JP2020509773A - 免疫調節性細胞回路 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、参照によってその全体が本明細書中に組み入れられる2017年3月17日に出願された米国仮出願番号62/473,198に基づく35 U.S.C.§119(e)による恩典を主張するものである。
免疫系は、宿主防御系として疾患を防ぐ。免疫系は、自然免疫系および適応免疫系、または体液性免疫および細胞性免疫のようなサブシステムに分類される。ヒトにおいては、血液脳関門、血液脳脊髄液関門、および類似した体液脳関門が、脳を保護する神経免疫系から末梢免疫系を分離している。免疫系は、増加する特異性を有する層状の防御によって、生物を感染から保護する。例えば、自然免疫系が、即効性であるが非特異的である応答を提供し、自然免疫系によって活性化される適応免疫系が、免疫学的メモリーを提供する。免疫系の制御異常は、自己免疫疾患ならびに炎症性疾患(例えば、潰瘍性大腸炎およびクローン病を含む炎症性腸疾患(IBD))ならびに癌のような多数の重要な処置困難な疾患の基礎をなしている。
免疫系を調節するための既存の戦略は、一部には、非特異的であり、望ましくない副作用を有する場合があり、個々のサイトカインまたは機序のみを標的としており、炎症の区域に特異的に局在化され得ないため、それらには欠陥がある。局在化され得、(例えば、タイミングまたは炎症状態の感知に基づき)動的にコントロールされ得、免疫系の複数のアーム(例えば、適応免疫および自然免疫)を標的とすることができるテクノロジーが、本明細書中に提供される。具体的には、本開示は、免疫系の多元的な調節を可能にする改変型細胞回路を提供する。
(間葉系間質細胞とも呼ばれる)間葉系幹細胞(MSC)は、中胚葉に起因する非造血系成体幹細胞のサブセットである。それらは、自己再生能力を持ち、軟骨細胞、骨細胞、および脂肪細胞のような中胚葉系統のみならず、外胚葉細胞および内胚葉細胞へも多系統分化する。倫理的課題および奇形腫形成の両方がないMSCは、免疫疾患および非免疫疾患の両方の処置のための細胞治療のために使用されている主要な幹細胞型である。それらは、骨髄、脂肪組織、臍帯、胎児肝臓、筋肉、および肺から容易に単離され得、インビトロで成功裡に増大させられ得る。さらに、MSCは、傷害を受けた組織部位にホーミングする傾向を有する。MSCは、ヒトおよび動物へ外因的に送達され全身投与された時、炎症を有する傷害を受けた組織部位に特異的に遊走する。炎症指向性のMSCホーミングには、ケモカイン、接着分子、およびマトリックスメタロプロテイナーゼ(MMP)を含む数種の重要な細胞輸送関連分子が関与している。
免疫系は、自然免疫系および適応系を含み、それらは、各々、特定の機能を有する異なる型の細胞を含む。自然免疫系は、他の生物による感染から宿主を防御する細胞および機序を含む。感染に対する即効性の防御を提供する自然免疫系は、非特異的に病原体を認識し、それに応答し、長期持続性の免疫を宿主に提供しない。(例えば、哺乳動物のような脊椎動物における)自然免疫系の主要な機能には、サイトカインと呼ばれる特殊な化学的メディエーターを含む化学的因子の産生を通して、感染の部位へ免疫細胞をリクルートすること;細菌を同定し、細胞を活性化し、抗体複合体または死細胞のクリアランスを促進するために補体カスケードを活性化すること;特殊な白血球によって、器官、組織、血液、およびリンパ液に存在する外来物質を同定し、除去すること;抗原提示として公知の過程を通して、適応免疫系を活性化すること;ならびに感染性病原体に対する物的障壁および化学的障壁として作用することが含まれる。
本開示は、主として、複数のエフェクター分子を産生するように改変された間葉系幹細胞(MSC)に言及する。しかしながら、本開示は、改変型MSCに限定されず、免疫系の他の細胞型も包含されるものとすることが理解されるべきである。例えば、本明細書中に提供される(エフェクター分子を産生するように改変された)改変型細胞は、ナチュラルキラー(NK)細胞、NKT細胞、マスト細胞、好酸球、好塩基球、マクロファージ、好中球、および樹状細胞、T細胞(例えば、CD8+T細胞、CD4+T細胞、γδT細胞、およびT制御性細胞(CD4+、FOXP3+、CD25+))、ならびにB細胞より選択され得る。したがって、本開示のMSCは、いずれかの態様において、上記の免疫細胞型のうちの一つに置換され得る。
本開示の改変型MSCを培養する工程を含む方法も、本明細書中に提供される。MSCを培養する方法は、公知である。いくつかの態様において、MSCは、成長培地(例えば、MSCGMヒト間葉系幹細胞成長BULLETKIT(商標)培地(血清含有)、THERAPEAK(商標)MSCGM-CD(商標)間葉系幹細胞既知組成培地(無血清)、またはRoosterBioゼノフリーMSC培地)において培養される。
本開示は、番号付きパラグラフとして提示される以下の態様を包含する:
(b)少なくとも1種のエフェクター分子を各々コードする少なくとも2種の改変型核酸を間葉系幹細胞へ送達する工程
を含む、多機能性免疫調節細胞を作製する方法であって、各エフェクター分子が免疫系の異なる細胞型を調節するかまたは細胞の異なる機能を調節する、方法。
間葉系幹細胞(MSC)を、以下より選択される様々な発現ベクターによってヌクレオフェクトした:
pmaxGFP(LONZA(登録商標)陽性対照)
CMV-IL4発現ベクター(蛍光レポーターなし)
CMV-IL10発現ベクター(蛍光レポーターなし)
2×陰性対照(DNAなし、トランスフェクトされていない)
MSCからの上清を、ヌクレオフェクションの24時間後に収集し、凍結させた。その後、上清をBIOLEGEND(登録商標)キットを使用して分析し、7種のサイトカインIL-4、IL-5、IL-6、IL-10、IL-13、IL-17A、およびIFNγを定量化した。これらの実験からの結果は、図3A〜8に示され、記載される。
PBMCを、様々な炎症誘発性サイトカインの産生を誘導するため、コンカナバリンA(ConA)またはリポ多糖(LPS)のいずれかによって刺激した。抗炎症性サイトカインIL-4、IL-10、IL-4/IL-10の両方、または対照を発現する改変型MSCを、刺激されたPBMCとの共培養実験において使用するために生成した(図9に図式化される)。
以下の実験は、(1)異なるMSC起源が変動する固有の免疫阻害能力を有すること;(2)ヒトCD4+T細胞と共培養されたMSCが制御性T細胞免疫表現型を誘導し得ることを証明する。
以下の実験は、T細胞刺激によって誘導される炎症性サイトカインが、抗炎症性サイトカインIL-4またはIL-10を分泌するように改変されたMSCによって阻害されることを証明する。PBMC由来のT細胞を、抗CD3/28 Dynabeadsを使用して刺激し、単独でまたは示された比の骨髄MSCと共に3日間培養し、次いで、サイトカインをアッセイするために上清を収集した。MSCは、ネイティブであるか、または対照pMaxベクター、IL-4、もしくはIL-10によってヌクレオフェクトされたものであり、示されるように共培養された。組み合わせIL-4/IL-10条件は、ヌクレオフェクトされたIL-4 MSCとIL-10 MSCとの等量混合物によるものであった。上清を、IFNγ、IL-10、IL-17A、IL-1β、IL-6、およびTNFαを含む示されたサイトカインセットに対するLuminexサイトカインビーズアレイによってアッセイした。各培養条件について、Luminexの技術的3回反復を実施した。この実験からの結果は、図22に示される。
サイトカインを発現する注射された改変型MSCが、マウスにおいて免疫細胞集団を改変し得ることを証明するため、2日間、3%デキストラン硫酸ナトリウム(DSS)を飲料水によってC57BL/6マウスに投与して大腸炎を誘導し、次いで、マウスIL-4またはIL-10を発現するようヌクレオフェクションによって改変された1×106個のMSCを、腹腔内注射を介して投与した。さらに3日後、マウスを屠殺し、腹膜細胞を単離し、マクロファージをマークするため、F4/80マーカー発現についてフローサイトメトリーによって染色した。投与されたMSC-IL-10改変型細胞は、マクロファージのわずかな増加をもたらし、MSC-IL-4改変型細胞は、腹膜細胞集団内のマクロファージの減少をもたらした(示されないデータ)。
以下の実験については、改変型MSCを生成するため、MSCを形質導入するためにレンチウイルスを使用した。ワークフローは、図29Aおよび34Bに示される。
この実験のセットについては、2日間、飲料水によって3%デキストラン硫酸ナトリウム(DSS)をC57BL/6マウスに投与して大腸炎を誘導し、次いで、マウスIL-22または対照GFPを発現するようレンチウイルス形質導入によって改変された4×106個のMSCを、腹腔内注射を介して投与した。結腸長をマウスの屠殺後11日目に測定した。便タンパク質を4日目または9日目に収集し、リポカリン2(Lcn-2)レベルをELISAによって測定した。結腸を解剖し、10%ホルマリンで固定し、結腸全体の縦スライスを包埋し、ヘマトキシロンおよびエオシン(H&E)で染色した。スコアリングは、大腸炎のマウスモデルにおける経験を有する動物病理学者によって盲検的に実施された。病理組織スコアリングは、炎症の重症度、炎症によって影響された区域のパーセント、潰瘍形成、腺の分離をもたらす粘膜固有層の線維症、ならびに粘膜および/または粘膜下層の浮腫を含んでいた。過形成スコアリングは、過形成の程度、および過形成変化によって影響された区域のパーセントを含んでいた。注射コホートおよび測定は、二重盲検として実施された。各コホートは、各群8〜10匹のマウスの平均値を表し、エラーバーは、平均値の標準誤差(SEM)を表す。図31は、DSS大腸炎マウスにおける注射されたレンチウイルス改変型MSCによって改善された体重、結腸長、リポカリン2レベル、ならびに結腸の病理組織および過形成スコアリングを示す。
図35は、改変型MSCによって産生されたTNFα Fab抗体セルトリズマブによる成功した産生、分泌、結合、およびTNFαの機能拮抗を示す。上、c-Mycタグ付きセルトリズマブFab抗体または対照GFPを発現するように改変されたレンチウイルス形質導入MSCからの上清を、24時間後に採集した。ELISAプレートを、1ng/mlのTNFα、IFNγ、またはPBS培地によってコーティングし、未希釈のMSC上清を一晩インキュベートした後、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)とコンジュゲートした抗c-Myc抗体を使用した検出を行い、TMB基質を使用して酵素的に検出した。中央、改変型MSC上清を、1時間、1ng/ml TNFαと共にインキュベートし、次いで、Luminexプレートを一晩コーティングするために使用した。セルトリズマブは、Luminex捕獲/検出TNFα捕獲抗体セットからのTNFαとの結合に競合的に干渉し、Luminexからのより低い検出シグナルをもたらした。下、改変型MSC上清を、1時間、10ng/ml TNFαと共にインキュベートし、次いで、TNFαを検出し、分泌型胎児アルカリホスファターゼ(SEAP)を生成する5×104個のTNFαレポーター細胞(InvivoGen HEK-Dual TNFα細胞)に添加した。次いで、SEAPレベルをQUANTI-BLUE(登録商標)によって検出した。全ての条件が、生物学的3回反復として行われ、エラーバーは、平均値の標準誤差(SEM)を表す。
次に、MSCを、等量(各4ug)のホタルルシフェラーゼ/GFPレポータープラスミド(fLuc-GFP)および示されたケモカイン受容体プラスミドによってヌクレオフェクトした。大腸炎を誘導するため、0日目に、50%エタノール中の2.5%2,4,6-トリニトロベンゼンスルホン酸(TNBS)を肛門滴下注入を介してC57BL/6マウスへ投与し、次いで、1日目に、4×105個の改変型MSCを腹腔内注射を介して投与した。マウスにD-ルシフェリンを注射し、2日目(MSC注射の1日後)に屠殺し、示されるように組織を解剖し、Spectral Instruments Amiイメージャーでイメージングを実施した。ルシフェラーゼ化学発光は光子毎秒として測定された。図36は、TNBS大腸炎マウスにおける、ケモカイン受容体CXCR4、CCR2、CCR9、およびGPR15の改変された発現による、MSCの組織体内分布および炎症を起こした結腸への増加したホーミングを示す。
この実施例については、5×103個の改変型MSCが、マウスIL-4を駆動する条件的NF-kB(核内因子κB)応答性プロモーターの後にGFPを駆動する構成性プロモーターを含む遺伝子回路を、レンチウイルス形質導入によって受容した(図37上)。次いで、形質導入されたMSCを、200μlの培養培地中、0.1ng/ml、1ng/ml、または10ng/mlの濃度で、炎症性サイトカインTNFα、IL-1β、または大腸菌(E.coli)由来のリポ多糖(LPS)によって24時間処理した。上清を24時間後に収集し、ELISAによって測定した。図37は、レンチウイルス形質導入によってMSCへ送達された遺伝子回路を示す。この構築物は、MSCが炎症刺激を感知し、標的ペイロードIL-4の分泌を介して応答することを可能にした。左カラムは、測定された濃度を示し、右カラムは、未処理条件からの変化倍率を示す。全ての条件が、生物学的3回反復として行われ、エラーバーは、平均値の標準誤差(SEM)を表す。
Claims (51)
- 炎症応答を阻害するために十分なレベルの2種の抗炎症性サイトカインを産生するように改変された間葉系幹細胞。
- 炎症応答が対照と比べて少なくとも20%阻害され、任意で、対照が未修飾の間葉系幹細胞である、請求項1記載の間葉系幹細胞。
- 抗炎症性サイトカインが、IL-4、IL-10、およびIL-22より選択される、請求項1または2記載の間葉系幹細胞。
- 抗炎症性サイトカインがIL-4およびIL-10である、請求項3記載の間葉系幹細胞。
- 抗炎症性サイトカインがIL-4およびIL-22である、請求項3記載の間葉系幹細胞。
- 抗炎症性サイトカインがIL-10およびIL-22である、請求項3記載の間葉系幹細胞。
- 骨髄、脂肪組織、または臍帯組織に由来する、請求項1〜6のいずれか一項記載の間葉系幹細胞。
- 抗炎症性サイトカインレベルが、制御性T細胞免疫表現型を誘導するために十分である、請求項1〜7のいずれか一項記載の間葉系幹細胞。
- 抗炎症性サイトカインレベルが、刺激されたT細胞による炎症性サイトカインの産生を対照と比べて少なくとも20%阻害するために十分であり、任意で、対照が未修飾の間葉系幹細胞である、請求項1〜8のいずれか一項記載の間葉系幹細胞。
- 炎症性サイトカインが、IFNγ、IL-17A、IL-1β、IL-6、およびTNFαより選択される、請求項9記載の間葉系幹細胞。
- T細胞が、CD8+T細胞、CD4+T細胞、γδT細胞、およびT制御性細胞より選択される、請求項9または10記載の間葉系幹細胞。
- 炎症応答を対照と比べて少なくとも20%阻害するために十分なレベルの少なくとも3種の抗炎症性サイトカインを産生するように改変されており、任意で、対照が未修飾の間葉系幹細胞である、請求項1〜11のいずれか一項記載の間葉系幹細胞。
- ホーミング分子を発現するように改変されている、請求項1〜12のいずれか一項記載の間葉系幹細胞。
- ホーミング分子が、抗インテグリンα4β7;抗MAdCAM;CCR9;CXCR4;SDF1;MMP-2;CXCR1;CXCR7;CCR2;およびGPR15より選択される、請求項13記載の間葉系幹細胞。
- ホーミング分子が、CXCR4、CCR2、CCR9、およびGPR15より選択される、請求項14記載の間葉系幹細胞。
- (a)2種のサイトカインのうちの一方をコードする第1のヌクレオチド配列と2種のサイトカインのうちの他方をコードする第2のヌクレオチド配列とに機能的に連結されたプロモーターを含む核酸であって、任意で、第1および第2のヌクレオチド配列が介在ヌクレオチド配列によって分離されており、任意で、介在配列がIRES配列であるかもしくは2Aペプチドをコードする、核酸;
(b)(i)2種のサイトカインのうちの一方をコードするヌクレオチド配列に機能的に連結された第1のプロモーターと(ii)2種のサイトカインのうちの他方をコードするヌクレオチド配列に機能的に連結された第2のプロモーターとを含む核酸;または
(c)2種のサイトカインのうちの一方をコードするヌクレオチド配列に機能的に連結された第1のプロモーターを含む第1の核酸と2種のサイトカインのうちの他方をコードするヌクレオチド配列に機能的に連結された第2のプロモーターを含む第2の核酸
を含む、請求項1〜15のいずれか一項記載の間葉系幹細胞。 - (a)のプロモーター、(b)の第1および/もしくは第2のプロモーター、ならびに/または(c)の第1および/もしくは第2のプロモーターが、誘導性プロモーターである、請求項16記載の間葉系幹細胞。
- 誘導性プロモーターが核内因子κB(NFκB)応答性プロモーターである、請求項17記載の間葉系幹細胞。
- (a)の核酸、(b)の核酸、ならびに/または(c)の第1および/もしくは第2の核酸が、レポーター分子をコードするヌクレオチド配列に機能的に連結されたプロモーターをさらに含む、請求項16〜18のいずれか一項記載の間葉系幹細胞。
- 2種の抗炎症性サイトカインを産生するように改変された間葉系幹細胞の調製物の治療的有効量を対象へ送達する工程を含む方法であって、治療的有効量が対象における炎症応答を阻害するために十分である、前記方法。
- 炎症応答が対照と比べて少なくとも20%阻害され、任意で、対照が未修飾の間葉系幹細胞の調製物である、請求項20記載の方法。
- 抗炎症性サイトカインが、IL-4、IL-10、およびIL-22より選択される、請求項20または21記載の方法。
- 抗炎症性サイトカインがIL-4およびIL-10である、請求項22記載の方法。
- 抗炎症性サイトカインがIL-4およびIL-22である、請求項22記載の方法。
- 抗炎症性サイトカインがIL-10およびIL-22である、請求項22記載の方法。
- 間葉系幹細胞が、骨髄、脂肪組織、または臍帯組織に由来する、請求項20〜25のいずれか一項記載の方法。
- 治療的有効量が、制御性T細胞免疫表現型を誘導するために十分である、請求項20〜26のいずれか一項記載の方法。
- 治療的有効量が、刺激されたT細胞による炎症性サイトカインの産生を対照と比べて少なくとも20%阻害するために十分であり、任意で、対照が未修飾の間葉系幹細胞の調製物である、請求項20〜27のいずれか一項記載の方法。
- 炎症性サイトカインが、IFNγ、IL-17A、IL-1β、IL-6、およびTNFαより選択される、請求項28記載の方法。
- T細胞が、CD8+T細胞、CD4+T細胞、γδT細胞、およびT制御性細胞より選択される、請求項28または29記載の方法。
- 間葉系幹細胞が、少なくとも3種の抗炎症性サイトカインを産生するように改変されている、請求項20〜30のいずれか一項記載の方法。
- 対象が炎症性腸疾患の症状を示す、請求項20〜31のいずれか一項記載の方法。
- 対象が炎症性腸疾患を有すると診断されている、請求項32記載の方法。
- 炎症性腸疾患が、潰瘍性大腸炎またはクローン病である、請求項32または33記載の方法。
- 治療的有効量が、対象における体重減少を対照と比べて少なくとも20%低下させ、任意で、対照が未修飾の間葉系幹細胞の調製物である、請求項20〜34のいずれか一項記載の方法。
- 治療的有効量が、対象におけるリポカリン2のレベルを対照と比べて少なくとも20%低下させ、任意で、対照が未修飾の間葉系幹細胞の調製物である、請求項20〜35のいずれか一項記載の方法。
- 間葉系幹細胞が、ホーミング分子を発現するように改変されている、請求項20〜36のいずれか一項記載の方法。
- ホーミング分子が、抗インテグリンα4β7;抗MAdCAM;CCR9;CXCR4;SDF1;MMP-2;CXCR1;CXCR7;CCR2;およびGPR15より選択される、請求項37記載の方法。
- ホーミング分子が、CXCR4、CCR2、CCR9、およびGPR15より選択される、請求項38記載の方法。
- 間葉系幹細胞が、
(a)2種のサイトカインのうちの一方をコードする第1のヌクレオチド配列と2種のサイトカインのうちの他方をコードする第2のヌクレオチド配列とに機能的に連結されたプロモーターを含む核酸であって、任意で、第1および第2のヌクレオチド配列が介在ヌクレオチド配列によって分離されており、任意で、介在配列がIRES配列であるかもしくは2Aペプチドをコードする、核酸;
(b)(i)2種のサイトカインのうちの一方をコードするヌクレオチド配列に機能的に連結された第1のプロモーターと(ii)2種のサイトカインのうちの他方をコードするヌクレオチド配列に機能的に連結された第2のプロモーターとを含む核酸;または
(c)2種のサイトカインのうちの一方をコードするヌクレオチド配列に機能的に連結された第1のプロモーターを含む第1の核酸と2種のサイトカインのうちの他方をコードするヌクレオチド配列に機能的に連結された第2のプロモーターを含む第2の核酸
を含む、請求項20〜39のいずれか一項記載の方法。 - (a)のプロモーター、(b)の第1および/もしくは第2のプロモーター、ならびに/または(c)の第1および/もしくは第2のプロモーターが、誘導性プロモーターである、請求項40記載の方法。
- 誘導性プロモーターが核内因子κB(NFκB)応答性プロモーターである、請求項41記載の方法。
- エフェクター分子をコードするヌクレオチド配列に機能的に連結された核内因子κB(NFκB)応答性プロモーターを含む、改変型核酸。
- エフェクター分子が抗炎症性サイトカインである、請求項43記載の改変型核酸。
- 抗炎症性サイトカインが、IL-4、IL-10、およびIL-22より選択される、請求項44の改変型核酸。
- 複数のエフェクター分子を産生するように改変された間葉系幹細胞であって、エフェクター分子のうちの少なくとも2種がインビボで免疫系の異なる細胞型を調節する、前記間葉系幹細胞。
- (a)少なくとも2種のエフェクター分子をコードする少なくとも1種の改変型核酸を間葉系幹細胞へ送達する工程、または
(b)少なくとも1種のエフェクター分子を各々コードする少なくとも2種の改変型核酸を間葉系幹細胞へ送達する工程
を含む、多機能性免疫調節性細胞を作製する方法であって、各エフェクター分子が、免疫系の異なる細胞型を調節するかまたは細胞の異なる機能を調節する、前記方法。 - エフェクター分子を産生するよう各々改変された少なくとも2種の間葉系幹細胞を対象へ送達する工程を含む、対象の免疫系の複数の細胞型を調節する方法であって、エフェクター分子のうちの少なくとも2種が免疫系の異なる細胞型を調節する、前記方法。
- 炎症応答を阻害するために十分なレベルのエフェクター分子およびホーミング分子を産生するように改変された、間葉系幹細胞。
- エフェクター分子が、IL-4、IL-10、IL-35、PD-L1-Ig、抗TNFα、インドールアミン2,3-ジオキシゲナーゼ(IDO)、α1アンチトリプシン、IL-22、IL-19、およびIL-20より選択される、請求項49記載の間葉系幹細胞。
- ホーミング分子が、抗インテグリンα4β7;抗MAdCAM;CCR9;CXCR4;SDF1;MMP-2;CXCR1;CXCR7;CCR2;およびGPR15より選択される、請求項50記載の間葉系幹細胞。
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