JP2023524401A - 遺伝子治療の増強のためのアデノ随伴ウイルス(aav)の制御された修飾 - Google Patents

遺伝子治療の増強のためのアデノ随伴ウイルス(aav)の制御された修飾 Download PDF

Info

Publication number
JP2023524401A
JP2023524401A JP2022563990A JP2022563990A JP2023524401A JP 2023524401 A JP2023524401 A JP 2023524401A JP 2022563990 A JP2022563990 A JP 2022563990A JP 2022563990 A JP2022563990 A JP 2022563990A JP 2023524401 A JP2023524401 A JP 2023524401A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
aav
amino acid
genetically modified
variant
capsid protein
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2022563990A
Other languages
English (en)
Other versions
JPWO2021222899A5 (ja
Inventor
アビシェク チャッテルジー
レイチェル イー. ケレメン
サラ ビー. エリックソン
チュアン ファム
Original Assignee
トラスティーズ オブ ボストン カレッジ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by トラスティーズ オブ ボストン カレッジ filed Critical トラスティーズ オブ ボストン カレッジ
Publication of JP2023524401A publication Critical patent/JP2023524401A/ja
Publication of JPWO2021222899A5 publication Critical patent/JPWO2021222899A5/ja
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2750/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssDNA viruses
    • C12N2750/00011Details
    • C12N2750/14011Parvoviridae
    • C12N2750/14111Dependovirus, e.g. adenoassociated viruses
    • C12N2750/14121Viruses as such, e.g. new isolates, mutants or their genomic sequences
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2750/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssDNA viruses
    • C12N2750/00011Details
    • C12N2750/14011Parvoviridae
    • C12N2750/14111Dependovirus, e.g. adenoassociated viruses
    • C12N2750/14122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2750/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssDNA viruses
    • C12N2750/00011Details
    • C12N2750/14011Parvoviridae
    • C12N2750/14111Dependovirus, e.g. adenoassociated viruses
    • C12N2750/14141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2750/14143Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2750/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssDNA viruses
    • C12N2750/00011Details
    • C12N2750/14011Parvoviridae
    • C12N2750/14111Dependovirus, e.g. adenoassociated viruses
    • C12N2750/14141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2750/14145Special targeting system for viral vectors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2750/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssDNA viruses
    • C12N2750/00011Details
    • C12N2750/14011Parvoviridae
    • C12N2750/14111Dependovirus, e.g. adenoassociated viruses
    • C12N2750/14151Methods of production or purification of viral material
    • C12N2750/14152Methods of production or purification of viral material relating to complementing cells and packaging systems for producing virus or viral particles

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

本発明は、部位及び化学量論に対する制御を伴ってAAVカプシドを化学的に修飾するためのプラットフォームを開示する。3つのカプシドタンパク質の任意のサブセットへの部位特異的な天然アミノ酸変異及び非天然アミノ酸変異の導入を可能にするAAVパッケージング系が記載される。これらの操作された残基は、その後、得られたカプシドを部位及び化学量論に対する精密な制御を伴って化学的に機能化するために使用することができる。このような制御された修飾戦略は、多種多様な実体をAAVカプシドに結合して、その向性、免疫原性等を操作するために使用することができる。【選択図】図2

Description

政府支援
本発明は、National Science Foundation(米国国立科学財団)によって授与された助成金番号1817893の下で政府支援により行われた。政府は本発明に一定の権利を有する。
関連出願
本出願は、2020年5月1日出願の米国仮出願第63/018,573号の米国特許法第119条(e)の下での利益を主張する。この仮出願は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
ASCIIテキストファイルにおける資料の参照による組み込み
本出願は、以下のASCIIテキストファイルに含まれる配列表を参照により組み込む:0342_0010WO1_SL.txt;2021年5月3日作成、サイズ76、879バイト。
発明の分野
本発明は、ウイルスカプシドの制御された化学修飾による組換え(操作された)AAVベースの遺伝子治療ベクターの開発に焦点を当てたバイオテクノロジーの分野に向けられる。
アデノ随伴ウイルス(AAV)は、遺伝子治療のための最も有望な送達ビヒクルの1つとして出現している。これは、天然に複製欠損であり、低い自然免疫応答しか示さず、分裂細胞及び非分裂細胞に効率的に感染し、送達された治療用遺伝子のインビボでの安定な長期発現を提供する。実際、いくつかのAAVベースの遺伝子治療が最近承認されており、他の多くのものが現在臨床試験中である。現在治療不可能である多数の疾患の治癒を提供するAAVベースの遺伝子治療の見込みにもかかわらず、いくつかの重要な課題が存在する。例えば、現在のアプローチのほぼすべては、限定的な先天性組織親和性を示すAAVの天然の血清型に依存する。当然ながら、これらのベクターによって効率的に感染される細胞型に関連する疾患は、このアプローチによって標的とされることが可能である。しかしながら、既存のAAVベクターに容易に感染しない組織に生じる多くの他の疾患は、現在難治性のままである。既存のAAVベクターの組織親和性を再操作する能力は、所望の位置に遺伝子ペイロードを送達することができるカスタムベクターを作製するのに非常に有用であり、AAVベースの遺伝子治療の範囲を実質的に拡大する。加えて、多くの患者は、既存のAAVベクターに対する既存の免疫を有する。さらには、治療用AAVベクターの投与は強力な適応免疫応答を誘発し、同じベクターの第2の用量を妨げる。このような免疫認識を回避するために既存のAAVベクターを操作する能力は、持続可能な遺伝子治療の開発にとって重要である。指向性進化法は、より治療的に望ましい形質を有するAAVカプシドを開発するために使用されている。しかしながら、このアプローチはしばしば許容可能な解決手段をもたらすのには信頼性がなく、得られた変異体AAVカプシドはしばしばパッケージング欠陥を示す。
既存のAAVカプシド上の活性調節実体を制御された様式で提示する能力は、それらの特性を操作するための魅力的なモジュール式アプローチを提供する。マイナーカプシドタンパク質のN末端伸長、カプシドタンパク質の許容部位へのペプチドループの挿入、及びカプシド表面上のリシン等の既存のアミノ酸の修飾を含む多数の方法がこの目標に向けて試みられている。しかしながら、N末端伸長及びループ挿入は、しばしば複合体AAVカプシドの会合(組立、アセンブリ)を破壊する。AAVカプシドの繊細さのため、ペプチドループの挿入は非常に少数の位置に制限され、得られるカプシドはしばしば最適以下のパッケージングを示す。これらの方法は、活性調節部分の配置、提示されることが可能な実体の構造的多様性、及びカプシド表面上に提示される標的化部分の数を最適化する能力の最適化において限定された柔軟性しか提供しない。
アジド官能基を有するUAAを組み込んだAAVを産生することが可能であり、次いでこれが、歪み促進型アジド-アルキン付加環化(SPAAC)を介してシクロオクチン修飾cRGDFCにコンジュゲートされ、こうして上記ウイルスが、ある種の癌細胞において過剰発現されるαVβ3インテグリン受容体に再標的化された。しかしながら、上述のUAAの組み込みは、AAVの60種のカプシドタンパク質すべてへのUAAの組み込みに制限されている。本明細書に記載されるように、AAVウイルス粒子の60種のカプシドタンパク質(マイナーカプシドタンパク質VP1及びVP2並びにメジャーカプシドタンパク質VP3を含む)すべての過剰修飾は、その感染力(感染性)に強く有害であることが実証されている。(野生型AAVと比較して)カプシドあたり特定の数の天然アミノ酸及び/又はUAAによる修飾/変異を組み込む/導入するためのバリアントカプシドを生成するためのアミノ酸変異の数を制御する能力は、変異アミノ酸残基を有するバリアント(変異体)カプシドタンパク質を含む感染性遺伝子改変アデノ随伴ウイルスの合成を可能にするための本発明の重要な特徴である。バリアントカプシドタンパク質におけるこれらの変異した残基は、AAVに部位特異的にバイオコンジュゲーション「ハンドル」を導入して、AAV機能の最適操作を可能にする明確な数の活性調節基の組み込み/導入をもたらすための、生物学的及び/又は化学的実体(本明細書において「基」とも呼ばれる)の結合(例えば、共有結合)を可能にする。
本発明は、野生型AAVの対応する部位と比較してカプシドタンパク質の1つ以上の部位特異的位置に修飾/変異を有する遺伝子操作された/遺伝子改変されたアデノ随伴ウイルス(AAV)、及びこれらの遺伝子改変ウイルスを作製する方法を包含する。重要なことに、本明細書に記載されるように、改変は、AAV粒子の感染力に影響を及ぼすことなく(すなわち、遺伝子改変AAVの感染力は、類似の生物学的条件下で野生型AAVの感染力に本質的に匹敵するか、又はそれからわずかしか変化していない)、VP1、VP2若しくはVP3等の単一のカプシドタンパク質、又はVP1及びVP2の両方における等のこれらのカプシドタンパク質の複数のものにおける1つ以上の特定の化学選択的位置に限定されてもよい。
AAVは、非構造Rep及びAAPタンパク質並びに構造Capタンパク質VP1、VP2及びVP3をコードする4.5kbの一本鎖DNAゲノムを有する小さな非エンベロープパルボウイルスであり、VP1、VP2及びVP3は共通のC末端を共有しN末端伸長によって異なる。エンベロープウイルスは表面タンパク質で装飾された脂質膜を有するが、このようなエンベロープウイルスとは異なり、AAVは、およそ1:1:10の化学量論でタンパク質VP1、VP2、及びVP3の60コピーのみからなる密集した20面体のカプシドを有する。AAVは複製欠損であり、完全なウイルス産生及びエスケープにはアデノウイルス等のヘルパーウイルスの存在が必要である。AAVは、異なる天然の向性(親和性)を有するいくつかの異なる血清型を有する。例えば、本明細書に記載される1つの血清型は、ヘパラン硫酸プロテオグリカン受容体を発現する細胞を標的とするAAV2型(AAV2)である。
アデノ随伴ウイルスは、ヒト遺伝子治療の最も有望な候補として浮上している。このウイルスは、遺伝子治療ベクターに理想的な、低い免疫原性及び長期遺伝子発現のような望ましい性質を誇る。しかしながら、これらのウイルスの他の特性の多くは、治療上の必要性と整合しないことが多い。例えば、ウイルスの天然血清型は、独特の細胞特異性を有し、これは、どの細胞/組織がヒト遺伝子治療のために標的化できるかを制限する。既存のAAVベクターを、部位及び化学量論に対する正確な制御を伴って機能化する能力は、細胞特異性及び免疫回避等の治療的に望ましい形質を導入するための魅力的な手段を提供する。
バイオコンジュゲーション(生体共役反応)実体又は「ハンドル」(例えば、天然アミノ酸システイン、又は広範囲のバイオコンジュゲーション化学を有する非天然アミノ酸)等の実体又は基を有するアミノ酸、例えばUAAをAAVのマイナーカプシドタンパク質に導入することによって、AAVを精密かつ部位特異的に遺伝子操作するための技術が本明細書に記載される。マイナーカプシドタンパク質VP1及びVP2は、AAVカプシドあたり各々5コピーで存在する。本明細書に記載されるように、本発明の構築物及び方法は、上記3つのカプシドタンパク質のいずれの部位選択的修飾をも可能にするが、VP1又はVP2又はVP1及びVP2の両方を特異的に修飾し、完全構築AAVカプシドあたり5個又は10個の基の結合を可能にする(本明細書で使用される用語「完全会合」は、感染性ウイルス粒子を形成するために、すべての3つのカプシドタンパク質であるマイナーVP1及びVP2カプシドタンパク質並びにメジャーカプシドタンパク質であるVP3を組み込むウイルス会合(ウイルスアセンブリ)を意味する)。当該方法はさらに、バイオコンジュゲーションハンドル(カプシドタンパク質あたり最大2つのバイオコンジュゲーションハンドル)の組み込みを可能にし、カプシドあたり15個又は20個のバイオコンジュゲーション基の正確な結合を可能にする。
より具体的には、本発明は、マイナーカプシドタンパク質VP1及びVP2のいずれか1つ又はその組み合わせが部位特異的に化学修飾されることが可能であるAAVベクターを生成する方法を包含する。この3つのカプシドタンパク質は異なる化学量論(カプシドあたりそれぞれ5コピー、5コピー及び50コピーのVP1、VP2及びVP3)で存在するので、この方法は、修飾部位及び修飾数の両方に対する正確な制御を伴ってカプシドに修飾を導入することができ、かつウイルスの生物学的活性、とりわけその標的細胞感染力を保持することができる均質なAAVコンジュゲートを作製する能力を提供する。
本明細書に記載されるように、ナンセンスコドンを抑制する操作されたアミノアシル-tRNA合成酵素(aaRS)/tRNA対を使用して、天然アミノ酸及び非天然アミノ酸(UAA)をカプシドタンパク質に部位特異的に組み込むことが可能である。それらの小さいサイズに起因して、UAAは、多くの位置でAAVカプシドにおいて良好に許容される。
遺伝子改変アデノ随伴ウイルス(AAV)であって、AAVカプシドが、少なくとも1つのバリアントマイナーカプシドタンパク質VP1、VP2、又はVP1及びVP2の両方を含み、これらのバリアントマイナーカプシドタンパク質は、野生型AAV VP1又はVP2カプシドタンパク質と比較して、1つ以上のアミノ酸残基部位で変異し、野生型AAVに存在しない天然アミノ酸、又は非天然アミノ酸(UAA)を組み込んでいる遺伝子改変AAVが本発明に包含される。重要なことに、本明細書に記載される遺伝子改変AAVは、同等の条件下で野生型AAVと比較してそれらの感染力を保持する。
特に、本発明は、バリアントマイナーカプシドタンパク質を含む遺伝子改変アデノ随伴ウイルス(AAV)であって、カプシドコード配列(配列番号1)は、AAV VP1又はVP2又はVP3カプシドタンパク質オープンリーディングフレーム(ORF)の翻訳起点において変異し、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方の翻訳を防止し、VP1、VP2、VP3又はVP1及びVP2の両方が欠失したAAVカプシドタンパク質をもたらす遺伝子改変AAVを包含する。次いで、欠失した/欠損したカプシドタンパク質は、欠失したマイナーカプシドタンパク質(複数種可)をコードする第2のカプシドコード配列からトランスで(in trans)提供され(すなわち、発現され)、1種以上のバリアントカプシドタンパク質を有する遺伝子改変AAVをもたらす。本明細書において、VP2は配列番号2によっても表され、VP3は配列番号3によっても表される。
当該遺伝子改変AAVカプシドタンパク質は、配列番号1、又は配列番号1の少なくとも約70%、75%、80%、85%、90%、95%、99%、若しくは90%~99%の配列同一性を含む配列を含む。このバリアントカプシドタンパク質は、(例えば、図2に示すように)VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方を欠失させるために特定の部位で変異している。例えば、配列番号1の位置T454において、終止コドンが、本明細書に記載される技術を使用して挿入されることが可能である。そのような技術は、例えば、PCT/US2020/055834号、PCT/US2020/038766号又はPCT/US2020/029567号にも記載されており、それらの教示は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。より具体的には、バリアントカプシドタンパク質に組み込まれる終止コドンは、TAG、TAA又はTGAサプレッサー終止コドンであってもよい。
本発明に特に包含されるのは、マイナーカプシドタンパク質CMV-VP1-delVP23(図20、配列番号7);CMV-VP2-delVP3(図21、配列番号9)及びCMV-VP1-VP2-delVP3(図22、配列番号10)である。本明細書に記載されるように、CMVプロモーター配列が例示されるが、任意の適切なプロモーター配列を組み込むことができる。加えて、マイナーカプシドタンパク質は、本明細書に記載される天然アミノ酸又は非天然アミノ酸を組み込むことができる。
本発明の遺伝子改変AAVの重要な利点は、マイナーカプシドタンパク質に組み込まれるUAAが低レベルであり、従って、それらの産生効率がUAAの組み込みによって損なわれない(著しい影響を受けることはない)ことに留意することが重要である。従って、AAVは、野生型ウイルスに実質的に匹敵する感染(力)価でパッケージングされ/会合する。
本発明の遺伝子改変AAVのバリアントカプシドタンパク質は、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方の1つ以上の変異アミノ酸残基を含むことができ、この変異アミノ酸残基部位は、非天然アミノ酸(UAA)を組み込む。本発明での使用に適したUAAの例は図1に示されており、図1は、式1~12を示す(上から1行目の左から右へ式1~6であり、2行目の左から右へ炭素鎖伸長部分の長さ及び置換基を含んで式7~12である)。より具体的には、本発明での使用に適した非天然アミノ酸は、フェニルアラニン類似体、チロシル類似体、トリプトファニル類似体、又はリシル類似体からなる群から選択することができる。特に、上記類似体は、p-ベンゾイルフェニルアラニン(pBpA)、O-メチルチロシン(OMeY)、5-アジドトリプトファン、5-プロパルギルオキシアミノトリプトファン、5-アミノトリプトファン、5-メトキシトリプトファン、5-O-アリルトリプトファン、5-ブロモトリプトファン、アジド-リシン(AzK)又はNε-アセチルリシン(AcK)、C5Az、LCA、Nε-アセチルリシン(AcK)、シクロプロペンアミノ酸、Nε-(1-メチルシクロプロパ-2-エンカルボキシアミド)-リシン(CpK)、5-ヒドロキシ-トリプトファン(5-HTP)、LCAlk、DiaazK及びLCKetからなる群から選択される。
あるいは、遺伝子改変AAVのバリアントマイナーカプシドタンパク質の変異は、システイン又はセレノシステイン等の天然アミノ酸残基であることができる。具体的には、この天然アミノ酸残基は、野生型AAVの同じ位置に位置するアミノ酸残基とは異なる。
本発明の遺伝子改変AAVは、バイオコンジュゲーションハンドルをさらに含むことができる。このようなバイオコンジュゲーションハンドルは、部位特異的にバリアントマイナーカプシドタンパク質の変異した天然アミノ酸残基又は非天然アミノ酸残基に共有結合することができる。本明細書に記載されるように、5~10個のバイオコンジュゲーションハンドルは、マイナーカプシドタンパク質に特異的に組み込まれることができ、従って、完全会合AAVカプシドあたり5~10個のバイオコンジュゲーションハンドルを有する遺伝子改変AAVをもたらす。この場合もやはり、少なくとも1つのバリアントマイナーカプシドタンパク質VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方を含む遺伝子改変AAVは、細胞培養条件等の同様の条件下で野生型AAVに匹敵する標的細胞の感染力を保持する。例えば、変異アミノ酸は、化学的又は生物学的実体とコンジュゲートされてもよい(例えば、生物学的実体は、タンパク質、ペプチド、核酸、脂質又は炭水化物を含むことができる)。
本発明によって具体的に包含されるのは、バリアントカプシドタンパク質を含むカプシドを含む遺伝子改変された感染性AAVである。例えば、このバリアントカプシドタンパク質は、配列番号1、又は配列番号1と少なくとも約80%の配列同一性を有する配列を含むことができ、この配列は、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方を欠失するように変異している。遺伝子改変AAVのカプシドの変異は、1つ以上の位置、例えば、位置263、位置454、位置456、位置587及び/又は位置588にあってもよく、これらの変異した位置は、野生型VP1配列に対するものである。VP1配列は、位置263、位置454、位置456及び位置588で変異し、位置587では変異していないということも可能である。あるいは、VP1配列は、位置263、位置454、位置456で変異し、位置585でも位置588でも変異していないということが可能である。本発明の感染性遺伝子改変AAVの特徴は、同等の条件下での野生型AAVの感染力に実質的に匹敵する感染力、同等の条件下での野生型AAVに実質的に匹敵する力価を有するAAVのパッケージング、又は野生型AAVに匹敵する感染力及びパッケージングの両方である。
本発明の1つの実施形態では、改変AAVの変異アミノ酸残基(複数種可)は、化学実体又はタンパク質実体(本明細書においてバイオコンジュゲーションハンドル又は基とも呼ばれる)と機能化又はコンジュゲートされる。本明細書に記載されるように、化学実体又はタンパク質実体は、プローブ、小分子リガンド、ペプチド、環状ペプチド、ヌクレオチド、ポリマー、タンパク質、又はウイルスコンジュゲートからなる群から選択される。特定の実施形態では、遺伝子改変された感染性AAVは、化学実体又はタンパク質実体を含み、この実体は環状ペプチドcRGDポリエチレングリコール(PEG)である。
本発明の別の実施形態では、バリアントVP1又はVP2の変異アミノ酸残基部位は、天然アミノ酸を組み込む。特に、この天然アミノ酸はシステイン又はセレノシステインである。
上記バリアントカプシドタンパク質(複数種可)を含む本発明の遺伝子改変された感染性AAV(例えば、cRGDペプチドで機能化された変異カプシドタンパク質を含む遺伝子改変AAV)は、その天然同族細胞受容体に結合すること、又はそれを認識すること、又はそれと相互作用して、非同族標的細胞に結合すること、又はそれを認識すること、又はそれと相互作用することから「再標的化」されることが可能である。本明細書に記載されるように、カプシドあたりに結合される任意の数の再標的化基は、得られるAAVコンジュゲートの特性に劇的に影響を及ぼす。これは、化学修飾によってAAVベクターの特性を変化させるために部位及び化学量論を制御することの重要性を強調する。本明細書に記載されるように、部位及び化学量論(カプシドあたり何個の修飾が導入されるか)の両方に対する前例のない制御を伴うAAVカプシドの精密で選択的な化学修飾が今や可能である。このような制御は、より治療的に望ましい特性を有する操作されたAAVベクターの開発にとって極めて重要であろう。
感染性遺伝子改変AAVを製造/作製する方法であって、このAAVがバリアントAAVカプシドタンパク質を含み、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方が、野生型VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方と比較して、1つ以上の変異アミノ酸残基部位を含む方法も本発明に包含される。概して、当該方法は、培養中のコンピテント宿主細胞を提供する工程と、この培養細胞に、1)VP1若しくはVP2を発現しないか、又はVP1もVP2も発現しないAAVバリアントVP3、2)VP3を発現しない適切なプロモーターを有するバリアントVP1、VP2又はVP1及びVP2の両方、3)AAV発現に必要なさらなる因子を含む1種以上のプラスミドをトランスフェクトする工程と、4)必要な非天然アミノ酸を提供する工程と、5)終止コドンに応答してその非天然アミノ酸を選択的に導入(チャージ)する操作されたアミノアシル-tRNA合成酵素/tRNA対をコードするプラスミドを提供する工程とを含む。上記細胞及びプラスミドは、プラスミド遺伝子の発現及びAAVの会合に充分な条件下で培養され、これにより、バリアントカプシドタンパク質を含む感染性遺伝子改変AAVを産生し、このバリアントカプシドタンパク質では、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方が、野生型AAVと比較して1つ以上のアミノ酸残基で変異している。
より具体的には、当該方法は、培養中のコンピテント宿主細胞を提供する工程と、遺伝子改変された感染性AAVの会合及び発現に必要な配列を含むプラスミド/構築物を上記培養細胞に同時トランスフェクトする工程とを含む。1つのmRNAは、異なる開始コドン部位を有するVP1、VP2又はVP3をコードする(図2参照)。開始点が変異している場合、VP1、VP2又はVP3の発現は、各カプシドタンパク質について別々のmRNAを発現させることによって制御することができ、カプシドタンパク質は選択的に変異させることができるが、変異したマイナーカプシドタンパク質VP1及び/又はVP2並びに野生型を会合させて、感染性遺伝子改変AAVを得ることができる。
例えば、本明細書に記載されるように、非天然アミノ酸は、コンピテント宿主細胞に、その非天然アミノ酸を導入する操作されたtRNA合成酵素とtRNAとの対をコードするプラスミドを同時トランスフェクトすることによって、VP1及び/又はVP2に部位特異的に組み込むことができる。より具体的には、バリアントVP1、VP2、VP3又はVP1及びVP2の両方の変異部位に応答して非天然アミノ酸(UAA)を同時翻訳的に組み込むための、操作されたアミノ-アシルRNA合成酵素(aaRS)と、その対応するtRNAとを含む直交tRNA/aaRS対が提供され、変異部位に組み込むために必要な非天然アミノ酸が提供される。
変異VP1及び/又はVP2並びに野生型VP3転写物をコードするプラスミドとともに、細胞培養におけるAAVカプシド発現並びに完全なカプシド(すなわち、VP1、VP2及びVP3を含む)の会合に必要とされるさらなる因子をコードするプラスミド(複数種可)も提供される(共培養される)。上記細胞、プラスミド及びUAAは、プラスミド遺伝子の発現及びAAVの会合に充分な条件下で培養/維持され、これにより、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方が野生型AVVと比較して1つ以上のアミノ酸残基部位で変異しているバリアントAAVカプシドタンパク質を含む感染性遺伝子改変AAVが製造される。
操作されたアミノアシル-tRNA合成酵素-tRNA対は、大腸菌ロイシル対、大腸菌トリプトファニル対、大腸菌チロシル対又は古細菌由来ピロリシル対に由来することができる。
当該感染性遺伝子改変AAVは、細胞培養物から回収/収集することができ、そして本明細書中に記載され当業者に公知のような技術を使用して生物学的活性について評価することができる。
感染性遺伝子改変AAVの変異アミノ酸残基部位は、図1、式1~12に示される非天然アミノ酸(UAA)類似体を組み込むことができる。より具体的には、非天然アミノ酸は、フェニルアラニン類似体、チロシル類似体、トリプトファニル類似体、又はリシル類似体からなる群から選択される。上記類似体は、p-ベンゾイルフェニルアラニン(pBpA)、O-メチルチロシン(OMeY)、5-アジドトリプトファン、5-プロパルギルオキシトリプトファン、5-アミノトリプトファン、5-メトキシトリプトファン、5-O-アリルトリプトファン、5-ブロモトリプトファン、アジド-リシン(AzK)又はNε-アセチルリシン(AcK)、C5Az、LCA、Nε-アセチルリシン(AcK)、シクロプロペンアミノ酸、Nε-(1-メチルシクロプロパ-2-エンカルボキシアミド)-リシン(CpK)、5-ヒドロキシ-トリプトファン(5-HTP);LCAlk、DiaazK及びLCKetからなる群から選択される。
あるいは、バリアントカプシドタンパク質の変異アミノ酸残基部位は、天然アミノ酸を組み込み、この天然アミノ酸はシステイン又はセレノシステインである。
上記バリアントカプシドタンパク質の変異アミノ酸は、化学実体又はタンパク質実体で機能化することができ、この実体は、プローブ、小分子リガンド、ペプチド、環状ペプチド、ヌクレオチド、ポリマー、タンパク質、又はウイルスコンジュゲートからなる群から選択される。1つの実施形態では、当該感染性遺伝子改変AAVのバリアントカプシドタンパク質の変異アミノ酸を機能化する実体は、環状ペプチドcRGDである。
当該感染性遺伝子改変AAVは、配列番号1、又は配列番号1と少なくとも約80%の配列同一性を有する配列を含む変異VP1アミノ酸配列を含むことができ、このバリアントVP1カプシドタンパク質は、VP1配列の263、454、456、587及び/又は588に位置する1つ以上の位置で、野生型VP1配列と比較して変異している。VP1配列は、位置263、位置454、位置456及び位置588で変異し、位置587では変異していないということも可能である。あるいは、VP1配列は、位置263、位置454、位置456で変異し、位置585でも位置588でも変異していないということが可能である。
当該感染性遺伝子改変AAVは、配列番号2、又は配列番号2と少なくとも約80%、85%、90%、95若しくは99%の配列同一性を有する配列を含む変異VP2アミノ酸配列を含むことができる。
当該感染性遺伝子改変AAVは、配列番号3、又は配列番号3と少なくとも約80%、84%、90%、95%若しくは99%の配列同一性を有する配列を含むVP3アミノ酸配列を含むことができる。
本明細書に記載される遺伝子改変AAVを含み、遺伝子治療又はワクチン接種(例えば、対象における免疫応答を誘発するもの)に適した1種以上の治療用又は抗原性遺伝子構築物をさらに含む、治療用又は抗原性組成物も本発明によって包含される。当該組成物が抗原を含むワクチン組成物である場合、その組成物はアジュバントをさらに含むことができる。
対象における疾患又は状態の治療方法も本発明に包含される。例えば、この治療方法は、対象に治療組成物を投与する工程を含むことができ、この組成物は、対象における疾患又は状態を減少又は軽減することができる治療量の、本明細書に記載されるAAVベクターと、タンパク質又はペプチドをコードする遺伝子構築物とを含む。治療用組成物における本発明の遺伝子改変AAVベクターの使用は、癌、又は鎌状赤血球貧血の嚢胞性線維症等の疾患を治療するのに特に有用である可能性があり、機能的タンパク質をコードする置換遺伝子を標的化された様式で提供することは、癌又は疾患の症状を減少させるか、又は完全に軽減するであろう。
別の例は、対象において免疫応答を誘発する方法であって、この方法は、抗原性/ワクチン組成物を対象に投与する工程を含み、この抗原性組成物は、本発明の遺伝子改変AAVベクターと、対象において免疫応答を誘発することができる抗原性のタンパク質又はペプチドをコードする遺伝子構築物とを含む。本発明のAAVベクターを使用するこのような方法は、免疫応答を開始することができる免疫細胞を特異的に標的化するであろう。
本発明の遺伝子改変AAVを含むキットも本発明に包含される。このようなキットは、本明細書中に記載される遺伝子改変AAVを含有する適切なバイアル、例えば、滅菌希釈剤中のAAVのバイアル、並びに例えば細胞培養物中でAAVを増殖させるための補充成分のバイアル/容器を含むことができる。説明パンフレットも当該キットに含まれることが可能である。
様々な新規な構成及び部品の組み合わせの詳細を含む本発明の上記及び他の特徴、並びに他の利点が、これより、添付の図面を参照してより詳細に説明され、特許請求の範囲に指摘される。本発明を具体化する特定の方法及び装置は、例示として示されており、本発明を限定するものとして示されているわけではないことが理解されるであろう。本発明の原理及び特徴は、本発明の範囲から逸脱しない範囲で、様々な多数の実施形態において採用されてもよい。
添付の図面において、参照符号は、異なる図を通して同じ部分を指す。図面は必ずしも縮尺通りではない。代わりに、本発明の原理を説明することに重点が置かれている。特許又は出願ファイルは、カラーで実行される少なくとも1つの図面を含む。カラー図面を有するこの特許又は特許出願公開の写しは、請求をして必要な手数料を支払うと、庁によって提供される。
図1は、制御された化学量論でAAVのカプシドに組み込むことができる天然アミノ酸及び非天然アミノ酸の構造の例を示す。特に、式1~12(上から1行目の左から右へ式1~6であり、2行目の左から右へ炭素鎖伸長部分の長さ及び置換を含んで式7~12である)を含むUAA類似体が示されている。 図2は、VP1又はVP2又はVP1及びVP2に選択的に変異(天然アミノ酸又は非天然アミノ酸)を導入するためのスキームを示す。3つのカプシドタンパク質は、選択的スプライシングの使用及び開始コドン使用頻度を介して同じオープンリーディングフレームCapから発現される。変異は、このORFからのVP1、VP2、又はVP3の発現を妨げる翻訳起点(赤色の×によって表される)で操作されている。次いで、欠損したマイナーカプシドタンパク質をトランスで供給することができ、これはCMV等の強力なプロモーターによって駆動される。残りのカプシドタンパク質からVP1、VP2、又はVP1+VP2の発現を分離することにより、他のカプシドタンパク質に影響を及ぼすことなく、これらを選択的に変異させることが可能になる。 図3は、図2に記載される構築物を用いたHEK293T細胞におけるAAV2のパッケージングを示す。バリアントカプシドタンパク質を有するAAVは、元の系と比較して同等の収率を有する。 図4は、HEK293T細胞においてEGFPレポーター遺伝子を送達及び発現するそれらの能力によって測定された、一定の力価での、図3において産生されたパッケージングされた力価ウイルスの感染力を示す。 図5は、AAVカプシドにおける個々のマイナーカプシドタンパク質の選択的非天然アミノ酸変異誘発、及びフルオロフォアを化学的に結合するためのそれらの使用を示す。 図6は、AAVカプシドに結合した再標的化リガンドの数が、その再標的化効率に劇的に影響を及ぼすことを示す。 図7A~7Cは、操作されたシステイン残基でのAAVの正確な標識を示す。 図7A~7Cは、操作されたシステイン残基でのAAVの正確な標識を示す。 図7A~7Cは、操作されたシステイン残基でのAAVの正確な標識を示す。 図8AはAAVアイソフォームVP1(配列番号1)のアミノ酸配列を示す。 図8Bは配列番号2を開示する。 図8Cは配列番号3を開示する。 図9は、AAVカプシドタンパク質アイソフォームVP2のアミノ酸配列(配列番号2)を示す。 図10は、AAVカプシドタンパク質アイソフォームVP3のアミノ酸配列(配列番号3)を示す。 図11A~11Cは、VP1又はVP2又はVP1+VP2図のいずれかへのUAA C5Azの選択的組み込みを示す。 図11A~11Cは、VP1又はVP2又はVP1+VP2図のいずれかへのUAA C5Azの選択的組み込みを示す。 図12A~12Cは、VP1に組み込まれたLCAの結果を示す。 図12A~12Cは、VP1に組み込まれたLCAの結果を示す。 図13A~13Cは、VP1へのCpKの組み込みの結果を示す。 図13A~13Cは、VP1へのCpKの組み込みの結果を示す。 図14A~14Cは、VP1への5HTPの組み込みの結果を示す。 図14A~14Cは、VP1への5HTPの組み込みの結果を示す。 図15A~15Bは、VP1へのいくつかの他の非天然アミノ酸、LCAlk、DiazK及びLCKetの組み込みを示す。 図16A~16Bは、VPI部位454におけるAAVの選択的PEG化の結果を示す。 図17は、RC2-VP1-delをコードする核酸配列(配列番号4)を示す。変異の位置は赤色で示されている。 図17(1)の続きである。 図18は、RC2-VP2-delをコードする核酸配列(配列番号5)を示す。変異の位置は赤色で示されている。 図18(1)の続きである。 図19は、RC2-VP12-delをコードする核酸配列(配列番号6)を示す。変異の位置は赤色で示されている。 図19(1)の続きである。 図20は、CMV-VP1-delVP23をコードする核酸配列(配列番号7)を示す。変異の位置は赤色で示されている。 図21は、CMV-VP2-delVP3をコードする核酸配列(配列番号8)を示す。変異の位置は赤色で示されている。 図22は、CMV-VP1-VP2-delVP3の核酸配列(配列番号9)を示す。変異の位置は赤色で示されている。 図22(1)の続きである。 図23Aは、pIDTsmart-ITR-GFP-4xEcLtR-LeuRSのプラスミドマップである。 図23Bは、上記プラスミドの核酸配列(配列番号10)を示す。 図23B(1)の続きである。 図23B(2)の続きである。 図23B(3)の続きである。 図24Aは、pIDTsmart-TrpRS-8xWtR-ITR-GFPのプラスミドマップを示す。 図24Bは、上記プラスミドの核酸配列(配列番号11)を示す。 図24B(1)の続きである。 図24B(2)の続きである。 図24B(3)の続きである。 図24B(4)の続きである。
これより、本発明が、本発明の例示的な実施形態が示される添付の図面を参照して、以下でより完全に説明される。しかしながら、本発明は、多くの異なる形態で具現化されてもよく、本明細書に記載される実施形態に限定されると解釈されるべきではない。むしろ、これらの実施形態は、本開示が徹底的かつ完全であり、本発明の範囲を当業者に完全に伝えるように提供されている。
本明細書で使用する場合、用語「及び/又は」は、関連する列挙された項目のうちの1つ以上の任意の及びすべての組み合わせを含む。さらに、単数形及び冠詞「a」、「an」及び「the」は、明示的に特段の記載がない限り、複数形も含むものとする。さらに、以下の用語が理解されるであろう。includes、comprises、including及び/又はcomprisingは、本明細書で使用する場合、記載された特徴、整数、工程、操作、要素、及び/又は構成要素の存在を指定するが、1つ以上の他の特徴、整数、工程、操作、要素、構成要素、及び/若しくはそれらのグループの存在又は追加を排除しない。さらに、構成要素又はサブシステムを含む要素が、別の要素に接続又は結合されると言及され、及び/又は示されるとき、その要素は、他の要素に直接接続若しくは結合されることが可能であるし、又は介在要素が存在してもよいことが理解されるであろう。
「第1の」及び「第2の」等の用語は、本明細書では様々な要素を説明するために使用されるが、これらの要素はこれらの用語によって限定されるべきではないことが理解されよう。これらの用語は、ある要素を別の要素と区別するためにのみ使用される。従って、以下で論じられる要素は、第2の要素と呼ぶことができ、同様に、第2の要素は、本発明の教示から逸脱しない範囲で第1の要素と呼ばれてもよい。
特に定義されていない限り、本明細書で使用されるすべての用語(技術用語及び科学用語を含む)は、本発明が属する技術分野の当業者によって通常理解されるものと同じ意味を有する。一般に使用される辞書で定義されるもの等の用語は、関連技術の文脈における意味と整合する意味を有するものとして解釈されるべきであり、本明細書で明示的に理想化された意味又は過度に形式的な意味で定義されない限り、理想化された意味又は過度に形式的な意味で解釈されないことがさらに理解されるであろう。
本発明の説明は、これらの特定の方法論、組成物、細胞株/生物系、又は任意の他の標準プロトコルに限定されないことに留意されたい。本発明は、修飾の部位及び化学量論に対する制御を伴う化学選択的反応を使用して化学的に機能化されることができるAAVベクターを作製するための一般的なプラットフォームを開示するものであり、ウイルスパッケージングに使用される細胞型、操作されたアミノアシル-tRNA合成酵素(aaRS)又はtRNA又はUAA若しくは天然アミノ酸の素性(個性)、修飾を導入するために使用される化学反応等は、この分野及びこの研究における技術の進歩に伴って変わってもよい。
以前は、AAVカプシドへのUAAの組み込みは、60のカプシドタンパク質すべてに向けられていた。3つの重複するカプシドタンパク質は、選択的スプライシング及び開始コドン使用頻度を介して同じオープンリーディングフレーム(ORF)Capから発現されるので、これらのタンパク質のサブセットを選択的に改変することは不可能であった。しかしながら、60のカプシドタンパク質のすべてのその後の化学修飾は、ウイルスの感染力を乱す(例えば、図6、青色のトレース)。この乱れのメカニズムはあまり理解されていないが、ウイルスの複雑な侵入経路に関連する分子プロセスが、カプシドの過剰修飾によって影響される可能性があると考えることは妥当である。加えて、明確な数の化学修飾を部位特異的に導入することができるAAVベクターを作製することができることが望ましい。実際に、再標的化実験は、効率的な再標的化に必要とされるカプシドあたりの最適な数のリガンドが存在することを実証する(図6)。修飾試薬の濃度又は反応時間を制御することによって、60のUAAハンドルを有するAAVカプシドの修飾度を制御することが可能である(図6)。しかしながら、これは、異なる修飾状態にあるカプシドの不均質な混合物をもたらす。カプシドあたり明確な数の修飾が導入される均質なAAVコンジュゲートを作製する能力は、遺伝子治療にとって重要である。
AAVカプシドにおいて、3つのカプシドタンパク質VP1、VP2及びVP3は、およそ1:1:10の化学量論で組み込まれる。その結果として、ウイルス粒子あたり合計60コピーのカプシドタンパク質について、2つのマイナーカプシドタンパク質VP1及びVP2の各々のおよそ5コピーがカプシド中に存在し、10コピーのVP3が存在する。操作された修飾可能な天然アミノ酸又は非天然アミノ酸の残基をこれらのマイナーカプシドタンパク質に選択的に導入する能力は、カプシドあたりの制御された数のハンドルを導入するための手段を提供する。しかしながら、AAVカプシド遺伝子はすべて同じORFにコードされ、選択的スプライシング及び開始コドン使用頻度によって発現されるので、他のものに影響を及ぼすことなく1つのカプシドタンパク質を変異させることは困難である。本発明は、VP1及び/又はVP2が天然のCap ORFから発現されないようにVP1及び/又はVP2の翻訳起点に変異を導入することによって、マイナーカプシドタンパク質(VP1又はVP2又はVP1+VP2)を別々に発現させる方法を記載する。次に、欠損カプシドタンパク質は、強力なプロモーター、例えば、本明細書に記載されるCMVプロモーターからトランスで発現されることができる。この第2のORFからの望ましくないカプシドタンパク質(例えば、VP3)の発現も、翻訳起点を変異させることによって同様に排除される(図2)。このプラットフォームは、1つのORFから上記3つのカプシドタンパク質の任意の組み合わせを発現し、第2のORFから選択された第3のカプシドタンパクの発現を分離して、上記3つのカプシドタンパク質の任意のサブセットを選択的に操作することを可能にする能力を提供する。
本明細書に記載されるプラットフォームを使用して、部位特異的変異誘発によって、3つのカプシドタンパク質の任意の組み合わせにユニークな非コードコドン(ナンセンスコドン、4塩基コドン、又は非天然塩基対含有コドン等)を選択的に導入することが今や可能である。このような変異体Capが、ユニークなコドンを解読することができる適切な操作されたアミノアシル-tRNA合成酵素(aaRS)/tRNA対と共発現される場合、UAA残基をこれらの部位に組み込むことができる。
本発明の1つの実施形態では、UAA AzKは、VP1又はVP2又はVP1+VP2の残基T454(VP1番号付け(ナンバリング))に組み込まれた(図3)。ピロリシル-tRNA合成酵素/tRNA対を使用する。得られたウイルスは、野生型ウイルスに匹敵する効率でパッケージングされ、匹敵する感染力を有し、これは、これらの改変が良好に許容できることを実証した(図3及び図4)。カプシドあたりの修飾の数を制御することの重要性は、UAAがカプシドあたり5コピー(VP1又はVP2のいずれか単独の変異)、又はカプシドあたり10コピー(VP1+VP2の両方の変異)、又はカプシドあたり60コピー(3つのカプシドタンパク質すべてが変異された)で組み込まれたAAVの示差的挙動によって実証された。その後、再標的化リガンドはこれらのUAAハンドルに結合された(図6)。60個の結合ハンドルを有するAAVは、中間の改変状態で効率的な再標的化を可能にしたが、完全な改変では、すべての感染力が失われた。カプシドあたり5個又は10個の修飾は、良好に許容されたが、効率的な再標的化のために、カプシドあたり10個の再標的化リガンドが必要であった(図6)。
カプシドタンパク質の任意の他の組み合わせ、及びこれらのタンパク質内の任意の部位を、この戦略を使用して操作することができることに留意されたい。変異に特によく適しているのは、カプシドタンパク質のN末端である。というのも、カプシドタンパク質のこのセクションは、機能的カプシドへと折り畳まれると本質的に内部にあるが、カプシドタンパク質のC末端は露出しているからである。
加えて、他のaaRS/tRNA対を使用して(限定されないが、細菌性のチロシル、トリプトファニル、及びロイシル-tRNA合成酵素/tRNA対を含む)、任意の他の非天然アミノ酸(例示的な例は図1に示されており、本明細書に記載されている)を組み込むことができる。この技術は、AAVの任意の他の天然血清型並びにAAVの操作され進化したバリアントに拡張することもできる。
システイン及びセレノシステインは、タンパク質中に見出される天然アミノ酸残基である。それらの低い存在量及び独特の反応性のため、これらは部位選択的バイオコンジュゲーション反応に使用することができる。本発明の別の実施形態では、操作された表面露出システイン残基をマイナーカプシドタンパク質に導入することができる(図7A及び図7B)。60個のカプシドタンパク質すべてに導入した場合、同じ変異は良好に許容されず、低い力価及び乏しい感染力をもたらしたが、表面露出システイン残基がT454部位でVP1又はVP2のみに導入された場合、強固なウイルスパッケージング及び感染力が観察された。マイナーカプシドタンパク質上の操作されたシステイン残基を選択的に修飾する能力も実証された(図7C)。
AAVカプシドが進化を通じて最適化されている会合及び細胞侵入プロセスに関連する複雑さのために、AAVカプシドは、天然/非天然アミノ酸変異誘発、ループ挿入、タンパク質融合等を通じてカプシドタンパク質を操作する試みにしばしば抵抗する。しかしながら、マイナーカプシドタンパク質のみの操作は、カプシド全体にかなり少ない全体的な乱れしか導入しないので、かなりより良好に許容される。これは、マイナーカプシドタンパク質における操作されたシステイン残基の許容性によって示されるが、どこでもというわけではない(図7)。従って、本発明は、マイナーカプシドタンパク質を操作することによってAAVカプシドの特性を変更するためのより積極的な操作を導入する機会を提供する。天然及び非天然のアミノ酸の変異誘発に加えて、本発明は、有益な形質(例えば、ある特定の標的への結合)を直接提供するか、又は化学反応若しくは酵素反応(例えば、ビオチン化タグ、SNAP若しくはHALOタグ等)を介して選択的に修飾することができるペプチド及びタンパク質の融合及び挿入をマイナーカプシドタンパク質に導入するために使用することもできる。
本発明は、VP1又はVP2又はVP1+VP2を選択的に変異誘発することによって、カプシドあたりの明確な数の操作された残基(天然又は非天然)の導入を可能にする。操作された部位の数のさらなる制御は、VP1又はVP2又はVP1+VP2に複数の操作された残基を導入することによって達成することができる。本明細書に記載されるように、263、454、456、587及び588(この番号付けは、野生型VP1のアミノ酸残基に対応する)等、VP1カプシドタンパク質の様々な部位は選択的に変異している。当該プラットフォームは、哺乳動物細胞、昆虫細胞、及び無細胞翻訳/パッケージング系を含むがこれらに限定されない任意のパッケージングプラットフォームに拡張することができる。
本発明は、様々な実体を化学選択的に結合するために使用することができる多種多様な異なる化学を用いて、部位及びコピー数に対する制御を伴うAAVへの多数の天然及び非天然のアミノ酸残基の組み込みを可能にする。本発明の1つの実施形態では、アジド含有UAAがAAVのマイナーカプシドタンパク質に選択的に導入され、続いて、歪み促進型アジド-アルキンクリック反応を用いてフルオロフォア又は再標的化リガンドにコンジュゲートされた(図5及び図6)。別の実施形態では、マイナーカプシドタンパク質中の操作されたシステイン残基が導入され、続いてシステイン-マレイミドカップリング反応を使用してフルオロフォアにコンジュゲートされた。歪んだアルケンとテトラジン、又はフランとマレイミドとの間の逆電子要請型ディールス-アルダー(Diels-Alder)反応、アルデヒド/ケトンとアミノ-オキシ/ヒドラジン基との間の縮合反応、化学選択的高速アゾカップリング反応(CRACR)、酸化的カップリング反応及び光触媒カップリング反応、システイン又はセレノシステイン残基による様々な求電子剤への求核置換/付加等を含むがこれらに限定されない任意の他の化学選択的コンジュゲーション反応をカプシド修飾に適用することができる。
本明細書に記載される方法は、限定されないが、プローブ(蛍光プローブ、放射性プローブ、MRIプローブ、発光プローブ等)、小分子リガンド、ペプチド、環状ペプチド、ヌクレオチド(DNA、RNA、LNA、PNA等)、ポリマー(PEG等)、炭水化物(例えば、シアル酸等)、タンパク質(例えば、酵素、ナノボディ、抗体等)、同じ又は異なる血清型の別のAAV等を含む多種多様な実体を結合するために使用することができる。このような結合は、ユーザー定義受容体に効率的に再標的化し、従って組織親和性を変化させるAAVコンジュゲートを提供することができる。免疫回避AAVも、免疫系からカプシドを受動的に保護する基(PEG、ペプチド、炭水化物、又は他のポリマー等)、又は免疫細胞上の抑制性受容体に能動的に結合して免疫応答をオフにするリガンド(SIGLECリガンド等)を部位特異的に結合することによって作製されることが可能である。このような結合は、AAVカプシドに酵素を結合して優れた感染力プロファイルを有するカプシドを生成するために、又は同じ若しくは異なる血清型を有する2つのAAVをコンジュゲートして拡張されたカーゴ容量及び新規向性を有する新規クラスのベクターを作製するためにも使用することができる。
本明細書に記載される制御されたAAV改変技術は、限定されないが、小分子、ペプチド、環状ペプチド、ナノボディ、抗体及び抗体断片を含む再標的化リガンド、DNA/RNA/PNAアプタマー等を結合することによって、AAVベクターを所望のタイプの細胞に標的化すること、結合部位、カプシドあたりの再標的化基の数、及びリンカーの化学的特性を系統的に制御することによってそのようなコンジュゲートの特性を最適化すること、ポリエチレングリコール及び他のポリマー、炭水化物(例えば、シアル酸等)、免疫細胞上の抑制性受容体(例えば、SIGLEC受容体)に結合するリガンド等を含むがこれらに限定されない免疫調節実体の制御された結合によって、AAVベクターによって生成される免疫応答を弱めること等の多くの用途に使用することができる。
特に、本発明の遺伝子改変AAVは、遺伝子治療のための増強ベクターとして使用することができる。本明細書に記載される技術を使用して、AAVは、非改変AAVベクターを上回る増強/増加した有効性で、標的細胞への治療用又は抗原性遺伝子構築物の送達を特異的に標的化する/導くために遺伝子改変することができる。細胞は、インビトロ又はインビボ又はエキソビボで培養し、それを必要とする対象に送達することができる。本明細書で使用する場合、用語「対象」は、任意の動物対象を含むことができ、特に、ヒト等の哺乳動物対象を含む。ヒト対象は、既に存在する疾患、障害若しくは状態の治療、若しくは疾患、障害若しくは状態の発症を防止するための予防的処置等の医学的目的のために、又は動物対象は、医学的、獣医学的目的、若しくは開発目的のために、本明細書に記載されるAAV遺伝子ベクターを使用して処置されることが可能である。本発明の方法及び組成物は、任意のタイプの癌性腫瘍又は癌細胞を処置するために使用されてもよい。加えて、本発明の遺伝子改変AAVは、タンパク質又はペプチド等の抗原性物質をコードする核酸配列が、免疫応答が対象において誘発されるアジュバント等のさらなる成分とともに標的細胞に送達されるワクチン組成物において使用することができる。
遺伝子改変AAVによって送達される遺伝子構築物は、治療的に有効である。本明細書で使用する「治療有効」量は、任意の医学的処置に適用可能な妥当な効果/リスク比で、対象における細胞の少なくとも一部の集団において、基礎疾患状態に対して所望の効果をもたらす所望の生物学的効果を有するのに充分な量(例えば、対象における腫瘍増殖を阻害するのに充分な量、抗原に対する免疫応答をもたらすのに充分な量、又は自己免疫疾患を阻害するのに充分な量)を指す。本発明において使用される構築物/薬剤の治療有効量の決定は、当業者によって、公知の技術の使用によって、及び類似の状況下で得られる結果を観察することによって容易に行うことができる。
当該技術は、細胞あたりに送達される遺伝子カーゴの全体的サイズを増加させるために、二官能性リンカーを使用して、同じ又は異なる血清型の2つの別個のAAVベクターをコンジュゲートするために使用することもできる。2つの異なるAAVベクター間のこのような新規コンジュゲートは、独立して又はAAVカプシド内部の遺伝的カーゴと併せて作用する外部ペイロード(例えば、タンパク質、小分子、核酸、プローブ等)を、研究目的又は治療目的のためにインビトロ及びインビボで細胞に送達されるウイルスカプシド上にコンジュゲートすることについて独特の向性をも有する。
最後に、この技術は、蛍光プローブ、光架橋剤、及び親和性ハンドル(ビオチン等)等の基を組み込むことによって、哺乳動物細胞へのAAVカプシドの侵入経路の調査に使用することができる。
さらなる詳述なしに、当業者は、上記の説明に基づいて、本発明を最大限に利用することができると考えられる。それゆえ、以下の具体的な実施形態及び実施例は、単なる例示として解釈されるべきであり、本開示の残りの部分を決して限定するものではない。
AAVのカプシドへのUAAの組み込みは、ウイルス増幅のための宿主として役立つコンピテント細胞(例えば、哺乳動物細胞)における所望のUAA修飾を含む、そのカプシドタンパク質の効率的な発現を必要とする。先に記載したように、UAA組み込み部位は、終止コドン(TAG等)によって特定することができ、目的のUAAは、同族アンチコドンを有する操作されたtRNA/アミノアシル-tRNA合成酵素対によって送達することができる。その結果として、UAA改変ウイルスの産生は、ウイルス増幅に必要な遺伝成分、及びウイルスの増幅に必要な遺伝成分の同時発現を伴わなければならない。
UAAをAAVのカプシドタンパク質に組み込むために、いくつかの表面露出内因性アミノ酸残基の置換がAAVカプシド上で標的化された(ウイルス粒子の結晶構造によって導かれることにより。例えば、Xieら、The atomic structure of adeno-associated virus(AAV-2),a vector for human gene therapy、PNAS、2002年8月6日、第99巻、第16号、10407頁を参照されたい)。このようなカプシド変異は潜在的にウイルス感染力を乱すことができるので、3倍近位スパイク上の領域等、変化を許容することが公知である領域が標的とされた。必須アルギニン残基の置換も、ヘパラン硫酸受容体結合領域において標的化され、これは、天然の向性を破壊し、再標的化を促進する。これにより、AAVの天然の宿主細胞の選好性を「消去」し、正確な標識方法論を用いて標的化剤でそれを書き換えることが可能になる。例えば、標的とされる位置は、3つのAAVカプシドタンパク質のすべての間で保存されたドメインに存在することができ、それらのすべてにおいてUAAによるそれらの置換をもたらす。AAVは、例えば、UAAアジド-リシン(「AzK」)の存在下で、必要なエレメントを含有するプラスミドをHEK293T細胞にトランスフェクトすることによって生成することができる。特定の例において、メタノサルシナ・バーケリ(Methanosarcina barkeri)由来ピロリシルtRNA合成酵素及びM.マゼイ(M.mazeii)由来ピロリシルtRNA(TAGサプレッサー)を使用して、終止コドンTAGに応答してAzKアミノ酸がT454に組み込まれた。
以下に記載する実施例において使用されるプラスミドマップ及び配列は、図17~図24に見出される。
実施例1:AAV2のパッケージング
図3は、図2に記載される構築物を用いた、元の系と比較して同等の収率までのHEK293T細胞におけるAAV2のパッケージングを示す。元の(野生型(WT))AAV2のqPCR力価を示し、残りのものの力価をWTに対して示す。ΔVP1及びΔVP2は、それぞれVP1及びVP2の発現が排除されたCap遺伝子を用いてパッケージングされたAAV2を表す。ウイルスは依然として、マイナーカプシドタンパク質の不存在下で効率的に会合する。ΔVP1-CMV-VP1及びΔVP2-CMV-VP2は、それぞれVP1及びVP2の発現が排除されそれぞれのタンパク質がCMVプロモーターからトランスで発現された、Cap遺伝子を用いてパッケージングされたAAV2を表す。これらの系において、VP1又はVP2中のT454残基はTAGに変異され、ピロリシル-tRNA合成酵素/tRNA対を使用して抑制して、UAA(AzK)が組み込まれ、これらは、それぞれΔVP1-CMV-VP1-454AzK及びΔVP2-CMV-VP2-454AzKによって表される。培地に添加したUAAの存在下又は不存在下でのウイルスのパッケージング収率を示す。
実施例2:パッケージングされたウイルスの感染力
図4は、HEK293T細胞においてEGFPレポーター遺伝子を送達及び発現するウイルスの能力によって測定した、一定の力価での、図3において産生されたパッケージングされた力価ウイルスの感染力を示す。ΔVP1及びΔVP2ウイルスは良好にパッケージングされるが、これらは有意に弱毒化された感染力を示す。トランスでのVP1及びVP2の供給(ΔVP1-CMV-VP1及びΔVP2-CMV-VP2)は、感染力を救済する。UAAの存在下で産生されたΔVP1-CMV-VP1-454AzK及びΔVP2-CMV-VP2-454AzKウイルスは強力な感染力を示すが、不存在下では示さない。UAAの不存在下では、マイナーカプシドタンパク質のTAG変異体は発現しないことに留意されたい。
実施例3:変異AAVの選択的フルオロフォア標識
図5は、AAVカプシドにおける個々のマイナーカプシドタンパク質の選択的非天然アミノ酸変異誘発及びフルオロフォアを化学的に結合するためのそれらの使用を示す。精製後、異なる組換えAAV2調製物を、UAA AzK中に存在するアジド基を選択的に標識するシクロオクチン-フルオロフォアで標識した。上部パネルはAAV2調製物のSDS-PAGE分析を示し、下部パネルは同じゲルの蛍光像を示す。予想通り、野生型AAV2は標識化を示さず、T454AzK(60のカプシドタンパク質すべてにおけるAzK)はすべてのカプシドタンパク質の標識化を示すが、ΔVP1-CMV-VP1-454AzK及びΔVP2-CMV-VP2-454AzKはそれぞれVP1及びVP2の選択的標識化を示し、従って本発明者らが別個のマイナーカプシドタンパク質を選択的に標識化する能力を実証する。
実施例4:変異AAVの再標的化効率
図6は、AAVカプシドに結合した再標的化リガンドの数がその再標的化効率に劇的に影響を及ぼすことを示す。cRGDリガンドを脱標的化AAV2カプシド(天然の一次受容体であるヘパリン硫酸プロテオグリカン受容体HSPGの結合が、重要な残基R588及びR587(VP1のアミノ酸残基位置によって指定する)をAlaに変異させることによって除去されている)に結合させることによって、cRGDリガンドが、αVβ3インテグリン受容体を過剰発現するSK-OV-3等の癌細胞株に選択的に結合し、感染することが可能になる。シクロオクチン-cRGDはAzK側鎖をcRGDで漸進的に機能化するので、これらのグラフは、示された非標的化AAV2変異体を経時的にシクロオクチン-cRGDとインキュベートしたときの、その非標的化AAV2変異体の感染力を示す。454AA(60AzK/カプシド)について、SK-OV-3細胞に対する感染力は最初に上昇し、次いで低下し、これは、効率的な再標的化に必要とされるカプシドあたりのcRGDの最適な数を示唆する。後の時点でのカプシドの過剰修飾は、おそらくウイルス侵入プロセスを乱すことによって感染力の喪失をもたらす。VP1-454AA及びVP2-454AA(各5AzK/カプシド)について、感染力は上昇し、長期インキュベーション時にプラトーに達し、これは、カプシドあたり5個のcRGDの結合がAAV2感染力に有害でないことを示唆する。しかしながら、これらの変異体が到達する最大感染力は低く、これは、カプシドあたり5個のcRGDが効率的な再標的化に充分でない可能性があることを示唆している。VP1+2-454AA(10AzK/カプシド)は、ちょうどVP1-454AA及びVP2-454AAと同様に挙動したが、長期インキュベーション時の感染力は、最適な修飾度でT454-AAで観察された最適な感染力と同様のレベルに達する。
実施例5:AAVの操作したシステイン残基の正確な標識
図7A~図7Cは、操作したシステイン残基でのAAVの正確な標識を示す。(A)野生型Cap(WT)、CapのT454C変異体(3つのカプシドタンパク質すべてでT454C)、VP1-T454C(トランス置換VP1のT454C変異体)、VP2-T454C(トランス置換VP2のT454C変異体)を使用して産生されたAAVのパッケージング効率(qPCR)。(B)HEK293T細胞においてEGFP遺伝子を送達及び発現するそれらの能力によって測定された、これらのウイルスの感染力(FACS力価)。(C)VP1-454Cウイルス上のフルオレセイン-マレイミドによるVP1上の操作した454-システイン残基の選択的標識。FAM蛍光像は、WT及びVP1-454Cウイルスに対する標識反応の結果を示すが、SYPROはすべてのタンパク質を染色する。
実施例6:VP1又はVP2又はVP1+VP2のいずれかへのUAAの選択的組み込み
図11A~図11Cに示すように、C5Azを導入する操作した大腸菌ロイシルtRNA合成酵素(EcLeuRS)及びtRNA対をコードするプラスミド(pIDTsmart-ITR-GFP-4xEcLtR-LeuRS)で、並びに[RC2-VP1-del+CMV-VP1-delVP23]又は[RC2-VP2-del+CMV-VP2-delVP3]又は[RC2-VP12-del+CMV-VP1-VP2-delVP3]をそれぞれコードするプラスミドをHEK293T細胞に同時トランスフェクトすることによって、C5AzをVP1又はVP2又はVP1+VP2のいずれかに組み込んだ。所望のタンパク質中の454位(VP1番号付け)をTAG終止コドンで置き換えた。A)C5Azの構造、B)C5Azの存在下又は不存在下での野生型AAV2産生に対して示される様々な調製物のqPCR力価。C)AAV2-VP1-454-C5Azに対するDBCO-ローダミンを用いたVP1の選択的蛍光標識。
実施例7:VP1へのCpKの選択的組み込み
図13A~Cに示すように、CpKを導入する操作した大腸菌ロイシルtRNA合成酵素(EcLeuRS)及びtRNA対をコードするプラスミド(pIDTsmart-ITR-GFP-4xEcLtR-LeuRS)、並びに[RC2-VP1-del+CMV-VP1-delVP23]をコードするプラスミドをHEK293T細胞に同時トランスフェクトすることによって、CpKをVP1に組み込んだ。VP1における種々の部位(示されるとおり。VP1番号付け)をTAG終止コドンで置き換えた。A)CpKの構造、B)LCAの存在下又は不存在下での、野生型AAV2産生に対して示される様々な調製物の相対力価。C)VP1の部位456にLCAを組み込んだAAV調製物上でのテトラジン-FITCを用いたVP1の選択的蛍光標識。
実施例8:VP1への5-HTPの選択的組み込み
図14A~Cに示すように、5HTPを導入するための操作された大腸菌トリプトファニル-tRNA合成酵素(EcTrpRS)及びtRNA対をコードするプラスミド(pIDTsmart-TrpRS-8xWtR-ITR-GFP)、並びに[RC2-VP1-del+CMV-VP1-delVP23]をコードするプラスミドをHEK293T細胞に同時トランスフェクトすることによって、5HTPをVP1に組み込んだ。VP1における種々の部位(示されるとおり。VP1番号付け)をTGA終止コドンで置き換えた。A)5HTPの構造、B)5HTPの存在下又は不存在下での、野生型AAV2産生に対して示される様々な調製物の相対力価。C)VP1の部位454に5HTPを組み込んだAAV調製物上でのフルオレセインアミン及びフェリシアニドを用いたVP1の選択的蛍光標識。
実施例9:VPIへのUAAの組み込み
図15A~Bに示すように、いくつかの他の非天然アミノ酸を導入する操作した大腸菌ロイシルtRNA合成酵素(EcLeuRS)及びtRNA対をコードするプラスミド(pIDTsmart-ITR-GFP-4xEcLtR-LeuRS)、並びに[RC2-VP1-del+CMV-VP1-delVP23]をコードするプラスミドをHEK293T細胞に同時トランスフェクトすることによって、これらの非天然アミノ酸をVP1に組み込んだ。VP1の部位454(VP1番号付け)をTAG終止コドンで置き換えた。A)非天然アミノ酸の構造、B)示される非天然アミノ酸の存在下又は不存在下での、野生型AAV2産生に対して示される様々な変異体AAV2調製物の相対力価。
実施例10:AAV2-VP1-454-LCAのLCA部位の修飾
図16A~Bに示すように、AAV2-VP1-454-LCAを、対応するPEG-DBCOコンジュゲートを用いて20kDaポリエチレングリコール(PEG)ポリマーでLCA部位で選択的に修飾した。SDS-PAGE分析は、VP1の選択的標識を示す。野生型AAV2、AAV2-VP1-454-LCA、及びPEG修飾AAV2-VP1-454-LCAは、同様の感染力を示す。各ウイルスの等しいゲノムコピーをHEK293細胞に加え、コードされたルシフェラーゼレポーターの発現を標準的なルシフェラーゼアッセイによってモニターした。
本発明は、その好ましい実施形態を参照して具体的に図示及び説明されたが、添付の特許請求の範囲によって包含される本発明の範囲から逸脱しない範囲で、上記実施形態において形態及び詳細の様々な変更がなされてもよいことは当業者によって理解されるであろう。

Claims (39)

  1. 遺伝子改変アデノ随伴ウイルス(AAV)であって、AAVカプシドは、少なくとも1つのバリアントマイナーカプシドタンパク質VP1、VP2、又はVP1及びVP2の両方を含み、前記バリアントマイナーカプシドタンパク質は、野生型AAV VP1又はVP2カプシドタンパク質と比較して1つ以上のアミノ酸残基部位で変異しており、天然アミノ酸又は非天然アミノ酸(UAA)を組み込んでいる遺伝子改変アデノ随伴ウイルス(AAV)。
  2. バリアントマイナーカプシドタンパク質を含み、バリアントカプシドコード配列が、AAV VP1、又はVP2、又はVP3カプシドタンパク質オープンリーディングフレーム(ORF)の翻訳起点において変異しており、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方の翻訳が防止されている請求項1に記載の遺伝子改変アデノ随伴ウイルス(AAV)。
  3. 前記AAVカプシドタンパク質が、配列番号1、又は配列番号1の少なくとも約80%の配列同一性を含む配列を含む請求項2に記載の遺伝子改変AAV。
  4. 終止コドンが前記カプシドタンパク質に組み込まれており、前記終止コドンがTAG、TAA又はTGAコドンである請求項3に記載の遺伝子改変AAV。
  5. バリアントマイナーカプシドタンパク質を含み、前記天然アミノ酸残基がシステイン又はセレノシステインのいずれかである請求項1に記載の遺伝子改変AAV。
  6. バリアントマイナーカプシドタンパク質を含み、前記非天然アミノ酸が、フェニルアラニン類似体、チロシル類似体、トリプトファニル類似体、又はリシル類似体からなる群から選択される請求項1に記載の遺伝子改変AAV。
  7. 前記類似体が、以下の群から選択される式を含む請求項6に記載の遺伝子改変AAV。
    Figure 2023524401000002
  8. バリアントマイナーカプシドタンパク質を含み、前記類似体が、p-ベンゾイルフェニルアラニン(pBpA)、O-メチルチロシン(OMeY)、5-アジドトリプトファン、5-プロパルギルオキシトリプトファン、5-アミノトリプトファン、5-メトキシトリプトファン、5-O-アリルトリプトファン、5-ブロモトリプトファン、アジド-リシン(AzK)、C5Az、LCA、Nε-アセチルリシン(AcK)、シクロプロペンアミノ酸、Nε-(1-メチルシクロプロパ-2-エンカルボキシアミド)-リシン(CpK)、5-ヒドロキシ-トリプトファン(5-HTP)、LCAlk、DiaazK及びLCKetからなる群から選択される請求項7に記載の遺伝子改変AAV。
  9. 前記バリアントマイナーカプシドタンパク質の前記天然アミノ酸残基又は非天然アミノ酸残基が、バイオコンジュゲーションハンドルを組み込んでいる請求項1に記載の遺伝子改変AAV。
  10. 前記AAVカプシドが、カプシドあたり5~10個のバイオコンジュゲーションハンドルを含む請求項9に記載の遺伝子改変AAV。
  11. 少なくとも1つのバリアントマイナーカプシドタンパク質VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方を含み、前記AAVが、
    a)野生型AAVに匹敵する標的細胞の感染力、
    b)野生型AAVに匹敵する力価でパッケージングされていること、又は
    c)特徴a)及びb)の両方
    を特徴とする請求項1から請求項10のいずれか1項に記載の遺伝子改変AAV。
  12. 遺伝子改変された感染性アデノ随伴ウイルス(AAV)であって、バリアントマイナーカプシドタンパク質VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方を含み、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方は、1つ以上の変異アミノ酸残基を含む遺伝子改変された感染性アデノ随伴ウイルス(AAV)。
  13. 前記バリアントカプシドタンパク質が、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方の1つ以上の変異アミノ酸残基を含み、変異アミノ酸残基部位が非天然アミノ酸(UAA)を組み込んでいる請求項12に記載の遺伝子改変された感染性AAV。
  14. バリアントカプシドタンパク質を含み、前記非天然アミノ酸が、フェニルアラニン類似体、チロシル類似体、トリプトファニル類似体、又はリシル類似体からなる群から選択される請求項13に記載の遺伝子改変された感染性AAV。
  15. バリアントカプシドタンパク質を含み、前記類似体が、以下からなる群から選択される請求項14に記載の遺伝子改変された感染性AAV。
    Figure 2023524401000003
  16. 前記バリアントカプシドタンパク質が、配列番号1、又は配列番号1の少なくとも約80%の配列同一性を含む配列を含むVP1である請求項12から請求項15のいずれか1項に記載の遺伝子改変された感染性AAV。
  17. 前記バリアントVP1カプシドタンパク質が、前記タンパク質の位置263、位置454、位置456、位置587及び位置588の1つ以上の場所で変異している請求項16に記載の遺伝子改変された感染性AAV。
  18. 前記バリアントカプシドタンパク質が、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方の1つ以上の変異アミノ酸残基を含み、変異アミノ酸残基部位が天然アミノ酸を組み込んでいる請求項12から請求項17のいずれか1項に記載の遺伝子改変された感染性AAV。
  19. 前記天然アミノ酸がシステイン又はセレノシステインである請求項18に記載のバリアントカプシドタンパク質。
  20. 変異したVP1アミノ酸配列が、配列番号1、又は配列番号1と少なくとも約80%の配列同一性を有する配列を含み、前記バリアントVP1カプシドタンパク質が、位置263、位置454、位置456、位置587又は位置588の1つ以上の場所で変異している請求項18又は請求項19に記載の遺伝子改変AAV。
  21. 変異アミノ酸残基を含む前記バリアントカプシドタンパク質を含み、前記変異アミノ酸が化学的実体又は生物学的実体(タンパク質、核酸、脂質、又は炭水化物)とコンジュゲートされている請求項12から請求項20のいずれか1項に記載の遺伝子改変された感染性AAV。
  22. 化学実体又はタンパク質実体を含み、前記実体が、プローブ、小分子リガンド、ペプチド、環状ペプチド、ヌクレオチド、ポリマー、又はタンパク質コンジュゲートからなる群から選択される請求項21に記載の遺伝子改変された感染性AAV。
  23. 化学実体又はタンパク質実体を含み、前記実体が環状ペプチドcRGD又はポリエチレングリコールである請求項22に記載の遺伝子改変された感染性AAV。
  24. 感染性遺伝子改変AAVの製造方法であって、前記AAVはバリアントAAVカプシドタンパク質を含み、VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方は、野生型VP1、VP2又はVP1及びVP2の両方と比較して、1つ以上の変異アミノ酸残基部位を含み、
    a)培養中のコンピテントな宿主細胞を提供する工程と、
    b)前記培養細胞に、
    1)VP1、又はVP2、又はVP1及びVP2の両方を発現しないAAVバリアントVP3、
    2)VP3を発現しない適切なプロモーターを有するバリアントVP1、VP2又はVP1及びVP2の両方、
    3)AAV発現に必要なさらなる因子
    を含む1種以上のプラスミドをトランスフェクトする工程と、
    c)必要な非天然アミノ酸、及び終止コドンに応答して前記非天然アミノ酸を選択的に導入する操作されたアミノアシル-tRNA合成酵素/tRNA対をコードするプラスミドを提供する工程と、
    d)前記細胞を、前記プラスミド遺伝子の発現及び前記AAVの会合に充分な条件下で培養する工程と
    を含み、
    これにより、VP1、VP2、VP3又はVP1及びVP2の両方が、野生型AVVと比較して1つ以上のアミノ酸残基部位で変異しているバリアントAAVカプシドタンパク質を含む感染性遺伝子改変AAVを製造する方法。
  25. 前記適切なプロモーターがサイトメガロウイルス(CMV)プロモーターである請求項24に記載の方法。
  26. 前記バリアントカプシドタンパク質が、前記アミノ酸残基部位において天然アミノ酸又は非天然アミノ酸で変異している請求項24又は請求項25に記載の方法。
  27. 前記変異アミノ酸残基部位が非天然アミノ酸(UAA)を組み込んでいる請求項25又は請求項26に記載の方法。
  28. 前記非天然アミノ酸が、フェニルアラニン類似体、チロシル類似体、トリプトファニル類似体、又はリシル類似体からなる群から選択される請求項27に記載の方法。
  29. 前記類似体が、以下からなる群から選択される式を含む請求項28に記載の方法。
    Figure 2023524401000004
  30. 前記変異アミノ酸残基部位が天然アミノ酸を組み込んでいる請求項24又は請求項25に記載の方法。
  31. 前記天然アミノ酸がシステイン又はセレノシステインである請求項30に記載の方法。
  32. 前記変異アミノ酸が化学的実体又は生物学的実体とコンジュゲートされている請求項24から請求項31のいずれか1項に記載の方法。
  33. 前記実体が、プローブ、小分子リガンド、ペプチド、環状ペプチド、ヌクレオチド、ポリマー、タンパク質、又はウイルスコンジュゲートからなる群から選択される請求項32に記載の方法。
  34. 前記実体が環状ペプチドcRGD又はポリエチレングリコールである請求項33に記載の方法。
  35. 請求項1から請求項23のいずれか1項に記載の遺伝子改変AAVを含み、1種以上の治療用又は抗原性遺伝子構築物をさらに含む治療用又は抗原性組成物。
  36. 抗原性組成物であり、アジュバントをさらに含む請求項35に記載の組成物。
  37. 対象における疾患又は状態の治療方法であって、請求項35に記載の治療用組成物を前記対象に投与する工程を含み、前記組成物は、前記対象における前記疾患又は状態を減少又は軽減することができる治療量の、タンパク質又はペプチドをコードする遺伝子構築物を含む方法。
  38. 対象において免疫応答を誘発する方法であって、請求項35又は請求項36に記載の抗原性組成物を前記対象に投与する工程を含み、前記抗原性組成物は、前記対象において免疫応答を誘発することができる抗原をコードする遺伝子構築物を含む方法。
  39. 請求項1から請求項23のいずれか1項に記載の遺伝子改変AAVを含むキット。
JP2022563990A 2020-05-01 2021-05-03 遺伝子治療の増強のためのアデノ随伴ウイルス(aav)の制御された修飾 Pending JP2023524401A (ja)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US202063018573P 2020-05-01 2020-05-01
US63/018,573 2020-05-01
PCT/US2021/030489 WO2021222899A1 (en) 2020-05-01 2021-05-03 Controlled modification of adeno-associated virus (aav) for enhanced gene therapy

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2023524401A true JP2023524401A (ja) 2023-06-12
JPWO2021222899A5 JPWO2021222899A5 (ja) 2024-05-08

Family

ID=76392408

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2022563990A Pending JP2023524401A (ja) 2020-05-01 2021-05-03 遺伝子治療の増強のためのアデノ随伴ウイルス(aav)の制御された修飾

Country Status (9)

Country Link
US (1) US20230175013A1 (ja)
EP (1) EP4143206A1 (ja)
JP (1) JP2023524401A (ja)
KR (1) KR20230005941A (ja)
CN (1) CN115551878A (ja)
AU (1) AU2021264081A1 (ja)
CA (1) CA3177573A1 (ja)
IL (1) IL297780A (ja)
WO (1) WO2021222899A1 (ja)

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL1633772T3 (pl) * 2003-06-19 2016-10-31 Wiriony AAV o zmniejszonej immunoreaktywności i ich zastosowanie
CN104592364B (zh) * 2013-10-30 2018-05-01 北京大学 定点突变和定点修饰的腺相关病毒、其制备方法及应用
JP2021522840A (ja) * 2018-05-15 2021-09-02 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ 改善された遺伝子送達特性を示すウイルスベクター

Also Published As

Publication number Publication date
US20230175013A1 (en) 2023-06-08
AU2021264081A1 (en) 2022-11-03
EP4143206A1 (en) 2023-03-08
CA3177573A1 (en) 2021-11-04
KR20230005941A (ko) 2023-01-10
IL297780A (en) 2022-12-01
CN115551878A (zh) 2022-12-30
WO2021222899A1 (en) 2021-11-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10087217B2 (en) Adeno-associated virus with site-directed mutagenesis and site-directed modification and preparation method and application thereof
JP4860886B2 (ja) 二本鎖パルボウイルスベクター
CA2172139A1 (en) Endosomolytically active particles
CN112566923A (zh) 合成嗜肝性腺相关病毒衣壳及其用途
CN112041451B (zh) 基于aav的基因和蛋白质递送模块化系统
KR20200130337A (ko) Aav 키메라
US20220403438A1 (en) Proteins containing multiple, different unnatural amino acids and methods of making and using such proteins
KR20240025507A (ko) 미성숙 종결 코돈-매개 장애를 치료하기 위한 방법 및 조성물
US20220325269A1 (en) Aminoacyl-trna synthetases and cell lines for site-specific incorporation of unnatural amino acids
US20230175013A1 (en) Controlled modification of adeno-associated virus (aav) for enhanced gene therapy
US20230313129A1 (en) Stable cell lines for site-specific incorporation of unnatural amino acids
JP2022537960A (ja) 哺乳動物細胞における非天然アミノ酸の組み込みのための強化されたプラットフォーム
Kelemen et al. Incorporation of unnatural amino acids into the capsid of adeno-associated virus
JP3095248B2 (ja) 核酸運搬体
Fu PRODUCTION OF VP3-ONLY AAV2 VLP IN E. COLI
Le Analysis, Optimization and Application of AAV Capsid Assembly using Escherichia coli
Kelemen et al. Development of a system for virus-assisted directed evolution of enhanced suppressor tRNAs in mammalian cells (VADER)
WO2023209137A1 (en) Conjugation of adeno-associated viruses
JPWO2021222899A5 (ja)

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20240424

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20240424