JP2021097677A - アレルゲンに対する反応を予防するための遺伝子治療 - Google Patents

Abstract

【課題】ＩｇＥ特異的抗体を投与し、アレルゲン誘発性アナフィラキシーを予防的に処置するための組成物及び方法を提供する。【解決手段】アレルギー反応を阻止する治療遺伝子をコードする核酸配列に、作動可能に連結されたプロモーターを含むベクターを開示する。また、ベクターを含む組成物及び哺乳動物のアレルゲンに対する免疫応答又はアレルギー反応を軽減又は阻害するために、該ベクターを使用する方法を開示する。【選択図】なし

Description

関連出願の相互参照
本特許出願は、２０１６年３月２９日出願の米国仮特許出願第６２／３１４，７４０号及び２０１５年４月９日出願の米国仮特許出願第６２／１４５，０３５号（参照により組み込まれる）の利益を主張する。

電子提出された物件の参照による組み込み
本明細書と同時提出され、且つ、以下の通り識別されるコンピューター可読のヌクレオチド／アミノ酸の配列表が、参照により、本明細書中にその全体が組み込まれる：２０１６年３月２９日付ファイル名「７２２１３５＿ＳＴ２５．ＴＸＴ」、５，７１８バイトのＡＳＣＩＩ（テキスト）ファイル１件。

発明の背景
アレルゲンは、感受性のある個体において、発疹から致死的なアナフィラキシー反応に及ぶ、様々な反応を引き起こす。これらの反応は、アレルゲン抗原特異的免疫グロブリンＥ（ＩｇＥ）に関連するＩ型過敏反応によって媒介される。アレルゲン特異的ＩｇＥがアナフィラキシーを誘発するのを妨げる治療法で、アレルギー個体を治療することに、相当な関心が存在している。かかるアプローチの１つは、組換えＤＮＡ由来のヒト化ＩｇＧ１_κモノクローナル抗体、オマリズマブ（Ｘｏｌａｉｒ（登録商標））（ヒトＩｇＥに結合する）による治療である。オマリズマブは、ＩｇＥの、肥満細胞及び好塩基球の表面上のＩｇＥ受容体への結合を阻害し、従って、アレルギー応答のメディエータ放出の程度を制限する。

感受性個体におけるアレルゲン誘発性アナフィラキシーに対する予防的処置として、抗ＩｇＥモノクローナル抗体を使用することにおける課題は、オマリズマブの単回投与によってもたらされる防護が２〜４週間と推定されることである。現在の治療法の半減期が短いことにより、持続的な効果的治療を維持するために、オマリズマブを、少なくとも１ヶ月に１回は非経口投与することが必要となる。

従って、ＩｇＥ特異的抗体を投与し、アレルゲン誘発性アナフィラキシーを予防的に処置するための代替の組成物及び方法を開発するニーズがある。本発明は、かかる組成物及び方法を提供する。本発明のこの利点及び他の利点は、本明細書で提供される詳細な説明から明らかとなる。

発明の要旨
本発明は、抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片をコードするか、又は可溶性ＩｇＥ受容体、好酸球（ｅｏｓｉｎｏｐｈｉｌ）、好塩基球（ｂａｓｏｐｈｉｌ）、ＩＬ−１３又はＩＬ−４をコードする核酸配列に、作動可能に連結されたプロモーターを含むベクターを提供する。本発明はまた、ベクターを含む組成物、及び哺乳動物における、アレルゲンに対する免疫応答又はアレルギー反応を阻害又は軽減するためのベクターを使用する方法を提供する。更に、本発明は、アレルギーの組換えヒト化マウスモデルを提供する方法を提供する。

図１Ａは、アレルギーに関する組換えヒト化マウスモデル作出のためのプロトコールの模式図である。 図１Ｂ〜１Ｄは、ＥＬＩＳＡ（平均±標準誤差、ｎ＝４／群）によって測定した、ピーナッツアレルギー又はコントロールのドナー由来ヒト血液単核細胞で再構成した、ＮＯＤ−ｓｃｉｄ−ＩＬ２Ｒｇａｍｍａ^ｎｕｌｌ（ＮＳＧ）マウスの総ヒトＩｇＧ（図１Ｂ）、総ヒトＩｇＥ（図１Ｃ）及びピーナッツ特異的ＩｇＥ（図１Ｄ）のレベルを示す実験データを示すグラフである。 図１Ｂ〜１Ｄは、ＥＬＩＳＡ（平均±標準誤差、ｎ＝４／群）によって測定した、ピーナッツアレルギー又はコントロールのドナー由来ヒト血液単核細胞で再構成した、ＮＯＤ−ｓｃｉｄ−ＩＬ２Ｒｇａｍｍａ^ｎｕｌｌ（ＮＳＧ）マウスの総ヒトＩｇＧ（図１Ｂ）、総ヒトＩｇＥ（図１Ｃ）及びピーナッツ特異的ＩｇＥ（図１Ｄ）のレベルを示す実験データを示すグラフである。 図１Ｂ〜１Ｄは、ＥＬＩＳＡ（平均±標準誤差、ｎ＝４／群）によって測定した、ピーナッツアレルギー又はコントロールのドナー由来ヒト血液単核細胞で再構成した、ＮＯＤ−ｓｃｉｄ−ＩＬ２Ｒｇａｍｍａ^ｎｕｌｌ（ＮＳＧ）マウスの総ヒトＩｇＧ（図１Ｂ）、総ヒトＩｇＥ（図１Ｃ）及びピーナッツ特異的ＩｇＥ（図１Ｄ）のレベルを示す実験データを示すグラフである。 図１Ｅは、ピーナッツ抽出物チャレンジ（ｃｈａｌｌｅｎｇｅ）後のマウスの画像を提供する。左パネル−ピーナッツチャレンジ後に正常に見える、非アレルギー性ドナー由来の単核細胞で再構成したマウス。右パネル−ピーナッツチャレンジの１分後に目／鼻の周囲の腫れ、毛の逆立ち（ｐｉｌａｒ ｅｒｅｃｔｉ）、及び毛皮の掻痒／波立ち（ｒｕｆｆｌｉｎｇ）を示す、ピーナッツアレルギードナー由来の単核細胞で再構成したマウス。 図１Ｆ〜１Ｇは、ピーナッツアレルギーマウス（ｎ＝３）及びコントロールマウス（ｎ＝３）における、５週目のチャレンジの３０分後の、アナフィラキシースコア（１〜５）（図１Ｆ）又は血漿ヒスタミンレベル（図１Ｇ）を示す実験データのグラフである。 図１Ｆ〜１Ｇは、ピーナッツアレルギーマウス（ｎ＝３）及びコントロールマウス（ｎ＝３）における、５週目のチャレンジの３０分後の、アナフィラキシースコア（１〜５）（図１Ｆ）又は血漿ヒスタミンレベル（図１Ｇ）を示す実験データのグラフである。 図１Ｈは、マウスの皮膚における受動皮膚アナフィラキシーを示す画像であり、反応により、図に表示した、視覚可能な青色が生成した。ピーナッツアレルギー個体由来の、又は感作し、７．５週目にピーナッツ抽出物でチャレンジしたコントロールドナー由来の血液単核細胞で再構成したＮＳＧマウス由来のプール血清５０μｌの皮内注射の１日前に、ナイーブＢａｌｂ／Ｃマウスの腹部を剃毛した。血清の皮内投与の２４時間後、１００μｌの０．５％エバンスブルー色素及び１００μｇピーナッツ抽出物の混合物をマウスに静脈内投与した。３０分後、マウスを屠殺し、腹部の皮膚を裏返し、反応を、視覚可能な青色により検証した。 図２Ａ〜２Ｃは、感作及びチャレンジ後のＮＳＧマウスにおける、ピーナッツ抗原誘発性アナフィラキシーに対するオマリズマブ処置の有効性を示す実験データを示す。図２Ａは、オマリズマブ（ｎ＝９）での治療の１週間前及び治療の１週間後にＥＬＩＳＡによって測定した遊離ＩｇＥレベルを示すグラフである。 図２Ｂは、ピーナッツチャレンジ後正常に見える、オマリズマブで処置したマウスの画像であり、図２Ｃは、オマリズマブ媒介性の、受動皮膚アナフィラキシー抑制を示す画像である。 図２Ｂは、ピーナッツチャレンジ後正常に見える、オマリズマブで処置したマウスの画像であり、図２Ｃは、オマリズマブ媒介性の、受動皮膚アナフィラキシー抑制を示す画像である。 図３Ａは、ＣＭＶエンハンサー／ニワトリベータアクチン（ＣＡＧ）プロモーター、抗ＩｇＥモノクローナル抗体オマリズマブの重鎖及び軽鎖、フリン２Ａ切断部位及びポリアデニル化シグナルを示すＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクターの模式図である。 図３Ｂは、ＨＥＫ２９３細胞における、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクターによってコードされる抗ＩｇＥ抗体の発現を示すウエスタンブロットの画像である。 図３Ｃは、ＮＳＧマウス（ｎ＝５）へのＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ又はＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌの単回静脈内投与後の経時的な抗ＩｇＥ抗体の持続的発現を示す実験データのグラフである。 図３Ｄは、Ｂａｌｂ／Ｃ雌性マウス（ｎ＝５／群）への、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ、ＡＡＶ９ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ、ＡＡＶ８ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ又はＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｎｉｃｏｔｉｎｅ（コントロール）の単回静脈内投与後の経時的な抗ＩｇＥ抗体の持続的発現を示す実験データのグラフである。 図３Ｅは、ＮＳＧ雌性マウス（ｎ＝５／群）への、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ、ＡＡＶ９ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ、ＡＡＶ８ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ又はＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｎｉｃｏｔｉｎｅ（コントロール）の単回静脈内投与後の経時的な抗ＩｇＥ抗体の持続的発現を示す実験データのグラフである。 図４Ａは、ＮＳＧマウスの予防的処置を試験するための治療プロトコールの概略図である。 図４Ｂ〜４Ｄは、ＥＬＩＳＡで測定した、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクター又はＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌベクターで処置した、ピーナッツアレルギー由来のヒト血液単核細胞で再構成したＮＯＤ−ｓｃｉｄ−ＩＬ２Ｒｇａｍｍａ^ｎｕｌｌ（ＮＳＧ）マウス、又はコントロールドナー由来のヒト血液単核細胞で再構成したマウスにおける総ヒトＩｇＥ（図４Ｂ）、総ピーナッツ特異的ＩｇＥ（図４Ｃ）及び遊離ＩｇＥ（図４Ｄ）のレベルを示す実験データのグラフである（平均±標準誤差、図Ｂ及びＣ；ピーナッツ（ＰＮ）アレルギーなしのドナーｎ＝８、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌのドナーｎ＝７、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥのドナーｎ＝１０、図Ｃ；ＰＮアレルギーなしのドナーｎ−８、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌのドナーｎ＝７、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥのドナーｎ＝１０）。 図４Ｂ〜４Ｄは、ＥＬＩＳＡで測定した、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクター又はＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌベクターで処置した、ピーナッツアレルギー由来のヒト血液単核細胞で再構成したＮＯＤ−ｓｃｉｄ−ＩＬ２Ｒｇａｍｍａ^ｎｕｌｌ（ＮＳＧ）マウス、又はコントロールドナー由来のヒト血液単核細胞で再構成したマウスにおける総ヒトＩｇＥ（図４Ｂ）、総ピーナッツ特異的ＩｇＥ（図４Ｃ）及び遊離ＩｇＥ（図４Ｄ）のレベルを示す実験データのグラフである（平均±標準誤差、図Ｂ及びＣ；ピーナッツ（ＰＮ）アレルギーなしのドナーｎ＝８、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌのドナーｎ＝７、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥのドナーｎ＝１０、図Ｃ；ＰＮアレルギーなしのドナーｎ−８、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌのドナーｎ＝７、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥのドナーｎ＝１０）。 図４Ｂ〜４Ｄは、ＥＬＩＳＡで測定した、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクター又はＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌベクターで処置した、ピーナッツアレルギー由来のヒト血液単核細胞で再構成したＮＯＤ−ｓｃｉｄ−ＩＬ２Ｒｇａｍｍａ^ｎｕｌｌ（ＮＳＧ）マウス、又はコントロールドナー由来のヒト血液単核細胞で再構成したマウスにおける総ヒトＩｇＥ（図４Ｂ）、総ピーナッツ特異的ＩｇＥ（図４Ｃ）及び遊離ＩｇＥ（図４Ｄ）のレベルを示す実験データのグラフである（平均±標準誤差、図Ｂ及びＣ；ピーナッツ（ＰＮ）アレルギーなしのドナーｎ＝８、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌのドナーｎ＝７、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥのドナーｎ＝１０、図Ｃ；ＰＮアレルギーなしのドナーｎ−８、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌのドナーｎ＝７、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥのドナーｎ＝１０）。 図５Ａは、６週目にピーナッツ抽出物でチャレンジした後のマウスの画像を提供する。左−３週目のコントロールベクターで処理したマウスは、ピーナッツチャレンジ後の、目／鼻の周囲の腫れ、並びに毛の逆立ち、毛皮の掻痒／波立ち、歩行及び呼吸速度の減少を示した。右−３週目にＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥで処置したマウスは、ピーナッツチャレンジ後正常に見えた。 図５Ｂ〜５Ｅは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ処置後のアナフィラキシーの変化を示すグラフ及び画像である。図５Ｂは、累積移動距離の赤外線ビームオープンフィールドチャンバーボックス評価に基づく自発運動を示す。６週目に評価した、ベクター及びコントロール処置マウスにおける次の３０分間の横断距離を示す。（ＰＮアレルギーなしのドナーｎ＝８、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌのドナーｎ＝６、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥのドナーｎ＝１０））。 図５Ｃは、６週目のピーナッツチャレンジ３０分後のアナフィラキシースコアを示す（ＰＮアレルギーなしのドナーｎ＝８、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌのドナーｎ＝６、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥのドナーｎ＝１０）。 図５Ｄは、７週目のピーナッツチャレンジ３０分後の血漿ヒスタミンレベルを示す（ＰＮアレルギーなしのドナーｎ＝７、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌのドナーｎ＝６、ＰＮアレルギー＋ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥのドナーｎ＝１０）。 図５Ｅは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ媒介性の受動皮膚アナフィラキシー抑制を示す：左パネル−ピーナッツアレルギードナーの血清由来のピーナッツ特異的ＩｇＥによって媒介されるピーナッツ抽出物誘発受動皮膚アナフィラキシー；右パネル−左パネルと同じドナーを用いて再構成したが、感作の３週間前にＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥで予防的に処置した、ヒト化ピーナッツアレルギーＮＳＧマウスの、プール血清由来のピーナッツ特異的ＩｇＥによって媒介される、ピーナッツ抽出物誘発受動皮膚アナフィラキシー。ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ処置マウス由来の血清は、ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌと比較して、ピーナッツ誘発ピーナッツ特異的ＩｇＥ媒介性受動皮膚アナフィラキシーを阻止した。 図６Ａは、ＮＳＧマウスにおけるピーナッツ誘発アナフィラキシーの治療的処置を試験するための治療プロトコールの概略図である。 図６Ｂ〜６Ｄは、ＥＬＩＳＡ（平均±標準誤差）で測定した、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクター又はＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌベクターで処理したピーナッツアレルギー個体由来のヒト血液単核細胞で再構成されたＮＳＧマウスにおける総ヒトＩｇＥ（図６Ｂ）、総ピーナッツ特異的ＩｇＥ（図６Ｃ）及び遊離ＩｇＥ（図６Ｄ）のレベルを示す実験データのグラフである。 図６Ｂ〜６Ｄは、ＥＬＩＳＡ（平均±標準誤差）で測定した、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクター又はＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌベクターで処理したピーナッツアレルギー個体由来のヒト血液単核細胞で再構成されたＮＳＧマウスにおける総ヒトＩｇＥ（図６Ｂ）、総ピーナッツ特異的ＩｇＥ（図６Ｃ）及び遊離ＩｇＥ（図６Ｄ）のレベルを示す実験データのグラフである。 図６Ｂ〜６Ｄは、ＥＬＩＳＡ（平均±標準誤差）で測定した、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクター又はＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌベクターで処理したピーナッツアレルギー個体由来のヒト血液単核細胞で再構成されたＮＳＧマウスにおける総ヒトＩｇＥ（図６Ｂ）、総ピーナッツ特異的ＩｇＥ（図６Ｃ）及び遊離ＩｇＥ（図６Ｄ）のレベルを示す実験データのグラフである。 図７Ａは、１０週目の、ピーナッツ抽出物チャレンジ後のマウス（ｍｉｃｅ ｍｉｃｅ）の画像を提供する：左パネル−オマリズマブで処置したマウスは、ピーナッツチャレンジ後の目／鼻の周囲の腫れ、並びに毛の逆立ち、毛皮の掻痒／波立ち、歩行及び呼吸速度の減少を示した；右パネル−１０週目（治療後５週間）にＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥで処置したマウスは、ピーナッツチャレンジ後正常に見えた。 図７Ｂ〜７Ｅは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ処置後のアナフィラキシーの変化を示すグラフ及び画像である。図７Ｂは、ベクター、コントロール処置及びオマリズマブのマウスにおける、ピーナッツチャレンジの３０分後に開始した、累積移動距離の赤外線ビームオープンフィールドチャンバーボックス評価に基づく自発運動を示す。示されているのは、７週目（即ち、治療後２週間）及び１０週目（即ち、治療後５週間）についての、続いての３０分にわたって横断された距離のデータである。７週目のデータは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ＨＩｇＥについてはｎ＝１０、オマリズマブについてはｎ＝９、及びＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌについてはｎ＝７、並びに１０週目のデータは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥについてはｎ＝９、オマリズマブについてはｎ＝５、及びＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌについては＝０。 図７Ｃは、ピーナッツチャレンジの３０分後のアナフィラキシースコアを示す。示されているのは、７週目（即ち、治療後２週間）及び１０週目（即ち、治療後５週間）についてのデータである。７週目のデータは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥについてはｎ＝１０、オマリズマブについてはｎ＝９、ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌについてはｎ＝７。１０週目のデータは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥについてはｎ＝９、オマリズマブについてはｎ＝５、ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌについてはｎ＝０。 図７Ｄは、ピーナッツチャレンジの３０分後の血漿ヒスタミンレベルを示す。示されているのは、６週目（即ち、治療後１週間）及び９週目（即ち、治療後４週間）についてのデータである。６週目のデータは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥについてはｎ＝１０、オマリズマブについてはｎ＝９、及びＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌはｎ＝７。９週目のデータは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥについてはｎ＝９、オマリズマブはｎ＝６、及びＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌはｎ＝０。 図７Ｅは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ媒介性の受動皮膚アナフィラキシー抑制を示す。上パネル−７週目（治療後２週間）のピーナッツ抽出物は、ピーナッツアレルギードナーの血清由来のピーナッツ特異的ＩｇＥによって媒介される受動皮膚アナフィラキシーを誘発したが、非アレルギーコントロール由来ではしなかった。下パネル−１０週目（即ち、治療後５週間）の、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥの持続的発現は色素の溢出を阻止するが、５週間前のオマリズマブの１回注射はもはや防護的ではなかった。 図８は、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ、オマリズマブ単独又はコントロールベクターによる処置後のマウスの生存を示すグラフである。生存期間及び処置タイプが、治療後の日数で示される。

発明の詳細な説明
本発明は、遺伝子治療ベクター及びそれを使用する方法を提供し、哺乳動物における、アレルゲンに対する免疫応答又はアレルギー反応を阻害又は軽減するための、治療用導入遺伝子の持続的発現を提供する。ベクターは、抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片をコードするか、又は可溶性ＩｇＥ受容体、好酸球、好塩基球、ＩＬ−１３、又はＩＬ−４をコードする核酸配列に、作動可能に連結されたプロモーターを含むか、それから実質的に成るか、又はそれから成る。ベクターは、ベクターに実質的に影響を及ぼさない追加の構成要素（例、インビトロでのベクター操作を容易にするポリ（Ａ）配列又は制限酵素部位等の遺伝学的エレメント）を含み得る。しかしながら、いくつかの実施形態においては、ベクターは、任意の追加の構成要素（即ち、ベクターに内因性ではなく、核酸配列の発現をもたらし、それによって抗体を提供するために必要とされない構成要素）を含まない。

本発明のベクターは、当該技術分野で公知の任意の遺伝子導入ベクターを含み得るか、
それから実質的になり得るか、又はそれからなり得る。かかるベクターの例としては、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター、アデノウイルスベクター、レンチウイルスベクター、レトロウイルスベクター、及びプラスミドが挙げられる。好ましい実施形態においては、ベクターはＡＡＶベクターである。

アデノ随伴ウイルスは、パルボウイルス科のメンバーであり、約５，０００ヌクレオチド未満の直鎖状の一本鎖ＤＮＡゲノムを含む。ＡＡＶは、効率的な複製のために、ヘルパーウイルス（即ち、アデノウイルス又はヘルペスウイルス）との共感染、又はヘルパー遺伝子の発現を必要とする。治療用核酸の投与のために用いられるＡＡＶベクターは、典型的には、ＤＮＡ複製及びパッケージングのための認識シグナルを含有する末端反復配列（ＩＴＲ）のみが残るように、およそ９６％の親ゲノムが欠失されている。これにより、ウイルス遺伝子の発現に起因する免疫学的又は毒性の副作用が排除される。更に、産生細胞に特異的ＡＡＶタンパク質を送達することによって、所望により、ＡＡＶ ＩＴＲを含むＡＡＶベクターを、細胞ゲノムの特定領域に組み込むことが可能になる（例、米国特許第６，３４２，３９０号及び第６，８２１，５１１号参照）。組み込まれたＡＡＶゲノムを含む宿主細胞は、細胞増殖の変化又は形態の変化を示さない（例えば、米国特許第４，７９７，３６８号参照）。

ＡＡＶ ＩＴＲは、非構造的な複製（Ｒｅｐ）タンパク質及び構造的なキャプシド（Ｃａｐ）タンパク質（ビリオンタンパク質（ＶＰ）としても知られる）のためのユニークなコードヌクレオチド配列に隣接している。末端１４５ヌクレオチドは自己相補的であり、Ｔ字型ヘアピンを形成するエネルギー的に安定な分子内二重鎖が形成され得るように構成されている。これらのヘアピン構造は、細胞のＤＮＡポリメラーゼ複合体のプライマーとして作用することによりウイルスＤＮＡ複製の起点として機能する。Ｒｅｐ遺伝子は、Ｒｅｐタンパク質Ｒｅｐ７８、Ｒｅｐ６８、Ｒｅｐ５２、及びＲｅｐ４０をコードする。Ｒｅｐ７８及びＲｅｐ６８はｐ５プロモーターから転写され、Ｒｅｐ ５２及びＲｅｐ４０はｐ１９プロモーターから転写される。Ｒｅｐ７８及びＲｅｐ６８タンパク質は、ＡＡＶ末端の分離を可能にするために、生産的複製の間にヘリカーゼ及びニッカーゼ機能を実行する多機能ＤＮＡ結合タンパク質である（例、Ｉｍ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ，６１：４４７−５７（１９９０）参照）。これらのタンパク質は、内生ＡＡＶプロモーター及びヘルパーウイルス内のプロモーターからの転写も調節する（例、Ｐｅｒｅｉｒａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，７１：１０７９−１０８８（１９９７）参照）。他のＲｅｐタンパク質は、Ｒｅｐ７８及びＲｅｐ６８の機能を修飾する。ｃａｐ遺伝子は、キャプシドタンパク質ＶＰ１、ＶＰ２及びＶＰ３をコードする。ｃａｐ遺伝子は、ｐ４０プロモーターから転写される。

本発明のＡＡＶベクターは、当該技術分野で公知の任意のＡＡＶ血清型を用いて生成され得る。いくつかのＡＡＶ血清型及び１００超のＡＡＶ変異体が、アデノウイルスストック又はヒト若しくは非ヒト霊長類組織から単離されている（例、Ｗｕ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙ，１４（３）：３１６−３２７（２００６）に概説されている）。一般に、ＡＡＶ血清型は、異なる血清型が、同一の一式の遺伝子機能を有し、物理的及び機能的に、実質的に同等のビリオンを産成し、実質的に同一のメカニズムにより複製及び集合するように、核酸配列及びアミノ酸配列レベルで有意な相同性を有するゲノム配列を有する。ＡＡＶ血清型１〜６及び７〜９は、他のすべての既存の、及び特性解析された血清型に特異的な中和血清と効率的に交差反応しないという点で「真の」血清型と定義される。対照的に、ＡＡＶ血清型６、１０（Ｒｈ１０とも呼ばれる）及び１１は、「真の」血清型の定義に従わないので、「変異」血清型とみなされる。ＡＡＶ血清型２（ＡＡＶ２）は、その病原性の欠如、広範囲の感染性、及び導入遺伝子の長期発現を確立する能力のために、遺伝子治療用途に広範に用いられている（例、Ｃａｒｔｅｒ，Ｂ．Ｊ．，Ｈｕｍ．ＧｅｎｅＴｈｅｒ．，１６：５４１−５５０（２００５）；及びＷｕ ｅｔ
ａｌ．，上記を参照）。種々のＡＡＶ血清型のゲノム配列及びその比較は、例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受入番号Ｕ８９７９０、Ｊ０１９０１、ＡＦ０４３３０３、及びＡＦ０８５７１６、Ｃｈｉｏｒｉｎｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，７１：６８２３−３３（１９９７）；Ｓｒｉｖａｓｔａｖａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，４５：５５５−６４（１９８３）；Ｃｈｉｏｒｉｎｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，７３：１３０９−１３１９（１９９９）；Ｒｕｔｌｅｄｇｅ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，７２：３０９−３１９（１９９８）；及びＷｕ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，７４：８６３５−４７（２０００））に開示されている。

ＡＡＶ ｒｅｐ及びＩＴＲの配列は、殆どのＡＡＶ血清型にわたって特に保存されている。例えば、ＡＡＶ２、ＡＡＶ３Ａ、ＡＡＶ３Ｂ、ＡＡＶ４、及びＡＡＶ６のＲｅｐ７８タンパク質は、約８９〜９３％同一であると報告されている（Ｂａｎｔｅｌ−Ｓｃｈａａｌ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，７３（２）：９３９−９４７（１９９９）参照）。ＡＡＶ血清型２、３Ａ、３Ｂ及び６は、ゲノムレベルで合計約８２％のヌクレオチド配列同一性を有することが報告されている（Ｂａｎｔｅｌ−Ｓｃｈａａｌ ｅｔ ａｌ．，上記）。その上、多くのＡＡＶ血清型のｒｅｐ配列及びＩＴＲは、哺乳動物細胞におけるＡＡＶ粒子の産生中に他の血清型由来の対応する配列を効率的に交差補完する（即ち、機能的に置換する）ことが知られている。

一般に、ＡＡＶ粒子の細胞トロピシティー（ｃｅｌｌｕｌａｒ ｔｒｏｐｉｃｉｔｙ）を決定するキャップタンパク質及び関連するキャップタンパク質をコードする配列は、種々のＡＡＶ血清型にわたるＲｅｐ遺伝子よりも、顕著に保存されていない。Ｒｅｐ及びＩＴＲの配列が他の血清型の対応する配列を交差補完する能力を考慮すると、ＡＡＶベクターは血清型の混合物を含み、それにより「キメラ」又は「シュードタイプ」のＡＡＶベクターであり得る。キメラＡＡＶベクターは、典型的には、２つ以上（例えば、２、３、４など）の種々のＡＡＶ血清型に由来するＡＡＶキャプシドタンパク質を含む。対照的に、シュードタイプＡＡＶベクターは、別のＡＡＶ血清型のキャプシドにパッケージングされた１つのＡＡＶ血清型の１つ以上のＩＴＲを含む。キメラ及びシュードタイプのＡＡＶベクターは、例えば、米国特許第６，７２３，５５１号；Ｆｌｏｔｔｅ，Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．，１３（１）：１−２（２００６）；Ｇａｏ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，７８：６３８１−６３８８（２００４）；Ｇａｏ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９９：１１８５４−１１８５９（２００２）；Ｄｅ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．，１３：６７−７６（２００６）；及びＧａｏ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．，１３：７７−８７（２００６）に更に記載されている。

一実施形態においては、ＡＡＶベクターは、ヒトに感染するＡＡＶ（例えば、ＡＡＶ２）を用いて生成される。好ましい実施形態においては、ヒトに感染するＡＡＶを用いて生成されるＡＡＶベクターは、ＡＡＶ８又はＡＡＶ９である。或いは、ＡＡＶベクターは、例えば、大型類人猿（例、チンパンジー）、旧世界ザル（例、マカク）、及び新世界ザル（例えばマーモセット）等の非ヒト霊長類に感染するＡＡＶを用いて生成される。好ましくは、ＡＡＶベクターは、ヒトに感染するＡＡＶでシュードタイピングされた、非ヒト霊長類に感染するＡＡＶを用いて生成される。かかるシュードタイプのＡＡＶベクターの例は、Ｃｅａｒｌｅｙ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙ，１３：５２８−５３７（２００６）（例）に開示されている。一実施形態においては、ＡＡＶ２逆位末端反復配列（ＩＴＲ）でシュードタイピングされた、アカゲザルに感染するＡＡＶ由来のカプシドタンパク質を含むＡＡＶベクターが生成され得る。

特に好ましい実施形態においては、本発明のＡＡＶベクターは、ＡＡＶ２ ＩＴＲでシュードタイピングされた、アカゲザルに感染するＡＡＶ１０（「ＡＡＶｒｈ．１０」とも呼ばれる）由来のキャプシドタンパク質を含む（例、Ｗａｔａｎａｂｅ ｅｔ ａｌ．，
Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．，１７（８）：１０４２−１０５１（２０１０）；及びＭａｏ ｅｔ ａｌ．，Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ，２２：１５２５−１５３５（２０１１）を参照）。

本発明のベクターは、抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片をコードするか、又は可溶性ＩｇＥ受容体、好酸球、好塩基球、ＩＬ−１３又はＩＬ−４をコードする核酸配列に、作動可能に連結されたプロモーターを含む。ＤＮＡ領域は、それらが互いに機能的に関連している場合、「作動可能に連結」されている。プロモーターが配列の転写を制御する場合、プロモーターは、コード配列に「作動可能に連結」されている。

「プロモーター」は、特定の遺伝子の転写を開始するＤＮＡの領域である。様々な異なるソース由来の多数のプロモーターが、当該技術分野で周知である。プロモーターの代表的なソースとしては、例えば、ウイルス、哺乳動物、昆虫、植物、酵母及び細菌が挙げられ、これらのソース由来の好適なプロモーターは、例えば、ＡＴＣＣ及び他の商業的又は個別のソース等の受託機関から公的に入手可能な配列に基づいて、容易に入手可能か、又は合成的に作製され得る。プロモーターは、一方向性（即ち、一方向における転写を開始）又は双方向性（即ち、３’又は５’方向のいずれの転写も開始する）であり得る。

本発明のベクターのプロモーターは、当該技術分野で公知の任意のプロモーターを含み得るか、実質的にそれからなり得るか、又はそれからなり得る。かかるプロモーターの種類の例としては、構成的に活性なプロモーター（例えば、ヒトベータアクチン、ニワトリベータアクチン、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）及びＳＶ４０）、細胞種特異的プロモーター（例、ＣＤ１９遺伝子プロモーター、ＣａＭＫＩＩａ及びＵＡＳ）、又は誘導性プロモーター（例、Ｔｅｔ系（米国特許第５，４６４，７５８号及び第５，８１４，６１８号）、エクジソン誘導系（Ｎｏ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，９３：３３４６−３３５１（１９９６））、Ｔ−ＲＥＸ（商標）系（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）、Ｃｒｅ−ＥＲＴタモキシフェン誘導性リコンビナーゼ系（Ｉｎｄｒａ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ．Ｒｅｓ．，２７：４３２４−４３２７（１９９９）；Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ．Ｒｅｓ．，２８：ｅ９９（２０００）；Ｕ．Ｓ．Ｐａｔｅｎｔ７，１１２，７１５；及びＫｒａｍｅｒ ＆ Ｆｕｓｓｅｎｅｇｇｅｒ，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，３０８：１２３−１４４（２００５））及びＬＡＣＳＷＩＴＣ（商標）系（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）が挙げられる。

本発明の好ましい態様においては、プロモーターは、構成的に活性なプロモーター、誘導性プロモーター、又は細胞種特異的プロモーターである。プロモーターの一例は、ニワトリベータアクチンプロモーターである。

「核酸配列」は、ＤＮＡ又はＲＮＡのポリマー、即ち、一本鎖又は二本鎖であり得、非天然又は改変ヌクレオチドを含有し得るポリヌクレオチドを包含することが意図される。本明細書で使用される場合、用語「核酸」及び「ポリヌクレオチド」は、リボヌクレオチド（ＲＮＡ）又はデオキシリボヌクレオチド（ＤＮＡ）のいずれかの、任意の長さのヌクレオチドのポリマー形態を指す。これらの用語は、分子の一次構造を指し、従って、二本鎖及び一本鎖ＤＮＡ並びに二本鎖及び一本鎖ＲＮＡを含む。該用語は、均等物として、ヌクレオチドアナログ及びメチル化及び／又はキャップされたポリヌクレオチド等であるがこれらに限定されない、修飾ポリヌクレオチドから作製されたＲＮＡ又はＤＮＡのいずれかのアナログを含む。

プロモーターに作動可能に連結された核酸配列は、アレルギー反応を阻止する治療遺伝子をコードする任意の核酸配列を含み得る。核酸配列は、好ましくは、抗ＩｇＥ抗体又は
その抗原結合断片、可溶性ＩｇＥ受容体、好酸球、好塩基球、ＩＬ−１３又はＩＬ−４をコードする。核酸配列は、活性タンパク質（例、可溶性ＩｇＥ受容体、好酸球、好塩基球、ＩＬ−１３、ＩＬ−４又はアレルギー反応を阻止する任意の治療遺伝子）及び第２の部分、通常は活性タンパク質の特性（例えば、有効性、溶解性、又は半減期）を改善するタンパク質、で構成される融合タンパク質もコードし得る。第２の部分の例は、当該技術分野で公知であり、例えば、免疫グロブリンのＦｃドメイン及びポリエチレングリコール（ＰＥＧ）が挙げられる。一実施形態においては、プロモーターに作動可能に連結された核酸配列は、抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片のみをコードする。

当業者は、抗体が４つのポリペプチド：重（Ｈ）鎖ポリペプチドの２つの同一コピー及び軽（Ｌ）鎖ポリペプチドの２つのコピー、からなることを理解する。各重鎖は、１つのＮ末側可変（Ｖ_Ｈ）領域及び３つのＣ末側定常（Ｃ_Ｈ１、Ｃ_Ｈ２及びＣ_Ｈ３）領域を含有し、各軽鎖は１つのＮ末側可変（Ｖ_Ｌ）領域及び１つのＣ末側定常（Ｃ_Ｌ）領域を含有する。軽鎖及び重鎖の各対の可変領域は、抗体の抗原結合部位を形成する。本発明のベクターは、それぞれが抗ＩｇＥ抗体の重鎖及び／又は軽鎖ポリペプチドの１以上をコードする、１以上の核酸配列を含み得る。これに関して、本発明のベクターは、抗ＩｇＥ抗体の２つの重鎖ポリペプチド及び２つの軽鎖ポリペプチドをコードする単一の核酸配列を含み得る。或いは、本発明のベクターは、抗ＩｇＥ抗体の両方の重鎖ポリペプチドをコードする第１の核酸配列及び抗ＩｇＥ抗体の両方の軽鎖ポリペプチドをコードする第２の核酸配列を含み得る。更に別の実施形態においては、本発明のベクターは、抗ＩｇＥ抗体の第１の重鎖ポリペプチドをコードする第１の核酸配列、抗ＩｇＥ抗体の第２の重鎖ポリペプチドをコードする第２の核酸配列、抗ＩｇＥ抗体の第１の軽鎖ポリペプチドをコードする第３の核酸配列、及び抗ＩｇＥ抗体の第２の軽鎖ポリペプチドをコードする第４の核酸配列を含み得る。

別の実施形態においては、ベクターは、抗ＩｇＥ抗体の抗原結合断片（「抗体断片」とも呼ばれる）をコードする核酸配列を含み得る。用語「抗原結合断片」は、抗原（例、免疫グロブリンＥ）に特異的に結合する能力を保持する抗体の１以上の断片を指す（一般的に、Ｈｏｌｌｉｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．，２３（９）：１１２６−１１２９（２００５）参照）。抗原結合断片の例としては、（ｉ）Ｖ_Ｌ、Ｖ_Ｈ、Ｃ_Ｌ、及びＣ_Ｈ１ドメインからなる一価断片であるＦａｂ断片；（ｉｉ）ヒンジ領域でジスルフィド架橋によって連結された２つのＦａｂ断片を含む二価断片であるＦ（ａｂ’）_２断片；及び（ｉｉｉ）抗体の単一アームのＶ_Ｌドメイン及びＶ_ＨドメインからなるＦｖ断片が挙げられるが、これらに限定されない。一実施形態においては、ベクターは、抗ＩｇＥ抗体のＦａｂ断片をコードする核酸配列を含み得る。

核酸配列は、当該技術分野で公知の任意の抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片をコードし得る。一実施形態においては、核酸配列は、３つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含む重鎖ポリペプチド（ここでＣＤＲ−Ｈ１は配列番号１の核酸配列を含み、ＣＤＲ−Ｈ２は配列番号２の核酸配列を含み、及びＣＤＲ−Ｈ３は配列番号３の核酸配列を含む）並びに３つのＣＤＲを含む軽鎖ポリペプチド（ここでＣＤＲ−Ｌ１は配列番号４の核酸配列を含み、ＣＤＲ−Ｌ２は配列番号５の核酸配列を含み、及びＣＤＲ−Ｌ３は配列番号６の核酸配列を含む）を含む、抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片をコードし得る。

別の実施形態においては、核酸配列は、配列番号７を含む重鎖可変領域及び配列番号８を含む軽鎖可変領域を含む、抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片をコードし得る。

別の実施形態においては、核酸配列は、配列番号９を含む抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片をコードする。

別の実施形態においては、核酸配列は、高親和性のＩｇＥ結合モノクローナル抗体オマリズマブ（例、米国特許第６，６８２，７３５号参照）若しくはその抗原結合断片、又はオマリズマブと同じエピトープに結合する抗ＩｇＥ抗体又は抗体断片を含む、抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片コードし得る。これに関して、本発明のベクターは、オマリズマブの全長の重鎖及び軽鎖ポリペプチド（例、それぞれ配列番号１０及び配列番号１１）をコードする核酸配列を含み得る。

抗体又はその抗原結合断片は、インビトロのソース（例、ハイブリドーマ又は抗体を組換えで産生する細胞株）及びインビボのソース（例、齧歯類）を含む任意の手段によって得られ得る。抗体を生成するための方法は、当該技術分野で公知であり、例えば、Ｋｏｅｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，５：５１１−５１９（１９７６）；Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ（ｅｄｓ．），Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，ＣＳＨ Ｐｒｅｓｓ（１９８８）；及びＣ．Ａ．Ｊａｎｅｗａｙ ｅｔ ａｌ．（ｅｄｓ．），Ｉｍｍｕｎｏｂｉｏｌｏｇｙ，５ｔｈ Ｅｄ．，Ｇａｒｌａｎｄ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，ＮＹ（２００１））に記載されている。特定の実施形態においては、ヒト抗体又はキメラ抗体は、１以上の内在性免疫グロブリン遺伝子が１以上のヒト免疫グロブリン遺伝子で置換されるトランスジェニック動物（例、マウス）を用いて作製され得る。内在性抗体遺伝子がヒト抗体遺伝子と効果的に置換されるトランスジェニックマウスの例としては、ＨＵＭＡＢ−ＭＯＵＳＥ（商標）、Ｋｉｒｉｎ ＴＣ ＭＯＵＳＥ（商標）、及びＫＭ−ＭＯＵＳＥ（商標）が挙げられるが、これらに限定されない（例、Ｌｏｎｂｅｒｇ，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，２３（９）：１１１７−２５（２００５），及びＬｏｎｂｅｒｇ，Ｈａｎｄｂ．Ｅｘｐ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，１８１：６９−９７（２００８））。

抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片をコードする核酸配列は、当該技術分野で公知の方法を用いて生成され得る。例えば、核酸配列、ポリペプチド及びタンパク質は、標準的な組換えＤＮＡ方法論を用いて組換えにより製造され得る（例、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，３^ｒｄ ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ，２００１；及びＡｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｇｒｅｅｎｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ ａｎｄ Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，ＮＹ，１９９４）。更に、抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片をコードする、合成的に製造された核酸配列は、細菌、昆虫又は哺乳動物（例、ラット、ヒトなど）等のソースから単離及び／又は精製され得る。単離及び精製の方法は当該技術分野において周知である。或いは、本明細書に記載の核酸配列は、商業的に合成され得る。これに関して、該核酸配列は、合成され、組換えられ、単離され及び／又は精製され得る。

ベクターは、抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片、可溶性ＩｇＥ受容体、好酸球、好塩基球、ＩＬ−１３又はＩＬ−４をコードする核酸配列に作動可能に連結されたプロモーターに加えて、宿主細胞において核酸配列の発現をもたらすエンハンサー、ポリアデニル化シグナル、転写ターミネーター、内部リボソーム侵入部位（ＩＲＥＳ）等の更なる発現制御配列を含み得る。例示的な発現制御配列は、当該技術分野で公知であり、例えば、Ｇｏｅｄｄｅｌ，Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ｍｅｔｈｏｄｓ
ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．１８５，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ．（１９９０）に記載されている。

本明細書で使用する場合、用語「エンハンサー」は、例えば、それが作動可能に連結されている核酸配列の転写を増加させるＤＮＡ配列を指す。エンハンサーは、核酸配列のコード領域から数キロ塩基離れて位置し得、調節因子の結合、ＤＮＡメチル化のパターン、
又はＤＮＡ構造の変化を調節し得る。種々の異なるソース由来の多数のエンハンサーが当該技術分野で周知であり、クローニングされたポリヌクレオチドとして又はその内部で（例、ＡＴＣＣ等の寄託機関並びに他の商業的又は個別のソースから）入手可能である。（一般的に用いられるＣＭＶプロモーター等の）プロモーターを含む多くのポリヌクレオチドは、エンハンサー配列も含む。エンハンサーは、コード配列の上流、内部、又は下流に位置し得る。抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片、可溶性ＩｇＥ受容体、好中球、好塩基球、ＩＬ−１３、又はＩＬ−４をコードする核酸配列は、ＣＭＶエンハンサー／ニワトリβアクチンプロモーター（ＣＡＧプロモーターとも呼ばれる）に作動可能に連結され得る（例、Ｎｉｗａ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ，１０８：１９３−１９９（１９９１）；Ｄａｌｙ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，９６：２２９６−２３００（１９９９）；及びＳｏｎｄｈｉ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．，１５：４８１−４９１（２００７）を参照）。

本発明は、上記ベクター及び医薬的に許容可能な（例、生理学的に許容可能な）担体を含むか、それらから実質的になるか、又はそれらからなる、組成物を提供する。組成物が本発明のベクター及び医薬的に許容可能な担体から実質的になる場合、組成物に実質的に影響を与えない追加の成分（例、アジュバント、緩衝剤、安定化剤、抗炎症剤、可溶化剤、防腐剤など）が含められ得る。組成物が本発明のベクター及び医薬的に許容可能な担体からなる場合、組成物は更なる成分を何ら含まない。任意の好適な担体が本発明の文脈内で用いられ得、かかる担体は当該技術分野で周知である。担体の選択は、組成物が投与され得る特定の部位及び組成物を投与するために用いられる特定の方法によって、ある程度決定される。組成物は、必要に応じて、本明細書に記載のベクター以外は滅菌的であり得る。組成物は、保存のために凍結又は凍結乾燥され、使用前に好適な滅菌担体中で再構成され得る。組成物は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：Ｔｈｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｙ，２１ｓｔ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ
Ｗｉｌｌｉａｍｓ ＆ Ｗｉｌｋｉｎｓ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡ（２００１）（例）に記載されている従来技術に従って生成され得る。

組成物に好適な製剤としては、抗酸化剤、緩衝剤、及び静菌剤を含有し得る水性及び非水性溶液、等張滅菌溶液、及び懸濁化剤、可溶化剤、増粘剤、安定剤、及び防腐剤を含み得る水性及び非水性滅菌懸濁液が挙げられる。製剤は、アンプル及びバイアル等の単位用量又は複数用量の密封容器で提供され得、使用直前の滅菌液体担体（例えば、水）の添加のみを必要とする凍結乾燥（ｆｒｅｅｚｅ−ｄｒｉｅｄ）（凍結乾燥（ｌｙｏｐｈｉｌｉｚｅｄ））状態で保存され得る。即時溶液及び懸濁液は、前述の種類の滅菌粉末、顆粒及び錠剤から調製され得る。好ましくは、担体は緩衝生理食塩水溶液である。より好ましくは、本発明のベクターは、投与前に、損傷から本発明のベクターを保護するように製剤化された組成物で投与される。例えば、組成物は、ガラス製品、シリンジ、又は針等の、ベクターを調製、保存、又は投与するために用いられる装置でのベクターの損失を減少させるように製剤化され得る。組成物は、ベクターの光感受性及び／又は温度感受性を低下させるように製剤化され得る。この目的のために、組成物は、好ましくは、例えば上記のもの等の、医薬的に許容可能な液体担体、及びポリソルベート８０、Ｌ−アルギニン、ポリビニルピロリドン、トレハロース及びこれらの組み合わせからなる群より選択される安定化剤を含む。かかる組成物の使用は、ベクターの棚寿命を延長し、投与を容易にし、本発明の方法の効率を増加させる。ベクター含有組成物のための製剤は、例えば、Ｗｒｉｇｈｔ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖ．Ｄｅｖｅｌ．，６（２）：１７４−１７８（２００３）及びＷｒｉｇｈｔ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙ，１２：１７１−１７８（２００５））に更に記載されている。

組成物はまた、形質導入効率を増強するように製剤化され得る。更に、当業者は、本発明のベクターが、他の治療剤又は生物学的活性剤を含む組成物中に存在し得ることを理解
する。例えば、イブプロフェン又はステロイド等の、炎症を制御する因子は、ベクターのインビボ投与に伴う腫脹及び炎症を軽減するための組成物の一部であり得る。抗生物質、即ち殺菌剤及び防カビ剤は、既存の感染症を治療し、及び／又は遺伝子移入手順に関連する感染等の将来の感染リスクを低下させるために、存在し得る。

本発明は、哺乳動物における、アレルゲンに対する免疫応答又はアレルギー反応を阻害又は軽減する方法であって、哺乳動物に本発明のベクターを投与することを含み、そうして核酸が発現し、免疫応答を阻害又は軽減するタンパク質を産生する、方法を提供する。好ましい実施形態においては、哺乳動物はヒトである。

アレルゲンに対する免疫応答又はアレルギー反応の阻害又は軽減は、アレルゲンに対する任意の生理学的応答の任意の程度の改善を包含する。生理学的応答の非限定的な例としては、蕁麻疹、発疹、粘液産生、及びアナフィラキシーが挙げられる。好ましい実施形態においては、該方法によって軽減又は阻害される免疫応答又はアレルギー反応は、アナフィラキシーである。

本発明のアレルゲンは、哺乳動物においてアレルギー反応を引き起こす任意のアレルゲンであり得る。本発明の方法によって治療され得るアレルゲンの非限定的な例としては：

ピーナッツ、堅果（ｔｒｅｅ ｎｕｔ）（ヘーゼルナッツ、アーモンド、カシュー、マカダミア、ピスタチオ、パインナッツ、クルミ、ブラジルナッツ、クリ、ピーカン）、魚／甲殻類（ｃｒｕｓｔａｃｅａｎ）／甲殻類（ｓｈｅｌｌｆｉｓｈ）（シタビラメ、イカ、サバ、タラ（ｃｏｄ ｆｉｓｈ）、ムラサキイガイ、マヒマヒ、キタカワカマス、オヒョウ、マグロ、サバ、サケ、マス、タラ（ｃｏｄ ｆｉｓｈ）、アンチョビ、タラ（ｐｏｌｌｏｃｋ）、ナマズ、レッド・スナッパー、ニシン、ヒラメ、サケ、マス、メカジキ、コクチマス、カキ、ホタテ、イワシ、ザリガニ、コダラ、ティラピア、カニ、エビ、二枚貝、スズキ、タコ）、醤油、乳（ｍｉｌｋ）／乳製品（ｄａｉｒｙ）（ヤギ乳、ウシ乳など）、小麦、グルテン、亜硫酸塩、ゴマ、ニンニク、オート麦、ホエイ、ディル、バジル、タイム、ヤム、セイジ、ライム、クローブ、ミント、蜂蜜、オレガノ、ナツメグ、サトウダイコン、ケシの種子、オリスの根、ショウガ、キュウリ、アスパラガス、クランベリー、ズッキーニ、ラズベリー、アカフサスグリ、ローズマリー、オボアルブミン、チョウセンアザミ、ブラックビーン（ｂｌａｃｋ ｂｅａｎ）、クミン種子、ネクタリン、リンゴ、プラム、バナナ、ターメリック、マンダリン、キノア、カボチャ、ブラックオリーブ、グリーンオリーブ、真菌／カビ（チーズカビ／食品カビ）、オレンジ、トウモロコシ、スイカ、ニンジン、ジャガイモ、ライマメ、ホワイトビーン（ｗｈｉｔｅ ｂｅａｎ）、エンドウ豆、コショウ、ウイキョウ、夏カボチャ、ヒマワリ種、サヤマメ、キャラウェイの種、カルダモンの種、イナゴマメ（ｃａｒｏｂ）（ガム）／イナゴマメ（ｌｏｃｕｓｔ
ｂｅａｎ）、ゼラチン（ブタ、ウシ、魚）、カボチャ種子、亜麻仁（ｆｌａｘｓｅｅｄ）／亜麻仁（ｌｉｎｓｅｅｄ）、コリアンダー／シラントロ、ブラックベリー、アナトー種子、キビ、カリフラワー、菜種油、ヒヨコマメ（ｃｈｉｃｋ ｐｅａ）（ヒヨコマメ（ｇａｒｂａｎｚｏ ｂｅａｎ））、ブドウ、トマト、キウイ、パパイヤ、セロリ、アボカド、ソバ、アルファｇａｌ、コメ、チョコレート、チキン、シチメンチョウ、子羊、白インゲンマメ、ライ麦、大麦、カゼイン、キャベツ、レタス、コショウ、牛肉／肉豚、マンゴー、ナシ、ホウレンソウ、卵白、卵黄、卵全体、パパイヤ、ココナッツ、アンズ、ブルーベリー、ハネデューメロン（ｈｏｎｅｙｄｅｗ）、メロン、カンタロープ、カラシ、茶、バニラ、レモン、ライム、ブロッコリー、シナモン、タマネギ、パイナップル、ニンニク、グレープフルーツ、レンズマメ、麦芽、コーヒー、マッシュルーム、メキシコ唐辛子、ココア、食品添加物（パン酵母、アスコルビン酸、アスパルテーム、硝酸塩、グアール、ＭＳＧ、カラギーナン）等の食物アレルゲン；

βラクタム抗生物質：ペニシリン、アモキシシリン、アンピシリン、ペニシリンＧ、ペニシリンＶなど、セファロスポリン（ｃｅｐｈａｌｏｓｏｐｒｉｎｓ）、モノバクタム、カルバペネム、非βラクタム抗生物質、抗ミコバクテリア薬、糖尿病薬、がん化学療法薬、ＨＩＶ医薬、自己免疫疾患のための免疫調節剤、皮膚疾患修飾薬、周術期使用薬（ｐｅｒｉｏｐｅｒａｔｉｖｅ ａｇｅｎｔ）、アヘン剤、コルチコステロイド、プロタミン、ヘパリン（抗凝固剤）、局所麻酔剤、放射線造影剤、アスピリン及び非ステロイド系抗炎症薬（ＮＳＡＩＤｓ）、アンジオテンシン変換酵素（ＡＣＥ）阻害剤、生物学的修飾剤、サイトカイン、抗ＴＮＦ薬、モノクローナル抗体、抗がんモノクローナル抗体、補完医薬品、抗発作薬等の医薬品；

樹木花粉、ネコ（鱗屑）、イヌ（鱗屑）、モルモット、アヒル羽毛、ニワトリ羽毛、ガチョウ羽毛、馬（髪／鱗屑）、モルモット（上皮）、ブタ（ｐｉｇ）／ブタ（ｓｗｉｎｅ）（上皮）、ヤギ上皮、ハムスター（上皮）、マウス（上皮）、鳥排泄物／糞便、昆虫／毒液（ミツバチ、北米スズメバチ（ｗｈｉｔｅ ｆａｃｅｄ ｈｏｒｎｅｔ）、アシナガバチ（ｐａｐｅｒ ｗａｓｐ）、イエローフェイストホーネット（ｙｅｌｌｏｗ−ｆａｃｅｄ ｈｏｒｎｅｔ）、スズメバチ（ｙｅｌｌｏｗ ｊａｃｋｅｔ）、ヒアリ、アリなど）、カビ／真菌、イエダニ、ハウスダスト、ラテックス、草、ダニ、草木（ｗｅｅｄｓ ｔｒｅｅｓ）、ゴキブリ等の環境アレルゲン；及び

精液（ｓｅｍｅｎ）／精液（ｓｅｍｉｎａｌ ｆｌｕｉｄ）、血液及び血液製剤等の他の一般的なアレルゲンが挙げられる。

好ましくは、アレルゲンは、食物アレルゲン（例、エビ又はシーフード、ピーナッツ、又は堅果）、花粉、イエダニ、又はハチ刺毒等の昆虫毒である。

哺乳動物に組成物を送達するために、任意の投与経路が用いられ得る。実際、組成物を投与するために１超の経路が用いられ得るが、特定の経路は、別の経路よりもより即座且つより効果的な反応を提供し得る。好ましくは、組成物は、筋肉内注射によって投与される。ある用量の組成物は、また、体腔に塗布若しくは注入され、皮膚を介して（例、経皮パッチを介して）吸収され、吸入され、摂取され、組織に局所適用され、又は例えば、静脈内、腹腔内、口腔内、皮内、皮下若しくは動脈内投与により、非経口的に投与され得る。

組成物は、スポンジ、生体適合性網状組織、機械的リザーバ、又は機械的インプラント等の制御性放出又は持続的放出を可能にするデバイス中、又はデバイス上で（ｉｎ ｏｒ
ｏｎ）投与することができる。インプラント（例、米国特許第５，４４３，５０５号参照）、移植可能なデバイス（例、機械的リザーバ若しくはインプラント又はポリマー組成物を含む装置）等のデバイス（例、米国特許第４，８６３，４５７号参照）は、ＡＡＶベクターの投与に特に有用である。組成物はまた、例えばゲルフォーム、ヒアルロン酸、ゼラチン、コンドロイチン硫酸、ビス−２−ヒドロキシエチル−テレフタレート（ＢＨＥＴ）、及び／又はポリ乳酸−グリコール酸等のポリリン酸エステルを含む持続放出製剤（例、米国特許第５，３７８，４７５号参照）の形態で投与され得る。

哺乳動物に投与される組成物中のベクターの用量は、哺乳動物のサイズ（質量）、任意の副作用の程度、特定の投与経路等を含む多くの要因に依存する。好ましくは、本発明の方法は、本明細書に記載の本発明のベクターを含む組成物の「治療有効量」を投与することを含む。「治療有効量」は、所望の治療結果を達成するのに必要な用量及び期間で有効な量を指す。治療有効量は、アレルゲン感受性の程度、個体の年齢、性別、及び体重、並びに個体において所望の応答を誘発するベクターの能力等の要因によって変動し得る。

別の実施形態においては、本発明の方法は、本発明のベクターを含む組成物の「予防有効量」を投与することを含み得る。「予防有効量」は、所望の予防結果（例、免疫応答又はアレルギー反応の予防）を達成するのに必要な用量及び期間で有効な量を指す。予防的投与が必要な被験体は、当該技術分野で公知の通常のアレルギー試験によって容易に決定され得る。更に、アレルギー反応の既往歴がある被験体は、将来のアレルギー反応に対して予防的に処置され得る。

抗ＩｇＥ抗体（又は可溶性ＩｇＥ受容体、好酸球、好塩基球、ＩＬ−１３、又はＩＬ−４）をコードするベクターは、治療又は予防処置期間中に複数回投与され得、及び／又は、細胞の組成物への十分な曝露を確実にするために、複数の投与経路（例、筋肉内及び皮下）を用い得る。例えば、組成物は、治療又は予防処置期間中、哺乳動物に２回以上（例、２、３、４、５、６、６、８、９又は１０回以上）投与され得る。しかし、本発明の好ましい態様によれば、本明細書に記載のベクター（又はベクターを含む組成物）の単回投与は、治療なしの場合の免疫応答又はアレルギー反応と比較して、最小限の副作用で、アレルゲンに対する免疫応答又はアレルギー反応を阻害又は軽減するのに十分な、哺乳動物における治療又は予防のレベルで、抗ＩｇＥ抗体（又は可溶性ＩｇＥ受容体、好酸球、好塩基球、ＩＬ−１３、又はＩＬ−４）の長期発現を提供するのに十分である。いくつかの実施形態においては、発現レベルは、処置の間で、アレルゲンに対する複数回の曝露（例、２回以上、３回以上、５回以上、又は実に１０回以上のアレルゲンへの曝露）に対する免疫応答又はアレルギー反応を阻害又は軽減するのに十分である。好ましくは、治療レベルは、哺乳動物において、ベクター又はそれを含む組成物の投与後、約３０日以上（例、約４５日以上、約６０日以上、約７５日以上、約９０日又はそれ以上、約４ヶ月以上、約６ヶ月以上、約１０ヶ月以上、又は実に約１２ヶ月以上）の間発現する。従って、いくつかの実施形態においては、該方法は、ベクターを、哺乳動物に、約３０日以内に１回以下、約４５日以内に１回以下、約６０日以内に１回以下、約７５日以内に１回以下、又は実に約９０日以内に１回以下（例、約４ヶ月、約５ヶ月、約６ヶ月、約１０ヶ月、又は約１２ヶ月以内に１回以下）投与することを含む。

特定の治療効果又は予防効果（即ち、アレルギー反応の軽減又は阻害）を達成するために必要な、組成物中のベクターの用量は、典型的には、細胞あたりのベクターゲノムコピー（ｇｃ／細胞）又は体重のキログラムあたりのベクターゲノムコピー（ｇｃ／ｋｇ）の単位で投与される。当業者は、当該技術分野で周知のこれら及び他の要因に基づいて、特定の免疫応答を有する患者を治療するための、適切なベクター用量範囲を容易に決定し得る。

本発明は、免疫不全マウスに、アレルギーに罹患するヒト被験体由来の末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を送達することを含む、アレルギーの組換えヒト化マウスモデルを提供する方法も提供する。好ましい実施形態においては、血液単核細胞は、アナフィラキシーの臨床歴を有する、任意のアレルギーに罹患するヒト被験体由来である。アレルギーは、本明細書においてさきに開示された通りの任意のアレルゲン、好ましくは食物アレルゲン、花粉、イエダニ、昆虫毒、ピーナッツ、堅果（ｔｒｅｅ ｎｕｔ）、又はハチ刺毒であり得る。より好ましい実施形態においては、ヒト被験体は、アナフィラキシーの臨床歴を有し、ピーナッツアレルギーに罹患している。ＰＢＭＣ細胞は、注射（例、腹腔内又は静脈内注射）等の任意の好適な方法によって、免疫不全マウスに送達され得る。ＰＢＭＣは、必要に応じて、関連する抗原と共にマウスに供投与され得る。関連する態様においては、本発明はまた、アレルギーのモデルとして使用するのに好適なヒト化免疫不全マウスであって、アレルゲンに対するアレルギーに罹患するヒト被験体由来のＰＢＭＣを含み、且つ、アレルゲンに曝露された場合、免疫応答又はアレルギー反応を示す、マウスを提供する。ＰＢＭＣは、食物アレルゲン、花粉、イエダニ、昆虫毒、ピーナッツ、堅果、又はハチ刺毒等の、本明細書においてさきに開示された通りの任意のアレルゲンに対するアレルギー
に罹患するヒト被験体由来であり得る。好ましい実施形態においては、ＰＢＭＣは、ピーナッツアレルギー及びアナフィラキシーの臨床歴を有するヒト被験体由来である。

以下の実施例は、本発明を更に説明するが、当然に、決してその範囲を限定するものと解釈されるべきではない。

実施例１
本実施例は、ピーナッツアレルギーの組換えヒト化マウスモデルの作出を実例で示す。

ピーナッツに対するアレルギーに罹患するドナー又は非アレルギー性の健常なコントロール被験体のドナーから、ヘパリン化血液を得た。ドナーの血清中のアレルゲン特異的ＩｇＥの検出により（ＩｍｍｕｎｏＣＡＰ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ＩｇＥ ｂｌｏｏｄ ｔｅｓｔ；Ｐｈａｄｉａ ＡＢ，Ｕｐｐｓａｌａ，Ｓｗｅｄｅｎ）、特異的感作を確認した。Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ密度遠心分離（Ｆｉｃｏｌｌ（登録商標）Ｐａｑｕｅ Ｐｌｕｓ，Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｓｔ Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を用いることにより、ヘパリン化血液から血液単核細胞を単離した。ヒト細胞を用いる再構成の前に、マウス血清中に検出可能なヒトＩｇＧが存在しないことを、ＥＬＩＳＡによって検査した。

Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ法により単離した細胞を、６〜８週齢のＮＯＤ−ｓｃｉｄ ＩＬ＠Ｒｇａｍｍａ^ｎｕｌｌ（ＮＳＧ）マウスに投与した。各動物は、全体積２００μｌ（２か所の別々の注射部位に（１００μｌずつ）分割）の０．９％塩化ナトリウム中の１００μｇ粗ピーナッツと混合した、ＲＰＭＩ（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｓｔ Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）中の３×１０^７個の血液単核細胞を腹腔内に受容した。

２５ｇの粉砕ピーナッツを２５０ｍｌの２０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ７．２）と混合することにより、焙煎した無塩ピーナッツ（アラキス・ヒポゲア（Ａｒａｃｈｉｓ ｈｙｐｏｇａｅａ）；Ｈａｍｐｔｏｎ Ｆａｒｍｓ；Ｓｅｖｅｒｎ，ＮＣ）からのタンパク質抽出物を、マウスへの投与の日と同日に作製した。２３℃、２時間後、水性画分を収集し、続いて遠心分離して、残留した微量の脂肪及び不溶性粒子を除去した。基準としてウシ血清アルブミンを用いたＢｒａｄｆｏｒｄ分析により、タンパク質濃度を測定した。

腹腔内注射を介して、マウスを、１００μｇのピーナッツ粗抽出物で０〜４週目に週１回感作した。次いで、５〜１０週目に、湾曲した２０ゲージの針（図１Ａ）を用いて、３００μｇのピーナッツ粗抽出物を用いて胃内強制投与（ｉｎｔｒａｇａｓｔｒｉｃ ｇａｖａｇｅ）によりマウスにチャレンジし、アレルギー反応の徴候について、処置後最大４時間観察した。胃粘膜を介するピーナッツ抗原の吸収を最大にするために、すべてのマウスを、ピーナッツチャレンジの前に８時間絶食させた。マウスを、総ヒトＩｇＧ（図１Ｂ）、総ヒトＩｇＥ（図１Ｃ）、総マウスＩｇＥ、ピーナッツ特異的（ＰＮ特異的）ヒトＩｇＥ（図１Ｄ）、アナフィラキシー症状（図１Ｅ）、アナフィラキシースコア（図１Ｆ）、血漿ヒスタミン（図１Ｇ）及び受動性皮膚アナフィラキシー（図１Ｈ）について評価した。

結果は、ピーナッツアレルギー有り又は無しのドナーの単核細胞で再構成されたマウスは、再構成後にヒトＩｇＧのレベルが上昇したことを示している（図１Ｂ）。対照的に、ピーナッツ感作後、ピーナッツアレルギー被験体由来の単核細胞で再構成されたマウスのみで、総ヒトＩｇＥ及びピーナッツ特異的ＩｇＥが発現した（図１Ｃ及び１Ｄ）。重要なことに、ピーナッツアレルギードナー由来の血液単核細胞で再構成されたマウスは、アレルギー反応に関連する臨床表現型を示した。マウスは、アナフィラキシースコア２±１（図１Ｆ）で目及び鼻の周囲の腫れ、毛の逆立ち、毛皮の掻痒／波立ち、歩行及び呼吸速度
の減少を示した（図１Ｅ）。これらの臨床的特徴は、非アレルギー性個体由来の血液単核細胞を受容した動物では観察されなかった。ピーナッツアレルギードナー由来の血液単核細胞で再構成し、次いでピーナッツ粗抽出物でチャレンジしたマウスにおけるヒスタミンレベルは、非ピーナッツアレルギー性非アトピー性ドナー由来の血液単核細胞で再構成したマウスと比較すると、ピーナッツチャレンジ後、ヒスタミンのレベル上昇を示した（図１Ｇ）。

まとめると、これらの研究からの結果は、ピーナッツアレルギードナー由来の血液単核細胞で再構成されたマウスは、アレルギー応答に関連する表現型を示したが、非アレルギー性ドナー由来の血液単核細胞を受容した動物においては、これらの特性は観察されなかった。

再構成されたＮＯＤ−ｓｃｉｄ ＩＬ２Ｒｇａｍｍａ^ｎｕｌｌマウスにおけるピーナッツ誘発性アナフィラキシーが、ヒトＩｇＥによって媒介されることを実証するために、再構成マウスのサブセットを２５０μｇ（他のネズミの研究で用いられている、体重当たりベースに基づく投与量）のオマリズマブ（Ｘｏｌａｉｒ（登録商標）；Ｎｏｖａｒｔｉｓ，Ｈｕｎｉｎｇｕｅ，Ｆｒａｎｃｅ）で１回処置した。マウスを、ＩｇＥに関して、治療前及び治療１週間後に、及びアナフィラキシー徴候及び受動皮膚アナフィラキシーについてのマウスの身体的評価に関して、治療２週間後に評価した。

結果は、アナフィラキシー症状の最初の徴候の後にオマリズマブで処置したマウスは、オマリズマブ投与の１週間後に、遊離ＩｇＥレベルが、治療１週間前のレベルと比較して有意に低かった（ｐ＜０．００１）ことを示す（図２Ａ）。オマリズマブマウスは、ピーナッツチャレンジ後正常に見えた（オマリズマブ治療の２週間後（図２Ｂを図１Ｅと比較））。最終的に、オマリズマブは、色素溢出を誘発しなかった非ピーナッツアレルギードナー由来の血清で観察された結果と同様に、ピーナッツ誘発ピーナッツ特異的ＩｇＥ介在性受動皮膚アナフィラキシーを阻止した（図２Ｃ）。

まとめると、実施例１の結果は、ピーナッツアレルギーのマウスモデルの作出を裏付ける。

実施例２
本実施例は、抗ｈＩｇＥ抗体をコードする核酸配列に作動可能に連結されたプロモーターを含むＡＡＶベクターの設計及び発現を実例で示す。

発現カセットは、抗ｈＩｇＥモノクローナル重鎖及び軽鎖ｃＤＮＡ配列及びウサギβグロビンポリアデニル化シグナルに作動可能に連結された、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）エンハンサー及びニワトリβアクチンプロモーター（ＣＡＧプロモーター）からなる。ヒト化抗ＩｇＥ抗体の配列番号１０及び１１由来の全長重鎖及び軽鎖アミノ酸配列を、ヒトの好ましいコドンを用いて逆翻訳し、配列を、ｍＲＮＡ安定性及びタンパク質発現の改善のために最適化した。重鎖及び軽鎖に、それぞれ、Ｉｇ重鎖分泌シグナル及びＩｇκ分泌シグナルを付加した。フリン切断認識部位（ＲＫＲＲ）の下流のゾーシー・アシグナウイルス（Ｔｈｏｓｅａ ａｓｉｇｎａ ｖｉｒｕｓ）（Ｔａｖ）２Ａ切断可能配列を用いることにより、重鎖及び軽鎖を同じオープンリーディングフレームにクローニングした。両抗体鎖は、同じオープンリーディングフレームから、等モル比で発現した（図３Ａ）。

最適化した全長抗ｈＩｇＥ ｃＤＮＡ配列を合成し、ＣＡＧプロモーターの制御下、ｐＡＡＶプラスミドにクローニングした。ＡＡＶａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクターは、ベクター複製に必要な、ＡＡＶ２由来のＡＡＶ Ｒｅｐタンパク質、生成されたＡＡＶベクターの血清型を規定するＡＡＶｒｈ．１０ウイルス構造（キャップ）タンパク質ＶＰ１、２及び
３；並びにＥ２、Ｅ４及びＶＡ ＲＮＡのアデノウィルスヘルパー機能を有するプラスミドと共に、ｐＡＡＶプラスミドのヒト胎児腎臓２９３Ｔ細胞（ＨＥＫ ２９３Ｔ；アメリカンタイプカルチャーコレクション）への共トランスフェクションにより製造した。ＡＡＶａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクター（「ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ」と呼ばれる）は、イオジキサノール勾配及びＱＨＰ陰イオン交換クロマトグラフィーによって精製した。ベクターゲノム力価は、定量的ＴａｑＭａｎリアルタイムＰＣＲ解析によって決定した。インビボ研究のためのコントロールとして、関係性の無い、ニコチンに対する抗体、ＡＡＶａｎｔｉＮｉｃ（「ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌ」と呼ばれる）をコードするベクターを用いた。

ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥによるモノクローナル抗体の発現をインビトロで評価するために、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥプラスミド又は関係性の無いヒト抗体コントロールをコードするＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌプラスミドでトランスフェクションし、上清を７２時間後に回収した。上清中の抗ｈＩｇＥ抗体の発現を、クマシーブルー染色ＳＤＳ−ＰＡＧＥ並びにペルオキシダーゼ結合抗ヒトκ軽鎖ヤギ抗体及びペルオキシダーゼ結合抗ヒトＩｇＧヤギ抗体及び増強化学発光基質（Ｂｉｏ−Ｒａｄ，Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）によるウエスタン解析によって評価した。図３Ｂに示す通り、抗ＩｇＥ抗体の重鎖及び軽鎖の両方が、細胞培養上清中に検出された。

インビボ試験のために、６〜８週齢の、雌性ＮＯＤ−ｓｃｉｄ ＩＬ２Ｒｇａｍｍａ^ｎｕｌｌ（ＮＳＧ）マウス又は雌性Ｂａｌｂ／Ｃマウスに、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクター、ＡＡＶ９ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクター、ＡＡＶ８ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクター、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｎｉｃｏｔｉｎｅベクター（コントロール）、又はＡＡＶｒｈ．１０ｃｏｎｔｒｏｌベクターを、１０^１１ゲノムコピー（ｇｃ）で、１００μｌの容量で、静脈内注射による１回投与を受容させた。

尾静脈からの血液（１００μｌ）を、時間０及び様々な時点で、２４週まで評価した。血液サンプルを、２３℃で１時間、その後４℃で３０分凝固させ、次いで１８００ｇで２０分間スピンして血清を回収した。次いで、抗ＩｇＥ抗体の濃度を、ＥＬＩＳＡによって決定した。平底９６ウェルＥＩＡ／ＲＩＡプレート（Ｃｏｒｎｉｎｇ，Ｃｏｒｎｉｎｇ，ＮＹ）のウェルを、１００μｌの炭酸緩衝液（ｐＨ９．６）中０．２μｇのヒトＩｇＥで、４℃で一晩コーティングし、次いでＰＢＳ中０．０５％Ｔｗｅｅｎ ２０（ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ）で洗浄し、ＰＢＳ中５％乾燥ミルクで、２３℃で６０分間、ブロッキングした。ウェルに血清の連続希釈液を加え、２３℃で６０分間インキュベーションした。プレートをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで３回洗浄し、１００μｌの、セイヨウワサビペルオキシダーゼに結合したマウス抗ヒトＩｇＧ（Ａｂｃａｍ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＭＡ）（１：２０００希釈）を、ＰＢＳ中１％乾燥ミルク中で、２３℃で６０分間インキュベーションした。４回の洗浄ステップの後、ペルオキシダーゼ基質（１００μｌ／ウェル；Ｂｉｏ−Ｒａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）を各ウェルに加え、２３℃で１５分間インキュベーションし、２％シュウ酸（１００μｌ／ウェル）を加えて反応を停止させた。吸光度は４１５ｎｍで測定した。抗ｈＩｇＥ抗体力価は、バックグラウンドの吸光度の２倍に等しいカットオフ値を用い、ｌｏｇ（ＯＤ）−ｌｏｇ（希釈）を補間することにより算出し、オマリズマブ抗体（Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ，Ｓａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ，ＣＡ）による標準曲線に基づいてμｇ／ｍｌに変換し、Ｐｉｅｒｃｅ（商標）ＢＣＡ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ
Ｋｉｔ （Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ）により定量した。図３Ｃに示す通り、２００μｇ／ｍｌを超えるレベルでのヒト抗ＩｇＥの発現が、実験期間（４４週）で実証されたが、コントロール処置動物からは、ヒト抗ＩｇＥは検出されなかった。図３Ｄ〜３Ｅに示す通り、ヒト抗ＩｇＥの発現は、ＡＡＶ抗ＩｇＥベクターのそれぞれについて実証されたが、コントロール処置動物からは、ヒト抗Ｉ
ｇＥは検出されなかった。

これらのデータは、ＡＡＶ−ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ抗体発現カセットが、１回の投与から、高レベルの特異的な長期抗ＩｇＥ抗体発現をもたらし得ることを示す。

実施例３
本実施例は、アレルゲンに対するアレルギー反応を軽減するための、ＡＡＶ−抗−ｈＩｇＥベクターによる予防療法を実例で示す。

ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥでの前処置が、ピーナッツアレルギーマウスを防護するか否かを試験するために、ＮＯＤ−ｓｃｉｄ ＩＬ２Ｒγ^ｎｕｌｌマウス（６〜８週齢）を、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ（１０^１１）又はＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌ（１０^１１）で−３週目に処置し、次いで、０週目に血液単核細胞で再構成した。続いて、マウスにピーナッツ抽出物でチャレンジした（図４Ａ）。ベクター注射後２週目から、抗ｈＩｇＥ抗体レベルを２週間毎に評価した。マウスを感作し、０〜４週目及び５〜８週目にそれぞれピーナッツ粗抽出物でチャレンジした。ヒトＩｇＧレベルを、２週目、４週目及び８週目で評価した。ヒトＩｇＥ及びピーナッツ特異的ＩｇＥを４週目に評価した。遊離ＩｇＥレベルを４週目に評価した。アナフィラキシースコアは、各ピーナッツチャレンジ後３０分で評価し、自発運動は６週目で、ヒスタミンレベルは７週目、且つ受動性皮膚アナフィラキシーは７．５週目に評価した。

血液単核細胞の移入及びピーナッツ抽出物による感作後、総ヒトＩｇＥ、ピーナッツ特異的ＩｇＥ及び遊離ＩｇＥレベルが誘導された（図４Ｂ〜Ｄ）。ＩｇＥ応答は、ピーナッツアレルギードナー由来の血液単核細胞で再構成されたＮＳＧマウスに、特異的なアレルゲンを投与した場合にのみ現れた。ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ＩｇＥで処置したマウスは、ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌで処置したマウスと比較すると、２８日目以降、総ＩｇＥ及びピーナッツ特異的ＩｇＥのレベルが有意に低かった（ｐ＜０．００２）。重要なことに、遊離ＩｇＥレベルは、ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌ処置マウスと比較して、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ処置マウスにおいて有意に低かった（ｐ＜０．０１；図４Ｄ）。アナフィラキシー反応は、ピーナッツ抽出物を用いて胃内にチャレンジした３０分後に評価した。驚くべきことに、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥで処置したマウスは、コントロールベクターを受容したものと比較して、臨床表現型、歩行抑制、より低いアナフィラキシースコア、ヒスタミン放出減少、及びＰＣＡ低下によって明らかにされた通り、はるかに重篤度が低いアレルギー表現型を示した。（図５Ａ〜５Ｄ）。

これらのデータは、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥベクターの１回の予防的処置が、免疫応答又はアレルギー反応を軽減又は阻害し得ることを実証する。

実施例４
この実施例は、抗原への曝露後のベクター投与の有効性を実証する。

抗ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥによる処置が、マウスがピーナッツ抽出物で感作され、ピーナッツ抽出物誘発アレルギー反応を示した後、該ピーナッツアレルギーマウスを防護し得るか否かを決定するために、ＮＯＤ−ｓｃｉｄ ＩＬ２Ｒｇａｍｍａ^ｎｕｌｌマウスを、０週目に血液単核細胞で再構成し、次いで、それぞれ０〜４週目及び５〜１０週目に、ピーナッツ粗抽出物で感作及びチャレンジした。ピーナッツチャレンジ（５週目）に関連するアナフィラキシーの最初の徴候の後、２００μｌの０．９％ＮａＣｌ中のＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ、ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧ ｃｏｎｔｒｏｌ又は２５０μｇのヒト化抗ＩｇＥ ｍＡｂのオマリズマブをマウスに投与した。抗ｈＩｇＥ抗体
レベルを固定間隔（２週間）で評価した（図６Ａ）。ヒトＩｇＧレベルを２、４及び８週目に評価した。ヒトＩｇＥを４週目及び６週目に、遊離ＩｇＥレベルを４週目及び６週目に、そしてピーナッツ特異的ＩｇＥを４週目に評価した。７週目及び１０週目の各ピーナッツチャレンジの３０分後に、アナフィラキシースコア及び臨床スコアを評価した。自発運動は、７及び１０週目に、ヒスタミンレベルは６及び９週目に、そして受動皮膚アナフィラキシーは７及び１０週目に評価した。

ＩｇＥ応答は、血液単核細胞の移入及びピーナッツ抽出物による感作の後、ピーナッツアレルギードナー由来の血液単核細胞で再構成されたＮＳＧマウスの群に特異的アレルゲンを注射した場合にのみ現れ、ピーナッツチャレンジ後持続した（図６Ｂ）。全てのマウスは、治療の１週間前、４週目にピーナッツ感作を完了した後、ピーナッツ特異的ＩｇＥを有するようになった（図６Ｃ）。ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ＩｇＥ処置マウスの遊離ＩｇＥレベルは、ＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌ処置マウスと比較して、治療後１週間に有意に減少（６週目；ｐ＜０．０１）した（図６Ｄ）。ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥで治療した５週間後の１０週目において、ピーナッツアレルギーマウスには臨床的徴候がなかったが、オマリズマブで処置したピーナッツアレルギーマウスは、目及び鼻の周囲の腫れ、毛の逆立ち、毛皮の掻痒及び波立ちがあった（図７Ａ）。治療２週間後の７週目では、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ及びオマリズマブ処置マウスの両方が、コントロールより歩行運動性が顕著に高かった（図７Ｂ、左）が、治療５週後の１０週目では、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥマウスが、オマリズマブ処置マウスよりも、歩行運動性が顕著に高かった（図７Ｂ右；１０週目までに、全てのコントロールマウスが死亡した）。臨床表現型及び歩行運動データと整合して、７週目（治療後２週間）のアナフィラキシースコアは、コントロールと比較して、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ及びオマリズマブの処置マウス両方について有意に低かったが、１０週目（治療後５週間）では、ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥ治療のみが有効であり続けた（７週目で、オマリズマブマウスはコントロールマウスと同様であった（１０週目までに全てのコントロールマウスが死亡した；図７Ｃ））。血漿ヒスタミンレベル（図７Ｄ）及び受動皮膚アナフィラキシー（図７Ｅ）についても同様の観察がなされた。

生存解析は最も驚くべき観察であった。ＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥを受容したマウスのみが、治療後４０日にわたって、死亡から防護された（図８）。オマリズマブ処置マウスの７０％（７／１０）が死亡し、８９％（８／９）のＡＡＶｒｈ．１０ＩｇＧｃｏｎｔｒｏｌマウスが死亡した一方、９０％のＡＡＶｒｈ．１０ａｎｔｉ−ｈＩｇＥマウス（９／１０）は治療後最大４０日生存した（最後の時点で評価）。アレルギー性ドナー、また非アレルギー性ドナーの両方由来の単核細胞での再構成の６〜７週間後、異種移植片対宿主病（ＧＶＨＤ）と整合して、ヒト化マウスの肺及び小腸の両方において、マウス中に炎症性及び免疫性の浸潤物が見られた（表Ｉ）。肺ＧＶＨＤの診断特徴、即ちリンパ組織球性、形質細胞性及び好中球性の血管周囲炎（ｐｅｒｉｖａｓｃｕｌｉｔｉｔｓ）及び細気管支周囲炎、びまん性間質性好中球増加症及び多巣性細気管支上皮内好酸球含有物（ｍｕｌｔｉｆｏｃａｌ ｂｒｏｎｃｈｉｏｌａｒ ｉｎｔｒａｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ
ｅｏｓｉｎｏｐｈｉｌｉｃ ｉｎｃｌｕｓｉｏｎ）が肺組織に見られた。小腸組織は、ＧＶＨＤと一致する組織学的特徴、即ち、好酸球、好中球及びリンパ球の浸潤を示した。

刊行物、特許出願及び特許を含む、本明細書中に引用した全ての参考文献は、それぞれの参考文献が参照によって組み込まれることが個々に且つ具体的に示されているのと同程度及びその全体が本明細書中に記載されているのと同程度まで、参照によって本明細書中に組み込まれる。

本発明の説明に関して（特に、以下の特許請求の範囲に関して）、用語「ａ」及び「ａｎ」及び「ｔｈｅ」及び「少なくとも１の」並びに同様の指示対象の使用は、本明細書中
に特記しないか文脈と明らかに矛盾しない限り、単数形及び複数形の両方をカバーすると解釈すべきである。１以上の事項の列記の後での用語「少なくとも１の」の使用（例えば、「Ａ及びＢのうち少なくとも１の」）は、本明細書中に特記しない又は文脈と明らかに矛盾しない限り、列記した事項から選択された１の事項（Ａ若しくはＢ）又は列記した事項のうち２以上の任意の組み合わせ（Ａ及びＢ）を意味すると解釈されるべきである。用語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「有する（ｈａｖｉｎｇ）」、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」及び「含有する（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」は、特記しない限り、オープンエンドの用語（即ち、「〜を含むがそれらに限定されない」を意味する）と解釈すべきである。本明細書中の値の範囲の記述は、本明細書中に特記しない限り、その範囲内に入る各個別の値に個々に言及する省略方法として働くことのみを意図しており、各個別の値は、それが本明細書中に個々に記述されているかのように本明細書中に組み込まれる。本明細書中に記載される全ての方法は、本明細書中に特記しない又は文脈と明らかに矛盾しない限り、任意の好適な順序で実施できる。本明細書中に提供される任意の及び全ての例又は例示的語句（例、「等（ｓｕｃｈ ａｓ）」）の使用は、本発明をよりよく説明することのみを意図しており、特段特許請求されない限り、本発明の範囲に限定を課すものではない。本明細書中の全ての語句は、特許請求されていない任意の要素を本発明の実施に必須のものとして示していると解釈すべきではない。

発明を実施するための、発明者が知る最良の形態を含む、本発明の好ましい実施形態が本明細書中に記載されている。これらの好ましい実施形態のバリエーションは、上述の説明を読めば当業者に明らかとなり得る。本発明者らは、当業者がかかるバリエーションを適宜使用することを予期しており、本発明者らは、本明細書中に具体的に記載されたのとは異なる方法で本発明が実施されることを意図している。従って、本発明は、適用法によって許容される通り、本明細書中に添付した特許請求の範囲に記載される主題の全ての改変及び均等物を含む。更に、その全ての可能なバリエーションでの上記要素の任意の組合せが、本明細書中に特記しない限り又は文脈と明らかに矛盾しない限り、本発明によって包含される。

Claims (26)

1. 抗ＩｇＥ抗体若しくはその抗原結合断片をコードするか、又は可溶性ＩｇＥ受容体、好酸球、好塩基球、ＩＬ−１３若しくはＩＬ−４をコードする核酸配列に、作動可能に連結されたプロモーターを含むベクター。
2. ベクターが、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）、アデノウイルス、レンチウイルス、レトロウイルス及びプラスミドからなる群から選択される、請求項１のベクター。
3. ベクターがＡＡＶベクターである、請求項２のベクター。
4. ＡＡＶベクターが非ヒトアデノ随伴ウイルスである、請求項３のベクター。
5. 非ヒトアデノ随伴ウイルスがアカゲザルアデノ随伴ウイルスである、請求項４のベクター。
6. アカゲザルアデノ随伴ウイルスがアデノ随伴ウイルス血清型ｒｈ．１０である、請求項５のベクター。
7. プロモーターが構成的に活性なプロモーターである、請求項１のベクター。
8. プロモーターが細胞種特異的プロモーターである、請求項１のベクター。
9. プロモーターが誘導性プロモーターである、請求項１のベクター。
10. 構成的に活性なプロモーターがニワトリベータアクチンプロモーターである、請求項７のベクター。
11. 核酸配列が、抗ＩｇＥ抗体又はその抗原結合断片をコードし、抗体又はその抗原結合断片が、３つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含む重鎖ポリペプチドであって、ここでＣＤＲ−Ｈ１は配列番号１の核酸配列を含み、ＣＤＲ−Ｈ２は配列番号２の核酸配列を含み、及びＣＤＲ−Ｈ３は配列番号３の核酸配列を含む、重鎖ポリペプチド；並びに
    ３つのＣＤＲを含む軽鎖ポリペプチドであって、ここでＣＤＲ−Ｌ１は配列番号４の核酸配列を含み、ＣＤＲ−Ｌ２は配列番号５の核酸配列を含み、ＣＤＲ−Ｌ３は配列番号６の核酸配列を含む、軽鎖ポリペプチド、
    を含む、請求項１のベクター。
12. 抗ＩｇＥ抗体が、配列番号７を含む重鎖可変領域及び配列番号８を含む軽鎖可変領域を含む、請求項１１のベクター。
13. ベクターが配列番号９の核酸配列を含む、請求項１のベクター。
14. ベクターが、オマリズマブをコードする核酸配列を含む、請求項１のベクター。
15. 核酸配列が、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、ｄＡｂ及び一本鎖結合ポリペプチドからなる群から選択される抗ＩｇＥ抗体断片をコードする、請求項１のベクター。
16. 請求項１〜１５のいずれか１項のベクター及び医薬的に許容可能な担体を含む、組成物。
17. 哺乳動物における、アレルゲンに対する免疫応答又はアレルギー反応を阻害又は軽減する方法であって、哺乳動物に請求項１〜１５のいずれかのベクターを投与することを含み、そうして核酸が発現し、アレルゲンに対する免疫応答又はアレルギー反応が抑制又は軽減される、方法。
18. 組成物が、約３０日以内に１回以下で哺乳動物に投与される、請求項１７の方法。
19. 組成物の投与後、哺乳動物で、治療レベル又は予防レベルの、抗ＩｇＥ抗体若しくはその抗原結合断片、又は可溶性ＩｇＥ受容体、好酸球、好塩基球、ＩＬ−１３、若しくはＩＬ−４が、約３０日間以上発現する、請求項１８の方法。
20. 組成物が、予防的に哺乳動物に投与される、請求項１７〜１９のいずれか１項の方法。
21. アレルゲンが、食物アレルゲン、花粉、イエダニ、昆虫毒、ハチ刺毒、ピーナッツ、及び堅果からなる群から選択される、請求項１７〜２０のいずれか１項の方法。
22. アレルギー反応がアナフィラキシーである、請求項１７〜２０のいずれか１項の方法。
23. 哺乳動物がヒトである、請求項１７〜２２のいずれか１項の方法。
24. 組成物が、口腔内、筋肉内、経皮、静脈内、動脈内、皮下、皮内、及び腹腔内からなる群から選択される投与経路によって哺乳動物に投与される、請求項１７〜２３のいずれか１項の方法。
25. アレルギーの組換えヒト化マウスモデルを提供する方法であって、免疫不全マウスに、アレルギーとアナフィラキシーの臨床歴とを有するヒト被験体由来の末梢血単核細胞を送達することを含む、方法。
26. 末梢血単核細胞が、ピーナッツアレルギー及びアナフィラキシーの臨床病歴を有するヒト被験体由来である、請求項２５のヒト化マウスモデル。
    

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