JP2022519246A - 抗体電荷不均一性についてのネイティブマイクロ流体ce-ms解析法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2019年5月22日に作成され、487バイトを含むファイル10553P2-US_Sequence.txtとしてコンピュータ可読形式で提出された配列表を参照により組み込む。
本発明は、バイオ医薬品に関し、治療用抗体のインビトロ及び/またはインビボ翻訳後修飾を検出するためのキャピラリー電気泳動及び質量スペクトル解析の使用に関する。
モノクローナル抗体(mAb)は、生物学的治療用製品の重要な種類であり、それらは、多くの生命を脅かす疾患及び慢性疾患の治療において顕著な成功を達成している。しかしながら、所定の状況では、治療用モノクローナル抗体(mAb)は、翻訳後修飾(PTM)に起因するバリアントを含む多くの生成物バリアントを伴って哺乳動物細胞において生成される不均一な分子である。PTMを介して生成されるバリアントは、生成、精製、保存、及び投与後の間にmAbの寿命全体を通して生じ得る。これらバリアントまたは製品関連修飾は、製品品質特性(PQA)とも称される。事前に定義された許容基準内でPQAを制御することは、一貫した製品品質を保証し、薬物の安全性及び有効性への潜在的な影響を低減することから、バイオ医薬品業界にとって不可欠である。
本発明を説明する前に、本発明は、記載されている特定の方法及び実験条件に限定されず、そのようなものとして方法及び条件は変わり得ることを理解されたい。また、本明細書で使用される用語は、特定の実施形態を説明する目的のためのものにすぎず、本発明の範囲は添付の特許請求の範囲によってのみ限定されるため、限定することは意図されないことを理解されたい。任意の実施形態または実施形態の特徴は互いに組み合わされ得、そのような組み合わせは本発明の範囲内に明示的に包含される。
mAb:モノクローナル抗体
biAb:二重特異性抗体
CQA:重要品質特性
CE:キャピラリー電気泳動
PTM:翻訳後修飾バリアント
IEC:イオン交換クロマトグラフィー
UV:紫外線
QC:品質管理
MS:質量分析
ADC:抗体薬物コンジュゲート
モノクローナル抗体(mAb)バリアントの特徴付けは、潜在的治療用抗体の安全性、効力、及び安定性に対するそれらの潜在的影響を特定するために重要である。例えば、規制当局による承認のために検討するためには、分子の広範な特徴付けが実施されなければならない。抗体の混合物を含む薬物製品では、各抗体の絶対または相対量の特徴付けが決定されなければならない。凝集体及び断片は、免疫原性及び効力に影響を及ぼし得るので、それらのレベルは典型的には、ロットリリース、安定性、及び特徴付けの間にモニタリングされる。さらに、分子の主要な分解経路ならびに生成物関連不純物及びバリアントが決定される。UV検出と連結されたイオン交換クロマトグラフィー(IEC)は、慣用的な品質管理(QC)においてmAbバリアントを分離し、定量化するために頻繁に使用される。しかしながら、IEC分離に起因するクロマトグラフィーピークの特徴付けは、極端に時間を消費するプロセスである。よって、潜在的な治療用mAb及びmAb調製物を特徴付けるためにさらなる方法が必要とされる。本明細書に開示される方法はそれらの必要性に応える。
抗体電荷不均一性解析のための高分解能、高感度及びハイスループットのネイティブキャピラリー電気泳動(CE)-質量分析(MS)法を開発する。
強制分解研究:
NIST IgG1 mAb(5mg/mL、pH6.0)を45℃で0、1、4、8、15及び28日間インキュベーションした。
各NIST mAbサンプルをMilli-Q水で2mg/mLまで希釈した。次いで125単位のIdeS(Promega)を100μgのmAbに1.25/1の酵素/抗体比で添加した。混合物を37℃で600rpmで30分間振盪しながらインキュベーションして、F(ab’)2及びFc断片を生成した。各研究/処理の後の対照サンプル及びストレスを受けたサンプルを即座に-20℃で保存した。
抗体及びその電荷バリアントのインタクト質量解析を、Exactive Plus EMR Obitrap質量分析計(Thermo Scientific)に連結されたZipchip CEインターフェース(908 Devices)を使用して実行した。ネイティブバックグラウンド電解質(BGE)、pH約5.5(908 Devices)を有するネイティブマイクロ流体HRNチップ(22cmの分離チャネル、908 Devices)で抗体電荷バリアントを分離した。
電界強度:650V/cm、圧力アシスト:有、圧力アシスト開始時間:0.2分、反復遅延:30秒、注入体積:1nL
(1)ESI調整:スプレー電圧:0、キャピラリー温度:300℃、S-レンズ:150、シースガス:2、補助ガス:0、捕捉ガス:1.0。
(2)取得方法:ポジティブモード検出での全スキャン解析、インソースCIS:100eV、分解能:17,500、AGC:3e6、最大IT:50ms、マイクロスキャン:3、スキャン範囲:1000~10000m/z。
Agilent 1290 Infinity HPLCでCX-1 pH緩衝液(A:5.6、B:10.2)(Thermo Fisher Scientific)を使用してpH勾配を有するMabPac SCX-10カラム(4×250mM)で抗体電荷バリアントを分離した。吸光度を280nmのUV波長で測定した。
PMI-Intactソフトウェア(Protein Metrics)を使用してインタクト質量データを逆畳み込みした。
ネイティブZipChip CE-MSを使用した高感度かつ普遍的な12分方法を開発し、IgG1、IgG4及び二重特異性IgG4抗体の電荷バリアント解析に適用した。ネイティブZipChip CE-MSとSCX法とで同等な電荷バリアント分離が得られた。分解された電荷バリアントをネイティブMS解析によって特定した。近いpI値を有する抗体は、十分に分離され得る。共移行した抗体を簡略化されたネイティブ質量分析に基づいて個々に特定した。ストレス条件下でのインキュベーションに起因する酸性バリアント及びFab断片の増加したレベルは、サブユニット解析によってF(ab’)2及びFcドメイン内で局在化された。さらに、より高い分解能のサブユニット解析は、異性化から導入された追加の酸バリアント及びストレス条件下での増加した半グリコシル化種を明らかにした。
IgG1、IgG4及び二重特異性IgG4を含む3種の抗体標準を高分解能SCX-UV及びネイティブZipChip CE-MSによって解析した。2つのプラットフォーム間で同一の電荷バリアント分離プロファイルを得た(図2A~2B)。
ナノスプレーESIと組み合わされたZipChip CE-MSは、少ない存在量の種を検出する優れた感度を提供する。IgG1及びIgG4をそれぞれ0.01ng及び0.02ngで検出した。実行間の注入からキャリーオーバーは観察されなかった(図3A~3C)。
インタクト対照及び熱(45℃)のストレスを受けたNIST mAbをネイティブZipChip CE-MSによって解析した。逆畳み込みされた質量データは、対照と比較して有意に増加した酸性バリアント(A1)に加えて、28日の熱ストレス下でNIST mAbの上側ヒンジ領域での4つの主要なFab切断が生成されたことを示していた(図4及び表2)。
F(ab’)2及びFcは、普遍的なCE-MS法によって十分に分離された。すべてのマイナーピークを特定し、図5A~5Cに示した。28日のインキュベーションに起因する新たな電荷バリアントが青色のハイライトの領域に示されている。1及び2の未処理C末端リジンを有する2つの塩基性バリアントがFc領域に位置していた(図5C)。図5Bにおいてストレスを受けたサンプル(45℃、28日目)におけるHis227/Thr228でのFab切断に起因する塩基性バリアント3をF(ab’)2塩基性バリアント(b*1)として特定した。
混合物1(図6A)における3つのIgG1 mAb及び混合物2(図6B)における5つのIgG4二重特異性mAbが十分に分離され、これは共製剤化薬物のインタクト質量解析のために適用され得る。2つの抗体が一緒に共移行した場合(図6Cにおける青いハイライト)でも、それらはネイティブMSデータから個々に特定され得る(図6D及び6E)、畳み込みスペクトルについては図6Eを参照されたい。
Claims (20)
- サンプルにおける対象とする抗体の翻訳後修飾バリアントを検出及び/または区別するための方法であって、
1つ以上の対象とする抗体を含むサンプルをプロテアーゼと接触させて、前記サンプルを抗体断片へと消化することと、
キャピラリー電気泳動を使用して、1つ以上のキャピラリーにおいて分子量及び/または電荷によって抗体断片を分離することと、
分離された抗体断片を、前記1つ以上のキャピラリーから溶出させることと、
前記溶出した抗体断片の質量を、質量分析解析によって決定し、それにより、前記対象とする抗体の翻訳後修飾バリアントを検出及び/または区別することと
を含む、前記方法。 - 前記翻訳後修飾が、脱アミド化、酸化、糖化、ジスルフィド形成、N末端ピログルタミン酸形成、C末端リジン除去、及び高マンノースグリコシル化のうちの1つ以上を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記プロテアーゼが、IdeSを含む、請求項1または2に記載の方法。
- 前記抗体断片が、F(ab’)2またはFc抗体サブユニットのうちの1つ以上を含む、請求項1~3のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象とする抗体が、モノクローナル抗体である、請求項1~4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記抗体断片が、電荷によって分離され、かつ前記方法が、前記対象とする抗体の電荷バリアントを検出及び/または区別する方法である、請求項1~5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記抗体断片が、分子量によって分離され、かつ前記方法が、前記対象とする抗体のサイズバリアントを検出及び/または区別する方法である、請求項1~6のいずれか1項に記載の方法。
- サンプルにおける対象とする抗体の前記翻訳後修飾バリアントの相対量または絶対量を決定することをさらに含む、請求項1~7のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象とする抗体が、二重特異性抗体を含む、請求項1~8のいずれか1項に記載の方法。
- 前記サンプルが、内部標準を含む、請求項1~9のいずれか1項に記載の方法。
- 前記1つ以上のキャピラリーが、分離マトリックスを含む、請求項1~9のいずれか1項に記載の方法。
- 前記分離マトリックスが、分子量によってタンパク質を分離するように構成された篩マトリックスを含む、請求項11に記載の方法。
- 分離された抗体断片を前記1つ以上のキャピラリーから溶出させることが、前記抗体断片を1つ以上の画分へと分離することをさらに含む、請求項1~12のいずれか1項に記載の方法。
- 前記抗体断片を特定することをさらに含む、請求項1~13のいずれか1項に記載の方法。
- 前記抗体断片上に存在する前記翻訳後修飾を特定することをさらに含む、請求項1~14のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象とする抗体が、アイソタイプIgG1、IgG2、IgG3、IgG4、または混合型アイソタイプのものである、請求項1~14のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象とする抗体の翻訳後修飾プロファイリングをさらに含む、請求項1~16のいずれか1項に記載の方法。
- 還元ペプチドマッピングLC-MS/MS解析による、翻訳後修飾ホットスポットの翻訳後修飾マッピングをさらに含む、請求項1~17のいずれか1項に記載の方法。
- 前記サンプルが、対象とする抗体の混合物を含む、請求項1~18のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象とする抗体が、抗体薬物コンジュゲートである、請求項1~19のいずれか1項に記載の方法。
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