JP2019535238A - ステビオール配糖体の生合成製造およびそのためのプロセス - Google Patents

Abstract

本発明は、ステビオール配糖体レバウジオシドＤ４、ＷＢ１およびＷＢ２の製造と、Ｒｅｂ Ｄ４からのレバウジオシドＭの製造とに関する。【選択図】図１

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１６年１０月１４日に出願された米国仮特許出願第６２／４０８，１７９号、および２０１７年９月８日に出願された米国仮特許出願第６２／５５５，８０９号（これらのそれぞれの内容は参照によってその全体が本明細書中に援用される）に対する優先権を主張する。

本発明の分野は、特定のステビオール配糖体の製造において有用な方法およびプロセスに関する。より具体的には、本開示は、これまで知られていなかったレバウジオシドであるレバウジオシドＤ４（「Ｒｅｂ Ｄ４」）の製造を提供し、これは次に、酵素変換によりレバウジオシドＭ（「Ｒｅｂ Ｍ」）に変換され得る。また本開示は、これまで知られていなかったレバウジオシドであるレバウジオシドＷＢ１（「Ｒｅｂ ＷＢ１」）およびレバウジオシドＷＢ２（「Ｒｅｂ ＷＢ２」）の製造も提供する。

本開示は、新規のステビオシドＲｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ ＷＢ１およびＲｅｂ ＷＢ２の製造と、Ｒｅｂ Ｄ４からＲｅｂ Ｍへの変換とに焦点が置かれている。特に、本開示は、Ｒｅｂ Ｄ４の合成と、Ｒｅｂ Ｍの製造におけるその結果的な使用とに関する。

ステビオール配糖体は、ステビア・レバウジアナ（Ｓｔｅｖｉａ ｒｅｂａｕｄｉａｎａ）の葉から単離される天然産物であり、食品、飼料および飲料における高甘味度の低カロリー甘味料として広く使用されている。天然に存在するステビオール配糖体は、同じ基本ジテルペン構造（ステビオール）を有するが、ステビオール骨格のＣ１３位およびＣ１９位の炭水化物残基修飾（例えば、グルコース、ラムノース、およびキシロース残基）の数および構造が異なる。既知の構造を有するステビオール配糖体には、ステビオシド、レバウジオシドＡ、レバウジオシドＢ、レバウジオシドＣ、レバウジオシドＤ、レバウジオシドＥ、レバウジオシドＦ、レバウジオシドＭおよびズルコシドＡが含まれる。商業的な利用の観点から、レバウジオシドＭ自体は一般に安全であると認められている（「ＧＲＡＳ」状態）。

乾燥重量ベースで、ステビオシド、レバウジオシドＡ、レバウジオシドＣ、およびズルコシドＡはそれぞれ、野生型ステビア属（Ｓｔｅｖｉａ）の葉におけるステビオール配糖体の全重量の９．１、３．８、０．６、および０．３０パーセントを占めるが、Ｒｅｂ Ｍなどの他のステビオールグルコシド（ｓｔｅｖｉｏｌ ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ）は、それよりも大幅に少ない量で存在する。ステビア・レバウジアナ（Ｓｔｅｖｉａ ｒｅｂａｕｄｉａｎａ）植物からの抽出物は市販されており、このような抽出物は、通常、主成分としてステビオシドおよびレバウジオシドＡを含有する。その他の既知のステビオール配糖体は、通常、少量または微量成分としてステビア抽出物中に存在する。例えば、市販調製物中のレバウジオシドＡの量は、全ステビオール配糖体含量の約２０％から９０％以上まで様々であり得るが、通常、レバウジオシドＢの量は全ステビオール配糖体の約１〜２％であり、レバウジオシドＣの量は約７〜１５％、そしてレバウジオシドＤの量は約２％であり得る。このような抽出物中に、レバウジオシドＭは無視できるほど少量しか存在しない。興味深いことに、レバウジオシドＥも、ステビア・レバウジアナ（Ｓｔｅｖｉａ ｒｅｂａｕｄｉａｎａ）植物種中に存在する最も少ない量のステビオール配糖体のうちの１つであり、全配糖体の０．５％未満を占める。

天然甘味料として、異なるステビオール配糖体は、異なる甘味度、「口当たり」、および試験される各レバウジオシド種に関連する特定の後味を有する。砂糖（すなわち、「スクロース」）と比べて、ステビオール配糖体の甘味は著しく高い。例えば、ステビオシドはスクロースよりも１００〜１５０倍甘いが、風味試験で気付かれるように苦い後味を有し、レバウジオシドＡおよびＥはスクロースよりも２５０〜４５０倍甘く、後味はステビオシドよりもはるかに良好であるが、注目すべき後味は依然として存在する。従って、任意のステビア抽出物の風味プロファイルは抽出物中のステビオール配糖体の相対含量によって大きく影響を受け、そしてこれは、基礎となる植物が経験する環境条件および使用される抽出プロセスによって影響され得る。植物生産、気象条件および抽出条件におけるこれらの変動は、ステビア抽出物中のステビオール配糖体の一貫性のない組成をもたらし得るので、風味プロファイルは、抽出生成物のバッチによって大きく異なる。

またステビア抽出物の風味プロファイルは、抽出プロセス後に生成物中に残存する植物由来または環境由来の汚染物質（例えば、色素、脂質、タンパク質、フェノール類および糖類など）によっても影響され得る。これらの汚染物質は、通常、消費者製品の甘味料としてステビア抽出物を使用するのに望ましくないその独自の異臭を有する。さらに、ステビア抽出物中の量が少ないステビオールレバウジオシドの個々のまたは特定の組合せを単離する費用は、コストおよびリソース面で非常に高い。いくつかの特定のステビオール配糖体の品質および有効性が限られていると仮定すると、商業的な供給は、生物変換により良好に対処することが可能であり、ここで、対象の配糖体の産生を特異的に増大させるために、必要とされる酵素を保有し、商業的に重要な発酵プロセスを使用するように、天然酵素、または特定の微生物は改変され得る。例えば、ステビオシドからＲｅｂ Ｅへの生物変換は、改変された微生物から得られる酵素を用いて既に報告されている（例えば、ＰＣＴ出願公開の国際公開第２０１５／０６５６５０号および国際公開第２０１５／１７１５５５号を参照）。あるいは、他の非生物学的合成手段を使用して、対象のステビオール配糖体を開発することができる。

生物学的観点から、全てのステビオール配糖体は、ステビオールの一連のグリコシル化反応によって形成され、これは通常、ウリジン５’−ジホスホグルコース（ＵＤＰ−グルコース）を糖部分の供与体として用いて、ＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）酵素により触媒される。植物において、ＵＧＴは、グルコース残基をＵＤＰ−グルコースからステビオールへ転移させる非常に多様な酵素群である。これらの反応では、ステビオシドは、種々のレバウジオシド化合物の生合成における中間体であることが多い。例えば、ステビオシドのＣ−１３−Ｏ−グルコースのＣ−３’のステビオシドのグリコシル化はレバウジオシドＡをもたらし、ステビオシドの１９−Ｏ−グルコース位置のＣ−２’のグリコシル化はレバウジオシドＥをもたらす。

本明細書に記載されるように、レバウジオシドＥの特異的および定方向のグリコシル化（Ｃ−１９−Ｏ−グルコースにおける）はレバウジオシドＲｅｂ Ｄ４を生じることができ、ＵＧＴ酵素によるＲｅｂ Ｄ４のさらなるグリコシル化はレバウジオシドＭを生じる。しかしながら、本開示までは、酵素的にＤ４を製造するための合成ステップは報告されていない。

本開示によると、ステビア抽出物の風味品質を改善するための実践的なアプローチは、概してより望ましい風味特性を有するレバウジオシド化合物の収率を増大させ、そしてより生産的な合成経路によりこれを行なうことである。試験されるステビオール配糖体のうち、多くの人は、食品および飲料での使用のためにＲｅｂ Ｍが最も望ましい風味および化学的性質を有すると考える。しかしながら、上記のように、植物には、この化合物がその葉の中に無視できるほど少量しか存在せず、従って、この配糖体の大規模製造のために、そして食品および飲料産業に代替甘味料を提供するために、代替的な生合成を開発することが必要である。

従って、より良好でより一貫性のある風味プロファイルを有するステビオール配糖体を市販の製品として開発することが必要とされ、そしてこのような望ましい配糖体の製造が商業的にできるだけ費用効率が高くなり得るように、このようなステビオール配糖体が比較的一般的な出発基質（例えば、より大量にあるステビオール配糖体など）を出発分子として利用することが必要とされている。本開示は、これまで知られていなかったステビオール配糖体Ｒｅｂ Ｄ４からレバウジオシドＭを製造する方法と、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ ＷＢ１およびＲｅｂ ＷＢ２を製造するための方法とを提供する。

さらに、植物からの抽出プロセスは通常、ステビオール配糖体の回収のためにヘキサン、クロロホルム、およびエタノールのような溶媒を用いる固液抽出技術を使用する（Ｃａｔｃｈｐｏｌｅ ｅｔ ａｌ．，２００３）。しかしながら、溶媒抽出はそれ自体がエネルギー集約的であり、毒性廃棄物処理の問題につながり、植物自体を成長させるために広大な面積を必要とし、そして微量成分を回収するためにさらなる精製を必要とする生成物をもたらす。この結果として、ステビオール配糖体の製造コストを低減し、大規模栽培および加工の環境影響を少なくするために新しい製造方法も必要とされている（Ｙａｏ ｅｔ ａｌ．，１９９４）。１つのこのような可能性のある解決法は、商業に利用可能な所望のステビオール配糖体の選択性、存在量および純度を増大させる特定の微生物種における産生を可能にする発酵生物変換技術の使用である。

上記に加えて、消費者は、食品、飼料、フレーバーまたは薬用成分の天然の生物学的な源を良いと認め、積極的に求める一方で、ソーシング、一貫性のある風味プロファイル、および環境的に持続可能な製造についても関心がある。この状況に対して、本開示の微生物発酵および製造方法は、無機合成または現在の植物抽出技術よりも天然なやり方でそれを行ないながら、様々な産業および研究に有用な量のＲｅｂ Ｍを提供する。

従って、ヒトおよび動物の消費をさらに可能にするために経済的かつ便利にＲｅｂ Ｍを製造する新規の方法の開発が必要とされている。

本開示の態様は、ステビオール配糖体、ステビオール配糖体を製造する方法、およびステビオール配糖体を含む組成物に関する。いくつかの態様では、本開示は、これまでに報告されていないステビオール配糖体のＲｅｂ Ｄ４からＲｅｂ Ｍを製造する方法を包含する。

特に、本開示は、（１３−［（２−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−β−Ｄ−グルコピラノシル）オキシ］ｅｎｔ−カウラ−１６−エン−１９−酸−［（２−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−３−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−β−Ｄ−グルコピラノシル）エステル］）として特定されるステビオール配糖体レバウジオシドＤ４「Ｒｅｂ Ｄ４」の製造と、特定のＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼによるそのＲｅｂ Ｍへの変換とを提供する（図１を参照）。また本開示は、本明細書に記載されるようなＲｅｂ ＷＢ１およびＲｅｂ ＷＢ２の製造も提供する。

本明細書に記載される本方法は、合成経路を用いて特定のステビオール配糖体を合成するためのアプローチを提供する。

代替の実施形態は、ＲｅｂＷＢ１を介する経路を利用する、レバウジオシドＷからのレバウジオシドＤ４の製造である。

さらなる実施形態は、レバウジオシドＤ４からのレバウジオシドＭの製造である。

本開示の一実施形態では、Ｒｅｂ ＷＢ２、Ｒｅｂ ＷＢ１およびＲｅｂ Ｄ４を介する経路を用いてＲｅｂ Ｍの製造を可能にする方法が提供される。

代替の実施形態では、Ｒｅｂ ＷからＲｅｂ ＷＢ１への酵素生物変換を触媒するために、βグルコシダーゼが使用される（図１４を参照）。

いくつかの態様では、本開示は、構造：

を有するステビオール配糖体Ｒｅｂ Ｄ４を提供する。

いくつかの実施形態では、本開示はＲｅｂ Ｄ４を含む組成物を提供し、任意選択的に、組成物中の前記Ｒｅｂ Ｄ４の含量は、少なくとも７０％（例えば、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％または１００％）純粋である。いくつかの実施形態では、本開示は、甘味化量（ｓｗｅｅｔｅｎｉｎｇ ａｍｏｕｎｔ）のＲｅｂ Ｄ４を含む消費製品を提供する。いくつかの実施形態では、消費製品は、飲料、菓子類、ベーカリー製品、クッキー、およびチューインガムからなる群から選択される。

他の態様では、本開示は、Ｒｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍの混合物を含む組成物を提供する。いくつかの実施形態では、本開示は、甘味化量のＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍの混合物を含む消費製品を提供する。いくつかの実施形態では、消費製品は、飲料、菓子類、ベーカリー製品、クッキー、およびチューインガムからなる群から選択される。

さらに他の態様では、本開示は、構造：

を有するステビオール配糖体Ｒｅｂ ＷＢ１を提供する。

いくつかの実施形態では、本開示はＲｅｂ ＷＢ１を含む組成物を提供し、任意選択的に、組成物中の前記Ｒｅｂ ＷＢ１の含量は、少なくとも７０％（例えば、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％または１００％）純粋である。いくつかの実施形態では、本開示は、甘味化量のＲｅｂ ＷＢ１を含む消費製品を提供する。いくつかの実施形態では、消費製品は、飲料、菓子類、ベーカリー製品、クッキー、およびチューインガムからなる群から選択される。

さらに他の態様では、本開示は、構造：

を有するステビオール配糖体Ｒｅｂ ＷＢ２を提供する。

いくつかの実施形態では、本開示はＲｅｂ ＷＢ２を含む組成物を提供し、任意選択的に、組成物中の前記Ｒｅｂ ＷＢ２の含量は、少なくとも７０％（例えば、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％または１００％）純粋である。いくつかの実施形態では、本開示は、甘味化量のＲｅｂ ＷＢ２を含む消費製品を提供する。いくつかの実施形態では、消費製品は、飲料、菓子類、ベーカリー製品、クッキー、およびチューインガムからなる群から選択される。

いくつかの態様では、本開示は、培地内で成長する形質転換細胞系によって産生される、対象のステビオール配糖体を提供する。いくつかの実施形態では、前記形質転換細胞系は、酵母、非ステビオール配糖体産生植物、藻類および細菌からなる群から選択される。いくつかの実施形態では、前記細胞系は細菌であり、エシェリキア属（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ）、サルモネラ属（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）、バチルス属（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）、アシネトバクター属（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ）、ストレプトミセス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、コリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、メチロサイナス属（Ｍｅｔｈｙｌｏｓｉｎｕｓ）、メチロモナス属（Ｍｅｔｈｙｌｏｍｏｎａｓ）、ロドコッカス属（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）、シュードモナス属（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）、ロドバクター属（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ）、シネコシスティス属（Ｓｙｎｅｃｈｏｃｙｓｔｉｓ）、サッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）、ジゴサッカロミセス属（Ｚｙｇｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）、クルイベロミセス属（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）、カンジダ属（Ｃａｎｄｉｄａ）、ハンゼヌラ属（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）、デバリオミセス属（Ｄｅｂａｒｙｏｍｙｃｅｓ）、ムコール属（Ｍｕｃｏｒ）、ピキア属（Ｐｉｃｈｉａ）、トルロプシス属（Ｔｏｒｕｌｏｐｓｉｓ）、アスペルギルス属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）、アルツロボトリス属（Ａｒｔｈｒｏｂｏｔｌｙｓ）、ブレビバクテリア属（Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉａ）、ミクロバクテリウム属（Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、アルスロバクター属（Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ）、シトロバクター属（Ｃｉｔｒｏｂａｃｔｅｒ）、エシェリキア属（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ）、クレブシエラ属（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ）、パンテア属（Ｐａｎｔｏｅａ）、サルモネラ（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ） コリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、クロストリジウム属（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ）；およびクロストリジウム・アセトブチリカム（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ａｃｅｔｏｂｕｔｙｌｉｃｕｍ）からなる群から選択される。いくつかの実施形態では、前記細胞系は大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）である。いくつかの実施形態では、前記ステビオール配糖体はＲｅｂ Ｄ４である。いくつかの実施形態では、前記ステビオール配糖体はＲｅｂ ＷＢ１である。いくつかの実施形態では、前記ステビオール配糖体はＲｅｂ ＷＢ２である。いくつかの実施形態では、原料物質はステビオールである。いくつかの実施形態では、前記ステビオール配糖体含量は少なくとも７０％純粋である。いくつかの実施形態では、本製造方法はさらに、ｉ）粗産物を精製することと、ｉｉ）溶媒を真空下で除去して、濃縮産物を提供することとを含む。いくつかの実施形態では、前記粗産物はカラムクロマトグラフィにより精製される。いくつかの実施形態では、前記粗産物は酸−塩基抽出により精製される。いくつかの実施形態では、前記粗産物は真空蒸留により精製される。いくつかの実施形態では、本製造方法はさらに、セミ分取（ｓｅｍｉ−ｐｒｅｐａｒａｔｉｖｅ）ＨＰＬＣを用いて前記ステビオール配糖体を精製することを含む。他の態様では、本開示は、甘味化量のステビオール配糖体を含む消費製品を提供する。いくつかの実施形態では、消費製品は、飲料、菓子類、ベーカリー製品、クッキー、およびチューインガムからなる群から選択される。

他の態様では、本開示は、配列番号３に対して少なくとも８０％（例えば、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％または１００％）の同一性を有するＤＮＡ配列を含むＣＰ１組換えポリペプチドを提供する。いくつかの実施形態では、ＣＰ１組換えポリペプチドのアミノ酸配列は、配列番号４に対して少なくとも８０％（例えば、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％または１００％）の同一性を有する。いくつかの実施形態では、ＣＰ１組換えポリペプチドは、表２に記載される１つまたは複数の位置において１つまたは複数の突然変異を有する。

さらに他の態様では、本開示は、対象のステビオール配糖体を製造する生合成方法を提供し、本方法は、形質転換細胞系においてＣＰ１酵素を発現させることと、基質を含有する培地において細胞系を成長させることと、対象のステビオール配糖体を産生させることとを含む。いくつかの実施形態では、本方法はさらに、組換えスクロースシンターゼを基質と共にインキュベートすることを含む。いくつかの実施形態では、本方法はさらに、組換えＵＤＰグリコシルトランスフェラーゼＵＧＴ８５Ｃ２をスクロースシンターゼ、基質、およびＣＰ１組換えポリペプチドと共にインキュベートすることを含む。いくつかの実施形態では、本方法はさらに、βグルコシダーゼ酵素を反応混合物に添加することを含む。いくつかの実施形態では、スクロースシンターゼは、アラビドプシス属（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）スクロースシンターゼ１、アラビドプシス属（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）スクロースシンターゼ３およびビグナ・ラディアテ（Ｖｉｇｎａ ｒａｄｉａｔｅ）スクロースシンターゼからなる群から選択される。いくつかの実施形態では、スクロースシンターゼは、アラビドプシス・タリアナ（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｈａｌｉａｎａ）スクロースシンターゼ１である。いくつかの実施形態では、産生されるステビオール配糖体は、Ｒｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍの混合物である。いくつかの実施形態では、本方法はさらに、ｉ）粗産物を精製することと、ｉｉ）溶媒を真空下で除去して、濃縮産物を提供することとを含む。いくつかの実施形態では、前記粗産物はカラムクロマトグラフィにより精製される。いくつかの実施形態では、前記粗産物は酸−塩基抽出により精製される。いくつかの実施形態では、前記粗産物は真空蒸留により精製される。いくつかの実施形態では、本方法はさらに、セミ分取ＨＰＬＣを用いて前記ステビオール配糖体を精製することを含む。いくつかの実施形態では、前記ステビオール配糖体はＲｅｂ ＷＢ１である。いくつかの実施形態では、前記ステビオール配糖体はＲｅｂ ＷＢ２である。いくつかの実施形態では、前記ステビオール配糖体はＲｅｂ Ｄ４である。いくつかの実施形態では、前記ステビオール配糖体はＲｅｂ Ｍである。いくつかの実施形態では、本方法はさらに、ＨＶ１（配列番号９）の使用を含む。いくつかの実施形態では、本方法はさらに、ＵＧＴ７６Ｇ１（配列番号１）の使用を含む。

他の態様では、本開示は、適切な成長条件下で組換え細胞を培養することを含み、前記組換え細胞がステビオール配糖体を産生する能力を示す、レバウジオシドＭの製造方法を提供し、本方法は、前記組換え細胞と、ステビオシド、スクロースシンターゼおよびスクロースを含有する反応組成物とを接触させることを含み、前記組換え細胞は、前記ステビオシド基質を使用してレバウジオシドＥを産生することができる第１のＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）またはその触媒活性部分を発現し、前記組換え細胞は、前記レバウジオシドＥを使用してレバウジオシドＤ４を産生することができる第２のＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）またはその触媒活性部分を発現し、そして前記組換え細胞は、前記レバウジオシドＤ４を使用してレバウジオシドＭを産生することができる第３のＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）またはその触媒活性部分を発現する。いくつかの実施形態では、本方法はさらに、スクロースシンターゼ遺伝子またはその触媒活性部分が前記組換え細胞内で発現されることを含む。いくつかの実施形態では、本方法はさらに、反応組成物にスクロースシンターゼが添加されることを含む。

いくつかの態様では、本開示は、上記の段落に記載される方法または本明細書中に他に開示される方法によって製造されるＲｅｂ Ｍを提供する。

他の態様では、本開示は、Ｒｅｂ Ｍを産生するための生合成経路（例えば、Ｒｅｂ Ｄ４からＲｅｂ Ｍへの変換またはＲｅｂ ＥからＲｅｂ Ｄ４へ、そしてＲｅｂ Ｍへの変換による）を発現する組換え細胞を提供する。いくつかの実施形態では、細胞は、前記ステビオシド基質を使用してレバウジオシドＥを産生することができる第１のＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）またはその触媒活性部分、前記レバウジオシドＥを使用してレバウジオシドＤ４を産生することができる第２のＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）またはその触媒活性部分、および前記レバウジオシドＤ４を使用してレバウジオシドＭを産生することができる第３のＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）またはその触媒活性部分のうちの１つまたは複数を発現する。いくつかの実施形態では、細胞は酵母細胞である。いくつかの実施形態では、細胞は細菌細胞である。いくつかの実施形態では、細胞は植物細胞である。

他の態様では、本開示は、図１４に記載される酵素および基質またはそのサブセット（例えば、Ｒｅｂ Ｗ、Ｒｅｂ ＷＢ１、またはＲｅｂ Ｄ４から始まり、そして／あるいはＵＧＴ７６Ｇ１、ＣＰ１またはＣＲ１を利用する）を用いてＲｅｂ Ｍを製造する方法を提供する。いくつかの実施形態では、Ｒｅｂ Ｍは、図１４に記載される酵素および基質、またはそのサブセット（例えば、Ｒｅｂ Ｗ、Ｒｅｂ ＷＢ１、またはＲｅｂ Ｄ４から始まり、そして／あるいはＵＧＴ７６Ｇ１、ＣＰ１またはＣＲ１を利用する）を含有するインビトロ反応混合物を用いて製造される。いくつかの実施形態では、Ｒｅｂ Ｍは、図１４に記載される酵素、またはそのサブセット（例えば、ＵＧＴ７６Ｇ１、ＣＰ１またはＣＲ１）を発現する細胞においてインビボで産生され、ここで、細胞は、図１４に記載される基質（例えば、Ｒｅｂ Ｗ、Ｒｅｂ ＷＢ１、またはＲｅｂ Ｄ４）と共にインキュベートされる。いくつかの実施形態では、細胞は酵母細胞である。いくつかの実施形態では、細胞は細菌細胞である。いくつかの実施形態では、細胞は植物細胞である。

製品／商業的有用性の観点から、米国の市場にはステビオール配糖体を含有する製品が数ダース存在し、鎮痛剤から害虫忌避剤まで全てのものにおいて、そして食品においても健康補助食品としても使用することができる。ステビオール配糖体を含有する製品は、エアロゾル、液体、または顆粒剤であり得る。

実施形態における細胞系については、いくつかの実施形態では、それは、細菌、酵母、およびこれらの組合せ、または選択された遺伝子による遺伝子形質転換と、その後の、ステビオールからの所望のステビオール配糖体の生合成製造とを可能にし得る任意の細胞系からなる群から選択される。最も好ましい微生物系において、所望のステビオール配糖体化合物を製造するために大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）が使用される。

本開示は種々の修正および代替形態を許容できるが、その特定の実施形態が例として図面に示されており、本明細書において詳細に記載されるであろう。しかしながら、本明細書で提示される図面および詳細な説明は、本開示を開示される特定の実施形態に限定することは意図されず、反対に、本発明が、特許請求の範囲により定義される本開示の趣旨および範囲内に包含される全ての修正物、等価物、および代替物を網羅できることは理解されるべきである。

本発明の他の特徴および利点は、添付図面を参照して、本発明の好ましい実施形態の以下の詳細な記載において明らかになるであろう。

レバウジオシドＤ４（１３−［（２−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−β−Ｄ−グルコピラノシル）オキシ］ｅｎｔ−カウラ−１６−エン−１９−酸−［（２−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−３−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−β−Ｄ−グルコピラノシル）エステル］）の構造を示す。 レバウジオシドＷＢ１およびＷＢ２の構造を示す。 レバウジオシドＷの加水分解生成物のＨＰＬＣプロファイルを示す。レバウジオシドＷは、Ｂ−ｇｌｕ１酵素により加水分解される。Ａ：レバウジオシドＷ（「Ｗ」）の標準物。Ｂ〜Ｄ：１時間（Ｂ）、６時間（Ｃ）および２４時間（Ｄ）でレバウジオシドＷを組換えＢ−ｇｌｕ１酵素により加水分解した。 ＵＧＴ８５Ｃ２によるレバウジオシドＷＢ２（「ＷＢ２」）からレバウジオシドＷＢ１（「ＷＢ１」）への生物変換のＨＰＬＣプロファイルを示す。０時間（Ａ）、２時間（Ｂ）、６時間（Ｃ）および１８時間（Ｄ）でレバウジオシドＷＢ２をＵＧＴ８５Ｃ２酵素と共にインキュベートした。 レバウジオシドＷＢ１およびＷＢ２のＬＣ−ＭＳ分析を示す。 ＨＶ１酵素によるレバウジオシドＷＢ１からレバウジオシドＤ４への生物変換のＨＰＬＣプロファイルを示す。Ａ：バウジオシドＷＢ１（「ＷＢ１」）の標準物。Ｂ〜Ｃ：２時間（Ｂ）および６時間（Ｃ）でレバウジオシドＷＢ１をＨＶ１酵素により変換した。 Ｒｅｂ Ｄ４分子の構造およびＬＣ−ＭＳデータを示す。 Ｒｅｂ Ｄ４分子の構造およびＬＣ−ＭＳデータを示す。 ＵＤＰ酵素ＵＧＴ７１Ｇ１の構造を示す。ヒスチジンが左側に位置し、ＵＤＰが右側に位置する標準的な配向が示される。 ＵＧＴ７６Ｇ１酵素の構造を示し、ＵＧＴ７６Ｇ１構造のαヘリックスおよびベータシートが強調される。 ＣＰ１およびＵＧＴ７６Ｇ１酵素の比較を示す。ＵＧＴ７６Ｇ１の結晶構造は灰色で示され、ＣＰ１モデルは黒色で示される。 ＵＧＴ７６Ｇ１の結晶構造およびそのＣＰ１分子との相互作用を示す。この結晶構造は、ＣＰ１モデルにおけるベータシートの不在を強調する。ＵＧＴ７６Ｇ１の結晶構造は灰色で示され、ＣＰ１モデルは黒色で示される。 酵素ＣＰ１の反応中心におけるレバウジオシドＤ４を示す。画像の下部に位置する濃灰色の分子はレバウジオシドＤ４である。 組換えＵＧＴ７６Ｇ１ポリペプチド、組換えＣＰ１、および突然変異体（ＣＲ１）の組合せにより触媒される、Ｒｅｂ Ｄ４からのＲｅｂ Ｍのインビトロ産生を示す。Ａ：レバウジオシドＤ（「Ｄ」）およびレバウジオシドＭ（「Ｍ」）の標準物を示す。Ｂ：レバウジオシドＤ４（「Ｄ４」）の標準物を示す。Ｒｅｂ Ｍは、３０分（Ｃ）および１時間（Ｆ）でＵＧＴ７６Ｇ１により酵素的に産生され、Ｒｅｂ Ｍは、３０分（Ｄ）および１時間（Ｇ）でＣＰ１により酵素的に産生される。Ｒｅｂ Ｍは、３０分（Ｅ）および１時間（Ｈ）でＣＲ１により酵素的に産生される。 レバウジオシドＭのレバウジオシドＷからの生合成経路のための合成経路を示す。 Ｒｅｂ ＷＢ２の重要なＧＨＭＢＣ相関を示す。 Ｒｅｂ ＷＢ１の重要なＧＨＭＢＣ相関を示す。 Ｒｅｂ Ｄ４の重要なＴＯＣＳＹおよびＧＨＭＢＣ相関を示す。

本明細書中で使用される用語の説明：
ステビオール配糖体は南米の植物ステビア・レバウジアナ（Ｓｔｅｖｉａ ｒｅｂａｕｄｉａｎａ）（キク科（Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ））の葉の甘味の原因となる化合物の種類であり、食品、飼料および飲料における甘味料として使用され得る。

定義：
「細胞系」は、異所性タンパク質の発現を提供する任意の細胞である。これには、細菌、酵母、植物細胞および動物細胞が含まれる。これには、原核細胞および真核細胞の両方が含まれる。またこれには、リボソームなどの細胞成分に基づいたタンパク質のインビトロ発現も含まれる。

「コード配列」は、当業者にとってのその通常および慣例の意味が与えられるべきであり、特定のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列を指すために制限なく使用される。

「細胞系を成長させる」。成長には、細胞の増殖および分裂を可能にし得る適切な培地を提供することが含まれる。また、細胞または細胞成分が組換えタンパク質を翻訳および作製できるように資源を提供することも含まれる。

「タンパク質発現」。タンパク質の産生は遺伝子発現後に起こり得る。これは、ＤＮＡがメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）に転写された後の段階からなる。ｍＲＮＡは次にポリペプチド鎖に翻訳され、これは、最終的にタンパク質に折り畳まれる。ＤＮＡは、核酸を意図的に細胞内に導入するプロセスであるトランスフェクションを介して細胞内に存在する。この用語は、真核細胞における非ウィルス法に使用されることが多い。また、これは、他の方法および細胞型を指してもよいが、他の用語が好ましい。細菌、植物細胞を含む非動物真核細胞における非ウィルスＤＮＡ転移を説明するためには「形質転換」が使用されることが多い。動物細胞では、形質転換はこれらの細胞における癌性状態への進行（発癌）を指すためにも使用されるので、トランスフェクションが好ましい用語である。形質導入は、ウィルス媒介のＤＮＡ転移を説明するために使用されることが多い。形質転換、形質導入、およびウィルス感染は、本出願のトランスフェクションの定義に含まれる。

「酵母」。本開示によると、本明細書で特許請求される酵母は、真菌界のメンバーに分類される真核単細胞微生物である。酵母は多細胞祖先から進化した単細胞生物であるが、本開示に有用ないくつかの種は、仮性菌糸または偽菌糸として知られている糸状の結合した出芽細胞を形成することにより、多細胞の特徴を発現する能力を有するものである。

「ＵＧＴ酵素」。本開示で使用されるＵＧＴ酵素の名前は、ＵＧＴ Ｎｏｍｅｎｃｌａｔｕｒｅ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅにより採用された命名法（Ｍａｃｋｅｎｚｉｅ ｅｔ ａｌ．，”Ｔｈｅ ＵＤＰ ｇｌｙｃｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ ｇｅｎｅ ｓｕｐｅｒ ｆａｍｉｌｙ：ｒｅｃｏｍｍｅｎｄｅｄ ｎｏｍｅｎｃｌａｔｕｒｅ ｕｐｄａｔｅｄ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ｄｉｖｅｒｇｅｎｃｅ，”ＰＨＡＲＭＡＣＯＧＥＮＥＴＩＣＳ，１９９７，ｖｏｌ．７，ｐｐ．２５５−２６９）と一致しており、これは、ファミリー番号、サブファミリーを示す文字、および個々の遺伝子の番号の組合せによりＵＧＴ遺伝子を分類する。例えば、「ＵＧＴ７６Ｇ１」という名前は、ＵＧＴファミリー番号７６（植物由来）、サブファミリーＧ、および遺伝子番号１に属する遺伝子によりコードされるＵＧＴ酵素を指す。

構造用語：
本明細書で使用される場合、単数形「ａ、ａｎ」および「ｔｈｅ」は、内容が他に明白に指示しない限り、複数の指示対照を含む。

「含む（ｉｎｃｌｕｄｅ）」、「有する（ｈａｖｅ）」または同様の用語が説明または特許請求の範囲において使用される限りにおいて、このような用語は、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」が特許請求の範囲において移行語として使用される場合に解釈されるように、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」という用語と同様に包括的であることが意図される。

「例示的」という用語は、本明細書において、「実施例、例、または例証としての役割を果たすこと」を意味するために使用される。「例示的」であると本明細書に記載される任意の実施形態は、必ずしも、他の実施形態よりも好ましいまたは有利であると解釈されるとは限らない。

「相補的」という用語は、当業者にとってのその通常および慣例の意味が与えられるべきであり、互いにハイブリダイズすることができるヌクレオチド塩基間の関係を説明するために制限なく使用される。例えば、ＤＮＡに関しては、アデノシンはチミンに相補的であり、シトシンはグアニンに相補的である。従って、本技術は、添付の配列表において報告される完全な配列に相補的である単離核酸断片、ならびにそれらの実質的に同様の核酸配列も含む。

「核酸」および「ヌクレオチド」という用語は、当業者にとってのそのそれぞれの通常および慣例の意味が与えられるべきであり、デオキシリボヌクレオチドまたはリボヌクレオチド、および一本鎖または二本鎖形態のいずれかのこれらのポリマーを指すために制限なく使用される。特に限定されない限り、この用語は、参照核酸と同様の結合特性を有し、かつ天然に存在するヌクレオチドと同様に代謝される、天然ヌクレオチドの既知の類似体を含有する核酸を包含する。他に記載されない限り、特定の核酸配列は、その保存的に改変されたまたは縮重変異体（例えば、縮重コドン置換）および相補的配列、ならびに明確に示された配列を暗黙に包含する。

「単離（された）」という用語は、当業者にとってのその通常および慣例の意味が与えられるべきであり、単離核酸または単離ポリペプチドとの関連で使用される場合、人の手によりその天然環境から離れて存在し、従って天然の産物ではない核酸またはポリペプチドを指すために制限なく使用される。単離された核酸またはポリペプチドは精製形態で存在することもできるし、あるいは例えば遺伝子導入宿主細胞内などの非天然環境において存在することもできる。

「インキュベートする（ｉｎｃｕｂａｔｉｎｇ）」および「インキュベーション」という用語は、本明細書で使用される場合、２つ以上の化学的または生物学的実体（例えば、化合物および酵素など）を混合し、これらを、ステビオール配糖体組成物を生じさせるのに有利な条件下で相互作用させるプロセスを意味する。

「縮重変異体」という用語は、１つまたは複数の縮重コドン置換によって参照核酸配列とは異なる残基配列を有する核酸配列を指す。縮重コドン置換は、１つまたは複数の選択された（または全ての）コドンの第３の位置が混合塩基および／またはデオキシイノシン残基によって置換された配列を作成することにより達成することができる。核酸配列およびその縮重変異体の全ては、同じアミノ酸またはポリペプチドを発現するであろう。

「ポリペプチド」、「タンパク質」、および「ペプチド」という用語は、当業者にとってのそのそれぞれの通常および慣例の意味が与えられるべきであり、３つの用語は互換的に使用されることもあり、そのサイズまたは機能に関係なく、アミノ酸、またはアミノ酸類似体のポリマーを指すために制限なく使用される。「タンパク質」は比較的大きいポリペプチドに関して使用されることが多く、「ペプチド」は小さいポリペプチドに関して使用されることが多いが、当該技術分野におけるこれらの用語の使用は重複しており、変動する。「ポリペプチド」という用語は、本明細書で使用される場合、他に言及されない限り、ペプチド、ポリペプチド、およびタンパク質を指す。「タンパク質」、「ポリペプチド」、および「ペプチド」という用語は、ポリヌクレオチド産物を指す場合に、本明細書では互換的に使用される。従って、例示的なポリペプチドは、ポリヌクレオチド産物、天然に存在するタンパク質、相同体、オルソログ、パラログ、断片および他の等価物、変異体、ならびに上記のものの類似体を含む。

「ポリペプチド断片」および「断片」という用語は、参照ポリペプチドに関して使用される場合、当業者にとってのその通常および慣例の意味が与えられるべきであり、参照ポリペプチド自体と比べてアミノ酸残基が欠失しているが、残りのアミノ酸配列は通常参照ポリペプチドにおける対応する位置と同一であるポリペプチドを指すために制限なく使用される。このような欠失は、参照ポリペプチドのアミノ末端またはカルボキシ末端、あるいは両方において起こり得る。

ポリペプチドまたはタンパク質の「機能的断片」という用語は、全長ポリペプチドまたはタンパク質の一部分であり、そして全長ポリペプチドまたはタンパク質と実質的に同じ生物活性を有するか、あるいは実質的に同じ機能を実行する（例えば、同じ酵素反応を実行する）ペプチド断片を指す。

互換的に使用される「変異体ポリペプチド」、「改変アミノ酸配列」、または「改変ポリペプチド」という用語は、１つまたは複数のアミノ酸によって、例えば、１つまたは複数のアミノ酸置換、欠失、および／または付加によって参照ポリペプチドとは異なるアミノ酸配列を指す。一態様では、変異体は、参照ポリペプチドの能力のいくらかまたは全てを保持する「機能的変異体」である。

「機能的変異体」という用語はさらに、保存的に置換された変異体を含む。「保存的に置換された変異体」という用語は、１つまたは複数の保存的アミノ酸置換によって参照ペプチドとは異なり、参照ペプチドの活性のいくらかまたは全てを保持するアミノ酸配列を有するペプチドを指す。「保存的アミノ酸置換」は、機能的に同様の残基によるアミノ酸残基の置換である。保存的置換の例としては、１つの非極性（疎水性）残基、例えばイソロイシン、バリン、ロイシンもしくはメチオニンと、別のものとの置換；１つの荷電もしくは極性（親水性）残基と、別のものとの置換、例えば、アルギニンとリジンとの間の置換、グルタミンとアスパラギンとの間の置換、スレオニンとセリンとの間の置換；１つの塩基性残基、例えばリジンもしくはアルギニンと、別のものとの置換；または１つの酸性残基、例えばアスパラギン酸もしくはグルタミン酸と、別のものとの置換；または１つの芳香族残基、例えばフェニルアラニン、チロシン、もしくはトリプトファンと、別のものとの置換が挙げられる。このような置換は、タンパク質またはポリペプチドの見かけの分子量または等電点に対してほとんどまたは全く影響を与えないことが予想される。「保存的に置換された変異体」という語句は、化学的に誘導された残基によって残基が置換されたペプチドも含むが、ただし、得られるペプチドが本明細書に記載される参照ペプチドの活性のいくらかまたは全てを保持することを条件とする。

本技術のポリペプチドに関連する「変異体」という用語はさらに、参照ポリペプチドのアミノ酸配列と少なくとも７５％、少なくとも７６％、少なくとも７７％、少なくとも７８％、少なくとも７９％、少なくとも８０％、少なくとも８１％、少なくとも８２％、少なくとも８３％、少なくとも８４％、少なくとも８５％、少なくとも８６％、少なくとも８７％、少なくとも８８％、少なくとも８９％、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９３％、少なくとも９４％、少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％、そしてさらに１００％同一であるアミノ酸配列を有する、機能的に活性なポリペプチドを含む。

「相同」という用語は、その文法的形態およびスペリングバリエーションの全てにおいて、「共通の進化的起源」を有するポリヌクレオチドまたはポリペプチドの間の関係を指し、スーパーファミリーからのポリヌクレオチドまたはポリペプチドと、異なる種からの相同ポリヌクレオチドまたはタンパク質とが含まれる（Ｒｅｅｃｋ ｅｔ ａｌ．，ＣＥＬＬ ５０：６６７，１９８７）。このようなポリヌクレオチドまたはポリペプチドは、同一性パーセントに関するか、または保存位置における特異的アミノ酸もしくはモチーフの存在に関するかにかかわらず、その配列類似性に反映されるような配列相同性を有する。例えば、２つの相同ポリペプチドは、少なくとも７５％、少なくとも７６％、少なくとも７７％、少なくとも７８％、少なくとも７９％、少なくとも８０％、少なくとも８１％、少なくとも８２％、少なくとも８３％、少なくとも８４％、少なくとも８５％、少なくとも８６％、少なくとも８７％、少なくとも８８％、少なくとも８９％、少なくとも９００ 少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９３％、少なくとも９４％、少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％、そしてさらに１００％同一であるアミノ酸配列を有することができる。

「適切な制御配列」は、当業者にとってのその通常および慣例の意味が与えられるべきであり、コード配列の上流側（５’非コード配列）、その中、または下流側（３’非コード配列）に位置し、そして関連するコード配列の転写、ＲＮＡプロセシングもしくは安定性、または翻訳に影響するヌクレオチド配列を指すために制限なく使用される。制御配列は、プロモーター、翻訳リーダー配列、イントロン、およびポリアデニル化認識配列を含み得る。

「プロモーター」は、当業者にとってのその通常および慣例の意味が与えられるべきであり、コード配列または機能的ＲＮＡの発現を制御することができるＤＮＡ配列を指すために制限なく使用される。一般に、コード配列は、プロモーター配列に対して３’側に位置する。プロモーターは、その全体が天然遺伝子に由来してもよいし、あるいは天然に見出される異なるプロモーターに由来する異なる要素から構成されてもよいし、あるいはさらに、合成ＤＮＡセグメントを含んでいてもよい。異なるプロモーターは、異なる組織または細胞型において、または異なる発生段階で、または異なる環境条件に応答して遺伝子の発現を指示し得ることが当業者により理解される。ほとんどの時点でほとんどの細胞型において遺伝子を発現させるプロモーターは、一般に、「構成的プロモーター」と呼ばれる。ほとんどの場合、制御配列の正確な境界は完全には定義されていないので、異なる長さのＤＮＡ断片が同一のプロモーター活性を有し得ることは、さらに認識される。

「機能的に連結された」という用語は、一方の機能が他方により影響されるような、単一の核酸断片における核酸配列の関連性を指す。例えば、プロモーターは、そのコード配列の発現に影響を与えることができる場合に、コード配列と機能的に連結されている（すなわち、コード配列は、プロモーターの転写制御下にある）。コード配列は、センス方向またはアンチセンス方向に制御配列と機能的に連結され得る。

「発現」という用語は、本明細書で使用される場合、当業者にとってのその通常および慣例の意味が与えられるべきであり、本技術の核酸断片に由来するセンス（ｍＲＮＡ）またはアンチセンスＲＮＡの転写および安定な蓄積を指すために制限なく使用される。「過剰発現」は、正常または非形質転換生物における産生レベルを超える、遺伝子導入または組換え生物における遺伝子産物の産生を指す。

「形質転換」は、当業者にとってのその通常および慣例の意味が与えられるべきであり、ポリヌクレオチドの標的細胞内への転移（その細胞によるさらなる発現のため）を指すために制限なく使用される。転移されたポリヌクレオチドは標的細胞のゲノムまたは染色体ＤＮＡ内に取り込まれ、遺伝学的に安定した遺伝をもたらすこともできるし、あるいは宿主染色体と関係なく複製することもできる。形質転換された核酸断片を含有する宿主生物は、「遺伝子導入」または「組換え」または「形質転換」生物と呼ばれる。

「形質転換」、「遺伝子導入」、および「組換え」という用語は、本明細書において宿主細胞と関連して使用される場合、当業者にとってのそのそれぞれの通常および慣例の意味が与えられるべきであり、異種核酸分子が導入された宿主生物の細胞、例えば植物または微生物細胞を指すために制限なく使用される。核酸分子は宿主細胞のゲノム内に安定して組み込まれることもできるし、あるいは核酸分子は染色体外分子として存在することもできる。このような染色体外分子は自己複製することができる。形質転換された細胞、組織、または対象は、形質転換プロセスの最終産物だけでなく、その遺伝子導入子孫も包含することが理解される。

「組換え」、「異種」、および「外因性」という用語は、本明細書においてポリヌクレオチドと関連して使用される場合、当業者にとってのそのそれぞれの通常および慣例の意味が与えられるべきであり、特定の宿主細胞に対して外来性である起源に由来するか、あるいは同じ起源に由来する場合はその元の形態から改変されたポリヌクレオチド（例えば、ＤＮＡ配列または遺伝子）を指すために制限なく使用される。従って、宿主細胞中の異種遺伝子は、特定の宿主細胞に対して内因性であるが、例えば、部位特異的変異誘発または他の組換え技術の使用により改変された遺伝子を含む。この用語は、天然に存在するＤＮＡ配列の天然に存在しない複数コピーも含む。従って、この用語は、細胞に対して外来性または異種であるか、あるいは細胞に対して相同であるが、その要素が通常見出されない宿主細胞内の位置または形態にあるＤＮＡセグメントを指す。

同様に、「組換え」、「異種」および「外因性」という用語は、本明細書においてポリペプチドまたはアミノ酸配列と関連して使用される場合、特定の宿主細胞に対して外来性である起源に由来するか、あるいは同じ起源に由来する場合はその元の形態から改変されたポリペプチドまたはアミノ酸配列を意味する。従って、組換えＤＮＡセグメントは宿主細胞において発現されて、組換えポリペプチドを生じることができる。

「プラスミド」、「ベクター」、および「カセット」という用語は、当業者にとってのそのそれぞれの通常および慣例の意味が与えられるべきであり、細胞の中央代謝の一部ではなく、通常環状二本鎖ＤＮＡ分子の形態である遺伝子を保有することが多い染色体外要素を指すために制限なく使用される。このような要素は、任意の起源に由来する自己複製配列、ゲノム組込み配列、ファージまたはヌクレオチド配列、線状または環状の一本鎖または二本鎖ＤＮＡまたはＲＮＡであってもよく、ここで、いくつかのヌクレオチド配列は、選択された遺伝子産物のためのプロモーター断片およびＤＮＡ配列を、適切な３’非翻訳配列と共に細胞内に導入することができる特有の構成に連結または組換えられている。「形質転換カセット」は、外来性遺伝子を含有し、外来性遺伝子に加えて特定の宿主細胞の形質転換を促進する要素を有する特定のベクターを指す。「発現カセット」は、外来性遺伝子を含有し、外来性遺伝子に加えて、外来性宿主におけるその遺伝子の発現の増強を可能にする要素を有する特定のベクターを指す。

詳細な説明
本開示は、対象のステビオール配糖体Ｒｅｂ Ｄ４の製造と、次にＵＧＴ酵素を用いてＲｅｂ Ｄ４配糖体をＲｅｂ Ｍへ変換させることとに関する。また本開示は、他の対象のステビオール配糖体のＲｅｂ ＷＢ１およびＲｅｂ ＷＢ２の製造にも関する。本技術は、ステビオール配糖体を合成するために１，２−１３−Ｏ−グルコースグリコシル化活性および１，３−１３−Ｏ−グルコースグリコシル化活性などのＵＤＰグリコシルトランスフェラーゼ活性を有する組換えポリペプチドを提供する。本技術の組換えポリペプチドは、ステビオール配糖体化合物の生合成のために有用である。本開示において、ＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）は、糖残基を活性化供与体分子（通常、ＵＤＰ−グルコース）から受容体分子へ転移させる酵素を指す。１，３−１３−Ｏ−グルコースグリコシル化活性は、糖部分をレバウジオシドＤ４の１３−Ｏグルコース部分のＣ−３’へ転移させて、Ｒｅｂ Ｍを生じる酵素活性を指す（図１４）。また本技術は、ステビオール配糖体を合成するためにβ−グルコシダーゼ活性を有する組換えポリペプチドも提供する。

合成生物学
本明細書で使用される標準組換えＤＮＡおよび分子クローニング技術は当該技術分野においてよく知られており、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．，Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｅ．Ｆ．ａｎｄ Ｍａｎｉａｔｉｓ，Ｔ．ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＣＬＯＮＩＮＧ：Ａ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＭＡＮＵＡＬ，２ｎｄ ｅｄ．；Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ：Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．，１９８９（以下、「Ｍａｎｉａｔｉｓ」）；およびＳｉｌｈａｖｙ，Ｔ．Ｊ．，Ｂｅｎｎａｎ，Ｍ．Ｌ．ａｎｄ Ｅｎｑｕｉｓｔ，Ｌ．Ｗ．ＥＸＰＥＲＩＭＥＮＴＳ ＷＩＴＨ ＧＥＮＥ ＦＵＳＩＯＮＳ；Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ：Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．，１９８４；およびＡｕｓｕｂｅｌ，Ｆ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，ＩＮ ＣＵＲＲＥＮＴ ＰＲＯＴＯＣＯＬＳ ＩＮ ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＢＩＯＬＯＧＹ，ＧＲＥＥＮＥ ＰＵＢＬＩＳＨＩＮＧ ＡＮＤ ＷＩＬＥＹ−ＩＮＴＥＲＳＣＩＥＮＣＥにより出版，１９８７によって記載されている（これらのそれぞれの全体は、参照によって本明細書中に援用される）。

他に定義されない限り、本明細書で使用される全ての技術および科学用語は、本開示が属する技術分野の当業者により一般的に理解されるものと同じ意味を有する。本開示の実施または試験において、本明細書に記載されるものと類似または等価の任意の方法および材料を使用することができるが、好ましい材料および方法は以下に記載される。

本開示は、以下の非限定的な実施例を考慮してより詳細に理解されるであろう。これらの実施例は本技術の好ましい実施形態を示しているが、単なる例証として示されることは理解されるべきである。上記の考察およびこれらの実施例から、当業者は本技術の本質的な特徴を確認することができ、その趣旨および範囲から逸脱することなく、種々の使用および条件に適合させるために本技術の種々の変化および修正を行なうことができる。

グリコシル化は、生物活性と、植物の天然産物の貯蔵とを制御する広範な反応であると考えられることが多い。小分子のグリコシル化は、今まで研究されてきたほとんどの植物種におけるトランスフェラーゼのスーパーファミリーにより触媒される。これらのグリコシルトランスフェラーゼ（ＧＴ）は６０を超えるファミリーに分類されている。これらのうち、ＵＤＰグリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）としても知られているファミリー１ＧＴ酵素は、ＵＤＰ−活性化糖部分を特定の受容体分子へ転移させる。これらは、ステビオール配糖体中にこのような糖部分を転移させて、種々のレバウジオシドを形成する分子である。これらのＵＧＴのそれぞれは、その独自の活性プロファイルと、その活性化糖部分を転移させる好ましい構造位置とを有する。

産生系
原核生物におけるタンパク質の発現は、ほとんどの場合、融合または非融合タンパク質のいずれかの発現を指示する構成的または誘導性プロモーターを含有するベクターを用いて細菌宿主細胞において実行される。融合ベクターは、その中にコードされたタンパク質、通常は組換えタンパク質のアミノ末端にいくつかのアミノ酸を付加する。このような融合ベクターは、通常、３つの目的を果たす：１）組換えタンパク質の発現を増大させること；２）組換えタンパク質の溶解度を増大させること；および３）アフィニティー精製におけるリガンドとしての役割を果たすことにより組換えタンパク質の精製を補助すること。多くの場合、融合タンパク質の精製の後に、組換えタンパク質を融合部分から分離できるようにするために、融合部分と組換えタンパク質との接合部にタンパク質分解的切断部位が導入される。このようなベクターは本開示の範囲内に含まれる。

実施形態において、発現ベクターは、細菌細胞における組換えポリペプチドの発現のための遺伝要素を含む。細菌細胞における転写および翻訳のための要素は、プロモーター、タンパク質複合体のコード領域、および転写ターミネーターを含むことができる。

当業者は、発現ベクターの調製に利用可能な分子生物学的技術を認識するであろう。本技術の発現ベクターへの取込みのために使用されるポリヌクレオチドは、上記のように、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）などの日常的な技術により調製することができる。

相補的な付着末端を介してＤＮＡをベクターに機能的に連結するためにいくつかの分子生物学的技術が開発されている。一実施形態では、ベクターＤＮＡに挿入すべき核酸分子に相補的ホモポリマートラクトが付加され得る。ベクターおよび核酸分子は次に、相補的ホモポリマーのテール間の水素結合により連結されて、組換えＤＮＡ分子を形成する。

代替の実施形態では、提供される１つまたは複数の制限部位を含有する合成リンカーを使用して、本技術のポリヌクレオチドを発現ベクターに機能的に連結する。実施形態では、ポリヌクレオチドは、制限エンドヌクレアーゼ消化により生成される。実施形態では、核酸分子は、バクテリオファージＴ４ＤＮＡポリメラーゼまたは大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）ＤＮＡポリメラーゼＩ（突出３’−一本鎖末端をその３’−５’−エキソヌクレアーゼ活性により除去し、陥凹３’末端をその重合活性により埋める酵素）によって処理され、それにより平滑末端ＤＮＡセグメントが生成される。平滑末端セグメントは次に、バクテリオファージＴ４ＤＮＡリガーゼなどの、平滑末端ＤＮＡ分子の連結を触媒することができる酵素の存在下で、多量のモル過剰のリンカー分子と共にインキュベートされる。従って、反応の生成物は、高分子リンカー配列をその末端に有するポリヌクレオチドである。これらのポリヌクレオチドは次に適切な制限酵素により切断され、ポリヌクレオチドの末端に適合する末端を生じる酵素で切断された発現ベクターに連結される。

あるいは、連結に依存しないクローニング（ｌｉｇａｔｉｏｎ−ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｃｌｏｎｉｎｇ）（ＬＩＣ）部位を有するベクターを使用することができる。次に、制限消化または連結を伴うことなく、必要とされるＰＣＲ増幅ポリヌクレオチドがＬＩＣベクターにクローニングされ得る（Ａｓｌａｎｉｄｉｓ ａｎｄ ｄｅ Ｊｏｎｇ，ＮＵＣＬ．ＡＣＩＤ．ＲＥＳ．１８ ６０６９−７４，（１９９０）、Ｈａｕｎ，ｅｔ ａｌ，ＢＩＯＴＥＣＨＮＩＱＵＥＳ １３，５１５−１８（１９９２）（参照によって本明細書と一致する範囲で本明細書中に援用される））。

実施形態において、選択されたプラスミド内への挿入のために、対象のポリヌクレオチドを単離および／または改変するためには、ＰＣＲを使用することが適切である。配列のＰＣＲ調製で使用するのに適切なプライマーは、必要とされる核酸分子のコード領域を単離し、制限エンドヌクレアーゼまたはＬＩＣ部位を付加し、所望のリーディングフレーム内にコード領域を配置するように設計することができる。

実施形態において、本技術の発現ベクター内への取込みのためのポリヌクレオチドは、適切なオリゴヌクレオチドプライマーを用いるＰＣＲの使用により調製される。コード領域は増幅され、プライマー自体は増幅配列産物内に取り込まれる。実施形態において、増幅プライマーは制限エンドヌクレアーゼ認識部位を含有し、これは、増幅配列産物が適切なベクター内にクローニングされることを可能にする。

発現ベクターは、従来の形質転換またはトランスフェクション技術により植物または微生物宿主細胞内に導入され得る。本技術の発現ベクターによる適切な細胞の形質転換は当該技術分野において既知の方法によって達成され、通常、ベクターおよび細胞のタイプの両方に依存する。適切な技術には、リン酸カルシウムまたは塩化カルシウム共沈、ＤＥＡＥ−デキストラン媒介トランスフェクション、リポフェクション、ケモポレーション（ｃｈｅｍｏｐｏｒａｔｉｏｎ）またはエレクトロポレーションが含まれる。

うまく形質転換された細胞、すなわち発現ベクターを含有する細胞は、当該技術分野においてよく知られた技術により特定され得る。例えば、本技術の発現ベクターがトランスフェクトされた細胞を培養して、本明細書に記載されるポリペプチドを生成させることができる。当該技術分野においてよく知られた技術により、発現ベクターＤＮＡの存在について細胞を検査することができる。

宿主細胞は、既に記載された発現ベクターの単一コピー、あるいは発現ベクターの複数コピーを含有することができる。

いくつかの実施形態では、形質転換細胞は動物細胞、昆虫細胞、植物細胞、藻類細胞、真菌細胞、または酵母細胞である。いくつかの実施形態では、細胞は、キャノーラ植物細胞、ナタネ植物細胞、ヤシ植物細胞、ヒマワリ植物細胞、綿植物細胞、コーン植物細胞、ピーナッツ植物細胞、亜麻植物細胞、ゴマ植物細胞、大豆植物細胞、およびペチュニア植物細胞からなる群から選択される植物細胞である

微生物宿主細胞発現系、および外来性タンパク質の高レベルの発現を指示する制御配列を含有する発現ベクターは、当業者によく知られている。これらはいずれも、微生物宿主細胞における本技術の組換えポリペプチドの発現のためのベクターを構築するために使用され得る。これらのベクターは次に、本技術の組換えポリペプチドの高レベルの発現を可能にするために、形質転換により適切な微生物に導入され得る。

適切な微生物宿主細胞の形質転換のために有用なベクターまたはカセットは当該技術分野においてよく知られている。通常、ベクターまたはカセットは、関連のポリヌクレオチドの転写および翻訳を指示する配列、選択可能なマーカー、ならびに自己複製または染色体組込みを可能にする配列を含有する。適切なベクターは、転写開始制御を含有するポリヌクレオチドの５’の領域と、転写終結を制御するＤＮＡ断片の３’の領域とを含む。両方の制御領域が形質転換宿主細胞と相同の遺伝子に由来するのが好ましいが、このような制御領域は、宿主として選択された特定の種にネイティブな遺伝子に由来する必要はないと理解されるべきである。

所望の微生物宿主細胞における組換えポリペプチドの発現を指示するのに有用な開始制御領域またはプロモーターは多数あり、当業者によく知られている。これらの遺伝子を駆動することができるプロモーターは実質的にどれも本技術に適しており、ＣＹＣＩ、ＨＩＳ３、ＧＡＬＩ、ＧＡＬＩＯ、ＡＤＨＩ、ＰＧＫ、ＰＨ０５、ＧＡＰＤＨ、ＡＤＣＩ、ＴＲＰＩ、ＵＲＡ３、ＬＥＵ２、ＥＮＯ、ＴＰＩ（サッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）における発現に有用）；ＡＯＸＩ（ピキア属（Ｐｉｃｈｉａ）における発現に有用）；ならびにｌａｃ、ｔｒｐ、ＪＰＬ、ＩＰＲ、Ｔ７、ｔａｃ、およびｔｒｃ（大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）における発現に有用）が含まれるが、これらに限定されない。

また終結制御領域は微生物宿主にネイティブな種々の遺伝子に由来してもよい。終結部位は、任意選択的に、本明細書に記載される微生物宿主のために含まれ得る。

植物細胞において、本技術の発現ベクターは、所望の組織において所望の発生段階で本技術の組換えポリペプチドの発現を指示することができるプロモーターに機能的に連結されたコード領域を含むことができる。便宜上、発現されるポリヌクレオチドは、同じポリヌクレオチドに由来するプロモーター配列および翻訳リーダー配列を含み得る。転写終結シグナルをコードする３’非コード配列も存在すべきである。発現ベクターは、ポリヌクレオチドの発現を促進するために１つまたは複数のイントロンも含み得る。

植物宿主細胞の場合、本技術のベクター配列において、コード領域の発現を誘導することができる任意のプロモーターおよび任意のターミネーターの任意の組合せが使用され得る。プロモーターおよびターミネーターのいくつかの適切な例には、ノパリンシンターゼ（ｎｏｓ）、オクトピンシンターゼ（ｏｃｓ）およびカリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）遺伝子からのものが含まれる。使用され得る効率的な植物プロモーターの１つのタイプは、高レベル植物プロモーターである。本技術の発現ベクターと機能的に連結しているこのようなプロモーターは、ベクターの発現を促進できなければならない。本技術において使用され得る高レベル植物プロモーターには、例えばダイズ由来のリブロース−１，５−ビスリン酸カルボキシラーゼの小サブユニットのプロモーター（Ｂｅｒｒｙ−Ｌｏｗｅ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＡＮＤ ＡＰＰ．ＧＥＮ．，１：４８３ ４９８（１９８２）、その全体は、本明細書と一致する範囲で本明細書中に援用される）、およびクロロフィル結合タンパク質のプロモーターが含まれる。これらの２つのプロモーターは植物細胞において光誘導性であることが知られている（例えば、ＧＥＮＥＴＩＣ ＥＮＧＩＮＥＥＲＩＮＧ ＯＦ ＰＬＡＮＴＳ，ＡＮ ＡＧＲＩＣＵＬＴＵＲＡＬ ＰＥＲＳＰＥＣＴＩＶＥ，Ａ．Ｃａｓｈｍｏｒｅ，Ｐｌｅｎｕｍ，Ｎ．Ｙ．（１９８３）、ｐａｇｅｓ ２９ ３８；Ｃｏｒｕｚｚｉ，Ｇ．ｅｔ ａｌ．，Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ、２５８：１３９９（１９８３）、およびＤｕｎｓｍｕｉｒ，Ｐ．ｅｔ ａｌ．，ＪＯＵＲＮＡＬ ＯＦ ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＡＮＤ ＡＰＰＬＩＥＤ ＧＥＮＥＴＩＣＳ，２：２８５（１９８３）を参照、これらはそれぞれ、参照によって本明細書と一致する範囲で本明細書中に援用される）。

Ｒｅｂ Ｄ４の前駆体の合成
既に述べたように、ステビオール配糖体は、南米の植物ステビア・レバウジアナ（Ｓｔｅｖｉａ ｒｅｂａｕｄｉａｎａ）（キク科（Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ））の葉、および植物ゴショイチゴ（Ｒｕｂｕｓ ｃｈｉｎｇｉｉ）（バラ科（Ｒｏｓａｃｅａｅ））における甘味の原因となる化合物である。これらの化合物はグリコシル化ジテルペンである。特に、これらの分子は、そのヒドロキシル水素原子がグルコース分子で置換されてエステルが形成され、ヒドロキシル水素がグルコースおよびラムノースの組合せで置換されてアセタールが形成されたステビオール分子と考えられる。

本開示における対象の化合物を製造する１つの方法は、化学的に誘導されるか、あるいは細菌および／または酵母などの操作された微生物における生合成によって産生されるステビオールまたはルボスシド（ｒｕｂｏｓｕｓｉｄｅ）などの一般的または安価な前駆体を使用し、既知のまたは安価な方法によってＲｅｂ Ｄ４などの標的のステビオール配糖体を合成することである。

本開示の態様は、ステビオールを産生することができる微生物系において酵素を組換えで発現させることを含む方法に関する。一般に、このような酵素は、コパリル二リン酸シンターゼ（ＣＰＳ）、カウレンシンターゼ（ＫＳ）およびゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（ｇｅｒａｎｙｌｇｅｒａｎｙｌ ｄｉｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｔｏ ｓｙｎｔｈａｓｅ）（ＧＧＰＰＳ）酵素を含み得る。これは、非メバロン酸（ＭＥＰ）経路またはメバロン酸経路（ＭＶＡ）などの内因性イソプレノイド合成経路を発現する微生物株において起こるべきである。いくつかの実施形態では、細胞は、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）を含む細菌細胞、またはサッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）細胞、ピキア属（Ｐｉｃｈｉａ）細胞、もしくはヤロウイア（Ｙａｒｒｏｗｉａ）細胞などの酵母細胞である。いくつかの実施形態では、細胞は藻類細胞または植物細胞である。

その後、化学合成で使用するために発酵培養物から前駆体が回収される。通常、これは、細胞培養物からのステビオール（カウレンでもあり得るが）、またはステビオール配糖体である。いくつかの実施形態では、ステビオール、カウレンおよび／またはステビオール配糖体は気相から回収されるが、他の実施形態では、細胞培養物に有機層または高分子樹脂が添加され、カウレン、ステビオールおよび／またはステビオール配糖体は、有機層または高分子樹脂から回収される。いくつかの実施形態では、ステビオール配糖体は、レバウジオシドＡ、レバウジオシドＢ、レバウジオシドＣ、レバウジオシドＤ、レバウジオシドＥ、レバウジオシドＦまたはズルコシドＡから選択される。いくつかの実施形態では、産生されるテルペノイドは、ステビオビオシド（ｓｔｅｖｉｏｂｉｏｓｉｄｅ）またはステビオシドである。いくつかの実施形態では、少なくとも１つの酵素ステップ、例えば、１つまたは複数のグリコシル化ステップがエキソビボで実施されることも認識されるはずである。

本発明の一部はＲｅｂ Ｄ４ステビオール配糖体の製造であり、これは次に、さらなる酵素変換を受けてＲｅｂ Ｍになる。本開示によると、微生物により産生されるステビオールを所望のステビオール配糖体（ここでは、Ｒｅｂ Ｄ４）に変換するための生合成は、糖部分のステビオール骨格への多段階の化学的構築を用いて、ジテルペノイドステビオールがステビオシドおよびレバウジオシドＡに変換される場合に起こる。より具体的には、化学合成は、以下のステップからなる：１）ステビオールのＣ１９ＣＯＯＨ基がトリメチルシリル（ＴＭＳ）保護されたものが、出発前駆体ステビオールから合成される。保護されたβ−Ｇｌｃ−β−Ｇｌｃ（２→１）−β−Ｇｌｃ（３→１）基を用いて、ステビオールのＣ１３−ＯＨ位置におけるトリ−グルコシル化が実施される。この後、ＴＭＳの脱保護と、保護されたモノβ−Ｇｌｃ−Ｂｒ部分のカップリングとが行われる。最終的な脱保護により保護基が全て除去され、レバウジオシドＤ４が生成される。

ステビオール配糖体の生合成
本明細書に記載されるように、本技術の組換えポリペプチドはＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ活性を有し、天然源に存在しないか、あるいは通常存在量が少ないステビオール配糖体（例えば、それぞれ、レバウジオシドＤ４およびレバウジオシドＭ）を調製するための生合成方法を開発するのに有用である。本技術の組換えポリペプチドはβ−グルコシダーゼまたはＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ活性を有し、レバウジオシドＤ４などの新規のステビオール配糖体を調製するための生合成方法を開発するのに有用であり、そしてレバウジオシドＭの製造において有用である。

基質は、１つまたは複数のＵＤＰグリコシルトランスフェラーゼにより触媒される反応でステビオール配糖体化合物に変換されることが可能な任意の天然または合成化合物であり得る。例えば、基質は、天然ステビア抽出物、ステビオール、ステビオール−１３−Ｏ−グルコシド、ステビオール−１９−Ｏ−グルコシド、ステビオール−１，２−ビオシド、ルブソシド、ステビオシド、レバウジオシドＡ、レバウジオシドＧまたはレバウジオシドＥであり得る。基質は、純粋な化合物または異なる化合物の混合物であり得る。好ましくは、基質は、ルブソシド、ステビオシド、ステビオール、レバウジオシドＡ、レバウジオシドＥおよびこれらの組合せからなる群から選択される化合物を含む。

また本明細書に記載される方法は、ステビオール配糖体化合物の生合成全体の効率を改善するか、または結果を改変するために、本明細書に記載される組換えペプチドを１つまたは複数の付加的な酵素と組み合わせて機能させるカップリング反応系も提供する。例えば、付加的な酵素は、グリコシル化反応で産生されるＵＤＰを変換してＵＤＰ−グルコースに戻す（例えば、グルコース残基の供与体としてスクロースを使用して）ことにより、グリコシル化反応に必要なＵＤＰ−グルコースを再生することが可能であり、これにより、グリコシル化反応の効率が改善される。

別の実施形態では、本技術の方法はさらに、組換えスクロースシンターゼ、基質、および本明細書に記載される組換えポリペプチドと共に、組換えＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼをインキュベートすることを含む。組換えＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼは、本技術の組換えポリペプチドにより触媒されるものとは異なるグリコシル化反応を触媒することができる。

適切なＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼは、ステビオール配糖体化合物の生合成において１つまたは複数の反応を触媒することができると当該技術分野において知られている任意のＵＧＴ、例えば、ＵＧＴ８５Ｃ２、ＵＧＴ７４Ｇ１、ＵＧＴ７６Ｇ１、またはこれらの機能的相同体を含む。

通常、本技術のインビトロ法では、ＵＤＰ−グルコースは、約０．２ｍＭ〜約５ｍＭ、好ましくは約０．５ｍＭ〜約２ｍＭ、より好ましくは約０．７ｍＭ〜約１．５ｍＭの濃度で緩衝液中に含まれる。実施形態において、組換えスクロースシンターゼが反応に含まれる場合、スクロースも約１００ｍＭ〜約５００ｍＭ、好ましくは約２００ｍＭ〜約４００ｍＭ、より好ましくは約２５０ｍＭ〜約３５０ｍＭの濃度で緩衝液中に含まれる。

通常、本技術のインビトロ法では、組換えポリペプチド対基質の重量比は、乾燥重量ベースで、約１：１００〜約１：５、好ましくは約１：５０〜約１：１０、より好ましくは約１：２５〜約１：１５である。

通常、インビトロ法の反応温度は約２０℃〜約４０℃であり、適切には２５℃〜約３７℃、より適切には２８℃〜約３２℃である。

当業者は、本明細書に記載される方法により製造されるステビオール配糖体組成物をさらに精製し、所望のフレーバーまたは甘味料組成物を得るために他のステビオール配糖体、フレーバー、または甘味料と混合することが可能であることを認識するであろう。例えば、本明細書に記載されるように製造されたレバウジオシドＤ４が強化された組成物を、主要なステビオール配糖体としてレバウジオシドＡを含有する天然ステビア抽出物と、または他の合成もしくは天然ステビオール配糖体製品と混合して、所望の甘味料組成物を作ることができる。あるいは、本明細書に記載されるステビオール配糖体組成物から得られる実質的に精製されたステビオール配糖体（例えば、レバウジオシドＤ４）は、他の甘味料、例えば、スクロース、マルトデキストリン、アスパルテーム、スクラロース、ネオテーム、アセスルファムカリウム、およびサッカリンと組み合わせることができる。当該技術分野において知られているように、他の甘味料に対するステビオール配糖体の量を調整して、所望の風味を得ることができる。本明細書に記載されるステビオール配糖体組成物（レバウジオシドＤ、レバウジオシドＥ、レバウジオシドＤ４、レバウジオシドＭまたはこれらの組合せを含む）は、食品（例えば、飲料、ソフトドリンク、アイスクリーム、乳製品、菓子類、シリアル、チューインガム、焼いた食品など）、健康補助食品、医学的栄養、および医薬品中に含まれ得る。

当業者は、本明細書に記載される方法により製造されるステビオール配糖体組成物をさらに精製し、所望のフレーバーまたは甘味料組成物を得るために他のステビオール配糖体、フレーバー、または甘味料と混合することが可能であることを認識するであろう。例えば、本明細書に記載されるように製造されたレバウジオシドＤ４が強化された組成物を、主要なステビオール配糖体としてレバウジオシドＡを含有する天然ステビア抽出物と、または他の合成もしくは天然ステビオール配糖体製品と混合して、所望の甘味料組成物を作ることができる。あるいは、本明細書に記載されるステビオール配糖体組成物から得られる実質的に精製されたステビオール配糖体（例えば、レバウジオシドＤ４）は、他の甘味料、例えば、スクロース、マルトデキストリン、アスパルテーム、スクラロース、ネオテーム、アセスルファムカリウム、およびサッカリンと組み合わせることができる。当該技術分野において知られているように、他の甘味料に対するステビオール配糖体の量を調整して、所望の風味を得ることができる。本明細書に記載されるステビオール配糖体組成物（レバウジオシドＤ、レバウジオシドＥ、レバウジオシドＤ４、レバウジオシドＷＢ１、レバウジオシドＷＢ２、レバウジオシドＭまたはこれらの組合せを含む）は、食品（例えば、飲料、ソフトドリンク、アイスクリーム、乳製品、菓子類、シリアル、チューインガム、焼いた食品など）、健康補助食品、医学的栄養、および医薬品中に含まれ得る。

同一性スコアリングを用いた配列類似性の分析
本明細書で使用される場合、「配列同一性」は、最適に整列された２つのポリヌクレオチドまたはペプチド配列が構成要素（例えば、ヌクレオチドまたはアミノ酸）のアライメントのウィンドウ全体にわたって不変である程度を指す。試験配列および参照配列の整列されたセグメントの「同一性分率」は、整列された２つの配列により共有される同一の構成要素の数を、参照配列セグメント（すなわち、参照配列全体または参照配列のより小さい画定された部分）中の構成要素の総数で割ったものである。

本明細書で使用される場合、「配列同一性パーセント」または「同一性パーセント」という用語は、２つの配列が最適に整列された（適切なヌクレオチドの挿入、欠失、またはギャップが、比較のウィンドウにわたって、合計して参照配列の２０パーセント未満である）ときに、試験（「対象」）ポリヌクレオチド分子（またはその相補鎖）と比べて、参照（「クエリ―」）ポリヌクレオチド分子（またはその相補鎖）の線状ポリヌクレオチド配列中における同一のヌクレオチドの割合を指す。比較ウィンドウを整列させるための配列の最適なアライメントは当業者に良く知られており、ＳｍｉｔｈおよびＷａｔｅｒｍａｎの局所相同性アルゴリズム、ＮｅｅｄｌｅｍａｎおよびＷｕｎｓｃｈの相同性アライメントアルゴリズム、ＰｅａｒｓｏｎおよびＬｉｐｍａｎの類似性検索法などのツールによって、好ましくは、これらのアルゴリズムのコンピュータ化された実行、例えば、ＧＣＧ（登録商標）Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ Ｐａｃｋａｇｅ（登録商標）（Ａｃｃｅｌｒｙｓ Ｉｎｃ．，Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ，ＭＡ）の一部として利用可能なＧＡＰ、ＢＥＳＴＦＩＴ、ＦＡＳＴＡ、およびＴＦＡＳＴＡなどによって実施され得る。試験配列および参照配列の整列されたセグメントの「同一性分率」は、整列された２つの配列により共有される同一の構成要素の数を、参照配列セグメント（すなわち、参照配列全体または参照配列のより小さい画定された部分）中の構成要素の総数で割ったものである。配列同一性パーセントは、同一性分率に１００を掛けたもので表される。１つまたは複数のポリヌクレオチド配列の比較は、全長ポリヌクレオチド配列もしくはその一部に対するか、またはより長いポリヌクレオチド配列に対するものであり得る。本開示の目的のために、「同一性パーセント」は、翻訳されたヌクレオチド配列についてはＢＬＡＳＴＸバージョン２．０、そしてポリヌクレオチド配列についてはＢＬＡＳＴＮバージョン２．０を用いて決定されてもよい。

配列同一性のパーセントは、好ましくは、Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｐａｃｋａｇｅ（商標）（バージョン１０；Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ｇｒｏｕｐ，Ｉｎｃ．，Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）の「Ｂｅｓｔ Ｆｉｔ」または「Ｇａｐ」プログラムを用いて決定される。「Ｇａｐ」は、ＮｅｅｄｌｅｍａｎおよびＷｕｎｓｃｈ（Ｎｅｅｄｌｅｍａｎ ａｎｄ Ｗｕｎｓｃｈ，ＪＯＵＲＮＡＬ ＯＦ ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＢＩＯＬＯＧＹ ４８：４４３−４５３，１９７０）のアルゴリズムを利用して、マッチの数を最大化すると共に、ギャップの数を最小化する２つの配列のアライメントを見出す。「ＢｅｓｔＦｉｔ」は、２つの配列間の類似性の最良セグメントの最適なアライメントを実施し、ＳｍｉｔｈおよびＷａｔｅｒｍａｎの局所相同性アルゴリズム（Ｓｍｉｔｈ ａｎｄ Ｗａｔｅｒｍａｎ，ＡＤＶＡＮＣＥＳ ＩＮ ＡＰＰＬＩＥＤ ＭＡＴＨＥＭＡＴＩＣＳ，２：４８２−４８９，１９８１、Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ．，ＮＵＣＬＥＩＣ ＡＣＩＤＳ ＲＥＳＥＡＲＣＨ １１：２２０５−２２２０，１９８３）を用いて、マッチの数を最大化するためにギャップを挿入する。同一性パーセントは、最も好ましくは、「Ｂｅｓｔ Ｆｉｔ」プログラムを用いて決定される。

配列同一性を決定するための有用な方法は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｌｉｂｒａｒｙ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ，Ｂｅｔｈｅｓｄａ，Ｍｄ．２０８９４においてＮａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ（ＮＣＢＩ）から公に入手可能なＢａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ Ｔｏｏｌ（ＢＬＡＳＴ）プログラムにも開示されている；ＢＬＡＳＴ Ｍａｎｕａｌ，Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．，ＮＣＢＩ，ＮＬＭ，ＮＩＨ；Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．ＭＯＬ．ＢＩＯＬ．２１５：４０３−４１０（１９９０）を参照されたい；バージョン２．０以上のＢＬＡＳＴプログラムは、ギャップ（欠失および挿入）のアライメントへの導入を可能にする；ペプチド配列については、配列同一性を決定するためにＢＬＡＳＴＸを使用することができる；そしてポリヌクレオチド配列については、配列同一性を決定するためにＢＬＡＳＴＮを使用することができる。

本明細書で使用される場合、「実質的な配列同一性パーセント」という用語は、少なくとも約７０％の配列同一性、少なくとも約８０％の配列同一性、少なくとも約８５％の同一性、少なくとも約９０％の配列同一性、またはさらにより大きい配列同一性、例えば、約９８％または約９９％の配列同一性である配列同一性パーセントを指す。従って、本開示の一実施形態は、本明細書に記載されるポリヌクレオチド配列との少なくとも約７０％の配列同一性、少なくとも約８０％の配列同一性、少なくとも約８５％の同一性、少なくとも約９０％の配列同一性、またはさらにより大きい配列同一性、例えば、約９８％または約９９％の配列同一性を有するポリヌクレオチド分子である。本開示のＢｌｕ１およびＣＰ１遺伝子の活性を有するポリヌクレオチド分子は、様々なステビオール配糖体の産生を指示することができ、本明細書で提供されるポリヌクレオチド配列に対して実質的な配列同一性パーセントを有し、本開示の範囲内に包含される。

同一性および類似性
同一性は、配列のアライメントの後に一対の配列の間で同じであるアミノ酸の分率であり（これは、配列情報または構造情報または何らかの他の情報のみを用いて行なうことができるが、通常は配列情報のみに基づく）、類似性は、いくつかの類似性マトリックスを使用するアライメントに基づいて割り当てられたスコアである。類似性インデックスは、以下のＢＬＯＳＵＭ６２、ＰＡＭ２５０、もしくはＧＯＮＮＥＴ、またはタンパク質の配列アライメントのために当業者により使用される任意のマトリックスのいずれか１つであり得る。

同一性は、２つのサブ配列間の一致の度合いである（配列間にギャップはない）。２５％以上の同一性は機能の類似性を意味し、１８〜２５％の同一性は、構造または機能の類似性を意味する。２つの完全に無関係またはランダムな配列（残基が１００を超える）が２０％よりも高い同一性を有し得ることに留意する。類似性は、２つの配列が比較されたときの、これらの間の類似の度合いである。これは、その同一性に依存する。

消費製品
別の態様では、本開示は、本明細書に記載されるレバウジオシド、例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ（例えば、Ｒｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍなど）を含む消費製品に関する。いくつかの実施形態では、消費製品は、甘味化量の本明細書に記載されるレバウジオシド、例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、および／またはＲｅｂ Ｍを含む。いくつかの実施形態では、消費製品は、飲料製品、食品、栄養補助食品、医薬品、健康補助食品、歯科用衛生組成物、食用ゲル組成物、化粧品および卓上香味料からなる群から選択される。

いくつかの実施形態では、消費製品は、約１％（ｗ／ｖ−％）〜約４％（ｗ／ｖ−％）のスクロース溶液に等しい甘味強度を有することができる。

いくつかの実施形態では、本明細書に記載されるレバウジオシド、例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ（例えば、Ｒｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍなど）は、経口消費製品中の唯一の甘味料である。

いくつかの実施形態では、消費製品は、少なくとも１つの付加的な甘味料を有することもできる。少なくとも１つの付加的な甘味料は、例えば、天然高甘味度甘味料であり得る。付加的な甘味料は、ステビア抽出物、ステビオール配糖体、ステビオシド、レバウジオシドＡ、レバウジオシドＢ、レバウジオシドＣ、レバウジオシドＤ、レバウジオシドＤ２、レバウジオシドＥ、レバウジオシドＦ、ズルコシドＡ、ルブソシド、ステビオールビオシド、スクロース、高フルクトースコーンシロップ、フルクトース、グルコース、キシロース、アラビノース、ラムノース、エリスリトール、キシリトール、マンニトール、ソルビトール、イノシトール、ＡｃｅＫ、アスパルテーム、ネオテーム、スクラロース、サッカリン、ナリンギンジヒドロカルコン（ＮａｒＤＨＣ）、ネオヘスペリジンジヒドロカルコン（ＮＤＨＣ）、ルブソシド、モグロシドＩＶ、シアメノシドＩ、モグロシドＶ、モナチン、タウマチン、モネリン、ブラゼイン、Ｌ−アラニン、グリシン、羅漢果、ヘルナンズルチン、フィロズルチン、トリロブタイン、およびこれらの組合せから選択することができる。

いくつかの実施形態では、消費製品は少なくとも１つの添加剤を有することもできる。添加剤は、例えば、炭水化物、ポリオール、アミノ酸またはその塩、ポリアミノ酸またはその塩、糖酸またはその塩、ヌクレオチド、有機酸、無機酸、有機塩、有機酸塩、有機塩基塩、無機塩、苦味化合物、着香剤、香味成分、収斂化合物、タンパク質、タンパク質加水分解物、界面活性剤、乳化剤、フラボノイド、アルコール、ポリマー、およびこれらの組み合わせであり得る。

１つの態様では、本開示は、甘味化量の本明細書に記載されるレバウジオシド、例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ（例えば、Ｒｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍなど）を含む飲料製品に関する。

飲料製品は、例えば、炭酸飲料製品または非炭酸飲料製品であり得る。また飲料製品は、例えば、ソフトドリンク、ファウンテン飲料、フローズン飲料、レディ・トゥ・ドリンク飲料、フローズンおよびレディ・トゥ・ドリンク飲料、コーヒー、茶、乳飲料、粉末ソフトドリンク、液体濃縮物、フレーバー・ウォーター、強化水、果実ジュース、果実ジュースフレーバードリンク、スポーツドリンク、またはエネルギードリンクであり得る。

いくつかの実施形態では、本開示の飲料製品は、例えば、酸味料、果実ジュースおよび／または野菜ジュース、パルプなど、香味料、着色料、保存剤、ビタミン、ミネラル、電解質、エリスリトール、タガトース、グリセリン、および二酸化炭素などの１つまたは複数の飲料成分を含むことができる。このような飲料製品は、飲料濃縮物または炭酸を含むレディ・トゥ・ドリンク飲料などの任意の適切な形態で提供され得る。

特定の実施形態では、本開示の飲料製品は、多数の異なる特定の配合または構成のいずれかを有することができる。本開示の飲料製品の配合物は、製品の意図される市場区分、その所望の栄養特性、フレーバープロファイルなどの因子に応じてある程度変動し得る。例えば、特定の実施形態では、一般に、さらなる成分を特定の飲料製品の配合物に添加することが選択肢であり得る。例えば、付加的な甘味料を添加することができ、香味料、電解質、ビタミン、果実ジュースまたは他の果実製品、味物質、マスキング剤など、フレーバー増強剤、および／または炭酸化は、通常、風味、口あたり、栄養特性などを変えるために任意のこのような配合物に添加され得る。実施形態では、飲料製品は、水、本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）、酸味料、および香味料を含有するコーラ飲料であり得る。例示的な香味料は、例えば、コーラ香味料、シトラス香味料、およびスパイス香味料であり得る。いくつかの実施形態では、二酸化炭素の形態での炭酸化が泡立ちのために添加され得る。他の実施形態では、他の成分、製造技術、所望の貯蔵期間などに応じて保存剤を添加することができる。特定の実施形態では、カフェインを添加することができる。いくつかの実施形態では、飲料製品は、特徴的に、炭酸水、甘味料、コーラ・ナッツ抽出物および／または他の香味料、カラメル着色料、１つまたは複数の酸、および任意選択的に、他の成分を含有する、コーラ風味の炭酸飲料であり得る。

別の態様では、本開示は、本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）を含む消費製品に関し、本消費製品は、食品、栄養補助食品、医薬品、健康補助食品、歯科用衛生組成物、食用ゲル組成物、化粧品または卓上香味料である。いくつかの実施形態では、レバウジオシドは甘味化量で存在する。

本明細書で使用される場合、「健康補助食品」は、食事を補充し、そして食事において欠けているかまたは十分な量で消費されない可能性のある栄養分、例えば、ビタミン、ミネラル、繊維、脂肪酸、アミノ酸などを提供することを目的とした化合物を指す。当該技術分野において知られている任意の適切な健康補助食品が使用され得る。適切な健康補助食品の例は、例えば、栄養分、ビタミン、ミネラル、繊維、脂肪酸、ハーブ、ボタニカル、アミノ酸、および代謝産物であり得る。

本明細書で使用される場合、「栄養補助食品」は、疾患または障害（例えば、疲労、不眠症、老化作用、記憶喪失、気分障害、心血管疾患および高レベルの血中コレステロール、糖尿病、骨粗鬆症、炎症、自己免疫障害など）の予防および／または処置を含む、薬用または健康上の利益を提供し得る任意の食品または食品の一部を含む化合物を指す。当該技術分野において知られている任意の適切な栄養補助食品が使用され得る。いくつかの実施形態では、栄養補助食品は、食品および飲料のサプリメントとして、ならびにカプセルもしくは錠剤などの固体製剤、または溶液もしくは懸濁液などの液体製剤であり得る、経腸または非経口用途のための医薬製剤として使用することができる。

いくつかの実施形態では、健康補助食品および栄養補助食品はさらに、保護親水コロイド（例えば、ガム、タンパク質、加工デンプン）、結合剤、皮膜形成剤、カプセル化剤／材料、壁／殻材料、マトリックス化合物、コーティング、乳化剤、界面活性剤、可溶化剤（油、脂肪、ワックス、レシチンなど）、吸着剤、担体、充填剤、共化合物、分散剤、湿潤剤、加工助剤（溶媒）、流動化剤、風味マスキング剤、増量剤、ゼリー化剤、ゲル形成剤、酸化防止剤および抗菌剤を含有することができる。

本明細書で使用される場合、「ゲル」は、粒子のネットワークが液体媒体の体積に広がったコロイド系を指す。ゲルは主に液体から構成され、従って液体と同様の密度を示すが、ゲルは、液体媒体に広がる粒子のネットワークのために、固体の構造コヒーレンスを有する。この理由から、ゲルは一般に、固体のゼリー様材料のように見える。ゲルは、いくつかの用途で使用することができる。例えば、ゲルは、食品、塗料、および接着剤において使用することができる。食べることができるゲルは、「食用ゲル組成物」と呼ばれる。食用ゲル組成物は、通常、軽食として、デザートとして、主食の一部として、または主食と共に食べられる。適切な食用ゲル組成物の例は、例えば、ゲルデザート、プディング、ジャム、ゼリー、ペースト、トライフル、アスピック、マシュマロ、グミキャンディなどであり得る。いくつかの実施形態では、食用ゲルミックスは一般に粉末または顆粒状の固体であり、これに流体が添加されて、食用ゲル組成物が形成され得る。適切な流体の例は、例えば、水、乳製品流体、乳製品類似流体、ジュース、アルコール、アルコール飲料、およびこれらの組み合わせであり得る。適切な乳製品流体の例は、例えば、乳、発酵乳、クリーム、流体乳清、およびこれらの混合物であり得る。適切な乳製品類似流体の例は、例えば、豆乳および乳製品ではないコーヒー用クリームであり得る。

本明細書で使用される場合、「ゲル化成分」という用語は、液体媒体内にコロイド系を形成することができる任意の材料を指す。適切なゲル化成分の例は、例えば、ゼラチン、アルギン酸塩、カラゲナン（ｃａｒａｇｅｅｎａｎ）、ガム、ペクチン、コンニャク、寒天、食品酸、レンネット、デンプン、デンプン誘導体、およびこれらの組み合わせであり得る。食用ゲルミックスまたは食用ゲル組成物で使用されるゲル化成分の量は、例えば、使用される特定のゲル化成分、使用される特定の流体塩基、およびゲルの所望の特性などのいくつかの因子に応じてかなり変動し得ることが当業者によく知られている。

本開示のゲルミックスおよびゲル組成物は、当該技術分野において知られている任意の適切な方法によって調製することができる。いくつかの実施形態では、本開示の食用ゲルミックスおよび食用ゲル組成物は、ゲル化剤に加えて他の成分を用いて調製することができる。他の適切な成分の例は、例えば、食品酸、食品酸の塩、緩衝系、増量剤、捕捉剤、架橋剤、１つまたは複数のフレーバー、１つまたは複数の色、およびこれらの組み合わせであり得る。

当該技術分野において知られている任意の適切な医薬組成物が使用され得る。いくつかの実施形態では、本開示の医薬組成物は、生物学的効果を発揮する１つまたは複数の活性剤を含有する医薬品を処方するために使用することができる。従って、いくつかの実施形態では、本開示の医薬組成物は、生物学的効果を発揮する１つまたは複数の活性剤を含有することができる。適切な活性剤は、当該技術分野においてよく知られている（例えば、Ｔｈｅ Ｐｈｙｓｉｃｉａｎ’ｓ Ｄｅｓｋ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ）。このような組成物は、例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，Ｐａ．，ＵＳＡに記載されるように、当該技術分野においてよく知られている手順に従って調製することができる。

本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）は、当該技術分野において知られている任意の適切な歯科および口腔衛生組成物と共に使用することができる。適切な歯科および口腔衛生組成物の例は、例えば、練り歯磨き、歯の光沢剤、デンタルフロス、マウスウォッシュ、マウスリンス、歯磨剤、マウススプレー、マウスリフレッシャー、プラークリンス、歯科用鎮痛剤などであり得る。

本明細書で使用される場合、「食品」は、栄養価を有し、ヒトおよび動物による消費を目的とすることができるが、そうでなくてもよい、任意の固体または液体の摂取可能な材料を指す。

適切な食品の例は、例えば、菓子類組成物、例えば、キャンディ、ミント、果実風味のドロップ、ココア製品、チョコレートなど；香辛料、例えば、ケチャップ、マスタード、マヨネーズなど；チューインガム；シリアル組成物；焼いた食品、例えば、パン、ケーキ、パイ、クッキーなど；乳製品、例えば、乳、チーズ、クリーム、アイスクリーム、サワークリーム、ヨーグルト、シャーベットなど；卓上甘味料組成物；スープ；シチュー；インスタント食品；食肉、例えば、ハム、ベーコン、ソーセージ、ジャーキーなど；ゼラチンおよびゼラチン様製品、例えば、ジャム、ゼリー、貯蔵食料など；果実；野菜；卵製品；アイシング；糖を含むシロップ；軽食；ナッツミートおよびナッツ製品；ならびに動物飼料であり得る。

また食品は、ハーブ、スパイスおよび調味料、天然および合成フレーバー、ならびにフレーバー増強剤、例えばグルタミン酸モノナトリウムでもあり得る。いくつかの実施形態では、食品は、例えば、調製されたパッケージ化製品、例えば、ダイエット用甘味料、液体甘味料、粒状フレーバーミックス、ペットフード、家畜飼料、タバコ、およびベーキング用途の材料、例えば、パン、クッキー、ケーキ、パンケーキ、ドーナツなどの調製のための粉末ベーキングミックスであり得る。他の実施形態では、食品は、スクロースをほとんどまたは全く含有しないダイエットおよび低カロリー食品および飲料であり得る。

前述の実施形態のいずれかと組み合わせることができる特定の実施形態では、本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）は唯一の甘味料であり、任意選択的に、製品は、約１％〜約４％（ｗ／ｖ−％）のスクロース溶液に等しい甘味強度を有する。前述の実施形態のいずれかと組み合わせることができる特定の実施形態では、消費製品および飲料製品はさらに付加的な甘味料を含むことができ、任意選択的に、製品は、約１％〜約１０％（ｗ／ｖ−％）のスクロース溶液に等しい甘味強度を有する。前述の実施形態のいずれかと組み合わせることができる特定の実施形態では、製品中の全ての甘味成分は高甘味度甘味料である。前述の実施形態のいずれかと組み合わせることができる特定の実施形態では、製品中の全ての甘味成分は高甘味度甘味料であり得る。前述の実施形態のいずれかと組み合わせることができる特定の実施形態では、付加的な甘味料は、ステビア抽出物、ステビオール配糖体、ステビオシド、レバウジオシドＡ、レバウジオシドＢ、レバウジオシドＣ、レバウジオシドＤ、レバウジオシドＤ２、レバウジオシドＦ、ズルコシドＡ、ルブソシド、ステビオールビオシド、スクロース、高フルクトースコーンシロップ、フルクトース、グルコース、キシロース、アラビノース、ラムノース、エリスリトール、キシリトール、マンニトール、ソルビトール、イノシトール、ＡｃｅＫ、アスパルテーム、ネオテーム、スクラロース、サッカリン、ナリンギンジヒドロカルコン（ＮａｒＤＨＣ）、ネオヘスペリジンジヒドロカルコン（ＮＤＨＣ）、ルブソシドモグロシドＩＶ、シアメノシドＩ、モグロシドＶ、モナチン、タウマチン、モネリン、ブラゼイン、Ｌ−アラニン、グリシン、羅漢果、ヘルナンズルチン、フィロズルチン、トリロブタイン、およびこれらの組合せから選択される１つまたは複数の甘味料を含有する。前述の実施形態のいずれかと組み合わせることができる特定の実施形態では、消費製品および飲料製品はさらに、炭水化物、ポリオール、アミノ酸またはその塩、ポリアミノ酸またはその塩、糖酸またはその塩、ヌクレオチド、有機酸、無機酸、有機塩、有機酸塩、有機塩基塩、無機塩、苦味化合物、着香剤、香味成分、収斂化合物、タンパク質、タンパク質加水分解物、界面活性剤、乳化剤、フラボノイド、アルコール、ポリマー、およびこれらの組合せから選択される１つまたは複数の添加剤を含むことができる。前述の実施形態のいずれかと組み合わせることができる特定の実施形態では、本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）は、製品中に添加される前、約５０重量％〜約１００重量％の純度を有する。

いくつかの実施形態では、本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）は、充填剤、増量剤および固化防止剤のうちの１つまたは複数をさらに含む組成物において提供される。適切な充填剤、増量剤および固化防止剤は、当該技術分野において知られている。

特定の実施形態では、本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）は、消費製品および飲料製品を甘くする、そして／あるいはその甘味を増強するのに十分な最終濃度で包含および／または添加され得る。「最終濃度」は、最終消費製品および飲料製品中に（すなわち、消費製品および飲料製品を製造するために全ての成分および／または化合物が添加された後に）存在する本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）の濃度を指す。従って、特定の実施形態では、本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）は、消費製品および飲料製品を調製するために使用される化合物または成分に包含および／または添加される。本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）は、単一の化合物もしくは成分、または複数の化合物および成分中に存在し得る。いくつかの実施形態では、本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）は、消費製品および飲料製品に包含および／または添加される。

特定の実施形態では、本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）は、消費製品および飲料製品に包含および／または添加される唯一の甘味料である。いくつかの実施形態では、レバウジオシドを含む消費製品および飲料製品は、約１％〜約４％（ｗ／ｖ−％）のスクロース溶液、約１％〜約３％（ｗ／ｖ−％）のスクロース溶液、または約１％〜約２％（ｗ／ｖ−％）のスクロース溶液に等しい甘味強度を有する。あるいは、消費製品および飲料製品は、約１％〜約４％（ｗ／ｖ−％）のスクロース溶液、約２％〜約４％（ｗ／ｖ−％）のスクロース溶液、約３％〜約４％（ｗ／ｖ−％）のスクロース溶液、または約４％に等しい甘味強度を有する。例えば、消費製品および飲料製品は、約１％、約２％、約３％、または約４％（ｗ／ｖ−％）のスクロース溶液に等しい甘味強度を有し得る（これらの値の間の任意の範囲を含む）。

本開示の消費製品および飲料製品は、本明細書に記載されるレバウジオシド（例えば、Ｒｅｂ Ｗ１、Ｒｅｂ Ｗ２、Ｒｅｂ Ｄ４、Ｒｅｂ Ｍ、またはこれらの組合せ、例えばＲｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍ）と、本開示の１つまたは複数の甘味料との混合物を、望ましい甘味強度、栄養特性、風味プロファイル、口あたり、または他の官能因子を達成するのに十分な比率で含むことができる。

上記の記載から明らかであるように、本開示の特定の態様は、本明細書に示される実施例の具体的な詳細によって限定されず、従って、他の修正および適用またはその等価物に当業者が気付き得ることが考えられる。従って、特許請求の範囲は、本開示の趣旨および範囲から逸脱しないこのような修正および適用の全てを包含することが意図される。

さらに、他に定義されない限り、本明細書で使用される全ての技術および科学用語は、本開示が属する技術分野の当業者により一般的に理解されるものと同じ意味を有する。本開示の実施または試験において、本明細書に記載されるものと類似または等価の任意の方法および材料を使用することができるが、好ましい方法および材料は上記に記載される。

上記の発明は、理解を目的として例証および実施例によりいくらか詳細に記載されているが、特定の変化および修正が実施され得ることは、当業者には明らかであろう。従って、説明および実施例は、特許請求の範囲により画定される本発明の範囲を限定すると解釈されてはならない。

実施例１：Ｒｅｂ Ｄ４の酵素合成
Ｒｅｂ Ｄ４を生成する酵素法はいくつかある。Ｒｅｂ Ｗから出発する方法の１つをここで提示する。

以前に、我々は、Ｒｅｂ ＷのＲｅｂ Ｖからの製造を実証した（国際公開第２０１６０５４５４０号）。ここで、我々は、Ｒｅｂ Ｗをピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ）からのβ−グルコシダーゼ（Ｂ−ｇｌｕ１、配列番号５）により加水分解して、「レバウジオシドＷＢ１」と呼ばれる新規のステビオール配糖体が生成され得ることを見出した。生成したレバウジオシドＷＢ１を、次にＢ−ｇｌｕ１により加水分解して、レバウジオシドＷＢ２を生成することができる（図１４を参照）。

より具体的には、Ｂ−ｇｌｕ１（配列番号６）遺伝子の全長ＤＮＡ断片を合成した。具体的には、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）発現のためにｃＤＮＡをコドン最適化した（Ｇｅｎｓｃｒｉｐｔ，Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ，ＮＪ）。合成したＤＮＡを、細菌発現ベクターｐＥＴｉｔｅ Ｎ−Ｈｉｓ ＳＵＭＯ Ｋａｎベクター（Ｌｕｃｉｇｅｎ）にクローニングした。Ｂ−ｇｌｕ１（配列番号５を参照）をコードするヌクレオチド配列（配列番号６）をフレームに挿入した。

発現構築物を大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）ＢＬ２１（ＤＥ３）に形質転換させ、続いてこれを、０．８〜１．０のＯＤ６００に到達するまで、５０μｇ／ｍＬのカナマイシンを含有するＬＢ培地中３７℃で成長させた。１ｍＭのイソプロピルβ−Ｄ−１−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）の添加によりタンパク質発現を誘導し、培養物を１６℃で２２時間、さらに成長させた。遠心分離（３，０００ｘｇ；１０分；４℃）により細胞を回収した。細胞ペレットを捕集し、直ちに使用するか、あるいは−８０℃で貯蔵した。

細胞ペレットを溶解緩衝液（５０ｍＭのリン酸カリウム緩衝液、ｐＨ７．２、２５μｇ／ｍｌのリゾチーム、５μｇ／ｍｌのデオキシリボヌクレアーゼＩ、２０ｍＭのイミダゾール、５００ｍＭのＮａＣｌ、１０％のグリセロール、および０．４％のＴＲＩＴＯＮ Ｘ−１００）中に再懸濁させた。４℃で超音波処理により細胞を破壊し、遠心分離（１８，０００ｘｇ；３０分）により細胞片を浄化した。上清を平衡化（平衡化緩衝液：５０ｍＭのリン酸カリウム緩衝液、ｐＨ７．２、２０ｍＭのイミダゾール、５００ｍＭのＮａＣｌ、１０％のグリセロール）Ｎｉ−ＮＴＡ（Ｑｉａｇｅｎ）アフィニティカラムにロードした。タンパク質サンプルをロードした後、カラムを平衡化緩衝液で洗浄して、非結合汚染物質タンパク質を除去した。Ｈｉｓタグ化Ｂ−ｇｌｕ１組換えポリペプチドを、２５０ｍＭのイミダゾールを含有する平衡化緩衝液により溶出させた。

組換えＢ−ｇｌｕ１（１０μｇ）を２００μＬのインビトロ反応系に添加した。反応系は、５０ｍＭのリン酸カリウム緩衝液、ｐＨ７．２、および基質としての１ｍｇ／ｍｌのレバウジオシドＷを含有した。反応を３７℃で実施し、２００μＬの１−ブタノールの添加により終結させた。サンプルを２００μＬの１−ブタノールで３回抽出した。プールした画分を乾燥させ、高速液体クロマトグラフィ（ＨＰＬＣ）分析のために７０μＬの８０％のメタノール中に溶解させた。

ＨＰＬＣ分析は、クォータナリポンプ、温度制御されたカラムコンパートメント、オートサンプラーおよびＵＶ吸光度検出器を含むＤｉｏｎｅｘ ＵＰＬＣ ｕｌｔｉｍａｔｅ ３０００システム（Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ，ＣＡ）を用いて実施した。ステビオール配糖体のキャラクタリゼーションのためにガードカラムを有するＳｙｎｅｒｇｉ Ｈｙｄｒｏ−ＲＰカラムを使用した。ＨＰＬＣ分析における溶出のために水中のアセトニトリルを使用した。検出波長は２１０ｎｍであった。

図３に示されるように、Ｂ−ｇｌｕ１は１時間でレバウジオシドＷ基質を加水分解して、レバウジオシドＷＢ１を生成した（図３Ｂ）。生成したレバウジオシドＷＢ１は、その後の反応時点において、さらにレバウジオシドＷＢ２に変換され得る（図３Ｃおよび３Ｄ）。

結論として、レバウジオシドＷがＢ−ｇｌｕ１により加水分解されて、ＷＢ１が生成され、生成したＷＢ１はさらにＢ−ｇｌｕ１により加水分解されて、ＷＢ２が生成された。

上記の中間体レバウジオシドＷＢ２は、ＵＧＴ８５Ｃ２酵素とインキュベートすることにより変換されて、レバウジオシドＷＢ１に戻ることができる（図４）。組換えＵＧＴ８５Ｃ２酵素（１０μｇ）を２００μＬのインビトロ反応系で試験した。反応系は、５０ｍＭのリン酸カリウム緩衝液、ｐＨ７．２、３ｍＭのＭｇＣｌ２、０．５ｍｇ／ｍｌのレバウジオシドＷＢ２基質、および３ｍＭのＵＤＰ−グルコースを含有した。図３に示されるように、レバウジオシドＷＢ２は、ＵＧＴ８５Ｃ２（配列番号７、図４）によってレバウジオシドＷＢ１に変換させることができる。ＵＧＴ８５Ｃ２酵素は、Ｃ４カルボキシルのＣ−１３にグルコースを付加させてステビオールからステビオール−１３−モノシドを形成する活性を有する。これらの結果は、Ｂ−ｇｌｕ１がレバウジオシドＷＢ１のＣ１３位からグルコースを加水分解して、レバウジオシドＷＢ２を生じることを示した。レバウジオシドＷＢ１およびレバウジオシドＷＢ２の予想構造は図２に示される。構造は、ＬＣ−ＭＳ分析により確認された（図５）。

上記の中間体Ｒｅｂ ＷＢ１は、ＨＶ１ＵＧＴ酵素とインキュベートすることによりＲｅｂ Ｄ４に変換させることができる（国際公開第２０１５／０６５６５０号）。組換えＨＶ１（１０μｇ）を２００μＬのインビトロ反応系で試験した。反応系は、５０ｍＭのリン酸カリウム緩衝液、ｐＨ７．２、３ｍＭのＭｇＣｌ₂、０．５ｍｇ／ｍｌのレバウジオシドＷＢ１基質、および３ｍＭのＵＤＰ−グルコースを含有した。図４に示されるように、レバウジオシドＷＢ１は、ＨＶ１により６時間で完全にレバウジオシドＤ４に変換させることができる（図６Ｃ）。

上記の酵素反応に従って、Ｄ４の構造は、（１３−［（２−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−β−Ｄ−グルコピラノシル）オキシ］ｅｎｔ−カウラ−１６−エン−１９−酸−［（２−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−３−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−β−Ｄ−グルコピラノシル）エステル］であると予想された（図７Ａ）。Ｒｅｂ Ｄ４の構造は、ＬＣ−ＭＳにより確認された（図７Ｂ）。質量スペクトル分析により、予想構造と同じ質量［（Ｍ＋Ｎａ）１１５１．４７ｍ／ｚ］が示された。

実施例２：野生型酵素によるＲｅｂ Ｄ４からＲｅｂ Ｍへの変換
我々は、Ｒｅｂ Ｄ４がＵＧＴ７６Ｇ１によりさらにＲｅｂ Ｍに変換され得ることを発見した。ＵＧＴ７６Ｇ１（配列番号２）の全長ＤＮＡ断片を合成した。大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）発現のためにｃＤＮＡをコドン最適化した（Ｇｅｎｓｃｒｉｐｔ）。合成したＤＮＡを、細菌発現ベクターｐＥＴｉｔｅ Ｎ−Ｈｉｓ ＳＵＭＯ Ｋａｎベクター（Ｌｕｃｉｇｅｎ）にクローニングした。７６Ｇ１をコードするヌクレオチド配列をフレームに挿入した。

発現構築物を大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）ＢＬ２１（ＤＥ３）に形質転換させ、続いてこれを、０．８〜１．０のＯＤ６００に到達するまで、５０μｇ／ｍＬのカナマイシンを含有するＬＢ培地中３７℃で成長させた。０．５ｍＭのＩＰＴＧの添加によりタンパク質発現を誘導し、培養物を１６℃で２２時間、さらに成長させた。遠心分離（３，０００ｘｇ；１０分；４℃）により細胞を回収した。細胞ペレットを捕集し、直ちに使用するか、あるいは−８０℃で貯蔵した。

細胞ペレットを上記の溶解緩衝液中に再懸濁させた。４℃で超音波処理により細胞を破壊し、遠心分離（１８，０００ｘｇ；３０分）により細胞片を浄化した。上清を上記の平衡化Ｎｉ−ＮＴＡ（Ｑｉａｇｅｎ）アフィニティカラムにロードした。タンパク質サンプルをロードした後、カラムを平衡化緩衝液で洗浄して、非結合汚染物質タンパク質を除去した。Ｈｉｓタグ化７６Ｇ１組換えポリペプチドを、２５０ｍＭのイミダゾールを含有する平衡化緩衝液により溶出させた。

組換えＵＧＴ７６Ｇ１（１０μｇ）を２００μＬのインビトロ反応系に添加した。反応系は、５０ｍＭのリン酸カリウム緩衝液、ｐＨ７．２、補助因子としての１ｍＭのＵＤＰＧ、および基質としての１ｍｇ／ｍｌのＲｅｂ Ｄ４を含有した。反応を３７℃で実施し、２００μＬの１−ブタノールの添加により終結させた。サンプルを２００μＬの１−ブタノールで３回抽出した。プールした画分を乾燥させ、高速液体クロマトグラフィ（ＨＰＬＣ）分析のために７０μＬの８０％のメタノール中に溶解させた。

ＨＰＬＣ分析は、クォータナリポンプ、温度制御されたカラムコンパートメント、オートサンプラーおよびＵＶ吸光度検出器を含むＤｉｏｎｅｘ ＵＰＬＣ ｕｌｔｉｍａｔｅ ３０００システムを用いて実施した。ステビオール配糖体のキャラクタリゼーションのためにガードカラムを有するＳｙｎｅｒｇｉ Ｈｙｄｒｏ−ＲＰカラムを使用した。ＨＰＬＣ分析における溶出のために水中のアセトニトリルを使用した。検出波長は２１０ｎｍであった。

図１３に示されるように、ＵＧＴ７６Ｇ１は、Ｒｅｂ Ｄ４をＲｅｂ Ｍに変換させることができる（図１３ＣおよびＦ）．

実施例３：Ｒｅｂ Ｄ４をＲｅｂ Ｍへ触媒するＵＧＴ酵素の反応中心の解明
ＵＤＰ−グルコシルトランスフェラーゼの化学プロセスより効率的に決定するために、我々は、野生型ステビオールＵＤＰ−グルコシルトランスフェラーゼＵＧＴ７６Ｇ１の結晶構造を得た。この酵素は、ステビオール配糖体の生物変換を実行する最初に報告された酵素である。Ｒｅｂ Ｄ４からＲｅｂ Ｍへの変換のための酵素を設計してそれをより完全に理解し、そしてその後、この知識を用いてＲｅｂ Ｄ４からＲｅｂ Ｍへの生物変換において有用であり得る酵素をより効率的に見出すまたは設計するために、我々は反応中心の構造情報および基質結合部位を取得しなければならない。

セレノメチオニン（ＳｅＭｅｔ）置換されたタンパク質の産生のために、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）ＢＬ２１（ＤＥ３）細胞をｐＥＴ−２８ａ−ＵＧＴ７６Ｇ１ベクターで形質転換し、５０ｕｇｍＬ−１のカナマイシンを含有するＳｅＭｅｔを補充したＭ９最小培地（Ｄｏｕｂｌｉｅ，２００７）において、３７℃（２５０ｒｐｍ）でＡ６００ｎｍ〜０．８まで成長させた。イソプロピル１−チオ−β−Ｄ−ガラクトピラノシド（０．８ｍＭ最終）の添加によりタンパク質発現を誘導し、細胞を一晩成長させた（１６℃）。遠心分離（１０，０００ｘｇ；１０分）により細胞ペレットを回収し、溶解緩衝液（５０ｍＭのＴｒｉｓ、ｐＨ８．０、５００ｍＭのＮａＣｌ、２０ｍＭのイミダゾール、１ｍＭのβ−メルカプトエタノール（β−ＭＥ）、１０％（ｖ／ｖ）のグリセロール、および１％（ｖ／ｖ）のＴｗｅｅｎ−２０）中に懸濁させた。超音波処理による溶解の後、遠心分離（３０，０００ｘｇ；４５分）により細胞片を除去し、上清を、洗浄緩衝液（溶解緩衝液からＴｗｅｅｎ−２０を除いたもの）で平衡化したＮｉ２＋−ニトリロ酢酸（ＮＴＡ；Ｑｉａｇｅｎ）カラムに通過させた。ロードした後、１０カラム体積の洗浄緩衝液でカラムを洗浄した。結合した融合タンパク質を溶出緩衝液（２５０ｍＭのイミダゾールを含む洗浄緩衝液）で溶出させて捕集した。さらなる精製のために、５０ｍＭのＴｒｉｓ、ｐＨ８．０、２５ｍＭのＮａＣｌ、１ｍＭのｔｒｉｓ（２−カルボキシエチル）ホスフィン（ＴＣＥＰ）で平衡化したＳｕｐｅｒｄｅｘ−２００ ２６／６０ ＨｉＬｏａｄ ＦＰＬＣカラムにおいて、サイズ排除クロマトグラフィを実施した。ピーク画分を捕集し、遠心濃縮器（Ａｍｉｃｏｎ）を用いて濃縮し、標準物としてウシ血清アルブミンを用いるＢｒａｄｆｏｒｄアッセイを使用してタンパク質濃度を決定した。精製したタンパク質を液体窒素中で急速冷凍し、−８０℃で貯蔵した。

精製ＵＧＴ７６１を１０ｍｇｍＬ−１まで濃縮し、２μｌドロップ（１：１濃縮タンパク質および結晶化条件）によるハンギングドロップ蒸気拡散法を用いて結晶化した。４℃において２０％（ｗ／ｖ）のＰＥＧ−４０００、２０％の２−プロパノール（ｖ／ｖ）、および１００ｍＭの三塩基性クエン酸ナトリウム二水和物緩衝液（ｐＨ５．６）を用いて、回折品質の結晶を得た。抗凍結剤として２５％グリセロールを含有する母液を用いて個々の結晶を液体窒素中で急速冷凍した。Ａｒｇｏｎｎｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｐｈｏｔｏｎ Ｓｏｕｒｃｅ １９−ＩＤビームライン（λ＝０．９８Å）において回折データ（１００Ｋ）を収集した。ＨＫＬ３０００（Ｏｔｗｉｎｏｗｓｋｉ ＆ Ｍｉｎｏｒ，１９９７）を使用して、回折データをインデックス化し、積分し、スケール化した。単波長異常回折（ｓｉｎｇｌｅ−ｗａｖｅｌｅｎｇｔｈ ａｎｏｍａｌｏｕｓ ｄｉｆｆｒａｃｔｉｏｎ）（ＳＡＤ）位相化（ｐｈａｓｉｎｇ）により、ＳｅＭｅｔ置換されたＵＧＴ７６Ｇ１の構造を決定した。ＳＨＥＬＸ（Ｓｈｅｌｄｒｉｃｋ，２００８）を用いてＳｅＭｅｔ部分を決定し、ピーク波長データセットから初期位相を推定した。ＭＬＰＨＡＲＥ（Ｔｅｒｗｉｌｌｉｇｅｒ，２０００）を用いてＳｅＭｅｔ部分およびパラメータの精密化を実施した。ＡＲＰ／ｗＡＲＰ（Ｍｏｒｒｉｓ ｅｔ ａｌ．，２００３）で実行される密度修正を用いるソルベントフラッタニング（ｓｏｌｖｅｎｔ ｆｌａｔｔｅｎｉｎｇ）を使用して、初期モデルを構築した。トランスレーション−ライブレーション−スクリーンパラメータ（ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ−ｌｉｂｒａｔｉｏｎ−ｓｃｒｅｅｎ ｐａｒａｍｅｔｅｒ）の精密化を含む、マニュアルモデルの構築および精密化のその後の反復ラウンドは、ＣＯＯＴ（Ｅｍｓｌｅｙ ｅｔ ａｌ．，２０１０）およびＰＨＥＮＩＸ（Ａｄａｍｓ ｅｔ ａｌ．，２００７）をそれぞれ使用した。データ収集および精密化データは表１に要約される。

ＵＧＴ７１Ｇ１の構造は同様のＲｏｓｓｍａｎｎ型フォールドを有するＮ末端ドメインおよびＣ末端ドメインからなり、予想どおりに、ＧＴ−Ｂフォールドに属する（図８）。ＵＧＴ７６Ｇ１結晶構造の標準的な配向は図８に示される。Ｎ末端ドメインは、８個のαヘリックスに隣接された中心の７本の鎖の平行βシートを含有する。またこのドメインは、触媒ヒスチジンも含有する。Ｃ末端ドメインは、７個のαヘリックスに隣接された６本の鎖のβシートを含有する（図９）。２つのドメインは非常に密に詰まっており、ＵＤＰ分子が結合された深い割れ目（ｃｌｅｆｔ）を形成する。

実施例４：突然変異体の合理的設計
ＵＧＴ７６Ｇ１の構造に基づいて、我々は、循環置換（ｃｉｒｃｕｌａｒ ｐｅｒｍｕｔａｔｉｏｎ）（ＰＬｏＳ ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ，２０１２，８（３）ｅ１００２４４５；ＢＩＯＩＮＦＯＲＭＡＴＩＣＳ，２０１５，（３））および一連の突然変異を設計することができた。循環置換分析は、有用なまたは価値のある酵素を開発するための強力な手段である。循環置換のいくつかのバージョンの試験の後、我々は、非常に高い活性を有する循環置換（ｃｉｒｃｕｌａｒ ｍｕｔａｔｉｏｎ）の１つのバージョン「循環置換１」（「ＣＰ１」）が最高の活性を有することを見出した。本開示に従って、我々は、ＣＰ１（配列番号３）酵素の活性およびＲｅｂ Ｄ４からＲｅｂ Ｍへの変換を補助するその能力を調べた。

ＵＧＴ７６Ｇ１およびＣＰ１の構造は図１０において比較される。ＵＧＴ７６Ｇ１結晶構造の構造特徴の大部分はＵＧＴとＣＰ１との間で類似しているが、ＣＰ１は、その構造の「ベータシート」部分において著しく異なる配列および構造を有する（図１１）。

我々の酵素の触媒活性を予測するために、我々は、Ｒｅｂ Ｄ４をＣＰ１の反応中心にドッキングさせた。我々は反応中心を強調して、酵素とＲｅｂ Ｄ４との相互作用に焦点を置いた。ドッキングされたレバウジオシドＤ４リガンドは、触媒ヒスチジンおよび結合ＵＤＰに対して好ましい位置にある（図１２）。このドッキング実験に基づいて、我々は、変異誘発研究により活性を試験する価値のある特定の残基を見出すことができた。

ＣＰ１のモデリング分析に基づいて、我々は、酵素活性を増大させるためにＣＰ１の複数の突然変異部位を選択および試験した。最後に、我々は、レバウジオシドＤ４からレバウジオシドＭへの生物変換に関連するいくつかの突然変異部位を見出した（表２）。ＣＲ１は、表２の少なくとも１つの突然変異部位を含む一種のＣＰ１突然変異体である。

表2. CP1の突然変異部位の要約

実施例５：突然変異体ＵＧＴの使用によるＲｅｂ Ｄ４からＲｅｂ Ｍへの変換
この例では、Ｒｅｂ Ｄ４からレバウジオシドＭへのインビトロでの変換を確認するために、ステビオール配糖体基質としてＲｅｂ Ｄ４を用いて、ＵＧＴ７６Ｇ１、ＣＰ１および酵素突然変異体をアッセイした。組換えポリペプチド（１０μｇ）を２００μＬのインビトロ反応系で試験した。反応系は、５０ｍＭのリン酸カリウム緩衝液、ｐＨ７．２、３ｍＭのＭｇＣｌ₂、１ｍｇ／ｍｌのステビオール配糖体基質、および１ｍＭのＵＤＰ−グルコースを含有した。反応を３０℃で実施し、２００μＬの１−ブタノールの添加により終結させた。サンプルを２００μＬの１−ブタノールで３回抽出した。プールした画分を乾燥させ、高速液体クロマトグラフィ（ＨＰＬＣ）分析のために７０μＬの８０％のメタノール中に溶解させた。レバウジオシドＤ４を基質として使用した。ＨＰＬＣ分析は、クォータナリポンプ、温度制御されたカラムコンパートメント、オートサンプラーおよびＵＶ吸光度検出器を含むＤｉｏｎｅｘ ＵＰＬＣ ｕｌｔｉｍａｔｅ ３０００システム（Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ，ＣＡ）を用いて実施した。ステビオール配糖体のキャラクタリゼーションのためにガードカラムを有するＳｙｎｅｒｇｉ Ｈｙｄｒｏ−ＲＰカラムを使用した。ＨＰＬＣ分析における溶出のために水中のアセトニトリルを使用した。検出波長は２１０ｎｍであった。

図１３に示されるように、ＵＧＴ７６Ｇ１、ＣＰ１およびＣＲ１突然変異体は、１つのグルコース分子をＲｅｂ Ｄ４へ転移させてＲｅｂ Ｍを形成することができる。しかしながら、ＣＰ１およびＣＲ１は、ＵＧＴ７６Ｇ１酵素よりも著しく高い酵素活性を有する。

実施例６：ＮＭＲにより分析されたＲｅｂ ＷＢ２の構造
Ｒｅｂ ＷＢ２のキャラクタリゼーションに使用した材料は、Ｒｅｂ Ｗの酵素変換を用いて生成させ、ＨＰＬＣにより精製した。ＮＭＲスペクトルは、標準パルスシーケンスを用いてＡｇｉｌｅｎｔ ＶＮＭＲＳ ５００ＭＨｚ機器機器において取得した。１Ｄ（¹Ｈおよび¹³Ｃ）および２Ｄ（ＴＯＣＳＹ、ＡＳＡＰＨＭＱＣ、ＧＣＯＳＹおよびＧＨＭＢＣ）ＮＭＲスペクトルをＣＤ３ＯＤ中で実施した。

Ｒｅｂ ＷＢ２の分子式は、ｍ／ｚ８２７．３６７１において［Ｍ＋Ｎａ］⁺に対応する付加生成物イオンを示したそのポジティブ高分解能（ＨＲ）質量スペクトルに基づいて、Ｃ₃₈Ｈ₆₀Ｏ₁₈と推定されており、この組成は、ＮＭＲスペクトルデータにより支持された。

Ｒｅｂ ＷＢ２のＮＭＲスペクトルデータにより、ｅｎｔ−カウランジテルペノイドの基本骨格が明らかにされ、ＧＨＭＢＣ、ＣＯＳＹおよびＴＯＣＳＹ実験によりさらに確認された。ＡＰＴ試験を用いて炭素多重度を確認した。¹³ＣＮＭＲは、３つのアノマー炭素（δ１０２．８、１０１．７、および９２．４６）と、δ６２．２、６１．１４および６０．８８における３つの−ＣＨ２ＯＨシグナルとを示し、３つの糖単位が確認された。また、δ１７７．１における１つのカルボニル共鳴と、δ１５２．２および１０４．４における２つのアルケン炭素とが存在した。Ｈ２１からＣ１９へのＧＨＭＢＣ相関は、糖のジテルペノイドコア構造への接続点を確認した。δ７９．４におけるＣ１３のケミカルシフトは、この炭素に接続した酸素を示す。Ｒｅｂ ＷＢ２の¹Ｈおよび¹³ＣＮＭＲ値はＴＯＣＳＹ、ＨＭＱＣおよびＨＭＢＣデータに基づいて帰属され、表３に示される。

表3. Reb WB2の¹Hおよび¹³CNMRスペクトルデータ(ケミカルシフトおよびカップリング定数)^a~c。^a帰属はTOCSY、ASAPHMQC、およびGHMBC相関に基づく；^bケミカルシフト値はδ(ppm)で表す；^cカップリング定数はHzで表す。

Ｈ３３とＣ２５の間、Ｈ２７とＣ２４の間の重要なＧＨＭＢＣ相関により、３個の糖分子の結合性が確認された。観察された全ての２Ｄ相関およびケミカルシフトシグナルに基づいて、Ｒｅｂ ＷＢ２の構造は図１５に示されるものであった。Ｒｅｂ ＷＢ２の構造は、１３−ヒドロキシ−ｅｎｔ−カウラ−１６−エン−１９−酸−［（２−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−３−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−β−Ｄ−グルコピラノシル）エステルであると推定された。

実施例７：ＮＭＲにより分析されたＲｅｂ ＷＢ１の構造
Ｒｅｂ ＷＢ１のキャラクタリゼーションに使用した材料は、Ｒｅｂ Ｗの酵素変換を用いて生成させ、ＨＰＬＣにより精製した。ＮＭＲスペクトルは、標準パルスシーケンスを用いてＡｇｉｌｅｎｔ ＶＮＭＲＳ ５００ＭＨｚ機器機器において取得した。１Ｄ（¹Ｈおよび¹³Ｃ）および２Ｄ（ＴＯＣＳＹ、ＡＳＡＰＨＭＱＣ、ＧＣＯＳＹおよびＧＨＭＢＣ）ＮＭＲスペクトルを８０％のＣＤ３ＯＤ−２０％のＤ２Ｏ中で実施した。

Ｒｅｂ ＷＢ１の分子式は、ｍ／ｚ９８９．４２０６において［Ｍ＋Ｎａ］⁺に対応する付加生成物イオンを示したそのポジティブ高分解能（ＨＲ）質量スペクトルに基づいて、Ｃ₄₄Ｈ₇₀Ｏ₂₃と推定されており、この組成は、ＮＭＲスペクトルデータにより支持された。

Ｒｅｂ ＷＢ１のＮＭＲスペクトルデータにより、ｅｎｔ−カウランジテルペノイドの基本骨格が明らかにされ、ＧＨＭＢＣ、ＣＯＳＹおよびＴＯＣＳＹ実験によりさらに確認された。ＡＰＴ試験を用いて炭素多重度を確認した。¹³ＣＮＭＲは、４つのアノマー炭素（δ１０２．６、１０１．６ ９７．６および９２．６１）と、δ６２．０、６１．１、６１．０および６０．８における４つの−ＣＨ２ＯＨシグナルとを示し、４つの糖単位が確認された。また、δ１７７．０における１つのカルボニル共鳴と、δ１５２．５および１０４．４における２つのアルケン炭素とが存在した。Ｈ２１からＣ１９へ、およびＨ３９からＣ１３へのＧＨＭＢＣ相関は、糖のジテルペノイドコア構造への接続点を確認した。Ｒｅｂ ＷＢ１の¹Ｈおよび¹³ＣＮＭＲ値はＴＯＣＳＹ、ＨＭＱＣおよびＨＭＢＣデータに基づいて帰属され、表４に示される。

表4. Reb WB1の¹Hおよび¹³CNMRスペクトルデータ(ケミカルシフトおよびカップリング定数)^a~c。^a帰属はTOCSY、ASAPHMQC、およびGHMBC相関に基づく；^bケミカルシフト値はδ(ppm)で表す；^cカップリング定数はHzで表す。

Ｈ３３とＣ２５の間、Ｈ２７とＣ２４の間（逆も同様）の他の重要なＧＨＭＢＣ相関により、糖分子のうちの３個の連結が確認された。観察された全ての２Ｄ相関およびケミカルシフトシグナルに基づいて、Ｒｅｂ ＷＢ１の構造は図１６に示されるものであった。Ｒｅｂ ＷＢ１の構造は、１３−β−Ｄ−グルコピラノシルオキシｅｎｔ−カウラ−１６−エン−１９−酸−［（２−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−３−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−β−Ｄ−グルコピラノシル）エステルであると推定された。

実施例８：ＮＭＲにより分析されたＲｅｂ Ｄ４の構造
Ｒｅｂ Ｄ４のキャラクタリゼーションに使用した材料は、Ｒｅｂ ＷＢ１の酵素変換を用いて生成させ、ＨＰＬＣにより精製した。ＮＭＲスペクトルは、標準パルスシーケンスを用いてＡｇｉｌｅｎｔ ＶＮＭＲＳ ５００ＭＨｚ機器機器において取得した。１Ｄ（¹Ｈおよび¹³Ｃ）および２Ｄ（ＴＯＣＳＹ、ＡＳＡＰＨＭＱＣ、ＧＣＯＳＹおよびＧＨＭＢＣ）ＮＭＲスペクトルを８０％のＣＤ３ＯＤおよび２０％のＤ２Ｏ中で実施した。

Ｒｅｂ Ｄ４の分子式は、ｍ／ｚ１１５１．４７２８において［Ｍ＋Ｎａ］⁺に対応する付加生成物イオンを示したそのポジティブ高分解能（ＨＲ）質量スペクトルに基づいて、Ｃ₅₀Ｈ₈₀Ｏ₂₈と推定されており、この組成は、ＮＭＲスペクトルデータにより支持された。

Ｒｅｂ Ｄ４の¹ＨＮＭＲスペクトルデータにより、δ１．２４および０．９２における２つのメチル一重線、環外二重結合のδ５．２０および４．８６における一重線としての２つのオレフィンプロトンの存在が示された。ｅｎｔ−カウランジテルペノイドの基本骨格は、ＧＨＭＢＣ、ＣＯＳＹおよびＴＯＣＳＹ実験により支持された。ＡＰＴ試験を用いて炭素多重度を確認した。¹³ＣＮＭＲは５つのアノマー炭素（δ１０３．５、１０２．５、１０１．８、９５．６および９２．８）を示し、５つの糖単位、δ１７７．１における１つのカルボニル、ならびにδ１５２．２および１０４．４における２つのアルケン炭素が確認された。Ｈ４０からＣ１２へ、およびＨ２２からＣ１９へのＧＨＭＢＣ相関は、糖のジテルペノイドコア構造への接続点を確認した。Ｒｅｂ Ｄ４の¹Ｈおよび¹³ＣＮＭＲ値はＴＯＣＳＹ、ＨＭＱＣおよびＨＭＢＣデータに基づいて帰属され、表５に示される。

表5. Reb D4の¹Hおよび¹³CNMRスペクトルデータ(ケミカルシフトおよびカップリング定数)^a~c。^a帰属はTOCSY、ASAPHMQC、およびGHMBC相関に基づく；^bケミカルシフト値はδ(ppm)で表す；^cカップリング定数はHzで表す。

Ｈ４５とＣ４６の間、Ｈ２８とＣ２７の間、およびＨ２６とＣ３４の間（逆も同様）の重要なＧＨＭＢＣ相関により、５個の糖分子の結合性が確認された。観察された全ての２Ｄ相関およびケミカルシフトシグナルに基づいて、Ｒｅｂ Ｄ４の構造は図１７に示されるものであった。Ｒｅｂ Ｄ４の構造は、１３−［（２−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−β−Ｄ−グルコピラノシル）オキシ］ｅｎｔ−カウラ−１６−エン−１９−酸−［（２−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−３−Ｏ−β−Ｄ−グルコピラノシル−β−Ｄ−グルコピラノシル）エステルであると推定された。

実施例９：レバウジオシドの風味試験
レバウジオシドの官能評価は、スクロースを対照として用いて実施した。スクロースサンプルをＳｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈから購入し、室温において、ボトルウォーター中１．０％、３．０％、および６．０％のスクロース（ｗ／ｖ）の３つの異なる濃度の対照サンプルを調製するために使用した。レバウジオシドは、官能評価のために、対応する質量を１０００ｍＬのボトルウォーターに添加することにより３００ｐｐｍで調製した。混合物を室温で攪拌し、次に、１３人のヒトボランティア対象のパネルにより、１．０％、３．０％、および６．０％のいくつかの対照スクロースサンプルに対してステビオール配糖体サンプルを評価した。官能評価の結果は表６に示される。

表6. スクロースと比較したReb W1、Reb W2およびReb D4の官能評価

産業上の利用可能性／技術分野の記述
本開示は、食品、飼料、飲料、および薬理学的な産業における適用性を有する。本開示は、一般に、改変された微生物株によるステビオール配糖体の生合成製造法に関する。

引用及び参照により組み込まれた文献：
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６．Ｐｒａｋａｓｈ Ｉ．，ｅｔ ａｌ．；Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ａ Ｎｏｖｅｌ Ｒｅｂａｕｄｉｏｓｉｄｅ Ｍ Ｉｓｏｍｅｒ ｆｒｏｍ ａ Ｂｉｏｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ Ｒｅａｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｒｅｂａｕｄｉｏｓｉｄｅ Ａ ａｎｄ ＮＭＲ Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ Ｒｅｂａｕｄｉｏｓｉｄｅ Ｍ Ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ Ｓｔｅｖｉａ ｒｅｂａｕｄｉａｎａ Ｂｅｒｔｏｎｉ ａｎｄ Ｓｔｅｖｉａ ｒｅｂａｕｄｉａｎａ Ｍｏｒｉｔａ，Ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，２０１４ Ｊｕｎ；４（２）：３７４−８９．（Ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｏｎｌｉｎｅ ２０１４ Ｍａｒ ３１．２０１４）．
７．Ｐｒａｋａｓｈ Ｉ．，ｅｔ ａｌ．，Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ Ｎｅｘｔ Ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ Ｓｔｅｖｉａ Ｓｗｅｅｔｅｎｅｒ：Ｒｅｂａｕｄｉｏｓｉｄｅ Ｍ，Ｆｏｏｄｓ，２０１４，３：１６２−１７５．
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対象の配列：
ＵＧＴ７６Ｇ１配列：
アミノ酸配列：（配列番号１）

ＤＮＡ配列：（配列番号２）

ＣＰ１配列：
アミノ酸：（配列番号３）

ＤＮＡ配列：（配列番号４）

Ｂ−ｇｌｕ１配列：
アミノ酸：（配列番号５）

ＤＮＡ：（配列番号６）

ＵＧＴ８５Ｃ２配列：
アミノ酸：（配列番号７）

ＤＮＡ（配列番号８）

ＨＶ１配列：
アミノ酸配列：（配列番号９）

ＤＮＡ配列：（配列番号１０）

Claims (54)

1. 培地内で成長する形質転換細胞系によって産生される、対象のステビオール配糖体。
2. 前記形質転換細胞系が、酵母、非ステビオール配糖体産生植物、藻類および細菌からなる群から選択される、請求項１に記載の対象のステビオール配糖体。
3. 前記ステビオール配糖体が構造：
   

   

   のＲｅｂ Ｄ４である、請求項１に記載の対象のステビオール配糖体。
4. 前記ステビオール配糖体がＲｅｂ ＷＢ１である、請求項１に記載の対象のステビオール配糖体。
5. 前記ステビオール配糖体がＲｅｂ ＷＢ２である、請求項１に記載の対象のステビオール配糖体。
6. 原料物質がステビオールである、請求項１に記載の対象のステビオール配糖体。
7. 前記細胞系が大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）である、請求項２に記載の対象のステビオール配糖体。
8. 前記ステビオール配糖体含量が少なくとも７０％純粋である、請求項２に記載の対象のステビオール配糖体。
9. 甘味化量の請求項３に記載のステビオール配糖体を含む消費製品。
10. 甘味化量の請求項４に記載のステビオール配糖体を含む消費製品。
11. 甘味化量の請求項５に記載のステビオール配糖体を含む消費製品。
12. 飲料、菓子類、ベーカリー製品、クッキー、およびチューインガムからなる群から選択される、請求項９に記載の消費製品。
13. 配列番号３に対して少なくとも８０％の同一性を有するＤＮＡ配列を含むＣＰ１組換えポリペプチド。
14. アミノ酸配列が配列番号４に対して少なくとも８０％の同一性を有する、請求項１３に記載の組換えポリペプチド。
15. 前記細胞系が細菌であり、エシェリキア属（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ）、サルモネラ属（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）、バチルス属（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）、アシネトバクター属（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ）、ストレプトミセス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、コリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、メチロサイナス属（Ｍｅｔｈｙｌｏｓｉｎｕｓ）、メチロモナス属（Ｍｅｔｈｙｌｏｍｏｎａｓ）、ロドコッカス属（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）、シュードモナス属（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）、ロドバクター属（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ）、シネコシスティス属（Ｓｙｎｅｃｈｏｃｙｓｔｉｓ）、サッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）、ジゴサッカロミセス属（Ｚｙｇｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）、クルイベロミセス属（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）、カンジダ属（Ｃａｎｄｉｄａ）、ハンゼヌラ属（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）、デバリオミセス属（Ｄｅｂａｒｙｏｍｙｃｅｓ）、ムコール属（Ｍｕｃｏｒ）、ピキア属（Ｐｉｃｈｉａ）、トルロプシス属（Ｔｏｒｕｌｏｐｓｉｓ）、アスペルギルス属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）、アルツロボトリス属（Ａｒｔｈｒｏｂｏｔｌｙｓ）、ブレビバクテリア属（Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉａ）、ミクロバクテリウム属（Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、アルスロバクター属（Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ）、シトロバクター属（Ｃｉｔｒｏｂａｃｔｅｒ）、エシェリキア属（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ）、クレブシエラ属（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ）、パンテア属（Ｐａｎｔｏｅａ）、サルモネラ属（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ） コリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、クロストリジウム属（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ）；およびクロストリジウム・アセトブチリカム（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ａｃｅｔｏｂｕｔｙｌｉｃｕｍ）からなる群から選択される、請求項２に記載の対象のステビオール配糖体。
16. 対象のステビオール配糖体を製造する生合成方法であって、
    ａ）形質転換細胞系においてＣＰ１酵素を発現させることと、
    ｂ）前記細胞系を培地中で成長させることと、
    ｃ）対象のステビオール配糖体を産生させることと
    を含む方法。
17. 組換えスクロースシンターゼを基質と共にインキュベートすることをさらに含む、請求項１６に記載の方法。
18. 組換えＵＤＰグリコシルトランスフェラーゼＵＧＴ８５Ｃ２を、前記スクロースシンターゼ、前記基質、およびＣＰ１組換えポリペプチドと共にインキュベートすることをさらに含む、請求項１７に記載の方法。
19. βグルコシダーゼ酵素を反応混合物に添加することをさらに含む、請求項１８に記載の方法。
20. 前記スクロースシンターゼが、アラビドプシス属（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）スクロースシンターゼ１、アラビドプシス属（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）スクロースシンターゼ３およびビグナ・ラディアテ（Ｖｉｇｎａ ｒａｄｉａｔｅ）スクロースシンターゼからなる群から選択される、請求項１７に記載の方法。
21. 前記スクロースシンターゼが、アラビドプシス・タリアナ（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｈａｌｉａｎａ）スクロースシンターゼ１である、請求項１７に記載の方法。
22. 産生される前記ステビオール配糖体が、Ｒｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍの混合物である、請求項１６に記載の方法。
23. 前記産生方法がさらに、ｉ）粗産物を精製することと、ｉｉ）溶媒を真空下で除去して、濃縮産物を提供することとを含む、請求項２に記載の対象のステビオール配糖体。
24. 前記粗産物がカラムクロマトグラフィにより精製される、請求項２３に記載の対象のステビオール配糖体。
25. 前記粗産物が酸−塩基抽出により精製される、請求項２３に記載の対象のステビオール配糖体。
26. 前記粗産物が真空蒸留により精製される、請求項２３に記載の対象のステビオール配糖体。
27. セミ分取ＨＰＬＣを用いて前記ステビオール配糖体を精製することをさらに含む、請求項２３に記載の対象のステビオール配糖体。
28. 前記ステビオール配糖体がＲｅｂ ＷＢ１である、請求項１６に記載の方法。
29. 前記ステビオール配糖体がＲｅｂ ＷＢ２である、請求項１６に記載の方法。
30. 前記ステビオール配糖体がＲｅｂ Ｄ４である、請求項１６に記載の方法。
31. 前記ステビオール配糖体がＲｅｂ Ｍである、請求項１６に記載の方法。
32. ＨＶ１（配列番号９）の使用をさらに含む、請求項１６に記載の方法。
33. ＵＧＴ７６Ｇ１（配列番号１）の使用をさらに含む、請求項３２に記載の方法。
34. 構造：
    

    

    を有するステビオール配糖体Ｒｅｂ Ｄ４。
35. 請求項３４に記載のステビオール配糖体を含む組成物であって、該組成物中の前記ステビオール配糖体含量が少なくとも７０％純粋である組成物。
36. 甘味化量の請求項３４に記載のステビオール配糖体を含む消費製品。
37. 飲料、菓子類、ベーカリー製品、クッキー、およびチューインガムからなる群から選択される、請求項３６に記載の消費製品。
38. Ｒｅｂ Ｄ４およびＲｅｂ Ｍの混合物を含む組成物。
39. 構造：
    

    

    を有するステビオール配糖体Ｒｅｂ ＷＢ１。
40. 請求項３９に記載のステビオール配糖体を含む組成物であって、該組成物中の前記ステビオール配糖体含量が少なくとも７０％純粋である組成物。
41. 甘味化量の請求項３９に記載のステビオール配糖体を含む消費製品。
42. 飲料、菓子類、ベーカリー製品、クッキー、およびチューインガムからなる群から選択される、請求項４１に記載の消費製品。
43. 構造：
    

    

    を有するステビオール配糖体Ｒｅｂ ＷＢ２。
44. 請求項４３に記載のステビオール配糖体を含む組成物であって、該組成物中の前記ステビオール配糖体含量が少なくとも７０％純粋である組成物。
45. 甘味化量の請求項４３に記載のステビオール配糖体を含む消費製品。
46. 飲料、菓子類、ベーカリー製品、クッキー、およびチューインガムからなる群から選択される、請求項４５に記載の消費製品。
47. 適切な成長条件下で組換え細胞を培養することを含み、前記組換え細胞がステビオール配糖体を産生する能力を示す、レバウジオシドＭの製造方法であって、
    前記組換え細胞と、ステビオシド、スクロースシンターゼおよびスクロースを含有する反応組成物とを接触させることを含み、
    前記組換え細胞が、前記ステビオシド基質を使用してレバウジオシドＥを産生することができる第１のＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）またはその触媒活性部分を発現し、
    前記組換え細胞が、前記レバウジオシドＥを使用してレバウジオシドＤ４を産生することができる第２のＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）またはその触媒活性部分を発現し、かつ
    前記組換え細胞が、前記レバウジオシドＤ４を使用してレバウジオシドＭを産生することができる第３のＵＤＰ−グリコシルトランスフェラーゼ（ＵＧＴ）またはその触媒活性部分を発現する、前記方法。
48. スクロースシンターゼ遺伝子またはその触媒活性部分が、前記組換え細胞内で発現されることをさらに含む、請求項４７に記載の方法。
49. 前記反応組成物にスクロースシンターゼが添加されることをさらに含む、請求項４７に記載の方法。
50. 請求項４７に記載の方法により製造されるＲｅｂ Ｍ。
51. 請求項４７に記載の生合成経路を発現する組換え細胞。
52. 前記細胞が酵母細胞である、請求項５１に記載の組換え細胞。
53. 前記細胞が細菌細胞である、請求項５１に記載の組換え細胞。
54. 前記細胞が植物細胞である、請求項５１に記載の組換え細胞。

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