JP2021520223A - 植物ヘテロシスの利用方法 - Google Patents

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Abstract

本発明は、植物ヘテロシスの利用方法を開示する。該方法は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を得るステップＳ１と、遺伝子突然変異及び遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するタンパク質に影響するステップＳ２と、を含み、かかるタンパク質はＭＴＬタンパクである。本発明の技術案を用いると、雑種から自体の遺伝子型及び染色体倍数性と完全に一致するクローン種子又は植物体を取得することができ、このようにして、ヘテロシスが長期間に亘って利用可能になり、ヘテロシスを利用するときに、開花期が一致しないなどの原因により親間のハイブリッドが困難になり、種子生産の産量が低く、雑種コストが高いなどの従来の問題を解决する。【選択図】図２

Description

本発明は、生物技術の分野に関し、具体的には、植物ヘテロシスの利用方法に関する。
ヘテロシスは、生物界において、遺伝的基礎が異なる２つの品種間又は遺伝的基礎が近い２つの物種間でハイブリッドを行う場合、ハイブリッドの第１世代が、作柄、活力、適応性や産量などの形質に関しては親よりも優れるという現象である。ヘテロシスは、生物界で一般的な現象であり、農作物の育種及び生産に幅広く使用されている。
農業生産へのヘテロシスの応用については、最も重要な工程の１つは、雑種を効率的に生産することである。トウモロコシなどの雌雄異株の作物では、手動（又は機械）で母本近交系の雄花を除去し、別の近交系（父本）の花粉を授粉することでハイブリッド種子を取得することができ、この場合、簡単に操作できるため、ヘテロシスが従来からトウモロコシへ利用されており、且つシステムが成熟しており、広範に利用されている。ただし、一部の親の開花期が一致しないことにより、畑でハイブリッド種子を大規模で生産できないという問題がある。
雌雄同株の作物（たとえば水稲、小麦など）の場合は、母本の花粉を除去する手段によりハイブリッド種子を大規模で生産することができない。水稲を例とすると、現在、水稲についてこの問題を解決する手段は、花粉不稔特性のある植物体を母本として、別の品種を父本として花粉を提供してハイブリッドを行い、すなわち、雄性不稔を技術コアとするヘテロシス利用系が使用される。ここで、水稲ヘテロシスの利用には、２つの技術的経路があり、１つは、核細胞質相互作用花粉不稔を技術コアとする「三系法」ハイブリッド技術であり、もう１つは自然光の周期、温度により制御される光熱感受性細胞質雄性不稔を技術コアとする「二系法」ハイブリッド技術である。
図１Ａに示すように、「三系法」ハイブリッド技術では、核細胞質相互作用雄性不稔系を母本、維持系を父本として、不稔特性を維持した種子を大規模で繁殖し、不稔系を母本、回復系を父本として、花粉稔性を回復し且つヘテロシスを有するハイブリッド種子を大規模で生産し、このハイブリッド種子はハイブリッド稲の生産に用いられる。
図１Ｂに示すように、「二系法」ハイブリッド技術では、同じ水稲株系は、一定の条件では花粉が稔性であり、この稔性を利用して不稔系種子を繁殖し、別の特定の条件では花粉が不稔であり、その不稔性を利用して父本とハイブリッドし、ハイブリッド種子を生産する。
ハイブリッド水稲が雑種の一世代の優位性を利用しているので、以降の複数の世代には形質又は稔性の分離が発生し、このため、毎年種子を生産する必要があるため、多くの人的資源、物的資源や土地資源が無駄される。また、「三系法」は、回復・維持関係により制限されて、遺伝資源への利用率が低く、「二系法」は、自然温度・光の影響のため、不稔系を繁殖するときの産量が不安定であり、ハイブリッド種子の生産期間において、不稔系の近交・結実を低温で誘導することによりハイブリッド種子の純度が基準を満たさないというリスクがある。
また、いくつかの関連文献においてヘテロシスの利用及び植物の生殖に関連する遺伝子が報告されており、たとえば、Ｔｕｒｎｉｎｇ ｒｉｃｅ ｍｅｉｏｓｉｓ ｉｎｔｏ ｍｉｔｏｓｉｓ、（Ｃｅｌｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ（２０１６）２６：１２４２−１２５４）には、アポミキシスの種子を用いてＦ１雑種の自己繁殖に優れた形質を維持させることができることが開示されており、ここで、外因的修飾によって発現させたＣＥＮＨ３遺伝子がハイブリッドにより導入されている。ＵＳ ２０１４／０２９８５０７ Ａ１には、アポミキシスの配偶子をクローン胚又は種子に変換することが開示されている。四川大学学報（自然科学版）、Ｖｏｌ．２９ Ｎｏ．２ １９９２には、アポミキシスの植物育種への応用、及び細胞胚学の研究方法が開示されている。
本発明は、雑種からクローン種子又は植物体を産生し、種子の生産効率を向上させる植物ヘテロシスの利用方法を提供することを目的とする。
上記目的を実現するために、本発明の一態様によれば、植物ヘテロシスの利用方法を提供する。該方法は、
遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を得るステップＳ１と、
遺伝子突然変異及び遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するタンパク質に影響するステップＳ２と、を含み、かかるタンパク質はＭＴＬタンパクである。
さらに、遺伝子突然変異は、ランダム突然変異誘発と部位特異的突然変異誘発を含み、ランダム突然変異誘発は、化学的突然変異誘発、物理的突然変異誘発、及び生物学的突然変異誘発を含み、部位特異的突然変異誘発は遺伝子編集技術を含み、遺伝子編集技術は、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ遺伝子編集技術、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃｐｆ１遺伝子編集技術、ＴＡＬＥＮ遺伝子編集技術、ホーミングエンドヌクレアーゼ遺伝子編集技術、及びＺＦＮ遺伝子編集技術を含み、遺伝子工学技術は、遺伝子組換え技術による遺伝子の特異的発現、異所性発現又は遺伝子サイレンシングの誘導を含む。
さらに、ステップＳ１は、雑種を準備し、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を得ることを含む。
さらに、ステップＳ１は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の親を編集し、次に、親同士のハイブリッドにより雑種を取得し、さらに、生殖細胞の減数分裂が有糸分裂と類似したものに変換された雑種配偶子を得ることを含む。
さらに、ステップＳ１は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の減数分裂に関与するタンパク質を編集し、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換することを含み、タンパク質は第１タンパク質、第２タンパク質、及び第３タンパク質を含み、
第１タンパク質はＤＮＡ二本鎖切断の形成に関与するタンパク質であり、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３に示されるＰＡＩＲ１タンパク質と、ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１４に示されるＰＡＩＲ２タンパク質と、ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１５に示されるＰＡＩＲ３タンパク質と、ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１６に示されるＰＲＤ１タンパク質と、ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１７に示されるＰＲＤ２タンパク質と、ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１８に示されるＳＰＯ１１−１タンパク質と、ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−１タンパク質とは４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１９に示されるＳＰＯ１１−２タンパク質と、ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２０に示されるＳＤＳタンパク質と、ＳＤＳタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＤＳタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２１に示されるＣＲＣ１タンパク質と、ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２２に示されるＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質と、Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２３に示されるＭＴＯＰＶＩＢタンパク質と、ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２４に示されるＤＦＯタンパク質と、ＤＦＯタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＤＦＯタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
第２タンパク質は、減数分裂期の姉妹染色体間の接着の制御に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２５に示されるＲＥＣ８タンパク質と、ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
第３タンパク質は、減数分裂の第２次分裂に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２６に示されるＯＳＤ１タンパク質と、ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２７に示されるＴＡＭタンパク質と、ＴＡＭタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＡＭタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれる。
さらに、ステップＳ２は、遺伝子突然変異及び遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するタンパク質に影響することで、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含む。
さらに、ステップＳ２は、ほかの植物体の誘導花粉を授粉して、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含む。
さらに、ステップＳ２は、物理的刺激、生物学的ストレス又は化学薬剤処理により、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含む。
さらに、ステップＳ２は、葯培養又は花粉培養により、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含む。
さらに、ＭＴＬタンパク質は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２９に示されるＭＴＬタンパク質、ＭＴＬタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＬタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質である。
さらに、植物は単子葉植物と双子葉植物を含む。
さらに、植物は、水稲、トウモロコシ、モロコシ、アワ、大麦、小麦、ライ麦、エンバク、蕎麦、ハトムギ、サトウキビ、アスパラガス、筍、ニラ、ナガイモ、大豆、ジャガイモ、エンドウ、リョクトウ、アズキ、ソラマメ、ササゲ、インゲンマメ、レンズマメ、ツルマメ、ヒヨコマメ、キャッサバ、サツマイモ、アブラナ、綿、ビート、ナス、落花生、茶、ミント、コーヒー、ゴマ、ひまわり、トウゴマ、エゴマ、ベニバナ、トマト、トウガラシ、キュウリ、チンゲンサイ、レタス、ホウレンソウ、ニンニク、キャベツ、カラシナ、マコモ、ネギ、トウガン、ズッキーニ、ヘチマ、ハクサイ、ダイコン、タマネギ、スイカ、ブドウ、ニンジン、カリフラワー、カボチャ、タバコ、牧草、ネピアグラス、チカラシバ、スーダングラス、ラン、ユリ、チューリップ、及びウマゴヤシを含む。
本発明の別の態様によれば、ヘテロシスを維持した植物又は種子を提供する。該植物又は種子は、上記のいずれかの方法によって製造される。
本発明のさらなる態様によれば、植物にヘテロシスを維持させるためのキットを提供する。該キットは、植物の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し得るベクター及び／又は試薬と、配偶子を種子又は植物体へ発達させるベクター及び／又は試薬と、を含む。
さらに、植物の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し得るベクター及び／又は試薬は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術により、雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換するベクター及び／又は試薬、好ましくは、ランダム突然変異誘発又は部位特異的突然変異誘発のベクター及び／又は試薬である。
さらに、ランダム突然変異誘発は、化学的突然変異誘発、物理的突然変異誘発、及び生物学的突然変異誘発を含み、部位特異的突然変異誘発は、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ遺伝子編集技術、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃｐｆ１遺伝子編集技術、ＴＡＬＥＮ遺伝子編集技術、ホーミングエンドヌクレアーゼ遺伝子編集技術、及びＺＦＮ遺伝子編集技術を含み、遺伝子工学技術は、遺伝子組換え技術による遺伝子の特異的発現、異所性発現又は遺伝子サイレンシングの誘導を含む。
さらに、植物の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し得るベクター及び／又は試薬は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の減数分裂に関与するタンパク質を編集し、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換するベクター及び／又は試薬であり、タンパク質は、第１タンパク質、第２タンパク質、及び第３タンパク質を含み、
第１タンパク質は、ＤＮＡ二本鎖切断の形成に関与するタンパク質であり、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３に示されるＰＡＩＲ１タンパク質と、ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１４に示されるＰＡＩＲ２タンパク質と、ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１５に示されるＰＡＩＲ３タンパク質と、ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１６に示されるＰＲＤ１タンパク質と、ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１７に示されるＰＲＤ２タンパク質と、ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１８に示されるＳＰＯ１１−１タンパク質と、ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１９に示されるＳＰＯ１１−２タンパク質と、ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２０に示されるＳＤＳタンパク質と、ＳＤＳタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＤＳタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２１に示されるＣＲＣ１タンパク質と、ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２２に示されるＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質と、Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２３に示されるＭＴＯＰＶＩＢタンパク質と、ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２４に示されるＤＦＯタンパク質と、ＤＦＯタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＤＦＯタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
第２タンパク質は、減数分裂期の姉妹染色体間の接着の制御に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２５に示されるＲＥＣ８タンパク質と、ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
第３タンパク質は、減数分裂の第２次分裂に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２６に示されるＯＳＤ１タンパク質と、ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２７に示されるＴＡＭタンパク質と、ＴＡＭタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＡＭタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれる。
さらに、配偶子を種子又は植物体へ発達させるベクター及び／又は試薬は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するＭＴＬタンパク質に影響することで、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導するベクター及び／又は試薬を含み、ＭＴＬタンパク質は、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２９に示されるＭＴＬタンパク質、ＭＴＬタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＬタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質である。
本発明のさらなる態様によれば、上記キットを用いて産生する植物を提供する。該植物の生殖細胞の減数分裂が有糸分裂と類似したものに変換することによって、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を産生する。
さらに、植物の配偶子は、植物体又は種子への発達を誘導され得る。
さらに、植物は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学改変植物であり、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の減数分裂に関与するタンパク質を調整することにより、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与する第４タンパク質に影響することで、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導し、タンパク質は、第１タンパク質、第２タンパク質、及び第３タンパク質を含み、
第１タンパク質は、ＤＮＡ二本鎖切断の形成に関与するタンパク質であり、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３に示されるＰＡＩＲ１タンパク質と、ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１４に示されるＰＡＩＲ２タンパク質と、ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１５に示されるＰＡＩＲ３タンパク質と、ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１６に示されるＰＲＤ１タンパク質と、ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１７に示されるＰＲＤ２タンパク質と、ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１８に示されるＳＰＯ１１−１タンパク質と、ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１９に示されるＳＰＯ１１−２タンパク質と、ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２０に示されるＳＤＳタンパク質と、ＳＤＳタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＤＳタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２１に示されるＣＲＣ１タンパク質と、ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２２に示されるＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質と、Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２３に示されるＭＴＯＰＶＩＢタンパク質と、ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２４に示されるＤＦＯタンパク質と、ＤＦＯタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＤＦＯタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
第２タンパク質は、減数分裂期の姉妹染色体間の接着の制御に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２５に示されるＲＥＣ８タンパク質と、ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質から選ばれ、
第３タンパク質は、減数分裂の第２次分裂に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２６に示されるＯＳＤ１タンパク質と、ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２７に示されるＴＡＭタンパク質と、ＴＡＭタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＡＭタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
第４タンパク質は、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２９に示されるＭＴＬタンパク質と、ＭＴＬタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＬタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれる。
本発明のさらなる態様によれば、植物ヘテロシスの維持方法を提供する。該方法は、遺伝子編集技術を利用して、Ｆ１世代で雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、Ｆ１世代の二倍体雌性配偶子を得るステップＳ１と、
遺伝子突然変異及び遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するタンパク質に影響することで、二倍体雌性配偶子の種子への発達を誘導するステップＳ２と、を含み、かかるタンパク質はＭＴＬタンパクである。
さらに、ステップＳ１は、Ｆ１世代のハイブリッド種子を準備し、遺伝子編集技術を利用して、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、Ｆ１世代の二倍体雌性配偶子を得ることを含む。
さらに、ステップＳ１は、遺伝子編集技術を利用して、雑種の親を編集し、編集された遺伝子がいずれもヘテロ接合突然変異である植物体を取得し、次に、親同士のハイブリッドにより雑種を取得し、２つの親において編集された複数の遺伝子がいずれもホモ接合突然変異である植物体を雑種からスクリーニングし、さらに、生殖細胞の減数分裂が有糸分裂と類似したものに変換されたＦ１世代の二倍体雌性配偶子を得ることを含む。
さらに、ステップＳ１は、遺伝子編集技術を利用して、ＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１遺伝子をノックアウトし、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換することを含む。
さらに、ステップＳ２は、二倍体雌性配偶子の半数体誘導系花粉を授粉することにより、二倍体雌性配偶子の種子への発達を誘導することを含む。
さらに、ステップＳ２は、遺伝子編集技術を利用して、ＭＴＬ遺伝子をノックアウトし、半数体誘導系花粉を産生することを含む。
さらに、ステップＳ２は、ほかの植物体の半数体誘導系花粉を用いて、二倍体雌性配偶子の種子への発達を誘導することを含む。
さらに、雑種は、Ｆ１世代でＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１、及びＭＴＬ遺伝子を同時にノックアウトされる。
さらに、植物は、水稲、トウモロコシ、モロコシ、小米、大麦、及び小麦を含む。
本発明の技術案を用いると、雑種から自体の遺伝子型と完全に一致するクローン種子を取得することができ、このようにして、雑種が長期間に亘って利用可能になり、ヘテロシスを利用するときに、開花期が一致しないなどの原因により親間のハイブリッドが困難になり、種子生産の産量が低く、雑種コストが高いなどの従来の問題を解决する。
本願の一部を構成する明細書の図面は本発明をさらに理解するために提供されるものであり、本発明の模式的な実施例、及びその説明は本発明を解釈することに用いられ、本発明を不妥に限定するものではない。
図１Ａは従来技術における三系ハイブリッド育種技術の模式的フローチャートを示す。 図１Ｂは従来技術における二系ハイブリッド育種技術の模式的フローチャートを示す。 図２は本発明のＦ１世代の遺伝子型の維持状況の模式図を示す。 図３は本発明のＦ１世代の遺伝子型の維持状況の模式図を示す。 図４Ａは実施例１におけるＦ１世代の植物体春優８４の細胞倍数性の検出結果を示す。 図４Ｂは実施例１におけるヘテロシス固定植物体の細胞倍数性の検出結果を示す。 図５は実施例１における父本Ｃ８４、母本１６Ａ、雑種春優８４（ＣＹ８４）、及び遺伝子型及び染色体倍数性が固定した植物体の全遺伝子配列決定の結果を示す。
なお、矛盾しない限り、本願における実施例、及び実施例の特征を互いに組み合わせることができる。以下、図面を参照しながら実施例にて本発明を詳細に説明する。
本発明に記載の専門用語は以下のように解釈できる。
ヘテロシス：ｈｅｔｅｒｏｓｉｓ、雑種の第１世代は、大きさ、成長率や繁殖力、及び挙動特性などがいずれも親よりも優れるという現象である。
減数分裂：生殖細胞が分裂する際に、染色体が１回だけ複製し、細胞が連続して２回分裂することであり、染色体の数が半減する特殊な分裂方式である。
有糸分裂：ｍｉｔｏｓｉｓ、間接分裂とも呼ばれ、Ｅ．Ｓｔｒａｓｂｕｒｇｅｒ（１８８０）により植物において発見され、細胞の分裂過程に紡錘体と染色体が生じ、それによりＳ期で複製された娘染色体が娘細胞に平均に分配することを特徴とし、このような分裂方式は高等動植物（動物及び高等植物）によく見られる。
染色体倍数性（数）：ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ ｐｌｏｉｄｙ、細胞に含まれる染色体の組数又は遺伝子の組数、たとえば、半数体染色、多倍体染色を意味する。
二倍体雌性配偶子：配偶子とは、生物の有性生殖に生殖系統により生じる成熟性細胞を意味し、単に生殖細胞といい、配偶子は雄性配偶子（ｍａｌｅ ｇａｍｅｔｅ）と雌性配偶子（ｆｅｍａｌｅ ｇａｍｅｔｅ）に分けられ、通常、生殖細胞が分裂するときに、染色体が１回だけ複製し、細胞が連続して２回分裂し、染色体の数が半減するが、雌性配偶子の生成時に染色体の数が半減しておらず、この物種の体細胞の染色体の組数と同じになる場合、二倍体雌性配偶子と呼ばれる。
半数体：体細胞の染色体の組数は本物種の配偶子染色体の組数に等しい個体又は細胞である。
単為生殖：ｐａｒｔｈｅｎｏｇｅｎｅｓｉｓ、単性生殖とも呼ばれ、つまり、卵が受精を受けなくても正常な新しい個体まで発達することができる。
本発明では、雑種とは、遺伝子型がヘテロ接合した植物体又は種子をいい、その有性生殖による子孫には遺伝的分離が発生する。
本発明の代表的な実施形態によれば、植物ヘテロシスの利用方法を提供する。該方法は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を得るステップＳ１と、遺伝子突然変異及び遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するタンパク質に影響するステップＳ２と、を含み、かかるタンパク質はＭＴＬタンパクである。
遺伝子突然変異は、ランダム突然変異誘発と部位特異的突然変異誘発を含み、ランダム突然変異誘発は、化学的突然変異誘発、物理的突然変異誘発、及び生物学的突然変異誘発を含み、部位特異的突然変異誘発は、遺伝子編集技術を含み、好ましくは、遺伝子編集技術は、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ遺伝子編集技術、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃｐｆ１遺伝子編集技術、ＴＡＬＥＮ遺伝子編集技術、ホーミングエンドヌクレアーゼ遺伝子編集技術、及びＺＦＮ遺伝子編集技術を含み、遺伝子工学技術は、遺伝子組換え技術による遺伝子の特異的発現、異所性発現又は遺伝子サイレンシングの誘導を含む。
具体的には、物理的突然変異誘発によく使用されている方法には、放射線（紫外線、Ｘ線、Ｙ線、中性子線）、レーザーマイクロビーム、イオンビーム、マイクロ波、超音波、熱などが含まれる。化学的突然変異誘発によく使用されている方法には、浸漬法、塗布法、ドロップ法、注射法、施用法、及び燻蒸法が含まれ、化学的突然変異誘発剤には、アルキル化剤、塩基アナログ、塩化リチウム、ニトロソ化合物、アジド化物、抗生物質、ヒドロキシルアミン、アクリジン、硫酸ジエチル（ＤＦＳ）、５−ブロモウラシル（５−ＢＵ）、窒素マスタード（Ｎｍ）、Ｎ−メチル−Ｎ’−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン（ＮＴＧ）などが含まれる。生物学的突然変異誘発方法には、空間条件処理による突然変異誘発、病原性微生物による突然変異誘発、組織培養による突然変異誘発、遺伝子組換え突然変異誘発などが含まれる。
実用例として、ＭｃＣａｌｌｕｍ ｅｔ ａｌ．，Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，２０００，１２３，４３９−４４２）に記載のＴＩＬＬＩＮＧ（ゲノムにおける局所突然変異の標的誘導、Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｌｏｃａｌ Ｌｅｓｉｏｎｓ ＩＮ Ｇｅｎｏｍｅｓ）であってもよい。標準技術を利用して部位特異的突然変異誘発を行い、この標準技術は、本分野で公知の相同組換えを用いたものであり、好ましくは、ヌクレアーゼたとえばＴＡＬＥＮ又はＣＲＩＳＰＲと組み合わせる。
本発明の代表的な実施形態によれば、該方法は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を得るステップＳ１と、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導するステップＳ２と、を含む。
本発明の技術案を用いると、雑種から自体の遺伝子型と完全に一致するクローン種子又は植物体を取得することができ、このようにして、雑種が長期間に亘って利用可能になり、ヘテロシスを利用するときに、開花期が一致しないなどの原因により親間のハイブリッドが困難になり、種子生産の産量が低く、雑種コストが高いなどの従来の問題を解决する。
本発明の代表的な実施形態によれば、ステップＳ１は、雑種を準備し、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を得ることを含み、たとえば、具体的な操作としては、ステップＳ１は、ハイブリッドＦ１世代種子を準備し、遺伝子工学技術を利用して、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、Ｆ１世代の二倍体配偶子を得ることを含む。具体的には、ハイブリッドＦ１世代種子を準備し、遺伝子編集系統を導入して、減数分裂に関与する関連キー遺伝子を編集し、遺伝子編集されたＦ１世代植物体を得て、ここで、該遺伝子編集されたＦ１世代植物体の雌性配偶子は二倍体配偶子であり、好ましくは、減数分裂に関与する関連キー遺伝子は、ＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１という３つの遺伝子である。
本発明の代表的な実施形態によれば、ステップＳ１は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の親を編集し、次に、親同士のハイブリッドにより雑種を取得し、さらに、生殖細胞の減数分裂が有糸分裂と類似したものに変換された雑種配偶子を得ることを含む。たとえば、具体的な操作としては、ステップＳ１は、遺伝子工学技術を利用して、雑種の親を編集し、減数分裂に関与する関連キー遺伝子がいずれもヘテロ接合突然変異の状態であるヘテロ接合突然変異体を得て、次に、親同士のハイブリッドにより雑種を取得し、減数分裂に関与する関連キー遺伝子がいずれもホモ接合突然変異である植物体を雑種からスクリーニングし、さらに、生殖細胞の減数分裂が有糸分裂と類似したものに変換されたＦ１世代の二倍体雌性配偶子を得る。具体的には、雑種の父本及び母本をそれぞれ準備し、遺伝子編集系統に導入して、上記の減数分裂に関与する３つの関連キー遺伝子を編集し、遺伝子編集された上記の３つの遺伝子がいずれもヘテロ接合状態である親植物体を取得し、次に、この２つの親をハイブリッドし、結実した種子にはさまざまな遺伝子型があり、これらから上記の３つの遺伝子がいずれもホモ接合突然変異である種子を選択し、このような植物体は本発明で期待されるＦ１世代種子であり、該Ｆ１世代種子の雌性配偶子は二倍体雌性配偶子である。
本発明の代表的な実施形態によれば、ステップＳ１は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の減数分裂に関与するタンパク質を編集し、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換することを含み、タンパク質は、第１タンパク質、第２タンパク質、及び第３タンパク質を含み、
第１タンパク質ＤＮＡは二本鎖切断の形成に関与するタンパク質であり、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３（ＭＫＬＫＭＮＫＡＣＤＩＡＳＩＳＶＬＰＰＲＲＴＧＧＳＳＧＡＳＡＳＧＳＶＡＶＡＶＡＳＱＰＲＳＱＰＬＳ ＱＳＱＱＳＦＳＱＧＡＳＡＳＬＬＨＳＱＳＱＦＳＱＶＳＬＤＤＮＬＬＴＬＬＰＳＰＴＲＤＱＲＦＧＬＨＤＤＳＳＫＲＭＳＳＬＰＡＳＳＡＳＣＡＲＥＥＳＱＬＱＬＡＫＬＰＳＮＰＶＨＲＷＮＰＳＩＡＤＴＲＳＧＱＶＴＮＥＤＶＥＲＫＦＱＨＬＡＳＳＶＨＫＭＧＭＶＶＤＳＶＱＳＤＶＭＱＬＮＲＡＭＫＥＡＳＬＤＳＧＳＩＲＱＫＩＡＶＬＥＳＳＬＱＱＩＬＫＧＱＤＤＬＫＡＬＦＧＳＳＴＫＨＮＰＤＱＴＳＶＬＮＳＬＧＳＫＬＮＥＩＳＳＴＬＡＴＬＱＴＱＭＱＡＲＱＬＱＧＤＱＴＴＶＬＮＳＮＡＳＫＳＮＥＩＳＳＴＬＡＴＬＱＴＱＭＱＡＤＩＲＱＬＲＣＤＶＦＲＶＦＴＫＥＭＥＧＶＶＲＡＩＲＳＶＮＳＲＰＡＡＭＱＭＭＡＤＱＳＹＱＶＰＶＳＮＧＷＴＱＩＮＱＴＰＶＡＡＧＲＳＰＭＮＲＡＰＶＡＡＧＲＳＲＭＮＱＬＰＥＴＫＶＬＳＡＨＬＶＹＰＡＫＶＴＤＬＫＰＫＶＥＱＧＫＶＫＡＡＰＱＫＰＦＡＳＳＹＹＲＶＡＰＫＱＥＥＶＡＩＲＫＶＮＩＱＶＰＡＫＫＡＰＶＳＩＩＩＥＳＤＤＤＳＥＧＲＡＳＣＶＩＬＫＴＥＴＧＳＫＥＷＫＶＴＫＱＧＴＥＥＧＬＥＩＬＲＲＡＲＫＲＲＲＲＥＭＱＳＩＶＬＡＳ）に示されるＰＡＩＲ１タンパク質と、ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１４（ＭＶＭＡＱＫＴＫＥＡＥＩＴＥＱＤＳＬＬＬＴＲＮＬＬＲＩＡＩＹＮＩＳＹＩＲＧＬＦＰＥＫ ＹＦＮＤＫＳＶＰＡＬＥＭＫＩＫＫＬＭＰＭＤＴＥＳＲＲＬＩＤＷＭＥＫＧＶＹＤＡＬＱＫＫＹＬＫＴＬＬＦＣＩＣＥＫＥＥＧＰＭＩＥＥＹＡＦＳＦＳＹＰＮＴＳＧＤＥＶＡＭＮＬＳＲＴＧＳＫＫＮＳＡＴＦＫＳＮＡＡＥＶＴＰＤＱＭＲＳＳＡＣＫＭＩＲＴＬＶＳＬＭＲＴＬＤＱＭＰＥＥＲＴＩＬＭＫＬＬＹＹＤＤＶＴＰＥＤＹＥＰＰＦＦＫＣＣＡＤＮＥＡＩＮＩＷＮＫＮＰＬＫＭＥＶＧＮＶＮＳＫＨＬＶＬＡＬＫＶＫＳＶＬＤＰＣＤＤＮＮＶＮＳＥＤＤＮＭＳＬＤＮＥＳＤＱＤＮＤＦＳＤＴＥＶＲＰＳＥＡＥＲＹＩＶＡＰＮＤＧＴＣＫＧＱＮＧＴＩＳＥＤＤＴＱＤＰＶＨＥＥＥＬＴＡＱＶＲＥＷＩＣＳＲＤＴＥＳＬＥＶＳＤＶＬＶＮＦＰＤＩＳＭＥＭＶＥＤＩＭＥＲＬＬＫＤＧＬＬＳＲＡＫＫＤＳＹＳＶＮＫＩＡＤＰＴＴＰＨＩＫＫＥＶＩＭＱＮＶＳＰＴＥＧＴＫＮＳＮＧＤＬＭＹＭＫＡＬＹＨＡＬＰＭＤＹＶＳＶＧＫＬＨＧＫＬＤＧＥＡＳＱＮＭＶＲＫＬＩＥＫＭＶＱＤＧＹＶＫＮＳＡＮＲＲＬＧＫＡＶＩＨＳＥＶＴＮＲＫＬＬＥＩＫＫＩＬＥＶＤＩＡＥＱＭＡＩＤＴＮＡＥＰＧＥＰＥＲＫＤＨＬＳＧＨＥＭＲＤＧＳＴＭＧＣＬＱＳＶＧＳＤＬＴＲＴＲＥＬＰＥＰＱＱＮＶＳＭＱＳＧＱＥＡＳＴＶＤＫＤＰＳＲＴＰＴＳＶＲＥＡＳＶＣＳＬＥＳＧＶＬＧＱＫＶＲＫＳＬＡＧＡＧＧＴＱＣＳＱＤＫＲＦＲＫＡＳＴＶＫＥＰＩＬＱＹＶＫＲＱＫＳＱＶＱＶＱＶＱ）に示されるＰＡＩＲ２タンパク質と、ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１５（ＭＥＶＥＬＴＮＩＱＫＡＴＳＳＤＹＷＳＬＡＳＮＱＹＰＣＧＫＦＰＫＶＳＶＧＶＴＩＰＲＴＳＳＶＳＲ ＧＲＤＡＡＳＴＡＡＦＥＫＮＬＳＱＧＴＤＧＲＳＲＰＰＫＭＤＮＡＳＬＱＶＳＰＥＡＡＮＨＧＧＳＡＫＥＶＰＫＰＶＰＡＫＶＳＶＳＱＰＤＤＮＡＩＥＱＴＧＴＦＳＦＧＴＲＲＥＱＤＳＨＬＤＱＬＤＲＰＰＬＶＳＳＱＧＫＲＱＶＥＳＡＤＫＮＫＰＮＳＥＭＬＲＭＫＬＷＥＩＬＧＧＴＳＱＮＫＥＡＶＡＳＰＮＰＥＤＩＥＴＰＣＱＰＫＳＱＩＡＮＧＰＳＳＧＲＱＫＶＦＴＳＰＶＰＹＮＩＫＴＰＡＱＦＮＳＱＴＡＮＫＰＳＳＤＰＩＥＳＤＳＤＳＰＱＶＶＥＶＲＰＩＴＲＳＬＧＲＫＫＥＰＴＧＳＴＨＱＤＫＳＧＳＡＫＫＰＬＳＴＨＲＳＴＰＫＱＫＩＬＤＮＶＦＡＦＮＤＫＣＴＰＫＴＶＧＫＳＡＮＧＥＳＧＳＬＲＮＬＲＳＬＳＲＲＡＫＶＥＰＫＫＡＨＣＳＤＲＩＳＨＫＴＴＱＤＤＭＥＲＫＶＰＳＫＹＩＰＳＥＫＫＧＥＫＴＮＳＦＳＳＬＳＲＴＧＫＴＡＥＳＣＳＲＳＰＫＲＥＲＲＶＮＴＭＡＮＶＧＡＲＫＭＱＬＳＥＮＬＬＶＫＴＬＮＤＧＥＨＫＬＳＳＰＱＬＴＳＦＫＳＫＧＫＣＳＳＩＳＰＱＱＫＥＮＤＮＴＨＩＰＥＡＳＤＲＴＡＡＲＮＳＦＮＳＴＰＳＰＡＡＮＰＳＰＶＬＲＫＹＳＷＥＨＤＥＮＰＡＩＮＧＫＳＧＱＫＤＡＳＰＬＡＤＲＦＳＤＭＰＤＤＦＡＳＰＴＦＡＡＮＩＫＩＳＰＨＲＳＫＭＬＤＤＤＬＦＳＳＫＹＰＫＧＶＮＲＳＲＳＴＳＦＴＳＤＰＥＳＥＰＬＤＫＭＥＫＴＮＥＬＰＧＳＥＳＰＮＳＱＥＥＲＱＮＲＫＱＰＨＬＳＰＬＳＰＩＥＳＥＧＡＱＩＳＩＰＳＦＲＫＧＹＫＳＨＫＷＬＳＤＶＤＳＰＤＫＳＳＩＥＨＬＧＲＫＳＨＬＫＥＧＲＫＧＫＲＱＬＴＳＰＴＨＦＡＴＳＧＴＱＥＴＭＳＤＫＥＰＥＫＶＰＥＮＹＬＴＲＡＦＤＱＬＶＶＶＬＧＲＦＱＴＫＩＫＳＥＴＲＮＫＳＳＫＩＬＡＡＴＧＥＩＩＲＱＨＬＥＧＶＥＧＱＭＱＡＤＶＤＫＬＶＮＡＧＫＳＫＲＫＲＬＥＳＴＦＥＥＱＱＥＫＬＲＩＬＨＥＫＦＫＥＥＶＮＱＱＬＬＧＣＫＮＳＶＥＤＦＥＡＹＨＡＥＬＫＧＶＡＤＫＱＫＡＳＨＫＫＬＬＱＮＡＥＫＴＶＧＡＱＬＳＤＡＥＴＫＩＡＥＶＱＫＲＡＲＫＲＭＫＧＬＫＦＶＬＫＥＬＩＡＥＴＡＥ）に示されるＰＡＩＲ３タンパク質と、ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１６（ＭＥＭＶＬＩＭＳＦＲＶＬＬＹＨＲＬＴＡＱＴＧＰＦＫＬＨＣＬＧＩＬＬＮＳＴＫＤＡＡＴＹＩＧＤＫＱ ＳＬＹＬＮＬＶＮＮＬＲＬＰＳＤＥＩＲＧＥＩＬＦＶＬＹＫＬＳＬＬＮＡＴＰＷＤＤＩＣＤＮＤＮＶＤＬＳＡＩＧＲＳＬＬＱＦＳＬＥＶＬＬＫＴＱＮＤＤＶＲＬＮＣＩＡＬＬＬＴＬＡＫＫＧＡＦＤＩＬＬＬＳＤＰＳＬＩＮＳＡＥＡＥＤＮＶＰＬＮＤＳＬＶＩＬＦＡＥＡＶＫＧＳＬＬＳＴＮＩＥＶＱＴＧＴＬＥＬＩＦＨＦＬＳＳＤＡＮＩＦＶＬＫＴＬＩＤＱＮＶＡＤＹＶＦＥＶＬＲＬＳＧＭＲＮＨＬＬＱＳＳＮＡＳＱＦＬＴＫＬＬＹＶＳＧＮＮＤＰＬＶＩＳＳＩＫＶＬＳＩＬＡＮＳＥＥＲＦＫＥＫＬＡＩＡＶＳＴＬＬＰＶＬＨＹＶＳＥＩＰＦＨＰＶＱＳＱＶＬＲＬＶＣＩＳＩＩＮＣＳＧＩＬＳＬＳＱＥＥＱＩＡＣＴＬＳＡＩＬＲＲＨＧＮＧＥＬＧＭＳＳＥＴＦＡＬＶＣＳＭＬＶＥＩＬＫＬＰＳＡＤＤＩＱＫＬＰＳＦＩＶＥＡＳＫＨＡＩＳＬＴＦＳＨＥＹＤＣＬＦＬＩＰＨＳＬＬＬＬＫＥＡＬＩＦＣＬＥＧＮＫＤＱＩＬＲＫＫＳＬＥＤＳＩＩＥＴＣＥＴＹＬＬＰＷＬＥＳＡＩＶＤＧＮＤＥＥＴＬＳＧＩＬＱＩＦＱＩＩＬＳＲＡＳＤＮＫＳＦＫＦＡＥＭＬＡＳＳＳＷＦＳＬＳＦＧＦＭＧＬＦＰＴＤＨＶＫＳＡＶＹＬＶＩＳＳＩＶＤＫＶＬＧＩＳＹＧＥＴＩＲＤＡＣＩＹＬＰＰＤＰＡＥＬＬＹＬＬＧＱＣＳＳＥＤＦＮＬＡＳＣＱＣＡＩＬＶＩＬＹＶＣＳＦＹＮＥＲＬＡＡＤＮＱＩＬＡＳＶＥＱＹＩＬＬＮＧＡＫＦＰＨＥＩＰＧＳＬＭＬＴＬＬＶＨＬＹＡＦＶＲＧＩＳＦＲＦＧＩＰＨＳＰＥＡＥＫＴＬＦＨＡＭＴＨＫＥＷＤＬＬＬＩＲＶＨＬＩＡＬＫＷＬＦＱＮＥＥＬＭＥＰＬＳＦＨＬＬＮＦＣＫＦＦＣＥＤＲＴＶＭＬＳＳＳＴＱＬＶＤＩＱＬＩＡＥＬＶＹＳＧＥＴＣＩＳＳＬＬＶＳＬＬＳＱＭＩＫＥＳＡＥＤＥＶＬＳＶＶＮＶＩＴＥＩＬＶＳＦＰＣＴＳＤＱＦＶＳＣＧＩＶＤＡＬＧＳＩＹＬＳＬＣＳＳＲＩＫＳＶＣＳＬＬＩＦＮＩＬＨＳＡＳＡＭＴＦＴＣＤＤＤＡＷＬＡＬＴＭＫＬＬＤＣＦＮＳＳＬＡＹＴＳＳＥＱＥＷＫＩＬＩＧＩＬＣＬＩＬＮＨＳＡＮＫＶＬＩＥＰＡＫＡＩＩＬＮＮＣＬＡＬＬＭＤＧＩＶＱＥＡＣＡＫＧＰＳＬＦＱＨＮＱＥＴＴＦＧＥＬＬＩＬＭＬＬＬＩＦＦＳＶＲＳＬＱＡＩＬＥＡＳＩＤＷＱＥＦＬＱＹＳＤＤＴＥＳＳＳＶＬＧＩＰＣＨＤＬＣＲＬＭＨＦＧＰＳＰＶＫＬＩＡＳＱＣＬＬＥＬＬＮＲＩＳＤＱＲＳＣＬＮＡＥＬＲＣＳＡＫＹＬＫＳＭＩＡＶＴＥＧＭＶＦＤＱＤＳＲＶＡＥＮＣＧＡＣＬＴＶＩＬＧＷＥＲＦＧＳＲＥＫＡＶＩＲＥＳＫＷＳＲＬＩＬＥＥＦＡＶＡＬＴＡＰＧＬＴＳＫＳＦＳＮＱＱＫＩＡＡＮＩＡＬＳＬＬＱＬＳＱＶＰＤＷＬＴＳＬＦＳＤＳＬＩＳＧＩＶＡＮＬＳＡＲＮＶＴＡＥＩＶＴＬＦＳＥＬＭＡＫＮＹＬＮＱＥＨＩＡＧＬＨＮＬＦＱＶＣＲＲＱＡＹＥＧＧＧＧＳＫＡＱＰＳＥＱＫＡＡＡＡＲＣＡＤＤＶＲＡＬＬＦＧＭＭＬＥＱＲＡＣＳＲＡＴＶＥＭＥＱＱＲＬＬＲＥＩＤＳＦＦＦＱＥＳＳＬＲＥＱＮＳＶＫ）に示されるＰＲＤ１タンパク質と、ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１７（ＭＡＰＰＡＳＲＰＰＴＰＴＰＴＰＴＡＮＡＡＡＳＳＳＲＩＥＳＰＳＬＲＡＡＬＡＭＡＬＩＨＹＮＲＬＰ ＳＲＡＡＡＡＡＡＰＳＰＱＡＬＬＮＷＫＲＫＡＫＤＲＫＲＥＩＬＲＬＲＥＥＬＫＬＬＱＤＧＡＲＧＥＥＭＥＰＰＶＡＳＣＲＣＨＦＦＤＧＣＧＤＬＰＰＰＴＤＧＤＡＧＥＨＷＶＤＤＶＬＲＲＲＦＶＲＬＶＲＷＫＤＫＲＲＲＬＤＲＳＬＰＴＳＳＬＭＥＹＮＴＥＤＥＶＱＱＬＳＬＳＩＤＦＬＶＥＬＳＤＧＬＦＡＫＲＥＡＧＳＳＦＴＴＦＳＨＱＡＶＤＦＩＬＡＳＬＫＮＩＬＳＳＥＲＥＫＥＩＩＥＥＩＩＮＧＬＶＡＲＬＭＫＲＭＣＴＴＰＥＮＡＧＳＶＤＣＳＤＡＱＦＳＬＱＨＬＦＲＫＬＧＮＥＥＦＶＧＱＲＩＩＬＡＩＳＱＫＩＳＮＶＳＥＫＬＬＬＡＤＰＦＤＤＧＦＰＥＭＨＳＮＭＦＩＭＩＱＬＩＥＦＬＩＳＤＳＦＮＮＷＬＣＲＤＨＦＤＲＫＬＦＥＥＷＶＲＳＩＬＫＡＲＫＤＬＥＶＬＤＧＲＮＧＬＹＶＶＹＩＥＲＶＩＧＲＬＡＲＥＶＡＰＡＡＨＱＧＫＬＤＬＥＶＬＳＫＬＬＹ）に示されるＰＲＤ２タンパク質と、ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１８（ＭＡＧＲＥＫＲＲＲＶＡＡＬＤＧＥＥＲＲＲＲＱＥＥＡＡＴＬＬＨＲＩＲＧＬＶＲＷＶ ＶＡＥＶＡＡＧＲＳＰＴＶＡＬＨＲＹＱＮＹＣＳＳＡＳＡＡＡＡＳＰＣＡＣＳＹＤＶＰＶＧＴＤＶＬＳＬＬＨＲＧＳＨＡＳＲＬＮＶＬＬＲＶＬＬＶＶＱＱＬＬＱＱＮＫＨＣＳＫＲＤＩＹＹＭＹＰＳＩＦＱＥＱＡＶＶＤＲＡＩＮＤＩＣＶＬＦＫＣＳＲＨＮＬＮＶＶＰＶＡＫＧＬＶＭＧＷＩＲＦＬＥＧＥＫＥＶＹＣＶＴＮＶＮＡＡＦＳＩＰＶＳＩＥＡＩＫＤＶＶＳＶＡＤＹＩＬＩＶＥＫＥＴＶＦＱＲＬＡＮＤＫＦＣＥＲＮＲＣＩＶＩＴＧＲＧＹＰＤＩＰＴＲＲＦＬＲＹＬＶＥＱＬＨＬＰＶＹＣＬＶＤＡＤＰＹＧＦＤＩＬＡＴＹＫＦＧＳＬＱＬＡＹＤＡＮＦＬＲＶＰＤＩＲＷＬＧＶＦＴＳＤＦＥＤＹＲＬＰＤＣＣＬＬＨＬＳＳＥＤＲＲＫＡＥＧＩＬＳＲＣＹＬＨＲＥＡＰＱＷＲＬＥＬＥＡＭＬＱＫＧＶＫＦＥＩＥＡＬＳＡＣＳＩＳＦＬＳＥＥＹＩＰＫＫＩＫＱＧＲＨＩ）に示されるＳＰＯ１１−１タンパク質と、ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１９（ＭＡＥＡＧＶＡＡＡＳＬＦＧＡＤＲＲＬＣＳＡＤＩＬＰＰＡＥＶＲＡＲＩＥＶＡＶＬＮＦＬＡＡＬＴＤ ＰＡＡＰＡＩＳＡＬＰＬＩＳＲＧＡＡＮＲＧＬＲＲＡＬＬＲＤＤＶＳＳＶＹＬＳＹＡＳＣＫＲＳＬＴＲＡＮＤＡＫＡＦＶＲＶＷＫＶＭＥＭＣＹＫＩＬＧＥＧＫＬＶＴＬＲＥＬＦＹＴＬＬＳＥＳＰＴＹＦＴＣＱＲＨＶＮＱＴＶＱＤＶＶＳＬＬＲＣＴＲＱＳＬＧＩＭＡＳＳＲＧＡＬＩＧＲＬＶＶＱＧＰＥＥＥＨＶＤＣＳＩＬＧＰＳＧＨＡＩＴＧＤＬＮＶＬＳＫＬＩＦＳＳＤＡＲＹＩＩＶＶＥＫＤＡＩＦＱＲＬＡＥＤＲＩＹＳＨＬＰＣＩＬＩＴＡＫＧＹＰＤＬＡＴＲＦＩＬＨＲＬＳＱＴＹＰＮＭＰＩＦＡＬＶＤＷＮＰＡＧＬＡＩＬＣＴＹＫＹＧＳＩＳＭＧＬＥＳＹＲＹＡＣＮＶＫＷＬＧＬＲＧＤＤＬＱＬＩＰＱＳＡＹＱＥＬＫＰＲＤＬＱＩＡＫＳＬＬＳＳＫＦＬＱＤＫＨＲＡＥＬＴＬＭＬＥＴＧＫＲＡＥＩＥＡＬＹＳＨＧＦＤＦＬＧＫＹＶＡＲＫＩＶＱＧＤＹＩ）に示されるＳＰＯ１１−２タンパク質と、ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２０（ＭＰＰＴＭＬＡＳＶＰＴＲＰＲＳＨＰＦＲＲＲＲＧＡＡＡＡＡＰＰＬＬＰＤＱＩＡＡＡＡＡＡＡＡＫＲＰ ＡＥＳＳＴＳＡＳＳＣＦＨＳＥＶＩＳＡＴＳＴＴＣＰＴＳＬＡＡＡＱＲＰＥＫＲＰＲＹＱＤＶＤＥＥＱＰＡＡＳＥＣＳＥＩＩＧＧＡＲＰＲＡＡＥＶＥＶＳＥＳＳＣＬＡＳＶＬＥＳＹＬＡＣＰＥＱＬＡＮＤＡＥＴＴＡＹＳＳＡＲＥＤＬＴＬＳＥＴＥＥＥＥＥＥＥＥＶＲＳＧＰＣＩＣＴＤＣＳＦＳＰＬＨＥＳＳＳＳＳＤＤＤＮＡＶＰＳＰＴＦＳＬＦＬＡＬＡＥＱＦＶＰＦＴＨＰＫＴＰＴＡＴＤＶＡＬＱＡＧＥＧＫＲＦＥＤＬＤＮＥＶＳＹＥＲＦＲＲＲＥＲＲＧＶＶＡＲＤＹＩＥＶＹＳＳＭＬＧＳＹＧＲＡＶＶＥＱＲＶＶＭＶＮＷＩＭＥＨＳＱＡＭＫＬＱＰＥＴＶＦＭＧＩＧＬＭＤＲＦＬＴＲＧＹＶＫＧＳＲＮＬＱＬＬＧＩＡＣＴＴＬＡＴＲＩＥＥＮＱＰＹＮＣＩＬＱＫＡＦＫＶＧＩＮＴＹＳＲＳＥＶＶＡＭＥＷＬＶＱＥＶＬＤＦＱＣＦＶＴＴＴＨＨＦＬＷＦＹＬＫＡＡＮＡＤＤＲＶＥＤＬＡＫＹＬＡＬＬＳＬＬＤＨＫＨＬＳＦＷＰＳＴＶＡＡＡＶＶＡＬＡＣＬＡＴＮＮＥＳＳＣＨＬＶＭＥＴＨＭＲＴＫＮＤＤＬＰＥＣＬＭＳＬＥＷＬＴＮＹＡＳ）に示されるＳＤＳタンパク質と、ＳＤＳタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＤＳタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２１（ＭＳＡＰＭＥＶＳＦＳＡＰＰＰＰＤＡＡＳＡＡＡＡＡＰＳＬＶＰＡＶＳＡＡＡＶＡＡＴＴＶＳＣＳ ＰＱＰＰＴＧＳＰＳＡＤＤＲＩＬＶＳＶＥＶＬＬＨＡＴＳＴＡＲＡＥＤＶＣＡＡＶＥＲＭＬＥＡＲＳＬＳＹＶＤＧＰＶＰＩＰＮＤＤＰＦＬＬＡＮＶＫＲＩＱＩＣＤＴＤＥＷＴＥＮＨＫＶＬＬＦＷＱＶＲＰＶＶＨＶＦＱＬＳＥＤＧＰＧＥＥＰＧＥＤＤＴＬＳＳＦＮＥＷＡＬＰＡＫＥＦＤＧＬＷＥＳＬＬＹＥＶＧＬＫＱＲＬＬＲＹＡＡＳＡＬＬＦＴＥＫＧＶＤＰＣＬＶＳＷＮＲＩＶＬＬＨＧＰＰＧＴＧＫＴＳＬＣＫＡＬＡＱＫＬＳＩＲＦＫＳＲＹＳＭＣＱＬＩＥＶＮＡＨＳＬＦＳＫＷＦＳＥＳＧＫＬＶＡＫＬＦＱＫＩＱＥＭＶＥＥＥＳＮＬＶＦＶＬＩＤＥＶＥＳＬＡＡＡＲＱＡＡＩＳＧＳＥＰＳＤＳＩＲＶＶＮＡＬＬＴＱＭＤＫＬＫＳＷＰＮＶＩＩＬＴＴＳＮＩＴＴＡＩＤＩＡＦＶＤＲＡＤＩＫＡＹＶＧＰＰＴＬＱＡＲＹＥＩＬＲＳＣＬＱＥＬＬＲＶＧＩＬＴＨＴＱＧＧＮＳＬＣＬＬＳＹＦＳＬＭＥＮＱＨＣＰＥＶＡＤＰＨＧＳＶＨＬＳＧＬＬＨＫＡＡＥＩＣＥＧＬＳＧＲＴＬＲＫＬＰＦＬＡＨＡＳＶＡＮＰＳＣＣＤＡＳＡＦＬＨＡＬＩＱＴＡＱＲＥＬＳＥＳＲＧ）に示されるＣＲＣ１タンパク質と、ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２２（ＭＥＲＡＴＴＳＧＧＧＧＧＧＳＱＰＰＲＧＶＧＬＰＬＶＥＶＱＡＡＡＡＳＬＲＲＳＥＶＦＹＶＶＫＥ ＬＬＧＦＶＬＹＭＨＨＱＩＰＡＶＬＱＮＬＥＮＥＦＡＳＬＫＥＥＭＴＥＭＡＬＰＰＧＥＭＫＰＳＤＱＲＫＹＮＴＲＫＲＥＶＲＲＲＩＫＫＱＥＫＬＭＮＧＬＳＳＶＦＳＡＬＱＫＡＬＤＥＶＰＳＩＥＧＶＬＬＩＬＧＧＳＬＶＲＰＬＦＶＹＤＩＴＩＳＨＧＲＦＤＡＧＳＡＮＥＲＧＡＳＫＬＡＱＳＶＳＲＫＡＩＲＡＬＩＳＳＧＡＧＳＬＳＹＴＧＰＴＫＬＦＶＬＶＲＣＰＣＴＬＮＬＰＬＤＦＬＰＫＲＤＦＲＹＳＫＫＶＶＰＬＱＭＣＩＫＣＮＩＡＧＩＱＩＤＮＱＱＩＴＳＩＶＤＡＳＲＣＴＳＥＳＴＩＳＥＶＩＷＦＱＣＫＨＴＩＲＧＬＰＣＫＡＳＬＥＥ）に示されるＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質と、Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２３（ＭＡＳＳＰＰＰＳＴＡＳＰＴＳＳＳＰＹＲＫＬＬＨＳＬＩＹＷＡＶＱＲＣＲＭＳＥＳＰＣＲＬＴＶＳＶＫＲ ＳＰＥＰＡＧＳＳＰＬＲＩＳＶＳＤＴＧＶＧＳＫＬＥＥＦＬＥＬＤＡＬＡＲＥＴＰＶＥＫＷＤＧＴＬＬＩＴＴＴＧＩＤＤＫＡＩＹＲＹＱＦＮＬＱＥＤＴＳＳＳＴＲＦＴＫＬＡＴＭＹＫＳＲＡＩＦＳＧＴＥＶＣＬＣＬＰＴＥＡＤＶＤＤＬＩＬＷＬＶＧＦＶＲＫＩＦＶＬＲＡＳＮＬＡＣＥＬＦＶＡＱＴＤＳＡＧＳＧＤＶＣＬＳＱＤＳＤＤＶＨＩＳＩＴＴＳＳＩＤＲＬＶＳＧＬＫＤＹＡＬＳＨＡＮＴＳＤＲＣＥＡＣＹＭＮＲＤＲＬＫＩＧＴＧＴＡＫＹＶＤＫＲＫＡＫＧＱＬＶＥＶＶＩＭＩＡＰＴＳＳＤＬＳＣＷＭＴＮＣＳＳＴＱＶＬＨＦＶＥＦＩＰＣＰＩＳＱＳＳＬＳＡＬＭＳＩＤＷＱＳＹＧＦＫＦＫＧＧＦＩＤＤＤＧＮＡＥＬＱＷＤＮＭＡＦＳＨＶＤＩＡＩＨＴＹＨＥＧＡＶＤＥＷＫＳＳＱＰＥＲＨＬＬＲＫＡＬＫＳＡＬＦＧＬＫＡＤＨＡＥＤＦＬＳＣＨＧＱＫＶＲＥＹＶＰＤＬＡＥＳＩＡＧＬＩＬＳＳＮＤＱＥＦＱＤＥＣＩＡＬＬＧＬＧＳＤＱＤＬＴＥＧＡＶＲＳＣＩＧＥＫＭＮＲＩＩＥＭＮＤＴＫＥＮＶＥＨＮＡＰＹＬＦＥＣＥＲＦＤＥＤＹＳＬＬＤＥＤＤＰＤＥＤＭＩＦＤＦ）に示されるＭＴＯＰＶＩＢタンパク質と、ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２４（ＭＲＨＮＩＫＦＫＳＫＧＴＬＫＩＲＮＴＡＱＩＳＬＷＫＫＣＳＤＳＭＩＡＤＱＴＹＬＦＩＮＲＶＱＤＲＲ ＦＤＥＥＳＬＲＩＬＥＬＳＬＶＡＭＮＶＫＳＦＬＥＶＲＳＲＬＲＤＦＭＲＳＥＳＶＶＩＦＧＥＬＴＧＥＳＭＶＡＫＬＳＶＬＥＦＦＡＲＡＦＡＬＬＧＤＭＥＳＣＬＡＭＲＹＥＡＬＮＬＲＱＬＫＳＰＳＣＬＷＬＧＶＳＨＳＥＷＴＫＦＡＶＱＳＭＥＮＧＦＰＳＩＡＧＫＡＳＥＮＡＬＬＳＬＫＫＤＳＬＩＥＰＫＳＥＤＮＳＤＩＬＤＡＡＥＫＶＲＲＬＲＤＳＡＡＳＬＴＳＳＨＳＧＩＦＩＹＩＶＳＳＬＫＦＡＶＣＮＲＬＬＴＴＦ）に示されるＤＦＯタンパク質と、ＤＦＯタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＤＦＯタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
第２タンパク質は、減数分裂期の姉妹染色体間の接着の制御に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２５（ＭＦＹＳＨＱＬＬＡＲＫＡＰＬＧＱＩＷＭＡＡＴＬＨＳＫＩＮＲＫＲＬＤＫＬＤＩＩＫＩＣＥＥＩＬＮ ＰＳＶＰＭＡＬＲＬＳＧＩＬＭＧＧＶＡＩＶＹＥＲＫＶＫＡＬＹＤＤＶＳＲＦＬＩＥＩＮＥＡＷＲＶＫＰＶＡＤＰＴＶＬＰＫＧＫＴＱＡＫＹＥＡＶＴＬＰＥＮＩＭＤＭＤＶＥＱＰＭＬＦＳＥＡＤＴＴＲＦＲＧＭＲＬＥＤＬＤＤＱＹＩＮＶＮＬＤＤＤＤＦＳＲＡＥＮＨＨＱＡＤＡＥＮＩＴＬＡＤＮＦＧＳＧＬＧＥＴＤＶＦＮＲＦＥＲＦＤＩＴＤＤＤＡＴＦＮＶＴＰＤＧＨＰＱＶＰＳＮＬＶＰＳＰＰＲＱＥＤＳＰＱＱＱＥＮＨＨＡＡＳＳＰＬＨＥＥＡＱＱＧＧＡＳＶＫＮＥＱＥＱＱＫＭＫＧＱＱＰＡＫＳＳＫＲＫＫＲＲＫＤＤＥＶＭＭＤＮＤＱＩＭＩＰＧＮＶＹＱＴＷＬＫＤＰＳＳＬＩＴＫＲＨＲＩＮＳＫＶＮＬＩＲＳＩＫＩＲＤＬＭＤＬＰＬＶＳＬＩＳＳＬＥＫＳＰＬＥＦＹＹＰＫＥＬＭＱＬＷＫＥＣＴＥＶＫＳＰＫＡＰＳＳＧＧＱＱＳＳＳＰＥＱＱＱＲＮＬＰＰＱＡＦＰＴＱＰＱＶＤＮＤＲＥＭＧＦＨＰＶＤＦＡＤＤＩＥＫＬＲＧＮＴＳＧＥＹＧＲＤＹＤＡＦＨＳＤＨＳＶＴＰＧＳＰＧＬＳＲＲＳＡＳＳＳＧＧＳＧＲＧＦＴＱＬＤＰＥＶＱＬＰＳＧＲＳＫＲＱＨＳＳＧＫＳＦＧＮＬＤＰＶＥＥＥＦＰＦＥＱＥＬＲＤＦＫＭＲＲＬＳＤＶＧＰＴＰＤＬＬＥＥＩＥＰＴＱＴＰＹＥＫＫＳＮＰＩＤＱＶＴＱＳＩＨＳＹＬＫＬＨＦＤＴＰＧＡＳＱＳＥＳＬＳＱＬＡＨＧＭＴＴＡＫＡＡＲＬＦＹＱＡＣＶＬＡＴＨＤＦＩＫＶＮＱＬＥＰＹＧＤＩＬＩＳＲＧＰＫＭ）に示されるＲＥＣ８タンパク質と、ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質から選ばれ、
第３タンパク質は、減数分裂の第２次分裂に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２６（ＭＰＥＶＲＮＳＧＧＲＡＡＬＡＤＰＳＧＧＧＦＦＩＲＲＴＴＳＰＰＧＡＶＡＶＫＰＬＡＲＲＡ ＬＰＰＴＳＮＫＥＮＶＰＰＳＷＡＶＴＶＲＡＴＰＫＲＲＳＰＬＰＥＷＹＰＲＳＰＬＲＤＩＴＳＶＶＫＡＶＥＲＫＳＲＬＧＮＡＡＶＲＱＱＩＱＬＳＥＤＳＳＲＳＶＤＰＡＴＰＶＱＫＥＥＧＶＰＱＳＴＰＴＰＰＴＱＫＡＬＤＡＡＡＰＣＰＧＳＴＱＡＶＡＳＴＳＴＡＹＬＡＥＧＫＰＫＡＳＳＳＳＰＳＤＣＳＦＱＴＰＳＲＰＮＤＰＡＬＡＤＬＭＥＫＥＬＳＳＳＩＥＱＩＥＫＭＶＲＫＮＬＫＲＡＰＫＡＡＱＰＳＫＶＴＩＱＫＲＴＬＬＳＭＲ）に示されるＯＳＤ１タンパク質と、ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２７（ＭＳＳＳＳＲＮＬＳＱＥＮＰＩＰＲＰＮＬＡＫＴＲＴＳＬＲＤＶＧＮＲＲＡＰＬＧＤＩＴＮＱＫＮ ＧＳＲＮＰＳＰＳＳＴＬＶＮＣＳＮＫＩＧＱＳＫＫＡＰＫＰＡＬＳＲＮＷＮＬＧＩＬＤＳＧＬＰＰＫＰＮＡＫＳＮＩＩＶＰＹＥＤＴＥＬＬＱＳＤＤＳＬＬＣＳＳＰＡＬＳＬＤＡＳＰＴＱＳＤＰＳＩＳＴＨＤＳＬＴＮＨＶＶＤＹＭＶＥＳＴＴＤＤＧＮＤＤＤＤＤＥＩＶＮＩＤＳＤＬＭＤＰＱＬＣＡＳＦＡＣＤＩＹＥＨＬＲＶＳＥＶＮＫＲＰＡＬＤＹＭＥＲＴＱＳＳＩＮＡＳＭＲＳＩＬＩＤＷＬＶＥＶＡＥＥＹＲＬＳＰＥＴＬＹＬＡＶＮＹＶＤＲＹＬＴＧＮＡＩＮＫＱＮＬＱＬＬＧＶＴＣＭＭＩＡＡＫＹＥＥＶＣＶＰＱＶＥＤＦＣＹＩＴＤＮＴＹＬＲＮＥＬＬＥＭＥＳＳＶＬＮＹＬＫＦＥＬＴＴＰＴＡＫＣＦＬＲＲＦＬＲＡＡＱＧＲＫＥＶＰＳＬＬＳＥＣＬＡＣＹＬＴＥＬＳＬＬＤＹＡＭＬＲＹＡＰＳＬＶＡＡＳＡＶＦＬＡＱＹＴＬＨＰＳＲＫＰＷＮＡＴＬＥＨＹＴＳＹＲＡＫＨＭＥＡＣＶＫＮＬＬＱＬＣＮＥＫＬＳＳＤＶＶＡＩＲＫＫＹＳＱＨＫＹＫＦＡＡＫＫＬＣＰＴＳＬＰＱＥＬＦＬ）に示されるＴＡＭタンパク質と、ＴＡＭタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＡＭタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８（ＭＣＰＣＶＥＲＲＡＰＰＧＶＹＹＴＰＰＰＡＲＴＳＤＨＶＡＡＭＰＭＴＥＲＲＲＰＰＹＳＣＳＳＳＳＥ ＲＲＤＰＦＨＩＶＨＫＶＰＳＧＤＳＰＹＶＲＡＫＨＡＱＬＩＤＫＤＰＮＲＡＩＳＬＦＷＴＡＩＮＡＧＤＲＶＤＳＡＬＫＤＭＡＶＶＭＫＱＬＧＲＳＤＥＧＩＥＡＩＫＳＦＲＹＬＣＳＦＥＳＱＤＳＩＤＮＬＬＬＥＬＹＫＫＳＧＲＩＥＥＥＡＶＬＬＥＨＫＬＱＴＬＥＱＧＭＧＦＧＧＲＶＳＲＡＫＲＶＱＧＫＨＶＩＭＴＩＥＱＥＫＡＲＩＬＧＮＬＧＷＶＨＬＱＬＨＮＹＧＩＡＥＱＨＹＲＦＧＦＶＴＫＩＰＮＩＤＹＣＬＶＭＲＡＬＧＬＥＲＤＫＮＫＬＣＮＬＡＩＣＬＭＲＭＳＲＩＰＥＡＫＳＬＬＤＤＶＲＤＳＰＡＥＳＥＣＧＤＥＰＦＡＫＳＹＤＲＡＶＥＭＬＡＥＩＥＳＫＫＰＥＡＤＬＳＥＫＦＹＡＧＣＳＦＶＮＲＭＫＥＮＩＡＰＧＴＡＮＫＮＹＳＤＶＳＳＳＰＡＳＶＲＰＮＳＡＧＬＹＴＱＰＲＲＣＲＬＦＥＥＥＴＲＧＡＡＲＫＬＬＦＧＫＰＱＰＦＧＳＥＱＭＫＩＬＥＲＧＥＥＥＰＭＫＲＫＫＬＤＱＮＭＩＱＹＬＨＥＦＶＫＤＴＡＤＧＰＫＳＥＳＫＫＳＷＡＤＩＡＥＥＥＥＡＥＥＥＥＥＥＲＬＱＧＥＬＫＴＡＥＭ）に示されるＴＤＭ１タンパク質と、ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれる。
ＰＡＩＲ１タンパク質は減数分裂組換えの開始に関与し、ＤＮＡ二本鎖ギャップの形成を触媒し、ＰＡＩＲ１遺伝子の欠失により組換え過程が欠失し、ＲＥＣ８タンパク質は、新しく複製した姉妹染色体を緊密に関連付けることに用いられ、姉妹（又は相同）染色体を正確に分離して娘細胞に分配することを確保するための重要な調節因子であり、その機能が欠失すると、姉妹染色体が第１次減数分裂の末期で分かれて、細胞の両極へ移動し、ＯＳＤ１遺伝子の機能が欠失すると、配偶子の形成が第２次減数分裂過程を直接スキップする。
上記遺伝子のノックアウトは、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換するための簡単で効果的な方法である。
本発明では、前記のタンパク質の抑制とは、タンパク質をコードする遺伝子又はそのプロモータを突然変異誘発し、タンパク質の活性を部分的に又は全部失うことを意味し、ここで、サイレンシングＲＮＡを植物に発現させることにより、関連タンパク質を抑制することが含まれる。
本発明の代表的な実施形態によれば、ステップＳ２は、遺伝子突然変異及び遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するタンパク質に影響することで、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含む。また、ステップＳ２は、ほかの植物体の誘導花粉を授粉して、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含んでもよく、たとえば、ステップＳ２は、二倍体雌性配偶子の半数体誘導系花粉を授粉することによって、二倍体雌性配偶子の種子への発達を誘導することを含むか、ステップＳ２は、物理的刺激、生物学的ストレス又は化学薬剤処理により、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含むか、又はステップＳ２は、葯培養又は花粉培養により、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含む。
好ましくは、ＭＴＬタンパク質は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２９（ＭＡＡＳＹＳＣＲＲＴＣＥＡＣＳＴＲＡＭＡＧＣＶＶＧＥＰＡＳＡＰＧＱＲＶＴＬＬＡＩＤＧＧＧＩＲＧＬＩＰＧＴＩＬＡＦＬＥＡＲＬＱＥＬＤＧＰＤＡＲＬＡＤＹＦＤＣＩＡＧＴＳＴＧＧＬＩＴＡＭＬＡＡＰＧＤＨＧＲＰＬＦＡＡＳＤＩＮＲＦＹＬＤＮＧＰＬＩＦＰＱＫＲＣＧＭＡＡＡＭＡＡＬＴＲＰＲＹＮＧＫＹＬＱＧＫＩＲＫＭＬＧＥＴＲＶＲＤＴＬＴＮＶＶＩＰＴＦＤＶＲＬＬＱＰＴＩＦＳＴＹＤＡＫＳＭＰＬＫＮＡＬＬＳＤＩＣＩＳＴＳＡＡＰＴＹＬＰＡＨＣＦＱＴＴＤＤＡＴＧＫＶＲＥＦＤＬＩＤＧＧＶＡＡＮＮＰＴＭＶＡＭＴＱＩＴＫＫＩＭＶＫＤＫＥＥＬＹＰＶＫＰＳＤＣＧＫＦＬＶＬＳＶＧＴＧＳＴＳＤＱＧＭＹＴＡＲＱＣＳＲＷＧＩＶＲＷＬＲＮＫＧＭＡＰＩＩＤＩＦＭＡＡＳＳＤＬＶＤＩＨＡＡＶＭＦＱＳＬＨＳＤＧＤＹＬＲＩＱＤＮＴＬＨＧＤＡＡＴＶＤＡＡＴＲＤＮＭＲＡＬＶＧＩＧＥＲＭＬＡＱＲＶＳＲＶＮＶＥＴＧＲＹＶＥＶＰＧＡＧＳＮＡＤＡＬＲＧＦＡＲＱＬＳＥＥＲＲＡＲＬＧＲＲＮＡＣＧＧＧＧＥＧＥＰＳＧＶＡＣＫＲ）に示されるＭＴＬタンパク質、前記ＭＴＬタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＭＴＬタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質である。ここで、該誘導系花粉は、遺伝子型及び倍数性が雑種と一致する配偶子を産生する植物体に由来してもよく、ほかの植物体に由来してもよく、好ましくは、誘導系花粉は、遺伝子型及び倍数性が雑種と一致する雌性配偶子を産生する植物体に由来し、雑種からＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１及びＭＴＬ遺伝子を同時にノックアウトすることにより実現される。
本発明の代表的な実施形態によれば、植物は、単子葉植物と双子葉植物を含み、好ましくは、植物は、水稲、トウモロコシ、モロコシ、アワ、大麦、小麦、ライ麦、エンバク、蕎麦、ハトムギ、サトウキビ、アスパラガス、筍、ニラ、ナガイモ、大豆、ジャガイモ、エンドウ、リョクトウ、アズキ、ソラマメ、ササゲ、インゲンマメ、レンズマメ、ツルマメ、ヒヨコマメ、キャッサバ、サツマイモ、アブラナ、綿、ビート、ナス、落花生、茶、ミント、コーヒー、ゴマ、ひまわり、トウゴマ、エゴマ、ベニバナ、トマト、トウガラシ、キュウリ、チンゲンサイ、レタス、ホウレンソウ、ニンニク、キャベツ、カラシナ、マコモ、ネギ、トウガン、ズッキーニ、ヘチマ、ハクサイ、ダイコン、タマネギ、スイカ、ブドウ、ニンジン、カリフラワー、カボチャ、タバコ、牧草、ネピアグラス、チカラシバ、スーダングラス、ラン、ユリ、チューリップ、及びウマゴヤシを含む。
本願を実現する原理は以下のとおりである。
本願では、アポミキシスを実現する原理は、減数分裂及び受精の過程を行わずに直接胚を形成し種子を産生することであり、主に以下の２つのステップに分けられる。
第１ステップ：減数分裂とは、動植物が生殖期間において発生する特別な細胞分裂過程である。減数分裂には、父母本からの遺伝情報が組換えを行い、染色体の数が半減する配偶子を生成する。
植物の減数分裂期間の３つの異なる重要な段階に関与する遺伝子を同時に突然変異させると（この３つの突然変異材料をＭｉＭｅ、Ｍｉｔｏｓｉｓ ｉｎｓｔｅａｄ ｏｆ Ｍｅｉｏｓｉｓと命名する）、植物体の減数分裂が有糸分裂と類似した過程に変換する。
ＭｉＭｅ植物体から産生する雌、雄性配偶子細胞では、染色体の数及び遺伝子型が体細胞と完全に一致し、その自交子孫がいずれもヘテロ接合の遺伝子型の四倍体であり、このことから、３つの遺伝子を同時に突然変異させることによって、ハイブリッド植物が減数分裂過程を行わずに、体細胞の遺伝子型と一致するクローン配偶子を産生できることが証明されている。
第２ステップ：花粉特異的ホスホリパーゼ遺伝子（ＭＡＴＲＩＬＩＮＥＡＬ、ＭＴＬ）は主に植物の雄性配偶子に作用する、半数体誘導を制御する遺伝子であり、まずトウモロコシでクローンする。ＭＴＬ遺伝子をノックアウトすることによって半数体誘導材料ｍｔｌが得られ得る。二重受精過程では、接合子中のｍｔｌ雄性配偶子のゲノムが分解され、つまり、父本精子核がアクセプタの卵核と接合子を形成せずに、卵核半数体の生成を誘導して結実する。
したがって、ＭｉＭｅ及びＭＴＬという４つの内因性遺伝子を同時に植物において改変させることによって、アポミキシスが発生したＦｉｘ（Ｆｉｘａｔｉｏｎ ｏｆ ｈｙｂｒｉｄｓ）材料を得ることができ、つまり、減数分裂及び受精の過程を行わずに母本ゲノムを保持することにより、細胞倍数性が二倍体であるとともに遺伝子型が親と完全に一致する植物体が得られる。このことから、４つの内因性遺伝子を同時に改変させることにより、アポミキシス特性をハイブリッド植物に導入して、ヘテロ接合遺伝子型を固定できることが証明されている。
本発明の代表的な実施形態によれば、以下のステップを含む。１）配偶子の形成過程における減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換する。研究したところ、減数分裂時期に関与するＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１という３つの遺伝子を同時にノックアウトした後（この材料をＭｉＭｅ、Ｍｉｔｏｓｉｓ ｉｎｓｔｅａｄ ｏｆ Ｍｅｉｏｓｉｓと命名する）、染色体が１回複製し、生殖細胞が従来の２回の分裂から１回の分裂に変わり、それによって、形成された配偶子中、染色体の数が半減されておらず、体細胞と一致する。即ち、減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換することで、染色体を倍増するという目的を達成させる。２）生成した雌性配偶子が、雌性配偶子の発達を誘導し得る花粉刺激を受け、即ち、雌性配偶子が、精子細胞の染色体と融合せずに、胚まで発達し、体細胞の遺伝子型と完全に一致する種子を形成する。ＭＴＬ遺伝子をノックアウトすると、半数体の産生を誘導し得る花粉が得られ得る。ハイブリッド種子を遺伝子組換え背景、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、ＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１及びＭＴＬという４つの遺伝子を同時にノックアウトし、該植物体が産生した雌性配偶子の染色体倍数性が体細胞と同様であり、また、ＭＴＬ遺伝子が破壊されるため、産生した花粉は、雌性配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することができ、このように得られた種子又は植物体には遺伝子分離（形質又は稔性の分離）が生じておらず、遺伝子型が母細胞（遺伝子組換えの背景材料としての雑種）と同様であり、最終的にヘテロシスを固定するという目的が実現される。
図２及び図３は、本発明のＦ１世代の遺伝子型及び染色体倍数性が雑種の母細胞と一致することを明らかに示す。
代表的な実施形態によれば、ヘテロシスを維持した植物又は種子を提供する。該植物又は種子は、上記のいずれかの方法によって製造され、該種子は、良好な固定の雑種強勢を有する。
代表的な実施形態によれば、植物にヘテロシスを維持させるためのキットを提供する。該キットは、植物の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し得るベクター及び／又は試薬と、配偶子を種子又は植物体へ発達させるベクター及び／又は試薬と、を含む。好ましくは、植物の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し得るベクター及び／又は試薬、及び植物配偶子の単為生殖を誘導するベクター及び／又は試薬は、ランダム突然変異誘発又は部位特異的突然変異誘発のベクター及び／又は試薬である。その中でも、ランダム突然変異誘発は、化学的突然変異誘発、物理的突然変異誘発、及び生物学的突然変異誘発を含み、部位特異的突然変異誘発は、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ遺伝子編集技術、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃｐｆ１遺伝子編集技術、ＴＡＬＥＮ遺伝子編集技術、ホーミングエンドヌクレアーゼ遺伝子編集技術、及びＺＦＮ遺伝子編集技術を含み、遺伝子工学技術は、遺伝子組換え技術による遺伝子の特異的発現、異所性発現又は遺伝子サイレンシングの誘導を含む。
代表的な実施形態によれば、植物の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し得るベクター及び／又は試薬は、遺伝子工学技術を利用して、植物の減数分裂組換えに関与するタンパク質を抑制し、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換するベクター及び／又は試薬であり、ここで、タンパク質は、第１タンパク質、第２タンパク質、及び第３タンパク質を含み、
第１タンパク質は、ＤＮＡ二本鎖切断の形成に関与するタンパク質であり、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３に示されるＰＡＩＲ１タンパク質と、ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１４に示されるＰＡＩＲ２タンパク質と、ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１５に示されるＰＡＩＲ３タンパク質と、ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１６に示されるＰＲＤ１タンパク質と、ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１７に示されるＰＲＤ２タンパク質と、ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１８に示されるＳＰＯ１１−１タンパク質と、ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１９に示されるＳＰＯ１１−２タンパク質と、ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２０に示されるＳＤＳタンパク質と、ＳＤＳタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＤＳタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２１に示されるＣＲＣ１タンパク質と、ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２２に示されるＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質と、Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２３に示されるＭＴＯＰＶＩＢタンパク質と、ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２４に示されるＤＦＯタンパク質と、ＤＦＯタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＤＦＯタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
第２タンパク質は、減数分裂期の姉妹染色体間の接着の制御に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２５に示されるＲＥＣ８タンパク質と、ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質から選ばれ、
第３タンパク質は、減数分裂の第２次分裂に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２６に示されるＯＳＤ１タンパク質と、ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２７に示されるＴＡＭタンパク質と、ＴＡＭタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＡＭタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれる。
さらに、配偶子を種子又は植物体へ発達させるベクター及び／又は試薬は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するＭＴＬタンパク質に影響することで、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導するベクター及び／又は試薬を含み、ＭＴＬタンパク質は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２９に示されるＭＴＬタンパク質、ＭＴＬタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＬタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質である。
販売及び使用のし易さから、好ましくは、キットは、雑種においてＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１及びＭＴＬ遺伝子を同時にノックアウトするためのベクター及び／又は試薬を含む。
代表的な実施形態によれば、植物を提供する。該植物の生殖細胞の減数分裂が有糸分裂と類似したものに変換することによって、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を産生し、たとえば、該植物の生殖細胞の減数分裂が有糸分裂と類似したものに変換することによって、雑種の染色体倍数性及び遺伝子型と一致する配偶子を産生することができる。好ましくは、植物は、配偶子の植物体又は種子への発達を誘導することができる。
代表的な実施形態によれば、植物は遺伝子突然変異又は遺伝子工学改変植物であり、植物は遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の減数分裂に関与するタンパク質を調整され、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子の発達プロセスに関与するＭＴＬタンパク質に影響することで、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導され、ここで、タンパク質は、第１タンパク質、第２タンパク質、及び第３タンパク質を含み、
第１タンパク質は、ＤＮＡ二本鎖切断の形成に関与するタンパク質であり、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３に示されるＰＡＩＲ１タンパク質と、ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１４に示されるＰＡＩＲ２タンパク質と、ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１５に示されるＰＡＩＲ３タンパク質と、ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１６に示されるＰＲＤ１タンパク質と、ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１７に示されるＰＲＤ２タンパク質と、ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１８に示されるＳＰＯ１１−１タンパク質と、ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１９に示されるＳＰＯ１１−２タンパク質と、ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２０に示されるＳＤＳタンパク質と、ＳＤＳタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＳＤＳタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２１に示されるＣＲＣ１タンパク質と、ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２２に示されるＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質と、Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２３に示されるＭＴＯＰＶＩＢタンパク質と、ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２４に示されるＤＦＯタンパク質と、ＤＦＯタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＤＦＯタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
第２タンパク質は、減数分裂期の姉妹染色体間の接着の制御に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２５に示されるＲＥＣ８タンパク質と、ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質から選ばれ、
第３タンパク質は、減数分裂の第２次分裂に関与し、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２６に示されるＯＳＤ１タンパク質と、ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２７に示されるＴＡＭタンパク質と、ＴＡＭタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＡＭタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
ＭＴＬタンパク質は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２９に示されるＭＴＬタンパク質と、ＭＴＬタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又はＭＴＬタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質である。
以下、実施例を参照しながら本発明の有益な効果をさらに説明し、以下の実施例では、詳細に説明されていないステップ又は試薬については、いずれも本分野における常用の技術手段又は常用の試薬が使用される。
（実施例１）
１．本実施例で使用されるＦ１雑種は、承認された市販ハイブリッド稲の品種の春優８４である。春優８４は、早開花時期の晩粳不稔系春江１６Ａ(early flowering late japonica sterile line Chunjiang 16A)と日印中間型広親和性回復系Ｃ８４(indica-japonica intermediate type of wide compatibility and restorer line C84)とを組み合わせて育成した日印ハイブリッド稲(japonica-non-indica-restorer intersubspecific hybrid rice)の新しい組み合わせである。該ハイブリッド稲は、産量の増大が期待でき、種子生産の産量が高く、総合的な農業形質に優れ、いもち病抵抗性が良好であり、適応性が広いなどの利点を有する。本実施例で使用される遺伝的形質転換の背景材料は、ハイブリッド稲のＦ１種子を誘導して得たカルスを用いて、有性繁殖段階を行わず、したがって、遺伝子組換えにより得られた遺伝子組換えＴ０世代材料は、遺伝背景に関してはハイブリッド稲Ｆ１植物体と一致する。
２．多遺伝子ノックアウトベクターの構築
主なステップは以下のとおりである（詳細については、ＣＮ２０１５１０４８５５７３．２参照）。
１）単一の標的ＳＫ−ｇＲＮＡの構築：
以下の４つの部位をＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ９遺伝子編集系統によりＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１及びＭＴＬをノックアウトする部位（下線で示されるＰＡＭ配列）として選択した。
ＯＳＤ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１）：ＣＴＧＣＣＧＣＣＧＡＣＧＡＧＣＡＡＣＡＡＧＧ
ＰＡＩＲ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２）：ＡＡＧＣＡＡＣＣＣＡＧＴＧＣＡＣＣＧＣＴＧＧ
ＲＥＣ８遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３）：ＣＣＣＡＴＧＧＣＡＣＴＡＡＧＧＣＴＣＴＣＣＧ
ＭＴＬ遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４）： ＧＧＴＣＡＡＣＧＴＣＧＡＧＡＣＣＧＧＣＡＧＧ
２つの相補的ＤＮＡ配列の設計：フォワード配列の前にＧＧＣＡ、リバース相補的配列の前にＡＡＡＣを追加した。
ＳＫ−ｇＲＮＡ上に２つのＡａｒＩ酵素切断部位があるので、ＡａｒＩで酵素切断すると、粘着末端付きのベクターが形成され、設計されたターゲット配列のフォワード及びリバースプライマーを変性してアニーリングした後、Ｔ４リガーゼを上記で構築した中間ベクターＳＫ−ｇＲＮＡに連結し、単一の標的ｇＲＮＡを得た。
２）複数のｇＲＮＡのタンデム接続及び最終的なバイナリー発現ベクターの構築：
ＢｇｌＩＩとＢａｍＨＩ、ＮｈｅＩとＸｂａＩ、ＳａｌＩとＸｈｏＩがアイソコードマーであるという特性を利用して、ｇＲＮＡの重合を行い、具体的には、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１をＫｐｎＩとＸｈｏＩで酵素切断して、ベクターとし、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１をＳａｌＩとＸｂａＩで酵素切断して、ＰＡＩＲ１ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８をＮｈｅＩとＢａｍＨＩで酵素切断して、ＲＥＣ８ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＭＴＬをＢｇｌＩＩとＫｐｎＩで酵素切断して、ＭＴＬ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、４個以下のｇＲＮＡをワンステップ法で急速に重合し、最終的に、重合したｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＭＴＬ断片をＫｐｎＩとＢｇｌＩＩで酵素切断し、断片を回収し、Ｃａｓ９タンパク質を発現させたバイナリーベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９（ＫｐｎＩとＢａｍＨＩ部位の間）に連結し、最終的には、ＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１及びＭＴＬという４つの遺伝子を同時にノックアウトし得る多遺伝子ノックアウトベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＭＴＬを得て、遺伝子組換えによる水稲の多突然変異体の製造に供した。
３．遺伝子組換え植物体の取得
複数の遺伝子をノックアウトしたバイナリー発現ベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＭＴＬをエレクトロポレーション方法によりアグロバクテリウム（ＡｇｒｏＢａｃｔｅｒｉｕｍｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）株系ＥＨＡ１０５に導入し、アグロバクテリウム媒介法によってこのバイナリー発現ベクターを水稲春優８４のカルスに導入した。形質転換の方法としては、具体的には、ハイブリッド稲春優８４の種子の胚を滅菌後、カルスを誘導する培地に接種した。１週間培養後、成長状態が良好であり、浅黄色をしており、比較的緩い胚性カルスを選択して、形質転換のアクセプタとした。ｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＭＴＬプラスミドを含有するＥＨＡ１０５菌株を用いて水稲カルスを感染し、暗所において２５℃で３日間培養後、５０ｍｇ／ｌハイグロマイシンを含有する選択培地から耐性カルス及び遺伝子組換え植物体をスクリーニングした。ハイグロマイシン含有選択培地で正常に成長した遺伝子組換え植物体を選択した。
４．配列決定による４突然変異体の同定
分子生物学的手段を利用して標的遺伝子の突然変異の状況を同定した。ＣＴＡＢ法により単一の遺伝子組換え植物からゲノムＤＮＡを抽出し、ＰＣＲにより標的バンドを増幅した。使用されるプライマー対：
ＯＳＤ１−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：５）： ａｔｃｔｃｃａｇｇａｔｇｃｃｔｇａａｇｔｇａｇ
ＯＳＤ１−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６）： ｃｃｔａｇａｃｔｇｃｔａｃｔｃｔｔｇｃｔａｇｔｇａｔ
ＰＡＩＲ１−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７）： ｃｔｇｔａｃｃｔｇｔｇｃａｔｃｔａａｔｔａｃａｇ
ＰＡＩＲ１−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：８）： ｃｃｃｃａｔｃｔｔａｔｇｔａｃｔｇａｇｃｔｔｇｃｃａｇ
ＲＥＣ８−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：９）： ｇｃｇａｃｇｃｔｔｃａｃｔｃｇａａｇａｔｃａ
ＲＥＣ８−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１０）： ｃｇｃｃａｔｇｃｃｔｃｇｔｔｇａｔｃｔｃａａ
ＭＴＬ−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１１）： ａｃａｇｔｇａｃｔａｇｔｇａｃａａａｃｇａｔｃｇ
ＭＴＬ−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１２）： ｇａｔｃｇｃｇｔｃａｇｃａｔｇａｔｇｃｇｔｇｔａｃ
得られたＰＣＲ産物を、配列決定会社に送り、それぞれＯＳＤ１−Ｆ、ＰＡＩＲ１−Ｆ、ＲＥＣ８−Ｆ、ＭＴＬ−Ｆを配列決定プライマーとして配列決定を行った。得た結果を野生型の配列と比較した。配列決定結果が二峰性であり、縮退コドン戦略により分析し（ｈｔｔｐ：／／ｄｓｄｅｃｏｄｅ．ｓｃｇｅｎｅ．ｃｏｍ／峰図分析を行う）、突然変異情報を直接取得した。４つの遺伝子がいずれも二対立遺伝子変異である４突然変異体をこれらからスクリーニングした。
５．第１世代からの倍数性及び遺伝子型が固定した植物体の同定
１）同定して得られた４突然変異体植物の第１世代の植物体において、フローサイトメトリーによって細胞倍数性をスクリーニングし、得られた細胞倍数性が母体の植物体と一致する植物体をスクリーニングした。
具体的な方法は以下のとおりである。
一定量の植物組織をガラスペトリ皿に入れて、植物溶解バッファーＬＢ０１ １〜２ｍｌを加え、ブレードで細断し（この操作に亘って氷で行われる）、ペトリ皿内の解離液を吸い取り、５０μｍナイロンメッシュでろ過して遠心管に入れ、１２００ｒｐｍ、４℃で５ｍｉｎ遠心処理し、上清を捨てて、ＬＢ０１ ４５０μｌ、予冷ＰＩ（１ｍｇ／ｍｌ）２５ｕＬ及びＲＮａｓｅ Ａ（１ｍｇ／ｍｌ）を加えて遮光下１０ｍｉｎ染色し、装置にセットして検出し、二倍体植物体をスクリーニングした。
図４Ａは、Ｆ１世代の植物体春優８４の細胞倍数性の検出結果を示し、図４Ｂは、ヘテロシス固定植物体の細胞倍数性の検出結果を示す。
２）全ゲノムの配列決定
２つの親春江１６ＡとＣ８４、春優８４及び倍数性が固定した第１世代（ランダムに４株選択）植物体の葉を準備し、ＤＮＡを抽出して全ゲノムの配列決定を行った。全ゲノムの配列決定結果から（図５）、春江１６ＡとＣ８４の間で多数の異なるホモ接合遺伝子型があり、雑種春優８４は、これらの部位での遺伝子型が春江１６ＡとＣ８４の両方の遺伝子型を有するヘテロ接合状態であり、検出された４株の植物体では、遺伝子型がいずれも春優８４と一致し、ヘテロ接合状態であることが示されており、分子生物学的には遺伝子型が雑種の母細胞と完全に一致することが分かった。
（実施例２）
１．本実施例では、維持系春江１６Ｂと日印中間型広親和性回復系Ｃ８４が使用される。本実施例で使用される遺伝的形質転換の背景材料は親種子から誘導したカルスである。
２．多遺伝子ノックアウトベクターの構築
主なステップは以下のとおりである。
１）単一の標的ＳＫ−ｇＲＮＡの構築：
以下の４つの部位をＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ９遺伝子編集系統によりＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１及びＭＴＬをノックアウトする部位（下線で示されるＰＡＭ配列）として選択した。
ＯＳＤ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１）：ＣＴＧＣＣＧＣＣＧＡＣＧＡＧＣＡＡＣＡＡＧＧ
ＰＡＩＲ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２）：ＡＡＧＣＡＡＣＣＣＡＧＴＧＣＡＣＣＧＣＴＧＧ
ＲＥＣ８遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３）：ＣＣＣＡＴＧＧＣＡＣＴＡＡＧＧＣＴＣＴＣＣＧ
ＭＴＬ遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４）： ＧＧＴＣＡＡＣＧＴＣＧＡＧＡＣＣＧＧＣＡＧＧ
２つの相補的ＤＮＡ配列の設計：フォワード配列の前にＧＧＣＡ、リバース相補的配列の前にＡＡＡＣを追加した。
ＳＫ−ｇＲＮＡ上に２つのＡａｒＩ酵素切断部位があるので、ＡａｒＩで酵素切断すると、粘着末端付きのベクターが形成され、設計されたターゲット配列のフォワード及びリバースプライマーを変性してアニーリングした後、Ｔ４リガーゼを上記で構築した中間ベクターＳＫ−ｇＲＮＡに連結し、単一の標的ｇＲＮＡを得た。
４）複数のｇＲＮＡのタンデム接続及び最終的なバイナリー発現ベクターの構築：
ＢｇｌＩＩとＢａｍＨＩ、ＮｈｅＩとＸｂａＩ、ＳａｌＩとＸｈｏＩがアイソコードマーであるという特性を利用して、ｇＲＮＡの重合を行い、具体的には、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１をＫｐｎＩとＸｈｏＩで酵素切断して、ベクターとし、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１をＳａｌＩとＸｂａＩで酵素切断して、ＰＡＩＲ１ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８をＮｈｅＩとＢａｍＨＩで酵素切断して、ＲＥＣ８ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＭＴＬをＢｇｌＩＩとＫｐｎＩで酵素切断して、ＭＴＬ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、４個以下のｇＲＮＡをワンステップ法で急速に重合し、最終的に、重合したｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＭＴＬ断片をＫｐｎＩとＢｇｌＩＩで酵素切断し、断片を回収し、Ｃａｓ９タンパク質を発現させたバイナリーベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９（ＫｐｎＩとＢａｍＨＩ部位の間）に連結し、最終的には、ＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１及びＭＴＬという４つの遺伝子を同時にノックアウトし得る多遺伝子ノックアウトベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＭＴＬを得て、遺伝子組換えによる水稲多突然変異体の製造に供した。
３．遺伝子組換え植物体の取得
複数の遺伝子をノックアウトしたバイナリー発現ベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＭＴＬをエレクトロポレーション方法によりアグロバクテリウム（ＡｇｒｏＢａｃｔｅｒｉｕｍｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）株系ＥＨＡ１０５に導入し、アグロバクテリウム媒介法によってこのバイナリー発現ベクターを春江１６ＢとＣ８４のカルスに導入した。形質転換の方法としては、具体的には、種子の胚を滅菌後、カルスを誘導する培地に接種した。１週間培養後、成長状態が良好であり、浅黄色をしており、比較的緩い胚性カルスを選択して、形質転換のアクセプタとした。ｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＭＴＬプラスミドを含有するＥＨＡ１０５菌株を用いて水稲カルスを感染し、暗所において２５℃で３日間培養後、ハイグロマイシン５０ｍｇ／ｌを含有する選択培地から耐性カルス及び遺伝子組換え植物体をスクリーニングした。ハイグロマイシン含有選択培地で正常に成長した遺伝子組換え植物体を選択した。
４．配列決定により４つの遺伝子がいずれもヘテロ接合突然変異である春江１６Ｂ及びＣ８４材料を同定し、次にハイブリッドを行い、４つの遺伝子がいずれも突然変異であるハイブリッド植物体を子孫からスクリーニングした。
分子生物学的手段を利用して標的遺伝子の突然変異の状況を同定した。ＣＴＡＢ法により単一の遺伝子組換え植物からゲノムＤＮＡを抽出し、ＰＣＲにより標的バンドを増幅した。使用されるプライマー対：
ＯＳＤ１−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：５）： ａｔｃｔｃｃａｇｇａｔｇｃｃｔｇａａｇｔｇａｇ
ＯＳＤ１−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６）： ｃｃｔａｇａｃｔｇｃｔａｃｔｃｔｔｇｃｔａｇｔｇａｔ
ＰＡＩＲ１−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７）： ｃｔｇｔａｃｃｔｇｔｇｃａｔｃｔａａｔｔａｃａｇ
ＰＡＩＲ１−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：８）： ｃｃｃｃａｔｃｔｔａｔｇｔａｃｔｇａｇｃｔｔｇｃｃａｇ
ＲＥＣ８−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：９）： ｇｃｇａｃｇｃｔｔｃａｃｔｃｇａａｇａｔｃａ
ＲＥＣ８−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１０）： ｃｇｃｃａｔｇｃｃｔｃｇｔｔｇａｔｃｔｃａａ
ＭＴＬ−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１１）： ａｃａｇｔｇａｃｔａｇｔｇａｃａａａｃｇａｔｃｇ
ＭＴＬ−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１２）： ｇａｔｃｇｃｇｔｃａｇｃａｔｇａｔｇｃｇｔｇｔａｃ
得られたＰＣＲ産物を、配列決定会社に送り、それぞれＯＳＤ１−Ｆ、ＰＡＩＲ１−Ｆ、ＲＥＣ８−Ｆ、ＭＴＬ−Ｆを配列決定プライマーとして配列決定を行った。得た結果を野生型の配列と比較し、突然変異情報を直接取得した。
ヘテロ接合突然変異の春江１６Ｂ及びＣ８４材料をスクリーニングした後、互いにハイブリッドしてＦ１世代から二対立遺伝子変異を有するハイブリッド植物体をスクリーニングした。
５．ハイブリッド植物体の種子を収集し、第１世代から倍数性と遺伝子型が固定した植物体を同定した。
１）同定により得られた３突然変異体植物の第１世代の植物体から、フローサイトメトリーによって細胞倍数性をスクリーニングし、得られた細胞倍数性が母体の植物体と一致する植物体をスクリーニングした。
具体的な方法は以下のとおりである。
一定量の植物組織をガラスペトリ皿に入れて、植物溶解バッファーＬＢ０１ １〜２ｍｌを加え、ブレードで細断し（この操作に亘って氷で行われる）、ペトリ皿内の解離液を吸い取り、５０μｍナイロンメッシュでろ過して遠心管に入れ、１２００ｒｐｍ、４℃で５ｍｉｎ遠心処理し、上清を捨てて、ＬＢ０１ ４５０μｌ、予冷ＰＩ（１ｍｇ／ｍｌ）２５ｕＬ及びＲＮａｓｅ Ａ（１ｍｇ／ｍｌ）を加えて遮光下１０ｍｉｎ染色し、装置にセットして検出し、二倍体植物体をスクリーニングした。
２）全ゲノムの配列決定
２つの親春江１６ＢとＣ８４、春優８４及び倍数性が固定した第１世代（ランダムに２株選択）植物体の葉を準備し、ＤＮＡを抽出して全ゲノムの配列決定を行った。全ゲノムの配列決定結果から、春江１６ＢとＣ８４の間で多数の異なるホモ接合遺伝子型があり、雑種春優８４は、これらの部位での遺伝子型が春江１６ＢとＣ８４の両方の遺伝子型を有するヘテロ接合状態であり、検出された２株の植物体では、遺伝子型がいずれも春優８４と一致し、ヘテロ接合状態であることが示されており、分子生物学的には、遺伝子型が雑種の母細胞と完全に一致することが分かった。
（実施例３）
１．本実施例で使用されるＦ１雑種は、承認された市販ハイブリッド稲の品種の春優８４である。春優８４は、不稔系春江１６Ａと日印中間型広親和性回復系Ｃ８４とを組み合わせて育成した日印ハイブリッド稲の新しい組み合わせである。該ハイブリッド稲は、産量の増大が期待でき、種子生産の産量が高く、総合的な農業形質に優れ、いもち病抵抗性が良好であり、適応性が広いなどの利点を有する。本実施例で使用される遺伝的形質転換の背景材料は、ハイブリッド稲のＦ１種子を誘導して得たカルスを用いて、有性繁殖段階を行わず、したがって、遺伝子組換えにより得られた遺伝子組換えＴ０世代材料は、遺伝背景に関してはハイブリッド稲Ｆ１植物体と一致する。
２．多遺伝子ノックアウトベクターの構築
主なステップは以下のとおりである。
１）単一の標的ＳＫ−ｇＲＮＡの構築：
以下の３つの部位をＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ９遺伝子編集系統によりＲＥＣ８、ＯＳＤ１及びＰＡＩＲ１をノックアウトする部位（下線で示されるＰＡＭ配列）として選択した。
ＯＳＤ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１）：ＣＴＧＣＣＧＣＣＧＡＣＧＡＧＣＡＡＣＡＡＧＧ
ＰＡＩＲ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２）：ＡＡＧＣＡＡＣＣＣＡＧＴＧＣＡＣＣＧＣＴＧＧ
ＲＥＣ８遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３）：ＣＣＣＡＴＧＧＣＡＣＴＡＡＧＧＣＴＣＴＣＣＧ
２つの相補的ＤＮＡ配列の設計：フォワード配列の前にＧＧＣＡ、リバース相補的配列の前にＡＡＡＣを追加した。
ＳＫ−ｇＲＮＡ上に２つのＡａｒＩ酵素切断部位があるので、ＡａｒＩで酵素切断すると、粘着末端付きのベクターが形成され、設計されたターゲット配列のフォワード及びリバースプライマーを変性してアニーリングした後、Ｔ４リガーゼを上記で構築した中間ベクターＳＫ−ｇＲＮＡに連結し、単一の標的ｇＲＮＡを得た。
２）３つのｇＲＮＡのタンデム接続及び最終的なバイナリー発現ベクターの構築：
ＢｇｌＩＩとＢａｍＨＩ、ＮｈｅＩとＸｂａＩ、ＳａｌＩとＸｈｏＩがアイソコードマーであるという特性を利用して、ｇＲＮＡの重合を行い、最終的には、重合したｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１断片をＫｐｎＩとＢｇｌＩＩで酵素切断し、断片を回収し、Ｃａｓ９タンパク質を発現させたバイナリーベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９（ＫｐｎＩとＢａｍＨＩ部位の間）に連結し、最終的には、ＲＥＣ８、ＯＳＤ１及びＰＡＩＲ１という３つの遺伝子を同時にノックアウトし得る多遺伝子ノックアウトベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１を得て、遺伝子組換えによる水稲多突然変異体の製造に供した。
３．遺伝子組換え植物体の取得
複数の遺伝子をノックアウトしたバイナリー発現ベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡをエレクトロポレーション方法によりアグロバクテリウム（ＡｇｒｏＢａｃｔｅｒｉｕｍｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）株系ＥＨＡ１０５に導入し、アグロバクテリウム媒介法によってこのバイナリー発現ベクターを水稲春優８４のカルスに導入した。形質転換の方法としては、具体的には、ハイブリッド稲春優８４の種子の胚を滅菌後、カルスを誘導する培地に接種した。１週間培養後、成長状態が良好であり、浅黄色をしており、比較的緩い胚性カルスを選択して、形質転換のアクセプタとした。ｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１プラスミドを含有するＥＨＡ１０５菌株を用いて水稲カルスを感染し、暗所において２５℃で３日間培養後、ハイグロマイシン５０ｍｇ／ｌを含有する選択培地から耐性カルス及び遺伝子組換え植物体をスクリーニングした。ハイグロマイシン含有選択培地で正常に成長した遺伝子組換え植物体を選択した。
４．配列決定による３突然変異体の同定
分子生物学的手段を利用して標的遺伝子の突然変異の状況を同定した。ＣＴＡＢ法により単一の遺伝子組換え植物からゲノムＤＮＡを抽出し、ＰＣＲにより標的バンドを増幅した。使用されるプライマー対：
ＯＳＤ１−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：５）： ａｔｃｔｃｃａｇｇａｔｇｃｃｔｇａａｇｔｇａｇ
ＯＳＤ１−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６）： ｃｃｔａｇａｃｔｇｃｔａｃｔｃｔｔｇｃｔａｇｔｇａｔ
ＰＡＩＲ１−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７）： ｃｔｇｔａｃｃｔｇｔｇｃａｔｃｔａａｔｔａｃａｇ
ＰＡＩＲ１−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：８）： ｃｃｃｃａｔｃｔｔａｔｇｔａｃｔｇａｇｃｔｔｇｃｃａｇ
ＲＥＣ８−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：９）： ｇｃｇａｃｇｃｔｔｃａｃｔｃｇａａｇａｔｃａ
ＲＥＣ８−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１０）： ｃｇｃｃａｔｇｃｃｔｃｇｔｔｇａｔｃｔｃａａ
得られたＰＣＲ産物を、配列決定会社に送り、それぞれＯＳＤ１−Ｆ、ＰＡＩＲ１−Ｆ、ＲＥＣ８−Ｆを配列決定プライマーとして配列決定を行った。得た結果を野生型の配列と比較した。配列決定結果が二峰性であり、縮退コドン戦略により分析し（ｈｔｔｐ：／／ｄｓｄｅｃｏｄｅ．ｓｃｇｅｎｅ．ｃｏｍ／峰図分析を行う）、突然変異情報を直接取得した。
３つの部位がいずれも二対立遺伝子変異である突然変異体は、体細胞の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を産生し得る植物体である。
５．３突然変異体を母本として、ほかの半数体誘導系の植物体花粉を授粉することで、雌性配偶子の種子への発達を誘導し、ヘテロシスを維持した雑種を大量で取得した。
６．第１世代からの倍数性及び遺伝子型が固定した植物体の同定
１）同定して得られた３突然変異体植物の第１世代の植物体において、フローサイトメトリーによって細胞倍数性をスクリーニングし、得られた細胞倍数性が母体の植物体と一致する植物体をスクリーニングした。
具体的な方法は以下のとおりである。
一定量の植物組織をガラスペトリ皿に入れて、植物溶解バッファーＬＢ０１ １〜２ｍｌを加え、ブレードで細断し（この操作に亘って氷で行われる）、ペトリ皿内の解離液を吸い取り、５０μｍナイロンメッシュでろ過して遠心管に入れ、１２００ｒｐｍ、４℃で５ｍｉｎ遠心処理し、上清を捨てて、ＬＢ０１ ４５０μｌ、予冷ＰＩ（１ｍｇ／ｍｌ）２５ｕＬ及びＲＮａｓｅ Ａ（１ｍｇ／ｍｌ）を加えて遮光下１０ｍｉｎ染色し、装置にセットして検出し、二倍体植物体をスクリーニングした。
２）全ゲノムの配列決定
２つの親春江１６ＡとＣ８４、春優８４及び倍数性が固定した第１世代（ランダムに４株選択）植物体の葉を準備し、ＤＮＡを抽出して全ゲノムの配列決定を行った。全ゲノムの配列決定結果から、春江１６ＡとＣ８４の間で多数の異なるホモ接合遺伝子型があり、雑種春優８４は、これらの部位での遺伝子型が春江１６ＡとＣ８４の両方の遺伝子型を有するヘテロ接合状態であり、検出された４株の植物体では、遺伝子型がいずれも春優８４と一致し、ヘテロ接合状態であることが示されており、分子生物学的には遺伝子型が雑種の母細胞と完全に一致することが分かった。
（実施例４）
１．本実施例で使用されるＦ１雑種は、承認された市販ハイブリッド稲の品種の春優８４である。春優８４は、不稔系春江１６Ａと日印中間型広親和性回復系Ｃ８４とを組み合わせて育成した日印ハイブリッド稲の新しい組み合わせである。該ハイブリッド稲は、産量の増大が期待でき、種子生産の産量が高く、総合的な農業形質に優れ、いもち病抵抗性が良好であり、適応性が広いなどの利点を有する。本実施例で使用される遺伝的形質転換の背景材料は、ハイブリッド稲のＦ１種子を誘導して得たカルスを用いて、有性繁殖段階を行わず、したがって、遺伝子組換えにより得られた遺伝子組換えＴ０世代材料は、遺伝背景に関してはハイブリッド稲Ｆ１植物体と一致する。
２．多遺伝子ノックアウトベクターの構築
主なステップは以下のとおりである。
１）単一の標的ＳＫ−ｇＲＮＡの構築：
以下の３つの部位をＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ９遺伝子編集系統によりＲＥＣ８、ＯＳＤ１及びＰＡＩＲ１をノックアウトする部位（下線で示されるＰＡＭ配列）として選択した。
ＯＳＤ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１）：ＣＴＧＣＣＧＣＣＧＡＣＧＡＧＣＡＡＣＡＡＧＧ
ＰＡＩＲ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２）：ＡＡＧＣＡＡＣＣＣＡＧＴＧＣＡＣＣＧＣＴＧＧ
ＲＥＣ８遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３）：ＣＣＣＡＴＧＧＣＡＣＴＡＡＧＧＣＴＣＴＣＣＧ
２つの相補的ＤＮＡ配列の設計：フォワード配列の前にＧＧＣＡ、リバース相補的配列の前にＡＡＡＣを追加した。
ＳＫ−ｇＲＮＡ上に２つのＡａｒＩ酵素切断部位があるので、ＡａｒＩで酵素切断すると、粘着末端付きのベクターが形成され、設計されたターゲット配列のフォワード及びリバースプライマーを変性してアニーリングした後、Ｔ４リガーゼを上記で構築した中間ベクターＳＫ−ｇＲＮＡに連結し、単一の標的ｇＲＮＡを得た。
２）３つのｇＲＮＡのタンデム接続及び最終的なバイナリー発現ベクターの構築：
ＢｇｌＩＩとＢａｍＨＩ、ＮｈｅＩとＸｂａＩ、ＳａｌＩとＸｈｏＩがアイソコードマーであるという特性を利用して、ｇＲＮＡの重合を行い、最終的には、重合したｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１断片をＫｐｎＩとＢｇｌＩＩで酵素切断して、断片を回収し、Ｃａｓ９タンパク質を発現させたバイナリーベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９（ＫｐｎＩとＢａｍＨＩ部位の間）に連結し、最終的には、ＲＥＣ８、ＯＳＤ１及びＰＡＩＲ１という３つの遺伝子を同時にノックアウトし得る多遺伝子ノックアウトベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１を取得し、遺伝子組換えによる水稲多突然変異体の製造に供した。
３．遺伝子組換え植物体の取得
複数の遺伝子をノックアウトしたバイナリー発現ベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＭＴＬをエレクトロポレーション方法によりアグロバクテリウム（ＡｇｒｏＢａｃｔｅｒｉｕｍｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）株系ＥＨＡ１０５に導入し、アグロバクテリウム媒介法によってこのバイナリー発現ベクターを水稲春優８４のカルスに導入した。形質転換の方法としては、具体的には、ハイブリッド稲春優８４の種子の胚を滅菌後、カルスを誘導する培地に接種した。１週間培養後、成長状態が良好であり、浅黄色をしており、比較的緩い胚性カルスを選択して、形質転換のアクセプタとした。ｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１プラスミドを含有するＥＨＡ１０５菌株を用いて水稲カルスを感染し、暗所において２５℃で３日間培養後、ハイグロマイシン５０ｍｇ／ｌを含有する選択培地から耐性カルス及び遺伝子組換え植物体をスクリーニングした。ハイグロマイシン含有選択培地で正常に成長した遺伝子組換え植物体を選択した。
４．配列決定による３突然変異体の同定
分子生物学的手段を利用して標的遺伝子の突然変異の状況を同定した。ＣＴＡＢ法により単一の遺伝子組換え植物からゲノムＤＮＡを抽出し、ＰＣＲにより標的バンドを増幅した。使用されるプライマー対：
ＯＳＤ１−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：５）： ａｔｃｔｃｃａｇｇａｔｇｃｃｔｇａａｇｔｇａｇ
ＯＳＤ１−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６）： ｃｃｔａｇａｃｔｇｃｔａｃｔｃｔｔｇｃｔａｇｔｇａｔ
ＰＡＩＲ１−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７）： ｃｔｇｔａｃｃｔｇｔｇｃａｔｃｔａａｔｔａｃａｇ
ＰＡＩＲ１−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：８）： ｃｃｃｃａｔｃｔｔａｔｇｔａｃｔｇａｇｃｔｔｇｃｃａｇ
ＲＥＣ８−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：９）： ｇｃｇａｃｇｃｔｔｃａｃｔｃｇａａｇａｔｃａ
ＲＥＣ８−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１０）： ｃｇｃｃａｔｇｃｃｔｃｇｔｔｇａｔｃｔｃａａ
得られたＰＣＲ産物を、配列決定会社に送り、それぞれＯＳＤ１−Ｆ、ＰＡＩＲ１−Ｆ、ＲＥＣ８−Ｆを配列決定プライマーとして配列決定を行った。得た結果を野生型の配列と比較した。配列決定結果が二峰性であり、縮退コドン戦略により分析し（ｈｔｔｐ：／／ｄｓｄｅｃｏｄｅ．ｓｃｇｅｎｅ．ｃｏｍ／峰図分析を行う）、突然変異情報を直接取得した。
３つの部位がいずれも二対立遺伝子変異である突然変異体は、体細胞の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を産生し得る植物体である。
５．３突然変異体が所定の段階に発達した後、無菌操作を通じて葯又は花粉をそれぞれ人工的に調製した葯培地に接種し、カルスの形成を誘導し、組織培養により植物体を取得した。
６．組織培養した植物体からの倍数性及び遺伝子型が固定した植物体の同定
１）同定して得られた３突然変異体植物の第１世代の植物体において、フローサイトメトリーによって細胞倍数性をスクリーニングし、得られた細胞倍数性が母体の植物体と一致する植物体をスクリーニングした。
具体的な方法は以下のとおりである。
一定量の植物組織をガラスペトリ皿に入れて、植物溶解バッファーＬＢ０１ １〜２ｍｌを加え、ブレードで細断し（この操作に亘って氷で行われる）、ペトリ皿内の解離液を吸い取り、５０μｍナイロンメッシュでろ過して遠心管に入れ、１２００ｒｐｍ、４℃で５ｍｉｎ遠心処理し、上清を捨てて、ＬＢ０１ ４５０μｌ、予冷ＰＩ（１ｍｇ／ｍｌ）２５ｕＬ及びＲＮａｓｅ Ａ（１ｍｇ／ｍｌ）を加えて遮光下１０ｍｉｎ染色し、装置にセットして検出し、二倍体植物体をスクリーニングした。
２）全ゲノムの配列決定
２つの親春江１６ＡとＣ８４、春優８４及び倍数性が固定した第１世代（ランダムに４株選択）植物体の葉を準備し、ＤＮＡを抽出して全ゲノムの配列決定を行った。全ゲノムの配列決定結果から、春江１６ＡとＣ８４の間で多数の異なるホモ接合遺伝子型があり、雑種春優８４は、これらの部位での遺伝子型が春江１６ＡとＣ８４の両方の遺伝子型を有するヘテロ接合状態であり、検出された４株の植物体では、遺伝子型がいずれも春優８４と一致し、ヘテロ接合状態であることが示されており、分子生物学的には、遺伝子型が雑種の母細胞と完全に一致することが分かった。
（実施例５）
１．本実施例で使用されるＦ１雑種は、承認された市販ハイブリッド稲の品種の春優８４である。春優８４は、不稔系春江１６Ａと日印中間型広親和性回復系Ｃ８４とを組み合わせて育成した日印ハイブリッド稲の新しい組み合わせである。該ハイブリッド稲は、産量の増大が期待でき、種子生産の産量が高く、総合的な農業形質に優れ、いもち病抵抗性が良好であり、適応性が広いなどの利点を有する。本実施例で使用される遺伝的形質転換の背景材料は、ハイブリッド稲のＦ１種子を誘導して得たカルスを用いて、有性繁殖段階を行わず、したがって、遺伝子組換えにより得られた遺伝子組換えＴ０世代材料は、遺伝背景に関してはハイブリッド稲Ｆ１植物体と一致する。
２．多遺伝子ノックアウトベクターの構築
主なステップは以下のとおりである。
１）単一の標的ＳＫ−ｇＲＮＡの構築：
以下の３つの部位をＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ９遺伝子編集系統によりＲＥＣ８、ＯＳＤ１及びＰＡＩＲ１をノックアウトする部位（下線で示されるＰＡＭ配列）として選択した。
ＯＳＤ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１）：ＣＴＧＣＣＧＣＣＧＡＣＧＡＧＣＡＡＣＡＡＧＧ
ＰＡＩＲ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２）：ＡＡＧＣＡＡＣＣＣＡＧＴＧＣＡＣＣＧＣＴＧＧ
ＲＥＣ８遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３）：ＣＣＣＡＴＧＧＣＡＣＴＡＡＧＧＣＴＣＴＣＣＧ
２つの相補的ＤＮＡ配列の設計：フォワード配列の前にＧＧＣＡ、リバース相補的配列の前にＡＡＡＣを追加した。
ＳＫ−ｇＲＮＡ上に２つのＡａｒＩ酵素切断部位があるので、ＡａｒＩで酵素切断すると、粘着末端付きのベクターが形成され、設計されたターゲット配列のフォワード及びリバースプライマーを変性してアニーリングした後、Ｔ４リガーゼを上記で構築した中間ベクターＳＫ−ｇＲＮＡに連結し、単一の標的ｇＲＮＡを得た。
２）３つのｇＲＮＡのタンデム接続及び最終的なバイナリー発現ベクターの構築：
ＢｇｌＩＩとＢａｍＨＩ、ＮｈｅＩとＸｂａＩ、ＳａｌＩとＸｈｏＩがアイソコードマーであるという特性を利用して、ｇＲＮＡの重合を行い、最終的に、重合したｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１断片をＫｐｎＩとＢｇｌＩＩで酵素切断して、断片を回収し、Ｃａｓ９タンパク質を発現させたバイナリーベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９（ＫｐｎＩとＢａｍＨＩ部位の間）に連結し、最終的には、ＲＥＣ８、ＯＳＤ１及びＰＡＩＲ１という３つの遺伝子を同時にノックアウトした多遺伝子ノックアウトベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１を取得し、遺伝子組換えによる水稲多突然変異体の製造に供した。
３．遺伝子組換え植物体の取得
複数の遺伝子をノックアウトしたバイナリー発現ベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＭＴＬをエレクトロポレーション方法によりアグロバクテリウム（ＡｇｒｏＢａｃｔｅｒｉｕｍｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）株系ＥＨＡ１０５に導入し、アグロバクテリウム媒介法によってこのバイナリー発現ベクターを水稲春優８４のカルスに導入した。形質転換の方法としては、具体的には、ハイブリッド稲春優８４の種子の胚を滅菌後、カルスを誘導する培地に接種した。１週間培養後、成長状態が良好であり、浅黄色をしており、比較的緩い胚性カルスを選択して、形質転換のアクセプタとした。ｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＰＡＩＲ１プラスミドを含有するＥＨＡ１０５菌株を用いて水稲カルスを感染し、暗所において２５℃で３日間培養後、ハイグロマイシン５０ｍｇ／ｌを含有する選択培地から耐性カルス及び遺伝子組換え植物体をスクリーニングした。ハイグロマイシン含有選択培地で正常に成長した遺伝子組換え植物体を選択した。
４．配列決定による３突然変異体の同定
分子生物学的手段を利用して標的遺伝子の突然変異の状況を同定した。ＣＴＡＢ法により単一の遺伝子組換え植物からゲノムＤＮＡを抽出し、ＰＣＲにより標的バンドを増幅した。使用されるプライマー対：
ＯＳＤ１−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：５）： ａｔｃｔｃｃａｇｇａｔｇｃｃｔｇａａｇｔｇａｇ
ＯＳＤ１−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６）： ｃｃｔａｇａｃｔｇｃｔａｃｔｃｔｔｇｃｔａｇｔｇａｔ
ＰＡＩＲ１−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７）： ｃｔｇｔａｃｃｔｇｔｇｃａｔｃｔａａｔｔａｃａｇ
ＰＡＩＲ１−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：８）： ｃｃｃｃａｔｃｔｔａｔｇｔａｃｔｇａｇｃｔｔｇｃｃａｇ
ＲＥＣ８−Ｆ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：９）： ｇｃｇａｃｇｃｔｔｃａｃｔｃｇａａｇａｔｃａ
ＲＥＣ８−Ｒ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１０）： ｃｇｃｃａｔｇｃｃｔｃｇｔｔｇａｔｃｔｃａａ
得られたＰＣＲ産物を、配列決定会社に送り、それぞれＯＳＤ１−Ｆ、ＰＡＩＲ１−Ｆ、ＲＥＣ８−Ｆを配列決定プライマーとして配列決定を行った。得た結果を野生型の配列と比較した。配列決定結果が二峰性であり、縮退コドン戦略により分析し（ｈｔｔｐ：／／ｄｓｄｅｃｏｄｅ．ｓｃｇｅｎｅ．ｃｏｍ／峰図分析を行う）、突然変異情報を直接取得した。
３つの部位がいずれも二対立遺伝子変異である突然変異体は、体細胞の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を産生し得る植物体である。
５．単為生殖の化学的誘発
ＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１という３つの遺伝子を同時にノックアウトした水稲材料を準備し、水稲の開花前に、一般的なハイブリッド技術により穂を切り取って雄穂を除去し、次に、稲の穂を処理液として５〜５０ｍｇ／Ｌマレイン酸ヒドラジド又は２〜２０ｍｇ／Ｌ ６−ベンジルアミノアデニンに２〜３ｍｉｎ浸漬し、袋を緊密にかけて花粉の侵入を回避した。処理してから２０日間後、未熟胚又は殻粒を取り培養し、単為生殖の植物体を得た。
６．第１世代からの倍数性及び遺伝子型が固定した植物体の同定
１）同定して得られた３突然変異体植物の第１世代の植物体において、フローサイトメトリーによって細胞倍数性をスクリーニングし、得られた細胞倍数性が母体の植物体と一致する植物体をスクリーニングした。
具体的な方法は以下のとおりである。
一定量の植物組織をガラスペトリ皿に入れて、植物溶解バッファーＬＢ０１ １〜２ｍｌを加え、ブレードで細断し（この操作に亘って氷で行われる）、ペトリ皿内の解離液を吸い取り、５０μｍナイロンメッシュでろ過して遠心管に入れ、１２００ｒｐｍ、４℃で５ｍｉｎ遠心処理し、上清を捨てて、ＬＢ０１ ４５０μｌ、予冷ＰＩ（１ｍｇ／ｍｌ）２５ｕＬ及びＲＮａｓｅ Ａ（１ｍｇ／ｍｌ）を加えて遮光下１０ｍｉｎ染色し、装置にセットして検出し、二倍体植物体をスクリーニングした。
２）全ゲノムの配列決定
２つの親春江１６ＡとＣ８４、春優８４及び倍数性が固定した第１世代（ランダムに４株選択）植物体の葉を準備し、ＤＮＡを抽出して全ゲノムの配列決定を行った。全ゲノムの配列決定結果から、春江１６ＡとＣ８４の間で多数の異なるホモ接合遺伝子型があり、雑種春優８４は、これらの部位での遺伝子型が春江１６ＡとＣ８４の両方の遺伝子型を有するヘテロ接合状態であり、検出された４株の植物体では、遺伝子型がいずれも春優８４と一致し、ヘテロ接合状態であることが示されており、分子生物学的には遺伝子型が雑種の母細胞と完全に一致することが分かった。
（実施例６）
１．突然変異体の突然変異誘発及びスクリーニング
大豆品種の中黄３９については、ＥＭＳにより突然変異誘発し、ハイスループットシークエンシング技術により子孫からＲＥＣ８とＯＳＤ１がそれぞれヘテロ接合突然変異である植物体をスクリーニングし、ヘテロ接合植物体間のハイブリッド及び子孫のスクリーニングによって、ＲＥＣ８とＯＳＤ１がいずれもヘテロ接合突然変異である植物体を得て、大豆品種の斉黄３４については、ＥＭＳにより突然変異誘発し、ハイスループットシークエンシング技術により子孫からＳＰＯ１１−１とＣＥＮＨ３遺伝子がそれぞれヘテロ接合突然変異である植物体をスクリーニングし、ヘテロ接合植物体間のハイブリッド及び子孫のスクリーニングによって、ＳＰＯ１１−１とＣＥＮＨ３がいずれもヘテロ接合突然変異である植物体を得て、ＲＥＣ８とＯＳＤ１がヘテロ接合突然変異である植物体と、ＳＰＯ１１−１とＣＥＮＨ３がいずれもヘテロ接合突然変異である植物体とをハイブリッドし、４つの遺伝子がいずれもヘテロ接合突然変異である植物体を子孫からスクリーニングした。
２．遺伝子組換えベクターの構築
卵細胞で特異的に発現させたＥＣ１．２遺伝子プロモータにより野生型ＣＥＮＨ３の発現を駆動するバイナリーベクターを構築し、該ベクターを４つの遺伝子がいずれもヘテロ接合突然変異である植物体に形質転換し、植物体の近交の子孫からＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＳＰＯ１１−１及びＣＥＮＨ３遺伝子がいずれもホモ接合突然変異であり、且つＥＣ１．２：：ＣＥＮＨ３遺伝子組換え成分を有する単一の植物体を同定してスクリーニングし、該植物体の近交種子を収穫した。
３．第１世代からの倍数性及び遺伝子型が固定した植物体の同定
１）第１世代の植物体において、フローサイトメトリーによって細胞倍数性をスクリーニングし、得られた細胞倍数性が母体の植物体と一致する植物体をスクリーニングした。
具体的な方法は以下のとおりである。
一定量の植物組織をガラスペトリ皿に入れて、植物溶解バッファーＬＢ０１ １〜２ｍｌを加え、ブレードで細断し（この操作に亘って氷で行われる）、ペトリ皿内の解離液を吸い取り、５０μｍナイロンメッシュでろ過して遠心管に入れ、１２００ｒｐｍ、４℃で５ｍｉｎ遠心処理し、上清を捨てて、ＬＢ０１ ４５０μｌ、予冷ＰＩ（１ｍｇ／ｍｌ）２５ｕＬ及びＲＮａｓｅ Ａ（１ｍｇ／ｍｌ）を加えて遮光下１０ｍｉｎ染色し、装置にセットして検出し、二倍体植物体をスクリーニングした。
２）遺伝子型の検出
倍数性が固定した第１世代（ランダムに４株選択）及びその前の世代の植物体の葉を準備し、ＤＮＡを抽出して、前の世代のハイブリッド材料から１６箇所のヘテロ接合状態の部位をランダムにスクリーニングし、検出プライマーを設計した。第１世代の植物体について遺伝子型検出を行ったところ、この４株の植物体では、１６個の部位での遺伝子型が前の世代のものと完全に一致し、即ち、いずれもヘテロ接合状態であり、分子生物学的にはヘテロ接合遺伝子型には組換え及び分離が生じないことが証明されている。
（実施例７）
１．本実施例で使用されるＦ１雑種は、トウモロコシ雑種の佳禾１５８であり、ＬＤ１４０×ＬＤ９７５の組み合わせからなる。
２．多遺伝子ノックアウトベクターの構築
主なステップは以下のとおりである。
１）単一の標的ＳＫ−ｇＲＮＡの構築：
以下の４つの部位をＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ９遺伝子編集系統によりトウモロコシＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１及びＭＴＬをノックアウトする部位（下線で示されるＰＡＭ配列）として選択した。
ＺｍＯＳＤ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３０）：ＴＣＴＧＣＣＴＧＴＡＣＴＧＧＡＧＴＴＡＴＴＧＧ
ＺｍＰＡＩＲ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３１）：ＧＧＡＴＴＧＣＴＧＣＧＡＣＡＧＣＧＧＣＴＧＧＧ
ＺｍＲＥＣ８遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３２）：ＧＧＡＡＧＴＣＣＣＡＣＧＡＧＴＡＡＴＴＡＴＧＧ
ＺｍＭＴＬ遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３３）： ＧＧＡＡＧＧＣＧＡＧＧＡＴＧＧＴＴＣＣＣＧＧＧ
２）複数のｇＲＮＡのタンデム接続及び最終的なバイナリー発現ベクターの構築：
ＢｇｌＩＩとＢａｍＨＩ、ＮｈｅＩとＸｂａＩ、ＳａｌＩとＸｈｏＩがアイソコードマーであるという特性を利用して、ｇＲＮＡの重合を行い、具体的には、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＺｍＯＳＤ１をＫｐｎＩとＸｈｏＩで酵素切断し、ベクターとし、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＺｍＰＡＩＲ１をＳａｌＩとＸｂａＩで酵素切断して、ＺｍＰＡＩＲ１ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＺｍＲＥＣ８をＮｈｅＩとＢａｍＨＩで酵素切断して、ＺｍＲＥＣ８ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＺｍＭＴＬをＢｇｌＩＩとＫｐｎＩで酵素切断して、ＺｍＭＴＬ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、４個以下のｇＲＮＡをワンステップ法で急速に重合し、最終的には、重合したｇＲＮＡ ＺｍＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＺｍＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＺｍＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＺｍＭＴＬ断片をＫｐｎＩとＢｇｌＩＩで酵素切断して、断片を回収し、Ｃａｓ９タンパク質を発現させたバイナリーベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９（ＫｐｎＩとＢａｍＨＩ部位の間）に連結し、最終的には、トウモロコシＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１及びＭＴＬという４つの遺伝子を同時ノックアウトし得る多遺伝子ノックアウトベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＺｍＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＺｍＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＺｍＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＺｍＭＴＬを取得し、遺伝子組換えによるトウモロコシ多突然変異体の製造に供した。
３．遺伝子組換え植物体の取得
前のステップで得られたトウモロコシの多遺伝子ノックアウトベクターをエレクトロポレーション方法によりアグロバクテリウム・ツメファシエンス菌株ＬＢＡ４４０４に導入し、アグロバクテリウム媒介法によってこのバイナリー発現ベクターをトウモロコシ雑種の佳禾１５８のカルスに導入した。トウモロコシ授粉後、手動で袋掛けを９〜１２日間行い、雌穗を取って苞葉を剥がし、１層の苞葉を剥がすごとに７５％のアルコールをスプレーして表面を消毒し、ブレードを用いてクリーンベンチからサイズ１．０〜１．２ｍｍの未熟胚を取り、高浸透圧液に入れて１時間以内維持し、使用に備えた。アグロバクテリウムをＯＤ６００値が０．８となるまで培養すると、遠心分離して菌体を収集し、１ｍｏｌ／Ｌ懸濁液を用いて再懸濁させた後、アセトシリンゴンを最終濃度が２００μｍｏｌ／Ｌとなるまで加え、該菌液で未熟胚を５ｍｉｎ感染し、次に共培地に移し、２５℃で７日間暗培養し、未熟胚を１５ｍｇ／ｌハイグロマイシンを含有する選択培地に移し、後期の再生培地から耐性カルス及び遺伝子組換え植物体をスクリーニングした。
４．配列決定による４突然変異体の同定
ＣＴＡＢ法により単一の遺伝子組換えトウモロコシからゲノムＤＮＡを抽出し、Ｈｉ−Ｔｏｍによって標的遺伝子の突然変異の状況を同定した（詳細についてはＣＮ２０１７１０５０４１７８．３参照）。
５．第１世代からの倍数性及び遺伝子型が固定したトウモロコシ植物体の同定
１）同定して得られた４突然変異体トウモロコシの第１世代の植物体において、フローサイトメトリーによって細胞倍数性をスクリーニングし、得られた細胞倍数性が母体の植物体と一致する植物体をスクリーニングした。
具体的な方法は以下のとおりである。
一定量の植物組織をガラスペトリ皿に入れて、植物溶解バッファーＬＢ０１ １〜２ｍｌを加え、ブレードで細断し（この操作に亘って氷で行われる）、ペトリ皿内の解離液を吸い取り、５０μｍナイロンメッシュでろ過して遠心管に入れ、１２００ｒｐｍ、４℃で５ｍｉｎ遠心処理し、上清を捨てて、ＬＢ０１ ４５０μｌ、予冷ＰＩ（１ｍｇ／ｍｌ）２５ｕＬ及びＲＮａｓｅ Ａ（１ｍｇ／ｍｌ）を加えて遮光下１０ｍｉｎ染色し、装置にセットして検出し、二倍体植物体をスクリーニングした。
２）全ゲノムの配列決定
２つの親ＬＤ１４０とＬＤ９７５、佳禾１５８及び倍数性が固定した第１世代トウモロコシ植物体の葉を準備し、ＤＮＡを抽出して全ゲノムの配列決定を行った。検出した結果、第１世代のトウモロコシ植物体の遺伝子型が佳禾１５８と一致し、いずれもヘテロ接合状態であり、分子生物学的には遺伝子型が雑種の母細胞と完全に一致することが分かった。
（実施例８）
１．本実施例で使用されるＦ１雑種は、トマト雑種の艾麗莎であり、その母本が低温耐性の近交系「Ｓ以２−４」、父本が高品質の耐病性近交系「Ｓ２８」である。
２．多遺伝子ノックアウトベクターの構築
主なステップは以下のとおりである。
１）単一の標的ＳＫ−ｇＲＮＡの構築：
以下の４つの部位をＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ９遺伝子編集系統によりトマトＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＳＰＯ１１及びＭＴＬをノックアウトする部位（下線で示されるＰＡＭ配列）として選択した。
ＳｌＯＳＤ１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３４）：ＣＡＧＡＡＧＣＡＧＧＧＡＧＡＡＴＧＧＣＡＧＧ
ＳｌＳＰＯ１１遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３５）：ＴＧＡＧＧＡＴＣＴＣＧＣＴＣＧＡＧＧＴＡＧＧ
ＳｌＲＥＣ８遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３６）：ＧＣＡＣＡＧＧＡＧＧＡＡＣＣＴＧＣＴＡＡＧＧ
ＳｌＭＴＬ遺伝子ノックアウト部位（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３７）： ＴＧＡＴＴＧＣＣＧＧＡＡＣＧＡＧＣＡＣＣＧＧ
２）複数のｇＲＮＡのタンデム接続及び最終的なバイナリー発現ベクターの構築：
ＢｇｌＩＩとＢａｍＨＩ、ＮｈｅＩとＸｂａＩ、ＳａｌＩとＸｈｏＩがアイソコードマーであるという特性を利用して、ｇＲＮＡの重合を行い、具体的には、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＳｌＯＳＤ１をＫｐｎＩとＸｈｏＩで酵素切断し、ベクターとし、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＳｌＳＰＯ１１をＳａｌＩとＸｂａＩで酵素切断してＳｌＳＰＯ１１ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＳｌＲＥＣ８をＮｈｅＩとＢａｍＨＩで酵素切断して、ＳｌＲＥＣ８ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、ＳＫ−ｇＲＮＡ ＳｌＭＴＬをＢｇｌＩＩとＫｐｎＩで酵素切断して、ＳｌＭＴＬ ｓｇＲＮＡ断片を提供し、４個以下のｇＲＮＡをワンステップ法で急速に重合し、最終的には、重合したｇＲＮＡ ＳｌＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＳｌＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＳｌＰＡＩＲ１−ｇＲＮＡ ＳｌＭＴＬ断片をＫｐｎＩとＢｇｌＩＩで酵素切断し、断片を回収し、Ｃａｓ９タンパク質を発現させたバイナリーベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９（ＫｐｎＩとＢａｍＨＩ部位の間）に連結し、最終的には、トマトＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＳＰＯ１１及びＭＴＬという４つの遺伝子を同時にノックアウトし得る多遺伝子ノックアウトベクターｐＣ１３００−Ｃａｓ９−ｇＲＮＡ ＳｌＯＳＤ１−ｇＲＮＡ ＳｌＲＥＣ８−ｇＲＮＡ ＳｌＳＰＯ１１−ｇＲＮＡ ＳｌＭＴＬを取得し、遺伝子組換えによるトマト多突然変異体の製造に供した。
３．遺伝子組換え植物体の取得
リーフディスク法により前のステップで得たトマト多遺伝子ノックアウトベクターをエレクトロポレーション方法によりアグロバクテリウム菌株ＥＨＡ１０５に導入し、アグロバクテリウム媒介法によって、このバイナリー発現ベクターをトマト雑種の艾麗莎のカルスに導入した。
トマト種子を無菌処理して１／２ ＭＳ培地に播播し、２〜３日間暗培養して発芽後、１０〜１２日間明培養後、幼苗の子葉が十分に展開しているが、本葉が成長していないときに、子葉を外植片とし、子葉の両端を切り落とし、中間部分を横方向において２等分し、切断したピースをリーフディスクとした。リーフディスクを予備培養の培地に接種して、葉の正面を上向きにして２日間予備培養した。調製したアグロバクテリウム菌液を用いて予備培養した子葉のリーフディスクを５分間かけて十分に浸漬し、滅菌濾紙を用いてリーフディスクに付いた水を適切に吸い取り、葉の裏面を上向きにし、２８℃の培養温度で４８〜７２時間暗培養した。アグロバクテリウムと共培養したリーフディスクを滅菌培地に移して、明培養した。５日間後、リーフディスクをスクリーニング培地に移し、１４日間ごとに１回移した。耐性芽が約２ｃｍ成長すると、外植片から切り取り、発根培地に導入して、根系が発達した後、土壤に移植した。
４．配列決定による４突然変異体の同定
ＣＴＡＢ法により単一の遺伝子組換えトマトからゲノムＤＮＡを抽出し、Ｈｉ−Ｔｏｍにより標的遺伝子の突然変異の状況を同定した（詳細については、ＣＮ２０１７１０５０４１７８．３参照）。
５．第１世代からの倍数性及び遺伝子型が固定したトマト植物体の同定
１）同定して得られた４突然変異体トマトの第１世代の植物体において、フローサイトメトリーにより細胞倍数性をスクリーニングし、得られた細胞倍数性が母体の植物体と一致する植物体をスクリーニングした。
具体的な方法は以下のとおりである。
一定量の植物組織をガラスペトリ皿に入れて、植物溶解バッファーＬＢ０１ １〜２ｍｌを加え、ブレードで細断し（この操作に亘って氷で行われる）、ペトリ皿内の解離液を吸い取り、５０μｍナイロンメッシュでろ過して遠心管に入れ、１２００ｒｐｍ、４℃で５ｍｉｎ遠心処理し、上清を捨てて、ＬＢ０１ ４５０μｌ、予冷ＰＩ（１ｍｇ／ｍｌ）２５ｕＬ及びＲＮａｓｅ Ａ（１ｍｇ／ｍｌ）を加えて遮光下１０ｍｉｎ染色し、装置にセットして検出し、二倍体植物体をスクリーニングした。
２）全ゲノムの配列決定
２つの親「Ｓ以２−４」及び「Ｓ２８」、トマト雑種の艾麗莎及び倍数性が固定した第１世代のトマト植物体の葉を準備し、ＤＮＡを抽出して全ゲノムの配列決定を行った。検出したところ、第１世代のトマト植物体は、遺伝子型が艾麗莎と一致し、いずれもヘテロ接合状態であり、分子生物学的には遺伝子型が雑種の母細胞と完全に一致することが分かった。
また、本実施例で使用されるすべてのベクター及び試薬は、本実施例のキットに含まれる。
以上は、本発明の好適な実施例に過ぎず、本発明を制限するものではなく、当業者であれば、本発明は、さまざまな修正や変化を行うことができる。本発明の趣旨及び原則を逸脱することなく行われるすべての修正、同等置換、改良などは、本発明の特許請求の範囲に含まれるものとする。

Claims (30)

  1. 遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を得るステップＳ１と、
    遺伝子突然変異及び遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するタンパク質に影響するステップＳ２と、を含み、かかるタンパク質はＭＴＬタンパクであることを特徴とする植物ヘテロシスの維持方法。
  2. 前記遺伝子突然変異は、ランダム突然変異誘発と部位特異的突然変異誘発を含み、前記ランダム突然変異誘発は、化学的突然変異誘発、物理的突然変異誘発、及び生物学的突然変異誘発を含み、前記部位特異的突然変異誘発は遺伝子編集技術を含み、前記遺伝子編集技術は、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ遺伝子編集技術、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃｐｆ１遺伝子編集技術、ＴＡＬＥＮ遺伝子編集技術、ホーミングエンドヌクレアーゼ遺伝子編集技術、及びＺＦＮ遺伝子編集技術を含み、前記遺伝子工学技術は、遺伝子組換え技術による遺伝子の特異的発現、異所性発現又は遺伝子サイレンシングの誘導を含む、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
  3. 前記ステップＳ１は、雑種を準備し、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を得ることを含む、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
  4. 前記ステップＳ１は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、雑種の親を編集し、次に、親同士のハイブリッドにより雑種を取得し、さらに、生殖細胞の減数分裂が有糸分裂と類似したものに変換された雑種配偶子を得ることを含む、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
  5. 前記ステップＳ１は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の減数分裂に関与するタンパク質を編集し、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換することを含み、前記タンパク質は第１タンパク質、第２タンパク質、及び第３タンパク質を含み、
    前記第１タンパク質はＤＮＡ二本鎖切断の形成に関与するタンパク質であり、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３に示されるＰＡＩＲ１タンパク質と、前記ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１４に示されるＰＡＩＲ２タンパク質と、前記ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１５に示されるＰＡＩＲ３タンパク質と、前記ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１６に示されるＰＲＤ１タンパク質と、前記ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１７に示されるＰＲＤ２タンパク質と、前記ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１８に示されるＳＰＯ１１−１タンパク質と、前記ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＳＰＯ１１−１タンパク質とは４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１９に示されるＳＰＯ１１−２タンパク質と、前記ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２０に示されるＳＤＳタンパク質と、前記ＳＤＳタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＳＤＳタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２１に示されるＣＲＣ１タンパク質と、前記ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２２に示されるＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質と、前記Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２３に示されるＭＴＯＰＶＩＢタンパク質と、前記ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２４に示されるＤＦＯタンパク質と、前記ＤＦＯタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＤＦＯタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
    前記第２タンパク質は、減数分裂期の姉妹染色体間の接着の制御に関与し、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２５に示されるＲＥＣ８タンパク質と、前記ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
    前記第３タンパク質は、減数分裂の第２次分裂に関与し、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２６に示されるＯＳＤ１タンパク質と、前記ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２７に示されるＴＡＭタンパク質と、前記ＴＡＭタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＴＡＭタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、前記ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれる、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
  6. 前記ステップＳ２は、遺伝子突然変異及び遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するタンパク質に影響することで、前記配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含む、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
  7. 前記ステップＳ２は、ほかの植物体の誘導花粉を授粉して、前記配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含む、ことを特徴とする請求項６に記載の方法。
  8. 前記ステップＳ２は、物理的刺激、生物学的ストレス又は化学薬剤処理により、前記配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含む、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
  9. 前記ステップＳ２は、葯培養又は花粉培養により、前記配偶子の種子又は植物体への発達を誘導することを含む、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
  10. 前記ＭＴＬタンパク質は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２９に示されるＭＴＬタンパク質、前記ＭＴＬタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＭＴＬタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質である、ことを特徴とする請求項６に記載の方法。
  11. 前記植物は単子葉植物と双子葉植物を含む、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
  12. 前記植物は、水稲、トウモロコシ、モロコシ、アワ、大麦、小麦、ライ麦、エンバク、蕎麦、ハトムギ、サトウキビ、アスパラガス、筍、ニラ、ナガイモ、大豆、ジャガイモ、エンドウ、リョクトウ、アズキ、ソラマメ、ササゲ、インゲンマメ、レンズマメ、ツルマメ、ヒヨコマメ、キャッサバ、サツマイモ、アブラナ、綿、ビート、ナス、落花生、茶、ミント、コーヒー、ゴマ、ひまわり、トウゴマ、エゴマ、ベニバナ、トマト、トウガラシ、キュウリ、チンゲンサイ、レタス、ホウレンソウ、ニンニク、キャベツ、カラシナ、マコモ、ネギ、トウガン、ズッキーニ、ヘチマ、ハクサイ、ダイコン、タマネギ、スイカ、ブドウ、ニンジン、カリフラワー、カボチャ、タバコ、牧草、ネピアグラス、チカラシバ、スーダングラス、ラン、ユリ、チューリップ、及びウマゴヤシを含む、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
  13. ヘテロシスを維持した植物又は種子であって、
    請求項１〜１１のいずれか１項に記載の方法によって製造される、ことを特徴とする植物又は種子。
  14. 請求項１に記載の方法用の植物にヘテロシスを維持させるキットであって、
    植物の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し得るベクター及び／又は試薬と、配偶子を種子又は植物体へ発達させるベクター及び／又は試薬と、を含む、ことを特徴とするキット。
  15. 植物の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し得る前記ベクター及び／又は試薬は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術により、雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換するベクター及び／又は試薬、好ましくはランダム突然変異誘発又は部位特異的突然変異誘発のベクター及び／又は試薬である、ことを特徴とする請求項１４に記載のキット。
  16. 前記ランダム突然変異誘発は、化学的突然変異誘発、物理的突然変異誘発、及び生物学的突然変異誘発を含み、前記部位特異的突然変異誘発は、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ遺伝子編集技術、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃｐｆ１遺伝子編集技術、ＴＡＬＥＮ遺伝子編集技術、ホーミングエンドヌクレアーゼ遺伝子編集技術、及びＺＦＮ遺伝子編集技術を含み、前記遺伝子工学技術は、遺伝子組換え技術による遺伝子の特異的発現、異所性発現又は遺伝子サイレンシングの誘導を含む、ことを特徴とする請求項１５に記載のキット。
  17. 植物の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し得る前記ベクター及び／又は試薬は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の減数分裂に関与するタンパク質を編集し、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換するベクター及び／又は試薬であり、前記タンパク質は、第１タンパク質、第２タンパク質、及び第３タンパク質を含み、
    前記第１タンパク質は、ＤＮＡ二本鎖切断の形成に関与するタンパク質であり、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３に示されるＰＡＩＲ１タンパク質と、前記ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１４に示されるＰＡＩＲ２タンパク質と、前記ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１５に示されるＰＡＩＲ３タンパク質と、前記ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１６に示されるＰＲＤ１タンパク質と、前記ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１７に示されるＰＲＤ２タンパク質と、前記ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１８に示されるＳＰＯ１１−１タンパク質と、前記ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１９に示されるＳＰＯ１１−２タンパク質と、前記ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２０に示されるＳＤＳタンパク質と、前記ＳＤＳタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＳＤＳタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２１に示されるＣＲＣ１タンパク質と、前記ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２２に示されるＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質と、前記Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２３に示されるＭＴＯＰＶＩＢタンパク質と、前記ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２４に示されるＤＦＯタンパク質と、前記ＤＦＯタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＤＦＯタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
    前記第２タンパク質は、減数分裂期の姉妹染色体間の接着の制御に関与し、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２５に示されるＲＥＣ８タンパク質と、前記ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
    前記第３タンパク質は、減数分裂の第２次分裂に関与し、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２６に示されるＯＳＤ１タンパク質と、前記ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２７に示されるＴＡＭタンパク質と、前記ＴＡＭタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＴＡＭタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、前記ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれる、ことを特徴とする請求項１４に記載のキット。
  18. 配偶子を種子又は植物体へ発達させる前記ベクター及び／又は試薬は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するＭＴＬタンパク質に影響することで、配偶子の種子又は植物体への発達を誘導するベクター及び／又は試薬を含み、前記ＭＴＬタンパク質は、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２９に示されるＭＴＬタンパク質、前記ＭＴＬタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＭＴＬタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質である、ことを特徴とする請求項１４に記載のキット。
  19. 請求項１４〜１８のいずれか１項に記載のキットを用いて産生する植物であって、前記植物の生殖細胞の減数分裂は有糸分裂と類似したものに変換され、雑種の遺伝子型及び染色体倍数性と一致する配偶子を産生することができる、ことを特徴とする植物。
  20. 前記植物の配偶子は、植物体又は種子への発達が誘導され得る、ことを特徴とする請求項１９に記載の植物。
  21. 前記植物は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学改変植物であり、前記植物は、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の減数分裂に関与するタンパク質を調整することにより、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換され、遺伝子突然変異又は遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与する第４タンパク質に影響することで、配偶子の種子又は植物体への発達が誘導され、前記タンパク質は、第１タンパク質、第２タンパク質、及び第３タンパク質を含み、
    前記第１タンパク質は、ＤＮＡ二本鎖切断の形成に関与するタンパク質であり、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３に示されるＰＡＩＲ１タンパク質と、前記ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＡＩＲ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１４に示されるＰＡＩＲ２タンパク質と、前記ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＡＩＲ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１５に示されるＰＡＩＲ３タンパク質と、前記ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＡＩＲ３タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１６に示されるＰＲＤ１タンパク質と、前記ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＲＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１７に示されるＰＲＤ２タンパク質と、前記ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＰＲＤ２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１８に示されるＳＰＯ１１−１タンパク質と、前記ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＳＰＯ１１−１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１９に示されるＳＰＯ１１−２タンパク質と、前記ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＳＰＯ１１−２タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２０に示されるＳＤＳタンパク質と、前記ＳＤＳタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＳＤＳタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２１に示されるＣＲＣ１タンパク質と、前記ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＣＲＣ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２２に示されるＰ３１ｃｏｍｅｔタンパク質と、前記Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記Ｐ３１ｃｏｍｅｔタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２３に示されるＭＴＯＰＶＩＢタンパク質と、前記ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＭＴＯＰＶＩＢタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２４に示されるＤＦＯタンパク質と、前記ＤＦＯタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＤＦＯタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
    前記第２タンパク質は、減数分裂期の姉妹染色体間の接着の制御に関与し、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２５に示されるＲＥＣ８タンパク質と、前記ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＲＥＣ８タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質から選ばれ、
    前記第３タンパク質は、減数分裂の第２次分裂に関与し、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２６に示されるＯＳＤ１タンパク質と、前記ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＯＳＤ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２７に示されるＴＡＭタンパク質と、前記ＴＡＭタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＴＡＭタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、前記ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質と、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２８に示されるＴＤＭ１タンパク質と、前記ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＴＤＭ１タンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれ、
    前記第４タンパク質は、
    ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２９に示されるＭＴＬタンパク質と、前記ＭＴＬタンパク質とは少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列同一性を有するタンパク質、又は前記ＭＴＬタンパク質とは少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は９８％の配列類似性を有するタンパク質とから選ばれる、ことを特徴とする請求項２０に記載の植物。
  22. 遺伝子編集技術を利用して、Ｆ１世代で雑種の生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、Ｆ１世代の二倍体雌性配偶子を得るステップＳ１と、
    遺伝子突然変異及び遺伝子工学技術を利用して、植物の配偶子又は胚の発達プロセスに関与するタンパク質に影響することで、前記二倍体雌性配偶子の種子への発達を誘導するステップＳ２と、を含み、かかるタンパク質はＭＴＬタンパクであることを特徴とする植物ヘテロシスの維持方法。
  23. 前記ステップＳ１は、Ｆ１世代のハイブリッド種子を準備し、遺伝子編集技術を利用して、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換し、Ｆ１世代の二倍体雌性配偶子を得ることを含む、ことを特徴とする請求項２２に記載の方法。
  24. 前記ステップＳ１は、遺伝子編集技術を利用して、雑種の親を編集し、編集された各遺伝子がいずれもヘテロ接合突然変異である植物体を取得し、次に、親同士のハイブリッドにより雑種を取得し、２つの親において編集された複数の遺伝子がいずれもホモ接合突然変異である植物体を雑種からスクリーニングし、さらに、生殖細胞の減数分裂が有糸分裂と類似したものに変換されたＦ１世代の二倍体雌性配偶子を得ることを含む、ことを特徴とする請求項２２に記載の方法。
  25. 前記ステップＳ１は、遺伝子編集技術を利用して、ＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１遺伝子をノックアウトし、生殖細胞の減数分裂を有糸分裂と類似したものに変換することを含む、ことを特徴とする請求項２３又は２４に記載の方法。
  26. 前記ステップＳ２は、前記二倍体雌性配偶子の半数体誘導系花粉を授粉することにより、前記二倍体雌性配偶子の種子への発達を誘導することを含む、ことを特徴とする請求項２２に記載の方法。
  27. 前記ステップＳ２は、遺伝子編集技術を利用して、ＭＴＬ遺伝子をノックアウトし、半数体誘導系花粉を産生することを含む、ことを特徴とする請求項２６に記載の方法。
  28. 前記ステップＳ２は、ほかの植物体の半数体誘導系花粉を用いて、前記二倍体雌性配偶子の種子への発達を誘導することを含む、ことを特徴とする請求項２６に記載の方法。
  29. 前記雑種は、Ｆ１世代でＲＥＣ８、ＯＳＤ１、ＰＡＩＲ１、及びＭＴＬ遺伝子が同時にノックアウトされた、ことを特徴とする請求項２５に記載の方法。
  30. 前記植物は、水稲、トウモロコシ、モロコシ、小米、大麦、及び小麦を含む、ことを特徴とする請求項２２に記載の方法。
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Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20220259609A1 (en) * 2019-07-30 2022-08-18 Pairwise Plants Services, Inc. Morphogenic regulators and methods of using the same
CN111919743A (zh) * 2019-10-22 2020-11-13 蒋廉斌 无融合生殖白绒毛稻种的培育方法及应用
CA3181878A1 (en) * 2020-06-09 2021-12-16 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Heterozygous cenh3 monocots and methods of use thereof for haploid induction and simultaneous genome editing
CN112522259A (zh) * 2020-09-21 2021-03-19 华南农业大学 单倍体介导培育具有Oslg1突变体表型的株型改良水稻材料的方法
CN113416735B (zh) * 2021-03-17 2023-01-31 云南中烟工业有限责任公司 一种烟草生殖细胞特异高表达基因及应用
CN113396818B (zh) * 2021-06-23 2022-05-27 中国水稻研究所 一种利用多倍体杂种优势的植物育种方法
CN117209577A (zh) * 2023-08-29 2023-12-12 中国科学院东北地理与农业生态研究所 一种植物减数分裂相关蛋白GmPRD1及其编码基因和应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20140090099A1 (en) * 2009-10-06 2014-03-27 The Regents Of The University Of California Generation of haploid plants and improved plant breeding
US20140298507A1 (en) * 2010-12-01 2014-10-02 Mark D. Spiller Synthetic Clonal Reproduction Through Seeds
WO2017161264A1 (en) * 2016-03-18 2017-09-21 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Methods and compositions for producing clonal, non-reduced, non-recombined gametes

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN100344760C (zh) * 2005-06-22 2007-10-24 中国科学院植物研究所 一个植物减数分裂基因及其编码蛋白与应用
EP2208790A1 (en) * 2009-01-07 2010-07-21 Institut National De La Recherche Agronomique (I.N.R.A.) Plants producing 2N gametes or apomeiotic gametes
US20120266324A1 (en) * 2011-04-15 2012-10-18 Pioneer Hi Bred International Inc. Self-Reproducing Hybrid Plants
US9677082B2 (en) * 2013-03-15 2017-06-13 Syngenta Participations Ag Haploid induction compositions and methods for use therefor
WO2015185514A1 (en) * 2014-06-02 2015-12-10 Institut National De La Recherche Agronomique A dominant mutation in the tdm gene leading to diplogametes production in plants
MX2018005968A (es) * 2015-11-18 2018-08-29 Syngenta Participations Ag Composiciones de induccion de haploides y metodos de uso de las mismas.
CN105821074B (zh) * 2016-03-14 2019-12-13 上海交通大学 水稻温敏雄性不育基因tms10的应用及育性恢复方法
US20190200554A1 (en) * 2016-08-16 2019-07-04 Monsanto Technology Llc Compositions and Methods for Plant Haploid Induction
CN106755077A (zh) * 2016-12-30 2017-05-31 华智水稻生物技术有限公司 利用crispr‑cas9技术对水稻cenh3基因定点突变的方法
CN106701803B (zh) * 2017-01-13 2019-03-08 中国农业大学 玉米母本单倍体主效诱导基因及应用
CN107177600B (zh) * 2017-06-29 2020-07-07 中国水稻研究所 水稻雄性不育基因OsFIGNL1及其应用
CN107298702B (zh) * 2017-08-09 2020-10-23 四川农业大学 一种水稻粒型相关蛋白及其编码基因
CN108503700B (zh) * 2018-06-13 2021-07-13 厦门大学 水稻粒型蛋白及其编码基因与应用

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20140090099A1 (en) * 2009-10-06 2014-03-27 The Regents Of The University Of California Generation of haploid plants and improved plant breeding
US20140298507A1 (en) * 2010-12-01 2014-10-02 Mark D. Spiller Synthetic Clonal Reproduction Through Seeds
WO2017161264A1 (en) * 2016-03-18 2017-09-21 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Methods and compositions for producing clonal, non-reduced, non-recombined gametes

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CELL RESEARCH, vol. 26, JPN6021046930, 2016, pages 1242 - 1254, ISSN: 0004955765 *
NATURE, vol. 542, JPN6021046932, 2017, pages 105 - 109, ISSN: 0004955766 *

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