JP2023512533A - 骨成長及び組織結合のさらなる向上を目的とする、内外吸収性を備えた生体吸収性インプラント並びにその製造方法 - Google Patents

Abstract

内外吸収機構を利用して骨成長及び組織結合がさらに向上した生体吸収性インプラント、並びに骨切り術及び骨軟組織再建術に使用するための生体吸収性インプラントを製造するための方法を開示している。生体吸収性インプラントは、ポリマーＡ（例えば、脂肪族ポリマーマトリックス）及び／又はポリ（プロピレンフマラート））、炭水化物Ｂ（例えば、生体吸収性の天然炭水化物フィラー）、並びにセラミックＣを含む。インプラントは、好適な気孔率、細孔サイズ、細孔の相互連結性、並びに骨芽細胞の侵入及び骨形成をさらに向上させるための機械的特性を有する多孔質足場構造であり、組織が生体吸収性インプラントと結合するのを促進させることができる。インプラントは、ウェッジ、骨充填材、並びにスクリュー、ロッド、及び／又はアンカーのような軟組織の固定インプラントとして成形されてもよい。いくつかの実施形態では、インプラントはパテであってもよい。【選択図】図８

Description

関連出願の相互参照
[0001]本出願は、２０２０年１月３０日に出願された米国特許出願第６２／９６８，０５６号及び２０２０年８月２６日に出願された米国特許出願第６３／０７０，７０４号の優先権を主張するものであり、全ての目的のため、本明細書の一部を援用するものとしてこれらの内容を援用する。

[0002]本発明は医療機器に関するものであり、より詳細には、ウェッジ、骨充填材及び骨折固定インプラントなどの生体吸収性インプラントに関する。より具体的には、かかるインプラントは、遠位大腿骨骨切り術、高位脛骨骨切り術、小児の骨切り術などの外科手術に使用されてもよい。かかるインプラントはまた、上腕骨近位骨折、脛骨プラトー骨折、骨腫瘍及び骨嚢胞、海綿骨骨折、全関節の骨溶解、及び骨軟組織の再建にも使用されることができる。

[0003]金属の除去手術は、最も一般的に実施されている外科手術の１つである。米国単独での整形外科インプラントの除去手術件数は、国内全体で１００，０００人あたり毎年９０件に相当する。いくつかの研究は、金属を入れていた部位での疼痛及び違和感、並びにインプラントを除去したことによる機能障害を示している。いくつかの研究は、整形外科で使用する金属の除去による併発症が２４％～５０％であると報告している。

[0004]生体吸収性インプラントは、金属製インプラントを除去する目的で再手術する必要性を取り除くために市場に導入された。生体吸収性インプラントは、インプラントの吸収時に損傷組織の正常機能の回復を促進させる再生医療の一端を担っている。生分解性の合成ポリマーは、こうした用途向けでは最も商業的に競争力があると考えられている。これは、こうした合成ポリマーが適用性の広い特徴を備え、費用対効果が高い方式で作製されることができるからである。生分解性の合成ポリマーは生体適合性をも有しており、その物理化学的特性は、広範囲の医療用途に好適であることから、例えば、縫合糸、プレート、骨固定装置、ステント、スクリュー及び組織修復など、種々の医療機器の製造にも使用されることができる。こうしたインプラントは、オッセオインテグレーションを目的としている。

[0005]オッセオインテグレーションは、何らかの中間線維組織を形成することなく、破断した端部からの組織成長を含む骨の治癒プロセスを誘導する外科用インプラントを用いた骨の結合であると臨床的には定義されている。整形外科用のオッセオインテグレーテッドインプラントは、骨組織内で強固に固定される。骨インプラントに関する共通の課題は、体組織でのインプラントの振動が応力遮蔽を引き起こす可能性があるという点である。この応力遮蔽により骨の漸次的な吸収がもたらされ、続いて機械的安定性の損失、最終的にはインプラントの完全な破損がもたらされる。ステンレス鋼、チタン系合金やコバルト－クロム合金などの金属を使用したインプラントは、骨インプラントの経時的な機械的不安定性をもたらし得る応力遮蔽を引き起こす傾向性を有しているという点で、特に問題がある可能性がある。

[0006]近年、いくつかの生体吸収性ポリマーデバイスは、一部の適応症にとって採算がとれる代替物を作る上で使用可能となった。技術が進化することで予想されるように、ある一連の課題を解決することで別の課題が生まれている。初期の見込みにもかかわらず、現行の生体吸収性インプラントに由来する予想し得なかった分解プロファイル及び酸性の副生成物の分泌により、臨床的併発症を理由として、急速に成長し続けている市場への浸透が制限されてしまっている。生体吸収性インプラントは今までのところ、こうしたインプラントに共通した化学的性質の欠点を理由に、理想的な代用品としての卓越した吸収及び回復プロファイルの提供といった点では失敗している。インプラントを除去するための再手術は、一次修復術よりもさらに急速に増加している。生体吸収性インプラントに使用されている最も一般的な医療用ポリマーであるポリ（乳酸）（ＰＬＡ）及びポリ（グリコール酸）（ＰＧＡ）により、嚢胞形成（１３．３～２５．８％）及び局所炎症（１４～２９％）が発生している。現行の１０種類の生体吸収性インプラントのうち９種類は、３年以内では部分的に／完全にそのまま残り続けている。したがって、現行の生体吸収性インプラントは、予想し得なかった吸収のプロセスとそれによって結果的に組織結合が損なわれることとを理由に、金属製インプラントと比較した場合、その健康アウトカムを向上させていない。

[0007]本開示は、組織結合をさらに向上させる、複数成分の複合材料の生体吸収性インプラントに関する。

[0008]本発明のいくつかの実施形態は、脂肪族ポリマー（例えば、構造的一体性を提供する目的）、インプラントの外部に浸出する生体吸収性の天然炭水化物フィラー（例えば、オッセオインテグレーションを促進する目的）、及び骨結合ミネラル（例えば、オッセオインテグレーションをさらに促進させ、そうすることで骨細胞の接着部位を提供して骨組織の再生をさらに向上させる目的）を含み、内外吸収性並びに卓越した骨及び組織結合を備えた３成分の生体吸収性インプラントに関する。

[0009]脂肪族ポリマーは、ポリ（ｄｌ－乳酸）、ポリ（ε－カプロラクトン）、ポリ（３－ヒドロキシ酪酸）、ポリ（ブチレンサクシナート）、ポリ（プロピレンカーボナート）又はポリ（プロピレンフマラート）であり得る。

[0010]生体吸収性炭水化物フィラーは、セルロース、ゼラチン、アルギナート、酸化多環芳香族リグニン又はデンプンであり得る。デンプンはトウモロコシであってもよい。生体吸収性炭水化物フィラーは、粒子、繊維又はウィスカの形状をとることができる。生体吸収性炭水化物は、５～３０μｍのサイズ範囲であり得る。

[0011]骨結合ミネラルは、リン酸カルシウム、ハイドロキシアパタイト、バイオガラス４５ｓ５、又は他の好適な骨結合ミネラルなどのセラミックであり得る。骨結合ミネラルは、粒子、繊維又はウィスカの形状をとることができる。骨結合ミネラルは、１～２０μｍのサイズ範囲であり得る。

[0012]いくつかの実施形態では、インプラントは４成分の生体吸収性インプラントであってもよく、第４の組成物は例えば、骨形成タンパク質、サイトカイン又は他の好適な酵素系骨成長剤などの活性薬である。

[0013]いくつかの実施形態では、生体吸収性の天然炭水化物フィラーが２週間～６ヶ月の期間にわたりインプラント外部に浸出している場合、生体吸収性インプラントは移植状態にあり得る。また、セラミックが例えば、新生骨細胞向けの接着部位を提供することでインプラント全体にわたる二次多孔質構造を促進させる一助となっている。移植状態にある間、インプラントはその内側から細胞増殖及び組織成長を引き起こすことができる。

[0014]インプラントは、ウェッジ、骨充填材、骨軟組織界面の固定インプラント、軟組織の固定インプラント、又は移植可能なパテの形態をとり得る。例えば、インプラントは脂肪族ポリマーの熱特性を使用することができ、例として４０～５０℃の温度ではインプラントは軟化したパテ状組成物であるが、体内に移植した後にはインプラントは硬化状態へと硬化されることができる。

[0015]いくつかの実施形態では、インプラントのポリマーは多孔質であってもよい。孔は例えば３Ｄ印刷、ガス発泡法、エレクトロスピニング法又はソルトリーチング法などの手段で製造されてもよい。細孔は、５０～４００μｍのサイズ範囲であってもよい。気孔率は１０～９０％の範囲であってもよい。

[0016]本発明のいくつかの実施形態は、構造的一体性を提供する脂肪族ポリマー、インプラントの外部に浸出する生体吸収性の天然炭水化物フィラー）、及び骨結合ミネラルを含み、内外吸収性並びに卓越した骨及び組織結合を備えた生体吸収性インプラントに関する。インプラントには移植前状態と移植後状態があってもよい。この場合、生体吸収性の天然炭水化物フィラーは、インプラントが移植後状態にある間、２週間～６ヶ月の期間にわたりインプラント外部に浸出する。インプラントは、漸次的に吸収されている最中であったとしても骨を支持する上で構造的な耐荷重特性を移植後状態で維持することができ、新生骨組織を再生させるためのオッセオインテグレーションの時間を十分なものとすることができる。いくつかの実施形態では、インプラントは十分な骨成長及びオッセオインテグレーションを可能とするために少なくとも３ヶ月にわたり依然として耐荷重性を有していてよい。脂肪族ポリマーは、侵入並びに内外分解及び吸収を促進させるために多孔質であってもよい。

[0017]別の態様では、本開示は、整形外科用途向けの生体吸収性インプラントの製造方法に関する。インプラントは、合成脂肪族ポリマーマトリックス（ポリマーＡ）、天然炭水化物（炭水化物Ｂ）、及び骨結合成分（セラミックＣ）を含む。この足場は、本明細書に開示された内外吸収機構を利用して骨成長及び組織結合をさらに向上させ、骨切り術及び骨軟組織再建術の生体吸収性インプラントの製造を実現させる。

[0018]さらには、本開示は、ガス発泡法、３Ｄ印刷、エレクトロスピニング法及びソルトリーチング法などの製造方法を使用し、最適な細孔サイズ、気孔率及び細孔の相互連結性を備えた、耐荷重性及び非耐荷重性の整形外科用途及び軟組織用途用の最適な多孔質インプラントに関する。

[0019]材料の選択とは独立している、骨切り術及び骨軟組織再建術の生体吸収性インプラントの製造方法を開示する。本明細書に開示された内外吸収機構により、二次オッセオインテグレーションを提供する生体吸収性インプラントの製造が実現する。生体吸収性インプラントは３ブロックの複合材料であってもよく、この場合、各ブロックは特定の機能を担っていてもよい。ポリマーＡは、脂肪族ポリマーから選択された複合材料マトリックスとして機能する。炭水化物Ｂは、天然の生体吸収性炭水化物から選択された急速に吸収可能なフィラーとして機能する。セラミックＣは、リン酸カルシウム、ハイドロキシアパタイト及びバイオガラス４５ｓ５などのミネラルから選択された骨結合要素として機能する。

[0020]この方法は、上記成分のいずれかの選択に依存しないということを理解されたい。本明細書の実施例に提示されたポリマーＡ、炭水化物Ｂ及びセラミックＣ用の特定の材料の選択は、特許請求の範囲における限定であると構成されるべきではない。本イノベーションの方法に関する特許請求の範囲は、提示されたポリマー及び／又はセラミックファミリー群に由来する材料の任意の選択による性能に限定されるべきではない。

[0021]本開示は、３Ｄ印刷及び／又はガス発泡法などの技術に基づき、基本的に安全であり、かつ適時吸収される、骨切り術のウェッジ、骨充填材及びスクリュー、ロッド及び／又はアンカーなどの軟組織の固定インプラントなどの生体吸収性インプラントにおいて、二次オッセオインテグレーション及び組織結合を提供するという目的を担う生体吸収性インプラント複合材料を形成する。

[0022]本開示のこうした実施形態、態様及び特徴、並びに他の実施形態、態様及び特徴は、添付の図面及び図と併せて読んだ際に、こうした実施形態の以下の詳細な説明からより良好に理解される。

実施形態による、生体吸収性インプラントの図である。 実施形態による、ポリマー、炭水化物及びセラミックを示した生体吸収性インプラントの走査型電子顕微鏡（ｓｃａｎｎｉｎｇ ｅｌｅｃｔｒｏｎ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ：ＳＥＭ）画像である。 図２Ａ～図２Ｃは、実施形態による、様々な重量パーセントを有する異なる生体吸収性インプラントのＳＥＭ画像である。 骨細胞によって覆われた生体吸収性インプラント表面のＳＥＭの顕微鏡写真である。 図４Ａ～図４Ｃは、実施形態による、大腿骨頭が欠損したラット中の生体吸収性インプラントを時系列に並べた一連のマイクロコンピュータ断層撮影（マイクロＣＴ）タイムラプス画像である。 実施形態による、生体吸収性インプラントの３Ｄ印刷に使用される、フィラメントとして押出成形されたインプラント複合材料の例を示す。 ガス発泡技術を使用した多孔質生体吸収性インプラントの段階的な形成を示す。 ガス発泡技術を使用した多孔質生体吸収性インプラントの段階的な形成を示す。 ガス発泡技術を使用した多孔質生体吸収性インプラントの段階的な形成を示す。 実施形態による、生体吸収性インプラントの細孔分布のマイクロＣＴ画像である。 実施形態による、生体吸収性インプラントの細孔分布のマイクロＣＴ画像である。 図８Ａ～図８Ｄは、実施形態による、様々な気孔率を有する生体吸収性インプラントのＳＥＭ画像である。 実施形態による、多孔質生体吸収性インプラントで処置された皮膚のヘマトキシリン及びエオシン（Ｈ＆Ｅ）組織画像である。 実施形態による、多孔質生体吸収性インプラントで処置された皮膚のヘマトキシリン及びエオシン（Ｈ＆Ｅ）組織画像である。 実施形態による、生体吸収性インプラントの分解プロファイルのグラフを示す。 実施形態による、生体吸収性インプラントの分解プロファイルのグラフを示す。 実施形態による、生体吸収性インプラントの移植方法を示す。

[0035]骨成長を誘導可能である、固定インプラント、骨充填材、及び／又はウェッジのような、骨切り術、骨間及び骨軟組織再建術に使用するための生体吸収性インプラントを本明細書に記載する。インプラントは３つのブロックを含み、それぞれが骨組織の再生にとって種々の役割を果たす。

[0036]図１Ａは、例示的な生体吸収性インプラント１００の図である。実施形態では、生体吸収性インプラント１００は３ブロックの複合材料であってもよい。示されている生体吸収性インプラント１００は、ポリマーＡ１１０、炭水化物Ｂ１２０及びセラミック１３０の３つの成分を有する。ポリマーＡは生体吸収性インプラント１００に構造性を提供する。図示されているような構造は例示目的のためのものであり、インプラントは例えばディスク、正方形、非晶質形状、パテ状組成物又はそれ以外など図示されている立方体以外の多数の構造をとってもよいことを理解するべきである。加えて、３ブロックの複合材料としてのインプラント図示は、限定しないことを目的としており、インプラントは好適である任意の数の成分から構成されていてもよい。図１Ａの生体吸収性インプラント１００では、炭水化物Ｂ１２０はポリマーＡ１１０全体に分布している。セラミックＣ１３０は、ポリマーＡ１１０全体にさらに分布している。

[0037]ポリマーＡ１１０は、構造的一体性及び機械的強度を提供する脂肪族ポリマーマトリックスを形成してもよい。例えば、ポリマーＡは脂肪族ポリエステルであってもよい。いくつかの実施形態では、ポリマーＡは、ポリ（ｄｌ－乳酸）、ポリ（ε－カプロラクトン）、ポリ（３－ヒドロキシ酪酸）、ポリ（ブチレンサクシナート）、ポリ（プロピレンカーボナート）及び／若しくはポリ（プロピレンフマラート））並びに／又は１０ＬＡ／９０ＧＡ、２０ＬＡ／８０ＧＡ、２５ＬＡ／７５ＧＡ、３０ＬＡ／７０ＧＡ、４０ＬＡ／６０ＧＡ、４５ＬＡ／５５ＧＡ、５０ＬＡ／５０ＧＡ、３０ＬＡ／７０ＧＡを含むポリ（乳酸－グリコール）酸などのこれらのコポリマー、並びにポリ（ε－カプロラクトン及びプロピレンカーボナート）ブロックコポリマーのうち、１つ又は複数であってもよい。

[0038]いくつかの実施形態では、ポリ（プロピレンカーボナート）（ｐｏｌｙ（ｐｒｏｐｙｌｅｎｅ ｃａｒｂｏｎａｔｅ）：ＰＰＣ）は、ポリマーマトリックスとして使用されてもよい。ＰＰＣは、他の生体適合性の分解可能なポリマー材料と比較すると、組織結合及び吸収をさらに向上させることができる。典型的には、他のこうしたポリマーは、移植部位周囲の環境のｐＨを低下させる酸性の副生成物に分解し、炎症及び／又は嚢胞形成をもたらす。またこれは一般には、オッセオインテグレーション及び骨再生プロセスの速度を低下させる。例えば、最も一般的な医療用ポリマーであるポリ（乳酸）（ＰＬＡ）及びポリ（グリコール酸）（ＰＧＡ）により、嚢胞形成（１３．３～２５．８％）及び局所炎症（１４～２９％）が発生している。対照的に、ＰＰＣは水及びＣＯ_２といった酸性ではない副生成物に分解するが、これらは同様の問題を有さない。

[0039]炭水化物Ｂ１２０は、マイクロメートル～ナノメートルのサイズ範囲である粒子、クラスタ、ウィスカ及びフィラメントの形状である天然生体吸収性フィラーであってもよい。炭水化物Ｂ１２０は、セルロース、ゼラチン、アルギナート、酸化多環芳香族リグニン及び／又はデンプン（トウモロコシ）などの生体吸収性炭水化物のうち１つ若しくは複数、又はこれらの組合せである。炭水化物Ｂ１２０は、炭水化物Ｂ１２０が吸収（ポリマーＡ１１０マトリックスと比較すると相対的に急速である）されるにつれ、ポリマーＡ１１０マトリックス内部に細孔を作り出す、急速に再吸収可能な成分として機能してもよい。生成された細孔によって、骨細胞が侵入可能であり、細孔中でインプラントに接着可能であるため、オッセオインテグレーションが可能となる。さらには、これらの細孔は、内外吸収のため、足場内部の水を浸透させる経路を提供することができる。内外吸収とは、インプラントの内部領域から少なくとも部分的に生じる吸収を指す。吸収は、インプラントの全体にわたり生じることができる。内外吸収の間、水はインプラントの内部領域へと浸透し、インプラントの内部領域だけでなくインプラントの外部からもインプラント分解を開始させることができる（例えば、分解し、かつ炭水化物Ｂ外部に浸出することによる）。これが生じる際には、新生組織のためにさらなる空間が生成されることから、インプラントの内部領域への組織成長はさらに促進されてもよい。これは、主にインプラント外部から内側への吸収のみが可能となる多くの従来型インプラントとは明らかに異なっている。内外吸収機構は、インプラント全体で急速なオッセオインテグレーションを促進させることから、特に有利である。

[0040]炭水化物によってもたらされる細胞接着特性は、疎水性ポリマー（例えば、ＰＰＣ）のポリマーＡ１１０マトリックスを使用する実施形態では、特に重要であり得る。これは、こうしたポリマーが細胞接着を妨げる傾向があることが理由である。ポリマーＡマトリックス内部にフィラーとして炭水化物を導入する（例えば、ポリマーＡ１１０がＰＰＣである場合）ことで、こうした効果を打ち消すように機能し得る。

[0041]実施形態では、セラミックＣ１３０は、生物活性及び骨再生能を提供する骨結合ミネラル化合物の微粒子であってもよい。セラミックＣ１３０は、リン酸カルシウム、ハイドロキシアパタイト及びバイオガラス４５ｓ５などの骨結合化合物のうち少なくとも１つ又はこれらの組合せであってもよい。セラミックＣ１３０として生物活性ミネラルのうち少なくとも１つ又はこれらの組合せが存在することで、例えば新生骨細胞の接着部位を提供することによる骨結合のさらなる向上並びに移植後の骨芽細胞の侵入及び成長がもたらされる。セラミックＣ１３０の重量パーセントは、１重量％、２．５重量％、５重量％、７．５重量％、１０重量％、１２．５重量％、１５重量％、１７．５重量％、２０重量％、２５重量％及び３０重量％の範囲であり得る。

[0042]上記ポリマーＡ１１０、上記炭水化物Ｂ１２０、及び上記骨結合ミネラル（セラミックＣ１３０）を含む任意の好適な組合せは、実施形態による好適なインプラントを生成するために使用されてもよい。例えば、卓越した骨吸収のためのインプラントの一実施形態は、ポリ（プロピレン）カーボナートから作製され、デンプンフィラー及びバイオガラス４５ｓ５とともにインプラントのマトリックス構造を提供することができる。ＰＰＣが、ＰＰＣマトリックス全体にわたるデンプン占有領域及び分布しているバイオガラスにより製造された孔を有する場合には、記載されたＰＰＣ－デンプン－バイオガラスインプラントは移植前状態であり得る。いくつかの実施形態では、インプラントは、以下でさらに詳細に記載されるように（例えば、図６Ａ～図８に関して）、ディスク、ロッド、ウェッジ、スクリュー、ワイヤ又は移植部位への移植にとって好適な任意の形状へと予め形成されてもよい。

[0043]内外分解の機構は、ポリマーＡマトリックスの構造内部に炭水化物Ｂフィラーが存在していることに部分的には基づいている。かかる実施形態では、炭水化物Ｂの量によって分解時間が調節される。１重量％～１０重量％という低い存在量では、分解プロファイルは低下する。ただし、炭水化物Ｂが５０重量％存在することで、急速に吸収可能なインプラントが作製される。炭水化物Ｂの重量パーセントは、所望の分解プロファイルに応じて、１重量％、３重量％、５重量％、１０重量％、１５重量％、２０重量％、２５重量％、３０重量％、３５重量％、４０重量％、４５重量％及び５０重量％の範囲であり得る。

[0044]いくつかの実施形態では、インプラントは、漸次的に吸収されている最中であったとしても骨を支持する上で構造的な耐荷重特性を移植後状態で維持することができ、新生骨組織を再生させるために、オッセオインテグレーションの時間を十分なものとすることができる。いくつかの実施形態では、インプラントは十分な骨成長及びオッセオインテグレーションを可能とするために少なくとも３ヶ月にわたり依然として耐荷重性を有していてよい。

[0045]炭水化物Ｂ１２０は、水がインプラントへと流れ込む際にバルク侵食されることで分解することができる。バルク侵食により、インプラント全体にわたる分解が可能となり、より深く骨組織がより多くインプラントへと結合することが可能となる。

[0046]図１Ｂは、本開示の一実施形態に従って作製されたポリマーＡ１１０、炭水化物Ｂ１２０及びセラミックＣ１３０を表している生体吸収性インプラント１００のＳＥＭ画像を示す。１０ｋＶの加速電圧で動作させたＺｅｉｓｓ ＥＶＯ ５０ ＳＥＭを使用し、ＳＥＭ画像を捕捉した。導電性シルバーペイントを使用し、アルミニウム製スタブ上に試料断面をマウントし、ＳＥＭ分析前に金スパッタした（Ｅｍｉｔｅｃｈ Ｋ５５０Ｘ スパッタコースタ）。

[0047]実施形態では、インプラントは第４の成分として活性薬を組み込んでもよい。活性薬は、骨成長をさらに向上させる生物活性化合物であってもよい。活性薬は、インプラント全体にわたって分布されてもよい。活性薬は骨形成タンパク質（ｂｏｎｅ ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｉｃ ｐｒｏｔｅｉｎ：ＢＭＰ）、サイトカイン又は骨成長を酵素的に促進させる好適な化学物質であってもよい。こうした活性薬は、例えばカルシウム、ナトリウム、カリウム及びリン酸など、骨成長に必要なイオンの流れを体に生成させることで骨成長をさらに促進させることができる。実施形態では、活性薬は、炎症及び感染症を回避し、これらを最小限に抑えるための例えばゲンタマイシン若しくはバンコマイシンなどの抗菌薬、又は例えばデキサメタゾン及びガレクチン－３阻害剤などの抗炎症薬であってもよい。活性薬は、上記生物活性化合物のうち１つ、又はいずれかの組合せであってもよい。

[0048]図２Ａ～図２Ｃは、異なる重量パーセントの炭水化物Ｂを有するインプラントについての内外吸収機構のＳＥＭ比較を示す。このＳＥＭ写真は、動的環境にて３７℃の擬似体液中でインキュベーションさせた８週間後のインプラントを示している。１０ｋＶの加速電圧で動作させたＺｅｉｓｓ ＥＶＯ ５０ ＳＥＭを使用し、ＳＥＭ画像を捕捉した。導電性シルバーペイントを使用し、アルミニウム製スタブ上に試料断面をマウントし、ＳＥＭ分析前に金スパッタした（Ｅｍｉｔｅｃｈ Ｋ５５０Ｘ スパッタコースタ）。

[0049]図２Ａは、低速な吸収をもたらし、炭水化物Ｂが０重量％である例示的なインプラントを示す。使用時のインプラントの観察は、ポリマーＡの構造の外部に浸出する炭水化物Ｂによりさらなる空隙を形成することなしに細胞及び組織のインプラント内部への到達させるための時間は、内外成長を促進させるため上で都合が悪いということを実証している。

[0050]図２Ｂは、２５重量％の炭水化物Ｂを含む例示的なインプラントを示す。こうしたインプラントは、中程度の吸収速度を有する。

[0051]図２Ｃは、５０重量％の炭水化物Ｂを含む例示的なインプラントを示す。吸収可能な炭水化物Ｂの百分率がより高くなることで、より高い重量パーセントのインプラントが経時的に外部に浸出するにつれてインプラントの分解プロファイルはより高くなる。このＳＥＭ写真は、動的環境にて３７℃の擬似体液中でインキュベーションさせた８週間後のインプラントを示している。１０ｋＶの加速電圧で動作させたＺｅｉｓｓ ＥＶＯ ５０ ＳＥＭを使用し、ＳＥＭ画像を捕捉した。導電性シルバーペイントを使用し、アルミニウム製スタブ上に試料断面をマウントし、ＳＥＭ分析前に金スパッタした（Ｅｍｉｔｅｃｈ Ｋ５５０Ｘ スパッタコースタ）。

[0052]図２Ｂ～図２Ｃでは、破線は、多孔質足場を提供する浸出領域を示す。水及び体液が浸透すると、試料のバルク内部から加水分解が開始する。

[0053]図３は、ヒト骨芽細胞に播種された、脂肪族ポリマーマトリックス（ポリマーＡ）、天然の生体吸収性炭水化物フィラー（炭水化物Ｂ）及び骨ミネラル剤（セラミックＣ）を有する生体吸収性ロッド３００表面のＳＥＭの顕微鏡写真を表示している。細胞はマトリックスに固着するように誘導され、急速吸収性フィラーに固着するようには誘導されなかったが、結合した細胞の層は足場上面に静止する。誘導された骨芽細胞及び骨細胞の結合及び増殖は、炭水化物Ｂ外部に浸出するための細孔を開くための方法として使用される。これらの結合及び増殖によって、細胞が生体吸収性インプラント内部に侵入及び浸透可能となり、インプラントのバルクからの内外組織成長を誘導することになる。

[0054]１０ｋＶの加速電圧で動作させたＺｅｉｓｓ ＥＶＯ ５０ ＳＥＭを使用し、表面形状を試験した。導電性シルバーペイントを使用し、アルミニウム製スタブ上に試料断面をマウントし、ＳＥＭ分析前に金スパッタした（Ｅｍｉｔｅｃｈ Ｋ５５０Ｘ スパッタコースタ）。培養２４時間以内の足場表面での骨芽細胞の細胞形態を試験するため、ＳＥＭ分析を使用した。この分析のため、２４ウェルプレートに試料を入れ、ウェルあたり２×１０５細胞を有するように細胞懸濁液７５μＬを各ウェルに加えた。結合した細胞を２．５％のグルタルアルデヒド中で１時間固定し、少なくとも３回ＰＢＳを用いて洗浄した。生体吸収性ディスクを、二次固定液（０．１Ｍ ＰＢＳ中１％の四酸化オスミウム）中でさらなる時間室温でインキュベートした。３０％、５０％、７０％及び９０％を含む種々のグレードのエタノール及び純粋エタノール中で順次脱水を行った。ヘキサメチルジシラザン（ｈｅｘａｍｅｔｈｙｌｄｉｓｉｌａｚａｎｅ：ＨＭＤＳ）０．５ｍＬを使用して、試料からエタノール残留物を除去し、室温で２分間インキュベーションした。続いて、蓋を外した状態のデシケータで試料を乾燥させ、一晩ＨＭＤＳを蒸発させた。最終ＳＥＭ分析のために金コーティングを使用した。

[0055]図４Ａ～図４Ｃは、実施形態による、ラットの大腿骨頭の移植前、移植時、移植後の時系列のマイクロＣＴ画像を示す。図４Ａ～図４Ｃのインプラントは、本開示の実施形態に従い作製された、骨再生を促進させるための３ブロックの複合材料である。ポリマーＡは、ポリカプロラクトン及び／又はポリプロピレンカーボナートなどの脂肪族ポリマーから選択し、炭水化物Ｂは、セルロース及び／又はアルギナートなどの天然の吸収性炭水化物の選択であり、生物活性及び骨再生をさらに向上させるためにハイドロキシアパタイト及び／又はリン酸カルシウムなどの生物活性ミネラル剤を使用した。遠位大腿骨頭骨切り術のシミュレーションを行うため、大腿骨頭を欠損した１５＋週齢のオスのウィスター系ラット（Ａｎｉｍａｌ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ Ｃｅｎｔｒｅ）にロッドを移植した。１２週にわたってロッドを移植した。設計された内外分解機構は、移植後１２週間という早期でインプラント構造内部に新生組織を形成する一助となる点で効果的である。

[0056]図４Ａは、遠位大腿骨頭骨切り術のシミュレーションを行うために、ラットの大腿骨頭に生成された大腿骨頭欠損を示している。続いて、生体吸収性インプラント１００などの生体吸収性インプラントを大腿骨頭欠損に移植した。図４Ｂは、ロッド形状の生体吸収性インプラント（例えば、生体吸収性インプラント１００）を移植した図４Ａの大腿骨頭欠損を示している。図４Ｃは、移植後１２週間の同領域を示している。図に見られるように、初期欠損の境界を越えて充填された組織が拡張している骨成長を観察することができる。加えて、内部領域で組織成長を見ることができるが、これはインプラント外部の境界線を越え、インプラント内部の組織成長を示している。

[0057]０．５ｍｍのアルミニウムフィルタ、５０ｋＶのＸ線管電圧、８００μＡの管電流及び４５００ｍｓの走査露光時間を使用し、１４μｍの等方ボクセル分解能で骨切り術及び／又は軟組織－硬組織界面再建用の図４Ａ～図４Ｃの生体吸収性ロッド及び／又はウェッジを走査した。ＮＲｅｃｏｎソフトウェアを使用した３Ｄ再建用に０．３ｇｃｍ^－３のミネラルから作製した石灰化組織のカットオフを使用した。図４Ａ～図４Ｃは特定の手術による特定位置での生体吸収性インプラントの移植を表しているが、本開示は、類似の結果を得るために好適であるいずれかの手術について、好適であるいずれかの位置の類似の移植を企図している。

[0058]本明細書に開示されたインプラントは、多段階オッセオインテグレーションを表している。例えば、インプラントにより２段階オッセオインテグレーションプロセスが可能となる。この例では、細胞及び体液がインプラント中の細孔（多孔質構造として出発することができる）に侵入する際に、最初のオッセオインテグレーションが生じる。インプラントの気孔率により、ごく初期から内外吸収が可能となる。インプラントが体内にある間に分解する（最初はその大半が炭水化物Ｂの外部浸出によるが、これに比べると低速なポリマーＡの分解にもよる）際に、さらなる細孔が生成される。これらのさらなる細孔は二次オッセオインテグレーションの足場を設定し、さらなる細胞侵入を可能にする。さらなる細孔により、さらなる体液の進入が可能となる。この結果、インプラントの分解が増加し、さらなる細胞侵入が重ねて可能となる。こうした方法では、インプラントが分解するにつれて内外吸収がますます可能となる。分解プロファイルが整調可能であることで、二次オッセオインテグレーションが開始及び進行する速度の制御が可能となる。さらなる細孔によって血管新生及び結合組織成長をさらに向上させることもまた可能となる。したがって、さらに向上した骨結合及び有効な治癒がもたらされる。

[0059]いくつかの実施形態は、さらに向上した組織再生を促進させるためにインプラント内の多孔質構造を使用することができる。かかる実施形態では、ポリマーＡ、炭水化物Ｂ及びセラミックＣから構成された生体吸収性インプラント内部の多孔質構造は、３Ｄ印刷、エレクトロスピニング法、ソルトリーチング法及び／又はガス発泡法を使用して形成されることができる。ＰＬＡ、ＰＬＧＡ及びＰＣＬなどの脂肪族ポリマーは、ガス発泡法を使用して小孔を形成する可能性を提供する二酸化炭素に可溶である。

[0060]図５は、実施形態による、３Ｄ印刷された例示的な生体吸収性インプラント複合材料を示す。図５は、押出成形フィラメントを含む、３Ｄ印刷によって得られた全体的に一様なパターンを示している。この実施形態では、ポリマーＡの種類に応じて、ダイ温度が１２５℃～２１０℃の範囲である単一のスクリュー押出成形機を使用した。３Ｄ印刷により、１０％～９０％の気孔率の範囲で１００μｍ～１５０μｍの細孔サイズを得ることができる。

[0061]図６Ａ～図６Ｃは、本開示に従い、ガス発泡した生体吸収性インプラント（例えば、生体吸収性インプラント１００）の一実施形態を形成させる工程を示している。ガス発泡法は、均一な細孔を発生させる上で効率が良い技術であり得る。

[0062]図６Ａは、生体吸収性インプラントを形成するためのカスタムモールド６００を示す。型組立体は、１つ又は複数の鋳型（例えば、鋳型６０５－１、６０５－２及び６０５－３）を含んでもよい。生体吸収性インプラントは、好適であるいずれかの方法（例えば、混合物への注入）によりこれらの鋳型内部で作製することができる。カスタムモールド６００は、多数の生体吸収性インプラントを形成するために任意の数の鋳型（例えば、１つ、２つ、３つ、４つ又はそれ以上）を有してもよい。鋳型のそれぞれは、所望のインプラントを生産する上で好適である任意の形状を有していてもよい。例えば、鋳型はディスク形状のインプラント、ウェッジ形状のインプラント、ロッド形状のインプラント、又は好適である他の何らかのインプラントを生産するように構成されていてもよい。

[0063]いくつかの実施形態では、カスタムモールド６００は、生体吸収性インプラントの複合材料を形成するための混合物で充填され、続いてガス発泡させるために圧力チャンバ内に置かれてもよい。生体吸収性ディスク、ロッド、ウェッジ、スクリュー及びワイヤを形成するための圧力チャンバは、高圧容器（例えば、Ｔｈａｒ、１００ｍＬのビューセル）であり得る。容器を加圧する前に、Ｔｈａｒ反応温度コントローラを使用し、例えば２５℃、３０℃及び４０℃などの所望の温度を設定する。ＣＯ_２を用いて、シリンジポンプ（例えば、ＩＳＣＯ、モデル５００Ｄ）を使用して５０ｂａｒ、７５ｂａｒ及び１２５ｂａｒのＰｓなどの所定の圧力にシステムを加圧し、続いてポンプを一定の圧力モードで運転させてもよい。１時間、２時間、４時間及び１２時間などの望ましい時間の後、温度を漸次的に室温へと低下させることができ、例えば０．２ｂａｒ／秒、２．５ｂａｒ／秒、及び１０ｂａｒ／秒などの所定の減圧速度でシステムを減圧させることができる。

[0064]図６Ｂは、上記プロセスによりカスタムモールド６００から形成された例示的なインプラント６１０（ディスク形状のインプラント）を示す。図６Ｃは、インプラント６１０の接写写真を示す。図に見られるように、インプラント６１０は構造全体にわたって細孔６２０を有する多孔質構造である。インプラントの構造を押出成形するために、ガス発泡プロセスを利用することでこれらの細孔を得ることができる。

[0065]図７Ａ～図７Ｂは、試料スライスにおける細孔分布及び全体の気孔率を分析するマイクロＣＴの異なる画像を示す。細孔分布及び気孔率を評価する際には、使用される脂肪族ポリマーの二酸化炭素中の溶解度に基づき、各試料に対して温度、圧力、減圧速度及び浸漬時間を最適化した。亜臨界点、臨界点及び超臨界点は、ＣＯ_２の圧力－温度相図から求めた。こうすることで２０％～７５％の範囲の気孔率を発生させ、卓越した骨結合を提供するため、細孔は生体吸収性インプラントのバルクに対して一様に分布することができる。

[0066]マイクロコンピュータ断層撮影（マイクロＣＴ）により、多孔質の骨結合生体吸収性インプラントをさらに分析した。Ｓｋｙｓｃａｎ１０７２（Ｂｒｕｋｅｒ ＭｉｃｒｏＣＴ）を使用し、マイクロフォーカスＸ線源を用いて標本を走査した。走査中、標本を３６０℃超で少しずつ回転させ、各段階でＸ線投影画像を捕捉した。Ａｖｉｚｏ（登録商標）３Ｄソフトウェアを使用して再構成画像を取得し、３Ｄ多孔質構造及び細孔の相互連結性を分析した。

[0067]図８Ａ～図８Ｄは、異なるガス発泡パラメータに基づいた様々な気孔率を有する生体吸収性インプラントの種々の実施形態を示す。温度及び圧力を変更させることで種々の多孔質構造を得ることができる。いくつかの実施形態では、多孔質構造は５０μｍ～４００μｍの範囲のサイズを有することができる。いくつかの実施形態では、インプラント（例えば、生体吸収性インプラント１００）は、１０％～９０％の範囲の気孔率を有することができる。

[0068]走査型電子顕微鏡エネルギー分散型Ｘ線分析（Ｓｃａｎｎｉｎｇ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ Ｅｎｅｒｇｙ－Ｄｉｓｐｅｒｓｉｖｅ Ｘ－ｒａｙ Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ：ＳＥＭ－ＥＤＳ）により、ガス発泡させた試料の細孔サイズを測定した。導電性シルバーペイントを使用し、アルミニウム製スタブ上に試料をマウントし、Ｅｍｉｔｅｃｈ Ｋ７５５０Ｘ機器を使用して金をコーティングした。１０ｋＶの加速電圧で動作させたＺｅｉｓｓ ＥＶＯ ５０ ＳＥＭを使用し、ＳＥＭ分析を実施した。ＩｍａｇｅＪソフトウェア（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ，ＵＳＡ）を使用し、画像を分析した。ＬａＢ６フィラメントをＳＥＭ装置にも取り付け、ｉＸＲＦ Ｉｒｉｄｉｕｍ Ｕｌｔｒａ ＥＤＳシステムを使用し、ＥＤＳ測定を行った。

[0069]図９は、多孔質生体吸収性ディスクで処置された皮膚のヘマトキシリン及びエオシン（Ｈ＆Ｅ）組織写真を示す。Ｈ＆Ｅ染色では、それぞれ、典型的には青色色素及びピンク色素を用いて細胞核及び細胞質を染色した。

[0070]図９の生体吸収性ディスクをマウスに移植し、組織再生を観察した。組織再生は移植後２週間という早い時間で観察された。皮下移植したマウスモデルを使用し、多孔質足場に対する組織の浸出を評価した。多孔質ディスク（直径５ｍｍ及び高さ３ｍｍ）を無菌状態で調製し、移植前に滅菌クリーンベンチ内で操作した。病原菌を有さない、オスのＢＡＬＢ／ｃマウス（週齢１２～１４週、体重２７±１．９ｇ）を、Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ Ａｎｉｍａｌ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ Ｃｅｎｔｒｅから購入した。全ての動物は、オーストラリアのシドニーにあるＳｙｄｎｅｙ Ｌｏｃａｌ Ｈｅａｌｔｈ Ｄｉｓｔｒｉｃｔ（ＳＬＨＤ）Ａｎｉｍａｌ Ｗｅｌｆａｒｅ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅにより認可されたプロトコルの下で取得し、飼育し、調査した。ケタミン（５０ｍｇ／ｍＬ）とキシラジン（５０ｍｇ／ｍＬ）との混合物を体重の０．０１ｍＬ／ｇの体積で腹腔内注射することで、各マウスに個々に麻酔をかけた。背中を剃毛し、皮膚をベタジン溶液で清浄化して滅菌生理食塩水で洗浄した。

[0071]背面領域に長さにして約１ｃｍの切開部を２箇所作製し、中に多孔質足場を挿入する袋を皮下に生成するために切開した。全ての創傷を縫合し、Ａｔｒａｕｍａｎ（登録商標）（Ｈａｒｔｍａｎｎ，Ａｕｓｔｒａｌｉａ）及びＩＶ３０００創傷ドレッシング（Ｓｍｉｔｈ＆Ｎｅｐｈｅｗ）を使用して７日間被覆した。カルプロフェン（５ｍｇ／ｋｇ）を麻酔時及び術後翌日の麻酔のために投与した。手術後、直後の２日間は各マウスを個別に檻に入れ、その後水と食物を自由に摂取できるように檻につき３匹のマウスを入れた。

[0072]続いて、認知されている科学的プロトコルを使用して試料を得た。移植後２週間時点で、組織学的分析のため皮膚生検を収集した。各時点で得られた皮膚生検を１０％（ｗ／ｖ）のホルマリンで２４時間固定し、組織を処理し、パラフィンに包埋した。キシレンで５μｍの切片を脱パラフィンし、組織学的分析のためにヘマトキシリン及びエオシンで染色した。図９は、こうした生検試料の写真を示している。

[0073]固形のインプラントに加えて、他の形状のインプラントを使用してもよい。こうしたインプラントは異なる手術に特に適合している。例えばいくつかの実施形態では、インプラントは移植前状態ではパテ材料であってもよい。上述のポリマー、炭水化物及び骨結合ミネラルを含む３成分の組成物など、好適であるいずれかの組成物が使用されてもよい（代替的には、活性薬を含み得る４成分の組成物も使用されてもよい）。いくつかの実施形態では、インプラントは、ポリマーマトリックスを形成するためにポリマーＡとしてＰＰＣを使用してもよい。いくつかの実施形態では、インプラントは、ＰＰＣ、デンプン炭水化物フィラー及びバイオガラス４５ｓ５といったセラミックから構成されてもよい。

[0074]これらのＰＰＣインプラントでは、ＰＰＣは、移植時にＰＰＣインプラントに構造的一体性及び耐荷重性といった特性を提供する多孔質マトリックスを形成する。デンプンフィラーはマトリックス全体に分散し、結果、侵食時には、ＰＰＣインプラントは骨組織との二次オッセオインテグレーションのためにさらに開いた状態となり、ＰＰＣインプラントの内外吸収を提供する。バイオガラス４５ｓ５といったセラミックは、細胞接着を促進させるためにＰＰＣインプラント全体に分散される。

[0075]いくつかの実施形態では、ＰＰＣインプラント組成物は、移植前にこれをパテ状とすることができ、かつ所望の構造にＰＰＣインプラントを成形した後、移植後状態に硬化させることができる。これらの実施形態では、ＰＰＣインプラントは依然として移植前状態である間、ＰＰＣインプラントは４０℃～５０℃の温度に加熱され得る。ＰＰＣの熱特性により、他のポリマーで形成されたマトリックスを使用したインプラントよりもはるかに低い温度で、ＰＰＣインプラントを移植前にパテ状にすることができる。例えば、ＰＰＣマトリックスを含むインプラントは、大きく扱いにくい熱防護装備を着用する必要なしに外科医が扱い易く、かつ移植部位周囲で患者に熱損傷を引き起こすことなく移植が可能となる、約４０℃～４５℃の低い温度で成形可能なパテ状となることができる。

[0076]パテ状の硬さを得るために、ＰＰＣインプラントを約４０℃～５０℃の軟化温度に加熱することができる。この状態の間、パテ状の硬さを得るための加熱温度がより低いことから、外科医は、移植時に不正確さ及びミスを引き起こす熱の損失を生じることなく、ＰＰＣインプラントを容易に扱うことができる。さらに、ＰＰＣインプラントと休止状態での体温との熱差異が低いことにより、ＰＰＣインプラントから生じる過剰な熱により患者に不快感を生じさせることなく容易に移植可能となる。好ましくは、最も余裕を持ってパテ状インプラントを扱うことを可能とする目的から、軟化温度は約４０℃～４５℃であってもよい。

[0077]移植時には、ＰＰＣインプラントのパテ状の硬さは、約３７℃といった体にとっておおよそ自然な温度で硬化（ｃｕｒｅ）及び硬化（ｈａｒｄｅｎ）させることができる。ＰＰＣインプラントの硬化時には、構造的一体性はＰＰＣインプラント全体に耐荷重特性を提供し、回復過程にわたって移植部位を強化かつ支持する。加えて、フィラーが分解した際であっても、ＰＰＣインプラントは耐荷重特性を維持している。ＰＰＣの耐荷重能に関するさらなる情報は、’’Ｒｅｉｎｆｏｒｃｅｄ Ｐｏｌｙ（Ｐｒｏｐｙｌｅｎｅ Ｃａｒｂｏｎａｔｅ）Ｃｏｍｐｏｓｉｔｅ ｗｉｔｈ Ｅｎｈａｎｃｅｄ ａｎｄ Ｔｕｎａｂｌｅ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ，ａｎ Ａｌｔｅｒｎａｔｉｖｅ ｆｏｒ Ｐｏｌｙ（ｌａｃｔｉｃ Ａｃｉｄ）’’，Ａｐｐｌｉｅｄ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ＆Ｉｎｔｅｒｆａｃｅｓ（２０１５）で確認することができ、全ての目的のため、本明細書の一部を援用するものとしてこの内容を援用する。

[0078]移植後、ＰＰＣインプラントは硬化した移植後状態に入ってもよい。移植後状態では、ＰＰＣインプラントのマトリックスは、およそ３７℃の体温で硬化し、硬化した耐荷重構造を形成することができる。移植後状態では、２週間～６ヶ月の期間内では、水がＰＰＣインプラントに入り、この中を通って流れることから、デンプンがバルク侵食により分解する。炭水化物がＰＰＣインプラントから分解する間、マトリックスは、ＰＰＣインプラント全体で骨組織再生のさらなる向上を促進させるために、荷重を支持及びこれを支えることができる。セラミックは、ＰＰＣマトリックス上に接着部位を形成し、かつ骨組織再生をさらに向上させることができる。デンプンは、ＰＰＣマトリックス内では細胞接着をさらに促進させることができ、内外吸収効果を可能とする。

[0079]直前に記載した特定の温度プロファイルは、ＰＰＣインプラントが約４０℃～４５℃の温度でパテ状であり、体温（例えば、３７℃付近）では硬化し、耐荷重性を有する移植後状態である場合、ポリマーマトリックスとしてＰＰＣを使用することで可能なものとなる。こうした温度プロファイルは、例えばＰＬＡ又はＰＧＡなどの大半の従来型ポリマーを使用すると可能なものではなくなる。さらに、より詳細に上述されているように、ＰＰＣは、さらなる吸収を促進させ、ＰＰＣが、酸性ではなく、有害ではない副生成物へと経時的に分解することで、回復中に体に生じるストレスを減少させることができる。これは患者の回復の一助となり、酸性の副生成物による疼痛を原因とする再手術の必要をも減らすことができる。本開示は、ＰＰＣを基としたインプラントパテに焦点を当てているが、本開示は、好適であるいずれかのポリマーがインプラントパテ中のポリマーＡとして使用することができることを企図している。

[0080]図１０Ａ～図１０Ｂは、炭水化物Ｂに対するポリマーＡの２種類の異なる比を有する生体吸収性インプラント複合材料の分解プロファイルを比較するグラフを示す。２６週間にわたって体液環境のシミュレートを行うため、リパーゼ及びα－アミラーゼといった酵素で飽和させた擬似体液中にて、これらのグラフを反映させた分解プロファイル試験を実施した。２６週間にわたる重量損失パーセントに関して分解を測定した。

[0081]図１０Ａは、ポリマーＡ：炭水化物Ｂ＝１：１の比である生体吸収性インプラント複合材料の分解プロファイルを示す。図１０Ｂは、ポリマーＡ：炭水化物Ｂ＝１：０の比である生体吸収性インプラント複合材料の分解プロファイルを示す。すなわち、図１０Ｂのグラフは、炭水化物Ｂを一切含まない複合材料に関するデータを反映している。これらの２つのグラフを比較すると、２つの複合材料の分解（重量損失パーセントにより示される）は、おおよそ４週間時点までは類似した状態のままである。この時点では、図１０Ａの複合材料（炭水化物Ｂを含む）は、図１０Ｂの複合材料（炭水化物Ｂを含まない）よりも速く分解することが明らかとなっている。上記にてさらに詳細に説明されているように、４週間時点は、炭水化物Ｂが図１０Ａの複合材料の外部へと浸出し始め、二次多孔質構造を生成する時間付近であり得る。こうすることでさらなるオッセオインテグレーション及び体液の進入がもたらされ、これがさらなる分解をもたらす。図１０Ｂに見られるように、時間経過に伴って効果は倍増し、ますます急速な速度で複合材料が分解する場合には、分解プロファイルの加速が生じる。

[0082]ポリマーＡのみが存在するものとは対照的に、炭水化物Ｂを追加した生体吸収性インプラントの分解がより急速なものとなることで、より早い時点で骨が体重を支え始めることが可能となる。インプラントが分解するにつれて骨が漸次的に体重を支えることができることで、はるかにゆっくりと分解し、結果としてより急速な骨治癒及び骨強度を促進させる上で骨が体重を支えるのを妨げる図１０ＢにあるようなポリマーＡのみのインプラントとは対照的に、骨強度がさらに漸次的に回復し、骨の治癒が可能となる。上で説明されるように、分解プロファイルは高度に整調可能であり、結果として最適な複合材料が形成され、骨構造が過負荷状態となることなく最適な速度で増加する体重量を支えることができる。例えば、分解プロファイルを、炭水化物Ｂに対するポリマーＡの比を調整することで整調することができる。

[0083]図１１は、患者の骨の移植部位へと生体吸収性パテ状インプラントを移植するための例示的な方法１１００を示す。方法は、工程１１０２では、インプラントを、閾値温度を超える第１の温度に加熱してパテ状にすることを含んでもよい。工程１１０４では、方法は、インプラントを所望の形状に成形することを含んでもよい。工程１１０６では、方法は、インプラントを移植部位に適用することを含んでもよい。工程１１０８では、方法は、インプラントを閾値温度未満の第２の温度に冷却してこれを硬化させることを含んでもよい。

[0084]いくつかの実施形態では、例示的な方法１１００のインプラントは、生体吸収性インプラント１００などの脂肪族ポリマー、生体吸収性炭水化物フィラー及びセラミックから構成されていてもよい。

[0085]特定の実施形態は、必要に応じて、図１１の方法の１つ又は複数の工程を繰り返してもよい。本開示は、特定の順序で生じるものとして図１１の方法の特定の工程を記載及び図示しているが、本開示は好適である任意の順序の図１１の方法の好適であるいずれかの工程を企図している。さらには、本開示は、図１１の方法の特定の工程を含む、患者の骨の移植部位へと生体吸収性パテ状インプラントを移植するための例示的な方法を記載及び図示しているが、本開示は、必要に応じて、図１１の方法の工程の全て、いくつかを含み得る、又はこれらの工程を含み得ないが好適であるいずれかの工程を含む、患者の骨の移植部位へと生体吸収性パテ状インプラントを移植するための好適であるいずれかの方法を企図している。さらに、本開示は、図１１の方法の特定の工程を実行する特定の成分、装置又はシステムを記載及び図示しているが、本開示は、図１１の方法の好適であるいずれかの工程を実行する、好適であるいずれかの成分、装置、又はシステムの好適であるいずれかの組合せを企図している。

[0086]本発明の特定の実施形態が記載されているが、種々の修正、変更及び代替的な構造及び同等物もまた、本発明の範囲内に包含される。本発明の実施形態は、ある特定の環境内での操作に限定するものではないが、複数の環境内で自由に行われる。さらには、本発明の方法の実施形態が特定の連続及び工程を使用して記載されるが、本発明の範囲は記載された一連のやり取り及び工程に限定されないことは、当業者には明らかである。

[0087]さらには、本発明の実施形態は金属の特定の組合せを使用して記載されているが、金属の他の組合せもまた本発明の範囲内にあることも理解されたい。したがって、明細書及び図面は限定的な意味ではなく、例示的な意味であると見なされるべきである。ただし、より広範な意図及び範囲から逸脱することなく、こうした明細書及び図面に対する追加、一部の削除、削除及び他の修正及び変更が行われてもよい。

Claims (38)

1. 内外吸収性ならびに卓越した骨および組織結合を備えた生体吸収性インプラントであって、
   移植位置で構造的一体性を提供するように構成された脂肪族ポリマーと、
   一定期間にわたり前記生体吸収性インプラントの外部に浸出するように構成された生体吸収性の天然炭水化物フィラーと、
   セラミックと、
   を含む、生体吸収性インプラント。
2. 成分が溶融混合で混合される、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
3. 前記脂肪族ポリマーが、ポリ（ｄｌ－乳酸）、ポリ（ε－カプロラクトン）、ポリ（３－ヒドロキシ酪酸）、ポリ（ブチレンサクシナート）、ポリ（プロピレンカーボナート）、またはポリ（プロピレンフマラート）を含む、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
4. 前記脂肪族ポリマーがポリ（プロピレンカーボナート）を含む、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
5. 前記生体吸収性インプラントは約４５℃以上ではパテ状であるように構成され、約３７℃で硬化状態となるように構成されている、請求項３に記載の生体吸収性インプラント。
6. 前記生体吸収性の天然炭水化物フィラーが、セルロース、ゼラチン、アルギナート、酸化多環芳香族リグニンまたはデンプンを含む、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
7. 前記デンプンがトウモロコシである、請求項６に記載の生体吸収性インプラント。
8. 前記生体吸収性の天然炭水化物フィラーが粒子、繊維またはウィスカの形状である、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
9. 前記生体吸収性の天然炭水化物フィラーが５μｍ～３０μｍの粒子サイズを有する、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
10. 前記セラミックがリン酸カルシウム、ハイドロキシアパタイトまたはバイオガラス４５ｓ５を含む、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
11. 前記セラミックが粒子、繊維またはウィスカの形状である、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
12. 前記セラミックが１μｍ～２０μｍの粒子サイズを有する、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
13. 移植状態をさらに含み、前記生体吸収性インプラントが移植状態である場合、前記生体吸収性の天然炭水化物フィラーが２週間～６ヶ月の期間にわたり前記生体吸収性インプラントの外部に浸出するように構成されている、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
14. 前記生体吸収性インプラントが、前記生体吸収性インプラントの内部領域から組織成長を引き起こすように構成されている、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
15. 前記生体吸収性インプラントが、ウェッジ、骨充填材、骨軟組織界面の固定インプラント、または軟組織の固定インプラントの形状である、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
16. 構成物は、３Ｄ印刷、ガス発泡法、エレクトロスピニング法またはソルトリーチング法によって多孔質となる、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
17. 前記脂肪族ポリマーが多孔質である、請求項１に記載の生体吸収性インプラント。
18. 前記脂肪族ポリマーが５０μｍ～４００μｍの細孔サイズを有する、請求項１７に記載の生体吸収性インプラント。
19. 前記脂肪族ポリマーが１０％～９０％の気孔率を有する、請求項１７に記載の生体吸収性インプラント。
20. 内外吸収性の骨および組織結合を備えた生体吸収性インプラントであって、
    構造的一体性を提供するように構成された脂肪族ポリマーと、
    前記生体吸収性インプラントの外部に浸出するように構成された生体吸収性の天然炭水化物フィラーと、
    骨結合ミネラルと、
    を含み、
    前記生体吸収性インプラントには移植前状態および移植後状態があり、前記生体吸収性の天然炭水化物フィラーは、前記生体吸収性インプラントが移植後状態にある間、２週間～６ヶ月の期間にわたり前記生体吸収性インプラントの外部に浸出するように構成され、
    前記生体吸収性インプラントはパテ、ウェッジ、骨充填材、骨軟組織界面の固定インプラント、または軟組織の固定インプラントの形状である、生体吸収性インプラント。
21. 前記脂肪族ポリマーがポリ（プロピレンカーボナート）を含む、請求項２０に記載の生体吸収性インプラント。
22. 内外吸収性ならびに骨および組織結合を備えた生体吸収性インプラントであって、
    構造的一体性を提供するように構成され、多孔質である脂肪族ポリマーと、
    前記生体吸収性インプラントの外部に浸出するように構成された生体吸収性の天然炭水化物フィラーと、
    骨結合ミネラルと、
    を含み、
    前記生体吸収性インプラントには移植前状態および移植後状態があり、前記生体吸収性の天然炭水化物フィラーは、前記生体吸収性インプラントが移植後状態にある間、２週間～６ヶ月の期間にわたり前記生体吸収性インプラントの外部に浸出するように構成され、
    前記生体吸収性インプラントはパテ、ウェッジ、骨充填材、骨軟組織界面の固定インプラント、または軟組織の固定インプラントの形状である、生体吸収性インプラント。
23. 前記生体吸収性インプラントは約４５℃ではパテ状であるように構成され、約３７℃で硬化状態となるように構成されている、請求項２２に記載の生体吸収性インプラント。
24. 前記生体吸収性インプラントは約４５℃ではパテ状であるように構成され、約３７℃で硬化状態となるように構成されている、請求項２１に記載の生体吸収性インプラント。
25. 患者の骨の移植部位に生体吸収性パテ状インプラントを移植する方法であって、前記方法が、
    インプラントを、閾値温度を超える第１の温度に加熱して前記インプラントをパテ状にすることと、
    前記インプラントを所望の形状に成形することと、
    前記インプラントを前記移植部位に適用することと、
    前記インプラントを、閾値温度未満の第２の温度に冷却して硬化させることと、
    を含み、
    前記インプラントが、
    移植位置で構造的一体性を提供するように構成された脂肪族ポリマーと、
    一定期間にわたり前記インプラントの外部に浸出するように構成された生体吸収性の天然炭水化物フィラーと、
    セラミックと、
    を含む、方法。
26. 前記インプラントが手で成形される、請求項２５に記載の方法。
27. 前記脂肪族ポリマーがポリ（プロピレンカーボナート）を含む、請求項２５に記載の方法。
28. 前記脂肪族ポリマーが多孔質である、請求項２７に記載の方法。
29. 前記閾値温度が４５℃である、請求項２５に記載の方法。
30. 前記生体吸収性の天然炭水化物フィラーがデンプンを含む、請求項２５に記載の方法。
31. 前記セラミックがリン酸カルシウム、ハイドロキシアパタイトまたはバイオガラス４５ｓ５を含む、請求項２５に記載の方法。
32. 内外吸収を可能にするための生体吸収性インプラントであって、
    移植位置で構造的一体性を提供するように構成され、ポリ（プロピレンカーボナート）を含む脂肪族ポリマーと、
    一定期間にわたり前記生体吸収性インプラントの外部に浸出するように構成された生体吸収性の天然炭水化物フィラーと、
    セラミックと、
    を含み、
    前記生体吸収性インプラントが軟化温度超で軟化状態および硬化温度未満で硬化状態を有するパテの形状を有する、生体吸収性インプラント。
33. 前記生体吸収性インプラントには移植前状態および移植後状態があり、前記生体吸収性の天然炭水化物フィラーは、前記生体吸収性インプラントが移植後状態にある間、２週間～６ヶ月の期間にわたり前記生体吸収性インプラントの外部に浸出するように構成されている、請求項３２に記載の生体吸収性インプラント。
34. 前記軟化温度が４２℃である、請求項３２に記載の生体吸収性インプラント。
35. 前記硬化温度が３７℃である、請求項３２に記載の生体吸収性インプラント。
36. 前記脂肪族ポリマーが多孔質である、請求項３２に記載の生体吸収性インプラント。
37. 細孔サイズが５０μｍ～４００μｍである、請求項３６に記載の生体吸収性インプラント。
38. 気孔率が１０％～９０％である、請求項３６に記載の生体吸収性インプラント。
    

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