JP2023105775A - 二酸化炭素がシェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用を抑制する効果を測定する方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】シェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用に対する二酸化炭素の抑制効果を測定する方法を提供する。【解決手段】（１）菌液活性化、（２）細菌懸濁液の調製、（３）試料の準備及び処理、（４）細菌接種処理、（５）袋への包装、（６）ガス置換包装、（７）冷蔵庫での冷蔵、（８）性能測定を含む、シェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用に対する二酸化炭素の抑制を測定する方法。それぞれ０～１８日間保存した後に、ランダムに３つのサンプルを選択して並行群とし、並行群を検出し、異なるＣＯ２濃度の鮮度保持ガス条件下でのシェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用に対する抑制効果を測定する。【選択図】図１
Description
本発明は、腐敗防止技術分野に属し、特にシェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用に対する二酸化炭素の抑制を測定する方法に関する。
シェワネラ・プトレファシエンス（Ｓｈｅｗａｎｅｌｌａ ｐｕｔｒｅｆａｃｉｅｎｓ）は、魚、エビ、貝などの新鮮な水産物の典型的な腐敗菌（ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｓｐｏｉｌａｇｅ ｏｒｇａｎｉｓｍ，ＳＳＯ）である。水産物の冷蔵期間中、シェワネラ・プトレファシエンスは、トリメチルアミンオキシドを還元してＨ２Ｓガスを産生することで腐った匂いを生じることができる。また、シェワネラ・プトレファシエンスが分泌する細胞外プロテアーゼはタンパク質や他の栄養素を分解し、水産物の栄養価を破壊し、風味の質を低下させることができる。シェワネラ・プトレファシエンスの成長繁殖はバイオフィルムを産生する。バイオフィルムは、乾燥状態であろうと抗生物質の使用であろうと、一定の耐性を生じる可能性があり、完全に除去することは非常に困難であり、継続的な再汚染の原因となっている。食品加工機器のバイオフィルムは、加工中にエネルギー損失を引き起こし、熱伝導効率を低下させ、生産効率に影響を与え、加工機器の腐食を引き起こす。水産物貯蔵過程においてシェワネラ・プトレファシエンスが増殖して生物被膜を形成することにより、水産物に対する腐敗作用を悪化させ、水産物加工と貯蔵に深刻な危害をもたらす。そこで、シェワネラ・プトレファシエンスの成長繁殖及び腐敗作用を抑制することは、水産物加工と貯蔵の改善にとって非常に重要である。
本発明の目的は、シェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用に対する二酸化炭素の抑制を測定する方法を提供することである。シェワネラ・プトレファシエンスを無菌フウセイのスライスに接種した後、それぞれ濃度が異なるＣＯ２環境に保存し、シェワネラ・プトレファシエンスの増殖変化状況及びフウセイタンパク質の品質変化状況を検出することにより、異なる保存条件下でのシェワネラ・プトレファシエンスの成長繁殖速度を測定し、シェワネラ・プトレファシエンスの成長繁殖速度及び腐敗作用を如何に効果的に低下させるかを証明する。
本発明の方法は、以下のステップに従って行う。
（１）菌液活性化：凍結保存されたシェワネラ・プトレファシエンス種を取り出して解凍し、そしてトリプトン大豆ブロス（ｔｒｙｐｔｉｃａｓｅ ｓｏｙ ｂｒｏｔｈ，ＴＳＢ）培地に加え、シェーカーで振盪しながら１０～１４時間培養し、一次培養液を得、
（２）細菌懸濁液の調製：一次培養液を液体培地に接種し、再度シェーカーで振盪しながら４～８ｈ培養し、細菌濃度が１０６～１０８ＣＦＵ／ｍＬの細菌懸濁液を作成し、
（３）試料の準備及び処理：水産物食材を用意し、処理した後、複数の質量が８０～１２０ｇのシート状食材にカットし、そして０～４℃の水で洗浄して水切りし、試料を作成し、
（４）細菌接種処理：複数の試料をエタノール溶液に２０～４０ｓ浸漬した後、取り出し、無菌蒸留水で２～４回洗浄し、さらに紫外線で１５～２５ｍｉｎ殺菌し、複数の殺菌試料を得、細菌懸濁液を細菌濃度１０３～１０５ＣＦＵ／ｍＬに希釈し、そして希釈後の細菌懸濁液を用いて殺菌試料に対して細菌接種処理を行い、複数の細菌接種処理試料を得、
（５）袋への包装：複数の細菌接種処理試料をそれぞれガス置換包装袋に入れ、
（６）ガス置換包装：袋式ガス置換包装機を起動し、真空ポンプを起動し、ガス置換包装モードで包装し、包装時の鮮度保持ガス中のＣＯ２の体積百分率が０～１００％であり、残部がＮ２であり、
（７）冷蔵庫での冷蔵：包装した後の細菌接種処理試料を冷蔵庫に置き、４．０±０．５℃条件下で保存し、
（８）性能測定：包装した細菌接種処理試料をサンプルとし、それぞれ０～１８日間保存した後に、ランダムに３つのサンプルを選択して並行群とし、並行群を検出し、異なるＣＯ２濃度の鮮度保持ガス条件下でのシェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用に対する抑制効果を測定する。
（１）菌液活性化：凍結保存されたシェワネラ・プトレファシエンス種を取り出して解凍し、そしてトリプトン大豆ブロス（ｔｒｙｐｔｉｃａｓｅ ｓｏｙ ｂｒｏｔｈ，ＴＳＢ）培地に加え、シェーカーで振盪しながら１０～１４時間培養し、一次培養液を得、
（２）細菌懸濁液の調製：一次培養液を液体培地に接種し、再度シェーカーで振盪しながら４～８ｈ培養し、細菌濃度が１０６～１０８ＣＦＵ／ｍＬの細菌懸濁液を作成し、
（３）試料の準備及び処理：水産物食材を用意し、処理した後、複数の質量が８０～１２０ｇのシート状食材にカットし、そして０～４℃の水で洗浄して水切りし、試料を作成し、
（４）細菌接種処理：複数の試料をエタノール溶液に２０～４０ｓ浸漬した後、取り出し、無菌蒸留水で２～４回洗浄し、さらに紫外線で１５～２５ｍｉｎ殺菌し、複数の殺菌試料を得、細菌懸濁液を細菌濃度１０３～１０５ＣＦＵ／ｍＬに希釈し、そして希釈後の細菌懸濁液を用いて殺菌試料に対して細菌接種処理を行い、複数の細菌接種処理試料を得、
（５）袋への包装：複数の細菌接種処理試料をそれぞれガス置換包装袋に入れ、
（６）ガス置換包装：袋式ガス置換包装機を起動し、真空ポンプを起動し、ガス置換包装モードで包装し、包装時の鮮度保持ガス中のＣＯ２の体積百分率が０～１００％であり、残部がＮ２であり、
（７）冷蔵庫での冷蔵：包装した後の細菌接種処理試料を冷蔵庫に置き、４．０±０．５℃条件下で保存し、
（８）性能測定：包装した細菌接種処理試料をサンプルとし、それぞれ０～１８日間保存した後に、ランダムに３つのサンプルを選択して並行群とし、並行群を検出し、異なるＣＯ２濃度の鮮度保持ガス条件下でのシェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用に対する抑制効果を測定する。
前記ステップ（１）において、凍結保存の温度は≦－８０℃である。
前記ステップ（１）において、解凍温度は３０±２℃である。
前記ステップ（１）において、トリプトン大豆ブロス培地の使用量は５～１０ｍＬである。
前記ステップ（２）において、接種量は質量百分率で０．５～１．５％である。
前記ステップ（２）において、液体培地はトリプトン大豆ブロス培地である。
前記ステップ（３）において、水産物食材は質量が１０００±５０ｇのフウセイを使用し、フウセイの輸送過程において発泡スチロール箱に酸素を供給する。
前記ステップ（３）において、処理とは、フウセイに対して血抜きし、内臓を取り除き、さらに頭部を切除することを指す。
前記ステップ（４）において、エタノール溶液の質量濃度は７０～８０％、エタノール溶液と試料との質量比は（２～４）：１である。
前記ステップ（４）において、細菌接種処理では、希釈後の細菌懸濁液が殺菌試料の質量の５～１５％となるように、殺菌試料の細菌含有量を≦１０５ＣＦＵ／ｍＬにする。
前記ステップ（５）において、ガス置換包装袋は高バリア性ポリ塩化ビニリデン包装袋である。
前記ステップ（６）において、包装する際に、それぞれのガス置換包装袋内の鮮度保持ガス体積と細菌接種処理試料の質量との比を２～４ｍＬ／ｇ、真空引き時間を５～１５ｓ、充気時間を３～５ｓ、ヒートシール口温度を１２５～１５０℃、鮮度保持ガス源圧力を４～６ｋｇ／ｃｍ２、パワーガス源圧力を７～８ｋｇ／ｃｍ２に設定し、袋式ガス置換包装機の動作が安定した後、細菌接種処理試料が入ったガス置換包装袋の袋口をガス置換及びヒートシール口に置き、ガス置換包装を行う。
前記ステップ（８）において、検出項目は、コロニー総数、バイオフィルム、アデノシン三リン酸含有量、スルフヒドリル基（チオール基）含有量、筋原線維タンパク質の三次構造、筋原線維タンパク質の超微細構造及び硬度値である。
前記コロニー総数の検出方法
（１）サンプル５．００ｇを取り、４５ｍＬ滅菌生理食塩水に入れて均一に混合し、均一希釈液を作成する。（２）１ｍＬ滅菌ピペットにて均一希釈液１ｍＬを吸い取り、壁に沿って９ｍＬ滅菌生理食塩水を注入して１０倍希釈し、一次サンプル希釈液を作成する。（３）一次サンプル希釈液を均一希釈液としてステップ（２）を繰り返し、二次サンプル希釈液を作成する。上記のように、三次サンプル希釈液から十次サンプル希釈液を作成する。（４）一次サンプル希釈液から十次サンプル希釈液の中から３つのサンプル希釈液をランダムに選択し、それぞれ１ｍＬ吸い取って滅菌シャーレに入れるとともに、それぞれ１ｍＬ滅菌生理食塩水を吸い取って２つの滅菌シャーレに入れ、開口のままでクリーンベンチ内に置き、ブランク対照とする。（５）１５～２０ｍＬのプレートカウント寒天培地を４５±０．５℃に冷却し、前記滅菌シャーレを注入し、回転して均一に混合する。寒天が凝固した後、プレートを温度が３０±１℃の生化学的インキュベータに逆さまに置いて７２±３時間培養する。（６）プレートカウント法によりシャーレ内のコロニー総数を測定し、滅菌生理食塩水をブランクとして対照実験を行う。培養終了後に、コロニー総数が３０～３００のシャーレを選択してカウントする。
（１）サンプル５．００ｇを取り、４５ｍＬ滅菌生理食塩水に入れて均一に混合し、均一希釈液を作成する。（２）１ｍＬ滅菌ピペットにて均一希釈液１ｍＬを吸い取り、壁に沿って９ｍＬ滅菌生理食塩水を注入して１０倍希釈し、一次サンプル希釈液を作成する。（３）一次サンプル希釈液を均一希釈液としてステップ（２）を繰り返し、二次サンプル希釈液を作成する。上記のように、三次サンプル希釈液から十次サンプル希釈液を作成する。（４）一次サンプル希釈液から十次サンプル希釈液の中から３つのサンプル希釈液をランダムに選択し、それぞれ１ｍＬ吸い取って滅菌シャーレに入れるとともに、それぞれ１ｍＬ滅菌生理食塩水を吸い取って２つの滅菌シャーレに入れ、開口のままでクリーンベンチ内に置き、ブランク対照とする。（５）１５～２０ｍＬのプレートカウント寒天培地を４５±０．５℃に冷却し、前記滅菌シャーレを注入し、回転して均一に混合する。寒天が凝固した後、プレートを温度が３０±１℃の生化学的インキュベータに逆さまに置いて７２±３時間培養する。（６）プレートカウント法によりシャーレ内のコロニー総数を測定し、滅菌生理食塩水をブランクとして対照実験を行う。培養終了後に、コロニー総数が３０～３００のシャーレを選択してカウントする。
バイオフィルムの検出方法
１ｍＬサンプルを取って４８マイクロウェルプレートに入れ、４．０±０．５℃の条件下で２４時間静置培養した後、上清液を取り除き、残りの部分を滅菌リン酸緩衝液で２回洗浄して浮遊菌を除去する。前記滅菌リン酸緩衝液の濃度は０．０１Ｍ、ｐＨ値＝７．０である。洗浄後の材料を５０±１℃で３０ｍｉｎ乾燥させ、そして濃度０．２％のクリスタルバイオレット染色液で１５ｍｉｎ染色して染色材料を得る。染色材料を水で洗浄して付着していないクリスタルバイオレット染色液を除去し、その後、５０±１℃で３０ｍｉｎ乾燥させ、そして質量濃度９５％のエタノール溶液に５ｍｉｎ浸漬することでバイオフィルムに付着したクリスタルバイオレットをエタノール溶液に溶解する。クリスタルバイオレットが溶解されたエタノール溶液に対して６００ｎｍでの吸光度を測定し、吸光度の変化によりバイオフィルムの成長状況を示す。
１ｍＬサンプルを取って４８マイクロウェルプレートに入れ、４．０±０．５℃の条件下で２４時間静置培養した後、上清液を取り除き、残りの部分を滅菌リン酸緩衝液で２回洗浄して浮遊菌を除去する。前記滅菌リン酸緩衝液の濃度は０．０１Ｍ、ｐＨ値＝７．０である。洗浄後の材料を５０±１℃で３０ｍｉｎ乾燥させ、そして濃度０．２％のクリスタルバイオレット染色液で１５ｍｉｎ染色して染色材料を得る。染色材料を水で洗浄して付着していないクリスタルバイオレット染色液を除去し、その後、５０±１℃で３０ｍｉｎ乾燥させ、そして質量濃度９５％のエタノール溶液に５ｍｉｎ浸漬することでバイオフィルムに付着したクリスタルバイオレットをエタノール溶液に溶解する。クリスタルバイオレットが溶解されたエタノール溶液に対して６００ｎｍでの吸光度を測定し、吸光度の変化によりバイオフィルムの成長状況を示す。
アデノシン三リン酸濃度の検出方法
アデノシン三リン酸キットによりサンプルのシェワネラ・プトレファシエンスアデノシン三リン酸濃度を測定する。
アデノシン三リン酸キットによりサンプルのシェワネラ・プトレファシエンスアデノシン三リン酸濃度を測定する。
スルフヒドリル基含有量の検出方法
２ｇサンプルを２０ｍＬ冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＡと均一に混合する。前記冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＡ中のＫＣｌ濃度は０．０５Ｍ、Ｔｒｉｓ－ｍａｌｅａｔｅ濃度は２０ｍＭ、ｐＨ値は７．０である。そして、回転速度１００００×ｇ及び温度４℃の条件下で１５ｍｉｎ遠心分離して上清液を除去し、残りの材料に対して上記のように１回繰り返し、沈殿物を得る。沈殿物を２０ｍＬ冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＢと均一に混合する。前記冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＢ中のＫＣｌ濃度は０．６Ｍ、Ｔｒｉｓ－ｍａｌｅａｔｅ濃度は２０ｍＭ、ｐＨ値は７．０である。そして、４℃の条件下で３時間浸出し、浸出物を１００００×ｇの条件下で１５ｍｉｎ遠心分離し、遠心分離して得られた上清液は筋原線維タンパク質抽出液である。総スルフヒドリル基含有量キットを用いて筋原線維タンパク質抽出液におけるスルフヒドリル基含有量を測定する。
２ｇサンプルを２０ｍＬ冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＡと均一に混合する。前記冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＡ中のＫＣｌ濃度は０．０５Ｍ、Ｔｒｉｓ－ｍａｌｅａｔｅ濃度は２０ｍＭ、ｐＨ値は７．０である。そして、回転速度１００００×ｇ及び温度４℃の条件下で１５ｍｉｎ遠心分離して上清液を除去し、残りの材料に対して上記のように１回繰り返し、沈殿物を得る。沈殿物を２０ｍＬ冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＢと均一に混合する。前記冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＢ中のＫＣｌ濃度は０．６Ｍ、Ｔｒｉｓ－ｍａｌｅａｔｅ濃度は２０ｍＭ、ｐＨ値は７．０である。そして、４℃の条件下で３時間浸出し、浸出物を１００００×ｇの条件下で１５ｍｉｎ遠心分離し、遠心分離して得られた上清液は筋原線維タンパク質抽出液である。総スルフヒドリル基含有量キットを用いて筋原線維タンパク質抽出液におけるスルフヒドリル基含有量を測定する。
筋原線維タンパク質の三次構造の検出方法
筋原線維タンパク質抽出液を得た後、それを凍結乾燥し、凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液を得る。蛍光分光光度計を用いてエミッション走査モードで凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液を走査する。励起波長を２９５ｎｍ、発光波長を３００～４１０ ｎｍに設定して異なる群の凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液の内因性蛍光強度（ｉｎｔｒｉｎｓｉｃ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ，ＩＦＩ）を測定して三次構造を表す。
筋原線維タンパク質抽出液を得た後、それを凍結乾燥し、凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液を得る。蛍光分光光度計を用いてエミッション走査モードで凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液を走査する。励起波長を２９５ｎｍ、発光波長を３００～４１０ ｎｍに設定して異なる群の凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液の内因性蛍光強度（ｉｎｔｒｉｎｓｉｃ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ，ＩＦＩ）を測定して三次構造を表す。
筋原線維タンパク質の超微細構造の検出方法
サンプルをサイズが３ｍｍ×３ｍｍ×１．５ｍｍの切断サンプルにカットし、切断サンプルに質量濃度２．５％のグルタルアルデヒド溶液を加え、４℃の条件下で２４時間固定し、浸出した後、液体部分を除去し、浸出後の切断サンプルを得る。０．１ｍｏｌ／ＬのｐＨ値７．３のリン酸緩衝液で浸出後切断サンプルを毎回１５ｍｉｎで３回すすぎ、洗浄サンプルを得る。前記リン酸緩衝液の濃度は０．１Ｍ、ｐＨ値は７．３である。そして、体積百分率がそれぞれ３０％、５０％、７０％、８０％、９０％、９５％及び１００％のエタノール溶液を用いて順に洗浄サンプルを勾配溶出し、さらに、酢酸イソアミルで洗浄サンプル表面を洗浄してエタノールを置換し、処理サンプルを得る。処理サンプルを凍結乾燥し、イオンスパッタ装置において１ｍｉｎ金属スパッタした後、２０ｋＶ加速電圧で走査型電子顕微鏡により観察する。処理サンプルをサイズ１ｍｍ×１ｍｍ×１ｍｍの二次切断サンプルにカットし、質量濃度２．５％のグルタルアルデヒド溶液で固定した後、リン酸塩緩衝液及び体積百分率がそれぞれ７０％、８０％、９５％、１００％のエタノール溶液を用いて順に浸漬溶出する。固定ステップ及びそれぞれの浸漬溶出ステップの時間は１０ｍｉｎである。さらに、エポキシ樹脂で包埋し、最後に、透過型電子顕微鏡により観察する。
サンプルをサイズが３ｍｍ×３ｍｍ×１．５ｍｍの切断サンプルにカットし、切断サンプルに質量濃度２．５％のグルタルアルデヒド溶液を加え、４℃の条件下で２４時間固定し、浸出した後、液体部分を除去し、浸出後の切断サンプルを得る。０．１ｍｏｌ／ＬのｐＨ値７．３のリン酸緩衝液で浸出後切断サンプルを毎回１５ｍｉｎで３回すすぎ、洗浄サンプルを得る。前記リン酸緩衝液の濃度は０．１Ｍ、ｐＨ値は７．３である。そして、体積百分率がそれぞれ３０％、５０％、７０％、８０％、９０％、９５％及び１００％のエタノール溶液を用いて順に洗浄サンプルを勾配溶出し、さらに、酢酸イソアミルで洗浄サンプル表面を洗浄してエタノールを置換し、処理サンプルを得る。処理サンプルを凍結乾燥し、イオンスパッタ装置において１ｍｉｎ金属スパッタした後、２０ｋＶ加速電圧で走査型電子顕微鏡により観察する。処理サンプルをサイズ１ｍｍ×１ｍｍ×１ｍｍの二次切断サンプルにカットし、質量濃度２．５％のグルタルアルデヒド溶液で固定した後、リン酸塩緩衝液及び体積百分率がそれぞれ７０％、８０％、９５％、１００％のエタノール溶液を用いて順に浸漬溶出する。固定ステップ及びそれぞれの浸漬溶出ステップの時間は１０ｍｉｎである。さらに、エポキシ樹脂で包埋し、最後に、透過型電子顕微鏡により観察する。
硬度値の検出方法
サンプルをサイズ１５ｍｍ×１５ｍｍ×１５ｍｍの切断サンプルにカットし、ＴＰＡモードで測定する。測定の設定パラメータは以下の通りである。測定前のプローブ下降速度が２．００ｍｍ／ｓ、測定速度が１．００ｍｍ／ｓ、測定後のプローブ戻り速度が５．００ｍｍ／ｓ、圧縮比が４０％、トリガー力が５．０ｇ、プローブタイプがｐ／５、データ採取速度が２００．００ｐｏｉｎｔｓ／ｓである。各群のサンプルについて３回の並行実験を行い、平均値を硬度値として求める。
サンプルをサイズ１５ｍｍ×１５ｍｍ×１５ｍｍの切断サンプルにカットし、ＴＰＡモードで測定する。測定の設定パラメータは以下の通りである。測定前のプローブ下降速度が２．００ｍｍ／ｓ、測定速度が１．００ｍｍ／ｓ、測定後のプローブ戻り速度が５．００ｍｍ／ｓ、圧縮比が４０％、トリガー力が５．０ｇ、プローブタイプがｐ／５、データ採取速度が２００．００ｐｏｉｎｔｓ／ｓである。各群のサンプルについて３回の並行実験を行い、平均値を硬度値として求める。
本発明の方法では、シャーレに冷却したプレートカウント寒天培地を加え、シャーレを回転させることで均一に混合する。寒天が凝固した後、プレートを生化学的インキュベータに逆さまに置いて培養し、プレートカウント法によりコロニー総数を測定し、滅菌生理食塩水をブランクとして対照試験を行う。本発明では、全てのサンプルを４±０．５℃の条件下で保存し、０～１００％のＣＯ２鮮度保持ガスを用いて細菌接種処理試料を包装することにより、ＣＯ２は、シェワネラ・プトレファシエンスの成長繁殖速度及び細菌接種処理試料の腐敗分解を効果的に低下でき、水産物食材の品質に対するシェワネラ・プトレファシエンスの劣化速度を遅くするとともに、ＣＯ２は安全で環境に優しく、生産コストが比較的低く、商シェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用を抑制する業的価値が極めて高い手段である。
上記各図において、ＡＰは空気条件包装対照群であり、ＭＡＰ１はＣＯ２含有量が０、他のガスが窒素ガスである条件での包装試験群であり、ＭＡＰ２はＣＯ２体積百分率が２０％、他が窒素ガスである条件での包装試験群であり、ＭＡＰ３はＣＯ２体積百分率が６０％、他が窒素ガス条件での包装試験群であり、ＭＡＰ４はＣＯ２体積百分率が１００％である条件での包装試験群である。
本発明の実施例で使用されるガス置換包装袋のサイズは、２８ｃｍ×２８ｃｍである。
本発明の実施例における異なるＣＯ２濃度の鮮度保持ガス条件下で１８日間保存した後のコロニー総数、バイオフィルム、アデノシン三リン酸含有量、スルフヒドリル基含有量、筋原線維タンパク質の三次構造、筋原線維タンパク質の超微細構造及び硬度値の測定結果を表１に示す。
ここで、鮮度保持ガスは、空気である場合ＡＰで表され、１００％Ｎ２である場合ＭＡＰ１で表され、ＣＯ２２０％及びＮ２８０％である場合ＭＡＰ２で表され、ＣＯ２６０％及びＮ２４０％である場合ＭＡＰ３で表され、１００％ＣＯ２である場合ＭＡＰ４で表される。
本発明の操作手順及び特徴をより詳しく述べ、使用者がよりよく理解及び利用できるために、以下、具体的な実施形態によりさらに詳しく説明する。
実施例１
凍結保存されたシェワネラ・プトレファシエンス種を取り出して解凍した後、トリプトン大豆ブロス培地に加え、シェーカーで振盪しながら１２時間培養し、一次培養液を得る。凍結保存の温度は≦－８０℃、解凍温度は３０±２℃、トリプトン大豆ブロス培地の使用量は５～１０ｍＬである。
凍結保存されたシェワネラ・プトレファシエンス種を取り出して解凍した後、トリプトン大豆ブロス培地に加え、シェーカーで振盪しながら１２時間培養し、一次培養液を得る。凍結保存の温度は≦－８０℃、解凍温度は３０±２℃、トリプトン大豆ブロス培地の使用量は５～１０ｍＬである。
一次培養液を液体培地に接種し、再度シェーカーで振盪しながら６時間培養し、細菌濃度が１０７ＣＦＵ／ｍＬの細菌懸濁液を作成する。接種量は１％（質量百分率）であり、液体培地はトリプトン大豆ブロス培地である。
水産物食材を用意し、処理した後、複数の質量が１００ｇのシート状食材に切り、そして０～４℃の水で洗浄した後、水切りし、試料を作成する。水産物食材として質量が１０００±５０ｇのフウセイ（Ｌａｒｉｍｉｃｈｔｈｙｓ ｃｒｏｃｅａ）を使用する。フウセイの輸送過程において発泡スチロール箱に酸素を供給する。前記処理とは、フウセイを血抜きし、内臓を取り除き、頭部を切除することを指す。
複数の試料をエタノール溶液に３０ｓ浸漬した後、取り出し、無菌蒸留水で３回洗浄し、さらに紫外線で２０ｍｉｎ殺菌し、複数の殺菌試料を得る。細菌懸濁液を細菌濃度１０４ＣＦＵ／ｍＬに希釈し、そして希釈後の細菌懸濁液を用いて殺菌試料に対して細菌接種処理を行い、複数の細菌接種処理試料を得る。エタノール溶液の質量濃度は７５％、エタノール溶液の使用量は質量比でエタノール溶液：試料＝３：１である。希釈後の細菌懸濁液が殺菌試料質量の１０％となるように、殺菌試料の細菌含有量を≦１０５ＣＦＵ／ｍＬにする。
複数の細菌接種処理試料をそれぞれガス置換包装袋に入れる。ガス置換包装袋は、高バリア性ポリ塩化ビニリデン包装袋である。
袋式ガス置換包装機を起動し、真空ポンプを起動し、ガス置換包装モードで包装する。包装時の鮮度保持ガス中のＣＯ２の体積百分率はそれぞれ０％（ＭＡＰ１）、２０％（ＭＡＰ２）、６０％（ＭＡＰ３）及び１００％（ＭＡＰ４）であり、残部がＮ２である。包装する際に、それぞれのガス置換包装袋内の鮮度保持ガスの体積と細菌接種処理試料の質量との比を３ｍＬ／ｇ、真空引き時間を１０ｓ、充気時間を４ｓ、ヒートシール口温度を１４０℃、鮮度保持ガス源の圧力を５ｋｇ／ｃｍ２、パワーガス源の圧力を７．５ｋｇ／ｃｍ２に設定し、袋式ガス置換包装機の動作が安定した後、細菌接種処理試料が入ったガス置換包装袋の袋口をガス置換及びヒートシール口に置き、ガス置換包装を行う。
包装された細菌接種処理試料を冷蔵庫に置き、４．０±０．５℃の条件下で保存する。
保存の０日、３日、６日、９日、１２日、１５日、及び１８日目のそれぞれに、ランダムに３つのサンプルを並行群として取り、並行群を検出し、異なるＣＯ２濃度の鮮度保持ガス条件下でのシェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用に対する抑制効果を評価する。
検出項目は、コロニー総数、バイオフィルム、アデノシン三リン酸含有量、スルフヒドリル基含有量、筋原線維タンパク質の三次構造、筋原線維タンパク質の超微細構造及び硬度値である。
コロニー総数の検出方法
（１）サンプル５．００ｇを取り、４５ｍＬ滅菌生理食塩水に入れて均一に混合し、均一希釈液を作成する。（２）１ｍＬ滅菌ピペットにて均一希釈液１ｍＬを吸い取り、壁に沿って９ｍＬ滅菌生理食塩水を注入して１０倍希釈し、一次サンプル希釈液を作成する。（３）一次サンプル希釈液を均一希釈液としてステップ（２）を繰り返し、二次サンプル希釈液を作成する。上記のように、三次サンプル希釈液から十次サンプル希釈液を作成する。（４）一次サンプル希釈液から十次サンプル希釈液の中から３つのサンプル希釈液をランダムに選択し、それぞれ１ｍＬ吸い取って滅菌シャーレに入れるとともに、それぞれ１ｍＬ滅菌生理食塩水を吸い取って２つの滅菌シャーレに入れ、開口のままでクリーンベンチ内に置き、ブランク対照とする。（５）１５～２０ｍＬのプレートカウント寒天培地を４５±０．５℃に冷却し、前記滅菌シャーレを注入し、回転して均一に混合する。寒天が凝固した後、プレートを温度が３０±１℃の生化学的インキュベータに逆さまに置いて７２±３時間培養する。（６）プレートカウント法によりシャーレ内のコロニー総数を測定し、滅菌生理食塩水をブランクとして対照実験を行う。培養終了後に、コロニー総数が３０～３００のシャーレを選択してカウントする。
（１）サンプル５．００ｇを取り、４５ｍＬ滅菌生理食塩水に入れて均一に混合し、均一希釈液を作成する。（２）１ｍＬ滅菌ピペットにて均一希釈液１ｍＬを吸い取り、壁に沿って９ｍＬ滅菌生理食塩水を注入して１０倍希釈し、一次サンプル希釈液を作成する。（３）一次サンプル希釈液を均一希釈液としてステップ（２）を繰り返し、二次サンプル希釈液を作成する。上記のように、三次サンプル希釈液から十次サンプル希釈液を作成する。（４）一次サンプル希釈液から十次サンプル希釈液の中から３つのサンプル希釈液をランダムに選択し、それぞれ１ｍＬ吸い取って滅菌シャーレに入れるとともに、それぞれ１ｍＬ滅菌生理食塩水を吸い取って２つの滅菌シャーレに入れ、開口のままでクリーンベンチ内に置き、ブランク対照とする。（５）１５～２０ｍＬのプレートカウント寒天培地を４５±０．５℃に冷却し、前記滅菌シャーレを注入し、回転して均一に混合する。寒天が凝固した後、プレートを温度が３０±１℃の生化学的インキュベータに逆さまに置いて７２±３時間培養する。（６）プレートカウント法によりシャーレ内のコロニー総数を測定し、滅菌生理食塩水をブランクとして対照実験を行う。培養終了後に、コロニー総数が３０～３００のシャーレを選択してカウントする。
バイオフィルムの検出方法
１ｍＬサンプルを取って４８マイクロウェルプレートに入れ、４．０±０．５℃の条件下で２４時間静置培養した後、上清液を取り除き、残りの部分を滅菌リン酸緩衝液で２回洗浄して浮遊菌を除去する。前記滅菌リン酸緩衝液の濃度は０．０１Ｍ、ｐＨ値＝７．０である。洗浄後の材料を５０±１℃で３０ｍｉｎ乾燥させ、そして濃度０．２％のクリスタルバイオレット染色液で１５ｍｉｎ染色して染色材料を得る。染色材料を水で洗浄して付着していないクリスタルバイオレット染色液を除去し、その後、５０±１℃で３０ｍｉｎ乾燥させ、そして質量濃度９５％のエタノール溶液に５ｍｉｎ浸漬することでバイオフィルムに付着したクリスタルバイオレットをエタノール溶液に溶解する。クリスタルバイオレットが溶解されたエタノール溶液に対して６００ｎｍでの吸光度を測定し、吸光度の変化によりバイオフィルムの成長状況を示す。
１ｍＬサンプルを取って４８マイクロウェルプレートに入れ、４．０±０．５℃の条件下で２４時間静置培養した後、上清液を取り除き、残りの部分を滅菌リン酸緩衝液で２回洗浄して浮遊菌を除去する。前記滅菌リン酸緩衝液の濃度は０．０１Ｍ、ｐＨ値＝７．０である。洗浄後の材料を５０±１℃で３０ｍｉｎ乾燥させ、そして濃度０．２％のクリスタルバイオレット染色液で１５ｍｉｎ染色して染色材料を得る。染色材料を水で洗浄して付着していないクリスタルバイオレット染色液を除去し、その後、５０±１℃で３０ｍｉｎ乾燥させ、そして質量濃度９５％のエタノール溶液に５ｍｉｎ浸漬することでバイオフィルムに付着したクリスタルバイオレットをエタノール溶液に溶解する。クリスタルバイオレットが溶解されたエタノール溶液に対して６００ｎｍでの吸光度を測定し、吸光度の変化によりバイオフィルムの成長状況を示す。
アデノシン三リン酸濃度の検出方法
アデノシン三リン酸キットによりサンプルのシェワネラ・プトレファシエンスアデノシン三リン酸濃度を測定する。
アデノシン三リン酸キットによりサンプルのシェワネラ・プトレファシエンスアデノシン三リン酸濃度を測定する。
スルフヒドリル基含有量の検出方法
２ｇサンプルを２０ｍＬ冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＡと均一に混合する。前記冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＡ中のＫＣｌ濃度は０．０５Ｍ、Ｔｒｉｓ－ｍａｌｅａｔｅ濃度は２０ｍＭ、ｐＨ値は７．０である。そして、回転速度１００００×ｇ及び温度４℃の条件下で１５ｍｉｎ遠心分離して上清液を除去し、残りの材料に対して上記のように１回繰り返し、沈殿物を得る。沈殿物を２０ｍＬ冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＢと均一に混合する。前記冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＢ中のＫＣｌ濃度は０．６Ｍ、Ｔｒｉｓ－ｍａｌｅａｔｅ濃度は２０ｍＭ、ｐＨ値は７．０である。そして、４℃の条件下で３時間浸出し、浸出物を１００００×ｇの条件下で１５ｍｉｎ遠心分離し、遠心分離して得られた上清液は筋原線維タンパク質抽出液である。総スルフヒドリル基含有量キットを用いて筋原線維タンパク質抽出液におけるスルフヒドリル基含有量を測定する。
２ｇサンプルを２０ｍＬ冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＡと均一に混合する。前記冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＡ中のＫＣｌ濃度は０．０５Ｍ、Ｔｒｉｓ－ｍａｌｅａｔｅ濃度は２０ｍＭ、ｐＨ値は７．０である。そして、回転速度１００００×ｇ及び温度４℃の条件下で１５ｍｉｎ遠心分離して上清液を除去し、残りの材料に対して上記のように１回繰り返し、沈殿物を得る。沈殿物を２０ｍＬ冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＢと均一に混合する。前記冷蔵Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒＢ中のＫＣｌ濃度は０．６Ｍ、Ｔｒｉｓ－ｍａｌｅａｔｅ濃度は２０ｍＭ、ｐＨ値は７．０である。そして、４℃の条件下で３時間浸出し、浸出物を１００００×ｇの条件下で１５ｍｉｎ遠心分離し、遠心分離して得られた上清液は筋原線維タンパク質抽出液である。総スルフヒドリル基含有量キットを用いて筋原線維タンパク質抽出液におけるスルフヒドリル基含有量を測定する。
筋原線維タンパク質の三次構造の検出方法
筋原線維タンパク質抽出液を得た後、それを凍結乾燥し、凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液を得る。蛍光分光光度計を用いてエミッション走査モードで凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液を走査する。励起波長を２９５ｎｍ、発光波長を３００～４１０ ｎｍに設定して異なる群の凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液の内因性蛍光強度（ｉｎｔｒｉｎｓｉｃ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ，ＩＦＩ）を測定して三次構造を表す。
筋原線維タンパク質抽出液を得た後、それを凍結乾燥し、凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液を得る。蛍光分光光度計を用いてエミッション走査モードで凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液を走査する。励起波長を２９５ｎｍ、発光波長を３００～４１０ ｎｍに設定して異なる群の凍結乾燥筋原線維タンパク質溶液の内因性蛍光強度（ｉｎｔｒｉｎｓｉｃ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ，ＩＦＩ）を測定して三次構造を表す。
筋原線維タンパク質の超微細構造の検出方法
サンプルをサイズが３ｍｍ×３ｍｍ×１．５ｍｍの切断サンプルにカットし、切断サンプルに質量濃度２．５％のグルタルアルデヒド溶液を加え、４℃の条件下で２４時間固定し、浸出した後、液体部分を除去し、浸出後の切断サンプルを得る。０．１ｍｏｌ／ＬのｐＨ値７．３のリン酸緩衝液で浸出後切断サンプルを毎回１５ｍｉｎで３回すすぎ、洗浄サンプルを得る。前記リン酸緩衝液の濃度は０．１Ｍ、ｐＨ値は７．３である。そして、体積百分率がそれぞれ３０％、５０％、７０％、８０％、９０％、９５％及び１００％のエタノール溶液を用いて順に洗浄サンプルを勾配溶出し、さらに、酢酸イソアミルで洗浄サンプル表面を洗浄してエタノールを置換し、処理サンプルを得る。処理サンプルを凍結乾燥し、イオンスパッタ装置において１ｍｉｎ金属スパッタした後、２０ｋＶ加速電圧で走査型電子顕微鏡により観察する。処理サンプルをサイズ１ｍｍ×１ｍｍ×１ｍｍの二次切断サンプルにカットし、質量濃度２．５％のグルタルアルデヒド溶液で固定した後、リン酸塩緩衝液及び体積百分率がそれぞれ７０％、８０％、９５％、１００％のエタノール溶液を用いて順に浸漬溶出する。固定ステップ及びそれぞれの浸漬溶出ステップの時間は１０ｍｉｎである。さらに、エポキシ樹脂で包埋し、最後に、透過型電子顕微鏡により観察する。
サンプルをサイズが３ｍｍ×３ｍｍ×１．５ｍｍの切断サンプルにカットし、切断サンプルに質量濃度２．５％のグルタルアルデヒド溶液を加え、４℃の条件下で２４時間固定し、浸出した後、液体部分を除去し、浸出後の切断サンプルを得る。０．１ｍｏｌ／ＬのｐＨ値７．３のリン酸緩衝液で浸出後切断サンプルを毎回１５ｍｉｎで３回すすぎ、洗浄サンプルを得る。前記リン酸緩衝液の濃度は０．１Ｍ、ｐＨ値は７．３である。そして、体積百分率がそれぞれ３０％、５０％、７０％、８０％、９０％、９５％及び１００％のエタノール溶液を用いて順に洗浄サンプルを勾配溶出し、さらに、酢酸イソアミルで洗浄サンプル表面を洗浄してエタノールを置換し、処理サンプルを得る。処理サンプルを凍結乾燥し、イオンスパッタ装置において１ｍｉｎ金属スパッタした後、２０ｋＶ加速電圧で走査型電子顕微鏡により観察する。処理サンプルをサイズ１ｍｍ×１ｍｍ×１ｍｍの二次切断サンプルにカットし、質量濃度２．５％のグルタルアルデヒド溶液で固定した後、リン酸塩緩衝液及び体積百分率がそれぞれ７０％、８０％、９５％、１００％のエタノール溶液を用いて順に浸漬溶出する。固定ステップ及びそれぞれの浸漬溶出ステップの時間は１０ｍｉｎである。さらに、エポキシ樹脂で包埋し、最後に、透過型電子顕微鏡により観察する。
硬度値の検出方法
サンプルをサイズ１５ｍｍ×１５ｍｍ×１５ｍｍの切断サンプルにカットし、ＴＰＡモードで測定する。測定の設定パラメータは以下の通りである。測定前のプローブ下降速度が２．００ｍｍ／ｓ、測定速度が１．００ｍｍ／ｓ、測定後のプローブ戻り速度が５．００ｍｍ／ｓ、圧縮比が４０％、トリガー力が５．０ｇ、プローブタイプがｐ／５、データ採取速度が２００．００ｐｏｉｎｔｓ／ｓである。各群のサンプルについて３回の並行実験を行い、平均値を硬度値として求める。
サンプルをサイズ１５ｍｍ×１５ｍｍ×１５ｍｍの切断サンプルにカットし、ＴＰＡモードで測定する。測定の設定パラメータは以下の通りである。測定前のプローブ下降速度が２．００ｍｍ／ｓ、測定速度が１．００ｍｍ／ｓ、測定後のプローブ戻り速度が５．００ｍｍ／ｓ、圧縮比が４０％、トリガー力が５．０ｇ、プローブタイプがｐ／５、データ採取速度が２００．００ｐｏｉｎｔｓ／ｓである。各群のサンプルについて３回の並行実験を行い、平均値を硬度値として求める。
異なる鮮度保持ガス条件で異なる保存日数で保存したコロニー総数の変化結果を図１に示す。バイオフィルムの変化結果を図２に示す。アデノシン三リン酸ＡＴＰ濃度の変化結果を図３に示す。スルフヒドリル基含有量（濃度）の変化結果を図４に示す。筋原線維タンパク質の三次構造の変化結果を図５に示す。筋原線維タンパク質の超微細構造の変化結果を図６に示す。硬度値の変化結果を図７に示す。
検出した結果、ＣＯ２静菌方法により得られたシェワネラ・プトレファシエンスの成長繁殖速度は、対照群よりも顕著に低く、ＣＯ２処理群のフウセイの各指標は、いずれも対照群よりも優れている。これは、シェワネラ・プトレファシエンスの成長繁殖速度及び腐敗作用を効果的に低下できることを実証している。
実施例２
以下の相違点以外、方法は実施例１と同様である。
（１）シェーカーで振盪しながら１０時間培養する。
（２）液体培地に接種し、さらにシェーカーで振盪しながら４時間培養し、細菌濃度が１０８ＣＦＵ／ｍＬの細菌懸濁液を作成する。接種量は０．５％（質量百分率）である。
（３）複数の質量８０ｇのシート状食材にカットする。
（４）エタノール溶液に２０ｓ浸漬し、無菌蒸留水で４回洗浄し、紫外線で１５ｍｉｎ殺菌する。細菌懸濁液を細菌濃度１０３ＣＦＵ／ｍＬに希釈する。エタノール溶液の質量濃度が７０％、エタノール溶液の使用量は、質量比でエタノール溶液：試料＝２：１である。希釈後の細菌懸濁液が殺菌試料質量の５％となるように、殺菌試料の細菌含有量を≦１０５ＣＦＵ／ｍＬにする。
（５）それぞれのガス置換包装袋内の鮮度保持ガス体積と細菌接種処理試料の質量との比を２ｍＬ／ｇ、真空引き時間を５ｓ、充気時間を３ｓ、ヒートシール口温度を１５０℃、鮮度保持ガス源圧力を４ｋｇ／ｃｍ２、パワーガス源圧力を７ｋｇ／ｃｍ２に設定する。
以下の相違点以外、方法は実施例１と同様である。
（１）シェーカーで振盪しながら１０時間培養する。
（２）液体培地に接種し、さらにシェーカーで振盪しながら４時間培養し、細菌濃度が１０８ＣＦＵ／ｍＬの細菌懸濁液を作成する。接種量は０．５％（質量百分率）である。
（３）複数の質量８０ｇのシート状食材にカットする。
（４）エタノール溶液に２０ｓ浸漬し、無菌蒸留水で４回洗浄し、紫外線で１５ｍｉｎ殺菌する。細菌懸濁液を細菌濃度１０３ＣＦＵ／ｍＬに希釈する。エタノール溶液の質量濃度が７０％、エタノール溶液の使用量は、質量比でエタノール溶液：試料＝２：１である。希釈後の細菌懸濁液が殺菌試料質量の５％となるように、殺菌試料の細菌含有量を≦１０５ＣＦＵ／ｍＬにする。
（５）それぞれのガス置換包装袋内の鮮度保持ガス体積と細菌接種処理試料の質量との比を２ｍＬ／ｇ、真空引き時間を５ｓ、充気時間を３ｓ、ヒートシール口温度を１５０℃、鮮度保持ガス源圧力を４ｋｇ／ｃｍ２、パワーガス源圧力を７ｋｇ／ｃｍ２に設定する。
実施例３
以下の相違点以外、方法は実施例１と同様である。
（１）シェーカーで振盪しながら１４時間培養する。
（２）液体培地に接種し、さらにシェーカーで振盪しながら８時間培養し、細菌濃度が１０６ＣＦＵ／ｍＬの細菌懸濁液を作成する。接種量は１．５％（質量百分率）である。
（３）複数の質量１２０ｇのシート状食材にカットする。
（４）エタノール溶液に４０ｓ浸漬し、無菌蒸留水で２回洗浄し、紫外線で２５ｍｉｎ殺菌する。細菌懸濁液を細菌濃度１０５ＣＦＵ／ｍＬに希釈する。エタノール溶液の質量濃度が８０％、エタノール溶液の使用量は、質量比でエタノール溶液：試料＝４：１である。希釈後の細菌懸濁液は殺菌試料質量の１５％であり、殺菌試料の細菌含有量は≦１０５ＣＦＵ／ｍＬである。
（５）それぞれのガス置換包装袋内の鮮度保持ガス体積と細菌接種処理試料の質量との比を４ｍＬ／ｇ、真空引き時間を１５ｓ、充気時間を５ｓ、ヒートシール口温度を１２５℃、鮮度保持ガス源圧力を６ｋｇ／ｃｍ２、パワーガス源圧力を８ｋｇ／ｃｍ２に設定する。
以下の相違点以外、方法は実施例１と同様である。
（１）シェーカーで振盪しながら１４時間培養する。
（２）液体培地に接種し、さらにシェーカーで振盪しながら８時間培養し、細菌濃度が１０６ＣＦＵ／ｍＬの細菌懸濁液を作成する。接種量は１．５％（質量百分率）である。
（３）複数の質量１２０ｇのシート状食材にカットする。
（４）エタノール溶液に４０ｓ浸漬し、無菌蒸留水で２回洗浄し、紫外線で２５ｍｉｎ殺菌する。細菌懸濁液を細菌濃度１０５ＣＦＵ／ｍＬに希釈する。エタノール溶液の質量濃度が８０％、エタノール溶液の使用量は、質量比でエタノール溶液：試料＝４：１である。希釈後の細菌懸濁液は殺菌試料質量の１５％であり、殺菌試料の細菌含有量は≦１０５ＣＦＵ／ｍＬである。
（５）それぞれのガス置換包装袋内の鮮度保持ガス体積と細菌接種処理試料の質量との比を４ｍＬ／ｇ、真空引き時間を１５ｓ、充気時間を５ｓ、ヒートシール口温度を１２５℃、鮮度保持ガス源圧力を６ｋｇ／ｃｍ２、パワーガス源圧力を８ｋｇ／ｃｍ２に設定する。
Claims (7)
- 以下のステップを含むシェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用に対する二酸化炭素の抑制を測定する方法であって、
（１）菌液活性化：凍結保存されたシェワネラ・プトレファシエンス種を取り出して解凍し、そしてトリプトン大豆ブロス（ｔｒｙｐｔｉｃａｓｅ ｓｏｙ ｂｒｏｔｈ，ＴＳＢ）培地に加え、シェーカーで振盪しながら１０～１４時間培養し、一次培養液を得、
（２）細菌懸濁液の調製：一次培養液を液体培地に接種し、再度シェーカーで振盪しながら４～８ｈ培養し、細菌濃度が１０６～１０８ＣＦＵ／ｍＬの細菌懸濁液を作成し、
（３）試料の準備及び処理：水産物食材を用意し、処理した後、複数の質量が８０～１２０ｇのシート状食材にカットし、そして０～４℃の水で洗浄して水切りし、試料を作成し、
（４）細菌接種処理：複数の試料をエタノール溶液に２０～４０ｓ浸漬した後、取り出し、無菌蒸留水で２～４回洗浄し、さらに紫外線で１５～２５ｍｉｎ殺菌し、複数の殺菌試料を得、細菌懸濁液を細菌濃度１０３～１０５ＣＦＵ／ｍＬに希釈し、そして希釈後の細菌懸濁液を用いて殺菌試料に対して細菌接種処理を行い、複数の細菌接種処理試料を得、
（５）袋への包装：複数の細菌接種処理試料をそれぞれガス置換包装袋に入れ、
（６）ガス置換包装：袋式ガス置換包装機を起動し、真空ポンプを起動し、ガス置換包装モードで包装し、包装時の鮮度保持ガス中のＣＯ２の体積百分率が０～１００％であり、残部がＮ２であり、
（７）冷蔵庫での冷蔵：包装した後の細菌接種処理試料を冷蔵庫に置き、４．０±０．５℃条件下で保存し、
（８）性能測定：それぞれ０～１８日間保存した後に、ランダムに３つのサンプルを選択して並行群とし、並行群を検出し、異なるＣＯ２濃度の鮮度保持ガス条件下でのシェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用に対する抑制効果を測定することを特徴とする、方法。 - ステップ（１）において、トリプトン大豆ブロス培地の使用量は５～１０ｍＬであることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
- ステップ（２）において、接種量は、質量百分率で０．５～１．５％であることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
- ステップ（４）において、エタノール溶液の質量濃度は７０～８０％であり、エタノール溶液と試料の質量比は（２～４）：１であることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
- ステップ（４）において、細菌接種処理では、希釈後の細菌懸濁液が殺菌試料の質量の５～１５％となるように、殺菌試料の細菌含有量を≦１０５ＣＦＵ／ｍＬにすることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
- ステップ（６）において、包装する際に、それぞれのガス置換包装袋内の鮮度保持ガス体積と細菌接種処理試料の質量との比を２～４ｍＬ／ｇ、真空引き時間を５～１５ｓ、充気時間を３～５ｓ、ヒートシール口温度を１２５～１５０℃、鮮度保持ガス源圧力を４～６ｋｇ／ｃｍ２、パワーガス源圧力を７～８ｋｇ／ｃｍ２に設定し、袋式ガス置換包装機の動作が安定した後、細菌接種処理試料が入ったガス置換包装袋の袋口をガス置換及びヒートシール口に置き、ガス置換包装を行うことを特徴とする、請求項１に記載の方法。
- ステップ（８）において、検出項目は、コロニー総数、バイオフィルム、アデノシン三リン酸含有量、スルフヒドリル基含有量、筋原線維タンパク質の三次構造、筋原線維タンパク質の超微細構造及び硬度値であることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN202210058233.1A CN114410733A (zh) | 2022-01-19 | 2022-01-19 | 一种二氧化碳抑制腐败希瓦氏菌致腐性能的测试方法 |
| CN202210058233.1 | 2022-01-19 |
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|---|---|
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| JP2022039935A Active JP7338907B2 (ja) | 2022-01-19 | 2022-03-15 | 二酸化炭素がシェワネラ・プトレファシエンスの腐敗作用を抑制する効果を測定する方法 |
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- 2022-03-15 JP JP2022039935A patent/JP7338907B2/ja active Active
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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|---|
| APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, vol. 66, no. 8, JPN6023009051, 2000, pages 3528 - 3534, ISSN: 0005007574 * |
| INTERNATIONAL JOURNAL OF FOOD MICROBIOLOGY, vol. 19, JPN6023009052, 1993, pages 283 - 294, ISSN: 0005007575 * |
| INTERNATIONAL JOURNAL OF FOOD MICROBIOLOGY, vol. 26, JPN6023009053, 1995, pages 305 - 317, ISSN: 0005007576 * |
| LWT - FOOD SCIENCE AND TECHNOLOGY, vol. 140, 110741, JPN6023009049, 2021, pages 1 - 10, ISSN: 0005007572 * |
| 食品科学, vol. 31, no. 20, JPN6023009050, 2010, pages 355 - 359, ISSN: 0005007573 * |
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