JP2022523854A - 抗体－薬物コンジュゲート及びその用途 - Google Patents

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Abstract

本発明は、ガラクトーストリガー（ｔｒｉｇｇｅｒ）モイエティとＣＢＩ（ｃｙｃｌｏｐｒｏｐａｂｅｎｚｉｎｄｏｌｅ）を含む新規化合物、及びこれを用いて製造された抗体－薬物コンジュゲートに関する。

Description

本発明は、ガラクトーストリガー（ｔｒｉｇｇｅｒ）モイエティとＣＢＩ（ｃｙｃｌｏｐｒｏｐａｂｅｎｚｉｎｄｏｌｅ）を含む新規化合物、及びこれを用いて製造された抗体－薬物コンジュゲートに関する。
近年、様々な疾患を対象に、抗体を用いた診断又は治療方法が研究されている。特に、抗体の標的特異性のことから、抗体を用いた様々な治療方法が開発されており、抗体を含む様々な形態の医薬、例えば、抗体－薬物結合体（Ａｎｔｉｂｏｄｙ－Ｄｒｕｇ Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ，ＡＤＣ）などが開発されている。このため、抗体又は抗体－薬物結合体に対して生体内安定性を増加させ、治療効果を極大化する方法も研究し続けられている。
このうち、ＡＤＣは、一般に、天然抗体に比べて生体内安定性が低いという短所があるが、天然抗体が持つ短所である低い治療効果を、薬物との結合によって改善しようと開発された。標的特異的抗体に、サイトトキシンなどの特定薬効を有する薬物が様々に結合した形態で開発されており、癌細胞特異的抗体に薬物を結合させて癌細胞死滅を誘導できる抗体－薬物結合体が商用化されたことがある。
薬物のうちＤＮＡマイナーグルーブアルキル化剤（ＤＮＡ ｍｉｎｏｒ ｇｒｏｏｖｅ ａｌｋｙｌａｔｉｎｇ ａｇｅｎｔ）をペイロードとして含むＡＤＣに対する臨床が進行中である。このような薬物の例示として、ＰＢＤ（ｐｙｒｒｏｌｏｂｅｎｚｏｄｉａｚｅｐｉｎｅ）ダイマー、ＣＢＩ（ｃｙｃｌｏｐｒｏｐａｂｅｎｚｉｎｄｏｌ）ベースのデュオカルマイシン誘導体が含まれる。特に、ＣＢＩの場合、多数の癌に対して細胞毒性を示すことが知られており、ＣＢＩダイマーも、非常に高いレベルの細胞毒性を示すことが報告されたことがある（Ｔｉｅｔｚｅ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｇｅｗ．Ｃｈｅｍ．Ｉｎｔ．Ｅｄ．Ｅｎｇｌ．２０１０，４９，７３３６－７３３９）。
ターゲット癌細胞にまだ伝達される前にＡＤＣにおいてリンカーが偶発的に切断され、薬物の早期放出が進んで全身毒性の危険につながることがある。薬物が強力な細胞毒性を示す場合、危険性は増加し得る。これを防止するために、薬物を誘導体化してリソゾーム内部で切断される誘導体を使用すれば、誘導体がトリガー（プロドラッグ化機能基）として働くことにより、活性である細胞毒性薬物が放出されるまでにリンカーの他にトリガーも切断されなければならず、危険性を減少させることができる。
ＣＢＩにトリガーとしてカルバメート基、ホスフェート基が付着することが考慮されてきた。カルバメート基をトリガーとして用いる場合、リソゾーム及び／又は細胞質内でカルボキシエステラーゼによってカルバメート基が切断可能である。ホスフェート基をトリガーとして用いる場合、リソゾーム及び／又は細胞質内でホスファターゼによってホスフェート基が切断可能である。しかしながら、このような従来のトリガーも、安全性問題は依然として提起されている。
このような技術的背景の下に、本出願の発明者らは、従来のトリガーに比べてより一層ターゲット特異的な毒性を示し、向上した安全性を有するとともに効果的に薬物の活性を示すことができるトリガーモイエティを開発するために努力した結果、ガラクトースをトリガーとして含むプロドラッグ薬物をＡＤＣに使用できることを確認し、本発明を完成するに至った。
本発明の目的は、トリガーモイエティが結合したＣＢＩダイマー化合物である、化学式（Ｉ）又は（ＩＩ）で表される化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物を提供することにある。
Figure 2022523854000002
本発明の目的は、トリガーモイエティが結合したＣＢＩダイマー化合物である化学式（ＩＩ）で表される化合物と抗体とが結合した、化学式（ＩＩＩ）で表される抗体－薬物コンジュゲートを提供することにある。
Figure 2022523854000003
本発明の目的は、前記抗体－薬物コンジュゲートを含む増殖性疾患の予防又は治療用組成物を提供することにある。
上記の目的を達成するために、本発明は、化学式（Ｉ）で表される化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物を提供する。
Figure 2022523854000004
前記化学式で、Ｒ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースであり；
Ｒ２は、Ｃｌ又はＢｒであり；
Ｒ３は、単結合、－Ｏ－又は－ＮＨ－である。
本発明は、また、次の化学式（ＩＩ）で表される化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物を提供する：
Figure 2022523854000005
前記化学式で、Ｒ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースであり；
Ｒ２は、Ｃｌ又はＢｒであり；
Ｒ３は、単結合、－Ｏ－又は－ＮＨ－であり；
Ｗは、スぺーサであり；
Ｌ１は、リンカーである。
本発明は、また、次の化学式（ＩＩＩ）で表される化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物を含む抗体－薬物コンジュゲートを提供する。
Figure 2022523854000006
前記化学式で、
Ｒ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースであり；
Ｒ２は、Ｃｌ又はＢｒであり；
Ｒ３は、単結合、－Ｏ－又は－ＮＨ－であり；
Ｗは、スぺーサであり；
Ｌ２は、リンカーであり；
Ａｂは、抗体又はその抗原結合断片である。
本発明は、また、前記コンジュゲートを含む増殖性疾患の予防又は治療用医薬組成物を提供する。
プロドラッグＣＢＩダイマーが活性化状態に変換される過程を示す模式図である。
様々な腫瘍細胞株においてベータ－ガラクトシダーゼの発現を確認した結果である。
本発明に係るプロドラッグＣＢＩダイマーの遊離薬物に対する効能を確認した結果である。
ＳＥ－ＨＰＬＣによって本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートの純度を確認した結果である。
ＳＥ－ＨＰＬＣによって本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートの純度を確認した結果である。
ＬＣ／ＭＳによって本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートのＤＡＲを分析した結果である。
ＬＣ／ＭＳによって本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートのＤＡＲを分析した結果である。
Ｈ９２９細胞株において本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートのＩｎ ｖｉｔｒｏ細胞毒性を確認した結果である。
Ｍｉｎｏ及びＪｅｋｏ－１細胞株のそれぞれにおいて本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートのＩｎ ｖｉｔｒｏ細胞毒性を確認した結果である。
ＮＣＩ－Ｎ８７及びＨＣＣ１９５４細胞株のそれぞれにおいて本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートのＩｎ ｖｉｔｒｏ細胞毒性を確認した結果である。
ＯＶＣＡＲ－３細胞株において本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートのＩｎ ｖｉｔｒｏ細胞毒性を確認した結果である。
Ｊｅｋｏ－１モデルにおいて本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートのＩｎ ｖｉｖｏ細胞毒性を確認した結果である。
多発性骨髄腫モデル異種移植において本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートのＩｎ ｖｉｖｏ細胞毒性を確認した結果である。
ＡＭＬモデル異種移植において本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートのＩｎ ｖｉｖｏ細胞毒性を確認した結果である。
ＡＤＣを投与した動物において体重変化を確認した結果である。
ＡＤＣを投与した動物において血中白血球数値の変化を確認した結果である。
血中生化学的パラメータであるＡＬＴ（ａｌａｎｉｎｅ ａｍｉｎｏｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ）、ＡＳＴ（ａｓｐａｒｔａｔｅ ａｍｉｎｏｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ）及び血中尿素窒素（ｂｌｏｏｄ ｕｒｅａ ｎｉｔｒｏｇｅｎ，ＢＵＮ）に対する分析からＡＤＣの毒性を確認した結果である。
ラット単回投与毒性試験から体重変化を確認した結果である。
血液学的検査による白血球数値変化測定の結果である。
ＳＤラットに単回投与した後、体重の変化及び血液学的・血液生化学的変化を観察し、毒性発現の有無及び回復を観察した結果である。
特に断りのない限り、本明細書で使われる技術的及び科学的用語はいずれも、本発明の属する技術の分野における熟練した専門家によって通常理解されるのと同じ意味を有する。一般に、本明細書における命名法は、本技術分野でよく知られており、通常用いられるものである。
本発明は、一観点において、次の化学式（Ｉ）で表される化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物に関する。
Figure 2022523854000007
前記化学式で、
Ｒ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースであり；
Ｒ２は、Ｃｌ又はＢｒであり；
Ｒ３は、単結合、－Ｏ－又は－ＮＨ－である。
本発明は、一観点において、次の化学式（ＩＩ）で表される化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物に関する。
Figure 2022523854000008
前記化学式で、Ｒ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースであり；
Ｒ２は、Ｃｌ又はＢｒであり；
Ｒ３は、単結合、－Ｏ－又は－ＮＨ－であり；
Ｗは、スぺーサであり；
Ｌ１は、リンカーである。
本発明は、他の観点において、次の化学式（ＩＩＩ）で表される化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物を含む抗体－薬物コンジュゲートに関する：
Figure 2022523854000009
前記化学式で、
Ｒ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースであり；
Ｒ２は、Ｃｌ又はＢｒであり；
Ｒ３は、単結合、－Ｏ－又は－ＮＨ－であり；
Ｗは、スぺーサであり；
Ｌ２は、リンカーであり；
Ａｂは、抗体又はその抗原結合断片である。
前記化学式（Ｉ）、（ＩＩ）及び（ＩＩ）の化合物は、従来知られたことのない新規化合物であるとともに、化学式（Ｉ）の化合物は抗体－薬物複合体及びリンカー－薬物複合体の製造のための薬物＋テザー（ｔｅｔｈｅｒ）、化学式（ＩＩ）の化合物は抗体－薬物コンジュゲートの製造のためのリンカー－薬物複合体、そして化学式（ＩＩＩ）の化合物は抗体－薬物コンジュゲート又はそのプロドラッグとして利用可能であるが、これに制限されない。
前記化学式（Ｉ）、（ＩＩ）又は（ＩＩＩ）においてＲ１はプロドラッグのトリガーを表し、図１に示すように、トリガーは細胞内で酵素によって除去され、細胞毒性薬物であるＣＢＩダイマーを活性化させることができる。トリガーＲ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースである。
本明細書において、プロドラッグは、トリガーＲ１によって不活性であるＣＢＩダイマーが、生体内特定生理学的条件で酵素酸化（ｅｎｚｙｍａｔｉｃ ｏｘｉｄａｔｉｏｎ）、還元（ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ）及び／又は加水分解などによって活性を示す薬物、例えば、細胞毒性特性を示すＣＢＩダイマーに変換可能である化合物を意味できる。
本出願の発明者らは、トリガーとしてホスフェート基を含む場合、細胞毒性効能には優れるが、深刻な腎臓毒性が誘発されることがあり、このため、不可逆的腎臓障害を伴うことがあることを確認した。また、理論にかかわらないが、トリガーとしてホスフェート基を含むＡＤＣは血清で安定でないと判断される。
しかし、本発明によれば、Ｒ１に、ガラクトースのアイソマー形態であるＤ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースをトリガーとして含むことによって、目的とするターゲット特異的細胞毒性を維持しながらも不所望の生体内毒性に関する問題を解決できることを確認した。
ガラクトースをトリガーとして用いる場合、これを活性化できる酵素がターゲット細胞、例えば、増殖性疾患を示す細胞、具体的に癌細胞で高く発現することがある。
一具現例において、Ｒ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースであり、このとき、酵素は、ガラクトシダーゼ、具体的に、ベータ－ガラクトシダーゼであり得る。ベータ－ガラクトシダーゼはリソゾーム酵素（ｌｙｓｏｓｏｍａｌ ｅｎｚｙｍｅ）であり、大部分の癌細胞において高いレベルのベータ－ガラクトシダーゼが発現し、腫瘍選別活性化酵素として判別可能であることが確認された（図２）。
一具現例において、前記化学式（ＩＩ）又は（ＩＩＩ）において次のモイエティは、ＣＢＩダイマーのそれぞれを連結し、薬理学的効果を増進させることができ、化学式（ＩＩ）におけるスぺーサＷとリンカーＬ１、及び化学式（ＩＩＩ）におけるスぺーサＷとリンカーＬ２及び薬物を安定的に結合させるためのテザー（ｔｅｔｈｅｒ）を表す。
Figure 2022523854000010
前記テザーにおいて、Ｒ３は、単結合、－Ｏ－又は－ＮＨ－である。
具体的に、本発明に係るコンジュゲートは、次の化学式で表される化合物を含むことができる：
Figure 2022523854000011
前記化学式（ＩＩ）及び化学式（ＩＩＩ）において、リンカーＬがスぺーサＷに連結され、スぺーサは、ターゲットに薬物を伝達するために抗体が結合する場合、抗体と薬物との十分な距離を維持可能にする。場合によって、溶解度改善のための親水性モイエティを提供することができる。一部の具現例では、前記スぺーサを含めて“リンカー”と呼ぶことができる。
一具現例において、前記スぺーサＷは、－Ｒ４－Ａ－Ｒ５－、－Ｒ４－Ａ－、－（ＣＨ２ＣＨ２Ｒ６）ｘ－、－（ＣＨ２）ｒ（Ｒ７（ＣＨ２）ｐ）ｑ－、－（（ＣＨ２）ｐＲ７）ｑ－、－（ＣＨ２）ｒ（Ｒ７（ＣＨ２）ｐ）ｑＲ８－、－（（ＣＨ２）ｐＲ７）ｑ（ＣＨ２）ｒ－、－Ｒ８（（ＣＨ２）ｐＲ７）ｑ－又は－（ＣＨ２）ｒ（Ｒ７（ＣＨ２）ｐ）ｑＲ８ＣＨ２－であり、
ここで、Ｒ４及びＲ５はそれぞれ独立して、－（ＣＨ２）ｒ（Ｖ（ＣＨ２）ｘ）ｐ（ＣＨ２）ｑであり、Ａは直接結合又はペプチド結合であり、Ｖは単結合、Ｏ又はＳであり、
Ｒ６は、－Ｏ－、Ｃ１－Ｃ８アルキレン、－ＮＲ９－又は－Ｃ（Ｏ）ＮＲ２－であり、
Ｒ７及びＲ８はそれぞれ独立して、単結合、－Ｏ－、－ＮＲ１０－、－Ｃ（Ｏ）ＮＲ１１－、－ＮＲ１２Ｃ（Ｏ）－又はＣ３－Ｃ２０ヘテロアリールであり、
Ｒ９～Ｒ１２はそれぞれ独立して、水素、Ｃ１－Ｃ６アルキル、（Ｃ１－Ｃ６アルキル）Ｃ６－Ｃ２０アリール又は（Ｃ１－Ｃ６アルキル）Ｃ３－Ｃ２０ヘテロアリールであり、
ｘは１～５の整数で、ｒは０～１０の整数で、ｐは０～１０の整数で、ｑは０～２０の整数であり、
選択的に、前記Ｗ内の１～１０個の水素は、ヒドロキシ、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソに置換されてよい。
一具現例において、前記化学式（ＩＩ）又は前記化学式（ＩＩＩ）において、Ｗは次を含むことができる：
（１）－Ｒ４－Ａ－Ｒ５－又は－Ｒ４－Ａ－、ここで、Ｒ４及びＲ５はそれぞれ独立して、－（ＣＨ２）ｒ（Ｖ（ＣＨ２）ｘ）ｐ（ＣＨ２）ｑであり、Ａは、直接結合又はペプチド結合であり、Ｖは、単結合、Ｏ又はＳである。
ｘは、１～５の整数、具体的に１、２、３、４又は５であり、
ｒは、０～１０の整数、具体的に０、１、２、３、４、５、６、７、８、９又は１０であり、
ｐは、０～１０の整数、具体的に１、２、３、４、５、６、７、８、９又は１０、又は具体的に０～７の整数、又は０～５の整数であり、
ｑは、０～２０の整数、具体的に１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４又は１５、又は具体的に０～１０の整数、０～７の整数又は０～５の整数である。
（２）－（ＣＨ２ＣＨ２Ｒ６）ｘ－で表される化合物を含んだり、－（（ＣＨ２）ｐＲ７）ｑ（ＣＨ２）ｒ－で表される化合物を含んだり、或いは－（ＣＨ２）ｒ（Ｒ７（ＣＨ２）ｐ）ｑＲ８ＣＨ２－で表される化合物を含むことができる。
このとき、Ｒ６は、－Ｏ－、Ｃ１－Ｃ８アルキレン、－ＮＲ９－又は－Ｃ（Ｏ）ＮＲ１３－であり、
Ｒ７及びＲ８はそれぞれ独立して、単結合、－Ｏ－、－ＮＲ１０－、－Ｃ（Ｏ）ＮＲ１１－、－ＮＲ１２Ｃ（Ｏ）－、又はＣ３－Ｃ２０、具体的にＣ３－Ｃ１５、より具体的にＣ３－Ｃ１２ヘテロアリールであり、
Ｒ９～Ｒ１３はそれぞれ独立して、水素、Ｃ１－Ｃ６アルキル、（Ｃ１－Ｃ６アルキル）Ｃ６－Ｃ２０、具体的にＣ３－Ｃ１５、より具体的にＣ３－Ｃ１２アリール、又は（Ｃ１－Ｃ６アルキル）Ｃ３－Ｃ２０、具体的にＣ３－Ｃ１５、より具体的にＣ３－Ｃ１２ヘテロアリールである。
ｘは、１～５の整数、具体的に１、２、３、４又は５であり、
ｒは、０～１０の整数、具体的に０、１、２、３、４、５、６、７、８、９又は１０、又は具体的に０～７の整数又は０～５の整数であり、
ｐは、０～１０の整数、具体的に１、２、３、４、５、６、７、８、９又は１０、又は具体的に０～７の整数又は０～５の整数であり、
ｑは、０～２０の整数、具体的に１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４又は１５、又は具体的に０～１０の整数、０～７の整数又は０～５の整数である。
前記化学式（ＩＩ）におけるリンカーＬ１、又は化学式（ＩＩＩ）におけるＬ２は、抗体と薬物を安定的に連結させ、体内循環時にターゲット細胞まで到達後に、抗体－薬物コンジュゲートが細胞内に入り込み、抗体－薬物間解離現象によって薬物がよく離れながらターゲット癌細胞に薬効を示すようにする役割を担う。
前記化学式（ＩＩ）におけるリンカーＬ１は、ヒドロキシ、アルデヒド、ＯＮＨ２、ＮＨ２、又はＮ、Ｏ及びＳから選択される１個～３個のヘテロ原子を含む４～７－員又は５～７－員ヘテロアリールであり、前記ヘテロアリールは、ヒドロキシ、アルデヒド、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソから独立して選択される１～５個の置換基に置換されてよい。
前記化学式（ＩＩＩ）におけるＬ２は、－ＣＨ２ＮＨ－、－ＯＮ＝Ｃ（ＣＨ３）－、－ＯＮ＝、又は、Ｎ、Ｏ及びＳから選択される１個～３個のヘテロ原子を含む４～７－員又は５～７－員ヘテロ環であり、前記ヘテロ環は、ヒドロキシ、アルデヒド、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソから独立して選択される１～５個の置換基に置換されてよい。
具体的に、リンカーＬ１又はＬ２は、ＮＨ２、－ＯＨ、－ＯＮＨ２（ヒドロキシルアミン）、－ＮＨ２アルデヒド（ホルミル）、－ＣＯ２Ｈ、－ＳＨ、２－ホルミルピリジン、スルホンアミド、（ヘテロ）シクロオクチン、アジド（－Ｎ３）、又はマレイミド基を含むことができる。
場合によって、前記化学式（ＩＩ）におけるリンカーＬ１又は化学式（ＩＩＩ）におけるＬ２は、次の化学式（ＩＶ）で表される化合物を含むことができる；
Figure 2022523854000012
ａは、０又は１であり、
Ｒ１３は、Ｃ１－Ｃ２４アルキル、Ｃ３－Ｃ２４シクロアルキル、Ｃ３－Ｃ２４アリール、Ｃ３－Ｃ２４ヘテロアリール、Ｃ３－Ｃ２４アルキルアリール、Ｃ３－Ｃ２４アルキルヘテロアリール、Ｃ３－Ｃ２４アリールアルキル及びＣ３－Ｃ２４ヘテロアリールアルキルから選択され、前記ヘテロアリールは、Ｏ、Ｓ及びＮＲ１４から選択されるヘテロ原子を含み、ここで、Ｒ１４は、水素又はＣ１－Ｃ４アルキル基である。
具体的に、前記化学式（ＩＩ）において、リンカーＬ１は、下の化学式（Ｉ－ａ）又は（Ｉ－ｂ）の構造を有することができる：
Figure 2022523854000013
ここで、Ｑ１は、シクロオクチニル又はヘテロシクロオクチニルであり、前記シクロオクチニル又はヘテロシクロオクチニルは、任意にＣ３－Ｃ１２シクロアルキル、Ｃ３－Ｃ１２アリール及びＣ３－Ｃ１２ヘテロアリールからそれぞれ独立して選択される１又は２個の環と融合し、任意にヒドロキシ、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソに置換され、
Ｒ１３は、Ｃ１－Ｃ２４アルキル、Ｃ３－Ｃ２４シクロアルキル、Ｃ３－Ｃ２４アリール、Ｃ３－Ｃ２４ヘテロアリール、Ｃ３－Ｃ２４アルキルアリール、Ｃ３－Ｃ２４アルキルヘテロアリール、Ｃ３－Ｃ２４アリールアルキル及びＣ３－Ｃ２４ヘテロアリールアルキルから選択され、前記ヘテロアリールは、Ｏ、Ｓ及びＮＲ１４から選択されるヘテロ原子を含み、ここで、Ｒ１４は、水素又はＣ１－Ｃ４アルキル基であり、
Ｓｐ１、Ｓｐ２、Ｓｐ３及びＳｐ４は、スぺーサモイエティであって、それぞれ独立して、単結合、又は直鎖状又は分枝状Ｃ１－Ｃ２００アルキレン、Ｃ２－Ｃ２００アルケニレン、Ｃ２－Ｃ２００アルキニレン、Ｃ３－Ｃ２００シクロアルキレン、Ｃ５－Ｃ２００シクロアルケニレン、Ｃ８－Ｃ２００シクロアルキニレン、Ｃ７－Ｃ２００アルキルアリーレン、Ｃ７－Ｃ２００アリールアルキレン、Ｃ８－Ｃ２００アリールアルケニレン及びＣ９－Ｃ２００アリールアルキニレンから選択され、前記アルキレン、アルケニレン、アルキニレン、シクロアルキレン、シクロアルケニレン、シクロアルキニレン、アルキルアリーレン、アリールアルキレン、アリールアルケニレン及びアリールアルキニレンは、任意にＯ、Ｓ及びＮＲ１４から選択されるヘテロ原子に置換されるかそれを含み、
Ｚ１及びＺ２はそれぞれ独立して、Ｏ、Ｃ（Ｏ）及びＮ（Ｒ１３）から選択され、
ａはそれぞれ独立して、０又は１であり、
ｂはそれぞれ独立して、０又は１であり、
ｃは、０又は１であり、
ｄは、０又は１であり、
ｅは、０又は１であり、
ｆは、０～１５０の整数であり、
ｇは、０又は１であり、
ｉは、０又は１である。例えば、前記Ｑ１は、下記化学式から選択されてよい：
Figure 2022523854000014
ここで、Ｕは、Ｏ又はＮＲ１５であり、ここで、Ｒ１５は、水素、直線又は分枝状Ｃ１－Ｃ１２アルキル、Ｃ４－Ｃ１２アリール又はＣ４－Ｃ１２ヘテロアリールであり、より具体的に、Ｒ１５は、水素又はＣ１－Ｃ４アルキルである。
具体的に、前記化学式（ＩＩＩ）において、リンカーＬ２は、下の化学式（ＩＩ－ａ）又は（ＩＩ－ｂ）の構造を有することができる：
Figure 2022523854000015
ここで、Ｑ２は、トリアゾールと融合したシクロオクテニル、又はトリアゾールと融合したヘテロシクロオクテニルであり、前記シクロオクテニル又はヘテロシクロオクテニルは、任意にＣ３－Ｃ１２シクロアルキル、Ｃ３－Ｃ１２アリール及びＣ３－Ｃ１２ヘテロアリールからそれぞれ独立して選択される１又は２個の環とさらに融合し、任意にヒドロキシ、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソに置換され、前記Ｑ２は、トリアゾールに含まれた窒素原子を介してＡｂと連結され、
Ｓｐ１、Ｓｐ２、Ｓｐ３及びＳｐ４はスぺーサ部分であって、それぞれ独立して、単結合、又は直鎖状又は分枝状Ｃ１－Ｃ２００アルキレン、Ｃ２－Ｃ２００アルケニレン、Ｃ２－Ｃ２００アルキニレン、Ｃ３－Ｃ２００シクロアルキレン、Ｃ５－Ｃ２００シクロアルケニレン、Ｃ８－Ｃ２００シクロアルキニレン、Ｃ７－Ｃ２００アルキルアリーレン、Ｃ７－Ｃ２００アリールアルキレン、Ｃ８－Ｃ２００アリールアルケニレン及びＣ９－Ｃ２００アリールアルキニレンから選択され、前記アルキレン、アルケニレン、アルキニレン、シクロアルキレン、シクロアルケニレン、シクロアルキニレン、アルキルアリーレン、アリールアルキレン、アリールアルケニレン及びアリールアルキニレンは、任意に、Ｏ、Ｓ及びＮＲ１４から選択されるヘテロ原子に置換されるか或いはそれを含み、
Ｚ１及びＺ２はそれぞれ独立して、Ｏ、Ｃ（Ｏ）及びＮ（Ｒ１３）から選択され、
ａはそれぞれ独立して、０又は１であり、
ｂはそれぞれ独立して、０又は１であり、
ｃは、０又は１であり、
ｄは、０又は１であり、
ｅは、０又は１であり、
ｆは、０～１５０の整数であり、
ｇは、０又は１であり、
ｉは、０又は１である。
例えば、Ｑ２は、トリアゾールと融合したシクロオクテニルであり、前記シクロオクテニルは、Ｃ３－Ｃ６シクロアルキル及び／又はＣ３－Ｃ６アリールとさらに融合する。
例えば、スぺーサ部分であるＳｐ１、Ｓｐ２、Ｓｐ３及びＳｐ４はそれぞれ独立して、単結合、又は直鎖状又は分枝状Ｃ１－Ｃ２０アルキレン、Ｃ２－Ｃ２０アルケニレン、Ｃ２－Ｃ２０アルキニレン、Ｃ３－Ｃ２０シクロアルキレン、Ｃ５－Ｃ２０シクロアルケニレン、Ｃ８－Ｃ２０シクロアルキニレン、Ｃ７－Ｃ２０アルキルアリーレン、Ｃ７－Ｃ２０アリールアルキレン、Ｃ８－Ｃ２０アリールアルケニレン及びＣ９－Ｃ２０アリールアルキニレンから選択され、前記アルキレン、アルケニレン、アルキニレン、シクロアルキレン、シクロアルケニレン、シクロアルキニレン、アルキルアリーレン、アリールアルキレン、アリールアルケニレン及びアリールアルキニレンは、任意にＯ、Ｓ及びＮＲ１４から選択される１個～５個のヘテロ原子に置換されたり或いはこれを含むことができる。
本明細書において、“アルキル”は、脂肪族又は脂環族、飽和又は不飽和（不飽和、完全不飽和）炭化水素化合物の炭素原子から水素原子を除去して得られた１価部分であり、飽和アルキルは、例えば、メチル、エチル、プロピル、ブチル、ペンチル、ヘキシル、へプチルなど、飽和直鎖状アルキルは、例えば、メチル、エチル、ｎ－プロピル、ｎ－ブチル、ｎ－ペンチル（アミル）、ｎ－ヘキシル、ｎ－へプチルなど、飽和分枝鎖状アルキルは、例えば、イソプロピル、イソブチル、ｓｅｃ－ブチル、ｔｅｒｔ－ブチル、イソペンチル、ネオペンチルなどを含むことができる。
本明細書において、“アルケニレン”は、少なくとも１個の不飽和部位、すなわち、炭素－炭素二重結合を有する、任意の長さを有する炭素原子の線形又は分枝鎖１価炭化水素ラジカルを意味し、アルケニルラジカルは独立して、下記する１個以上の置換基に任意に置換されてよく、“シス”及び“トランス”配向を有するラジカルを含むことができる。
本明細書において、“シクロアルキル”は、環（ｃｙｃｌｉｃ）炭化水素化合物の脂環族環原子から水素原子を除去して得られた１価部分に関するものである。シクロアルキル基の例に、シクロプロパン、シクロブタン、シクロペンタン、シクロヘキサン、シクロヘプタン、メチルシクロプロパン、ジメチルシクロプロパン、メチルシクロブタン、ジメチルシクロブタン、メチルシクロペンタン、ジメチルシクロペンタン又はメチルシクロヘキサンのような飽和単環炭化水素化合物；
シクロプロペン、シクロブテン、シクロペンテン、シクロへキセン、メチルシクロプロペン、ジメチルシクロプロペン、メチルシクロブテン、ジメチルシクロブテン、メチルシクロペンテン、ジメチルシクロペンテン、又はメチルシクロへキセンのような不飽和単環炭化水素化合物を含むことができる。
本明細書において、“ヘテロシクリル”は、複素環化合物の環原子から水素原子を除去して得られた１価部分に関するものである。
本明細書において、接頭辞（例えば、Ｃ１－１２、Ｃ３－８など）は、炭素原子かヘテロ原子かに関係なく、環原子の数又は環原子の数の範囲のことを指す。例えば、本明細書で使われた用語“Ｃ３－６ヘテロシクリル”は、３～６個の環原子を有するヘテロシクリル基に関するものである。
単環ヘテロシクリル基の例は、下記から誘導されたものを含むが、これに制限されない：
Ｎ１：アジリジン、アゼチジン、ピロリジン、ピロリン、２Ｈ－又は３Ｈ－ピロール、ピぺリジン、ジヒドロピリジン、テトラヒドロピリジン、アゼピン；
Ｎ２：イミダゾリジン、ピラゾリジン、イミダゾリン、ピラゾリン、ピペラジン；
Ｏ１：オキシラン、オキセタン、オキソラン、オキソール、オキサン、ジヒドロピラン、ピラン、オキセピン；
Ｏ２：ジオキソラン、ジオキサン及びジオキセパン；
Ｏ３：トリオキサン；
Ｎ１Ｏ１：テトラヒドロオキサゾール、ジヒドロオキサゾール、テトラヒドロイソキサゾール、ジヒドロイソキサゾール、モルホリン、テトラヒドロオキサジン、ジヒドロオキサジン、オキサジン
Ｓ１：チイラン、チエタン、チオラン、チアン、チエパン；
Ｎ１Ｓ１：チアゾリン、チアゾリジン、チオモルホリン；
Ｎ２Ｏ１：オキサジアジン；
Ｏ１Ｓ１：オキサチオール、オキサチアン；及び
Ｎ１Ｏ１Ｓ１：オキサチアジン。
本明細書において、“アリール”とは、環原子を有する芳香族化合物の芳香族環原子から水素原子を除去して得られた１価部分のことを指す。Ｃ６－Ｃ２０アリールは、６～２０個の環原子を有するものであり、芳香族化合物の芳香族環原子から水素原子を除去することによって得られるモイエティを意味し、接頭辞（Ｃ６－Ｃ２０）は、炭素原子かヘテロ原子かに関係なく、すなわち、いずれも炭素原子を含むか、一つ以上の任意ヘテロ原子を含むことができ、環原子の数又は環原子の数の範囲を指すことができる。
本明細書において、“ヘテロアリール”は、１以上のヘテロ原子を含むアリールであり、例えば、ピリジン、ピリミジン、ベンゾチオフェン、フリル、ジオキサラニル、ピロリル、オキサゾリル、ピリジル、ピリダジニル、ピリミジニル、具体的に、ベンゾフラン、イソベンゾフラン、インドール、イソインドール、インドリジン、インドリン、イソインドリン、プリン（アデニン又はグアニン）、ベンズイミダゾール、インダゾール、ベンズオキサゾール、ベンズイソキサゾール、ベンゾジオキソール、ベンゾフラン、ベンゾトリアゾル、ベンゾチオフラン、ベンゾチアゾール、ベンゾチアジアゾールから誘導された２個の融合環を有するＣ９、クロメン、イソクロメン、クロマン、イソクロマン、ベンゾジオキサン、キノリン、イソキノリン、キノリジン、ベンゾキサジン、ベンゾジアジン、ピリドピリジン、キノキサリン、キナゾリン、シノリン、フタラジン、ナフチリジン、プテリジンから誘導された２個の融合環を有するＣ１０、ベンゾジアゼピンから誘導された２個の融合環を有するＣ１１、カルバゾール、ジベンゾフラン、ジベンゾチオフェン、カルボリン、ペリミジン、ピリドインドールから誘導された３個の融合環を有するＣ１３、アクリジン、キサンテン、チオキサンテン、オキサントレン、フェノキサチイン、フェナジン、フェノキサジン、フェノチアジン、チアントレン、フェナントリジン、フェナントロリン、フェナジンから誘導された３個の融合環を有するＣ１４を含むことができる。
本明細書において、“アルコキシ”は、－ＯＲ［ここで、Ｒはアルキル基］を意味し、例えは、メトキシ、エトキシ、ｎ－プロポキシ、イソプロポキシ、ｎ－ブトキシ、ｓｅｃ－ブトキシ、イソブトキシ、ｔｅｒｔ－ブトキシなどを挙げることができる。
本明細書において、“アルキレン”は、二重結合を含む炭化水素化合物であり、炭素数１～２０、炭素数１～１６、炭素数１～１２、炭素数１～８又は炭素数１～４のアルキレン基を意味できる。前記アルキレン基は、直鎖状、分枝状又は環状アルキレン基でよく、任意に一つ以上の置換基に置換されてよい。
本明細書において、“薬学的に許容される塩”には、薬学的に許容可能な遊離酸（ｆｒｅｅ ａｃｉｄ）によって形成された酸付加塩を用いることができ、前記遊離酸には有機酸又は無機酸を用いることができる。
前記有機酸は、これに制限されるないが、クエン酸、酢酸、乳酸、酒石酸、マレイン酸、フマル酸、ギ酸、プロピオン酸、シュウ酸、トリフルオロ酢酸、ベンゾ酸、グルコン酸、メタスルホン酸、グリコール酸、コハク酸、４－トルエンスルホン酸、グルタミン酸及びアスパラギン酸を含む。また、前記無機酸は、これに制限されないが、塩酸、ブロム酸、硫酸及びリン酸を含む。
例えば、化合物が陰イオンであるか又は陰イオンであり得る作用基を有する場合（例えば、－ＣＯＯＨは－ＣＯＯ－であり得る。）、適切な陽イオンで塩を形成できる。適切な無機陽イオンの例は、アルカリ金属イオン、例えば、Ｎａ＋及びＫ＋、アルカリ土金属陽イオン、例えば、Ｃａ２＋及びＭｇ２＋、及び他の陽イオン、例えば、Ａｌ３＋を含むが、それに限定されない。適切な有機陽イオンの例は、アンモニウムイオン（すなわち、ＮＨ４ ＋）及び置換されたアンモニウムイオン（例えば、ＮＨ３Ｒ＋、ＮＨ２Ｒ２ ＋、ＮＨＲ３ ＋、ＮＲ４ ＋）を含むが、これに限定されない。
一部の適切な置換されたアンモニウムイオンの例は、次のものから誘導されたものである。：エチルアミン、ジエチルアミン、ジシクロヘキシルアミン、トリエチルアミン、ブチルアミン、エチレンジアミン、エタノールアミン、ジエタノールアミン、ピペラジン、ベンジルアミン、フェニルベンジルアミン、コリン、メグルミン及びトロメタミンの他に、アミノ酸、例えば、リジン及びアルギニン。通常の４級アンモニウムイオンの例は、Ｎ（ＣＨ３）４＋である。
化合物が陽イオンであるか又は陽イオンであり得る作用基を有する場合（例えば、－ＮＨ２は－ＮＨ３ ＋であり得る。）、適切な陰イオンで塩を形成できる。適切な無機陰イオンの例は、次の無機酸から誘導されたものを含むが、これに限定されない：塩酸、ブロム化水素酸、ヨード化水素酸、硫酸、亜硫酸、硝酸、亜硝酸、リン酸及び亜リン酸などを挙げることができる。
適切な有機陰イオンの例は、次の有機酸から誘導されたものを含むが、これに限定されない：２－アセチオキシ安息香酸、酢酸、アスコルビン酸、アスパラギン酸、安息香酸、カンファースルホン酸、桂皮酸、クエン酸、エデト酸、エタンジスルホン酸、エタンスルホン酸、フマル酸、グルコヘプタン酸、グルコン酸、グルタミン酸、グリコール酸、ヒドロキシマレイン酸、ヒドロキシナフタレンカルボン酸、イセチオン酸、乳酸、ラクトビオン酸、ラウリン酸、マレイン酸、リンゴ酸、メタンスルホン酸、粘液酸、オレイン酸、シュウ酸、パルミチン酸、パモ酸、パントテン酸、フェニル酢酸、フェニルスルホン酸、プロピオン酸、ピルビン酸、サリチル酸、ステアリン酸、コハク酸、スルファニル酸、酒石酸、トルエンスルホン酸、及び吉草酸などを挙げることができる。適当な重合体有機陰イオンの例には、次の重合体酸から誘導されたものを含むが、これらに限定されない： タンニン酸、カルボキシメチルセルロースなどを挙げることができる。
本明細書において、“溶媒和物（ｓｏｌｖａｔｅ）”とは、本発明に係る化合物と溶媒分子（ｓｏｌｖｅｎｔ ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）間の分子複合体（ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｃｏｍｐｌｅｘ）のことを指し、溶媒和物の例は、水、イソプロパノール、エタノール、メタノール、ジメチルスルホキシド（ｄｉｍｅｔｈｙｌｓｕｌｆｏｘｉｄｅ）、エチルアセテート、酢酸、エタノールアミン又はその混合溶媒と結合した本発明に係る化合物を含むが、これに制限されるものではない。
選択的に、アミノ酸又はペプチド、例えば、ジペプチドをさらに含むことができる。具体的に、Ｖａｌ－Ｃｉｔ、Ｐｈｅ－Ｃｉｔ、Ｐｈｅ－Ｌｙｓ、Ｖａｌ－Ｌｙｓ、Ｖａｌ－Ｇｌｕ、Ｖａｌ－Ａｓｐ、Ｖａｌ－Ｓｅｒ又はＶａｌ－Ｇｌｙのジペプチドを含むことができる。Ｖａｌ－Ｃｉｔジペプチドリンカーが好ましい。単一アミノ酸が含まれる場合、例えば、Ｃｉｔ、Ｇｌｕ、Ｌｙｓ又はＳｅｒを含むことができる。このようなアミノ酸又はペプチドを含むリンカーは、カテプシンＢによって切断可能である。
前記化学式（ＩＩ）の化合物は、具体的に、次の化学式で表示され得る：
Figure 2022523854000016
Figure 2022523854000017
Figure 2022523854000018
本発明に係る化学式（ＩＩ）の化合物は、抗体と結合して抗体－薬物コンジュゲートを形成するためのリンカー部分を有している、リンカー－薬物複合体であり得る。一具現例において、前記リンカーは、スぺーサを含む概念であり得る。
本発明に係る化学式（ＩＩ）の化合物が有するリンカーは、薬物との結合のためにマレイミド、アルデヒド、アミノオキシル、２－ＰＣＡ又はシクロオクチン基を有することができるが、これに制限されない。
例えば、本発明に係る化学式（ＩＩ）の化合物が有するリンカーがマレイミド基を含む場合、本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートの生成のために抗体に導入されたシステインアミノ酸を介してリンカーが抗体と連結されてよい。例えば、システインアミノ酸は加工されて薬物接合に利用可能であるが、抗体のフォールディングを撹乱させず、抗原結合及び効果器機能を変形させない位置でシステインに置換された抗体であるＴＨＩＯＭＡＢTM抗体を介して結合してよい。加工されたシステインチオール基を介して細胞毒性薬物に接合され得るので、均一な化学量論（例えば、単一加工システインを有する抗体において、抗体当たりに最大で薬物２）を含むＴＨＩＯＭＡＢTM抗体－薬物コンジュゲート（ＴＤＣ）を得ることができる。
ＴＨＩＯＭＡＢTM抗体の他にも、システインアミノ酸を含む抗体であれば、下のようなマイケル反応（Ｍｉｃｈａｅｌ ｒｅａｃｔｉｏｎ）によってマレイミドリンカーを有する化学式（ＩＩ）の化合物と結合して抗体－薬物結合体を生成することができる。
Figure 2022523854000019
例えば、抗体の軽鎖－Ｆａｂ、重鎖－Ｆａｂ又は重鎖－Ｆｃ内の特定のアミノ酸位置におけるように、薬物付着のために個別の位置に加工されたシステインを含むことができる。
システイン置換は、例えば、カーバットナンバリングに従って、重鎖において、Ｙ３３Ｃ、Ｇ１６２Ｃ、Ｖ１８４Ｃ、Ｉ１９５Ｃ、Ｓ４２０Ｃ、Ｙ４３２Ｃ、Ｑ４３４Ｃ、Ｒ１９Ｃ、Ｅ４６Ｃ、Ｔ５７Ｃ、Ｙ５９Ｃ、Ａ６０Ｃ、Ｍ１００ｃＣ、Ｗ１０３Ｃ、Ｇ１６２Ｃ、Ｉ１９５Ｃ、Ｖ２５８Ｃ、Ｓ４２０Ｃ、Ｈ４２５Ｃ、及びＮ４３０Ｃからなる群から選ばれてよい。また、カーバットナンバリングにしたがって、軽鎖において、Ｙ５５Ｃ、Ｇ６４Ｃ、Ｔ８５Ｃ、Ｔ１８０Ｃ、Ｎ４３０Ｃ、Ｔ３１Ｃ、Ｓ５２Ｃ、Ｇ６４Ｃ、Ｒ６６Ｃ、Ａ１９３Ｃ及びＮ４３０Ｃからなる群から選択されるか、場合によって、ＬＣ－Ｉ１０６Ｃ、ＬＣ－Ｒ１０８Ｃ、ＬＣ－Ｒ１４２Ｃ、及びＬＣ－Ｋ１４９Ｃからなる群から選ばれてもよい。
例えば、本発明に係る化学式（ＩＩ）の化合物が有するリンカーが、アルデヒド基を含む場合、本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートの生成のために、抗体タンパク質のＮ末端又はリジンアミノ酸のＮＨ２とリンカー内のアルデヒド基を、下記のように還元的アルキル化（Ｒｅｄｕｃｔｉｖｅ ａｌｋｙｌａｔｉｏｎ）させることにより、リンカーが抗体と連結されてよい。
Figure 2022523854000020
例えば、本発明に係る化学式（ＩＩ）の化合物が有するリンカーがアミノオキシル基を含む場合、本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートの生成のために、抗体アミノ酸内のケトン基とリンカー内のアミノオキシル基を、下記のようにオキシムライゲーション（Ｏｘｉｍｅ ｌｉｇａｔｉｏｎ）させることによって、リンカーが抗体と連結されてよい。
Figure 2022523854000021
例えば、本発明に係る化学式（ＩＩ）の化合物が有するリンカーが２－ＰＣＡ（２－Ｐｙｒｉｄｉｎｅｃａｒｂｏｘａｌｄｅｈｙｄｅ）を含む場合、本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートの生成のために、抗体アミノ酸内のＮＨ２とリンカー内の２－ＰＣＡを、下記のようにＮ末端イミダゾリジノン形成（Ｎ－ｔｅｒｍｉｎａｌ ｉｍｉｄａｚｏｌｉｄｉｎｏｎｅ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ）反応をさせることにより、リンカーが抗体と連結されてよい。
Figure 2022523854000022
例えば、本発明に係る化学式（ＩＩ）の化合物が有するリンカーがシクロオクチン基を含む場合、本発明に係る抗体－薬物コンジュゲートの生成のために、アジド基（－Ｎ３）を有するように変形された抗体内アジド基と、リンカー内のシクロオクチン基とを下記のようにクリック反応（ｃｌｉｃｋ－ｒｅａｃｔｉｏｎ）させることにより、リンカーが抗体と連結されてよい。
Figure 2022523854000023
上述したリンカーの種類及びこれを抗体と接合して抗体－薬物コンジュゲートを形成する具体的反応工程は、既に当業界に公知であり、通常の技術者が格別な努力無しで容易に行うことができる。前記リンカーの他にも、当業界に知られており、通常の技術者によって使用可能な様々なリンカーが本発明の抗体－薬物結合体の製造のために用いられてもよく、このようなリンカーと結合した抗体－薬物結合体の構造も、通常の技術者にとって容易に予測可能である。
本明細書において、抗体は、ターゲット細胞、例えば、癌細胞によって固有に発現又は過発現する抗原を認識し、高度の特異性で癌細胞に薬物モイエティを伝達するための標的作用剤として働き得る。抗原に抗体が結合すると、抗原－コンジュゲートが複合体を形成して内在化し、究極としてはリソゾームの内部に入り、薬物モイエティと抗体との間のリンカーが切断されながら薬物モイエティが放出され、細胞毒性効果が発揮される。
前記抗体は、例えば、次の抗原に結合できるが、これに制限されない：
（１）ＢＭＰＲ１Ｂ（骨形態形成タンパク質受容体－ＩＢ型、ジェンバンク承認番号ＮＭ＿００１２０３）；
（２）Ｅ１６（ＬＡＴ１、ＳＬＣ７Ａ５、ジェンバンク承認番号ＮＭ＿００３４８６）；
（３）ＳＴＥＡＰ１（前立腺の６回の膜横断上皮抗原、ジェンバンク承認番号ＮＭ＿０１２４４９）；
（４）０７７２Ｐ（ＣＡ１２５、ＭＵＣ１６、ジェンバンク承認番号ＡＦ３６１４８６）；
（５）ＭＰＦ（ＭＰＦ、ＭＳＬＮ、ＳＭＲ、巨核細胞強化因子、メソテリン、ジェンバンク承認番号ＮＭ＿００５８２３）；
（６）Ｎａｐｉ３ｂ（ＮＡＰＩ－３Ｂ、ＮＰＴＩＩｂ、ＳＬＣ３４Ａ２、溶質運搬体族３４（リン酸ナトリウム）、構成員２、第ＩＩ型ナトリウム依存性ホスフェート輸送体３ｂ、ジェンバンク承認番号ＮＭ＿００６４２４）；
（７）Ｓｅｍａ５ｂ（ＦＬＪ１０３７２、ＫＩＡＡ１４４５、Ｍｍ．４２０１５、ＳＥＭＡ５Ｂ、ＳＥＭＡＧ、セマフォリン５ｂ Ｈｌｏｇ、セマドメイン、７個のトロンボスポンジン反復体（第１型及び類似第１型）、膜横断ドメイン（ＴＭ）及び短い細胞質ドメイン、（セマフォリン）５Ｂ、ジェンバンク承認番号ＡＢ０４０８７８）；
（８）ＰＳＣＡ ｈｌｇ（２７０００５０Ｃ１２Ｒｉｋ、Ｃ５３０００８Ｏ１６Ｒｉｋ、ＲＩＫＥＮ ｃＤＮＡ２７０００５０Ｃ１２、ＲＩＫＥＮ ｃＤＮＡ２７０００５０Ｃ１２遺伝子、ジェンバンク承認番号ＡＹ３５８６２８）；
（９）ＥＴＢＲ（エンドテリンＢ型受容体、ジェンバンク承認番号ＡＹ２７５４６３）；
（１０）ＭＳＧ７８３（ＲＮＦ１２４、仮想タンパク質ＦＬＪ２０３１５、ジェンバンク承認番号ＮＭ＿０１７７６３）；
（１１）ＳＴＥＡＰ２（ＨＧＮＣ＿８６３９、ＩＰＣＡ－１、ＰＣＡＮＡＰ１、ＳＴＡＭＰ１、ＳＴＥＡＰ２、ＳＴＭＰ、前立腺癌関連遺伝子１、前立腺癌関連タンパク質１、前立腺の６回の膜横断上皮抗原２、６回の膜横断前立腺タンパク質、ジェンバンク承認番号ＡＦ４５５１３８）；
（１２）ＴｒｐＭ４（ＢＲ２２４５０、ＦＬＪ２００４１、ＴＲＰＭ４、ＴＲＰＭ４Ｂ、一時的受容体潜在的陽イオンチャネル、Ｍ亜族、構成員４、ジェンバンク承認番号ＮＭ＿０１７６３６）；
（１３）ＣＲＩＰＴＯ（ＣＲ、ＣＲ１、ＣＲＧＦ、ＣＲＩＰＴＯ、ＴＤＧＦ１、奇形癌腫由来成長因子、ジェンバンク承認番号ＮＰ＿００３２０３又はＮＭ＿００３２１２）；
（１４）ＣＤ２１（ＣＲ２（補体受容体２）又はＣ３ＤＲ（Ｃ３ｄ／エプスタインバールウイルス受容体）又はＨｓ．７３７９２、ジェンバンク承認番号Ｍ２６００４）；
（１５）ＣＤ７９ｂ（ＣＤ７９Ｂ、ＣＤ７９β、ＩＧｂ（イムノグロブリン関連ベータ）、Ｂ２９、ジェンバンク承認番号ＮＭ＿０００６２６）；
（１６）ＦｃＲＨ２（ＩＦＧＰ４、ＩＲＴＡ４、ＳＰＡＰ１Ａ（ＳＨ２ドメイン含有ホスファターゼ固定タンパク質１ａ）、ＳＰＡＰ１Ｂ、ＳＰＡＰ１Ｃ、ジェンバンク承認番号ＮＭ＿０３０７６４）；
（１７）ＨＥＲ２（ジェンバンク承認番号Ｍ１１７３０）
（１８）ＥＧＦＲ、ＨＥＲ３及びＨＥＲ４から選択されたＥｒｂＢ受容体
（１９）ＮＣＡ（ジェンバンク承認番号Ｍ１８７２８）；
（２０）ＭＤＰ（ジェンバンク承認番号ＢＣ０１７０２３）；
（２１）ＩＬ２０Ｒα（ジェンバンク承認番号ＡＦ１８４９７１）；
（２２）ブレビカン（ジェンバンク承認番号ＡＦ２２９０５３）；
（２３）ＥｐｈＢ２Ｒ（ジェンバンク承認番号ＮＭ＿００４４４２）；
（２４）ＡＳＬＧ６５９（ジェンバンク承認番号ＡＸ０９２３２８）；
（２５）ＰＳＣＡ（ジェンバンク承認番号ＡＪ２９７４３６）；
（２６）ＧＥＤＡ（ジェンバンク承認番号ＡＹ２６０７６３）；
（２７）ＢＡＦＦ－Ｒ（Ｂ細胞活性化因子受容体、ＢＬｙＳ受容体３、ＢＲ３、ＮＰ＿４４３１７７．１）；
（２８）ＣＤ２２（Ｂ－細胞受容体ＣＤ２２－Ｂアイソ型、ＮＰ－００１７６２．１）；
（２９）ＣＤ７９ａ（Ｉｇベータ（ＣＤ７９Ｂ）と共有的に相互作用し、ＩｇＭ分子と表面で複合体を形成するＢ細胞特異的タンパク質であるＣＤ７９Ａ、ＣＤ７９α、イムノグロブリン関連アルファは、Ｂ細胞分化に関与する信号を伝達。ジェンバンク承認番号ＮＰ＿００１７７４．１）；
（３０）ＣＸＣＲ５（ＣＸＣＬ１３ケモキンによって活性化されたＧタンパク質カップリングされた受容体であるバーキットリンパ腫受容体１は、リンパ球移動及び体液性免疫に作用し、ＨＩＶ－２感染に参加し、ＡＩＤＳ、リンパ腫、骨髄腫及び白血病の発病と関連があると思われる。ジェンバンク承認番号ＮＰ＿００１７０７．１）；
（３１）ＨＬＡ－ＤＯＢ（ペプチドに結合してＣＤ４＋ Ｔリンパ球に提示する、ＭＨＣクラスＩＩ分子（Ｉａ抗原）のベータサブユニット、ジェンバンク承認番号ＮＰ＿００２１１１．１）；
（３２）Ｐ２Ｘ５（細胞外ＡＴＰによってゲートされるイオンチャネルである、プリン性受容体Ｐ２Ｘリガンド－ゲートイオンチャネル５は、シナプス伝達及び神経発生に関与でき、その欠乏は特発性排尿筋不安定の病態生理に寄与し得る。ジェンバンク承認番号ＮＰ＿００２５５２．２）；
（３３）ＣＤ７２（Ｂ－細胞分化抗原ＣＤ７２、Ｌｙｂ－２、ジェンバンク承認番号ＮＰ＿００１７７３．１）；
（３４）ＬＹ６４（ロイシン豊富反復体（ＬＲＲ）族の第Ｉ型膜タンパク質である、リンパ球抗原６４（ＲＰ１０５）は、Ｂ細胞活性化及びアポトーシスを調節し、これの機能喪失は、全身性紅斑性ループス患者の疾病活性増加と関連がある。ジェンバンク承認番号ＮＰ＿００５５７３．１）；
（３５）ＦｃＲＨ１（Ｃ２型Ｉｇ様及びＩＴＡＭドメインを含有するイムノグロブリンＦｃドメインに対する推定的受容体であるＦｃ受容体様タンパク質１は、Ｂリンパ球分化に関与できる。ジェンバンク承認番号ＮＰ＿４４３１７０．１）
（３６）ＩＲＴＡ２（Ｂ細胞発生及びリンパ腫発生に働き得る推定的免疫受容体であるイムノグロブリン巨大族受容体転座関連２、転座による前記遺伝子脱調節は、いくつかのＢ細胞悪性腫瘍で起こる。ジェンバンク承認番号ＮＰ＿１１２５７１．１）；及び
（３７）ＴＥＮＢ２（成長因子のＥＧＦ／ヘレグリン族及びポリスタチンと関連のある推定的膜横断プロテオグリカン、ジェンバンク承認番号ＡＦ１７９２７４）
（３８）ＭＡＧＥ－Ｃ１／ＣＴ７（精巣癌過発現タンパク質）
（３９）アンドロゲン受容体（ａｎｄｒｏｇｅｎ ｒｅｃｅｐｔｏｒ）、ＰＴＥＮ、ヒトカリクレイン関連ペプチダーゼ３（ｈｕｍａｎ ｋａｌｌｉｋｒｅｉｎ－ｒｅｌａｔｅｄ ｐｅｐｔｉｄａｓｅ ３）（前立腺癌で過発現するタンパク質）
（４０）ＣＤ２０
（４１）ＣＤ３０
（４２）ＣＤ３３
（４３）ＣＤ５２
（４４）ＥｐＣａｍ
（４５）ＣＥＡ
（４６）ｇｐＡ３３
（４７）ムチン（Ｍｕｃｉｎｓ）
（４８）ＴＡＧ－７２
（４９）炭酸脱水酵素ＩＸ（Ｃａｒｂｏｎｉｃ ａｎｈｙｄｒａｓｅ ＩＸ）
（５０）ＰＳＭＡ
（５１）葉酸受容体（ｆｏｌａｔｅ ｒｅｃｅｐｔｏｒ）（ＦＯＬＲ遺伝子によって発現するタンパク質ファミリ。葉酸と高い結合力を有しており、５－メチルテトラヒドロ葉酸（５－ｍｅｔｈｙｌｔｅｔｒａｈｙｄｒｏｆｏｌａｔｅ）を細胞内に運搬する。）
（５２）ガングリオシド（ＧＤ２、ＧＤ３、ＧＭ２）
（５３）糖水和物Ｌｅｗｉｓ－Ｙ
（５４）ＶＥＧＦ
（５５）ＶＥＧＦＲ
（５６）ａＶｂ３
（５７）ａ５ｂ１
（５８）ＥＲＢ３
（５９）ｃ－ＭＥＴ
（６０）ＥｐｈＡ３
（６１）ＴＲＡＩＬ－Ｒ１、ＴＲＡＩＬ－Ｒ２
（６２）ＲＡＮＫＬ
（６３）ＦＡＰ
（６４）テネイシン（Ｔｅｎａｓｃｉｎ）
（６５）ＲＯＲ１
（６６）ＢＣＭＡ、又は
（６７）ＣＬＬ１。
前記抗体は、例えば、抗ＢＣＭＡ抗体、抗ＲＯＲ１抗体、抗Ｈｅｒ２抗体、抗ＮａＰｉ２ｂ抗体及び抗ＣＬＬ１抗体からなる群で選択されてよいが、これに制限されるものではない。具体的実施例において、抗ＢＣＭＡ抗体及び抗ＲＯＲ１抗体としては、次の抗体をＡＤＣ製作に使用した。
Figure 2022523854000024
抗Ｈｅｒ２抗体には、公知のトラスツズマブ（Ｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂ）の配列を、抗ＮａＰｉ２ｂ抗体には、公知の１０Ｈ１抗体の配列（１０Ｈ１ＶＬ：配列番号１７、１０Ｈ１ＶＨ：配列番号１８）を、そして抗ＣＬＬ１抗体には、公知の６Ｅ７（Ｎ５４Ａ）抗体（６Ｅ７（Ｎ５４Ａ）ＶＬ：配列番号１８、６Ｅ７（Ｎ５４Ａ）ＶＨ：配列番号１９）の配列を用いた。
本明細書で使われる用語“抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）”とは、特定抗原に特異的に結合するポリペプチド又はタンパク質のことを意味する。前記抗体には、抗原に特異的に結合する完全な抗体形態の他に、該抗体の抗原結合断片も含まれる。
完全な抗体は、２個の全長の軽鎖及び２個の全長の重鎖を有する構造であり、それぞれの軽鎖は重鎖とジスルフィド結合で連結されている。重鎖定常領域は、ガンマ（γ）、ミュー（μ）、アルファ（α）、デルタ（δ）及びエプシロン（ε）タイプを有し、サブクラスとして、ガンマ１（γ１）、ガンマ２（γ２）、ガンマ３（γ３）、ガンマ４（γ４）、アルファ１（α１）及びアルファ２（α２）を有する。軽鎖の定常領域は、カッパ（κ）及びラムダ（λ）タイプを有する。
抗体の抗原結合断片又は抗体断片とは、抗原結合機能を保有している断片のことを意味し、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）、Ｆ（ａｂ’）２及びＦｖなどを含む。抗体断片のうちＦａｂは、軽鎖及び重鎖の可変領域と軽鎖の定常領域及び重鎖の最初の定常領域（ＣＨ１）を有する構造であり、１個の抗原結合部位を有する。Ｆａｂ’は、重鎖ＣＨ１ドメインのＣ末端に一つ以上のシステイン残基を含むヒンジ領域（ｈｉｎｇｅ ｒｅｇｉｏｎ）を有するという点でＦａｂと異なる。Ｆ（ａｂ’）２抗体は、Ｆａｂ’のヒンジ領域のシステイン残基がジスルフィド結合をなしながら生成される。Ｆｖは、重鎖可変領域及び軽鎖可変領域だけを有している最小の抗体片である。二本鎖Ｆｖ（ｔｗｏ－ｃｈａｉｎ Ｆｖ）は、非共有結合で重鎖可変領域と軽鎖可変領域とが連結されており、一本鎖Ｆｖ（ｓｉｎｇｌｅ－ｃｈａｉｎ Ｆｖ，ｓｃＦｖ）は一般に、ペプチドリンカーを介して重鎖の可変領域と軽鎖の可変領域とが共有結合で連結されたり又はＣ末端で直接連結され、二本鎖Ｆｖと同様にダイマーのような構造をなすことができる。このような抗体断片は、タンパク質加水分解酵素を用いて得ることができ（例えば、全抗体をパパインで制限切断すればＦａｂが得られ、ペプシンで切断すればＦ（ａｂ’）２断片が得られる。）、遺伝子組換え技術を用いて作製してもよい。
重鎖定常領域は、ガンマ（γ）、ミュー（μ）、アルファ（α）、デルタ（δ）又はエプシロン（ε）のいずれか一アイソタイプから選択されてよい。例えば、定常領域は、ガンマ１（ＩｇＧ１）、ガンマ３（ＩｇＧ３）又はガンマ４（ＩｇＧ４）である。軽鎖定常領域は、カッパ又はラムダ型であってよい。
本明細書で使われる用語“重鎖”とは、抗原に特異性を付与するための十分な可変領域配列を有するアミノ酸配列を含む可変領域ドメインＶＨ及び３個の定常領域ドメインＣＨ１、ＣＨ２及びＣＨ３を含む全長重鎖及びその断片を全て意味する。また、本明細書で使われる用語“軽鎖”とは、抗原に特異性を付与するための十分な可変領域配列を有するアミノ酸配列を含む可変領域ドメインＶＬ及び定常領域ドメインＣＬを含む全長軽鎖及びその断片を全て意味する。
本発明の抗体は、単一クローン抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、一本鎖Ｆｖｓ（ｓｃＦＶ）、一本鎖抗体、Ｆａｂ断片、Ｆ（ａｂ’）断片又はジスルフィド結合Ｆｖｓ（ｓｄＦＶ）抗体、又はこれらの抗体のエピトープ結合断片などを含むが、これに限定されるものではない。
前記単一クローン抗体は、実質的に同質的抗体集団から得た抗体、すなわち、集団を占めている個々の抗体が、微量で存在し得る可能な天然発生的突然変異以外は同一であるものを指す。単一クローン抗体は高度に特異的であるため、単一抗原部位に対抗して誘導される。典型的に、異なる決定因子（エピトープ）に対して指示された異なる抗体を含む通常の（ポリクロナール）抗体製剤とは違い、それぞれのモノクローナル抗体は抗原上の単一決定因子に対して指示される。
“エピトープ”は、抗体が特異的に結合可能なタンパク質決定部位（ｄｅｔｅｒｍｉｎａｎｔ）を意味する。エピトープは、一般に化学的に活性である表面分子群、例えば、アミノ酸又は糖側鎖で構成され、一般に、特定の３次元の構造的特徴の他に、特定の電荷特性も有する。立体的エピトープ及び非立体的エピトープは、変性溶媒の存在下で前者に対する結合は消失されるが、後者に対しては消失されないという点で区別される。
前記“ヒト化”形態の非ヒト（例えば、ネズミ科（ｍｕｒｉｎｅ））抗体は、非ヒト免疫グロブリンから由来した最小配列を含有するキメラ抗体である。大部分の場合、ヒト化抗体は、受容者の超可変領域からの残基を、目的とする特異性、親和性及び能力を保有している非ヒト種（供与者抗体）、例えば、マウス、ラット、ウサギ又は非ヒト霊長類の超可変領域からの残基に置き換えたヒト免疫グロブリン（受容者抗体）である。
前記“ヒト抗体”とは、ヒト免疫グロブリンから由来する分子であり、相補性決定領域、構造領域を含む抗体を構成する全てのアミノ酸配列がヒトの免疫グロブリンで構成されているものを意味する。
重鎖及び／又は軽鎖の一部が特別な種から由来したり、又は特別な抗体部類又は亜部類に属する抗体内の相応する配列と同一であるか或いはそれと相同性であるのに対し、残りの鎖はさらに他の種から由来したり、又はさらに他の抗体部類又は亜部類に属する抗体内の相応する配列と同一であるか或いはそれと相同性である“キメラ”抗体（免疫グロブリン）の他、目的とする生物学的活性を示す前記抗体の断片も含まれる。
本願に使われているような“抗体可変ドメイン”は、相補性決定領域（ＣＤＲ；すなわち、ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、及びＣＤＲ３）、及び骨格領域（ＦＲ）のアミノ酸配列を含む抗体分子の軽鎖及び重鎖部分のことを指す。ＶＨは、重鎖の可変ドメインのことを指す。ＶＬは、軽鎖の可変ドメインのことを指す。
“相補性決定領域”（ＣＤＲ；すなわち、ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、及びＣＤＲ３）は、抗原結合のために必要な存在である抗体可変ドメインのアミノ酸残基のことを指す。各可変ドメインは典型的に、ＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３として確認された３個のＣＤＲ領域を有する。
“骨格領域”（ＦＲ）は、ＣＤＲ残基以外の可変ドメイン残基である。各可変ドメインは典型的に、ＦＲ１、ＦＲ２、ＦＲ３及びＦＲ４として確認された４個のＦＲを有する。
本発明の抗体又は抗原結合断片は、本明細書に記載された抗体の配列の他に、その生物学的均等物も含むことができる。例えば、抗体の結合親和度及び／又はその他生物学的特性をより改善させるために、抗体のアミノ酸配列に更なる変化を与えることができる。このような変形は、例えば、抗体のアミノ酸配列残基の欠失、挿入及び／又は置換を含む。このようなアミノ酸変異は、アミノ酸側鎖置換体の相対的類似性、例えば、疎水性、親水性、電荷、サイズなどに基づいてなる。アミノ酸側鎖置換体のサイズ、形態及び種類に対する分析により、アルギニン、リジン（ｌｙｓｉｎｅ）及びヒスチジンはいずれも陽電荷を帯びた残基であり；アラニン、グリジン及びセリンは、類似のサイズを有し；フェニルアラニン、トリプトファン及びチロシンは類似の形態を有するということがわかる。したがって、このような考慮事項に基づき、アルギニン、リジン及びヒスチジン；アラニン、グリジン及びセリン；そしてフェニルアラニン、トリプトファン及びチロシンは生物学的に機能均等物といえる。
上述した生物学的均等活性を有する変異を考慮すると、本発明の抗体又はこれをコードする核酸分子は、配列番号に記載された配列と実質的な同一性（ｓｕｂｓｔａｎｔｉａｌ ｉｄｅｎｔｉｔｙ）を示す配列も含むものと解釈される。前記の実質的な同一性は、上記の本発明の配列と任意の他の配列を最大限に対応するようにアラインし、当業界における通常のアルゴリズムを用いてアラインされた配列を分析した場合に、少なくとも９０％の相同性、最も好ましくは少なくとも９５％の相同性、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上の相同性を示す配列を意味する。配列比較のためのアラインメント方法は、当業界に公知されている。ＮＣＢＩ ＢＬＡＳＴ（Ｂａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ Ｔｏｏｌ）は、ＮＣＢＩなどから接近可能であり、インターネット上でＢＬＡＳＴＰ、ＢＬＡＳＴＭ、ＢＬＡＳＴＸ、ＴＢＬＡＳＴＮ及びＴＢＬＡＳＴＸのような配列分析プログラムと連動して用いることができる。ＢＬＡＳＴは、ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／で接続可能である。このプログラムを用いた配列相同性比較方法は、ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／ｂｌａｓｔ＿ｈｅｌｐ．ｈｔｍｌで確認できる。
これに基づき、本発明の抗体又はその抗原結合断片は、明細書に記載の明示された配列又は全体と比較して、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、又はそれ以上の相同性を有することができる。このような相同性は、当業界に公知の方法による配列比較及び／又は整列によって決定されてよい。例えば、配列比較アルゴリズム（すなわち、ＢＬＡＳＴ又はＢＬＡＳＴ ２．０）、手動整列、肉眼検査を用いて本発明の核酸又はタンパク質のパーセント配列相同性を決定することができる。
場合によって、本発明の抗体又はその抗原結合断片をコードする核酸を分離して抗体又はその抗原結合断片を組み換えて生産することができる。核酸を分離し、これを複製可能なベクター内に挿入して、さらにクローニングしたり（ＤＮＡの増幅）又はさらに発現させる。これに基づき、本発明は、さらに他の観点において、前記核酸を含むベクターに関する。
“核酸”は、ＤＮＡ（ｇＤＮＡ及びｃＤＮＡ）及びＲＮＡ分子を包括的に含む意味を有し、核酸において基本構成単位であるヌクレオチドは、自然のヌクレオチドの他に、糖又は塩基部位が変形された類似体（ａｎａｌｏｇｕｅ）も含む。本発明の重鎖及び軽鎖可変領域をコードする核酸の配列は変形されてよい。前記変形は、ヌクレオチドの追加、欠失、又は非保存的置換又は保存的置換を含む。
前記抗体を暗号化するＤＮＡは、通常の過程を用いて（例えば、抗体の重鎖と軽鎖を暗号化するＤＮＡと特異的に結合可能なオリゴヌクレオチドプローブを用いることによって）容易に分離又は合成する。多くのベクターが入手可能である。ベクター成分には一般に、次のいずれか一つ以上が含まれるが、それに制限されない：信号配列、複製起点、一つ以上のマーカー遺伝子、増強因子要素、プロモーター、及び転写終結配列。
本明細書で使われる用語、“ベクター”は、宿主細胞で目的遺伝子を発現させるための手段であり、プラスミドベクター；コスミドベクター；バクテリオファージベクター、アデノウイルスベクター、レトロウイルスベクター及びアデノ関連ウイルスベクターのようなウイルスベクターなどを含む。前記ベクターにおいて抗体をコードする核酸はプロモーターと作動的に連結されている。
“作動的に連結”とは、核酸発現調節配列（例えば、プロモーター、シグナル配列、又は転写調節因子結合位置のアレイ）と他の核酸配列間の機能的な結合を意味し、これによって、前記調節配列は前記他の核酸配列の転写及び／又は解読を調節する。
原核細胞を宿主とする場合には、転写を進行させ得る強力なプロモーター（例えば、ｔａｃプロモーター、ｌａｃプロモーター、ｌａｃＵＶ５プロモーター、ｌｐｐプロモーター、ｐＬλプロモーター、ｐＲλプロモーター、ｒａｃ５プロモーター、ａｍｐプロモーター、ｒｅｃＡプロモーター、ＳＰ６プロモーター、ｔｒｐプロモーター及びＴ７プロモーターなど）、解読の開始のためのリボソーム結合座及び転写／解読終結配列を含むのが一般である。また、例えば、真核細胞を宿主とする場合には、哺乳動物細胞のゲノムから由来したプロモーター（例えば、メタロチオニンプロモーター、β－アクチンプロモーター、ヒトヘモグロビンプロモーター及びヒト筋肉クレアチンプロモーター）又は哺乳動物ウイルスから由来したプロモーター（例えば、アデノウイルス後期プロモーター、ワクシニアウイルス７．５Ｋプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーター、ＨＳＶのｔｋプロモーター、マウス乳房腫瘍ウイルス（ＭＭＴＶ）プロモーター、ＨＩＶのＬＴＲプロモーター、モロニーウイルスのプロモーターエプスタインバールウイルス（ＥＢＶ）のプロモーター及びラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）のプロモーター）が利用でき、転写終結配列としてポリアデニル化配列を一般に有する。
場合によって、ベクターはそれから発現する抗体の精製を容易にするために、他の配列と融合されてもよい。融合される配列は、例えば、グルタチオンＳ－トランスフェラーゼ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ，ＵＳＡ）、マルトース結合タンパク質（ＮＥＢ，ＵＳＡ）、ＦＬＡＧ（ＩＢＩ，ＵＳＡ）及び６ｘ Ｈｉｓ（ｈｅｘａｈｉｓｔｉｄｉｎｅ；Ｑｉａｇｅｎ，ＵＳＡ）などがある。
前記ベクターは、選択標識として当業界において通常用いられる抗生剤耐性遺伝子を含み、例えば、アンピシリン、ゲンタマイシン、カベニシリン、クロラムフェニコール、ストレプトマイシン、カナマイシン、ジェネティシン、ネオマイシン及びテトラサイクリンに対する耐性遺伝子がある。
本発明は、さらに他の観点において、前記言及されたベクターで形質転換された細胞に関する。本発明の抗体を生成させるために用いられた細胞は、原核生物、酵母又は高等真核生物細胞でよいが、これに制限されるものではない。
エシェリキアコリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）、バチルスサブチリス及びバチルスチューリンゲンシスのようなバチルス属菌株、ストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）（例えば、シュードモナスプチダ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｐｕｔｉｄａ））、プロテウスミラビルス（Ｐｒｏｔｅｕｓ ｍｉｒａｂｉｌｉｓ）及びスタフィロコカス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ）（例えば、スタフィロコカスカルノサス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｕｓ ｃａｒｎｏｓｕｓ））のような原核宿主細胞を用いることができる。
ただし、動物細胞に対する関心が最も大きく、有用な宿主細胞株の例は、ＣＯＳ－７、ＢＨＫ、ＣＨＯ、ＣＨＯＫ１、ＤＸＢ－１１、ＤＧ－４４、ＣＨＯ／－ＤＨＦＲ、ＣＶ１、ＣＯＳ－７、ＨＥＫ２９３、ＢＨＫ、ＴＭ４、ＶＥＲＯ、ＨＥＬＡ、ＭＤＣＫ、ＢＲＬ３Ａ、Ｗ１３８、Ｈｅｐ Ｇ２、ＳＫ－Ｈｅｐ、ＭＭＴ、ＴＲＩ、ＭＲＣ５、ＦＳ４、３Ｔ３、ＲＩＮ、Ａ５４９、ＰＣ１２、Ｋ５６２、ＰＥＲ．Ｃ６、ＳＰ２／０、ＮＳ－０、Ｕ２０Ｓ、又はＨＴ１０８０でよいが、これに制限されるものではない。
前記細胞は、各種の培地で培養できる。市販用の培地はいずれも培養培地として使用可能である。当業者に公知のその他全ての必須補充物が適度の濃度で含まれてよい。培養条件、例えば、温度、ｐＨなどが発現のために選別された宿主細胞と共に既に用いられており、これは当業者にとって明白であろう。
前記抗体又はその抗原結合断片の回収は、例えば、遠心分離又は限外濾過によって不純物を除去し、その結果を、例えば、親和クロマトグラフィーなどを用いて精製することができる。追加のその他精製技術、例えば、陰イオン又は陽イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィーなどを用いることができる。
本発明は、さらに他の観点において、抗体－薬物コンジュゲートを有効成分として含む増殖性疾患、例えば腫瘍又は癌の予防又は治療用組成物又は薬学組成物に関する。
本発明は、例えば、（ａ）抗体－薬物コンジュゲートの薬剤学的有効量；及び、（ｂ）薬剤学的に許容される担体を含む増殖性疾患、例えば腫瘍又は癌の予防又は治療用薬剤学的組成物であり得る。本発明は、また、前記抗体－薬物コンジュゲートを増殖性疾患、例えば腫瘍又は癌患者に投与する段階を含む腫瘍の予防又は治療方法であり得る。本発明はさらに、前記抗体－薬物コンジュゲートの増殖性疾患、例えば腫瘍又は癌に対する予防又は治療用途であり得る。
前記腫瘍又は癌と関連して、治療用に好適な腫瘍又は癌の非制限的な例は、腎臓癌、膵癌、卵巣癌、リンパ腫、結腸癌、中皮腫、胃癌、肺癌、前立腺癌、腺癌腫、肝癌又は乳癌などであり得るが、これに制限されるものではない。腫瘍又は癌には不応又は再発癌が含まれてよい。
前記薬学組成物は、薬学的に許容可能な担体をさらに含むことができ、前記担体は、薬物の製剤化に通常用いられるものであって、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、澱粉、アカシアガム、リン酸カルシウム、アルジネート、ゼラチン、ケイ酸カルシウム、微結晶性セルロース、ポリビニルピロリドン、セルロース、水、シロップ、メチルセルロース、ヒドロキシ安息香酸メチル、ヒドロキシ安息香酸プロピル、滑石、ステアリン酸マグネシウム、ミネラルオイルなどからなる群から選ばれる１種以上であり得るが、これに限定されるものではない。前記薬学組成物は、また、薬学組成物の製造に通常用いられる希釈剤、賦形剤、潤滑剤、湿潤剤、甘味剤、香味剤、乳化剤、懸濁剤、保存剤からなる群から選ばれる１種以上をさらに含むことができる。
前記薬学組成物は、経口又は非経口で投与できる。非経口投与の場合には、静脈内注入、皮下注入、筋肉注入、腹腔注入、内皮投与、局所投与、鼻内投与、肺内投与及び直腸内投与などで投与できる。経口投与時にタンパク質又はペプチドが消化されるため、経口用組成物は、活性薬剤をコーティングするか、胃における分解から保護されるように剤形化することができる。また、前記組成物は、活性物質が標的細胞に移動できる任意の装置によって投与されてよい。
前記薬学組成物の有効量は、製剤化方法、投与方式、患者の年齢、体重、性別、病的状態、食べ物、投与時間、投与間隔、投与経路、排泄速度及び反応感応性のような要因によって様々に処方されてよい。例えば、前記薬学組成物の１日投与量は、０．００１～１０００ｍｇ／ｋｇ、具体的に０．０１～１００ｍｇ／ｋｇ、より具体的に０．１～５０ｍｇ／ｋｇ、さらに具体的に０．１～２０ｍｇ／ｋｇ範囲であり得るが、これに制限されるものではない。前記１日投与量は、単位容量の形態で単一の製剤として製剤化されたり、適切に分量して製剤化されたり、或いは多回容量容器内に内入させて製造されてよい。
前記薬学組成物は、オイル又は水性媒質中の溶液、懸濁液、シロップ剤又は乳化液の形態であるか、エキス剤、散剤、粉末剤、顆粒剤、錠剤又はカプセル剤などの形態に剤形化でき、剤形化のために分散剤又は安定化剤をさらに含むことができる。
以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明する。これらの実施例は単に本発明を例示するためのものであり、本発明の範囲がこれらの実施例によって制限されると解釈されないことは、当業界における通常の知識を有する者にとって明らかであろう。
製造例：薬物の合成
以下の製造例において、共通に、１Ｈ ＮＭＲスペクトルはＢｒｕｋｅｒ Ａｖａｎｃｅ ４００ＭＨｚで記録されている。
ＬＣＭＳは、ＥＳＩ（＋）イオン化モードで作動するＳｈｉｍａｄｚｕ ＬＣＭＳ ２０１１（カラム：Ｓｈｉｍ－ｐａｃｋ ＸＲ－ＯＤＳ（３．０＊３０ｍｍ、２．２ｍ））の四極質量分析機で測定した。流量：０．８ｍＬ／ｍｉｎ、取得時間：３分又は１．５分、波長：ＵＶ２２０、オーブン温度：５０℃。
Ｐｒｅｐ－ＨＰＬＣは、次の条件で行われた：カラム：Ｆｕｊｉ Ｃ１８（３００ｘ２５）、ＹＭＣ（２５０ｘ２０）。波長：２２０ｎｍ；移動相：ＣＨ３ＣＮ（０．０５％ ＮＨ３Ｈ２Ｏ又は０．２２５％ ＦＡ）；Ｂ水（０．１％ ＮＨ３Ｈ２Ｏ又は０．２２５％ ＦＡ）；流速：３０ｍＬ／ｍｉｎ；注入量：３ｍＬ；実行時間：２０分、平衡：３分
製造例１：ＰＤ００１の合成
Figure 2022523854000025
１）化合物１の製造
Figure 2022523854000026
ＭｅＯＨ（７ｍＬ）及びＥｔＯＡｃ（７ｍＬ）中化合物１Ａ（７００ｍｇ、１．６５ｍｍｏｌ）及び１０％乾燥Ｐｄ／Ｃ（１４０ｍｇ）の混合物を真空下で脱気し、Ｈ２で数回ファージングした。混合物をＨ２（ｂａｌｌｏｏｎ、１５ｐｓｉ）で２０℃で４時間撹拌した。ＴＬＣは、より大きい極性を持つ一つの新しいスポットが形成されていることを示した。混合物をセライトで濾過し、濾過液を濃縮し乾燥し、白色固体として化合物１（５４９ｍｇ、収率９９．６％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.56 (9H, s), 3.43 (1H, t, J = 10.4 Hz), 3.85-4.01 (2H, m), 4.07-4.16 (1H, m), 4.19-4.30 (1H, m), 6.24 (1H, brs), 7.34 (1H, t, J = 7.6 Hz), 7.50 (1H, t, J = 7.6 Hz), 7.59-7.80 (2H, m), 8.17 (1H, d, J = 8.0 Hz).
２）化合物５－２の製造
Figure 2022523854000027
２０℃で無水ＤＣＭ（１０ｍＬ）中化合物１（３００ｍｇ、０．８９９ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に４Ａ ＭＳ（２ｇ）を追加した。次に、混合物を２０℃で３０分間撹拌した。化合物５－１（５７６ｍｇ、１．１７ｍｍｏｌ）を添加した後、混合物を－１０℃に冷却し、ＤＣＭ（５ｍＬ）中ＢＦ３・Ｅｔ２Ｏ（６４ｍｇ、０．４５ｍｍｏｌ）を滴加した。次に、混合物を－１０℃で１時間撹拌した。その後、混合物を０℃で２時間加熱した。ＴＬＣは、微量の出発物質が依然として残存することを示し、大きい極性を持つ新規主要位置が形成されていることを示した。混合物をフィルタリングして除去し、濾過液をｓａｔ．ａｑ．ＮａＨＣＯ３（２０ｍＬ）でクエンチングした。有機層が分離された。残りの水相をＤＣＭ（１５ｍＬ＊２）で抽出した。混合した有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し濃縮した後、乾燥させた。残留物をバッチ２と混合し、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／５：１を用いたシリカゲルカラム溶出液で精製した。
２０℃でＤＣＭ（１０ｍＬ）中化合物１（２４９ｍｇ、０．７４６ｍｍｏｌ）撹拌溶液に４Ａ ＭＳ（１．５ｇ）を追加した。次に、混合物を２０℃で３０分間撹拌した。化合物５－１（４７８ｍｇ、０．９７０ｍｍｏｌ）を添加した後、混合物を－１０℃に冷却し、ＤＣＭ（５ｍＬ）中ＢＦ３・Ｅｔ２Ｏ（５３ｍｇ、０．３７３ｍｍｏｌ）を滴加した。次に、混合物を－１０℃で１時間撹拌した。その後、混合物を０℃で２時間維持した。ＴＬＣは、微量の出発物質が依然として残存することを示し、大きい極性を持つ一つの新規の主要位置が形成されていることを示した。混合物をフィルターに通して除去し、濾過液をｓａｔ．ａｑ．ＮａＨＣＯ３（２０ｍＬ）でクエンチングした。有機層が分離された。残りの水相をＤＣＭ（１５ｍＬ＊２）で抽出した。混合した有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し濃縮後に乾燥させた。残留物をバッチ１と混合し、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／５：１を用いたシリカゲルカラム溶出液で精製し、白色固体として化合物５－２（１．１９ｇ、ｃｒｕｄｅ）を得た。白色固体として化合物１の出発物質３５ｍｇを回収した。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.61 (9H, s, overlap water signal), 2.02 (3H, s), 2.06 (3H, s, overlap EtOAc signal), 2.11 (3H, s), 2.24 (3H, s), 3.45 (1H, t, J = 10.8 Hz), 3.91-4.05 (2H, m), 4.10-4.19 (1H, m, overlap EtOAc signal), 4.20-4.43 (4H, m), 5.20 (1H, dd, J = 10.4, 3.6 Hz), 5.37 (1H, d, J = 8.0 Hz), 5.53 (1H, d, J = 3.2 Hz), 5.72 (1H, dd, J = 10.4, 7.6 Hz), 7.34-7.40 (1H, m), 7.49-7.57 (1H, m), 7.66 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.68 (1H, brs), 8.13 (1H, d, J= 8.0 Hz).
３）化合物５－３の製造
Figure 2022523854000028
無水ＤＣＭ（１５ｍＬ）中の化合物５－２（１．１９ｇ、ｃｒｕｄｅ）の撹拌溶液に０℃でＢＦ３・Ｅｔ２Ｏ（８９０ｍｇ、６．２７ｍｍｏｌ）を滴加した。その後、混合物を２０℃に温め、２時間撹拌した。ＴＬＣは、反応がよく進行されていることを示した。混合物をｓａｔ．ａｑ．ＮａＨＣＯ３（１５ｍＬ）でクエンチングした。有機層が分離された。残りの水相をＤＣＭ（１５ｍＬ＊２）で抽出した。混合した有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し濃縮後に乾燥させた。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／２：１～１：１を使用するシリカゲルカラム溶出液で精製し、白色固体としてｄｅ－Ｂｏｃ中間体（７８２ｍｇ、２ステップ収率８４％）を得た。２８ｍｇの化合物５－２を回収した。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.06 (3H, s), 2.07 (3H, s, overlap EtOAc signal), 2.11 (3H, s), 2.24 (3H, s), 3.52 (1H, t, J = 10.8 Hz), 3.77-3.87 (2H, m), 3.88-3.94 (1H, m), 3.96-4.05 (1H, m), 4.12-4.25 (3H, m, overlap EtOAc signal), 4.31 (1H, dd, J = 10.8, 6.8 Hz), 5.11-5.20 (2H, m), 5.52 (1H, dd, J = 3.2, 0.8 Hz), 5.70 (1H, dd, J = 10.4, 8.0 Hz), 6.66 (1H, s), 7.20-7.20 (1H, m, overlap CDCl3 signal), 7.45-7.52 (1H, m), 7.60 (1H, dd, J = 8.4, 1.2 Hz), 8.00 (1H, d, J = 8.0 Hz).
２０℃で無水ＤＭＦ（６ｍＬ）中ｄｅ－Ｂｏｃ中間体（６４３ｍｇ、１．１４ｍｍｏｌ）と化合物１－７（１９０ｍｇ、０．３８０ｍｍｏｌ）との混合物に、ＥＤＣＩ（２１９ｍｇ、１．１４ｍｍｏｌ）を添加した。次に、混合物を２０℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは出発物質が依然として残存し、所望の生成物が観察されていることを示した。溶媒を減圧下で除去した。混合物を水（１５ｍＬ）でクエンチングし、ＥｔＯＡｃ（１５ｍＬ＊３）で抽出した。混合した有機層を水（２０ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４を流して濃縮及び乾燥させた。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／２：１～１：２を用いたシリカゲルカラム溶出液で精製し、黄色固体である化合物５－３（４４８ｍｇ、収率：７４％）を得た。また、１６３ｍｇのｄｅ－Ｂｏｃ中間体を回収した（ＬＣＭＳ：純度７５％）。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.01-2.20 (18H, m, overlap EtOAc signal), 2.23 (6H, s), 3.43-3.57 (2H, m), 3.69-3.82 (2H, m), 3.95-4.05 (2H, m), 4.06-4.10 (1H, m, overlap EtOAc signal), 4.19-4.65 (15H, m), 5.12-5.27 (2H, m), 5.32-5.44 (2H, m, overlap CH2Cl2 signal), 5.50-5.62 (2H, m), 5.70-5.82 (2H, m), 6.92-7.13 (2H, m), 7.19-7.39 (7H, m, overlap CDCl3signal), 7.40-7.50 (2H, m), 7.51-7.64 (4H, m), 7.65-7.76 (5H, m), 7.84 (1H, d, J = 15.2 Hz), 8.13-8.27 (3H, m), 8.47 (2H, d, J = 18.4 Hz).
４）化合物５－４の製造
Figure 2022523854000029
無水ＤＣＭ（４ｍＬ）中化合物５－３（２５０ｍｇ、０．１５７ｍｍｏｌ）及びピぺリジン（１３４ｍｇ、１．５７ｍｍｏｌ）溶液を２０℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、反応がよく進行されていることを示した。溶媒を減圧下で除去した。不純物をＤＣＭ：ＭｅＯＨ／５０：１～２５：１を用いたシリカゲルカラム溶出液で精製し、黄色固体として化合物５－４（１７６ｍｇ、収率８２％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.01-2.24 (24H, m), 3.35-3.59 (4H, m), 3.99-4.62 (16H, m), 5.20-5.30 (2H, m), 5.37-5.47 (2H, m), 5.56 (2H, d, J = 1.2 Hz), 5.75 (2H, dd, J = 8.0, 2.0 Hz), 6.94 (1H, d, J = 15.6 Hz), 7.10-7.20 (2H, m), 7.26-7.34 (1H, m, overlap CDCl3 signal), 7.36-7.74 (7H, m), 7.80 (1H, d, J = 15.2 Hz), 8.05-8.20 (3H, m), 8.44 (2H, d, J = 7.6 Hz).
５）化合物５－５の製造
Figure 2022523854000030
ＭｅＯＨ（２ｍＬ）及びＤＣＭ（２ｍＬ）中化合物５－４（１００ｍｇ、０．０７３ｍｍｏｌ）溶液に、ＭｅＯＨ（０．５ｍＬ）中ＮａＯＭｅ（８．０ｍｇ、０．１５ｍｍｏｌ）を０℃で加下した。次に、混合物を０℃で２時間撹拌した。クルード(ｃｒｕｄｅ)ＬＣＭＳは、所望の生成物ＭＳが観察されていることを示した。混合物をＡｃＯＨ（９．０ｍｇ、０．１５ｍｍｏｌ）でクエンチングした。次に、混合物を２５℃で濃縮及び乾燥させ、黄色固体としてクルード化合物５－５（７９ｍｇ）を得た。次に、７９ｍｇのクルード化合物５－５を、次の段階に直接使用した。
６）ＰＤ００１の製造
Figure 2022523854000031
ＤＭＦ（２ｍＬ）中化合物５－５（７９ｍｇ、ｃｒｕｄｅ）、化合物１－３（２４ｍｇ、０．０７６ｍｍｏｌ）及びＤＩＥＡ（２０ｍｇ、０．１５ｍｍｏｌ）の混合物を２０℃で１６時間撹拌した。クルード(ｃｒｕｄｅ)ＬＣＭＳは、所望の生成物ＭＳが観察されていることを示した。溶媒をｐｒｅｐ－ＨＰＬＣ（０．０５％ ＮＨ３Ｈ２Ｏ）で精製した。ＭｅＣＮの大部分は減圧下で除去された。残りの水相を凍結乾燥させ、黄色固体として純粋ＰＤ００１（２０ｍｇ、２段階の収率：２２％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 1.15-1.27 (2H, m), 1.42-1.60 (4H, m), 2.13 (2H, t, J = 7.6 Hz), 3.48-3.74 (10H, m), 3.75-3.88 (4H, m), 3.89-4.08 (4H, m), 4.24-4.40 (4H, m), 4.48-4.74 (8H, m), 4.92-5.05 (4H, m), 5.38 (2H, d, J = 5.6 Hz), 6.96 (2H, s), 7.29-7.45 (4H, m), 7.48 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.52-7.63 (2H, m), 7.66 (1H, s), 7.90 (1H, d, J = 15.6 Hz), 7.86-8.01 (4H, m), 8.20-8.25 (1H, m), 8.33 (2H, dd, J = 8.4, 4.8 Hz), 8.38-8.48 (2H, m).
７）化合物１－２の製造
Figure 2022523854000032
ＡｃＯＨ（５ｍＬ）中６－アミノヘキサン酸（６－ａｍｉｎｏｈｅｘａｎｏｉｃ ａｃｉｄ：５００ｍｇ、３．８１ｍｍｏｌ）溶液に、フラン－２，５－ジオン（３７４ｍｇ、３．８１ｍｍｏｌ）を添加した。混合物を、Ｎ２下に２５℃で２時間撹拌した。次に、混合物をＮ２下に１１０℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、他の位置が観察されていることを示した。反応混合物を真空下で濃縮した。残留物に水（１０ｍＬ）を添加して得られた溶液をＥｔＯＡｃ（２０ｍＬ＊３）で抽出し、混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥、濾過した後、真空で濃縮した。残留物を、石油エーテル：エチルアセテート／１：１～１：２を用いたシリカゲルクロマトグラフィーによって精製し、白色固体として化合物１－２（５２５ｍｇ、収率：６５％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 1.11-1.29 (2H, m), 1.40-1.57 (4H, m), 2.18 (2H, t, J = 7.2 Hz), 3.36-3.41 (2H, m, overlap with water signal), 6.93-7.07 (2H, s), 12.00 (1H, brs).
８）化合物１－３の製造
Figure 2022523854000033
ＤＣＭ（５ｍＬ）中化合物１－２（５２５ｍｇ、２．４９ｍｍｏｌ）、１－ヒドロキシピロリジン－２，５－ジオン（３００ｍｇ、２．６１ｍｍｏｌ）及びＤＩＣ（３３６ｍｇ、２．６６ｍｍｏｌ）溶液を、２５゜Ｃ、１６時間、Ｎ２下で撹拌した。ＴＬＣは、他の位置が観察されていることを示した。反応物に水（１０ｍＬ）を添加して得られた溶液を、ＥｔＯＡｃ（１５ｍＬ＊４）で抽出した。混合した有機相を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過した後、真空で濃縮した。残留物を、石油エーテル：エチルアセテート／２：１～１：１～１：２）を用いたシリカゲルクロマトグラフィー溶出液で精製し、白色固体として不純化合物１－３（６４３ｍｇ）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.32-1.45 (2H, m), 1.61-1.65 (2H, m), 1.73-1.81 (2H, m), 2.59 (2H, t, J= 7.2 Hz), 2.82 (4H, s), 3.52 (2H, t, J= 7.2 Hz), 6.68 (2H, m).
９）化合物１－５の製造
Figure 2022523854000034
ＤＭＦ（１０ｍＬ）中５－ブロモ－２－ヨード－フェノール（１．０ｇ、３．３５ｍｍｏｌ）、ｔｅｒｔ－ブチルアクリレート（１．５０ｇ、１１．７ｍｍｏｌ）、Ｐｄ（ＯＡｃ）２（１５ｍｇ、０．６７ｍｍｏｌ）、トリ－ｏ－トリルホスフィン化合物（７９ｍｇ、０．２６ｍｍｏｌ）及びＥｔ３Ｎ（１．０２ｇ、１０．０ｍｍｏｌ）溶液をＮ２下で１１０℃、１６時間撹拌した。ＴＬＣは、所望の生成物が観察されていることを示した。反応混合物を６０ｍＬの水でクエンチングして得られた溶液をＥｔＯＡｃ（４０ｍＬ＊４）で抽出した。混合した有機層を水（１００ｍＬ）で洗浄し、無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過した後、真空で濃縮した。残留物を、石油エーテル：エチルアセテート／２４：１～２０：１～６：１を用いたＣｏｍｂｉ Ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、黄色固体として化合物１－５（９６３ｍｇ、収率：８３％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 1.48 (18H, s), 6.41 (1H, d, J = 15.6 Hz), 6.56 (1H, d, J = 16.0 Hz), 7.07 (1H, s), 7.19 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.45 (1H, d, J = 15.6 Hz), 7.63 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.75 (1H, d, J = 16.4 Hz), 10.42 (1H, brs).
１０）化合物１－６の製造
Figure 2022523854000035
ＴＨＦ（２０ｍＬ）中化合物１－５（２．００ｇ、５．７７ｍｍｏｌ）及び化合物１－５Ａ（２．４５ｇ、８．６６ｍｍｏｌ）溶液を、Ｎ２下で０℃、３０分間撹拌した。透明溶液が白色エマルジョンになると、Ｐｈ３Ｐ（２．５７ｇ、９．８１ｍｍｏｌ）を０℃混合物に追加し、Ｎ２下で１０分間撹拌した。次に、ＤＩＡＤ（１．７５ｇ、８．６６ｍｍｏｌ）を混合物０℃に滴加した（白色エマルジョンはオレンジ色の透明溶液になる）。その後、得られた溶液をＮ２下で１時間、２５℃に温める。ＴＬＣは、所望の生成物が観察されていることを示した。１Ｎ ａｑ．ＨＣｌ（６０ｍＬ）を反応混合物に添加して得られた溶液をＥｔＯＡｃで抽出した（５０ｍＬ＊３）。混合した有機層を塩水（８０ｍＬ）で洗浄し、無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過した後、真空で濃縮した。残留物を、石油エーテルに続いて石油エーテル：エチルアセテート／７：１を用いたＣｏｍｂｉ Ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、無色オイルの不純化合物１－６（３．６７ｇ）を製造した。
１１）化合物１－７の製造
Figure 2022523854000036
ＤＣＭ（８０ｍＬ）中化合物１－６（３．６７ｇ、不純）の溶液にＴＦＡ（１９．３ｇ、１６９ｍｍｏｌ）を添加した。混合物を２５℃、１６時間撹拌した。モニタリングはない。反応混合物を真空下で濃縮した。残留物をｔｅｒｔ－ブチルメチルエーテル（６０ｍＬ）で粉砕後に濾過した。フィルターケーキをｔｅｒｔ－ブチルメチルエーテル（２０ｍＬ＊３）で洗浄した。フィルターケーキを真空下で乾燥させ、白色固体として化合物１－７（２．１２ｇ、２段階の収率：７４％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 3.43-3.46 (2H, m), 4.13-4.27 (3H, m), 4.31-4.43 (2H, m), 6.59 (1H, d, J= 16.2 Hz), 6.69 (1H, d, J = 16.2 Hz), 7.29-7.35 (3H, m), 7.36-7.48 (3H, m), 7.55-7.65 (2H, m), 7.66-7.77 (3H, m), 7.80-7.92 (3H, m), 12.40 (2H, brs).
製造例２．ＰＤ００５の合成
Figure 2022523854000037
１）化合物５－５の製造
Figure 2022523854000038
ＭｅＯＨ（１ｍＬ）及びＤＣＭ（１ｍＬ）中化合物５－４（５０ｍｇ、０．０３６ｍｍｏｌ）溶液に、０℃ ＭｅＯＨ（０．１ｍＬ）中ＮａＯＭｅ（４．０ｍｇ、０．０７３ｍｍｏｌ）溶液を滴加した。次に、混合物を０℃で３．５時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．８２８維持時間で９３％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ：１０３１；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１０３４［Ｍ＋３Ｈ］＋）。混合物をＡｃＯＨ（４．６ｍｇ）でクエンチングした。その後、混合物を２５℃で濃縮して乾燥させた後、黄色固体としてクルード化合物５－５（４１ｍｇ）を得た。４１ｍｇのクルード化合物５－５を次の段階に直接使用した。
２）ＰＤ００５の製造
Figure 2022523854000039
ＤＭＦ（１ｍＬ）中化合物５－５（４１ｍｇ、ｃｒｕｄｅ）、化合物５－６（１１ｍｇ、ｃｒｕｄｅ）及びＤＩＰＥＡ（１０ｍｇ、０．０７９ｍｍｏｌ）混合物を１５゜Ｃで１６時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．８４５維持時間で８９％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ：１１４３；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１１４９［Ｍ＋６Ｈ＋）。反応混合物をｐｒｅｐ－ＨＰＬＣ（０．２２５％ ＦＡ）によって精製した。ＭｅＣＮの大部分は、減圧下で除去された。残りの水相を凍結乾燥し、黄色固体としてクルードＰＤ００５（１１ｍｇ）を得た。また、Ｈ ＮＭＲは、微量のアルデヒド信号陽性子が観察されていることを示した。
３）化合物５－５Ａの製造
Figure 2022523854000040
ＤＣＭ（２ｍＬ）中化合物５－６ｂ（８．４ｍｇ、０．０６４ｍｍｏｌ）溶液に、ＨＯＢｔ（９．５ｍｇ、０．０７０ｍｍｏｌ）、ＥＤＣＩ（１３ｍｇ、０．０７０ｍｍｏｌ）及びＤＩＥＡ（９．１ｍｇ、０．０７０ｍｍｏｌ）を添加した。次に、混合物を１５℃で１０分間撹拌した。化合物５－４（８０ｍｇ、０．０５８ｍｍｏｌ）を反応混合物に添加した。製造された混合物を１５℃で２時間撹拌した。ＴＬＣは、出発物質が完全に消耗していることを示した。一つの新規位置が形成された。混合物を水（１０ｍＬ）でクエンチングし、ＤＣＭ（６ｍＬ＊３）で抽出した。混合した有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し濃縮して乾燥させた。残留物をＥｔＯＡｃを用いたシリカゲルカラム溶出液で精製し、黄色固体として化合物５－５Ａ（８１ｍｇ、収率：９４％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.58-1.75 (4H, m), 1.95-2.05 (12H, m), 2.06-2.16 (12H, m), 2.24-2.31 (2H, m), 2.40-2.49 (2H, m), 3.42-3.55 (3H, m), 3.69-3.79 (2H, m), 3.92-4.05 (2H, m), 4.10-4.38 (9H, m, overlap EtOAc signal), 4.42-4.64 (4H, m), 5.12-5.26 (2H, m), 5.30-5.42 (2H, m), 5.50-5.60 (2H, m), 5.67-5.77 (2H, m), 6.91-7.06 (2H, m), 7.13-7.22 (2H, m, overlap CDCl3 signal), 7.35-7.48 (3H, m), 7.50-7.60 (2H, m), 7.65-7.76 (3H, m), 7.77-7.84 (1H, m), 8.09-8.19 (2H, m), 8.20-8.30 (1H, m), 8.37-8.50 (2H, m), 9.71 (1H, s).
４）ＰＤ００５の製造
Figure 2022523854000041
ＭｅＯＨ（０．５ｍＬ）及びＤＣＭ（０．５ｍＬ）中化合物５－５Ａ（２５ｍｇ、０．０１７ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に、０℃ ＭｅＯＨ（０．１ｍＬ）中ＮａＯＭｅ（１．８ｍｇ、０．０３４ｍｍｏｌ）を滴加した。その後、混合物を０℃で２時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．８３４維持時間で９８％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：１１４３；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１１４４［Ｍ＋Ｈ］＋）。次に、混合物を水（５ｍＬ）でクエンチングし、１５℃減圧下で溶媒を除去した。製造された黄色沈殿物を濾過によって収集した。ケーキを水（１０ｍＬ）で希釈し、凍結乾燥させ、黄色固体としてクルードＰＤ００５（１１ｍｇ）を得た。約６ｍｇのクルードをＨ ＮＭＲチェックに使用し、クルード５ｍｇを供給した。
1H NMR (400 MHz, DMSO) δ1.19-1.60 (4H, m), 2.05-2.22 (2H, m), 2.35-2.45 (2H, m, overlap DMSO signal), 3.45-4.76 (30H, m), 4.90-5.05 (4H, m), 5.35-5.53 (2H, m), 7.18-8.05 (13H, m), 8.15-8.50 (4H, m,), 9.61 (0.5H, m).
ＭｅＯＨ（１ｍＬ）及びＤＣＭ（１ｍＬ）中化合物５－５Ａ（５６ｍｇ、０．０３８ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に、０℃、ＭｅＯＨ（０．２ｍＬ）中ＮａＯＭｅ（４．１ｍｇ、０．０７６ｍｍｏｌ）を滴加した。次に、混合物を０℃で２時間撹拌した。クルードＬＣＭＳは、所望の生成物Ｍが観察されていることを示した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．８５７維持時間で９８％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：１１４３；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１１６９［Ｍ＋Ｎａ］＋）。
次に、混合物を水（１０ｍＬ）でクエンチングし、溶媒を１５゜Ｃ減圧下で除去した。製造された黄色沈殿物を濾過によって収集した。ケーキを水（１０ｍＬ）で希釈し、凍結乾燥させ、黄色固体としてクルードＰＤ００５（２７ｍｇ）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO) δ 1.19-1.60 (4H, m), 2.05-2.21 (2H, m), 2.35-2.45 (2H, m, overlap DMSO signal), 3.45-4.76 (30H, m), 4.90-5.05 (4H, m), 5.35-5.51 (2H, m), 7.21-8.01 (13H, m), 8.15-8.50 (4H, m,), 9.61 (0.4H, m).
５）化合物５－６ｂ製造
Figure 2022523854000042
エチル６－オキソヘキサノエート（５４６ｍｇ、３．４５ｍｍｏｌ）、ＴｓＯＨ（１５ｍｇ、０．０８ｍｍｏｌ）及びＨ２Ｏ（１．２ｍＬ）溶液を、Ｎ２下で９０゜Ｃで１６時間撹拌した。ＴＬＣは、他の位置が観察されていることを示した。反応混合物を水（１０ｍＬ）にクエンチングしたし、得られた溶液をＥｔＯＡｃ（１５ｍＬ＊４）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過した後、真空で濃縮した。残留物を石油エーテル：エチルアセテート／１：１～２：３を用いたシリカゲルカラム溶出液で精製し、無色オイルとして化合物５－６ｂ（３８３ｍｇ、収率：８５％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 1.49-1.53 (4H, m), 2.22 (2H, t, J = 6.8 Hz), 2.44 (2H, t, J = 7.2 Hz), 9.66 (1H, s), 12.01 (1H, brs).
６）化合物５－６の製造
Figure 2022523854000043
ＤＣＭ（４ｍＬ）中化合物５－６ｂ（３８３ｍｇ、２．９４ｍｍｏｌ）及びＮ－ヒドロキシスクシンイミド（３５６ｍｇ、３．０９ｍｍｏｌ）溶液にＮ２下でＤＩＣ（３９７ｍｇ、３．１５ｍｍｏｌ）を添加した。混合物を２５℃で３時間撹拌した。ＴＬＣは、極性のより低い他の位置が観察されていることを示した。反応混合物を濾過し、濾過液を水（１０ｍＬ）でクエンチングし、有機層を分離した。その後、水相をＤＣＭ（１０ｍＬ＊３）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し濾過後に真空で濃縮した。残留物を、石油エーテル：エチルアセテート／３：２～２：３）を用いたシリカゲルカラム溶離液で精製し、白色固体として不純化合物５－６（２０４ｍｇ）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.76-1.78 (4H, m), 2.49-2.51 (2H, m), 2.64 (2H, t, J = 6.8 Hz), 2.84 (4H, s), 9.77 (1H, s).
製造例３．ＰＤ００６の合成
Figure 2022523854000044
１）化合物６－４の製造
Figure 2022523854000045
化合物６－３（３４９ｍｇ、０．６３５ｍｍｏｌ）と化合物６－２（２２０ｍｇ、０．６３５ｍｍｏｌ）及びＤＭＦ（３ｍＬ）中Ｋ２ＣＯ３（１０５ｍｇ、０．７６２ｍｍｏｌ）混合物を６０゜Ｃにで加熱し、１６時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が１．０８８維持時間に５９％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ：７２３．４；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：７４６．３［Ｍ＋Ｎａ］＋）。溶媒を高い程度に減圧して除去した。混合物を水（２０ｍＬ）でクエンチングし、ＥｔＯＡｃ（１５ｍＬ＊３）で抽出した。混合した有機層を水（２０ｍＬ＊２）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、濃縮後に乾燥させ、褐色オイルとして化合物６－４を得た（０．４５ｇ、収率９８％）。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.51-1.56 (18H, m), 3.39 (2H, t, J= 4.8 Hz), 3.61-3.68 (24H, m), 3.69-3.72 (2H, m), 3.92 (2H, t, J = 4.8 Hz), 4.21 (2H, t, J = 4.8 Hz), 6.37 (1H, d, J = 16.0 Hz), 6.50 (1H, d, J = 16.0 Hz), 7.02 (1H, s), 7.10 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.47-7.55 (2H, m), 7.86 (1H, d, J = 16.0 Hz).
化合物６－２の合成過程は、先に記載のＰＤ００１に対する実施例と同一である。
２）化合物６－５の製造
Figure 2022523854000046
ＴＨＦ（４ｍＬ）中化合物６－４（４５０ｍｇ、０．６２２ｍｍｏｌ）溶液に、１０℃でＰＰｈ３（１９６ｍｇ、０．７４６ｍｍｏｌ）を添加し、混合物を１℃で１時間撹拌した。その後、Ｈ２Ｏ（１ｍＬ）を混合物に追加し、得られた混合物を１０℃で１６時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．９６７維持時間で２１％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ：６９７．４；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：６９８．４［Ｍ＋Ｈ］＋）。溶媒を減圧下で除去した。残留物を、ＥｔＯＡｃに続いてＤＣＭ：ＭｅＯＨ／５：１を使用し、その後、ＭｅＯＨ：ＮＨ３Ｈ２Ｏ／１００：１溶出液で精製し、褐色オイルとして化合物６－５（２８５ｍｇ、収率６６％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.52-1.64 (18H, m, overlap water signal), 2.88 (2H, t, J = 5.2 Hz), 3.63 (2H, t, J = 5.2 Hz), 3.62-3.75 (22H, m), 3.76-3.80 (2H, m), 3.94 (2H, t, J = 5.2 Hz), 4.24 (2H, t, J = 5.2 Hz), 6.39 (1H, d, J = 16.0 Hz), 6.52 (1H, d, J = 16.4 Hz), 7.04 (1H, s), 7.12 (1H, d, J = 8.4 Hz), 7.49-7.57 (2H, m), 7.89 (1H, d, J = 16.4 Hz).
２個の活性陽性子は観察されなかった。
３）化合物６－１１の製造
Figure 2022523854000047
ＴＨＦ（１ｍＬ）及びＨ２Ｏ（１ｍＬ）中化合物６－５（２３５ｍｇ、０．３３７ｍｍｏｌ）溶液に、１０゜Ｃ Ｆｍｏｃ－Ｃｌ（９６ｍｇ、０．３７ｍｍｏｌ）及びＮａＨＣＯ３（３１ｍｇ、０．３７ｍｍｏｌ）を追加した。その後、混合物を１０℃で２時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは生成物の純度が１．１５５維持時間で８４％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ：９１９．５；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：９４２．５［Ｍ＋Ｎａ］＋）。混合物を水（５ｍＬ）でクエンチングし、ＥｔＯＡｃ（５ｍＬ＊３）で抽出した。混合した有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し濃縮後に乾燥させ、無色オイルとしてクルード化合物６－１１（３２５ｍｇ）を得、ＦｍｏｃＣｌが含まれていた。
４）化合物６－１２の製造
Figure 2022523854000048
ＴＦＡ（２ｍＬ）中化合物６－１１（３２５ｍｇ、ｃｒｕｄｅ）及びＤＣＭ（３ｍＬ）の混合物を１０゜Ｃで１６時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、０．８９０維持時間で生成物の純度が８７％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ：８０７．４；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：８３０．３［Ｍ＋Ｎａ］＋）。溶媒を減圧下で除去した。残留物をＥｔＯＡｃ（５ｍＬ）で粉砕し、白色固体として化合物６－１２（１９１ｍｇ、２段階の収率：７０％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO) δ3.10-3.17 (2H, m), 3.30-3.43 (2H, m, overlap water signal), 3.45-3.58 (24H, m), 3.59-3.64 (2H, m), 3.78-3.84 (2H, m), 4.18-4.32 (5H, m), 4.42 (2H, d, J = 7.2 Hz), 5.46 (1H, brs), 6.65 (2H, dd, J = 16.0, 14.4 Hz), 7.27-7.36 (4H, m), 7.38-7.46 (3H, m), 7.57 (1H, d, J= 16.0 Hz), 7.66-7.74 (3H, m), 7.81 (1H, d, J= 16.4 Hz), 7.89 (2H, d, J = 7.6 Hz), 12.4 (2H, brs).
５）化合物６－１３の製造
Figure 2022523854000049
ＤＭＦ（２ｍＬ）中化合物６－１２（９０ｍｇ、０．１１ｍｍｏｌ）、化合物６－９（１８８ｍｇ、０．３３４ｍｍｏｌ）及びＥＤＣＩ（６４ｍｇ、０．３３ｍｍｏｌ）の混合物を１０゜Ｃで１６時間撹拌した。ＴＬＣは、所望の生成物が観察されていることを示した。高い程度の減圧下で溶媒を除去した。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／２：１～ＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ／５０：１を用いたＣｏｍｂｉ Ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、黄色固体として化合物１３（９６ｍｇ、収率４５％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.04-2.09 (12H, m, overlap EtOAc signal), 2.16 (6H, d, J = 10.4 Hz), 2.24 (6H, s), 3.35-3.43 (2H, m), 3.47-3.84 (30H, m), 3.98-4.09 (4H, m), 4.11-4.62 (15H, m, overlap EtOAc signal), 5.17-5.27 (2H, m), 5.34-5.43 (2H, m), 5.46-5.62 (3H, m), 5.69-5.80 (2H, m), 6.97 (1H, d, J = 14.8 Hz), 7.17 (1H, s), 7.25-7.36 (4H, m, overlap CDCl3 signal), 7.37-7.50 (4H, m), 7.53-7.66 (5H, m), 7.69-7.80 (4H, m), 7.83 (1H, d, J = 15.2 Hz), 8.00 (1H, d, J = 15.2 Hz, overlap DMF signal), 8.17 (2H, dd, J = 8.4, 2.0 Hz), 8.46 (2H, d, J = 12.0 Hz).
化合物６－９に対する製造工程は、先に記載のＰＤ００１に対する実施例と同一である。
６）化合物６－１４の製造
Figure 2022523854000050
ＤＣＭ（１ｍＬ）中ピぺリジン（８６ｍｇ、１．０ｍｍｏｌ、０．１ｍＬ）及び化合物６－１３（９６ｍｇ、０．０５１ｍｍｏｌ）溶液を１０゜Ｃで３時間撹拌した。ＴＬＣは、出発物質が完全に消耗しており、一つの新規主要位置が形成されていることを示した。溶媒を減圧下で除去した。残留物を、ＤＣＭ：ＭｅＯＨ／１００：１～９：１のＣｏｍｂｉ ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、黄色固体として化合物６－１４（７５ｍｇ、収率：７８％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.03-2.09 (12H, m, overlap EtOAc signal), 2.17 (6H, d, J = 10.4 Hz), 2.24 (6H, s), 3.11-3.18 (2H, m), 3.48-3.87 (30H, m), 3.97-4.70 (18H, m, overlap EtOAc signal), 5.16-5.26 (2H, m), 5.36-5.46 (2H, m), 5.51-5.63 (2H, m), 5.68-5.79 (2H, m), 7.13 (1H, d, J = 15.2 Hz), 7.24-7.37 (3H, m, overlap CDCl3 signal), 7.40-7.49 (2H, m), 7.53-7.65 (3H, m), 7.73 (2H, d, J = 8.0 Hz), 7.83 (1H, d, J = 15.2 Hz), 8.02 (1H, d, J = 15.2 Hz), 8.16 (2H, d, J = 8.4 Hz), 8.46 (2H, d, J = 8.4 Hz).
７）化合物６－１５製造
Figure 2022523854000051
ＭｅＯＨ（２ｍＬ）及びＤＣＭ（１ｍＬ）中化合物６－１４（８７ｍｇ、０．０５２ｍｍｏｌ）溶液に、１０゜ＣでＫ２ＣＯ３（１４ｍｇ、０．１０ｍｍｏｌ）を添加した。その後、混合物を１０℃で１時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．８３６維持時間で９０％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：１３３９．５；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１３４０．９［Ｍ＋Ｈ］＋）。ＴＬＣは、出発物質が完全に消耗していることを示した。混合物をＡｃＯＨ（１０ｍｇ）でクエンチングした。混合物を濃縮して乾燥させた後、黄色固体としてクルード化合物６－１５（７４ｍｇ）を得、クルードを次の段階に直接使用した。
８）ＰＤ００６製造
Figure 2022523854000052
ＤＭＦ（１ｍＬ）中化合物６－１５（７４ｍｇ、ｃｒｕｄｅ）、化合物６－６（１６ｍｇ、０．０６１ｍｍｏｌ）及びＤＩＥＡ（８．６ｍｇ、０．０６６ｍｍｏｌ）の混合物を１０℃で５時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．８４２維持時間で９４％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ：１４９０．５；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１４９３．５［Ｍ＋２］＋）。溶媒を減圧下で除去した。残留物を、ｐｒｅｐ－ＨＰＬＣ（０．２２５％ ＦＡ）によって精製した。残った水溶液を凍結乾燥させ、ＰＤ００６（８ｍｇ）を得、７ｍｇの不純物を得た。不純ＰＤ００６をｐｒｅｐ－ＨＰＬＣ（０．２２５％ ＦＡ）で追加精製した。残った水溶液を凍結乾燥させ、黄色固体としてＰＤ００６（４ｍｇ）を得た。総１２ｍｇのＰＤ００６を得、２段階の収率は１６％であった。
1H NMR (400 MHz, DMSO) δ 2.24-2.37 (2H, m, overlap DMSO signal), 3.08-3.21 (2H, m), 3.24-4.10 (46H, m, overlap water signal), 4.26-4.77 (12H, m), 4.88-5.02 (4H, m), 5.34-5.47 (2H, m), 6.99 (1.1H, s), 7.30-7.64 (8H, m), 7.74 (1H, d, J = 15.2 Hz), 7.83-7.94 (4H, m), 7.98-8.04 (1H, m), 8.29-8.46 (4H, m).
９）化合物６－３Ｂ製造
条件１：
Figure 2022523854000053
０゜ＣでＤＣＭ（３００ｍＬ）中テトラエチレングリコール（３０．０ｇ、１５４ｍｍｏｌ）、Ｅｔ３Ｎ（１１．７ｇ、１１６ｍｍｏｌ）及びＤＭＡＰ（９４４ｍｇ、７．７２ｍｍｏｌ）の混合物に、ＴｓＣｌ（１４．７ｇ、７７．２ｍｍｏｌ）を添加した。反応混合物を１０℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、２個の新しい位置が観察され、出発物質が完全に消耗していることを示した。反応混合物を水（１００ｍＬ）でクエンチングし、有機層を分離した。その後、残った混合液をＤＣＭ（１００ｍＬ＊４）で抽出した。混合した有機層を塩水（４００ｍＬ）で洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過した後、真空で濃縮した。残留物をＥｔＯＡｃに続いてＤＣＭ：ＭｅＯＨ／２０：１を用いて、シリカゲルカラム溶出液で精製し、無色オイル化合物６－３Ｂ（９．３３ｇ）及び無色オイル化合物６－３Ｂ（７．１６ｇ）を得た。その後、ＤＣＭ：ＭｅＯＨ／５０：１～２０：１を用いて、Ｃｏｍｂｉ Ｆｌａｓｈ溶出液で不純オイル７．１６ｇを精製し、無色オイル化合物６－３Ｂ（４．８９ｇ）を得た。したがって、総１４．２ｇの化合物６－３Ｂを得、収率は２６％であった。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.45 (3H, s), 2.48-2.62 (1H, brs), 3.58-3.71 (14H, m), 4.17 (2H, t, J = 4.8 Hz), 7.34 (2H, d, J = 8.0 Hz), 7.80 (2H, dd, J = 6.4 Hz, 1.6 Hz).
条件２：
Figure 2022523854000054
ＤＣＭ（３００ｍＬ）中テトラエチレングリコール（１０．０ｇ、５１．５ｍｍｏｌ）溶液に、ＴｓＣｌ（９．８２ｇ、５１．５ｍｍｏｌ）、ＫＩ（８５５ｍｇ、５．１５ｍｍｏｌ）及びＡｇ２Ｏ（１４．３ｇ、６１．８ｍｍｏｌ）の混合物を１５゜Ｃで添加した。反応混合物を１５℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、より大きい極性の他の位置が観察されていることを示し、出発物質が完全に消耗していることを示した。反応混合物をセライトで濾過し、濾過液を真空で濃縮した。残留物を石油エーテル：エチルアセテート／１：１ＭｅＯＨを用いたＣｏｍｂｉ Ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、無色オイルとして化合物６－３Ｂ（１１．８ｇ、収率：６６％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.32-2.44 (1H, brs), 2.45 (3H, s), 3.60-3.71 (14H, m), 4.17 (2H, t, J = 4.4 Hz), 7.33 (2H, d, J = 8.0 Hz), 7.80 (2H, d, J = 8.0 Hz).
１０）化合物６－３Ｃの製造
Figure 2022523854000055
ＤＭＦ（２０ｍＬ）中化合物６－３Ｂ（１．６６ｇ、４．７６ｍｍｏｌ）溶液にＮａＮ３（４６５ｍｇ、７．１５ｍｍｏｌ）を添加した。反応混合物を６０℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、より低い極性の他の位置が観察され、出発物質が完全に消耗していることを示した。反応混合物を水（５０ｍＬ）でクエンチングし、得られた溶液をＥｔＯＡｃ（５０ｍＬ＊４）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮した。残留物を、ＤＣＭ：ＭｅＯＨ／４０：１～３０：１を用いたシリカゲルカラム溶出液で精製し、淡黄色オイル不純化合物６－３Ｃ（８００ｍｇ）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.46-2.72 (1H, brs), 3.34-3.45 (2H, m), 3.59-3.64 (2H, m), 3.66-3.71 (10H, m), 3.71-3.75 (2H, m).
１１）化合物６－３Ｄ製造
Figure 2022523854000056
ＤＣＭ（１６ｍＬ）中化合物６－３Ｃ（８００ｍｇ、ｉｍｐｕｒｅ）溶液に、Ｅｔ３Ｎ（５１７ｍｇ、５．１１ｍｍｏｌ）及びＴｓＣｌ（９７４ｍｇ、５．１１ｍｍｏｌ）を０゜Ｃで添加した後、１６時間１５゜Ｃで温めた。ＴＬＣは、極性の低い他の位置が観察されていることを示した。混合物を水（２０ｍＬ）でクエンチングし、有機層を分離した。その後、残った混合液をＤＣＭ（１５ｍＬ＊３）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮した。石油エーテル：エチルアセテート／２：１～１：１を用いたシリカゲルカラム溶出液によって残留物を精製し、無色オイルとして化合物６－３Ｄ（１．０１ｇ、２工程の収率：５７％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.47 (3H, s), 3.35-3.46 (2H, m), 3.62-3.72 (12H, m), 4.18 (2H, t, J = 4.8 Hz), 7.36 (2H, d, J = 8.0 Hz), 7.82 (2H, d, J = 8.4 Hz).
１２）化合物６－３Ｅ製造
Figure 2022523854000057
０℃ ＴＨＦ（３３ｍＬ）中ＮａＨ（７８０ｍｇ、１９．５ｍｍｏｌミネラルオイルの中６０％純度）の懸濁液に、ＴＨＦ（３ｍＬ）中の化合物６－３Ａ（３．４１ｇ、１７．６ｍｍｏｌ）をＮ２下で滴加した。反応物を１０℃で１．５時間撹拌した。次に、ＴＨＦ（３ｍＬ）中化合物６－３Ｄ（３．２８ｇ不純）を、ナトリウムアルコラートの還流溶液に滴下した。次に、混合物を１６時間還流した（７０℃）。ＴＬＣは、新しい位置が観察されていることを示した。反応混合物を室温に冷却した後、ＴＨＦを真空で除去した。残留物を水（３０ｍＬ）でクエンチングし、得られた溶液を、混合溶媒（ＤＣＭ：ＭｅＯＨ／１０：１）（５０ｍＬ＊５）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮してクルード化合物６－３Ｅ（３．４７ｇ、ｃｒｕｄｅ）を得、次の段階に直接使用した。
１３）化合物６－３の製造
Figure 2022523854000058
ＤＣＭ（３０ｍＬ）中化合物６－３Ｅ（３．０３ｇ、ｃｒｕｄｅ）溶液にＥｔ３Ｎ（１．１２ｇ、１１．１ｍｍｏｌ）を添加し、ＴｓＣｌ（２．１２ｇ、１１．１ｍｍｏｌ）を０℃で混合物に添加した。反応混合物を１０℃で温め、１６時間撹拌した。ＴＬＣは、他の新しい位置が観察されていることを示した。反応混合物を水（４０ｍＬ）でクエンチングし、有機層を分離した。その後、残りの水相をＤＣＭ（３０ｍＬ＊５）で抽出した。次に、混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に、真空で濃縮した。残留物を、石油エーテル：エチルアセテート／３：１ＥｔＯＡｃを用いてシリカゲルカラム溶出液で精製し、不純化合物６－３（１．８２ｇ）を得た。不純な固体を、石油エーテル：エチルアセテート／２：１に続いてＥｔＯＡｃを用いてＣｏｍｂｉ Ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、黄色オイルとして化合物６－３（１．２６ｇ、２工程の収率：２６％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.47 (3H, s), 3.40-3.53 (2H, m), 3.54-3.83 (28H, m), 4.14-4.24 (2H, m), 7.36 (2H, d, J = 8.4 Hz), 7.81 (2H, d, J = 8.0 Hz).
１４）化合物６－６の製造
Figure 2022523854000059
ＤＣＭ（１０ｍＬ）中３－マレイミドプロピオン酸（１．００ｇ、５．９１ｍｍｏｌ）及びＮ－ヒドロキシスクシンイミド（７１４ｍｇ、６．２１ｍｍｏｌ）溶液にＥＤＣＩ（１．２１ｇ、６．３３ｍｍｏｌ）を添加し、混合物をＮ２下で１５゜Ｃで１６時間撹拌した。ＴＬＣは、より小さい極性の他の位置が観察されていることを示した。水（１５ｍＬ）で反応をクエンチングし、有機層を分離した。その後、残存水相をＤＣＭ（２０ｍＬ＊３）で抽出した。混合した有機層を、無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し濾過後に、真空で濃縮した。残留物を石油エーテル：エチルアセテート／１：２を用いてシリカゲルカラム溶出液で精製し、白色固体として化合物６－６（１．１８ｇ、収率：７５％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.84 (4H, s), 3.04 (2H, t, J = 14.0 Hz), 3.95 (2H, t, J = 7.2 Hz), 6.76 (2H, s).
製造例４：ＰＤ００８の合成
Figure 2022523854000060
１）化合物８－１の製造
Figure 2022523854000061
ＤＣＭ（１ｍＬ）中（２，５－ジオキソピロリジン－１－イル）６－オキソヘキサノエート（１６ｍｇ、０．０７２ｍｍｏｌ）、ＤＩＰＥＡ（１５ｍｇ、０．１２ｍｍｏｎｌ）及び化合物６－１４（１００ｍｇ、０．０５９６ｍｍｏｌ）を１０℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、一つの極性がより低い新しい位置が形成されていることを示した。混合物を水（８ｍＬ）でクエンチングし、ＤＣＭ（８ｍＬ＊３）で抽出した。混合した有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し濃縮して乾燥させた。残留物をＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ／１０：１を用いるｐｒｅｐ－ＴＬＣ溶出液で精製し、黄色固体として化合物８－１（５９ｍｇ、収率：５５％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.55-1.76 (4H, m, overlap water signal), 2.03-2.10 (12H, m), 2.13-2.27 (14H, m), 2.45-2.50 (2H, m), 3.42-3.48 (2H, m), 3.49-3.85 (30H, m), 3.99-4.63 (16H, m), 5.22 (2H, dd, J = 10.4, 3.2 Hz), 5.40 (2H, dd, J = 7.2, 2.0 Hz), 5.57 (2H, d, J = 2.8 Hz), 5.70-5.79 (2H, m), 6.41 (1H, brs), 6.98 (1H, d, J= 15.2 Hz), 7.18 (1H, s), 7.26-7.36 (2H, m, overlap CDCl3 signal), 7.41-7.48 (2H, m), 7.54-7.65 (3H, m), 7.70-7.78 (2H, m), 7.84 (1H, d, J = 15.2 Hz), 8.01 (1H, d, J = 15.6 Hz), 8.14-8.20 (2H, m), 8.46 (2H, d, J = 11.6 Hz), 9.77 (1H, t, J = 1.6 Hz).
化合物（２，５－ジオキソピロリジン－１－イル）６－オキソヘキサノエート（（２，５－ｄｉｏｘｏｐｙｒｒｏｌｉｄｉｎ－１－ｙｌ）６－ｏｘｏｈｅｘａｎｏａｔｅ）及び化合物６－１４の合成は、ＰＤ００６の製造例と同一である。
２）化合物ＰＤ００８の製造
Figure 2022523854000062
ＭｅＯＨ（１ｍＬ）及びＤＣＭ（０．５ｍＬ）中化合物８－１（５９ｍｇ、０．０３３ｍｍｏｌ）及びＫ２ＣＯ３（９．１ｍｇ、０．０６５ｍｍｏｌ）の混合物を１５゜Ｃで１時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が維持時間０．７９６で９９．９％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ：１４５１．５；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１４５５．１［Ｍ＋３］＋）。混合物をＡｃＯＨ（４ｍｇ）でクエンチングした。得られた混合物をｐｒｅｐ－ＨＰＬＣ（０．２２５％ ＦＡ）で精製した。ＭｅＣＮの大部分は減圧下で除去された。残った混合液を凍結乾燥させ、黄色固体としてＰＤ００８（１６ｍｇ、収率：３３％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO) δ 1.36-1.56 (4H, m), 1.95-2.12 (2H, m), 2.33-2.44 (2H, m, overlap DMSO-d6signal), 3.08-3.22 (2H, m, overlap water signal), 3.24-4.11 (44H, m, overlap water signal), 4.24-4.74 (12H, m), 4.86-5.04 (4H, m), 5.24-5.57 (2H, m), 7.27-7.64 (8H, m), 7.68-7.94 (6H, m), 8.28-8.49 (4H, m), 9.64 (0.6H, s).
製造例５：ＰＤ００９の合成
Figure 2022523854000063
１）化合物２の製造
Figure 2022523854000064
２，５－ジブロモベンゼン（５．００ｇ、１７．８ｍｍｏｌ）及びｔｅｒｔ－ブチルアクリレート（６．８４ｇ、５３．４ｍｍｏｌ）のＥｔ３Ｎ（５０ｍＬ）溶液に、トリス－ｏ－トリ（ｏ－トリル）－ホスフィン（４３３ｍｇ、１．４２ｍｍｏｌ）とジアセトキシパラジウムをＮ２下で追加した（８０ｍｇ、０．３６ｍｍｏｌ）。混合物を１００℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、化合物１が完全に消耗していないことを示した。次に、ｔｅｒｔ－ブチルアクリレート（４．００ｇ）、トリス－ｏ－トリルホスファン（２２４ｍｇ）及びジアセトキシパラジウム（８０ｍｇ）を反応混合物に添加した。その後、混合物を１００℃で２０時間撹拌した。ＴＬＣは、より大きい極性の他の位置が観察されていることを示した。反応混合物を真空で濃縮し、残留物にＥｔＯＡｃ（５０ｍＬ）を添加後に濾過し、濾過液を真空で濃縮した。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／５０：１を用いたＣｏｍｂｉ ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、黄色固体として化合物２（５．７２ｇ、収率：８５％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.54 (18H, s), 6.34 (1H, d, J = 15.6 Hz), 6.48 (1H, d, J = 16.0 Hz), 7.56 (1H, d, J = 16.0 Hz), 7.65 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.72 (2H, dd, J = 8.0 Hz, 1.6 Hz), 7.98 (1H, d, J = 16.0 Hz), 8.12 (1H, d, J = 1.6 Hz).
２）化合物３の製造
Figure 2022523854000065
氷浴槽で冷却したアセトン（７０ｍＬ）中化合物２（６．９８ｇ、１８．６ｍｍｏｌ）溶液にＺｎ（９．７３ｇ、１４９ｍｍｏｌ）を加えた後、Ｈ２Ｏ（３５ｍＬ）中ＮＨ４Ｃｌ（３．９８ｇ、７４．４ｍｍｏｌ）溶液を加えた。混合物を５℃で４時間撹拌し、ＴＬＣは、より大きい極性の他の位置が観察され、出発物質が完全に消耗していることを示した。反応混合物にＥｔＯＡｃ（５０ｍＬ＊４）を添加し、上端の透明な溶液を収集した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮した。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／１６：１を用いたＣｏｍｂｉ Ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、黄色固体として化合物３（５．２２ｇ、収率：８１％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.54 (18H, s, overlap water signal), 3.99 (2H, brs), 6.26-6.38 (2H, m), 6.81 (1H, s), 6.93 (1H, d, J = 9.6 Hz), 7.37 (1H, d, J = 8.4 Hz), 7.46 (1H, d, J = 16.0 Hz), 7.68 (1H, d, J = 16.0 Hz).
３）化合物６の製造
Figure 2022523854000066
ＤＭＡ（６ｍＬ）中化合物３（３００ｍｇ、０．４８４ｍｍｏｌ）、ＴｓＯＨ（８ｍｇ、０．０５ｍｍｏｌ）、化合物９－５（２５１ｍｇ、０．７２６ｍｍｏｌ）及びＥＤＣＩ（４６４ｍｇ、２．４２ｍｍｏｌ）の混合物を１０℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、より大きい極性の他の位置が観察されていることを示した。ＤＭＡは真空で除去された。残留溶液を水（１０ｍＬ）でクエンチングし、得られた溶液を、ＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ＝３：１（３０ｍＬ＊６）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮した。残留物を、ＥｔＯＡｃに続いてＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ／１０：１を使用するシリカゲルカラム溶出液で精製し、黄色オイルとして化合物６（３１９ｍｇ、収率：６９％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.52 (18H, s), 2.71 (2H, t, J = 5.6 Hz), 3.44-3.67 (26H, m), 3.71-3.75 (2H, m), 3.82-3.89 (2H, m), 4.16-4.24 (1H, m), 4.38-4.40 (2H, m), 5.45 (1H, brs), 6.33-6.45 (2H, m), 7.26-7.32 (3H, m, overlap CDCl3 signal), 7.39 (2H, t, J = 7.6 Hz), 7.51-7.61 (4H, m), 7.69-7.76 (3H, m), 8.00 (1H, s), 8.76 (1H, brs).
４）化合物７の製造
Figure 2022523854000067
ＤＣＭ（３ｍＬ）中化合物６（３１９ｍｇ、０．３３７ｍｍｏｌ）溶液にＴＦＡ（１．０９ｇ、９．５２ｍｍｏｌ）を追加した。混合物を１０℃で１６時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．８０１維持時間で純度９５％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：８３４．３；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：８３５．０［Ｍ＋Ｈ］＋）。反応混合物を真空で濃縮した。残留物をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で粉砕して濾過した。フィルターケーキをＥｔＯＡｃ（５ｍＬ）で洗浄し、白色固体として化合物７（２４４ｍｇ、収率：８６％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 2.51-2.68 (2H, m, overlap DMSO-d6 signal), 3.09-3.17 (2H, m), 3.44-3.58 (26H, m, overlap water signal), 3.62-3.79 (2H, m), 4.16-4.21 (1H, m), 4.22-4.42 (2H, m), 6.48-6.61 (2H, m), 7.28-7.34 (3H, m), 7.36-7.49 (2H, m), 7.54-7.58 (2H, m), 7.66-7.72 (4H, m), 7.84-7.90 (3H, m), 9.88 (1H, brs), 12.48 (2H, brs).
５）化合物８の製造
Figure 2022523854000068
ＤＭＦ（４ｍＬ）中の化合物７（２４４ｍｇ、０．２９２ｍｍｏｌ）及び化合物６－９（４９４ｍｇ、０．８７７ｍｍｏｌ）の溶液に、１０℃でＥＤＣＩ（１６８ｍｇ、０．８７７ｍｍｏｌ）を追加した。次に、混合物を１０℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、より大きい極性の他の位置が観察されていることを示した。ＤＭＦを真空で除去し、残留物を水（１０ｍＬ）でクエンチングした。得られた溶液をＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ＝２０：１（１５ｍＬ＊６）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮した。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／１：１～０：１～ＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ／２０：１を用いたシリカゲルカラム溶出液で精製し、黄色固体として化合物８（４６９ｍｇ、収率：８３％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.97-2.04 (12H, m, overlap water signal), 2.11-2.14 (6H, m), 2.15-2.23 (6H, m), 2.71-2.82 (2H, m), 3.39-3.62 (26H, m), 3.67-3.73 (2H, m), 3.75-3.83 (2H, m), 3.92-4.06 (4H, m), 4.11-4.57 (15H, m) (overlap EtOAc signal), 5.22 (2H, d, J = 7.6 Hz), 5.35-5.40 (2H, m), 5.50-5.56 (3H, m), 5.74 (2H, t, J= 8.0 Hz), 6.95-7.03 (2H, m), 7.27-7.36 (2H, m, overlap CDCl3signal), 7.37-7.46 (5H, m), 7.54-7.61 (4H, m), 7.71-7.76 (5H, m), 7.84 (1H, d, J = 15.6 Hz), 7.98-8.04 (1H, m), 8.17 (3H, d, J = 8.0 Hz), 8.43 (2H, d, J = 8.0 Hz) , 8.95 (1H, brs).
化合物６－９の合成は、ＰＤ００５の製造例と同一である。
６）化合物９の製造
Figure 2022523854000069
ＤＣＭ（３ｍＬ）中化合物８（１９７ｍｇ、０．１０２ｍｍｏｌ）溶液にピぺリジン（０．３ｍＬ）を１０℃で追加した。混合物を１０℃で１．５時間撹拌した。ＴＬＣは、より大きい極性の他の位置が観察されていることを示した。反応混合物を真空で濃縮し、残留物を水（１０ｍＬ）でクエンチングした。得られた溶液をＤＣＭ（１５ｍＬ＊４）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮した。残留物を、ＥｔＯＡｃに続いてＤＣＭ：ＭｅＯＨ／５０：１～１０：１のシリカゲルカラム溶出液で精製し、黄色固体として化合物９（９６ｍｇ、収率：５５％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.03-2.10 (12H, m, overlap water signal), 2.11-2.18 (6H, m), 2.19-2.28 (6H, m), 2.95-3.06 (2H, m), 3.16-3.16 (2H, m), 3.48-3.76 (28H, m), 3.76-3.82 (2H, m), 3.84-3.90 (2H, m), 3.91-4.06 (4H, m), 4.13-4.39 (8H, m), 4.46-4.63 (4H, m), 5.23 (2H, d, J = 10.8 Hz), 5.40 (2H, d, J = 8.0 Hz), 5.52-5.61 (2H, m), 5.68-5.80 (2H, m), 6.98 (2H, t, J= 15.6 Hz), 7.38-7.49 (3H, m), 7.56 (2H, t, J = 7.2 Hz), 7.67-7.89 (4H, m), 7.83 (2H, d, J = 15.2 Hz), 7.93-8.04 (2H, m), 8.12-8.20 (2H, m), 8.34-8.51 (2H, m), 10.04 (1H, brs).
７）化合物１０の製造
Figure 2022523854000070
ＤＣＭ（１ｍＬ）及びＭｅＯＨ（２ｍＬ）中化合物９（１２０ｍｇ、０．０７０４ｍｍｏｌ）溶液にＫ２ＣＯ３（１９ｍｇ、０．１４ｍｍｏｌ）を追加した。混合物を１０℃で３０分間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、新しいピークが観察され、化合物９が完全に消費されていることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：１７０２．５）（化合物１０のＭＳは１５００を超えており、ＭＳと見ることができない）。反応混合物にＣＨ３ＣＯＯＨ（１９ｍｇ）を追加した。混合物を１０℃で５分間撹拌し、真空で濃縮し、黄色固体として化合物１０（９２ｍｇ、クルード）を得た。
８）ＰＤ００９の製造
Figure 2022523854000071
ＤＭＦ（１ｍＬ）中化合物１０（９２ｍｇ、クルード）及びＤＩＥＡ（１４ｍｇ、０．１１ｍｍｏｌ）溶液に、１０゜で化合物６－６（２８ｍｇ、０．１１ｍｍｏｌ）を追加した。混合物を１０℃で１６時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、新しいピークが観察され、化合物１０が完全に消費されていることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：１３６６．５）（ＰＤ００９のＭＳは１５００を超えており、ＭＳと見ることができない）。得られた混合物をｐｒｅｐ－ＨＰＬＣ（０．２２５％ ＦＡ）で精製した。ＭｅＣＮの大部分は減圧下で除去された。残った混合液を凍結乾燥させ、黄色固体としてＰＤ００９（４０ｍｇ、２段階の収率：３７％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 2.32 (2H, t, J = 7.2 Hz), 2.64-2.74 (2H, m) 3.09-3.18 (2H, m), 3.46-3.71 (33H, m, overlap water signal), 3.73-4.12 (12H, m), 4.23-4.70 (11H, m) 4.91-5.00 (4H, m), 5.34-5.44 (2H, m), 6.99 (1.4H, s), 7.27 (2H, d, J = 15.2 Hz), 7.43 (2H, t, J = 8.0 Hz), 7.57 (2H, t, J = 7.6 Hz), 7.66-7.81 (2H, m), 7.84-7.91 (4H, m), 7.98-8.10 (2H, m), 8.32-8.41 (4H, m), 10.00 (1H, brs).
化合物６－６の合成は、ＰＤ００６の製造例と同一である。
９）化合物９－２’の製造
Figure 2022523854000072
バッチ１
０℃ ＴＨＦ（２０ｍＬ）中ＮａＨ（５３６ｍｇ、１３．４ｍｍｏｌミネラルオイル中６０％）の懸濁液に、ＴＨＦ（５ｍＬ）中のトリエチレングリコール（２．４１ｇ、１６．１ｍｍｏｌ）をＮ２下で滴下した。反応物を、５℃で１．５時間撹拌した。次に、ＴＨＦ（５ｍＬ）中化合物６－３Ｄ（２．００ｇ、５．３６ｍｍｏｌ）をナトリウムアルコラート還流溶液に滴下した。次に、混合物をＮ２下で１６時間還流（７０゜Ｃ）した。ＴＬＣは、他の新しい位置が観察され、化合物６－３Ｄが完全に消耗していることを示した。反応混合物をバッチ２と混合した。
バッチ２
０℃ ＴＨＦ（２０ｍＬ）中ＮａＨ（５３６ｍｇ、１３．４ｍｍｏｌミネラルオイル中６０％）の懸濁液に、ＴＨＦ（５ｍＬ）中トリエチレングリコール（２．４１ｇ、１６．１ｍｍｏｌ）をＮ２下で滴下した。反応物を５℃で１．５時間撹拌した。次に、ＴＨＦ（５ｍＬ）中化合物６－３Ｄ（２．００ｇ、５．３６ｍｍｏｌ）を、ナトリウムアルコラート還流溶液に滴下した。次に、混合物をＮ２下で１６時間還流（７０゜Ｃ）した。ＴＬＣは、他の新しい位置が観察され、化合物６－３Ｄが完全に消耗していることを示した。反応混合物をバッチ１と共に水（５０ｍＬ）でクエンチングした。有機層を分離した後、残った混合液をＤＣＭ：ＭｅＯＨ＝１０：１（５０ｍＬ＊４）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮した。残留物をＤＣＭ：ＭｅＯＨ／１００：１～５０：１のシリカゲルカラム溶出液で精製し、ピンクオイルの化合物９－２’（３．０３ｇ、２バッチ収率：８０％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 3.41 (2H, t, J = 5.2 Hz), 3.62-3.76 (26H, m).
化合物６－３Ｄの合成は、ＰＤ００６の製造例と同一である。
１０）化合物９－３の製造
Figure 2022523854000073
０゜Ｃ ＴＨＦ（５ｍＬ）中化合物９－２’（３２８ｍｇ、０．９３３ｍｍｏｌ）の溶液に、ＮａＨ（４．０ｍｇ、０．０９３ｍｍｏｌ、ミネラルオイル中６０％）を追加し、混合物を０゜Ｃで１時間撹拌した。次に、ｔｅｒｔ－ブチルアクリレート（２３９ｍｇ、１．８７ｍｍｏｌ）を混合物に添加した。反応混合物を５℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、極性が低い他の位置が観察されていることを示した。微量の化合物９－２’が依然として残っていた。水（１０ｍＬ）で反応をクエンチングさせ、得られた溶液をＤＣＭ：ＭｅＯＨ＝１０：１（１５ｍＬ＊４）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮した。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／１：１～１：４を用いたシリカゲルカラム溶出液で精製し、無色オイルとして化合物９－３（３２２ｍｇ、収率：７２％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.45 (9H, s), 2.50 (2H, t, J = 6.8 Hz), 3.39 (2H, t, J = 5.2 Hz), 3.62-3.72 (28H, m).
１１）化合物９－３’製造
Figure 2022523854000074
ＴＨＦ（１０ｍＬ）中化合物９－３（１．４９ｇ、３．１１ｍｍｏｌ）の溶液にＮ２下でＰＰｈ３（８９６ｍｇ、３．４２ｍｍｏｌ）を追加した。混合物を１０℃で１時間撹拌した後、Ｈ２Ｏ（５ｍＬ）を混合物に添加した。次に、混合物をＮ２下に１０℃で１６時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．７４２維持時間で３％純度であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：４５３．２；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：４５４．２［Ｍ＋Ｈ］＋）。真空下でＴＨＦを除去した。残りの溶液を水（１０ｍＬ）でクエンチングし、得られた溶液をＥｔＯＡｃ：ＰＥ＝３：１（３０ｍＬ＊２）で抽出した。残った水層を真空で濃縮し、無色オイルとして化合物９－３’（１．５２ｇ、ｃｒｕｄｅ）（水分含有）を製造した。
１２）化合物９－４’製造
Figure 2022523854000075
ＴＨＦ（１０ｍＬ）及びＨ２Ｏ（１０ｍＬ）中化合物９－３’（１．５２ｇ）（クルード、水分含有）溶液に、Ｆｍｏｃ－Ｃｌ（８９７ｍｇ、３．４７ｍｍｏｌ）及びＮａＨＣＯ３（２９１ｍｇ、３．４７ｍｍｏｌ）を追加した。混合物を１０℃で１６時間撹拌した結果、ＴＬＣは、極性のより低い他の位置が観察されていることを示した。真空下でＴＨＦを除去し、残った溶液を水（２０ｍＬ）でクエンチングした。得られた溶液をＥｔＯＡｃで抽出した（４０ｍＬ＊５）。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過した後、真空で濃縮した。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／１：１～０：１を用いてシリカゲルカラム溶出液で精製し、無色オイルとして化合物９－４’（１．２５ｇ、２工程の収率：５９％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.46 (9H, s), 2.51 (2H, t, J = 6.8 Hz), 3.39-3.43 (2H, m), 3.62-3.73 (28H, m), 4.22-4.26 (1H, m), 4.42 (2H, d, J =7.2 Hz), 5.45 (1H, brs), 7.31-7.35 (2H, m), 7.38-7.47 (2H, m), 7.62 (2H, d, J= 7.2 Hz), 7.78 (2H, d, J = 7.2 Hz).
１３）化合物９－５の製造
Figure 2022523854000076
ＤＣＭ（１２ｍＬ）中化合物９－４’（１．２５ｇ、１．８５ｍｍｏｌ）溶液にＴＦＡ（５．９５ｇ、５２．２ｍｍｏｌ）を追加した。混合物を１０℃で１６時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．８１６維持時間で純度９５％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：６１９．３；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：６４２．０［Ｍ＋Ｎａ］＋）。反応混合物を真空で濃縮し、無色オイルとして化合物９－５（１．１７ｇ、収率：１００％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 2.43 (2H, t, J = 6.4 Hz), 3.13 (2H, dd, J= 11.6 Hz, 5.6 Hz), 3.40 (2H, t, J = 6.0 Hz), 3.48-3.49 (24H, m), 3.59 (2H, t, J= 6.4 Hz), 4.19-4.23 (1H, m), 4.29 (2H, d, J=6.4 Hz), 7.29-7.39 (3H, m), 7.42 (2H, t, J= 7.6 Hz), 7.69 (2H, d, J = 7.2 Hz), 7.89 (2H, d, J = 7.2 Hz)。（１個の活性陽性子も観察されなかった。）
製造例６．ＰＤ０１０の合成
Figure 2022523854000077
１）化合物１０の製造
Figure 2022523854000078
ＤＣＭ（２ｍＬ）中化合物９（１２０ｍｇ、０．０７０４ｍｍｏｌ）、（２，５－ジオキソピロリジン－１－イル）６－オキソヘキサノエート（２４ｍｇ、０．１１ｍｍｏｌ）及びＤＩＥＡ（１８ｍｇ、０．１４ｍｍｏｌ）の混合物を１０℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、極性のより低い一つの主要位置が観察されていることを示した。反応混合物をｐｒｅｐ－ＴＬＣ（ＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ／２０：１で溶離液）で精製し、黄色固体として化合物１０（７２ｍｇ、収率：５６％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.57-1.76 (4H, m), 2.01-2.10 (12H, m), 2.11-2.30 (14H, m), 2.41-2.50 (2H, m), 2.77-2.88 (2H, m), 3.36-3.76 (28H, m), 3.78-3.86 (2H, m), 3.90-4.07 (4H, m), 4.12-4.39 (8H, m), 4.45-4.63 (4H, m), 5.23 (2H, d, J = 10.0 Hz), 5.35-5.45 (2H, m), 5.56 (2H, s), 5.74 (2H, d, J = 9.2 Hz), 6.42 (1H, brs), 6.93-7.07 (2H, m), 7.40-7.50 (3H, m), 7.52-7.63 (2H, m), 7.69-7.78 (3H, m), 7.85 (1H, d, J = 15.6 Hz), 8.02 (1H, d, J= 14.8 Hz), 8.13-8.21 (3H, m), 8.43 (2H, d, J= 7.2 Hz), 9.10 (1H, brs), 9.75 (1H, s).
（２，５－ジオキソピロリジン－１－イル）６－オキソヘキサノエート化合物の合成は、ＰＤ００６の製造例と同一である。化合物９の合成は、ＰＤ００９の製造例と同一である。
２）ＰＤ０１０の製造
Figure 2022523854000079
ＤＣＭ（１ｍＬ）及びＭｅＯＨ（２ｍＬ）中化合物１０（７２ｍｇ、０．０４０ｍｍｏｌ）及びＫ２ＣＯ３（１１ｍｇ、０．０７９ｍｍｏｌ）の混合物を１０゜Ｃで１時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、０．８３１維持時間で生成物の純度が９１％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：１４７８．５；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１４８１．１［Ｍ＋３］＋）。反応混合物をＡｃＯＨ（１２ｍｇ）でクエンチングした。得られた混合物をｐｒｅｐ－ＨＰＬＣ（０．２２５％ ＦＡ）で精製した。ＭｅＣＮの大部分は減圧下で除去された。残った混合液を凍結乾燥させ、黄色固体としてＰＤ０１０（２４ｍｇ、収率：４１％）を得た。このバッチ（２４ｍｇ）をｅｓ８４５５－１９３－ｐ１（２ｍｇ）のバッチと混合した。その後、総２６ｍｇのＰＤ０１０を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO) δ 1.30-.154 (4H, m), 1.95-2.10 (2H, m), 2.63-2.78 (2H, m, overlap DMSO signal), 3.08-3.24 (2H, m, overlap water signal), 3.25-4.11 (46H, m), 4.26-4.42 (2H, m), 4.45-4.77 (8H, m), 4.81-5.10 (4H, m), 5.29-5.54 (2H, brs), 7.18-7.33 (2H, m), 7.36-7.49 (2H, m), 7.51-7.62 (2H, m), 7.64-7.96 (7H, m), 8.04-8.14 (1H, m), 8.26-8.47 (4H, m), 9.64 (1H, s), 10.00 (1H, s).
製造例７：ＰＤ０１１の合成
Figure 2022523854000080
１）化合物１１－２の製造
Figure 2022523854000081
ＤＭＦ（６ｍＬ）中化合物１１－１（１．３０ｇ、１．９４ｍｍｏｌ）、化合物３（６７２ｍｇ、１．９４ｍｍｏｌ）及びＫ２ＣＯ３（３２２ｍｇ、２．３３ｍｍｏｌ）の混合物を６０℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、化合物１１－１の出発物質が依然として残っていることを示した。新しい位置が観察された。混合物を水（５０ｍＬ）でクエンチングし、ＤＣＭ（２０ｍＬ＊３）で抽出した。混合した有機層を水（５０ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し濃縮して乾燥させた。残留物を、ＥｔＯＡｃ：ＰＥ／１：１ＥｔＯＡｃを持つＣｏｍｉｂ ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、無色オイルとしてクルード化合物１１－２（７１０ｍｇ、ＤＭＦ含有）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.55 (18H, d, J = 4.0 Hz), 3.56-3.73 (22H, m), 3.75-3.80 (2H, m), 3.86-3.90 (2H, m), 3.92-3.96 (2H, m), 4.21-4.26 (2H, m), 4.37-4.42 (2H, m), 6.30 (1H, d, J = 16.0 Hz), 6.52 (1H, d, J = 16.0 Hz), 7.04 (1H, s), 7.12 (1H, d, J = 8.4 Hz), 7.48-7.57 (2H, m), 7.75-7.79 (2H, m), 7.84-7.91 (3H, m).
化合物１１－１の合成は、ＰＤ００１の実施例と同一である。
２）化合物１１－３の製造
Figure 2022523854000082
ＭｅＯＨ（７Ｍ、１０ｍＬ）中ＮＨ３と化合物１１－２（７３８ｍｇ、クルード）溶液を１５℃で１６時間撹拌した。白色沈殿物が形成された後、白色沈殿物をフィルタリングした。濾過液を濃縮後に乾燥させ、無色オイルとして化合物１１－３（５８２ｍｇ）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO) δ 1.48 (18H, d, J = 4.4 Hz), 3.46-3.54 (22H, m), 3.55-3.66 (6H, m), 3.79-3.85 (2H, m), 4.24-4.29 (2H, m), 4.37-4.42 (2H, m), 5.98 (2H, brs), 6.60-6.71 (2H, m), 7.28 (1H, d, J = 7.6 Hz), 7.45 (1H, s), 7.53 (1H, d, J = 16.0 Hz), 7.73 (1H, t, J= 8.0 Hz), 7.81 (1H, d, J = 18.4 Hz).
３）化合物１１－４の製造
Figure 2022523854000083
Ｈ２Ｏ（５ｍＬ）及びＴＨＦ（５ｍＬ）中化合物１１－３（５８０ｍｇ、０．８１２ｍｍｏｌ）、Ｆｍｏｃ－Ｃｌ（２３１ｍｇ、０．８９４ｍｍｏｌ）及びＮａＨＣＯ３（７５ｍｇ、０．８９ｍｍｏｌ）の混合物を１５℃で２時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が１．００３維持時間で４３％の純度であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ：９３５．５；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：９５８．５［Ｍ＋Ｎａ］＋）。混合物を、ＥｔＯＡｃで抽出した（６ｍＬ＊４）。混合した有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し濃縮後に乾燥させた。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／１：１～ＥｔＯＡｃ、続いてＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ／１０：１を用いてシリカゲルカラム溶出液で精製し、無色オイルとして化合物１１－４（５５８ｍｇ、収率：７３％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.55 (18H, d, J = 4.8 Hz), 3.61-3.79 (26H, m), 3.90-3.96 (2H, m), 4.01-4.06 (2H, m), 4.19-4.30 (3H, m), 4.50 (2H, d, J = 6.8 Hz), 6.38 (1H, d, J = 16.0 Hz), 6.52 (1H, d, J = 16.0 Hz), 7.03 (1H, s), 7.12 (1H, d, J = 7.6 Hz), 7.31-7.36 (2H, m), 7.42 (1H, t, J = 7.6 Hz), 7.48-7.57 (2H, m), 7.62 (1H, d, J = 7.6 Hz), 7.78 (1H, d, J = 7.2 Hz), 7.88 (1H, d, J = 16.0 Hz), 8.27 (1H, brs).
４）化合物１１－５の製造
Figure 2022523854000084
ＤＣＭ（５ｍＬ）中化合物１１－４（５５８ｍｇ、０．５９６ｍｍｏｌ）及びＴＦＡ（３．０８ｇ、２７．０ｍｍｏｌ、２ｍＬ）溶液を１５゜Ｃで１６時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．８２７維持時間で８５％純度であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：８２３．３；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：８４６．３［Ｍ＋Ｎａ］＋）。溶媒を減圧下で除去した。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／１：１（１０ｍＬ）で粉砕し、白色固体として化合物１１－５（４３３ｍｇ、収率：８８％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO) δ 3.41-3.87 (30H, m, overlap water signal), 4.21-4.32 (3H, m), 4.40 (2H, d, J = 6.8 Hz), 6.59-6.72 (2H, m), 7.26-7.37 (3H, m), 7.38-7.47 (3H, m), 7.58 (1H, d, J = 16.0 Hz), 7.65-7.75 (3H, m), 7.80 (1H, d, J = 16.4 Hz), 7.89 (2H, d, J = 7.6 Hz), 10.46 (1H, brs), 12.43 (2H, brs).
５）化合物１１－６の製造
Figure 2022523854000085
ＤＭＦ（３ｍＬ）中化合物１１－５（２４０ｍｇ、０．２９１ｍｍｏｌ）と化合物６－９（４９３ｍｇ、クルード）の混合物に、１５℃でＥＤＣＩ（１６８ｍｇ、０．８７４ｍｍｏｌ）を追加した。次に、混合物を１５℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、黄色を有する主要位置一つが観察されていることを示した。大部分のＤＭＦは減圧下で除去された。残留物を、ＥｔＯＡｃに続いてＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ／２５：１を用いるシリカゲルカラム溶離液で精製し、黄色固体として生成物（５４１ｍｇ）を得た。クルード約１６５ｍｇを次の段階（ｄｅ－Ｆｍｏｃ ｒｅａｃｔｉｏｎ）に使用したが、肯定的な結果が得られなかった。その後、残り（３７５ｍｇ）をＥｔＯＡｃ（４０ｍＬ）に溶解し、水（４０ｍＬ＊３）で洗浄した。有機層を分離し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥して濃縮後に乾燥させ、純粋な化合物１１－６（３４０ｍｇ）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.00-2.11 (12H, m, overlap EtOAc signal), 2.17 (6H, d, J= 11.2 Hz), 2.24 (6H, s), 3.45-3.84 (28H, m), 3.97-4.40 (19H, m, overlap EtOAc signal), 4.42-4.63 (5H, m), 5.18-5.26 (2H, m), 5.36-5.44 (2H, m), 5.52-5.60 (2H, m), 5.70-5.80 (2H, m), 6.97 (1H, d, J= 15.2 Hz), 7.17 (1H, s), 7.25-7.37 (4H, m, overlap CDCl3 signal), 7.38-7.49 (4H, m), 7.53-7.64 (5H, m), 7.69-7.79 (4H, m), 7.83 (1H, d, J = 15.2 Hz), 8.00 (1H, d, J = 15.6 Hz), 8.14-8.20 (2H, m), 8.34 (1H, brs), 8.46 (1H, d, J = 11.6 Hz).
６）化合物１１－７の製造
Figure 2022523854000086
ＴＨＦ（２ｍＬ）中化合物１１－６（２８０ｍｇ、０．１４６ｍｍｏｌ）及びピぺリジン（１７２ｍｇ、２．０３ｍｍｏｌ，０．２ｍＬ）溶液を１５゜Ｃで１時間撹拌した。ＴＬＣは、一つの新しい位置が観察されていることを示した。出発物質は完全に消耗していた。溶媒を減圧下で除去した。残留物をＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ／１０：１を用いるｐｒｅｐ－ＴＬＣ溶出液で精製し、黄色固体として化合物１１－７（１１６ｍｇ、収率：４７％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.06 (12H, d, J = 4.4 Hz), 2.17 (6H, d, J = 10.4 Hz), 2.24 (6H, s), 3.47-3.85 (30H, m), 3.97-4.63 (18H, m), 5.17-5.27 (2H, m), 5.35-5.44 (2H, m), 5.52-5.62 (2H, m), 5.70-5.80 (2H, m), 6.98 (1H, d, J= 15.2 Hz), 7.18 (1H, s), 7.26-7.37 (2H, m, overlap CDCl3 signal), 7.40-7.49 (2H, m), 7.52-7.65 (3H, m), 7.73 (2H, d, J = 7.6 Hz), 7.84 (1H, d, J= 15.2 Hz), 8.00 (1H, d, J = 15.2 Hz), 8.13-8.21 (2H, m), 8.45 (2H, d, J= 11.6 Hz).
７）ＰＤ０１１の製造
Figure 2022523854000087
ＭｅＯＨ（１ｍＬ）及びＴＨＦ（１ｍＬ）中化合物１１－７（１１６ｍｇ、０．０６８ｍｍｏｌ）及びＫ２ＣＯ３（１９ｍｇ、０．１４６ｍｍｏｌ）混合物を１５゜Ｃで１時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が維持時間０．７７２で８６％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ：１３５５．５；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１３５７．２［Ｍ＋２］＋）。混合物をＡｃＯＨ（５０ｍｇ）でクエンチングした。混合物を、ｐｒｅｐ－ＨＰＬＣ（０．２２５％ ＦＡ）で精製した。ＭｅＣＮの大部分を減圧下で除去し、残った水溶液を凍結乾燥させ、黄色固体としてＰＤ０１１（４５ｍｇ、収率：４８％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO) δ 3.18-4.10 (48H, m, overlap water signal), 4.27-4.72 (12H, m), 4.87-5.02 (2H, m), 5.39 (2H, brs), 7.30-7.64 (8H, m), 7.74 (1H, d, J = 15.2 Hz), 7.81-7.97 (4H, m), 8.28-8.49 (4H, m).
８）化合物２の製造
Figure 2022523854000088
ＤＣＭ（５０ｍＬ）中オクタエチレングリコール（５．００ｇ、１３．５ｍｍｏｌ）及びＥｔ３Ｎ（１．３７ｇ、１３．５ｍｍｏｌ）溶液に１５℃でＴｏｓＣｌ（２．５７ｇ、１３．５ｍｍｏ）を添加した。次に、混合物を１５℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、出発物質が消耗され、２個の新しい位置が形成されていることを示した。混合物を水（５０ｍＬ）でクエンチングし、有機層を分離した。残りの水相をＤＣＭ（３０ｍＬ＊２）で抽出した。混合した有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し濃縮後に乾燥させた。残留物をＥｔＯＡｃに続いてＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ／９：１を用いたＣｏｍｂｉ ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、無色オイルとして化合物２（３．５９ｇ、収率：５１％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 3.59-3.76 (30H, m), 4.18 (2H, t, J = 4.8 Hz), 7.36 (2H, d, J = 8.0 Hz), 7.82 (2H, d, J = 8.4 Hz).
９）化合物３の製造
Figure 2022523854000089
ＴＨＦ（３０ｍＬ）中化合物２（３．５８ｇ、６．８２ｍｍｏｌ）溶液に、２－ヒドロキシイソインドリン－１，３－ジオン（１．１１ｇ、６．８２ｍｍｏｌ）及びＰＰｈ３（２．３３ｇ、８．８７ｍｍｏｌ）を０゜ＣでＮ２下で添加した。次に、混合物を０℃で３０分間撹拌した。その後、ＤＩＡＤ（１．６６ｇ、８．１９ｍｍｏｌ）を混合物に０℃で追加した。得られた混合物をＮ２下に１５℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、新しい位置が観察されていることを示し、その後、溶媒を減圧下で除去した。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／１：１ＥｔＯＡｃを用いてＣｏｍｂｉ ｆｌａｓｈ溶出液で精製し、化合物３（３．９１ｇ、収率：８６％）を無色オイルとして得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 2.47 (3H, s), 3.56-3.73 (26H, m), 3.86-3.91 (2H, m), 4.16-4.20 (2H, m), 4.37-4.42 (2H, m), 7.36 (2H, d, J = 7.6 Hz), 7.75-7.88 (6H, m).
製造例８：ＰＤ０１２の合成
Figure 2022523854000090
１）化合物１２－１の製造
Figure 2022523854000091
ＤＭＦ（２ｍＬ）中化合物６－１４（１０７ｍｇ、０．０６３８ｍｍｏｌ）及び化合物１２－１ａ（２５ｍｇ、原油）溶液に、ＤＩＥＡ（１３ｍｇ、０．１０ｍｍｏｌ）を添加した。混合物をＮ２下で１５℃で１６時間撹拌した。ＴＬＣは、より低い極性の他の黄色位置が観察されていることを示した。ＤＭＦは真空で除去された。残留物を水（１０ｍＬ）でクエンチングした。得られた溶液をＤＣＭ（１５ｍＬ＊４）で抽出した。混合した有機層を水（５０ｍＬ）で洗浄し、有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過した後、真空で濃縮した。残留物を、ＥｔＯＡｃ：ＭｅＯＨ／１０：１を用いるｐｒｅｐ－ＴＬＣ溶出液で精製し、黄色固体として化合物１２－１（８１ｍｇ、原油）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.94-2.08 (12H, m), 2.09-2.24 (12H, m), 3.50-3.84 (32H, m), 3.98-4.37 (13H, m), 4.43-4.62 (4H, m), 5.20 (2H, d, J = 10.0 Hz), 5.38 (2H, d, J = 7.2 Hz), 5.50-5.57 (2H, m), 5.72 (2H, t, J = 8.8 Hz), 6.96 (1H, d, J = 15.2 Hz), 7.15 (1H, s), 7.27-7.35 (2H, m, overlap CDCl3 signal), 7.39-7.47 (2H, m), 7.51-7.62 (4H, m), 7.71 (2H, d, J = 8.0 Hz), 7.81 (1H, d, J = 15.2 Hz), 7.94-8.09 (2H, m), 8.11-8.20 (2H, m), 8.36-8.48 (3H, m), 10.07 (1H, s).
化合物６－１４の合成は、ＰＤ００６の実施例と同一である。
２）ＰＤ０１２の製造
Figure 2022523854000092
ＤＣＭ（０．２ｍＬ）及びＭｅＯＨ（０．４ｍＬ）中化合物１２－１（８１ｍｇ、クルード）の溶液に、Ｋ２ＣＯ３（１２ｍｇ、０．０９０ｍｍｏｌ）を添加した。混合物を１５℃で１時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．７８７維持時間で純度９９％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：１４７４．２；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１４９６．２［Ｍ＋Ｎａ］＋）。反応混合物を真空で濃縮した。残留物をｐｒｅ－ＨＰＬＣ（０．２２５％ ＦＡ）で精製した。ＭｅＣＮの大部分は減圧下で除去された。残った混合液を凍結乾燥させ、黄色固体としてＰＤ０１２（３１ｍｇ、２段階の収率：３３％）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 3.44-3.68 (28H, m), 3.71-4.16 (15H, m), 4.26-4.82 (15H, m), 4.88-5.07 (4H, m ), 5.39 (2H, brs), 7.25-7.64 (8H, m), 7.57 (1H, d, J = 5.2 Hz), 7.81-8.02 (4H, m), 8.07 (1H, d, J = 7.6 Hz), 8.17-8.36 (4H, m), 8.37-8.46 (2H, m), 8.81 (1H, brs), 10.02 (1H, s).
３）化合物１の製造
Figure 2022523854000093
０℃ ＭｅＯＨ（２５ｍＬ）中ＳＯＣｌ２（８．８３ｇ、７４．２ｍｍｏｌ）溶液に、２，６－ピリジンジカルボン酸（２．００ｇ、１２．０ｍｍｏｌ）を添加した。混合物を７０℃で３時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が維持時間０．７５２で純度９９％であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：１９５．１；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１９５．９［Ｍ＋Ｈ］＋）。反応混合物をｓａｔ．ａｑ．ＮａＨＣＯ３（３０ｍＬ）でクエンチングし、得られた溶液をＥｔＯＡｃ（３０ｍＬ＊６）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮し、白色固体として化合物１（２．３３ｇ、収率：９９％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 4.03 (6H, s), 8.03 (1H, t, J = 8.0 Hz), 8.32 (2H, d, J = 7.2 Hz).
４）化合物２の製造
Figure 2022523854000094
ＭｅＯＨ（３５ｍＬ）中化合物１（２．３３ｇ、１１．９ｍｍｏｌ）撹拌溶液にＮａＢＨ４（１．７１ｇ、４５．１ｍｍｏｌ）を０℃で徐々に添加し、混合物を０℃で１時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．２９７維持時間で９７％純度であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：１６７．１；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１６７．７［Ｍ＋Ｈ］＋）。反応混合物をｓａｔ．ａｑ．ＮａＨＣＯ３（２００ｍＬ）でクエンチングし、得られた溶液をＤＣＭ（１００ｍＬ＊６）で抽出した。混合した有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、濾過後に真空で濃縮した。残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／１：１～ＥｔＯＡｃを用いるシリカゲルカラム溶出液で精製し、白色固体として化合物２（８３２ｍｇ、収率：４２％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 3.45 (1H, brs), 4.02 (3H, s), 4.88 (2H, d, J = 4.8 Hz), 7.55 (1H, d, J = 7.6 Hz), 7.87 (1H, t, J = 7.6 Hz), 8.06 (1H, d, J = 7.2 Hz).
５）化合物３の製造
Figure 2022523854000095
１，２－ジクロロエタン（２５ｍＬ）中化合物２（８３２ｍｇ、４．９８ｍｍｏｌ）溶液にＭｎＯ２（４．３３ｇ、５０．０ｍｍｏｌ）を１５℃で添加し、混合物を９０℃で２時間加熱した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が０．３８６維持時間で９８％の純度であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：１６５．１；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：１６５．７［Ｍ＋Ｈ］＋）。混合物をセライトで濾過し、濾過液を蒸発させ、白色固体として化合物３（６０６ｍｇ、収率：７３％）を得た。
1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 4.10 (3H, s), 8.08 (1H, t, J = 7.6 Hz), 8.18 (1H, d, J = 6.8 Hz), 8.38 (1H, d, J = 7.6 Hz), 10.22 (1H, s).
６）化合物４の製造
Figure 2022523854000096
ＴＨＦ（６ｍＬ）及びＨ２Ｏ（６ｍＬ）中化合物３（６０６ｍｇ、３．６７ｍｍｏｌ）溶液に０℃でＬｉＯＨ（１３２ｍｇ、５．５０ｍｍｏｌ）を添加し、混合物を０℃で１時間撹拌した。ＴＬＣは、より大きい極性の他の新しい位置が観察され、出発物質が完全に消耗していることを示した。反応混合物を真空で濃縮し、残った溶液をｐＨ＝４の１Ｎ ａｑ．ＨＣｌでクエンチングした。得られた溶液をＥｔＯＡｃ：ＴＨＦ＝１０：１（２０ｍＬ＊８）で抽出し、白色固体として不純生成物（４６６ｍｇ）を得た。不純生成物をＴＢＭＥ：ＰＥ＝１：１（１０ｍＬ）で粉砕して濾過し、濾過ケーキを真空乾燥させ、白色固体として化合物４（４４４ｍｇ、原油）を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ8.09 (1H, dd, J = 7.6 Hz, 1.2 Hz), 8.20 (1H, t, J= 7.6 Hz), 8.29 (1H, dd, J = 7.6 Hz, 1.2 Hz), 10.03 (1H, s). (Note: There is a active proton was not observed)
７）化合物１２－１ａの製造
Figure 2022523854000097
ＤＭＦ（１．５ｍＬ）中化合物４（１００ｍｇ、クルード）及びＮ－ヒドロキシスクシンイミド（８０ｍｇ、０．６９５ｍｍｏｌ）溶液に、１５゜Ｃ、Ｎ２下でＥＤＣＩ（１３６ｍｇ、０．７０８ｍｍｏｌ）を添加し、混合物を１５゜Ｃで４時間撹拌した。クルードＬＣ－ＭＳは、生成物の純度が１．２８９維持時間で９６％純度であることを示した（ＭＳ Ｃａｌｃｄ．：２４８．１；ＭＳ Ｆｏｕｎｄ：２４８．９［Ｍ＋Ｈ］＋）。ＤＭＦを真空下で除去し、残留物を、ＰＥ：ＥｔＯＡｃ／２：３を用いたシリカゲルカラム溶出液で精製し、白色固体として化合物１２－１ａ（５１ｍｇ不純）を得た。
製造例９：ＰＤ０１３の合成
シナフィックス（Ｓｙｎａｆｆｉｘ）の米国登録特許第９，６３６，４２１号に記載の方法によってリンカーを作製した。作製されたリンカーは、製造例８の方法と同じ方法でリンカー－薬物複合体を作製した。
Figure 2022523854000098
実施例１．正常細胞と比較した腫瘍細胞株におけるベータ－ガラクトシダーゼ過発現
腫瘍細胞株においてベータ－ガラクトシダーゼ発現は、ウェスタンブロッティングで確認した。１５種の細胞株（各１×１０７個）をＰＢＳで洗浄した後に遠心分離し、細胞ペレット（ｃｅｌｌ ｐｅｌｌｅｔ）を得た。細胞内に入っているタンパク質は、Ｍ－ＰＥＲ(R)哺乳類タンパク質抽出試薬（ｍａｍｍａｌｉａｎ ｐｒｏｔｅｉｎ ｅｘｔｒａｃｔ ｒｅａｇｅｎｔ）（Ｔｈｅｒｍｏ，７８５０１）で細胞を溶解後に抽出した。細胞ペレットにＭ－ＰＥＲ(R)哺乳類タンパク質抽出試薬２００ｕｌを入れてピペッティングした後、１０分間反応させた。反応液を遠心分離し、上澄液を取った。上澄液中のタンパク質は、ＢＣＡタンパク質アッセイキット（Ｐｉｅｒｃｅ，２３２２５）を用いて濃度を測定した。各細胞株のタンパク質抽出物１０ｕｇをＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動をした。電気泳動済みゲルは、ｉＢｌｏｔ移送システム（ｔｒａｎｓｆｅｒ ｓｙｓｔｅｍ）を用いてＰＶＤＦメンブレン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＩＢ４０１００２）にタンパク質を移動させた。メンブレンは、４％ ＢＳＡ（ＰＢＳ）で常温で２時間ブロッキングさせた後、抗ベータ－ガラクトシダーゼ抗体（１／１００００，ａｂｃａｍ，ａｂ１２８９９３）を処理し、４℃で１５時間反応させた。１Ｘ ＰＢＳＴ（１ＸＰＢＳ＋０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０）で３回洗浄後に抗ウサギＩｇＧ ＨＲＰ（１／３０００，ｐｉｅｒｃｅ，６５－６１２０）を処理し、常温で１時間反応させた。１Ｘ ＰＢＳＴで３回洗浄後にＥＣＬ溶液（ＧＥ ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ，ＲＰＮ２２３２）を処理し、タンパク質を検出した。ベータ－ガラクトシダーゼの発現を確認したメンブレンを、β－アクチンの発現を確認するためにストリッピングした。ストリッピングしたメンブレンは、４％ ＢＳＡ（ＰＢＳ）で常温で２時間ブロッキングさせた後、抗アクチン抗体（１／１０００，Ｓａｎｔａｃｒｕｚ，ＳＣ－４７７７８）を４℃で１５時間反応させた。１Ｘ ＰＢＳＴ（１ＸＰＢＳ＋０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０）で３回洗浄後に、抗マウスＩｇＧ ＨＲＰ（１／１００００，Ｐｉｅｒｃｅ，３１４３２）を処理し、常温で１時間反応させた。１Ｘ ＰＢＳＴで３回洗浄後にＥＣＬ溶液を処理し、タンパク質を検出した。
ウェスタンブロッティング結果として、１５種の腫瘍細胞株においてベータ－ガラクトシダーゼが発現することを確認した。また、ＴＣＧＡ（Ｔｈｅ Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｏｍｅ Ａｔｌａｓ）資料分析時に、ｍＲＮＡレベルで正常組織に比べて腫瘍組織においてベータ－ガラクトシダーゼの発現が高い傾向を示した（図２）。図２は、ベータ－ガラクトシダーゼ遺伝子であるＧＬＢ１の腫瘍組織及び正常組織内ｍＲＮＡ発現比率を示すものであり、ベータ－ガラクトシダーゼが正常組織に比べて腫瘍組織内で高く発現するという事実を示す。特に、子宮癌の場合、腫瘍組織におけるＧＬＢ１発現が２倍以上も高く、乳癌組織もＧＬＢ１を６８％以上過発現した。このことから、腫瘍細胞において発現の高いベータ－ガラクトシダーゼを、腫瘍選別活性化酵素として使用可能であることを確認した。
実施例２．リンカー－薬物複合体単独効能評価
ベータ－ガラクトシダーゼを含むように製造されたリンカー－薬物複合体自体の細胞毒性を評価した。具体的に、ＤＭＳＯに溶かしたリンカー－薬物複合体を、それぞれ、細胞培養用培地に２００ｎＭから３０ｐＭまで３倍連続希釈して試料を準備し、これを種々の癌細胞株に処理し、最終的に細胞を１００ｎＭにおいて１５ｐＭ濃度のリンカー－薬物複合体に露出させた。その後、６日間細胞を培養した後、細胞の生存程度をＣＣＫ－８細胞係数キットを用いて観察し、細胞毒性を評価した。評価結果を表２に要約し、代表的な反応曲線を図３に表示した。表２及び図３から確認されるように、ＰＤ００３は、大部分の細胞において細胞毒性を示さず、その結果、ＩＣ５０を設定することかできなかった。これに対し、ＰＤ００１は、種々の細胞で細胞毒性を示し、そのＩＣ５０値が表２に記載されている。
このような実験の結果から、癌細胞内にベータ－ガラクトースを分解するベータ－ガラクトシダーゼが適切に存在し、したがって、ＰＤ００１が様々な癌細胞内のベータ－ガラクトシダーゼによって活性化され、細胞毒性を示し得ることが確認できた。ＰＤ００３が活性化を示さなかったという事実は、ベータ－グルコースモイエティはベータ－グルコシダーゼの基質になり得ないことを間接的に示す。また、以下の実施例から、ＰＤ００１は、ＡＤＣ形態で製造した場合単独物質に比べてより高い細胞毒性を示すが、これは、ＡＤＣ形態が薬物の伝達と活性化に、より一層効率的であるとの事実を裏付ける。
Figure 2022523854000099
実施例３．抗体と薬物を結合させた抗体－薬物コンジュゲート（ＡＤＣ）の製造
抗体と薬物を結合させたＡＤＣ製造のために、既存抗体軽鎖のリジン（Ｌｙｓｉｎｅ：Ｋ）１４９番（Ｋａｂａｔナンバリングに従う。以下同じ）をシステイン（Ｃｙｓｔｅｉｎ：Ｃ）に突然変異化させ、ジチオトレイトール（ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ：ＤＴＴ）のような還元剤を反応させて、抗体軽鎖Ｋ１５３Ｃにチオール基を生成した後（Ｋ１５３Ｃ Ｔ）、生成されたチオール基と薬物の二硫化結合を通じて抗体と薬物とを接合した。具体的に、限外濾過／透析濾過（Ｕｌｔｒａｆｉｌｔｅｒａｔｉｏｎ／Ｄｉａｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ：ＵＦ／ＤＦ）によって抗体を５ｍｇ／ｍｌ以上として準備し、１Ｍトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン（Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ）、ｐＨ８．８、５００ｍＭエチレンジアミンテトラ酢酸（Ｅｔｈｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅｔｅｔｒａａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ，ＥＤＴＡ）を添加し、最終抗体の濃度が５ｍｇ／ｍｌ、７５ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、２ｍＭ ＥＤＴＡとなるようにした。準備した抗体に１００ｍＭジチオトレイトール（ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ：ＤＴＴ）を、抗体：ＤＴＴモル比が１：２０となるように加え、２５℃で１６．５時間反応させて、抗体軽鎖のシステイン１４９番に二硫化結合（ｄｉｓｕｌｆｉｄｅ ｂｏｎｄ）で連結された遊離システイン（Ｆｒｅｅ－Ｃｙｓｔｅｉｎ）を外した。この過程をデキャッピング（Ｄｅｃａｐｐｉｎｇ）といい、その後、デキャッピングされた抗体だけを分離するために、陽イオンクロマトグラフィー（Ｃａｔｉｏｎ ｅｘｃｈａｎｇｅ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ：ＣＥＸ）精製方法を用いた。反応物は、ＳＰＨＰ－Ａバッファ［１０ｍＭコハク酸（ｓｕｃｃｉｎａｔｅ）、ｐＨ５．０］で平衡化したｈｉｔｒａｐ ＳＰＨＰカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）に、ＳＰＨＰ－Ｂバッファ［５０ｍＭトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン（Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ）、ｐＨ７．５、０．５Ｍ塩化ナトリウム（Ｓｏｄｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ）］で溶出した。デキャッピングされた抗体を再び結合させるために、１Ｍトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン（Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ７．５）を用いて酸化（Ｏｘｉｄａｔｉｏｎ）させる抗体を７５ｍＭトリスＨＣｌ（ｐＨ７．５）で準備し、酸化型ビタミンＣであるジヒドロアスコルビン酸（ｄｅｈｙｄｒｏａｓｃｏｒｂｉｃ ａｃｉｄ，ＤＨＡＡ）を、抗体：ＤＨＡＡ比を１：２０添加し、２５℃で光を遮断して２時間再酸化（Ｒｅｏｘｉｄａｔｉｏｎ）させた。その後、再酸化された抗体だけを分離するために、陽イオンクロマトグラフィー（Ｃａｔｉｏｎ ｅｘｃｈａｎｇｅ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ：ＣＥＸ）精製方法を用いて、ＳＰＨＰ－Ｃバッファ［１０ｍＭコハク酸（ｓｕｃｃｉｎａｔｅ）ｐＨ５．０、０．５Ｍ塩化ナトリウム（Ｓｏｄｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ）］で溶出した。精製された抗体は、限外濾過／透析濾過（Ｕｌｔｒａｆｉｌｔｅｒａｔｉｏｎ／Ｄｉａｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ：ＵＦ／ＤＦ）によって５ｍｇ／ｍｌ以上に濃縮した。その後、抗体－薬物結合体を作るために、１Ｍトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン（Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ）、ｐＨ８．０に反応させる抗体を、最終濃度５ｍｇ／ｍｌ、１００ｍＭトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン（Ｔｒｉｓ－ＨＣ）、ｐＨ８．０として準備し、抗体：薬物モル比が１：１０になるように加え、２５℃で１６．５時間反応させた。その後、抗体－薬物結合体だけを分離するために、陽イオンクロマトグラフィー（Ｃａｔｉｏｎ ｅｘｃｈａｎｇｅ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ：ＣＥＸ）精製方法を用いて、ＳＰＨＰ－Ｃバッファ［１０ｍＭコハク酸（ｓｕｃｃｉｎａｔｅ）ｐＨ５．０、０．５Ｍ塩化ナトリウム（Ｓｏｄｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ）］で溶出した。その後、ＤＡＲ２イン抗体－薬物結合体だけを分離するために、疎水性相互反応クロマトグラフィー（Ｈｙｄｒｏｐｈｏｂｉｃ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ：ＨＩＣ）を用いた。このために、ハイトラップブチル（Ｈｉｔｒａｐ Ｂｕｔｙｌ）ＨＰカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を、ＨＩＣ－Ａバッファ［５０ｍＭリン酸カリウム（Ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）、ｐＨ７．０、１．０Ｍ硫酸アンモニウム（Ａｍｍｏｎｉｕｍ ｓｕｌｆａｔｅ）］で平衡化し、ＨＩＣ－Ｂバッファ［５０ｍＭリン酸カリウム（Ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）、ｐＨ７．０、３０％イソプロピルアルコール（２－Ｐｒｏｐａｎｏｌ）］で溶出した。その後、イソプロピルアルコール（２－Ｐｒｏｐａｎｏｌ）を除去するために、限外濾過／透析濾過（Ｕｌｔｒａｆｉｌｔｅｒａｔｉｏｎ／Ｄｉａｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ：ＵＦ／ＤＦ）を用いて抗体をＨＡバッファ［２０ｍＭヒスチジン（Ｈｉｓｔｉｄｉｎｅ）、ｐＨ５．５、２４０ｍＭスクロース（ｓｕｃｒｏｓｅ）］に交換し、最終抗体－薬物結合体を製造した。
本発明に係るＡＤＣ、そして対照群としてＤ－グルコースβ－ピラノース又はグルクロニドをトリガーとして用いたＡＤＣ及び異なる薬物と連結させたＡＤＣの名称及び具体的構成は、表３に示されている。各抗体のＶＨ及びＶＬ配列は、表１に記載の通りである。
Figure 2022523854000100
実施例４．ＡＤＣの特性確認
４－１．製造されたＡＤＣの純度確認
製造されたＡＤＣの純度は、サイズ排除高性能液体クロマトグラフィー（ＳＥ－ＨＰＬＣ）で測定した。Ａｇｉｌｅｎｔ １２００シリーズＨＰＬＣ機器においてＴｏｓｏｈ ＴＳＫｇｅｌ Ｇ３０００ＳＷｘｌカラム（Ｔｏｓｏｈ ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）を用いて、各試料の溶出される位置と曲線下面積（ａｒｅａ ｕｎｄｅｒ ｔｈｅ ｃｕｒｖｅ：ＡＵＣ）を比較し、Ｄ２０１０６及びＤ２０１０９の純度を決定した。ＡＤＣの主要ピークの純度は９７％以上であり、全体工程収率（抗体基準）は２０％以上であることを確認した。その結果を、図４及び図５にそれぞれ示した。
４－２．製造されたＡＤＣの薬物－抗体比率確認
ＡＤＣの薬物－抗体の比率（ｄｒｕｇ－ｔｏ－ａｎｔｉｂｏｄｙ ｒａｔｉｏ：ＤＡＲ）は、液体クロマトグラフィー質量分析（ＬＣ／ＭＳ）方法で決定した。１ｍｇ／ｍｌのＡＤＣ（ＰＢＳ中）抗体１００μｇ当たり１ユニットのＰＮＧａｓｅＦ（ＮＥＢ）を加え、３７℃で１５時間インキュベーションしてＮグリカンを除去した。Ｗａｔｅｒｓ ＵＰＬＣ Ｉ－ｃｌａｓｓ装備とＷａｔｅｒｓ Ｓｙｎａｐｔ Ｇ２－Ｓとで構成されたＬＣ／ＭＳ装備にＡｃｑｕｉｔｙ ＵＰＬＣ ＢＥＨ２００ ＳＥＣ １．７μｍ（４．６＊１５０ｍｍ）カラムを装着した後、３０％（ｖ／ｖ）アセトニトリル、０．１％（ｖ／ｖ）ギ酸、及び０．０５％トリフルオロ酢酸（Ｔｒｉｆｌｕｏｒｏａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ：ＴＦＡ）の移動相で平衡化させた。ここに、Ｎ－グリカンの除去された試料５μｇをローディングしてＬＣ／ＭＳを行った。ＬＣ／ＭＳの結果から得た分子量分布から各化学種の相対含有量を加重平均してＤＡＲを決定した。その結果を図６及び図７にそれぞれ示した、図６及び図７によれば、Ｄ２０１０６及びＤ２０１０９のＤＡＲは、２程度を示した。このような結果から、ＰＤ００６及びＰＤ００９が期待したＤＡＲ数を示しながら抗体と結合したことを確認した。
４－３．製造されたＡＤＣの試験管内（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）ターゲット特異的細胞毒性確認
（１）多発性骨髄腫細胞株における試験管内細胞毒性
ＢＣＭＡを発現する多発性骨髄腫細胞株であるＭＭ ＮＣＩ－Ｈ９２９（Ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｍｙｅｌｏｍａ ＮＣＩ－Ｈ９２９）細胞株を用いて、抗ＢＣＭＡ抗体を含むＡＤＣであるＤ２０１０３（Ｂ５８ＰＤ００１）、Ｄ２０１０６（Ｂ５８ＰＤ００６）及びＤ２０１０９（Ｂ５８ＰＤ００９）の試験管内細胞毒性を確認した。具体的に、ＲＰＭＩ（ＡＴＣＣ）、１０％ ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ）、０．０５ｍＭベータ－メルカプトエタノール、及びＡｎｔｉｂｉｏｔｉｃ－Ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ（Ｇｉｂｃｏ）を含有した培地で培養したＨ９２９細胞株（ＡＴＣＣ，ＣＲＬ－９０６８TM）を、２０，０００個ずつ９６ウェルの各ウェルに５０μｌ体積で分注した後、同培養培地に希釈したＡＤＣを５０μｌずつ分注した。ＡＤＣの濃度は、連続希釈によって２００ｎＭにおいて５ｐＭであった。その後、細胞を３７℃、５％ ＣＯ２で約６日間培養した。培養の終了した後、１０μｌのＷＳＴ－８（Ｄｏｊｉｎｄｏ）を各ウェルに加え、追加培養した。ＳｐｅｃｔｒａＭａｘプレートリーダを用いて４５０ｎｍ波長で吸光度を測定した。吸光度とＡＤＣ濃度との反応曲線は、４ＰＬカーブフィッティングを行って、５０％アポトーシス濃度であるＩＣ５０値（ｎＭ）を算出した。その結果を図８に示した。Ｄ２０１０３、Ｄ２０１０６及びＤ２０１０９はいずれも優れた薬物効能（ｐｏｔｅｎｃｙ）を示し、特に、ＰＤ００９を含むＤ２０１０９は、効能が最も優れている。ＰＤ００９は、接合工程後に濾過して量を比較した時、ＰＤ００６に比べてその量が多かったし、同一条件においてＤＡＲの高いＡＤＣがより多く製造された。これと関連して、次表４は、接合工程のうち、反応後陽イオン交換樹脂精製結果を示す。このようなＰＤ００９の工程上の特徴は、相対的に高い溶解度に起因し、よって、ＰＤ００９がより工程親和的であると分析される。
Figure 2022523854000101
（２）マントル細胞リンパ腫細胞株における試験管内細胞毒性
ＲＯＲ１を発現させるヒトマントル細胞リンパ腫（Ｍａｎｔｌｅ Ｃｅｌｌ Ｌｙｍｐｈｏｍａ）細胞株であるＭｉｎｏ及びＪｅｋｏ－１を用いて、抗ＲＯＲ１抗体を含むＡＤＣであるＤ２０２０４（Ｃ２Ｅ３－ＰＤ００１）の試験管内細胞毒性を確認した。対照群としては、（ｉ）同じ抗ＲＯＲ１抗体であるＣ２Ｅ３を含むか、トリガーとしてＤ－ガラクトースβ－ピラノースではなくＤ－グルコースβ－ピラノースを含むＰＤ００３を薬物として含むＣ２Ｅ３－ＰＤ００３、そして（ｉｉ）同じ抗ＲＯＲ１抗体であるＣ２Ｅ３及び従来薬物ＭＭＡＥを含むＣ２Ｅ３－ＣＡＡＸ－ＭＭＡＥを使用した。具体的に、ＲＰＭＩ（ＡＴＣＣ）、２０％ ＦＢＳ（ｊｅｋｏ－１）（Ｇｉｂｃｏ）又は１５％ ＦＢＳ（ｍｉｎｏ）、Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ－Ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ（Ｇｉｂｃｏ）を含有した培地で培養したＪｅｋｏ－１細胞株（ＡＴＣＣ，ＣＲＬ－３００６TM）、Ｍｉｎｏ細胞株（ＡＴＣＣ，ＣＲＬ－３０００TM）を、２０，０００個ずつ９６ウェルの各ウェルに５０μｌ体積で分注した後、細胞毒性確認実験をした。以降の実験方法は、抗ＢＣＭＡ ＡＤＣと同一であった。
その結果を表５及び図９に示した。Ｍｉｎｏ細胞株では、対照群であるＣ２Ｅ３－ＣＡＡＸ－ＭＭＡＥに比べてＤ２０２０４が細胞毒性がより高く、トリガーとしてグルコースを含むＣ２Ｅ３－ＰＤ００３は細胞毒性を示さなかった。Ｊｅｋｏ－１では、Ｄ２０２０４がＣ２Ｅ３－ＣＡＡＸ－ＭＭＡＥよりも多少低い細胞毒性を示し、ＰＤ００３は全く細胞毒性を示さなかった。このことから、トリガーとしてガラクトースを有する本発明のＡＤＣが、トリガーとしてグルコースを有するＡＤＣに比べて顕著に優れたターゲット特異的細胞毒性を示すことを確認した。
Figure 2022523854000102
（３）胃癌細胞株及び乳癌細胞株における試験管内細胞毒性
Ｈｅｒ２を発現させる胃癌細胞株（ＮＣＩ－Ｎ８７）及び乳癌細胞株（ＨＣＣ１９５４）を用いて、抗Ｈｅｒ２抗体を含むＡＤＣであるＤ２０００１（Ｔ－ＰＤ００１）の試験管内細胞毒性を確認した。対照群としては、同じ薬物であるＰＤ００１に抗ＢＣＭＡ抗体が連結されたＤ２０１０３（Ｂ５８－ＰＤ００１）を使用した。具体的に、ＲＰＭＩ（ＡＴＣＣ）、１０％ ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ）、Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ－Ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ（Ｇｉｂｃｏ）を含有した培地で培養したＮＣＩ－Ｎ８７細胞株（ＡＴＣＣ，ＣＲＬ－５８２２TM）とＨＣＣ１９５４細胞株（ＡＴＣＣ，ＣＲＬ－２３３８TM）を、１０，０００個又は５０００個ずつ９６ウェルの各ウェルに５０μｌ体積で分注した後、ターゲット特異的細胞毒性確認実験をした。以降の実験方法は、抗ＢＣＭＡ ＡＤＣと同一であった。
その結果を表６及び図１０に示した。Ｈｅｒ２を発現させるＮＣＩ－Ｎ８７、ＨＣＣ１９５４細胞株は、Ｄ２０００１による細胞毒性を示したのに対し、抗ＢＣＭＡ ＡＤＣであるＤ２０１０３による細胞毒性は見られなかった。このことから、本発明に係るＡＤＣは、ＡＤＣに含まれた抗体の種類に従うターゲット特異的細胞毒性を有することを確認した。
Figure 2022523854000103
（４）卵巣癌細胞株における試験管内細胞毒性
ＮａＰｉ２ｂを発現させる卵巣癌細胞株（ＯＶＣＡＲ－３）を用いて、抗ＮａＰｉ２ｂ抗体を含むＡＤＣであるＤ２０００２（１０Ｈ１－ＰＤ００１）の試験管内細胞毒性を確認した。対照群としては、同じ薬物であるＰＤ００１に抗ＢＣＭＡ抗体が連結されたＤ２０１０３（Ｂ５８－ＰＤ００１）を使用した。具体的に、ＲＰＭＩ（ＡＴＣＣ）、２０％ ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ）、Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ－Ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ（Ｇｉｂｃｏ）を含有した培地で培養したＯＶＣＡＲ－３細胞株（ＡＴＣＣ，ＨＴＢ－１６１TM）を、５０００個ずつ９６ウェルの各ウェルに５０μｌ体積で分注した後、ｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞毒性確認実験をした。以降の実験方法は、抗ＢＣＭＡ ＡＤＣと同一であった。
その結果を図１１に示した。図１１によれば、Ｄ２０００２を含むＡＤＣは、１．５３ｎＭのＩＣ５０を示すことを確認した。非バインダー（Ｎｏｎ－ｂｉｎｄｅｒ）／バインダー（Ｂｉｎｄｅｒ）の比率が１００以上であって、固形癌細胞株のうち最も反応性に優れている。これに対し、抗ＢＣＭＡ ＡＤＣであるＤ２０１０３による細胞毒性は見られなかった。このことから、本発明に係るＡＤＣは、ＡＤＣに含まれた抗体の種類に従うターゲット特異的細胞毒性を有することを確認した。
（５）まとめ
Ｄ－ガラクトースβ－ピラノースをトリガーとして含む薬物を含むように製造された本発明のＡＤＣの試験管内細胞毒性を、様々な対照群ＡＤＣと比較してみた結果、本発明に係るＡＤＣの大部分は、様々な細胞株において１ｎＭ以下のＩＣ５０を示したところ、優れた薬物としての可能性を試験管内試験から確認できた（表７）。
Figure 2022523854000104
４－４．生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）ターゲット特異的細胞毒性確認
ＡＤＣの生体内ターゲット特異的細胞毒性を確認するために、様々な癌細胞株の異種移植マウスモデルにおける腫瘍抑制効能を試験した。具体的に、０．５又は１×１０７個の癌細胞をマトリゲル（Ｍａｔｒｉｇｅｌ）と混合した後、６～８週齢の雌Ｆｏｘ ｃｈａｓｅ ＳＣＩＤマウス（ＣＢ１７／Ｉｃｒ－Ｐｒｋｄｃｓｃｉｄ／ＩｃｒＩｃｃｏｒｌ）又はヌードマウスの横腹に皮下注射した。マウスは、平均腫瘍サイズが１５０～２００ｍｍ３に達した時、順次に各実験群に配置された。ＡＤＣ及び対照群は、各グループにおいて尾静脈から投与され、陰性対照群としては、ＰＢＳ（ビークル）が使用された。腫瘍のサイズは、バーニャキャリパスを用いて腫瘍の長軸及び短軸を測定して決定され、腫瘍の体積は、次の式で計算された：
腫瘍体積（ｍｍ３）＝（０．５）×（長軸）×（短軸）２
（１）ヒトマントル細胞リンパ腫細胞異種移植マウスモデルにおける細胞毒性
ＲＯＲ１を発現させるヒトマントル細胞リンパ腫（Ｍａｎｔｌｅ Ｃｅｌｌ Ｌｙｍｐｈｏｍａ）細胞株であるＪｅｋｏ－１を用いた異種移植マウスモデルにおいて、Ｄ２０２０４（Ｃ２Ｅ３－ＰＤ００１）の生体内細胞毒性を確認した。対照群としてはＣ２Ｅ３抗体、及び薬物としてＭＭＡＦを含むＣ２Ｅ３－ｍｃ－ＭＭＡＦを使用し、４ｍｇ／ｋｇ、ＡＤＣ単一容量、毎週３回投与の条件で行った。
その結果を図１２に示した。Ｄ２０２０４は、試験管内試験ではＩＣ５０が１０ｎＭを超えたが（図９）、生体内試験では、ＭＭＡＦが接合されたＡＤＣに比べても著しく優れた効果を示した。
（２）ヒト多発性骨髄腫細胞異種移植マウスモデルにおける細胞毒性
ＢＣＭＡを発現する多発性骨髄腫細胞株であるＮＣＩ－Ｈ９２９を用いた異種移植マウスモデルにおいて、Ｄ２０１０６（Ｂ５８－ＰＤ００６）及びＤ２０１０９（Ｂ５８－ＰＤ００９）の生体内細胞毒性を確認した。具体的には、６～７週齢のＦｏｘ ｃｈａｓｅ ＳＣＩＤマウスを使用し、１×１０７個のＮＣｌ－Ｈ９２９細胞をマトリゲルと混合してマウス横腹部の皮下に移植し、腫瘍のサイズが平均１８０～２００ｍｍ３である時点に薬物を投与した。Ｄ２０１０６、Ｄ２０１０９の両物質はそれぞれ、３つの容量（２．５ｍｐｋ、１．２５ｍｐｋ、０．６２５ｍｐｋ）で単回投与し、腫瘍のサイズを週に２回測定し、３週間観察した。
図１３に示すように、Ｄ２０１０６及びＤ２０１０９はいずれも多発性骨髄腫細胞異種移植モデルにおいて優れた細胞毒性を示した。具体的に、Ｄ２０１０６及びＤ２０１０９は、ＮＣＩ－Ｈ９２９腫瘍の成長を効果的に抑制し、Ｄ２０１０６が低い濃度（０．６２５ｍｐｋ）で投与された群以外の全ての処置群において腫瘍の消失が観察された。
（３）急性骨髄性白血病細胞異種移植マウスモデルにおける細胞毒性
ＣＬＬ－１を発現させる急性骨髄性白血病（ａｃｕｔｅ ｍｙｅｌｏｉｄ ｌｙｍｐｈｏｍａ，ＡＭＬ）細胞株であるＥＯＬ－１及びＨＬ－６０を用いた異種移植マウスモデルにおいて、Ｄ２０５０２（６Ｅ７－ＰＤ００９）の生体内細胞毒性を確認した。具体的には、６～７週齢のＦｏｘ ｃｈａｓｅ ＳＣＩＤマウスを使用し、５×１０６個のＥＯＬ－１或いはＨＬ－６０細胞をマトリゲルと混合してマウス横腹部の皮下に移植し、腫瘍のサイズが平均１８０～２００ｍｍ３である時点に、薬物を投与した。Ｄ２０５０２は、２ｍｐｋ単一容量で単回投与し、腫瘍のサイズを週に２回測定し、３週間観察した。
図１４に示すように、２ｍｐｋ投与容量において、Ｄ２０５０２は両ＡＭＬ異種移植モデルにおいて腫瘍の成長を効果的に抑制し、投与後２週となる時点では全ての腫瘍が消失されたことが観察された。
４－５．最大許容容量決定のための単回投与齧歯類毒性試験１
ＰＤ００１又はＰＤ００６を含むＡＤＣの毒性を評価し、最大許容容量を決定するために、単回投与齧歯類毒性試験を行った。具体的に、７～８週齢の雌ＳＤラットを、次表８のように順にグルーピングし、グループ全体において類似の平均体重を有するようにした。５～４５ｍｐｋ ＡＤＣ容量を尾静脈から投与し、血液学的分析及び血清生化学的分析のために、３日目、１８日目及び３５日目に血液サンプルを採取した。残りの動物はいずれも３４日目に犠牲させ、主要臓器に対する組織病理学的分析を実施した。対照群であるＧｒｏｕｐ １には賦形剤である２０ｍＭヒスチジンｐＨ６．０、７％トレハロースを投与した。
Figure 2022523854000105
（１）体重変化
全ての動物に対してＤａｙ １（投与前）、２、４、８、１５、１９、２２、２５、２８、３１、３４及びＤａｙ ３５に小動物用体重計を用いて体重を測定した。死亡及び瀕死動物は、発見すると否や当該動物の体重を測定した後、解剖検査を実施した。
体重変化に対する確認結果を、図１５に示した。図１５に示すように、４５ｍｐｋ容量を投与したＧｒｏｕｐ ４及びＧｒｏｕｐ ７以外は、体重減少を示さなかった。最大容量を投与したＧｒｏｕｐ ４及びＧｒｏｕｐ ７は、実験終了日以前に全ての個体が死亡した。
（２）血液学的分析
血液学的検査によってＡＤＣの毒性を評価した。投与後Ｄａｙ ３（１次採血）、Ｄａｙ １８（２次採血）及びＤａｙ ３５（３次採血）に静脈採血を行い、動物は、採血前に一晩絶食（水は提供）した。血液約０．５ｍＬを、抗凝固剤であるＥＤＴＡ－２Ｋの入っているＣＢＣボトルに注入した後、自動血液分析機を用いて血中白血球数値の変化を図１６に示した。分析の結果、高容量で投与したＧｒｏｕｐ ４及びＧｒｏｕｐ ７以外は、注目すべき毒性は観察されなかった。投与物質による毒性によって白血球数値が一時的に減少したが、時間が経過するにつれて回復する様相が観察された。
（３）血清生化学的分析
血中生化学的パラメータであるＡＬＴ（ａｌａｎｉｎｅ ａｍｉｎｏｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ）、ＡＳＴ（ａｓｐａｒｔａｔｅ ａｍｉｎｏｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ）及び血中尿素窒素（ｂｌｏｏｄ ｕｒｅａ ｎｉｔｒｏｇｅｎ，ＢＵＮ）に対する分析から、ＡＤＣの毒性を確認した。投与後Ｄａｙ ３（１次採血）、Ｄａｙ １８（２次採血）及びＤａｙ ３５（３次採血）に静脈採血を行い、血液約１ｍＬを凝固活性剤（ｃｌｏｔ ａｃｔｉｖａｔｏｒ）の入っている５ｍＬ真空採血管に注入し、１５～２０分間室温に放置して凝固させた後、１０分間遠心分離して得た血清を用いて血液生化学分析機で検査した。その結果を図１７に示した。分析の結果、同様に、４５ｍｐｋ容量を投与したＧｒｏｕｐ ４及びＧｒｏｕｐ ７以外は、注目すべき毒性は観察されなかった
（４）病理学的分析の結果
表９は、解剖検査時に観察した臓器別症状である。胸腺の萎縮がＧ２、Ｇ３、Ｇ４、Ｇ７などのＡＤＣ投与群から観察されたが、これは、白血球の減少による現象で、試験物質による直接的な影響ではないと判断された。その他、瀕死動物の脾臓や胃、リンパ節で所見が観察されたが、組織病理的変化を伴わないか、自然発生的変化であったので、ＡＤＣの毒性による症状ではないものと判断された。
表１０は、組織病理結果である。腎臓の細尿管で巨大核細胞形成が観察され、容量－反応相関性があることから、試験物質によるものと判断された。特に、当該現象は、Ｄ２０１０３でのみ観察され、Ｄ２０１０６では観察されなかったので、リンカーに使用したＰＥＧグループが腎臓毒性を減らすのに関与したと推定された。
Figure 2022523854000106
Figure 2022523854000107
４－６．最大許容容量決定のための単回投与齧歯類毒性試験２
ＰＤ００６又はＰＤ００９を含むＡＤＣの毒性を評価し、最大許容容量を決定するために、下表１１のような実験群を設定し、ラット単回投与毒性試験を行った。
Figure 2022523854000108
投与、飼育、体重測定の試験方法は、上の４－５で前述した通りである。投与３日目、１４日目及び３５日目に採血し、血液自動分析機を用いて血液学的検査を行ったし、試験終了時に安楽死させ、解剖検査、病理検査を行った。対照群であるＧｒｏｕｐ １には賦形剤である２０ｍＭヒスチジン、ｐＨ６．０、７％トレハロースを投与した。
試験動物の体重変化は、図１８に示されている。全ての実験群において、投与後２週間に体重が減少する急性毒性反応が観察されたが、最高容量投与群であるＧ４及びＧ７以外には回復する様相を示した。Ｇ４、Ｇ７は、投与後３週以後に徐々に回復する様相を示した。３６日目に見られる全群の体重減少は、犠牲前の絶食による変化である。
また、血液学的検査による白血球数値変化測定結果が図１９に示されている。体重変化に見られたのと類似の様相が観察され、最高容量投与群以外の残り群では、投与１４日目に白血球が減少する毒性が観察され、試験終了日である投与３５日目に回復する様相を示した。しかし、最高容量投与群であるＧ４、Ｇ７群では、白血球数字が回復する様相が観察されなかった。
したがって、体重と白血球数の両指標に基づき、ＰＤ００６を含むＤ２０１０６の最大許容容量（ｍａｘｉｍｕｍ ｔｏｌｅｒａｔｅｄ ｄｏｓｅ，ＭＴＤ）は２０ｍｐｋ、そしてＰＤ００９を含むＤ２０１０９の最大許容容量は１０ｍｐｋに設定した。
４－７．類似物質と比較するための単回投与齧歯類毒性試験
トリガーとしてβ－ガラクトースを含むペイロードが、類似の構造を有する他のトリガーを含むペイロードに比べて毒性側面においてより優れるという事実を証明するために、次のような構造を有するβ－グルクロニド（ｇｌｕｃｕｒｏｎｉｄｅ）及びＣＢＩベースのペイロードであるＧＴ７０を合成し、これに基づいてＡＤＣを作製し、毒性を比較した。ＧＴ７０をリンカー－薬物として用いてＢ５８抗体に接合した以外は、実施例２と同じ方法でＡＤＣを製造し、Ｄ２０１１１と名付けた。
Figure 2022523854000109
Ｄ２０１０９及びＤ２０１１１をそれぞれＳＤラットに単回投与後に、２８日間観察し、体重の変化と血液学的、血液生化学的変化を観察して毒性発現の有無と回復を観察した。単回毒性試験の細部方法は、実施例４－５に記載の通りであり、実験群の構成は、次表１２の通りである。
Figure 2022523854000110
実験結果は図２０に示されている。全ての毒性学指標において容量依存的な反応を示し、高容量投与群（Ｇｒｏｕｐ ３及びＧｒｏｕｐ ５）において、低容量投与群（Ｇｒｏｕｐ２及びＧｒｏｕｐ４）に比べて高い毒性反応が観察された。体重変化を観察した時、同一容量レベルでＤ２０１０９投与群はＤ２０１１１投与群に比べて体重減少幅が少なく、実験終了日に体重も相対的に多く回復した（図２０）。血液学的指標の一つである血中白血球個数で毒性を比較した時にも、Ｄ２０１０９投与群はＤ２０１１１投与群に比べて白血球減少幅が小さく、回復する様相を示した（図２０）。特に、雄に対する赤血球個数を評価すれば、Ｄ２０１１１高容量投与群は、実験終了時まで回復しない様相を示した（図２０）。このことから、β－ガラクトースはＡＤＣのトリガーとして用いられた時、類似構造を有する他の物質に比べて顕著に優れた安定性を有するという事実を確認した。
本発明に係るガラクトーストリガーを含むペイロードが結合したＡＤＣは、癌又は腫瘍細胞において多く発現するベータ－ガラクトシダーゼによってガラクトースが除去されてはじめて、細胞毒性を示すターゲット特異的特性を有するので、薬物の早期放出及びこれによる全身毒性危険を顕著に低減することができる。さらに、本発明に係るガラクトーストリガーを含むＡＤＣは、類似の他の構造を有するトリガー、例えば、グルコース又はグルクロニドをトリガーとして有するＡＤＣに比べても優れた薬物効能、そして体内における低い毒性を示すことが確認された。すなわち、本発明によってガラクトーストリガーを適用したペイロードを用いて、従来のプロドラッグと比較して毒性が少なく、体内で安定性が高く、効能に優れ、治療ウィンドウ（ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗｉｎｄｏｗ）が広いＡＤＣを製造することができる。
以上、本発明の内容の特定の部分を詳細に記述したところ、当業界における通常の知識を有する者にとって、このような具体的記述は単に好ましい実施態様に過ぎず、これによって本発明の範囲が制限されない点は明らかであろう。したがって、本発明の実質的な範囲は、添付する請求項とそれらの等価物によって定義されるといえよう。

Claims (13)

  1. 次の化学式（Ｉ）で表される化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物：
    Figure 2022523854000111
     前記化学式で、
    Ｒ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースであり；
    Ｒ２は、Ｃｌ又はＢｒであり；
    Ｒ３は、単結合、－Ｏ－又は－ＮＨ－である。
  2. 次の化学式（ＩＩ）で表される化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物：
    Figure 2022523854000112
     前記化学式で、
    Ｒ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースであり；
    Ｒ２は、Ｃｌ又はＢｒであり；
    Ｒ３は、単結合、－Ｏ－又は－ＮＨ－であり；
    Ｗは、スぺーサであり；
    Ｌ１は、リンカーである。
  3. 前記Ｗは、
    －Ｒ４－Ａ－Ｒ５－、－Ｒ４－Ａ－、－（ＣＨ２ＣＨ２Ｒ６）ｘ－、－（ＣＨ２）ｒ（Ｒ７（ＣＨ２）ｐ）ｑ－、－（（ＣＨ２）ｐＲ７）ｑ－、－（ＣＨ２）ｒ（Ｒ７（ＣＨ２）ｐ）ｑＲ８－、－（（ＣＨ２）ｐＲ７）ｑ（ＣＨ２）ｒ－、－Ｒ８（（ＣＨ２）ｐＲ７）ｑ－、又は－（ＣＨ２）ｒ（Ｒ７（ＣＨ２）ｐ）ｑＲ８ＣＨ２－であり、
    ここで、Ｒ４及びＲ５はそれぞれ独立して、－（ＣＨ２）ｒ（Ｖ（ＣＨ２）ｘ）ｐ（ＣＨ２）ｑで、Ａは、直接結合又はペプチド結合で、Ｖは、単結合、Ｏ又はＳであり、
    Ｒ６は、－Ｏ－、Ｃ１－Ｃ８アルキレン、－ＮＲ９－又は－Ｃ（Ｏ）ＮＲ１３－であり、
    Ｒ７及びＲ８はそれぞれ独立して、単結合、－Ｏ－、－ＮＲ１０－、－Ｃ（Ｏ）ＮＲ１１－、－ＮＲ１２Ｃ（Ｏ）－又はＣ３－Ｃ２０ヘテロアリールであり、
    Ｒ９～Ｒ１３はそれぞれ独立して、水素、Ｃ１－Ｃ６アルキル、（Ｃ１－Ｃ６アルキル）Ｃ６－Ｃ２０アリール、又は（Ｃ１－Ｃ６アルキル）Ｃ３－Ｃ２０ヘテロアリールであり、
    ｘは１～５の整数で、ｒは０～１０の整数で、ｐは０～１０の整数で、ｑは０～２０の整数であり、
    前記Ｗ内の１～１０個の水素は、ヒドロキシ、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソに置換可能である、請求項２に記載の化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物。
  4. 前記Ｌ１は、
    ヒドロキシ、アルデヒド、ＯＮＨ２、ＮＨ２、又は、Ｎ、Ｏ及びＳから選択される１個～３個のヘテロ原子を含む４～７－員ヘテロアリールであり、前記ヘテロアリールは、ヒドロキシ、アルデヒド、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソから独立して選択される１～５個の置換基に置換可能であるか、又は
    下の化学式（Ｉ－ａ）又は（Ｉ－ｂ）の構造を有し：
    Figure 2022523854000113
     ここで、Ｑ１は、シクロオクチニル又はヘテロシクロオクチニルであり、前記シクロオクチニル又はヘテロシクロオクチニルは、任意にＣ３－Ｃ１２シクロアルキル、Ｃ３－Ｃ１２アリール及びＣ３－Ｃ１２ヘテロアリールからそれぞれ独立して選択される１又は２個の環と融合し、任意にヒドロキシ、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソに置換され、
    Ｒ１３はＣ１－Ｃ２４アルキル、Ｃ３－Ｃ２４シクロアルキル、Ｃ３－Ｃ２４アリール、Ｃ３－Ｃ２４ヘテロアリール、Ｃ３－Ｃ２４アルキルアリール、Ｃ３－Ｃ２４アルキルヘテロアリール、Ｃ３－Ｃ２４アリールアルキル及びＣ３－Ｃ２４ヘテロアリールアルキルから選択され、前記ヘテロアリールは、Ｏ、Ｓ及びＮＲ１４から選択されるヘテロ原子を含み、ここで、Ｒ１４は水素又はＣ１－Ｃ４アルキル基であり、
    Ｓｐ１、Ｓｐ２、Ｓｐ３及びＳｐ４は、スぺーサ部分であって、それぞれ独立して、単結合、又は直鎖状又は分枝状Ｃ１－Ｃ２００アルキレン、Ｃ２－Ｃ２００アルケニレン、Ｃ２－Ｃ２００アルキニレン、Ｃ３－Ｃ２００シクロアルキレン、Ｃ５－Ｃ２００シクロアルケニレン、Ｃ８－Ｃ２００シクロアルキニレン、Ｃ７－Ｃ２００アルキルアリーレン、Ｃ７－Ｃ２００アリールアルキレン、Ｃ８－Ｃ２００アリールアルケニレン及びＣ９－Ｃ２００アリールアルキニレンから選択され、前記アルキレン、アルケニレン、アルキニレン、シクロアルキレン、シクロアルケニレン、シクロアルキニレン、アルキルアリーレン、アリールアルキレン、アリールアルケニレン及びアリールアルキニレンは、任意にＯ、Ｓ及びＮＲ１４から選択されるヘテロ原子に置換されるか或いはそれを含み、
    Ｚ１及びＺ２はそれぞれ独立して、Ｏ、Ｃ（Ｏ）及びＮ（Ｒ１３）から選択され、
    ａはそれぞれ独立して、０又は１であり、
    ｂはそれぞれ独立して、０又は１であり、
    ｃは、０又は１であり、
    ｄは、０又は１であり、
    ｅは、０又は１であり、
    ｆは、０～１５０の整数であり、
    ｇは、０又は１であり、
    ｉは、０又は１である、請求項２に記載の化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物。
  5. 次の化学式で表される化合物を含むことを特徴とする、請求項２に記載の化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物：
    Figure 2022523854000114
  6. 次の化学式で表される化合物を含むことを特徴とする、請求項２に記載の化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物：
    Figure 2022523854000115
    Figure 2022523854000116
    Figure 2022523854000117
    Figure 2022523854000118
  7. 次の化学式（ＩＩＩ）で表される化合物、その製薬上許容される塩又は溶媒和物を含む抗体－薬物コンジュゲート：
    Figure 2022523854000119
     前記化学式で、
    Ｒ１は、Ｄ－ガラクトースβ－ピラノース又はＤ－ガラクトースα－ピラノースであり；
    Ｒ２は、Ｃｌ又はＢｒであり；
    Ｒ３は、単結合、－Ｏ－又は－ＮＨ－であり；
    Ｗは、スぺーサであり；
    Ｌ２は、リンカーであり；
    Ａｂは、抗体又はその抗原結合断片である。
  8. 前記Ｗは、
    －Ｒ４－Ａ－Ｒ５－、－Ｒ４－Ａ－、－（ＣＨ２ＣＨ２Ｒ６）ｘ－、－（ＣＨ２）ｒ（Ｒ７（ＣＨ２）ｐ）ｑ－、－（（ＣＨ２）ｐＲ７）ｑ－、－（ＣＨ２）ｒ（Ｒ７（ＣＨ２）ｐ）ｑＲ８－、－（（ＣＨ２）ｐＲ７）ｑ（ＣＨ２）ｒ－、－Ｒ８（（ＣＨ２）ｐＲ７）ｑ－、又は－（ＣＨ２）ｒ（Ｒ７（ＣＨ２）ｐ）ｑＲ８ＣＨ２－であり、
    ここで、Ｒ４及びＲ５はそれぞれ独立して、－（ＣＨ２）ｒ（Ｖ（ＣＨ２）ｘ）ｐ（ＣＨ２）ｑで、Ａは直接結合又はペプチド結合で、Ｖは単結合、Ｏ又はＳであり、
    Ｒ６は、－Ｏ－、Ｃ１－Ｃ８アルキレン、－ＮＲ９－又は－Ｃ（Ｏ）ＮＲ１３－であり、
    Ｒ７及びＲ８はそれぞれ独立して、単結合、－Ｏ－、－ＮＲ１０－、－Ｃ（Ｏ）ＮＲ１１－、－ＮＲ１２Ｃ（Ｏ）－又はＣ３－Ｃ２０ヘテロアリールであり、
    Ｒ９～Ｒ１３はそれぞれ独立して、水素、Ｃ１－Ｃ６アルキル、（Ｃ１－Ｃ６アルキル）Ｃ６－Ｃ２０アリール又は（Ｃ１－Ｃ６アルキル）Ｃ３－Ｃ２０ヘテロアリールであり、
    ｘは１～５の整数で、ｒは０～１０の整数で、ｐは０～１０の整数で、ｑは０～２０の整数であり、
    前記Ｗ内の１～１０個の水素は、ヒドロキシ、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソに置換可能である、請求項７に記載の抗体－薬物コンジュゲート。
  9. 前記Ｌ２は、
    －ＣＨ２ＮＨ－、－ＯＮ＝Ｃ（ＣＨ３）－、－ＯＮ＝、－ＣＨ＝、ＣＨ＝Ｎ－、又は、Ｎ、Ｏ及びＳから選択される１個～３個のヘテロ原子を含む４～７－員ヘテロ環であり、前記ヘテロ環は、ヒドロキシ、アルデヒド、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソから独立して選択される１～５個の置換基に置換可能であるか；又は
    次の化学式（ＩＩ－ａ）又は（ＩＩ－ｂ）の構造を有し：
    Figure 2022523854000120
     ここで、Ｑ２は、トリアゾールと融合したシクロオクテニル、又はトリアゾールと融合したヘテロシクロオクテニルであり、
    前記シクロオクテニル又はヘテロシクロオクテニルは、任意にＣ３－Ｃ１２シクロアルキル、Ｃ３－Ｃ１２アリール及びＣ３－Ｃ１２ヘテロアリールからそれぞれ独立して選択される１又は２個の環とさらに融合し、任意にヒドロキシ、Ｃ１－Ｃ８アルキル、Ｃ１－Ｃ８アルコキシ、アミノ、ＯＮＨ２又はオキソに置換され、前記Ｑ２は、トリアゾールに含まれた窒素原子を介してＡｂと連結され、
    Ｓｐ１、Ｓｐ２、Ｓｐ３及びＳｐ４はスぺーサ部分であって、それぞれ独立して、単結合、又は直鎖状又は分枝状Ｃ１－Ｃ２００アルキレン、Ｃ２－Ｃ２００アルケニレン、Ｃ２－Ｃ２００アルキニレン、Ｃ３－Ｃ２００シクロアルキレン、Ｃ５－Ｃ２００シクロアルケニレン、Ｃ８－Ｃ２００シクロアルキニレン、Ｃ７－Ｃ２００アルキルアリーレン、Ｃ７－Ｃ２００アリールアルキレン、Ｃ８－Ｃ２００アリールアルケニレン及びＣ９－Ｃ２００アリールアルキニレンから選択され、前記アルキレン、アルケニレン、アルキニレン、シクロアルキレン、シクロアルケニレン、シクロアルキニレン、アルキルアリーレン、アリールアルキレン、アリールアルケニレン及びアリールアルキニレンは、任意にＯ、Ｓ及びＮＲ１４から選択されるヘテロ原子に置換されるか或いはそれを含み、
    Ｚ１及びＺ２はそれぞれ独立して、Ｏ、Ｃ（Ｏ）及びＮ（Ｒ１３）から選択され、
    ａはそれぞれ独立して、０又は１であり、
    ｂはそれぞれ独立して、０又は１であり、
    ｃは、０又は１であり、
    ｄは、０又は１であり、
    ｅは、０又は１であり、
    ｆは、０～１５０の整数であり、
    ｇは、０又は１であり、
    ｉは、０又は１である、請求項７に記載の抗体－薬物コンジュゲート。
  10. 次の化学式で表される化合物を含むことを特徴とする、請求項７に記載のコンジュゲート：
    Figure 2022523854000121
  11. 前記リンカーが抗体に導入されたシステイン、リジン、アジド基、ケトン基又は抗体タンパク質のＮ末端を介して抗体と連結されることを特徴とする、請求項７に記載のコンジュゲート。
  12. 前記抗体は、抗ＢＣＭＡ抗体、抗ＲＯＲ１抗体、抗Ｈｅｒ２抗体、抗ＮａＰｉ２ｂ抗体及び抗ＣＬＬ１抗体からなる群から選ばれる、請求項７に記載のコンジュゲート。
  13. 請求項７～１２のいずれか一項に記載のコンジュゲートを含む、増殖性疾患の予防又は治療用医薬組成物。
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