JP2022525925A - A2/ny-eso-1特異的t細胞受容体およびその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
a)対象または哺乳動物のT細胞を分離すること;
b)本明細書に記載のポリヌクレオチドまたは本明細書に記載のベクターを用いてex vivoで前記T細胞を遺伝子改変すること;
c)任意選択で、ステップb)の前、後、または最中に、前記T細胞を拡大および/または活性化すること;および
d)遺伝子改変されたT細胞を対象または哺乳動物に導入すること;
を含む。
別段の定義がない限り、本明細書で使用されるすべての技術用語および科学用語は、本発明が属する分野の当業者によって一般に理解されるのと同じ意味を有する。
一態様では、本発明は、改変T細胞受容体(TCR)またはその機能的断片を提供し、改変TCRは、非置換野生型(WT)TCRのβ鎖のCDR2と比較して、改変TCRのβ鎖の相補性決定領域(CDR)2内に単一アミノ酸置換を含む。
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SLLMWITQC(配列番号8)
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ATGGCCCCGCGGCTGCTGTGTTGTGCCGCCCTGAGCCTGCTGTGGGCCGGACCTGTGAACGCCGGCGTGACCCAGACCCCCAAGTTCCAGGTGCTGAAAACCGGCCAGAGCATGACCCTGCAGTGCGCCCAGGACATGAACCACGAGTACATGAGCTGGTACAGGCAGGACCCCGGCATGGGCCTGCGGCTGATCCACTACAGCGTGGGAGCCGGCTTCACCGACCAGGGCGAGGTGCCCAACGGCTACAACGTGAGCAGAAGCACCACCGAGGACTTCCCCCTGAGGCTGCTGTCTGCCGCCCCTAGCCAGACCAGCGTGTACTTCTGCGCCAGCAGCTATGTGGGAGCCGCCGGAGAGCTGTTCTTCGGCGAGGGCAGCCGGCTGACCGTGCTGGAAGATCTGAACAAAGTGTTCCCCCCCGAAGTGGCCGTGTTCGAGCCCAGCGAGGCCGAGATCAGCCACACCCAGAAGGCCACCCTGGTGTGTCTGGCCACCGGCTTCTTCCCCGACCACGTGGAGCTGTCCTGGTGGGTGAACGGCAAGGAAGTGCACAGCGGCGTGTCCACCGACCCCCAGCCCCTGAAGGAGCAGCCCGCCCTGAACGATAGCAGATACTGCCTGAGCAGCCGGCTGAGAGTGAGCGCCACCTTCTGGCAGAACCCCCGGAACCACTTCAGATGCCAGGTGCAGTTCTACGGCCTGAGCGAGAACGACGAGTGGACCCAGGATAGAGCCAAGCCCGTGACCCAGATCGTGTCCGCCGAGGCCTGGGGCAGAGCCGACTGCGGCTTCACCAGCGTGTCCTACCAGCAGGGCGTGCTGAGCGCCACAATCCTGTACGAGATCCTGCTGGGCAAGGCCACACTGTACGCCGTGCTGGTGTCCGCCCTGGTGCTGATGGCTATGGTGAAGCGGAAGGACAGCAGGGGCTGA(配列番号12)
ATGGCCCCGCGGCTGCTGTGTTGTGCCGCCCTGAGCCTGCTGTGGGCCGGACCTGTGAACGCCGGCGTGACCCAGACCCCCAAGTTCCAGGTGCTGAAAACCGGCCAGAGCATGACCCTGCAGTGCGCCCAGGACATGAACCACGAGTACATGAGCTGGTACAGGCAGGACCCCGGCATGGGCCTGCGGCTGATCCACTACAGCGTGGGAGCCGGCTGGACCGACCAGGGCGAGGTGCCCAACGGCTACAACGTGAGCAGAAGCACCACCGAGGACTTCCCCCTGAGGCTGCTGTCTGCCGCCCCTAGCCAGACCAGCGTGTACTTCTGCGCCAGCAGCTATGTGGGAGCCGCCGGAGAGCTGTTCTTCGGCGAGGGCAGCCGGCTGACCGTGCTGGAAGATCTGAACAAAGTGTTCCCCCCCGAAGTGGCCGTGTTCGAGCCCAGCGAGGCCGAGATCAGCCACACCCAGAAGGCCACCCTGGTGTGTCTGGCCACCGGCTTCTTCCCCGACCACGTGGAGCTGTCCTGGTGGGTGAACGGCAAGGAAGTGCACAGCGGCGTGTCCACCGACCCCCAGCCCCTGAAGGAGCAGCCCGCCCTGAACGATAGCAGATACTGCCTGAGCAGCCGGCTGAGAGTGAGCGCCACCTTCTGGCAGAACCCCCGGAACCACTTCAGATGCCAGGTGCAGTTCTACGGCCTGAGCGAGAACGACGAGTGGACCCAGGATAGAGCCAAGCCCGTGACCCAGATCGTGTCCGCCGAGGCCTGGGGCAGAGCCGACTGCGGCTTCACCAGCGTGTCCTACCAGCAGGGCGTGCTGAGCGCCACAATCCTGTACGAGATCCTGCTGGGCAAGGCCACACTGTACGCCGTGCTGGTGTCCGCCCTGGTGCTGATGGCTATGGTGAAGCGGAAGGACAGCAGGGGCTGA(配列番号13)
ATGGCCCCGCGGCTGCTGTGTTGTGCCGCCCTGAGCCTGCTGTGGGCCGGACCTGTGAACGCCGGCGTGACCCAGACCCCCAAGTTCCAGGTGCTGAAAACCGGCCAGAGCATGACCCTGCAGTGCGCCCAGGACATGAACCACGAGTACATGAGCTGGTACAGGCAGGACCCCGGCATGGGCCTGCGGCTGATCCACTACAGCGTGGGAGCCGGCATCACCGAGCAGGGCGAGGTGCCCAACGGCTACAACGTGAGCAGAAGCACCACCGAGGACTTCCCCCTGAGGCTGCTGTCTGCCGCCCCTAGCCAGACCAGCGTGTACTTCTGCGCCAGCAGCTATGTGGGAGCCGCCGGAGAGCTGTTCTTCGGCGAGGGCAGCCGGCTGACCGTGCTGGAAGATCTGAACAAAGTGTTCCCCCCCGAAGTGGCCGTGTTCGAGCCCAGCGAGGCCGAGATCAGCCACACCCAGAAGGCCACCCTGGTGTGTCTGGCCACCGGCTTCTTCCCCGACCACGTGGAGCTGTCCTGGTGGGTGAACGGCAAGGAAGTGCACAGCGGCGTGTCCACCGACCCCCAGCCCCTGAAGGAGCAGCCCGCCCTGAACGATAGCAGATACTGCCTGAGCAGCCGGCTGAGAGTGAGCGCCACCTTCTGGCAGAACCCCCGGAACCACTTCAGATGCCAGGTGCAGTTCTACGGCCTGAGCGAGAACGACGAGTGGACCCAGGATAGAGCCAAGCCCGTGACCCAGATCGTGTCCGCCGAGGCCTGGGGCAGAGCCGACTGCGGCTTCACCAGCGTGTCCTACCAGCAGGGCGTGCTGAGCGCCACAATCCTGTACGAGATCCTGCTGGGCAAGGCCACACTGTACGCCGTGCTGGTGTCCGCCCTGGTGCTGATGGCTATGGTGAAGCGGAAGGACAGCAGGGGCTGA(配列番号14)
一態様では、本発明は、本明細書に記載の改変TCRを発現するリンパ球系細胞の遺伝子操作の方法を提供する。一実施形態では、リンパ球系細胞は、配列番号2のアミノ酸配列、あるいは配列番号2に対して少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、または少なくとも99%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む改変TCRを発現するように遺伝子操作される。一実施形態では、リンパ球系細胞は、配列番号3のアミノ酸配列、あるいは配列番号3に対して少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、または少なくとも99%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む改変TCRを発現するように遺伝子操作される。一実施形態では、リンパ球系細胞は、配列番号4のアミノ酸配列、あるいは配列番号4に対して少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、または少なくとも99%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む改変TCRを発現するように遺伝子操作される。一実施形態では、リンパ球系細胞は、配列番号5のアミノ酸配列、あるいは配列番号5に対して少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、または少なくとも99%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む改変TCRを発現するように遺伝子操作される。リンパ球系細胞は、PBMC、腫瘍流入領域リンパ節、または腫瘍浸潤物から得られる。特定の実施形態において、遺伝子操作されたリンパ球系細胞は、1つまたは複数の外因性分子を発現するようにさらに操作される。特定の実施形態において、遺伝子操作されたリンパ球系細胞は、1つまたは複数の細胞表面受容体を発現するようにさらに操作される。細胞表面受容体の例には、キメラ抗原受容体、およびがん抗原NY-ESO-1157-165エピトープ(配列番号8)に対してではないT細胞受容体が含まれるが、これらに限定されない。特定の実施形態において、遺伝子操作されたリンパ球系細胞は、1つまたは複数の可溶性タンパク質を発現するようにさらに操作される。可溶性タンパク質の例には、サイトカイン、ケモカイン、成長因子、可溶性受容体、リガンド、抗体、抗体フラグメント、および抗原結合ドメインが含まれるが、これらに限定されない。特定の実施形態において、遺伝子操作されたリンパ球系細胞は、1つまたは複数の追加の受容体および可溶性タンパク質を発現するようにさらに操作される。
MWLQNLLFLGIVVYSLSAPTRSPITVTRPWKHVEAIKEALNLLDDMPVTLNEEVEVVSNEFSFKKLTCVQTRLKIFEQGLRGNFTKLKGALNMTASYYQTYCPPTPETDCETQVTTYADFIDSLKTFLTDIPFECKKPGQK(配列番号15)
ATGTGGCTGCAGAATTTACTTTTCCTGGGCATTGTGGTCTACAGCCTCTCAGCACCCACCCGCTCACCCATCACTGTCACCCGGCCTTGGAAGCATGTAGAGGCCATCAAAGAAGCCCTGAACCTCCTGGATGACATGCCTGTCACATTGAATGAAGAGGTAGAAGTCGTCTCTAACGAGTTCTCCTTCAAGAAGCTAACATGTGTGCAGACCCGCCTGAAGATATTCGAGCAGGGTCTACGGGGCAATTTCACCAAACTCAAGGGCGCCTTGAACATGACAGCCAGCTACTACCAGACATACTGCCCCCCAACTCCGGAAACGGACTGTGAAACACAAGTTACCACCTATGCGGATTTCATAGACAGCCTTAAAACCTTTCTGACTGATATCCCCTTTGAATGCAAAAAACCAGGCCAAAAA(配列番号16)
MWLQNLLFLGIVVYSLS(配列番号17)
ATGTGGCTGCAGAATTTACTTTTCCTGGGCATTGTGGTCTACAGCCTCTCA(配列番号18)
APTRSPITVTRPWKHVEAIKEALNLLDDMPVTLNEEVEVVSNEFSFKKLTCVQTRLKIFEQGLRGNFTKLKGALNMTASYYQTYCPPTPETDCETQVTTYADFIDSLKTFLTDIPFECKKPGQK(配列番号19)
GCACCCACCCGCTCACCCATCACTGTCACCCGGCCTTGGAAGCATGTAGAGGCCATCAAAGAAGCCCTGAACCTCCTGGATGACATGCCTGTCACATTGAATGAAGAGGTAGAAGTCGTCTCTAACGAGTTCTCCTTCAAGAAGCTAACATGTGTGCAGACCCGCCTGAAGATATTCGAGCAGGGTCTACGGGGCAATTTCACCAAACTCAAGGGCGCCTTGAACATGACAGCCAGCTACTACCAGACATACTGCCCCCCAACTCCGGAAACGGACTGTGAAACACAAGTTACCACCTATGCGGATTTCATAGACAGCCTTAAAACCTTTCTGACTGATATCCCCTTTGAATGCAAAAAACCAGGCCAAAAA(配列番号20)
MWLQSLLLLGTVACSISAPARSPSPSTQPWEHVNAIQEARRLLNLSRDTAAEMNETVEVISEMFDLQEPTCLQTRLELYKQGLRGSLTKLKGPLTMMASHYKQHCPPTPETSCATQTITFESFKENLKDFLLVIPFDCWEPVQE(配列番号21)
ATGTGGCTGCAATCTCTGCTGCTGCTGGGCACAGTGGCCTGTTCTATTAGCGCCCCTGCCAGATCTCCATCTCCTAGCACACAGCCTTGGGAGCACGTGAACGCCATCCAAGAAGCCAGACGGCTGCTGAACCTGAGCAGAGATACAGCCGCCGAGATGAACGAGACAGTGGAAGTGATCAGCGAGATGTTCGACCTGCAAGAGCCTACCTGCCTGCAGACCAGACTGGAACTGTACAAGCAGGGCCTGAGAGGCAGCCTGACCAAGCTGAAAGGCCCTCTGACAATGATGGCCAGCCACTACAAGCAGCACTGCCCTCCAACACCTGAGACAAGCTGTGCCACACAGACCATCACCTTCGAGAGCTTCAAAGAGAACCTGAAGGACTTCCTGCTGGTCATCCCCTTCGACTGCTGGGAGCCCGTGCAAGAA(配列番号22)
MWLQSLLLLGTVACSIS(配列番号23)
ATGTGGCTGCAATCTCTGCTGCTGCTGGGCACAGTGGCCTGTTCTATTAGC(配列番号24)
APARSPSPSTQPWEHVNAIQEARRLLNLSRDTAAEMNETVEVISEMFDLQEPTCLQTRLELYKQGLRGSLTKLKGPLTMMASHYKQHCPPTPETSCATQTITFESFKENLKDFLLVIPFDCWEPVQE(配列番号25)
(配列番号25)
GCCCCTGCCAGATCTCCATCTCCTAGCACACAGCCTTGGGAGCACGTGAACGCCATCCAAGAAGCCAGACGGCTGCTGAACCTGAGCAGAGATACAGCCGCCGAGATGAACGAGACAGTGGAAGTGATCAGCGAGATGTTCGACCTGCAAGAGCCTACCTGCCTGCAGACCAGACTGGAACTGTACAAGCAGGGCCTGAGAGGCAGCCTGACCAAGCTGAAAGGCCCTCTGACAATGATGGCCAGCCACTACAAGCAGCACTGCCCTCCAACACCTGAGACAAGCTGTGCCACACAGACCATCACCTTCGAGAGCTTCAAAGAGAACCTGAAGGACTTCCTGCTGGTCATCCCCTTCGACTGCTGGGAGCCCGTGCAAGAA(配列番号26)
MWLQSLLLLGTVACSISAPARSPSPSTQPWEHVNAIQEARRLLNLSRDTAAEMNETVEVISEMFDLQEPTCLQTRLELYKQGLRGSLTKLKGPLTMMASHYKQHCPPTPETSCATQIITFESFKENLKDFLLVIPFDCWEPVQE(配列番号34)
ATGTGGCTGCAATCTCTGCTGCTGCTGGGCACAGTGGCCTGTTCTATTAGCGCCCCTGCCAGATCTCCATCTCCTAGCACACAGCCTTGGGAGCACGTGAACGCCATCCAAGAAGCCAGACGGCTGCTGAACCTGAGCAGAGATACAGCCGCCGAGATGAACGAGACAGTGGAAGTGATCAGCGAGATGTTCGACCTGCAAGAGCCTACCTGCCTGCAGACCAGACTGGAACTGTACAAGCAGGGCCTGAGAGGCAGCCTGACCAAGCTGAAAGGCCCTCTGACAATGATGGCCAGCCACTACAAGCAGCACTGCCCTCCAACACCTGAGACAAGCTGTGCCACACAGATCATCACCTTCGAGAGCTTCAAAGAGAACCTGAAGGACTTCCTGCTGGTCATCCCCTTCGACTGCTGGGAGCCCGTGCAAGAA(配列番号35)
APARSPSPSTQPWEHVNAIQEARRLLNLSRDTAAEMNETVEVISEMFDLQEPTCLQTRLELYKQGLRGSLTKLKGPLTMMASHYKQHCPPTPETSCATQIITFESFKENLKDFLLVIPFDCWEPVQE(配列番号36)
GCCCCTGCCAGATCTCCATCTCCTAGCACACAGCCTTGGGAGCACGTGAACGCCATCCAAGAAGCCAGACGGCTGCTGAACCTGAGCAGAGATACAGCCGCCGAGATGAACGAGACAGTGGAAGTGATCAGCGAGATGTTCGACCTGCAAGAGCCTACCTGCCTGCAGACCAGACTGGAACTGTACAAGCAGGGCCTGAGAGGCAGCCTGACCAAGCTGAAAGGCCCTCTGACAATGATGGCCAGCCACTACAAGCAGCACTGCCCTCCAACACCTGAGACAAGCTGTGCCACACAGATCATCACCTTCGAGAGCTTCAAAGAGAACCTGAAGGACTTCCTGCTGGTCATCCCCTTCGACTGCTGGGAGCCCGTGCAAGAA(配列番号37)
MKEHGGTFSSTGISGGSGDSAMDSLQPLQPNYMPVCLFAEESYQKLAMETLEELDWCLDQLETIQTYRSVSEMASNKFKRMLNRELTHLSEMSRSGNQVSEYISNTFLDKQNDVEIPSPTQKDREKKKKQQLMTQISGVKKLMHSSSLNNTSISRFGVNTENEDHLAKELEDLNKWGLNIFNVAGYSHNRPLTCIMYAIFQERDLLKTFRISSDTFITYMMTLEDHYHSDVAYHNSLHAADVAQSTHVLLSTPALDAVFTDLEILAAIFAAAIHDVDHPGVSNQFLINTNSELALMYNDESVLENHHLAVGFKLLQEEHCDIFMNLTKKQRQTLRKMVIDMVLATDMSKHMSLLADLKTMVETKKVTSSGVLLLDNYTDRIQVLRNMVHCADLSNPTKSLELYRQWTDRIMEEFFQQGDKERERGMEISPMCDKHTASVEKSQVGFIDYIVHPLWETWADLVQPDAQDILDTLEDNRNWYQSMIPQSPSPPLDEQNRDCQGLMEKFQFELTLDEEDSEGPEKEGEGHSYFSSTKTLCVIDPENRDSLGETDIDIATEDKSPVDT(配列番号27)
ATGAAGGAACACGGCGGCACCTTTAGCAGCACAGGCATCTCTGGTGGCAGCGGCGATAGCGCCATGGATTCTCTGCAACCCCTGCAGCCTAACTACATGCCCGTGTGCCTGTTCGCCGAGGAAAGCTACCAGAAACTGGCCATGGAAACCCTGGAAGAACTGGACTGGTGCCTGGACCAGCTGGAAACCATCCAGACCTACAGATCCGTGTCCGAGATGGCCAGCAACAAGTTCAAGCGGATGCTGAACAGAGAGCTGACCCACCTGAGCGAGATGAGCCGCTCTGGAAATCAGGTGTCCGAGTATATCAGCAACACCTTCCTGGACAAGCAGAACGACGTGGAAATCCCATCTCCTACACAGAAGGACCGCGAGAAGAAGAAAAAGCAGCAGCTGATGACCCAGATCAGCGGCGTGAAGAAACTGATGCACAGCAGCAGCCTGAACAACACCAGCATCAGCAGATTCGGCGTGAACACCGAGAACGAGGACCACCTGGCCAAAGAGCTGGAAGATCTGAACAAATGGGGCCTGAACATCTTCAACGTGGCCGGCTACAGCCACAACAGACCCCTGACCTGCATTATGTACGCCATCTTCCAAGAGCGGGACCTGCTGAAAACCTTCCGGATCAGCAGCGACACCTTCATCACCTACATGATGACCCTTGAGGACCACTACCACAGCGACGTGGCCTACCACAATAGCCTGCATGCCGCTGATGTGGCCCAGAGCACACACGTGCTGCTGTCTACACCAGCTCTGGATGCCGTGTTCACCGACCTGGAAATTCTGGCCGCCATCTTTGCCGCCGCTATCCACGATGTTGATCACCCCGGCGTGTCCAACCAGTTCCTGATCAATACCAACAGCGAGCTGGCCCTGATGTACAACGACGAGAGCGTGCTGGAAAACCACCATCTGGCCGTGGGCTTCAAGCTGCTGCAAGAGGAACACTGCGACATCTTCATGAACCTGACCAAGAAGCAGCGGCAGACCCTGCGGAAGATGGTCATCGATATGGTGCTGGCCACCGACATGAGCAAGCACATGTCTCTGCTGGCCGACCTGAAAACCATGGTCGAGACAAAGAAAGTGACCAGCAGCGGCGTTCTGCTGCTGGACAACTACACCGACAGAATCCAGGTGCTGAGAAACATGGTGCACTGCGCCGATCTGAGCAACCCCACCAAGAGCCTGGAACTGTACAGACAGTGGACCGACCGGATCATGGAAGAGTTCTTTCAGCAAGGCGACAAAGAACGCGAGCGCGGCATGGAAATCTCCCCAATGTGCGATAAGCACACCGCCAGCGTGGAAAAGTCCCAAGTGGGCTTTATCGACTACATCGTGCACCCTCTGTGGGAGACATGGGCCGATCTGGTTCAGCCTGACGCTCAGGACATCCTGGACACACTGGAAGATAACCGGAACTGGTATCAGAGCATGATCCCTCAGAGCCCCTCTCCACCTCTGGATGAGCAGAACAGAGATTGCCAGGGCCTGATGGAAAAGTTCCAGTTCGAGCTGACACTGGACGAAGAGGACTCTGAGGGCCCCGAGAAAGAAGGCGAGGGCCACAGCTACTTCAGCAGCACAAAGACCCTGTGCGTGATCGACCCCGAGAACAGGGATAGCCTGGGCGAGACAGACATCGACATTGCCACCGAGGACAAGAGCCCCGTGGATACA(配列番号28)
MKEQGGTVSGAASSRGGGDSAMASLQPLQPNYLSVCLFPEESYQKLAMETLEELDWCLDQLETIQTYRSVSEMASNKFKRMLNRELTHLSEMSRSGNQVSEYISNTFLDKQNDVEIPSPTQKDREKKKKQQLMTQISGVKKLMHSSSLNNTSISRFGVNTENEDHLAKELEDLNKWGLNIFNVAGYSHNRPLTCIMYAIFQERDLLKTFKISSDTFVTYMMTLEDHYHSDVAYHNSLHAADVAQSTHVLLSTPALDAVFTDLEILAAIFAAAIHDVDHPGVSNQFLINTNSELALMYNDESVLENHHLAVGFKLLQEEHCDIFQNLTKKQRQTLRKMVIDMVLATDMSKHMSLLADLKTMVETKKVTSSGVLLLDNYTDRIQVLRNMVHCADLSNPTKSLELYRQWTDRIMEEFFQQGDKERERGMEISPMCDKHTASVEKSQVGFIDYIVHPLWETWADLVQPDAQDILDTLEDNRNWYQSMIPQSPSPPLDERSRDCQGLMEKFQFELTLEEEDSEGPEKEGEGHSYFSSTKTLCVIDPENRDSLEETDIDIATEDKSPIDT(配列番号29)
ATGAAGGAACAGGGCGGCACCGTGTCTGGCGCCGCTTCTAGTAGAGGCGGAGGCGATAGCGCCATGGCCAGTCTGCAGCCACTGCAGCCCAACTACCTGAGCGTGTGCCTGTTCCCCGAGGAAAGCTACCAGAAACTGGCTATGGAAACCCTGGAAGAACTGGACTGGTGCCTGGACCAGCTGGAAACCATCCAGACCTACAGATCCGTGTCCGAGATGGCCAGCAACAAGTTCAAGAGGATGCTGAACAGAGAGCTGACCCACCTGAGCGAGATGAGCAGATCCGGCAACCAGGTGTCCGAGTATATCAGCAACACCTTCCTGGACAAGCAGAACGACGTGGAAATCCCCAGCCCCACCCAGAAGGACCGCGAGAAGAAGAAAAAGCAGCAGCTGATGACCCAGATCAGCGGCGTGAAGAAACTGATGCACAGCAGCAGCCTGAACAACACCAGCATCAGCAGATTCGGCGTGAACACCGAGAACGAGGACCACCTGGCCAAAGAGCTGGAAGATCTGAACAAATGGGGCCTGAACATCTTCAACGTGGCCGGCTACAGCCACAACAGACCCCTGACCTGCATTATGTACGCCATCTTCCAGGAACGGGACCTGCTGAAAACCTTCAAGATCAGCAGCGACACCTTCGTGACCTACATGATGACACTGGAAGATCACTACCACAGCGACGTGGCCTACCACAACTCTCTGCACGCCGCCGATGTGGCCCAGAGCACTCATGTGCTGCTGAGCACCCCTGCCCTGGACGCCGTGTTCACCGATCTGGAAATCCTGGCCGCTATCTTCGCCGCTGCCATCCACGATGTGGACCACCCTGGCGTGTCCAACCAGTTCCTGATCAACACAAACAGCGAGCTGGCCCTGATGTACAACGACGAGAGCGTGCTGGAAAACCACCATCTGGCCGTGGGCTTCAAGCTGCTGCAGGAAGAACACTGCGACATCTTTCAGAACCTGACCAAGAAGCAGAGGCAGACCCTGAGAAAGATGGTCATCGACATGGTGCTGGCCACCGACATGAGCAAGCACATGTCCCTGCTGGCCGACCTGAAAACCATGGTGGAAACAAAGAAAGTGACCAGCTCCGGCGTGCTGCTGCTGGACAACTACACCGACAGAATCCAGGTGCTGAGGAACATGGTGCACTGCGCCGACCTGTCCAACCCCACCAAGAGCCTGGAACTGTACAGACAGTGGACCGACAGGATCATGGAAGAGTTCTTTCAGCAAGGCGACAAAGAACGCGAGAGGGGCATGGAAATCAGCCCCATGTGCGACAAGCACACCGCCAGCGTGGAAAAGTCCCAAGTGGGCTTTATCGACTACATCGTGCACCCCCTGTGGGAGACATGGGCCGATCTGGTGCAGCCTGACGCCCAGGACATCCTGGACACTCTGGAAGATAACCGGAACTGGTATCAGAGCATGATCCCCCAGAGCCCCAGCCCTCCACTGGACGAGAGATCCAGAGACTGCCAGGGCCTGATGGAAAAGTTCCAGTTCGAGCTGACTCTGGAAGAAGAGGACAGCGAGGGCCCCGAGAAAGAAGGCGAGGGCCACTCTTACTTCAGCAGCACCAAGACACTGTGCGTGATCGACCCCGAGAACAGGGACAGCCTCGAAGAGACTGACATCGACATTGCCACCGAGGACAAGAGCCCCATCGATACA(配列番号30)
強力な抗腫瘍T細胞免疫の欠如を克服するための1つのアプローチは、上記のT細胞受容体または抗体由来受容体のいずれかから作製される親和性増強受容体の使用による、腫瘍を標的とするT細胞のex vivo遺伝子改変である。T細胞のex vivo操作を必要としない補完的なアプローチは、腫瘍認識とT細胞誘導(T cell engaging)ドメインを組み合わせてT細胞を標的腫瘍に向けなおす(redirect)融合タンパク質の使用を含む。そのような融合タンパク質の特異性および抗腫瘍活性は、例えば、Cancer Immunol Immunother (2013) 62:773-785, Nat Med. 2012 Jun;18(6):980-7、および米国特許第7,763,718号に記載され、これらのそれぞれは、すべての目的のためにその全体が参照により本明細書に組み込まれる。
一態様では、本明細書で提供されるのは、対象におけるがんを治療する方法である。この方法は、そのようながんを患っている対象に、有効量の本発明の改変TCRを提示するリンパ球系細胞、またはそのような細胞を含む医薬組成物を投与することを含む。本明細書に記載の方法によって治療可能ながんの非限定的な例には、例えば、神経芽細胞腫、骨髄腫、転移性メラノーマ(黒色腫)、滑膜肉腫、膀胱がん、食道がん、肝細胞がん、頭頸部がん、非小細胞肺がん、卵巣がん、前立腺がん、および乳がんが含まれる。
一態様では、本明細書で提供されるのは、本明細書に記載の改変TCRを有するリンパ球系細胞、および薬学的に許容される担体を含む医薬組成物である。
材料および方法
TCRのアミノ酸置換を、構造ベースのコンピューター支援タンパク質工学によって設計した。野生型TCR-p-MHC複合体(PDB ID 2bnr)の実験構造から始めて、結合自由エネルギーへの各TCRおよびpMHC残基の寄与を、Molecular Mechanics-Generalized Born Surface Area(MM-GBSA)を使用して推定した。これらの結果を使用して、pMHCに対するTCRの親和性を高める可能性のある配列修飾を決定した。後者をコンピューター上でTCR構造に導入し、結果として生じる結合自由エネルギーの変化を、MM-GBSAを使用して再度推定した。in silico(インシリコ)で結合自由エネルギーが有利に増加すると予測された配列修飾が、実験的検証のために保持された。可溶性TCRは、哺乳動物細胞培養システムと細菌封入体からの両方で生成された。可溶性pMHCに対する直接滴定ELISAを使用して、野生型TCRと比較した結合強度を比較した。目的のTCRを、α鎖およびβ鎖の細菌封入体のリフォールディングから作製し、親和性および速度論(kinetics)を測定するために表面プラズモン共鳴によって特徴付けした。
TCR BC1のα鎖およびβ鎖を、CMVプロモーターの制御下で発現ベクターpHYK8に別々にクローン化した。ヘテロ二量体鎖のペアリングを、Changらの戦略に従って酸性-塩基性ジッパーで促進した(Chang, H. C., et al., Proc Natl Acad Sci U S A, 1994. 91, 11408-11412)。TCRβ鎖はCys242の位置の後ろで切り捨て、柔軟なリンカー領域、トロンビン部位、酸性ジッパー、およびHISタグに置き換え、α鎖はCys209の後ろで切り捨て、リンカー領域、トロンビン部位、および塩基性ジッパーで置き換えた。可溶性TCRは、線形25kDaポリエチレンイミンを用いてプラスミドをHEK-293細胞にコトランスフェクションすることにより製造した。トランスフェクトされた細胞を、(酸性化を最小限に抑えるため)4mMのバルプロ酸を添加したPro293 CDM培地(Lonza)で最大7日間懸濁培養した。培養上清を遠心分離によって収集し、製造元の提案に従ってNi-NTAアガロース(Qiagen)を使用してTCRを精製した。
BL21(DE3)pLys細菌細胞を使用して、封入体としてTCRα鎖およびβ鎖(pGMT7にクローニング)を作製し、以前記載したように透析によって可溶化およびリフォールディングした(Boulter, J. M., et al., Protein Eng 2003. 16, 707-711)。次に、TCRを濃縮およびろ過した後、Ni2+固定化金属キレートセファロース(GE Healthcare)およびイミダゾール溶出を用いて高速タンパク質液体クロマトグラフィーHISタグ精製を行った。SPR分析の前に、サンプルを10kDa MWCOスピンフィルター(Millipore)で濃縮し、S200カラムを用いてHBS-EPバッファー(10mM HEPES、pH7.4、0.15M NaCl、3mM EDTA、0.005%(v/v)P20界面活性剤)中にゲルろ過し、凝集体を除去した。ビオチン化A2/NY-ESO157-165は、以前に説明されたように調製した(Altman, J. D., et al., Science, 1996. 274, 94-96)。
ビオチン化pMHC(A2/NY-ESO157-165複合体)を、トリス緩衝生理食塩水(TBS、pH7.4)中の2%BSAでブロッキングしたSAコーティングプレート(96ウェル、高結合プレート、Corning Life Sciences)で捕捉した。各ステップ間にTBS(0.1% Tween)でプレートを完全に洗浄した。TBS(1%BSA、0.1% Tween)中の可溶性TCRと室温で1.5時間インキュベートした後、SAの遊離部位をビオチンでブロックした。結合したTCRを、TBS(1%BSA、0.1% Tween)で1/1500に希釈した抗β鎖TCR mAb(TCR 1151、Thermo Scientific、ロックフォード、イリノイ州、米国)、続いてTBS(0.1% Tween)で1/1500に希釈したHRP結合ヤギ抗抗マウスIgG-Ab(Thermo Scientific)、およびH2O2を含有するクエン酸-リン酸緩衝液中の2,2’-アジノ-ビス(3-エチルベンズチアゾリン-6-スルホン酸)でのHRP検出を用いて検出した。30分後にOD405-490でプレートの読み取りを行った。各TCRについてELISAを少なくとも3回繰り返した。
SPRは、BIAcore 3000およびSAコーティングされたCM5センサーチップ(BIACore、GE Healthcare)上において25℃で実施した。フローセルに、均一に分布させるために10μl/分の速度で200反応単位(response unit)のビオチン化pMHCをロードした。ストレプトアビジン(SA)の遊離部位をビオチンでブロックし、参照セルをサンプル溶液の注入時のバルク屈折率の変化に対する対照として使用した。速度論的分析のために、ロードされたチップ上にTCRの6~8段階希釈液を50~100μl/分で注入した。データは、2重または3重で行われた少なくとも2つの独立した実験のうちの1つの実験からの代表であり、最善のChi2値を与える。各TCRのkon値およびkOff値は、1:1のラングミュア結合を想定して計算し、データはBIAevaluation 4.1およびグローバルフィットアルゴリズムを使用して解析した。KDはkOff/k0nによって計算した。
上記のように、合理的設計(MM-GBSA計算)(Zoete, V. et al., JMR 2010. 23, 142-152; Zoete, V., and Michielin, O. Proteins 2007. 67, 1026-1047; Zoete, V., et al., Proteins 2005. 61, 79-93)により、初代ヒトT細胞と比較して、増大する親和性および高められた機能を有するHLA-A2-NY-ESO157-165 TCRのパネルを開発した(Zoete, V. et al., JMR 2010. 23, 142-152; Schmid, D. A., et al., Journal of immunology 2010. 184, 4936-4946; Irving, M., et al., JBC 2012. 287, 23068-23078)。
材料および方法
細胞株培養
293TおよびJurkat細胞株はATCCから購入した。すべての細胞株を、10%熱不活化FBS、2mmol/lのL-グルタミン、100μg/mlのペニシリン、および100U/mlのストレプトマイシンを添加したRPMI-1640で培養した。293T細胞株は、レンチウイルスのパッケージングおよび調製に使用した。
TCRa23およびTCRb13.1の両方のORFをレンチウイルスベクターpRRLに組み込み、その際に3’の長い末端反復のU3領域のほとんどが欠失され、自己不活性化3’長末端反復(self-inactivating 3′ long terminal repeat)(SIN)が生じた。TCRa鎖とTCRb鎖は、ピコルナウイルス由来の2A配列によって分離された。
HLA-A2.1+/NY-ESO+メラノーマ細胞株Mw275およびA375、ならびにNY-ESO陰性細胞株NA8は、10%FBSおよび抗生物質(100IE/mlのペニシリンおよび100μg/mlのストレプトマイシン)を添加したIMDMで培養した。Saos-2(骨肉腫)およびU266(B細胞)、両方ともHLA-A2.1/NY-ESO+、ならびにOVCAr3(卵巣)およびSKO#(卵巣)、両方ともNY-ESO陰性は、10%FBSおよび抗生物質を添加したRPMIで培養した。
初代ヒトT細胞は、健康ドナーに由来するバフィーコートの末梢血単核細胞(PBMC)から分離した。すべての血液サンプルは、ドナーのインフォームドコンセントを得て収集し、ヴォー州(スイス)の倫理承認を受けて遺伝子操作した。遠心分離の標準プロトコルを使用して、Lymphoprep(Axonlab)分離溶液を介して全PBMCを取得し、磁気ビーズ分離(easySEP、Stem Cell Technology)と組み合わせたネガティブセレクションキットを使用してCD4+およびCD8+T細胞を分離した。T細胞を完全培地(10%熱不活化ウシ胎児血清、100U/mlのペニシリン、100μg/mlの硫酸ストレプトマイシン(Invitrogen、Lifetechnologies)を添加した、Glutamaxを含むRPMI1640)で培養し、抗CD3および抗CD28モノクローナル抗体(mAB)コーティングビーズ(Lifetechnologies)を用いて、1:2のT細胞:ビーズの比で刺激した。活性化の12~24時間後、約5~10の感染多重度(MOI)で、レンチウイルス粒子でT細胞に形質導入した。ヒト組換えインターロイキン-2(h-IL2;Glaxo)を1日おきに添加して、刺激の5日後(+5日)までに50IU/mlの最終濃度を得た。この時点で、磁気ビーズを除去し、IL2をさらに添加しないで、h-IL15を10ng/mL(Miltenyi Biotec GmbH)で添加した。拡大のために0.5~1x106細胞/mlの細胞密度を維持した。導入されたTCRを、形質導入の5日後に蛍光マルチマー染色によって測定した。すべての機能アッセイの前に、休止状態の操作されたT細胞を、同一の導入遺伝子発現となるように調整した。
サイトカイン放出アッセイは、最終体積200μlのRPMI培地中、96ウェル丸底プレートにおいて、二重で、ウェルあたり5x104の標的細胞と5x104のT細胞を共培養することにより実施した。24時間後、共培養上清を回収し、製造元のプロトコル(BioLegend)に従って、ELISAキットを使用してIFN-γおよびIL-2の存在について調べた。報告値は、4人の健康ドナー(HD)に由来する形質導入されたT細胞の平均を表す。
サイトカイン産生に対するTCR結合パラメータの影響を評価するために、形質導入されていない、ならびに様々なTCRバリアントおよびWT BC1 TCRで形質導入されたCD4+およびCD8+細胞を、NY-ESO157-165ペプチドの連続10倍希釈液をロードしたT2細胞とインキュベートした。TCRを介した活性化に応答して産生されたIL-2について、分泌は、TCR I53F、I53W、D55E、DMb、および1G4LYを発現する操作されたCD4+細胞で最大に達した。TCR I53F、I53W、D55E、およびDMbを発現する操作されたCD4+細胞は、WT TCRと比較した場合に、IL2産生に関してより良好に機能するように思われ、それらの機能は1G4LY TCRと同様である(図4A)。操作されたTCRバリアントであるI53Eは、このアッセイでWT TCRと同様の機能を示した。同じ条件下で、非形質導入CD4+細胞によってIL-2は産生されなかった(図4A)。
NY-ESO TCR特異的CD8+T細胞の細胞傷害活性を、IncuCyteを使用して測定した。簡単に説明すると、1x104のT2標的細胞を、細胞傷害性赤色試薬(Essen Biosceince、Ann Arbor、Michigan、USA)の存在下で、ウェルあたり2.5/104のNY-ESOテトラマー陽性CD8+T細胞と共培養した。IncuCyte zoomソフトウェアを使用して、2時間ごとに画像を撮影した。
NOD SCIDγKOマウス(NSG)に皮下注射する直前に、3x106のMe275細胞を6/106のNY-ESO特異的T細胞と混合するWinnアッセイを実施した。T細胞は30%のCD4+T細胞と70%のCD8+T細胞で構成されていた。腫瘍サイズを週に2回測定した。腫瘍体積が1000mm3に達するとマウスを屠殺した。
NSGマウスに5x106のMe275細胞を注射した。腫瘍サイズが50~100mm3に達したら、10x106のNY-ESO特異的T細胞を腫瘍周囲または静脈内に2回注射した(10日目と13日目)。T細胞は30%のCD4+T細胞と70%のCD8+T細胞で構成されていた。腫瘍サイズを週に2回ノギスで測定した。腫瘍が1000mm3に達するとマウスを屠殺した。
材料および方法
マウス
NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ(NSG)マウスは、特定病原微生物排除(SOPF)条件下において施設内で飼育し、すべての動物実験は、ローザンヌ大学の動物施設で特定病原微生物排除(SPF)条件下において実施した。すべての実験は、ヴォー州の獣医当局によって承認され、スイス連邦法に従って実施した。
野生型親A375(HLA-A2+、NY-ESO-1+)、MelAvl3(HLA-A2+、NY-ESO-1-)およびNA8(HLA-A2+、NY-ESO-1-)メラノーマ、H1650(HLA-A2+、NY-ESO-1-)非小細胞肺がん、およびLN-18(HLA-A2+、NY-ESO-1+)膠芽腫細胞株は、ATCCにより購入した。Me275(HLA-A2+、NY-ESO-1+)メラノーマ細胞株はD.Speiser教授(ローザンヌ大学、Ludwig Institute for Cancer Researchのローザンヌ支部)から提供され、in vivoでその活性を追跡するためにルシフェラーゼを安定発現するように操作された。OVCAR5(HLA-A2+、NY-ESO-1-)およびA2008-A2(HLA-A2+、NY-ESO-1-)卵巣がん細胞株は、ペンシルベニア大学から入手され、全長NY-ESO-1がん/精巣ファミリー腫瘍抗原配列、ならびにそれぞれin vitroおよびin vivoでそれらの活性を追跡するためにmCherryおよびルシフェラーゼを安定発現するように操作された。すべてのメラノーマ細胞株は、10%FCSおよび1%ペニシリン/ストレプトマイシンを添加したIMDM+Glutamax(Thermo)で維持し、残りの細胞株は、10%FCSおよび1%ペニシリン/ストレプトマイシンを添加したRPMI(Thermo)で維持した。
マウスCSF2(GM-CSF)cDNA(Uniprot:P01587)の全配列はInvitrogenによって合成された。続いて、PCRおよび標準的な分子クローニング技術を使用して、Thy1.1-T2A(CD90.1)レポーター遺伝子カセットに続いて、配列をpMSGVレトロウイルスベクター(Hughes, Human Gene Therapy, 2005;16:457-472)にクローン化し、pMSGV-Thy1.1-T2A-mGM-CSFレトロウイルスプラスミドを作製した。pMSGV-Thy1.1-T2Aを対照ベクターとして使用した。
APC抗ヒトCD8、APC抗ヒトCD4、およびAPC抗マウスThy1.1(CD90.1)はBioLegendから購入した。NY-ESO-1 TCRテトラマーは、ローザンヌ大学のペプチドおよびテトラマー施設(Peptide and Tetramer facility)によって施設内で製造された。FITC抗ヒトMCSPはMiltenyi Biotecで購入した。APC抗マウスCD45、APCCy7抗マウスF4/80、およびPECy7抗マウスCD11bは、フローサイトメトリー施設、FBM、LICR/UNILにより提供されおよび/または施設内で製造された。データ取得はLSRIIフローサイトメーター(BD Biosciences)で実施し、FlowJo(TreeStar)でデータを解析した。
レトロウイルス粒子を作製するために、HEK293T細胞に、pMSGVトランスファープラスミドと、レトロウイルスパッケージングプラスミドpMD-Gag/PolおよびpMD RD114(Milone et al, 2018 Leukemia 32, 1529-1541)ネコ内在性ウイルスエンベロープ糖タンパク質をコトランスフェクションした。トランスフェクションの24時間後、48時間後、および72時間後に培養上清を回収し、24,000xgで2時間超遠心分離して濃縮した。濃縮ウイルスは使用するまで-80℃で保存した。ウイルス力価およびMOIは、HEK293T細胞におけるThy1.1レポーター遺伝子の発現によって決定した。
健康ドナーのアフェレーシス製品は、承認された大学の倫理委員会のプロトコルに基づく書面による同意を得て、スイスのエパランジュにあるTransfusion Interregionale CRS SA,Epalingesから購入した。Lymphoprep(StemCell Technologies)密度勾配遠心分離を使用してPBMCを調製し、CD8またはCD4磁気マイクロビーズ(Miltenyi)を使用して、製造元のプロトコルに従って、CD8またはCD4 T細胞をネガティブ分離した。分離されたCD8およびCD4 T細胞を、抗CD3/CD28ビーズ(Invitrogen)により、ヒトIL-2(GlaxoSmithKline)の存在下において2:1のビーズ:T細胞比で刺激した。
T細胞のレンチウイルス形質導入は、培地にウイルス粒子を直接添加することにより、活性化の24時間後に実施し(MOI 20)、Lentiboost(SirionBiotech)を同時に添加することにより増強した。T細胞のレトロウイルス形質導入は、活性化の48時間後に実施した。簡単に説明すると、事前にレトロウイルス粒子を2000xgで1.5時間スピノキュレートしたレトロネクチンコーティングプレートにT細胞を移した。翌日、レトロネクチンコーティングプレートからT細胞を取り出した。CD3/CD28ビーズは活性化の5日後に除去し、T細胞はその後、下流で使用するまで、0.5~1x106T細胞/mlで、10%熱不活化ウシ胎児血清(ThermoFisher Scientific)、1%ペニシリン/ストレプトマイシン、10ng/ml ヒトIL-7(Miltenyi)、および10ng/ml IL-15(Miltenyi)を添加したRPMI 1640-Glutamax(ThermoFisher Scientific)で維持した。
105の休止T細胞(4:1のCD8+:CD4+)を完全培地中において105の腫瘍細胞と48時間共培養した。形質導入効率に基づいてT細胞数を正規化し、条件間で同様のT細胞頻度を達成するために必要な場合は、非形質導入T細胞を添加した。48時間後、収集した無細胞培養上清中のIFNγレベルを、メーカーのプロトコルに従ってELISA(ThermoFisher Scientific)で測定した。T細胞の細胞傷害性は、細胞のフローサイトメトリー分析によって決定し、培養物中のアネキシンV+/DAPI+腫瘍細胞のパーセンテージとして定義した。結果を、腫瘍細胞のみを含む培養物中のアネキシンV+/DAPE+のパーセンテージに対して正規化した。
T細胞(CD8またはCD4)を106T細胞/mlの濃度で、10ng/mlのIL-7/IL-15を添加した無血清培地中において24時間培養した。生存率および細胞数を、血球計算盤を使用して事前に決定した。形質導入効率に基づいてT細胞数を正規化し、条件間で同様のT細胞頻度を達成するために必要に応じて非形質導入T細胞を添加した。24時間後、収集した無細胞上清中のマウスGM-CSFレベルを、メーカーのプロトコルに従ってELISA(ThermoFisher Scientific)で測定した。
NSGマウスの大腿骨と脛骨をフラッシングすることにより、全骨髄細胞を単離した。10%FCS、1%ペニシリン/ストレプトマイシン、50μM β-メルカプトエタノールおよび50ng/mLのマウスM-CSF(Peprotech)を添加したDMEM+Glutamax(Thermo)培地中において全骨髄細胞を7日間インキュベートし、付着画分を採取することによってマクロファージを作製した。3日目と6日目に培地をリフレッシュした。
6~12週齢の雄NSGマウスの脇腹に、5x106(または指定される数)のNY-ESO-1 TCR発現マウスGM-CSF分泌ヒトT細胞(4:1のCD8+:CD4+)または同等数のモック(mock)形質導入マウスGM-CSF分泌ヒトT細胞と事前に混合した5x106のMe275メラノーマ細胞を皮下接種した。腫瘍の成長を週に2回のノギス測定によって監視し、式V=1/2(LxW2)(ここで、Lは最大の縦方向の直径、W(幅)は最大の横方向の直径である)を使用して腫瘍体積を計算した。腫瘍が1000mm3に達したとき、元の体重の>20%を失ったとき、または弱まって瀕死になったときに、マウスを屠殺した。各群は5匹以上のマウスで構成された。
6~12週齢の雄NSGマウスの横腹に、5x106のMe275メラノーマ細胞を皮下接種した。同時に、上記のようにヒトT細胞を活性化、形質導入、および拡大した。接種の約2週間後に腫瘍が50~100mm3に達したときに、T細胞をマウスに養子移入した。T細胞は、注射ごとに、1x107のNY-ESO-1 TCR発現マウスGM-CSF分泌ヒトT細胞(4:1のCD8+:CD4+)または同等数のモック形質導入マウスGM-CSF分泌ヒトT細胞で、13日目と15日目に2回投与した。上記のように、腫瘍の成長をノギス測定によって監視した。
この研究で使用されたレトロウイルスマウスGM-CSFおよびレンチウイルスNY-ESO-1 TCR構築物の概略図を図17Aに示す。ウイルス形質導入後7日目に、ヒトCD8+およびCD4+T細胞によるNY-ESO-1 TCRおよびマウスGM-CSFの発現がフローサイトメトリーによって確認された(図17B)。形質導入されたCD8+T細胞の培養物の上清において、分泌されたマウスGM-CSFをELISAによって検出することができる(図17C)。これは、NY-ESO-1 TCRを安定発現しかつマウスGM-CSFを分泌するようにヒトT細胞を効率的に共操作(co-engineer)できることを示す。
材料および方法
分子クローニング
ヒトT細胞においてヒトPDE4B2ホモログを過剰発現させるために、Bobisse, S. et al. Cancer Res. 69, 9385-9394 (2009)で使用されているレンチウイルスベクターpRRLを使用した。特に、ヒトPGKプロモーターおよびコザック(Kozak)エレメント(GCCACC(配列番号31)の下流にクローン化された配列は、ヒトWT PDE4B2(NCBI参照配列:NP_001032416.1;図26の配列番号27)をコードし、DGGG(配列番号32)リンカーを介して以下のアミノ酸配列に融合される:GKPIPNPLLGLDSTGGSGGGKPIPNPLLGLDSTGSGSGSGKPIPNPLLGLDST(配列番号33)。この配列は、V5タグエピトープの3つの繰り返しと、Reddy Chichili et al., Protein Sci. 22, 153-167 (2013)で使用されている2つのリンカーを含む。対照T細胞の操作には、同じpRRLベクターバックボーンが用いられ、ヒトPGKプロモーターおよびコザックエレメントの下流にeGFPコード配列が導入された。T細胞にNY-ESO-1抗原特異性を与えるために、Lamers, C. H. J. et al. Cancer Gene Ther. 15, 268-274 (2008)で用いられているSFGレトロウイルスベクターが使用され、それはNY-ESO-1 TCRバリアンβ-I53Fのα鎖ならびにβ鎖をコードする。導入されたすべてのDNA配列は、ヒト細胞でのタンパク質発現のためにコドン最適化された。
ウイルス粒子を作製する目的で、HEK-293T細胞にトランスフェクトした。簡単に説明すると、レンチウイルス粒子の作製のために、18μgのgag/polコードR8.74プラスミド、7μgのエンベロープタンパク質コードVSVGプラスミド、ならびに15μgの導入遺伝子コードpRRLベクターを、3mLのOpti-MEM(11058-021、Thermo Fisher Scientific)と事前に混合したTurboFect(R0532、Thermo Fisher Scientific)120μlで希釈した。同様に、レトロウイルス粒子の作製のために、18μgのgag/polコードPegPam、7μgのエンベロープタンパク質コードRD114プラスミド、ならびに22μgのSFGレトロウイルスベクターを、3mLのOpti-MEMと事前に混合したTurboFect(R0532、Thermo Fisher Scientific)120μlで希釈した。注目すべきことに、TurboFect/Opti-MEM溶液を、パッケージング/導入遺伝子プラスミドの希釈に使用する前に、室温で5分間インキュベートした。続いて、トランスフェクションミックスを、室温で30分間インキュベートした後、90~95%コンフルエントのHEK-293T細胞を含むT150組織培養フラスコにおいて、10%ウシ胎児血清およびペニシリン/ストレプトマイシン(4-01F00-H、Bioconcept)を添加したRPMI 1640(11875085、Thermo Fisher Scientific)から構成される新鮮なR10培地の上に添加した。24時間後、培養上清を新鮮なR10に交換し、さらに24時間経過した後にそれを回収し、ろ過(45μm)および24000gで2時間の遠心分離にかけた。最後に、ウイルス粒子を400μlのR10に再懸濁した後、ドライアイスで急速凍結し、-80℃に置いた。
健康ドナーからのPBMCを、標準的なFicoll-Paque遠心分離によって0日目に分離し、メーカーの指示に従ってそれぞれのネガティブ分離キット(130-096-533、130-096-495 Miltenyi)を使用してCD4+またはCD8+T細胞を精製した。分離直後に、50U/mLの組換えヒトIL2(Glaxo SmithKlineから贈与)の存在下において、T細胞あたり2ビーズの比率で、T細胞をR10中において抗CD3/CD28コーティングマイクロビーズ(11132D、Thermo Fisher Scientific)で刺激した。48ウェルプレートにおいて、0.5x106T細胞/ウェル、1/106T細胞/mLの濃度で、T細胞を活性化した。レンチウイルス形質導入のために、1:500希釈で使用されたLentiBOOST(商標)(Sirion Biotech GmbH)の存在下での刺激の18~22時間後に、0.5/106のT細胞を含むウェルあたり、100μlの濃縮レンチウイルスを加えた。レトロウイルスの形質導入は、未処理の48ウェル細胞培養プレート内で生じた。具体的には、そのようなウェルを、PBS中の20ng/mLのレトロネクチン(RetroNectin)(T100B、Takara)溶液で4℃で一晩コーティングした後、PBSで洗浄し、続いて37℃で30分間R10でブロッキングした。これらウェルをPBSで洗浄した後、50μlの濃縮レトロウイルスを50μlのR10とともに添加し、プレートを25℃、2000gで90分間遠心した。レトロウイルスのコトランスダクション(co-transduction)を行うために、事前にレンチウイルスに曝露されたT細胞を、刺激後40~44時間以内に、レトロネクチン(RetroNectin)/レトロウイルスコーティングウェルに移し、260gで10分間スピンダウンした。このようなT細胞を、レトロウイルス形質導入の24時間後に組織培養処理ウェルに移した。T細胞の拡大を支援するためにIL2(50U/mL)を加えたR10を、T細胞活性化マイクロビーズが除去される5日目まで培養物に添加した。5日目以降、10ng/mLの組換えヒトIL7およびIL15(130-095-764、130-095-362、Miltenyi)を加えたR10をT細胞培養物に添加した。形質導入効率は7日目にFACSで評価し、T細胞は8~21日目の間に細胞内cAMPの定量化または機能アッセイに使用した。
休止T細胞を洗浄し、様々な濃度のフォルスコリンまたはPGE2に1時間曝露した。T細胞は12ウェルプレートにおいて1x106T細胞/mLの濃度で処理したが、条件ごとに2.5x106T細胞を使用した。続いて、T細胞を250μlの0.1M HClで溶解し、それらの細胞内cAMP含有量を、製造元の指示に従って直接cAMP ELISAキット(ADI-900-066、Enzo Life Sciences)で評価した。
すべてのFACSデータをLCRIIフローサイトメーター(BD)で取得し、FlowJoソフトウェアを使用して解析した。死細胞除去のために、製造元の指示に従ってfixable aqua dead dye L34965またはL34975(Invitrogen)を使用し、一方、T細胞染色のためには以下の抗体を使用した:CD45:Pac Blue(304029、BioLegend)、抗V5タグ:FITC(R96325、Thermo Fisher Scientific)、抗V5タグ:Dy650(NBP2-52653C、Novus biologicals)、Vb13.1:PE(IM2292、BD)、IFNγ:PeCy7(502527、BioLegend)、TNF-α:PE(502909、BioLegend)、抗BrDU:APC(12-5071-42、Thermo Fisher Scientific)。FACSにより細胞内サイトカイン産生を評価するために、ウェルあたり50x103の生きたT細胞を、丸底96ウェルプレートにおいて、プレートコーティングaCD3(5μg/mL)と可溶性aCD28(2μg/mL)の組み合わせで7時間刺激した。サイトカイン分泌を防ぐために、アッセイ開始の1.5時間後に、1:400の希釈率でゴルジストップ(Golgi stop)(554724、BD)をウェルに添加した。形質導入効率またはサイトカインを産生する能力を評価する前に、標準の固定/透過処理キット(554714、BD)を製造元の指示に従って使用して、T細胞を固定および透過処理した。フローサイトメトリー用のBrdU染色キット(8817-6600-42、Thermo Fisher Scientific)を使用して、T細胞の増殖を定量化した。簡単に説明すると、ウェルあたり1x105の生きたT細胞を、平底96ウェルプレート内においてプレートコーティングaCD3(5μg/mL)で48時間活性化し、アッセイ終了の7時間前にBrdUを10μMの作業濃度でウェルに添加した。
GFP、PDE4B2、eGFP&NY-ESO-1 TCR、またはPDE4B2&NY-ESO-1 TCRを形質導入した休止状態のCD8T細胞を、様々な濃度のPGE2またはフォルスコリンの存在下で、NY-ESO-1提示メラノーマ細胞A375と48時間共培養し、共培養上清中のIFNγの存在を、製造業者の指示に従ってELISAキット(88-7316-88、Thermo Fisher Scientific)により評価した。共培養は平底96ウェルプレートで行い、1x105のA375細胞と、1x105のTCR+の生きたT細胞または対応する数のeGFP-/PDE4B2-形質導入T細胞をウェルごとに添加した。
eGFP、PDE4B2、eGFP&NY-ESO-1 TCR、またはPDE4B2&NY-ESO-1 TCRを形質導入した休止状態のCD4またはCD8T細胞を、PGE2の存在下または非存在下で、それぞれ47時間または44時間、A375細胞と共培養した。共培養は、IncuCyte機器によってモニターされ、1x104のA375腫瘍細胞、ならびに25x103のTCR+の生きたT細胞または対応する数のeGFP-/PDE4B2-形質導入T細胞をウェルごとに添加した平底96ウェルプレートで行った。使用したA375腫瘍細胞は、ウェル内での直接検出を可能にするために、核蛍光タンパク質mCherryを発現するように操作された。
初代ヒトT細胞における外因性PDE4B2の発現、または外因性PDE4B2とNY-ESO-1 TCRバリアントβ-I53Fの共発現が、フローサイトメトリーによって確認された(図21)。NY-ESO-1 TCRは、TCRβ鎖のVβ13.1バリアントを含むため、前者の存在は、完全に正確ではないが、Vβ13.1の検出によって推測できる。
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Claims (132)
- 改変T細胞受容体(TCR)またはその機能的断片をコードするポリヌクレオチドであって、前記改変TCRは、非置換野生型(WT)TCRのβ鎖の相補性決定領域(CDR)2と比較して、改変TCRのβ鎖のCDR2内に単一アミノ酸置換を含む、ポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのβ鎖配列が、該改変TCRのβ鎖またはその機能的断片のCDR2領域の外側で、非置換WT TCRのβ鎖またはその機能的断片と少なくとも80%同一であるアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのβ鎖またはその機能的断片が、非置換WT TCRのβ鎖またはその機能的断片のアミノ酸配列においてCDR2領域に単一アミノ酸置換を有するアミノ酸配列を含む、請求項1または2に記載のポリヌクレオチド。
- 非置換WT TCRのβ鎖が、配列番号1のアミノ酸配列を含む、請求項1~3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
- 前記単一アミノ酸置換が、WT TCRに対して残基50、51、53、または55で生じる、請求項1~4のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
- 前記単一アミノ酸置換が、WT TCRに対して残基53または55で生じる、請求項1~5のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
- 前記単一アミノ酸置換が、I53E、I53F、I53W、またはD55Eである、請求項1~6のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRが、WT TCRよりも高い結合親和性でがん抗原に結合する、請求項1~7のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
- 前記がん抗原がNY-ESO-1157-165エピトープ(配列番号8)である、請求項8に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原への結合親和性が、WT TCRのがん抗原への結合親和性と比較して約5倍~約75倍高い、請求項8または9に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原への結合親和性が、WT TCRのがん抗原への結合親和性と比較して約10倍~約75倍高い、請求項10に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原への結合親和性が、WT TCRのがん抗原への結合親和性と比較して約25倍~約75倍高い、請求項11に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原への結合親和性が、WT TCRのがん抗原への結合親和性と比較して約40倍~約75倍高い、請求項12に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原への結合親和性が、WT TCRのがん抗原への結合親和性と比較して約40倍~約60倍高い、請求項13に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原への結合親和性が、WT TCRのがん抗原への結合親和性と比較して約40倍~約50倍高い、請求項14に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原への結合親和性が、WT TCRのがん抗原への結合親和性と比較して約50倍高い、請求項8または9に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原に対する解離定数(KD)が約0.30μM~約4.5μMの間である、請求項8または9に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原に対する解離定数(KD)が約0.30μM~約2μMの間である、請求項17に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原に対する解離定数(KD)が約2μM~約3μMの間である、請求項17に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原に対する解離定数(KD)が約3μM~約4μMの間である、請求項17に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原に対する解離定数(KD)が約0.41μMである、請求項17に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRのがん抗原に対する解離定数(KD)が約3.89μMである、請求項17に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRが、配列番号2~5のいずれか1つのアミノ酸配列またはその機能的断片、あるいは配列番号2~5のいずれか1つに対して少なくとも80%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項1~22のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
- 前記改変TCRが、配列番号11~14のいずれか1つのヌクレオチド配列、または配列番号11~14のいずれか1つに対して少なくとも80%の配列同一性を有するヌクレオチド配列によってコードされる、請求項1~23のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
- 改変TCRの発現のための少なくとも1つの調節エレメントに作動可能に連結されている、請求項1~24のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
- 前記少なくとも1つの調節エレメントがプロモーターである、請求項25に記載のポリヌクレオチド。
- DNA分子である、請求項1~26のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
- RNA分子またはその誘導体である、請求項1~26のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
- 請求項1~28のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを含む組換えベクターであって、前記ポリヌクレオチドが、改変T細胞受容体(TCR)の発現のための少なくとも1つの調節エレメントに作動可能に連結されている、組換えベクター。
- ウイルスベクターである、請求項29に記載のベクター。
- 前記ウイルスベクターが、レトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター、アルファウイルスベクター、ヘルペスウイルスベクター、またはワクシニアウイルスベクターである、請求項30に記載のベクター。
- 非ウイルスベクターである、請求項29に記載のベクター。
- 請求項1~28のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドによってコードされる改変TCRのβ鎖またはその機能的断片を含む、改変T細胞受容体(TCR)。
- a)請求項1~29のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドによってコードされる改変TCRのβ鎖またはその機能的断片、および
b)α鎖またはその機能的断片
を含む、改変T細胞受容体(TCR)。 - 請求項1~28のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドによってコードされる改変TCRのβ鎖のCDRを含む、改変T細胞受容体(TCR)。
- a)改変TCRのβ鎖の機能的断片であって、請求項1~28のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドによってコードされるβ鎖のCDRを含む機能的断片、および
b)α鎖の機能的断片であって、α鎖のCDRを含む機能的断片
を含む、改変T細胞受容体(TCR)。 - a)の機能的断片がTCRβ鎖の定常領域をさらに含む、および/またはb)の機能的断片がTCRα鎖の定常領域をさらに含む、請求項36に記載の改変TCR。
- 前記定常領域のいずれかがヒト起源である、請求項37に記載の改変TCR。
- 前記定常領域のいずれかがマウス起源である、請求項37に記載の改変TCR。
- 前記α鎖が、WT TCRのα鎖またはその機能的断片を含む、請求項34~39のいずれか一項に記載の改変TCR。
- WT TCRのα鎖が、配列番号7のアミノ酸配列を含む、請求項40に記載の改変TCR。
- 配列番号2~5のいずれか1つのアミノ酸配列またはその断片、あるいは配列番号2~5のいずれか1つに対して少なくとも80%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項33~41のいずれか一項に記載の改変TCR。
- 配列番号7のアミノ酸配列を含むα鎖、および配列番号2~5のいずれか1つのアミノ酸配列を含むβ鎖を含む、改変T細胞受容体(TCR)。
- 請求項33~43のいずれか一項に記載の改変T細胞受容体(TCR)を含む単離宿主細胞。
- 請求項1~28のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを含む単離宿主細胞。
- 前記ポリヌクレオチドが、宿主細胞における改変T細胞受容体(TCR)の発現を媒介することができる少なくとも1つの調節エレメントに作動可能に連結されている、請求項45に記載の単離宿主細胞。
- 請求項29~32のいずれか一項に記載のベクターを含む単離宿主細胞。
- 哺乳動物細胞である、請求項44~47のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- リンパ球系細胞である、請求項44~48のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- 前記リンパ球系細胞がT細胞である、請求項49に記載の単離宿主細胞。
- 前記リンパ球系細胞がナチュラルキラー(NK)細胞である、請求項49に記載の単離宿主細胞。
- 末梢血単核細胞(PBMC)、腫瘍流入領域リンパ節、または腫瘍浸潤物から得られたものである、請求項48~51のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- ex vivoで活性化および/または拡大されている、請求項44~52のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- 同種異系細胞である、請求項44~53のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- 自己細胞である、請求項44~53のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- 疾患を有する対象から単離されたものである、請求項55に記載の単離自己宿主細胞。
- 前記疾患ががんである、請求項56に記載の単離自己宿主細胞。
- 前記がんが、その細胞の表面にがん抗原NY-ESO-1157-165エピトープ(配列番号8)を提示する、請求項57に記載の単離自己宿主細胞。
- 前記がんが、骨髄腫、メラノーマ、肉腫、膀胱がん(bladder cancer)、食道がん、肝細胞がん、頭頸部がん、乳がん、前立腺がん、膀胱がん(urinary bladder cancer)、皮膚がん、肺がん、卵巣がん、または脳腫瘍である、請求項57または58に記載の単離自己宿主細胞。
- 1つまたは複数の外因性分子を発現するようにさらに操作された、請求項44~59のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- 前記1つまたは複数の外因性分子が免疫シグナル伝達分子である、請求項60に記載の単離宿主細胞。
- 前記免疫シグナル伝達分子がサイトカインである、請求項61に記載の単離宿主細胞。
- 前記免疫シグナル伝達分子がケモカインである、請求項61に記載の単離宿主細胞。
- 前記免疫シグナル伝達分子が成長因子である、請求項61に記載の単離宿主細胞。
- 前記成長因子が顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)である、請求項64に記載の単離宿主細胞。
- がん抗原に結合するT細胞受容体(TCR)またはその機能的断片を含む単離宿主細胞であって、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)を発現するようにさらに操作されている、単離宿主細胞。
- 前記がん抗原がNY-ESO-1157-165エピトープ(配列番号8)である、請求項66に記載の単離宿主細胞。
- T細胞受容体(TCR)がWT TCRである、請求項66または67に記載の単離宿主細胞。
- WT TCRのβ鎖が、配列番号1のアミノ酸配列、または配列番号1に対して少なくとも80%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項66~68のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- WT TCRのα鎖が、配列番号7のアミノ酸配列を含む、請求項66~69のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- GM-CSFのアミノ酸配列が、配列番号21、34または15、あるいは配列番号21、34または15に対して少なくとも80%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項65~70のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- GM-CSFをコードするヌクレオチド配列が、配列番号22、35または16、あるいは配列番号22、35または16に対して少なくとも80%の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む、請求項65~71のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- 前記1つまたは複数の外因性分子が可溶性受容体である、請求項60または61に記載の単離宿主細胞。
- 前記1つまたは複数の外因性分子がリガンドである、請求項60または61に記載の単離宿主細胞。
- 前記1つまたは複数の外因性分子が抗原結合タンパク質である、請求項60または61に記載の単離宿主細胞。
- 前記抗原結合タンパク質が抗体または抗体フラグメントである、請求項75に記載の単離宿主細胞。
- 前記1つまたは複数の外因性分子がホスホジエステラーゼである、請求項60に記載の単離宿主細胞。
- 前記ホスホジエステラーゼがPDE4B2である、請求項77に記載の単離宿主細胞。
- がん抗原に結合するT細胞受容体(TCR)またはその機能的断片を含む単離宿主細胞であって、PDE4B2を発現するようにさらに操作されている、単離宿主細胞。
- 前記がん抗原がNY-ESO-1157-165エピトープ(配列番号8)である、請求項79に記載の単離宿主細胞。
- T細胞受容体(TCR)がWT TCRである、請求項79または80に記載の単離宿主細胞。
- WT TCRのβ鎖が、配列番号1のアミノ酸配列、または配列番号1に対して少なくとも80%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項79~81のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- WT TCRのα鎖が、配列番号7のアミノ酸配列を含む、請求項79~82のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- PDE4B2のアミノ酸配列が、配列番号27または29、あるいは配列番号27または29に対して少なくとも80%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項78~83のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- PDE4B2をコードするヌクレオチド配列が、配列番号28または30、あるいは配列番号28または30に対して少なくとも80%の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む、請求項78~84のいずれか一項に記載の単離宿主細胞。
- 前記1つまたは複数の外因性分子が細胞表面受容体である、請求項60に記載の単離宿主細胞。
- 前記細胞表面受容体がキメラ抗原受容体である、請求項86に記載の単離宿主細胞。
- 前記細胞表面受容体が、がん抗原NY-ESO-1157-165エピトープ(配列番号8)に結合しないT細胞受容体である、請求項86に記載の単離宿主細胞。
- 請求項33~43に記載の改変T細胞受容体(TCR)またはその機能的断片、ならびにT細胞上の細胞表面タンパク質に特異的に結合する免疫エフェクターポリペプチドを含む、二機能性分子。
- 前記免疫エフェクターポリペプチドが抗体または抗体フラグメントを含む、請求項89に記載の二機能性分子。
- 前記免疫エフェクターポリペプチドが単鎖可変領域フラグメント(scFv)を含む、請求項89または90に記載の二機能性分子。
- 前記免疫エフェクターポリペプチドがCD3に特異的に結合する、請求項89~91のいずれか一項に記載の二機能性分子。
- 前記免疫エフェクターポリペプチドが、OKT3、UCHT-1、BMA031、または12F6に由来する抗体または抗体フラグメントを含む、請求項92に記載の二機能性分子。
- 請求項44~88のいずれか一項に記載の宿主細胞、または請求項89~93のいずれか一項に記載の二機能性分子、ならびに薬学的に許容される担体および/または賦形剤を含む、医薬組成物。
- 養子細胞移入療法で使用される、請求項94に記載の医薬組成物。
- 請求項1~28のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドまたは請求項29~32のいずれか一項に記載のベクターを用いて宿主細胞を遺伝子操作することを含む、請求項44~88のいずれか一項に記載の宿主細胞を作製する方法。
- 請求項33~43のいずれか一項に記載の改変T細胞受容体(TCR)またはその機能的断片を発現するように宿主細胞を遺伝子操作する方法。
- 請求項1~28のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドまたは請求項29~32のいずれか一項に記載のベクターを用いて宿主細胞を遺伝子操作することを含む、請求項97に記載の方法。
- 遺伝子操作ステップがウイルス遺伝子送達を介して行われる、請求項96~98のいずれか一項に記載の方法。
- 遺伝子操作ステップが非ウイルス遺伝子送達を介して行われる、請求項99に記載の方法。
- ex vivoで行われる、請求項96~100のいずれか一項に記載の方法。
- ex vivoで宿主細胞を活性化および/または拡大することをさらに含む、請求項96~101のいずれか一項に記載の方法。
- 前記改変TCRが、配列番号2~5のいずれか1つのアミノ酸配列またはその断片、あるいは配列番号2~5のいずれか1つに対して少なくとも80%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項96~102のいずれか一項に記載の方法。
- 1つまたは複数の外因性分子をさらに発現するように前記宿主細胞を遺伝子操作することをさらに含む、請求項96~103のいずれか一項に記載の方法。
- 前記1つまたは複数の外因性分子が免疫シグナル伝達分子である、請求項104に記載の方法。
- 前記外因性分子が、サイトカイン、ケモカイン、成長因子、可溶性受容体、リガンド、ホスホジエステラーゼ、抗原結合タンパク質、または細胞表面受容体である、請求項104または105に記載の方法。
- 前記成長因子が顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)である、請求項106に記載の方法。
- GM-CSFのアミノ酸配列が、配列番号21、34または15、あるいは配列番号21、34または15に対して少なくとも80%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項107に記載の方法。
- GM-CSFをコードするヌクレオチド配列が、配列番号22、35または16、あるいは配列番号22、35または16に対して少なくとも80%の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む、請求項107または108に記載の方法。
- ホスホジエステラーゼがPDE4B2である、請求項106に記載の方法。
- PDE4B2のアミノ酸配列が、配列番号27または29、あるいは配列番号27または29に対して少なくとも80%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項110に記載の方法。
- PDE4B2をコードするヌクレオチド配列が、配列番号28または30、あるいは配列番号28または30に対して少なくとも80%の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む、請求項110または111に記載の方法。
- 前記抗原結合タンパク質が抗体または抗体フラグメントである、請求項106に記載の方法。
- 前記細胞表面受容体が、キメラ抗原受容体、またはがん抗原NY-ESO-1157-165エピトープ(配列番号8)に結合しないT細胞受容体である、請求項106に記載の方法。
- 前記宿主細胞が哺乳動物細胞である、請求項96~114のいずれか一項に記載の方法。
- 前記宿主細胞がリンパ球系細胞である、請求項96~115のいずれか一項に記載の方法。
- 前記リンパ球系細胞がT細胞である、請求項116に記載の方法。
- 前記リンパ球系細胞がナチュラルキラー(NK)細胞である、請求項116に記載の方法。
- 前記宿主細胞が、末梢血単核細胞(PBMC)、腫瘍流入領域リンパ節、または腫瘍浸潤物から得られる、請求項115~118のいずれか一項に記載の方法。
- 前記宿主細胞がex vivoで活性化および/または拡大されている、請求項96~119のいずれか一項に記載の方法。
- 前記宿主細胞が同種異系細胞である、請求項96~120のいずれか一項に記載の方法。
- 前記宿主細胞が自己細胞である、請求項96~120のいずれか一項に記載の方法。
- 前記宿主細胞が、疾患を有する対象から単離される、請求項96~122のいずれか一項に記載の方法。
- 前記疾患ががんである、請求項123記載の方法。
- 前記がんの細胞が、その表面にがん抗原NY-ESO-1157-165エピトープ(配列番号8)を提示する、請求項124に記載の方法。
- 前記がんが、骨髄腫、メラノーマ、肉腫、膀胱がん(bladder cancer)、食道がん、肝細胞がん、頭頸部がん、乳がん、前立腺がん、膀胱がん(urinary bladder cancer)、皮膚がん、肺がん、卵巣がん、または脳腫瘍である、請求項124または125に記載の方法。
- 必要とする哺乳動物において免疫応答を刺激または増強する方法であって、有効量の、請求項33~43のいずれか一項に記載の改変T細胞受容体(TCR)を含むリンパ球系細胞、請求項44~88のいずれか一項に記載の宿主細胞、請求項89~93のいずれか一項に記載の二機能性分子、請求項94または95に記載の組成物、あるいは請求項96~126のいずれか一項に記載の方法によって作製された宿主細胞を哺乳動物に投与することを含む、方法。
- 必要とする対象におけるがんの治療方法であって、有効量の、請求項33~43のいずれか一項に記載の改変T細胞受容体(TCR)を含むリンパ球系細胞、請求項44~88のいずれか一項に記載の宿主細胞、請求項89~93のいずれか一項に記載の二機能性分子、請求項94または95に記載の組成物、あるいは請求項96~126のいずれか一項に記載の方法によって作製された宿主細胞を対象に投与することを含む、方法。
- 前記がんの細胞が、その表面にがん抗原NY-ESO-1157-165エピトープ(配列番号8)を提示する、請求項128に記載の方法。
- 前記がんが、骨髄腫、メラノーマ、肉腫、膀胱がん(bladder cancer)、食道がん、肝細胞がん、頭頸部がん、乳がん、前立腺がん、膀胱がん(urinary bladder cancer)、皮膚がん、肺がん、卵巣がん、または脳腫瘍である、請求項128または129に記載の方法。
- a)対象または哺乳動物のT細胞を分離すること;
b)請求項1~28のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドまたは請求項29~32のいずれか一項に記載のベクターを用いてex vivoで前記T細胞を遺伝子改変すること;
c)任意選択で、ステップb)の前、後、または最中に、前記T細胞を拡大および/または活性化すること;
d)遺伝子改変されたT細胞を前記対象または哺乳動物に導入すること;
を含む、請求項128~130のいずれか一項に記載の方法。 - 前記対象または哺乳動物がヒトである、請求項128~131のいずれか一項に記載の方法。
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