JP2021521849A - 遺伝子編集t細胞におけるヒトfoxp3の発現 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2018年4月27日に出願された「EXPRESSION OF MRNA ENCODING HUMAN FOXP3 FROM A NON-FOXP3 OR A FOXP3 GENETIC LOCI IN GENE EDITED T CELLS」という名称の米国仮出願第62/663,561号、および2018年11月30日に出願された「EXPRESSION OF HUMAN FOXP3 IN GENE EDITED T CELLS」という名称の米国仮出願第62/773,414号の優先権の利益を主張するものであり、これらの文献はいずれもあらゆる目的で引用によりその全体が本明細書に援用される。
本願は電子形式の配列表とともに出願されたものである。この配列表は、SCRI187WOSEQLISTのファイル名で2019年4月25日に作成された約496kbのファイルとして提供されたものである。この電子形式の配列表に記載の情報は、引用によりその全体が本明細書に援用される。
デオキシリボ核酸(DNA)エンドヌクレアーゼ、または該DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸;
リンパ球細胞(たとえばT細胞)のFOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座内の配列に相補的なスペーサー配列を含むガイドRNA(gRNA)、または該gRNAをコードする核酸;および
FOXP3タンパク質またはその機能性誘導体をコードする核酸配列を含むドナー鋳型
を含むシステムである。
いくつかの実施形態において、前記gRNAは、
i)配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および34のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および34のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント;
ii)配列番号1〜7のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号1〜7のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント;または
iii)配列番号2、3および5のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号2、3および5のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント
を含む。
いくつかの実施形態において、前記FOXP3またはその機能性誘導体は、ヒト野生型FOXP3である。いくつかの実施形態において、前記DNAエンドヌクレアーゼはCasエンドヌクレアーゼである。いくつかの実施形態において、前記DNAエンドヌクレアーゼはCas9である。いくつかの実施形態において、前記DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸はmRNAである。いくつかの実施形態において、前記ドナー鋳型は、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターにコードされている。いくつかの実施形態において、前記DNAエンドヌクレアーゼまたは該DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸は、リポソームまたは脂質ナノ粒子への内包化により製剤化される。
本明細書において「核酸」または「核酸分子」は、たとえば、ポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドを含み、たとえば、デオキシリボ核酸(DNA)またはリボ核酸(RNA)、オリゴヌクレオチド、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により得られた断片、ならびにライゲーション、切断、エンドヌクレアーゼ作用、エキソヌクレアーゼ作用および合成のいずれかにより得られた断片などが挙げられるが、これらに限定されない。核酸分子は、天然のヌクレオチドモノマー(DNA、RNAなど)、または天然のヌクレオチドの類似体(たとえば、天然のヌクレオチドのエナンチオマー)からなるモノマー、またはこれらの組み合わせから構成されていてもよい。修飾ヌクレオチドは、糖部分および/またはピリミジン塩基部分もしくはプリン塩基部分に修飾を有していてもよい。糖部分の修飾としては、たとえば、ハロゲン、アルキル基、アミンまたはアジド基による1つ以上のヒドロキシル基の置換が挙げられ、糖部分はエーテル化またはエステル化されていてもよい。さらに、糖部分全体が、立体構造的に類似の構造や電子的に類似の構造と置換されていてもよく、このような構造として、たとえば、アザ糖および炭素環式糖類似体が挙げられる。修飾塩基部分としては、アルキル化プリン、アルキル化ピリミジン、アシル化プリン、アシル化ピリミジン、およびその他の公知の複素環置換基が挙げられる。核酸モノマーは、ホスホジエステル結合またはこれと似た結合により連結することができる。ホスホジエステル結合と似た結合としては、ホスホロチオエート結合、ホスホロジチオエート結合、ホスホロセレノエート結合、ホスホロジセレノエート結合、ホスホロアニロチオエート(phosphoroanilothioate)結合、ホスホロアニリデート(phosphoranilidate)結合およびホスホロアミデート結合が挙げられる。「核酸分子」は、いわゆる「ペプチド核酸」も包含し、これは、ポリアミド主鎖に付加された天然の核酸塩基または修飾核酸塩基を含む。核酸は、一本鎖であってもよく、二本鎖であってもよい。
FOXP3またはその機能性誘導体をコードする核酸を細胞のゲノムに標的化して組み込むことなどによって、FOXP3の発現、機能および/または活性を調節するために、細胞(たとえばリンパ球細胞)のゲノム編集用システムを提供する。また、本開示は、特に、エクスビボおよび/またはインビボにおけるゲノム編集を使用して、FOXP3に関連する障害または健康状態を有する対象またはFOXP3に関連する障害または健康状態を有すると疑われる対象を治療するためのシステムを提供する。いくつかの実施形態において、前記対象は、自己免疫疾患(たとえばIPEX症候群)または臓器移植に起因する障害(たとえば移植片対宿主病(GVHD))を有するか、これらの疾患を有することが疑われる対象である。
(a)DNAエンドヌクレアーゼ、または該DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸;
(b)細胞のゲノム内のFOXP3遺伝子座または非FOXP3遺伝子座(たとえばAAVS1(アデノ随伴ウイルス組み込み部位など))に前記DNAエンドヌクレアーゼを標的化することができるgRNA(たとえばsgRNA)または該gRNAをコードする核酸;および
(c)FOXP3のコード配列を含むドナー鋳型
を含むシステムを提供する。
いくつかの実施形態において、前記DNAエンドヌクレアーゼは、Cas1エンドヌクレアーゼ、Cas1Bエンドヌクレアーゼ、Cas2エンドヌクレアーゼ、Cas3エンドヌクレアーゼ、Cas4エンドヌクレアーゼ、Cas5エンドヌクレアーゼ、Cas6エンドヌクレアーゼ、Cas7エンドヌクレアーゼ、Cas8エンドヌクレアーゼ、Cas9エンドヌクレアーゼ(Csn1およびCsx12としても知られている)、Cas100エンドヌクレアーゼ、Csy1エンドヌクレアーゼ、Csy2エンドヌクレアーゼ、Csy3エンドヌクレアーゼ、Cse1エンドヌクレアーゼ、Cse2エンドヌクレアーゼ、Csc1エンドヌクレアーゼ、Csc2エンドヌクレアーゼ、Csa5エンドヌクレアーゼ、Csn2エンドヌクレアーゼ、Csm2エンドヌクレアーゼ、Csm3エンドヌクレアーゼ、Csm4エンドヌクレアーゼ、Csm5エンドヌクレアーゼ、Csm6エンドヌクレアーゼ、Cmr1エンドヌクレアーゼ、Cmr3エンドヌクレアーゼ、Cmr4エンドヌクレアーゼ、Cmr5エンドヌクレアーゼ、Cmr6エンドヌクレアーゼ、Csb1エンドヌクレアーゼ、Csb2エンドヌクレアーゼ、Csb3エンドヌクレアーゼ、Csx17エンドヌクレアーゼ、Csx14エンドヌクレアーゼ、Csx10エンドヌクレアーゼ、Csx16エンドヌクレアーゼ、CsaXエンドヌクレアーゼ、Csx3エンドヌクレアーゼ、Csx1エンドヌクレアーゼ、Csx15エンドヌクレアーゼ、Csf1エンドヌクレアーゼ、Csf2エンドヌクレアーゼ、Csf3エンドヌクレアーゼ、Csf4エンドヌクレアーゼ、およびCpf1エンドヌクレアーゼ、ならびにこれらの機能性誘導体からなる群から選択される。いくつかの実施形態において、前記DNAエンドヌクレアーゼは、Cas9エンドヌクレアーゼ(たとえば化膿レンサ球菌由来のCas9エンドヌクレアーゼ)などの、Casエンドヌクレアーゼである。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、FOXP3遺伝子座内の標的配列に相補的なスペーサー配列を含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、FOXP3遺伝子座のエキソン1内の標的配列に相補的なスペーサー配列を含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、FOXP3遺伝子座のエキソン1内の標的配列に相補的なスペーサー配列を含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号1〜7および27〜29のいずれかに示されるスペーサー配列、または配列番号1〜7および27〜29いずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する該スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号1〜7のいずれかに示されるスペーサー配列、または配列番号1〜7のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号2もしくは5に示されるスペーサー配列、または配列番号2もしくは5と比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、非FOXP3遺伝子座(たとえばAAVS1またはTRAC)中の標的配列に相補的なスペーサー配列を含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号15〜20のいずれかに示されるスペーサー配列、または配列番号15〜20のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号33もしくは34に示されるスペーサー配列、または配列番号33もしくは34と比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、FOXP3のコード配列は、FOXP3またはその機能性誘導体をコードする。いくつかの実施形態において、FOXP3のコード配列はFOXP3 cDNAである。いくつかの実施形態において、FOXP3またはその機能性誘導体をコードする核酸配列は、配列番号68または69に示される配列と、少なくとも70%または少なくとも約70%の配列同一性を有し、たとえば少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%もしくは少なくともそれ以上、または少なくとも約75%、少なくとも約80%、少なくとも約85%、少なくとも約90%、少なくとも約92%、少なくとも約93%、少なくとも約94%、少なくとも約95%、少なくとも約96%、少なくとも約97%、少なくとも約98%、少なくとも約99%もしくは少なくともそれ以上の配列同一性を有する。いくつかの実施形態において、前記システムは、Cas DNAエンドヌクレアーゼを含む。いくつかの実施形態において、前記システムは、Cas DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸を含む。いくつかの実施形態において、前記システムはgRNAを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAはsgRNAである。いくつかの実施形態において、前記システムは、gRNAをコードする核酸を含む。いくつかの実施形態において、前記システムは、1つ以上のさらなるgRNAまたは該1つ以上のさらなるgRNAをコードする核酸をさらに含む。
ゲノム標的化核酸またはガイドRNA
本開示は、関連するポリペプチド(たとえば、部位指向性ポリペプチドまたはDNAエンドヌクレアーゼ)の活性を標的核酸内の特定の標的配列に指向させることができるゲノム標的化核酸を提供する。いくつかの実施形態において、前記ゲノム標的化核酸は、RNAである。本明細書では、ゲノム標的化RNAを「ガイドRNA」または「gRNA」と呼ぶ。ガイドRNAは、目的の標的核酸配列にハイブリダイズできるスペーサー配列とCRISPR反復配列を少なくとも有する。II型のシステムでは、gRNAは、tracrRNA配列と呼ばれる第2のRNAをさらに有する。II型ガイドRNA(gRNA)は、CRISPR反復配列とtracrRNA配列が互いにハイブリダイズして二本鎖を形成する。V型ガイドRNA(gRNA)では、crRNAが二本鎖を形成する。いずれのシステムにおいても、部位特異的ポリペプチドに前記二本鎖が結合して、ガイドRNAと部位特異的ポリペプチドの複合体が形成される。このゲノム標的化核酸は、部位特異的ポリペプチドと会合することによって、形成される複合体に標的特異性を付与する。したがって、このゲノム標的化核酸は、部位特異的ポリペプチドの活性に指向性を付与する。
ゲノムを標的とした核酸の実施形態のいくつかにおいて、スペーサー伸長配列は、活性を調節し、安定性を付与し、かつ/またはゲノムを標的とした核酸を修飾するための場所を提供することができる。また、スペーサー伸長配列は、オンターゲット活性もしくはオフターゲット活性または特異性を調節することができる。いくつかの実施形態において、スペーサー伸長配列を提供する。スペーサー伸長配列の長さは、1ヌクレオチド長を超える長さ、5ヌクレオチド長を超える長さ、10ヌクレオチド長を超える長さ、15ヌクレオチド長を超える長さ、20ヌクレオチド長を超える長さ、25ヌクレオチド長を超える長さ、30ヌクレオチド長を超える長さ、35ヌクレオチド長を超える長さ、40ヌクレオチド長を超える長さ、45ヌクレオチド長を超える長さ、50ヌクレオチド長を超える長さ、60ヌクレオチド長を超える長さ、70ヌクレオチド長を超える長さ、80ヌクレオチド長を超える長さ、90ヌクレオチド長を超える長さ、100ヌクレオチド長を超える長さ、120ヌクレオチド長を超える長さ、140ヌクレオチド長を超える長さ、160ヌクレオチド長を超える長さ、180ヌクレオチド長を超える長さ、200ヌクレオチド長を超える長さ、220ヌクレオチド長を超える長さ、240ヌクレオチド長を超える長さ、260ヌクレオチド長を超える長さ、280ヌクレオチド長を超える長さ、300ヌクレオチド長を超える長さ、320ヌクレオチド長を超える長さ、340ヌクレオチド長を超える長さ、360ヌクレオチド長を超える長さ、380ヌクレオチド長を超える長さ、400ヌクレオチド長を超える長さ、1000ヌクレオチド長を超える長さ、2000ヌクレオチド長を超える長さ、3000ヌクレオチド長を超える長さ、4000ヌクレオチド長を超える長さ、5000ヌクレオチド長を超える長さ、6000ヌクレオチド長を超える長さ、もしくは7000ヌクレオチド長を超える長さ、またはそれ以上のヌクレオチド長を超える長さであってもよい。スペーサー伸長配列の長さは、1ヌクレオチド長もしくは約1ヌクレオチド長、5ヌクレオチド長もしくは約5ヌクレオチド長、10ヌクレオチド長もしくは約10ヌクレオチド長、15ヌクレオチド長もしくは約15ヌクレオチド長、20ヌクレオチド長もしくは約20ヌクレオチド長、25ヌクレオチド長もしくは約25ヌクレオチド長、30ヌクレオチド長もしくは約30ヌクレオチド長、35ヌクレオチド長もしくは約35ヌクレオチド長、40ヌクレオチド長もしくは約40ヌクレオチド長、45ヌクレオチド長もしくは約45ヌクレオチド長、50ヌクレオチド長もしくは約50ヌクレオチド長、60ヌクレオチド長もしくは約60ヌクレオチド長、70ヌクレオチド長もしくは約70ヌクレオチド長、80ヌクレオチド長もしくは約80ヌクレオチド長、90ヌクレオチド長もしくは約90ヌクレオチド長、100ヌクレオチド長もしくは約100ヌクレオチド長、120ヌクレオチド長もしくは約120ヌクレオチド長、140ヌクレオチド長もしくは約140ヌクレオチド長、160ヌクレオチド長もしくは約160ヌクレオチド長、180ヌクレオチド長もしくは約180ヌクレオチド長、200ヌクレオチド長もしくは約200ヌクレオチド長、220ヌクレオチド長もしくは約220ヌクレオチド長、240ヌクレオチド長もしくは約240ヌクレオチド長、260ヌクレオチド長もしくは約260ヌクレオチド長、280ヌクレオチド長もしくは約280ヌクレオチド長、300ヌクレオチド長もしくは約300ヌクレオチド長、320ヌクレオチド長もしくは約320ヌクレオチド長、340ヌクレオチド長もしくは約340ヌクレオチド長、360ヌクレオチド長もしくは約360ヌクレオチド長、380ヌクレオチド長もしくは約380ヌクレオチド長、400ヌクレオチド長もしくは約400ヌクレオチド長、1000ヌクレオチド長もしくは約1000ヌクレオチド長、2000ヌクレオチド長もしくは約2000ヌクレオチド長、3000ヌクレオチド長もしくは約3000ヌクレオチド長、4000ヌクレオチド長もしくは約4000ヌクレオチド長、5000ヌクレオチド長もしくは約5000ヌクレオチド長、6000ヌクレオチド長もしくは約6000ヌクレオチド長、もしくは7000ヌクレオチド長もしくは約7000ヌクレオチド長、またはそれ以上のヌクレオチド長であってもよい。スペーサー伸長配列の長さは、1ヌクレオチド長未満、5ヌクレオチド長未満、10ヌクレオチド長未満、15ヌクレオチド長未満、20ヌクレオチド長未満、25ヌクレオチド長未満、30ヌクレオチド長未満、35ヌクレオチド長未満、40ヌクレオチド長未満、45ヌクレオチド長未満、50ヌクレオチド長未満、60ヌクレオチド長未満、70ヌクレオチド長未満、80ヌクレオチド長未満、90ヌクレオチド長未満、100ヌクレオチド長未満、120ヌクレオチド長未満、140ヌクレオチド長未満、160ヌクレオチド長未満、180ヌクレオチド長未満、200ヌクレオチド長未満、220ヌクレオチド長未満、240ヌクレオチド長未満、260ヌクレオチド長未満、280ヌクレオチド長未満、300ヌクレオチド長未満、320ヌクレオチド長未満、340ヌクレオチド長未満、360ヌクレオチド長未満、380ヌクレオチド長未満、400ヌクレオチド長未満、1000ヌクレオチド長未満、2000ヌクレオチド長未満、3000ヌクレオチド長未満、4000ヌクレオチド長未満、5000ヌクレオチド長未満、6000ヌクレオチド長未満、7000ヌクレオチド長未満、またはそれ以上のヌクレオチド長未満であってもよい。いくつかの実施形態において、スペーサー伸長配列の長さは、10ヌクレオチド長未満である。いくつかの実施形態において、スペーサー伸長配列の長さは、10〜30ヌクレオチド長である。いくつかの実施形態において、スペーサー伸長配列の長さは、30〜70ヌクレオチド長である。
スペーサー配列は、目的の標的核酸内の配列にハイブリダイズする。ゲノム標的化核酸のスペーサーは、ハイブリダイゼーション(たとえば塩基対合)を介して配列特異的に標的核酸と相互作用する。したがって、スペーサーのヌクレオチド配列は、目的の標的核酸の配列に応じて変動する。
いくつかの実施形態において、CRISPRの最小反復配列は、参照CRISPR反復配列(たとえばS.pyogenes由来のcrRNA)と少なくとも30%もしくは少なくとも約30%、少なくとも40%もしくは少なくとも約40%、少なくとも50%もしくは少なくとも約50%、少なくとも60%もしくは少なくとも約60%、少なくとも65%もしくは少なくとも約65%、少なくとも70%もしくは少なくとも約70%、少なくとも75%もしくは少なくとも約75%、少なくとも80%もしくは少なくとも約80%、少なくとも85%もしくは少なくとも約85%、少なくとも90%もしくは少なくとも約90%、少なくとも95%もしくは少なくとも約95%、または100%の配列同一性を有する配列である。
いくつかの実施形態において、tracrRNAの最小配列は、参照tracrRNA配列(たとえばS.pyogenes由来の野生型tracrRNA)と少なくとも30%もしくは少なくとも約30%、少なくとも40%もしくは少なくとも約40%、少なくとも50%もしくは少なくとも約50%、少なくとも60%もしくは少なくとも約60%、少なくとも65%もしくは少なくとも約65%、少なくとも70%もしくは少なくとも約70%、少なくとも75%もしくは少なくとも約75%、少なくとも80%もしくは少なくとも約80%、少なくとも85%もしくは少なくとも約85%、少なくとも90%もしくは少なくとも約90%、少なくとも95%もしくは少なくとも約95%、または少なくとも100%の配列同一性を有する配列である。
いくつかの実施形態では、CRISPR RNA最小配列とtracrRNA最小配列により形成される二本鎖に「バルジ」が存在する。バルジは、前記二本鎖内のヌクレオチド非対合領域である。いくつかの実施形態において、バルジは、部位特異的ポリペプチドへの前記二本鎖の結合に寄与する。バルジは、二本鎖の一方に、非対合配列5’-XXXY-3’を有し(Xは任意のプリン塩基であり、Yは、反対鎖のヌクレオチドとゆらぎ塩基対を形成しうるヌクレオチドを有する)、二本鎖のもう一方に非対合ヌクレオチド領域を有する。二本鎖の各鎖にある非対合ヌクレオチドの数は異なる場合がある。
様々な実施形態において、3’tracrRNA配列中のtracrRNA最小配列の3’末端側に1つ以上のヘアピンが存在する。
いくつかの実施形態において、3’tracrRNA配列は、参照tracrRNA配列(たとえばS.pyogenes由来のtracrRNA)と少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約65%、少なくとも約70%、少なくとも約75%、少なくとも約80%、少なくとも約85%、少なくとも約90%、少なくとも約95%、または少なくとも100%の配列同一性を有する配列を有する。
いくつかの実施形態において、ガイドRNAが単一分子ガイドまたは二分子ガイドである場合、tracrRNA伸長配列を提供する。いくつかの実施形態において、tracrRNA伸長配列の長さは、約1ヌクレオチド長〜約400ヌクレオチド長である。いくつかの実施形態において、tracrRNA伸長配列の長さは、1ヌクレオチド長を超える長さ、5ヌクレオチド長を超える長さ、10ヌクレオチド長を超える長さ、15ヌクレオチド長を超える長さ、20ヌクレオチド長を超える長さ、25ヌクレオチド長を超える長さ、30ヌクレオチド長を超える長さ、35ヌクレオチド長を超える長さ、40ヌクレオチド長を超える長さ、45ヌクレオチド長を超える長さ、50ヌクレオチド長を超える長さ、60ヌクレオチド長を超える長さ、70ヌクレオチド長を超える長さ、80ヌクレオチド長を超える長さ、90ヌクレオチド長を超える長さ、100ヌクレオチド長を超える長さ、120ヌクレオチド長を超える長さ、140ヌクレオチド長を超える長さ、160ヌクレオチド長を超える長さ、180ヌクレオチド長を超える長さ、200ヌクレオチド長を超える長さ、220ヌクレオチド長を超える長さ、240ヌクレオチド長を超える長さ、260ヌクレオチド長を超える長さ、280ヌクレオチド長を超える長さ、300ヌクレオチド長を超える長さ、320ヌクレオチド長を超える長さ、340ヌクレオチド長を超える長さ、360ヌクレオチド長を超える長さ、380ヌクレオチド長を超える長さ、または400ヌクレオチド長を超える長さである。いくつかの実施形態において、tracrRNA伸長配列の長さは、約20ヌクレオチド長〜約5000ヌクレオチド長以上である。いくつかの実施形態において、tracrRNA伸長配列の長さは、1000ヌクレオチド長を超える。いくつかの実施形態において、tracrRNA伸長配列の長さは、1ヌクレオチド長未満、5ヌクレオチド長未満、10ヌクレオチド長未満、15ヌクレオチド長未満、20ヌクレオチド長未満、25ヌクレオチド長未満、30ヌクレオチド長未満、35ヌクレオチド長未満、40ヌクレオチド長未満、45ヌクレオチド長未満、50ヌクレオチド長未満、60ヌクレオチド長未満、70ヌクレオチド長未満、80ヌクレオチド長未満、90ヌクレオチド長未満、100ヌクレオチド長未満、120ヌクレオチド長未満、140ヌクレオチド長未満、160ヌクレオチド長未満、180ヌクレオチド長未満、200ヌクレオチド長未満、220ヌクレオチド長未満、240ヌクレオチド長未満、260ヌクレオチド長未満、280ヌクレオチド長未満、300ヌクレオチド長未満、320ヌクレオチド長未満、340ヌクレオチド長未満、360ヌクレオチド長未満、380ヌクレオチド長未満、400ヌクレオチド長未満またはそれ以上のヌクレオチド長未満である。いくつかの実施形態において、tracrRNA伸長配列の長さは、1000ヌクレオチド長未満であってもよい。いくつかの実施形態において、tracrRNA伸長配列の長さは、10ヌクレオチド長未満である。いくつかの実施形態において、tracrRNA伸長配列の長さは、10〜30ヌクレオチド長である。いくつかの実施形態において、tracrRNA伸長配列の長さは、30〜70ヌクレオチド長である。
いくつかの実施形態において、単一分子ガイド核酸のリンカー配列の長さは、約3ヌクレオチド長〜約100ヌクレオチド長である。Jinek, M. et al. (2012). Science, 337(6096):816-821では、たとえば、4個のヌクレオチドからなる単純な「テトラループ」(-GAAA-)が使用された。前記リンカーの長さは、約3ヌクレオチド長(nt)〜約90nt、約3nt〜約80nt、約3nt〜約70nt、約3nt〜約60nt、約3nt〜約50nt、約3nt〜約40nt、約3nt〜約30nt、約3nt〜約20nt、または約3nt〜約10ntである。たとえば、前記リンカーの長さは、約3nt〜約5nt、約5nt〜約10nt、約10nt〜約15nt、約15nt〜約20nt、約20nt〜約25nt、約25nt〜約30nt、約30nt〜約35nt、約35nt〜約40nt、約40nt〜約50nt、約50nt〜約60nt、約60nt〜約70nt、約70nt〜約80nt、約80nt〜約90nt、または約90nt〜約100ntであってもよい。いくつかの実施形態において、単一分子ガイド核酸のリンカーの長さは、4〜40ヌクレオチド長である。いくつかの実施形態において、前記リンカーの長さは、少なくとも約100ヌクレオチド長、少なくとも約500ヌクレオチド長、少なくとも約1000ヌクレオチド長、少なくとも約1500ヌクレオチド長、少なくとも約2000ヌクレオチド長、少なくとも約2500ヌクレオチド長、少なくとも約3000ヌクレオチド長、少なくとも約3500ヌクレオチド長、少なくとも約4000ヌクレオチド長、少なくとも約4500ヌクレオチド長、少なくとも約5000ヌクレオチド長、少なくとも約5500ヌクレオチド長、少なくとも約6000ヌクレオチド長、少なくとも約6500ヌクレオチド長、もしくは少なくとも約7000ヌクレオチド長、または少なくともそれ以上のヌクレオチド長である。いくつかの実施形態において、前記リンカーの長さは、最大でも約100ヌクレオチド長、最大でも約500ヌクレオチド長、最大でも約1000ヌクレオチド長、最大でも約1500ヌクレオチド長、最大でも約2000ヌクレオチド長、最大でも約2500ヌクレオチド長、最大でも約3000ヌクレオチド長、最大でも約3500ヌクレオチド長、最大でも約4000ヌクレオチド長、最大でも約4500ヌクレオチド長、最大でも約5000ヌクレオチド長、最大でも約5500ヌクレオチド長、最大でも約6000ヌクレオチド長、最大でも約6500ヌクレオチド長、もしくは最大でも約7000ヌクレオチド長、または最大でもそれ以上のヌクレオチド長である。
DNAエンドヌクレアーゼなどの部位指向性ポリペプチドは、核酸(たとえばゲノムDNA)に二本鎖切断または一本鎖切断を導入することができる。二本鎖切断により、細胞に内在するDNA修復経路(たとえば、相同性依存的修復(HDR)、非相同末端結合、代替非相同末端結合(A-NHEJ)またはマイクロホモロジー媒介末端結合(MMEJ))を刺激することができる。NHEJは、相同鋳型を必要とせずに、切断された標的核酸を修復することができる。これによって、切断部位の標的核酸に小さな欠失または挿入(indel)が生じることがあり、遺伝子発現の破壊または変化がもたらされる場合がある。相同性依存的修復(HDR)は相同組換え(HR)としても知られ、相同修復鋳型またはドナーが利用可能な場合に発生することがある。
いくつかの実施形態において、前述を踏まえれば、前記ゲノム編集方法および前記組成物において、部位指向性ポリペプチドまたはDNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸配列(またはオリゴヌクレオチド)を使用することができる。部位指向性ポリペプチドをコードする核酸配列は、DNAであってもよく、RNAであってもよい。部位指向性ポリペプチドをコードする核酸配列がRNAである場合、このRNA は、gRNA配列に共有結合することができるか、別個の配列として存在することができる。いくつかの実施形態において、部位指向性ポリペプチドまたはDNAエンドヌクレアーゼのペプチド配列を、これらの核酸配列の代わりに使用することができる。
別の一態様において、本開示は、本開示のゲノム標的化核酸をコードするヌクレオチド配列を有する核酸、本開示の部位指向性ポリペプチド、および/または本開示の方法の実施形態を実施するために必要な任意の核酸もしくはタンパク質分子を提供する。いくつかの実施形態において、このような核酸は、ベクター(たとえば組換え発現ベクター)である。
NHEJおよび/またはHDRによる標的DNAの修飾によって、たとえば、変異、欠失、変化、組み込み、遺伝子の修正、遺伝子の置換、遺伝子へのタグ付加、導入遺伝子の挿入、ヌクレオチドの欠失、遺伝子破壊、転座、および/または遺伝子変異が起こりうる。ゲノムDNAへの非天然核酸の組み込みは、ゲノム編集の一例である。
CRISPR(Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats)のゲノム遺伝子座は、多くの原核生物(細菌や古細菌など)のゲノムに見出すことができる。原核生物では、CRISPR遺伝子座は、ウイルスやファージなどの外来侵入物からの原核生物の防御に有用な免疫系の一種として機能する生成物をコードする。CRISPR遺伝子座の機能には3つの段階があり、CRISPR遺伝子座への新たな配列の組み込み、CRISPR RNA(crRNA)の発現、および外来侵入核酸のサイレンシングからなる。5つの種類のCRISPRシステム(たとえば、I型、II型、III型、U型、およびV型)が同定されている。
自然界のII型CRISPRシステムにおけるcrRNAの生合成では、トランス活性化CRISPR RNA(tracrRNA)が必要とされる。tracrRNAは内在性RNaseIIIによって修飾され、次いでpre-crRNAアレイのcrRNA反復配列にハイブリダイズする。内在性RNaseIIIが、pre-crRNAの切断ために動員される。切断されたcrRNAは、エキソリボヌクレアーゼによりトリミングされ(たとえば、5’末端のトリミング)、成熟形態のcrRNAを生成する。tracrRNAは、crRNAにハイブリダイズしたまま残り、tracrRNAとcrRNAが、部位指向性ポリペプチド(たとえばCas9)と会合する。crRNA−tracrRNA−Cas9複合体では、crRNAがハイブリダイズできる標的核酸へと該複合体がcrRNAにより先導される。crRNAが標的核酸にハイブリダイズすることによって、Cas9が活性化されて、標的核酸を切断する。II型CRISPRシステムにおける標的核酸は、プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)と呼ばれる。実際、PAMは、標的核酸への部位指向性ポリペプチド(たとえばCas9)の結合を促すために必須である。II型システム(NmeniまたはCASS4とも呼ばれる)は、II-A型(CASS4)とII-B型(CASS4a)にさらに細分化される。Jinek, M. et al. (2012). Science, 337(6096):816-821では、RNAでプログラム可能なゲノム編集にCRISPR/Cas9システムが有用であることが示されており、さらにWO 2013/176772では、部位指向性遺伝子編集にCRISPR/Casエンドヌクレアーゼシステムを使用した多数の例と適用が記載されている。
V型のCRISPRシステムは、II型システムとはいくつかの重要な違いがある。たとえば、Cpf1は単鎖RNA誘導性エンドヌクレアーゼであるが、II型システムとは異なり、tracrRNAを欠く。実際、Cpf1と会合したCRISPRアレイは、トランス活性化されたtracrRNAをさらに必要とすることなく、成熟したcrRNAにプロセシングされる。V型CRISPRアレイは、42〜44ヌクレオチド長の短い成熟crRNAにプロセシングされ、各成熟crRNAは、19ヌクレオチド長の直接反復配列から始まり、その後に23〜25ヌクレオチド長のスペーサー配列が続く。これとは対照的に、II型システムの成熟crRNAでは、20〜24ヌクレオチド長のスペーサー配列から始まり、その後に22ヌクレオチド長または約22ヌクレオチド長の直接反復配列が続く。また、Cpf1は、Tリッチのプロトスペーサー隣接モチーフを利用することにより、この短いTリッチPAMの後に続く標的DNAがCpf1-crRNA複合体によって効率的に切断される。これは、II型システムにおいて、標的DNAに続くGリッチのPAMが利用されることとは対照的である。したがって、V型システムはPAMから離れた位置で標的を切断し、II型システムはPAMに隣接する位置で標的を切断する。さらに、II型システムとは対照的に、Cpf1は、ずれた位置でDNA二本鎖を切断することから、4ヌクレオチド長または5ヌクレオチド長の5’末端突出を形成する。これに対して、II型システムによる二本鎖切断では、平滑末端が形成される。Cpf1は、II型システムと同様に、RuvC様エンドヌクレアーゼドメインを含むと予測されているが、II型システムとは異なり、第2のHNHエンドヌクレアーゼドメインを持たない。
典型的なCRISPR/Casポリペプチドとして、Fonfara, I. et al. (2014). Nucleic Acids Research, 42(4):2577-2590の図1に示されるCas9ポリペプチドが挙げられる。CRISPR/Cas遺伝子の命名システムは、Cas遺伝子が発見されて以来、大幅に改訂が重ねられている。Fonfaraら(2014)による図5で、様々な生物種に由来するCas9ポリペプチド用のPAM配列が示されている。
ゲノム標的化核酸は、部位指向性ポリペプチド(たとえばCas9などの核酸誘導性ヌクレアーゼ)と相互作用することにより、複合体を形成する。ゲノム標的化核酸(たとえばgRNA)は、部位指向性ポリペプチドを標的核酸に先導する。
本明細書で述べるように、いくつかの実施形態において、二量体化するCISC構成要素をコードする1つ以上のタンパク質配列を提供する。前記1つ以上のタンパク質配列は、第1の配列および第2の配列を有していてもよい。いくつかの実施形態において、第1の配列は、第1の細胞外結合ドメインまたはその一部、ヒンジドメイン、膜貫通ドメイン、およびシグナル伝達ドメインまたはその一部を含んでいてもよい第1のCISC構成要素をコードする。いくつかの実施形態において、第2の配列は、第2の細胞外結合ドメインまたはその一部、ヒンジドメイン、膜貫通ドメイン、およびシグナル伝達ドメインまたはその一部を含んでいてもよい第2のCISC構成要素をコードする。いくつかの実施形態において、第1のCISC構成要素と第2のCISC構成要素は、発現された場合にリガンドの存在下で、好ましくは同時に、二量体化するように配置されていてもよい。
いくつかの実施形態において、前記IL7Rα−CISC複合体は、配列番号56に示されるアミノ酸配列を含む。また、配列番号56のタンパク質配列をコードする核酸配列も実施形態に含まれる。
FOXP3タンパク質またはその機能性誘導体の発現を必要とする生物において、FOXP3タンパク質またはその機能性誘導体を発現させる方法の1つとして、内在性FOXP3遺伝子または関連する細胞種(たとえばT細胞)において十分に発現される非FOXP3遺伝子に、FOXP3タンパク質をコードするコード配列を含む核酸が組み込まれるようにゲノム編集により標的化し、それによって、組み込まれたコード配列の発現を、内在性FOXP3遺伝子または非FOXP3遺伝子の内在性プロモーターにより誘導する方法が挙げられる。非FOXP3遺伝子が標的化されるいくつかの実施形態において、非FOXP3遺伝子の発現は、関連しない細胞種での発現を防ぐため、標的化される細胞種(たとえばリンパ球細胞、たとえばCD4+T細胞などのCD4+細胞、またはそれに由来する細胞(たとえばTreg細胞))に特異的であることが望ましい。
(a)Cas DNAエンドヌクレアーゼ(たとえばCas9エンドヌクレアーゼ)または該Cas DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸;
(b)前記リンパ球細胞のゲノム内のFOXP3遺伝子座または非FOXP3遺伝子座(たとえばAAVS1)に前記Cas DNAエンドヌクレアーゼを標的化することができるgRNA(たとえばsgRNA)または該gRNAをコードする核酸;および
(c)FOXP3のコード配列を含むドナー鋳型
をリンパ球細胞に提供する工程を含む方法を提供する。
いくつかの実施形態において、前記Cas DNAエンドヌクレアーゼは、Cas9エンドヌクレアーゼ(たとえば化膿レンサ球菌由来のCas9エンドヌクレアーゼ)である。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、FOXP3遺伝子座内の標的配列に相補的なスペーサー配列を含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、FOXP3遺伝子座のエキソン1内の標的配列に相補的なスペーサー配列を含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号1〜7および27〜29のいずれかに示されるスペーサー配列、または配列番号1〜7および27〜29のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する該スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号1〜7のいずれかに示されるスペーサー配列、または配列番号1〜7のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号2、3および5のいずれかに示されるスペーサー配列、または配列番号2、3および5のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、非FOXP3遺伝子座(たとえばAAVS1)中の標的配列に相補的なスペーサー配列を含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号15〜20のいずれかに示されるスペーサー配列、または配列番号15〜20のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、FOXP3のコード配列は、FOXP3またはその機能性誘導体をコードする。いくつかの実施形態において、FOXP3のコード配列はFOXP3 cDNAである。代表的なFOXP3 cDNA配列は、配列番号34のヌクレオチド配列を有するAAVドナー鋳型に含まれていてもよい。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記リンパ球細胞に前記Cas DNAエンドヌクレアーゼを提供する工程を含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記Cas DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸を前記リンパ球細胞に提供する工程を含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記gRNAを前記リンパ球細胞に提供する工程を含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAはsgRNAである。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記gRNAをコードする核酸を前記リンパ球細胞に提供する工程を含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、1つ以上のさらなるgRNAまたは該1つ以上のさらなるgRNAをコードする核酸を前記リンパ球細胞に提供する工程をさらに含む。
いくつかの実施形態において、特定の参照遺伝子座に対して5’末端の境界の位置および/または3’末端の境界の位置を移動させて、遺伝子編集の特定の適用を容易にしたり、増強したりすることができ、本明細書でさらに説明および図示するように、これは、遺伝子編集を行うために選択されるエンドヌクレアーゼシステムに部分的に依存する。
いくつかの実施形態において、本明細書で詳しく説明し、当技術分野でも知られているように、細胞に導入されるポリヌクレオチドは、たとえば、活性、安定性もしくは特異性の増強、送達の変更、宿主細胞の自然免疫応答の低減またはその他の増強のための、個別または組み合わせて利用可能な1つ以上の修飾を有する。
いくつかの実施形態において、本明細書で提供される方法で使用される核酸分子、たとえば、本開示のゲノム標的化核酸および/または部位指向性ポリペプチドをコードする核酸は、細胞への送達用の送達担体の内部またはその表面にパッケージされる。想定される送達担体として、ナノスフェア、リポソーム、量子ドット、ナノ粒子、ポリエチレングリコール粒子、ヒドロゲル、およびミセルが挙げられるが、これらに限定されない。当技術分野で報告されているように、様々な標的化部分を使用して、このような担体と所望の細胞種または位置との選択的な相互作用を増強することができる。
一態様において、本明細書の開示は、細胞のゲノムを編集して、遺伝子組換え細胞を作製する方法を提供する。いくつかの態様において、遺伝子組換え細胞集団を提供する。したがって、遺伝子組換え細胞は、ゲノム編集(たとえばCRISPR/Cas9システムを使用したゲノム編集)によって導入された少なくとも1つの遺伝子組換えを有する細胞を指す。いくつかの実施形態において、前記遺伝子組換え細胞は、遺伝子組換えされたリンパ球細胞、たとえば、ヒトCD4+T細胞などのT細胞である。いくつかの実施形態において、前記T細胞は、IPEX症候群に罹患した対象から得たヒトT細胞である。組み込まれたFOXP3のコード配列を有する遺伝子組換え細胞が本明細書において想定される。
遺伝子組換え細胞を作製する方法を提供する。この方法は、
少なくとも1つの標的遺伝子座を含む第1の核酸を含む細胞を提供する工程;
CAS9タンパク質、または該CAS9タンパク質をコードする第2の核酸配列を提供する工程;
前記CAS9タンパク質または第2の核酸を前記細胞に導入する工程;
少なくとも1つの標的遺伝子座にハイブリダイズするように構成された少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする第3の核酸または該少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする1組の核酸を導入する工程;および
遺伝子送達カセットを含む第4の核酸を前記細胞に導入する工程
を含む。
少なくとも1つの標的遺伝子座を含む第1の核酸を含む細胞を提供する工程;
CAS9タンパク質、または該CAS9タンパク質をコードする第2の核酸配列を提供する工程;
前記CAS9タンパク質または第2の核酸を前記細胞に導入する工程;
少なくとも1つの標的遺伝子座にハイブリダイズするように構成された少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする第3の核酸または該少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする1組の核酸を導入する工程;および
遺伝子送達カセットを含む第4の核酸を前記細胞に導入する工程
を含む方法を提供する。
いくつかの実施形態において、前記方法は、前記細胞を活性化する工程をさらに含み、該活性化は、該細胞に第2の核酸を導入する前に行われる。いくつかの実施形態において、前記活性化は、前記細胞をCD3および/またはCD28と接触させることによって行われる。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの標的遺伝子座は、FOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座である。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、1つ以上のベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記1つ以上のベクターは、ウイルスベクターである。いくつかの実施形態において、前記ウイルスベクターは、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは一本鎖ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターと一本鎖ベクターの組み合わせである。いくつかの実施形態において、前記CAS9タンパク質をコードする第2の核酸は、mRNAである。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つのガイド配列は、配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および/または34のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、真核細胞(ヒト細胞など)における発現のためにコドン最適化されている。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、ヒトのコドンに最適化されたFOXP3 cDNA配列をコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸配列は、配列番号68または69に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、プロモーターをさらに含む。いくつかの実施形態において、前記プロモーターは、MNDプロモーター、PGKプロモーターまたはE2Fプロモーターである。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、低親和性神経成長因子受容体(LNGFR)のコード配列、μCISC、CISCγ、FRBおよび/またはLNGFRe(LNGFRエピトープのコード配列)をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、第2の遺伝子送達カセットを含む第5の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、ベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記ベクターはAAVベクターである。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、CISC、FRB、マーカータンパク質、μCISC、および/またはβCISCをコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および/または第5の核酸は、P2A自己切断ペプチドをコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、第4の配列および/または第5の配列は、ポリA配列をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記ポリA配列は、SV40ポリAまたはFOXP3の3’UTRを含む。いくつかの実施形態において、第4の配列は、配列番号37〜42のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および第5の核酸は前記細胞に導入され、第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号46に示される配列を含むか;あるいは第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号47に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、遺伝子座に特異的な配列を有する少なくとも1つの相同アームを含み、該相同アームの長さは、AAVベクターへの効率的なパッケージングが達成されるように構成されている。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの相同アームの長さは、0.25kb、0.3kb、0.45kb、0.6kbもしくは0.8kb、またはこれらの数値のいずれか2つによって定義される範囲内の長さである。いくつかの実施形態において、前記マーカーは、LNGF、RQR8またはEGFRtである。いくつかの実施形態において、前記方法は、FOXP3と共発現させるためのタンパク質またはサイトカインをコードする第6の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記タンパク質または前記サイトカインは、T細胞受容体、キメラ抗原受容体またはIL-10である。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記マーカーの濃度を上昇させることによって前記細胞を選択する工程をさらに含む。
少なくとも1つの標的遺伝子座を含む第1の核酸を含む細胞を提供する工程;
CAS9タンパク質、または該CAS9タンパク質をコードする第2の核酸配列を提供する工程;
前記CAS9タンパク質または第2の核酸を前記細胞に導入する工程;
少なくとも1つの標的遺伝子座にハイブリダイズするように構成された少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする第3の核酸または該少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする1組の核酸を導入する工程;および
遺伝子送達カセットを含む第4の核酸を前記細胞に導入する工程
を含む。
いくつかの実施形態において、前記方法は、前記細胞を活性化する工程をさらに含み、該活性化は、該細胞に第2の核酸を導入する前に行われる。いくつかの実施形態において、前記活性化は、前記細胞をCD3および/またはCD28と接触させることによって行われる。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの標的遺伝子座は、FOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座である。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、1つ以上のベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記1つ以上のベクターは、ウイルスベクターである。いくつかの実施形態において、前記ウイルスベクターは、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは一本鎖ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターと一本鎖ベクターの組み合わせである。いくつかの実施形態において、前記CAS9タンパク質をコードする第2の核酸は、mRNAである。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つのガイド配列は、配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および/または34のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、真核細胞(ヒト細胞など)における発現のためにコドン最適化されている。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、ヒトのコドンに最適化されたFOXP3 cDNA配列をコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸配列は、配列番号68または69に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、プロモーターをさらに含む。いくつかの実施形態において、前記プロモーターは、MNDプロモーター、PGKプロモーターまたはE2Fプロモーターである。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、低親和性神経成長因子受容体(LNGFR)のコード配列、μCISC、CISCγ、FRBおよび/またはLNGFRe(LNGFRエピトープのコード配列)をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、第2の遺伝子送達カセットを含む第5の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、ベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記ベクターはAAVベクターである。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、CISC、FRB、マーカータンパク質、μCISC、および/またはβCISCをコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および/または第5の核酸は、P2A自己切断ペプチドをコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、第4の配列および/または第5の配列は、ポリA配列をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記ポリA配列は、SV40ポリAまたはFOXP3の3’UTRを含む。いくつかの実施形態において、第4の配列は、配列番号37〜42のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および第5の核酸は前記細胞に導入され、第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号46に示される配列を含むか;あるいは第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号47に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、遺伝子座に特異的な配列を有する少なくとも1つの相同アームを含み、該相同アームの長さは、AAVベクターへの効率的なパッケージングが達成されるように構成されている。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの相同アームの長さは、0.25kb、0.3kb、0.45kb、0.6kbもしくは0.8kb、またはこれらの数値のいずれか2つによって定義される範囲内の長さである。いくつかの実施形態において、前記マーカーは、LNGF、RQR8またはEGFRtである。いくつかの実施形態において、前記方法は、FOXP3と共発現させるためのタンパク質またはサイトカインをコードする第6の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記タンパク質または前記サイトカインは、T細胞受容体、キメラ抗原受容体またはIL-10である。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記マーカーの濃度を上昇させることによって前記細胞を選択する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、前記FOXP3は、構成的に発現されるか、制御下で発現される。
少なくとも1つの標的遺伝子座を含む第1の核酸を含む細胞を提供する工程;
CAS9タンパク質、または該CAS9タンパク質をコードする第2の核酸配列を提供する工程;
前記CAS9タンパク質または第2の核酸を前記細胞に導入する工程;
少なくとも1つの標的遺伝子座にハイブリダイズするように構成された少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする第3の核酸または該少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする1組の核酸を導入する工程;および
遺伝子送達カセットを含む第4の核酸を前記細胞に導入する工程
を含む。
いくつかの実施形態において、前記方法は、前記細胞を活性化する工程をさらに含み、該活性化は、該細胞に第2の核酸を導入する前に行われる。いくつかの実施形態において、前記活性化は、前記細胞をCD3および/またはCD28と接触させることによって行われる。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの標的遺伝子座は、FOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座である。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、1つ以上のベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記1つ以上のベクターは、ウイルスベクターである。いくつかの実施形態において、前記ウイルスベクターは、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは一本鎖ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターと一本鎖ベクターの組み合わせである。いくつかの実施形態において、前記CAS9タンパク質をコードする第2の核酸は、mRNAである。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つのガイド配列は、配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および/または34のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、真核細胞(ヒト細胞など)における発現のためにコドン最適化されている。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、ヒトのコドンに最適化されたFOXP3 cDNA配列をコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸配列は、配列番号68または69に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、プロモーターをさらに含む。いくつかの実施形態において、前記プロモーターは、MNDプロモーター、PGKプロモーターまたはE2Fプロモーターである。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、低親和性神経成長因子受容体(LNGFR)のコード配列、μCISC、CISCγ、FRBおよび/またはLNGFRe(LNGFRエピトープのコード配列)をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、第2の遺伝子送達カセットを含む第5の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、ベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記ベクターはAAVベクターである。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、CISC、FRB、マーカータンパク質、μCISC、および/またはβCISCをコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および/または第5の核酸は、P2A自己切断ペプチドをコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、第4の配列および/または第5の配列は、ポリA配列をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記ポリA配列は、SV40ポリAまたはFOXP3の3’UTRを含む。いくつかの実施形態において、第4の配列は、配列番号37〜42のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および第5の核酸は前記細胞に導入され、第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号46に示される配列を含むか;あるいは第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号47に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、遺伝子座に特異的な配列を有する少なくとも1つの相同アームを含み、該相同アームの長さは、AAVベクターへの効率的なパッケージングが達成されるように構成されている。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの相同アームの長さは、0.25kb、0.3kb、0.45kb、0.6kbもしくは0.8kb、またはこれらの数値のいずれか2つによって定義される範囲内の長さである。いくつかの実施形態において、前記マーカーは、LNGF、RQR8またはEGFRtである。いくつかの実施形態において、前記方法は、FOXP3と共発現させるためのタンパク質またはサイトカインをコードする第6の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記タンパク質または前記サイトカインは、T細胞受容体、キメラ抗原受容体またはIL-10である。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記マーカーの濃度を上昇させることによって前記細胞を選択する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、前記FOXP3は、構成的に発現されるか、制御下で発現される。
少なくとも1つの標的遺伝子座を含む第1の核酸を含む細胞を提供する工程;
CAS9タンパク質、または該CAS9タンパク質をコードする第2の核酸配列を提供する工程;
前記CAS9タンパク質または第2の核酸を前記細胞に導入する工程;
少なくとも1つの標的遺伝子座にハイブリダイズするように構成された少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする第3の核酸または該少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする1組の核酸を導入する工程;および
遺伝子送達カセットを含む第4の核酸を前記細胞に導入する工程
を含む。
いくつかの実施形態において、前記方法は、前記細胞を活性化する工程をさらに含み、該活性化は、該細胞に第2の核酸を導入する前に行われる。いくつかの実施形態において、前記活性化は、前記細胞をCD3および/またはCD28と接触させることによって行われる。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの標的遺伝子座は、FOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座である。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、1つ以上のベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記1つ以上のベクターは、ウイルスベクターである。いくつかの実施形態において、前記ウイルスベクターは、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは一本鎖ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターと一本鎖ベクターの組み合わせである。いくつかの実施形態において、前記CAS9タンパク質をコードする第2の核酸は、mRNAである。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つのガイド配列は、配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および/または34のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、真核細胞(ヒト細胞など)における発現のためにコドン最適化されている。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、ヒトのコドンに最適化されたFOXP3 cDNA配列をコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸配列は、配列番号68または69に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、プロモーターをさらに含む。いくつかの実施形態において、前記プロモーターは、MNDプロモーター、PGKプロモーターまたはE2Fプロモーターである。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、低親和性神経成長因子受容体(LNGFR)のコード配列、μCISC、CISCγ、FRBおよび/またはLNGFRe(LNGFRエピトープのコード配列)をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、第2の遺伝子送達カセットを含む第5の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、ベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記ベクターはAAVベクターである。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、CISC、FRB、マーカータンパク質、μCISC、および/またはβCISCをコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および/または第5の核酸は、P2A自己切断ペプチドをコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、第4の配列および/または第5の配列は、ポリA配列をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記ポリA配列は、SV40ポリAまたはFOXP3の3’UTRを含む。いくつかの実施形態において、第4の配列は、配列番号37〜42のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および第5の核酸は前記細胞に導入され、第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号46に示される配列を含むか;あるいは第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号47に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、遺伝子座に特異的な配列を有する少なくとも1つの相同アームを含み、該相同アームの長さは、AAVベクターへの効率的なパッケージングが達成されるように構成されている。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの相同アームの長さは、0.25kb、0.3kb、0.45kb、0.6kbもしくは0.8kb、またはこれらの数値のいずれか2つによって定義される範囲内の長さである。いくつかの実施形態において、前記マーカーは、LNGF、RQR8またはEGFRtである。いくつかの実施形態において、前記方法は、FOXP3と共発現させるためのタンパク質またはサイトカインをコードする第6の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記タンパク質または前記サイトカインは、T細胞受容体、キメラ抗原受容体またはIL-10である。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記マーカーの濃度を上昇させることによって前記細胞を選択する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、前記FOXP3は、構成的に発現されるか、制御下で発現される。いくつかの実施形態において、前記対象に前記細胞を提供することによって、該対象の免疫応答が阻害または抑制される。いくつかの実施形態において、阻害または抑制される免疫応答は、T細胞を介した炎症反応である。いくつかの実施形態において、前記疾患は自己免疫疾患である。いくつかの実施形態において、前記疾患はX連鎖性(IPEX)症候群である。いくつかの実施形態において、前記状態は移植片対宿主病(GVHD)である。いくつかの実施形態において、前記対象は、固形臓器の移植を受けた対象である。
本明細書に記載の実施形態のいくつかにおいて、宿主細胞(たとえば哺乳動物細胞(たとえばリンパ球)にタンパク質配列または発現ベクターを導入することによって、薬物により調節されるサイトカインのシグナル伝達を誘導し、かつ/または二量体化CISC構成要素を発現する細胞を選択的に拡大増殖させることが望ましい場合がある。たとえば、二量体化CISCは、リガンドと接触すると、CISC構成要素が導入された細胞においてサイトカインのシグナル伝達を可能とし、細胞(哺乳動物細胞など)の内部でシグナルを伝達することができる。さらに、本明細書に記載の2つの特定の遺伝子組換えイベントを起こした細胞のみが選択されるように、細胞(哺乳動物細胞など)の選択的な拡大増殖を制御することができる。このような細胞の調製は、本開示を踏まえ、当業者であれば容易に理解できる公知の技術に従って行うことができる。
いくつかの実施形態において、哺乳動物細胞などの細胞の内部においてシグナルを活性化させる方法を提供する。この方法は、本明細書に記載の細胞(哺乳動物細胞など)を提供する工程を含んでいてもよく、この細胞は、本明細書に記載のタンパク質配列または本明細書に記載の発現ベクターを含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、本明細書に記載の二量体化CISCをコードするタンパク質配列、または本明細書に記載の発現ベクターを発現させる工程さらに含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、細胞(哺乳動物細胞など)をリガンドと接触させる工程を含み、これによって、第1のCISC構成要素と第2のCISC構成要素の二量体化が誘導され、その結果、細胞の内部へシグナルが伝達される。いくつかの実施形態において、前記リガンドはラパマイシンまたはラパログである。いくつかの実施形態において、リガンドは、IMID系薬物(たとえば、サリドマイド、ポマリドミドもしくはレナリドミドまたはこれらに関連する類似体)である。いくつかの実施形態において、二量体化を誘導するためリガンドの有効量として、0.01nM、0.02nM、0.03nM、0.04nM、0.05nM、0.06nM、0.07nM、0.08nM、0.09nM、0.1nM、0.2nM、0.3nM、0.4nM、0.5nM、0.6nM、0.7nM、0.8nM、0.9nM、1.0nM、1.5nM、2.0nM、2.5nM、3.0nM、3.5nM、4.0nM、4.5nM、5.0nM、5.5nM、6.0nM、6.5nM、7.0nM、7.5nM、8.0nM、8.5nM、9.0nM、9.5nM、10nM、11nM、12nM、13nM、14nM、15nM、20nM、25nM、30nM、35nM、40nM、45nM、50nM、55nM、60nM、65nM、70nM、75nM、80nM、85nM、90nM、95nM、もしくは100nM、またはこれらの数値のいずれか2つによって定義される範囲内の濃度のリガンドが提供される。
いくつかの実施形態において、哺乳動物細胞などの細胞からなる集団を選択的に拡大増殖させる方法を提供する。いくつかの実施形態において、この方法は、本明細書に記載の細胞(哺乳動物細胞など)を提供する工程を含んでいてもよく、この細胞は、本明細書に記載のタンパク質配列または本明細書に記載の発現ベクターを含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、本明細書に記載の二量体化CISCをコードするタンパク質配列、または本明細書に記載の発現ベクターを発現させる工程さらに含む。
一態様において、FOXP3タンパク質に関連する障害もしくは健康状態を有する対象またはFOXP3タンパク質に関連する障害もしくは健康状態を有すると疑われる対象のゲノムを編集することによって該対象を治療するための遺伝子治療的アプローチを提供する。たとえば、いくつかの実施形態では、前記障害または前記健康状態は、自己免疫疾患(たとえばIPEX症候群)または臓器移植に起因する障害(たとえばGVHD)である。いくつかの実施形態において、前記遺伝子治療的アプローチにより、機能性FOXP3遺伝子をコードする配列を含む核酸を対象の関連する細胞種のゲノムに組み込み、これによって、前記障害または前記健康状態を根治することができる。いくつかの実施形態において、FOXP3をコードする配列を組み込む遺伝子治療的アプローチの対象となる細胞種は、リンパ球細胞、たとえばCD4+T細胞であり、この理由として、これらの細胞は対象においてTreg表現型を効率的に得られることが挙げられる。
(a)細胞ゲノム内のFOXP3遺伝子座を標的とするガイドRNA(gRNA);
(b)DNAエンドヌクレアーゼ、または該DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸;および
(c)FOXP3またはその機能性誘導体をコードする核酸配列を含むドナー鋳型
を対象の細胞に提供する工程
を含む方法を提供する。
いくつかの実施形態において、前記gRNAは、FOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座を標的とする。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および34のいずれかに示されるスペーサー配列を含む。
(a)細胞の内在性FOXP3遺伝子座内のゲノム配列または該内在性FOXP3遺伝子座の近傍のゲノム配列に相補的なスペーサー配列を含むgRNA;
(b)DNAエンドヌクレアーゼ、または該DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸;および
(c)FOXP3またはその機能性誘導体をコードする核酸配列を含むドナー鋳型
を対象の細胞に提供する工程
を含む方法を提供する。
いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号1〜7および27〜29のいずれかに示されるスペーサー配列、または配列番号1〜7および27〜29のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する該スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号1〜7のいずれかに示されるスペーサー配列、または配列番号1〜7のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号2、3および5のいずれかに示されるスペーサー配列、または配列番号2、3および5のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号2に示されるスペーサー配列、または配列番号2と比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記gRNAは、配列番号5に示されるスペーサー配列、または配列番号5と比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアントを含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は、ヒト細胞、たとえばヒトリンパ球細胞、たとえばヒトCD4+T細胞である。いくつかの実施形態において、前記対象は、自己免疫疾患(たとえばIPEX症候群)または移植片対宿主病(GVHD)を有するか、これらの疾患を有することが疑われる患者である。いくつかの実施形態において、前記対象は、自己免疫疾患(たとえばIPEX症候群)または移植片対宿主病(GVHD)のリスクがあると診断された対象である。
いくつかの実施形態において、本開示のエクスビボでの方法は、このような方法を必要とする対象にゲノム編集された細胞を移植することを含む。この移植工程は、当技術分野で公知の移植方法であれば、どのような方法を使用しても行うことができる。たとえば、遺伝子組換え細胞を、対象の血液中に直接注射することができ、あるいはその他の方法で対象に投与することができる。
一態様において、本開示は、本明細書で開示された方法を実施するための組成物を提供する。組成物は、ゲノム標的化核酸(たとえばgRNA);部位指向性ポリペプチド(たとえばDNAエンドヌクレアーゼ)または該部位指向性ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列;および本明細書で開示される方法による所望の遺伝子組換えを達成するために挿入されるポリヌクレオチド(たとえばドナー鋳型)のうちの1つ以上を含むことができる。
いくつかの実施形態は、前記組成物のいずれか、たとえば、ゲノム編集用の組成物または細胞組成物(たとえば治療用細胞組成物)と、1つ以上のさらなる構成要素を含むキットを提供する。
いくつかの実施形態において、遺伝子組換え細胞を作製する方法であって、
少なくとも1つの標的遺伝子座を含む第1の核酸を含む細胞を提供する工程;
CAS9タンパク質、または該CAS9タンパク質をコードする第2の核酸配列を提供する工程;
前記CAS9タンパク質または第2の核酸を前記細胞に導入する工程;
少なくとも1つの標的遺伝子座にハイブリダイズするように構成された少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする第3の核酸または該少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする1組の核酸を導入する工程;および
遺伝子送達カセットを含む第4の核酸を前記細胞に導入する工程
を含む方法を提供する。
いくつかの実施形態において、前記方法は、前記細胞を活性化する工程をさらに含み、該活性化は、該細胞に第2の核酸を導入する前に行われる。いくつかの実施形態において、前記活性化は、前記細胞をCD3および/またはCD28と接触させることによって行われる。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの標的遺伝子座は、FOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座である。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、1つ以上のベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記1つ以上のベクターは、ウイルスベクターである。いくつかの実施形態において、前記ウイルスベクターは、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは一本鎖ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターと一本鎖ベクターの組み合わせである。いくつかの実施形態において、前記CAS9タンパク質をコードする第2の核酸は、mRNAである。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つのガイド配列は、配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および/または34のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、真核細胞(ヒト細胞など)における発現のためにコドン最適化されている。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、ヒトのコドンに最適化されたFOXP3 cDNA配列をコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸配列は、配列番号68または69に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、プロモーターをさらに含む。いくつかの実施形態において、前記プロモーターは、MNDプロモーター、PGKプロモーターまたはE2Fプロモーターである。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、低親和性神経成長因子受容体(LNGFR)のコード配列、μCISC、CISCγ、FRBおよび/またはLNGFRe(LNGFRエピトープのコード配列)をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、第2の遺伝子送達カセットを含む第5の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、ベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記ベクターはAAVベクターである。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、CISC、FRB、マーカータンパク質、μCISC、および/またはβCISCをコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および/または第5の核酸は、P2A自己切断ペプチドをコードする配列(たとえば配列番号89に示される配列)をさらに含む。いくつかの実施形態において、第4の配列および/または第5の配列は、ポリA配列をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記ポリA配列は、SV40ポリAまたはFOXP3の3’UTRを含む。いくつかの実施形態において、第4の配列は、配列番号37〜42のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および第5の核酸は前記細胞に導入され、第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号46に示される配列を含むか;あるいは第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号47に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、遺伝子座に特異的な配列を有する少なくとも1つの相同アームを含み、該相同アームの長さは、AAVベクターへの効率的なパッケージングが達成されるように構成されている。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの相同アームの長さは、0.25kb、0.3kb、0.45kb、0.6kbもしくは0.8kb、またはこれらの数値のいずれか2つによって定義される範囲内の長さである。いくつかの実施形態において、前記マーカーは、LNGF、RQR8またはEGFRtである。いくつかの実施形態において、前記方法は、FOXP3と共発現させるためのタンパク質またはサイトカインをコードする第6の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記タンパク質または前記サイトカインは、T細胞受容体、キメラ抗原受容体またはIL-10である。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記マーカーの濃度を上昇させることによって前記細胞を選択する工程をさらに含む。
少なくとも1つの標的遺伝子座を含む第1の核酸を含む細胞を提供する工程;
CAS9タンパク質、または該CAS9タンパク質をコードする第2の核酸配列を提供する工程;
前記CAS9タンパク質または第2の核酸を前記細胞に導入する工程;
少なくとも1つの標的遺伝子座にハイブリダイズするように構成された少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする第3の核酸または該少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする1組の核酸を導入する工程;および
遺伝子送達カセットを含む第4の核酸を前記細胞に導入する工程
を含む。
いくつかの実施形態において、前記方法は、前記細胞を活性化する工程をさらに含み、該活性化は、該細胞に第2の核酸を導入する前に行われる。いくつかの実施形態において、前記活性化は、前記細胞をCD3および/またはCD28と接触させることによって行われる。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの標的遺伝子座は、FOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座である。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、1つ以上のベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記1つ以上のベクターは、ウイルスベクターである。いくつかの実施形態において、前記ウイルスベクターは、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは一本鎖ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターと一本鎖ベクターの組み合わせである。いくつかの実施形態において、前記CAS9タンパク質をコードする第2の核酸は、mRNAである。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つのガイド配列は、配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および/または34のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、真核細胞(ヒト細胞など)における発現のためにコドン最適化されている。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、ヒトのコドンに最適化されたFOXP3 cDNA配列をコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸配列は、配列番号68または69に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、プロモーターをさらに含む。いくつかの実施形態において、前記プロモーターは、MNDプロモーター、PGKプロモーターまたはE2Fプロモーターである。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、低親和性神経成長因子受容体(LNGFR)のコード配列、μCISC、CISCγ、FRBおよび/またはLNGFRe(LNGFRエピトープのコード配列)をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、第2の遺伝子送達カセットを含む第5の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、ベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記ベクターはAAVベクターである。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、CISC、FRB、マーカータンパク質、μCISC、および/またはβCISCをコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および/または第5の核酸は、P2A自己切断ペプチドをコードする配列(たとえば配列番号89に示される配列)をさらに含む。いくつかの実施形態において、第4の配列および/または第5の配列は、ポリA配列をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記ポリA配列は、SV40ポリAまたはFOXP3の3’UTRを含む。いくつかの実施形態において、第4の配列は、配列番号37〜42のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および第5の核酸は前記細胞に導入され、第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号46に示される配列を含むか;あるいは第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号47に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、遺伝子座に特異的な配列を有する少なくとも1つの相同アームを含み、該相同アームの長さは、AAVベクターへの効率的なパッケージングが達成されるように構成されている。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの相同アームの長さは、0.25kb、0.3kb、0.45kb、0.6kbもしくは0.8kb、またはこれらの数値のいずれか2つによって定義される範囲内の長さである。いくつかの実施形態において、前記マーカーは、LNGF、RQR8またはEGFRtである。いくつかの実施形態において、前記方法は、FOXP3と共発現させるためのタンパク質またはサイトカインをコードする第6の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記タンパク質または前記サイトカインは、T細胞受容体、キメラ抗原受容体またはIL-10である。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記マーカーの濃度を上昇させることによって前記細胞を選択する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、前記FOXP3は、構成的に発現されるか、制御下で発現される。
少なくとも1つの標的遺伝子座を含む第1の核酸を含む細胞を提供する工程;
CAS9タンパク質、または該CAS9タンパク質をコードする第2の核酸配列を提供する工程;
前記CAS9タンパク質または第2の核酸を前記細胞に導入する工程;
少なくとも1つの標的遺伝子座にハイブリダイズするように構成された少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする第3の核酸または該少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする1組の核酸を導入する工程;および
遺伝子送達カセットを含む第4の核酸を前記細胞に導入する工程
を含む。
いくつかの実施形態において、前記方法は、前記細胞を活性化する工程をさらに含み、該活性化は、該細胞に第2の核酸を導入する前に行われる。いくつかの実施形態において、前記活性化は、前記細胞をCD3および/またはCD28と接触させることによって行われる。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの標的遺伝子座は、FOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座である。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、1つ以上のベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記1つ以上のベクターは、ウイルスベクターである。いくつかの実施形態において、前記ウイルスベクターは、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは一本鎖ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターと一本鎖ベクターの組み合わせである。いくつかの実施形態において、前記CAS9タンパク質をコードする第2の核酸は、mRNAである。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つのガイド配列は、配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および/または34のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、真核細胞(ヒト細胞など)における発現のためにコドン最適化されている。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、ヒトのコドンに最適化されたFOXP3 cDNA配列をコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸配列は、配列番号68または69に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、プロモーターをさらに含む。いくつかの実施形態において、前記プロモーターは、MNDプロモーター、PGKプロモーターまたはE2Fプロモーターである。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、低親和性神経成長因子受容体(LNGFR)のコード配列、μCISC、CISCγ、FRBおよび/またはLNGFRe(LNGFRエピトープのコード配列)をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、第2の遺伝子送達カセットを含む第5の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、ベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記ベクターはAAVベクターである。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、CISC、FRB、マーカータンパク質、μCISC、および/またはβCISCをコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および/または第5の核酸は、P2A自己切断ペプチドをコードする配列(たとえば配列番号89に示される配列)をさらに含む。いくつかの実施形態において、第4の配列および/または第5の配列は、ポリA配列をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記ポリA配列は、SV40ポリAまたはFOXP3の3’UTRを含む。いくつかの実施形態において、第4の配列は、配列番号37〜42のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および第5の核酸は前記細胞に導入され、第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号46に示される配列を含むか;あるいは第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号47に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、遺伝子座に特異的な配列を有する少なくとも1つの相同アームを含み、該相同アームの長さは、AAVベクターへの効率的なパッケージングが達成されるように構成されている。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの相同アームの長さは、0.25kb、0.3kb、0.45kb、0.6kbもしくは0.8kb、またはこれらの数値のいずれか2つによって定義される範囲内の長さである。いくつかの実施形態において、前記マーカーは、LNGF、RQR8またはEGFRtである。いくつかの実施形態において、前記方法は、FOXP3と共発現させるためのタンパク質またはサイトカインをコードする第6の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記タンパク質または前記サイトカインは、T細胞受容体、キメラ抗原受容体またはIL-10である。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記マーカーの濃度を上昇させることによって前記細胞を選択する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、前記FOXP3は、構成的に発現されるか、制御下で発現される。いくつかの実施形態において、前記細胞は、FOXP3をコードする遺伝子をコードする核酸を含む。いくつかの実施形態において、FOXP3をコードする前記遺伝子は、FOXP3遺伝子座または非FOXP3遺伝子座に組み込まれる。いくつかの実施形態において、前記非FOXP3遺伝子座は、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座である。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、前記細胞は、CISCβ:FRB-IL2Rβ、DISC、CISC-FRB、μDISC、μCISC-FRB、FRB、LNGFRおよび/またはLNGFReを発現する。いくつかの実施形態において、前記細胞は、Treg表現型を含む。
少なくとも1つの標的遺伝子座を含む第1の核酸を含む細胞を提供する工程;
CAS9タンパク質、または該CAS9タンパク質をコードする第2の核酸配列を提供する工程;
前記CAS9タンパク質または第2の核酸を前記細胞に導入する工程;
少なくとも1つの標的遺伝子座にハイブリダイズするように構成された少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする第3の核酸または該少なくとも1つのCRISPRガイド配列をコードする1組の核酸を導入する工程;および
遺伝子送達カセットを含む第4の核酸を前記細胞に導入する工程
を含む。
いくつかの実施形態において、前記方法は、前記細胞を活性化する工程をさらに含み、該活性化は、該細胞に第2の核酸を導入する前に行われる。いくつかの実施形態において、前記活性化は、前記細胞をCD3および/またはCD28と接触させることによって行われる。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの標的遺伝子座は、FOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座またはTCRa(TRAC)遺伝子座である。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、1つ以上のベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記1つ以上のベクターは、ウイルスベクターである。いくつかの実施形態において、前記ウイルスベクターは、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは一本鎖ベクターである。いくつかの実施形態において、前記AAVベクターは、自己相補型ベクターと一本鎖ベクターの組み合わせである。いくつかの実施形態において、前記CAS9タンパク質をコードする第2の核酸は、mRNAである。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つのガイド配列は、配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および/または34のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第2の核酸、第3の核酸、前記1組の核酸および/または第4の核酸は、真核細胞(ヒト細胞など)における発現のためにコドン最適化されている。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、ヒトのコドンに最適化されたFOXP3 cDNA配列をコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸配列は、配列番号68または69に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、プロモーターをさらに含む。いくつかの実施形態において、前記プロモーターは、MNDプロモーター、PGKプロモーターまたはE2Fプロモーターである。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、低親和性神経成長因子受容体(LNGFR)のコード配列、μCISC、CISCγ、FRBおよび/またはLNGFRe(LNGFRエピトープのコード配列)をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記方法は、第2の遺伝子送達カセットを含む第5の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、ベクターに組み込まれて提供される。いくつかの実施形態において、前記ベクターはAAVベクターである。いくつかの実施形態において、第5の核酸は、CISC、FRB、マーカータンパク質、μCISC、および/またはβCISCをコードする配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および/または第5の核酸は、P2A自己切断ペプチドをコードする配列(たとえば配列番号89に示される配列)をさらに含む。いくつかの実施形態において、第4の配列および/または第5の配列は、ポリA配列をコードする配列をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記ポリA配列は、SV40ポリAまたはFOXP3の3’UTRを含む。いくつかの実施形態において、第4の配列は、配列番号37〜42のいずれかに示される配列を含む。いくつかの実施形態において、第4の核酸および第5の核酸は前記細胞に導入され、第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号37に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号43に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号38に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号44に示される配列を含むか;第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号46に示される配列を含むか;あるいは第4の核酸は配列番号45に示される配列を含み、かつ第5の核酸は配列番号47に示される配列を含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、第4の核酸は、遺伝子座に特異的な配列を有する少なくとも1つの相同アームを含み、該相同アームの長さは、AAVベクターへの効率的なパッケージングが達成されるように構成されている。いくつかの実施形態において、前記少なくとも1つの相同アームの長さは、0.25kb、0.3kb、0.45kb、0.6kbもしくは0.8kb、またはこれらの数値のいずれか2つによって定義される範囲内の長さである。いくつかの実施形態において、前記マーカーは、LNGF、RQR8またはEGFRtである。いくつかの実施形態において、前記方法は、FOXP3と共発現させるためのタンパク質またはサイトカインをコードする第6の核酸を前記細胞に導入する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記タンパク質または前記サイトカインは、T細胞受容体、キメラ抗原受容体またはIL-10である。いくつかの実施形態において、前記方法は、前記マーカーの濃度を上昇させることによって前記細胞を選択する工程をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記細胞は初代ヒトリンパ球である。いくつかの実施形態において、前記FOXP3は、構成的に発現されるか、制御下で発現される。いくつかの実施形態において、前記疾患は自己免疫疾患である。いくつかの実施形態において、前記疾患はX連鎖性(IPEX)症候群である。いくつかの実施形態において、前記状態は移植片対宿主病(GVHD)である。いくつかの実施形態において、前記対象は、固形臓器の移植を受けた対象である。
この実験は、FOXP3が機能的な場合のみ、FOXP3の構成的プロモーターを提供することでCD4+ Tconv細胞の抑制性機能が得られることを証明するものである。TALEN mRNAと、MND-GFPの両末端にFOXP3相同アームを有するAAVドナー鋳型とを用いて、IPEX患者の細胞に遺伝子組換えを施した。この遺伝子編集により、FOXP3遺伝子座にMNDプロモーターとGFPコード配列が導入され、GFPコード配列は内在性のFOXP3コード配列にインフレーム融合した。
移植片対宿主病(GVHD)および自己免疫疾患の治療および抑制に有望なドナー鋳型(AAVで送達)と、CRISPR/Cas9-sgRNA RNPとを用いて遺伝子編集を行い、FOXP3を発現する組換え制御性T細胞を作製した。制御性T細胞は、遺伝子編集の目的で対象から採取した。AAVベクターは、移植片対宿主病(GVHD)および自己免疫疾患の治療および抑制を目的とするドナー鋳型を送達するために使用した。標的遺伝子座は、FOXP3遺伝子座(シングルAAVコンストラクト)、AAVS1遺伝子座(シングルまたはデュアルAAVコンストラクト)およびTCR遺伝子座(シングルまたはデュアルAAVコンストラクト)から選択した。AAVドナー鋳型コンストラクトを使用して、シングルAAV鋳型でTregを編集した(下表のコンストラクトA、B、C、DおよびF)。さらに、AAVドナー鋳型コンストラクトを使用して、デュアルAAV鋳型でTregを編集した(コンストラクトA+G、A+H、B+G、B+H、I+J、およびI+Kを参照)。
CRISPR-Cas9/sgRNA RNPは、新規のスペーサー配列を含む。スペーサー配列T1、T3、T4、T7、T9およびT18は、エキソン1のヒトFOXP3遺伝子座を標的とするように設計されている。オンターゲットおよびオフターゲット切断分析を行うために、本明細書に記載のスペーサー配列を含むCRISPR-Cas9/gRNA RNPをトランスフェクションしたCD4+ T細胞からゲノムDNAを抽出した。基準コントロールとして、mockトランスフェクションを行ったCD4+ T細胞のゲノムDNAも抽出した。
次に、健常なドナーのヒトCD4+ T細胞を用いて、ヒトCD4+ T細胞のAAVS1を標的とするCas9/gRNA(比1:2.5)を含むRNPのオンターゲット切断効率を調べた。
C57BL/6雄性マウスの脾臓およびリンパ節からマウスCD4+ T細胞を単離した。次に、単離した細胞をCD3/CD28 Dynabeadsで活性化させ、Cas9/gRNA RNPをエレクトロポレーションにより細胞に導入した。Cas9とガイドRNAのモル比は1:2.5であった。エレクトロポレーションを行った直後に、培養培地を含むウェルに細胞を播種し、AAVによる形質導入を行った。gRNAとCas9タンパク質とのRNP複合体の作製には、マウスFOXP3エキソン4を標的とする、マウスのmT20、mT22またはmT23スペーサーを用いた。形質導入には、MND-GFPと相同アーム配列とを含むAAV5ドナー鋳型を使用した。
別のプロモーターエレメントとしてMNDプロモーター、0.7UCOE.MNDプロモーターまたはPGKプロモーターを含み、その下流に、内在性マウスFOXP3配列にインフレーム融合したGFPコード配列を含む、様々なマウスFOXP3特異的なAAVドナー鋳型を調製した(図1)。マウスCD4+ T細胞にCas9/gRNA-mT23 RNP(Cas9:gRNA比1:2.5)をエレクトロポレーションにより導入した後、AAVドナー鋳型を送達した。編集後2日目にフローサイトメトリーによりGFPおよびFOXP3のレベルを測定した。マウス脾細胞から単離した天然のTreg(nTreg)を用いて、edTregにおけるFOXP3発現レベルと天然のTregにおける内在性FOXP3レベルを比較した。
アカゲザルのCD4+ T細胞を、非ヒト霊長動物CD4+ T細胞単離キット(Miltenyi社)を用いて、末梢血またはアフェレーシス産物から単離した。エレクトロポレーションおよび/またはAAVによる形質導入を行う60時間前に、当研究室で作製したCD3/CD28結合ビーズとともにインキュベートして、T細胞を活性化させた。エレクトロポレーションのパラメータを検証するために、BFP mRNAをエレクトロポレーションにより導入し、2日後にBFPの発現を確認した。AAV血清型を判定するために、MND-GFP発現カセットを含むコンストラクトを様々な血清型のAAVにパッケージングして、これらを用いて活性化CD4+ T細胞の形質導入を行った。GFP発現をFACSで分析して、形質導入効率を確認した。
FOXP3発現を導入するためのTALENによる編集
FOXP3活性を付与できることを証明するために、健常なヒト対象から得たCD4+細胞に、
(i)TALENをコードする核酸、
(ii)FOXP3コードするドナー鋳型およびAAV-MND-LNGFR-2A KI(コントロール)をコードする核酸を発現させるためのAAVベクター、または
(iii)AAV-MND-FOXP3cDNA-2LNGFR(実施例1におけるID: B)
をトランスフェクションした。下表に示すように、ヒトコドン最適化FOXP3 cDNAを発現する細胞は、FOXP3とLNGFRの両方の発現を示した。
健常なヒト対象から得たCD4+細胞に、TALEN mRNA、Cas9/gRNA(T3)RNPまたはCas9/gRNA(T9)RNPをコードする核酸をトランスフェクションした。次に、細胞に、MND-GFP-KIを発現するウイルスベクター(PCT/US2016/059729に記載のもの。この文献は、参照によりその全体が明示的に援用される)、またはMND-GFP-FOXP3cDNA(表2に示す)を発現するウイルスベクターをトランスフェクションした。
T3 sgRNAを含むRNPとT9 sgRNAを含むRNPの編集率との比較(各ガイドに特異的な改変相同アームを有するAAVドナー鋳型を使用)
健常なヒト対象から得たCD4+細胞に、Cas9/sgRNA-T3 RNPまたはCas9/sgRNA-T9 RNPをコードする核酸をトランスフェクションした。試験で使用するAAVドナー鋳型#3063および#3066には、実施例1のコンストラクトAが含まれている。コンストラクトAは、FOXP3cDNA-LNGFR誘導体であり、コード配列(5'→3'方向)は、ITR-HA-MNDプロモーター-FOXP3cDNA-2A-LNGFR-SV40polyA-HA-ITRである。
Treg reg 関連マーカー
mock編集したT細胞および編集したT細胞における編集後3日目のTreg関連マーカーのレベルを測定した。健常なヒト対象から得たCD4+細胞に、
(i)mock編集を行うか、または(ii)Cas9/sgRNA-T9 RNPで編集を行い、次いで、図面に示す0.6kbの相同アームを有するAAVドナー鋳型FOXP3 cDNA-LNGFRコンストラクト(実施例1のコンストラクトA、FOXP3cDNA-LNGFR)をトランスフェクションした。
次に、編集したT細胞の表現型解析を行った。コンストラクトAを保持する細胞は、PMA/イオノマイシン刺激によりサイトカインを産生した。
様々な発現カセットを有するAAVドナー鋳型の検証実験を行った。FOXP3 cDNA-P2A-GFPを含むベクターとFOXP3 cDNA-IRES-GFPを含むベクターを用いて、P2A(ブタテッショウウイルス-1 2A)とIRES(配列内リボソーム進入部位)を、マルチシストロン性発現の観点から比較した。さらに、FOXP3 cDNAと選択マーカーの相対的な配置(FOXP3-P2A-LNGFRとLNGFR-P2A-FOXP3)を比較するとともに、この手法を最終的に完成させるために、FOXP3の染色試薬と染色プロトコルの比較も行った。
(0.25kb HA)-MND-FOXP3cDNA-2A-GFP-WPRE-pA-(0.25kb HA)
(0.25kb HA)-MND-FOXP3cDNA-IRES-GFP-WPRE-pA-(0.25kb HA)
(0.45kb HA)-MND-LNGFR-2A-FOXP3cDNA-WPRE-pA-(0.6kb HA)
(0.45kb HA)-MND-FOXP3cDNA-2A-LNGFR-WPRE-pA-(0.6kb HA)
マウスFOXP3遺伝子座にMND-GFP-マウスFOXP3cDNAを組み込むために、TALENを用いて遺伝子編集を行った。次のステップとして、セルソーティング後2日目に表現型解析を行った。表現型解析に使用した細胞は、mock編集した細胞、MND-GFPkiを発現する細胞、およびMND-GFPmFOXP3CDSを発現する細胞である。遺伝子編集でMND-GFP-マウスFOXP3cDNAをマウスFOXP3遺伝子座に組み込むことにより、マウスFOXP3cDNAの発現と、Treg様の表現型の発現、すなわちCD25とCTLA-4の高発現が確認された。
アカゲザルCD4+細胞を用いて、エレクトロポレーションにより、非ヒト霊長動物細胞への遺伝子編集を行った。3匹のアカゲザルのCD4+細胞へのエレクトロポレーションの概要を図4に示す。図4は、エレクトロポレーション後の細胞生存率およびBFP(青色蛍光タンパク質)発現能力を示した図である。BFP mRNAは、エレクトロポレーション条件の検証に用いた。% BFP+は、エレクトロポレーション効率を示す。1400V、20 msのパルスを合計2回印加するというエレクトロポレーション条件において、約20〜50%のBFP+細胞が得られ、細胞生存率もコントロールと比べて大きく損ねることはなかった。
TCRaに対するAAVドナー鋳型の設計
図6に、使用したTCRa遺伝子トラップコンストラクトの設計を示す。TCRaスペーサー配列(「ガイド#1」から「ガイド#4」、配列番号125〜128に対応)は、TCRaの最後のエキソン(エキソン6)を標的としており、COSMIDを使用して確認した。
1)5'HA(0.4kb)-pA-P2A-MND-FOXP3-GFP-wPRE-合成PA-3'HA(0.4kb)(コンストラクトの長さは4kb)
2)5'HA(0.4kb)-T2A-FOXP3-P2A-GFP-wPRE-合成PA-3'HA(0.4kb)(コンストラクトの長さは3.6kb)
3)5'HA(0.4kb)-T2A-FOXP3-P2A-GFP-wPRE-3'HA(0.4kb)(イントロン含まず)(コンストラクトの長さは3.5kb)
TCRaを標的とするサンプルは、63時間のT細胞ビーズ刺激レイアウト(NHEJ/HR)を利用した。各サンプルの編集効率は、編集前にCD3/CD28 Dynabeadsで63時間刺激した細胞を用いて調べた。
AAVS1部位編集用のAAVドナー鋳型を使用した。ドナー鋳型の全体的な構造としては、両アレルの編集効率を確認するための、ITR-HA-MND-GFP-WPRE3-pA-HA-ITR、ITR-HA-MND-BFP-WPRE3-pA-HA-ITR(HA = 相同アーム); FOXP3cDNA AAV鋳型で編集するための、ITR-HA-MND-FOXP3cDNA-2A-LNGFR-pA-HA-ITR; FOXP3cDNAおよびDISCを発現するための両アレル編集を利用するための、ITR-HA-MND-CISCβ-2A-FRB-2A-マーカー-pA-HA-ITRおよびITR-HA-MND-CISCγ-2A-FOXP3cDNA-2A-LNGFR-pA-HA-ITRが含まれる。
凍結ヒトPBMCを素早く解凍・洗浄し、ネガティブ選択キット(STEMCELL Technologies社EasySep CD4+ Enrichment Kit)を用いてCD4+ T細胞を回収した。CD4+細胞(ビーズを使用したネガティブ選択後の上清)を50万個/mLの密度でT細胞培養培地(20%FBS、1×GlutaMAX(2 mM L-アラニル-L-グルタミンジペプチド)、55μM 2-メルカプトエタノールおよび50 ng/mL ヒトIL-2を含むRPMI 1640)に再懸濁し、TエキスパンダーCD3/CD28 Dynabeadsをビーズと細胞の比率が3:1になるように加えて細胞を活性化させた。細胞を37℃、5%CO2の条件で3日間培養した。CD3/CD28ビーズを加えてから72時間後にビーズを除去し、細胞を上記と同様に一晩培養した。
例示的なプロトコルを用いた編集における編集率の評価
実施例10に記載の例示的なプロトコルを用いて、5'末端と3'末端に0.6kbのFOXP3相同アームを有するAAVドナー鋳型で編集した場合の編集効率を、6名のドナーのT細胞を用いて、13回実験を行って評価した。2日目にフローサイトメトリーで評価した平均HDR率は、34%または約34%であった(下表を参照のこと)。
実施例10に記載の例示的な編集プロトコルを用いて編集した細胞に対して、編集から3日後にフローサイトメトリーにより免疫表現型解析を行った。CD4、LNGFR、CD25、CD127、LAG3、CTLA-4およびCD45ROの染色を標準的な表面染色法により行った。その後、True-Nuclear転写因子キット(Biolegend社)を用いて、細胞の固定および膜透過処理を行い、その後、FOXP3抗体およびHelios抗体で染色した。LNGFR+細胞(編集に成功した細胞を意味する)は、天然胸腺のTreg(tTreg)と同様の表現型を有しており、FOXP3、CD25、CTLA4、ICOSおよびLAG3のレベルは高く、CD127のレベルは低かった。CD45RO染色により、編集した細胞がメモリ表現型と一致していることが示された。編集した細胞において、Heliosレベルのアップレギュレーションは見られなかった。
特定の用途(例えば臨床応用)のために、細胞表面のタグを用いて、編集した細胞を選択することができれば、編集されていない細胞(培養において増殖上有利である)の割合を減らす上で有用であると考えられる。これを検証するために、実施例10に記載の例示的な編集プロトコルで編集を行ってから3日後に、(CD271)LNGFRマイクロビーズ(Miltenyi社)またはMACSelect LNGFRマイクロビーズ(Miltenyi社)をメーカー推奨のプロトコルに従って使用し、編集した細胞の濃縮を試みた。
炎症(CATI)マウスモデル
NOD-scid-IL2RγNull(NSG)マウスは免疫不全で、ヒトT細胞の移植が可能である。全身照射後にヒトCD4 T細胞を送達すると、マウスMHC-IIに依存する炎症反応が促進されることが報告されている(Covassin, L. et al.(2011). Clin. Exp. Immunol. 166(2):269-280)。炎症反応には、ヒトCD4 T細胞集団の活性化および増大や、炎症促進性ヒトサイトカイン(例えば、IL-2およびIFN-γ)の発現増加および遊離が含まれており、細胞が集中した組織、例えば、腸管、肺や皮膚などがダメージを受けることが報告されている。このモデルにおいて、自己胸腺の制御性T細胞(tTreg)がヒトCD4 Teff細胞の活性化を抑制できることが示されており、本明細書に記載の編集した制御性T細胞の免疫抑制性の特性を検証するためのモデルシステムが提供されていると考えられる。
i)Teffのみ(n=15)、
ii)Teff + mock編集した細胞(n=17)、または、
iii)Teff + 実施例10に記載の例示的な編集プロトコルで編集したedTreg(n=16)。
移入後14日目に、mock編集群およびedTreg群からそれぞれ4匹のマウスを選んで末梢血を採取し、屠殺後、ヒトT細胞の存在を確認した。また、マウスに対して、人道的エンドポイント(体重の20%を超える減少)を適用した安楽死処置を行った。mock編集した細胞を移植した群では、edTregを移植したマウス群よりヒトCD4+ CD45RO+ 細胞の割合が高く、その数も多かった(mock編集細胞移植群65%、edTreg移植群約20%)(p = 0.0034)。edTreg群では、このCD4+CD45RO+ 細胞の約40%がLNGFR+ edTregであり、mock編集した細胞では0.08%であった(p = 0.0037)。2つのネガティブコントロール群(TeffのみおよびTeff + mock編集した細胞)のほとんどのマウスは、所定の人道的エンドポイント、総じて過度の体重損失により、移植後の最初の3週間以内に安楽死処置が施された。
FOXP3、GFPおよびLNGFRの発現レベルに対するWPREエレメントの効果の評価
結果
FOXP3cDNA-P2A-GFPドナー鋳型およびFOXP3cDNA-P2A-LNGFRドナー鋳型を用いて、FOXP3発現に対する全長型WPREと切断型WPREの効果を評価した。
遍在性クロマチンオープニングエレメント(UCOE)が、MND誘導性のFOXP3cDNA発現を安定化できるか否かを検証した。このエレメントは、プロモーターエレメントのサイレンシングを抑制し、マイナスの影響を低減する機能を有する。遍在性クロマチンオープニングエレメント(UCOE)は、一般的に、組み込まれた導入遺伝子周辺に転写的に活性化されたクロマチン構造を作るために用いられるものであり、プロモーターエレメントのサイレンシングを抑制し、マイナスの影響を低減する機能を有する。
結果
遍在性クロマチンオープニングエレメント(UCOE)が、MND誘導性のFOXP3cDNA発現を安定化できるか否かを検証した。このエレメントは、プロモーターエレメントのサイレンシングを抑制し、マイナスの影響を低減する機能を有する。遍在性クロマチンオープニングエレメント(UCOE)は、一般的に、組み込まれた導入遺伝子周辺に転写的に活性化されたクロマチン構造を作るために用いられるものであり、プロモーターエレメントのサイレンシングを抑制し、マイナスの影響を低減する機能を有する。
成人の健常なドナーから単離したCD4+T細胞を、50万〜100万個/mlの細胞濃度に調整し、抗CD3/CD28ビーズを用いて48時間活性化させた。ビーズを除去して一晩静置した後、Neonトランスフェクションシステムを使用して、ヒトFOXP3に特異的なTALEN mRNAをエレクトロポレーションにより細胞に導入した。トランスフェクションの2時間後に、FOXP3cDNA-P2A-GFPもしくはFOXP3cDNA-P2A-LNGFRを含み、WPREバリアントを含むAAVドナー鋳型、またはFOXP3cDNA-P2A-GFPもしくはFOXP3cDNA-P2A-LNGFRを含み、WPREバリアントを含まないAAVドナー鋳型を細胞培養物に加え、30℃で24時間インキュベーションを行った。インキュベーションを行った後、AAVに関わる毒性を低減するために、新鮮な培地を培養物に加えてAAVを希釈した。HDR効率は、編集後2日目にフローサイトメトリーで測定したGFP+の割合(%)または LNGFR+の割合(%)に基づいて求めた。編集後4日目にFACS分析を行い、LNGFR発現およびFOXP3発現の有無を確認した。
結果
次に、cis連結した表面マーカーLNGFRを導入することで、抗LNGFR抗体を用いて、LNGFRを発現するedTreg調製物を精製することが可能であるかを調べた。
(A)ITR-HA-MND-FOXP3cDNA-2A-LNGFR-pA-HA-ITR
(B)ITR-HA-LNGFR-2A-FOXP3cDNA-pA-HA-ITR
成人の健常なドナーから単離したCD4+T細胞を、50万〜100万個/mlの細胞濃度に調整し、抗CD3/CD28ビーズを用いて48時間活性化させた。ビーズを除去して一晩静置した後、Neonトランスフェクションシステムを使用して、ヒトFOXP3に特異的なTALEN mRNAをエレクトロポレーションにより細胞に導入した。トランスフェクションの2時間後に、MND.GFP.Knock-inを含み、UCOEバリアントを含むAAVドナー鋳型、またはMND.GFP.Knock-inを含み、UCOEバリアントを含まないAAVドナー鋳型を細胞培養物に加え、30℃で24時間インキュベーションを行った。インキュベーションを行った後、AAVに関わる毒性を低減するために、新鮮な培地を培養物に加えてAAVを希釈した。編集後2日目にフローサイトメトリーによりHDR効率および初期のGFP発現レベルを調べた。さらに細胞の培養を継続して行い、2〜3日おきに培養培地を補充した。21日間の培養期間中、複数の時点で培養細胞の一部をサンプリングした。各時点で、フローサイトメトリー分析により、GFP導入遺伝子の割合および発現レベルをプロモーター活性の指標として調べた。
結果
次に、edTreg調製物がin vitroで機能的な活性を有しているか否か、そして、FOXP3 cDNAカセット内のP2A自己切断ペプチドの位置が機能に影響を及ぼすか否かを確認するために、edTreg調製物を用いて実験を行った。
細胞を、20 ng/ml PMA/DMSO(MilliporeSigma社)、1μg/ml イオノマイシン(MilliporeSigma社)および1μg/ml モネンシン(GolgiStop、Life technologies社)を加えた培養培地に播種して37℃で5時間培養した。次に、処理した細胞に、CD4およびLNGFRを含む表面マーカーの染色を行い、続いて、BD Cytofix/Cytoperm(商標)固定/膜透過処理液キット(BDB554714、BD Biosciences社)を用いて固定および膜透過処理を行った。細胞内のサイトカインは、蛍光色素で標識した抗サイトカイン抗体を用いて染色し、FACSで分析を行った。
結果
次に、edTregにおけるFOXP3 cDNAの発現を促進する能力について、SV40-polyAシグナル(「pA」)と、ヒトFOXP3由来の3'UTRエレメントとを比較した。この比較には、AAVドナー鋳型#3117および#3118を使用した。これらの全体的な構造(5'→3'方向)は以下に示す通りである。AAV #3117は、LNGFR-P2A-FOXP3 cDNAの5'末端側にMNDプロモーターを含み、SV40-polyAシグナルを含む。一方、AAV #3118は、LNGFR-P2A-FOXP3 cDNAの5'末端側にMNDプロモーターを含み、3'-UTRを含む。AAV #3117およびAAV #3118のいずれも、3'-末端および5'-末端に0.45kbの相同アーム(HA)を有する。
#3117: ITR-HA-MND-LNGFR-2A-FOXP3cDNA-pA-HA-ITR
#3118: ITR-HA-MND-LNGFR-2A-FOXP3cDNA-3'UTR-HA-ITR
Cas9/T9(比1:2.5)で構成されたRNPを細胞にトランスフェクションし、各AAVドナー鋳型をAAV形質導入により送達した。FACS分析は上記の通りである。
前編集CD4+ T細胞活性化および前編集拡大培養プロトコルの開発
edTregを作製する上で許容可能な、CD4+ T細胞の編集条件の決定を試みた。検証した条件には、以下の様々な活性化方法を含む:CD3/CD28 T活性化ビーズ、可溶性CD3/CD28抗体とCD3/CD28 Tエキスパンダービーズ、様々な細胞濃度(50万個と100万個/ml)、様々な活性化時間(48時間、60時間、72時間と84時間)、ビーズ除去から編集までの間に設ける様々な静置時間。
結果
次に、T細胞を編集してedTregを作製する際のAAV形質導入工程で使用する、許容可能な細胞培地の決定を試みた。AAV形質導入時に、5%、10%または20%のFBSを含む培養培地を用いて実験を行った。細胞を編集した後、20%FBSを含む培地で活性化させて拡大培養し、次いで、5%、10%または20%のFBSを含む培地で細胞を培養した後、AAVを加えた。複数のバッチで作製したAAVを実験で使用した。
次に、CD4+T細胞を編集してedTregを作製するためのヌクレオフェクションプログラムとして、他のプログラムについて詳細な分析を行った。ロンザ EO-115プログラムまたはDN-102プログラムのいずれを使用した場合も、編集後の生存率が維持されるとともに、高いHDR編集効率が得られた。AAVドナー鋳型3066および3080を実験で使用した。
結果
次に、HDRにより遺伝子編集した、LNGFRを発現するedTregの効率的な濃縮手法の確立を試みた。
ヒト初代CD4+ T細胞にAAV #3066ドナーコンストラクトで遺伝子編集を行い、3日後に、LNGFR(CD271)マイクロビーズ(Miltenyi社 #130-099-023)と磁気カラム分離(Miltenyi社 #130-042-401)を利用して、細胞を濃縮した。濃縮した細胞を、T細胞拡大培養培地(RPMI1640、20%FBS、HEPES、GlutaMAX、β-メルカプトエタノール、IL-2(100 ng/ml)および100 nMラパマイシン)中で、ビーズと細胞の比率が3:1になるようにCD3/CD28 T-エキスパンダービーズと混合した。G-Rex(登録商標)(6ウェル、Wilson Wolf社、セントポール、ミネソタ州、米国)に、細胞培養物を150万〜200万個/ウェルで播種して、7日間培養した。G-Rex(登録商標)で培養を開始してから3日目および5日目に、培地の半量を補充した。G-Rex(登録商標)で7日間の拡大培養を行った後、細胞数、純度および表現型を調べた。
edTreg調製物の評価にあたり、実験のコントロールとして、tTreg(胸腺Treg)を用いた。なお、tTregは、nTreg(天然Treg)としても知られている。ex vivoにおけるtTregの拡大培養プロトコルはいくつか公開されているが、いずれも、単離、拡大培養条件および期間の観点で我々のedTregプロトコルとは大きく異なっている。
我々は、下記に示すtTreg拡大培養プロトコルを開発した。このtTreg拡大培養プロトコルは、edTregのin vitroでの培養および取扱に非常に適合したものである。tTregの拡大培養に用いる試薬および条件を下表にまとめた。
結果
tTreg細胞を作製するための、edTregに適合するこのプロトコルを用いて、まず、4名のドナー由来のtTregにおけるFOXP3発現を評価した。同時に、ポジティブコントロールとして、通常型CD4細胞(「Tconv」または「conv CD4」)、すなわち、CD4+CD25-細胞を用いて、拡大培養および染色/解析を行った。
健常なドナーのPBMCから、天然のTreg細胞をTreg isolation kit(Stemcell社)を用いて単離し、次いで、ビーズと細胞の比率を3:1として、CD3/CD28 T-エキスパンダービーズで活性化させ、最初の拡大培養を行った。50万個/mlのTreg細胞を、ビーズの存在下で72時間培養した後、ビーズなしでさらに96時間培養した。次に、拡大培養培地を含むG-Rex 6ウェル培養容器に、tTreg細胞とCD3/CD28 T-エキスパンダービーズを、ビーズと細胞の比率が3:1になるように加えた。7日間の培養期間中、2〜3日おきに、G-Rex中の増殖培地を補充した。培養7日目に、細胞を磁気分離によりビーズから分離し、CryoStor CS10培地に加えて、液体窒素キャビネットで凍結保存した。
結果
ヒト初代T細胞の他の標的遺伝子座を編集した場合でもedTregを作製できるか否かを調べるために、FOXP3遺伝子座を編集した場合とAAVS1遺伝子座を編集した場合のFOXP3の発現レベルを比較した。編集後2日目に、FOXP3遺伝子座とAAVS1遺伝子座で、同様に高レベルのHDR編集が確認された。なお、未編集の細胞およびドナー鋳型のみトランスフェクションした細胞を比較対照とした。導入遺伝子マーカー(GFPまたはLNGFR)を発現する細胞の割合(%)を下表にまとめた。
Cas9/gRNA-T9 RNP複合体またはCas9/gRNA-N2 RNP複合体をエレクトロポレーションにより活性化CD4+ T細胞に導入して、FOXP3遺伝子座またはAAVS1遺伝子座にDNA二本鎖切断を導入した後、AAVを介してドナー鋳型を送達し、相同組換えによる修復を行った。ドナー鋳型は、両末端に遺伝子座特異的な相同アームを有する、MND-GFP.polyA遺伝子発現カセットまたはMND-FOXP3cDNA.P2A.LNGFR.polyA遺伝子発現カセットを含む。2日目に、フローサイトメトリーによりGFP+またはLNGFR+の割合(%)を測定し、編集効率を求めた。CD4細胞の活性化、編集およびFACSについては、実施例15に記載の方法を用いた。
結果
edTreg作製後のドナーHDRカセットのオンターゲット組み込みを数値化するために、ドロップレットデジタルPCR(ddPCR)アッセイの開発を試みた。HEXプローブまたはFAMプローブと一緒にddPCRプライマーを設計し、AAVドナー鋳型#3066を用いて作製したedTregにおけるLNGFRの存在、またはHDR編集率を定量した。次いで、ddPCRで求めたHDR編集率を、細胞染色およびフローサイトメトリーで先に求めたHDR編集レベルと比較した。
編集した細胞を、LNGFR抗体カラム分離(Miltenyi社)を利用して濃縮した。濃縮した調製物とフロースルー調製物を、それぞれG-Rex(登録商標)(Wilson Wolf社、セントポール、ミネソタ州、米国)で7日間拡大培養した。LNGFRで濃縮された細胞は、90%または約90%がLNGFR+であり、拡大培養したフロースルー細胞は、1%または約1%がLNGFR+であった。次いで、濃縮した細胞およびフロースルー細胞の一部を混合して、LNGFR+純度70%の細胞調製物を得た。細胞サンプルをddPCRとフローサイトメトリーで分析し、LNGFR+の割合(%)およびオンターゲット遺伝子組み込み率(%)を確認した。
次に、我々独自の作製プロトコルで得られたedTreg調製物について、in vivoにおける機能的活性を評価した。
結果
edTregを臨床的に関連のある表面マーカーを用いて効率的に精製できること、またedTregを効果的に拡大培養して凍結保存できることが分かった。得られた細胞調製物は、in vivoで効率的に機能して、マウスの異種移植片対宿主病(xenoGVHD)(CD4養子移入炎症(CATI)マウスモデルとしても知られている)を抑制した。なお、凍結保存したedTregを用いた場合と新たに作製したedTregを用いた場合で同様の結果が認められ、FACSで濃縮したLNGFR+細胞を用いた場合とカラム分離で濃縮したLNGFR+細胞を用いた場合でも同様の結果が認められ、LNGFRノックイン(KI)edTregを用いた場合とGFPノックインedTregを用いた場合でも同様の結果が認められた。よって、リンパ球細胞のゲノムを編集するこの方法が安定した方法であること、そして、特定のプロトコルに依存することなく効果的な細胞組成物を調製できることが証明された。
凍結保存した細胞を「休ませる」必要がある条件において、細胞をCryoStor CS10凍結用培地(BioLife Solutions社)に500〜10000万個/mlになるように再懸濁し、凍結バイアルに1 mLずつ分注した。CoolCell(BioCision社)またはMr. Frosty(ThermoFisher社)などの凍結容器に入れたバイアルを、室温から-80℃のフリーザーに移し、-80℃のフリーザーで約4〜96時間かけて、約1℃/minの速度で温度を低下させた。その後、凍結バイアルを保存用の液体窒素キャビネットに移した。8〜10週齢の雄性NSG(NOD-scid IL2Rgamma-null、Jackson Laboratory)マウスに200cgyで全身照射し、その後、edTreg、mock編集した細胞、または、場合によりtTreg(8×106個/マウス)を静脈内投与した。いくつかの実験群では、マウスに照射のみ行った。実験対象の個体の体重を測定して、開始時の体重として記録した。注入後3日目に、凍結保存したPBMCから新たに単離した4×106個の自己CD4エフェクターT細胞を、実験群の各マウスの尾静脈に投与した。体重の変化は毎週2〜3回モニターし、GvHDスコアは、エフェクターT細胞注入後約50〜65日間にわたって毎週評価した。GvHDスコアは、体重変化、姿勢、活動、毛並みおよび皮膚の完全性に従って測定した。カテゴリーごとにスコアが0〜2の範囲で0.5刻みに設けられており、合計のスコアを記録した。体重減少が開始時の体重の20%を超える場合は、実験のエンドポイントとして、マウスに人道的に安楽死処置を行った。
結果
edTregは、xenoGVHDマウスモデルにおいてin vivo持続性を示した。養子移入後90日目のマウスでLNGFR+FOXP3+ edTregが検出され、刺激後のLNGFR+細胞における炎症性サイトカイン(IL-2、TNFα、IFNγ)の産生量は、以下に示すように、LNGFR- T細胞より少なかった。この結果により、edTregの機能および表現型がin vivoで長期に維持されることが証明された。FOXP3、CTLA-4、CD25およびCD127の染色結果と合わせて、LNGFRの染色結果も下表に示す。
xenoGVHDモデルへの細胞移入後90日目に、ヒトedTregおよびTeffを移入した3匹のマウスから脾臓を採取し、長期に生着しているedTregの存在および免疫表現型を調べた。hCD45RO+CD4+またはhCD3+CD4+として同定されたヒトCD4+ T集団におけるLNGFR、Tregマーカーおよび細胞内サイトカインをフローサイトメトリーにより調べた。刺激によりサイトカインを産生させるために、細胞をPMA/イオノマイシンおよびGolgiStopで37℃で5時間処理して、その後、各サイトカインの染色を行った。マウスから採取した脾臓をPBSバッファー中で優しく濾して、細胞懸濁液を準備した。脾細胞をACK(塩化アンモニウムカリウム)溶解バッファーで処理して赤血球を除去し、免疫染色を行った。細胞内マーカーは、True-Nuclear核内転写因子染色バッファーセットを用いて染色した。サイトカインの産生量を調べるために、細胞をPMA/イオノマイシンおよびGolgiStopを加えた培養培地で37℃で5時間培養し、BD cytofix/cytoperm固定/膜透過処理液キットを用いて免疫染色を行った。
結果
IPEX対象のT細胞治療としてのedTregの可能性を評価するために、I363V FOXP3変異を有するIPEX対象のCD4+ T細胞、または健常なドナーの臍帯血もしくは健常なドナーPBMCに由来するコントロール細胞を、実施例15に従って調製したSpyFi Cas9/gRNA T9(比1:2.5)RNPと、AAVドナー鋳型#3080またはAAVドナー鋳型#3066とを用いて編集した。先の章に記載した通り、AAVドナー鋳型#3066のコンストラクト構造は、ITR-(0.6kb HA for T9)-MND-FOXP3cDNA-P2A-LNGFR-pA-(0.6kb HA for T9)-ITRであり、AAVドナー鋳型#3080のコンストラクト構造は、ITR-(0.6kb HA for T9)-MND-LNGFR-P2A-FOXP3exon1-pA-(0.6kb HA for T9)-ITRである。
各AAVドナー鋳型を評価するために、I363V変異を有するIPEX対象の臍帯血からT細胞を単離した。同時に、健常な臍帯血からコントロール1(Ctrl 1)T細胞を単離し、健常な成人のPBMCからコントロール2(Ctrl 2)T細胞を単離した。それぞれのT細胞を、SpyFi Cas9/gRNA-T9(比1:2.5)RNPとAAVドナー鋳型#3066とを用いて、実施例15に記載のプロトコルに従って処理した。編集後2日目に、各T細胞調製物のFACS分析を行った。
増殖色素を用いた2種類のin vitro抑制アッセイにより、実施例10の例示的な編集プロトコルを用いて作製したedTregが、CD3/CD28刺激に応じてCD4 Teffの増殖を抑制するか否かを確認した。
抑制率(%)=(抑制処理なしの増殖率(%)- 抑制処理ありの増殖率(%))/(抑制処理なしの増殖率(%))×100
Claims (27)
- デオキシリボ核酸(DNA)エンドヌクレアーゼ、または該DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸;
リンパ球細胞のFOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座もしくはTCRa(TRAC)遺伝子座内の配列に相補的なスペーサー配列を含むガイドRNA(gRNA)、または該gRNAをコードする核酸;および
FOXP3またはその機能性誘導体をコードする核酸配列を含むドナー鋳型
を含むシステム。 - 前記gRNAが、
i)配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および34のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号1〜7、15〜20、27〜29、33および34のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント;
ii)配列番号1〜7のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号1〜7のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント;または
iii)配列番号2、3および5のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号2、3および5のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント
を含む、請求項1に記載のシステム。 - 前記FOXP3またはその機能性誘導体が、野生型ヒトFOXP3である、請求項1または2に記載のシステム。
- 前記DNAエンドヌクレアーゼがCasエンドヌクレアーゼである、請求項1〜3のいずれか1項に記載のシステム。
- 前記DNAエンドヌクレアーゼがCas9エンドヌクレアーゼである、請求項1〜3のいずれか1項に記載のシステム。
- 前記DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸がmRNAである、請求項1〜5のいずれか1項に記載のシステム。
- 前記ドナー鋳型が、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターにコードされている、請求項1〜6のいずれか1項に記載のシステム。
- 前記DNAエンドヌクレアーゼまたは該DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸が、リポソームまたは脂質ナノ粒子への内包化により製剤化されている、請求項1〜7のいずれか1項に記載のシステム。
- 前記リポソームまたは前記脂質ナノ粒子が、前記gRNAをさらに含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のシステム。
- リンパ球細胞のゲノムを編集する方法であって、
(a)リンパ球細胞のFOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座もしくはTCRa(TRAC)遺伝子座内の配列に相補的なスペーサー配列を含むgRNA、または該gRNAをコードする核酸;
(b)DNAエンドヌクレアーゼ、または該DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸;および
(c)FOXP3またはその機能性誘導体をコードする核酸配列を含むドナー鋳型
をリンパ球細胞に提供する工程を含む方法。 - 前記gRNAが、
i)配列番号1〜7、15〜20および27〜29のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号1〜7、15〜20および27〜29のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント;
ii)配列番号1〜7のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号1〜7のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント;または
iii)配列番号2、3および5のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号2、3および5のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント
を含む、請求項10に記載の方法。 - 前記FOXP3またはその機能性誘導体が、野生型ヒトFOXP3である、請求項10または11に記載の方法。
- 前記DNAエンドヌクレアーゼがCas9エンドヌクレアーゼである、請求項10〜12のいずれか1項に記載の方法。
- I)前記DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸が、前記細胞における発現のためにコドン最適化されており;かつ/または
II)前記FOXP3もしくはその機能性誘導体をコードする核酸配列が、前記細胞における発現のためにコドン最適化されている、
請求項10〜13のいずれか1項に記載の方法。 - 前記DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸がmRNAである、請求項10〜14のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ドナー鋳型が、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターにコードされている、請求項10〜15のいずれか1項に記載の方法。
- 前記DNAエンドヌクレアーゼまたは該DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸が、リポソームまたは脂質ナノ粒子への内包化により製剤化されている、請求項10〜16のいずれか1項に記載の方法。
- 前記リポソームまたは前記脂質ナノ粒子が、前記gRNAをさらに含む、請求項17に記載の方法。
- 前記DNAエンドヌクレアーゼと前記gRNAをあらかじめ複合体化させることにより形成されたリボ核タンパク(RNP)複合体を前記細胞に提供する工程を含む、請求項10〜18のいずれか1項に記載の方法。
- 請求項10〜19のいずれか1項に記載の方法によってゲノム編集された遺伝子組換えリンパ球細胞。
- 請求項20に記載の遺伝子組換えリンパ球細胞を含む組成物。
- 対象において、FOXP3関連疾患またはFOXP3関連状態を治療する方法であって、
(a)リンパ球細胞のFOXP3遺伝子座、AAVS1遺伝子座もしくはTCRa(TRAC)遺伝子座内の配列に相補的なスペーサー配列を含むgRNA、または該gRNAをコードする核酸;
(b)DNAエンドヌクレアーゼ、または該DNAエンドヌクレアーゼをコードする核酸;および
(c)FOXP3またはその機能性誘導体をコードする核酸配列を含むドナー鋳型
を対象のリンパ球細胞に提供する工程を含む方法。 - 前記gRNAが、
i)配列番号1〜7、15〜20および27〜29のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号1〜7、15〜20および27〜29のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント;
ii)配列番号1〜7のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号1〜7のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント;または
iii)配列番号2、3および5のいずれかに示されるスペーサー配列、もしくは配列番号2、3および5のいずれかと比較して3個以下のミスマッチを有する前記スペーサー配列のバリアント
を含む、請求項22に記載の方法。 - 前記FOXP3またはその機能性誘導体が、野生型FOXP3である、請求項22または23に記載の方法。
- 前記疾患または状態が、炎症性疾患または自己免疫疾患である、請求項22〜24のいずれか1項に記載の方法。
- IPEX症候群または移植片対宿主病(GVHD)などの、炎症性疾患または自己免疫疾患などのFOXP3関連疾患またはFOXP3関連状態の抑制または治療において使用するための、請求項10〜19のいずれか1項に記載の方法によってゲノム編集された遺伝子組換えリンパ球細胞。
- 医薬品としての、請求項10〜19のいずれか1項に記載の方法によってゲノム編集された遺伝子組換えリンパ球細胞。
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