JP2023506494A - 環境適合性洗剤によるウイルス不活化のための方法 - Google Patents

Abstract

本発明は、治療用または診断用タンパク質などの患者への投与を目的としたタンパク質の製造方法において、製品ウイルスを供給流中で不活化するための組換えタンパク質製造の分野で環境適合性洗剤を使用する方法を提供する。本発明は、本発明で使用される環境適合性洗剤が、ウイルスを効果的に不活化しながら、治療用または診断用タンパク質の製品品質を維持する方法を、さらに提供する。【選択図】なし

Description

本発明は、組換えタンパク質製造の分野に関する。より具体的には、本発明は、治療用または診断用タンパク質などの、患者への投与を目的としたタンパク質の製造方法において、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供する。本発明はさらに、本発明の環境適合性洗剤が抗ウイルス活性を効果的に提供し、治療用または診断用タンパク質の製品品質を維持する方法を提供する。この方法は、例えば、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００を使用する方法、および／または洗剤を使用しない方法と比較して、重要な実世界の生物学的製品製造の利点を提供する。

洗剤は、最終的な生物学的製品の安全性を確保するための治療用または診断用タンパク質の製造方法における重要な試薬である。最終的な生物学的製品のウイルス汚染は、例えば、供給源の細胞株自体の汚染から、またはさまざまな製造段階でのウイルスの偶発的な混入から生じる深刻な臨床的結果をもたらす可能性がある。したがって、洗剤は、治療用または診断用タンパク質の製造方法中に供給流に存在するウイルス汚染物質を除去する目的で使用される。目的のタンパク質を精製した後、製品の製造および精製プロセスで使用される増殖培地および緩衝液が不活化され、廃水として排出される。しかしながら、製造および精製プロセスで使用される洗剤を含有するこのような排出物は、洗剤についての環境リスク評価（ＥＲＡ）によって推定されるように、環境への懸念を引き起こす場合がある。

治療用または診断用タンパク質などのバイオ製品の製造方法でウイルスを不活化するための現在の方法は、洗剤Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００の使用に大きく依存している。Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００は、ポリオキシエチレンエーテルであり、通常、さまざまな実験条件下で４ログ以上の強力なエンベロープウイルス不活化を実現する。しかしながら、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００の分解生成物である４－（１，１，３，３－テトラメチルブチル）フェノール（別名４－ｔｅｒｔ－オクチルフェノール）は、エストロゲン作用の可能性を含め、野生生物に対する潜在的な環境毒素として特定されている。したがって、廃棄物の流れからの４－ｔｅｒｔ－オクチルフェノールの除去が望まれるが、複雑で、長く、費用のかかる手段を必要とすることになる。したがって、毒性の懸念から、ＥＵ－ＲＥＡＣＨ委員会は、ＥＵで禁止されている物質のリストであるＡｎｎｅｘ ＸＩＶにＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００を追加し、２０２１年以降の組換えタンパク質製造でのＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００の使用を禁止することを決定した。生物製剤の製造においてＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００に代わる代替薬剤は十分に確立されていない。したがって、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００を組み込んだ方法よりも環境毒性が低い治療用または診断用タンパク質などの生物製剤の製造方法中に、ウイルスを効果的に不活化するための方法が、緊急かつ一刻を争う状況下で求められている。

タンパク質の製造方法において、ウイルス、特にエンベロープウイルスを不活化するためのＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００の環境適合性のある代替物が、ＷＯ２０１９／１２１８４６およびＷＯ２０１５／０７３６３３などで検討されてきた。しかしながら、ウイルスの不活化にさまざまな洗剤を使用した場合の影響は一定ではない。一部の洗剤は、不溶性のため、または供給流から除去するのが難しいため、製造方法での使用に適していない。さらに、いくつかの洗剤は、供給流の濁度および／または泡立ちを増加させ、したがって、供給流の濁度および／または泡立ちを減少させるための追加の手段を必要とする。他の洗剤は、広い温度およびｐＨ範囲では効果がなく、ウイルスの不活化にはより高い濃度が必要である。これらのバリエーションの組み合わせは、タンパク質の製造方法に追加のコストおよび時間をもたらす可能性がある。さらに、さまざまな種類およびサイズのタンパク質の製造供給流における多くの洗剤の有効性は十分ではない。

したがって、さまざまなタイプおよびサイズの治療用または診断用タンパク質の製造中に、低温および高温とｐＨ範囲との両方でさまざまなエンベロープウイルスを効果的に不活化する、かつ／または水性であり、可溶性であり、かつ／または容易に可溶化され、かつ／または供給流の濁度に影響を及ぼさないので、大規模製造に適している環境適合性洗剤を、そのような洗剤の妥当な時間量および妥当な濃度で使用して、ウイルスを効果的に不活化するための方法が依然として必要とされている。さらに、洗剤は、複雑で、時間のかかる、および／または費用のかかる手段を追加することなく、精製工程で（規制要件を満たすために）製品の供給流から十分に除去され、治療用または診断用タンパク質の製品品質が維持される。

したがって、本発明は、治療用または診断用タンパク質の製造方法においてウイルスを不活化するための方法を提供することによって、上記の問題のうちの１つ以上に対処する。驚くべきことに、本発明の方法は、広い温度および／またはｐＨ範囲で、異なるタイプのタンパク質の製造において、環境に有毒な影響を及ぼすことなく妥当な時間で、妥当な濃度で、ウイルスを不活化するのに非常に効果的な環境適合性洗剤を提供する。驚くべきことに、本発明の方法は、完全なウイルス不活化を容易に達成する、少なくともＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００に匹敵する環境適合性洗剤の使用を提供し、この環境適合性洗剤は、使用される濃度で既知の環境毒性を有さない。さらに、本発明の方法は、さまざまなタイプおよびサイズの治療用または診断用タンパク質の製造中に、環境に有毒な影響を及ぼすことなく妥当な時間で、かつ妥当な濃度で、約４℃～少なくとも約３０℃の温度範囲および広いｐＨ範囲において約３以上～約６以上のウイルス対数減少係数（「ＬＲＦ」）で、完全なウイルス不活化を達成する。驚くべきことに、本発明の方法はまた、さまざまなタイプおよびサイズの治療用または診断用タンパク質の製造中に、妥当な濃度範囲で、広いｐＨ範囲において、約４℃～少なくとも約３０℃の温度範囲で試験されたすべてのエンベロープウイルスにおいて、ウイルス不活化を１分以上～約１８０分以内に達成した。

したがって、本発明は、環境適合性である洗剤を供給流に添加することを含む、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供する。本発明の方法で使用される例示的な洗剤は水溶液であり、これは供給流の濁度に有意に影響を及ぼさず、したがって、治療用または診断用タンパク質の大規模製造に適している。さらに、本発明で使用される洗剤は、先立つ濾過工程を伴うか、または伴わずに精製工程で、（規制要件を満たすために）十分かつ効果的に除去される。さらに、供給流から洗剤を除去するために、複雑で、時間のかかる、および／または費用のかかる手段は必要とされない。加えて、本発明の方法で使用される例示的な洗剤は、治療用または診断用タンパク質の最終的な品質に悪影響を及ぼさない。本発明の方法で使用される洗剤は、環境に有毒な影響を及ぼすことなく、広い温度およびｐＨ範囲でエンベロープウイルスを効果的に不活化する。

本発明の一態様によれば、治療用または診断用タンパク質の製造方法において、供給流中のアルキルグリコシド洗剤でウイルスを不活化するための方法が提供される。本発明の別の態様によれば、本発明の方法で使用される洗剤は、約４０％以上のウンデシルアルキルグリコシドを含む。本発明の別の態様では、本発明で使用される洗剤は、約４０％以上のウンデシルアルキルグリコシドおよび約２０％未満の他のアルキルグリコシドを含む。本発明の別の態様では、本発明で使用される洗剤は、約４０％以上のウンデシルアルキルグリコシドおよび約１０％未満のデシルアルキルグリコシドを含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、約４０％～約６０％のウンデシルアルキルグリコシドを含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、約５３％～約５７％のウンデシルアルキルグリコシドを含む。本発明の別の態様では、本発明で使用される洗剤は、約５０％以上のウンデシルアルキルグリコシドを含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、約４０％～約６０％のウンデシルアルキルグリコシドおよび約２０％未満の他のアルキルグリコシドを含む。さらに別の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、約４０％～約６０％のウンデシルアルキルグリコシドおよび約１０％未満のデシルアルキルグリコシドを含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、約５３％～約５７％のウンデシルアルキルグリコシドおよび約２０％未満の他のアルキルグリコシドを含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、約５３％～約５７％のウンデシルアルキルグリコシドおよび約１０％未満のデシルアルキルグリコシドを含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、０または約０．１％、０．５％、１％、２％、３％、４％、５％、６％、７％、８％、９％、１０％、１１％、１２％、１３％、１４％、１５％、１６％、１７％、１８％、１９％、もしくは２０％未満の他のアルキルグリコシドを含む。本発明のいくつかの実施形態では、他のアルキルグリコシドは、ノニルアルキルグリコシド、デシルアルキルグリコシドおよび／またはラウリルアルキルグリコシドの混合物を含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、０または約０．１％、０．５％、１％、２％、３％、４％、５％、６％、７％、８％、９％、１０％未満のデシルアルキルグリコシドを含む。本発明の一実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、ウンデシルアルキルグリコシドを含む。

本発明の一実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、ＣＡＳ９８２８３－６７－１のＣＡＳ登録番号を有する。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗである。さらなる実施形態では、本発明の方法で使用されるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、約４０％以上のウンデシルアルキルグリコシドを含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用されるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、約４０％～約６０％のウンデシルアルキルグリコシドを含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用されるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、約５３％～約５７％のウンデシルアルキルグリコシドを含む。さらに別の実施形態では、本発明の方法で使用されるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、約４０％～約６０％のウンデシルアルキルグリコシドおよび約１０％未満のデシルアルキルグリコシドを含む。さらに別の実施形態では、本発明の方法で使用されるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、約５３％～約５７％のウンデシルアルキルグリコシドおよび約１０％未満のデシルアルキルグリコシドを含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用されるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、０または約０．１％、０．５％、１％、２％、３％、４％、５％、６％、７％、８％、９％、１０％、１１％、１２％、１３％、１４％、１５％、１６％、１７％、１８％、１９％、もしくは２０％未満の他のアルキルグリコシドを含む。本発明の実施形態では、本発明の方法で使用されるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗ中の他のアルキルグリコシドは、ノニルアルキルグリコシド、デシルアルキルグリコシドおよび／またはラウリルアルキルグリコシドの混合物を含む。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用されるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、０または約０．１％、０．５％、１％、２％、３％、４％、５％、６％、７％、８％、９％、１０％未満のデシルアルキルグリコシドを含む。本発明の一実施形態では、本発明の方法で使用されるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、ウンデシルアルキルグリコシドである。

さらに別の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ８２である。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用されるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ８２は、約４０％～約６０％のウンデシルアルキルグリコシドを含む。

さらなる実施形態では、本発明は、環境適合性洗剤を、約０．０５ｗ／ｗ％～約１ｗ／ｗ％の最終濃度で供給流に添加することを含む、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供し、環境適合性洗剤は、約４０％以上のデシルアルキルグリコシドを含む。いくつかの実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、約０．１ｗ／ｗ％～約１ｗ／ｗ％の最終濃度になるように供給流に添加される。いくつかの実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、０．１ｗ／ｗ％～１ｗ／ｗ％の最終濃度になるように供給流に添加される。いくつかの実施形態では、洗剤は、約０．３ｗ／ｗ％～約１ｗ／ｗ％の最終濃度になるように供給流に添加される。いくつかの実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、０．３ｗ／ｗ％～１ｗ／ｗ％の最終濃度になるように供給流に添加される。いくつかの実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、約０．１ｗ／ｗ％～約０．３ｗ／ｗ％の最終濃度になるように供給流に添加される。いくつかの実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、０．１ｗ／ｗ％～０．３ｗ／ｗ％の最終濃度になるように供給流に添加される。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、約０．３ｗ／ｗ％の最終濃度になるように供給流に添加される。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、０．３％の最終濃度になるように供給流に添加される。さらに他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、約０．０１％、約０．０５％、約０．１％、約０．２％、約０．３％、約０．４％、約０．５％、約０．６％、約０．７％、約０．５％、約０．９％または約１％の最終ｗ／ｗ濃度になるように供給流に添加される。

本発明のいくつかの実施形態では、供給流は、約４℃～約３０℃にある。本発明の他の実施形態では、供給流は、４℃～３０℃にある。さらに他の実施形態では、供給流は、約１５℃～約３０℃にある。別の実施形態では、供給流は、約１５℃～約２０℃にある。本発明のさらに他の実施形態では、供給流は、約４℃、約１５℃、約１８℃、約２０℃、約２５℃、または約３０℃にある。

本発明のいくつかの実施形態では、供給流は、約５．５のｐＨ～約８．０の約ｐＨにある。本発明の他の実施形態では、供給流は、５．５のｐＨ～８．０のｐＨにある。本発明のさらに他の実施形態では、供給流は、約５．５、約６．０、約６．５、約７．０、約７．５、または約８．０のｐＨにある。

いくつかの実施形態では、供給流は、約１分未満～約１８０分の間、洗剤とともにインキュベートされる。他の実施形態では、供給流は、約６分～約１８０分の間、洗剤とともにインキュベートされる。他の実施形態では、供給流は、約１０分～約１８０分の間、洗剤とともにインキュベートされる。さらに他の実施形態では、供給流は、約１２０分～約１８０分の間、洗剤とともにインキュベートされる。さらに他の実施形態では、供給流は、約１８０分間、洗剤とともにインキュベートされる。さらに他の実施形態では、供給流は、約１２０分間、洗剤とともにインキュベートされる。さらに他の実施形態では、供給流は、約６０分間、洗剤とともにインキュベートされる。さらに他の実施形態では、供給流は、約１、約５、約６、約１０、約１５、約３０、約４５、約６０、約７５、約９０、約１０５、約１２０、約１３５、約１５０、約１６５、または約１８０分間、洗剤とともにインキュベートされる。

本発明の実施形態では、供給流中の洗剤は、約１以上のウイルスＬＲＦを有する。本発明のいくつかの実施形態では、供給流中の洗剤は、約４以上のウイルスＬＲＦを有する。本発明のいくつかの実施形態では、供給流中の洗剤は、約５以上のウイルスＬＲＦを有する。本発明のいくつかの実施形態では、供給流中の洗剤は、約６以上のウイルスＬＲＦを有する。本発明のいくつかの実施形態では、供給流中の洗剤は、約７以上のウイルスＬＲＦを有する。本発明のいくつかの実施形態では、供給流中の洗剤は、完全なウイルス不活化を達成する。本発明のさらに他の実施形態では、供給流中の洗剤は、約１、約２、約３、約４、約５、約６または約７以上のウイルスＬＲＦを有する。

本発明のいくつかの実施形態では、ウイルスはエンベロープウイルスである。いくつかの実施形態では、ウイルスは、レトロウイルス、ヘルペスウイルス、フラビウイルス、ポックスウイルス、ヘパドナウイルス、肝炎ウイルス、オルトミクソウイルス、パラミクソウイルス、ラブドウイルス、またはトガウイルスである。

いくつかの実施形態では、本発明は、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供し、この方法は、供給流と環境適合性洗剤とを、約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで、約１５分～約１８０分間インキュベートする工程を含み、洗剤は、約０．１ｗ／ｗ％～約１．０ｗ／ｗ％の最終濃度で供給流に添加され、供給流中の洗剤は、約２以上のウイルスＬＲＦを有する。

いくつかの実施形態では、本発明は、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供し、この方法は、供給流と環境適合性洗剤とを、約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで、約６分～約１８０分間インキュベートする工程を含み、洗剤は、約０．３ｗ／ｗ％～約１．０ｗ／ｗ％の最終濃度で供給流に添加され、供給流中の洗剤は、約４以上のウイルスＬＲＦを有する。

いくつかの実施形態では、本発明は、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供し、この方法は、供給流と環境適合性洗剤とを、約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで、約１８０分間インキュベートする工程を含み、洗剤は、約０．１ｗ／ｗ％～約１．０ｗ／ｗ％の最終濃度で供給流に添加され、供給流中の洗剤は、約５以上のウイルスＬＲＦを有する。

いくつかの実施形態では、本発明は、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供し、この方法は、供給流と環境適合性洗剤とを、約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで、約６０分～約１８０分間インキュベートする工程を含み、洗剤は、約０．３ｗ／ｗ％の最終濃度で供給流に添加され、供給流中の洗剤は、約５以上のウイルスＬＲＦを有する。

いくつかの実施形態では、本発明は、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供し、この方法は、供給流と環境適合性洗剤とを、約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで、約１２０分～約１８０分間インキュベートする工程を含み、洗剤は、約０．３ｗ／ｗ％の最終濃度で供給流に添加され、供給流中の洗剤は、約６以上のウイルスＬＲＦを有する。

いくつかの実施形態では、本発明は、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供し、供給流は、収集した細胞培養液、捕捉プール、または回収した生成物プールを含む。本発明は、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供し、供給流は、収集した細胞培養液、捕捉プール、または回収した生成物プールを含み、捕捉プールまたは回収した生成物プールは、アフィニティークロマトグラフィープールである。さらに別の実施形態では、捕捉プールまたは回収した生成物プールは、タンパク質Ａプール、タンパク質Ｇプール、またはタンパク質Ｌプールである。他の実施形態では、捕捉プールまたは回収した生成物プールは、混合モードクロマトグラフィープールである。

いくつかの実施形態では、本発明は、洗剤とともにインキュベートされた供給流が、濾過工程にかけられない方法を提供する。いくつかの実施形態では、本発明は、洗剤とともにインキュベートされた供給流が、少なくとも１つの濾過工程に供される方法を提供する。他の実施形態では、本発明は、洗剤とともにインキュベートされた供給流が、少なくとも１つ、または少なくとも２つ、または少なくとも３つの濾過工程に供される方法を提供する。いくつかの実施形態では、本発明は、界面活性剤とともにインキュベートされた供給流が、０．２２μｍのフィルターを用いた第１の濾過工程、続いて、０．４５μｍのＰＶＤＦフィルターを用いた第２および第３の濾過工程に供される方法を提供する。特定の実施形態では、本発明は、第１および／または第２および／または第３の濾過工程におけるフィルター膜が、限定されないが、ビニリデンジフルオリド（ＰＶＤＦ）、酢酸セルロース、硝酸セルロース、ポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ、テフロン）、ポリ塩化ビニル、ポリエーテルスルホン、ガラス繊維フィルター、またはｃＧＭＰ製造環境での使用に好適な他の濾材を含む方法を提供する。好ましい実施形態では、本発明は、第２および第３の濾過工程の両方におけるフィルター膜が、ＰＶＤＦを含む方法を提供する。特定の実施形態では、本発明は、第２および第３の濾過工程の両方におけるフィルター膜が、約０．４５μｍの孔径を有する膜である方法を提供する。特定の実施形態では、本発明は、第２および第３の濾過工程の両方におけるフィルター膜は、０．４５μｍの孔径を有するＰＶＤＦ膜を含む。特定の実施形態では、本発明は、第１の濾過工程におけるフィルター膜が、約０．２２μｍの孔径を有する膜である方法を提供する。

いくつかの実施形態では、本発明は、洗剤とともにインキュベートされた供給流が、アフィニティークロマトグラフィーに供される方法を提供する。いくつかの実施形態では、アフィニティークロマトグラフィーは、タンパク質Ａアフィニティーカラムである。

いくつかの実施形態では、本発明は、洗剤を含有する供給流が、クロマトグラフィーカラムに供される方法を提供する。いくつかの実施形態では、クロマトグラフィーカラムは、アフィニティーカラム、イオン交換カラム、疎水性相互作用カラム、ヒドロキシアパタイトカラム、または混合モードカラムのうちの１つ以上である。いくつかの実施形態では、アフィニティークロマトグラフィーカラムは、タンパク質Ａカラム、タンパク質Ｇカラム、またはタンパク質Ｌカラムである。他の実施形態では、イオン交換クロマトグラフィーカラムは、陰イオン交換カラムまたは陽イオン交換カラムである。いくつかの実施形態では、本発明は、洗剤が最終製品から十分に除去される方法を提供する。いくつかの実施形態では、本発明は、洗剤が最終製品から完全に除去される方法を提供する。

いくつかの実施形態では、本発明は、ウイルスを供給流中で不活化するための方法を提供し、この方法は、該供給流に洗浄剤を添加する工程と、洗剤と供給流とをインキュベートする工程とを含み、治療用または診断用タンパク質は、抗体、Ｆｃ融合タンパク質、イムノアドヘシン、酵素、増殖因子、受容体、ホルモン、調節因子、サイトカイン、抗原、または結合剤である。さらなる実施形態では、抗体は、モノクローナル抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、二重特異性抗体、または抗体フラグメントである。いくつかの実施形態では、治療用または診断用タンパク質は、哺乳動物細胞において生成される。いくつかの実施形態では、哺乳動物細胞は、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、またはベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ）細胞、マウスハイブリドーマ細胞、またはマウス骨髄腫細胞である。いくつかの実施形態では、治療用または診断用タンパク質は、細菌細胞において生成される。他の実施形態では、治療用または診断用タンパク質は、酵母細胞で生成される。

本発明のいくつかの実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤を含む供給流は、低濁度のものである。いくつかの実施形態では、供給流への洗剤の添加は、供給流の濁度を大幅に増加または変化させない。さらなる実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、治療用または診断用タンパク質の製品品質に影響を及ぼさない。

いくつかの実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、防腐剤、および／または安定剤を含む。いくつかの実施形態では、安定剤は、モノプロピレングリコールである。いくつかの実施形態では、洗剤中の安定剤は、約１％～約５％を構成する。さらなる実施形態では、安定剤は、本発明の方法で使用される洗剤のウイルス不活化特性に影響を及ぼさず、治療用または診断用タンパク質の製品品質に影響を及ぼさない。さらなる実施形態では、モノプロピレングリコールは、本発明の方法で使用される洗剤のウイルス不活化特性に影響を及ぼさず、治療用または診断用タンパク質の製品品質に影響を及ぼさない。

本発明の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、環境に適合性がある。本発明の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、４－（１，１，３，３－テトラメチルブチル）フェノール（別名４－ｔｅｒｔ－オクチルフェノール）を含まないか、またはそれを形成しない。他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、過酸化物を含まないか、またはそれを形成しない。本発明の他の実施形態では、本発明の方法で使用される洗剤は、生分解性である。

本発明の一態様では、本発明は、ウイルスを供給流中で不活化するための方法であって、
供給流に、約０．１ｗ／ｗ％～約０．３ｗ／ｗ％の濃度のウンデシルアルキルグリコシドを添加する工程、
ウンデシルアルキルグリコシドを供給流中で約１８０分間インキュベートする工程であって、供給流中のウンデシルアルキルグリコシドのウイルス対数減少係数（ＬＲＦ）が約５以上である、インキュベートする工程、
ウンデシルアルキルグリコシドを含有する該供給流を濾過する工程、次いで該濾過された供給流をタンパク質Ａアフィニティークロマトグラフィーカラムに供する工程を含む、方法を提供するものであって、
前記添加およびインキュベート工程が、供給流中で約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで行われる。

本発明の一態様では、本発明は、ウイルスを供給流中で不活化するための方法であって、
供給流に、約０．１ｗ／ｗ％～約０．３ｗ／ｗ％の濃度のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを添加する工程、
ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを供給流中で約１８０分間インキュベートする工程であって、供給流中のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗのウイルス対数減少係数（ＬＲＦ）が約５以上である、インキュベートする工程、
ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを含有する該供給流を濾過する工程、次いで該濾過された供給流をタンパク質Ａアフィニティークロマトグラフィーカラムに供する工程を含む、方法を提供するものであって、
前記添加およびインキュベート工程が、供給流中で約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで行われる。本発明のさらに別の態様では、本発明の方法における濾過工程は、０．２２μｍのフィルターを用いた第１の濾過工程を含む。本発明のさらに別の態様では、本発明の方法における濾過工程は、０．４５μｍのＰＶＤＦフィルターを用いた第２の濾過工程を含む。さらに別の態様では、本発明の方法における濾過工程は、０．４５μｍのＰＶＤＦフィルターを用いた第３の濾過工程を含む。さらなる実施形態では、本発明の方法での第１および／または第２および／または第３の濾過工程におけるフィルター膜は、限定されないが、ビニリデンジフルオリド（ＰＶＤＦ）、酢酸セルロース、硝酸セルロース、ポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ、テフロン）、ポリ塩化ビニル、ポリエーテルスルホン、ガラス繊維フィルター、またはｃＧＭＰ製造環境での使用に好適な他の濾材を含む。好ましい実施形態において、フィルター膜はＰＶＤＦを含む。特定の実施形態では、第２および第３の濾過工程の両方におけるフィルター膜は、約０．４５μｍの孔径を有する膜である。好ましい実施形態において、フィルター膜は、０．４５μｍの孔径を有するＰＶＤＦ膜である。

本明細書で使用される場合、本明細書で言及される「環境適合性」洗剤または化合物または物質または薬剤は、環境に対して最小限および／または許容可能なレベルの有害な影響を引き起こす。例えば、経済協力開発機構（「ＯＥＣＤ」）は、化学物質の安全性を試験するためのガイドラインを提供している。本開示による環境適合性薬剤の実施形態もまた、生分解性であり得る。洗剤などの薬剤が、例えば、タンパク質製造の条件下で環境的に適合性があるかどうかを決定する方法は、当技術分野において既知である。環境適合性は、生態学的リスク評価によって評価することもでき、これは、化学物質、土地の変化、疾病、侵入種および気候変動などの１つ以上の環境ストレス要因への曝露の結果として環境が影響を受ける可能性を評価するプロセスである。これらのガイドラインは、例えば、米国環境保護庁のウェブサイトに見出すことができる。さらに、ＥＵにおける化学物質の登録、評価、認可、および制限に関するガイドラインは、欧州委員会のＲＥＡＣＨウェブサイトで見出すことができる。

「予測環境濃度」または「ＰＥＣ」は、環境中の受水域に排出される廃棄物中の物質の予測濃度である。例えば、治療用または診断用タンパク質の調製においてウイルスの不活化に使用される洗剤の予測環境濃度は、環境に排出される廃棄物流中の洗剤の濃度である。

本明細書で使用される「洗剤」という用語は、長鎖脂肪族塩基または酸の塩、または糖などの親水性部分を含み得、親水性および疎水性の両方の特性を有する薬剤を指す。本明細書で使用される場合、洗剤は、ウイルスエンベロープを破壊し、ウイルスを不活化する能力を有することができる。洗剤によるウイルス不活化のメカニズムは、洗剤とウイルス外膜の脂質成分との間の相互作用に起因し、その結果、膜が破壊され、最終的には毒性が失われる。いくつかの例では、洗剤は、「界面活性剤」もしくは「表面作用剤」と、キレート剤、防腐剤または安定剤などの１つ以上の他の薬剤とを含む組成物であり得る。洗剤または界面活性剤は、電荷に基づいて分類することができる。界面活性剤は、非イオン性、カチオン性、またはアニオン性であり得る。本明細書で使用される場合、界面活性剤は、ウイルスエンベロープを破壊し、ウイルスを不活化する能力を有する。本開示による洗剤の実施形態は、アルキルグリコシドを含み、このアルキルグリコシドは、アルキルグルコシドであり得る。

本開示による「アルキルグリコシド」は、任意の疎水性アルキルへの結合によって結合された任意の糖を指す。本明細書で使用される「アルキルグルコシド」は、糖に結合したアルキル基からなり、糖はグルコースである。アルキルグリコシドは、例えば、ウンデシルアルキルグリコシドであり得る。ウンデシルアルキルグリコシドは、モノ－Ｄ－グルコピラノース（例えば、ｎ－ウンデシル－β－Ｄ－グルコピラノース）、またはＤ－グルコピラノースオリゴ糖または多糖、またはそれらの混合物へのＯ－グリコシド結合を有するウンデシル鎖を含み得る。本発明の方法で使用されるようなアルキルグリコシドの化学合成は、完全に均一な調製物ではなく、化合物の不均一な混合物をもたらし得る。したがって、特に断りのない限り、本明細書で使用される特定の形態のアルキルグリコシドへの言及は、任意の不均一混合物の少なくとも大部分の成分が、ウンデシルアルキルグリコシドなどのその形態のアルキルグリコシドであることを意味する。ウンデシルアルキルグリコシドを含むそのようなアルキルグリコシドの例としては、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１ＷおよびＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ８２が挙げられるが、これらに限定されない。

「製品供給流」または「供給流」は、目的の治療用または診断用タンパク質を含有し、またさまざまな不純物を含有し得るプロセス精製方法のために提供される材料または溶液である。非限定的な例としては、例えば、収集した細胞培養液（ＨＣＣＦ）、収集した細胞培養材料、浄化した細胞培養液、浄化した細胞培養材料、捕捉プール、回収プール、および／または１つ以上の遠心分離工程、および／もしくは濾過工程後の目的の治療用もしくは診断用タンパク質を含有する回収プールを含むことができ、この捕捉プール、回収タンパク質プールおよび／または回収プールは、１つ以上の精製工程後の目的の治療用もしくは診断用タンパク質を含有する。

「不純物」という用語は、所望のタンパク質製品とは異なる材料を指す。不純物としては、ＣＨＯＰなどの宿主細胞材料、浸出されたタンパク質Ａ、核酸、所望のタンパク質の変異体、サイズ変異体、断片、凝集体または誘導体、別のタンパク質、エンドトキシン、ウイルス汚染物質、細胞培養培地成分などが挙げられるが、これらに限定されない。

「タンパク質」および「ポリペプチド」という用語は、本明細書では、任意の長さのアミノ酸のポリマーを指すために交換可能に使用される。ポリマーは線状または分枝状であってもよく、それは修飾されたアミノ酸を含んでもよく、それは非アミノ酸によって中断されてもよい。この用語はまた、自然に、または介入、例えば、ジスルフィド結合形成、グリコシル化、脂質化、アセチル化、リン酸化、もしくは任意の他の操作もしくは修飾、例えば、標識成分とのコンジュゲーションによって修飾されているアミノ酸ポリマーも包含する。また、定義には、例えば、アミノ酸の１つ以上の類似体（例えば、非天然アミノ酸などを含む）、および当該技術分野で既知の他の修飾を含有するタンパク質も含まれる。タンパク質の例としては、抗体、ペプチド、酵素、受容体、ホルモン、調節因子、抗原、結合剤、サイトカイン、Ｆｃ融合タンパク質イムノアドヘシン分子などが挙げられるが、これらに限定されない。

「抗体（単数または複数）」という用語は、最も広い意味で使用され、具体的には、例えば、モノクローナル抗体（アゴニスト、アンタゴニスト、および中和抗体を含む）、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、ポリエピトープ特異性を有する抗体組成物、ポリクローナル抗体、一本鎖抗体、多重特異性抗体（例えば、二重特異性抗体）、イムノアドヘシン、およびそれらが所望の生物学的および免疫学的活性を示す限り、抗体の断片に及ぶ。「免疫グロブリン」（Ｉｇ）という用語は、本明細書では抗体と交換可能に使用される。

「限外濾過」または「濾過」という用語は、静水圧が液体を半透膜に押し付ける膜濾過の一形態である。水および低分子量の溶質が膜を通過する間、高分子量の浮遊物質および溶質は保持される。いくつかの例では、限外濾過膜は、１μｍ～１００μｍの範囲の孔径を有する。「限外濾過膜」、「限外濾過フィルター」、「濾過膜」および「濾過フィルター」という用語は、交換可能に使用され得る。濾過膜の例としては、ポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）膜、酢酸セルロース、硝酸セルロース、ポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ、テフロン）、塩化ポリビニル、ポリエーテルスルホン、ガラス繊維、またはｃＧＭＰ製造環境での使用に好適な他の濾過材料が挙げられるが、これらに限定されない。

本明細書で使用される場合、数値範囲には、範囲を定義する数値が含まれる。

「エンベロープウイルス」または「脂質コート含有ウイルス」という用語は、例えばエンベロープウイルスなどの脂質を含む膜またはエンベロープを含む任意のウイルスを指す。エンベロープウイルスは、リポタンパク質膜で囲まれたキャプシド、またはエンベロープを有する。このエンベロープは、ウイルスがその表面から「出芽する」ために宿主細胞に由来し、ほとんどがウイルスゲノムによってコードされていない脂質で構成されている。それは標的細胞への結合および侵入のための分子決定因子を担持しており、エンベロープウイルスの感染性に不可欠であるが、薬剤耐性または抗原不連続変異の影響を受けない。エンベロープウイルスのサイズは、約４５～５５ｎｍから約１２０～２００ｎｍの範囲である。哺乳動物細胞に感染する可能性のある脂質コート含有ウイルスの非限定的な例としては、ヘルペスウイルス科ウイルス、ポックスウイルス科ウイルス、またはヘパドナウイルス科ウイルスのようなＤＮＡウイルス；フラビウイルス科ウイルス、トガウイルス科ウイルス、コロナウイルス科ウイルス、デルタウイルス科ウイルス、オルトミクソウイルス科ウイルス、パラミクソウイルス科ウイルス、ラブドウイルス科ウイルス、ブニヤウイルス科ウイルス、またはフィロウイルス科ウイルスのようなＲＮＡウイルス；およびレトロウイルス科ウイルスまたはヘパドナウイルス科ウイルスなどの逆転写ウイルスが挙げられる。変形例では、本発明は、供給流を環境適合性洗剤に供することを含む、製品供給流中の亜ウイルス性因子（subviral agent）を不活化するための方法を提供する。いくつかの態様では、亜ウイルス性因子は、ウイロイド（viroid）またはサテライト（satellite）である。別の変形例では、本発明は、供給流を環境適合性洗剤に供することを含む、製品供給流中のウイルス様因子（virus-like agent）を不活化するための方法を提供する。

ウイルス活性またはウイルス感染価を測定する方法は、当技術分野において既知である。例としては、ＴＣＩＤ_５０アッセイ（すなわち、接種された細胞培養物の５０％に病理学的変化をもたらす５０％組織培養感染量の決定）およびプラークアッセイが挙げられるが、これらに限定されない。他の既知の方法には、例えば、細胞増殖形質転換を引き起こす能力を有する非プラーク形成ウイルスの生物学的活性の力価を決定するために使用することができる形質転換アッセイ、または、抗体染色法を使用して単層の感染細胞内のウイルス抗原を検出する蛍光焦点アッセイ、または単層細胞に感染しないウイルスを含む多くのウイルスの力価を決定するために使用できるエンドポイント希釈アッセイ細胞（プラークアッセイの代替として）、または逆転写酵素もしくはウイルスプロテアーゼなどのウイルスにコードされた酵素を測定するウイルス酵素アッセイを含むことができる。さらに、特定のウイルスの検出は、特定のウイルスを検出するように設計されたプライマーおよびプローブを使用するポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって達成することができる。

製品供給流中のウイルスの不活化は、当技術分野において既知の方法を使用して測定することができる。本発明のいくつかの実施形態では、ウイルスの不活化は、対数減少係数（「ＬＲＦ」）または対数減少値（「ＬＲＶ」）として表される。ＬＲＦは次のように計算される：

式中、Ｒ＝対数減少係数（ＬＲＦ）、Ｖ_ｉ＝投入容量（ｍＬ）、Ｔ_ｉ＝投入ウイルス力価、Ｖ_ｏ＝排出容量、およびＴ_ｏ＝排出ウイルス力価である。

実施例１．非イオン性グリコシド洗剤によるウイルスの不活化
洗剤および試薬
表１にリストされている例示的な洗剤（Ｓｅｐｐｉｃ Ｉｎｃ．Ｆａｉｒｆｉｅｌｄ，ＮＪ）のストック溶液、および１，２－プロパンジオール（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を、重量／体積（ｗ／ｗ）パーセントで水中で調製する。

ウイルスおよび指標細胞
これらの研究で使用する異種指向性マウス白血病ウイルス（ＸＭｕＬＶ）、ブタパルボウイルス（ＰＰＶ）ＮＡＤＬ－２株、および仮性狂犬病ウイルス（ＰＲＶ）は、ＡＴＣＣ、Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡから購入することができる。表２に、これらのウイルスの特性を示す。

これらの研究で使用するＰＫ１３（ブタ上皮細胞）、ＰＧ－４（ネコ脳細胞）、およびＶｅｒｏ（アフリカミドリザル細胞）は、ＡＴＣＣ、Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡから購入することができる。ＰＫ－１３細胞は、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ、Ｇｉｂｃｏ，Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ）で培養する。ＰＧ－４細胞は、マッコイの５ａ培地（ＡＴＣＣ、Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ）で培養し、Ｖｅｒｏ細胞はアールの改良イーグル培地（ＥＭＥＭ、Ｇｉｂｃｏ，Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ）で培養する。すべての細胞には、１０％のＦＢＳ（ＨｙＣｌｏｎｅ、Ｌｏｇａｎ，ＵＴ）を補充する。

細胞ベースのＴＣＩＤ_５０ウイルス滴定アッセイ
細胞ベースの５０％組織培養感染量（ＴＣＩＤ_５０）アッセイは、ＰＧ－４指標胞を使用したＸＭｕＬＶ、ＰＫ－１３指標細胞を使用したＰＰＶ、およびＶｅｒｏ指標細胞を使用したＰＲＶのウイルス滴定に使用する。９６ウェル組織培養プレートに、２．５×１０^４個細胞／ｍＬの指標細胞を、２００μＬ／ウェルで播種し、３７℃で一晩または約１６～２４時間インキュベートする。次いで、プレートに、５０μＬ／ウェルで一連の１０倍希釈液でウイルスを、希釈液当たりｎ＝８の最小値で接種する。接種したプレートを３７℃で７～９日間（ＸＭｕＬＶおよびＰＲＶ）および１０～１３日間（ＰＰＶ）インキュベートする。次いで、プレートを検査し、細胞変性効果（ＣＰＥ）について顕微鏡下でウェルごとに陽性または陰性としてスコア付けし、ウイルス力価を標準的な方法で計算する。

浄化バイオリアクター収集材料におけるウイルス細胞傷害性および干渉
上で例示したＴＣＩＤ_５０アッセイを使用して、モノクローナル抗体（ｍＡｂ）、二重特異性抗体、およびＦｃ融合タンパク質の浄化されたバイオリアクター収集材料におけるウイルスの細胞傷害性効果を決定する。バイオリアクターの収集材料を、遠心分離とそれに続く研磨濾過によって浄化する。ＨＣＰ、脂質、宿主細胞ＤＮＡなどの不純物も、遠心分離プロセスの一部として自動的に濃縮する。０．０５ｗ／ｗ％～１ｗ／ｗ％の洗剤を含有するさまざまなタンパク質の浄化されたバイオリアクター収集材料を、接種培地で１０，５０、１００倍に希釈する。各希釈液をｎ＝８で９６ウェルの指標細胞播種プレートに添加し、ＴＣＩＤ_５０アッセイに従ってインキュベートする。インキュベーション期間の終わりに、各ウェルを顕微鏡下でＣＰＥについて観察し、各洗剤に必要な適切な希釈を決定する。結果は、洗剤による細胞傷害性を克服するには、５０倍希釈係数で十分であることを示した。

さまざまなタンパク質の種類について浄化されたバイオリアクター収集材料を、ウイルス複製に対する細胞培養収集材料の固有の影響について評価する。各ウイルスを、浄化されたバイオリアクター収集材料で１０倍に希釈し、指標細胞播種プレートに接種し、ＴＣＩＤ_５０アッセイに従って実験を行う。陽性対照（組織培養材料にウイルスをスパイクしたもの）が含まれている。ウイルス力価を、陽性対照ウイルスと比較する。陽性対照力価の±０．５ｌｏｇ_１０以内の力価は、ウイルス干渉が発生していないとみなす。すべてのウイルス試験力価は、陽性対照力価の±０．５ｌｏｇ_１０以内に収まり、したがって、タンパク質の種類に関係なく、バイオリアクターの収集材料のいずれについてもウイルス干渉は観察されなかった。

ウイルス不活化の一般手順
各洗剤によるさまざまなエンベロープウイルスのウイルス不活化を、ｍＡｂ、二重特異性、およびＦｃ融合タンパク質を含有する浄化されたバイオリアクター収集材料において、さまざまな濃度、温度、およびｐＨの範囲で評価する。ＸＭｕＬＶ、ＰＰＶ、またはＰＲＶウイルスを、５ｗ／ｗ％以下で収集材料にスパイクし、洗剤ストック溶液をスパイクされた材料に添加して、指定された最終洗剤濃度を達成する。次に、試料を特定の温度およびｐＨ範囲でインキュベートする。洗剤がウイルス含有材料に添加されるとすぐに、ウイルスの不活化が開始する。ウイルス不活化の動態を、収集試料からさまざまな時点でアリコートを取り出すことによってモニターし、ウイルス力価を、ＴＣＩＤ_５０アッセイによって評価する。ウイルスの不活化は、洗剤処理の結果であり、マトリックス自体ではないことを実証するために、マトリックス対照が研究に含まれている。

非イオン性洗剤による３０℃でのＸＭｕＬＶの不活化
表１に記載されている洗剤によるＸＭｕＬＶのウイルス不活化は、ＸＭｕＬＶ不活化について決定された最適条件で試験する。上で例示したウイルス不活化手順に従って、各洗剤を、０．６ｗ／ｗ％でＸＭｕＬＶスパイクの浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料に３０℃で添加する。ウイルスの不活化を、ウイルス接種後１８０分の最長不活化時間でさまざまな時点でモニターする。

表３にまとめられた結果は、ＸＭｕＬＶ不活化の最適条件で、ＸＭｕＬＶが、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ ４およびＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＡＳ ４８を除いて、１８０分で試験したすべての洗剤に対して迅速かつ完全に不活化されることを示している。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ４ではウイルスの不活化は観察されなかったため、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ ４の濃度を３０ｍＭ（１％）に増加させて、ＸＭｕＬＶの不活化を３０℃で１８０分間モニターする。しかし、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ ４の濃度を上げても、ＸＭｕＬＶの不活化は観察されなかった（データは示さず）。驚くべきことに、これらの結果は、すべてのグリコシドが強力なウイルス不活化を可能にするわけではないこと、またはＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＡＳ ４８で観察されたように強力な不活化を達成するために非常に高濃度を必要とすることを示唆している。しかしながら、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料に添加してから０～５分以内に、ＬＲＦが４以上の完全なウイルス不活化を示した。さらに、他のグリコシドがＸＭｕＬＶを効果的に不活化したとしても、他の要因が大規模な製造方法におけるこれらの洗剤のいくつかの適用性を制限する。このような洗剤の特性には、溶解度、収集材料における濁度への影響、さまざまな温度およびｐＨ範囲での活性、環境毒性に関する未知のまたは限られたデータ、および取り扱いの容易さが含まれる。

浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料におけるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの濁度。
濁度を、０％、０．０５％、０．１％、０．３％、０．５％、および１ｗ／ｗ％のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの濃度で、１８℃で浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料にスパイクされたＸＭｕＬＶにおいて評価する。ウイルスの不活化を１８０分間モニターし、濁度を、携帯型濁度計２１００Ｐ（Ｈａｃｈ（登録商標））を使用して比濁法濁度単位（ＮＴＵ）で測定する。

表４に示される結果は、０ｗ／ｗ％～１ｗ／ｗ％の範囲の濃度のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗが経時的に安定しており、１８０分まで収集物に総沈殿物が観察されなかったことを示している。

ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗによるウイルス不活化の特性評価および最適化
タンパク質の製造方法で使用するための実行可能な環境適合性洗剤としてのＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの使用を、上記のウイルス不活化手順に従って、浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料でさらに評価する。簡単に説明すると、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗ活性を、４℃、１８℃、２５℃、および３０℃の４つの異なる温度で、ＸＭｕＬＶスパイクの浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料において、０．０５％、０．１％、０．３％、０．５％、および１ｗ／ｗ％の濃度で評価する。ウイルスの不活化を、ＸＭｕＬＶを浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料を含有するＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗに接種してから０、１０、３０、６０、１２０、および１８０分後にモニターする。表５～９に示される結果は、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの濃度、インキュベーション時間、および温度がすべてＸＭｕＬＶの不活化に影響を与える要因であることを実証している。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、評価した４つの温度すべてで、濃度≧０．１ｗ／ｗ％（≧３ｍＭ）で１２０分までに、濃度≧０．３ｗ／ｗ％で１０分までに完全なＸＭｕＬＶウイルス不活化を達成した。

異なる開始マトリックスでのＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１ＷによるＸＭｕＬＶの不活化
ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗが、水、細胞培養培地、ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水（ＤＰＢＳ）などのさまざまな開始マトリックスで９ｍＭ（０．３ｗ／ｗ％）のウイルスを４℃および３０℃で不活化する能力を評価する。ウイルスの不活化を、ＸＭｕＬＶの接種後０、６０、１２０、および１８０分にモニターする。

表１０に示される結果は、３つの開始マトリックスすべてで１２０分後に４℃および３０℃の両方で堅牢なＸＭｕＬＶ不活化を実証している。１８０分後の４℃のＤＰＢＳは、ＴＣＩＤ_５０アッセイにおいていくつかの生きたウイルス粒子を検出したが、５．６３のＬＲＦを依然として達成した。全体として、これらの結果は、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗが、開始マトリックスとは無関係にウイルスを効果的に不活化できることを示唆している。これは、バイオ医薬品製造プラットフォーム全体でのＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの使用の可能性、およびタンパク質の製造方法のさまざまな段階でのＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの使用の柔軟性を示唆している。

４℃および３０℃における０．３％のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１ＷでのＸＭｕＬＶの不活化動態
ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗがより低い時点でウイルスを不活化する能力を評価する。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを、９ｍＭ（０．３ｗ／ｗ％）で、４℃および３０℃で浄化したｍＡｂバイオリアクター収集材料に添加する。ウイルスの不活化を、ＸＭｕＬＶの接種後０、２、４、６、８、１０、２０分および１８０分にモニターする。

表１１に示される結果は、浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料中の９ｍＭ（０．３ｗ／ｗ％）のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗで、４℃では≧６分、および３０℃では≧２分で完全なＸＭｕＬＶの不活化が発生することを示している。

ウイルス不活化に対する安定剤モノプロピレングリコールの効果
３０℃で浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料におけるモノプロピレングリコールの０．１％および０．５％の濃度でのウイルス不活化に対する効果を評価する。ウイルスの不活化を、ＸＭｕＬＶの接種後０分および１８０分でモニターする。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、１％～５％のモノプロピレングリコールを含有する。ここで報告されている不活化手順で見られるモノプロピレングリコールの最大濃度は、０．０５％である。表１２に示される結果は、０．１％および０．５％の濃度のモノプロピレングリコールが、３０℃で浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料中のＸＭｕＬＶを不活化しないことを示している。さらに、表１１に示されているモノプロピレングリコールの濃度は、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗで処理された浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集物で見られる最大濃度を少なくとも１０倍上回っている。これは、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗが観察されたウイルスの不活化に関与していることを示している。

ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗによるエンベロープウイルスおよび非エンベロープウイルスの不活化
ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗが、エンベロープウイルスのＰＲＶ、および非エンベロープウイルスのＰＰＶを不活化する能力を評価する。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを、９ｍＭ（０．３ｗ／ｗ％）で、４℃、１８℃、および３０℃で浄化したｍＡｂバイオリアクター収集材料に添加する。ウイルスの不活化を、接種後０、１０、３０、６０、１２０、および１８０分にモニターする。

表１３に示される結果は、３つの温度すべてで１０分までに発生するＰＲＶエンベロープウイルスの強力な不活化とともに、３０℃で０～５分以内のさらに低い時点で発生するＰＲＶエンベロープウイルスの強力な不活化を示している。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗでは、ＰＰＶの不活化は観察されなかった。これらの結果を総合すると、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗは、浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料中の異なるエンベロープウイルスを強力に不活化するだけでなく、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗによるウイルス不活化が、エンベロープウイルスに特異的であることが示唆される。

ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１ＷによるＸＭｕＬＶの不活化に対するｐＨの影響
ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗが、５．５のｐＨおよび８．０のｐＨでＸＭｕＬＶを不活化する能力を評価する。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを、９ｍＭ（０．３ｗ／ｗ％）で、１８℃で浄化したｍＡｂバイオリアクター収集材料に添加する。ウイルスの不活化を、ＸＭｕＬＶを浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料を含有するＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗに接種してから０、１０、３０、６０、１２０、および１８０分後にモニターする。

表１４に示される結果は、１０分までにｐＨ５．５およびｐＨ８．０の両方でＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１ＷによるＸＭｕＬＶの迅速かつ完全な不活化を示しており、したがって、タンパク質の製造方法における広範なｐＨ範囲にわたるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの適用の可能性を示している。

ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１ＷによるＸＭｕＬＶの不活化に対するバイオリアクター収集材料源の影響
ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗが、ｍＡｂ、二重特異性抗体、Ｆｃ融合タンパク質などのさまざまな組換えタンパク質を含有する浄化されたバイオリアクター収集材料中でＸＭｕＬＶを不活化する能力を評価する。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを、９ｍＭ（０．３ｗ／ｗ％）で、４℃および１８℃で異なるタンパク質の浄化されたバイオリアクター収集材料に添加する。ウイルスの不活化を、０、１０、３０、６０、１２０、および１８０分のインキュベーション時点でモニターする。表１５に示される結果は、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１ＷによるＸＭｕＬＶの完全な不活化を、３つの浄化されたバイオリアクター収集材料すべてにおいて４℃および３０℃の両方で１２０分までに示している。さらに、Ｆｃ融合タンパク質およびｍＡｂタンパク質を含有する収集物では、４℃で１０分までに完全な不活化が観察された。二重特異性抗体の不活化動態は、４℃での他の２つの浄化されたバイオリアクター収集材料よりも４℃でわずかに遅かった。しかし、１８℃では、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗによる完全な不活化が、１０分以内に３つのタンパク質すべてで観察された。

異なるタンパク質の浄化されたバイオリアクター収集材料におけるウイルスの不活化に対する不純物レベルの影響
Ｆｃ融合タンパク質、二重特異性抗体、およびｍＡｂの３つの異なる組換えタンパク質のバイオリアクター収集材料における不純物レベルの影響を評価する。

収集材料を、遠心分離とそれに続く研磨濾過によって浄化する。ＨＣＰ、脂質、宿主細胞ＤＮＡなどの不純物も、遠心分離プロセスの一部として自動的に濃縮される。浄化されたｍＡｂ収集材料の試料を、５ＫＤａ分子量カットオフ（molecular weight cutoff）タンジェンシャルフロー濾過（ＴＦＦ）プロセスによってさらに約４倍に濃縮させる。３つの浄化された材料およびＴＦＦ濃縮された材料中の組換えタンパク質、ＤＮＡおよびその他のＨＣＰ不純物を測定する。表１６に示す結果は、３つの組換えタンパク質浄化材料および濃縮浄化されたｍＡｂ材料における組換えタンパク質、宿主細胞ＤＮＡ、およびＨＣＰ含有量プロファイルを示している。濃縮されていない浄化されたｍＡｂ収集材料と比較した場合、濃縮され浄化されたｍＡｂ収集材料では、ＤＮＡおよびＨＣＰ不純物の３倍以上の増加が観察された。

ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１ＷによるＸＭｕＬＶの不活化に対する濃縮バイオリアクター収集材料の影響
濃縮された浄化されたｍＡｂ収集材料中のウイルスの不活化に対するＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの効果を試験する。ｍＡｂおよびその他の不純物を含有する浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料を、５ＫＤａ分子量カットオフタンジェンシャルフロー濾過（ＴＦＦ）プロセスによって約４倍に濃縮させる。次いで、ｍＡｂおよび不純物を含有する濃縮された材料を、直ちに滅菌濾過に供する。次いで、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを、浄化した濃縮濾過材に最終濃度０．１ｗ／ｗ％（３ｍＭ）で添加する。次いで、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）１１Ｗを含有する材料を、４℃、１８℃、３０℃の３つの異なる温度でインキュベートする。さまざまな温度でのウイルスの不活化を、０分～１８０分の範囲の時点で測定する。表１７に示す結果は、３０℃の試料と比較した場合、低温で不活化速度が低下したにもかかわらず、試験した３つの温度すべてで１８０分でＸＭｕＬＶが完全に不活化したことを示している濃縮されていないバイオリアクター収集材料と比較した場合、濃縮されたバイオリアクター材料の不活化動態への影響は観察されなかった（データは示さず）。これは、不純物レベルの増加がＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗによるウイルスの不活化に影響を与えないことを示唆している。

実施例２．下流の組換えタンパク質精製におけるＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの除去の決定
液体クロマトグラフィー質量分析（ＬＣ－ＭＳ）によるウンデシルグリコシドの定量－方法Ａ
ＬＣ－ＭＳの定量を、０．０３ｍＭ～３ｍＭの範囲の濃度でＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを含有する浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集資料で行う。

１マイクロリットルのインキュベートした試料を、Ｗａｔｅｒｓ ＳＹＮＡＰＴ（登録商標）Ｇ２－Ｓｉ質量分析計に連結したＷａｔｅｒｓ Ａｃｑｕｉｔｙ（登録商標）ＵＰＬＣに注入する。定量では、Ｖａｒｉａｎ ＰＬＲＰ－Ｓ逆相カラム（１×５０ｍｍ、３００Å、５μｍ）で、移動相ＡとしてＨ_２Ｏ中の０．０５％トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）および移動相Ｂとしてアセトニトリル（ＡＣＮ）中の０．０４％ＴＦＡを使用して、８０℃で分離を行う。カラムを１５％の移動相Ｂで１分間平衡化し、３分間かけて１５％から３０％に直線的に増加させ、その後３０％のＢで２分間保持し、その後、１００％で１分間保持する。カラムを１００％で１分間保持した後、１５％の移動相Ｂで再平衡化する。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを、１～６分の間、０．３ｍＬ／分で分離させ、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）ソースを使用して分析する。質量分析計は、ポジティブの感度モード、１００～１０００ａｍｕのスキャン範囲、３．２ｋＶのキャピラリ電圧、４５０℃の脱溶媒和温度、９００Ｌ／時の脱溶媒和ガス流量、１５０℃のソース温度、４０Ｖのサンプルコーンで動作させる。特性評価では、同じ移動相を用いたＷａｔｅｒｓ Ａｃｑｕｉｔｙ（登録商標）ＵＰＬＣ ＢＨＥ ３００ÅＣ４カラム（２．１×１００ｍｍ、粒径１．７μｍ）で分離を行う。カラムを２０％移動相Ｂで１分間平衡化し、１４分間で２０％から２５％に、次いで１分間で９０％まで直線的に増加させる。１００％で１．０分間保持した後、２０％移動相Ｂでカラムを再平衡化する。

ナトリウム化されたウンデシルグリコシドの抽出されたピーク面積を測定する。ＬＣ－ＭＳ分析条件下では、抽出されたイオンピーク面積と０．０３～３ｍＭのＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗ濃度との間に線形関係が観察された。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗ濃度が３ｍＭを超えると、ＭＳ検出器は飽和状態になった。

タンデム質量分析（ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ）を用いた液体クロマトグラフィーによるウンデシルグリコシドの定量－方法Ｂ
０．０００８ｍＭ～０．０１２ｍＭの範囲の濃度のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを含有する標準溶液を、水またはタンパク質Ａの主流で調製する。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを添加した後、これらの試料をＬＣ－ＭＳ／ＭＳ（ＭＲＭ）分析にかけた。インキュベートした試料（１００μＬ）をＬＣに注入し、１／２０ポストカラムをＭＳに対してスプリットする。分析には、Ｓｃｉｅｘ Ｔｒｉｐｌｅ Ｑｕａｄ ５５００質量分析計に連結したＡｇｉｌｅｎｔ １２６０ Ｉｎｆｉｎｉｔｙ ＩＩ ＨＰＬＣを使用する。定量では、移動相Ａとして水中の０．５ｍＭの酢酸ナトリウムおよび移動相Ｂとして９５：５のアセトニトリル：水を使用して、８０℃でＡｇｉｌｅｎｔ Ｚｏｒｂａｘ、３００ＳＢ－Ｃ８逆相カラム（４．６×５０ｍｍ、３００Å、３．５μｍ）で実施する。カラムは２０％の移動相Ｂで２分間平衡化し、１０分間かけて２０％から９０％まで直線的に増加させ、９０％のＢで２分間保持し、２０％の移動相Ｂで平衡化する。ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを、４．５～５．５分の間に１．０ｍＬ／分で分離し、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）ソースを使用して分析した。質量分析計を、遷移イオンをスキャンするポジティブＭＲＭモード（３５７．０～１８５．０）、５．５ｋＶのキャピラリ電圧、４５０℃の脱溶媒和温度、および５５Ｌ／時の脱溶媒和ガス流量で作動させる。

選択された反応モニタリング（ＳＲＭ／ＭＲＭ（多重反応モニタリング））、ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ法を使用して、ナトリウム化ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを選択的に検出する。ＳＲＭは単一の前駆イオン（ナトリウム化ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの質量、３５７．０ｍ／ｚ）をスキャンし、フラグメンテーション後、生成イオン（ナトリウム化ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの最も優勢なフラグメント、１８５．０ｍ／ｚ）を検出し、この抽出された遷移イオンに対応するピーク面積を得る。

ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ分析条件下では、プロットは、水中０．０００８ｍＭ～０．０１２ｍＭのＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗ濃度とタンパク質Ａの主流との間で直線状である。これらの結果は、ＬＣ－ＭＳ／ＭＳが０．０００８ｍＭ～０．０１２ｍＭのＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを検出でき、プロットの直線性がマトリックスに依存しないことを示している。したがって、このＬＣ－ＭＳ／ＭＳ（ＳＲＭ／ＭＲＭ）法は、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの検出に特異性があり、洗剤が含まれているマトリックスとは無関係である。検出限界（ＬＯＤ）は、直線性から計算して０．００１ｍＭである。

タンパク質ＡクロマトグラフィーおよびＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの検出
０％（対照）、０．３％、１．０ｗ／ｗ％を含有する浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集材料溶液ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを、ＭａｂＳｅｌｅｃｔ（登録商標）タンパク質Ａクロマトグラフィーに供する。タンパク質Ａクロマトグラフィーを、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを含有する濾過されていない浄化されたｍＡｂ収集材料で実施する。カラムを装填した後、酢酸／クエン酸緩衝液でｍＡｂを溶出する前に、６カラム容量のＴｒｉｓ／ＮａＣｌを使用してカラムを洗浄する。溶出したｍＡｂの主流を採取し、ＬＣ－ＭＳでＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの存在を分析する。

ＬＣＭＳ（方法Ａ）を使用した分析の結果は、０．３％および１．０ｗ／ｗ％のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを含有するｍＡｂバイオリアクター収集材料溶液からのタンパク質Ａ主流における＜０．０３ｍＭのＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗレベルを示している。ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ（方法Ｂ）を使用すると、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの量は、０．３ｗ／ｗ％のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを含有するｍＡｂバイオリアクター収集材料溶液からのタンパク質Ａ主流で０．０００５ｍＭであることがわかり、これは、０．００１ｍＭのＬＯＤよりも低い。これらの結果は、タンパク質Ａクロマトグラフィーが、カラム装填の前の濾過工程がなくても、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗ Ｓｉｍｕｌｓｏｌ ＳＬ１１Ｗを供給流から微量レベルまで除去できることを示している。

実施例３．組換えタンパク質の品質に対するＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの影響
組換えタンパク質の品質に対するＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗの影響を、２０℃で３時間、次いで４℃で１６時間インキュベートする、０．３％のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを用いる場合および用いない場合の浄化されたｍＡｂバイオリアクター収集試料を比較することによってテストする。試料を最初に、０．２μｍガラス繊維フィルターで濾過し、続いて０．４５μｍのＰＶＤＦフィルターで濾過し、次いでタンパク質Ａ精製にかける。試料を、キャピラリ電気泳動（ＣＥ）、サイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）、ｉＣＥ（登録商標）機器での等電点電気泳動（ＩＥＦ）測定など、当技術分野において既知の技術を使用して、表１８に示す分析特性について分析する。表１８に示す結果は、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗによる処理が、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗによる処理がない場合と比較して、測定された品質のいずれにも顕著な影響を及ぼさなかったことを示している。

Claims (45)

1. ウイルスを供給流中で不活化するための方法であって、環境適合性洗剤を、約０．０５ｗ／ｗ％～約１ｗ／ｗ％の最終濃度で前記供給流に添加することを含み、前記環境適合性洗剤が、約４０％以上のウンデシルアルキルグリコシドを含む、方法。
2. 前記洗剤が、約４０％～約６０％のウンデシルアルキルグリコシドを含む、請求項１に記載の方法。
3. 前記洗剤が、約５３％～約５７％のウンデシルアルキルグリコシドを含む、請求項１または２に記載の方法。
4. 前記洗剤が、約５０％以上のウンデシルアルキルグリコシドを含む、請求項１に記載の方法。
5. 前記洗剤が、約１０％未満のデシルアルキルグリコシドを含む、請求項１～４のいずれか一項に記載の方法。
6. 前記洗剤が、ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗである、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
7. 前記洗剤が、ウンデシルアルキルグリコシドである、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
8. 前記洗剤が、約０．１ｗ／ｗ％～約１ｗ／ｗ％の濃度で前記供給流に添加される、請求項１～７のいずれか一項に記載の方法。
9. 前記洗剤が、約０．３ｗ／ｗ％～約１ｗ／ｗ％の最終濃度で前記供給流に添加される、請求項１～７のいずれか一項に記載の方法。
10. 前記洗剤が、約０．１ｗ／ｗ％～約０．３ｗ／ｗ％の最終濃度で前記供給流に添加される、請求項１～７のいずれか一項に記載の方法。
11. 前記洗剤が、約０．３ｗ／ｗ％の最終濃度で前記供給流に添加される、請求項１～７のいずれか一項に記載の方法。
12. 前記洗剤を添加する前記工程の間、前記供給流が、約４℃～約３０℃の温度にある、請求項１～１１のいずれか一項に記載の方法。
13. 前記洗剤を添加する前記工程の間、前記供給流が、約１５℃～約３０℃の温度にある、請求項１～１１のいずれか一項に記載の方法。
14. 前記洗剤を添加する前記工程の間、前記供給流が、約１５℃～約２０℃の温度にある、請求項１～１１のいずれか一項に記載の方法。
15. 前記洗剤を添加する前記工程の間、前記供給流が、約５．５～約８．０のｐＨにある、請求項１～１４のいずれか一項に記載の方法。
16. 前記洗剤を、前記供給流中で約１分～約１８０分間インキュベートする工程をさらに含む、請求項１～１５のいずれか一項に記載の方法。
17. インキュベートする前記工程後に、前記洗剤が、約１以上、または約２以上の前記供給流中のウイルス対数減少係数（ＬＲＦ）を有する、請求項１６に記載の方法。
18. 前記ウイルスが、エンベロープウイルスである、請求項１～１７のいずれか一項に記載の方法。
19. 前記エンベロープウイルスが、レトロウイルス、ヘルペスウイルス、フラビウイルス、ポックスウイルス、ヘパドナウイルス、肝炎ウイルス、オルトミクソウイルス、パラミクソウイルス、ラブドウイルス、またはトガウイルスである、請求項１８に記載の方法。
20. 前記供給流と前記洗剤とを、約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで、約１５分～約１８０分間インキュベートする工程をさらに含み、前記洗剤が、約０．１ｗ／ｗ％～約１．０ｗ／ｗ％の最終濃度で前記供給流に添加され、前記洗剤が、前記供給流中で約２以上のウイルス対数減少係数（ＬＲＦ）を有する、請求項１に記載の方法。
21. 前記供給流と前記洗剤とを、約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで、約６分～約１８０分間インキュベートする工程をさらに含み、前記洗剤が、約０．３ｗ／ｗ％～約１．０ｗ／ｗ％の最終濃度で前記供給流に添加され、前記洗剤が、前記供給流中で約４以上のウイルス対数減少係数（ＬＲＦ）を有する、請求項１に記載の方法。
22. 前記供給流と前記洗剤とを、約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで、約１８０分間インキュベートする工程をさらに含み、前記洗剤が、約０．１ｗ／ｗ％～約１．０ｗ／ｗ％の最終濃度で前記供給流に添加され、前記洗剤が、前記供給流中で約５以上のウイルス対数減少係数（ＬＲＦ）を有する、請求項１に記載の方法。
23. 前記供給流と前記洗剤とを、約４℃～約３０℃の温度でおよび約５．５～約８．０のｐＨで、約６０分～約１８０分間インキュベートする工程をさらに含み、前記洗剤が、約０．３ｗ／ｗ％の最終濃度で前記供給流に添加され、前記洗剤が、前記供給流中で約５以上のウイルス対数減少係数（ＬＲＦ）を有する、請求項１に記載の方法。
24. 前記供給流が、収集した細胞培養液、捕捉プール、または回収した生成物プールである、請求項１～２３のいずれか一項に記載の方法。
25. 前記捕捉プールまたは回収した生成物プールが、アフィニティークロマトグラフィープールである、請求項２４に記載の方法。
26. 前記アフィニティークロマトグラフィープールが、タンパク質Ａプール、タンパク質Ｇプールまたはタンパク質Ｌプールである、請求項２５に記載の方法。
27. 前記捕捉プールまたは回収した生成物プールが、混合モードクロマトグラフィープールである、請求項２４に記載の方法。
28. 前記洗剤を含有する前記供給流を濾過する工程をさらに含み、前記供給流が、少なくとも１つの濾過工程に供される、請求項１～２７のいずれか一項に記載の方法。
29. 前記供給流が、少なくとも第２の濾過工程に供される、請求項２８に記載の方法。
30. 前記供給流が、少なくとも第３の濾過工程に供される、請求項２９に記載の方法。
31. 前記濾過された供給流をアフィニティークロマトグラフィーカラムに供する工程をさらに含む、請求項２８～３０のいずれか一項に記載の方法。
32. 前記アフィニティークロマトグラフィーカラムが、タンパク質Ａカラムである、請求項３１に記載の方法。
33. 前記洗剤を含有する前記供給流が、アフィニティークロマトグラフィーに供される、請求項１～３０のいずれか一項に記載の方法。
34. 前記供給流が、タンパク質を含み、前記タンパク質が、抗体、Ｆｃ融合タンパク質、イムノアドヘシン、酵素、増殖因子、受容体、ホルモン、調節因子、サイトカイン、抗原、ペプチド、または結合剤である、請求項１～３３のいずれか一項に記載の方法。
35. 前記抗体が、モノクローナル抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、二重特異性抗体、または抗体フラグメントである、請求項３４に記載の方法。
36. 前記タンパク質が、哺乳動物細胞中で生成される、請求項３４または３５に記載の方法。
37. 前記洗剤を前記供給流に添加する前記工程が、前記供給流の濁度を著しく変化させない、請求項１～３６のいずれか一項に記載の方法。
38. 前記洗剤を前記供給流に添加する前記工程が、精製された供給流タンパク質の最終製品品質を変化させない、請求項１～３６のいずれか一項に記載の方法。
39. 前記洗剤が、安定剤を含有する、請求項１～３８のいずれか一項に記載の方法。
40. 前記安定剤が、モノプロピレングリコールである、請求項３９に記載の方法。
41. ウイルスを供給流中で不活化するための方法であって、
    前記供給流に、約０．１ｗ／ｗ％～約０．３ｗ／ｗ％の濃度のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを添加する工程、
    前記ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを前記供給流中で約１８０分間インキュベートする工程であって、前記供給流中のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗのウイルス対数減少係数（ＬＲＦ）が約５以上である、インキュベートする工程、
    前記ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを含有する前記供給流を濾過する工程、次いで
    前記濾過された供給流を、タンパク質Ａアフィニティークロマトグラフィーカラムに供する工程
    を含み、前記添加およびインキュベート工程が、前記供給流中で約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで行われる、方法。
42. ウイルスを供給流中で不活化するための方法であって、
    前記供給流に、約０．１ｗ／ｗ％～約０．３ｗ／ｗ％の濃度のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを添加する工程、
    前記ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを前記供給流中で約１８０分間インキュベートする工程であって、前記供給流中のＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗのウイルス対数減少係数（ＬＲＦ）が約５以上である、インキュベートする工程、
    前記ＳＩＭＵＬＳＯＬ（登録商標）ＳＬ１１Ｗを含有する前記供給流を濾過する工程、次いで
    前記濾過された供給流を、タンパク質Ａアフィニティークロマトグラフィーカラムに供する工程
    を含み、前記添加およびインキュベート工程が、前記供給流を約４℃～約３０℃の温度および約５．５～約８．０のｐＨで行われる、方法。
43. 濾過する前記工程が、０．２２μｍのフィルターを用いた第１の濾過工程を含む、請求項４２に記載の方法。
44. 濾過する前記工程が、０．４５μｍのＰＶＤＦフィルターを用いた第２の濾過工程を含む、請求項４３に記載の方法。
45. 濾過する前記工程が、０．４５μｍのＰＶＤＦフィルターを用いた第３の濾過工程を含む、請求項４４に記載の方法。