JP2698337B2 - Anti-villin monoclonal antibody that can be used for in vitro detection of malignant cells of gastrointestinal origin - Google Patents

Anti-villin monoclonal antibody that can be used for in vitro detection of malignant cells of gastrointestinal origin

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JP2698337B2
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Abstract

The invention relates to biologically pure human villin, characterised in that it essentially gives only a single band, with a molecular weight of 95 kD, while subjected to polyacrylamide gel electrophoresis, and characterised in that each COOH terminus comprises the following amino acid sequence: <IMAGE> The invention also relates to a peptide fragment of human villin, characterised in that it is recognised by antibodies which recognise biologically pure human villin, and to anti-villin antibodies.

Description

【発明の詳細な説明】 【0001】本発明は、ヒト消化管の腫瘍細胞における
悪性細胞の増殖の有無特に腺癌型細胞の増殖の有無をi
n vitro検出する方法で使用され得る材料要素、
特にヒト絨毛タンパク質に対する抗体好ましくはモノク
ローナル抗体に係る。 【0002】本発明は更に、種々の用途、例えばヒト絨
毛タンパク質を含む細胞抽出物からヒト絨毛タンパク質
を精製するために使用されたときのこれらモノクローナ
ル抗体の効果に及ぶ。 【0003】いくつかの高等真核細胞型を同定するため
及びこれらの細胞の種々の発生段階、特に分化段階の追
跡研究のために、特異的ラベルとして構造タンパク質の
検出を利用することは既に提案されている。公知のラベ
ルとして例えば、線維タンパク質例えばビメンチン、ケ
ラチン又は神経線維タンパク質があり、これらは幾つか
の細胞型の同定、胚形成時期から細胞分化の最終時期ま
での細胞の発生の研究及び環境培地に対する細胞の挙動
の研究に使用できる(E.LAZARIDES、Nature、283 、249
(1980) 及びR.MOLL等、Cell、31、11(1982))。 【0004】ケラチンはしばしば上皮細胞と非上皮細胞
とを識別し得る特に有効なラベルと考えられる。しかし
乍ら、この種の識別では、該当する上皮細胞の起源を必
ずしも明確に確定することはできないことが判明した。 【0005】しかし乍ら、幾つかの細胞型の起源を確実
に検出することの必要性は、多くの場合、例えば腫瘍細
胞の増殖を示す生物サンプルを検査する場合に、この増
殖の起源に存在する一次腫瘍細胞を同定するため又は消
化領域の癌を起源とする転移の存在を検出するため又は
転移癌に対する化学療法及びその他の療法の効果を確認
するために特に重要視されつつある。勿論、抗癌治療の
効果は疾患の一次原因たる腫瘍細胞の正確な同定とのつ
ながりが深い。 【0006】これらの観察は、( 臨床的に発見される癌
のうちの高い割合を占める) 消化器官起源又は腎臓起源
の腫瘍細胞の増殖又はこれら細胞から誘導された細胞の
増殖の検出好ましくは早期発見、特にこれら細胞の特有
ラベルの同定のために特に重要である。 【0007】従って本発明は特に、消化器官の粘膜特に
腸粘膜中に通常は存在し主な分化型が吸収細胞又は腸細
胞から構成される上皮細胞の幾つかの主要表現型を維持
した腫瘍細胞の検出に重要である。 【0008】本発明はまた、これら腫瘍細胞に担持され
るか否かにかかわりなく検出され得る特異的ラベルに係
る。 【0009】本発明の目的は特に、これらラベルが腫瘍
細胞特に該細胞の壊死の場合に該細胞から離脱し例えば
血管系に遊離されたときにもラベルを検出することであ
る。 【0010】本発明の範囲内で使用されるラベルは、絨
毛タンパク質の全部又は一部から構成される。絨毛タン
パク質は、通常は消化粘膜特に腸粘膜の絨毛組織中に存
在する分子量約95,000ダルトンのオーダのタンパク質で
ある。絨毛タンパク質はカルシウムイオンの存在下でア
クチンと結合し得る。 【0011】絨毛の種類毎にアミノ酸配列は若干異なっ
ているが機能特性は維持されている。今日まで公知の精
製技術ではニワトリ及びブタの絨毛タンパク質を実質的
に純粋な状態まで精製し得る。しかし乍らこれらの技術
ではヒト絨毛タンパク質を精製することはできない。 【0012】最もよく知られた絨毛タンパク質の1つは
ニワトリの絨毛タンパク質である。この絨毛タンパク質
は854 個のアミノ酸配列から形成されている。トリプシ
ン及びプロテアーゼV-8 を使用したタンパク質限定分解
によって所定箇所を切断し44Kd,51Kd 及び10Kdの断片を
得ることができる。絨毛タンパク質のマップ内でのこれ
ら断片の相対位置は、Paul MADSUDAIRA、MRC、Laboratory
of Molecular Biology、Cambridge 、U.K.及びJohn GLE
NNEY等、J.B.C.、1981、256 、8156-8161 によって以下
のごとく確認されている。 【0013】 【表1】 【0014】ニワトリの絨毛タンパク質のCOOH末端のア
ミノ酸配列(779−854)即ち「ヘッド部」(「ペプチドH
P」)は以下の式で示される。 【0015】 【化3】【0016】一般的に絨毛タンパク質は、特に分化終期
に到達した腸細胞の表面で観察される腸内腔壁の刷毛縁
中に存在する。微絨毛は腸細胞の分化終期の集合オルガ
ネラである。絨毛タンパク質は特に微絨毛の軸方向微線
維束中に局在している。絨毛タンパク質は、細胞骨格の
構成に寄与している。凍結切片を免疫蛍光で検査する
と、絨毛タンパク質が腸内壁に露出する円柱を形成する
細長い細胞の頂端に存在し、また腎臓の近位尿細管細胞
の近傍にも存在することを確認した。いずれの場合も絨
毛タンパク質の存在領域は該当細胞の刷毛縁と一致す
る。しかし乍ら、その他の種々の上皮の別の種々の絨毛
が極めて組織化された刷毛縁を持たないときは絨毛タン
パク質は検出されなかった(A.BRETSCHER 等、Exp.Cel
l.res.135、213 (1981)又はA.LISSの著書Membrane in
Growth and Development(成長及び発生中の膜)、New
York(1982)、pp.89 −105 に所収のH.REGGIOの論
文)。 【0017】更に、絨毛タンパク質が刷毛縁の形成より
かなり早い発生早期の腸細胞中に存在することも確認さ
れた。 【0018】本発明は、2つの知見により得られたもの
である。絨毛タンパク質は消化管の組織腫瘍形成中、特
に最も頻繁な癌の形態の1つたる結腸の癌、及び幾つか
のタイプの腎臓癌においては実質的に組織的に検出可能
な状態で維持されるが、その他の器官(肝臓、卵巣、肺
等)に局在する組織の初期癌化から生じる一次腫瘍細胞
中では決して検出されない。 【0019】更に、絨毛タンパク質は、消化管部の腫瘍
細胞の全ての発生箇所で腫瘍形成の早期及びより遅い時
期に、該当細胞の分化状態にかかわりなくin vivo 検出
可能である。 【0020】生物サンプル中の最初から消化管部で形成
された腫瘍細胞及び/又は該腫瘍細胞の誘導体をin vit
ro検出することを主目的とする本発明における検出方法
の特徴は、この生物サンプルを絨毛タンパク質に対する
特異的アフィニティをもつか又はこのタンパク質をコー
ドする遺伝子を認識する試薬と接触させることである。 【0021】本発明における検出方法は、消化器官起源
の腫瘍細胞又は消化器官もしくは腎臓起源の一次細胞の
影響によって生物体の別の部分に後で形成された腫瘍細
胞を内包する全ての生物サンプル、又は該細胞の壊死の
場合に絨毛ラベルを含む種々の腫瘍細胞の分解産物を内
包する全ての生物サンプルに適用し得る。この生物サン
プルは、いかなる形態でもよく例えば、生検により得ら
れた組織もしくは固体腫瘍の断片、又は悪性細胞もしく
は該細胞由来の断片を運ぶ液体生物サンプル例えば全血
もしくは血清である。 【0022】本発明の実施態様によれば、本発明におけ
る検出方法で使用される試薬は、ヒト絨毛タンパク質特
にそのCOOH末端部のアミノ酸配列をコードする領域を含
む配列をもつDNA から構成される。 【0023】本発明の別の実施態様によれば、検出方法
で使用される技術は免疫技術であり、絨毛に特異的アフ
ィニティをもつ試薬は絨毛タンパク質を認識し得る抗体
から構成される。 【0024】これら抗体は、公知の任意の方法で抗体自
体がラベルされるか、又は、絨毛タンパク質もしくは絨
毛タンパク質含有細胞に固定された状態のときはラベル
免疫グロブリン又はその他のラベルタンパク質(例えば
Staphylococcus aureus のプロテインA )で認識され得
る。 【0025】特に適当な技術は、後述する試験で使用さ
れ前記のごとき結果を示す技術である。 【0026】本発明の目的はまた、腸細胞又は同類細胞
の微絨毛の箇所の絨毛タンパク質を検出するための新規
な特異的手段を提供することである(勿論新規な手段の
使用は、本発明における検出方法に必ずしも限定されな
い)。 【0027】本発明の1つの特徴によれば、これら手段
は、ヒト絨毛タンパク質の完全mRNAに対応するDNA 又は
ヒト絨毛タンパク質のアミノ酸配列をコードする領域を
含むヌクレオチド配列をもつDNA 断片から構成され、絨
毛タンパク質をコードするヌクレオチド配列と特異的に
ハイブリダイズし得る。 【0028】本発明は特に、ヒト絨毛タンパク質の完全
mRNAに対応するDNA 又はヒト絨毛タンパク質のCOOH末端
のアミノ酸をコードするヌクレオチド配列の少なくとも
一部を含むcDNA断片を前記方法において使用することを
目的とする。このヌクレオチド配列と、コードされたア
ミノ酸の対応配列とを以下に示す。 【0029】 【化4】 【0030】使用されるヌクレオチド配列は、ヒト絨毛
タンパク質をコードするmRNA又はDNA を検出するための
プローブとして使用される。 【0031】この種の検出に適したプローブは、放射性
元素によってラベルされるか又は被検mRNAもしくはDNA
を含む調製物とのハイブリダイズ状態で認識可能な別の
物質によってラベルされるのが有利である。 【0032】従来技術によれば、これらプローブと被検
細胞を含む生物サンプルとを、プローブのヌクレオチド
配列と被検サンプルに任意に含まれる相補的配列とが任
意にハイブリダイズできる条件下に接触させるか又は核
酸と直接接触させる。 【0033】200 塩基対のインサートを含むプローブを
使用して検出の再現性を試験した。 【0034】本発明の範囲に包含された新規な産生物を
構成するこれらヌクレオチドプローブの別の特徴は、腸
細胞及び/又は絨毛タンパク質発現細胞の各分化状態及
び腎臓又は腸起源の細胞の種々の成熟時期における絨毛
タンパク質のmRNAの発現を研究するために使用されるこ
とである。 【0035】従って、得られたプローブはヒト遺伝子バ
ンクから単離された絨毛タンパク質の遺伝子の数、組織
及び構造を決定し得る。 【0036】本発明によれば、ヒト絨毛タンパク質の末
端をコードするヌクレオチド配列の単離は以下の手順で
行なわれる: −公知技術を使用し絨毛タンパク質を発現する細胞系か
ら完全mRNA(メッセンジャーRNA)を調製する、 −cDNA( 相補的DNA)バンクを構築する、 −インサートによってコードされたタンパク質を発現し
得るベクターにcDNAを挿入する、 −得られた組換体ベクターによって細菌株を形質転換
し、次に細菌中で所望タンパク質を発現させ得る条件を
設定する、 −絨毛タンパク質を認識し得る抗体を用いて絨毛タンパ
ク質の特異的クローンを含む組換体クローンを選択す
る。 【0037】cDNAバンクの構築段階は、挿入cDNAによっ
てコードされたタンパク質を発現し得るベクターを用い
て行なわれる。 【0038】特に発現効率が高いので特に有利なクロー
ニングベクターは、pEX タイプのプラスミドから構成さ
れる。かかるプラスミドは、Stanley及びLuzio によって
EMBOJournal、1984 、3 、1429−1434に記載されてい
る。この文献には、λバクテリオファージのプロモータ
PR のコントロール下で発現する融合遺伝子cro-lacZを
含むプラスミドが記載されている。この発現は温度によ
って誘発される。 【0039】複数の非反復制限部位を含むポリヌクレオ
チドが読取りフェーズの各々に挿入され、また転写及び
翻訳の終結シグナルも挿入される。非反復制限部位に挿
入されたcDNAは、対応するハイブリッドタンパク質cro-
βgal-ペプチドの形態で極めて高い効率で発現される。
このハイブリッドタンパク質の利点は、難溶性であり従
って細菌中でのタンパク質分解のおそれが少なく特異的
抗体によって容易に免疫学的に検出されることである。 【0040】対応するポリペプチドを細菌中で発現させ
るべく、遺伝子cro-lacZに対して正しい配向でcDNAを挿
入するために、P.N.A.S.USA 、1983、80、31-35 に記載
のHelfmann等の技術に従ってcDNAの両端に種々のリンカ
ーを順次付加するプロトコルを使用する。使用されるリ
ンカーは BamH I及びSal I切断部位に対応する。 【0041】これら組換体プラスミドは、従来技術を用
い所望配列によってタンパク質を発現させる細菌株を形
質転換するために使用される。 【0042】細菌株としては大腸菌株が好ましく、リプ
レッサーcro の対立遺伝子cIts857を含む大腸菌pop2135
が特に好ましい。 【0043】このようにして細菌株中で高レベルの絨毛
タンパク質を発現する細胞のmRNAに対応し約30,000のク
ローン組換体を含むcDNAバンクが得られる。 【0044】ハイブリッドタンパク質の発現は温度によ
って誘発され得る。従って遺伝子cro のリプレッサーが
失活する温度で処理する。このためには、室温より高
温、特に40〜42℃のオーダの温度で菌株を約2時間イン
キュベートするだけでよい。 【0045】従来技術による細菌の溶解及びタンパク質
の再生後に回収されたクローンを免疫スクリーニングに
よって選択する。 【0046】好ましくは先ず少なくとも1種類の抗絨毛
タンパクポリクローナル抗体によってcDNAバンクのスク
リーニングを行う。1種類以上のポリクローナル抗体と
特異的に反応するクローンをCOOH末端エピトープに対す
る少なくとも1種類のモノクローナル抗体を用いて再度
スクリーニングする。 【0047】完全ブタ絨毛タンパク質に対する抗ポリク
ローナル抗体の如き抗絨毛ポリクローナル抗体と、分子
のCOOH末端に位置するエピトープを認識し得る1 種類以
上のモノクローナル抗体とを順次使用すると十分なスク
リーニングが行なわれる。 【0048】ポリクローナル抗体によるスクリーニング
後に、別のポリクローナル抗体特にニワトリの絨毛タン
パク質のCOOH末端断片に対するポリクローナル抗体を用
いた二次スクリーニングを行なうのが有利である。 【0049】本発明の目的は特に、完全絨毛タンパク質
に対するポリクローナル抗体とニワトリの絨毛タンパク
質のCOOH末端ペプチドに対するポリクローナル抗体とCO
OH末端エピトープに対する2種類のモノクローナル抗体
とに発現産物が特異的に反応することを特徴とするヒト
絨毛タンパク質に対応するcDNAを含有するクローンを提
供することである。 【0050】本発明の目的はまた、ポリA 配列とポリア
デニル化部位とをもつインサートを含む絨毛タンパク質
に対応するcDNAを含有するクローンを提供することであ
る。 【0051】本発明の別の特徴によれば、絨毛タンパク
質の検出に使用される手段はモノクローナル抗体から構
成される。 【0052】本発明のこの特徴は、異なる種に由来する
絨毛タンパク質がモノクローナル抗体に接近し得る共通
エピトープをもち、モノクローナル抗体を分泌するハイ
ブリドーマの産生に適したミエローマ細胞と融合した脾
臓細胞をもつ動物の免疫化に使用された特定の絨毛タン
パク質を特異的に認識するだけでなくヒトを含むその他
の種に由来する絨毛タンパク質をも特異的に認識すると
いう事実に基づく。 【0053】従って本発明の好ましいモノクローナル抗
体の特徴は、以下の特性をもつことである。 【0054】−精製ブタ絨毛タンパク質を認識する(ウ
ェスターンブロッティング使用)、 −ニワトリの絨毛タンパク質を認識する(ウェスターン
ブロッティング使用)、 −ヒト結腸の腺癌HT29に由来する系の細胞抽出物の絨毛
タンパク質を認識する(ウェスターンブロッティング使
用)、 −免疫細胞化学的にラット絨毛タンパク質を認識する
(ホルムアルデヒド固定されたラット腸粘膜の凍結(ク
リオスタット)切片使用)。 【0055】前記定義に対応するモノクローナル抗体の
うちの好ましいモノクローナル抗体は、ニワトリ絨毛タ
ンパク質の「ペプチドHP」に含まれるエピトープをも認
識する。予め単離されたペプチドHPとペプチドHPをまだ
含む51Kdのペプチドとの双方に対して認識が可能であ
る。該抗体はニワトリ絨毛タンパク質のペプチド44Kd又
はペプチド44Kdのいずれをも認識しない。 【0056】本発明の好ましい抗体は、更に、タンパク
質HPを特にドデシル硫酸ナトリウム(SDS) で処理後の再
生状態で認識でき、また、絨毛タンパク質を含有する上
皮細胞で認識し得る。この結果は、ペプチドHPによって
担持されるエピトープが細胞培地中の他のタンパク質に
よって遮蔽されていないことを示す。 【0057】本発明は当然、これらモノクローナル抗体
を分泌するハイブリドーマに係る。これらハイブリドー
マを産生するための有利な技術、特に精製ブタ絨毛タン
パク質に対する免疫マウスの脾臓細胞と適当なミエロー
マの細胞との融合によるハイブリドーマ産生技術につい
ては後述する。この方法で得られた好ましいハイブリド
ーマ(BD-D2C3株) はパリ、パスツール研究所のCollecti
on Nationale des Cultures de Micro-organismes(CNC
M) に1985年4月29日に受託番号no.I-440で寄託され
た。 【0058】本発明の有利な特徴によれば、抗体の形成
に使用される免疫物質は細菌中で多量に発現し得る。こ
の免疫物質は、ヒト絨毛タンパク質のDNA 又はその断片
に対応する前記ヌクレオチド配列によってコードされる
ペプチドに対応する。 【0059】従来技術によって、ペプチドを動物に注射
し、抗血清を回収し、次に必要な場合、例えばアフィニ
ティクロマトグラフィーによって抗血清から抗体を回収
する。抗体産生のこの変形例は、上記に定義したcDNA断
片によってコードされた領域HPが最も免疫原性で最も絨
毛タンパク質に特異的な領域であるときに一層有利であ
る。 【0060】絨毛タンパク質の相補的DNA 又は該DNA の
断片のヌクレオチド配列によってコードされるタンパク
質はまた、競合ラジオイムノアッセイ(直接ELISA 法又
は競合ELISA 法)を行うための抗原ソースを構成する。 【0061】しかし乍ら勿論、同じ免疫原性配列を含む
その他の全ての免疫物質を使用し得る。例えば、ペプチ
ドHP自体を使用してもよく、場合によっては免疫特性を
強化するために子牛血清アルブミンのごときキャリャー
分子に予めグラフト重合されたペプチドHPを使用しても
よい。 【0062】本発明の好ましいモノクローナル抗体を入
手できればペプチドHPの特性的エピトープ領域を定義し
得ることも当業者に明らかであろう。より正確に同定す
るためには、特に、以下の段階を含む方法を使用すると
よい。 【0063】−ペプチドHP(又は所望エピトープを含む
と推定できるペプチドHPの部分)をコードするポリヌク
レオチド配列を合成する、 −絨毛タンパク質のCOOH末端をコードするヌクレオチド
配列を含む前記に定義した前記プラスミドを前記配列の
外部の制限部位のところで直線化する、 −酵素Bal31 の如きエキソヌクレアーゼによって直線化
プラスミドを調整的トリミングする、 −DNA リガーゼによってプラスミドを再環化する、 −対応プラスミドによってそれ自体形質転換できかつプ
ラスミドに内包されるインサートを発現し得る適当な微
生物を形質転換する、 −この微生物の発現産物と該当抗体とを再度接触させ
る。 【0064】再環化された最終プラスミドによって形質
転換された前記微生物の発現産物中で前記免疫原性ペプ
チドの検出が消滅するまで上記処理サイクルを繰り返
す。 【0065】方法の各サイクルの終期、特に中間再環化
プラスミドの認識能力を消滅させる最終トリミング処理
の以前及び以後のプラスミドの末端部分の配列決定のと
きに、この最終トリミング処理中に除去されたヌクレオ
チド配列によってコードされるペプチドの箇所にエピト
ープを配置することが可能である。即ち、当業者にとっ
て前記抗体を入手することは、該エピトープを含む化学
的に定義されたペプチド配列を入手したことと等価であ
る。 【0066】本発明はまた、上記に定義した好ましいモ
ノクローナル抗体と反応でき且つポリアクリルアミドゲ
ル電気泳動特にSDS-PAGE試験で実質的に1つのバンドだ
けを生じる生物学的に実質的に純粋なヒト絨毛タンパク
質に係る。 【0067】即ち、ヒト絨毛タンパク質は、ヒト腸細胞
溶解物、特に適当な洗浄剤を含む水溶液で処理し前記モ
ノクローナル抗体を用いて精製したヒト腸細胞溶解物か
ら抽出され得る。この種の精製方法では、アフィニティ
クロマトグラフィー処理に適応するように好ましくは固
体支持体に固定されたモノクローナル抗体を使用するの
が有利である。例えば、スエーデンのPHRMACIA A.G. に
よって商標SEPHAROSEとして市販されている三次元網目
状構造のアガロースの網にモノクローナル抗体を例えば
シアノゲンブロマイド法で固定する。 【0068】従って本発明は特に、ヒト絨毛タンパク質
を分離するために、該絨毛タンパク質を含む溶液を前記
モノクローナル抗体を含むアフィニティカラムと接触さ
せてヒト絨毛タンパク質を選択的に固定し、次にグリシ
ンベースのpH2 〜4 の酸性バッファ又はメチルアミンベ
ースのpH11の塩基性バッファによる抗原抗体複合体の溶
解によってヒト絨毛タンパク質を回収し、次に酢酸アン
モニウムバッファに透析する方法に係る。 【0069】勿論本発明はまた、ヒト絨毛タンパク質断
片から成るより小さい分子量のポリペプチドに係る。断
片が特異的部位のポリペプチド切断酵素によるヒト絨毛
タンパク質の切断によって得られることは当業者に明ら
かであろう。かかるタンパク質として例えば、先ず、ト
リプシン即ちStaphylococcus aureus V8のプロテアー
ゼ、アルファキモトリプシン、BOEHRINGER社により市販
のマウスの顎下腺プロテアーゼ、前記ペプチドGly-Pro
及びGly-Ala 等を特異的に認識するVibrio alginolyti
-cus chemovar iophagusのコラゲナーゼがある。 【0070】ヒト絨毛タンパク質又はその断片から製造
され得る任意に種特異的なハイブリドーマ及びモノクロ
ーナル抗体も本発明の一部を構成することが理解されよ
う。 【0071】 【実施例】本発明の別の特徴及び利点は、ヒト絨毛タン
パク質の検出、ハイブリドーマ及びモノクローナル抗体
の産生及び試験で使用される特定条件の例を示す以下の
記載より明らかにされるであろう。 【0072】またヒト絨毛タンパク質のcDNA部分を含有
するクローンの作成方法も記載する。 【0073】実施例1:ヒト絨毛タンパク質の検出 消化部又は腎臓部と生物体のその他の部とに由来する腫
瘍細胞及び非腫瘍細胞の増殖の種々の時期の絨毛タンパ
ク質の発現を検査した。BROWN 及びFARQUHAR、Cell、3
6、295(1984) に記載の技術で該当組織を採取し凍結し
固定して切片(凍結切片)を調製した。 【0074】−25℃で5mm厚の切片を得、ポリリジンで
被覆したガラスプレートに載せた。0.2 %のゼラチンを
含む生理食塩水リン酸バッファ(PBS-ゼラチン)溶液に
浸漬した後に、絨毛タンパク質を検出すべくPBS-ゼラチ
ン中に1/800 に希釈したウサギ抗絨毛タンパク抗血清50
mlを含む溶液で切片を処理し、湿潤室で室温で25分間イ
ンキュベートした。 【0075】次にPBS-ゼラチン中で切片を10分間ずつ3
回洗浄した。 【0076】次にローダミン(オランダのNordic Immun
ological Laboratories の製品)でラベルしたウサギ抗
IgG を添加し、これら抗IgG の存在下に切片を室温で25
分間インキュベートした。次に切片をPBS-ゼラチン中で
完全に洗浄し、Plan Neo-fluar オイルに浸漬したレンズ
と1組の適当なフィルターとを備えた蛍光顕微鏡(ZEIS
S 光顕微鏡)で検査した。 【0077】コントロール組織及び他の起源の腫瘍細胞
についても同様に処理した。 【0078】以下の結果が観察された。 【0079】組織が結腸の腺癌に由来するとき、12のサ
ンプルのうちの11のサンプルが絨毛タンパク質の発現の
陽性を示した。他の起源のヒト腫瘍、例えばリンパ腫特
に腸間膜結節リンパ腫及び膵臓、食道等の転移又はそれ
以外の原因による他の起源の種々のタイプの癌腫はタン
パク質を発現しなかった。 【0080】観察の結果一般的に、処理された腫瘍の一
次腸起源と絨毛タンパク質の発現との間に緊密な相関関
係があることが判明した。明らかに別の起源の腫瘍に対
して行なった多数の試験では、実質的に全部の場合にタ
ンパク質の発現が陰性であった。 【0081】注目すべきは、腸起源の組織においては、
該細胞の増殖程度にかかわりなく絨毛タンパク質が常に
観察されることである。 【0082】前記の試験ではポリクローナル抗体を用い
た。CNCMに寄託した好ましいモノクローナル抗体を使用
するとより明白な結果が得られた。 【0083】これらモノクローナル抗体を分泌するハイ
ブリドーマの単離条件の例を以下に記載する。また、EL
ISA タイプの免疫試験によって絨毛タンパク質の有無を
診断するための好ましい検出条件の与え方についても以
下に記載する。 【0084】実施例2:絨毛タンパクに対するモノクロ
ーナル抗体の調製 (A) 免疫化プログラムBalb/C o マウス:6〜8週齢 −抗原:精製ブタ絨毛タンパク質(10mg /ml)(SDS の
存在下にポリアクリルアミドゲル(10%)電気泳動後の
分子量95Kdのタンパク質の均質バンド)、10mM イミダ
ゾール、75mM HCl 、1mM EGTA 、0.1M DTT 、50 %グリ
セロール。 【0085】−プログラム 初日:50/50 エマルジョン(PBS-フロインド完全アジュ
バント)中の50μgの純粋絨毛タンパク質のIP(腹腔
内)注射、 14日:50μgの絨毛タンパク質(PBS-フロインド不完全
アジュバントエマルジョン中)のブースターIP注射、 21日:50μgの絨毛タンパク質(PBS-フロインド不完全
アジュバントエマルジョン中)のブースターIP注射、 28日:PBS に溶解した20μgの絨毛タンパク質のIM(筋
肉内)注射、 29日:PBS に溶解した10μgの絨毛のIV(静脈内)注
射、 32日:融合。 【0086】(B) 融合 (I) 親細胞 (a)ミエローマ細胞 Sp2/O-Ag14系(8 Azaguanine耐性)、DMEM10%FCS 培地
中の無菌培養物。 【0087】(b)脾臓細胞 起源:ブタ絨毛タンパク質に対する超免疫マウスBalb/C
の脾細胞。 【0088】(II)Kohler G.及びMilstein C. による細
胞融合方法(所定特異性をもつ抗体を分泌する融合細胞
の連続培養物、Nature、1975、256 、495) −無血清DMEM培地中の50%のポリエチレングリコー
ル溶液(PEG1000-Merck9729)の存在下に無菌条件下の無
血清DMEM培地中で融合させる。2種類の親細胞の計数後
に、培養中のミエローマ細胞の懸濁液を脾臓細胞の懸濁
液に1:5 の割合で混合する。 【0089】−2分30秒間接触させる。 【0090】−完全DMEM培地で希釈してPEG の作用を停
止させる。 【0091】−選択DMEM-HAT培地に細胞懸濁液を最終的
に希釈(2×105 細胞/ml)する。 【0092】−1mlのウェルを含むCOSTAR24穴に分配(C
OSTAR Tissue Culture Cluster 24 、Cat.No.3524 、CO
STAR 205 Groadway 、Cambridge 、Ma、USA)。 【0093】(III)クローンの選択 ブタ精製絨毛タンパク質に対する抗体の分泌能力によっ
てクローンを同定する。 【0094】(C) 選択方法 (I)ELISA試験:この試験では融合後の培養物上清中の
抗絨毛タンパク質モノクローナル抗体を証明し得る。 【0095】−抗原の固定:支持体(ELISAプラーク) に
抗原を固定する。濃度:50mM 、pH8 のリン酸カリウムバ
ッファ中に5μg/ml。 【0096】4℃で1晩維持。 【0097】−飽和:PBS-Tween20-BSAで飽和。 【0098】−インキュベーションI:非希釈ハイブリ
ドーマ上清と共に4℃で3時間。 【0099】−インキュベーションII:βガラクトシダ
ーゼでラベルしたマウス抗IgG と共に4℃で2時間。 【0100】各段階間の洗浄にはいずれも0.1 %のPBS-
Tween20 を用いる。 【0101】−基質:0.1M 、pH7.0 のリン酸バッファ、
10-3M MgSO4 、2×10-3M MnSO4 、2×10-3M 無水トリ
トリプレックス(Tritriplex)マグネシウム(Merck8409)
中のo-ニトロフェニル- β- ガラクトピラノシド(Sigma
N11-27)。 【0102】読取り:414nmでのOD(光学密度)読取り。 【0103】バックグラウンドノイズのODの10倍のODを
与えるハイブリドーマ上清をもつクローンを選択した。 【0104】(II)Western Blotting (Burnette.Anal.B
iochem.1981、 112、195-203 ) この試験によって、ELISA 試験の陽性クローンのうちで
ヒト絨毛タンパク質とニワトリ絨毛タンパク質とを同時
に認識し得るブタ抗絨毛モノクローナル抗体を分泌する
クローンを選択し得る。 【0105】種々の試験段階 (a) ニワトリの腸粘膜の細胞抽出物と絨毛タンパク質を
発現するHT29系(ヒト結腸の腺癌)の細胞抽出物とをポ
リアクリルアミドゲルで電気泳動にかける。 【0106】(b) ポリアクリルアミドゲルで分離された
タンパク質をニトロセルロース紙に電気転移する。 【0107】(c) 細胞タンパク質が転移されたニトロセ
ルロース紙を、ELISA で予め選択したハイブリドーマ上
清と共に4℃で1晩インキュベートする。 【0108】(d) ペルオキシダーゼでラベルしたマウス
抗IgG と共に室温で1時間インキュベートする。 【0109】(e) 基質: −10mgの四塩酸ジアミノベンジジン、 −20mlpH7.6 の0.1M TrisHCl、 −0.2ml の1%H2 2 。 【0110】各段階間の洗浄にはいずれも新生子ウシ血
清-PBS-Triton X100を用いる。 【0111】(f) 陽性反応:抗原- モノクローナル抗体
反応が生じると、栗色バンド(分子量95Kd)が速やかに
出現する。 【0112】(D) 選択ハイブリッドのクローニング −限界希釈法:ウェルの底部に結合したマクロファージ
(4週齢のBalb/Cマウス起源)に(96ウェルのプラーク
の)ウェル当たり1つの細胞が分布するように陽性クロ
ーンを選択培地に希釈する。 【0113】条件調整した選択培地を添加する。 【0114】−前記方法によって陽性クローンを選択す
る。 【0115】−必要に応じて再クローニングする。 【0116】(E) 腹水の調製 −4〜5日以前にPRISTANE(Aldrich、2,6,10,14-テトラ
メチルペンタデカン) を注射しておいたマウスに選択ク
ローンを注射する。 【0117】−マウス当たり1〜2×106 の細胞を注射
する。 【0118】−10〜15日後に増殖したクローン細胞を含
む腹水をマウスから回収する。 【0119】腹水の抗絨毛モノクローナル抗体価は1mg
/mlより高い。−選択クローンの凍結は10%FCS-5%DM
SOのDMEM培地中で行なう。 【0120】−176 ℃の液体窒素中で保存する。 【0121】絨毛タンパク質定量のための直接ELISA 法精製IgG の吸着:一定濃度の腹水BD-D2C3 からELISA
プラークに吸着させる。 【0122】イオン交換クロマトグラフィー(DEAE-Tris
アクリル) 及びヒドロキシアパタイトカラムによって抗
体を精製した。 【0123】所定濃度まで濃縮する。 【0124】37℃で2時間次に4℃で1晩インキュベー
トする。 【0125】0.1 %のPBS/Tween20 で洗浄する。 【0126】−プラークの飽和 PBS/0.1 %のTween20/0.4 %のBSA の存在下に30分間イ
ンキュベートする。 【0127】−抗原の添加 0.4 %BSA の存在下で精製絨毛タンパク質の濃度範囲は
5μg/mlから1又は0.1ng/mlに減少する。 【0128】4℃で3時間インキュベートする。 【0129】0.1 %のPBS/Tween20 で洗浄する。 【0130】−精製IgG の添加:βガラクトシダーゼと
結合した、絨毛タンパク質に対するウサギポリクローナ
ル抗体血清から精製されたIgG を添加する。 【0131】4℃で2時間インキュベートする。 【0132】0.1%のPBS/Tween20 中で洗浄する。 【0133】−ガラクトシダーゼの検出 20mlのpH7 の0.1Mのリン酸緩衝バッファ、10-3M のMgSO
4 、2×10-4M のMnSO4 、2×10-3M のEDTA(Merck840
9) 中の4m/mlの溶液を用いて20mgのp-ニトロフェニル-
β-D- ガラクトピラノシドを添加する。 【0134】37℃でX 時間インキュベートする。 【0135】414nm での光学密度を読取る。 【0136】実施例3:ヒト臨床観察 細胞抽出物中の極めて少量(全タンパク質1mg当たり0.
5ng )の絨毛タンパク質を検出し得る感度をもつ後述の
ELISA 試験を使用して血清中の絨毛タンパク質の定量可
能な量を検出するための測定を行なった。即ち、絨毛タ
ンパク質は、消化管の健常細胞及び腫瘍細胞によって発
現される細胞内タンパク質なので、ある種の病理的及び
生理的状態では絨毛を含む細胞の壊死によって絨毛タン
パク質が血管系に遊離されることが判明した。 【0137】供血集団(n=190)に関する検査によれば、
大多数の血清(n=168)中で絨毛タンパク質が検出されな
いことが判明した。しかし乍ら、少数の個体(n=15) に
は検出可能量の絨毛タンパク質(5〜10ng/ml)が存在
した。この値を病理徴候でない絨毛タンパク質のレベル
と考えてよい。最後に、幾つかの個体(n=7)では基底値
より高いレベルの絨毛タンパク質(50〜 100ng/ml)が
存在した。所謂「健常」なこれら個体( 3.6%)に対し
ては消化管の付加的臨床検査(ファイバースコープ、コ
ロノスコープ)を行なわなかった。 【0138】種々の胃腸病理に関して得られた結果を以
下の表にまとめる。 【0139】患者の血清中に検出可能量の絨毛タンパク
質が検出される疾患:消化管の悪性病理 : −結腸癌、 −胃癌。 【0140】消化管の良性病理: −絨毛腫、 −Crohn 病、 −出血性直腸結腸炎、 −十二指腸球潰瘍、胃潰瘍、食道潰瘍。 【0141】注目すべきは消化器官の多腺腫(ポリー
プ)は逆にこのタンパク質を血液中に遊離しないことで
ある。 【0142】この検査から更に幾つかの結論が得られ
る。 【0143】1/血液中の絨毛タンパク質の量と腫瘍の大
きさ又はその進行期には相関関係がないと考えてよい。 【0144】2/手術後の追跡のためにこのタンパク質を
測定すると完全摘除後には血清中の率が低下する。これ
に反して、腫瘍細胞が残存すると(不完全摘除、再発、
転移)絨毛タンパク質レベルは維持されるか又は増加す
る。 【0145】この研究により、絨毛タンパク質が健常被
検者の血清中では通常検出されないが、悪性病理(結腸
癌又は腎臓癌)に侵された患者又は消化粘膜の炎症性又
は壊死性突起を生じる消化管の良性潰瘍(Crohn 病、RC
H 病、潰瘍)がみられる患者では絨毛タンパク質を定量
できることが判明した。 【0146】血液中の絨毛タンパク質の定量はまた、良
性疾患(消化管の潰瘍及び炎症性疾患)の監視にも極め
て重要であることが判明した。他方、血液中の絨毛タン
パク質を追跡するためには、本発明の抗体と共に癌の進
行監視のために現在使用されているCEA (癌胎児性抗
原)の如き別の腫瘍ラベルを使用することも可能であ
る。これら現行の腫瘍ラベルは、1/侵された器官に特異
的でない、2/種々の良性病理中に観察される、という欠
点をもつ。 【0147】実施例4:ヒト絨毛タンパク質に対応するcD
NAの調製 mRNAの調製 ヒト結腸腺癌由来の細胞系HT29からmRNAを調製する。Ul
lrich 等による塩化グアニジウム法、Science 、1977、1
96、1313-1319 、によってRNA を抽出する。Aviv及びLe
der によるオリゴdT- セルロースカラムクロマトグラフ
ィー法、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 、1972、69、1408-141
2 、によってmRNAポリA+ の精製を行なう。 【0148】cDNAの調製 Fiddes及びGoodman の方法、Nature、1979、281 、351-3
56、によってcDNAの第1ストランドと第2ストランドと
を調製する。Helfmann等の方法、Proc.Natl.Acad.Sci.U
SA、1983、80、31-35 、によって3′末端にリンカーSa
l I及び5′末端にBamHIを順次付加する。 【0149】約30,000の組換体クローンを含むcDNAバン
クを得る。 【0150】ベクター プラスミドpEX1-3(Stanley及びLuzio 、EMBO Journal、
1984、3 、1429-1430、1984参照) を使用する。これら
ベクターは、その発現がλバクテリオファージのプロモ
ータ PR のコントロール下にある融合遺伝子cro-LacZを
含むプラスミドから誘導される。複数の非反復制限部位
を含むポリヌクレオチドを遺伝子LacZの3′末端に挿入
した。また、転写及び翻訳終了シグナルを3つの読取り
フェーズに挿入した。 【0151】制限酵素BamHI及びSal Iで消化したプラ
スミドpEX の各々にcDNAを挿入した。従ってこれらは全
て遺伝子CroLacZ に対して同方向に配向されている。 【0152】形質転換 O.Raibaud によってNucleic Acid Research に記載のご
とく構築された大腸菌pop2135 株を細菌株として使用す
る。 【0153】以下の式によって操作し、対立遺伝子CI85
7 とプロモータ PR とを含むλファージの2.3kb のBgl
II断片をポリリンカーのBamHI部位にクローニングす
る。 【0154】 【化5】 【0155】このように得られたEco R I断片を、pOM4
1 のEco R I部位にクローニングし、菌株C600の染色体
に組み込む(Gene 、292 、231-241)。 【0156】近位aroBラベルとP1′とのコトランスフェ
クションによって、この構造をMM294 の染色体(F′endA
thi hsdR)に導入する。大腸菌pop2135 が、配向ma
ITCI857 、 PR maIPO で得られる。 【0157】大腸菌pop2135 を組換体プラスミドで形質
転換するためには、Hanahan等のルビジウムを使用する技
術、J.Mol.Biol.、1983、166 、557-580 、を使用する。
この菌株はcro のリプレッサーの対立遺伝子cIts857 を
含む。 【0158】得られた組換体の数は103 〜104 ngのcDNA
のオーダである。 【0159】免疫検出によるクローンの選択 得られた組換体クローンをニトロセルロースフィルター
に塗抹する。42℃で2時間インキュベーション後にハイ
ブリッドタンパク質の合成が誘発される。SDSによる細
菌の溶解及びメタノールの非存在下でのタンパク質の再
生後に免疫スクリーニングによってクローンを分析す
る。タンパク質の再生にはBurnett の技術、Anal.Bioch
em. 、1981、112 、195-203 、を用いる。 【0160】先ず、完全ブタ絨毛タンパク質に対するポ
リクローナル抗体によってバンクをスクリーニングす
る。次に、ニワトリの絨毛タンパク質のCOOH末端断片に
対するポリクローナル抗体と、分子のCOOH末端領域に位
置するエピトープを認識する2種類のモノクローナル抗
体(BDD2 3 及び IID3 9 )とを使用して二次スクリ
ーニングを行なう。 【0161】クローンpEXZ-V19は、510 塩基対のインサ
ートを含む。コード部分は330 の塩基対をもつ。この部
分に続いて200 塩基対の非コード領域が存在する。 【0162】クローニングされたcDNAはヒト絨毛タンパ
ク質のCOOH末端の95個のアミノ酸をコードしており全タ
ンパク質の約1/10(分子量:95Kd) に相当する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [0001] The present invention is directed to tumor cells in the human gastrointestinal tract.
The presence or absence of proliferation of malignant cells, particularly the presence or absence of proliferation of adenocarcinoma-type cells
material elements that can be used in the method for n vitro detection,
Especially human villiAntibodies to proteins, preferably monoclonal
Related to lonal antibody. [0002] The invention further relates to various uses, for example, human vagina.
Human Villin Protein from Cell Extract Containing Hair Protein
These when used to purifyMonocrona
AntibodyTo the effectReach. To identify several higher eukaryotic cell types
And the developmental stages of these cells, especially the differentiation stages
For trace studies, use of structural proteins as specific labels
The use of detection has already been proposed. Known label
For example, fibrous proteins such as vimentin,
There are ratines or nerve fiber proteins, some of which are
Cell type identification, from embryogenesis to final cell differentiation
Of cell development in soil and cell behavior on environmental media
(E.LAZARIDES, Nature,283, 249
(1980) and R. MOLL, Cell,31, 11 (1982)). [0004] Keratin is often found in epithelial and non-epithelial cells.
It is considered to be a particularly effective label that can identify However
However, this type of identification requires the source of the epithelial cells in question.
It turned out that it could not be definitely determined. [0005] However, the origin of some cell types has been confirmed.
In many cases, the need to detect
When examining biological samples that show vesicle growth, this increase
To identify or eliminate primary tumor cells present at the origin of the
To detect the presence of metastasis originating from cancer in the activated region or
Confirm the effects of chemotherapy and other therapies on metastatic cancer
Is gaining particular importance. Of course, anti-cancer treatment
Efficacy depends on accurate identification of tumor cells as primary cause of disease
The depth is deep. [0006] These observations suggest that
Of the digestive tract or kidney
Growth of tumor cells or cells derived from these cells
Detection of proliferation, preferably early detection, especially for these cells
Of particular importance for label identification. Accordingly, the present invention is particularly directed to mucous membranes of the digestive tract,
Normally present in the intestinal mucosa and the main differentiated type is absorbed cells or intestinal cells.
Maintains several major phenotypes of epithelial cells composed of vesicles
Is important for the detection of isolated tumor cells. [0008] The present invention also relates to a method for carrying these tumor cells.
Specific labels that can be detected whether or not
You. It is a particular object of the present invention that these labels may be used in tumors.
In the case of necrosis of a cell, especially the cell, detached from the cell, for example,
Detect label even when released into vasculature
You. Labels used within the scope of the present invention are
It is composed of all or part of the hair protein. Villous tongue
Protein is normally found in villous tissue of the digestive mucosa, especially the intestinal mucosa.
A protein of the order of 95,000 daltons
is there. Villin protein is activated in the presence of calcium ions.
Can bind to Kuching. [0011] Amino acid sequence differs slightly for each type of villi
However, the functional characteristics are maintained. Well-known spirits to date
Manufacturing technology substantially eliminates chicken and porcine villous proteins
To a pure state. However, these technologies
Cannot purify human villin protein. One of the best known villous proteins is
Chicken villous protein. This villous protein
Is composed of 854 amino acid sequences. Trypsi
Degradation of Protein Using Protein and Protease V-8
To cut 44Kd, 51Kd and 10Kd fragments.
Obtainable. This in the villous protein map
The relative positions of the fragments were determined by Paul MADSUDAIRA, MRC, Laboratory
of Molecular Biology, Cambridge, U.K. and John GLE
According to NNEY et al., J.B.C., 1981, 256, 8156-8161
Has been confirmed as. [0013] [Table 1] The COOH terminal of chicken villous protein
Amino acid sequence (779-854) or "head" ("peptide H
P ") is represented by the following equation. [0015] Embedded imageIn general, villous proteins are particularly
Border of the intestinal lumen wall observed on the surface of enterocytes reaching the stomach
Exists inside. Microvilli are end-stage differentiation organs of enterocytes
Nera. Villous proteins are particularly the microscopic villi
Localized during convergence. Villin protein is located in the cytoskeleton
Contribute to the configuration. Examining frozen sections by immunofluorescence
Forms a column that exposes the villous protein to the intestinal lining
Located at the apex of elongated cells and in the proximal tubule cells of the kidney
It was confirmed that it also existed in the vicinity of. In both cases
The region where the hair protein is located coincides with the brush border of the cell
You. However, various other villi of various other epithelia
Villus tans when they do not have highly organized brush borders
No protein was detected (Exp.Cel, A.BRETSCHER etc.)
l.res.135, 213 (1981) or A.LISS's book Membrane in
 Growth and Development, New
 York (1982), pp.89-105, H.REGGIO
Sentence). Furthermore, the villin protein is more likely to form
It was also found to be present in enterocytes in the early stage of development.
Was. The present invention has been obtained based on two findings.
It is. The villous protein is characteristic during tissue tumor formation in the gastrointestinal tract.
Colon cancer, one of the most frequent forms of cancer, and some
Is virtually systematic in kidney cancer types
But maintained in other organs (liver, ovary, lungs)
Primary tumor cells arising from early carcinogenesis of tissue localized to
It is never detected in. In addition, villous protein is a tumor in the gastrointestinal tract.
Early and later oncogenesis at all sites of cell development
In vivo, regardless of the differentiation status of the cells
It is possible. Formed in the digestive tract from the beginning in biological samples
The tumor cells and / or derivatives of the tumor cells in vit
ro Detection method of the present invention mainly for detecting
The characteristic of this biological sample is that
Have specific affinity or
Contact with a reagent that recognizes the gene to be loaded. The detection method of the present invention is based on
Tumor cells or primary cells of digestive organ or kidney origin
Tumor cells formed later in another part of the organism by the effect
All biological samples containing cells or necrosis of the cells
In some cases, the degradation products of various tumor cells, including
It can be applied to all biological samples to be encapsulated. This creature sun
The pull may be in any form, for example, obtained by biopsy.
Tissue or solid tumor fragments or malignant cells or
Is a liquid biological sample carrying fragments from said cells, such as whole blood
Or serum. According to an embodiment of the present invention,
The reagents used in the detection methods
Contains the region encoding the amino acid sequence of the COOH terminal.
It is composed of DNA having the sequence According to another embodiment of the present invention, a detection method is provided.
The technique used in immunization is an immunological technique,
Antibodies that can recognize villin protein
Consists of These antibodies can be prepared by any known method.
The body is labeled or villous protein or villi
Label when fixed to hair protein-containing cells
Immunoglobulins or other labeled proteins (eg,
Staphylococcus aureusCan be recognized by protein A)
You. A particularly suitable technique is that used in the tests described below.
This is a technique showing the results as described above. An object of the present invention is also to provide intestinal cells or the like cells.
Novel method for detecting villous proteins in microvilli
To provide a unique means (of course,
The use is not necessarily limited to the detection method in the present invention.
No). According to one feature of the invention, these means
Is the DNA corresponding to the complete mRNA of human villin protein or
Region encoding the amino acid sequence of human villin protein
A DNA fragment having a nucleotide sequence containing
Specific to the nucleotide sequence encoding the hair protein
May hybridize. The invention is particularly directed to the completeness of the human villin protein.
DNA corresponding to mRNA or COOH terminus of human villous protein
At least the nucleotide sequence encoding the amino acid
Using the cDNA fragment containing the part in the method.
Aim. This nucleotide sequence and the encoded
The corresponding sequences of the amino acids are shown below. [0029] Embedded image The nucleotide sequence used is human villi
For detecting mRNA or DNA encoding a protein
Used as a probe. Probes suitable for this type of detection are radioactive
Labeled by element or test mRNA or DNA
That are recognizable in a hybridized state with a preparation containing
Advantageously, it is labeled by a substance. According to the prior art, these probes and the
The biological sample containing cells is separated from the nucleotides of the probe.
The sequence and the complementary sequence arbitrarily contained in the test sample are
Contact or nuclei under conditions that allow
Contact directly with acid. A probe containing a 200 base pair insert was
Was used to test the reproducibility of detection. Novel products within the scope of the present invention
Another feature of these nucleotide probes that make up
Differentiation status of cells and / or cells expressing villous protein
Villi at different stages of maturation of cells of renal or intestinal origin
Used to study mRNA expression of proteins
And Therefore, the obtained probe is a human gene
Number and tissue of villous protein genes isolated from
And the structure can be determined. According to the present invention, the human villi protein
Isolation of the nucleotide sequence encoding the end
Done: -A cell line expressing villin protein using known techniques
Prepare complete mRNA (messenger RNA) Construct a cDNA (complementary DNA) bank, Expressing the protein encoded by the insert
Insert the cDNA into the resulting vector, -Transform the bacterial strain with the resulting recombinant vector
And then conditions under which the desired protein can be expressed in bacteria.
Set, -Villin protein using antibodies capable of recognizing villin protein
Select recombinant clones containing specific clones
You. The construction step of the cDNA bank depends on the inserted cDNA.
Using a vector that can express the encoded protein
It is done. Claw which is particularly advantageous because of its high expression efficiency
Vector is composed of a pEX-type plasmid.
It is. Such a plasmid was provided by Stanley and Luzio.
EMBOJournal, 1984,Three, 1429-1434.
You. This document includes the promoter of the λ bacteriophage.
 PRCro-lacZ, a fusion gene expressed under the control of
Containing plasmids have been described. This manifestation depends on temperature.
Is induced. Polynucleotide containing multiple unique restriction sites
Is inserted in each of the reading phases, and
A translation termination signal is also inserted. Insert at unique restriction site
Entered cDNA is the corresponding hybrid protein cro-
It is expressed with very high efficiency in the form of βgal-peptide.
The advantage of this hybrid protein is that it is poorly soluble and
Less proteolytic degradation in bacteria
It is easily detected immunologically by an antibody. The corresponding polypeptide is expressed in bacteria.
Insert the cDNA in the correct orientation for the gene cro-lacZ
To enter, P.N.A.S.USA, 1983,80, 31-35
Various linkers at both ends of the cDNA according to the technology of Helfmann et al.
Use a protocol that adds keys sequentially. Used resources
CarBamHI andSalCorresponds to the I cleavage site. [0041] These recombinant plasmids can be prepared using conventional techniques.
Bacterial strains that express proteins with different desired sequences
Used for quality switching. As a bacterial strain, an E. coli strain is preferable.
E. coli pop2135 containing lesser cro allele cIts857
 Is particularly preferred. Thus, high levels of villi in bacterial strains
Approximately 30,000 clones, corresponding to the mRNA of the cell expressing the protein
A cDNA bank containing the loan recombinant is obtained. The expression of the hybrid protein depends on the temperature.
Can be triggered. Therefore, the repressor of the gene cro
Treat at deactivating temperature. For this purpose, the
Incubate the strain for about 2 hours at room temperature, especially on the order of 40-42 ° C
Just cuvette. Bacterial Lysis and Proteins According to the Prior Art
Clones recovered after regenerating DNA for immunoscreening
Therefore, select. Preferably at least one type of anti-villi
The cDNA polyclonal antibody is used to screen cDNA banks.
Perform a leaning. With one or more polyclonal antibodies
Specific reacting clones against COOH-terminal epitope
Again using at least one monoclonal antibody
Screen. Anti-Polyc Against Complete Porcine Villin Protein
Anti-villin polyclonal antibodies such as nal antibodies and molecules
One or more types that can recognize the epitope located at the COOH terminus of
If you use the above monoclonal antibodies sequentially,
A leaning is performed. Screening with polyclonal antibody
Later, another polyclonal antibody, especially chicken villi
Using polyclonal antibody against COOH-terminal fragment of protein
Advantageously, a secondary screening is performed. The object of the present invention is in particular a complete villous protein.
Antibodies to Chickens and Chicken Villin Protein
Polyclonal Antibodies to COOH-terminal Peptides and CO
Two types of monoclonal antibodies against the OH-terminal epitope
Characterized in that the expression product specifically reacts with
Providing a clone containing cDNA corresponding to the villin protein
Is to provide. It is also an object of the present invention to provide a polyA
Villin protein containing an insert with a denylation site
To provide a clone containing the cDNA corresponding to
You. According to another feature of the present invention, the villous protein
The means used for quality detection are composed of monoclonal antibodies.
Is done. This feature of the invention is derived from different species
Common villous proteins accessible to monoclonal antibodies
High epitopes that secrete monoclonal antibodies
Spleen fused with myeloma cells suitable for bridoma production
Specific villous tan used to immunize animals with kidney cells
Not only specifically recognizes protein but also includes human
Specifically recognizes villous proteins derived from
Based on the fact that. Accordingly, the preferred monoclonal antibodies of the present invention
The characteristics of the body are that it has the following characteristics: Recognizing purified porcine villous protein (C)
Use Eastern blotting), -Recognize chicken villin protein (Western
Using blotting), -Villi of cell extract of a line derived from human colon adenocarcinoma HT29
Recognize proteins (using Western blotting)
for), -Recognition of rat villin protein by immunocytochemistry
(Freezing of formaldehyde-fixed rat intestinal mucosa
Liostat) using sections). A monoclonal antibody corresponding to the above definition
A preferred monoclonal antibody is chicken villi
Recognition of epitopes contained in protein “peptide HP”
Understand. Pre-isolated peptide HP and peptide HP
And 51 Kd peptide
You. The antibody is a peptide of chicken villi protein 44Kd or
Does not recognize any of the peptide 44Kd. The preferred antibody of the present invention further comprises a protein
Quality HP, especially after treatment with sodium dodecyl sulfate (SDS).
Recognizable in the raw state and contains villous proteins
Can be recognized by skin cells. This result depends on the peptide HP
Supported epitopes on other proteins in cell culture
Therefore, it is shown that it is not shielded. The present invention naturally covers these monoclonal antibodies.
Pertaining to a hybridoma that secretes. These hybrids
Advantageous techniques for producing porcine, especially purified porcine villous tan
Spleen cells of mouse immunized against protein and appropriate myelo
Of hybridoma production technology by fusion with yeast cells
Will be described later. Preferred hybrids obtained by this method
(BD-D2C3 strain) is the Collecti of Pasteur Institute in Paris.
on Nationale des Cultures de Micro-organismes (CNC
M) on April 29, 1985 with accession number no.I-440.
Was. According to an advantageous feature of the invention, the formation of antibodies
The immunizing substance used for can be expressed in large amounts in bacteria. This
The immunological substance is human villous protein DNA or a fragment thereof.
Encoded by the nucleotide sequence corresponding to
Corresponds to the peptide. According to the prior art, peptides are injected into animals.
And collect antiserum and then, if necessary, e.g.
Antibodies are recovered from antisera by column chromatography
I do. This variant of antibody production is based on the cDNA fragment defined above.
The region encoded by the fragment HP is the most immunogenic and
It is more advantageous when the region is specific to hair proteins.
You. The complementary DNA of the villin protein or the DNA
The protein encoded by the nucleotide sequence of the fragment
Quality can also be determined by competitive radioimmunoassay (direct ELISA or
Constitutes an antigen source for performing competitive ELISA. However, of course, it contains the same immunogenic sequence
All other immunizing substances can be used. For example, pepti
HP itself may be used, and in some cases,
Carrier such as calf serum albumin to enhance
Even using peptide HP pre-grafted to the molecule
Good. The preferred monoclonal antibody of the present invention
If possible, define the characteristic epitope region of the peptide HP
Obtaining will also be apparent to those skilled in the art. More accurate identification
In particular, using a method that includes the following steps:
Good. The peptide HP (or containing the desired epitope)
Polynucleic acid encoding the part of the peptide HP
Synthesizing a reotide sequence, -Nucleotides encoding the COOH terminus of the villous protein
The plasmid as defined above containing the sequence
Linearize at the external restriction site, -Linearized by an exonuclease such as the enzyme Bal31
Trimming the plasmid, Recirculating the plasmid with DNA ligase, -Can transform itself with the corresponding plasmid and
A suitable microparticle capable of expressing the insert contained in the lathmid
Transforming organisms, -Bringing the expression product of this microorganism into contact with the antibody again
You. Characterization by the final recircularized plasmid
The immunogenic peptide in the transformed expression product of the microorganism.
Repeat the above processing cycle until the detection of
You. End of each cycle of the process, especially intermediate recyclization
Final trimming to eliminate plasmid recognition ability
Before and after the sequencing of the terminal part of the plasmid
Nucleosides removed during this final trimming process
Epitope at the peptide encoded by the peptide sequence
It is possible to place loops. That is, for those skilled in the art
Obtaining the antibody by means of a chemical comprising the epitope
Is equivalent to obtaining a well-defined peptide sequence.
You. The present invention also relates to the preferred models defined above.
Polyacrylamide gel that can react with noclonal antibody
Virtually one band in electrophoresis, especially in SDS-PAGE test
Biologically Substantially Pure Human Villin Protein
Pertaining to quality. That is, human villin protein is
Treatment with a lysate, especially an aqueous solution containing a suitable detergent,
Human intestinal cell lysate purified using noclonal antibodies?
Can be extracted from In this type of purification, affinity
Preferably solid to accommodate the chromatography process
Using monoclonal antibodies immobilized on a body support
Is advantageous. For example, PHRMACIA A.G. in Sweden
Therefore, a three-dimensional mesh marketed under the trademark SEPHAROSE
Monoclonal antibody on agarose mesh
Fix by cyanogen bromide method. Accordingly, the present invention is particularly directed to human villin proteins.
To separate the villin protein-containing solution,
Contact with affinity column containing monoclonal antibody
To selectively immobilize human villin protein, and then
PH 2-4 acidic buffer or methylamine buffer
Of antigen-antibody complex by a basic pH 11 buffer
The human villin protein is recovered by the
The present invention relates to a method for dialysis against a monium buffer. Of course, the present invention also relates to human villin protein cleavage.
Pertaining to smaller molecular weight polypeptides consisting of pieces. Interruption
Human villi by fragment-specific polypeptide cleavage enzymes
It is clear to those skilled in the art that what can be obtained by protein cleavage is
Or maybe. As such a protein, for example,
LipsinStaphylococcus aureusV8 Protea
Ze, alpha chymotrypsin, marketed by BOEHRINGER
Mouse submandibular gland protease, the peptide Gly-Pro
And Gly-Ala etc.Vibrio alginolyti
-cus chemovar iophagusCollagenase. Production from human villin protein or fragment thereof
Optionally species-specific hybridomas and monochrome
It is to be understood that internal antibodies also form part of the present invention.
U. [0071] DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Another feature and advantage of the present invention is that human villi
Detection of protein, hybridoma and monoclonal antibody
Examples of specific conditions used in the production and testing of
It will be apparent from the description. Also contains cDNA portion of human villin protein
It also describes how to create clones. [0073]Example 1 Detection of Human Villin Protein Tumors from the digestive or renal parts and other parts of the organism
Villous proteins at different stages of proliferation of tumor cells and non-tumor cells
The expression of proteins was examined. BROWN and FARQUHAR, Cell,Three
6295 (1984).
Sections (frozen sections) were prepared by fixing. A section of 5 mm thickness was obtained at -25 ° C.
Placed on coated glass plate. 0.2% gelatin
Containing physiological saline phosphate buffer (PBS-gelatin) solution
After immersion, PBS-gelatin is used to detect villous proteins.
Rabbit anti-villin protein antiserum 50 diluted 1/800 in protein
Treat the sections with a solution containing
Incubated. Next, the sections were cut in PBS-gelatin for 10 minutes each.
Washed twice. Next, Rhodamine (Nordic Immun, The Netherlands)
rabbit anti-rabbit labeled
IgG was added and sections were incubated at room temperature in the presence of these anti-IgGs.
Incubated for minutes. Then cut the sections in PBS-gelatin
Lens thoroughly cleaned and immersed in Plan Neo-fluar oil
Fluorescence microscope equipped with a set of appropriate filters (ZEIS
S light microscope). Control tissue and tumor cells of other origin
Was similarly processed. The following results were observed. When the tissue is derived from adenocarcinoma of the colon, 12
Eleven samples of the villin protein expression
Positive. Human tumors of other origin, such as lymphoma
Mesenteric nodal lymphoma and metastasis of pancreas, esophagus, etc.
Various types of carcinomas of other origins other than
No protein was expressed. Observations generally indicate that one of the treated tumors
A Close Correlation between the Intestinal Origin and Villin Protein Expression
It turned out that there was a clerk. Clearly against tumors of another origin
In a number of tests conducted in
The expression of the protein was negative. It should be noted that in tissues of intestinal origin,
Villin protein is always irrespective of the degree of cell growth
Is to be observed. In the above test, a polyclonal antibody was used.
Was. Uses preferred monoclonal antibody deposited with CNCM
The result was more obvious. High secreting these monoclonal antibodies
Examples of conditions for isolating the bridoma are described below. Also, EL
ISA-type immunoassay to determine the presence of villous protein
The following describes how to provide favorable detection conditions for diagnosis.
It is described below. [0084]Example 2: Villous proteinqualityMonochrome against
Preparation of internal antibody (A) Immunization programBalb / C o mouse: 6-8 weeks old −antigen: Purified porcine villous protein (10mg / ml) (SDS
In the presence of polyacrylamide gel (10%) after electrophoresis
Homogeneous band of 95Kd protein), 10mM imida
Sol, 75 mM HCl, 1 mM EGTA, 0.1 M DTT, 50%
Serol. -program First day: 50/50 emulsion (PBS-Freund complete adjuvant)
IP (peritoneal cavity) of 50 μg of pure villin protein in
Inside) injection, 14th: 50 μg of villous protein (PBS-Freund incomplete)
Booster IP injection in adjuvant emulsion), 21st: 50 μg of villous protein (PBS-Freund incomplete)
Booster IP injection in adjuvant emulsion), Day 28: IM of 20 μg villous protein dissolved in PBS (muscle
Intrameat) injection, 29th: IV (intravenous) injection of 10 μg villi dissolved in PBS
Shooting, 32nd: Fusion. (B) Fusion (I) Parent cell (a)Myeloma cells Sp2 / O-Ag14 (8 Azaguanine resistant), DMEM 10% FCS medium
Sterile culture in. (B)Spleen cells Origin: Hyperimmune mouse Balb / C against porcine villous protein
Splenocytes. (II)) Details by Kohler G. and Milstein C.
Cell fusion method (fused cells secreting antibodies with specificity
Continuous culture of Nature, 1975, 256, 495) -50% polyethylene glycol in serum-free DMEM medium
Solution (PEG1000-Merck9729) under sterile conditions.
Fuse in serum DMEM medium. After counting two types of parent cells
The suspension of myeloma cells in culture is
Mix 1: 5 with the solution. Contact for 2 minutes and 30 seconds. -Stop the action of PEG by diluting with complete DMEM medium
To stop. -Finalize cell suspension in selective DMEM-HAT medium
Dilution (2 × 10FiveCells / ml). Dispense into COSTAR24 wells containing -1 ml wells (C
OSTAR Tissue Culture Cluster 24, Cat.No.3524, CO
STAR 205 Groadway, Cambridge, Ma, USA). (III)Clone selection The ability to secrete antibodies to purified porcine villin protein
To identify the clone. (C) Selection method (I) ELISA test: In this test, the
An anti-villin protein monoclonal antibody can be demonstrated. -Fixation of antigen: For support (ELISA plaque)
Fix the antigen. Concentration: 50 mM, pH 8 potassium phosphate bath
5 μg / ml in buffer. Maintain at 4 ° C. overnight. -Saturation: Saturated with PBS-Tween20-BSA. -incubationI: Undiluted hybrid
3 hours at 4 ° C. with dormer supernatant. -incubationII: β-galactosida
2 h at 4 ° C. with mouse-labeled mouse anti-IgG. For washing between each step, 0.1% of PBS-
Use Tween20. -Substrate: 0.1 M, pH 7.0 phosphate buffer,
Ten-3M MgSOFour, 2 × 10-3M MnSOFour, 2 × 10-3M anhydrous bird
Triplex Magnesium (Merck8409)
O-Nitrophenyl-β-galactopyranoside (Sigma
 N11-27). [0102]ReadingOD (optical density) reading at 414 nm. The OD of 10 times the OD of the background noise
A clone with the given hybridoma supernatant was selected. (II)) Western Blotting(Burnette.Anal.B
iochem. 1981, 112, 195-203) This test will help to ensure that
Simultaneous human and chicken villous proteins
Secretes porcine anti-villi monoclonal antibodies recognizable by
Clones can be selected. [0105]Various test stages (a) Chicken intestinal mucosal cell extract and villous protein
HT29 (human colon adenocarcinoma) cell extract
Perform electrophoresis on a acrylamide gel. (B) Separated by polyacrylamide gel
The protein is electrotransferred to nitrocellulose paper. (C) Nitroses to which cell proteins have been transferred
Place the lulose paper on the hybridoma previously selected by ELISA.
Incubate with clearing at 4 ° C. overnight. (D) Peroxidase-labeled mouse
Incubate with anti-IgG for 1 hour at room temperature. (E) Substrate: -10 mg of diaminobenzidine tetrahydrochloride, -20 ml 0.1 M TrisHCl pH 7.6, -0.2 ml of 1% HTwoOTwo. [0110] Washing between each step was performed using neonatal calf blood.
Use Qing-PBS-Triton X100. (F) Positive reaction: antigen-monoclonal antibody
When the reaction occurs, a maroon band (molecular weight 95 Kd) is rapidly formed.
Appear. (D) Cloning of selected hybrids -Limiting dilution method: macrophages bound to the bottom of the well
(4 week old Balb / C mouse origin) (96-well plaque
Positive) so that one cell is distributed per well
Diluted in selective media. [0113] The selection medium whose conditions have been adjusted is added. Selecting positive clones by the method described above
You. Recloning if necessary. (E) Preparation of ascites -PRISTANE (Aldrich, 2,6,10,14-tetra-
(Methylpentadecane)
Inject a loan. 1-2 × 10 per mouse6Injection of cells
I do. Including clonal cells grown after 10-15 days
The ascites is collected from the mice. The anti-villi monoclonal antibody titer of ascites was 1 mg
/ Ml higher. -Freezing of selected clones is 10% FCS-5% DM
Performed in DMEM medium with SO. Store in liquid nitrogen at -176 ° C. [0121]Direct ELISA for villous protein quantificationAdsorption of purified IgG: Concentrated ascites BD-D2C3From ELISA
Adsorb to plaque. Ion exchange chromatography (DEAE-Tris
(Acrylic) and hydroxyapatite columns
The body was purified. Concentrate to a predetermined concentration. Incubation at 37 ° C for 2 hours and then at 4 ° C overnight
To Wash with 0.1% PBS / Tween20. -Plaque saturation 30 min in the presence of PBS / 0.1% Tween20 / 0.4% BSA
Incubate. -Addition of antigen The concentration range of purified villin protein in the presence of 0.4% BSA
Reduce from 5 μg / ml to 1 or 0.1 ng / ml. Incubate at 4 ° C. for 3 hours. Wash with 0.1% PBS / Tween20. -Add purified IgG: With β-galactosidase
Rabbit polyclonal bound to villin protein
Add IgG purified from antibody sera. Incubate at 4 ° C. for 2 hours. Wash in 0.1% PBS / Tween20. -Galactosidase detection 20 ml of 0.1 M phosphate buffer buffer, pH 7, 10-3M MgSO
Four, 2 × 10-FourM MnSOFour, 2 × 10-3M EDTA (Merck840
9) 20 mg of p-nitrophenyl- using a 4 m / ml solution in
 Add β-D-galactopyranoside. Incubate at 37 ° C. for X hours. Read the optical density at 414 nm. [0136]Example 3: Human clinical observation Very small amounts in cell extracts (0.
5 ng) with the sensitivity to detect villous protein
Quantification of villous protein in serum using ELISA test
A measurement was performed to detect the effective amount. That is, villi
The protein is released by healthy and tumor cells in the gastrointestinal tract.
Because it is an intracellular protein that is expressed,
Under physiological conditions, necrosis of cells containing
It was found that the protein was released into the vasculature. According to tests on the blood donation population (n = 190),
Villin protein is not detected in the majority of serum (n = 168)
Turned out to be. However, for a small number of individuals (n = 15)
Indicates detectable villous protein (5-10 ng / ml)
did. This value is the level of villous protein that is not a pathological sign.
You can think. Finally, for some individuals (n = 7)
Higher levels of villous protein (50-100ng / ml)
Were present. So-called “healthy” individuals (3.6%)
Additional laboratory tests of the gastrointestinal tract (fiberscope,
Ronoscope). The results obtained for various gastrointestinal pathologies are described below.
These are summarized in the table below. Detectable amounts of villous protein in the patient's serum
Diseases whose quality is detected:Gastrointestinal malignant pathology : -Colon cancer, -Gastric cancer. [0140]Gastrointestinal benign pathology: -Choriomas, -Crohn's disease, -Hemorrhagic proctitis, -Duodenal bulb ulcer, gastric ulcer, esophageal ulcer. It should be noted that polyadenomas of the digestive tract (Poly
Conversely, by not releasing this protein into the blood
is there. [0142] Some further conclusions can be drawn from this examination.
You. 1 / Amount of villous protein in blood and tumor size
It may be considered that there is no correlation between the magnitude or the stage of its progress. 2 / This protein is used for post-operative follow-up.
When measured, the rate in serum decreases after complete removal. this
Conversely, if tumor cells remain (incomplete removal, recurrence,
Metastasis) Villin protein levels are maintained or increased
You. According to this study, villin protein was
Normally not detected in the examiner's serum,
Cancer or kidney cancer) or inflammatory or digestive mucosa
Is a benign ulcer of the gastrointestinal tract that produces necrotic processes (Crohn's disease, RC
Villin protein in patients with H disease, ulcers)
It turns out that it can be done. The quantification of villous protein in blood was also good.
For monitoring inflammatory diseases (ulcers of the digestive tract and inflammatory diseases)
Turned out to be important. On the other hand, villous tan in blood
In order to track protein, cancer progression is performed with the antibody of the present invention.
CEA (Carcinoembryonic Anti-
It is possible to use another tumor label, such as
You. These current tumor labels are 1 / specific to the affected organ
Deficiency, 2 / Observed during various benign pathologies
Has a point. [0147]Example 4: cD corresponding to human villous protein
Preparation of NA Preparation of mRNA MRNA is prepared from the human colon adenocarcinoma cell line HT29. Ul
Guanidium chloride method by lrich et al., Science, 1977, 1
96, 1313-1319, to extract RNA. Aviv and Le
oligo dT-cellulose column chromatography with der
Acad.Sci. USA, 1972, Proc.69, 1408-141
2, by mRNA poly A+Is purified. [0148]Preparation of cDNA Fiddes & Goodman Method, Nature, 1979,281, 351-3
56, the first strand and the second strand of cDNA
Is prepared. Helfmann et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U
SA, 1983,80, 31-35, the linker Sa at the 3 'end
BamHI is added sequentially to the I and 5 'ends. A cDNA van containing approximately 30,000 recombinant clones
Get [0150]vector Plasmid pEX1-3 (Stanley and Luzio, EMBO Journal,
1984,Three, 1429-1430, 1984). these
The vector is a λ bacteriophage promoter whose expression
Data PRCro-LacZ, a fusion gene under the control of
Derived from the containing plasmid. Multiple unique restriction sites
Inserted into the 3 'end of LacZ gene
did. In addition, three readings of transcription and translation termination signals
Inserted into the phase. The plasmid digested with the restriction enzymes BamHI and SalI
CDNA was inserted into each of the Smid pEX. So these are all
Is oriented in the same direction with respect to the gene CroLacZ. [0152]Transformation O.Raibaud for Nucleic Acid Research
Use the particularly constructed E. coli pop2135 strain as a bacterial strain.
You. Manipulating according to the following formula,CI85
7And the promoter PR2.3 kb of lambda phage containingBgl
The II fragment is cloned into the BamHI site of the polylinker.
You. [0154] Embedded image The thus obtainedEcoThe RI fragment was ligated with pOM4
OneEcoCloned into the RI site and cloned into the chromosome of strain C600
(Gene,292231-241). [0156] ProximalaroBCotransfer of label and P1 '
This structure was transformed into MM294 chromosome (F 'endA
thi hsdR). E. coli pop2135 is orientedma
IT,CI857, PR,maIPOIs obtained. Transform E. coli pop2135 with the recombinant plasmid
To convert, use a technique that uses rubidium such as Hanahan.
Jutsu, J. Mol. Biol., 1983,166, 557-580.
This strain contains the cro repressor allele cIts857.
Including. The number of recombinants obtained was 10Three~TenFourng cDNA
Of the order. [0159]Selection of clones by immunodetection The obtained recombinant clone is filtered with a nitrocellulose filter.
Smear on. High after 2 hours incubation at 42 ° C
Induces synthesis of brid protein. Fine by SDS
Lysis and reconstitution of proteins in the absence of methanol
Analyze clones by immunoscreening after birth
You. For protein regeneration, Burnett's technology, Anal.Bioch
em., 1981,112, 195-203. First, the port for the complete porcine villous protein was
Screening banks with clonal antibodies
You. Next, the COOH-terminal fragment of chicken villin protein
Polyclonal antibody against the COOH-terminal region of the molecule.
Monoclonal antibodies that recognize epitopes
Body (BDDTwoCThreeAnd IIDThreeH9) And using secondary script
Perform training. The clone pEXZ-V19 has a 510 base pair
Including The coding portion has 330 base pairs. This part
Following the minute is a 200 base pair noncoding region. The cloned cDNA was a human villous protein.
It encodes the 95 COOH-terminal amino acids of
It is equivalent to about 1/10 of protein (molecular weight: 95Kd).

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 (C12P 21/08 C12R 1:91) (73)特許権者 594198569 アンステイテユ・ナシオナル・ドウ・ ラ・サンテ・エ・ドウ・ラ・ルシエルシ ユ・メデイカル フランス国、75013・パリ、リユ・ド ウ・トルビアツク、101 (72)発明者 ダニエル・ルバル フランス国、92330・ソー、アレ・ド ウ・トレビス、23 (72)発明者 ブリジツト・デユドウエ フランス国、75005・パリ、リユ・ブラ ンビル、9 (72)発明者 シルビ・ロビーヌ フランス国、92170・バンブ、リユ・デ イシ、54 (72)発明者 モニク・アルパン フランス国、75014・パリ、リユ・ロリ、 9 (72)発明者 エリク・プランゴー フランス国、75003・パリ、リユ・オ・ メール、26 (72)発明者 アルフオンス・ガルシア フランス国、75015・パリ、リユ・ド ウ・ビロフレ、3──────────────────────────────────────────────────の Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification number Office reference number FI Technical indication (C12P 21/08 C12R 1:91) (73) Patent holder 594198569 Ansteuteu Nacional do la Sante et Dou La Luciersi-yu-Medical France 75001 Paris, Lille-du-Torbiac, 101 (72) Inventor Daniel Lebar France, 92330 Saw, Are Dou Trevis, 23 (72) Inventor Brigitte d'Eudewe, France, 75005 Paris, Lille-Brunville, 9 (72) Inventor Silvi Robineau, France, 92170 Bambu, Lille Deissy, 54 (72) Inventor Monique Alpin France, 75014 Paris, Lille Lori, 9 (72) Inventor Erik Plan Over France, 75003 Paris, reusable-o-mail, 26 (72) inventor Arufuonsu Garcia France, 75015 Paris, Riyu de Woo Birofure, 3

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】 1.以下の特性をもつこと、即ち −精製ブタ絨毛タンパク質を認識する、 −ニワトリの絨毛タンパク質を認識する、 −ヒト結腸の腺癌HT29に由来する系の細胞抽出物の
絨毛タンパク質を認識する、 −免疫細胞化学的にラット絨毛タンパク質を認識する ことを特徴とする、絨毛タンパク質に対するモノクロー
ナル抗体。 2.C−末端配列(779−854)に含まれる抗原部
位、即ち式: 【化1】 で示されるニワトリの絨毛タンパク質の「ヘッド部」を
認識することができ、前記ヘッド部が単離されているか
又はニワトリ絨毛タンパク質に含まれた51Kdのペプ
チドの内部に存在するかにかかわりなく該ヘッド部を認
識し得ることを特徴とする請求項1に記載のモノクロー
ナル抗体。 3.受託番号CNCM I−440のハイブリドーマに
よって産生されることを特徴とする請求項1に記載のモ
ノクローナル抗体。
(57) [Claims] Have the following characteristics, namely - it recognizes purified porcine villi protein, - recognizing the villi protein of chicken, - recognizing the villi protein of cell extract derived systems adenocarcinoma HT29 human colon, - immune A monoclonal antibody against villin protein, which recognizes rat villus protein cytochemically. 2. The antigenic site contained in the C-terminal sequence (779-854), ie, the formula: Can be recognized, regardless of whether the head portion is isolated or present inside a 51Kd peptide contained in the chicken villin protein. The monoclonal antibody according to claim 1, wherein the monoclonal antibody can recognize a part. 3. For hybridoma with accession number CNCM I-440
2. The model according to claim 1, wherein
Noclonal antibodies.
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