JP2575648B2 - クレアチンキナ−ゼの安定化方法 - Google Patents
クレアチンキナ−ゼの安定化方法Info
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- JP2575648B2 JP2575648B2 JP61095984A JP9598486A JP2575648B2 JP 2575648 B2 JP2575648 B2 JP 2575648B2 JP 61095984 A JP61095984 A JP 61095984A JP 9598486 A JP9598486 A JP 9598486A JP 2575648 B2 JP2575648 B2 JP 2575648B2
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Description
【発明の詳細な説明】 ＜産業上の利用分野＞ 本発明は、還元剤の存在下でクレアチンキナーゼ（以
下CKとする）に還元糖を作用させ、CKを還元糖化するこ
とによるCKの安定化方法、及びこの還元糖化したCKを高
分子物質を含む溶液に加えることによるCKの安定化方法
に関する。
下CKとする）に還元糖を作用させ、CKを還元糖化するこ
とによるCKの安定化方法、及びこの還元糖化したCKを高
分子物質を含む溶液に加えることによるCKの安定化方法
に関する。
＜従来の技術＞ CKはATPとADPを補酵素とし、クレアチンリン酸＋ADP
クレアチン＋ATP、の反応を触媒し、主に高エネルギ
ーリン酸の貯蔵またはATPの再生産に関する重要な酵素
である。生体内には、骨格筋に最も多く含まれ、心筋、
平滑筋、脳などにも含まれているが、肝、脾、腎、膵な
どの実質臓器および赤血球にはほとんど存在しない。こ
の様な体内分布の特異性からヒト血清中のCKの測定は、
原発性筋疾患の診断やその保因者の検出或いは早期の心
筋梗塞の診断によく用いられている。
クレアチン＋ATP、の反応を触媒し、主に高エネルギ
ーリン酸の貯蔵またはATPの再生産に関する重要な酵素
である。生体内には、骨格筋に最も多く含まれ、心筋、
平滑筋、脳などにも含まれているが、肝、脾、腎、膵な
どの実質臓器および赤血球にはほとんど存在しない。こ
の様な体内分布の特異性からヒト血清中のCKの測定は、
原発性筋疾患の診断やその保因者の検出或いは早期の心
筋梗塞の診断によく用いられている。
臨床検査におけるCKの測定には、CK標準液と共に、日
々の測定手技、測定機器、測定試薬等の精度管理のた
め、CKを含有するコントロール血清を指標として利用し
ている。
々の測定手技、測定機器、測定試薬等の精度管理のた
め、CKを含有するコントロール血清を指標として利用し
ている。
従来このような用途のためのCK標準液やCKを含有する
コントロール血清の開発にあたり、CKは安定性の良くな
い酵素であるため、その安定性に関する検討がなされて
きた。その結果、CKを安定化させるために、例えば特開
昭57−122796号公報に示すSH基をもつ化合物を添付する
方法やβ−メルカプトエタノールを加えて凍結乾燥する
方法、更にはエチレングリコールにCKを溶解させる方法
などが知られている。
コントロール血清の開発にあたり、CKは安定性の良くな
い酵素であるため、その安定性に関する検討がなされて
きた。その結果、CKを安定化させるために、例えば特開
昭57−122796号公報に示すSH基をもつ化合物を添付する
方法やβ−メルカプトエタノールを加えて凍結乾燥する
方法、更にはエチレングリコールにCKを溶解させる方法
などが知られている。
＜発明が解決しようとする問題点＞ しかし、これらいずれの方法を用いても臨床検査で用
いるCK標準液やCKを含有するコントロール血清としては
満足できるものではなかった。
いるCK標準液やCKを含有するコントロール血清としては
満足できるものではなかった。
すなわち、SH基を有する化合物を添加する方法ではCK
が充分に安定化できなかったり、コントロール血清とし
て含有されている他の成分の測定に影響を与えるという
問題が指摘されている。また特にCKを安定化するのに凍
結乾燥の手段を用いる方法では、凍結乾燥する製造工程
においてバイアル間のバラツキがあったり、更に大きな
欠点として、日常の臨床検査等においては前記凍結乾燥
した材料を溶解して使用状態にしなければならないた
め、日常業務上の操作性が悪く、また凍結乾燥材料を溶
解して使用状態にすると、非常に不安定となってCKレベ
ルが著しく低下する等の欠点があった。更にエチレング
リコールにCKを溶解させる方法は上述した凍結乾燥組成
物の欠点をカバーしたものであるが、溶液は、有機溶媒
であるエチレングリコールを高濃度に含んでいるため、
粘性が高く、臨床検査で用いるCK標準液やCKを含有する
コントロール血清としては、操作上に問題を残してい
た。
が充分に安定化できなかったり、コントロール血清とし
て含有されている他の成分の測定に影響を与えるという
問題が指摘されている。また特にCKを安定化するのに凍
結乾燥の手段を用いる方法では、凍結乾燥する製造工程
においてバイアル間のバラツキがあったり、更に大きな
欠点として、日常の臨床検査等においては前記凍結乾燥
した材料を溶解して使用状態にしなければならないた
め、日常業務上の操作性が悪く、また凍結乾燥材料を溶
解して使用状態にすると、非常に不安定となってCKレベ
ルが著しく低下する等の欠点があった。更にエチレング
リコールにCKを溶解させる方法は上述した凍結乾燥組成
物の欠点をカバーしたものであるが、溶液は、有機溶媒
であるエチレングリコールを高濃度に含んでいるため、
粘性が高く、臨床検査で用いるCK標準液やCKを含有する
コントロール血清としては、操作上に問題を残してい
た。
＜問題点を解決するための手段＞ 本発明者らは、このような問題を解決すべく鋭意研究
を進めた結果、還元剤の存在下でCKに還元糖を作用させ
てCKを還元糖化することによって、CKが安定化され、更
にその還元糖化したCKを高分子物質を含む溶液に加える
ことにより、液状でCKを安定化させることができること
を見い出し、本発明を完成した。
を進めた結果、還元剤の存在下でCKに還元糖を作用させ
てCKを還元糖化することによって、CKが安定化され、更
にその還元糖化したCKを高分子物質を含む溶液に加える
ことにより、液状でCKを安定化させることができること
を見い出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明のCKの安定化方法は、還元剤の存在
下、CKに対して、還元糖としてＤ−フコース、Ｄ−タロ
ース、Ｌ−ラムノース、Ｌ−アラビノース、Ｄ−マンノ
ース、Ｄ−ガラクトース、Ｌ−リキソース、Ｄ−キシロ
ース、Ｌ−フコース、Ｌ−ガラクトース、Ｄ−グルコー
スの何れかを作用させることにより前記CKを還元糖化
し、この還元糖化されたCKを液状状態に保持することを
第１の特徴としている。またこの第１の特徴において、
還元糖化されたCKを高分子物質を含む溶液に加えて液状
状態に保持することを第２の特徴としている。なお以下
の本文において、還元糖化されたCKのことを「還元糖化
CK」と称する。
下、CKに対して、還元糖としてＤ−フコース、Ｄ−タロ
ース、Ｌ−ラムノース、Ｌ−アラビノース、Ｄ−マンノ
ース、Ｄ−ガラクトース、Ｌ−リキソース、Ｄ−キシロ
ース、Ｌ−フコース、Ｌ−ガラクトース、Ｄ−グルコー
スの何れかを作用させることにより前記CKを還元糖化
し、この還元糖化されたCKを液状状態に保持することを
第１の特徴としている。またこの第１の特徴において、
還元糖化されたCKを高分子物質を含む溶液に加えて液状
状態に保持することを第２の特徴としている。なお以下
の本文において、還元糖化されたCKのことを「還元糖化
CK」と称する。
本発明の方法では、CKのリジン残基のε−アミノ基或
いはＮ−末端アミノ酸のアミノ基が還元糖のアルデヒド
基と反応し、シッフ塩基を形成し、これが更にアマドリ
転位し、還元剤により安定な還元糖化したCKが生成され
る。
いはＮ−末端アミノ酸のアミノ基が還元糖のアルデヒド
基と反応し、シッフ塩基を形成し、これが更にアマドリ
転位し、還元剤により安定な還元糖化したCKが生成され
る。
本発明に用いる還元剤はCKに対する影響が少ない還元
剤であれば特にその種類を限定されないが、NaCHBH3やN
aB3H4が好ましい。そして還元糖は、アルデヒド基を有
する糖であればよい。そのような例としてアルドースが
あり、なかでも、エリトロース、トレホース、アラビノ
ース、キシロース、リキソース、リボース、ガラクトー
ス、グルコース、タロース、マンノース、マンノヘプト
ース、２−デオキシリボース、６−デオキシグルコー
ス、６−デオキシアルトロース、６−デキシアロース、
６−デオキシグロース、６−デオキシタロース、フコー
ス、ラムノース、２−デオキシグルコース、２−デオキ
シグロース、２−ジデオキシアロース、2,6−ジデオキ
シリキンヘキソース、2,6−ジオキシグロース、3,6−ジ
デオキシマンノース、3,6−ジデオキシグルコース、３
−０−メチルガラクトース、４−０−メチル−Ｄ−グル
クロン酸、イズロン酸、ガラクツロン酸、グルグロン
酸、マンヌロン酸、グリセルアルデヒド−３−リン酸、
エリトロース−４−リン酸、３−０−メチルグルコー
ス、2,3−ジ−０−メチルグルコース、アコフロース、
アコヘロース、ジキタロース、６−デオキシ−３−０−
メチルアルトロース、テベトース、カルコース、ランカ
ボース、アヒホース、３−デオキシアピホース、ストレ
プトース、ノビオース、チオグルコース、５−メチルチ
オリポース、３−アミノ−３−デオキシリポース、４−
ジメチルアミノ−4,6−ジデオキシ−グルコース、カノ
サミン、デソアミン、ミカミノース、ミコサミン、キシ
ロビホース、キシロトリオース、マルトトリオース、マ
ルトース、パノース、セロビオース、ラクトース等があ
る。が、勿論本発明はこれらに限定されるものではな
い。
剤であれば特にその種類を限定されないが、NaCHBH3やN
aB3H4が好ましい。そして還元糖は、アルデヒド基を有
する糖であればよい。そのような例としてアルドースが
あり、なかでも、エリトロース、トレホース、アラビノ
ース、キシロース、リキソース、リボース、ガラクトー
ス、グルコース、タロース、マンノース、マンノヘプト
ース、２−デオキシリボース、６−デオキシグルコー
ス、６−デオキシアルトロース、６−デキシアロース、
６−デオキシグロース、６−デオキシタロース、フコー
ス、ラムノース、２−デオキシグルコース、２−デオキ
シグロース、２−ジデオキシアロース、2,6−ジデオキ
シリキンヘキソース、2,6−ジオキシグロース、3,6−ジ
デオキシマンノース、3,6−ジデオキシグルコース、３
−０−メチルガラクトース、４−０−メチル−Ｄ−グル
クロン酸、イズロン酸、ガラクツロン酸、グルグロン
酸、マンヌロン酸、グリセルアルデヒド−３−リン酸、
エリトロース−４−リン酸、３−０−メチルグルコー
ス、2,3−ジ−０−メチルグルコース、アコフロース、
アコヘロース、ジキタロース、６−デオキシ−３−０−
メチルアルトロース、テベトース、カルコース、ランカ
ボース、アヒホース、３−デオキシアピホース、ストレ
プトース、ノビオース、チオグルコース、５−メチルチ
オリポース、３−アミノ−３−デオキシリポース、４−
ジメチルアミノ−4,6−ジデオキシ−グルコース、カノ
サミン、デソアミン、ミカミノース、ミコサミン、キシ
ロビホース、キシロトリオース、マルトトリオース、マ
ルトース、パノース、セロビオース、ラクトース等があ
る。が、勿論本発明はこれらに限定されるものではな
い。
本発明をさらに詳しく述べると、例えば本発明による
CKの安定化は、100mM（Ｍはモル濃度、すなわちmole/l
を表す）のNaClを含有する10mMのリン酸緩衝液（PH7.
4）（以下PBSとする）に、CKを０〜3mg/ml、NaCNBH3を1
0〜50mM、および還元糖を200〜400mM溶かし、この溶液
を37℃で48時間加温し、CKの還元糖化を行うことにより
行うことができる。この場合、温度、時間等の反応条件
はCK濃度、還元糖濃度及びNaCNBH3の濃度に応じて、そ
れぞれ変化させることになる。また薬品の量も使用する
CK濃度に適した量をそれぞれ選択することになる。その
ようなより好ましい例としては、例えば、CK濃度が1mg/
mlの場合は、NaCNBH3が30mM、還元糖が200mMの濃度にな
るようPBS溶液を調製し、これを37℃で48時間加温する
ことにより、CKを還元糖化することができる。このよう
に調製した還元糖化CKは、これをさらに、あらかじめ56
℃で４時間熱処理することにより内因性のCKを失活させ
た血清に対して、適当量加えて血清ベースのCK組成物を
調製することにより、液状で安定化させることができ
る。この場合、用いられるベースは血清に限定されるも
のではない。すなわちベースとしては１〜20％の高分子
物質溶液であればよく、アルブミンあるいはカゼイン等
の蛋白質を用いること ができる。
CKの安定化は、100mM（Ｍはモル濃度、すなわちmole/l
を表す）のNaClを含有する10mMのリン酸緩衝液（PH7.
4）（以下PBSとする）に、CKを０〜3mg/ml、NaCNBH3を1
0〜50mM、および還元糖を200〜400mM溶かし、この溶液
を37℃で48時間加温し、CKの還元糖化を行うことにより
行うことができる。この場合、温度、時間等の反応条件
はCK濃度、還元糖濃度及びNaCNBH3の濃度に応じて、そ
れぞれ変化させることになる。また薬品の量も使用する
CK濃度に適した量をそれぞれ選択することになる。その
ようなより好ましい例としては、例えば、CK濃度が1mg/
mlの場合は、NaCNBH3が30mM、還元糖が200mMの濃度にな
るようPBS溶液を調製し、これを37℃で48時間加温する
ことにより、CKを還元糖化することができる。このよう
に調製した還元糖化CKは、これをさらに、あらかじめ56
℃で４時間熱処理することにより内因性のCKを失活させ
た血清に対して、適当量加えて血清ベースのCK組成物を
調製することにより、液状で安定化させることができ
る。この場合、用いられるベースは血清に限定されるも
のではない。すなわちベースとしては１〜20％の高分子
物質溶液であればよく、アルブミンあるいはカゼイン等
の蛋白質を用いること ができる。
本発明の方法により得られた還元糖化CKを血清ベース
に加え、37℃で７日間保存した場合の経時変化を測定
し、その安定性を比較した結果を第１表に示す。すなわ
ちこの第１表から明らかなように、還元糖化CKを用いる
ことにより非常に安定なCK組成物が調製できることがわ
かる。本発明の方法に用いる還元糖は、上記記載のもの
から選択できるが、第１表に示したように、なかでもＤ
−フコース、Ｄ−タロース、Ｌ−ラムノース、Ｌ−アラ
ビノース、Ｄ−マンノース等がCKを安定化する効果に優
れている。
に加え、37℃で７日間保存した場合の経時変化を測定
し、その安定性を比較した結果を第１表に示す。すなわ
ちこの第１表から明らかなように、還元糖化CKを用いる
ことにより非常に安定なCK組成物が調製できることがわ
かる。本発明の方法に用いる還元糖は、上記記載のもの
から選択できるが、第１表に示したように、なかでもＤ
−フコース、Ｄ−タロース、Ｌ−ラムノース、Ｌ−アラ
ビノース、Ｄ−マンノース等がCKを安定化する効果に優
れている。
本発明の方法において、CKの還元糖化の程度とCKの安
定性の関係について具体例に基づいて説明する。例えば
還元糖としてＤ−グルコースを用い、そのＤ−グルコー
スの濃度を変化させた場合のCKの安定性の度合を第２表
に示す。条件として30mMのNaCNBH3の存在下、1mg/mlのC
KをPBSに溶解したものを37℃48時間の反応条件下で還元
糖化した。第２表から、Ｄ−グルコースは200mM以上あ
れば十分であることがわかる。そして第２表に於いてグ
ルコースの濃度が増すに従い、いいかえれば、還元糖化
が大きくなるにつれてCKの安定化が増していることがわ
かる。この事実は、本発明によるCKの還元糖化がCKの安
定性にいかに大きく寄与しているかを示唆するものであ
る。
定性の関係について具体例に基づいて説明する。例えば
還元糖としてＤ−グルコースを用い、そのＤ−グルコー
スの濃度を変化させた場合のCKの安定性の度合を第２表
に示す。条件として30mMのNaCNBH3の存在下、1mg/mlのC
KをPBSに溶解したものを37℃48時間の反応条件下で還元
糖化した。第２表から、Ｄ−グルコースは200mM以上あ
れば十分であることがわかる。そして第２表に於いてグ
ルコースの濃度が増すに従い、いいかえれば、還元糖化
が大きくなるにつれてCKの安定化が増していることがわ
かる。この事実は、本発明によるCKの還元糖化がCKの安
定性にいかに大きく寄与しているかを示唆するものであ
る。
本発明の方法においてCKが還元糖化されていること
は、図に示す未処理CKと還元糖化CKのアクリルアミド電
気泳動パターンによる移動度の比較により確認できる。
ここではの本発明の処理がなされていないCKに対
しての本発明方法による還元糖化CKの移動度のみが大
きく＋側にかたよっている。これはCKのリジン残基のε
−アミノ基あるいはＮ−末端アミノ基がＤ−グルコース
により還元糖化されたため、これらのアミノ基の有する
＋性が失われ、未処理のCKと比べて−性に傾き、よって
還元糖化CKの移動度が大きくなったものと判断できる。
37℃２日間の加温、あるいは、NaCNBH3存在下における
加温によってCKの移動度が変化したものでないことは図
のの結果により証明される。このように図はCKの還
元糖化を明瞭に示すものであり、CKの還元糖化を確かめ
ることができる。
は、図に示す未処理CKと還元糖化CKのアクリルアミド電
気泳動パターンによる移動度の比較により確認できる。
ここではの本発明の処理がなされていないCKに対
しての本発明方法による還元糖化CKの移動度のみが大
きく＋側にかたよっている。これはCKのリジン残基のε
−アミノ基あるいはＮ−末端アミノ基がＤ−グルコース
により還元糖化されたため、これらのアミノ基の有する
＋性が失われ、未処理のCKと比べて−性に傾き、よって
還元糖化CKの移動度が大きくなったものと判断できる。
37℃２日間の加温、あるいは、NaCNBH3存在下における
加温によってCKの移動度が変化したものでないことは図
のの結果により証明される。このように図はCKの還
元糖化を明瞭に示すものであり、CKの還元糖化を確かめ
ることができる。
また本発明の方法によるCKの還元糖化がCKの反応速度
に影響を与えるかどうかを検討するため、Ｄ−グルコー
スで還元糖化したCKと、還元糖化未処理のCKのそれぞれ
の反応時のKm値を求めた。結果が第３表である。この結
果から明らかなように、クレアチンリン酸及びアデノシ
ン二リン酸（ADP）に対するKm値は、いずれも還元糖化
によって全く変化しないことが確認された。
に影響を与えるかどうかを検討するため、Ｄ−グルコー
スで還元糖化したCKと、還元糖化未処理のCKのそれぞれ
の反応時のKm値を求めた。結果が第３表である。この結
果から明らかなように、クレアチンリン酸及びアデノシ
ン二リン酸（ADP）に対するKm値は、いずれも還元糖化
によって全く変化しないことが確認された。
更に、第１表に記載の各還元糖化CKについての反応時
のKm値も同様であった。
のKm値も同様であった。
このように本発明の方法はCKの酸素本来の反応速度に
全く影響を与えないでCKを安定化しうる最良の方法であ
る。
全く影響を与えないでCKを安定化しうる最良の方法であ
る。
CKの活性測定は次のようにして行った。すなわちクレ
アチンリン酸二ナトリウムを主成分とする測定用溶液0.
45mlに試料溶液0.01mlを加えて37℃で加温し340nmにお
ける１分間あたりの吸光度変化量（△Ａ）を求めること
によりCK値を測定した。
アチンリン酸二ナトリウムを主成分とする測定用溶液0.
45mlに試料溶液0.01mlを加えて37℃で加温し340nmにお
ける１分間あたりの吸光度変化量（△Ａ）を求めること
によりCK値を測定した。
＜発明の作用効果＞ 本発明のクレアチンキナーゼの安定化方法によれば、
還元剤の存在下、クレアチンキナーゼに対して、還元糖
としてＤ−フコース、Ｄ−タロース、Ｌ−ラムノース、
Ｌ−アラビノース、Ｄ−マンノース、Ｄ−ガラクトー
ス、Ｌ−リキソース、Ｄ−キシロース、Ｌ−フコース、
Ｌ−ガラクトース、Ｄ−グルコースの何れかを作用させ
るようにしているので、クレアチンキナーゼを非常に安
定性良く還元糖化することができ、これによってクレア
チンキナーゼの酵素として本来持つ反応速度に何ら悪影
響を与えることなく、しかもクレアチンキナーゼを液状
で十分良好に安定させることができる。液状で安定化す
るので、日常の臨床検査等における取り扱いが非常に容
易で且つ粘性の低い液状であるので操作性も非常に良好
となり、日常使用に対する有用性が非常に高い。
還元剤の存在下、クレアチンキナーゼに対して、還元糖
としてＤ−フコース、Ｄ−タロース、Ｌ−ラムノース、
Ｌ−アラビノース、Ｄ−マンノース、Ｄ−ガラクトー
ス、Ｌ−リキソース、Ｄ−キシロース、Ｌ−フコース、
Ｌ−ガラクトース、Ｄ−グルコースの何れかを作用させ
るようにしているので、クレアチンキナーゼを非常に安
定性良く還元糖化することができ、これによってクレア
チンキナーゼの酵素として本来持つ反応速度に何ら悪影
響を与えることなく、しかもクレアチンキナーゼを液状
で十分良好に安定させることができる。液状で安定化す
るので、日常の臨床検査等における取り扱いが非常に容
易で且つ粘性の低い液状であるので操作性も非常に良好
となり、日常使用に対する有用性が非常に高い。
また特許請求の範囲第２項に記載のクレアチンキナー
ゼの安定化方法によれば、上記した効果に加えて、高分
子物質の存在によりクレアチンキナーゼの安定性を一層
増すことができる。
ゼの安定化方法によれば、上記した効果に加えて、高分
子物質の存在によりクレアチンキナーゼの安定性を一層
増すことができる。
以下本発明の実施例を説明するが、本発明はこれらに
限定されるものではない。
限定されるものではない。
実施例１ CK1mg及びＬ−ラムノース36.4mgを100mMのNaClを含む
10mMのPBS（pH7.4）1mlに溶解する。次にNaCNBH31.88mg
を加えて溶解し、0.45μｍのメンブランフィルターで除
菌濾過し、無菌的に密封容器に入れて37℃48時間加温す
る。これによりＬ−ラムノースで還元糖化されたCK溶液
とする。このＬ−ラムノースによる還元糖化CK溶液を透
析チューブに入れ、同緩衝液200mlに対して４℃で一昼
夜透析する。透析されたCK溶液のCK活性を測定したとこ
ろ70％のCK活性であった。
10mMのPBS（pH7.4）1mlに溶解する。次にNaCNBH31.88mg
を加えて溶解し、0.45μｍのメンブランフィルターで除
菌濾過し、無菌的に密封容器に入れて37℃48時間加温す
る。これによりＬ−ラムノースで還元糖化されたCK溶液
とする。このＬ−ラムノースによる還元糖化CK溶液を透
析チューブに入れ、同緩衝液200mlに対して４℃で一昼
夜透析する。透析されたCK溶液のCK活性を測定したとこ
ろ70％のCK活性であった。
次にあらかじめ56℃４時間加熱処理し、さらに２％ケ
イソウ土処理した牛血清ベース20mlに対して、上記Ｌ−
ラムノースで還元糖化されたCK溶液50μｌを加え、これ
を0.45μｍで除菌濾過し、無菌的に密封容器に小分け分
注した。このような方法で調製したCK組成物を37℃で７
日間保存し、CK活性を測定したところ、CK活性の低下は
認められなかった。
イソウ土処理した牛血清ベース20mlに対して、上記Ｌ−
ラムノースで還元糖化されたCK溶液50μｌを加え、これ
を0.45μｍで除菌濾過し、無菌的に密封容器に小分け分
注した。このような方法で調製したCK組成物を37℃で７
日間保存し、CK活性を測定したところ、CK活性の低下は
認められなかった。
実施例２ 実施例１で用いたＬ−ラムノースのかわりにＤ−フコ
ース32.8mgを用い、実施例１と同様に行った。透析され
た還元糖化CK溶液のCK活性を測定し、約70％のCK活性を
得た。このＤ−フコースによって還元糖化されたCK溶液
50μｌを、実施例１と同様に処理した牛血清ベース20ml
に加え、Ｄ−フコースによって還元糖化されたCKの牛血
清溶液を調製した。このような方法で調製したCK組成物
を37℃７日間保存しCK活性を測定したところ、CK活性の
低下は認められなかった。
ース32.8mgを用い、実施例１と同様に行った。透析され
た還元糖化CK溶液のCK活性を測定し、約70％のCK活性を
得た。このＤ−フコースによって還元糖化されたCK溶液
50μｌを、実施例１と同様に処理した牛血清ベース20ml
に加え、Ｄ−フコースによって還元糖化されたCKの牛血
清溶液を調製した。このような方法で調製したCK組成物
を37℃７日間保存しCK活性を測定したところ、CK活性の
低下は認められなかった。
実施例３ 実施例１及び実施例２に記載の牛血清ベースのかわり
に８％牛血清アルブミンを含むPBS溶液を用いて、Ｌ−
ラムノースにより還元糖化されたCKの組成物及びＤ−フ
コースにより還元糖化されたCKの組成物を調製し、37℃
７日間保存した後CK活性を測定したところ、共にCK活性
の低下は認められなかった。
に８％牛血清アルブミンを含むPBS溶液を用いて、Ｌ−
ラムノースにより還元糖化されたCKの組成物及びＤ−フ
コースにより還元糖化されたCKの組成物を調製し、37℃
７日間保存した後CK活性を測定したところ、共にCK活性
の低下は認められなかった。
図は本発明の方法による処理がなされていないCK（、
、）と本発明の処理がなされた還元糖化CKとにおけ
るアクリルアミドゲル電気泳動パターンを示す図であ
る。
、）と本発明の処理がなされた還元糖化CKとにおけ
るアクリルアミドゲル電気泳動パターンを示す図であ
る。
Claims (2)
- 【請求項１】還元剤の存在下、クレアチンキナーゼに対
して、還元糖としてＤ−フコース、Ｄ−タロース、Ｌ−
ラムノース、Ｌ−アラビノース、Ｄ−マンノース、Ｄ−
ガラクトース、Ｌ−リキソース、Ｄ−キシロース、Ｌ−
フコース、Ｌ−ガラクトース、Ｄ−グルコースの何れか
を作用させることにより前記クレアチンキナーゼを還元
糖化し、この還元糖化されたクレアチンキナーゼを液状
状態に保持することを特徴とするクレアチンキナーゼの
安定化方法。 - 【請求項２】還元糖化されたクレアチンキナーゼを高分
子物質を含む溶液に加えて液状状態に保持する特許請求
の範囲第１項に記載のクレアチンキナーゼの安定化方
法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61095984A JP2575648B2 (ja) | 1986-04-24 | 1986-04-24 | クレアチンキナ−ゼの安定化方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61095984A JP2575648B2 (ja) | 1986-04-24 | 1986-04-24 | クレアチンキナ−ゼの安定化方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62253378A JPS62253378A (ja) | 1987-11-05 |
| JP2575648B2 true JP2575648B2 (ja) | 1997-01-29 |
Family
ID=14152408
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP61095984A Expired - Lifetime JP2575648B2 (ja) | 1986-04-24 | 1986-04-24 | クレアチンキナ−ゼの安定化方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2575648B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN111909922B (zh) * | 2020-06-28 | 2023-06-02 | 浙江清华长三角研究院 | 一种高稳定性的肌酸激酶保护基质 |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS56160991A (en) * | 1980-05-15 | 1981-12-11 | Atsuyuki Kato | Stabilized dihydrofolate reductase |
| JPS57122796A (en) * | 1980-12-09 | 1982-07-30 | American Hospital Supply Corp | Stabilized creatinekinase control |
| JPS606192A (ja) * | 1983-06-06 | 1985-01-12 | オ−ソ・ダイアグノステイツク・システムズ・インコ−ポレ−テツド | 安定化されたイソ酵素制御生成物 |
-
1986
- 1986-04-24 JP JP61095984A patent/JP2575648B2/ja not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS56160991A (en) * | 1980-05-15 | 1981-12-11 | Atsuyuki Kato | Stabilized dihydrofolate reductase |
| JPS57122796A (en) * | 1980-12-09 | 1982-07-30 | American Hospital Supply Corp | Stabilized creatinekinase control |
| JPS606192A (ja) * | 1983-06-06 | 1985-01-12 | オ−ソ・ダイアグノステイツク・システムズ・インコ−ポレ−テツド | 安定化されたイソ酵素制御生成物 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS62253378A (ja) | 1987-11-05 |
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