JP2022531976A - 弱毒化黄熱ウイルス及びがんの処置のためのその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2019年5月15日に出願された米国仮特許出願第62/848,443号に対する米国特許法第119条(e)に基づく優先権の主張を含み、その全体が参照により本明細書に援用される。
本発明は、悪性腫瘍に対する腫瘍溶解効果を誘導し、悪性腫瘍を処置するために黄熱ウイルスワクチン株、黄熱ウイルスワクチン株の改変バージョン、及び黄熱ウイルスの改変バージョンを使用する方法に関する。
本明細書における全ての刊行物は、各々の刊行物または特許出願が、参照により援用されているように具体的かつ個別に示されている場合と同じ程度において、参照により援用される。以下の説明は、本発明を理解するのに有用であり得る情報を含む。本明細書で提供される情報のいずれについても、今回請求する本発明に対する先行技術であることもしくはそれに関連することを認めるものではなく、または具体的もしくは暗黙的に言及された出版物が先行技術であることを認めるものでもない。
DNA合成技術の急速な向上により、ウイルス学で用いられる従来的な方法に変革がもたらされることが期待される。ウイルスゲノムの異なる領域の機能を排除するために従来より用いられているアプローチの1つでは、ウイルス株のゲノムにおける小さな配列バリエーションの影響を探索するのに、部位特異的変異誘発の使用が広範で労力を要するものとなる。しかし、ウイルスゲノム、特にRNAウイルスのゲノムは比較的短く、多くの場合10,000塩基長未満であり、このようなゲノムは現状利用できる技術を用いた全ゲノム合成に適用可能である。最近開発されたマイクロ流体チップ系技術は、仕様通りに設計された新たなゲノムの新規合成を1件当たりわずか数百ドルで実施することができる。これにより、完全に新規のコード配列の生成や既存配列の調整が、従来のクローニング法では実質的に不可能な程度まで可能になる。このような設計の自由により、DNA/RNAコード配列の大規模な再設計を実施する上で多大な力がもたらされ、(1)コドンバイアス、コドン対バイアス、及びRNA二次構造などのパラメーターの変化がウイルスの翻訳及び複製効率に及ぼす影響の研究、(2)ウイルス増殖を成功させるのに必要な未知の調節エレメント及びその他のシグナルのための効率的な完全ゲノムスキャンの実施、(3)ウイルス系統の遺伝子操作及び抗ウイルスワクチン設計のための新たなバイオテクノロジーの開発、(4)腫瘍溶解療法で使用するための改変ウイルスの合成、を行うことができる。
ウイルスゲノムを新規に設計し合成するためにコンピューターベースのアルゴリズムが使用される。これらの合成されたゲノムは、本明細書に記載の黄熱ウイルス17Dの合成によって例示されるように、がんの処置に使用することができる。
以下の実施形態及びその態様は、範囲を限定しないように意図されている代表的かつ例示的な組成物及び方法と共に、記載及び例示される。
本明細書で引用されている全ての参考文献は、その全体が、完全に記載されているかのように参照により本明細書に援用される。別途記載のない限り、本明細書で使用される技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者により一般に理解されるのと同じ意味を有する。Singleton et al.,Dictionary of Microbiology and Molecular Biology 3rd ed.,Revised,J.Wiley & Sons(New York,NY 2006);及びSambrook and Russel,Molecular Cloning:A Laboratory Manual 4th ed.,Cold Spring Harbor Laboratory Press(Cold Spring Harbor,NY 2012)は、本出願で使用されている用語の多くに対する全般的指針を当業者に提供する。
本発明の諸実施形態は、弱毒化黄熱ウイルスを提供する。本発明の様々な実施形態は、弱毒化された黄熱ウイルスと、医薬的に許容される担体または賦形剤とを含む、医薬組成物を提供する。様々な実施形態において、医薬品として許容される担体または賦形剤はソルビトールまたはゼラチンであり、これらは安定剤として使用され得る。様々な実施形態において、弱毒化黄熱ウイルスを含む組成物(例えば、ワクチン調製物)は、凍結乾燥し、コールドチェーン条件下で保存することができる。
黄熱ウイルス17D株、10,233ヌクレオチドの長いオープンリーディングフレーム(終止コドンを除く3411コドン)のコドン使用頻度。Rice et al.(1985)からのデータ
本発明は、様々な腫瘍タイプを処置するための腫瘍溶解療法として使用され得る黄熱ウイルス及びこのような黄熱ウイルスを含む組成物の生産、ならびに弱毒化YFVウイルス、例えば、弱毒化(脱最適化による弱毒化を含む)YFV 17D、YFV 17D-204、YFV 17DD、またはYFV 17D-213、特に本明細書に記載の合成YFV 17Dを投与することにより、腫瘍及びがんを処置する方法に関する。
本発明の様々な実施形態は、腫瘍またはがん細胞に対する腫瘍溶解効果を誘導する方法を提供する。様々な実施形態において、このタイプの処置は、対象ががんと診断されたときに行われ得る。方法は、弱毒化YFVを、それを必要とする対象に投与する工程を含む。弱毒化YFVは、本明細書で提供されるような医薬的に許容される担体または賦形剤を含む組成物で提供し、投与することができる。
本発明の様々な実施形態は、プライム-ブースト型処置レジメンを用いて、免疫応答を誘発し、腫瘍またはがん細胞に対する腫瘍溶解効果を誘導する方法を提供する。様々な実施形態において、免疫応答を誘発し、腫瘍またはがん細胞に対する腫瘍溶解効果を誘導することは、結果的に悪性腫瘍を処置する。
本発明の様々な実施形態は、がんを有しない対象における免疫応答を誘発し、腫瘍またはがん細胞が対象に発生した場合に腫瘍またはがん細胞に対する腫瘍溶解効果を誘導する方法を提供する。方法は、プライム-ブースト型の処置レジメンを使用する。様々な実施形態において、免疫応答を誘発し、腫瘍またはがん細胞に対する腫瘍溶解効果を誘導することは、対象ががんを発症した場合に、結果的に悪性腫瘍を処置する。
様々な実施形態において、本発明の黄熱ウイルス17Dの投与は、部分的には治療有効性をもたらす、対象における内因性1型インターフェロンの産生を刺激することを目的とする。
本明細書で論じられているように使用することができる抗PD1抗体の例としては、限定されるものではないが、ペムブロリズマブ、ニボルマブ、ピディリズマブ、AMP-224、AMP-514、スパルタリズマブ、セミプリマブ、AK105、BCD-100、BI 754091、JS001、LZM009、MGA012、Sym021、TSR-042、MGD013、AK104、XmAb20717、及びチスレリズマブが挙げられる。
上記で論じられたものに加えて、治療用腫瘍溶解YFV 17Dウイルス(またはYFV 17D-204、YFV 17DD、またはYFV 17D-213、またはコドン脱最適化YFV、コドン対脱最適化YFV、またはCGもしくはTA(もしくはUA)ジヌクレオチド含有量を増加させることによって脱最適化されたYFV、またはコドン脱最適化YFV 17D、YFV 17D-204、YFV 17DD、もしくはYFV 17D-213、コドン対脱最適化YFV 17D、YFV 17D-204、YFV 17DD、もしくはYFV 17D-213、または本明細書に記載のようにCGもしくはTA(もしくはUA)ジヌクレオチド含有量を増加させることによって脱最適化されたYFV 17D、YFV 17D-204、YFV 17DD、もしくはYFV 17D-213)は、腫瘍内、静脈内、髄腔内、または新生物内(腫瘍内に直接)に送達され得る。好ましい投与様式は、腫瘍部位に直接行う様式である。治療目的で適用されるウイルスの接種物は、1~10μlの範囲の極めて小さい体積で投与され得る。
免疫コンピテントマウスにおける免疫原性
0日目及び21日目に、C57BL/6マウスに5×106PFUの合成YFV 17Dを接種した(図2A)。0、21、及び35日目に血清を採取し、プラーク減少中和50%(PRNT50)試験を用いて中和抗体を調べた。マウスは当初、YFV 17dの血清反応が陰性であった(PRNT50<16)。初回のワクチン接種後、全てのマウスが血清転換した(PRNT50≧32)。PRNT50力価の平均は、21日目(243.2)から35日目(240.0)まで有意に増加しなかった。このことから、ブースト用量後にYFV 17Dの複製を防止する殺菌免疫が誘導されたことが示される。0日目及び21日目に、BALB/cマウスに5×106PFUの合成YFV 17Dをワクチン接種した(図2B)。0、21、及び35日目に血清を採取し、プラーク減少中和50%(PRNT50)試験を用いて中和抗体を調べた。マウスは当初、YFV 17Dの血清反応が陰性であった(PRNT50<16)。初回のワクチン接種後、全てのマウスが血清転換した(PRNT50≧32)。ブーストから2週間後、PRNT50力価の平均は44.8(21日目)から195.2(35日目)に増加し、有意な増加となった(p=0.01;対応のあるt検定)。0日目及び21日目に、DBA/2マウスに5×106PFUの合成YFV 17Dを接種した(図2C)。0、21、及び35日目に血清を採取し、プラーク減少中和50%(PRNT50)試験を用いて中和抗体を調べた。マウスは当初、YFV 17Dの血清反応が陰性であった(PRNT50<16)。初回のワクチン接種後、全てのマウスが血清転換した(PRNT50≧32)。PRNT50力価の平均は、21日目(192)から35日目(160.0)まで有意に増加しなかった。このことから、ブースト用量後にYFV 17Dの複製を防止する殺菌免疫が誘導されたことが示される。中和抗体の誘導によって実証されるように、合成YFV 17Dのワクチン接種によってYFV 17Dに対する免疫が首尾よく誘導された。
免疫コンピテントマウスにおけるB16黒色腫に対する腫瘍溶解有効性
合成YFV 17Dを使用して、C57BL/6マウスの移植同系B16黒色腫細胞を処置した。マウスに、0日目及び21日目にワクチン接種し、38日目に移植し、次いで49、51、53、56、69、71、76、及び78日目に107PFUを送達して8回処置した(図3A~B)。ワクチン接種C57BL/6マウスの右脇腹に100μlの体積中105のB16細胞を皮下送達して移植し、0.2%のBSA MEMで模擬処置(n=10)または107PFUの合成YFV 17Dで処置(n=10)した。移植腫瘍を、50μlの合成YFV 17Dを直接注入することによって処置した。腫瘍の高さ、幅、及び奥行をカリパスを用いて毎日測定し、下記の式を用いて腫瘍体積(mm3)を計算した。
免疫コンピテントマウスにおけるEMT-6トリプルネガティブ乳癌に対する腫瘍溶解有効性
合成YFV 17Dを使用して、BALB/Cマウスの移植同系EMT-6トリプルネガティブ乳癌細胞を処置した。マウスに、0日目及び21日目にワクチン接種し、37日目に移植し、次いで40、42、44、46、49、51、58、65、及び67日目に107PFUの合成YFV 17Dを送達して9回処置した。ワクチン接種BALB/Cマウスの腹部脂肪パッドに100μlの体積中104のEMT-6細胞を皮下送達して移植し、模擬処置(n=10)または107PFUの合成YFV 17Dで処置(n=10)した。移植腫瘍を、50μlの合成YFV 17Dを直接注入することによって処置した。腫瘍の高さ、幅、及び奥行をカリパスを用いて毎日測定し、下記の式を用いて腫瘍体積(mm3)を計算した。
免疫コンピテントマウスにおけるCCL-53.1黒色腫に対する腫瘍溶解有効性
本試験の目的のため、DBA/2マウス(n=8)に対し、最初に0日目及び21日目に合成YFV 17Dをワクチン接種し、次いで45日目に105のClone M3(Cloudman S-91黒色腫腫瘍細胞)(ATCC CCL-53.1)を移植し、51、53、56、58、60、63、65、72、及び79日目に107PFUの合成YFV 17Dで9回処置した(図5A~B)。移植腫瘍を、50μlの合成YFV 17Dを直接注入することによって処置した。腫瘍の高さ、幅、及び奥行をカリパスを用いて毎日測定し、下記の式を用いて腫瘍体積(mm3)を計算した。
DBA/2マウスの移植同系CCL-53.1黒色腫細胞の低継代及び高継代合成YFV 17Dによる処置
4~10週齢の雌DBA/2マウスをTaconic Biosciencesから入手し、-3日目に予備抗体価のために出血させた。0日目に、第3群及び第5群のマウスに模擬ワクチン接種した(表2を参照)。8頭のマウスは、以前の実験からの既知の腫瘍サイズの標準偏差を考慮した最小試料サイズの計算に基づいている(GraphPad StatMate)。21日目及び35日目に、ワクチン接種したマウスから採血し、プラーク減少中和50%(PRNT50)アッセイを用いてYFV 17Dに対する中和抗体について試験した。21日目に、ワクチン接種したマウスを、0日目と同じ用量の同じウイルスでブーストした。マウスに、皮下注射によって100μlのDMEMの体積中1×105のCCL-53.1細胞を移植した。全てのマウスに対し、51、53、56、58、60、63、65、72、及び79日目に、50μlの体積を用いて表2のように処置した。第1、2、4、及び5群のマウスは、88日目及び93日目にさらに2回処置した。
YFV 17Dを用いた腫瘍溶解療法の成功は、攻撃後のEMT-6腫瘍のさらなる成長を防止する
YFV 17Dで処置し腫瘍が消滅したBALB/Cマウス(n=3)を、104のEMT6 TNBC細胞の2回目移植によって攻撃した。マウスに対し、一次接種部位の腹部脂肪パッドから離れた二次部位の右脇腹に皮下注射することによって攻撃した。対照のナイーブマウス(n=8)にも同時に104のEMT6 TNBC細胞を移植した。移植後、両群の腫瘍を毎日測定した。腫瘍サイズ(mm3)は、対照マウスで移植後4~14日目に有意に大きいものとなった。YFV 17D群では、5日目に1頭のマウスに小さな腫瘍が出現したものの、9日目に消失した。対照群では、3日目に半数のマウスに腫瘍が出現し、5~14日目には全てのマウスに腫瘍が出現した。
Claims (32)
- 悪性腫瘍を処置する、または腫瘍サイズを縮小する方法であって、
弱毒化黄熱ウイルス(YFV)を、それを必要とする対象に投与する工程
を含む、前記方法。 - 悪性腫瘍を処置する方法であって、
弱毒化YFVのプライム用量を、それを必要とする対象に投与する工程と、
弱毒化YFVの1回以上のブースト用量を、それを必要とする前記対象に投与する工程と
を含む、前記方法。 - 腫瘍サイズを縮小する方法であって、
弱毒化YFVのプライム用量を、それを必要とする対象に投与する工程と、
弱毒化YFVの1回以上のブースト用量を、それを必要とする前記対象に投与する工程と
を含む、前記方法。 - 前記弱毒化YFVがYFV株17Dワクチン(YFV 17D)である、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記弱毒化YFVが合成YFV株17D(YFV 17D)である、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記弱毒化YFVが、YFV 17D-204、YFV 17DD、YFV 17D-213、コドン脱最適化YFV、コドン対脱最適化YFV、またはCGもしくはTA(もしくはUA)ジヌクレオチド含有量を増加させることによって脱最適化されたYFVである、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記プライム用量が、皮下、筋肉内、皮内、鼻腔内、または静脈内に投与される、請求項2または3に記載の方法。
- 前記1回以上のブースト用量が、腫瘍内または静脈内に投与される、請求項2または3に記載の方法。
- 前記1回以上のブースト用量の1回目が、1回のプライム用量から約2週間後に投与されるか、またはプライム用量が2回以上の場合に最後のプライム用量から約2週間後に投与される、請求項2または3に記載の方法。
- 前記対象ががんを有する、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記プライム用量が、前記対象ががんを有しないときに投与される、請求項3に記載の方法。
- 前記対象が、より高いがん発症リスクを有する、請求項11に記載の方法。
- 前記1回以上のブースト用量が、前記対象ががんを有しないときに、前記プライム用量後1、約2、約3、約4、約5、約6、約7、約8、約9、または約10年毎に投与される、請求項11に記載の方法。
- 前記対象が後にがんと診断され、前記対象ががんと診断された後に前記1回以上のブースト用量が投与される、請求項11に記載の方法。
- PD-1阻害剤またはPD-L1阻害剤を投与する工程をさらに含む、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記PD-1阻害剤が抗PD1抗体である、請求項15に記載の方法。
- 前記抗PD1抗体が、ペムブロリズマブ、ニボルマブ、ピディリズマブ、AMP-224、AMP-514、スパルタリズマブ、セミプリマブ、AK105、BCD-100、BI 754091、JS001、LZM009、MGA012、Sym021、TSR-042、MGD013、AK104、XmAb20717、チスレリズマブ、及びこれらの組合せからなる群より選択される、請求項16に記載の方法。
- 前記PD-1阻害剤が、PF-06801591、抗PD1抗体を発現する多能性キラーTリンパ球(PIK-PD-1)、自家抗EGFRvIII 4SCAR-IgT細胞、及びこれらの組合せからなる群より選択される、請求項15に記載の方法。
- 前記PD-L1阻害剤が抗PD-L1抗体である、請求項15に記載の方法。
- 前記抗PD-L1抗体が、BGB-A333、CK-301、FAZ053、KN035、MDX-1105、MSB2311、SHR-1316、アテゾリズマブ、アベルマブ、デュルバルマブ、BMS-936559、CK-301、及びこれらの組合せからなる群より選択される、請求項19に記載の方法。
- 前記PD-L1阻害剤がM7824である、請求項15に記載の方法。
- 前記悪性腫瘍を処置することによって、前記悪性腫瘍の再発の可能性が低下する、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記悪性腫瘍を処置することによって、前記悪性腫瘍とは異なる第2のがんを有する可能性が低下する、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象が、前記悪性腫瘍とは異なる第2のがんを発症した場合に、前記悪性腫瘍の前記処置が、結果的に前記第2のがんの成長を遅らせる、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記悪性腫瘍の寛解後、前記対象が前記悪性腫瘍とは異なる第2のがんを発症した場合に、前記悪性腫瘍の前記処置が、結果的に前記第2のがんの成長を遅らせる、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記悪性腫瘍を処置することによって、前記腫瘍における炎症性免疫応答が刺激される、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記悪性腫瘍を処置することによって、前記腫瘍に炎症促進性細胞が動員される、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記悪性腫瘍を処置することによって、抗腫瘍免疫応答が刺激される、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記悪性腫瘍が固形腫瘍である、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記悪性腫瘍が、神経膠腫、神経芽腫、多形性膠芽腫、腺癌、髄芽腫、乳癌、前立腺癌、結腸直腸癌、肝細胞癌、膀胱癌、前立腺癌、肺癌、気管支癌、類表皮癌、及び黒色腫からなる群より選択される、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記弱毒化YFVが、腫瘍内、静脈内、脳内、筋肉内、脊髄内、または髄腔内に投与される、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記弱毒化YFVの投与が、前記腫瘍細胞における細胞溶解を引き起こす、請求項31に記載の方法。
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