電気泳動を行い、エ
チジウムブロマイドで染色して増幅されたＤＮＡを検出
した。その結果、洗浄工程を入れた場合は３００ml中に
１、１０、１００個のＬ．属細菌を含む各サンプルで約
１７０bpの増幅産物が認められ、Ｌ．属細菌を検出する
ことができた。一方、洗浄工程を省略した対照はいずれ
のサンプルでも増幅産物が認められず、Ｌ．属細菌を検
出できなかった。また、別のＬ．属細菌Ｎ５株について
も全く同様の結果であった。
反応液〔５０mMトリス−ＨＣｌ ｐＨ８．３、２５０mM
ＫＣｌ、７．５mM ＭｇＣｌ2 、０．００５％（Ｗ／
Ｖ）ゼラチン、１mM ｄＵＴＰ、１mM ｄＡＴＰ、１mM
ｄＧＴＰ、１mM ｄＣＴＰ、１μM ＬＡＵ−１プラ
イマー、１μM プライマー、０．１２５Ｕ／μｌアンプ
リタック（Ampri Taq)、０．００５Ｕ／μｌ ＵＮＧ）
を加えＤＮＡサーマルサイクラーにてＰＣＲを行った。
プライマーとしては配列表の配列番号２４で示されるＬ
ＡＣ３Ｒを新たに作成して使用した。ＰＣＲの条件は、
４５℃で１０分、９５℃で１０分を１サイクル、更に９
４℃で０．５分、５５℃で１分、７２℃で１分のサイク
ルを４０サイクル行った。反応後、反応液の１０μｌを
ヌシーブ３：１アガロースゲルにて電気泳動を行い、エ
チジウムブロマイドで染色して増幅されたＤＮＡを検出
した。その結果、洗浄工程を入れた場合は３００ml中に
１、１０、１００個のＬ．属細菌を含む各サンプルで約
１７０bpの増幅産物が認められ、Ｌ．属細菌を検出する
ことができた。一方、洗浄工程を省略した対照はいずれ
のサンプルでも増幅産物が認められず、Ｌ．属細菌を検
出できなかった。また、別のＬ．属細菌Ｎ５株について
も全く同様の結果であった。
【００４６】 （４）新しいプライマーを用いた火落菌検出 更に高感度で高精度な火落菌検出を目的として表７に示
すＬＡ１１９８（配列番号２２）、ＬＡＦ３Ｒ（配列番
号２３）、の各プライマーを作成した。次に表７に示す
それぞれの火落菌について、対応するプライマーとＬＡ
Ｕ１のプライマー対で各火落菌のゲノムＤＮＡ１ｎｇを
鋳型としてＰＣＲを行った結果、すべての火落菌でＬＡ
Ｕ１とＬＡＵ３Ｒのプライマー対の場合よりも効率よく
増幅された。また、それぞれの火落菌について、これら
のプライマーとＬＡＵ１のプライマー対で実施例１−
（３）と同様にして液体試料中の火落菌を検出した結
果、いずれも３００ｍｌ中に１個の火落菌でも検出する
ことができた。更に、ＬＡ１１９８，ＬＡＭ３Ｒ，ＬＡ
Ｆ３Ｒ，ＬＡＣ３Ｒの４種のプライマーを混合したもの
を用いた場合も、同様に各火落菌を効率よく検出するこ
とができた。
すＬＡ１１９８（配列番号２２）、ＬＡＦ３Ｒ（配列番
号２３）、の各プライマーを作成した。次に表７に示す
それぞれの火落菌について、対応するプライマーとＬＡ
Ｕ１のプライマー対で各火落菌のゲノムＤＮＡ１ｎｇを
鋳型としてＰＣＲを行った結果、すべての火落菌でＬＡ
Ｕ１とＬＡＵ３Ｒのプライマー対の場合よりも効率よく
増幅された。また、それぞれの火落菌について、これら
のプライマーとＬＡＵ１のプライマー対で実施例１−
（３）と同様にして液体試料中の火落菌を検出した結
果、いずれも３００ｍｌ中に１個の火落菌でも検出する
ことができた。更に、ＬＡ１１９８，ＬＡＭ３Ｒ，ＬＡ
Ｆ３Ｒ，ＬＡＣ３Ｒの４種のプライマーを混合したもの
を用いた場合も、同様に各火落菌を効率よく検出するこ
とができた。
【００４７】
【発明の効果】本発明により、Ｌ．属細菌、特に火落菌
の迅速かつ高感度な検出方法が提供された。
の迅速かつ高感度な検出方法が提供された。
【００４８】
【００４９】配列番号：1 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：NO 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA 20
【００５０】配列番号：2 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：NO 配列： GTGCGGCTGG ATCACCTCCT 20
【００５１】配列番号：3 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： CTCCTAGTGC CAAGSCATYC 20
【００５２】配列番号：4 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： TCCGGGTACT TAGATGTTTC 20
【００５３】配列番号：5 配列の長さ：540 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：genomic DNA 起源： 生物名：ラクトバチルス ヘテロヒオチイ (Lactobacil
lus heterohiochii) 株名：JCM 1198 生物名：ラクトバチルス ホモヒオチイ (Lactobacillu
s homohiochii) 株名：JCM1199 配列の特徴： 1-155 16SrRNA をコードする領域 156-371 スペーサー領域 220 tRNAをコードする領域の挿入位置 372-540 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGATA GTTTGTAACA CCCAAAGTCG GTTAGGTAAC 60 TTTTGGAGCC TGCCGCCTAA GGTGGGACAG ATGATTAGGG TGAAGTCGTA ACAAGGTAGC 120 CGTAGGAGAA CCTGCGGCTG GATCACCTCC TTTCTAAGGA AAAATTCGAA AACCCTACAC 180 AATTAAAGTC TTGTTTAGTT TTGAGAGTTT TACTCTCAAT ACTTTGTTCT TTGAAAACTA 240 GATAATATTA TTTTCTGTAT TAATTATATT TTAATTATAA TTTTAACCGA GAAATAACCA 300 CTACGTTATT TGAGTTTTTT AAAATAGTTT AAATCGCAAA TACTCAATAA CTTACATCAC 360 GAAGTGATGC AGGTTAAGTT ATTAAGGGCG CATGGTGAAT GCCTTGGTAC TAGGAGCCGA 420 TGAAGGACGG AACTAACACC GATATGTTTC GGGGAGCTGT ACGTAAGCTT TGATCCGGAG 480 ATTTCCGAAT GGGGAAACCC AATCATCTTA GTCGATGATT GCTCGACAGT GAATTCACTG 540
lus heterohiochii) 株名：JCM 1198 生物名：ラクトバチルス ホモヒオチイ (Lactobacillu
s homohiochii) 株名：JCM1199 配列の特徴： 1-155 16SrRNA をコードする領域 156-371 スペーサー領域 220 tRNAをコードする領域の挿入位置 372-540 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGATA GTTTGTAACA CCCAAAGTCG GTTAGGTAAC 60 TTTTGGAGCC TGCCGCCTAA GGTGGGACAG ATGATTAGGG TGAAGTCGTA ACAAGGTAGC 120 CGTAGGAGAA CCTGCGGCTG GATCACCTCC TTTCTAAGGA AAAATTCGAA AACCCTACAC 180 AATTAAAGTC TTGTTTAGTT TTGAGAGTTT TACTCTCAAT ACTTTGTTCT TTGAAAACTA 240 GATAATATTA TTTTCTGTAT TAATTATATT TTAATTATAA TTTTAACCGA GAAATAACCA 300 CTACGTTATT TGAGTTTTTT AAAATAGTTT AAATCGCAAA TACTCAATAA CTTACATCAC 360 GAAGTGATGC AGGTTAAGTT ATTAAGGGCG CATGGTGAAT GCCTTGGTAC TAGGAGCCGA 420 TGAAGGACGG AACTAACACC GATATGTTTC GGGGAGCTGT ACGTAAGCTT TGATCCGGAG 480 ATTTCCGAAT GGGGAAACCC AATCATCTTA GTCGATGATT GCTCGACAGT GAATTCACTG 540
【００５４】配列番号：6 配列の長さ：585 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：genomic DNA 起源： 生物名：ラクトバチルス ヘテロヒオチイ (Lactobacil
lus heterohiochii) 株名：IFO13118, IFO13119 生物名：ラクトバチルス ホモヒオチイ (Lactobacillu
s homohiochii) 株名：IFO13120, IFO13121 配列の特徴： 1-162 16SrRNA をコードする領域 163-370 スペーサー領域 277 tRNAをコードする領域の挿入位置 371-585 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGAGA GTTTGTAACA CCCAAAGCCG GCCGGATAAC 60 CTAGTTTACT AGGAGTCAGC CGTCTAAGGT GGGACAAATG ATTAGGGTGA AGTCGTAACA 120 AGGTAGCCGT AGGAGAACCT GCGGCTGGAT CACCTCCTTT CTAAGGAAAA AAAGCGAACG 180 TGACGGAGAG TAGGAGACTA CTAAGAGAAG TCAGTGAAGC AAACGGAAGC ACACGAAAGA 240 GACTTTGTTT AGTTTTGAGG GTAGTACCTC AAGAAAAGTT AGTACATTGA AAACTGAATA 300 TAATCCAAAT AAAAACCGAG ACAATCATTG AAGAACAGAT TGTAGAGCGA CCGAGAAGAG 360 CGATCTTAAA GTAAGGTCAA GTAGACAAGG GCGCACGGTG AATGCCTAGG CACTAGCAGC 420 CGAAGAAGGA CGTGACGAAC TACGAAAAGC TTCGGGGAGT TGTAAGTAAA CTAAGATCCG 480 GAGATGTCCA AATGGGGAAA CCCAATGCAG TGATGCATTA TTACTAGCCG AATAGATAGG 540 CTGGTAAAGG AAGACGCAGT GAACTGAAAC ATCTAAGTAC CCGGA 585
lus heterohiochii) 株名：IFO13118, IFO13119 生物名：ラクトバチルス ホモヒオチイ (Lactobacillu
s homohiochii) 株名：IFO13120, IFO13121 配列の特徴： 1-162 16SrRNA をコードする領域 163-370 スペーサー領域 277 tRNAをコードする領域の挿入位置 371-585 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGAGA GTTTGTAACA CCCAAAGCCG GCCGGATAAC 60 CTAGTTTACT AGGAGTCAGC CGTCTAAGGT GGGACAAATG ATTAGGGTGA AGTCGTAACA 120 AGGTAGCCGT AGGAGAACCT GCGGCTGGAT CACCTCCTTT CTAAGGAAAA AAAGCGAACG 180 TGACGGAGAG TAGGAGACTA CTAAGAGAAG TCAGTGAAGC AAACGGAAGC ACACGAAAGA 240 GACTTTGTTT AGTTTTGAGG GTAGTACCTC AAGAAAAGTT AGTACATTGA AAACTGAATA 300 TAATCCAAAT AAAAACCGAG ACAATCATTG AAGAACAGAT TGTAGAGCGA CCGAGAAGAG 360 CGATCTTAAA GTAAGGTCAA GTAGACAAGG GCGCACGGTG AATGCCTAGG CACTAGCAGC 420 CGAAGAAGGA CGTGACGAAC TACGAAAAGC TTCGGGGAGT TGTAAGTAAA CTAAGATCCG 480 GAGATGTCCA AATGGGGAAA CCCAATGCAG TGATGCATTA TTACTAGCCG AATAGATAGG 540 CTGGTAAAGG AAGACGCAGT GAACTGAAAC ATCTAAGTAC CCGGA 585
【００５５】配列番号：7 配列の長さ：574 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：genomic DNA 起源： 生物名：ラクトバチルス ジャポニカス (Lactobacillu
s japonicus) 株名：IAM10688 配列の特徴： 1-155 16SrRNA をコードする領域 156-358 スペーサー領域 224 tRNAをコードする領域の挿入位置 359-574 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGAGA GTTTGTAACA CCCAAAGTCG GTGGGGTAAC 60 TTTTAGGAAC CAGCCGCCTA AGGTGGGACA GATGATTAGG GTGAAGTCGT AACAAGGTAG 120 CCGTAGAGAA CCTGCGGCTG GATCACCTCC TTTCTAAGGA ATATTACGGA AACCTACACA 180 CGCGTCGAAA CTTTGTTTAG TTTTGAGAGA TTTAACTCTC AAAACTTGTT CTTTGAAAAC 240 TAGATAATAT CAAATATATT TTTTCATAAT GAAACCGAGA ACACCGCGTT TTTTGAGTTT 300 TTTATTGAAG TTTAATTATC GCTAAACTCA TTAATCGCAT TTACCGTTAG GTAAATGAGG 360 TTAAGTTAAC AAGGGCGCAT GGTGAATGCC TTGGCACTAG GAGCCGATGA AGGACGGGAC 420 TAACACCGAT ATGCTTCGGG GAGCTGTACG TAAGCTATGA TCCGGAGATT TCCGAATGGG 480 GCAACCCAGC AGTTTTAATC AACTGTTACC ACTAGATGAA TTCATAGTCT AGTTGGAGGT 540 AAACGCTGTG AACTGAAACA TCTAAGTACC CGGA 574
s japonicus) 株名：IAM10688 配列の特徴： 1-155 16SrRNA をコードする領域 156-358 スペーサー領域 224 tRNAをコードする領域の挿入位置 359-574 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGAGA GTTTGTAACA CCCAAAGTCG GTGGGGTAAC 60 TTTTAGGAAC CAGCCGCCTA AGGTGGGACA GATGATTAGG GTGAAGTCGT AACAAGGTAG 120 CCGTAGAGAA CCTGCGGCTG GATCACCTCC TTTCTAAGGA ATATTACGGA AACCTACACA 180 CGCGTCGAAA CTTTGTTTAG TTTTGAGAGA TTTAACTCTC AAAACTTGTT CTTTGAAAAC 240 TAGATAATAT CAAATATATT TTTTCATAAT GAAACCGAGA ACACCGCGTT TTTTGAGTTT 300 TTTATTGAAG TTTAATTATC GCTAAACTCA TTAATCGCAT TTACCGTTAG GTAAATGAGG 360 TTAAGTTAAC AAGGGCGCAT GGTGAATGCC TTGGCACTAG GAGCCGATGA AGGACGGGAC 420 TAACACCGAT ATGCTTCGGG GAGCTGTACG TAAGCTATGA TCCGGAGATT TCCGAATGGG 480 GCAACCCAGC AGTTTTAATC AACTGTTACC ACTAGATGAA TTCATAGTCT AGTTGGAGGT 540 AAACGCTGTG AACTGAAACA TCTAAGTACC CGGA 574
【００５６】配列番号：8 配列の長さ：574 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：genomic DNA 起源： 生物名：ラクトバチルス プランタルム (Lactobacillu
s plantarum) 株名：IAM1216 配列の特徴： 1-155 16SrRNA をコードする領域 156-358 スペーサー領域 224 tRNAをコードする領域の挿入位置 359-574 23SrRNAをコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGAGA GTTTGTAACA CCCAAAGTCG GTGGGGTAAC 60 TTTTAGGAAC CAGCCGCCTA AGGTGGGACA GATGATTAGG GTGAAGTCGT AACAAGGTAG 120 CCGTAGAGAA CCTGCGGCTG GATCACCTCC TTTCTAAGGA ATATTACGGA AACCTACACA 180 CGCGTCGAAA CTTTGTTCAG TTTTGAGAGA TTTAACTCTC AAAACTTGTT CTTTGAAAAC 240 TAGATAATAT CAAATATATT TTTTCATAAT GAAACCGAGA ACACCGCGTT TTTTGAGTTT 300 TTTATTGAAG TTTAATTATC GCTAAACTCA TTAATCGCAT TTACCGTTAG GTAAATGAGG 360 TTAAGTTAAC AAGGGCGCAT GGTGAATGCC TTGGCACTAG GAGCCGATGA AGGACGGGAC 420 TAACACCGAT ATGCTTCGGG GAGCTGTACG TAAGCTATGA TCCGGAGATT TCCGAATGGG 480 GCAACCCAGC AGTTTTAATC AACTGTTACC ACTAGATGAA TTCATAGTCT AGTTGGAGGT 540 AAACGCTGTG AACTGAAACA TCTAAGTACC CGGA 574
s plantarum) 株名：IAM1216 配列の特徴： 1-155 16SrRNA をコードする領域 156-358 スペーサー領域 224 tRNAをコードする領域の挿入位置 359-574 23SrRNAをコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGAGA GTTTGTAACA CCCAAAGTCG GTGGGGTAAC 60 TTTTAGGAAC CAGCCGCCTA AGGTGGGACA GATGATTAGG GTGAAGTCGT AACAAGGTAG 120 CCGTAGAGAA CCTGCGGCTG GATCACCTCC TTTCTAAGGA ATATTACGGA AACCTACACA 180 CGCGTCGAAA CTTTGTTCAG TTTTGAGAGA TTTAACTCTC AAAACTTGTT CTTTGAAAAC 240 TAGATAATAT CAAATATATT TTTTCATAAT GAAACCGAGA ACACCGCGTT TTTTGAGTTT 300 TTTATTGAAG TTTAATTATC GCTAAACTCA TTAATCGCAT TTACCGTTAG GTAAATGAGG 360 TTAAGTTAAC AAGGGCGCAT GGTGAATGCC TTGGCACTAG GAGCCGATGA AGGACGGGAC 420 TAACACCGAT ATGCTTCGGG GAGCTGTACG TAAGCTATGA TCCGGAGATT TCCGAATGGG 480 GCAACCCAGC AGTTTTAATC AACTGTTACC ACTAGATGAA TTCATAGTCT AGTTGGAGGT 540 AAACGCTGTG AACTGAAACA TCTAAGTACC CGGA 574
【００５７】 配列番号：9 配列の長さ：588 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：genomic DNA 起源： 生物名：ラクトバチルス カゼイ サブスピーシーズ
ラムノサス (Lactobacillus casei subsp. rhamnosus) 株名：IFO3532 配列の特徴： 1-158 16SrRNA をコードする領域 159-375 スペーサー領域 250 tRNAをコードする領域の挿入位置 376-588 23SrRNA をコードする領域 配列：
ラムノサス (Lactobacillus casei subsp. rhamnosus) 株名：IFO3532 配列の特徴： 1-158 16SrRNA をコードする領域 159-375 スペーサー領域 250 tRNAをコードする領域の挿入位置 376-588 23SrRNA をコードする領域 配列：
【００５８】配列番号：10 配列の長さ：588 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：genomic DNA 起源： 生物名：ラクトバチルス カゼイ サブスピーシーズ
カゼイ (Lactobacillus casei subsp. casei) 株名：IFO3533 配列の特徴： 1-158 16SrRNA をコードする領域 159-375 スペーサー領域 250 tRNAをコードする領域の挿入位置 376-588 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGAGA GTTTGTAACA CCCGAAGCCG GTGGCGTAAC 60 CTTTTAGGGA GCGAGCCGTC TAAGGTGGGA CAAATGATTA GGGTGAAGTC GTAACAAGGT 120 AGCCGTAGGA GAACCTGCGG CTGGATCACC TCCTTTCTAA GGAAACAGAC TGAAAGTCTG 180 ACGGAAACCT GCACACACGA AACTTTGTTT AGTTTTGAGG GGATCACCCT CAAGCACCCT 240 AGCGGGTGCG ACTTTGTTCT TTGAAAACTG GATATCATTG TATTAATTGT TTTAAATTGC 300 CGAGAACACA GCGTATTTGT ATGAGTTTCT GAAAAAGAAA TTCGCATCGC ATAACCGCTG 360 ACGCAAGTCA GTACAGGTTA AGTTACAAAG GGCGCACGGT GGATGCCTTG GCACTAGGAG 420 CCGATGAAGG ACGGAACTAA TACCGATATG CCTCGGGGAG CTATAAGTAA GCTTTGATCC 480 GGAGATTTCC GAATGGGGAA ACCCAGTACA CATCAGTGTA TTGCTTGTCA GTGAATACAT 540 AGCTGGCCGG CGGCAGACGC GGGGAACTGA AACATCTAAG TACCCGGA 588
カゼイ (Lactobacillus casei subsp. casei) 株名：IFO3533 配列の特徴： 1-158 16SrRNA をコードする領域 159-375 スペーサー領域 250 tRNAをコードする領域の挿入位置 376-588 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGAGA GTTTGTAACA CCCGAAGCCG GTGGCGTAAC 60 CTTTTAGGGA GCGAGCCGTC TAAGGTGGGA CAAATGATTA GGGTGAAGTC GTAACAAGGT 120 AGCCGTAGGA GAACCTGCGG CTGGATCACC TCCTTTCTAA GGAAACAGAC TGAAAGTCTG 180 ACGGAAACCT GCACACACGA AACTTTGTTT AGTTTTGAGG GGATCACCCT CAAGCACCCT 240 AGCGGGTGCG ACTTTGTTCT TTGAAAACTG GATATCATTG TATTAATTGT TTTAAATTGC 300 CGAGAACACA GCGTATTTGT ATGAGTTTCT GAAAAAGAAA TTCGCATCGC ATAACCGCTG 360 ACGCAAGTCA GTACAGGTTA AGTTACAAAG GGCGCACGGT GGATGCCTTG GCACTAGGAG 420 CCGATGAAGG ACGGAACTAA TACCGATATG CCTCGGGGAG CTATAAGTAA GCTTTGATCC 480 GGAGATTTCC GAATGGGGAA ACCCAGTACA CATCAGTGTA TTGCTTGTCA GTGAATACAT 540 AGCTGGCCGG CGGCAGACGC GGGGAACTGA AACATCTAAG TACCCGGA 588
【００５９】配列番号：11 配列の長さ：414 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：genomic DNA 起源： 生物名：ラクトバチルス スピーシーズ (Lactobacillu
s sp.) 株名：IFO3934 配列の特徴： 1-156 16SrRNA をコードする領域 157-370 スペーサー領域 225 tRNAをコードする領域の挿入位置 371-414 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGAGA GTTTGTAACA CCCAAAGCCG GTGAGATAAC 60 CTTCGGGAGT CAGCCGTCTA AGGTGGGACA GATGATTAGG GTGAAGTCGT AACAAGGTAG 120 CCGTAGGAGA ACCTGCGGCT GGATCACCTC CTTTCTAAGG AATATACGGA GGCTACACAT 180 ACTTGTTGAA ACAATGTTCA GTTTTGAGGG GCTTACCTCT CTAAACTTGT TCTTTGAAAA 240 CTAGATATTA TCAATTATTT TCCTTTAATT ATTAAGATAA TTAAACCGAG AAACAACTGC 300 GTATTTTTGA GTTTTTTAAT TAGTTTATCG CTAATACTCA ATTAATTTGA CGATCACGAA 360 GTGACCGTTA GGTTAAGTTA TGAAGGGCGC ATGGTGGAGC CTTGGTACTA GGAG 414
s sp.) 株名：IFO3934 配列の特徴： 1-156 16SrRNA をコードする領域 157-370 スペーサー領域 225 tRNAをコードする領域の挿入位置 371-414 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCATGAGA GTTTGTAACA CCCAAAGCCG GTGAGATAAC 60 CTTCGGGAGT CAGCCGTCTA AGGTGGGACA GATGATTAGG GTGAAGTCGT AACAAGGTAG 120 CCGTAGGAGA ACCTGCGGCT GGATCACCTC CTTTCTAAGG AATATACGGA GGCTACACAT 180 ACTTGTTGAA ACAATGTTCA GTTTTGAGGG GCTTACCTCT CTAAACTTGT TCTTTGAAAA 240 CTAGATATTA TCAATTATTT TCCTTTAATT ATTAAGATAA TTAAACCGAG AAACAACTGC 300 GTATTTTTGA GTTTTTTAAT TAGTTTATCG CTAATACTCA ATTAATTTGA CGATCACGAA 360 GTGACCGTTA GGTTAAGTTA TGAAGGGCGC ATGGTGGAGC CTTGGTACTA GGAG 414
【００６０】配列番号：12 配列の長さ：585 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：genomic DNA 起源： 生物名：ラクトバチルス ブレビス (Lactobacillus br
evis) 株名：IFO13110 配列の特徴： 1-156 16SrRNA をコードする領域 157-370 スペーサー領域 225 tRNAをコードする領域の挿入位置 371-585 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCACGAGA GTTTGTAACA CCCAAAGCCG GTGAGATAAC 60 CTTCGGGAGT CAGCCGTCTA AGGTGGGACA GATGATTAGG GTGAAGTCGT AACAAGGTAG 120 CCGTAGGAGA ACCTGCGGCT GGATCACCTC CTTTCTAAGG AATATACGGA GGCTACACAT 180 ACTTGTTGAA ACAATGTTCA GTTTTGAGGG GCTTACCTCT CTAAACTTGT TCTTTGAAAA 240 CTAGATATTA TCAATTATTT TCCTTTAATT ATTAAGATAA TTAAACCGAG AAACAACTGC 300 GTATTTTTGA GTTTTTTAAT TAGTTTATCG CTAATACTCA ATTAATTTGA CGATCACGAA 360 GTGACCGTTA GGTTAAGTTA TGAAGGGCGC ATGGTGGATG CCTTGGTACT AGGAGCCGAT 420 GAAGGACGGG ACTAACACCG ATATGCTTCG GGGAGCTGTA CGTAAGCTTT GATCCGGAGA 480 TTTCCGAATG GGGAAACCCA ATCATCTTTA CCGATGATTA CAACTTGATG AATACATAGT 540 CAAGTTGAGG CAGACGTGGG GAACTGAAAC ATCTAAGTAC CCGGA 585
evis) 株名：IFO13110 配列の特徴： 1-156 16SrRNA をコードする領域 157-370 スペーサー領域 225 tRNAをコードする領域の挿入位置 371-585 23SrRNA をコードする領域 配列： CTTGTACACA CCGCCCGTCA CACCACGAGA GTTTGTAACA CCCAAAGCCG GTGAGATAAC 60 CTTCGGGAGT CAGCCGTCTA AGGTGGGACA GATGATTAGG GTGAAGTCGT AACAAGGTAG 120 CCGTAGGAGA ACCTGCGGCT GGATCACCTC CTTTCTAAGG AATATACGGA GGCTACACAT 180 ACTTGTTGAA ACAATGTTCA GTTTTGAGGG GCTTACCTCT CTAAACTTGT TCTTTGAAAA 240 CTAGATATTA TCAATTATTT TCCTTTAATT ATTAAGATAA TTAAACCGAG AAACAACTGC 300 GTATTTTTGA GTTTTTTAAT TAGTTTATCG CTAATACTCA ATTAATTTGA CGATCACGAA 360 GTGACCGTTA GGTTAAGTTA TGAAGGGCGC ATGGTGGATG CCTTGGTACT AGGAGCCGAT 420 GAAGGACGGG ACTAACACCG ATATGCTTCG GGGAGCTGTA CGTAAGCTTT GATCCGGAGA 480 TTTCCGAATG GGGAAACCCA ATCATCTTTA CCGATGATTA CAACTTGATG AATACATAGT 540 CAAGTTGAGG CAGACGTGGG GAACTGAAAC ATCTAAGTAC CCGGA 585
【００６１】配列番号：13 配列の長さ：286 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：genomic DNA 起源： 生物名：ラクトバチルス (Lactobacillus) 株名：F-1 配列の特徴： 1-20 16SrRNAをコードする領域 21-241 スペーサー領域 86 tRNAをコードする領域の挿入位置 242-286 23SrRNA をコードする領域 配列： GGCTGGATCA CCTCCTTTCT AAGGAAAATT CGGAAACCTA CACAATGTCG AAAGTTTTGT 60 TCAGTTTTGA GAGGTCTACT CTCAAACTTG GTTCTTTGAA AACTAGATAA TATTAATTTT 120 CTGTAATTTA TTGAATTGGA TATAATCCAA TTTCAACCGA GAACACCGCG TTATTTTGAG 180 TTTGTTAACT AAGTAAAAAA TCGCAAATAC TCAATTAACT AAAGTATCCG TAGGATACTT 240 AGGTTAAGTT ATCAAGGGCG CATGGTGAAT GCCTTGGCAC TAGGAG 286
【００６２】配列番号：14 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： CCTGCATCAC TTCGTGATGT 20
【００６３】配列番号：15 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： GCTCTACAAT CTGTTCTTCA 20
【００６４】配列番号：16 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： TTTACCTAAC GGTAAATGCG 20
【００６５】配列番号：17 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： GTACTGACTT GCGTCAGCGG 20
【００６６】配列番号：18 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： GGTCACTTCG TGATCGTCAA 20
【００６７】配列番号：19 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：NO 配列： AATTCGGAAA CCTACACAAT 20
【００６８】配列番号：20 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：NO 配列： ATCACCTCCT TTCTAAGGAA 20
【００６９】配列番号：21 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： AAAAAACGCG GTGTTCTCGG 20
【００７０】配列番号：22 配列の長さ：22 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： TAACGTAGTG GTTATTTCTC GG 22
【００７１】配列番号：23 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： CAAATACGCT GTGTTCTCGG 20
【００７２】配列番号：24 配列の長さ：20 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） アンチセンス：YES 配列： AAATAACGCG GTGTTCTCGG 20
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 富士野 公也 滋賀県大津市瀬田３丁目４番１号 寳酒 造株式会社中央研究所内 (72)発明者 加藤 郁之進 滋賀県大津市瀬田３丁目４番１号 寳酒 造株式会社中央研究所内 (56)参考文献 特開 平３−228695（ＪＰ，Ａ) 特開 平４−36197（ＪＰ，Ａ) Ｊ．Ａｍ．Ｓｏｃ．Ｂｒｅｗ．Ｃｈｅ ｍ．，50（２），64−67（1992) (58)調査した分野(Int.Cl.6，ＤＢ名) C12Q 1/68 ＢＩＯＳＩＳ（ＤＩＡＬＯＧ) ＧｅｎＢａｎｋ／ＥＭＢＬ／ＤＤＢＪ（Ｇ ＥＮＥＴＹＸ) ＷＰＩ（ＤＩＡＬＯＧ)
Claims (1)
- 【請求項１】 ラクトバチルス属細菌を検出するための
プライマーであって、配列表の配列番号２２、２３、又
は２４で表される塩基配列からなることを特徴とするプ
ライマー。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5216843A JP2935791B2 (ja) | 1993-08-10 | 1993-08-10 | ラクトバチルス属細菌の検出プライマー |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5216843A JP2935791B2 (ja) | 1993-08-10 | 1993-08-10 | ラクトバチルス属細菌の検出プライマー |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0751100A JPH0751100A (ja) | 1995-02-28 |
| JP2935791B2 true JP2935791B2 (ja) | 1999-08-16 |
Family
ID=16694778
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5216843A Expired - Fee Related JP2935791B2 (ja) | 1993-08-10 | 1993-08-10 | ラクトバチルス属細菌の検出プライマー |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2935791B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AU5196199A (en) * | 1998-08-11 | 2000-03-06 | Asahi Breweries, Ltd. | Genes for detecting bacteria and detection method by using the same |
-
1993
- 1993-08-10 JP JP5216843A patent/JP2935791B2/ja not_active Expired - Fee Related
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Ｊ．Ａｍ．Ｓｏｃ．Ｂｒｅｗ．Ｃｈｅｍ．，５０（２），６４−６７（１９９２） |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0751100A (ja) | 1995-02-28 |
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