JP2021532148A - 病態および状態の処置に使用するための、エナンチオマー的に精製されたgperアゴニスト - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、国立衛生研究所の国立癌研究所により付与された助成金番号2R44CA228695−02に基づく米国政府の支援によってなされたものである。米国政府は、本発明にある特定の権利を有する。
エストロゲンは、体全体の複数の複雑な生理学的応答を媒介する。この応答は、受容体へのエストロゲンの結合を介して媒介される。古典的な受容体は、エストロゲンなどのステロイドに結合し、転写因子として機能する可溶性の細胞質/核タンパク質である。これらの受容体は、転写活性を媒介するエストロゲン受容体アルファおよびベータ(2つの密接に関連するタンパク質)として知られている。GPERは、7回膜貫通型Gタンパク質共役型受容体であり、エストロゲンにも高い親和性(Kd約6nM)で結合し、環状アデノシン一リン酸シグナル伝達、カルシウム動員、およびホスファチジルイノシトール−3,4,5−トリスリン酸産生を含む、迅速な細胞応答を媒介する。
本発明で使用する場合、下記の用語は示された意味を有する。
本発明の化合物、組成物および方法を説明する前に、本発明は、記載された特定のプロセス、製剤、化合物、組成物、または方法論に限定されず、これらは変更可能であることを理解されたい。本明細書で使用する用語は、特定のバージョンまたは実施形態のみを説明するためのものであり、添付の特許請求の範囲によってのみ限定される本明細書の実施形態の範囲を限定することを意図していないことも理解されたい。他に定義されない限り、本明細書で使用する技術用語および科学用語はすべて、当業者によって一般的に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書に記載されているものと類似または同等の任意の方法および材料を、本発明の実施形態の実施または試験に使用することができるが、好ましい方法、デバイスおよび材料をここで説明する。本明細書で言及される全ての刊行物、は、その全体が参照により組み込まれる。本明細書のいかなるものも、本明細書の実施形態が先行発明のためにそのような開示に先行する権利がないことを認めるものとして解釈されるべきではない。
本発明で使用する場合、「約」という用語は、それが使用されている数のプラスまたはマイナス20%の数値を意味する。したがって、約50%とは、40%〜60%の範囲を意味する。
「含む(comprising)」という用語が移行句として使用される実施形態または特許請求の範囲において、そのような実施形態はまた、「含む(comprising)」という用語を「からなる(consisting of)」または「から本質的になる(consisting essentially of)」という用語で置き換えることを想定することができる。
本明細書で使用する場合、「から本質的になる(consisting essentially of)」または「から本質的になる(consists essentially of)」という用語は、化合物、組成物、製剤または方法が、特定の特許請求の範囲に記載された実施形態または請求項に具体的に列挙された要素、ステップ、または成分のみを含むことを意味し、かつ特定の実施形態または請求項の基本的および新規の特性に実質的に影響を及ぼさない追加の要素、ステップまたは成分を含んでもよい。例えば、明記された状態(例えば、がんおよび/または肥満)を処置する製剤または方法における唯一の活性成分は、特定の実施形態または請求項において具体的に列挙された治療薬である。
本明細書に開示される化合物には、非対称中心が存在する。これらの中心を、キラル炭素原子の周りの置換基の配置に応じて、記号「R」または「S」で示す。本発明は、ジアステレオマー、エナンチオマー、およびエピマー形態を含むすべての立体化学的異性体形態、およびそれらの混合物を包含することを理解されたい。化合物の個々の立体異性体は、キラル中心を含む市販の出発物質から合成的に、あるいはエナンチオマー生成物の混合物の調製、それに続く分離、例としてジアステレオマーの混合物への変換、その後の分離または再結晶によって、クロマトグラフィー技術、すなわちキラルクロマトグラフィーカラムでのエナンチオマーの直接分離によって、または当技術分野において既知である任意の他の適切な方法によって、調製することができる。特定の立体化学の出発化合物は、市販されているか、または当技術分野において既知の技術によって作製および分離することができる。さらに、本明細書に開示される化合物は、幾何異性体として存在し得る。本発明は、シス、トランス、シン、アンチ、エントゲーゲン(entgegen)(E)、およびツザメン(zusammen)(Z)異性体、ならびにそれらの適切な混合物すべてを含む。さらに、化合物は互変異性体として存在する場合があり;互変異性体すべて、本発明によって提供される。さらに、本明細書に開示される化合物は、非溶媒和形態ならびに薬学的に許容される溶媒、例として水、エタノールなどとの溶媒和形態で存在し得る。一般に、溶媒和形態は、非溶媒和形態と同等であると考えられている。
%ee=|A−B|×100
(式中、AおよびBは、A+B=1となる混合物中のエナンチオマーのそれぞれのモル分率である。)により決定してもよい。ラセミ混合物のエナンチオマー過剰率は0%であるが、完全に純粋な単一のエナンチオマーのエナンチオマー過剰率は100%である。一例として、R異性体が70%、Sが30%の試料では、エナンチオマー過剰率は40%になる。これはまた、40%の純粋なRと60%のラセミ混合物(これは、全体の組成に30%のRと30%のSとを与える)との混合物と考えることができる。
本明細書で使用される「投与する」、「投与すること」または「投与」という用語は、化合物または化合物の薬学的に許容される塩または組成物のいずれかを対象に直接投与することを指す。
「単位剤形」という用語は、ヒト対象および他の動物用の単位投薬量として好適な物理的に別個の単位を指し、各単位は、好適な医薬賦形剤と共同して、所望の治療効果を生み出すように計算された所定量の活性材料を含む。
本明細書で使用される「疾患」という用語は、すべて、正常な機能を損なうヒトもしくは動物の体またはその部分の1つの異常な状態を反映しており、通常、兆候と症状を区別することによって現れ、ヒトまたは動物の生存期間または生活の質を低下させる、という点において、「障害」、「症候群」、および「状態」(病状の場合のように)という用語と一般に同義であることが意図され、これらの用語と互換的に使用される。
「併用療法」という用語は、本開示に記載されている病状または障害を処置するための2つ以上の治療剤の投与を意味する。そのような投与は、実質的に同時に、例として、一定の比率の活性成分を有する単一のカプセルもしくは投薬量提示により、または各活性成分についての複数の別個のカプセルにより、これらの治療剤を共投与することを包含する。加えて、そのような投与はまた、同一患者における各タイプの治療剤を連続的に使用することを含み、個々の治療剤の送達は、1〜24時間、1〜7日、または1週間以上離れている。いずれの場合も、処置レジメンは、本明細書に記載の状態または障害の処置における薬物併用の有益な効果を提供するであろう。
多くの有機化合物は、光学活性形態で存在する、すなわち、それらは、平面偏光面を回転させる能力を有する。光学活性化合物を説明する際に、接頭辞RおよびSを、そのキラル中心の周りの分子の絶対配置を示すために使用する。所与の化学構造に対して、立体異性体と呼ばれるこれらの化合物は、互いに鏡像であることを除いて同一である。特定の立体異性体はエナンチオマーと呼ばれることもあり、そのような異性体の混合物は、多くの場合、エナンチオマー混合物またはラセミ混合物と呼ばれる。
立体化学的純度は、医薬品の分野において重要であり、この分野では、10種類の最も多く処方された薬物のうちの8種類がキラリティーを呈する。適切な例は、R−エナンチオマーよりも100倍強力であることが知られている、β−アドレナリン遮断剤であるプロプラノロールのS−エナンチオマーによって提供される。
本明細書に記載のSRR G−1の実施形態のいずれかにおいて、1−((3aS,4R,9bR)−4−(6−ブロモベンゾ[d][1,3]ジオキソール−5−イル)−3a,4,5,9b−テトラヒドロ−3H−シクロペンタ[c]キノリン−8−イル)エタン−1−オンの形態は、図10のXRPDパターンを特徴とする結晶形態A、図10のXRPDパターンを特徴とする結晶形態B、図10のXRPDパターンを特徴とする結晶形態C、非晶質、またはそれらの組み合わせ、から選択される。
ある特定の実施形態では、1−((3aS,4R,9bR)−4−(6−ブロモベンゾ[d][1,3]ジオキソール−5−イル)−3a,4,5,9b−テトラヒドロ−3H−シクロペンタ[c]キノリン−8−イル)エタン−1−オンの結晶形態は、図10のXRPDパターンを特徴とする結晶形態Aである。
本明細書に記載のSRR G−1またはその誘導体の実施形態のいずれかにおいて、その誘導体は、ベンゼンスルホン酸を用いて、(1S)−(+)−カンファー−10−スルホン酸を用いて、エタン−1,2−ジスルホン酸を用いて、塩酸を用いて、メタンスルホン酸を用いて、ナフタレン−2−スルホン酸を用いて、ナフタレン−1,5−ジスルホン酸を用いて、硫酸を用いて、p−トルエンスルホン酸を用いて、またはそれらの組み合わせを用いて、形成された塩または共結晶から選択される。
ある特定の実施形態では、その誘導体は、(1S)−(+)−カンファー−10−スルホン酸を用いて形成された塩または共結晶である。
ある特定の実施形態では、その誘導体は、ナフタレン−2−スルホン酸を用いて形成された塩または共結晶である。
ある特定の実施形態では、その誘導体は、ベンゼンスルホン酸を用いて形成された塩または共結晶であり、ピークが、2θ(±0.20)度単位において約4.26、約6.51、約6.71、約16.86、約18.92、約19.99、約20.29、約20.75、約21.46、約22.06、約22.12、および約23.99で表されるXRPDパターンを特徴とする。
本明細書に記載の実施形態のいずれかにおいて、SRR G−1またはその誘導体は、RSS G−1またはその誘導体と比較して、より大きな所望の薬理活性を有する。本明細書に記載の実施形態のいずれかにおいて、RSS G−1またはその誘導体の存在は、SRR G−1との併用療法の望ましくない薬理活性に追加されるであろう。
医薬組成物
本明細書の一部の実施形態は、本明細書の実施形態のエナンチオマー的に精製されたSRR G−1またはその誘導体、および薬学的もしくは美容的に許容される担体、アジュバント、またはビヒクルを含む医薬もしくは化粧品組成物に関する。
エナンチオマー的に精製されたSRR G−1またはその誘導体を含む医薬組成物の固体剤形、例として、錠剤、糖衣錠、カプセル、および顆粒を、腸溶性コーティングおよび当技術分野において周知の他のコーティングなどのコーティングおよびシェルを用いて調製することができる。それらはまた、不透明化剤を含有してもよく、それらはまた、1つまたは複数の活性化合物を遅延して放出するような組成のものであり得る。使用可能な包埋組成物の例は、ポリマー物質およびワックスである。活性化合物はまた、適宜、1つまたは複数の上記の賦形剤とともにマイクロカプセル化された形態であり得る。
懸濁液は、活性化合物に加えて、懸濁化剤、例えば、エトキシル化イソステアリルアルコール、ポリオキシエチレンソルビトールもしくはソルビタンエステル、微晶質セルロース、アルミニウムメタヒドロキシド(aluminum metahydroxide)、ベントナイト、寒天もしくはトラガント、またはこれらの物質の混合物などを含んでもよい。
局所投与用のエナンチオマー的に精製されたSRR G−1またはその誘導体を含む医薬もしくは化粧品組成物の剤形としては、眼、耳または鼻への投与に好適な軟膏、粉末、スプレー吸入剤、および滴薬が挙げられる。化合物を、減菌条件下で、生理学的に許容される担体、および必要とされ得る任意の防腐剤、緩衝剤、および/または噴射剤と混合する。眼科用製剤、眼軟膏、粉末、および溶液もまた、本発明の範囲内であると企図される。
エナンチオマー的に精製されたSRR G−1またはその誘導体を含む活性化合物または医薬もしくは化粧品組成物は、広い投薬量範囲にわたって有効であり得、一般に治療有効量で投与することができる。しかし、実際に投与される化合物または組成物の量は、通常、処置を受ける状態、選択された投与経路、投与される実際の化合物または組成物、個々の患者の年齢、体重、および反応、患者の症状の重症度などを含む関連する状況に従って、医師によって決定されることが理解されるであろう。
エナンチオマー的に精製されたSRR G−1を含む医薬組成物、またはその誘導体を含む医薬組成物のいずれにおいても、本明細書に記載されたものは、1つまたは複数の追加の治療剤を有し得る。
標的キナーゼ阻害剤は、は、ベムラフェニブ、ダブラフェニブ、トラメチニブ、バンデタニブ、SU6656、スニチニブ、ソラフェニブ、セルメチニブ、ルキソリチニブ、ペガプタニブ、パゾパニブ、ニロチニブ、ムブリチニブ、レンバチニブ、ラパチニブ、イマチニブ、イブルチニブ、ゲフィチニブ、フォスタマチニブ、エルロチニブ、エルダフィチニブ、ダサチニブ、カボザンチニブ、クリゾチニブ、コビメチニブ、セツキシマブ、ボスチニブ、ビニメチニブ、アキシチニブ、アファチニブ、アダボセルチブ、およびそれらの組み合わせ、からなる群から選択され得るが、これらに限定されない。
抗感染症剤は、オリタバンシン(Orbactiv)、ダルババンシン(Dalvance)、テジゾリドホスフェート、(Sivextro)、クリンダマイシン、リネゾリド(Zyvox)、ムピロシン(Bactroban)、トリメトプリム、スルファメトキサゾール、トリメトプリム−スルファメトキサゾール(SeptraまたはBactrim)、テトラサイクリン、バンコマイシン、ダプトマイシン、フルオロキノリン、およびそれらの組み合わせ、からなる群から選択され得るが、これらに限定されない。
使用方法
本明細書に提供されるのは、疾患または障害の処置または予防を必要とする対象における疾患または障害を処置または予防する方法であって、本明細書に開示される任意の実施形態による、エナンチオマー的に精製されたSRR G−1またはその誘導体を含む治療有効量の化合物または医薬組成物を対象に投与することを含む方法である。
一部の実施形態は、疾患または障害を引き起こしている、または疾患または障害に関与しているがんまたは細胞がGPERを発現する方法を説明している。
本明細書に記載の任意の実施形態において、対象は、ヒトまたは動物である。
一部の実施形態では、前記疾患または障害は、がん、子宮内膜炎、前立腺炎、多嚢胞性卵巣症候群、尿失禁、ホルモン関連障害、聴覚障害、ほてり、多汗症、高血圧、脳卒中、虚血、心筋梗塞、拡張型心筋症、肥満、インスリン抵抗性、骨粗鬆症、アテローム性動脈硬化症、更年期障害の症状、炎症、関節リウマチ、変形性関節症、リンパ増殖性疾患、骨髄増殖性疾患、好酸球増加症、組織球増殖症、発作性夜間ヘモグロビン尿症、全身性肥満細胞症、静脈血栓症、塞栓症、うつ病、不眠症、不安、神経障害、多発性硬化症、パーキンソン病、アルツハイマー病、炎症性腸疾患、クローン病、セリアック病、タンパク尿性腎疾患(proteinuric renal disease)、血管疾患、および胸腺萎縮、からなる群から選択される。
一部の実施形態は、脂質プロファイルの回復を必要とする対象における脂質プロファイルを回復する方法であって、本明細書に開示される任意の実施形態による、治療有効量の化合物もしくは組成物、またはその誘導体を対象に投与することを含む方法を説明する。
実施形態では、インスリン増感剤は、チアゾリジンジオン(TZD)、ピオグリタゾン、およびロシグリタゾンからなる群から選択される。実施形態では、ピオグリタゾンを、15mg、30mg、または45mgで投与する。実施形態では、ロシグリタゾンを、2mg、4mg、または8mgで投与する。
実施形態では、ナトリウムグルコース共輸送体2(SGLT2)阻害剤は、エンパグリフロジン、カナグリフロジン、およびダパグリフロジンからなる群から選択される。実施形態では、エンパグリフロジンを、5mg、10mg、12.5mg、または25mgで投与する。実施形態では、カナグリフロジンを、50mg、100mg、150mg、または300mgで投与する。
実施形態では、インスリンは、インスリンアナログ、基礎インスリンアナログ、中性プロタミンHagedorn(NPH)、速効型インスリンアナログ、および吸入インスリンからなる群から選択される。
実施形態では、速効型インスリンアナログは、リスプロ、アスパルト、およびグルリジンからなる群から選択される。実施形態では、リスプロを、50単位、75単位、100単位、300単位、または1000単位で投与する。実施形態では、アスパルトを、50単位、90単位、210単位、300単位、700単位、または1000単位で投与する。実施形態では、グルリジンを、300単位または1000単位で投与する。
実施形態では、アルファグルコシダーゼ阻害剤(AGI)は、アカルボース、ミグリトール、およびボグリボースからなる群から選択される。実施形態では、アカルボースを、25mg、50mg、または100mgで投与する。実施形態では、ミグリトールを、25mg、50mg、または100mgで投与する。実施形態では、ボグリボースを、0.2mgまたは0.3mgで投与する。
実施形態では、交感神経遮断性ドーパミン受容体アゴニストは、ブロモクリプチンメシル酸塩である。実施形態では、ブロモクリプチンメシル酸塩を、0.8mg、2.5mg、または5mgで投与する。
実施形態では、高血圧薬は、アンギオテンシン変換酵素阻害剤(ACEI)、アンギオテンシンII受容体遮断薬(ARB)、ベータ遮断薬、カルシウムチャネル遮断薬(CCB)、およびチアジド系利尿薬からなる群から選択される。
処置有効性は、血中のインスリンレベルを測定することによって評価することができる。通常の空腹時インスリンレベルは、5未満である。約8.0の空腹時インスリンレベルでは前糖尿病の2倍のリスクがもたらされ、約25の空腹時インスリンでは前糖尿病の約5倍のリスクがもたらされる。実施形態では、本明細書に開示される任意の実施形態による、化合物もしくは組成物、またはそれらの誘導体を、それを必要とする対象に投与することによって、空腹時インスリンレベルを、5未満、8未満、または25未満に低下させる。
処置有効性は、脂肪組織中の酸化ストレスのレベルを測定することによって評価することができる。酸化ストレスを、以下の酵素、すなわち、スーパーオキシドジスムターゼ2(SOD2)、カタラーゼ、グルタチオンペルオキシダーゼ、ペルオキシレドキシン、アルデヒドデヒドロゲナーゼ、アルドケトレダクターゼ、およびグルタチオンS−トランスフェラーゼのうちのいずれかの増加によって測定する。実施形態では、本明細書に開示される任意の実施形態による、化合物もしくは組成物、またはそれらの誘導体を、それを必要とする対象に投与することによって、以下の酵素、すなわち、スーパーオキシドジスムターゼ2(SOD2)、カタラーゼ、グルタチオンペルオキシダーゼ、ペルオキシレドキシン、アルデヒドデヒドロゲナーゼ、アルドケトレダクターゼ、およびグルタチオンS−トランスフェラーゼのうちの1つまたは複数のレベルを低下させる。
一部の実施形態では、前記がんは、生殖がん、ホルモン依存性がん、白血病、大腸がん、前立腺がん、乳がん、卵巣癌、子宮内膜がん、子宮癌肉腫、胃がん、直腸がん、肝臓がん、膵臓がん、肺がん、子宮がん、子宮頸がん、子宮頚がん、子宮体がん、卵巣がん、精巣がん、膀胱がん、腎臓がん、脳/CNSがん、頭頸部がん、咽頭がん、ホジキン病、非ホジキンリンパ腫、多発性骨髄腫、黒色腫、急性白血病、リンパ性白血病、有毛細胞白血病、急性骨髄性白血病、ユーイング肉腫、小細胞肺がん、非小細胞肺がん、絨毛癌、横紋筋肉腫、ウィルムス腫瘍、神経芽細胞腫、口腔/咽頭のがん、食道のがん、喉頭のがん、腎臓がん、リンパ腫、バーキットリンパ腫、肉腫、血管肉腫、膠芽腫、髄芽腫、星状細胞腫、およびメルケル細胞癌、からなる群から選択される。
一部の実施形態は、それを必要とする対象における皮膚色素沈着を増加させる、または皮膚色素沈着の喪失を予防または好転させる方法であって、本明細書に開示される任意の実施形態による、治療有効量の化合物もしくは組成物、またはその誘導体を対象に投与することを含む方法を説明する。
一部の実施形態は、それを必要とする対象における皮膚保護の方法であって、本明細書に開示される任意の実施形態による、治療有効量の化合物もしくは組成物、またはその誘導体を対象に投与することを含む方法を説明する。
一部の実施形態は、それを必要とする対象における皮膚がんから皮膚を保護する方法であって、本明細書に開示される任意の実施形態による、治療有効量の化合物もしくは組成物、またはその誘導体を対象に投与することを含む方法を説明する。
一部の実施形態は、それを必要とする対象における、皮膚色素沈着を増加させることを含む、皮膚がんから皮膚を保護する方法であって、本明細書に開示される任意の実施形態による、治療有効量の化合物もしくは組成物、またはその誘導体を対象に投与することを含む方法を説明する。
追加の治療剤は、減量薬、血糖降下薬、インスリン増感剤、グルカゴン様ペプチド1(GLP1)受容体アゴニスト、ナトリウムグルコース共輸送体2(SGLT2)阻害剤、インスリン、インスリンアナログ、スルホニル尿素、ジペプチジルペプチダーゼ4(DPP4)阻害剤、アルファグルコシダーゼ阻害剤(AGI)、胆汁酸封鎖剤(BAS)、交感神経遮断性ドーパミン受容体アゴニスト(sympatholytic dopamine receptor agonist)、インクレチン、高血圧薬、脂質修飾剤、抗肥満剤、免疫療法剤、化学療法剤、標的キナーゼ阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ阻害剤、抗感染症剤、ブロモドメイン阻害剤、およびそれらの組み合わせ、からなる群から選択され得る。
標的キナーゼ阻害剤は、ベムラフェニブ、ダブラフェニブ、トラメチニブ、バンデタニブ、SU6656、スニチニブ、ソラフェニブ、セルメチニブ、ルキソリチニブ、ペガプタニブ、パゾパニブ、ニロチニブ、ムブリチニブ、レンバチニブ、ラパチニブ、イマチニブ、イブルチニブ、ゲフィチニブ、フォスタマチニブ、エルロチニブ、エルダフィチニブ、ダサチニブ、カボザンチニブ、クリゾチニブ、コビメチニブ、セツキシマブ、ボスチニブ、ビニメチニブ、アキシチニブ、アファチニブ、アダボセルチブ、およびそれらの組み合わせ、からなる群から選択され得る。
ヒストンデアセチラーゼ阻害剤は、ボリノスタット、ロミデプシン、チダミド、パノビノスタット、ベリノスタット、バルプロ酸、ジビノスタット(Givinostat)、およびそれらの組み合わせ、からなる群から選択され得る。
スキーム1
SRR G−1およびRSS G−1エナンチオマーの単離
Tocris Bioscienceから購入した、高度に精製されたG−1の試料、すなわち,(±)1−(4−(6−ブロモベンゾ[d][1,3]ジオキソール−5−イル)−(3aS*,4R*,9bR*)−テトラヒドロ−3H−シクロペンタ[c]キノリン−8−イル)エタン−1−オン(純度99.4%)から始め、この材料を、90:10:0.1(体積/体積/体積)メチルtert−ブチルエーテル/エタノール/ジエチルアミン中に溶解し、Chrialpak1A樹脂を充填したカラムを使用した分取クロマトグラフィーにかけた。溶出は90:10:0.1(体積/体積/体積)メチルtert−ブチルエーテル/エタノール/ジエチルアミンを用いて行い、各エナンチオマーに対応する画分を収集し、濃縮して固体にした。単結晶X線構造解析により、早期に溶出するエナンチオマーが、SRR G−1エナンチオマーであると決定した。
SRR G−1多形スクリーニング
実施例1に従って調製されたSRR G−1から始めて、固体のスラリーから単離された固体、または溶液の急速および緩慢蒸発による固体、ならびに冷却による固体を分析する多形スクリーニング研究を行った(表1)。形態Aと呼ばれる無水形態と形態Bと呼ばれるモノジクロロメタン溶媒和物の2つの結晶形態を特定した。高温にさらされると、形態Bの結晶形態が脱溶媒和して形態Cの結晶形態を形成する。非晶質材料を、2つの異なる方法で精製されたSRR G−1から生成した;SRR G−1のジエチルエーテル溶液を迅速蒸発させるか、またはSRR G−1のジクロロメタン溶液(の溶液)から回転蒸発させる。
実施例1に従って調製したSRR G−1から始めて、好適な単結晶をジクロロメタン溶液から成長させ、単結晶X線回折法によって分析した。構造を決定することに成功した。
構造を、SHELXTを使用して直接法によって解析した。残りの原子は、後続の差フーリエ合成により位置を決定した。構造を、SHELXL−2014を使用して精密化した。SRR G−1の水素原子を、独立して精密化した。ジクロロメタンの水素原子は精密化に含まれていたが、それらが結合している原子に乗るように拘束した。構造を、関数:
ここで、重みwは1/[σ2(Fo 2)+(0.0464P)2+(0.1905P)](式中、P=(Fo 2+2Fc 2)/3)として定義される。散乱因子は、「国際結晶学データ集(International Tables for Crystallography)」から採用した。精密化に使用された4368反射のうち、強度が不確かさの2倍より大きい[I>2σ(I)]、4071反射のみを、フィット残差Rの計算に使用した。精密化の最終サイクルには334の変数パラメーターが含まれ、拘束0であり、
a、b、およびcの結晶軸に沿って見たパッキング図を、それぞれ図2〜4に示す。図5に示すように、アミンから、隣接する分子のカルボニルへの水素結合により、b軸に沿って1次元の水素結合ネットワークが生成される。
絶対配置は、図6にラベル付けされている。これは、SRR G−1の構成と一致している。
図7は、単結晶構造から生成されたSRR G−1ジクロロメタン溶媒和物の計算によるXRPDパターンを示す。計算によるXRPDパターンは、表1にまとめられている多形スクリーニング研究において形態BのXRPDパターンを示していると特定されたバルク試料に割り当てられたものと同一である。
位置パラメーターおよびそれらの推定標準偏差、異方性変位因子係数(anisotropic displacement factor coefficients)、結合距離、結合角、水素結合および角度、ならびにねじれ角についての表が示されている。
構造を、SHELXTを使用して直接法によって解析した。残りの原子は、後続の差フーリエ合成により位置を決定した。構造を、SHELXL−2014を使用して精密化した。水素原子を、独立して精密化した。構造を、関数:
ここで、重みwは、1/[σ2(Fo 2)+(0.0401P)2+(0.3205P)](式中、P=(Fo 2+2Fc 2)/3)として定義される。散乱因子は、「国際結晶学データ集」から採用した。精密化に使用された7561の反射のうち、強度が不確かさの2倍より大きい[I>2σ(I)]、6752の反射のみを、フィット残差Rの計算に使用した。精密化の最終サイクルには613の変数パラメーターが含まれ、拘束0であり、
形態および多形データ
SRR G−1は、2つの特徴的な多形すなわち形態AおよびC;溶媒和物、すなわち形態B;ならびに非晶質材料を形成する。結晶形態のXRPDパターンを、図10において比較する。形態Bは、100〜120℃間の高温にさらされると脱溶媒和して形態CになるモノDCM溶媒和物である。脱溶媒和物である形態Cは、129℃付近で融解開始を示す。形態Aは、すべての温度で熱力学的に安定な形態であり(形態Cにモノトロピックに関連する)、178℃付近で融解開始を示す。非晶質材料は物理的に安定ではなく、高温または高湿度のいずれかにさらされると、結晶化して形態Aになる。形態については、以下の後続のセクションにてより詳細に説明する。
形態Aは、は無水であり、178℃付近で融解を開始する。形態Aは、熱力学的に最も安定した形態であり、形態Cにモノトロピックに関係する。形態Aは、ジクロロメタン以外の種々の有機溶媒および有機/水溶媒系を利用した複数の結晶化技術から決まって得られた。
結晶形態Aについて観察されたXRPDピークを、表10に列挙する。
形態Aの動的蒸気収着等温線は、この形態が低い吸湿性を呈することを示している(図12)。収着/脱着サイクルによる質量変化は、0.3質量%未満であった。ヒステリシスは観察されなかった。動的蒸気収着実験から回収された材料は、XRPDによると形態Aであった。
形態Bは、DCMから形態C(脱溶媒和形態)との混合物として決まって生成されるモノジクロロメタン溶媒和物である。形態Bは、100〜120℃間の高温にさらされると完全に脱溶媒和して形態Cになる。
形態Bの単結晶構造は既知である。結晶系は直方晶系であり、空間群はP212121である。セルパラメーターおよび計算による体積は:a=6.43156(10)Å、b=13.0752(2)Å、c=25.2941(4)Å、α=90°、β=90°、γ=90°、V=2127.09(6)Å3、である。式量は497.20g mol-1、Z=4であり、計算による密度は1.553g cm-3になる。非対称単位には、1つのエナンチオピュアなSSR G−1分子および1つのジクロロメタン分子が含まれている。この構造には、C8、C9、およびC13に位置する3つのキラル中心が含まれており(図13を参照)、これらは、それぞれR、S、およびR配置で結合している。単結晶構造から生成された形態Bの計算によるXRPDパターンを図14に示し、実験パターンと比較する。
結晶形態態Bについて観察されたXRPDピークを、表11に列挙する。
形態Bの物理的安定性を調査した。120℃にさらされると、形態Cへの完全な脱溶媒和が起こった。90〜100℃に25分間さらすと、ほぼ完全な脱溶媒和が明らかになった。70℃(またはそれ未満)での減圧においては、脱溶媒和が起こるのに十分ではなかった。
形態Cは、形態B(モノDCM溶媒和物)の脱溶媒和によって生成され、129℃付近で融解開始を伴う脱溶媒和物である。
形態CのXRPDパターンでは、インデクシングに成功し、このことは、形態Cが単結晶相から構成されていることを示唆している(図17)。化学組成が正しいと仮定すると、これは、SRR G−1の4つの分子を含む直方晶系の単位胞を有する。したがって、インデクシングの結果から計算された462.88Å3の式単位体積は、計算による密度が1.479g cm-3の無水形態に一致する。
結晶形態態Cについて観察されたXRPDピークを、表12に列挙する。
非晶質
精製されたSRR G−1から生成した非晶質材料の物理的安定性を調査した。非晶質材料は、高温(60℃で4日以内)または高湿度(75%RHで12日以内)のいずれかにさらされると、結晶化して形態Aになった。このことは、非晶質材料が評価された条件で安定ではないということを示している。
結晶形態の相対的熱力学的安定性
熱量測定データから得られた融解開始および融解熱は、すべての温度における形態の相対的物理的安定性を推定するのに有用である(図11および18)。融解熱の規則から、より高い融解形態の方が、融解熱がより低い場合、2つの形態はエナンチオトロピックであり、そうでない場合、それらはモノトロピックである。この系の密度および融解熱の規則は、モノトロピック関係と一致しているように見える。
SRR G−1 形態Aの溶解度
SRR G−1(形態A) pH緩衝液中での溶解度測定
溶解度測定を、37℃で24時間、pH緩衝液(2.0〜8.0)中のSRR G−1(結晶形態態A)について実施した。結果を表14にまとめた。XRPDパターンを、図19および図20に示す。24時間後、すべてのpH緩衝液中において化合物の形態変化は観察されなかった。SRR G−1のpH2.0〜8.0での溶解度は0.72μg/mL未満であった。
速度論的溶解度測定を、3つの生体関連媒体(SGF(pH1.8)、FaSSIF(pH6.5)およびFeSSIF(pH5.0))中において、37℃にて1、2、4および24時間でSRR G−1(結晶形態A)について実施した。結果を表15および図21にまとめた。湿ケーキのXRPDパターンを、図22〜24に示す。3つの生体関連媒体中における1、2、4、および24時間後の試料では、形態の変化は観察されなかった。SRR G−1の最高の溶解度は、FeSSIF(約0.037mg/mL)中で観察された。
化合物SRR G−1のpKa、LogD7.4およびLogPを、MarvinSketch5.6.0.2によって予測し、結果は、SRR G−1のpKaが1.90(塩基、0〜14のpH範囲)、LogD7.4は5.32、LogPは5.32であると示された。pKa滴定試験では、pKa値が3〜11の範囲で観察されなかったことが示され、これは予測結果と一致していた。LogD7.4を、pH7.4のリン酸緩衝液およびn−オクタノールの溶媒系を使用してフラスコ振とう法により測定した。LogD7.4およびLogPの詳細な結果を表16に示した。水相へのSRR G−1遊離塩基の溶解度は<0.82μg/mLよりも低かったため、pKa値が小さいことを考慮して、LogD7.4を>3.22、LogPを>3.22と決定した。
示差走査熱量測定(DSC)
DSCを、Mettler−Toledo DSC3+またはDSC822e示差走査熱量計を使用して実施した。タウラグ(tau lag)調整を、インジウム、スズ、亜鉛を用いて実施する。温度およびエンタルピーを、オクタン、サリチル酸フェニル、インジウム、スズ、亜鉛を用いて調整する。次に、調整を、オクタン、サリチル酸フェニル、インジウム、スズ、亜鉛を用いて検証する。試料を密閉したアルミニウムDSCパンに入れ、質量を正確に記録した。次に、パンをDSCセル内に挿入した。試料パンとして構成された秤量したアルミニウムパンを、セルの基準側に置いた。試料分析の前に、パンの蓋に穴を開けた。試料を、10℃/分で−30℃から250℃まで分析した。DSCサイクル法により、0℃/分で−30℃から100℃まで加熱し、−30℃に戻り、次いで250℃まで加熱した。
水分収着/脱着データを、VTI SGA−100蒸気収着分析器で収集した。較正標準としてNaClおよびPVPを使用した。分析前に試料を乾燥させなかった。収着および脱着データを、窒素パージ下にて10%RH間隔で5%〜95%RHの範囲にわたって収集した。分析に使用した平衡基準は、5分での質量変化が0.0100%未満であり、最長平衡化時間は3時間であった。試料の初期水分含有量についてはデータを補正しなかった。
Mettler−Toledo TGA/DSC3分析計を使用して、熱重量分析を実施した。温度およびエンタルピーの調整を、インジウム、スズ、および亜鉛を使用して実施し、インジウムを用いて検証した。平衡を、シュウ酸カルシウムを用いて検証した。試料をアルミニウムオープンパンに入れた。パンを密閉し、蓋に穴を開け、次にTG炉内に挿入した。試料パンとして構成された秤量したアルミニウムパンを、基準プラットフォーム上に置いた。炉を窒素下で加熱した。各試料を、10℃/分で周囲温度から350℃まで加熱した。サーモグラムは参照温度(x軸)でプロットされているが、結果は試料温度に従って報告する。
XRPDパターンを、長い微小焦点源を使用して生成されたCu放射線の入射ビームを使用するPANalytical X’Pert PRO MPDまたはPANalytical Empyrean回折計により収集した。楕円傾斜型多層膜ミラー(elliptically graded multilayer mirror)を使用して、Cu Kα 試料を通過したX線の焦点を、検出器上に合わせた。分析の前に、シリコン標本(NIST SRM 640e)を分析して、Si 111ピークの観測位置がNIST認定位置と一致していることを確認した。試料の標本を3μm厚フィルム間に挟み、透過形状で分析した。ビームストップ、短い散乱防止エクステンション(short antiscatter extension)、および散乱防止ナイフエッジを使用して、空気によって発生するバックグラウンドを最小限に抑えた。入射ビームおよび回折ビーム用のソーラースリットを使用して、軸発散によるブロードニングおよび非対称性を最小限に抑えた。回折パターンを、標本から240mmの位置にある走査式位置検知型検出器(X’Celerator)およびData Collectorソフトウェアv.2.2bまたは5.5を使用して収集した。
塩データ
結晶性および無水SRR G−1ベシル酸塩、カンシル酸塩、およびナプシル酸塩を単離することに成功した。3つすべてを、1:1の化学量論的塩として得た。これらの場合、変色しない結晶性塩を高収率で提供するには、種晶添加が非常に重要であった。図25において、塩のXRPDパターンを、遊離塩基形態Aと比較する。スケールアップおよび塩の特性評価については、以下の後続のセクションにてより詳細に説明する。
SRR G−1ベシル酸塩 形態A
SRR G−1ベシル酸塩 形態Aは、無水1:1化学量論的塩であり、186℃付近で見かけの融解を開始する。水中の塩の不均化は明らかではなかった。
構造を、SHELXTを使用して直接法によって解析した。残りの原子は、後続の差フーリエ合成により位置を決定した。構造を、SHELXL−2014を使用して精密化した。水素原子を、独立して精密化した。構造を、関数:
を最小化することにより、完全行列最小二乗法にて精密化し、
ここで、重みwは1/[σ2(Fo 2)+(0.0401P)2+(0.3205P)](式中、P=(Fo 2+2Fc 2)/3)として定義される。散乱因子は、「国際結晶学データ集」から採用した。精密化に使用された10520の反射のうち、強度が不確かさの2倍より大きい[I>2σ(I)]、9411の反射のみを、フィット残差Rの計算に使用した。精密化の最終サイクルには723の変数パラメーターが含まれ、拘束1であり、
水中の不均化の可能性を調査した。SRR G−1ベシル酸塩 形態Aを、水中で4日間スラリー化した。過剰な固体を回収し、遊離塩基またはベンゼンスルホン酸の形跡についてXRPDによって再分析した。回収された材料はSRR G−1ベシル酸塩 形態Aであり、評価された条件下で不均化が起こらなかったことを示している。
SRR G−1カンシル酸塩 形態A
SRR G−1カンシル酸塩 形態Aは、無水1:1化学量論的塩であり、172℃で見かけの融解を開始する。
SRR G−1カンシル酸塩 形態Aのサーモグラムを、図31に提供する。171℃まで質量損失はごくわずかであることがTGAによって明らかであり、無水形態と一致している。DSCは、172℃付近で開始する鋭い吸熱を呈する。この事象は、分解と同時に融解が起こったことに起因すると思われる。
以下では、SRR G−1カンシル酸塩 形態Aを生成するための750mgスケール手順を説明する。モル当量(0.9)未満、0.43gの(1S)−(+)−カンファー−10−スルホン酸を、0.86gのSRR G−1遊離塩基形態Aおよび酢酸エチル10mLで構成される懸濁液を含む容器に加え、少量の未溶解の固体を含む黄色の懸濁液を提供した。SRR G−1カンシル酸塩 形態Aの種晶を加え、懸濁液を超音波処理して即座に沈殿させた。試料をさらに約10分間超音波処理した後、およそ1時間放置してスラリー化した。白色固体を減圧濾過により回収し、2mLの酢酸エチルですすぎ、続いて室温で終夜減圧下に置いた。およそ0.75グラムのSRR G−1カンシル酸塩 形態Aを得た。
SRR G−1ナプシル酸塩 形態Aは、無水1:1化学量論的塩であり、194℃で見かけの融解を開始する。水性スラリーからのXRPDの結果に基づくと、塩の不均化は水中で起こる。
SRR G−1ナプシル酸塩 形態AのXRPDパターンでは、インデクシングに成功し、このことは、形態Aが主に単結晶相から構成されていることを示唆している(図32)。SRR G−1ナプシル酸塩 形態Aは、4つのSRR G−1カチオンおよび4つのナプシレートアニオンを収容することができる単斜晶系単位胞を有する。インデクシングの結果から計算された707.3Å3の式単位体積は、計算による密度が1.457g cm-3の無水形態に一致する。XRPDパターンには、4.4°(2θ)付近に、SRR G−1ナプシル酸塩 形態A、遊離塩基の既知の多形、またはナフタレン−2−スルホン酸に関連しない小さな弱いピークも含まれている。
SRR G−1ナプシル酸塩 形態Aについて観察されたXRPDピークを、表20に列挙する。
以下では、SRR G−1ナプシル酸塩 形態Aを生成するための600mgスケール手順を説明する。SRR G−1ナプシル酸塩 形態Aの種晶およびモル当量0.39gのナフタレン−2−スルホン酸を、0.73gのSRR G−1遊離塩基形態Aおよび9mLの酢酸エチルの懸濁液を含む容器に加えた。少量の未溶解固体を含む黄色の懸濁液を超音波処理し、白色の沈殿が起こった。スラリーをさらに約5分間超音波処理し、次に固体を減圧濾過により回収し、2mLの酢酸エチルですすぎ、室温にて終夜減圧下で乾燥させた。およそ0.63グラムのSRR G−1ナプシル酸塩 形態Aを得た。
YUMM1.7増殖アッセイ
YUMM1.7細胞を、解凍後少なくとも1回継代培養し、5%FBS(Invitrogen)および1%抗生物質−抗真菌剤(gibco)を含むDMEM中で37℃、5%CO2にて培養した。増殖アッセイは、15,000個の細胞を12ウェルプレートにプレーティングし、試験される条件ごとに5反復して実施した。培地および薬物を、2日目にリフレッシュした。4日目に、細胞を、0.25mlの0.05%トリプシンをEDTA(Invitrogen)と共に使用して5分間トリプシン処理してプレートから分離し、0.75mlの培養培地と混合し、血球計算盤を使用して計数した。
前臨床ラットの薬物動態結果
ラットにおけるSRR G−1遊離塩基、SRR G−1ベシル酸塩、およびSRR G−1ナプシル酸塩の血漿濃度を、経口投与後に測定した。3匹の絶食した雄ラットを、10mg/kgSRR G−1遊離塩基、SRR G−1ベシル酸塩、またはSRR G−1ナプシル酸塩を0.5%ヒドロキシプロピルメチルセルロース、99.5%水中の懸濁液として経口送達させて処置した。SRR G−1投与の0.5、1、2、4、8、および24時間後に血漿を単離し、LC−MS/MSを使用して血漿濃度を測定した。結果をそれぞれ表22〜24に示す。このデータのグラフ表示を図35〜37に示す。図38は、3つの結果すべての比較を示す。
SRR G−1およびRSS G−1のADME毒性
ADME−Tox:インビトロ吸収
薬物トランスポーター(蛍光分析による阻害)
対照のパーセントは、以下の式を使用して計算した。阻害のパーセントは、100から対照のパーセントを差し引くことによって計算した。IC50値(対照値の50%阻害をもたらす濃度)を、ヒルの式を使用した濃度反応曲線の非線形回帰分析によって決定した。
シトクロムP450阻害(HPLC−UV/VISおよびHPLC−MS/MS検出)
各基質の代謝産物に対応するピーク面積を記録した。次に、対照活性のパーセントを、試験化合物の存在下で得られたピーク面積を試験化合物の非存在下で得られたピーク面積と比較することによって計算した。続いて、阻害パーセントは、各化合物の100から対照活性パーセントを差し引くことによって計算した。IC50値(対照値の50%阻害をもたらす濃度)を、ヒルの式曲線フィッティングを使用した濃度反応曲線の非線形回帰分析によって決定した。
トランスポーター阻害結果 − 10μMのSRR G−1またはRSS G−1を用いてアッセイした場合、以下のトランスポーターは50%を超えて阻害された。SRR G−1の場合:OATP1B1 82.5%。RSS G−1の場合:OCT2 − 53.2%、OATP1B1 − 91.2%、およびOATP1B3 − 74.3%。
シトクロムP450誘導結果 − 3つの異なるヒト細胞株からの肝細胞を、SRR G−1またはRSS G−1と共に1μM、10μM、および100μMでインキュベートした。SRR G−1の場合:CYP1A2は、3つの細胞株のうち1つのみにおいて1μMと10μMの両方で誘導され、CYP3A4は、3つの細胞株のうち2つにおいて10μMのみで誘導された。RSS G−1の場合:CYP1A2は、3つの細胞株のうち2つにおいて10μMと100μMの両方で誘導された。
オフターゲット選択性アッセイ
GPCR cAMP調節
細胞処理 − cAMP Hunter細胞株を、標準手順に従って冷凍庫ストックから拡大させた。細胞を、総量20μmで白色壁の384ウェルマイクロプレートに播種し、試験前に適切な時間で37℃にてインキュベートした。cAMP調節を、DiscoverX HitHunter cAMP XS+アッセイを使用して測定した。
Gsアゴニストフォーマット − アゴニスト測定のために、細胞を試料と共にインキュベートして、応答を誘導した。培地を細胞から吸引し、15μLの2:1 HBSS/10mM Hepes:cAMP XS+ Ab試薬と交換した。試料ストックの中間希釈を実施して、アッセイ緩衝液中の4×試料を生成した。4.5μLの4×試料を細胞に加え、37℃または室温で30または60分間インキュベートした。最終アッセイビヒクル濃度は1%であった。
アンタゴニストフォーマット − アンタゴニスト測定のために、細胞を試料と共にプレインキュベートし、続いてEC80濃度でアゴニストチャレンジを行った。培地を細胞から吸引し、10μLの1:1 HBSS/Hepes:cAMP XS+ Ab試薬に交換した。5μLの4×化合物を細胞に加え、37℃または室温で30分間インキュベートした。4.5μLの4×EC80アゴニストを細胞に加え、37℃または室温で30または60分間インキュベートした。Gi共役型GPCRの場合、EC80フォルスコリンが含まれていた。
シグナル検出 − 適切な化合物のインキュベーション後、20μLのcAMP XS+ ED/CL溶解カクテルとの1時間のインキュベーション、続いて20μLのcAMP XS+ EA試薬との室温での3時間のインキュベーションによってアッセイシグナルを生成した。化学発光シグナル検出のためにPerkinElmer Envision(商標)装置を使用して、シグナル生成後にマイクロプレートを読み取った。
細胞処理 − 細胞株を、標準手順に従って冷凍庫ストックから拡大させた。細胞(10,000細胞/ウェル)を、総量50μL(200細胞/L)で黒色壁の透明底ポリ−D−リシンコーティング384ウェルマイクロプレートに播種し、試験前に適切な時間で37℃にてインキュベートした。すべての読み出しのDMSO濃度は≦0.2%である。
色素ローディング−アッセイを、HBSS/20mM Hepes中の1×色素(DiscoverX、カルシウムNo WashPLUSキット、カタログ番号90−0091)、1×添加剤A、および2.5mM プロベネシドからなる1×色素ローディング緩衝液で実施した。プロベネシドを、新たに調製した。試験前に、細胞に色素を添加した。培地を細胞から吸引し、25μLの色素ローディング緩衝液と交換した。細胞を、37℃で45分間、次に室温で20分間インキュベートした。
アンタゴニストフォーマット − 細胞を試料と共にプレインキュベートし、色素を添加し、FLIPR Tetra(MDS)に移し、次いで、EC80濃度のアゴニストでチャレンジを行った。カルシウム動員を2分間監視し、5秒ベースラインを読み取った。
細胞処理 − PathHunter NHR細胞株を、標準手順に従って冷凍庫ストックから拡大させた。細胞を、総量20μLで白色壁の384ウェルマイクロプレートに播種し、試験前に適切な時間で37℃にてインキュベートした。アッセイ培地には、存在するホルモンのレベルを下げるために、チャコール−デキストラン濾過を行った血清が含まれていた。
アゴニストフォーマット − アゴニスト測定のために、細胞を試料と共にインキュベートして、応答を誘導した。試料ストックの中間希釈を実施して、アッセイ緩衝液中の5×試料を生成した。3.5μLの5×試料を細胞に加え、37℃または室温で3〜16時間インキュベートした。最終アッセイビヒクル濃度は1%であった。
シグナル検出 − アッセイシグナルを、12.5または15μL(50%体積/体積)のPathHunter検出試薬カクテルの単回添加、続いて室温での1時間のインキュベーションによって生成した。化学発光シグナル検出のためにPerkinElmer Envision(商標)装置を使用して、シグナル生成後にマイクロプレートを読み取った。
タンパク質発現 − ほとんどのアッセイにおいて、キナーゼタグ付きT7ファージ株を、24ウェルブロック内でBL21株由来の大腸菌宿主において並行して増殖させた。大腸菌を、対数増殖期まで増殖させ、凍結ストックからのT7ファージに感染させ(感染多重度=0.4)、溶解するまで32℃で振とうしながらインキュベートした(90〜150分)。溶解液を遠心分離(6,000×g)し、濾過(0.2μm)して細胞破片を除去した。残りのキナーゼをHEK−293細胞で産生させ、その後qPCR検出のためにDNAでタグ付けした。
捕捉リガンド産生 − ストレプトアビジンコーティング磁性ビーズを、ビオチン化小分子リガンドで室温にて30分間処理して、キナーゼアッセイ用のアフィニティ樹脂を生成させた。リガンド結合ビーズを過剰なビオチンでブロックし、ブロッキング緩衝液(SeaBlock(Pierce)、1% BSA、0.05% Tween20、1mM DTT)で洗浄して、非結合リガンドを除去し、非特異的ファージ結合を減少させた。
データ分析 − 応答計算パーセント
陰性対照=DMSO(100%対照)
陽性対照=対照化合物(0%対照)
対照のパーセントは、次の式を使用して応答パーセントに変換した:応答パーセント=(100−対照パーセント)。一次スクリーニングの場合、応答パーセントは0%または100%に制限され、計算による応答パーセントはそれぞれ負の値または100より大きい値を返した。
データ分析 − 結合定数(Kds)
結合定数(Kds)は、ヒルの式:
細胞処理 − 細胞株を、標準手順に従って冷凍庫ストックから拡大させた。細胞を、総量20μLで黒色壁の透明底ポリ−D−リシンコーティング384ウェルマイクロプレートに播種し、試験前に適切な時間で37℃にてインキュベートした。
色素ローディング−アッセイを、1×色素および該当する場合2.5mMプロベネシドからなる1×色素ローディング緩衝液で実施した。プロベネシドを、新たに調製した。試験前に、細胞に色素を添加した。細胞を、37℃で30〜60分間インキュベートした。
アゴニスト/オープナーフォーマット − アゴニスト測定のために、細胞を試料と共にインキュベートして、応答を誘導した。試料ストックの中間希釈を実施して、アッセイ緩衝液中で2〜5×試料を生成した。10〜25μLの2〜5×試料を細胞に加え、37℃または室温で30分間インキュベートした。最終アッセイビヒクル濃度は1%であった。
シグナル検出 − 化合物活性をFLIPR Tetra(MDS)で測定した。
データ分析 − 化合物活性を、CBISデータ分析スイート(ChemInnovation、CA)を使用して分析した。アゴニストモードアッセイの場合、活性百分率は、以下の式を使用して計算した:活性%=100%×(試験試料の平均RLU−ビヒクル対照の平均RLU)/(平均最大対照リガンド−ビヒクル対照の平均RLU)。アンタゴニストの場合、阻害百分率は、以下の式を使用して計算した:阻害%=100%×(1−(試験試料の平均RLU−ビヒクル対照の平均RLU)/(EC80対照の平均RLU−ビヒクル対照の平均RLU))。一次スクリーニングの場合、応答パーセントは0%または100%に制限され、計算による応答パーセントはそれぞれ負の値または100より大きい値を返した。
細胞処理 − 細胞株を、標準手順に従って冷凍庫ストックから拡大させた。細胞を、総量25μLで黒色壁の透明底ポリ−D−リシンコーティング384ウェルマイクロプレートに播種し、試験前に適切な時間で37℃にてインキュベートした。
ブロッカー/アンタゴニストフォーマット − 細胞プレーティングおよびインキュベーション後、培地を除去し、1×HBSS/0.1%BAS中の25μLの1×化合物を加えた。化合物を、細胞と共に37℃で30分間インキュベートした。
色素ローディング−アッセイを、1×色素、および1×HBSS/20mM Hepesからなる1×色素ローディング緩衝液で実施した。化合物のインキュベーション後、25μLの1×色素をウェルに加えた。細胞を、37℃で30〜60分間インキュベートした。
データ分析 − 化合物活性を、CBISデータ分析スイート(ChemInnovation、CA)を使用して分析した。ブロッカーモードアッセイの場合、阻害百分率は、以下の式を使用して計算した:阻害%=100%×(1−(試験試料の平均RLU−ビヒクル対照の平均RLU)/(陽性対照の平均RLU−ビヒクル対照の平均RLU))。一次スクリーニングの場合、応答パーセントは0%または100%に制限され、計算による応答パーセントはそれぞれ負の値または100より大きい値を返した。
酵素アッセイ
酵素調製物−酵素調製物を、種々のベンダーから調達した − AChE(R&D Systems)、COX1およびCOX2(BPS Bioscience)、MAOA(Sigma)、PDE3AおよびPDE4D2(Signal Chem)。
データ分析 − 化合物活性を、CBISデータ分析スイート(ChemInnovation、CA)を使用して分析した。酵素活性アッセイの場合、阻害百分率は、以下の式を使用して計算した:阻害%=100%×(1−(試験試料の平均RLU−ビヒクル対照の平均RLU)/(陽性対照の平均RLU−ビヒクル対照の平均RLU))。一次スクリーニングの場合、応答パーセントは0%または100%に制限され、計算による応答パーセントはそれぞれ負の値または100より大きい値を返した。
SRR G−1およびRSS G−1の両方について、10μMまでの濃度での用量反応フォーマットでの78のアッセイにおいて、潜在的なオフターゲットに対する選択性について試験した。SRR G−1のみについては、測定可能なIC50またはEC50は、カンナビノイド受容体1での2.5μM、HTR2Bでの8.2μM、OPRD1での0.87μM、およびOPRM1での6.68μMであった。RSS G−1のみについては、測定可能なIC50またはEC50は、カンナビノイド受容体1での3.1μM、ADRA2Aでの2.07μM、HTR1Aでの2.1μM、およびARでの4.76μMであった。
Claims (26)
- XRPD分析の証拠によると結晶性であるか、XRPD分析の証拠によると非晶質であるか、または結晶性材料および非晶質材料の混合物である、請求項1に記載の化合物。
- 1−((3aS,4R,9bR)−4−(6−ブロモベンゾ[d][1,3]ジオキソール−5−イル)−3a,4,5,9b−テトラヒドロ−3H−シクロペンタ[c]キノリン−8−イル)エタン−1−オン、またはその誘導体のキラル純度が、その反対のエナンチオマーを実質的に含まない、請求項1に記載の化合物。
- 1−((3aS,4R,9bR)−4−(6−ブロモベンゾ[d][1,3]ジオキソール−5−イル)−3a,4,5,9b−テトラヒドロ−3H−シクロペンタ[c]キノリン−8−イル)エタン−1−オンの形態が、ピークが、2θ(±0.20)度単位において約5.75、約20.54、約20.71、約21.25、および約21.86で表されるXRPDパターンを特徴とする結晶形態A;ピークが、2θ(±0.20)度単位において約13.98、約15.44、約19.67、約21.55、および約22.05で表されるXRPDパターンを特徴とする結晶形態B;ピークが、2θ(±0.20)度単位において約10.73、約12.77、約13.49、約16.09、および約20.60で表されるXRPDパターンを特徴とする結晶形態C、から選択されるか、非晶質であるか、またはそれらの組み合わせ、である、請求項1に記載の化合物。
- 1−((3aS,4R,9bR)−4−(6−ブロモベンゾ[d][1,3]ジオキソール−5−イル)−3a,4,5,9b−テトラヒドロ−3H−シクロペンタ[c]キノリン−8−イル)エタン−1−オンの結晶形態が、ピークが、2θ(±0.20)度単位において約5.75、約20.54、約20.71、約21.25、および約21.86で表されるXRPDパターンを特徴とする結晶形態A;ピークが、2θ(±0.20)度単位において約13.98、約15.44、約19.67、約21.55、および約22.05で表されるXRPDパターンを特徴とする結晶形態B;ピークが、2θ(±0.20)度単位において約10.73、約12.77、約13.49、約16.09、および約20.60で表されるXRPDパターンを特徴とする結晶形態C、またはそれらの組み合わせ、から選択される、請求項1に記載の化合物。
- 1−((3aS,4R,9bR)−4−(6−ブロモベンゾ[d][1,3]ジオキソール−5−イル)−3a,4,5,9b−テトラヒドロ−3H−シクロペンタ[c]キノリン−8−イル)エタン−1−オンの結晶形態が、ピークが、2θ(±0.20)度単位において約5.75、約20.54、約20.71、約21.25、および約21.86で表されるXRPDパターンを特徴とする結晶形態A、である、請求項5に記載の化合物。
- 1−((3aS,4R,9bR)−4−(6−ブロモベンゾ[d][1,3]ジオキソール−5−イル)−3a,4,5,9b−テトラヒドロ−3H−シクロペンタ[c]キノリン−8−イル)エタン−1−オンの結晶形態が、ピークが、2θ(±0.20)度単位において約5.75、約9.56、約10.53、約17.03、約20.54、約20.71、約21.25、約21.86、約24.67、および約28.06で表されるXRPDパターンをさらに特徴とする結晶形態A、である、請求項6に記載の化合物。
- 1−((3aS,4R,9bR)−4−(6−ブロモベンゾ[d][1,3]ジオキソール−5−イル)−3a,4,5,9b−テトラヒドロ−3H−シクロペンタ[c]キノリン−8−イル)エタン−1−オンの結晶形態が、ピークが、2θ(±0.20)度単位において約5.75、約9.56、約10.53、約10.81、約13.02、約14.66、約14.79、約16.23、約17.03、約20.54、約20.71、約21.25、約21.86、約24.67、および約28.06で表されるXRPDパターンをさらに特徴とする結晶形態A、である、請求項7に記載の化合物。
- その誘導体が、塩または共結晶である、請求項1に記載の化合物。
- その誘導体が、ベンゼンスルホン酸を用いて、(1S)−(+)−カンファー−10−スルホン酸を用いて、エタン−1,2−ジスルホン酸を用いて、塩酸を用いて、メタンスルホン酸を用いて、ナフタレン−2−スルホン酸を用いて、ナフタレン−1,5−ジスルホン酸を用いて、硫酸を用いて、p−トルエンスルホン酸を用いて、またはそれらの組み合わせを用いて形成された塩または共結晶から選択される、請求項1に記載の化合物。
- その誘導体が、ベンゼンスルホン酸を用いて形成された塩または共結晶である、請求項10に記載の化合物。
- その誘導体が、(1S)−(+)−カンファー−10−スルホン酸を用いて形成された塩または共結晶である、請求項10に記載の化合物。
- その誘導体が、ナフタレン−2−スルホン酸を用いて形成された塩または共結晶である、請求項10に記載の化合物。
- 治療有効量の請求項1に記載の化合物、薬学的に許容される担体、アジュバント、またはビヒクルを含む医薬組成物。
- 治療有効量の請求項1に記載の化合物、化粧品として許容される担体、アジュバント、またはビヒクルを含む化粧品組成物。
- それを必要とする対象における疾患または障害を処置または予防する方法であって、治療有効量の請求項1に記載の化合物またはその誘導体を対象に投与することを含む方法。
- 疾患または障害が、がん、子宮内膜炎、前立腺炎、多嚢胞性卵巣症候群、尿失禁、ホルモン関連障害、聴覚障害、ほてり、多汗症、高血圧、脳卒中、虚血、心筋梗塞、拡張型心筋症、肥満、インスリン抵抗性、骨粗鬆症、アテローム性動脈硬化症、更年期障害の症状、炎症、関節リウマチ、変形性関節症、リンパ増殖性疾患、骨髄増殖性疾患、好酸球増加症、組織球増殖症、発作性夜間ヘモグロビン尿症、全身性肥満細胞症、静脈血栓症、塞栓症、うつ病、不眠症、不安、神経障害、多発性硬化症、パーキンソン病、アルツハイマー病、炎症性腸疾患、クローン病、セリアック病、タンパク尿性腎疾患、血管疾患、および胸腺萎縮、からなる群から選択される、請求項16に記載の方法。
- 性交後の妊娠の可能性を予防または低減する方法であって、治療有効量の請求項14に記載の医薬組成物を対象に投与することを含む方法。
- 対象がヒトまたは動物である、請求項16に記載の方法。
- それを必要とする対象における2型糖尿病を処置または予防する方法であって、治療有効量の請求項1に記載の化合物またはその誘導体を対象に投与することを含む方法。
- がんが、生殖がん、ホルモン依存性がん、白血病、大腸がん、前立腺がん、乳がん、卵巣癌、子宮内膜がん、子宮癌肉腫、胃がん、直腸がん、肝臓がん、膵臓がん、肺がん、子宮がん、子宮頸がん、子宮頚がん、子宮体がん、卵巣がん、精巣がん、膀胱がん、腎臓がん、脳/CNSがん、頭頸部がん、咽頭がん、ホジキン病、非ホジキンリンパ腫、B細胞リンパ腫、T細胞リンパ腫、ブドウ膜黒色腫、トリプルネガティブ乳がん、多発性骨髄腫、黒色腫、急性白血病、リンパ性白血病、有毛細胞白血病、急性骨髄性白血病、ユーイング肉腫、小細胞肺がん、非小細胞肺がん、絨毛癌、横紋筋肉腫、ウィルムス腫瘍、神経芽細胞腫、口腔/咽頭のがん、食道のがん、喉頭のがん、腎臓がん、リンパ腫、バーキットリンパ腫、肉腫、血管肉腫、膠芽腫、髄芽腫、星状細胞腫、およびメルケル細胞癌、からなる群から選択される、請求項17に記載の方法。
- それを必要とする対象における皮膚色素沈着を増加させる、または皮膚色素沈着の喪失を予防するまたは好転させる方法であって、治療有効量の請求項1に記載の化合物またはその誘導体を対象に投与することを含む方法。
- それを必要とする対象における皮膚保護の方法であって、治療有効量の請求項1に記載の化合物またはその誘導体を、対象に投与することを含む方法。
- 抗肥満剤、免疫療法剤、化学療法剤、標的キナーゼ阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ阻害剤、抗感染症剤、ブロモドメイン阻害剤、およびそれらの組み合わせ、からなる群から選択される1つまたは複数の追加の治療剤をさらに含む、請求項1に記載の化合物またはその誘導体。
- 疾患もしくは障害を引き起こしている、または疾患もしくは障害に関与しているがんまたは細胞が、GPERを発現する、請求項17に記載の方法。
- それを必要とする対象における、がんを処置または予防する、がんの再発を予防する、またはがんの進行を阻害する方法であって、治療有効量の請求項1に記載の化合物またはその誘導体を対象に投与することを含む方法。
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