JP2022526926A - イミダゾロニルキノリン化合物およびそれらの治療への使用 - Google Patents
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Abstract
本発明は、ATM阻害剤8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5c]キノリン-2-オンのアトロプ異性体、固体形態、塩形態、および重水素化誘導体、ならびにそれらの医薬組成物に、関する。安定なアトロプ異性体は、相互転換をせず、以下の式によって表される:
Description
発明の分野
本発明は、ATM阻害剤8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(3-フルオロ-5-メトキシピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5c]キノリン-2-オンのアトロプ異性体および重水素化誘導体、ならびにそれらの薬学的に許容し得る塩および固体形態を、提供する。これらの化合物は、TMキナーゼによるシグナル伝達の阻害、制御、および/または調節において、有用である。本発明は、本発明の前記アトロプ異性体、固体形態、薬学的に許容し得る塩、および重水素化誘導体を含む組成物、ならびにATMキナーゼに関する様々な障害、とりわけがんの処置において、これらの組成物を使用する方法も、提供する。
本発明は、ATM阻害剤8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(3-フルオロ-5-メトキシピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5c]キノリン-2-オンのアトロプ異性体および重水素化誘導体、ならびにそれらの薬学的に許容し得る塩および固体形態を、提供する。これらの化合物は、TMキナーゼによるシグナル伝達の阻害、制御、および/または調節において、有用である。本発明は、本発明の前記アトロプ異性体、固体形態、薬学的に許容し得る塩、および重水素化誘導体を含む組成物、ならびにATMキナーゼに関する様々な障害、とりわけがんの処置において、これらの組成物を使用する方法も、提供する。
発明の背景
セリン/トレオニンタンパク質キナーゼATM(血管拡張性失調症突然変異キナーゼ)は、触媒ドメインを伴うキナーゼのPIKKファミリーに属し、それは、ホスホ-イノシチド-3キナーゼ(PI3キナーゼ、PI3K)に相同性を有する。これらのキナーゼは、細胞成長、細胞増殖、遊走、分化、生存、および細胞接着などの、様々な鍵となる細胞の機能に関わる。とりわけ、これらのキナーゼは、細胞周期停止およびDNA修復プログラム(DDR:DNA損傷応答)を活性化することによって、DNA損傷に応答する。ATMは、ATM遺伝子の生成物であり、相同性の遺伝子組換えおよび非相同性のエンドツーエンドの連結(NHEJ)によって、DNA二本鎖への損傷(DSB:二本鎖切断)における修復において、鍵となる役割を果たす。このタイプの二本鎖の損傷は、とりわけ細胞障害性である。
セリン/トレオニンタンパク質キナーゼATM(血管拡張性失調症突然変異キナーゼ)は、触媒ドメインを伴うキナーゼのPIKKファミリーに属し、それは、ホスホ-イノシチド-3キナーゼ(PI3キナーゼ、PI3K)に相同性を有する。これらのキナーゼは、細胞成長、細胞増殖、遊走、分化、生存、および細胞接着などの、様々な鍵となる細胞の機能に関わる。とりわけ、これらのキナーゼは、細胞周期停止およびDNA修復プログラム(DDR:DNA損傷応答)を活性化することによって、DNA損傷に応答する。ATMは、ATM遺伝子の生成物であり、相同性の遺伝子組換えおよび非相同性のエンドツーエンドの連結(NHEJ)によって、DNA二本鎖への損傷(DSB:二本鎖切断)における修復において、鍵となる役割を果たす。このタイプの二本鎖の損傷は、とりわけ細胞障害性である。
ヒトの腫瘍の主な特色の1つは、ほとんどのがんにおいてまだ公知でないDNA修復機構の特定の欠陥を伴う、それらのゲノム不安定性である。この不安定性は、化学治療のための治療開始点を表し、それは、しばらくの間優先して実践された。加えて、下層の遺伝因子が、DNA二本鎖の損傷への応答を調節する遺伝子の機能関連突然変異の喪失である、いくつかの症候群がある。これは、血管拡張性失調症を含み、それは、不完全なATM遺伝子によって引き起こされる。すべてのこれらの症候群の一般的な特色は、それらが、極度の放射線感受性を引き起こすことである(Lavin & Shiloh (1997) Annu. Rev. Immunol. 15: 177; Rotman & Shiloh (1998) Hum. Mol. Genet. 7: 1555,その全体は、本明細書に参照によって組み込まれる)。従って、ATM欠損細胞は、DNA二重螺旋への損傷を引き起こす剤および他の手段に、感受性であり、ATMを、がん処置における化学-、および放射線-感受性のための魅力的な標的とさせる。
要約すると、ATM(血管拡張性失調症突然変異キナーゼ)は、DNA二本鎖切断修復の鍵の制御因子であり、それは、広く使用される放射-および化学治療によって誘導される。ATMは、広範囲にわたるシグナルを、p53を含む下流のエフェクターの多数にリレーする。修復されてない二本鎖切断は、チェックポイント応答の活性化、細胞周期停止、および最終的に腫瘍細胞死につながる。よって、ATMは、誘導された二本鎖切断の修復を阻害するために魅力的な介入位置になった。
化合物ワートマニンは、まず最初にこの文脈において調査されるものの1つで、なかでも、ATMの阻害に起因することができる放射線増感作用を示した。しかしながら、それは、in vivo毒性に起因して、治療の使用のために好適でなかった。PI3K阻害剤LY294002の化学物質構造から出発して、KuDOS Pharmaceuticalsは、ATM阻害剤:Ku-55933(2-モルホリノ-6-(チアントレン-1-イル)-4H-ピラン-4-オン)を同定した。この化合物によって、電離放射線およびDNA二本鎖損傷化学療法剤に対する感受性は、達成された(Hickson, I., et al. (2004), Cancer Res 64, 9152-9159、その全体が、本明細書に参照によって組み込まれる)。しかしながら、Ku-55933は、おそらくその高い親油性に起因して、in vivoの使用に関して不適当であるとわかった。Ku-60019(2-((2S,6R)-2,6-ジメチルモルホリノ)-N-(5-(6-モルホリノ-4-オキソ-4H-ピラン-2-イル)-9H-チオキサンテン-2-イル)-アセトアミド)およびKu-559403(2--(4-メチルピペラジン-1-イル)N-アセトアミド[5-チオキサンテン-(6-モルホリノ-4-オキソピラン-2-イル)2-イル])が、続いて開発され、そして、Ku-559403は、進行固形腫瘍の処置のための臨床試験に入るのに十分な見込みがあり歓迎された。
放射線治療との組み合わせに関わる臨床試験を含む、臨床開発に現在あるという点で上記の考えを支持するATM阻害剤、例えばAZD0156、AZD1390、およびM3541が、さらにある。
多くの進展が、ATM阻害剤の分野においてなされてきた一方で、ATMキナーゼの高い阻害力のみでなく、他のキナーゼをしのぐ有利な選択性、有利な生物学的利用率、および/または減少されたオフターゲット効果も有する化合物を提供するための必要性が、残っている。
ATMキナーゼによるシグナル伝達を効果的に阻害し、規制しおよび/または、調節する小分子の提供は、所望され、本発明の1つの目的である。選択的である、すなわち他のキナーゼに対して全くないまたは有意により低い活性を有するATM阻害剤を提供することが、さらにその上所望される。望ましくない副作用を引き起こす公知の標的に関して、有利な特性を示すATMi阻害剤を提供することが、さらにその上所望される。1つの目的は、それゆえ、オフターゲット効果よび/または関連する毒性を減少させる化合物を、提供することである。さらにその上、良好な生物学的利用率を伴うATM阻害剤を提供することが、本発明の目的である。好都合に低い吸湿性および/または他の物理的特性などの、有利な固体形態特性を伴うATM阻害剤を提供することが、さらなるまたは代替の本発明の目的である。
概説された上記およびさらなる目的としての少なくとも1つの目的は、ATM阻害剤8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(3-フルオロ-5-メトキシピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5c]キノリン-2-オン(化合物Y)のアトロプ異性体および重水素化誘導体固体形態、ならびにそれらの薬学的に許容し得る塩および組成物によって解決された。
別の側面は化合物1、とりわけ化合物1のフマラート、化合物1のエジシラート、および化合物1のナプシラートの特定のとりわけ有利な薬学的に許容し得る塩に関し、それは、以後「化合物1-a」としてまとめて称されてもよい。
本発明の別の側面は、重水素化合物3、4、および5を提供し、それは、以下の式によって表される:
本発明の別の側面は、重水素化合物3、4、および5を提供し、それは、以下の式によって表される:
発明の詳細な説明
国際特許出願WO2016/155844は、その全体が、本明細書によって参照により組み込まれ、ATMキナーゼによってシグナル伝達を効果的に阻害し、規制し、および/または調節するイミダゾロニルキノリン化合物を記載する。
かかる化合物は、化合物Yを含む:
国際特許出願WO2016/155844は、その全体が、本明細書によって参照により組み込まれ、ATMキナーゼによってシグナル伝達を効果的に阻害し、規制し、および/または調節するイミダゾロニルキノリン化合物を記載する。
かかる化合物は、化合物Yを含む:
化合物Yは、WO2016/155844中の例4に明示され、(酵素および細胞のアッセイにおいて)PI3Kalpha、PI3Kbeta、PI3Kdelta、PI3Kgamma、およびmTORにわたるATMキナーゼの選択的阻害を立証する様々なアッセイおよび治療のモデルにおいて活性である。
化合物の定義のためにここで使用される用語は、一般に化学物質化合物およびとりわけ有機化合物のためのIUPAC組織のルールに基づく。
化合物の定義のためにここで使用される用語は、一般に化学物質化合物およびとりわけ有機化合物のためのIUPAC組織のルールに基づく。
驚くべきことに、化合物Yが2つのアトロプ異性体の形で存在し、それは、単離されることができ、そして有益に安定であり、そして、前記アトロプ異性体が、驚くべきおよびきわめて所望される特徴を呈することが、ここで、分かってきた。
一側面に従って、本発明は、以下の2つの化合物を提供し、それらは化合物Yのアトロプ異性体である:
・8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロ-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(化合物1)および
・8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロ-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(化合物1)および
・8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Ra)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロ-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(化合物2)、ならびにそれらの薬学的に許容し得る塩。
本明細書に使用されるとき用語「アトロプ異性体」が、キラル軸を構築する単結合周辺の制限された回転に起因して生じる立体異性体を指すことが、当業者によって認識されるだろう。前記単結合周辺の回転障壁が、単一のアトロプ異性体の単離ができるようにするために十分に高くなければならないことが、さらに認識されるだろう。前記回転障壁は、それにより前記単結合周辺で前記回転を制限する同じ分子の他の残基との立体相互作用から、例えば、結果として起こることができる。立体化学のおよび電子の因子は、効果を示し始めて、相互に補強してもまたは反対に作用してもよい。
不斉炭素原子を含有するキラル化合物の利用は、原則として、薬物発見において十分確立されている。とりわけ、2つのキラル化合物のラセミ混合物が、ラセミ混合物と比較して、通常1つのより活性なおよび1つのより活性でないエナンチオマーから成ることが当該技術分野において公知である。よって、2つの鏡像異性体のうちの1つのみの利用は、化合物の全体的な効力を改善するために有利であることができる。
しかしながら、アトロプ異性体は、単結合周辺の回転障害だけに起因して生じる立体異性体であり、その利用は、一般に望ましくないとみられる。これらの異性体の安定性は、前記単結合周辺での回転に対する障壁を構築する立体歪または他の因子から結果として起こるエネルギー差に依存するので、とりわけ、アトロプ異性体は、薬物発見における障害と一般にみなされる。不斉炭素原子から結果として起こるキラル化合物と対照的に、アトロプ異性体状態は、容易に予測されることができない。とりわけ、容易にアトロプ異性体の安定性を予測することは、一般に可能ではない。とりわけ、前記エネルギー障壁の高さは、2つの対応するアトロプ異性体の相互転換の時間を決定する。対応する他のアトロプ異性体への生物活性アトロプ異性体の相互転換は、このように、その生物活性を減少させることができて、オフターゲットまたは他の不必要な効果を導入することができる。それゆえ、十分に高いエネルギー障壁を所有する安定なアトロプ異性体だけが、薬物発見において好適でもよい。
驚くべきことに、アトロプ異性体化合物1および化合物2が、それぞれの他のアトロプ異性体に、10年より長い広範囲の期間の後さえ、(>10年の回転の半減期はコンピュータシュミレーションによって決定された)そして、室温を超える温度でさえ、大きく相互転換をしないことが分かった。
アトロプ異性体の逆転温度は、溶液中で100℃を超えることとして評価された。このきわめて良好な安定性は、実験的に確認されてきた。それは、それらのアトロプ異性体を、容易に医薬適用、製造、製剤化のために好適とし、十分な保存期間を提供する。
化合物1の絶対構造は、(2S,3S)-ジベンゾイル-D-酒石酸塩に基づいて、ならびに固体形態A2のX線回折から決定されており、それは、更に詳細に以下で記載されるだろう。化合物1の構造は、分光法(NMR、MS、IR、およびUV)、X線回折、元素分析、および旋光分析からの結果によって証明された。化合物1の1H-13C-および19F-NMRスペクトルは、図1~3において示され、UV-Vis-スペクトルは、図4において示される。化合物1の固体形態A2のXRPDは、図13に図示される。化合物-1-ジベンゾイル-D-タートラートの結晶構造およびXRPDは、図7AおよびBにおいて示され、化合物-2-ジベンゾイル-L-タートラートの結晶構造は、図8に図示される。
化合物1および2は、ATMキナーゼのきわめて強力な阻害剤である。
表1により図示されたとおり、化合物1は、化合物1および2の混合物である化合物Yと比較して、すべてのアッセイにおいてATM阻害の明らかに優れた値を有している:
表1により図示されたとおり、化合物1は、化合物1および2の混合物である化合物Yと比較して、すべてのアッセイにおいてATM阻害の明らかに優れた値を有している:
さらに、前記化合物は、mTOR(>30,000nm)、DNA-PK、および、最も注目すべきことに、ATRを含む、関連したキナーゼにわたってさえ選択的である。驚くべきことに、化合物1および2の両方とも、化合物Yと比較してより強力でないATRキナーゼの阻害剤であり、すなわち選択性の観点からより有利である。
化合物2が、ATM阻害が関する限り、化合物Yと異ならない一方で(s.表1)、上記の表2から明白なとおり、それは、ATRおよびDNA-PKの両方にわたってきわめて化合物Yより良好な選択性を有する。
本発明の化合物は、それゆえ、DNA二本鎖の損傷を特異的に標的とする、特定のDNA修復機構、とりわけ相同性の遺伝子組換えに選択的に取り組むために、とりわけ有利に使用されることができる。
選択的ATM阻害剤化合物1および2のさらなる利点は、毒性の軽減、とりわけオフターゲット効果に関して、および、このように、より高い化合物投薬量の忍容性である。それゆえ、本発明に従う化合物は、がん治療において、新しい可能性を開き、例えば、化合物1および2、最も好ましくは、化合物1は、標的とされた組み合わせ治療で使用されてもよく、例えば、強力なおよび選択的なATM阻害剤および強力なおよび選択的な他の阻害剤(例えばATR阻害剤)を含む。
概して、化合物1が、もっとも有利な、全体的な特性の組み合わせを有すると、わかった。驚くべきことに、それは、最良のATMを阻害する特性だけでなく、最良のミクロソームのクリアランス値および最も低いホスホジエステラーゼ(PDE)2A1ならびにPDE4A1AおよびPDE4D2の阻害をも有する。ホスホジエステラーゼ阻害自体は、様々な薬理効果と関連し、そして、PDE阻害剤は、ほんの少し例を挙げれば、うつ病、多発性硬化症、および慢性閉塞性肺疾患を含む多様な状況の処置のための医薬として利用可能であり、その全ては、この場合、オフターゲット効果を構成する。PDE4阻害は、悪心を誘導する危険と関連し、したがって、回避されるべきことも公知である。それゆえ、高いIC50値、すなわちこれらのオフターゲットの弱い阻害が、望ましい。以下の表3から明白な通りに、化合物1は、化合物Yのそれより約5倍高い因子であるPDE4阻害に関するIC50値を有する。
表4は、約80%の好都合に高い生物学的利用率およびCYPおよびhERG(心臓イオンチャネル)に関して好ましい特性を含む、化合物1のさらなる有利なパラメータを図示し、後者は、心臓Kv11.1hERGイオンチャネルとの安全性関連の相互作用が予想されないことを指し示す。
驚くべきことに、化合物1および2の両方が、化合物Yと比較して、生物学的緩衝液において有意に改善された溶解性を示すことが(下の表5を参照)、さらに分かった。化合物1の予測された遅いヒト血漿クリアランスおよび高い生物学的利用率は、適切な低い用量要件に寄与する。
化合物1または2に関して描かれる構造は、1以上の同位体濃縮原子の存在下でだけ異なる化合物を含むことを意味する。例えば、H、C、Nは、これらの原子のより重い同位体をそれぞれの場合においても含む。これは、とりわけHに、ここで、重水素またはトリチウムが、有利に用いられることができるが、および本発明の範囲内でもある、13Cまたは14Cが豊富な炭素による炭素の置換に、適用される。特定の好ましい実施例において、同位体濃縮原子は、使用されず、その代わりに、原子は、同位体分布に関して、それらの天然に存在する形態において、使用される。
本発明に従う化合物または塩に対する言及は、溶媒和した形態、すなわちそれらの溶媒和物、それは遊離形態または塩の両方の媒和物を意味するが、それらも包含するとみなされるだろう。溶媒和物は、それらの相互の引力によって形成する化合物上の不活性溶媒分子の付加生成物を意味すると、とられる。溶媒和物は、例えば、モノ-または二水和物、または、アルコラートである。溶媒和物の例示的態様は、以下でさらに詳細に開示される。
上に提示されるとおり、本発明は、2つの安定なアトロプ異性体、化合物1および2を提供する。これらの2つのアトロプ異性体の調製は、後で詳しく述べるように、分離および精製技法に典型的に基づく。当業者は、これが、完全に純粋な生成物を産生しなくてもよいと、認識する。しかしながら、本発明は、化合物2が実質的にない化合物1および化合物1が実質的にない化合物2を提供する。本文脈における「実質的にない」は、実質的に純粋な化合物1が、化合物2またはその塩の多くても20重量%、好ましくは、多くても15重量%、より好ましくは、多くても10重量%、例えば、多くても5重量%、多くても2.5重量%、多くても1重量%、多くても0.5%、または化合物2またはそれらの塩の多くても0.1重量%を含有してもよく、100%に対する残りが、化合物1で構成されることを、好ましくは意味するだろう。
一の実施例において、実質的に純粋な化合物1は、99重量%の化合物1および1重量%の化合物2からなってもよい。逆もまた同じく、化合物2に対しても同様であり、すなわち化合物1が実質的にない化合物2は、純粋な化合物2が、化合物1のために開示される好ましい範囲が、(逆もまた同じく)類似によって等しく適用できるとともに、化合物1またはその塩の多くても20重量%を含有してもよいことを、好ましくは意味するだろう。また、化合物1またはその塩、それぞれ化合物2またはその塩に対する言及は、たとえ具体的に言及されなくとも、さもなければ明示的に記載されないとしても、さらに以下の本明細書に開示されたものなどのすべての溶媒和物および固体形態を含むだろう。
他の態様において、本発明は、不純物が実質的にない化合物1または2を提供する。本明細書に使用されるとき、用語「実質的に、不純物がない」は、該化合物が、異物のいかなる有意な量も、含有しないだろうことを意味する。かかる異物は、残留する化合物1またはその塩、残留する化合物2またはその塩、残留溶媒、または結果として化合物1または2の調製、および/または単離から生じてもよい他のいかなる不純物を、含んでもよい。ある態様において、化合物1は、わずか30重量%の異物、化合物1によって構成される100重量%に対する残りを、好ましくはわずか25重量%、わずか20重量%、わずか15重量%、わずか10重量%、わずか7.5重量%、わずか5重量%、わずか1重量%、わずか0.5重量%またはわずか0.1重量%含有してもよい。
同じ例示的態様は、類似によって、化合物2に有効である。また、前のとおり、化合物1またはその塩、それぞれ化合物2またはその塩に対する言及は、さもなければ明示的に記載されないとしても、さらに以下の本明細書に開示されたものなどのすべての溶媒和物および固体形態を含むだろう。
別の態様に従い、それぞれ化合物1または2は、HPLCクロマトグラムの全面積と比較して、全有機不純物のわずか約5.0面積パーセントHPLCおよび、特定の態様において、全有機不純物のわずか約3.0面積パーセントHPLCおよび、特定の態様において、全有機不純物のわずか1.5面積パーセントHPLCを含有する。他の態様において、化合物1または2は、HPLCクロマトグラムの全面積と比較して、いずれかの単一不純物のわずか約1.0面積パーセントHPLC;いずれかの単一不純物のわずか約0.6面積パーセントHPLC、および、特定の態様において、いずれかの単一不純物のわずか約0.5面積パーセントHPLCを含有する。実例として、HPLCクロマトグラムのために、それぞれのアトロプ異性体の純度の分析のための例3.3において記載される方法は、使用されてもよい。あらためて、化合物1またはその塩、それぞれ化合物2またはその塩に対する言及は、特に明示的に記載されないとしても、さらに以下の本明細書に開示されたものなどのすべての溶媒和物および固体形態を含むだろう。
別の態様に従い、本発明は、化合物1またはその薬学的に許容し得る塩の有効量を含む医薬組成物を、提供する。代替態様において、医薬組成物は、化合物2またはそれらの薬学的に許容し得る塩の有効な量を含む。別の態様に従い、本発明は、本明細書に記載されるかかる組成物を調製する方法を提供する(例えば、化合物1または2どちらかの有効量を含むことができる組成物)。化合物1または2に対する言及は、それぞれの他のアトロプ異性体のいかなる量も、それぞれの他のアトロプ異性体が「実質的にない」、「不純物が実質的にない」、または不純物の全量のそれぞれの定義と調和してそれに達することができるように、すなわち別に存在するよりもむしろ、前述の化合物の量に加算されるように、本文脈において読みとられるだろう。同様が、それぞれの塩に対しても、適用される。前に掲示されるように、化合物1または2またはそれらの塩に対する言及は、特に明示的に記載されないとしても、さらに以下の本明細書に開示されたものなどのすべての溶媒和物および固体形態を含むだろう。例示的態様において、化合物1は、その遊離、すなわち非塩形態において医薬組成物中に含有される。
依然として他の態様は、本明細書に記載のとおり、化合物または組成物それぞれの医薬組成物またはその薬学的に許容し得る塩を使用して、がんを処置する方法を、提供する。別の態様によれば、本発明は、がんを処置するための薬物の製造における、本発明に従う化合物、その薬学的に許容し得る塩、または(医薬)組成物の使用を提供する。別の態様において、本発明は、本明細書に記載のとおり、薬物として使用するための、とりわけがんの処置のための、化合物または医薬組成物を提供する。あらためて、化合物またはその塩に対する言及は、特に明示的に記載されないとしても、さらに以下の本明細書に開示されたものなどの、それらの化合物または塩の、すべての溶媒和物または固体形態を含むだろう。
遊離形態および塩
本発明に従う化合物は、すなわち上の式で示すように、それらの遊離形態において使用されることができる。実例として、化合物1の遊離形態が、とりわけ有益であり、そして、その例示的な固体形態が、好ましい固体形態を含むことがわかり、以下により詳細に記載されるだろう。
本発明に従う化合物は、すなわち上の式で示すように、それらの遊離形態において使用されることができる。実例として、化合物1の遊離形態が、とりわけ有益であり、そして、その例示的な固体形態が、好ましい固体形態を含むことがわかり、以下により詳細に記載されるだろう。
他方で、本発明は、それらの薬学的に許容し得る塩の形でこれらの化合物の使用を包含し、それは、当該技術分野において公知の手順によって、様々な有機のおよび無機の酸から導かれることができる。本発明に従う化合物の好適な薬学的に許容し得る塩は、従来の方法によって調製されることができる。本発明に従う化合物は、例えばTHFまたはアセトンなどの好適な溶媒中での、化合物および同等物または過剰な量の酸の反応により、つづく、このようにして形成された飽和溶液の冷却結晶化によって、酸を使用して、関連する酸付加塩に転換されることができる。あるいは、抗溶剤結晶化または蒸発結晶化が、用いられてもよい。
本発明に従う化合物の好適な薬学的に許容し得る塩の例、とりわけ化合物1は、HCl塩、硫酸塩、トシル酸塩、ベシル酸塩、乳酸塩、とりわけL-乳酸塩を含む。
化合物1の好ましい塩は、フマラート塩、ナプシラート塩およびエジシラート塩を含み、それらは、以下の化合物1aとしてまとめて称されてもよい。
化合物1の好ましい塩は、フマラート塩、ナプシラート塩およびエジシラート塩を含み、それらは、以下の化合物1aとしてまとめて称されてもよい。
化合物1のナプシラートは、ナフタレンスルホニック酸およびTHFまたはアセトンのどちらかを溶媒として使用して、化合物1から、調製されることができる。良好な結晶化度が、得られた。化合物1:ナプシラートの好ましい比率は、約1:1である。
化合物1のエジシラートは、アセトンから冷却結晶化をして、エタンジスルホニック酸を使用して、得られることができる。化合物1:ナプシラートの好ましい比率は、約1:1である。良好な結晶化度が、得られた。
化合物1のフマラートは、抗溶剤としてn-ペンタンを、および酸としてフマル酸を使用して、THF中で抗溶媒蒸気拡散によって、得られることができる。化合物1:フマラートの比率は、約1:0.9であると示された。結果として生じる塩は、きわめて好ましい全体的な物理的特性および良好な結晶化度を有する。フマラート塩は、部分的には、望ましい吸湿性特性の非存在に起因する塩の間の、好ましい態様である。
本発明に従う化合物1のフマラート、ナプシラート、およびエジシラートの塩を調製する好適な方法の詳細な例は、例5において開示される。
本発明に従う化合物1のフマラート、ナプシラート、およびエジシラートの塩を調製する好適な方法の詳細な例は、例5において開示される。
化合物1のこれらの塩が、親化合物1より速い最初の溶解速度を示すことが、分かった。化合物1およびその特定の塩のFaSSIF緩衝液溶液(pH6.5)中のnon-sink溶解挙動は、図9において例示的に描かれる。
有利な溶解挙動を伴う塩は、化合物1のエジシラート、化合物1のフマラート、および化合物1のナプシラートである。親化合物1は、様々な結晶および溶媒和物の形態の混合物の形で使用された。酸および化合物1からのアニオン性部分が、イオンによって結合され、化合物1-aを形成することが、当業者によって認識される。化合物1-aが、様々な物理的形態において存在することができることが、企図される。例えば、化合物1-aは、溶液、懸濁液中で、または、固体形態において、あることができる。ある態様において、化合物1-aは、固体形態にある。化合物1-aが、固体形態にある場合に、前記化合物は、アモルファス、結晶、またはそれらの混合物でもよい。本明細書に使用されるとき、用語「多形体」は、化合物またはその塩が結晶することができる種々の結晶構造を、指す。
いくつかの態様において、化合物1-aは、アモルファス化合物1-aが実質的にない結晶固体である。本明細書に使用されるとき、用語「実質的に、アモルファス化合物1-aがない」は、塩が、著しい量のアモルファス化合物1-aを含有しないことを意味する。ある態様において、少なくとも約90重量%の結晶性化合物1-aが、存在し、または、少なくとも約95重量%の結晶性化合物1-aが、存在する。依然として本発明の他の態様において、少なくとも約99重量%の結晶性化合物1-aが、存在する。これらのパーセンテージは、化合物1-aの絶対重量(100重量%)と関連する。
例示の態様において、本発明は、実質的に図10において描かれるものに合致する粉末X線回折パターンによって特徴づけられ、および/または、以下についてそれらから選択される、その粉末X線回折パターンにおける1以上のピークによって特徴づけられる、化合物1のフマラートの固体形態を提供する。
化合物1のフマラート塩は、無水である。その固体形態は、フマラート-NF6として称されてもよい。フマラート-NF6のDSC加熱曲線、TGA加熱曲線、およびDVS水取り込み等温曲線(25℃)は、図31、32、および33において描かれる。non-sink溶解測定からの結果は、下の表において提供される(pH6.5でのFaSSIFにおけるnon-sink溶解データ、実験的部分において記載される方法):
本明細書に使用されるとき、用語「約」は、2-シータ値に関して使用される場合に、明示された値±0.3度2-シータ(°2θ)を指す。ある態様において、「約」は、±0.2度2-シータまたは±0.1度2-θ、もっとも好ましくは±0.2度2-シータを指す。
本明細書に記載のいずれかの固体形態の多形体は、それぞれ、XRDまたはXRPDピークの1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20以上(°2θ)によって、特徴づけられてもよい。本明細書に記載のいずれかの固体形態の多形体は、それぞれ、少なくとも6XRDピーク(°2θ、好ましくは±0.2°2θ)によって、好ましくは特徴づけられる。固体形態の多形体の特徴づけのための好ましいピークは、それぞれ、それぞれのピークリストにおいて、太字の印字および星印で指し示される。
さらなる例示の態様において、本発明は、実質的に図11において描かれるものに合致する粉末X線回折パターンによって特徴づけられ、および/または、以下についてそれらから選択される、その粉末X線回折パターンにおける1以上のピークによって特徴づけられる、化合物1のナプシラートの固体形態を提供する。
化合物1のナプシラート塩の熱および水吸着特性は、図34、35、および36において図示される。ナプシラート塩に関して得られた固体形態は、ナプシラートNF7として称されてもよい。さらにその上、溶解挙動は、以下の実験的non-sink溶解データによって表される(FaSSIF、pH6.5):
さらなる例示の態様において、本発明は、実質的に図12において描かれるものに合致する粉末X線回折パターンによって特徴づけられ、および/または、以下についてそれらから選択される、その粉末X線回折パターンにおける1以上のピークによって特徴づけられる、化合物1のエジシラートの固体形態を提供する。
化合物1のエジシラート塩の耐熱性および溶解データは、図37、38、および39によって図示される。エジシラート塩の固体形態は、NF8として称されてもよい。それは、無水形態/塩である。non-sink溶解データ(FaSSIF、pH 6.5)は、下の表において提供される:
化合物1および2に関して上で掲示されたことと調和して、本発明は、化合物1-a、または実質的に化合物2またはその塩がない化合物1の他の塩を提供する。さらなる態様において、化合物1-aまたは化合物1の別の塩は、実質的に不純物がなく提供される。別の態様によれば、化合物1-aまたは化合物1の他のいかなる塩も、HPLCクロマトグラムの全面積と比較して、全有機不純物のわずか5.0面積パーセントHPLCを、含有する。「実質的に化合物2またはその塩がない」、「不純物がない」、および全有機不純物の面積パーセントに関連して、化合物1のために上で開示される例示のおよび好ましい範囲は、ここで等しく適用できる。類似によって、同様が、本発明に従ういかなる化合物、および、とりわけアトロプ異性体の化合物のいかなる塩のいずれにも適用される。
別の態様に従い、本発明は、化合物1-aの有効量を含む医薬組成物を、提供する。別の態様に従い、本発明は、本明細書に記載されるかかる組成物を調製する方法を提供する(例えば、化合物1-aの有効量を含むことができる組成物)。依然として他の態様は、それぞれ本発明に従う化合物1-aのその組成物を用いて、がんを処置する方法を提供する。別の態様に従い、本発明は、がんを処置するための薬物の製造において、本明細書に記載の組成物の使用を提供する。化合物1-aは、化合物1に関して開示される同一量の(医薬)組成物中に、存在してもよい。組成物中の他のアトロプ異性体またはそれらの塩の存在に関して、それぞれ、化合物1のために上に掲示された考慮点は、類似によって等しく適用される。
固体形態および溶媒和物
別の側面に従い、本発明は、化合物1または2の、とりわけ化合物1の固体形態を提供する。
固体形態および溶媒和物
別の側面に従い、本発明は、化合物1または2の、とりわけ化合物1の固体形態を提供する。
本発明に従う化合物が、様々な物理的形態において存在することができるとが、当業者によって認識されるだろう。例えば、それらは、溶液、懸濁液、または、固体形態であることができる。
特定の好ましい態様において、化合物1は、固体形態にある。それらが、固体の医薬組成物の提供を許すので、固体形態は、本明細書において一般に好ましい。化合物1が、固体形態にある場合に、前記化合物は、アモルファス、結晶、またはそれらの混合物でもよい。例示の化合物1の固体形態は、さらに詳細に下で記載される。
一態様に従い、本発明は、アモルファス固体として化合物1を提供する。
アモルファス固体は、当業者に周知であり、凍結乾燥、噴霧乾燥または衝突沈殿などの方法によって、典型的に調製される。
他の態様において、化合物1は、結晶質固体である。本明細書に使用されるとき、用語「多形体」は、化合物が結晶することができる種々の結晶構造を指す。
アモルファス固体は、当業者に周知であり、凍結乾燥、噴霧乾燥または衝突沈殿などの方法によって、典型的に調製される。
他の態様において、化合物1は、結晶質固体である。本明細書に使用されるとき、用語「多形体」は、化合物が結晶することができる種々の結晶構造を指す。
いくつかの態様において、化合物1は、アモルファス化合物1が実質的にない結晶固体である。本明細書に使用されるとき、用語「実質的に、アモルファス化合物1がない」は、化合物が、著しい量のアモルファス化合物1を含有しないことを意味する。ある態様において、少なくとも約90重量%の結晶性化合物1が、存在し、または、少なくとも約95重量%の結晶性化合物1が、存在する。依然として本発明の他の態様において、少なくとも約99重量%の結晶性化合物1が、存在する。これらのパーセンテージは、化合物1の絶対重量(100重量%)と関連する。必要な変更を加えて、同様が、塩、無水形態、溶媒和物、および他の形態のために本明細書に記載されたものを含む、本明細書に開示された、それぞれすべての化合物の多形体のいかなる結晶形態における許容されるアモルファス含有量にも、適用される。
一側面に従い、本発明は、化合物1の固体形態を提供し、それは、無水化合物1、好ましくは結晶性無水化合物1の固体形態である。無水化合物1の5つの異なる多形性形態は、本明細書に記載されている。無水形態および溶媒和物に関わるこの部分において記載される具体的な固体形態の文脈において、化合物1に対する言及は、化合物自体、すなわちその遊離(非塩)形態に対する言及として、理解されるだろう。
化合物1の第1の無水結晶形態が、以下において「形態A2」として称され、そして、実質的に図13において描かれるものに合致する粉末X線回折(XRPD)パターンによって特徴づけられる多形体であり、そして、高度に有利であるとわかった。
一態様に従い、形態A2は、約7.3、約9.6、約11.1、約12.0、約12.7、および約16.2度2-シータでのものから選択される、その粉末X線回折パターンの1以上のピークによって、特徴づけられる。いくつかの態様において、形態A2は、約7.3、約9.6、約12.7、約16.2、約22.6、および約25.1度2-シータのものから選択される、その粉末X線回折パターンの2以上のピークによって、特徴づけられる。ある態様において、形態A2は、約7.3、約9.6、約12.7、約16.2、約22.6、および約25.1度2-シータのものから選択される、その粉末X線回折パターンの3以上のピークによって、特徴づけられる。ある態様において、形態A2は、約7.3、約9.6、約12.7、約16.2、約22.6、および約25.1度2-シータのものから選択される、その粉末X線回折パターンのピークの4、5、または実質的に全てによって、特徴づけられる。特定の態様において、形態A2は、約7.3、9.6、11.1、12.0、12.7、14.7、16.2、17.3、18.9、21.0、22.6、および25.1度2-シータのものから選択される、そのX線粉末回折パターンのピークの6以上、または実質的に全てによって、特徴づけられる。
例示の態様において、形態A2は、以下についてのものから選択される、そのX線粉末回折(XRPD)パターンのピークの1以上、好ましくは6、および実質的に全てまでによって特徴づけられてもよい:
上記の多形性形態が、例えば、そのそれぞれのX線回折(XRD)パターンのピークのいずれかを参照することによって特徴づけられることができることは、いうまでもない。前に掲示されるように、太字の印字および星印は、多形体の特徴づけのために好ましくてもよいピークを明示する。
形態A2は、上の表のXRPDピーク(°2θ)の、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20以上によって、特徴づけられてもよい。本明細書に記載されるいかなる多形体も、少なくとも6のXRDまたはXRPDピーク(°2θ、好ましくは±0.2)によって、好ましくは特徴づけられる。
形態A2は、単斜晶系およびP21空間群を有する点で、任意に特徴づけられてもよい。形態A2は、以下の表において掲示されるように、その単位格子の以下のパラメータの1以上によってさらに特徴づけられてもよい:
化合物1の形態A2は、(図22)のDSC加熱曲線、TGA加熱曲線(図23)、およびDVS水取り込み等温曲線(25℃での)(図24)によって図示されるように、その熱および水取り込み挙動からさらに明白なように、好ましい全体的な特性を、有する。形態A2は、例えば、100%の相対湿度までさえ、きわめて少ない水(<2%)を吸着して、このように、形態A3より優れている。
形態A2の別の利点は、種々の期間においてにおいて溶解される形態A2の化合物1の量を表す、以下の表において図示されるように、その好ましい溶解挙動である(pH6.5でのFaSSIFのnon-sink溶解データ、実験的部分において記載された方法):
形態A2は、一例をあげると、アルコールからの冷却結晶化によって、化合物1から得られることができる。好適な方法および反応条件は、例7において詳細に記載されている。
実例として、好ましい特性を有する形態A2の結晶は、以下を含む制御された結晶化プロセスによって、再現性よく調製されることができる:
a)好適な溶媒、例えばアルコール中で、化合物1、例えば化合物1の水和物の形態H2などの、化合物1の水和物の分散体を調製すること、
b)分散体を加熱して、溶液、好ましくは透明な溶液を得ること、
c)前記溶液を制御冷却すること;
d)形態A2の種結晶を加えること、
e)種結晶を伴う溶液を、実例として約0.1℃/minの速度で、制御冷却すること。
実例として、好ましい特性を有する形態A2の結晶は、以下を含む制御された結晶化プロセスによって、再現性よく調製されることができる:
a)好適な溶媒、例えばアルコール中で、化合物1、例えば化合物1の水和物の形態H2などの、化合物1の水和物の分散体を調製すること、
b)分散体を加熱して、溶液、好ましくは透明な溶液を得ること、
c)前記溶液を制御冷却すること;
d)形態A2の種結晶を加えること、
e)種結晶を伴う溶液を、実例として約0.1℃/minの速度で、制御冷却すること。
好適なアルコールおよび温度などの結晶化条件は、例7.1~7.3に由来することができ、それは、特定の態様を越えて適用できる。本発明は、形態A2の無水、結晶性化合物1にさらに関係し、それは、上のプロセスまたは例7.1~7.4に記載されるプロセスのいずれかに実質的に合致して、入手できる。
化合物1のさらなる無水結晶形態が、以下において「形態A1」として称され、そして、実質的に図14において描かれるものに合致する粉末X線回折パターンによって特徴づけられる多形体である。その調製のための好適な方法は、例7において記載されている。
形態A1は、以下についてのものから選択される、そのX線粉末回折パターンのピークの1以上、好ましくは6、および実質的に全てまでによって特徴づけられてもよい:
化合物1の第3の無水結晶形態が、以下において「形態A3」として称され、そして、実質的に図15において描かれるものに合致する粉末X線回折パターンによって特徴づけられる多形体である。その調製のための好適な方法は、例7において記載されている。
形態A3は、以下についてのものから選択される、そのX線粉末回折パターンのピークの1以上、好ましくは6、および実質的に全てまでによって特徴づけられてもよい:
図27から明白なとおり、化合物1の形態A3は、約70%の相対湿度まで、きわめて少ない水吸着を示す。形態A3は、下の表7において掲示されるとおり、結晶系および単位格子パラメータによって、任意にさらに特徴づけられてもよい。形態A3における化合物1のpH6.5でのFaSSIF中のnon-sink溶解データは、下の表において与えられる:
化合物1の第4の無水結晶形態が、以下において「形態NF9」として称され、そして、実質的に図16において描かれるものに合致する粉末X線回折パターンによって特徴づけられる多形体である。その調製のための好適な方法は、例7において記載されている。
形態NF9は、以下についてのものから選択される、そのX線粉末回折パターンのピークの1以上、好ましくは6、および実質的に全てまでによって特徴づけられてもよい:
さらなる態様において、本発明は、化合物1の水和物、好ましくは化合物1の水和物の固体形態、好ましくは結晶性の化合物1の水和物を提供する。それぞれ化合物1の水和物の多形形態の2つの異なる水和物が、本明細書に記載されている。上記のとおり、これらの具体的な固体形態の文脈で、化合物1に対する言及は、化合物自体、すなわちその遊離(非塩)形態に対する言及として、理解されるだろう。
化合物1の水和物の第1の結晶形態が、以下において「形態H1」として称され、そして、実質的に図17において描かれるものに合致する粉末X線回折パターンによって特徴づけられる多形体である。その調製のための好適な方法は、例7において記載されている。
形態H1は、以下についてのものから選択される、そのX線粉末回折パターンのピークの1以上、好ましくは6、および実質的に全てまでによって特徴づけられてもよい:
化合物1の水和物の第2の結晶形態が、以下において「形態H2」として称され、そして、実質的に図18において描かれるものに合致する粉末X線回折パターンによって特徴づけられる多形体である。その調製のための好適な方法は、例7において記載されている。
形態H2は、以下についてのものから選択される、そのX線粉末回折パターンのピークの1以上、好ましくは6、および実質的に全てまでによって特徴づけられてもよい:
結晶形態H2の化合物1の水和物は、三斜晶系およびP1空間群を有する点において、任意に特徴づけられてもよい。形態H2は、下の表7において掲示されるとおり、その単位格子の以下のパラメータの1以上によって特徴づけられてもよい:
形態H2の熱および水吸着特性は、図28、29、および30によって図示される。化合物1の形態H2に関するFaSSIF(ph 6.5)中のnon-sink溶解データは、以下のとおり、決定された:
無水の化合物1の第5の結晶形態が、以下において「形態NF19」として称され、そして、実質的に図19において描かれるものに合致する粉末X線回折パターンによって特徴づけられる多形体である。その調製のための好適な方法は、例7において記載されている。
形態NF19は、以下についてのものから選択される、そのX線粉末回折パターンのピークの1以上、好ましくは6、および実質的に全てまでによって特徴づけられてもよい:
または別の方法では、固体形態A1、A3、H1、およびH2は、表7の下に掲示されているとおり、a、b、c、a、b、g、およびVから選択される特定の結晶系、空間群、および/または単位格子パラメータを有することによって、特徴づけられてもよい。
本発明は、以下の溶媒和物の形態にも関係し、それが、それぞれの溶媒から結晶化によって容易に作成されることができるが、上記の形態と比較して、重要な特性に関してかなりより有利でないとわかってきた:化合物1のメタノラート(S1として称される固体形態)、化合物1の混合の水和物/メタノラート(S2として称される固体形態)、化合物1のTHF溶媒和物(S3として称される固体形態)、無数の固体形態における化合物1の1,4-ジオキサン溶媒和物の形態(NF11として称される固体形態[室温での、1,4-ジオキサン中~26mg/200μLでの無水形態のスラリー変換実験からの]、NF29[1,4-ジオキサン中での冷却結晶化実験50~5℃からの]、NF36[室温での1,4-ジオキサン中~52mg/150μLでの無水形態のスラリー変換実験から]、化合物1のクロロホルム溶媒和物(NF15として称される固体形態)、様々な固体形態の化合物1の酢酸溶媒和物の形態(NF16として称される固体形態[室温での酢酸中蒸発結晶化実験からの]、NF18[酢酸中50℃での蒸発結晶化実験からの)、化合物1のジクロロメタン(DCM)溶媒和物(NF32として称される固体形態)、化合物1のNMP(Nメチル-2‐ピロリドン)溶媒和物(NF33として称される固体形態)、化合物1のアセトニトリル溶媒和物(NF35として指される固体形態)、化合物1のジメチルアセトアミド(DMAA)溶媒和物(NF37として称される固体形態)。これらの溶媒和物の固体形態のXRPDは、図40~52において示され、対応するピークが以下の表にリストされる:
別の態様に従い、本発明は、形態A2、それは好ましい固体形態であるが、それにおける化合物1の有効量を含む医薬組成物を提供する。別の態様に従い、本発明は、本明細書に記載のかかる医薬組成物を調製する方法を提供する(例えば、形態A2における化合物1の有効量を含む医薬組成物)。依然として、別の態様は、本明細書に記載された形態A2における化合物1の有効量を含有する医薬組成物を使用する、がんを処置する方法を、提供する。別の態様に従い、本発明は、がんを処置するための薬物の製造における形態A2における化合物1の使用を提供する。さらなる態様において、本発明は、薬物としての使用のための、好ましくはがんの処置のための、形態A2を提供する。上で掲示されたことと調和して、化合物1に関して開示された例示的態様、範囲、純度等々が、形態A2のために等しく有効である。
別の態様に従い、本発明は、上記のとおり、無水の化合物1または化合物1の水和物の固体形態のいずれか1つにおいて、化合物1の有効量を含む医薬組成物を、提供する。別の態様に従い、本発明は、本明細書に記載のかかる医薬組成物を調製する方法を提供する(例えば、それらの固体形態の1つにおける化合物1の有効量を含む医薬組成物)。依然として、別の態様は、本明細書に記載された固体形態の1つにおける化合物1の有効量を含有する医薬組成物を使用する、がんを処置する方法を、提供する。別の態様に従い、本発明は、がんを処置するための薬物の製造における、本明細書に記載の固体形態における化合物1の使用を提供する。さらなる態様において、本発明は、薬物としての使用のための、好ましくはがんの処置のための、本明細書に記載された化合物1の固体形態を提供する。上で掲示されたことと調和して、化合物1に関して開示された例示的態様、範囲、純度等々が、固体形態のために等しく有効である。
本発明は、本明細書に記載のとおり、無水の化合物1または化合物1の水和物の固体形態に関し、それは、例7において記載された方法に従い得られるかまたは得ることができる。
重水素化の態様
さらなる側面に従い、本発明は、化合物Yの重水素化誘導体を提供する。一態様に従い、本発明は、以下を提供する:
・8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-(トリジュウテリオ-メチル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(化合物3)および、
さらなる側面に従い、本発明は、化合物Yの重水素化誘導体を提供する。一態様に従い、本発明は、以下を提供する:
・8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-(トリジュウテリオ-メチル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(化合物3)および、
・1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル] -7-メトキシ-3-メチル-8-[3-メチル-(トリジュウテリオ-メチル)ピラゾール-4-イル]イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン (化合物4)、
・8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-メチル-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(化合物5)、ならびにそれらの塩。
化合物3、4、および5は、以下の式によって表される:
化合物3、4、および5は、以下の式によって表される:
化合物1および2に関して上で掲示されたことと調和して、本発明は、それらのいかなる塩も含む、それぞれの他のアトロプ異性体が実質的にない、化合物4-a、5-a、6-a、4-b、5-b、6-bも、提供する。さらなる態様において、これらの化合物は、実質的に不純物がなく提供される。別の態様に従い、これらの化合物は、HPLCクロマトグラムの全面積と比較して、全有機不純物のわずか5.0面積パーセントHPLCを、含有する。「実質的に化合物2またはその塩がない」、「不純物がない」、および全有機不純物の面積パーセントに関連して、化合物1のために上で開示される例示のおよび好ましい範囲は、それぞれの化合物の対応する他のアトロプ異性体に関して、ここで等しく適用できる。
別の態様に従い、本発明は、少なくとも1つの化合物3、4、または5、それらのアトロプ異性体または薬学的に許容し得る塩の有効量を含む医薬組成物を、提供する。別の態様に従い、本発明は、本明細書に記載された、かかる医薬組成物を調製する方法を、提供する。依然として、別の態様は、本明細書に記載された医薬組成物を使用する、がんを処置する方法を提供する。別の態様に従い、本発明は、がんを処置するための薬物の製造において、本明細書に記載の組成物の使用を提供する。化合物1に関する上記の例示のおよび好ましい態様は、これらの化合物に等しく適用できる。
調製
本発明に従う化合物1および2は、化合物Yから出発して調製されることができ、その化合物は、以前に記載されていた。WO2016/155884中に開示されたとおり、8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)1-(3-フルオロ-5-メトキシピリジン-4-イル)7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾキノリン-[4,5c]2-オン(化合物Y)は、以下の反応系列に従い調製されることができる:
本発明に従う化合物1および2は、化合物Yから出発して調製されることができ、その化合物は、以前に記載されていた。WO2016/155884中に開示されたとおり、8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)1-(3-フルオロ-5-メトキシピリジン-4-イル)7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾキノリン-[4,5c]2-オン(化合物Y)は、以下の反応系列に従い調製されることができる:
これらのステップa~eのそれぞれに関する例示の反応条件は、出発化合物を得る方法であるとして、例1において与えられる。他の好適な反応条件は、当業者に容易で明白である。
化合物1および2は、化合物Yからの分離の好適な方法によって、次いで得られることができ、それの例示的態様は、例1、2、および3において提供される。
化合物1および2は、化合物Yからの分離の好適な方法によって、次いで得られることができ、それの例示的態様は、例1、2、および3において提供される。
アトロプ異性体は、超臨界流体クロマトグラフィ(SFC)を含むキラルクロマトグラフィーを使用して、化合物Yから出発して、分離されてもよい。好適な方法の例は、詳細に例1および3において記載されている。
それぞれの望ましくないアトロプ異性体は、ラセミ化、例えば熱ラセミ化に、付されることができ、1例として下に略図で例示するとおり、新しい出発材料として、化合物Yを産生する。
代替態様において、化合物1および2は、光学活性酸、例えばジベンゾイル酒石酸を使用して、結晶化によって化合物Yから出発して、調製されることができる。光学活性酸を伴う化合物Yの反応は、一対のアトロプ異性体塩を与える。化合物1および2のこれらの塩は、種々の物理化学的特性(例として溶解性、相分布)を呈し、そしてこれらの違いの利点をとることによって、分離されることができる。
下のスキームにより図示されるとおり、一態様において、化合物Yは、光学活性酸と反応し、母溶液中で2つの塩の混合物を産生し、化合物2の塩(L-塩B)が最初沈殿し、ろ過によって取り除かれ、化合物1の対応する塩(L-塩A)が、さらなる母溶液の濃縮及び沈殿のあとのみに回収されることを伴う。
化合物1の塩は、次いでまずその遊離形態に転換され、単離され、そして次いで該酸の対応する他の光学活性形態と反応して、化合物1の対応する塩を与え、それは、これに続くステップにおいて、高い光学純度を伴う遊離塩基に転換される。一方、化合物2は、ラセミ化に付されてもよく、新鮮な出発材料として化合物Yを与える。
好適な調製スキームの詳細な例は、例2および図6において提供される。本発明に従う重水素化合物3、4、および5は、例6において詳細に記載されているとおり、調製されることができ、およびアトロプ異性体、塩、溶媒和物、および固体形態は、実質的に化合物1および2のものとして調製されることができる。
使用
以下において、「本発明に従う化合物」に対するいかなる一般的な言及も、化合物1または2、またはその薬学的に許容し得る塩、溶媒和物、または固体形態を含む、本発明の化合物のすべての態様に適用されることを意味するだろうし、そして、化合物1または2、またはその薬学的に許容し得る塩、溶媒和物、またはそれらの固体形態として読みとられることができる。同じく、本発明に従う重水素化合物に対するいかなる言及も、化合物3、4、または5だけでなく、前述のいかなるアトロプ異性体、塩、または固体形態も含むだろう。
以下において、「本発明に従う化合物」に対するいかなる一般的な言及も、化合物1または2、またはその薬学的に許容し得る塩、溶媒和物、または固体形態を含む、本発明の化合物のすべての態様に適用されることを意味するだろうし、そして、化合物1または2、またはその薬学的に許容し得る塩、溶媒和物、またはそれらの固体形態として読みとられることができる。同じく、本発明に従う重水素化合物に対するいかなる言及も、化合物3、4、または5だけでなく、前述のいかなるアトロプ異性体、塩、または固体形態も含むだろう。
本発明は、それらのアトロプ異性体、薬学的に許容し得る固体形態、溶媒和物、および塩、ならびにATMキナーゼのシグナリングカスケードの阻害、制御、および/または調節のための、重水素ATM阻害剤、そのアトロプ異性体、および薬学的に許容し得る塩も包含し、このように調査および/または診断のための新規なツールを提示する。本発明は、それゆえさらにその上、本発明に従う化合物の使用に、関し、ATMキナーゼの阻害のためにそれらの重水素化形態を含む。用語「阻害」は、後者が、認識、結合、およびブロッキングが可能となるように、標的分子と相互作用することができるという点で、本発明に従う特定の化合物の作用に基づく活性におけるいかなる低下にも、関する。化合物は、高親和性によって、ATMキナーゼと区別される。化合物は、さらにその上高度に選択的であり、このように、実質的に独占的に、および直接、ATMキナーゼの認識を可能にする。調査および/または診断における使用に関して、実例としてアッセイにおける使用に関して、重水素化合物、すなわち化合物3、4、あるいは5、または、それらのアトロプ異性体、または塩または固体形態は、有用であると考えられる。
本発明は、ATMキナーゼの活性によって引き起こされ、媒介され、および/または伝播される疾患の処置において、重水素化合物を含む、本発明に従う化合物の使用を一般に包含する。
本発明は、それゆえ、薬物としての使用のための、重水素化合物を含む、本発明に従う化合物に、広く関する。
本発明は、それゆえ、薬物としての使用のための、重水素化合物を含む、本発明に従う化合物に、広く関する。
本発明は、それゆえ、ATMキナーゼの活性によって引き起こされ、媒介され、および/または伝播されるいずれかの疾患の処置における使用のための、重水素化合物を含む、本発明に従う化合物にも関する。本発明は、対応して、ATMキナーゼの活性によって引き起こされ、媒介され、および/または伝播されるいずれかの疾患の処置のための薬物の調製のための本発明に従う、重水素化合物を含む、化合物使用にも関する。換言すれば、本発明は、ATMキナーゼの阻害によって影響を受ける疾患の処置における使用のための、水素化合物を含む、本発明に従う化合物も開示する。
加えて、本発明に従う化合物または重水素化合物は、動物および/または細胞培養モデルにおける、または、本出願に記載の臨床疾患における、キナーゼ-依存シグナリング経路を試験するための試薬として、使用されることもできる。本明細書に述べられるとおり、これらのシグナリング経路は、様々な疾患に関連がある。
本発明は、がんおよび/または腫瘍の処置における使用のための;および、がんおよび/または腫瘍の処置のための薬物調製におけるそれらの使用への、それらの薬学的に許容し得る塩、溶媒和物、固体および重水素化形態を含む、本発明に従う化合物にも関する。
本発明は、がんまたは腫瘍の処置のための方法を、さらにその上教示し、発明に従う少なくとも1つの化合物、またはそれらの薬学的に許容し得る塩、溶媒和物、重水素化または固体形態の有効量が、処置される対象に投与される。本発明の意味における好ましい対象は、ヒトまたは動物(とりわけ好ましくはヒト)である。
がん/腫瘍は、とりわけ、扁平上皮、膀胱、胃、腎臓、頭部、頸部、食道、子宮頸部、甲状腺、腸、肝臓、脳、前立腺、尿生殖路、リンパ系、喉頭、肺、皮膚、血液および免疫系のがん/腫瘍の群から選択されてもよく、および/または、がんは、単球性白血病、肺腺がん、小細胞肺がん、非小細胞性肺がん、膵がん、結腸直腸がん、胃がん、乳がん、卵巣がん、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病、急性リンパ性白血病、慢性リンパ性白血病、ホジキンリンパ腫、および非ホジキンリンパ腫の群から選択されてもよい。がん細胞の感作が、上記と同じがんおよび腫瘍の細胞を包含することが、理解されるべきである。
本発明は、本発明に従う化合物および/またはそれらの薬学的に許容し得る塩、溶媒和物、重水素化または固体形態を含む薬物にも、関する。
本発明は、本発明に従う化合物および/またはそれらの薬学的に許容し得る塩、溶媒和物、重水素化または固体形態を含む薬物にも、関する。
本発明はさらにその上、任意に少なくとも1つの薬学的に許容し得る賦形剤と共に、本発明に従う化合物、および/またはそれらの薬学的に許容し得る塩、溶媒和物、重水素化または固体形態の治療有効量を含む医薬組成物に、関する。
「薬物」および「医薬組成物」は、好ましくはがんおよび/または腫瘍の結果として、少なくとも一時的に、罹患生物の全体的な状況または個々の部分の状況の病原性変更を呈する患者の処置において、用いられることができるいかなる組成物も意味すると、とられるべきである。本発明に従う化合物のそれぞれの医薬組成物の、細胞または生物の中への送達は、応答が、誘導される結果として、ATMキナーゼを医薬組成物中に存在する化合物と接触させることを可能にする、いかなるやり方における発明に従っても、実行されることができる。
本発明の医薬組成物は、経口的に、経皮的に、経粘膜的に、経尿道的に、経膣的に、経直腸的に、経肺的に、経腸的に、および/または非経口的に投与されることができる。選択されるタイプの投与は、適応症(とりわけ投与された、個体具体的なパラメータ等々である用量)、次第である。そして、投与の様々なタイプは特定地域向けの治療を促進してもよい。そして、それは副作用を最小にして、活性化合物用量を短縮する。注射は、皮内でも、皮下でも、筋肉内でも、または静脈内でもよい。投与は、例えば、いわゆるワクチン接種ガンを用いて、または、シリンジによって、実行されることができる。エアロゾルとして物質を提供することも可能であり、それは、生物、好ましくはヒト患者によって吸入される。
好ましい態様において、本発明に従う化合物(それらの形態のいずれかにおいて)は、経口的に投与される。経口投与は、患者コンプライアンスに関して好ましい。それゆえ、医薬組成物は、好ましくは経口の固体の医薬組成物である。
良好な安定性および高い生物学的利用率に起因して、それらが、経口の固体投与形態への製剤化に、容易に役に立つことが、本発明に従う化合物、とりわけ化合物1および2およびそれらの固体形態、とりわけ化合物1およびその固体形態それぞれの利点である。
組成物
本発明に従うそれぞれ組成物、医薬組成物は、好適な投薬量における、そして、それ自体公知のやり方における、所望される投与のタイプに対応する従来の固体のまたは液体の賦形剤を使用して、調製されてもよい。よって、当業者に公知の薬学的に許容し得る賦形剤は、本発明に従う医薬組成物の部分を基本的に形成することができ、ここで、単一用量を調製するために活性化合物と組み合わせられる賦形剤の量が、用量および投与のタイプに応じて変化する。かかる薬学的に許容し得る賦形剤は、充填剤、安定剤、錯化剤、酸化防止剤、溶媒、結合剤、滑沢剤、塩、緩衝液、防腐剤、調節装置などを含む。このタイプの賦形剤の例は、水、植物油、ベンジルアルコール、アルキレングリコール、ポリエチレングリコール、コリフォール、グリセロールトリアセテート、ゼラチン、炭水化物、例えば、ラクトースまたはデンプンなど、ヒドロキシプロピルメチルセルロース(HPMC)、ステアリン酸マグネシウム、タルク、およびワセリンである。
本発明に従うそれぞれ組成物、医薬組成物は、好適な投薬量における、そして、それ自体公知のやり方における、所望される投与のタイプに対応する従来の固体のまたは液体の賦形剤を使用して、調製されてもよい。よって、当業者に公知の薬学的に許容し得る賦形剤は、本発明に従う医薬組成物の部分を基本的に形成することができ、ここで、単一用量を調製するために活性化合物と組み合わせられる賦形剤の量が、用量および投与のタイプに応じて変化する。かかる薬学的に許容し得る賦形剤は、充填剤、安定剤、錯化剤、酸化防止剤、溶媒、結合剤、滑沢剤、塩、緩衝液、防腐剤、調節装置などを含む。このタイプの賦形剤の例は、水、植物油、ベンジルアルコール、アルキレングリコール、ポリエチレングリコール、コリフォール、グリセロールトリアセテート、ゼラチン、炭水化物、例えば、ラクトースまたはデンプンなど、ヒドロキシプロピルメチルセルロース(HPMC)、ステアリン酸マグネシウム、タルク、およびワセリンである。
上記のとおり、本発明の医薬組成物は、経口投与のために好ましい。医薬組成物は、一般にタブレット、フィルムタブレット、糖衣剤、トローチ剤、カプセル、ピル、粉末、顆粒、シロップ、ジュース、ドロップ、溶液、分散体、懸濁液、坐剤、乳剤、植込錠、クリーム、ゲル、軟膏、ペースト、ローション剤、血清、オイル、スプレー、エアロゾル、接着剤、硬膏剤、または絆創膏の形であることができる。経口投与の形態は、好ましくはタブレット、フィルムタブレット、糖衣剤、トローチ剤、カプセル、ピル、粉末、顆粒、シロップ、ジュース、ドロップ、溶液、分散体、または懸濁液である。
さらにその上、非経口医薬組成物、例えば、坐剤、懸濁液、乳剤、植込錠、または溶液などは、好ましくはオイル状であるか、水性溶液でもよいと考えられる。局所適用のために、本発明に従う化合物は、皮膚に適用されることができる組成物、例えば、クリーム、ゲル、軟膏、ペースト、粉末、または乳剤を与えるために、または皮膚に適用されることができる液状製剤、例えば、溶液、懸濁液、ローション剤、血清、オイル、スプレー、またはエアロゾルを与えるために、少なくとも1つの薬学的に許容し得る賦形剤、例えば、微結晶性セルロースなど、および任意にさらなる助剤、例えば、モイスチャライザーと、従来の方法で製剤化されてもよい。医薬組成物は、注射溶液の形であることもできる。注射溶液の調製のために、水性媒体、例えば、蒸留水または生理的塩溶液などは、使用されることができる。
医薬組成物は、固体の組成物の形、例えば凍結乾燥された状態で提供されてもよく、および、溶解剤、例えば、蒸留水または緩衝液などの添加をとおした注射による投与のために、次いで調製されてもよい。当業者は、凍結乾燥物の調製の基本原理に精通している。
少なくとも1つの薬学的に許容し得る賦形剤を含有する医薬組成物における、本発明に従う化合物の量は、0.1~100重量パーセントであることができる。医薬組成物が化合物の有効量、任意に1以上の薬学的に許容し得る賦形剤と共に含むことが重要である。単純な医薬組成物は、堅いゼラチンカプセル中の、粉末などの固体形態における、本発明に従う化合物でもよい。用語「有効量」または「有効な用量」は、交換可能に本明細書に使用され、細胞、組織、臓器、または哺乳動物における疾患または病理学的変化、好ましくはがんおよび/または腫瘍に対して、治療的に関連のある効果を有する、本発明に従う化合物の量を、示す。
本発明に従う化合物の「治療有効量」は、必要な投薬量および期間で、ATMi調節又は依存状況、好ましくはがんを伴う患者に投与される場合に、意図された治療効果、例として、患者におけるがんのそれぞれの状況の1以上の出現の緩和、改善、緩和、または除去、または患者を処置する間のいずれかの他の臨床結果を有するだろう、有効な量を指す。治療的に有効は、1つの用量の投与によって必ずしも発生するというわけではなく、そして、一連の用量の投与の後のみ発生してもよい。よって、治療有効量は、1以上の投与において投与されてもよい。かかる治療有効量は、個体においての所望された応答を引き出すために、単独でまたは組み合わせて、疾患状態、年齢、性、および個体の重量、および本発明に従う化合物の能力などの因子に従い、変化してもよい。治療有効量は、本発明に従う化合物のいかなる有毒または有害作用も、治療的に有益な効果によって、上回られるものでもある。
本発明の態様において、本発明に従う化合物(または塩、溶媒和物、重水素化、または固体の)は、投与単位当たり5mg~1g、例えば投与単位当たり10と750mgの間、投与単位当たり20と500mgの間など、単位当たり25、50、75、100、125、150、175、200、225、250、275、300、325、または350mgなどの用量で、投与される。化合物1のための生物学的有効用量は、25~350mgqdの範囲であるべきであると推計された。
本発明の化合物は、それらの驚くほど強いおよび/または選択的な、二本鎖DNAの修復を介して細胞のプロセスを規制するATMキナーゼの阻害により、有利に低い用量において投与されることができ、その一方で、それらは、より強力でないかより選択的でない阻害剤と比較して、同程度であるかさらに優れた生物学的有効性を、達成する。減少された用量は、減少された医学的な副作用と、典型的に関連する。加えて、高度に選択的な阻害は、一般に望ましくない副作用の減少によっても、反映される。
状況または患者を「処置すること」または「処置」は、臨床結果を含む、有益であるか所望された結果を得るために、ステップを取ることを指す。本発明の目的を達成するために、有益であるか所望された臨床結果は、処置されるべき疾患の1以上の症状、最も好ましくはがんの緩和、改善;疾患の範囲の減少;疾患進行の遅延または減速;疾患状態の改善、緩和、または安定化;または、他の有益な結果を含むが、これに限定されない。「処置すること」または「処置」の言及は、予防ならびに状況の確立された症状の緩和を含むと、認識される。状態、障害または状況を「処置すること」または「処置」は、それゆえ以下を含む:(1)状態、障害、または状況に悩まされるかその素因があるが、状態、障害、または状況の臨床または不顕性症状をまだ経験してないか呈していない対象において進展する状態、障害、または状況の臨床症状の出現を防御するかまたは遅延させること、(2)状態、障害、または状況を抑制すること、すなわち、疾患の進展またはそれらの再発(維持処置の場合)またはそれらの少なくとも1つの臨床または不顕性症状を抑えるか、減少させるか、または遅延させること、または(3)疾患を軽減するかまたは減弱化すること、すなわち、状態、障害、または状況またはその臨床または不顕性症状の少なくとも1つの退行を引き起こすこと。ある態様において、「処置すること」は、(1)および(2)を含む。
「腫瘍」はそれと診断されるか、またはそれを有すると疑われる対象に適用され、がんは、悪性であるか潜在的に悪性の新生物またはいかなるサイズの組織塊を指し、1次腫瘍および2次新生物を含む。固形腫瘍は、通常嚢胞または液体領域を含有しない組織の、異常成長または塊である。固形腫瘍の種々のタイプは、それらを形成する細胞のタイプに関して命名される。固形腫瘍の例は、肉腫、癌腫、およびリンパ腫である。白血病(血液のがん)は、固形腫瘍を一般に形成しない。
患者に対して化合物を「投与すること」または「投与」(およびこの句の文法上の同等物)は、直接投与を指し、それは、医療専門家による患者に対する投与でもよいか、または自己投与、および/または間接的な投与でもよく、それは、薬物を処方する行為でもよい。例として、患者に薬物を自己投与するように指示するかまたは薬物の処方を患者に提供する医師は、本発明の文脈において、患者に薬物を投与するとして、みなされる。
上記の全て、およびさらなる賦形剤、または薬物または医薬製剤の他の構成要素は、当業者になじみがあり、ルーチン実験において本発明に従う教示のための特別な製剤を経てもよい。
組み合わせ治療
本発明に従う化合物を含む薬物および医薬組成物、およびキナーゼ媒介障害の処置のためのこれらの化合物の使用は、とりわけ、がんの処置のためのきわめて有望なアプローチである。本発明に従う化合物は、単独治療として、しかし、好ましく上で概説のとおりように、他の治療、例えば、化学-または放射線治療と組み合わせて投与されてもよい。上で掲示のとおり、化合物への言及は、それらのいかなる塩、溶媒和物、重水素化または固体の形態も含む。
本発明に従う化合物を含む薬物および医薬組成物、およびキナーゼ媒介障害の処置のためのこれらの化合物の使用は、とりわけ、がんの処置のためのきわめて有望なアプローチである。本発明に従う化合物は、単独治療として、しかし、好ましく上で概説のとおりように、他の治療、例えば、化学-または放射線治療と組み合わせて投与されてもよい。上で掲示のとおり、化合物への言及は、それらのいかなる塩、溶媒和物、重水素化または固体の形態も含む。
DNA修復プロセスにおけるATMの鍵となる関与、およびATMキナーゼ不足が、哺乳動物細胞をより放射線感受性になるのを許すという証拠は、照射治療および/または化学治療によって、がん、例えば、固形腫瘍の処置の一部としてのATM特異的阻害剤の治療の使用を可能にし、化学治療は、好ましくはDNA二本鎖の損傷の誘導に、照準を定められる。前に説明のとおり、ATMは、治療誘導DSBの修復を阻害するために、魅力的な介入である。ゆえに、本発明に従う化合物は、それらの形態のいずれにおいても、放射線治療および/またはDNA損傷化学治療と組み合わせることにおいて、きわめて有利である。
従って、本発明は、本発明に従う化合物および放射線治療(RT)の組み合わせに関する。従って、本発明は、放射線治療と組み合わせた、がんおよび/または腫瘍の処置における使用のための、本発明の化合物、またはそれらの薬学的に許容し得る塩または固体形態に関する。異なって表現すると、本発明は、放射線治療と組み合わせた、がんおよび/または腫瘍を処置するための薬物の調製のための、本発明に従う化合物、またはそれらの薬学的に許容し得る塩または固体形態の使用、およびこのように、放射線治療と組み合わせた、本発明に従う化合物、またはそれらの薬学的に許容し得る塩または固体形態を投与することに関わる、がんを処置する方法に、関する。本発明は、それぞれ電離放射線、放射線治療(RT)に対してがん細胞の感度を高めることにおいて使用するための、本発明に従う化合物、またはそれらの薬学的に許容し得る塩または固体形態に、さらに関する。
化合物1は、臨床的に関連のある放射線スケジュールと組み合わせて(すなわち放射線治療)、in vivoで著しい用量依存的抗腫瘍応答につながることが、示されてきた。例8および図20は、達成された結果の詳細を提供する。
好適な投与レジメは、一例をあげると、1週にわたり5画分(画分日当たりに3Gy与えられる)において与えられる15グレイ(Gy)のRTの投与(すなわち、5日連続オン、続いて2日間なし)、および、同日に、本発明に従う化合物の経口的投与に関わってもよく、そして、それは少なくとも一回繰り返されてもよい。
好ましくは臨床的に使用される工業上の照射方法は、光子照射(古典的、電磁X線/ガンマ放射線)、プロトン照射、重-イオン照射(イオン化炭素)、および中性子照射を含むが、それらに限定されない。本発明の意味におけるこれらの放射線治療および他の好適な照射治療は、例えばHerrmann et al. (2006) Klinische Strahlenbiologie [Clinical Radiation Biology], Elsevier Munich, 4th Edition, 67-68; Bhide & Nutting (2010) BMC Medicine 8: 25; Choi & Hung (2010) Current Urology Reports 11(3): 172などから、当業者に、公知であり、その全体が、ここに参照によって本明細書に組み込まれる。最も頻繁な適用として、光子照射は、IMRT(強度-調節放射線治療)方法によって、および、照射計画における画像化方法(三次元原体照射)および可能な最も精密な焦点化法のための性能によって、技術的に洗練された。
さらなる側面に従い、本発明は、以下の本発明に従う化合物およびDNA-損傷剤の組み合わせに関する;すなわち、DNA-損傷剤と組み合わされる、がんおよび/または腫瘍の処置における使用のための、本発明の化合物、DNA-損傷剤と組み合わされるがんを処置するための薬物の調製のための、本発明に従う化合物の使用、ならびに、本発明に従う化合物およびDNA-損傷剤の投与に関わる、がんを処置する方法。一般に本明細書に前に説明されるように、化合物は、薬学的に許容し得る塩、固体形態、および溶媒和物を、とりわけ組成物および処置に関して、含むだろう。
DNA-損傷剤および本発明に従う化合物の投与は、同時でもよいか、または連続していてもよい。
DNA-損傷剤および本発明に従う化合物の投与は、同時でもよいか、または連続していてもよい。
本明細書に使用されるとき、DNA-損傷剤は、下記の例示的態様とともに、細胞、とりわけ好ましくはがん細胞中のDNA損傷を誘導することができる剤である。
前に説明のとおり、ATMキナーゼは、DNA二本鎖切断(DSB)修復の鍵となる制御因子であり、それは、広く使用されているがん治療法、イオン化放射線(Ir)およびDNA-損傷剤などによって誘導される。DSB事象のうえに、ATMは、p53を含む下流のエフェクターの多数にシグナルを送る。修復されてないDSBは、チェックポイント応答の活性化、細胞周期停止、および最終的に腫瘍細胞死につながる。
本発明の一態様において、本発明は、本発明に従う治療的に有効な化合物、およびDNA損傷剤を含む、医薬組成物を、提供する。
組み合わせ(治療)における使用のために好適なDNA-損傷剤は、医薬組成物またはキットを含み、好ましく以下を含む群から選択される:
本発明の一態様において、本発明は、本発明に従う治療的に有効な化合物、およびDNA損傷剤を含む、医薬組成物を、提供する。
組み合わせ(治療)における使用のために好適なDNA-損傷剤は、医薬組成物またはキットを含み、好ましく以下を含む群から選択される:
・アルキル化剤、アルトレタミン、ベンダムスチン、ブスルファン、カルムスチン、クロラムブチル、クロロメチン、シクロホスファミド、ダカルバジン、イホスファミド、インプロスルファントシラート、ロムスチン、メルファラン、ミトブロニトール、ミトラクトール、ニムスチン、ラニムスチン、テモゾロマイド、チオテパ、トレオスルファン、メクロレタミン、カルボコン、アパジクオン、ホテムスチン、グルホスフアミド、パリフォスファミド、ピポブロマン、トロホスファミド、ウラムスチンなど:
・白金化合物、カルボプラチン、シスプラチン、エプタプラチン、ミリプラチン水和物、オキサリプラチン、ロバプラチン、ネダプラチン、ピコプラチン、サトラプラチンなど;
・トポイソメラーゼ阻害剤、イリノテカン、SN38、トポテカン、カンプトセシン、ルビテカン、ベロテカン、エトポシド、ダウノルビシン、ドキソルビシン、アクラルビシン、エピルビシン、イダルビシン、アムルビシン、ピラルビシン、バルルビシン、ゾルビシン、アムサクリンなど;
・ポリ-(ADPリボース)-ポリメラーゼ(PARP)阻害剤、オラパリブ、ニラパリブ、ベリパリブなど;
・ポリ-(ADPリボース)-ポリメラーゼ(PARP)阻害剤、オラパリブ、ニラパリブ、ベリパリブなど;
・ATR(血管拡張性失調症およびRad3に関連した)阻害剤、M6620(VX-970:3-[3-(4-メチルアミノメチル-フェニル)-イソキサゾール-5-イル]-5-[4-(プロパン-2-スルホニル)-フェニル]-ピラジン-2-イルアミン)、M4344(VX-803:2-アミノ-6-フルオロ-ピラゾロ[1,5-a]ピリミジン-3-カルボン酸[5’-フルオロ-4-(4-オキセタン-3-イル-ピペラジン-1-カルボニル)-3,4,5,6-テトラヒドロ-2H-[1,4’]ビピリジニル-3’-イル]-アミド)など;AZD-6738(4-[4-[1-[[S(R)]-s-メチルスルホンイミドイル]シクロプロピル]-6-[(3R)-3-メチル-4-モルホリニル]-2-ピリミジニル]-1H-ピロロ[2,3-b]ピリジン)および2-[(3R)-3-メチルモルホリン-4-イル]-4-(1-メチル-1H-ピラゾール-5-イル)-8-(1H-ピラゾール-5-イル)-1,7-ナフチリジン;
・DNA修飾剤、アムルビシン、ビサントレン、デシタビン、ミトキサントロン、プロカルバジン、トラベクテジン、クロファラビン、アムサクリン、ブロスタリシン、ピキサントロン、ラロムスチンなど;
・抗癌抗生物質、ブレオマイシン、ダクチノマイシン、ドキソルビシン、エピルビシン、イダルビシン、レバミゾール、ミルテフォシン、マイトマイシンC、ロミデプシン、ストレプトゾシン、バルルビシン、ジノスタチン、ゾルビシン、ダウノルビシン、プリカマイシン、アクラルビシン、ペプロマイシン、ピラルビシンなど;
・アルファ放射体、アルファラジン(223Ra二塩化物、Xofgio)、211At、213Bi、225Ac、227Th;
・アルファ放射体、アルファラジン(223Ra二塩化物、Xofgio)、211At、213Bi、225Ac、227Th;
特別な好ましさは、エトポシド、イリノテカン、ラゾキサン、ソブゾキサン、トポテカン、カンプトセシン、ドキソルビシン、アムサクリン、PARP阻害剤、およびATR阻害剤に与えられる。
例示的なPARP阻害剤オラパリブと組み合わされた化合物1の有効性は、免疫不全雌マウスにおいて開発された、HBCx-10患者誘導三重陰性乳がん異種移植モデルにおいて立証され、その結果は、図21において示される。この実験のより詳細は、例9において記載されている。
本発明は、キットとして実践されることもでき、それは、本発明に従う化合物を含有する。キットは、(a)本発明に従う化合物、および/またはそれらの生理的塩、溶媒和物、または固体形態の有効量、および(b)さらなる活性化合物の有効量の、別々のパックから成る。さらなる活性化合物は、好ましくはDNA-損傷剤である。
キットは、好適な容器、例えばボックスまたはカートン、個別の瓶、バッグ、またはアンプルなどを含有してもよい。キットは、例えば、別々のアンプルまたはバイアルを含有してもよく、各々が、本発明に従う化合物、および/またはそれらの薬学的に許容し得る塩、溶媒和物、または固体形態の有効量、またはさらなる活性化合物、溶解されたか凍結乾燥された形態のDNA損傷剤などの有効量を、含有する。本発明のキットは、書面での取扱説明書または使用者に向けた書面での取扱説明書を含有する物品を含有してもよく、それは、本発明の化合物の取扱いを、説明する。
要約すると、本発明に従う化合物が、個別におよび/または他の処置手段、例えば、外科的介入、免疫治療、放射線治療、および/または化学治療などと組み合わせて、使用されることができることが、注意されるべきである。後者は、単剤治療および/またはオンターゲット/オフターゲット組み合わせ治療として、いかなる所望の(nME:新しい分子実体、NCE:新しい化学実体、およびNBE:新しい生物学的実体を含む化学的または生物学的)活性化合物を伴う標的治療にも、関する。
記載において引用されるすべての文書が、ここに参照としてその全体が、本発明の開示に組み込まれることが、意図される。
記載において引用されるすべての文書が、ここに参照としてその全体が、本発明の開示に組み込まれることが、意図される。
本発明が、特定の化合物、医薬組成物、本明細書に記載の使用および方法医制限されないことは、かかるものは変化することができるので、言うまでもない。ここで使用される専門用語が、独占的に特別な態様の記載の目的に役立ち、そして、本発明の保護の範囲を制限することが意図されないことは、さらにその上言うまでもない。ここで添付の特許請求の範囲を含む明細書で使用されるとおり、単数における語形式、例えば、「a」または「the」などは、文脈が別途、具体的に指し示さない限り、複数形における同等物を含む。例えば、「化合物」への言及は、単一化合物または複数の化合物を含み、それは、順番に同一でもよいか種々でもよく、または、「方法」への言及は、当業者に公知である同等のステップおよび方法を含む。特定の特色を「含む」としての構成要件への言及は、その構成要件が、それらの特色を含むが、他の特色が、その構成要件を実行不可能にさせない限り、それらの存在を除外しない意味として解釈されるだろう。
実験
本発明に従う化合物は、様々なパラメータおよび実験結果によって立証されるとおり、有利な特性を呈する。本発明に従う化合物の分析および特徴づけのために使用される実験的方法は、すべてのそれらの形態で、下で提供される。
本発明に従う化合物は、様々なパラメータおよび実験結果によって立証されるとおり、有利な特性を呈する。本発明に従う化合物の分析および特徴づけのために使用される実験的方法は、すべてのそれらの形態で、下で提供される。
アッセイ
キナーゼ活性の測定は、当業者にとって周知の技法である。基質、例えばヒストン(Alessi et al. (1996) FEBS Lett. 399(3): 333)または塩基性ミエリンタンパク質を使用するキナーゼ活性の決定のための一般的な試験システムは、論文(Campos-Gonzalez & Glenney (1992) JBC 267: 14535)中に記載されている。様々なアッセイシステムは、キナーゼ阻害剤の同定のために利用可能である。シンチレーション近接アッセイ(Sorg et al. (2002) J Biomolecular Screening 7: 11)およびフラシュプレートアッセイにおいて、基質としてのタンパク質またはペプチドの放射性リン酸化は、ATPを使用して、測定される。阻害性化合物の存在下で、減少した放射性シグナルまたは全くないことは、検出可能である。さらにその上、均一な時間分解蛍光共鳴エネルギー移動(HTR-FRET)、および蛍光分極(FP)技術は、アッセイ方法として有用である(Sills et al. (2002) J Biomolecular Screening 191)。他の非放射性ELISA方法は、特異的なホスホ-抗体(phospho-AB)を使用する。ホスホ-ABは、リン酸化された基質のみを結合する。この結合は、第2のペルオキシダーゼ接合された抗ヒツジ抗体を使用するケミルミネッセンスによって、検出されることができる。
本発明の目的ために、関連のある化合物のオンターゲット特性は、以下のアッセイを使用して、評価された:
キナーゼ活性の測定は、当業者にとって周知の技法である。基質、例えばヒストン(Alessi et al. (1996) FEBS Lett. 399(3): 333)または塩基性ミエリンタンパク質を使用するキナーゼ活性の決定のための一般的な試験システムは、論文(Campos-Gonzalez & Glenney (1992) JBC 267: 14535)中に記載されている。様々なアッセイシステムは、キナーゼ阻害剤の同定のために利用可能である。シンチレーション近接アッセイ(Sorg et al. (2002) J Biomolecular Screening 7: 11)およびフラシュプレートアッセイにおいて、基質としてのタンパク質またはペプチドの放射性リン酸化は、ATPを使用して、測定される。阻害性化合物の存在下で、減少した放射性シグナルまたは全くないことは、検出可能である。さらにその上、均一な時間分解蛍光共鳴エネルギー移動(HTR-FRET)、および蛍光分極(FP)技術は、アッセイ方法として有用である(Sills et al. (2002) J Biomolecular Screening 191)。他の非放射性ELISA方法は、特異的なホスホ-抗体(phospho-AB)を使用する。ホスホ-ABは、リン酸化された基質のみを結合する。この結合は、第2のペルオキシダーゼ接合された抗ヒツジ抗体を使用するケミルミネッセンスによって、検出されることができる。
本発明の目的ために、関連のある化合物のオンターゲット特性は、以下のアッセイを使用して、評価された:
ATMキナーゼアッセイ-ATM阻害(IC50ATM)の決定:
IC50値は、生化学ATMキナーゼアッセイの助けを借りて、決定された。
アッセイは、2つのステップから成る:
酵素反応および検出ステップ。
最初に、ATM(突然変異した血管拡張性失調症)タンパク質および試験物質は、基質タンパク質p53およびATPの添加により、種々の濃度でインキュベートされる。ATMは、アミノ酸S15を含む、いくつかの位置で、p53のリン酸化を媒介する。リン酸化されたp53の量は、特異的抗体およびTR-FRET技法の助けを借りて、決定される。酵素のATMアッセイは、TR-FRET(HTRF(商標)、Cisbio Bioassays)ベースの384-ウェルアッセイとして、実行される。第1ステップにおいて、精製されたヒト組み換えATM(ヒトATM、完全長、GenBank ID nM_000051、哺乳動物細胞株において発現)は、陰性または中性の対照としての試験物質なしで、様々な濃度のATM阻害剤によって、15分間、アッセイ緩衝液中で、インキュベートされる。アッセイ緩衝液は、25mmのHEPES pH8.0と、10mmのMg(CH3COO)2と、1mmのMnCl2と、0.1%BSAと、0.01%Brij(登録商標)35と、5mMのジチオトレイトール(DTT)とを備える。試験物質溶液は、ECHO555(Labcyte)を使用するマイクロプレートの中に、分配された。第2ステップにおいて、精製されたヒト組み換えc-myc-標識化p53(ヒトp53、完全長、GenBank ID BC003596、Sf21昆虫細胞において発現)およびATPが、加えられ、および、反応混合物は、22℃で30~35分間、インキュベートされる。薬理学的に関連のあるアッセイ容量は、5μlである。反応混合物のインキュベーションの間のアッセイの最終的な濃度は、0.3~0.4nM ATM、50~75nm p53および10μM ATPである。酵素反応は、EDTAの添加によって止められる。ATPの存在下でのATM媒介反応の結果としてのリン酸化されたp53の形成は、FRETを可能にする特異的抗体[ドナーとしてのフルオロホレンユーロピウム(Eu)およびアクセプターとしてのd2により標識化された]を経て、検出される。抗体含有停止液の2μl(12.5mM HEPES pH8.0、12.5mMEDTA、30mM塩化ナトリウム、300mMフッ化カリウム、0.1006%Tween-20、0.005%Brij(登録商標)35、0.21nM抗-ホスホ-p53(ser15)-Eu抗体、および15nM抗-cmyc-d2抗体)が、反応混合物に、加えられる。通常2時間(1.5と15時間の間)のシグナル発生のためのインキュベーションの後、プレートは、TRFモード(およびレーザー励起を伴う)を使用するプレートリーダー(EnVision,PerKinElmer)で、分析される。340nMの波長でのドナーユーロピウムの励起の後、665nMでのアクセプターd2、615 nMでのドナーEuの両方の、放射された蛍光光が、測定される。リン酸化されたp53の量は、放射される光の量の係数、すなわち665nmおよび615nmでの相対的な蛍光単位(RFU)と、直接比例する。測定データは、Genedata Screenerソフトウェアによって、処理された。IC50の決定は、とりわけ、非線形回帰分析法によって用量/作用曲線をデータポイントに合わせることによって、実行される。
IC50=半減-最大阻害濃度
ATP=アデノシン三リン酸
TR-FRET=時間分解蛍光共鳴エネルギー移動
HTRF(登録商標)=均一な時間分解蛍光
HEPES=2-(4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジニル)エタンスルホン酸
Mg(CH3COO)2=酢酸マグネシウム
MnCl2=塩化マンガン(II)
BSA=ウシ血清アルブミン
EDTA=エチレンジアミンテトラアセタート
TRF=時間分解蛍光
略語は、特に明記しない限り、全体に適用される。
1000μMのATP濃度でのIC50値を決定するためのアッセイは、前記ATP濃度のみにおいて、上のアッセイと異なる。
IC50値は、生化学ATMキナーゼアッセイの助けを借りて、決定された。
アッセイは、2つのステップから成る:
酵素反応および検出ステップ。
最初に、ATM(突然変異した血管拡張性失調症)タンパク質および試験物質は、基質タンパク質p53およびATPの添加により、種々の濃度でインキュベートされる。ATMは、アミノ酸S15を含む、いくつかの位置で、p53のリン酸化を媒介する。リン酸化されたp53の量は、特異的抗体およびTR-FRET技法の助けを借りて、決定される。酵素のATMアッセイは、TR-FRET(HTRF(商標)、Cisbio Bioassays)ベースの384-ウェルアッセイとして、実行される。第1ステップにおいて、精製されたヒト組み換えATM(ヒトATM、完全長、GenBank ID nM_000051、哺乳動物細胞株において発現)は、陰性または中性の対照としての試験物質なしで、様々な濃度のATM阻害剤によって、15分間、アッセイ緩衝液中で、インキュベートされる。アッセイ緩衝液は、25mmのHEPES pH8.0と、10mmのMg(CH3COO)2と、1mmのMnCl2と、0.1%BSAと、0.01%Brij(登録商標)35と、5mMのジチオトレイトール(DTT)とを備える。試験物質溶液は、ECHO555(Labcyte)を使用するマイクロプレートの中に、分配された。第2ステップにおいて、精製されたヒト組み換えc-myc-標識化p53(ヒトp53、完全長、GenBank ID BC003596、Sf21昆虫細胞において発現)およびATPが、加えられ、および、反応混合物は、22℃で30~35分間、インキュベートされる。薬理学的に関連のあるアッセイ容量は、5μlである。反応混合物のインキュベーションの間のアッセイの最終的な濃度は、0.3~0.4nM ATM、50~75nm p53および10μM ATPである。酵素反応は、EDTAの添加によって止められる。ATPの存在下でのATM媒介反応の結果としてのリン酸化されたp53の形成は、FRETを可能にする特異的抗体[ドナーとしてのフルオロホレンユーロピウム(Eu)およびアクセプターとしてのd2により標識化された]を経て、検出される。抗体含有停止液の2μl(12.5mM HEPES pH8.0、12.5mMEDTA、30mM塩化ナトリウム、300mMフッ化カリウム、0.1006%Tween-20、0.005%Brij(登録商標)35、0.21nM抗-ホスホ-p53(ser15)-Eu抗体、および15nM抗-cmyc-d2抗体)が、反応混合物に、加えられる。通常2時間(1.5と15時間の間)のシグナル発生のためのインキュベーションの後、プレートは、TRFモード(およびレーザー励起を伴う)を使用するプレートリーダー(EnVision,PerKinElmer)で、分析される。340nMの波長でのドナーユーロピウムの励起の後、665nMでのアクセプターd2、615 nMでのドナーEuの両方の、放射された蛍光光が、測定される。リン酸化されたp53の量は、放射される光の量の係数、すなわち665nmおよび615nmでの相対的な蛍光単位(RFU)と、直接比例する。測定データは、Genedata Screenerソフトウェアによって、処理された。IC50の決定は、とりわけ、非線形回帰分析法によって用量/作用曲線をデータポイントに合わせることによって、実行される。
IC50=半減-最大阻害濃度
ATP=アデノシン三リン酸
TR-FRET=時間分解蛍光共鳴エネルギー移動
HTRF(登録商標)=均一な時間分解蛍光
HEPES=2-(4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジニル)エタンスルホン酸
Mg(CH3COO)2=酢酸マグネシウム
MnCl2=塩化マンガン(II)
BSA=ウシ血清アルブミン
EDTA=エチレンジアミンテトラアセタート
TRF=時間分解蛍光
略語は、特に明記しない限り、全体に適用される。
1000μMのATP濃度でのIC50値を決定するためのアッセイは、前記ATP濃度のみにおいて、上のアッセイと異なる。
細胞のpCHK2アッセイ:
アミノ酸トレオニン68でのタンパク質キナーゼCHK2(チェックポイントキナーゼ2)のリン酸化を阻害する物質の同定のために、免疫蛍光法ベースの「ハイコンテント」分析アッセイは、HCT116細胞において、使用された。
アミノ酸トレオニン68でのタンパク質キナーゼCHK2(チェックポイントキナーゼ2)のリン酸化を阻害する物質の同定のために、免疫蛍光法ベースの「ハイコンテント」分析アッセイは、HCT116細胞において、使用された。
ヒト結腸癌腫細胞株HCT116におけるCHK2(phospho-Thr68)のブレオマイシン-誘導リン酸化の阻害剤の同定のためのin vitro細胞ベースの免疫蛍光法アッセイ:
HCT116細胞は、培養培地(DMEM高グルコース、2mM GlutaMax、1mMピルビン酸ナトリウム、10%FCS)の384-ウェルプレート中に定義された細胞密度において播かれ、37℃で終夜および10%のCO2でインキュベートされる。以下の日に、試験物質が、10μMブレオマイシンと組み合わせて、定義された濃度範囲(1nMから30nMまで)において添加され、溶媒DMSOの濃度は、0.5%で一定に保たれる。37℃で4時間および10%のCO2でインキュベートの後、細胞は、固定され(5分、PBS中4%ホルムアルデヒド)、透過化処理され(10分、PBS中の0.2%Triton X100)、および、非特異的結合部位をブロックした後(10%ヤギ血清、PBS中1%BSA)、特異的抗pCHK2抗体とともに、終夜4℃でインキュベートされる(細胞シグナル伝達#2661)。pCHK2(Thr68)は、Alexa488標識化第2抗ウサギIgG抗体を使用して、決定される。プロピジウムヨーダイドによるDNAの平行染色は、細胞数の決定を可能にする。pCHK2シグナルは、高含有量撮影装置(Molecular Devices IMX Ultra)および自動画像解析を使用して、機器に属するMetaXpressソフトウェアを使用して、検出される。定義されたバックグラウンドの上のpCHK2シグナルを有する細胞核の数が、決定される。
DMEM:Dulbecco修飾Eagle培地;FCS:ウシ胎仔血清、PBS:ホスファート緩衝食塩水(略語は、一貫して、特記しない限りあてはまる)
さらにその上、他のキナーゼの効果、とりわけ阻害、および、よって本発明に従う化合物の選択性は、以下のアッセイの助けを借りて決定されることができる:
HCT116細胞は、培養培地(DMEM高グルコース、2mM GlutaMax、1mMピルビン酸ナトリウム、10%FCS)の384-ウェルプレート中に定義された細胞密度において播かれ、37℃で終夜および10%のCO2でインキュベートされる。以下の日に、試験物質が、10μMブレオマイシンと組み合わせて、定義された濃度範囲(1nMから30nMまで)において添加され、溶媒DMSOの濃度は、0.5%で一定に保たれる。37℃で4時間および10%のCO2でインキュベートの後、細胞は、固定され(5分、PBS中4%ホルムアルデヒド)、透過化処理され(10分、PBS中の0.2%Triton X100)、および、非特異的結合部位をブロックした後(10%ヤギ血清、PBS中1%BSA)、特異的抗pCHK2抗体とともに、終夜4℃でインキュベートされる(細胞シグナル伝達#2661)。pCHK2(Thr68)は、Alexa488標識化第2抗ウサギIgG抗体を使用して、決定される。プロピジウムヨーダイドによるDNAの平行染色は、細胞数の決定を可能にする。pCHK2シグナルは、高含有量撮影装置(Molecular Devices IMX Ultra)および自動画像解析を使用して、機器に属するMetaXpressソフトウェアを使用して、検出される。定義されたバックグラウンドの上のpCHK2シグナルを有する細胞核の数が、決定される。
DMEM:Dulbecco修飾Eagle培地;FCS:ウシ胎仔血清、PBS:ホスファート緩衝食塩水(略語は、一貫して、特記しない限りあてはまる)
さらにその上、他のキナーゼの効果、とりわけ阻害、および、よって本発明に従う化合物の選択性は、以下のアッセイの助けを借りて決定されることができる:
ATR/ATRIPキナーゼアッセイ
IC50値は、ATR/ATRIP酵素のアッセイによって決定された。アッセイは、2つのステップを含む:酵素反応および検出ステップ。第1に、ATR/ATRIPタンパク質の混合物(血管拡張性失調症およびRad3-関連タンパク質/ATR相互作用タンパク質)、種々の濃度での問題の化合物、基質タンパク質としてのp53、およびアデノシン三リン酸が、アッセイ緩衝液においてインキュベートされる。ATRは、Ser15および他の残基でp53をリン酸化する。リン酸化されたp53の量は、次いで、特異的抗体およびTR-FRETアッセイ技術を使用して、検出される。
IC50値は、ATR/ATRIP酵素のアッセイによって決定された。アッセイは、2つのステップを含む:酵素反応および検出ステップ。第1に、ATR/ATRIPタンパク質の混合物(血管拡張性失調症およびRad3-関連タンパク質/ATR相互作用タンパク質)、種々の濃度での問題の化合物、基質タンパク質としてのp53、およびアデノシン三リン酸が、アッセイ緩衝液においてインキュベートされる。ATRは、Ser15および他の残基でp53をリン酸化する。リン酸化されたp53の量は、次いで、特異的抗体およびTR-FRETアッセイ技術を使用して、検出される。
詳細には:ATR/ATRIP酵素アッセイは、TR-FRET-(HTRF(商標),Cisbio Bioassays)ベースの384-ウェルアッセイとして遂行される。第1ステップにおいて、精製されたヒト組み換えATR/ATRIP(ヒトATR、完全長、GenBank ID:NM_001184.3、およびヒトATRIP、完全長、GenBank ID AF451323.1、哺乳類の細胞株において同時発現される)は、種々の濃度の試験化合物とともにまたは試験化合物とともにではなく(陰性対照として)、15分間22℃で、アッセイ緩衝液中で、インキュベートされる。アッセイ緩衝液は、25mM HEPES pH 8.0、10mM Mg(CH3COO)2、1mM MnCl2、0.1%BSA、0.01%Brij(登録商標)35、および5mMジチオトレイトール(DTT)を含有する。Echo555(Labcyte)は、化合物溶液の分配のために使用される。次いで、第2ステップで、精製されたヒト組み換えcmycタグ付けされたp53(ヒトp53、全長、GenBank ID:BC003596(Sf21昆虫細胞において表現される))およびATPは加えられる、そして、反応混合物は、22℃で、25~35分間、典型的に25分インキュベートされる。薬理学的に関連のあるアッセイ容量は5μlである。反応混合物のインキュベーションの間のアッセイの最終的な濃度は0.3~0.5nM、典型的に0.3nM、ATR/ATRIP、50nm p53および0.5μM ATPである)。酵素反応は、EDTAの添加によって止められる。ATPの存在下でのATR媒介反応の結果としてのリン酸化されたp53の発生は、FRETを可能にする特異的抗体[ドナーとしてのフルオロホアユーロピウム(Eu)およびアクセプターとしてのd2により標識化された]を使用して、検出される。この目的のために、抗体含有停止液の2μl(12.5mM HEPES pH8.0、125mM EDTA、30mM塩化ナトリウム、300mMフッ化カリウム、0.006%Tween-20、0.005%Brij(登録商標)35、0.21nM抗-ホスホ-p53(ser15)-Eu抗体、15nM抗-cmyc-d2抗体)が、反応混合物に、加えられる。2時間のシグナル発生に続いて、プレートは、レーザー励起を伴うTRFモードを使用して、Envision(PerkinElmer)マイクロプレートリーダーで、分析される。340nmでのドナーユーロピウムの励起において、665nmでのアクセプターd2のならびに615nmでのドナーEuからの放射された蛍光光が、測定される。リン酸化されたp53の量は、放射される光の量の比率、すなわち665nmおよび615nmでの相対的な蛍光単位(RFU)の比率と、直接比例する。データは、Genedata Screenerソフトウェアを使用して、処理される。とりわけ、IC50値は、非線形回帰分析法を使用して、データポイントに用量反応曲線を合わせることによって、通常の方法で決定される。
略語に関しては、上記リストを参照。
略語に関しては、上記リストを参照。
pCHK1細胞のアッセイ
Chk1キナーゼは、ATRの下流に作用して、DNA損傷チェックポイント対照での鍵となる役割を有する。Chk1の活性化は、Ser317およびSer345(ATRによるリン酸化/活性化のための優先的な標的とみなされる)のリン酸化に関わり、ブロックされたDNA複製および遺伝子毒性ストレスの特定の形態に応答して、出現する。セリン345のリン酸化は、チェックポイント活性化の後に、核にChk1を限局するのに役立つ。
Chk1キナーゼは、ATRの下流に作用して、DNA損傷チェックポイント対照での鍵となる役割を有する。Chk1の活性化は、Ser317およびSer345(ATRによるリン酸化/活性化のための優先的な標的とみなされる)のリン酸化に関わり、ブロックされたDNA複製および遺伝子毒性ストレスの特定の形態に応答して、出現する。セリン345のリン酸化は、チェックポイント活性化の後に、核にChk1を限局するのに役立つ。
このアッセイは、免疫細胞化学的手順およびハイコンテント画像化を使用して、HT29結腸腺癌細胞におけるChk1(セリン345)のリン酸化の減少、続く化合物とヒドロキシ尿素(dNTP枯渇により、フォーク遅延を推進する)との処置を、測定する。
アッセイのために、HT29細胞は、培養培地中で培養され(Greiner384ウェルプレート、black, μclear #781090中へ、DMEM高グルコース(フェノールレッドなし)、2mM Glutamax、1mM Pyruvate、10% FCS)(2500細胞/ウェル/30μl)、および、37℃で少なくとも20時間、10%CO2および90%rHで、インキュベートされる。希釈された試験化合物(最終1nM~30μM)およびヒドロキシ尿素(最終3mM)が、同時に加えられ、そして、細胞は、37℃で4時間、インキュベートされる。100%MeOH(-20℃冷却)による固定/透過化処理、および0.2%TritonX-100による透過化処理の後、完全な免疫細胞化学的手順が、特異的抗pChk1抗体(細胞シグナル伝達、#2348BF)および蛍光標識二次抗体(AlexaFluor(登録商標)488ヤギ抗ウサギF(ab’)2フラグメント、Invitrogen A11070)および細胞計数のための平行核染色を使用して、遂行される。
核局在化pChk1シグナルは、ImageXpress Ultraハイコンテントリーダー上で検出され、%陽性細胞(核)として報告される。
核局在化pChk1シグナルは、ImageXpress Ultraハイコンテントリーダー上で検出され、%陽性細胞(核)として報告される。
DNA-PKアッセイ
キナーゼアッセイは、384-ウェルアッセイベースのHTRF(登録商標)として遂行された。第1ステップにおいて、DNA-PKタンパク質複合体は、22℃で15分間、試験化合物の有無にかかわらず、インキュベートされた。STK-基質1-ビオチン(Cisbio)、Mg-ATP、DNA、およびスタウロスポリンの添加の後、反応混合物が、22℃で、60~80分間(DNA-PKタンパク質複合体の活性に応じて)、インキュベートされた。
キナーゼアッセイは、384-ウェルアッセイベースのHTRF(登録商標)として遂行された。第1ステップにおいて、DNA-PKタンパク質複合体は、22℃で15分間、試験化合物の有無にかかわらず、インキュベートされた。STK-基質1-ビオチン(Cisbio)、Mg-ATP、DNA、およびスタウロスポリンの添加の後、反応混合物が、22℃で、60~80分間(DNA-PKタンパク質複合体の活性に応じて)、インキュベートされた。
Echo555(Labcyte)は、化合物溶液の分配のために使用された。アッセイ緩衝液は、25mM HEPES pH7.4、11mM MgCl2、80mM KCl、0.45mM EDTA、および0.5mM EGTAから成り、および、1mMジチオトレイトール(DTT)、0.17%BSA、および0.01%Tween(登録商標)20を含有した。薬理学的に関連のある容量は、5μlであった。反応混合物のインキュベーションの間のアッセイにおける最終濃度は、50~100ng/ウェルDNA-PKタンパク質複合体(DNA-PKタンパク質複合体の活性に応じて)、1μM STK-基質1-ビオチン、10μM Mg-ATP、仔ウシ胸腺からの80ng/ウェルDNA、および1μMスタウロスポリンであった。酵素反応は、EDTAの添加によって止められた。DNA-PK媒介反応の結果としてのリン酸化されたSTK-基質1-ビオチンの発生は、ドナーとしての、ユーロピウム(Eu)によって標識された特異的抗ホスホSTK-抗体(Cisbio)、および、FRETを許すアクセプターとしての、XL665(Cisbio)によって標識されたストレプトアビジンを介して、検出された。この目的のために、抗体およびストレプトアビジン含有停止液(12.5mM HEPES pH8.0、125mM EDTA、30mM塩化ナトリウム、300mMフッ化カリウム、0.006%Tween-20、0.005%Brij(登録商標)35、0.179nM抗-ホスホ-STK抗体、160nMストレプトアビジン-XL665)の4μlが、反応混合物に加えられた。1時間の信号発生の後、プレートは、RubystarまたはPherastarマイクロプレートリーダー(BMG Labtech)上で、分析された。リン酸化された基質の量は、620 nm(基準波長ユーロピウム)での単位に対する放射波長665 nm(XL665のホスホペプチド感受性波長/放射)での蛍光単位(励起波長337 nm)の比率に、直接比例した。IC50-値は、Genedata Screener(登録商標)ソフトウェアを使用して、算出された(Molecular Cancer Therapeutics 2003、1257-1264;DNA-dependent protein kinase inhibitors as drug candidates for the treatment of cancer; A. Kashishian, H. Douangpanya, D. Clark, S. T. Schlachter, C. Todd Eary, J. G. Schiro, H. Huang, L. E. Burgess, E. A. Kesicki, and J. Halbrook.)。
pDNA-PK細胞のアッセイ
HCT116細胞は、37℃でおよび10%CO2で、10%ウシ胎仔血清および2mMグルタミンとともに、MEMアルファ培地中で、培養される。細胞は、トリプシン/EDTAを使用して培養容器の底から、分離され、遠心管中で遠心分離され、新鮮な培地に取り込まれ、そして、細胞密度が、決定された。100,000の細胞は、24-ウェル細胞培養プレートのウェル当たり培養培地1ml中に播種されて、終夜培養された。次の日に、新鮮な培養培地中の10μMブレオマイシン(DNAインターカレーターおよびDNA二本鎖ブレーカーインデューサー)および試験物質は、細胞に加えられ、さらに6時間培養された。細胞溶解が、次いで遂行され、そして、細胞可溶化物は、96ウェルELISAプレート(Sigma-Aldrich WH0005591M2:全DNA-PK、Abcam ab18192またはEpitomics EM09912:ホスホ-セリン2056 DNA-PK)上に配置され、それは、ブロックされ、DNA-PK特異的抗体でコートされて、4℃で終夜インキュベートされた。続いて、96ウェルELISAプレートは、検出抗体(Abcam ab79444:全DNA-PK)およびストレプトアビジン-HRP接合体で処置された。酵素反応の進展は、化学発光試薬を使用して実行され、ケミルミネッセンスは、MithrasLB940を使用して測定された。ホスホ-DNA-PK特異的抗体によるシグナルは、総タンパク質DNA-PKcに対する抗体によるシグナルに、標準化された。IC50値またはパーセンテージは、ブレオマイシン処置ビヒクル対照群(対照の100%)のシグナルレベルを参照することによって、決定された。DMSO対照は、ブランクとして使用された。
MEM:最小必須培地;
DMSO:ジメチルスルホキシド
HCT116細胞は、37℃でおよび10%CO2で、10%ウシ胎仔血清および2mMグルタミンとともに、MEMアルファ培地中で、培養される。細胞は、トリプシン/EDTAを使用して培養容器の底から、分離され、遠心管中で遠心分離され、新鮮な培地に取り込まれ、そして、細胞密度が、決定された。100,000の細胞は、24-ウェル細胞培養プレートのウェル当たり培養培地1ml中に播種されて、終夜培養された。次の日に、新鮮な培養培地中の10μMブレオマイシン(DNAインターカレーターおよびDNA二本鎖ブレーカーインデューサー)および試験物質は、細胞に加えられ、さらに6時間培養された。細胞溶解が、次いで遂行され、そして、細胞可溶化物は、96ウェルELISAプレート(Sigma-Aldrich WH0005591M2:全DNA-PK、Abcam ab18192またはEpitomics EM09912:ホスホ-セリン2056 DNA-PK)上に配置され、それは、ブロックされ、DNA-PK特異的抗体でコートされて、4℃で終夜インキュベートされた。続いて、96ウェルELISAプレートは、検出抗体(Abcam ab79444:全DNA-PK)およびストレプトアビジン-HRP接合体で処置された。酵素反応の進展は、化学発光試薬を使用して実行され、ケミルミネッセンスは、MithrasLB940を使用して測定された。ホスホ-DNA-PK特異的抗体によるシグナルは、総タンパク質DNA-PKcに対する抗体によるシグナルに、標準化された。IC50値またはパーセンテージは、ブレオマイシン処置ビヒクル対照群(対照の100%)のシグナルレベルを参照することによって、決定された。DMSO対照は、ブランクとして使用された。
MEM:最小必須培地;
DMSO:ジメチルスルホキシド
PDE2A1アッセイ
商業的に入手可能なアッセイが、使用され(Cerep、カタログref.4071、SOPn°1C1054)、それは、Sf9細胞において発現したヒト組み換え酵素を使用して、cAMPからの5’AMPの形成を測定することにより定量化されたヒトホスホジエステラーゼ-2A1の活性に対する化合物の効果を評価するために、設計されている。
商業的に入手可能なアッセイが、使用され(Cerep、カタログref.4071、SOPn°1C1054)、それは、Sf9細胞において発現したヒト組み換え酵素を使用して、cAMPからの5’AMPの形成を測定することにより定量化されたヒトホスホジエステラーゼ-2A1の活性に対する化合物の効果を評価するために、設計されている。
試験化合物、参照化合物または水(対照)が、40mM Tris/HCl(pH7.4)、8mM MgCl2、および1.7mM EGTA/NaOH、、1.8μM cAMP、および1μCi[3H]cAMPを含有する緩衝液に、加えられる。
その後で、反応は、酵素(約2.5U)の添加によって始まる、そして、混合物は、20分間ベースの対照測定のための22℃でインキュベートされる。
ベースの対象測定のため、酵素は、反応混合物から除かれる。
インキュベーションに続いて、SPAビーズが、加えられる。
振盪下22℃での30分後に、[3H]5’AMPの量が、シンチレーションカウンター(Topcount、Packard)で、定量される。
結果は、対照酵素活性のパーセント阻害として表現される。
その後で、反応は、酵素(約2.5U)の添加によって始まる、そして、混合物は、20分間ベースの対照測定のための22℃でインキュベートされる。
ベースの対象測定のため、酵素は、反応混合物から除かれる。
インキュベーションに続いて、SPAビーズが、加えられる。
振盪下22℃での30分後に、[3H]5’AMPの量が、シンチレーションカウンター(Topcount、Packard)で、定量される。
結果は、対照酵素活性のパーセント阻害として表現される。
標準阻害性参照化合物は、EHNA(エリスロ-9-(2-ヒドロキシ-3-ノニル)アデニン)であり、それは、各実験において、いくつかの濃度で試験され、そのIC50値が算出される阻害曲線を得る。
参照文献:
Maurice D.H., Ke H., Ahmad F., Wang Y., Chung J. and Manganiello V. C. (2014), Advances in targeting cyclic nucleotide phosphodiesterases, Nat. Rev. Drug Discov., Vol. 13 Issue 4: p. 290.
Maurice D.H., Ke H., Ahmad F., Wang Y., Chung J. and Manganiello V. C. (2014), Advances in targeting cyclic nucleotide phosphodiesterases, Nat. Rev. Drug Discov., Vol. 13 Issue 4: p. 290.
PDE4D2アッセイ
Cerepの商業的に入手可能なアッセイが、使用された(カタログref.4077;SOPn°1C1045)。アッセイは、Sf9細胞において発現したヒト組み換え酵素を使用して、cAMPからの5’AMPの形成を測定することにより定量された、ホスホジエステラーゼ-4D2の活性に対する試験化合物の効果を評価するために、設計されている。
Cerepの商業的に入手可能なアッセイが、使用された(カタログref.4077;SOPn°1C1045)。アッセイは、Sf9細胞において発現したヒト組み換え酵素を使用して、cAMPからの5’AMPの形成を測定することにより定量された、ホスホジエステラーゼ-4D2の活性に対する試験化合物の効果を評価するために、設計されている。
試験化合物、参照化合物または水(対照)は、40mMトリス/HCl(pH7.4)および8mM MgCl2、450nM cAMP、および0.0125μCi[3H]cAMPを含有する緩衝液に、加えられる。
その後で、反応は、酵素(約1.5U)の添加によって始まる、そして、混合物は、20分間ベースの対照測定のための22℃でインキュベートされる。
ベースの対照測定のために、酵素は、反応混合物から除かれる。
インキュベーションに続いて、SPA(シンチレーション近接アッセイ)ビーズが、加えられる。
振盪下22℃での30分後に、[3H]5’AMPの量が、シンチレーションカウンター(Topcount、Packard)で、定量される。
結果は、対照酵素活性のパーセント阻害として表現される。
標準阻害性参照化合物は、Ro 20-1724であり、それは、各実験においていくつかの濃度で試験され、そのIC50値が算出される阻害曲線を、得る。
上記の参照文献。
その後で、反応は、酵素(約1.5U)の添加によって始まる、そして、混合物は、20分間ベースの対照測定のための22℃でインキュベートされる。
ベースの対照測定のために、酵素は、反応混合物から除かれる。
インキュベーションに続いて、SPA(シンチレーション近接アッセイ)ビーズが、加えられる。
振盪下22℃での30分後に、[3H]5’AMPの量が、シンチレーションカウンター(Topcount、Packard)で、定量される。
結果は、対照酵素活性のパーセント阻害として表現される。
標準阻害性参照化合物は、Ro 20-1724であり、それは、各実験においていくつかの濃度で試験され、そのIC50値が算出される阻害曲線を、得る。
上記の参照文献。
PDE42A1アッセイ
商業的に入手可能なアッセイが、使用され(カタログref.4074、SOP n°1C1056)、それは、Sf9細胞において発現したヒト組み換え酵素を使用して、cAMPからの5’AMPの形成を測定することにより定量化されたヒトホスホジエステラーゼ-4A1Aの活性に対する化合物の効果を評価するために、設計されている。
商業的に入手可能なアッセイが、使用され(カタログref.4074、SOP n°1C1056)、それは、Sf9細胞において発現したヒト組み換え酵素を使用して、cAMPからの5’AMPの形成を測定することにより定量化されたヒトホスホジエステラーゼ-4A1Aの活性に対する化合物の効果を評価するために、設計されている。
試験化合物、参照化合物または水(対照)は、40mMトリス/HCl(pH7.4)および8mM MgCl2、450 nM cAMP、および0.25μCi[3H]cAMPを含有する緩衝液に、加えられる。
その後で、反応は、酵素(約10U)の添加によって始まり、そして、混合物は、22℃で20分間インキュベートされる。
ベースの対照測定のために、酵素は、反応混合物から除かれる。
インキュベーションに続いて、SPAビーズが、加えられる。
振盪下22℃での30分後に、[3H]5’AMPの量が、シンチレーションカウンター(Topcount、Packard)で、定量される。
結果は、対照酵素活性のパーセント阻害として表現される。
標準阻害性参照化合物は、Ro20-1724であり、それは、各実験においていくつかの濃度で試験され、そのIC50値が算出される阻害曲線を、得る。
上記の参照文献。
重要であると考えられる追加のパラメータは、以下の通りに決定される:
その後で、反応は、酵素(約10U)の添加によって始まり、そして、混合物は、22℃で20分間インキュベートされる。
ベースの対照測定のために、酵素は、反応混合物から除かれる。
インキュベーションに続いて、SPAビーズが、加えられる。
振盪下22℃での30分後に、[3H]5’AMPの量が、シンチレーションカウンター(Topcount、Packard)で、定量される。
結果は、対照酵素活性のパーセント阻害として表現される。
標準阻害性参照化合物は、Ro20-1724であり、それは、各実験においていくつかの濃度で試験され、そのIC50値が算出される阻害曲線を、得る。
上記の参照文献。
重要であると考えられる追加のパラメータは、以下の通りに決定される:
試験方法ミクロソームの安定性(固有のクリアランス)
ミクロソームの安定性アッセイは、in vitroクリアランス(Clint)を測定するために、使用される。アッセイは、代謝されるべきその固有の傾向に起因する化合物の消失の速度を測定することに関わる(「固有の」は、消失が透過性、結合等々などの他の特性に影響を受けず、in vivoクリアランスを定量する場合に、役割を果たすことを、意味する)。ミクロソームの安定性(固有のクリアランス、Clint)および、よって、代謝安定性は、μl/min/mgタンパク質として、一般に与えられる。1mgのミクロソームが、1分における化合物のクリアが可能であることが、溶液の容量として視覚化されることができる。
ミクロソームの安定性アッセイは、in vitroクリアランス(Clint)を測定するために、使用される。アッセイは、代謝されるべきその固有の傾向に起因する化合物の消失の速度を測定することに関わる(「固有の」は、消失が透過性、結合等々などの他の特性に影響を受けず、in vivoクリアランスを定量する場合に、役割を果たすことを、意味する)。ミクロソームの安定性(固有のクリアランス、Clint)および、よって、代謝安定性は、μl/min/mgタンパク質として、一般に与えられる。1mgのミクロソームが、1分における化合物のクリアが可能であることが、溶液の容量として視覚化されることができる。
計測
Tecan Genesisワークステーション(RSP150/8)が、ミクロソームのインキュベーションを遂行するために、使用された。
分析は、ABSciex API3000質量分析計に連結されたWaters ACQUITY UPLCシステムを使用して、実行された。
データ分析は、Assay Explorer(Symyx)を使用して、遂行された。
UPLC条件:
カラム:Acquity UPLC BEH C18、2.1x50mm、1.7μm(Waters)
移動相:A=水中の0.1%ギ酸;B=アセトニトリル
Tecan Genesisワークステーション(RSP150/8)が、ミクロソームのインキュベーションを遂行するために、使用された。
分析は、ABSciex API3000質量分析計に連結されたWaters ACQUITY UPLCシステムを使用して、実行された。
データ分析は、Assay Explorer(Symyx)を使用して、遂行された。
UPLC条件:
カラム:Acquity UPLC BEH C18、2.1x50mm、1.7μm(Waters)
移動相:A=水中の0.1%ギ酸;B=アセトニトリル
流速:0.750ml/分;検出:ESI、MRM;注入:10μL;カラム温度50℃
化学物質
・リン酸カリウム緩衝液:1mM MgCI2を含有する0.05Mリン酸カリウム緩衝液pH7.4
・NADPH(ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドホスファート):1.8mlリン酸カリウム緩衝液中の22.5mg NADPH-Na4
・アセトニトリル:50容量%アセトニトリル(1容量アセトニトリル、1容量水)
・DMSO:水中の20容量%DMSO
・リン酸塩緩衝液中の20mg/mlヒトまたはマウス肝ミクロソーム(タンパク質)/mlのストック溶液
・100%DMSO中の10mM化合物のストック溶液
ミクロソームインキュベーション
試験化合物の希釈は、100%DMSO中のそれぞれの化合物の10mMストック溶液から出発して、2ステップにおいて、なされた。第1の4μlストック溶液は、20容量%DMSOの196μlに、加えられた。第2ステップにおいて、第1の希釈の10μΙは、1590μlリン酸カリウム緩衝液に加えられ、最終的な化合物希釈物の1.25μΜの最終的な濃度を達成した。よって、アッセイにおける有機溶媒の量は、最小限(<1%)に保たれた。
試験化合物の希釈は、100%DMSO中のそれぞれの化合物の10mMストック溶液から出発して、2ステップにおいて、なされた。第1の4μlストック溶液は、20容量%DMSOの196μlに、加えられた。第2ステップにおいて、第1の希釈の10μΙは、1590μlリン酸カリウム緩衝液に加えられ、最終的な化合物希釈物の1.25μΜの最終的な濃度を達成した。よって、アッセイにおける有機溶媒の量は、最小限(<1%)に保たれた。
アッセイにおいて使用されたヒトまたはマウス肝ミクロソーム(タンパク質)溶液は、750μlストック溶液(20mg/ml)および2250μlリン酸カリウム緩衝液を混合することによって、5mg/mlの最終的な濃度へと、調製された。
インキュベーションは、96ディープウェルインキュベーションプレート上で、実行された。最終的な化合物希釈物のウェル当たり160μlが、インキュベーションプレートに移動された。各化合物希釈物の4つの試料が、アッセイされた。20μl/ウェル肝ミクロソーム溶液が、各ウェルに加えられ、そして、試料は、次いで37℃で5分間および800rpm撹拌で、プレインキュベートされた。2つの参照化合物(ベラパミルおよびデキストロメトルファン)は、システム性能を確保するためおよび比較のために、あらゆる実験において、および各種類(ヒトまたはマウスミクロソーム)のために、並行して、使用された。
別々のストッププレートに、160μlアセトニトリルが、ウェル当たり加えられた。
別々のストッププレートに、160μlアセトニトリルが、ウェル当たり加えられた。
プレインキュベーションの後、すなわち時間t1=0分で、インキュベートされた化合物溶液の18μl試料が、移動され、そして、ストッププレート上のウェル(アセトニトリルを含有する)当たり加えられ、反応を阻止した(0分の対照試料、化合物当たり4つの試料)。同時に、インキュベートされた参照化合物溶液の18μl試料は、移動されて、そして、時間t1=0分でのストッププレート上のウェル(アセトニトリルを含有する)当たり加えられ、そして、30分後(t4)、化合物の溶解性および化学安定性が、チェックされた。
反応を始めるために、26のμl NADPH溶液(補因子)が、プレインキュベートされた化合物希釈物、または、30分の対照試料として使用されるべき化合物希釈物、(ここで26μlリン酸塩緩衝液が、代わりに加えられた)を含むそれらのウェルを除く参照溶液を含むすべてのウェルに、加えられた。インキュベーションは、次いで37℃および800rpm撹拌で、継続された。
最終的なアッセイ溶液において(すなわち、化合物、ミクロソーム(タンパク質)、およびNADPHそれぞれのリン酸塩緩衝液を含む各ウェルにおいて)、最終的なタンパク質濃度は、0.5mg/ml、および化合物濃度は、1mg/mlであった。
インキュベーション時間のt2=5分、t3=10分、およびt4=20分の後(すなわち、反応の開始後)、インキュベートされた化合物溶液の20μl試料(化合物当たり4つの試料)および参照化合物溶液は、移動され、ストッププレート上のアセトニトリルのウェル当たりに、加えられた。
インキュベーション時間のt4=30分の後、インキュベートされた化合物溶液の20μl試料(化合物当たり4つの試料)および30分の対照試料(NADPHの代わりに緩衝液を含有する)の20μl試料、ならびにインキュベートされた参照化合物溶液の20μl試料が、移動されて、ストッププレート上のアセトニトリルのウェル当たりに、加えられた。
クエンチされた試料は、4℃で1時間、4000gで、遠心分離された。上清の80μlは、分析のため、96ウェルプレートに、LCM/MSによって移動された。
データ分析
各化合物のミクロソーム/代謝安定性は、経時的にLCM/MSピーク面積における変化の測定によって、決定された。データは、対数線形モデルに従い、Michaelis/Mentenに沿って、適合された。Clint値は、ミクロソームの量(0.5mg/ml)で割った時間プロット当たりの線形対数変換濃度の傾き(k)から、算出される:Clint(μl/min/mgタンパク質)=k*1000/タンパク質濃度。ssay Explorerソフトウェアは、低下の傾きkを自動的に算出するために、使用された。
各化合物のミクロソーム/代謝安定性は、経時的にLCM/MSピーク面積における変化の測定によって、決定された。データは、対数線形モデルに従い、Michaelis/Mentenに沿って、適合された。Clint値は、ミクロソームの量(0.5mg/ml)で割った時間プロット当たりの線形対数変換濃度の傾き(k)から、算出される:Clint(μl/min/mgタンパク質)=k*1000/タンパク質濃度。ssay Explorerソフトウェアは、低下の傾きkを自動的に算出するために、使用された。
Kv11.1(hERG)イオンチャネル活性(パッチクランプアッセイ)
検出のための方法およびKv11.1(hERG)チャンネルを妨げる試験物質の特徴づけ:Kv11.1(hERG、ヒト遅延整流性カリウムイオンチャンネル遺伝子)は、心室心筋細胞において、細胞の再分極のための中心の役割を果たすカリウムチャンネルである。
検出のための方法およびKv11.1(hERG)チャンネルを妨げる試験物質の特徴づけ:Kv11.1(hERG、ヒト遅延整流性カリウムイオンチャンネル遺伝子)は、心室心筋細胞において、細胞の再分極のための中心の役割を果たすカリウムチャンネルである。
パッチ-クランプ測定は、hERG遺伝子による安定なやり方においてトランスフェクトされたヒト胎生期腎臓細胞(HEK293)上の全細胞コンフィギュレーションにおいて、室温で、実行された。
全細胞コンフィギュレーションは、自動化されたパッチクランプデバイス(PatchlinerTM、Nanion Technologies, Munich)を使用して、実行された。これは、自動化された全細胞測定が、8つの細胞までが、同時に可能である、ガラスチップベースの、システムである。ガラスチップは、細胞が、減圧の適用によってGigasealへ移動されて、全細胞コンフィギュレーションにされる、定義されたサイズの穴を、有する。緩衝液、細胞懸濁液、および試験物質は、テフロンコートされたピペットを使用して、チップのマイクロチャンネルに、加えられた。
細胞は、-80mVの保持電位に締着された。Kv11.1チャンネルの物質に促進された阻害の測定のために、以下の電圧プロトコルが、10秒の間隔で適用された:51ms/-80mV、500ms/+40mV、500ms/-40mV、200ms/-80mV。漏れ電流は、P4の方法によって差し引かれる。細胞は、細胞外緩衝液(EC)中で再懸濁されて、チップに適用された。細胞が収集されたあと、シールは、シールエンハンサー緩衝液の添加によって、改善された。全細胞コンフィギュレーションに達するとすぐに、シールエンハンサー緩衝液は、洗い落とされて、細胞外緩衝液と、置き換えられた。1.5分間のECにおいて測定が開始された。DMSO(ビヒクル対照、DMSOの0.1%)が、次いで適用され、そして、対照電流が、3分間記録された。試験物質が、続いて二回同じ濃度において加えられ、そして、カリウム電流は3.5分間それぞれの場合において測定されていた。
10μMの開始濃度の試験物質の測定結果が、(-)50%効果(閾値)よりより小さかった場合(例えば(-)60%効果)、試験物質は、用量/作用関係を決定するために、濃度を増大させることにおいて、累積的に加えられ、各濃度は、5分間測定された。
使用された参照物質は、Kv11.1(hERG)イオンチャンネル遮断剤キニジンであった。試験物質およびキニジンの効果は、関連するビヒクル対照に標準化された。Kv11.1(hERG)チャンネル活性に対する効果は、-40mVでのカリウム電流から評価された。算出のために、電流は、それぞれの最終的なトレースのために評価された。Kv11.1(hERG)チャンネルの、試験物質によって誘発された阻害は、ビヒクル対照(DMSOの0.1%)に標準化された。
測定の間、試験物質のアリコートは、濃度決定のために選ばれた。試料は、すぐHPLCで測定され、そして、最終的な濃度は、較正曲線から決定された。
測定の間、試験物質のアリコートは、濃度決定のために選ばれた。試料は、すぐHPLCで測定され、そして、最終的な濃度は、較正曲線から決定された。
10μMの開始濃度での試験物質の測定結果が、(-)50%効果(閾値)より大きいか等しい場合(例えば、(-)30%効果、すなわち10μMの30%阻害)、Kiは、以下の式に従って算出される:Ki=1.0E-5×(100+%効果)/(-%効果)、[M]。
10μMの試験物質濃度での(-)30%効果の測定結果は、23μMのKiを与える。
10μMの試験物質濃度での(-)30%効果の測定結果は、23μMのKiを与える。
シトクロムP‐450酵素(CYP)
ヒト生物において、薬物物質は、それらの排泄を促進するために、水溶性化合物に酵素システムによって転換される。これらの酵素システムは、ミクロソームのシトクロムP‐450酵素、略してCYPを含む。アッセイは、化合物が、定義されたCYPアイソフォームのための強い阻害剤でもよいかどうか特定するために、設計されている。これは、組み換えCYPアイソフォーム、およびバキュロウイルスに感染された昆虫細胞における過剰発現によって得られた、それらのレダクターゼの使用に関わる。CYP反応は、NADPH再生条件の下でのCYP基質とともに試験される発光CYPアイソフォームの阻害を通して、遂行される。発光P450-GloTM基質は、カブトムシのルシフェリン((4s)-4,5-ジヒドロ-2-(6-ヒドロキシベンゾチアゾリル)-4-チアゾールカルボン酸またはD-ルシフェリン)、カブトムシからのホタルルシフェラーゼの基質の誘導体である。発光P450-GloTM基質は、直接ルシフェラーゼと反応せず、それぞれのCYPアイソフォームによって、ルシフェリン検出試薬(LDR)との反応で発光するルシフェリン生成物に、転換される。これは、光度を通して迅速に定量される酵素活性を、許す。阻害の範囲は、IC50値を決定することによって、測定される(Crespi et al., Methods Enzymol. 357:276-284, 2002)。以下の商業的に入手可能なスクリーニングシステム/アッセイが、使用される:P450-Glo(商標)CYP1A2スクリーニングシステム(Promega Corporation;V9770);P450-Glo(商標)CYP2C8アッセイ(Promega Corporation;V8782);P450-Glo(商標)CYP2C9スクリーニングシステム(Promega Corporation;V9790);P450-Glo(商標)CYP2C19スクリーニングシステム(Promega Corporation;V9880);P450-Glo(商標)CYP2D6スクリーニングシステム(Promega Corporation;V9880);P450-Glo(商標)GYP3A4スクリーニングシステム((Luciferin-PPXE)(Promega Corporation;V9910)。
バイオアベイラビリティ
ヒト生物において、薬物物質は、それらの排泄を促進するために、水溶性化合物に酵素システムによって転換される。これらの酵素システムは、ミクロソームのシトクロムP‐450酵素、略してCYPを含む。アッセイは、化合物が、定義されたCYPアイソフォームのための強い阻害剤でもよいかどうか特定するために、設計されている。これは、組み換えCYPアイソフォーム、およびバキュロウイルスに感染された昆虫細胞における過剰発現によって得られた、それらのレダクターゼの使用に関わる。CYP反応は、NADPH再生条件の下でのCYP基質とともに試験される発光CYPアイソフォームの阻害を通して、遂行される。発光P450-GloTM基質は、カブトムシのルシフェリン((4s)-4,5-ジヒドロ-2-(6-ヒドロキシベンゾチアゾリル)-4-チアゾールカルボン酸またはD-ルシフェリン)、カブトムシからのホタルルシフェラーゼの基質の誘導体である。発光P450-GloTM基質は、直接ルシフェラーゼと反応せず、それぞれのCYPアイソフォームによって、ルシフェリン検出試薬(LDR)との反応で発光するルシフェリン生成物に、転換される。これは、光度を通して迅速に定量される酵素活性を、許す。阻害の範囲は、IC50値を決定することによって、測定される(Crespi et al., Methods Enzymol. 357:276-284, 2002)。以下の商業的に入手可能なスクリーニングシステム/アッセイが、使用される:P450-Glo(商標)CYP1A2スクリーニングシステム(Promega Corporation;V9770);P450-Glo(商標)CYP2C8アッセイ(Promega Corporation;V8782);P450-Glo(商標)CYP2C9スクリーニングシステム(Promega Corporation;V9790);P450-Glo(商標)CYP2C19スクリーニングシステム(Promega Corporation;V9880);P450-Glo(商標)CYP2D6スクリーニングシステム(Promega Corporation;V9880);P450-Glo(商標)GYP3A4スクリーニングシステム((Luciferin-PPXE)(Promega Corporation;V9910)。
バイオアベイラビリティ
ヒトにおける予測されたバイオアビアビリティは、前臨床の種類における測定されたバイオアビアビリティに由来する:マウス、ラット、およびイヌ(ビーグル)は、ヒトにおける予測された薬理学的に有効な用量のために算出される(コンピューターでのGastroPlusシミュレーション)。
粉末X線回折(PXRD)方法:
X線粉末回折図(XRPD)、図7Bおよび10から19(および、その他)に描写されるものなどは、以下の方法論を使用して得られた:試料は、組合せの96-ウェルプレート(X線アモルファス箔を底として含む)、または、X線アモルファスフィルムの間において、調製された。測定は、Stoe StadiP 611回折計上の、Cu-Kα1放射線によって、透過ジオメトリーにおいて遂行された。スキャンは、それぞれ、同時に0~36°2θ(0.03°2θのステップ幅、1ステップにつき30秒)であるか、または1~65°2θ(0.015°2θのステップ幅、1ステップにつき15秒)をカバーしていた。
X線粉末回折図(XRPD)、図7Bおよび10から19(および、その他)に描写されるものなどは、以下の方法論を使用して得られた:試料は、組合せの96-ウェルプレート(X線アモルファス箔を底として含む)、または、X線アモルファスフィルムの間において、調製された。測定は、Stoe StadiP 611回折計上の、Cu-Kα1放射線によって、透過ジオメトリーにおいて遂行された。スキャンは、それぞれ、同時に0~36°2θ(0.03°2θのステップ幅、1ステップにつき30秒)であるか、または1~65°2θ(0.015°2θのステップ幅、1ステップにつき15秒)をカバーしていた。
単結晶X線回折:
単結晶X線構造データは、CuKα放射線を使用するCCD検出器を備える、AgilentからのSuperNova回折計を使用して、得られた。測定は、それぞれ、200K(形態H2)で、または、298K(形態A1、A2、A3、H1)で、遂行された。単結晶データは、結晶系および単位格子パラメータの決定のために、使用された。
単結晶X線構造データは、CuKα放射線を使用するCCD検出器を備える、AgilentからのSuperNova回折計を使用して、得られた。測定は、それぞれ、200K(形態H2)で、または、298K(形態A1、A2、A3、H1)で、遂行された。単結晶データは、結晶系および単位格子パラメータの決定のために、使用された。
示差走査熱量測定(DSC):
DSCスキャンは、窒素不活性気体雰囲気(50ml/分)を使用して、オートサンプラーを伴うMettler-Toledo熱流示差走査熱量計上で、取得された。概要スキャンは25~300℃、5℃/minで蓋の開いたAl40μLパンにおいて、実行された。
DSCスキャンは、窒素不活性気体雰囲気(50ml/分)を使用して、オートサンプラーを伴うMettler-Toledo熱流示差走査熱量計上で、取得された。概要スキャンは25~300℃、5℃/minで蓋の開いたAl40μLパンにおいて、実行された。
熱重量分析(TGA):
TGAスキャンは、窒素不活性気体雰囲気(50ml/分)を使用して、オートサンプラーを伴うMettler-Toledo Thermogravimetric Analyser上で、取得された。概要スキャンは、25~300℃、5℃/minで蓋のないAl100μLパンにおいて、実行された。実験は、同じ温度プロファイルを使用して、蓋のない空のAl100μLパンからのブランクランによって、ベースライン修正された。
TGAスキャンは、窒素不活性気体雰囲気(50ml/分)を使用して、オートサンプラーを伴うMettler-Toledo Thermogravimetric Analyser上で、取得された。概要スキャンは、25~300℃、5℃/minで蓋のないAl100μLパンにおいて、実行された。実験は、同じ温度プロファイルを使用して、蓋のない空のAl100μLパンからのブランクランによって、ベースライン修正された。
動的な蒸気収着(DVS):
DCS水蒸気収着等温曲線は、微量天秤およびインキュベーターを伴うDVS機器(DVS-Intrinsic, Surface Measurement Systems, SMS)により、取得された。粉末試料は、使い捨て可能なAlパンに正確に計量され、DVS機器の試料位置上に配置された。200mL/分の窒素全体のフォロー速度(乾燥したおよび湿った流れを組み合わせた)が、加湿のために使用された。水蒸気収着等温曲線は、25℃で、40%RH(相対湿度)から0%RHまでの最初の脱着セグメント1(10%RHステップを伴う)、0%RHから98%RHまでの吸着セグメント(それぞれ10%RHステップおよび最終的な8%RHステップを伴う)、および98%RHから0%RHまでの最後の脱着セグメント2(それぞれ最初の8%RHステップおよび10%RHステップを伴う)を使用して、取得された。すべてのRhステップのために、10分間の最小Rhステップ時間、および360分間の最大Rhステップ時間(タイムアウト)を伴い、平衡条件dm/dt≦0.0005重量%/分が、使用された。
DCS水蒸気収着等温曲線は、微量天秤およびインキュベーターを伴うDVS機器(DVS-Intrinsic, Surface Measurement Systems, SMS)により、取得された。粉末試料は、使い捨て可能なAlパンに正確に計量され、DVS機器の試料位置上に配置された。200mL/分の窒素全体のフォロー速度(乾燥したおよび湿った流れを組み合わせた)が、加湿のために使用された。水蒸気収着等温曲線は、25℃で、40%RH(相対湿度)から0%RHまでの最初の脱着セグメント1(10%RHステップを伴う)、0%RHから98%RHまでの吸着セグメント(それぞれ10%RHステップおよび最終的な8%RHステップを伴う)、および98%RHから0%RHまでの最後の脱着セグメント2(それぞれ最初の8%RHステップおよび10%RHステップを伴う)を使用して、取得された。すべてのRhステップのために、10分間の最小Rhステップ時間、および360分間の最大Rhステップ時間(タイムアウト)を伴い、平衡条件dm/dt≦0.0005重量%/分が、使用された。
固体形態のnon-sink溶解プロファイル:
固体形態のためのnon-sink溶解プロファイルは、APIの溶解量の決定のための時間分解試料採取を伴う、FaSSIF培地(pH6.5)中の過剰な固体成分を伴う振とう-フラスコ方法を使用して、取得された。約10~20mgの固体試料が、ガラスバイアルに計量された。それぞれの培地(37℃に予熱された)の7mlが、加えられ、そして、懸濁液は、37℃で450 rpmで振とうされた。5分、10分、15分、30分、60分、120分、24時間、および48時間後、1mlの懸濁液が、回収され、0.2μmシリンジフィルターで、濾過された。透明な濾過物は、溶解された化合物量/形態(APIとして称されてもよい)の量を測定するために、好適な希釈の後で、HPLCによって分析された。
固体形態のためのnon-sink溶解プロファイルは、APIの溶解量の決定のための時間分解試料採取を伴う、FaSSIF培地(pH6.5)中の過剰な固体成分を伴う振とう-フラスコ方法を使用して、取得された。約10~20mgの固体試料が、ガラスバイアルに計量された。それぞれの培地(37℃に予熱された)の7mlが、加えられ、そして、懸濁液は、37℃で450 rpmで振とうされた。5分、10分、15分、30分、60分、120分、24時間、および48時間後、1mlの懸濁液が、回収され、0.2μmシリンジフィルターで、濾過された。透明な濾過物は、溶解された化合物量/形態(APIとして称されてもよい)の量を測定するために、好適な希釈の後で、HPLCによって分析された。
FaSSIF:3mMのタウロコール酸ナトリウム;0.75mMレシチン;105.9mM塩化ナトリウム;28.4mMモノ塩基性ナトリウムホスファートおよび8.7mM水酸化ナトリウム、pH6.5
ph依存性溶解性および小型化non-sink溶解のためのHPLC方法:
溶解された化合物/形態のレベルは、以下の条件によって、HPLCによって分析された:
・カラムChromolith RP-18e 100~3mm
・溶媒A:水/ギ酸(999:1;v/v)
・溶媒B:アセトニトリル/ギ酸(999:1;v/v)
注入容量:5μL
カラム温度:37℃
HPLC-勾配:
ph依存性溶解性および小型化non-sink溶解のためのHPLC方法:
溶解された化合物/形態のレベルは、以下の条件によって、HPLCによって分析された:
・カラムChromolith RP-18e 100~3mm
・溶媒A:水/ギ酸(999:1;v/v)
・溶媒B:アセトニトリル/ギ酸(999:1;v/v)
注入容量:5μL
カラム温度:37℃
HPLC-勾配:
以下の例は、上で記載された発明を例示する;しかしながら、それらは、どんな形であれ、発明の範囲を限定することを、意図しない。例は、とりわけ、それらが、具体的に例示された特色または特色の組み合わせに制限されないような方法において、解釈されなければならないが、しかし、その代わりに、例示された特色は、発明の目的が達成される限り、自由に補正されることができるかまたは組み合わせられることができる。本発明の化合物、組み合わせ、および組成物の有益な効果は、このように関連する技術の当業者に公知の他の分析方法および実験的セットアップによって、決定されることもできる。同じく、調整方法に対する改変は、とりわけ反応条件において、当業者にきわめて明白である。
a.6-ブロモ-N-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-ニトロ-キノリン-4-アミンの合成
乾燥した窒素雰囲気の下で、N、N-ジメチルホルムアミド(5ml)中に溶解した3-フルオロ-5-メトキシピリジン-4-アミン(447 mg、3.02mmol)の溶液を、提供した。次いで、水素化ナトリウム(504mg、12.6mmol、60%)を溶液に加え、そして、5分間室温で、撹拌し続けた。次いで6-ブロモ-4-クロロ-7-メトキシ-3-ニトロ-キノリン(800mg、2.52mmol)を、反応混合物に加え、続いて15分間、室温で、撹拌し、次いで氷水(100ml)の添加をとおして反応をクエンチした。沈殿物を、ろ過して取り除き、氷水によって洗浄し、そして乾燥して、黄色の固体として1.00g(94%)の6-ブロモ-N-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-ニトロ-キノリン-4-アミンを、与えた。
乾燥した窒素雰囲気の下で、N、N-ジメチルホルムアミド(5ml)中に溶解した3-フルオロ-5-メトキシピリジン-4-アミン(447 mg、3.02mmol)の溶液を、提供した。次いで、水素化ナトリウム(504mg、12.6mmol、60%)を溶液に加え、そして、5分間室温で、撹拌し続けた。次いで6-ブロモ-4-クロロ-7-メトキシ-3-ニトロ-キノリン(800mg、2.52mmol)を、反応混合物に加え、続いて15分間、室温で、撹拌し、次いで氷水(100ml)の添加をとおして反応をクエンチした。沈殿物を、ろ過して取り除き、氷水によって洗浄し、そして乾燥して、黄色の固体として1.00g(94%)の6-ブロモ-N-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-ニトロ-キノリン-4-アミンを、与えた。
b.6-ブロモ-N4-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-キノリン-3,4-ジアミンの合成
メタノール(100ml)中に溶解した6-ブロモ-N-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-ニトロ-キノリン-4-アミン(990 mg、2.20mmol)を、保護窒素雰囲気の下で提供した。次いで、Raney-Ni(100 mg、1.17mmol)を溶液に加え、そして、反応混合物を、常圧で30分間水素雰囲気の下で撹拌した。窒素を導入した後に、懸濁液を濾過し、そして、濾過物を減圧下で乾燥させた。濾過物を、減圧下で乾燥物へとエバポレートした。残渣を、酢酸エチル/石油エーテルの混合物から、結晶化し、そして、黄色の固体として0.86g(99%)の6-ブロモ-N4-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-キノリン-3,4-ジアミンを産生した。
メタノール(100ml)中に溶解した6-ブロモ-N-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-ニトロ-キノリン-4-アミン(990 mg、2.20mmol)を、保護窒素雰囲気の下で提供した。次いで、Raney-Ni(100 mg、1.17mmol)を溶液に加え、そして、反応混合物を、常圧で30分間水素雰囲気の下で撹拌した。窒素を導入した後に、懸濁液を濾過し、そして、濾過物を減圧下で乾燥させた。濾過物を、減圧下で乾燥物へとエバポレートした。残渣を、酢酸エチル/石油エーテルの混合物から、結晶化し、そして、黄色の固体として0.86g(99%)の6-ブロモ-N4-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-キノリン-3,4-ジアミンを産生した。
c.8-ブロモ-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3H-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの合成
テトロヒドロフラン(20ml)中に溶解した6-ブロモ-N4-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-キノリン-3,4-ジアミン(0.85g、2.20mmol)の溶液を、提供した。次いで、1,1’-カルボニルジイミダゾール(1.84g、11.3mmol)およびHuenig-塩基(1.46g、11.3mmol)を、加えた。反応混合物を、40℃まで加熱し、16時間撹拌した。次いで、反応を、氷水(200ml)の添加によって、クエンチした。沈殿物を、ろ過して取り除き、氷水によって洗浄し、乾燥して、淡黄色固体として0.87g(94%)の8-ブロモ-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3H-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンを与えた。
d.8-ブロモ-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの合成
テトロヒドロフラン(20ml)中に溶解した6-ブロモ-N4-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-キノリン-3,4-ジアミン(0.85g、2.20mmol)の溶液を、提供した。次いで、1,1’-カルボニルジイミダゾール(1.84g、11.3mmol)およびHuenig-塩基(1.46g、11.3mmol)を、加えた。反応混合物を、40℃まで加熱し、16時間撹拌した。次いで、反応を、氷水(200ml)の添加によって、クエンチした。沈殿物を、ろ過して取り除き、氷水によって洗浄し、乾燥して、淡黄色固体として0.87g(94%)の8-ブロモ-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3H-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンを与えた。
d.8-ブロモ-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの合成
乾燥した保護窒素気体雰囲気中で、N、N-ジメチルホルムアミド(5ml)中に溶解した8-ブロモ-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3H-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(0.86g、1.94mmol)を、提供した。次いで、水素化ナトリウム(388mg、9.71mmol、60%)およびメチルヨーダイド(2.76g、19.4mmol)を、加えた。反応混合物を、室温で10分間、撹拌した。次いで、反応を、氷水(100ml)の添加によって、クエンチした。結果として生じた沈殿物を、濾過し、減圧下で乾燥して、淡黄色固体として0.70g(80%)の8-ブロモ-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンを、与えた。
e.1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの合成
密閉した装置中アルゴン不活性気体雰囲気の下で、1,4-ジオキサン(15ml)および水(5ml)中の、8-ブロモ-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(150mg、0.33mmol)、1-3-ジメチル-4-(テトラメチルの-1,3,2-ジオキソボロラン-2-イル)-1H-ピラゾール(88.4 mg、0.40mmol)、Pd(PPh3)4(76.6 mg、0.07mmol)、および炭酸カリウム(91.6 mg、0.66mmol)を、提供した。反応混合物を、2時間撹拌しながら、80℃まで加熱した。これを、続いて室温まで冷却し、反応混合物を減圧下で乾燥物に圧縮した。残渣を、シリカ(エチル・アセタート/メタノール=97:3、容量部)を使用して、クロマトグラフィーで精製した。溶出液を、乾燥物に圧縮し、そして、結果として生じる原料生成物を、手段または分取RP-HPLC(水/アセトニトリル)によって精製した。生成物画分を圧縮した後に、1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(70mg、47%)を、無色の固体として得た。
f.8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Ra)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロ-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンおよび8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロ-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの分離
上で得た1-(3-フルオロ-5-メトキシ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-8-(1,3-メチルピラゾール-4-イル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(50.0mg、0.11mmol)を、SFCを使用して、キラルHPLCを介して分離して、化合物1および2を、与えた。物質を、キラル・カラムLux Cellulose-2に適用し、溶媒としてCO2/2-プロパノール+0.5%のジエチルアミン(75:25)によって、5ml/分のフローで、および240nmの波長での検出を使用して、分離した。減圧で生成物画分を圧縮して、8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Ra)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(25.0mg、50%)および8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロ-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン)(22.1mg、44%)を、両方とも無色の固体として産生した。
例2:アトロプ異性体の単離および化合物1の精製
化合物1および2は、スキーム1において、および、図6において示すとおり、そして、以下に詳細に議論するとおり、化合物Yから、単離することができる。当業者は、下記のプロセスが、化合物3からの3-aおよび3-b、化合物4からの4-aおよび4-bならびに化合物5からの5-aおよび5-bのために、等しく適用できることを、認識するだろう。
化合物1および2は、スキーム1において、および、図6において示すとおり、そして、以下に詳細に議論するとおり、化合物Yから、単離することができる。当業者は、下記のプロセスが、化合物3からの3-aおよび3-b、化合物4からの4-aおよび4-bならびに化合物5からの5-aおよび5-bのために、等しく適用できることを、認識するだろう。
ステップ1:
1.200Lの反応器のなかに、アセトン(108L、20vol)、精製水(8.13L、1.5vol)、および化合物Y(5.42kg、1.0等量)を、20~25℃で加えた。
2.ジベンゾイル-L-酒石酸(4.33kg、1.0当量)によって充填した。
3.52~55℃まで加熱し、透明な溶液を与えて、52~55℃で0.5時間撹拌した。
4.20~25℃まで冷却した。
5.濾過し、そして、濾過ケークを、アセトン(5.4L、1vol)で、洗浄した。
6.ケークを収集し、そして、乾燥させて、L-塩B(化合物2のL-塩)(95.9%キラル純度の淡黄色固体)を、与えた。
7.母溶液を濃縮して、L-塩A(化合物1のL-塩)を、得た。
8.L-塩AおよびDCM(38L、7vol.)を100L反応器に、加え、飽和NaHCO3溶液によりpH8~9まで調整した。
1.200Lの反応器のなかに、アセトン(108L、20vol)、精製水(8.13L、1.5vol)、および化合物Y(5.42kg、1.0等量)を、20~25℃で加えた。
2.ジベンゾイル-L-酒石酸(4.33kg、1.0当量)によって充填した。
3.52~55℃まで加熱し、透明な溶液を与えて、52~55℃で0.5時間撹拌した。
4.20~25℃まで冷却した。
5.濾過し、そして、濾過ケークを、アセトン(5.4L、1vol)で、洗浄した。
6.ケークを収集し、そして、乾燥させて、L-塩B(化合物2のL-塩)(95.9%キラル純度の淡黄色固体)を、与えた。
7.母溶液を濃縮して、L-塩A(化合物1のL-塩)を、得た。
8.L-塩AおよびDCM(38L、7vol.)を100L反応器に、加え、飽和NaHCO3溶液によりpH8~9まで調整した。
9.ジクロロメタン(DCM)層を収集し、DCM(16.3L、3vol.)とともに飽和NaHCO3で抽出し、DCM層を合わせて、H2O(10.8L、2vol)でDCM層を、洗浄した。
10.DCM層を、濃縮した。
次いで、アセトン(5.4L、1vol)を、20~25℃で、加えた。
11.20~25℃で1時間、撹拌した。
12.濾過し、ケークを収集し、そして、乾燥して、化合物1(3.50kg、73.2%のキラル純度を有する白色固体、Y:64.6%)を与えた。
10.DCM層を、濃縮した。
次いで、アセトン(5.4L、1vol)を、20~25℃で、加えた。
11.20~25℃で1時間、撹拌した。
12.濾過し、ケークを収集し、そして、乾燥して、化合物1(3.50kg、73.2%のキラル純度を有する白色固体、Y:64.6%)を与えた。
ステップ2:
1.L-塩BおよびDCM(16.2L、3vol.)を50Lフラスコに、加え、飽和NaHCO3溶液によりpH8~9まで調整した。
2.DCM層を収集し、DCM(5.4L,1vol)で水性層を抽出し、DCM層を合わせて、H2O(5.4L、1vol)でDCM層を洗浄した。
3.二回減圧下40~50℃で、DCMを2‐エトキシエタノール(1.8L、0.3vol)と交換した。
4.5.4L(1vol)まで、2‐エトキシエタノールで容量を、調整した。
5.128~130℃まで加熱し、スラリーを与えて、128-130の℃で44時間、撹拌した。
6.IPC(比率49.5:50.5)。
7.15~20℃に冷却した。
8.濾過し、そして、メチル-3級ブチル-エーテル(2.7L、0.5vol)で、ケークを洗浄した。
9.ケークを収集し、乾燥させて、化合物Yを与えた(1.60kg、オフホワイトの固体、全収率:29.5%)。
1.L-塩BおよびDCM(16.2L、3vol.)を50Lフラスコに、加え、飽和NaHCO3溶液によりpH8~9まで調整した。
2.DCM層を収集し、DCM(5.4L,1vol)で水性層を抽出し、DCM層を合わせて、H2O(5.4L、1vol)でDCM層を洗浄した。
3.二回減圧下40~50℃で、DCMを2‐エトキシエタノール(1.8L、0.3vol)と交換した。
4.5.4L(1vol)まで、2‐エトキシエタノールで容量を、調整した。
5.128~130℃まで加熱し、スラリーを与えて、128-130の℃で44時間、撹拌した。
6.IPC(比率49.5:50.5)。
7.15~20℃に冷却した。
8.濾過し、そして、メチル-3級ブチル-エーテル(2.7L、0.5vol)で、ケークを洗浄した。
9.ケークを収集し、乾燥させて、化合物Yを与えた(1.60kg、オフホワイトの固体、全収率:29.5%)。
ステップ3:
1.20~25℃で、アセトン(70L,20vol)を100L反応器に、加え、撹拌し、そして、化合物1(3.5kg、1.0当量)を加え、水(5.3のL,1.5vol.)を、充填した。
1.20~25℃で、アセトン(70L,20vol)を100L反応器に、加え、撹拌し、そして、化合物1(3.5kg、1.0当量)を加え、水(5.3のL,1.5vol.)を、充填した。
2.35~40℃でジベンゾイル-D-酒石酸(2.8Kg,1.0当量)で充填し、52~55℃まで加熱して、透明な溶液を与え、52~55℃で0.5時間、撹拌した。
3.オイルバスで20~25℃まで冷却し、20~25℃で17時間、撹拌した。
4.濾過し、ケークをアセトン(3.5L、1vol)で、洗浄した。
5.ケークを収集して、D-塩A(化合物1のD-塩)を与えた(98.7%のキラル純度を伴う薄黄色固体)。
6.母溶液を、濃縮し、次いで、飽和NaHO3溶液(15.5L、3.5vol)およびH2O(15.5L、3.5vol)を、加えた。
7.20~25℃で0.5時間、撹拌した。
8.濾過し、H2O(3.5L,1vol)で、ケークを、洗浄した。
9.フィルターケークを収集し、乾燥させて、化合物Yを与えた(1.53kg、50.3:49.7の比率を伴う白色固体、Y:43.7%)。
3.オイルバスで20~25℃まで冷却し、20~25℃で17時間、撹拌した。
4.濾過し、ケークをアセトン(3.5L、1vol)で、洗浄した。
5.ケークを収集して、D-塩A(化合物1のD-塩)を与えた(98.7%のキラル純度を伴う薄黄色固体)。
6.母溶液を、濃縮し、次いで、飽和NaHO3溶液(15.5L、3.5vol)およびH2O(15.5L、3.5vol)を、加えた。
7.20~25℃で0.5時間、撹拌した。
8.濾過し、H2O(3.5L,1vol)で、ケークを、洗浄した。
9.フィルターケークを収集し、乾燥させて、化合物Yを与えた(1.53kg、50.3:49.7の比率を伴う白色固体、Y:43.7%)。
ステップ4:
1.D-塩A(化合物1のD-塩)およびアセトン(17.5L,5vol.)を、50L反応器に、加え、そして、52~55℃に暖めて、スラリー溶液を与え、そして、52~55℃で0.5時間、撹拌した。
2.20~25℃まで冷却し、20~25℃で17時間、撹拌した。
3.濾過し、ケークをアセトン(3.5L、1vol)で、洗浄した。
4.フィルターケークを収集し、乾燥させて、D-塩Aを与えた(3.23kg、99.2%のキラル純度を伴う淡黄色固体)。
5.D-塩Aを、50L反応器に、加え、そして、飽和NaHCO3溶液(16L、5vol)およびH2O(16L、5vol)を、加えた。
6.20~25℃で0.5時間、撹拌した。
7.濾過し、H2O(16L,5vol.)で、ケークを、洗浄した。
8.ケークを収集し、乾燥させて、化合物1を与えた(1638g、99.1%のキラル純度およびHPLCの99.9%を伴う白色固体、全収率:30.2%)。
1.D-塩A(化合物1のD-塩)およびアセトン(17.5L,5vol.)を、50L反応器に、加え、そして、52~55℃に暖めて、スラリー溶液を与え、そして、52~55℃で0.5時間、撹拌した。
2.20~25℃まで冷却し、20~25℃で17時間、撹拌した。
3.濾過し、ケークをアセトン(3.5L、1vol)で、洗浄した。
4.フィルターケークを収集し、乾燥させて、D-塩Aを与えた(3.23kg、99.2%のキラル純度を伴う淡黄色固体)。
5.D-塩Aを、50L反応器に、加え、そして、飽和NaHCO3溶液(16L、5vol)およびH2O(16L、5vol)を、加えた。
6.20~25℃で0.5時間、撹拌した。
7.濾過し、H2O(16L,5vol.)で、ケークを、洗浄した。
8.ケークを収集し、乾燥させて、化合物1を与えた(1638g、99.1%のキラル純度およびHPLCの99.9%を伴う白色固体、全収率:30.2%)。
例3:クロマトグラフィーの分離、精製、および分析
3.1 化合物1および2は、キラル固定相上のクロマトグラフィーを使用して、化合物Yから、単離することができる(例として、Chiral Liquid Chromatography; W. J. Lough, Ed. Chapman and Hall, New York, (1989); Okamoto, ”Optical resolution of dihydropyridine enantiomers by high-performance liquid chromatography using phenylcarbamates of polysaccharides as a chiral stationary phase”, J. of Chromatogr. 513:375-378, (1990)参照)。化合物1および2は、例として、以下を含有する移動相を伴う定組成溶離を使用して、キラル固定相、例えば、Chiralpak ICカラム(5mm、150×4.6mmI.D.)上のクロマトグラフィーによって、単離されることができる:H2O/ACN50/50v/v(ACN:アセトニトリル;v:容量)。当業者は、同じ手順が、化合物3-aおよび3-b、4-aおよび4-b、ならびに5-aおよび5-bのために適用されることができることを、認識するだろう。
3.1 化合物1および2は、キラル固定相上のクロマトグラフィーを使用して、化合物Yから、単離することができる(例として、Chiral Liquid Chromatography; W. J. Lough, Ed. Chapman and Hall, New York, (1989); Okamoto, ”Optical resolution of dihydropyridine enantiomers by high-performance liquid chromatography using phenylcarbamates of polysaccharides as a chiral stationary phase”, J. of Chromatogr. 513:375-378, (1990)参照)。化合物1および2は、例として、以下を含有する移動相を伴う定組成溶離を使用して、キラル固定相、例えば、Chiralpak ICカラム(5mm、150×4.6mmI.D.)上のクロマトグラフィーによって、単離されることができる:H2O/ACN50/50v/v(ACN:アセトニトリル;v:容量)。当業者は、同じ手順が、化合物3-aおよび3-b、4-aおよび4-b、ならびに5-aおよび5-bのために適用されることができることを、認識するだろう。
このように得られたクロマトグラムを、図5に図示する(上記したとおり、カラムおよび溶出は、フロー1.00ml/分;UV@260nm;TcおよびTS:25±5℃(Sconc0.20mg/ml);注入された容量10ml)。
3.2 上記のSFC条件に代わるものとして、分取超臨界流体クロマトグラフィを、使用してもよく、実例として、以下に関わる:
Chiralpak AS-H(20mm×250mm、5μm)カラム;
定組成溶離(0.1%v/vNH3を伴う、20:80エタノール:CO2)、BPR(逆圧reg.):大気圧より上の約100バール;40℃のカラム温度、50ml/分の流速、2500μl(125mg)の注入容量、および265nmの検出器波長。
Chiralpak AS-H(20mm×250mm、5μm)カラム;
定組成溶離(0.1%v/vNH3を伴う、20:80エタノール:CO2)、BPR(逆圧reg.):大気圧より上の約100バール;40℃のカラム温度、50ml/分の流速、2500μl(125mg)の注入容量、および265nmの検出器波長。
3.3 それぞれのアトロプ異性体の純度の分析のために、再び、実例として以下のセットアップを使用して、SFCを適用してもよい:Chiralpak AS-H(4.6mm×250mm、5μm)カラム;定組成溶離(0.1%v/vNH3を伴う、20:80 エタノール:CO2)、BPR(逆圧reg.):大気圧より上の約125バール;40℃のカラム温度、4ml/分の流速、1μlの注入容量、および260 nmの検出器波長。
例4化合物1および2の安定性
回転障害の量子力学算出
LaPlanteらは、薬物様分子の軸回転に対するエネルギー障壁を推計するための量子力学的ワークフローを、記載している(ChemMedChem、2011、6(3)、505-513)。同様のアプローチを、適用した:
回転障害の量子力学算出
LaPlanteらは、薬物様分子の軸回転に対するエネルギー障壁を推計するための量子力学的ワークフローを、記載している(ChemMedChem、2011、6(3)、505-513)。同様のアプローチを、適用した:
すべての入力分子の3D構造は、CORINA(Corinaversion 3.6, Molecular Networks, Germany)を使用して発生させ、Macromodel(version 11.1, Schroedinger, LLC, New York, NY)によって、続いて最小化した。これらの入力構造に基づいて、15°の捻れ角増加を伴うB3LYP/6-31G**方法を用いるプログラムJaguar(version 9.1 release 14, Schroedinger, LLC, New York, NY)を使用して、リラックス二面角スキャンから、回転エネルギー障壁を、算出した。構造を、同じ理論のレベルを使用して、ねじれスキャンの前に、最適化した。極小化ステップの最大数を、500にセットしたことを除いて、デフォルトパラメータを使用し、そして、人工的結合破壊を回避するために、stop_rxnフラグを導入した。すべての算出のために、代表的な分子フラグメントを、使用した。分子力学最小化構造から得られた二面角を、二面角スキャンのための、例として本発明の化合物1のための、または「LaPlante参照化合物1」のための初期値を定めるために使用し、値を、それぞれ47.32°および35.8°にセットした。各ねじれについて、軸結合QMエネルギーに関して、値を、24ステップにおいて、算出した。ねじれプロファイルを、算出エネルギーにねじれ角値をプロットして、得た。
両方の異性体間の相互転換を許す、各化合物のための最も低いエネルギー障壁を、決定した。参照化合物1~6に関して、実験的に決定された相互転換速度、および推論したエネルギー障壁は、公知である。コンピューターによる、参照化合物1~6のためのエネルギー障壁は、9.865~31.316kcal/モルである。これらの値は、実験的に判断した相互転換速度に、適合した。本発明の化合物1の、および本発明の化合物2のための算出は、数年(>10年)の範囲の予測された回転半減期を伴う高度に安定なアトロプ異性体に変換する、29.205kcal/モルの高い予測された回転障壁を現した。
どちらの鏡像異性アトロプ異性体のラセミ化の発生のための要求される温度は、>100℃である。
当業者は、これらの値が、化合物3-aおよび3-b、4-aおよび4-b、ならびに5-aおよび5-bのためにも例示的であると、認識するだろう。
どちらの鏡像異性アトロプ異性体のラセミ化の発生のための要求される温度は、>100℃である。
当業者は、これらの値が、化合物3-aおよび3-b、4-aおよび4-b、ならびに5-aおよび5-bのためにも例示的であると、認識するだろう。
例5:化合物1の薬学的に許容し得る塩
化合物1の塩(化合物1-a)は、薬学的に許容することができ、以下に示し詳細に議論するとおり、調製した。
フマラート-塩(形態NF6)の調製:
8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約20mgを、磁気攪拌子を備える、密閉したキャップを伴う4mlのガラスバイアル中で、および、磁気撹拌機を使用することによって、50℃で、1ml THF(p.a.グレード)中に溶解した。50℃で、約5.7mgフマル酸(~1.1当量)を、熱溶液に加え、0.1K/分の冷却速度で、5℃まで冷却した。混合物を、5℃で数時間の最終的な平衡化ステップの前に、反復して50℃まで加熱し(約30分以内に)、そして、撹拌下で、5℃まで、冷却した(0.1K/分で)。冷却溶液中の塩形成の収率を増加させるために、混合物を、密閉したバイアル構成において、ゆっくりしたn-ペンタンの抗溶媒蒸気拡散に、さらに暴露した。最終的に得られた固体成分を、遠心分離によって分離し、窒素パージの下で穏やかに乾燥させた。
化合物1の塩(化合物1-a)は、薬学的に許容することができ、以下に示し詳細に議論するとおり、調製した。
フマラート-塩(形態NF6)の調製:
8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約20mgを、磁気攪拌子を備える、密閉したキャップを伴う4mlのガラスバイアル中で、および、磁気撹拌機を使用することによって、50℃で、1ml THF(p.a.グレード)中に溶解した。50℃で、約5.7mgフマル酸(~1.1当量)を、熱溶液に加え、0.1K/分の冷却速度で、5℃まで冷却した。混合物を、5℃で数時間の最終的な平衡化ステップの前に、反復して50℃まで加熱し(約30分以内に)、そして、撹拌下で、5℃まで、冷却した(0.1K/分で)。冷却溶液中の塩形成の収率を増加させるために、混合物を、密閉したバイアル構成において、ゆっくりしたn-ペンタンの抗溶媒蒸気拡散に、さらに暴露した。最終的に得られた固体成分を、遠心分離によって分離し、窒素パージの下で穏やかに乾燥させた。
ナプシラート-塩(形態NF7)の調製-変形例1:
8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約10mgを、磁気攪拌子を備える、密閉したキャップを伴う4mlのガラスバイアル中で、および、磁気撹拌機を使用することによって、50℃で、~250μlアセトン(p.a.グレード)中に溶解した。50℃で、約5.6mgナフタレン-2-スルホン酸(~1.2当量)を、熱溶液に加え、0.1K/分の冷却速度で、5℃まで冷却した。
8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約10mgを、磁気攪拌子を備える、密閉したキャップを伴う4mlのガラスバイアル中で、および、磁気撹拌機を使用することによって、50℃で、~250μlアセトン(p.a.グレード)中に溶解した。50℃で、約5.6mgナフタレン-2-スルホン酸(~1.2当量)を、熱溶液に加え、0.1K/分の冷却速度で、5℃まで冷却した。
混合物を、5℃で数時間の最終的な平衡化ステップの前に、反復して50℃まで加熱し(約30分以内に)、そして、撹拌下で、5℃まで、冷却した(0.1K/分で)。最終的に得られた固体成分を、遠心分離によって分離し、窒素パージの下で穏やかに乾燥させた。
ナプシラート-塩(形態NF7)の調製-変形例2:
8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約11.5mgを、磁気攪拌子を備える、密閉したキャップを伴う4mlのガラスバイアル中で、および磁気撹拌機を使用することによって、50℃で、~250μl THF(p.a.グレード)中に溶解した。50℃で、約6.6mgナフタレン-2-スルホン酸(~1.2当量)を、熱溶液に加え、0.1K/分の冷却速度で、5℃まで冷却した。
8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約11.5mgを、磁気攪拌子を備える、密閉したキャップを伴う4mlのガラスバイアル中で、および磁気撹拌機を使用することによって、50℃で、~250μl THF(p.a.グレード)中に溶解した。50℃で、約6.6mgナフタレン-2-スルホン酸(~1.2当量)を、熱溶液に加え、0.1K/分の冷却速度で、5℃まで冷却した。
混合物を、5℃で数時間の最終的な平衡化ステップの前に、反復して50℃まで加熱し(約30分以内に)、そして、撹拌下で、5℃まで、冷却した(0.1K/分で)。最終的に得られた固体成分を、遠心分離によって分離し、窒素パージの下で穏やかに乾燥させた。
エジシラート-塩(形態NF8)の調製:
8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約12.6mgを、磁気攪拌子を備える、密閉したキャップを伴う4mlのガラスバイアル中で、および、磁気撹拌機を使用することによって、50℃で、~250μlアセトン(p.a.グレード)中に溶解した。50℃で、約6.1mgエタンジスルホン酸(~1.2当量)を、熱溶液に加え、0.1K/分の冷却速度で、5℃まで冷却した。混合物を、5℃で数時間の最終的な平衡化ステップの前に、反復して50℃まで加熱し(約30分以内に)、そして、撹拌下で、5℃まで、冷却した(0.1K/分で)。最終的に得られた固体成分を、遠心分離によって分離し、窒素パージの下で穏やかに乾燥させた。
8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約12.6mgを、磁気攪拌子を備える、密閉したキャップを伴う4mlのガラスバイアル中で、および、磁気撹拌機を使用することによって、50℃で、~250μlアセトン(p.a.グレード)中に溶解した。50℃で、約6.1mgエタンジスルホン酸(~1.2当量)を、熱溶液に加え、0.1K/分の冷却速度で、5℃まで冷却した。混合物を、5℃で数時間の最終的な平衡化ステップの前に、反復して50℃まで加熱し(約30分以内に)、そして、撹拌下で、5℃まで、冷却した(0.1K/分で)。最終的に得られた固体成分を、遠心分離によって分離し、窒素パージの下で穏やかに乾燥させた。
例6:
化合物3、4、および5の調製
8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-メチル-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの合成
化合物3、4、および5の調製
8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-メチル-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの合成
ステップa:
シールドチューブに、以下を配置した:1-(3,5-ジフルオロピリジン-4-イル)-8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1H,2H,3H-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(90.0mg、0.20mmol、95%)、炭酸カリウム(85.3mg、0.62mmol)、CD3OD(0.30ml、6.74mmol)、N、N-ジメチルホルムアミド(3ml)。混合物を、100℃で1時間撹拌した。10mlの水は加えられた、そして、結果として生じる溶液は酢酸エチル(10ml)で3回抽出され、および組み合わせた有機の層は、無水硫酸ナトリウムで乾燥され、濾過され、そして、濾過物は減圧下で乾燥するまで濃縮された。粗残渣を、分取HPLC(島津(HPLC-10):カラム:Atlantis PrepT3 OBDカラム、19*250mm、10μm;移動相:水(10mmol/L NH4HCO3)およびアセトニトリル(34%アセトニトリルで10分間保つ);検出器:UV254nm)によって精製し、白色固体として8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-メチル-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの35mg(38%)を産生した。融点260~262℃.HPLC/MS(純度)97%。Rt1.98分(方法A)。[M+H]+452。
1H NMR(400MHz、DMSO-d6)ppm=8.92(s、1H)、8.70(d、J=9.5Hz、2H)、7.83(s、1H)、7.54(s、1H)、7.00(s、1H)、3.94(s、3H)、3.78(s、3H)、3.60(s、3H)、1.75(s、3H)。
シールドチューブに、以下を配置した:1-(3,5-ジフルオロピリジン-4-イル)-8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1H,2H,3H-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(90.0mg、0.20mmol、95%)、炭酸カリウム(85.3mg、0.62mmol)、CD3OD(0.30ml、6.74mmol)、N、N-ジメチルホルムアミド(3ml)。混合物を、100℃で1時間撹拌した。10mlの水は加えられた、そして、結果として生じる溶液は酢酸エチル(10ml)で3回抽出され、および組み合わせた有機の層は、無水硫酸ナトリウムで乾燥され、濾過され、そして、濾過物は減圧下で乾燥するまで濃縮された。粗残渣を、分取HPLC(島津(HPLC-10):カラム:Atlantis PrepT3 OBDカラム、19*250mm、10μm;移動相:水(10mmol/L NH4HCO3)およびアセトニトリル(34%アセトニトリルで10分間保つ);検出器:UV254nm)によって精製し、白色固体として8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-メチル-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの35mg(38%)を産生した。融点260~262℃.HPLC/MS(純度)97%。Rt1.98分(方法A)。[M+H]+452。
1H NMR(400MHz、DMSO-d6)ppm=8.92(s、1H)、8.70(d、J=9.5Hz、2H)、7.83(s、1H)、7.54(s、1H)、7.00(s、1H)、3.94(s、3H)、3.78(s、3H)、3.60(s、3H)、1.75(s、3H)。
8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-(トリジュウテリオメチル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの合成
ステップb:
丸底フラスコの中に、N、N-ジメチルホルムアミド(50ml)中の8-ブロモ-1-(3,5-ジフルオロピリジン-4-イル)-7-メトキシ-1H,2H,3H-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンを、配置した(3.00g、6.96mmol、94%)。水素化ナトリウム(1.39g、34.8mmol、60%)を、0℃で5分以内に加え、続いて、CD3Iの添加を行った(3.18g、20.9mmol、95%)。結果として生じた溶液を、室温で15分間、撹拌した。混合物に、500mlの氷水を加え、そして、固体を、ろ過によって収集した。これは、黄色の固体として8-ブロモ-1-(3,5-ジフルオロ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-トリジュウテリオメチル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの2.95g(99%)に、結果としてなった。HPLC/MS(純度)99%。
Rt0.93分(方法B)。[M+H]+424、426。
ステップc:
丸底フラスコの中に、N、N-ジメチルホルムアミド(50ml)中の8-ブロモ-1-(3,5-ジフルオロピリジン-4-イル)-7-メトキシ-1H,2H,3H-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンを、配置した(3.00g、6.96mmol、94%)。水素化ナトリウム(1.39g、34.8mmol、60%)を、0℃で5分以内に加え、続いて、CD3Iの添加を行った(3.18g、20.9mmol、95%)。結果として生じた溶液を、室温で15分間、撹拌した。混合物に、500mlの氷水を加え、そして、固体を、ろ過によって収集した。これは、黄色の固体として8-ブロモ-1-(3,5-ジフルオロ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-トリジュウテリオメチル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの2.95g(99%)に、結果としてなった。HPLC/MS(純度)99%。
Rt0.93分(方法B)。[M+H]+424、426。
ステップc:
アルゴンの不活性雰囲気によってパージし、維持したシールドチューブの中に、8-ブロモ-1-(3,5-ジフルオロ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-トリジュウテリオメチル)イミダゾ-[4,5-c]キノリン-2-オン(1.80g、4.20mmol、99%)、1,3-ジメチル-4-(テトラメチルの-1,3,2-ジオキソボロラン-2-イル)-1H-ピラゾール(1.97g、8.43mmol、95%)、Pd(PPh3)4(540mg、0.42mmol、90%)、炭酸カリウム(1.22g、8.39mmol、95%)、ジオキサン(50ml)、および水(10ml))を、配置した。混合物を、80℃で2時間撹拌し、減圧下で、乾燥するまで濃縮した。残渣を、カラムクロマトグラフィ(メタノール/エチル・アセタート、13:87)によって、精製し、黄色の固体として、1-(3,5-ジフルオロ-4-ピリジル)-8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-7-メトキシ-3-(トリジュウテリオメチル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの1.35g(71%)が、結果として生じた。HPLC/MS(純度)97%。Rt0.91分(方法C)。[M+H]+440。
ステップd:
アルゴンの不活性雰囲気によってパージし、維持したシールドチューブの中に、1-(3,5-ジフルオロ-4-ピリジル)-8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-7-メトキシ-3-(トリジュウテリオメチル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(1.35g、2.96mmol)(N、N-ジメチルホルムアミド(30ml)、炭酸カリウム(818mg、5.92mmol)、およびCD3OD(2.76ml、2.24g、62.2mmol))を、配置した。混合物は2時間100℃で撹拌した。100mlの水を加え、そして、結果として生じる混合物を、200mlの酢酸エチルで3回抽出した。合わせた有機層を、100mlのブラインによって、二回洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥し、乾燥するまで濃縮し、粗生成物を、メタノール/アセトニトリル(1:25)から結晶化して、オフホワイトの固体として8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-(トリジュウテリオメチル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの1.50g(66%)を産生した。融点266-271℃.HPLC/MS(純度)97%。Rt2.00分(方法C)。[M+H]+455。1H NMR(300MHz、DMSO-d6)ppm=8.87(s、1H)、8.65(d、 =7.5Hz、2H)、7.78(s、1H)、7.49(s、1H)、6.95(s、1H)、3.89(s、3H)、3.28(s、3H)、1.71(s、3H)。
アルゴンの不活性雰囲気によってパージし、維持したシールドチューブの中に、1-(3,5-ジフルオロ-4-ピリジル)-8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-7-メトキシ-3-(トリジュウテリオメチル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(1.35g、2.96mmol)(N、N-ジメチルホルムアミド(30ml)、炭酸カリウム(818mg、5.92mmol)、およびCD3OD(2.76ml、2.24g、62.2mmol))を、配置した。混合物は2時間100℃で撹拌した。100mlの水を加え、そして、結果として生じる混合物を、200mlの酢酸エチルで3回抽出した。合わせた有機層を、100mlのブラインによって、二回洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥し、乾燥するまで濃縮し、粗生成物を、メタノール/アセトニトリル(1:25)から結晶化して、オフホワイトの固体として8-(1,3-ジメチルピラゾール-4-イル)-1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-(トリジュウテリオメチル)イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの1.50g(66%)を産生した。融点266-271℃.HPLC/MS(純度)97%。Rt2.00分(方法C)。[M+H]+455。1H NMR(300MHz、DMSO-d6)ppm=8.87(s、1H)、8.65(d、 =7.5Hz、2H)、7.78(s、1H)、7.49(s、1H)、6.95(s、1H)、3.89(s、3H)、3.28(s、3H)、1.71(s、3H)。
1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル] -7-メトキシ-3-メチル-8-[3-メチル-(トリジュウテリオメチル)ピラゾール-4-イル]イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの合成
ステップe:
丸底フラスコの中に、N、N-ジメチルホルムアミド(30ml)中の1-(3,5-ジフルオロピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-8-(3-メチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1H,2H,3H-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(890mg、1.89mmol、90%)を、配置した。水素化ナトリウム(377mg、9.43mmol、60%)を5に0℃で、つづいて、CD3I(1.44g、9.44mmol、95%)を加えた。結果として生じた混合物を、室温で8時間、撹拌した。氷水の200mlを加え、そして、溶液を、酢酸エチルの200mlで、4回抽出した。合わせた有機層を、100mlのブラインによって、二回洗浄した。有機相を、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、乾燥するまで濃縮し、ジクロロメタン/メタノール(19:1)を伴うカラムクロマトグラフィによって精製して、黄色の固体として1-(3,5-ジフルオロ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-8-[3-メチル-1-(トリジュウテリオメチル)ピラゾール-4-イル]イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの400mg(47%)を、産生した。HPLC/MS(純度)98%。Rt0.68分(方法D)。[M+H]+440。
丸底フラスコの中に、N、N-ジメチルホルムアミド(30ml)中の1-(3,5-ジフルオロピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-8-(3-メチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1H,2H,3H-イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(890mg、1.89mmol、90%)を、配置した。水素化ナトリウム(377mg、9.43mmol、60%)を5に0℃で、つづいて、CD3I(1.44g、9.44mmol、95%)を加えた。結果として生じた混合物を、室温で8時間、撹拌した。氷水の200mlを加え、そして、溶液を、酢酸エチルの200mlで、4回抽出した。合わせた有機層を、100mlのブラインによって、二回洗浄した。有機相を、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、乾燥するまで濃縮し、ジクロロメタン/メタノール(19:1)を伴うカラムクロマトグラフィによって精製して、黄色の固体として1-(3,5-ジフルオロ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-8-[3-メチル-1-(トリジュウテリオメチル)ピラゾール-4-イル]イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの400mg(47%)を、産生した。HPLC/MS(純度)98%。Rt0.68分(方法D)。[M+H]+440。
ステップf:
アルゴンの不活性雰囲気によってパージし、維持したシールドチューブの中に、1-(3,5-ジフルオロ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-8-[3-メチル-1-(トリジュウテリオメチル)ピラゾール-4-イル]イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(380mg、0.84mmol、98%)、Nメチル-2‐ピロリドン(20ml)、炭酸カリウム(368mg、2.53mmol、95%)、およびCD3OD(2.45ml、53.9mmol、98%))を、配置した。混合物を4時間100℃で撹拌した。100mlの水を加え、そして、結果として生じる溶液を、5回100mlの酢酸エチルによって抽出した。合わせた有機層を、100mlのブラインによって2回洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、乾燥するまで濃縮し、ジクロロメタン/メタノール(10:1)を伴うカラムクロマトグラフィによって精製して、橙色固体として1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-メチル-8-[3-メチル-1-(トリジュウテリオメチル)ピラゾール-4-イル]イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの300mg(74%)を、産生した。HPLC/MS(純度)95%。Rt0.65分(方法D)[M+H]+455。1H NMR(300MHz、DMSO-d6)ppm=8.87(s、1H)、8.65(d、J=7.5Hz、2H)、7.78(s、1H)、7.49(s、1H)、6.95(s、1H)、3.89(s、3H)、3.55(s、3H)1.71(s、3H)。
HPLC方法A:カラムShim-pack XR-ODS、3.0*50mm、2.2μm;移動相A:水/0.05%TFA、移動相B:セトニトリル/0.05%TFA;流速:1.0mL/min;勾配:2.2分で5%B~100%B、1.0分保持;254nm。
アルゴンの不活性雰囲気によってパージし、維持したシールドチューブの中に、1-(3,5-ジフルオロ-4-ピリジル)-7-メトキシ-3-メチル-8-[3-メチル-1-(トリジュウテリオメチル)ピラゾール-4-イル]イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(380mg、0.84mmol、98%)、Nメチル-2‐ピロリドン(20ml)、炭酸カリウム(368mg、2.53mmol、95%)、およびCD3OD(2.45ml、53.9mmol、98%))を、配置した。混合物を4時間100℃で撹拌した。100mlの水を加え、そして、結果として生じる溶液を、5回100mlの酢酸エチルによって抽出した。合わせた有機層を、100mlのブラインによって2回洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、乾燥するまで濃縮し、ジクロロメタン/メタノール(10:1)を伴うカラムクロマトグラフィによって精製して、橙色固体として1-[3-フルオロ-5-(トリジュウテリオメトキシ)-4-ピリジル]-7-メトキシ-3-メチル-8-[3-メチル-1-(トリジュウテリオメチル)ピラゾール-4-イル]イミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの300mg(74%)を、産生した。HPLC/MS(純度)95%。Rt0.65分(方法D)[M+H]+455。1H NMR(300MHz、DMSO-d6)ppm=8.87(s、1H)、8.65(d、J=7.5Hz、2H)、7.78(s、1H)、7.49(s、1H)、6.95(s、1H)、3.89(s、3H)、3.55(s、3H)1.71(s、3H)。
HPLC方法A:カラムShim-pack XR-ODS、3.0*50mm、2.2μm;移動相A:水/0.05%TFA、移動相B:セトニトリル/0.05%TFA;流速:1.0mL/min;勾配:2.2分で5%B~100%B、1.0分保持;254nm。
HPLC方法B:
カラムShim-pack XR-ODS、3.0*50mm、2.2μm;移動相A:水/0.05%TFA、移動相 B:アセトニトリル/0.05%TFA;流速:1.2mL/分;勾配:2.0分で5%B~100%B、0.7分保持;254nm。
カラムShim-pack XR-ODS、3.0*50mm、2.2μm;移動相A:水/0.05%TFA、移動相 B:アセトニトリル/0.05%TFA;流速:1.2mL/分;勾配:2.0分で5%B~100%B、0.7分保持;254nm。
HPLC方法C:
カラムPoroshell HPH-C18、3.0*50 mm、2.7μm;移動相A:水/5mM NH4HCO3、移動相B:アセトニトリル:流速:1.3mL/min;勾配:2.1分で10%B~95%B、0.6分保持;254nm。
カラムPoroshell HPH-C18、3.0*50 mm、2.7μm;移動相A:水/5mM NH4HCO3、移動相B:アセトニトリル:流速:1.3mL/min;勾配:2.1分で10%B~95%B、0.6分保持;254nm。
HPLC方法D:
カラムAscentis Express C18、3.0*50mm、2.7μm;移動相A:水/0.05%TFA、移動相B:アセトニトリル/0.05%TFA;流速:1.5ml/分;勾配:1.2分で5%B~100%B、0.5分保持;254nm。
カラムAscentis Express C18、3.0*50mm、2.7μm;移動相A:水/0.05%TFA、移動相B:アセトニトリル/0.05%TFA;流速:1.5ml/分;勾配:1.2分で5%B~100%B、0.5分保持;254nm。
例7:化合物1の固体形態および溶媒和物
A.固体形態A2の調製
化合物1の固体形態A2を、アルコールから種々の冷却結晶化プロセスによって調製した:
7.1 化合物1を、撹拌下50℃で、1-プロパノール中に約50mg/mLの濃度で、溶解した。結果として生じる透明な溶液は-20°の少なくとも1時間の最終的なホールド期間とともに、-20℃に0.1の℃/min.の冷却速度で冷却した。固液分離は減圧吸引の上のろ過によって遂行された、そして、濾過された固体試料は動的な窒素パージの下で終夜乾燥した。
A.固体形態A2の調製
化合物1の固体形態A2を、アルコールから種々の冷却結晶化プロセスによって調製した:
7.1 化合物1を、撹拌下50℃で、1-プロパノール中に約50mg/mLの濃度で、溶解した。結果として生じる透明な溶液は-20°の少なくとも1時間の最終的なホールド期間とともに、-20℃に0.1の℃/min.の冷却速度で冷却した。固液分離は減圧吸引の上のろ過によって遂行された、そして、濾過された固体試料は動的な窒素パージの下で終夜乾燥した。
7.2 化合物1を、撹拌下50℃で、イソ-ブチルアルコール中に約40mg/mLの濃度で、溶解した。結果として生じた透明な溶液を、-20℃での少なくとも1時間の最終的なホールド期間とともに、-20℃に0.1℃/分の冷却速度で冷却した。固液分離を、減圧吸引でろ過によって遂行し、そして、濾過した固体試料を、動的な窒素パージの下で、終夜乾燥した。
7.3 化合物1の水和物の形態H2(その調製は、下に記載されている)を、2-PrOH中に、12%(m/m;化合物1の乾燥塊と比較して)の濃度レベルで、分散した。結果として生じた分散体を、撹拌下で80℃まで加熱し、透明な溶液を得た。80から70℃への最初の冷却ランプを、―70℃のこれに続くホールド時間とともに、0.5℃/分の速度で流した。70℃で、無水形態A2の種結晶(すり砕いた粒子<50μm;反応器の量に比較して約4.5%)を、加えた。種結晶を、100 mg種量当たり約1mlの2-PrOH中に、プレ分散した。10分のホールド時間を、70°Cで播種の後に適用した。70°Cから5°Cへの冷却ランプを、0.1°C/minで流し、続いて、最終的な終了温度(5°C)で、3時間、ホールドした。固液分離を、減圧吸引でろ過によって遂行し、そして、濾過した固体試料を、動的な窒素パージの下で、70℃で終夜乾燥した。
代替の方法において、形態A2を、スラリー変換によって種々の多形形態から、以下の通りに調製した:
代替の方法において、形態A2を、スラリー変換によって種々の多形形態から、以下の通りに調製した:
7.4 固体成分、とりわけ化合物1の種々の多形形態、最も好ましくは水和物の形態H2(調製は、下に記載されている)を、約5.2vol-当量の酢酸エチル中に分散させ、そして、21時間RTで、撹拌した。
沈殿物を、吸引によってろ過して取り除き、60℃で少なくとも72時間、減圧下で乾燥した。
沈殿物を、吸引によってろ過して取り除き、60℃で少なくとも72時間、減圧下で乾燥した。
B.固体形態A1の調製
化合物1の固体形態A1を、以下の2つの方法によって調製した:
7.5 8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(ラセミ混合物)の約50mgを、5ml/分の流速で、Lux Cellulose-2カラム、およびCO2/2-プロパノール+0.5%のDEA(75:25)の混合溶媒を使用して、SFCキラル分離に、付した。得られた画分を、ジクロロメタンでゆすぎ、30℃バス温度で濃縮して、固体を得た。
化合物1の固体形態A1を、以下の2つの方法によって調製した:
7.5 8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン(ラセミ混合物)の約50mgを、5ml/分の流速で、Lux Cellulose-2カラム、およびCO2/2-プロパノール+0.5%のDEA(75:25)の混合溶媒を使用して、SFCキラル分離に、付した。得られた画分を、ジクロロメタンでゆすぎ、30℃バス温度で濃縮して、固体を得た。
7.6 100μLジクロロメタン(DCM)中に溶解した8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約10mgを、RT(RT:室温、20~25℃)で蒸発エバポレートし、粉末を、得た。
C.固体形態A3の調製
7.7 A3以外の代替の多形形態を表している、最も好ましくは形態A2を表している、8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン固形材料の約12mgを、約40μL THFに分散し、そして、RT(20~25℃)で約4週間、撹拌した。得られた固体を、遠心分離によって分離し、周囲条件で穏やかに乾燥して、粉末を得た。
7.7 A3以外の代替の多形形態を表している、最も好ましくは形態A2を表している、8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン固形材料の約12mgを、約40μL THFに分散し、そして、RT(20~25℃)で約4週間、撹拌した。得られた固体を、遠心分離によって分離し、周囲条件で穏やかに乾燥して、粉末を得た。
D.固体形態NF9の調製:
化合物1の固体形態NF9を、以下の2つの方法によって調製した:
7.8 2000Lジクロロメタン中に溶解した8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約100mgを、RT(約20~25℃)で急速にフラッシュエバポレートし、粉末を、得た。
化合物1の固体形態NF9を、以下の2つの方法によって調製した:
7.8 2000Lジクロロメタン中に溶解した8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約100mgを、RT(約20~25℃)で急速にフラッシュエバポレートし、粉末を、得た。
7.9 50℃で1000μLアセトン中に溶解した、8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約20mgを、1当量の安息香酸に加えた。溶液を、RT(約20~25℃)まで冷却した。溶液を、n-ペンタンのレザーバーを使用したRT(約20~25℃)での蒸気拡散結晶化、気相拡散を経たゆっくりした溶液の中への拡散に付した。数日後に、固体を結晶化し、それを、遠心分離によって分離し、窒素パージの下で穏やかに乾燥させて、粉末を得た。
E.固体水和物形態H1の調製
化合物1の水和物の固体形態Hを、以下の2つの方法によって得た:
7.10 H1以外の代替の多形形態、最も好ましくは形態A2を表している、8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン固形形態の約12~13mgを、約200μLメタノールに分散し、そして、RT(20~25℃)で約5週間、撹拌した。得られた固体を、遠心分離によって分離し、周囲条件で穏やかに乾燥して、粉末を得た。
化合物1の水和物の固体形態Hを、以下の2つの方法によって得た:
7.10 H1以外の代替の多形形態、最も好ましくは形態A2を表している、8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン固形形態の約12~13mgを、約200μLメタノールに分散し、そして、RT(20~25℃)で約5週間、撹拌した。得られた固体を、遠心分離によって分離し、周囲条件で穏やかに乾燥して、粉末を得た。
7.11 750μL 1-プロパノール中に溶解した8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約12mgを、RT(約20~25℃)でエバポレートし、粉末を、得た。
F.固体水和物形態H2の調製
7.12 H2以外の代替の多形形態を表している、最も好ましくは形態A2を表している、8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン固形形態の約19gを、約80mL DI水に分散し、そして、RT(20~25℃)で約4日間、撹拌した。得られた固体を、減圧ろ過によって分離し、50℃で窒素パージの下で乾燥して、粉末を得た。
7.12 H2以外の代替の多形形態を表している、最も好ましくは形態A2を表している、8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オン固形形態の約19gを、約80mL DI水に分散し、そして、RT(20~25℃)で約4日間、撹拌した。得られた固体を、減圧ろ過によって分離し、50℃で窒素パージの下で乾燥して、粉末を得た。
7.13 250μL THF中に溶解した8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約13~14mgを、荒い攪拌下で、1500μL DI水のレザーバーに、RT(約20~25℃)で急速に注いだ。得られた沈殿物を、遠心分離によって分離し、周囲条件で穏やかに乾燥して、粉末を得た。
G.固体形態NF19の調製
7.14 1500μL1-プロパノール中に溶解した8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約48mgを、50℃でエバポレートし、粉末を、得た。
7.14 1500μL1-プロパノール中に溶解した8-(1,3-ジメチル-1H-ピラゾール-4-イル)-1-(Sa)-(3-フルオロ-5-メトキシ-ピリジン-4-イル)-7-メトキシ-3-メチル-1,3-ジヒドロイミダゾ[4,5-c]キノリン-2-オンの約48mgを、50℃でエバポレートし、粉末を、得た。
例8:放射線治療との組み合わせ
図20に示すとおり、in vivo薬理学試験において(FaDu SSCHN腫瘍モデル)、随伴する化合物1と6週間の分割照射(6×5日、1分画につき2Gy)の組み合わせ処置は、標的エンゲージメントのレベルに沿って、用量依存的やり方におけるIR(照射)の有効性を強く増強した。詳細には:
図20に示すとおり、in vivo薬理学試験において(FaDu SSCHN腫瘍モデル)、随伴する化合物1と6週間の分割照射(6×5日、1分画につき2Gy)の組み合わせ処置は、標的エンゲージメントのレベルに沿って、用量依存的やり方におけるIR(照射)の有効性を強く増強した。詳細には:
ヒト扁平上皮細胞頭頸部モデルFaDuの異種移植片を担持するNMRI nu/nuマウスにおける照射(IR)と組み合わせて、ATM阻害剤化合物1の抗腫瘍有効性を、評価した。
対照群の1つを、ビヒクルだけで処置した。他の対照群を、5日間オン/2日間オフスケジュールにおいて、そして、6週間の期間にわたって、2Gyの30画分のIRだけで処置した。2つの群を、各IR画分の30分前に、IR(IRのみの対照においてのように)を、10mg/kgまたは25mg/kgの経口用量の化合物1と組み合わせて、処置した。
例9:PARP阻害との組み合わせ
オラパリブと組み合わされた化合物1の有効性は、免疫不全雌マウスにおいて開発された、HBCx-10患者由来三重陰性乳がん異種移植モデルにおいて立証され、その結果を、図21において示す。
オラパリブと組み合わされた化合物1の有効性は、免疫不全雌マウスにおいて開発された、HBCx-10患者由来三重陰性乳がん異種移植モデルにおいて立証され、その結果を、図21において示す。
皮下に成長した62.5と196.0mm3の間のHBCx-10腫瘍(P20.1.4/0)を伴う70匹のマウスを、それらの平均値および中央値の腫瘍容量が、それぞれ131.16および126.00mm3に到達する場合に、処置に割り当てた。
試験は、各10匹のマウスの様々な群を含む:
-群1において、10ml/kg経口ビヒクル メトセルと組み合わせて、ビヒクル オラパリブを、10ml/kg経口1日1回×28で、投与した。
(3日間オン/4日間オフ)×4;
-群2において、オラパリブを、50mg/kg経口1日1回×49で投薬した;
-群3において、比較のATM阻害剤ATMix単独を経口で与えた(3日間オン/4日間オフ)×5;
-群4において、ATMix経口(3日間オン/4日間オフ)×7と組み合わせて、オラパリブを、50mg/kg経口1日1回×49で投薬した;
試験は、各10匹のマウスの様々な群を含む:
-群1において、10ml/kg経口ビヒクル メトセルと組み合わせて、ビヒクル オラパリブを、10ml/kg経口1日1回×28で、投与した。
(3日間オン/4日間オフ)×4;
-群2において、オラパリブを、50mg/kg経口1日1回×49で投薬した;
-群3において、比較のATM阻害剤ATMix単独を経口で与えた(3日間オン/4日間オフ)×5;
-群4において、ATMix経口(3日間オン/4日間オフ)×7と組み合わせて、オラパリブを、50mg/kg経口1日1回×49で投薬した;
-群5において、化合物1の100mg/kg経口(3日間オン/4日間オフ)×7でと組み合わせて、オラパリブを、50mg/kg経口1日1回×49で、投薬した。腫瘍を、処置期間の間は、隔週に、そして、追跡調査期間の間は、週1回、測定した。
p.o. 経口的に-d 日-quaque die 1日1回
p.o. 経口的に-d 日-quaque die 1日1回
Claims (15)
- 化合物1のフマラート、化合物1のナプシラート、および化合物1のエジシラートから選択される、請求項1に記載の化合物1の薬学的に許容し得る塩。
- 化合物1の固体の無水形態。
- 約7.3、約9.6、約11.1、約12.0、約12.7、および約16.2度2-シータ±0.2度2-シータでのものから選択される、粉末X線回折パターンにおける1以上のピークによって特徴づけられる、請求項4に記載の化合物1の固体の無水形態。
- 請求項1~8のいずれか一項に記載の化合物、それらの薬学的に許容し得る塩、または固体の無水形態、および薬学的に許容し得る賦形剤を含む、医薬組成物。
- 患者に、請求項1~8のいずれか一項に記載の化合物、それらの薬学的に許容し得る塩、または固体形態、または請求項9に記載の医薬組成物を投与することを含む、患者における、がんおよび/または腫瘍を処置するための、方法。
- 放射線治療と組み合わせて、化合物、それらの薬学的に許容し得る塩、固体の無水形態、または医薬組成物を投与することを含む、請求項10に記載の方法。
- DNA-損傷剤と組み合わせて、化合物、それらの薬学的に許容し得る塩、固体の無水形態、または医薬組成物を投与することを含む、請求項10に記載の方法。
- 腫瘍が、扁平上皮、膀胱、胃、腎臓、頭部、頸部、食道、子宮頸部、甲状腺、腸、骨、肝臓、脳、前立腺、尿生殖路、リンパ系、喉頭、肺、皮膚、血液、および免疫系の疾患の群から選択され、および/またはここで、がんが、単球性白血病、肺腺がん、小細胞肺癌腫、膵がん、神経膠芽細胞腫、腸管の癌腫、乳がん、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病、急性リンパ性白血病、慢性リンパ性白血病、ホジキンリンパ腫、および非ホジキンリンパ腫の群から選択される、請求項10~12のいずれか一項に記載の方法。
- 請求項10~13のいずれか一項に記載のがんおよび/または腫瘍の処置のための、薬物の製造における、請求項1~8のいずれか一項に記載の化合物、それらの薬学的に許容し得る塩、または固体の無水形態の使用。
- 任意に放射線治療および/またはDNA-損傷剤と組み合わせた、がんおよび/または腫瘍の処置のための、請求項1~8のいずれか一項に記載の化合物、それらの薬学的に許容し得る塩、または固体形態。
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