JP2894841B2 - 診断試薬と微生物の間の反応性の制御のための組成物および方法 - Google Patents
診断試薬と微生物の間の反応性の制御のための組成物および方法Info
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- G01N33/54386—Analytical elements
- G01N33/54387—Immunochromatographic test strips
- G01N33/54388—Immunochromatographic test strips based on lateral flow
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10T—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
- Y10T436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10T436/10—Composition for standardization, calibration, simulation, stabilization, preparation or preservation; processes of use in preparation for chemical testing
- Y10T436/107497—Preparation composition [e.g., lysing or precipitation, etc.]
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
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- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
すためにその両者の間の反応性の程度を制御するための
組成物および方法に関する。
っている。そのような病気の予防の際の重要な特色は初
期診断である。疫学者は環境中並びに食品中の微生物汚
染を捜し出して共通の発生原因を見つけなければならな
い。
平洋北西部における腸管出血性大腸菌(EHEC)の発生で
ある。EHECは比較的「最近発見された」病原体である。
EHECは1975年に初めて単離され、1982年になって初めて
大腸菌O157:H7が米国における2件の食物による出血性
大腸炎の発生に関係づけられた。報告される大腸菌O15
7:H7症例の発生率は増加しつつある。典型的には大腸菌
株は無害の偏共生体であるが、幾つかの株は病原性であ
る。EHECは特に有害で、子供の場合は深刻な腹部痙攣と
急性腎不全並びに心血管および中枢神経系の障害をはじ
めとする致死的な合併症を引き起こし得る。
(CDC)サーヴェイランスによれば、サルモネラ菌が食
物性の細菌病発生全体の主原因(50%以上)である。平
均すると、入手可能な最も最近の短期間の1983〜1987年
のうちに年間68の発生率と6249の症例がCDCに報告され
た。サルモネラ菌は広範囲の温血動物と冷血動物に感染
することができ、且つ宿主の外でも長期間生存すること
ができる。
しており、土、水、植物および多数の動物種から単離さ
れている。ヒトリステリア症の重大な発生は頻繁に起こ
ったことはないが、発生率の増加と共に確認されてい
る。加えて、農業環境におけるリステリアの検出頻度は
増加しているように見える。特定のリステリア症の発生
については、死亡率は感染患者の30%〜40%と見積もら
れるが、しかし最小感染量はほとんど知られていない。
食物中のリステリア制御の1つの特定のやっかいな面
は、リステリアが−0.4℃ほどの低温でも44℃ほどの高
温でも増殖できることである。それらの要因は全て食物
病原体としてますます高まるリステリアの重要性に寄与
する。
容易にモニタリングできることが、ヒトへの感染や潜在
する死亡の危険を減少させるだろう。何ら特殊なまたは
工業的な設備を必要とせず、現場で実施することがで
き、そして特殊な技能を必要としない、細菌、酵母、カ
ビ、真菌、寄生生物およびウイルスを含む微生物をアッ
セイできる装置は、診断並びに環境モニタリングおよび
食品サンプリングに有用であろう。食物の細菌汚染の場
合、3つの主な病気関連生物はサルモネラ、リステリア
およびEHECである。
出方法は多数ある。標準的な培養分析方法によりそれら
の生物の証拠を得るためには熟練した実験技術者と最低
2〜5日を要する。より迅速な新規の方法はエンザイム
イムノアッセイ(EIA)、DNAハイブリダイゼーション、
免疫拡散、または増殖/代謝測定といった技術に基づい
ている。培養法よりもずっと少ない時間しかからないけ
れども、それらの迅速試験はまだ技術の熟練、機能的な
研究室および特殊装置を必要とする。それらの試験は一
般に、数時間の実施時間を含み、計2日またはそれ以上
かかる。診断分野における他の開発中の技術、例えばフ
ローサイトメトリーやポリメラーゼ連鎖反応(PCR)に
目を向けると、そのような試験を現実に実施するのに要
求される装置や技能が、食物微生物学、環境試験および
診療室診断における使用を不適当にする。
ッチイムノアッセイを含む。そのような試験はヒト絨毛
性性腺刺激ホルモン(hCG)の検出用に開発され、妊娠
試験に適用されている。典型的には、モノクローナルま
たはポリクローナル抗体が固相担体ストリップの遠位末
端の近くの不連続のバンド(検出域と呼ばれる)に固定
化される。別の量の抗体が検出試薬、例えば無機ゾルま
たは染色したポリスチレン粒子で標識される。この標識
抗体は担体ストリップの近位末端の近くに可逆的に固定
される。もしかすると抗原を含むであろう試料液により
近位末端が水和されると、該抗原が標識抗体と反応し、
その複合体が固定化抗体の区域を通過し、それが固定化
抗体と反応してサンドイッチを形成する。色素産生試薬
−抗原複合体の捕捉が検出域にて可視シグナルの形成を
引き起こす。
対立するものとして、病原性細菌を識別するために取り
かからなければならない少なくとも2つの主なチャレン
ジがある。それらのチャレンジは、偽陽性結果に低寛容
性で且つ偽陰性結果に非常に低い寛容性、好ましくは無
寛容性でありながら、多数の抗原的に類似した微生物の
存在下での標的微生物の標的株の全てを検出する必要
性、および標識それ自体の物理的大きさと不均質性であ
る。典型的な臨床診断試験、例えば尿中のhCG試験は、
十分に特徴付けられた母体(例えば尿)中の単一の小さ
な独特の存在物(即ちホルモン)を検出することに集中
している。更に、分析物(hCG)の構造は限定されてお
り、大きさと組成が均一である。
は、標的微生物の非病原性株と特定の病原性株とを識別
しなければならない。十分に限定された小さな大きさと
構造を有する大部分のホルモンまたは指標タンパク質と
は対照的に、微生物は非常に大きく、それらの表面は不
均質であり、サルモネラ菌の鞭毛の相変異のような変化
を受けることがある。
の試みにおいて、サルモネラ、リステリアおよびEHEC抗
原に対して高親和性ポリクローナル抗体が調製された。
それらの抗体は染色したポリスチレン粒子や無機ゾルと
いった色素産生試薬に結合された。標的微生物の添加と
同時に、迅速且つ顕著な凝集が起こり、固相担体に沿っ
た捕捉抗体の区域の方への色素産生試薬−分析物複合体
の流れを妨げる大きな凝集物を生じた。
の側方流技術の適応が当業界で要望されている。本発明
は上記および他の関連する利点を提供する。
セイによるような標的微生物の検出に備える。本発明
は、微生物が検出装置の側方流に沿って移動している
間、標的微生物(特に抗体と結合した標的微生物)の凝
集または他の会合を抑制することにより、そのような検
出を可能にする。本発明は、側方流診断装置の試薬域中
に抗体−検出試薬をカプセル封入し且つ安定化すると思
われる組成物を提供し、次いで抗体−検出試薬−標的微
生物複合体が凝集することなく試薬域から出て下流方向
にそして側方流膜に沿って、前記複合体を特異的に結合
することのできる固定化抗体が置かれている検出域の方
に流れることを助けることにより、そのような凝集を抑
制する。
めのアッセイに使われる組成物を提供し、ここで前記組
成物は約0.1重量%〜約60重量%のポリオール、約25重
量%までのタンパク質、約0.1重量%〜約10重量%のゼ
ラチン、および標的微生物に特異的に結合することがで
きる抗体−検出試薬を含んで成る。好ましい態様では、
該組成物は約2重量%までの界面活性剤、好ましくは非
イオン性界面活性剤、更に好ましくはTween(商標)20
とTriton(商標)X100から成る群より選ばれた界面活性
剤を更に含んで成る。
ルであり、そしてショ糖、ポリエチレングリコールおよ
びブドウ糖から成る群より選ばれ、より好ましくはショ
糖である。別の好ましい態様では、タンパク質は標的微
生物および標的微生物に特異的な抗体に対して非反応性
である不活性タンパク質であり、更に好ましくはウシ血
清アルブミン、他のアルブミンおよびカゼインから成る
群より選ばれる。更に別の好ましい態様では、ゼラチン
は高分子量ゼラチンであり、更に好ましくは魚鱗ゼラチ
ンを含んで成る。標的微生物特異的抗体に結合される検
出試薬は、好ましくは染色したポリスチレンまたはコロ
イド状金粒子のような無機ゾルである。
の検出用の側方流装置の試薬域に置くことができ、前記
装置が試薬域と検出域を有する側方流膜を含んで成るこ
とである。検出域は、標的微生物、該微生物に特異的な
抗体および検出試薬によって形成される複合体を結合す
ることができる固定化された結合相手を有し、該検出域
は試薬域の下流に置かれる。
はリステリア、腸管出血性大腸菌(EHEC)またはサルモ
ネラに特異的である。
方流装置または検出装置を提供する。側方流装置は、上
述したような組成物、典型的には約0.1重量%〜約60重
量%のポリオール、約25重量%までのタンパク質、約0.
1重量%〜約10重量%のゼラチンおよび標的微生物に特
異的に結合することができる抗体−検出試薬を含んで成
る組成物を含有する多孔質非吸収性パッドを含む試薬域
を有する側方流膜を含んで成る。前記多孔質非吸収性パ
ッドは、標的微生物と抗体−検出試薬との複合体の大き
さよりも大きいポアサイズを有する。側方流装置は試薬
域の下流に置かれた検出域も有し、前記検出域は標的微
生物と抗体−検出試薬との複合体を特異的に結合するこ
とのできる固定化された結合相手を含んで成る。
を吸収することができ且つ検出域の下流に置かれている
吸収性パッドを更に含んで成る。好ましくは、側方流膜
はニトロセルロースまたはナイロンを含んで成る。
法であって、標的微生物を含有する可能性のある試料
を、抗体−検出試薬が標的微生物と結合して標的微生物
と抗体−検出試薬との複合体を提供するのを可能にする
条件下で、側方流膜の試薬域に置かれた上述の組成物と
接触せしめることを含んで成る方法を提供する。次い
で、前記複合体は側方流膜に沿って下流の方に向かい、
該複合体に結合して結合型複合体を提供することができ
る固定化抗体を含む検出域へと移動する。次に、結合型
複合体を検出する。
溶液であり、方法は該試料を試薬域中に置かれた多孔質
非吸収性パッドに添加し、前記多孔質パッドは標的微生
物と抗体−検出試薬との複合体の大きさよりも大きいポ
アサイズを有し、移動前にデトリタスを野外試料から濾
過することを更に含んで成る。更に好ましくは、野外試
料は食物試料、環境試料、例えば土または水、および生
物学的液体試料から成る群より選ばれる。
施例および添付図面への参照によって明らかになるだろ
う。
ネルAは、該装置の試薬パッドへの試料の添加前の装置
を様式的な形で描く。パネルBは、試料が装置に沿って
下流の方に向かい検出域を横切って吸収性パッドに移動
した後の装置を様式的な形で描く。
置の側面図である。
生物の検出であって、診断装置の側方流膜に沿った標的
微生物(典型的には標的微生物−抗体−検出試薬複合
体)の移動を必要とする検出に向けられる。本発明は、
微生物が側方流膜に沿って移動している間、標的微生物
の凝集または他の会合を抑制することにより、そのよう
な検出を可能にする。
カプセル封入しそして安定化すると思われる組成物を提
供し、次いで前記カプセルを試薬域上で脱水することに
より、そのような凝集を抑制する。抗体は検出試薬、例
えば染色したポリスチレン粒子またはコロイド状金粒子
に取りつけられるか、または他の方法で標識される。次
いで、標的微生物を含む可能性のある試料を添加する
と、前記組成物と抗体が再水和され、抗体と標的微生物
の間の結合が可能になり、それによって抗体−検出試薬
−標的微生物複合体が形成される。次に、前記複合体
は、本発明の組成物によって、凝集することなく試薬域
から下流の方にそして側方流膜に沿って、前記複合体を
特異的に結合することができる固定化抗体が置かれてい
る検出域へと流れるのを助けられる。未結合の抗体は、
検出域から更に下流に置かれた吸収性パッドの方に進
む。
非吸収性パッドが試薬域に置かれている好ましい側方流
診断装置を提供することにより、そのような凝集を抑制
する。ガラス繊維パッドには、標的微生物に特異的な抗
体−検出試薬と組み合わせた本発明の組成物を含浸させ
る。含浸させたガラス繊維パッドは、試料(典型的には
診断装置への適用前に精製されていない野外試料であ
る)中に存在する望ましくないデトリタス、例えば食物
のカスまたは他の材料を除去する重要な濾過作用を提供
する。ガラス繊維パッドは有意な量の試料を受入れ、該
試料を濾過し、そして有意な量の試料または試料中の微
生物を保持する(例えば吸収する)ことなく該試料を側
方流膜へと放出する。ガラス繊維パッドは標的微生物よ
り大きいポアサイズを有し、好ましくは標的微生物より
も直径で500〜1000倍以上大きいポアサイズを有する。
側方流診断装置とともに使われる組成物を提供する。標
的微生物は好ましくは完全な微生物であるが、細胞破片
および/または溶解した細胞であってもよい。該組成物
は通常約0.1〜約60重量%のポリオール、典型的には約
1〜約40重量%のポリオール、好ましくは約2〜約15重
量%のポリオールを含んで成る。前記ポリオールは好ま
しくはサッカリドポリオールであり、更に好ましくはシ
ョ糖、ポリエチレングリコールおよびブドウ糖から成る
群より選ばれ、より好ましくはショ糖である。該組成物
はまた通常0〜約25重量%のタンパク質、典型的には約
0.1〜約10重量%のタンパク質、更に好ましくは約0.5〜
約2重量%のタンパク質も含んで成る。前記タンパク質
は標的微生物または抗体に対して非反応性である不活性
タンパク質であり、更に好ましくはウシ血清アルブミン
(BSA)、他のアルブミンおよびカゼインから成る群よ
り選ばれる。更に好ましくは該タンパク質はBSAであ
る。前記組成物はまた、通常約0.1〜約10重量%のゼラ
チン、典型的には約0.15〜約5重量%のゼラチン、更に
好ましくは約0.2〜約1重量%のゼラチンも含んで成
る。好ましくは、該ゼラチンは高分子量ゼラチン、例え
ば魚鱗ゼラチンである。好ましい態様では、本発明はピ
ロール、ピロリドンまたは他のピロール関連化合物を含
まない。
で、典型的には約2重量%まで、好ましくは約0.5重量
%までの界面活性剤も含んで成る。界面活性剤は好まし
くは非イオン性界面活性剤であり、更に好ましくはTwee
n(商標)20とTriton(商標)X100から成る群より選ば
れる。前記組成物の各成分が標的微生物に特異的な抗体
−検出試薬と一緒に混合された後、該混合物が診断装置
の試薬域に適用される(もちろん、所望であれば、成分
と診断装置は別の順序であってもよい)。
抗体、モノクローナル抗体、抗イディオタイプ抗体、そ
れらの断片、例えばF(ab′)2およびFab断片、並びに
組換え生産された結合相手を包含する。試薬域中に最初
に置かれる「抗体−検出試薬」を包含する抗体は、典型
的には、ポリクローナル抗体かまたはモノクローナル抗
体のいずれかであり、好ましくはポリクローナル抗体で
ある。更に、ポリクローナル抗体は好ましくは本発明で
の使用前にアフィニティーカラム精製される。そのよう
な抗体の製造は技術の現状で既知である。(例えば、An
tibodies:A Laboratory Manual, HarlowおよびLane編,C
old Spring Harbor Laboratory Press,1988を参照のこ
と;この参考文献および本明細書中に引用される他の全
ての参考文献は特別にその内容が参考として本明細書中
に組み込まれる。)適当なアフィニティー精製抗体は商
業的に入手可能でもある。例えば、リステリアに特異的
なポリクローナル抗血清はKirkegaard and Perry Labor
atories,Gaithersburg,Marylandから入手可能である。
マ、ウシ、ヤギ、ヒツジ、イヌ、ニワトリ、七面鳥、ウ
サギ、マウスまたはラットの免疫処置によって当業者が
容易に作製することができる。簡単に言えば、標的微生
物、または標的微生物に特異的に関連づけられた抗原を
使って、動物を免疫する。フロイト完全または不完全ア
ジュバントのようなアジュバントの使用により、あるい
はオボアルミンまたはアオガイヘモシアニン(KLH)の
ような別のタンパク質への結合により、着目のタンパク
質またはペプチドの免疫原性を増大させることができ
る。
することができる。(例えば、Monoclonal Antibodies,
Hybridomas:A New Dimension in Biological Analysis,
Plenum Press,Kennett,McKearnおよびBechtol編,1980;
並びにAntibodies:A Laboratory Manual,HarlowおよびL
ane編,前掲を参照のこと。)簡単に言えば、一例とし
て、ポリクローナル抗体の生産の場合と同様にして目的
動物を免疫する。あるいは、モノクローナル抗体の生産
に適当な試験管内免疫技術も技術の現状で既知である。
次いで抗体産生細部を不死のミエローマ細胞と融合せし
めて不死ハイブリドーマ細胞系を提供する。融合後、適
当な培地、典型的にはHAT培地(他の適当な培地も既知
である)を含む培養皿に細胞を入れる。約7日後、所望
の抗原を認識する抗体の存在を決定するために、生成し
た融合細胞またはハイブリドーマをスクリーニングする
ことができる。数回のクローン希釈と再アッセイの後、
着目のタンパク質に結合する抗体を産生するハイブリド
ーマを単離することができる。
の技術を使うこともできる。(例えば、Huse他,“Gene
ration of a Large Combinational Library of the Imm
unoglobulin Repertoire in Phage Lambda,"Science24
6:1275−1281,1989;Sastry他,“Cloning of the Immun
ological Repertoire in Escherichia colifor Generar
ion of Monoclonal Catalytic Antibodies: Construc−
tion of a Heavy Chain Variable Region−Specific cD
NA Library,"Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86:5728−5732,1
989;Alting−Mees他,“Monoclonal Antibody Expressi
on Libraries: A Rapid Alte−rnative to Hybridoma
s,"Strategies in Molecular Biology 3:1−9,1990;Lar
rick他,“Polymerase Chain Reaction Using Mixed Pr
imers:Cloning of Human Monoclonal Antibody Variabl
eRegion Genes From Single Hybridoma Cells,"BioThec
hnology 7:934−938,1989を参照のこと。) 一度適当な抗体が得られれば、当業者に周知である多
くの技術によりそれを単離または精製することができる
(Antibodies:A Laboratory Manual,HarlowおよびLane,
前掲を参照のこと)。
生物の存在下で標的微生物の株の全てを選択的に検出す
ることができる。更に、前記抗体は、好ましくは、非特
異的結合(これは偽陽性結果となる)に低寛容性で且つ
標的微生物を結合できないこと(これは偽陰性結果とな
る)が非常に低く好ましくは皆無の状態で、そのような
検出を行うことができる。
試薬は標識である。好ましくは、該標識は、標的微生物
に特異的に結合する抗体試薬を有意に妨害することなく
抗体に結合される。好ましい態様では、検出試薬は5nm
〜500nmの直径を有する染色したポリスチレン粒子また
は無機ゾルである。検出試薬がゾルである場合、検出試
薬は好ましくはコロイド状金粒子である。他の色素産生
試薬および別の検出可能標識は当業界で周知であり、あ
まり好ましくないが、本発明の或る観点での使用に適当
である。典型的には、標的特異的抗体が色素産生試薬に
取り付けられるために、複合体は検出可能であろう。し
かし、固体化抗体への抗体−検出試薬の結合が検出可能
現象に備えることもでき、または固相に結合した固体化
抗体または複合体が他の方法で標識されてもよい。標識
の例は米国特許第4,861,711号と米国特許第4,859,604号
に見つけることができる。
とができ、そして生存微生物であってもよいことであ
る。更に、標的微生物が細胞破片および/または溶解し
た細胞であることができることも本発明の特徴である。
野外または試料中に存在できる任意の単一細胞存在物も
許容できるが、標的微生物は好ましくは細菌である。例
えば、好ましい態様では、微生物は野外試料中に存在す
ることができる微生物、例えば酵母、細菌、カビ、真
菌、寄生生物またはウイルスを含んで成る。あるいは、
あまり好ましくないが、微生物は実際に細胞、例えば真
核細胞、たとえば赤血球、または動物からの組織細胞で
ある。好ましい試薬域中に置かれる多孔質材料の孔径
は、標的微生物の大きさに適応させるように選択され
る。
好ましい側方流診断装置を提供する。図1に描かれるよ
うに、側方流診断装置2は、通常は診断装置2の第一末
端のところまたはその近くに置かれた試薬域4を有する
側方流膜10を含んで成る。試薬域4に隣接して好ましく
は多孔質パッドまたは固定化抗体を含まない側方流膜10
の部分があり、次に標的微生物−抗体−検出試薬複合体
(この複合体は、ある態様では、抗体と結合した標的微
生物としても知られる)を結合することができる固体化
抗体を含んで成る検出域6がある。固定化抗体(捕捉抗
体としても知られる)は、典型的には側方流膜に結合さ
れるが、別の固相に結合されてもよくあるいはまた別の
方法で固定化されてもよい。好ましくは、側方流膜10
は、微生物の移動および/または伝達に適当なニトロセ
ルロース、ナイロンまたは同様な低吸収性の多孔質材料
のストリップである。側方流膜の孔は、存在する場合に
は、典型的には標的微生物よりも直径が約5〜10倍大き
い。あまり好ましくないが、側方流膜は非孔質、高吸収
性、非吸収性または吸収性であることもできる。ただ
し、そのような性質が標的微生物−抗体−検出試薬複合
体の側方流を妨害せず、且つ検出域6における標的微生
物の検出を妨害しないことを前提とする。
の外観を様式的な形で描いたものであり、試料は論理上
は試薬域4に添加される。図1のパネルBは、試料から
の液体が側方流膜10を横切って移動し、検出域6を通過
し、先の側方流膜10に沿って移動し、次いで吸収性パッ
ド8に吸収された後の装置を様式的に描いたものであ
る。
くは多孔質パッド12を含んで成り、その多孔質パッド上
で本発明の組成物と抗体−検出試薬が乾燥される。多孔
質パッド12は有意な量の試薬を受け止め、次いで試料を
濾過し、そして試料を側方流膜へと放出することができ
る。多孔質パッド12は、目の荒い織布もしくは不織布ま
たはメッシュであり、非吸収性である。あまり好ましく
ない態様ではあるが、吸収性材料のポアサイズが適当で
あり且つ得られる吸収性試薬域の完全飽和に十分な試料
があるならば、多孔質パッド12は吸収性材料であること
ができる。好ましくは、多孔質パッド12はガラス繊維パ
ッドである。試薬域4への多孔質パッド12の包含は、典
型的には横から見ると厚くなった診断装置を提供する
(図2)。特に多孔質パッドが非吸収性である時は、多
孔質パッド12は試料を側方流膜10に沿って試薬域4の下
流に置かれた検出域6の方に押し出すのを助ける頭部圧
力を提供することができる。
径よりも大きい直径のポアサイズを有する材料を含んで
成る。多孔質パッドのポアサイズは、まだ試料の濾過を
提供しながら標的微生物−抗体−検出試薬複合体の通過
に十分である。一般に、ポアサイズは標的微生物の直径
よりも直径が少なくとも約50倍大きく、典型的には直径
が約100倍大きく、好ましくは直径が約500倍大きく、更
に好ましくは直径が約1000倍大きい。例えば、標的微生
物が約0.3μm×1μmである場合、ポアサイズは好ま
しくは少なくとも50〜100μmである。検出装置の多孔
質パッド12(存在する場合)を含む試薬域4は、好まし
くは側方流膜の上に配置されるが、側方流膜の末端に取
り付けられてもよい。
検出域6の下流に照査域20が置かれる。照査域20は試薬
域4から検出域6を通って吸収性パッド8の方への材料
の通過を示す。好ましくは、照査域20は、試薬域4に予
め置かれた照査用色素産生試薬を結合することができる
対照抗体(または他の結合相手)を含んで成る。例え
ば、照査用色素産生試薬がアビジンであることができ、
対照抗体/結合相手が照査域20に固定されたビオチン化
BSAであることができる。照査域20での使用に適当な他
の物質は当業界で周知であり、例えばpH指示薬、水和指
示薬、および他の結合相手である。
に、検出装置が照査域20の下流に吸収性パッド8を更に
含んで成る。吸収パッド8は典型的には試料から液体を
吸収するスポンジとして働き、それにより、試料のより
多くの部分を試薬域4を経てそして検出域6を横切って
移動させる。検出装置の吸収性パッド8は、好ましくは
側方流膜の上に配置されるが、側方流膜の末端に取り付
けられてもよい。
の使用のためにケース14、例えばプラスチックケースの
中に封入される。ケース14は好ましくは試薬域に隣接し
てまたは接触して置かれた円錐開口部16を有する。円錐
開口部は、漏斗として試料を試薬域へ注ぐこと、並びに
所望により試料を計量することに備える。ケース14は検
出域6の近くに置かれた窓18をを更に含んで成り、それ
によって検出域6における目視観察と陽性または陰性結
果の検出に備える。この窓は照査域20の目視観察を可能
にしてもよく、または照査域20用の第二の窓があっても
よい。典型的には、そのような検出は目視により実施さ
れるが、反射計または当業界で既知の他の手段を使うこ
とにより検出を行ってもよい。
は適当である検出装置の多数の他の態様は、当業界で既
知でありそして例えば1988年4月25日に出願された英国
特許出願第2,204,398A号および米国特許第4,943,552号
に描写されている。
であって、標的微生物を含む可能性のある試料を含む溶
液を診断装置の試薬域に添加し、そして標的微生物に特
異的な抗体−検出試薬と上述の組成物を含有する混合物
と該試料とを接触させることを含んで成る方法を提供す
る。好ましくは組成物はショ糖、BSAおよび魚鱗ゼラチ
ンを含んで成る。好ましい態様では、本発明の組成物は
ピロール、ピロリドンまたは他のピロール関連化合物を
含まない。別の態様では、該組成物はTween(商標)20
またはTriton(商標)X100も含有する。該組成物の成分
を抗体−検出試薬と一緒に混合した後、その混合物が診
断装置の試薬域に適用される(成分と診断装置は所望で
あれば別の順序で混合してもよい)。
料、環境試料、例えば水または土を含有するかまたはそ
れから本質的に成る溶液である。あるいは、試料は体液
のような生物学的液体であってもよい。あまり好ましく
ない態様では、試料は実験室試料のように診断装置への
適用前に精製してもよい。試料と、該試料中に含まれる
可能性のある標的微生物に特異的な抗体−検出試薬を含
有する組成物とを接触させると、抗体−検出試薬と標的
微生物との間の結合が可能になる。
装置の試薬域内に置かれた多孔質非吸収性パッドに添加
することにより、試料を濾過する(特に試料が野外試料
である場合)ことを更に含んで成る。
能にし、次いで標的微生物−抗体−検出試薬複合体が試
薬域から出て、そして標的微生物−抗体−検出試薬複合
体に結合することができる固相結合型の固定化抗体を横
切って流れるのを可能にする。好ましくは、標的微生物
−抗体−検出試薬複合体は、試薬域と検出域の間の距離
の間は側方流膜に沿って運ばれる。
の存在が検出される。そのような検出は通常目視により
行われるが、反射計または当業界で既知の他の手段を使
うことにより検出を行ってもよい。
て、限定のつもりではない。
ロイド状金粒子の流れを考慮に入れて、きれいな容器の
中で次の成分を一緒に混合した。
の染色したポリスチレン粒子の流れを考慮に入れて、き
れいな容器の中で次の成分を一緒に混合した。
3μmの染色したポリスチレン粒子の流れを考慮に入れ
て、きれいな容器の中で次の成分を一緒に混合した。
分、抗体−診断試薬および照査試薬(アビジン)を混合
し、そして少なくとも50〜100μmのポアサイズを有す
るガラス繊維パッドに適用した。次いでこのパッドを減
圧下で高温にて乾燥した。
有する先細ペンを使って約8μmのポアサイズを有する
ニトロセルロースのストリップの検出域と照査域にそれ
ぞれ適用した。ニトロセルロースの検出域と照査域を風
乾した後、5%魚鱗ゼラチンを使うこと以外は当業界で
知られるようにしてニトロセルロースの残りの部位を不
可逆的にブロックした。次いでニトロセルロースを蒸留
水ですすぎ、乾燥させた。次いで乾燥したニトロセルロ
ースをスライドガラス上に置き、検出域に最も近い末端
のところでニトロセルロースストリップと重複するよう
に乾燥済試薬パッドを置いた。次いで照査域に最も近い
ニトロセルロースの末端のところで重複するようにクロ
マトグラフィー濾紙を置いた。
養試料を細菌増殖培地に添加し、一晩インキュベートし
た。試料溶液100μl〜250μlを実施例IVで調製した装
置の試薬パッドに添加した。試料の添加は吸収性パッド
とそれに付着した成分を再水和した。試料と再水和した
成分を含んで成る液体は試薬パッドから流れ出てニトロ
セルロースストリップを通ってクロマトグラフィー濾紙
から成る吸収性パッドの方に移動した。
物に結合し、抗体−診断試薬−標的微生物複合体を提供
した。検出域に到達すると、抗体−診断試薬−標的微生
物複合体は検出域中に固定化された捕捉抗体により結合
され、目視検出可能なシグナルを生じた。複合体形成し
なかった抗体−検出試薬と照査試薬は吸収性パッドの方
に移動し続けた。照査域に到達すると、照査試薬は対照
の結合相手(ビオチン化BSA)に結合し、照査域におい
て目視検出可能なシグナルを生成した。全ての未結合の
試薬は吸収性パッドへと更に移動した。試料が標的微生
物を含まなかった場合、可視シグナルは照査域に観察さ
れるが検出域では観察されなかった。リステリア、サル
モネラおよびEHECの各々を含む試料について陽性結果が
得られた。
Claims (25)
- 【請求項1】標的微生物を検出するためのアッセイに使
われる組成物であって、0.1重量%〜60重量%のポリオ
ール、25重量%までのタンパク質であってその標的微生
物及びその標的微生物に特異的な抗体に対して非反応性
であるもの、0.1重量%〜10重量%のゼラチン、および
前記標的微生物に特異的に結合することができる抗体−
検出試薬を含んで成る組成物。 - 【請求項2】前記組成物が界面活性剤を更に含む、請求
項1の組成物。 - 【請求項3】前記ポリオールがショ糖、ポリエチレン・
グリコールおよびデキストロースから成る群より選択さ
れる、請求項1の組成物。 - 【請求項4】前記タンパク質がウシ血清アルブミンおよ
びカゼインから成る群より選択される、請求項1の組成
物。 - 【請求項5】前記ゼラチンが魚鱗ゼラチンを含む、請求
項1の組成物。 - 【請求項6】前記抗体−検出試薬の前記試薬が染色した
ポリスチレンまたは無機ゾルを含む、請求項1の組成
物。 - 【請求項7】前記界面活性剤がTween 20(商標)および
Triton(商標)X100から成る群より選択される、請求項
2の組成物。 - 【請求項8】前記組成物が前記標的微生物の検出用の側
方流装置の試薬域に置かれ、ここで前記装置は前記試薬
域と前記試薬域の下流に置かれた固定化結合相手を有す
る検出域とを有する側方流膜を含む、請求項1の組成
物。 - 【請求項9】前記抗体−検出試薬がリステリア菌に特異
的である、請求項1の組成物。 - 【請求項10】前記抗体−検出試薬が腸管出血性大腸菌
に特異的である、請求項1の組成物。 - 【請求項11】前記抗体−検出試薬がサルモネラ菌に特
異的である、請求項1の組成物。 - 【請求項12】標的微生物の検出用の側方流装置であっ
て、側方流膜を含んで成り、前記側方流膜は(a)組成
物を含有する多孔質パッドを含んで成る試薬域であっ
て、前記組成物が0.1重量%〜60重量%のポリオール、2
5重量%までのタンパク質であってその標的微生物及び
その標的微生物に特異的な抗体に対して非反応性である
もの、0.1重量%〜10重量%のゼラチンおよび前記標的
微生物に特異的に結合することができる抗体−検出試薬
を含んで成り、前記多孔質パッドが前記標的微生物と前
記抗体−検出試薬との複合体の大きさよりも大きいポア
サイズを有することを特徴とする試薬域、および(b)
前記試薬域の下流に置かれた検出域であって、前記標的
微生物と前記抗体−検出試薬との前記複合体に特異的に
結合することができる固定した結合相手を含んで成る検
出域を有する、前記装置。 - 【請求項13】前記側方流膜上の液体を吸収することが
できそして前記検出域の下流に置かれる吸収性パッドを
更に含む、請求項12の装置。 - 【請求項14】前記多孔質パッドが非吸収性である、請
求項12の装置。 - 【請求項15】前記多孔質パッドがガラス繊維パッドで
ある、請求項12の装置。 - 【請求項16】前記側方流膜がニトロセルロースまたは
ナイロンを含む、請求項12の装置。 - 【請求項17】前記抗体−検出試薬がリステリア菌に特
異的である、請求項12の装置。 - 【請求項18】前記抗体−検出試薬が腸管出血性大腸菌
に特異的である、請求項12の装置。 - 【請求項19】前記抗体−検出試薬がサルモネラ菌に特
異的である、請求項12の装置。 - 【請求項20】標的微生物を検出する方法であって、 (a)前記標的微生物を含む可能性のある試料を、抗体
−検出試薬が前記標的微生物に結合して前記標的微生物
と前記抗体−検出試薬との複合体を形成するのを許容す
る条件下で、側方流膜の試薬域に置かれた組成物と接触
せしめ、ここで前記組成物は0.1重量%〜60重量%のポ
リオール、25重量%までのタンパク質であってその標的
微生物及びその標的微生物に特異的な抗体に対して非反
応性であるもの、0.1重量%〜10重量%のゼラチンおよ
び前記標的微生物に特異的に結合することができる抗体
−検出試薬を含んで成り; (b)前記複合体を前記側方流膜に沿って下流方向に、
前記複合体に結合して結合型複合体を提供することので
きる固定化抗体を含有する検出域へと移動させ;そして (c)前記結合型複合体を検出する ことを含む方法。 - 【請求項21】前記試料が野外試料を含む溶液であり、
そして前記方法が前記試料を前記試薬域中に置かれた多
孔質非吸収性パッドに添加し、ここで前記多孔質パッド
は前記標的微生物と前記抗体−検出試薬との前記複合体
の大きさよりも大きいポアサイズを有し、そして前記移
動の前に前記野外試料からデトリタスを除去することを
更に含む、請求項20の方法。 - 【請求項22】前記野外試料が食物試料、環境試料およ
び生物学的液体試料から成る群より選択される、請求項
21の方法。 - 【請求項23】前記抗体−検出試薬がリステリア菌に特
異的である、請求項20の方法。 - 【請求項24】前記抗体−検出試薬が腸管出血性大腸菌
に特異的である、請求項20の方法。 - 【請求項25】前記抗体−検出試薬がサルモネラ菌に特
異的である、請求項20の方法。
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