JP2020502489A - インスリン製剤のためのバイオアッセイ - Google Patents
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Abstract
Description
「配列表」と題した6225バイトの配列表は、2016年10月24日に作成され、参照により本明細書に組み込まれている。
本明細書では用語「薬物製品」(DP)は、製剤中に含まれる賦形剤と共に薬理作用を発揮する医薬品有効成分(API)を意味する。
本明細書では用語「原薬」(DS)は、薬理作用を発揮する医薬品有効成分(API)を意味する。
本明細書では用語「ヒトインスリン」は、構造及び特性が周知であるヒトインスリンホルモンを意味する。ヒトインスリンは、A鎖及びB鎖と呼ばれる2本のポリペプチド鎖を有する。A鎖は21アミノ酸ペプチドであり、B鎖は30アミノ酸ペプチドであり、2本の鎖は、ジスルフィド架橋: A鎖の7位にあるシステインとB鎖の7位にあるシステインと間の第1の架橋及びA鎖の20位にあるシステインとB鎖の19位にあるシステインと間の第2の架橋、により結合されている。第3の架橋は、A鎖の6位と11位にあるシステイン間に存在する。
本明細書では用語「インスリンペプチド」は、ヒトインスリン又はインスリン活性があるその類似体若しくは誘導体のいずれかであるペプチドを意味する。
本明細書では用語「インスリン類似体」は、修飾されたヒトインスリンを意味し、インスリンの1つ又は複数のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基により置換されており、並びに/又は1つ又は複数のアミノ酸残基がインスリンから欠失されており並びに/又は1つ又は複数のアミノ酸残基がインスリンに付加されており及び/若しくは挿入されている。
本明細書では用語「インスリン誘導体」は、化学修飾された親インスリン又はその類似体を意味し、修飾は、アミド、炭水化物、アルキル基、アシル基、エステル、PEG化等の結合の形態である。本発明によるヒトインスリンの誘導体の例は、ヒトインスリンB30トレオニンメチルエステル、GlyA21、ArgB31、Arg-アミドB32ヒトインスリン、NεB29-テトラデカノイルdesB30ヒトインスリン、NεB29-テトラデカノイルヒトインスリン、NεB29-デカノイルdesB30ヒトインスリン、NεB29-ドデカノイルdesB30ヒトインスリン、NεB29-3-(2-{2-(2-メトキシエトキシ)-エトキシ}-エトキシ)-プロピオニルヒトインスリン、LysB29(Nεヘキサデカンジオイル-γGlu) des(B30)ヒトインスリン;NεB29-(N-(Sar-OC(CH2)13CO)-γGlu) desB30ヒトインスリン、NεB29-カルボキシ-ペンタデカノイル-L-グルタミルアミドdesB30ヒトインスリン、NεB29-ヘキサデカンジオイル-アミノ-ブタノイルdesB30ヒトインスリン、NεB29-ヘキサデカンジオイル-L-Glu-アミドdesB30インスリン、A14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリン(配列番号1及び配列番号2)、A14E、B16H、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン(配列番号3及び配列番号4)、A14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン(配列番号5及び配列番号6);A14E、B16H、B25H、B29K(Nεエイコサンジオイル-γGlu)、desB30ヒトインスリン(配列番号7及び配列番号8); A14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン(配列番号9及び配列番号10); A14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu)、desB30ヒトインスリン(配列番号11及び配列番号12)である。
本発明による低親和性インスリンは、pAktアッセイによって測定した場合に低い相対的効力、即ちヒトインスリンの効力の<0.08%を有するインスリン類似体及びインスリン誘導体を意味する。
本発明による医薬組成物の投与は、そのような処置を必要とする(in of such a treatment)患者に対するいくつかの投与経路、例えば、舌、舌下、口腔、口内、経口、胃及び腸内、経鼻、肺、例えば細気管支及び肺胞又はその組合せによる、表皮、真皮、経皮、膣内、直腸、眼内、例えば結膜による、尿管、並びに非経口によることができる。
本明細書では用語「効力」は、該当する生物学的特性と関係する生成物の属性に基づいて適切な定量的生物学的アッセイ(効力アッセイ又はバイオアッセイとも呼ばれる)を使用する生物活性の尺度を意味する。
本明細書では用語「生物活性」又は「活性」又は「相対的効力」(DP/DS)は、同じ条件下で試験した場合に、未知の効力の試験サンプル(原薬)が、薬物製品(参照)と比較して所望の応答を生じる能力を指すためにバイオアッセイにおいて使用される用語を意味する。薬物製品及び原薬の効力は、30%より多く逸脱すべきでなく、好ましくは、偏差は20%未満になるべきである。
本発明は、以下の本発明の非限定的な実施形態により更に記載される:
(i)インスリン受容体を過剰発現している細胞を前記薬物製品又は前記原薬と接触させる工程と;
(ii)リン酸化Aktを定量化する工程と
を含み、薬物製品は、経口製剤中のインスリンペプチド又は液体製剤中の低親和性インスリンペプチドである。
(ii)細胞を添加し/前記薬物製品又は前記原薬と接触させる工程と;
(iii)細胞を溶解させる工程と;
(iv)溶解物をウサギ抗pAkt抗体でプレコートしたELISAプレートに移す工程と;
(v)マウス抗pAkt抗体により結合しているpAktを定量化する工程と;
(vi) HRP-抗マウスIgGによりマウス抗pAkt抗体を検出する工程と;
(vii) HRPの基質を添加する工程と;
(viii)顕色を測定する工程と
を含む、実施形態1による方法。
A14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン;
A14E、B16H、B25H、B29K(Nεエイコサンジオイル-γGlu)、desB30ヒトインスリン;
A14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン;及び
A14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu)、desB30ヒトインスリン
からなる群から選択される、実施形態21による方法。
AEBSF:フッ化4-(2-アミノエチル)ベンゼンスルホニル塩酸塩
BHK:ベビーハムスター腎臓細胞
CHO:チャイニーズハムスター卵巣
CHO HIR:ヒトインスリン受容体過剰発現チャイニーズハムスター卵巣細胞
DPBS:ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水
DMEM:ダルベッコ変法イーグル培地
DP:薬物製品
DS:原薬
ELISA:酵素結合免疫吸着アッセイ
ERK:細胞外シグナル調節キナーゼ
FCS:ウシ胎仔血清
FOXO:フォークヘッドボックスO
HRP:ホースラディッシュペルオキシダーゼ
HSA:ヒト血清アルブミン
pAkt:リン酸化Akt
PBS:リン酸緩衝生理食塩水
P0、P1、P2:
MEM:最小必須培地
MEM NEAA:最小必須培地非必須アミノ酸
MTX:メトトレキサート
RFU:相対的蛍光単位
RT:室温
SC:皮下
SD:標準偏差
SEM:平均値の標準誤差
TMB: 3,3',5,5'-テトラメチルベンジジン
経口製剤中のインスリンペプチドをアッセイするために、錠剤(10800nmol/錠又は800nmol/錠)を、15mLファルコンチューブ内で0.5% FCSを含むDPBS(Gibco、カタログ番号14190)10mLに可溶化した。チューブを、血液チューブ回転器上で、RTで3時間回転させた。チューブを、4℃で終夜貯蔵した。ペレットを含まない懸濁液を新たなチューブへ移し、その後アッセイした。
細胞株及び培養
CHO細胞に、ヒトインスリン受容体(HIR、+エキソン11)をコードするDNAを含有するベクターを安定にトランスフェクトした。その後選択されたモノクローナル細胞株が、CHO-hIR-Aであった。細胞を、培養フラスコ中で、glutaMax、4.5g/L D-グルコース、Na-ピルビン酸、10% FBS、0.9%最小必須培地(MEM)及び0.004mg/mL MTXを含むDMEM中で、加湿した5% CO2インキュベーター内で維持し、常法通り2又は3日毎に継代した。細胞を、13〜45継代の間にアッセイに使用した。
CHO細胞を培養するための培地、FBS及び化学物質を、GIBCOから購入した。抗HIR抗体(Mab IR83-14)を自作した。ユウロピウム標識抗PY20抗体(DELFIA Eu-N1抗ホスホチロシン[PY20])を、PerkinElmer[登録商標]から購入した。DELFIA[登録商標] Assay Buffer、DELFIA[登録商標] Enhancement Solution及びDELFIA[登録商標] Wash Concentrateを、PerkinElmer[登録商標]から購入した。
CHO HIR細胞を、TrypLE[商標]Select試薬を使用してトリプシン処理し、アッセイ培地(glutamax、4.5g/L D-グルコース、Na-ピルビン酸、9% FBS及び0.9% MEMを含むDMEM)に希釈し、計数し、96ウェル平底組織培養プレートに播種し、37℃及び5% CO2で終夜インキュベートした。一方、96ウェルポリスチレンプレートを、Mab IR83-14(PBS、3μg/mL Mab83-14)で、+4〜+8℃で終夜コーティングした。コーティング緩衝液を除去し、冷Sabuf緩衝液(49.5mM TRIS、150.6mM NaCl、329.4mMソルビトール、0.46% BSA及び0.05%アジ化ナトリウム)を添加して振盪機(約300rpm)上に少なくとも2時間置いた。CHO HIR細胞を、PBS中で洗浄し、インスリン型に応じてBSAを含有するKREBSインキュベーション緩衝液(0.11M NaCl、4.74mM KCl、1.2mM KH2PO4、1.2mM MgSO4、5.6% Weltmannの試薬、Tween20)中で、漸増量のインスリンで、37℃で20〜30分間刺激し、その後溶解緩衝液(150.2mM NaCl、50mM Hepes、1% Triton-X100、0.2M Na-オルトバナジン酸、3000KIU/mLアプロチニン及び100mM AEBSF)中で、振盪機(約400rpm)上で、RTで2時間細胞を溶解した。適当な量の細胞溶解物を、Mab IR83-12コートしたプレートに移し、振盪機(約300rpm)上で1時間インキュベートし、その後DELFIA[登録商標] Washを使用して3回洗浄した。DELFIA[登録商標]Assay Buffer中で0.3μg/mLになるよう希釈した標識抗PY20を添加し、プレートを終夜インキュベートした(+2〜+8℃)。プレートを、DELFIA[登録商標]Washを使用して3回洗浄し、その後DELFIA[登録商標]Enhancement Solutionを添加し、振盪機(約300rpm)上で最低1時間インキュベーションした。検出結果を、Synergy2 Multi-Mode Reader(Biotek[登録商標])を使用して時間分解モードで収集した。
経口製剤中のA14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリンのInsRリン酸化アッセイ
CHO細胞株にトランスフェクトして、ヒトインスリン受容体を過剰発現させた。細胞を、DP(アセトニトリル含有緩衝液に可溶化された、2700nmol/錠剤で錠剤に製剤化されたA14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン)又はDS(A14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン)のいずれかで2分間刺激し、溶解した。ELISAを使用して、リン酸化されたインスリン受容体を定量化した。図1に見られる通り、各データポイントは、3つ組の平均及び標準偏差を表す。データは、最大プラトーに達するかなり前に、試験した最大濃度の上部において錠剤成分からの干渉を示し、従って曲線を適合させることができず、効力を算出できない。それ故、本アッセイは、錠剤に製剤化されたインスリンペプチドを試験するのにふさわしくない。
液体製剤中の低親和性インスリンA14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリンのInsRリン酸化アッセイ
CHO細胞株にトランスフェクトして、ヒトインスリン受容体を過剰発現させた。細胞を、DP(液体製剤中のA14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリン)又はDS(A14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリン) のいずれかで2分間刺激し、溶解した。ELISAを使用して、リン酸化されたインスリン受容体を定量化した。図2に見られる通り、最大プラトーに達するかなり前に、曲線の上部においてフェノール/クレゾールからの干渉が存在する。それ故、本アッセイは、液体製剤中の低親和性インスリンペプチドを試験するのにふさわしくない。
細胞株及び培養
シリアンハムスター細胞株、BHK-21[C-13](ATCC[登録商標] CCL-10[商標])に、製造業者のマニュアルに従ってFuGeneトランスフェクション薬剤(Promega、カタログ番号E2691)を使用して3つのプラスミドをトランスフェクトした。3つのプラスミドは、上流活性化配列(UAS)の調節下にインスリン受容体、GAL4-ELK1融合タンパク質及びホタルルシフェラーゼ遺伝子をそれぞれコードする。選択薬剤(200μg/mLハイグロマイシン、400μg/mLゼオシン及び600μg/mL G418)を使用して、安定な細胞プールを生成した。単一細胞クローンを限界希釈により単離し、最も作動するクローンを選択した(クローン26)。選択したその後のモノクローナル細胞株を、培養フラスコ中で、glutaMax、10%ウシ胎仔血清(FBS)、1% P/S及び上に述べた選択薬剤を含むDMEM中で、加湿した5% CO2インキュベーター内で維持し、常法通り2又は3日毎に継代した。
細胞を培養するための培地、FBS及び化学物質を、GIBCOから購入した。
細胞を、バーゼン液5mLで細胞培養フラスコから剥離させた。細胞50000個を、白色96ウェル培養プレート(Perkin Elmer、カタログ番号TC96 6005680)中のアッセイ培地[DMEM、グルタミン、0.5% FBS]にウェル当たり150μLで播種した。プレートを、5% CO2インキュベーター内で、37℃で終夜インキュベートした。プレートを空にし、関連サンプル100μLを添加して細胞を刺激した。プレートを、5% CO2インキュベーター内で、37℃で5時間インキュベートした。プレートをインキュベーターから取り出し、15分間室温で放置した。Steady Glo(Promega、カタログ番号E2550)のアリコートを100μL/ウェル添加した。プレートを、TopSeal film(PerkinElmer、カタログ番号6050195)で密閉した。プレートをアルミニウムホイルで覆って、光から保護し、室温で15分間振盪した。プレートを、Envisionリーダーで分析した。
経口製剤中のA14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリンのレポータ遺伝子アッセイ
BHK細胞株にトランスフェクトして、ヒトインスリン受容体を過剰発現させた。細胞株は、UAS(上流活性化配列)ルシフェラーゼプラスミド及びGAL4-ELK1を確実に過剰発現するプラスミドを含有する。細胞を、DP(錠剤中に10800nmol/錠剤のA14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン)又はDS(A14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン)のいずれかで4時間刺激した。図3に見られる通り、最大プラトーに達するかなり前に、試験した最大濃度の上部において錠剤成分からの干渉が存在し、従って曲線を適合させることができず、効力を算出できない。それ故、本アッセイは、錠剤に製剤化されたインスリンペプチドを試験するのにふさわしくない。
インスリンペプチド(類似体及び誘導体)は、用量依存的効果でインスリン受容体に結合する。特定の濃度未満では応答が低すぎて測定できないことになり(最小漸近線)、より高濃度では応答が増大し、十分に高い濃度では応答は更に増大しないことになる(最大漸近線)。用量応答曲線は、4パラメータロジスティック回帰(4PL非線形回帰モデル)で一般に適合される。それは、曲線の底部及び上部プラトー、EC50並びに傾斜係数(ヒルの傾斜)に適合するS字形により特徴付けられる。この曲線は、その変曲点の周りで対称形である。4PL方程式は: F(x) =D+(A-D)/(1+(x/C)^B)であり:式中、A =最小漸近線、B =ヒルの傾斜(曲線の勾配)、C =変曲点(弯曲が方向又は符号を変化させる曲線上の点、別名最大応答の50%に対応するEC50)、D =最大漸近線(Emaxは、アゴニストに対して考え得る最大の効果である)である。
CHO細胞に、ヒトインスリン受容体(HIR、+エキソン11)をコードするDNAを含有するベクターを安定にトランスフェクトした。その後選択されたモノクローナル細胞株が、CHO-hIR-Aであった。細胞を、培養フラスコ中で、glutaMax、4.5g/L D-グルコース、Na-ピルビン酸、10% FBS、0.9%最小必須培地(MEM)及び0.004mg/mL MTXを含むDMEM中で、加湿した5% CO2インキュベーター内で維持し、常法通り2又は3日毎に継代した。細胞を、13〜45継代の間にアッセイに使用した。
PTH CHO細胞を培養するための培地、FBS及び化学物質を、GIBCOから購入した。抗体及びTMBは、Cell Signaling Technology[登録商標]から購入した。
ウェル当たり10000個のFCW128-5細胞を、平底96ウェルプレート(Nunc)中で上述のDMEM培地100μLに播種した。プレートを、37℃、5% CO2で終夜インキュベートした。培地を、80μL/ウェル飢餓培地:0.5% HSA(Sigma)、1% P/S、1% MEM NEAA、4μg/mL MTXを含むDMEMと交換し、37℃、5% CO2で5時間インキュベートした。細胞を、飢餓培地中のウェル当たり5×終濃度の関連サンプル、ウェル当たり20μLで、37℃、5% CO2で10分間その後刺激した。プレートを氷上に置き、空にし、ウェル当たり冷PBS 100μLで洗浄し、再び空にした。冷溶解緩衝液[Biosource細胞抽出緩衝液(Life Tchnologies)、1mM AEBSF(Life Technologies)、プロテアーゼ阻害剤カクテル(Sigma)]20μLをウェル毎に添加した。プレートを、氷上で30分間インキュベートした(3回混合する)。溶解物を、プレコートしたELISAプレートに移して、pAktの含有量を測定した(下記参照)。
液体製剤中の低インスリンA14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリンのpAktアッセイ
CHO細胞株にトランスフェクトして、ヒトインスリン受容体を過剰発現させた。細胞を、DP(SC送達のために25mMフェノール及び25mM m-クレゾールに4200nmol/mLで製剤化されたA14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリン)又はDS(A14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリン)のいずれかで10分間刺激し、溶解した。ELISAを使用して、リン酸化されたAkt1を定量化した。図4に見られる通り、データポイントは、3つ組の平均+/- SDを表す。従って、バイオアッセイにおいて、賦形剤フェノール/クレゾールからの干渉はない。
経口製剤中のA14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリンのpAktアッセイ
CHO細胞株にトランスフェクトして、ヒトインスリン受容体を過剰発現させた。細胞を、DP(アセトニトリル含有緩衝液に可溶化された錠剤のA14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン)又はDS(A14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン)のいずれかで10分間刺激し、溶解した。ELISAを使用して、リン酸化されたAkt1を定量化した。図5aに見られる通り、データポイントは、3つ組の平均+/- SDを表す。図5a)は、低用量錠剤(800nmol/錠剤)を表す。錠剤賦形剤からの干渉はない。
経口製剤中のA14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリンのpAktアッセイ
CHO細胞株にトランスフェクトして、ヒトインスリン受容体を過剰発現させた。細胞を、DP(アセトニトリル含有緩衝液に可溶化された2700nmol/錠剤のA14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン)又はDS(A14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン)のいずれかで10分間刺激し、溶解した。ELISAを使用して、リン酸化されたAkt1を定量化した。図6に見られる通り、データポイントは、3つ組の平均+/- SDを表す。従って、バイオアッセイにおいて、錠剤成分からの干渉はない。得られた相対的効力を、下表に示す。DPの効力は、DSから3%逸脱し、このことは相対的効力(DP/DS)が好ましいことを意味する。
(i) A14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリン; (ii) A14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン; (iii) A14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン;及びヒトインスリンのpAktアッセイ
3つのヒトインスリン類似体[(i)、(ii)及び(iii)]を、Aktのリン酸化レベルを定量化することにより、インスリン類似体の効力を測定するために使用されるアッセイにおいてヒトインスリンと比較した。CHO細胞株にトランスフェクトして、ヒトインスリン受容体を過剰発現させた。細胞を、インスリン及びこの類似体で10分間刺激し、溶解した。ELISAを使用して、リン酸化Aktを定量化した。効力を、SAS JMP 12.2.0の4パラメータロジスティック回帰(4PL)を使用して算出した。相対的効力を: EC50類似体又は誘導体/ EC50ヒトインスリンとしてその後算出した。類似体を、以下の、A14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリン、A14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン及びA14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイルl-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリンの順序で順位付けし、後者が最も高い効力を示す。図7に見られる通り、ヒトインスリンと比較して、類似体A14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリンは、相対的効力0.64%を示し、類似体A14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリンは、相対的効力0.88%を示し、類似体A14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリンは、相対的効力0.06%を示した。A14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリンが、低親和性及び低効力インスリンであることは、この例から明白である。データは、異なる類似体の効力に関して非常に広い範囲にわたって機能するこのアッセイの能力を例示する。
実験を、異なる7つの濃度のヒトインスリン又はその類似体で細胞を刺激することにより実行し、上部及び底部プラトーを含む完全な滴定曲線を作った。各濃度を、3つ組で実行する。
a 成長率
b 変曲点
c 下側漸近線
d 上側漸近線
Claims (14)
- 原薬と比較して薬物製品の効力を測定する方法であって、
(i)インスリン受容体を過剰発現している細胞を前記薬物製品又は前記原薬と接触させる工程と;
(ii)リン酸化Aktを定量化する工程と
を含み、薬物製品が、経口製剤中のインスリンペプチド又は液体製剤中の低親和性インスリンペプチドである方法。 - Aktが、アイソフォームAkt1、Akt2及びAkt3を含む群から選択される、請求項1に記載の方法。
- Aktが、Akt1である、請求項1に記載の方法。
- インスリンペプチドが、インスリン類似体又はインスリン誘導体である、請求項1に記載の方法。
- インスリンペプチドが、経口製剤中のインスリン類似体又はインスリン誘導体である、請求項1に記載の方法。
- インスリンペプチドが、薬学的に許容される賦形剤を更に含む経口製剤中のインスリン類似体又はインスリン誘導体である、請求項1に記載の方法。
- インスリン類似体又はインスリン誘導体が、
A14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン;
A14E、B16H、B25H、B29K(Nεエイコサンジオイル-γGlu)、desB30ヒトインスリン;
A14E、B25H、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリン;及び
A14E、B25H、desB27、B29K(Nεオクタデカンジオイル-gGlu)、desB30ヒトインスリン
からなる群から選択される、請求項6に記載の方法。 - 賦形剤が、保存剤、等張化剤、キレート化剤、安定剤及び界面活性剤からなる群から選択される、請求項6に記載の方法。
- 賦形剤が、保存剤である、請求項8に記載の方法。
- インスリン類似体又はインスリン誘導体が、錠剤に製剤化されている、請求項1に記載の方法。
- インスリンペプチドが、液体製剤中のインスリン類似体又はインスリン誘導体である、請求項1に記載の方法。
- インスリンペプチドが、賦形剤を含む液体製剤中のインスリン類似体又はインスリン誘導体である、請求項11に記載の方法。
- インスリン類似体又はインスリン誘導体が、ヒトインスリンと比較してインスリン受容体に対する親和性が低い、請求項11に記載の方法。
- インスリン類似体又はインスリン誘導体が、A14E、B16E、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-gGlu-2×OEG)、desB30ヒトインスリン及びA14E、B16H、B25H、B29K(N(eps)エイコサンジオイル-γGlu-OEG-OEG)、desB30ヒトインスリンからなる群から選択される、請求項11に記載の方法。
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