JP2019534101A - 細胞送達装置におけるpdx1膵臓内胚葉細胞及びその方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、カリフォルニア再生医療研究所による資金援助を部分的に受けた。
乳類動物宿主に移植し、及びc)哺乳類動物宿主の有孔装置の膵臓内胚葉細胞集団を成熟させ、前駆細胞集団がインスリン分泌細胞を産生することを含む。
他に断りがない限り、通常の使用に従って技術用語を使用する。分子生物学の一般的な用語の定義は、Benjamin Lewin、Genes V、Oxford University Press出版、1994(ISBN 0−19−854287−9);Kendrew等(編)、The Encyclopedia of Molecular Biology、Blackwell Science Ltd.出版、1994(ISBN 0−632−02182−9);及びRobert A.Meyers(編)、Molecular Biology and Biotechnology: a
Comprehensive Desk Reference、VCH Publishers,Inc.出版、1995(ISBN 1−56081−569−8)に見つけることができる。
移植される細胞」は、充分に生存可能及び/若しくは機能的な細胞若しくは細胞集団を指し、又は代謝障害のin vivo治療に機能性になる。
131:861−872(2007);Wernig等、Nature 448:318−324(2007);Park等、Nature 451:141−146(2008)を参照のこと、またPCT出願国際公開第2010048567号、PCT出願第PCT/US2009/061935号、PCT出願第PCT/JP2009/063906号及び米国特許出願第第2011/0039338US号、第2011/0039338号も参照のこと、その全体が参照により本明細書に援用される。iPSCを作製する上述の方法及びその他の方法は知られており、iPSCが派生する又は生成される様式は、本開示の方法を限定しない。ヒトiPSCは、胚を伴う使用のない多能性幹細胞の源を提供する。
及びその生成方法は、2006年10月27日出願された米国特許出願第11/588,693号、明細書名「PDX1−expressing dorsal and ventral foregut endoderm」に記載されており、参照によりその全体が本明細書に援用される。
nes」、及び2008年4月21日に出願された米国特許出願第12/107,020号、明細書名「METHODS FOR PURIFYING ENDODERM AND PANCREATIC ENDODERM CELLS DERIVED FORM
HUMAN EMBRYONIC STEM CELLS」にも記載されており、参照によりその全体が本明細書に援用される。
施形態において、適切に特定された内分泌細胞は、NKX6.1及びPDX1を含むその他の未成熟の内分泌細胞マーカーを共発現する。一実施形態において、適切に特定された内分泌細胞は、単独のホルモンとNKX6.1及びPDX1を含む共発現するその他の未成熟の内分泌細胞マーカーの両方であってもよい。一実施形態において、適切に特定された内分泌細胞は、合計のINS集団の割合として単独のホルモンを発現するINS細胞をより多く有し得る。一実施形態において、適切に特定された内分泌細胞は、合計のINS集団の割合として単独のホルモンを発現するINS細胞を少なくとも50%有する。一実施形態において、適切に特定された内分泌細胞は、CHGA+/INS+/NKX6.1+(三重陽性)である。一実施形態において、細胞集団の細胞の約25%超がCHGA+/INS+/NKX6.1+(三重陽性)である。一実施形態において、細胞集団の細胞の約30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%、95%又は100%超がCHGA+/INS+/NKX6.1+(三重陽性)である。
vivoに分化された細胞種の産生を指す。
COMPOSITIONS AND METHODS OF DIFFERENTIATION THEREOF」に記載されている。
production of single cell populations of human embryonic stem cells」に詳細に記載されている。
細胞カプセル化装置、細胞維持装置、細胞封じ込め装置又は生体人工器官とも呼ばれる細胞送達装置は、限定されないが、宿主免疫系を含む宿主の細胞を全体的又は部分的にカプセルに包む筐体を提供する装置である。
度移植されると、さらに発生し、成熟し、治療効果を有する。移植細胞は、懸濁液又は細胞凝集体の個別の細胞であり得る。
面抗原の存在によって規定又は特徴付けることができる。
Destruction, Cell Stem Cell 2:113−117を参照のこと。しかし、2008年の終わりに、前述のChung等による研究では、ラミニンを有する培地で単離された卵割球を培養するとhESCが生じる能力が高まったため、hESC細胞株はES細胞との共培養を全く必要としないことを証明した。Chung等(2008), Human Embryonic Stem Cell Lines Generated without Embryo Destruction、Cell Stem Cell(2):113−117、p.116、2008年1月10日にオンライン出版を参照のこと。さらに、この方法で得られたhESが、6か月以上、未分化状態を維持することができるhES細胞を含むその他のヒト多能性幹細胞と同じ特徴を有することを証明し、正常な核型並びにOct−4、SSEA−3、SSEA−4、TRA−1−60、TRA−1−81、Nanog及びアルカリホスファターゼを含む多能性のマーカーの発現を示し、in vitroで3つの胚性胚葉の誘導体を分化し、形成し、さらにin vivoのテラトーマを形成することができる。
て、移植細胞は機能的ベータ細胞を含む。さらなる実施形態において、移植細胞は、限定されないが、ランゲルハンスのヒト膵島、ブタ膵島及びラット膵島を含む。移植細胞は、高分化したアルファ(α)、ベータ(β)、デルタ(δ)及び/又は膵臓ペプチド(PP)細胞を含む。一態様において、本開示と一致した実施形態は、ランゲルハンス細胞の膵島の移植に使用される。いくつかの実施形態において、移植細胞は、幹細胞、脾臓、膵臓、胆嚢、腎臓及び外分泌機能を有するその他の組織等のその他の細胞種を含む。いくつかの実施形態において、移植細胞は、ホルモン、サイトカイン、リンホカイン、細胞増殖制御因子、又は代謝機能を有するその他の細胞を分泌する神経内分泌細胞、増殖細胞及び細胞株を含む。当業者に明らかなように、これらの細胞及び組織は、哺乳類動物の組織、初代培養細胞、生物産物を産生する培養された細胞株、及び遺伝子操作された培養細胞株から得ることができる。移植細胞は、遺伝子操作して、タンパク質、ペプチド、核酸又はその他の生物活性剤等の望ましい分子を産生することもできる。例として、レシピエントを失っている又は欠損している酵素、又は癌細胞に対する毒素等の治療薬を発現する酵素を発現するように操作された細胞が挙げられる。
Pancreatic Hormone−Expressing Endocrine
Cells From Human Embryonic Stem Cells」(2006年11月1日)Nature Biotechnology 24、1392−1401、参照によりその全体が本明細書に援用される、に記載の細胞と実質的に同様である。D′Amour等は、5つのステップの分化プロトコル:ステージ1(多くは胚体内胚葉を産生)、ステージ2(多くはPDX1陰性前腸内胚葉を産生)、ステージ3(多くはPDX1陽性前腸内胚葉を再生)、ステージ4(多くは多能性膵臓前駆細胞又は膵臓内分泌前駆細胞とも呼ばれる膵臓内胚葉を産生)、及びステージ5(多くは、ホルモン発現内分泌細胞を産生)を記載している。
Cells PLoS One 7:5 1−17(2012)、参照によりその全体
が本明細書に援用される、に記載の細胞と実質的に同様である。Schulz等は、hESCの増殖、バンク方法及び懸濁液ベースの分化システムを記載している。特に、未分化の多能性細胞を動的回転懸濁液培養物のクラスターに凝集し、次に4ステージのプロトコルで、2週間、まとめて分化した。端的には、hESC単層をAccutase(Innovative Cell Technologies)でhES細胞凝集体懸濁液から分離し、StemPro hESC SFM(Life Technologies;Glutamax含有DMEM/F12、StemPro hESC補助剤、BSA、及び1%(v/v)のペニシリン/ストレプトマイシンを組み合わせた;FGF−2及び2−メルカプトエタノールを除いた)に、1×106細胞/mLで回収し、再懸濁する。1つ
の細胞懸濁液を非TC処理6ウェルプレート(5.5mL/ウェル)に分注し、Innova 2000ローテータ(New Brunswick Scientific)で95rpmで回転し、500mLのNalgeneフィルターレシーバー貯蔵容器(150mL/容器)に分注し、Sartorius Certomat RM−50ローテータ(5cmの回転軸で構成)で65rpmで回転した。細胞を37℃/8%CO2インキュベーターで一晩回転し、約100〜200μmの凝集体を形成した。100〜200μmの凝集体の直径について、6ウェルの皿の回転速度は60〜140rpm、500mLの容器の回転速度は5〜20rpmにして使用することができる。懸濁液凝集体の分化は、D’Amourからいくつか修正した。ステージ2の最中にTGF−βRIキナーゼ阻害剤IVを含み、ステージ3の最中に、レチノイン酸をより安定したレチノイド類似体、TTNPB(3nM)に交換した。増殖因子KGF(50ng/mL)及びEGF(50ng/mL)をステージ4に加えて、細胞質量を保持した。ノギン(50ng/mL)もステージ4で加えた。
日出願;第11/165,305号、明細書名「METHODS FOR IDENTIFYING FACTORS FOR DIFFERENTIATING DEFINITIVE ENDODERM」、2005年6月23日出願;第11/573,662号、明細書名「METHODS FOR INCREASING DEFINITIVE ENDODERM DIFFERENTIATION OF PLURIPOTENT HUMAN EMBRYONIC STEM CELLS WITH PI−3 KINASE INHIBITORS」、2005年8月15日出願;第12/729, 084号、明細書名「PDX1−EXPRESSING DORSAL AND VENTRAL FOREGUT ENDODERM」2005年10月27日出願;第12/093,590号、明細書名「MARKERS OF DEFINITIVE ENDODERM」、2005年11月14日出願;第11/993,399号、明細書名「EMBRYONIC STEM CELL CULTURE COMPOSITIONS AND
METHODS OF USE THEREOF」2006年6月20日出願;第11/588,693号、明細書名「PDX1−EXPRESSING DORSAL AND VENTRAL FOREGUT ENDODERM」2006年10月27日出願;第11/681,687号、明細書名「ENDOCRINE PROGENITOR/PRECURSOR CELLS, PANCREATIC HORMONE−EXPRESSING CELLS AND METHODS OF PRODUCTION」2007年3月2日出願;第11/807,223号、明細書名「METHODS FOR
CULTURE AND PRODUCTION OF SINGLE CELL POPULATIONS OF HESC」2007年5月24日出願;第11/773,944号、明細書名「METHODS OF PRODUCING PANCREATIC HORMONES」2007年7月5日出願;第11/860,494号、明細書名「METHODS FOR INCREASING DEFINITIVE ENDODERM PRODUCTION」2007年9月24日出願;第12/099,759号、明細書名「METHODS OF PRODUCING PANCREATIC HORMONES」2008年4月8日出願;第12/107,020号、明細書名「METHODS FOR PURIFYING ENDODERM AND PANCREATIC ENDODERM CELLS DERIVED FORM HUMAN EMBRYONIC STEM CELLS、2008年4月21日出願;第12/618,659号、明細書名「ENCAPSULATION OF PANCREATIC LINEAGE CELLS DERIVED FROM HUMAN PLURIPOTENT STEM CELLS」2009年11月13日出願;第12/765,714号及び第13/761,078号、両出願とも明細書名「CELL COMPOSITIONS FROM DEDIFFERENTIATED REPROGRAMMED CELLS」2010年4月22日出願、及び2013年2月6日出願;第11/838,054号、明細書名「COMPOSITIONS AND METHODS USEFUL FOR CULTURING DIFFERENTIABLE CELLS」、2007年8月13日出願;第12/264,760号、明細書名「STEM CELL AGGREGATE SUSPENSION COMPOSITIONS AND METHODS OF DIFFERENTIATION THEREOF」2008年11月4日出願;第13/259,15号、明細書名「SMALL MOLECULES SUPPORTING PLURIPOTENT CELL GROWTH」、2010年4月27日出願;PCT/US11/25628号、明細書名「LOADING SYSTEM
FOR AN ENCAPSULATION DEVICE」、2011年2月21日出願;第13/992,931号、明細書名「AGENTS AND METHODS FOR INHIBITING PLURIPOTENT STEM CELLS、2010年12月28日出願;米国意匠特許出願第29/408,366号、2011年12月12日出願;第29/408,368号、2011年12月12日出願;第29/423,365号、2012年5月31日出願;及び第29/447,944号、2013年
3月13日出願;米国特許出願第14/201,630号、明細書名「3−DIMENSIONAL LARGE CAPACITY CELL ENCAPSULATION DEVICE ASSEMBLY」2014年3月7日出願;及び米国特許出願第14/106,330号、明細書名「IN VITRO DIFFERENTIATION OF PLURIPOTENT STEM CELLS TO PANCREATIC ENDODERM CELLS(PEC) AND ENDOCRINE CELLS」2013年12月13日出願、参照によりその全体が本明細書に援用される。
human embryonic stem cells」、2008年7月31日出願;米国特許出願第2009/0170198号、明細書名「Differentiation of human embryonic stem cells」、2008年11月25日出願;米国特許出願第2015/0329828号、明細書名「Use of Small Molecules to Enhance Mafa Expression in Pancreatic Endocrine Cells」、2015年5月7日出願;米国特許出願第2013/0330823号、明細書名「Differentiation of Human Embryonic Stem Cells into Pancreatic Endocrine Cells」、2013年6月6日出願;国際特許出願第WO 2013/192005号、明細書名「Differentiation of human embryonic stem cells into pancreatic endocrine cells」2013年6月13日出願;米国特許出願第2014/0242693号、明細書名「Suspension
and clustering of human pluripotent stem cells for differentiation into pancreatic endocrine cells」、2013年12月30日出願;米国特許出願第米国特許出願第2014/0295552号、明細書名「Suspension and clustering of human pluripotent stem cells for differentiation into pancreatic endocrine cells」、2014年6月17日出願;国際特許出願第WO 2015/065524号、明細書名「Suspension and clustering of human pluripotent stem cells for differentiation into pancreatic endocr
ine cells」、2014年5月21日出願;米国特許出願第2013/0330823号、明細書名「Differentiation of Human Embryonic Stem Cells into Pancreatic Endocrine Cells」2013年6月6日出願;米国特許出願第2014/0186953号、明細書名「Differentiation of Human Embryonic
Stem Cells Into Pancreatic Endocrine Cells Using HB9 Regulators」2013年12月18日出願;米国特許出願第14/963730号、2015年12月9日出願;米国特許出願第14/898,015号、2015年12月11日出願、参照によりその全体が本明細書に援用される。
OF ENCAPSULATED BIOLOGICAL MATERIALS FOR TREATING DISEASES」;米国特許出願第6,911,227号、明細書名「GELS FOR ENCAPSULATION OF BIOLOGICAL
MATERIALS」;米国特許出願第6,911,227号、第5,529,914号、第5,801,033号、第6,258,870号、明細書名「GELS FOR ENCAPSULATION OF BIOLOGICAL MATERIALS」、参照によりその全体が本明細書に援用される。
細胞送達装置のコアは、挿入部を含んで、コアの中心に「無細胞」領域を作製することができ、装置の中心で細胞の壊死性コアが発生する可能性がさらに減少する。
一実施形態において、移植細胞は、大容量組立体又は大容量装置とも呼ばれるマクロ細胞カプセル化装置/送達装置に送達される。本明細書で使用する場合、「大容量組立体」又は「大容量装置」は、多数又は複数の細胞チャンバーから構成される細胞カプセル封入装置を指す。一実施形態において、大容量組立体は、少なくとも1、2、4、5、6、7、8、9又は10個以上の細胞チャンバーから構成される。別の実施形態において、大容量組立体は、大容量組立体がいくつかの細胞チャンバー(又はモジュラーユニット)から構成されるように作製される。例えば、モジュラーユニットは1、2、3、4、5、6、7、8、9又は10個以上の細胞チャンバーから構成され得、米国特許出願第8,278,106号、参照によりその全体が本明細書に援用される、に記載の疾患の治療に必要とされる細胞の数又は用量に依存し得る。送達装置のチャンバーの数は、移植される細胞の
容量及び/又は数に基づいて決定される。
細胞送達装置は、それぞれが1つ又は複数の機能を提供する様々な層を含む。いくつかの実施形態において、細胞送達装置は、細胞除外膜と不織布の両方を含む。
繊維径が約0.5〜約26μmであるスパンボンドポリエステルである。一実施形態において、フィラメント断面は三葉である。いくつかの実施形態において、不織布は生体適合性及び/又は生体吸収性である。
86)を形成する。図1A〜Bと同様に、チャンバーの2つの側は互いに鏡像イメージである。
力を高める。有孔EN20装置は、無孔EN20装置より(成熟時に達成されるベータ細胞の質量を意味する)約5倍の投与能力を有する。記載の有孔装置の別の投与方法は、インタクトな装置の約5分の1である。
移植後に短期間に血管新生を促進するために、宿主の脈管構造とカプセルに包まれた細胞の直接的な細胞間接触を提供する有孔細胞送達装置に細胞を移植する。いくつかの実施形態において、装置の層が全て穿孔されているわけではない。例えば、有孔細胞送達装置は、1つの層、例えば細胞除外膜、又は細胞除外膜及び不織布層に穿孔を提供する。これは、移植細胞/組織を保持し、同時に脈管構造及びマクロファージ等の進入といった宿主との交換を可能にする。
これらの実施形態において、不織布は、細胞送達装置の外側にある。移植細胞に影響するというよりも、不織布は、細胞筐体を取り囲む宿主血管新生を高める。
一実施形態において、細胞除外膜は不織布に積層される。一実施形態において、細胞除
外膜はNWFに積層される。細胞除外膜が不織布に積層される場合、細胞除外膜は平坦なままである。積層しない場合、細胞除外膜は、不均一な細胞分布になり得るダムを作製する平面から変形する可能性がある。不均一な細胞分布は、壊死領域を誘導し、細胞死等が有効性を低下し得る。細胞送達装置のチャンバー又は管腔の内部の細胞分布を制御することは、細胞送達装置内の細胞の空間的位置としても示される。一実施形態において、細胞送達装置内の細胞分布(細胞の位置)を制御する方法は、細胞除外膜を不織布に積層することを含む。一実施形態において、細胞送達装置内の細胞分布(細胞の位置)を制御する方法は、細胞除外膜をNWFに積層することを含む。
穿孔は、穴、孔、開口(opening)、穿刺、開口部(aperture)又はチャンネルとも呼ばれる。
及び不織布の孔は、装置を組み立てたときに整列している必要はなく、装置のチャンバーの外側から内側まで不規則な経路を形成していてもよい。さらに装置が卵形のように示されるが、装置の形状は、円形、長方形、正方形、三角形の何れの形状であってもよい。
有孔細胞送達装置の使用は、細胞が逃げる、細胞がより少なくなる、腫瘍形成能等の特定の欠点を有する。穿孔の開口部は、したがって、細胞除外膜がカプセルに包まれた要素を保持することができ、同時に、有孔装置の管腔及び膵臓細胞種を支持する間質細胞から壊死性残屑を除去することができる脈管構造、マクロファージ及びその他の貪食細胞の進入といった宿主との交換を可能にする。一実施形態において、穿孔は、毛細血管の内殖を可能にする直径約100μM未満である。出願人は、以前に、四分位の直径100〜200μmで平均直径約180μmの膵臓前駆細胞凝集体について(Schulz等(2012)前述)、孔直径が約100μm以下であると細胞産物を実質的に保持し、前述のその他の利益を達成し、したがって、細胞の送達と回収、並びに毛細血管の内殖の両方を容易にすることを開示した。細胞は宿主組織、例えば宿主血管に暴露されるが、サイズがより大きいと、細胞が逃げるリスクが僅かになる。一実施形態において、孔は、宿主の毛細血管が内殖し、放出することができ、治療薬から生成されるホルモンが装置の管腔/チャンバーから出ていくことができる程度の大きさの内径を有する。
イズ、密度及び分布には多くの柔軟性がある。再度、図2A及び2Bは、有孔装置の実施形態を示す。図2Bは、細胞プーリングの領域を少なくする二重管腔及び二重ポートを示す。
一実施形態において、装置の表面領域の0.4%未満が穿孔され、孔は、(孔の中心間を測定して)約2mm間隔で離れているが、2mm未満であっても2mmより大きく離れていてもよく、宿主−移植片細胞間血管新生を促進する。いくつかの実施形態において、装置の表面領域の約5.0%未満、約4.0%未満、約3.0%未満、約2.0%未満、約1.0%未満、約0.8%未満、約0.3%未満、約0.2%未満、約0.1%未満、約0.05%未満が穿孔される。いくつかの実施形態において、装置の表面領域の約5.0〜0.5%、約5.0〜3.5%、約4.0〜2.0%が穿孔される。
き、5〜200個、20〜100個であってもよい。当業者は、望ましい効果を達成する孔の数/密度を決定することができる。糖尿病患者の場合、孔の数/密度は、移植細胞が血中グルコースレベルに応答してインスリンを成熟させ、及び/又は産生する能力によって決定される。
技術分野で周知の製造方法を使用して、本開示の有孔装置を製造することができる。歴史的には、装置を組み立て、細胞を添加し、その後、針を使用してインタクトな装置に手動で穿孔を加えた。このように、装置の全ての層が穿孔していた。米国特許出願第12/618,659号及びPCT出願第WO/1993/002635号を参照のこと。さらに、穿孔を作製したときに細胞は装置の内側にあるために、カプセルに包まれた細胞のいくらかは穿孔するときに針の通路に存在し、針がカプセルに包まれた細胞のいくらかを傷つける可能性があった。この方法は、針が挿入されて、孔を作り、その後取り除かれるため、偶発的な汚染(装置から離れる細胞)が生じる可能性もある。
かれており、チャンバーのそれぞれが穿孔される。一実施形態において、装置にはチャンバーには複数のチャンバーがあり、チャンバーのそれぞれが無細胞領域によって分かれており、全てのチャンバーが穿孔されているわけではない。一実施形態において、膵臓前駆体が1つのチャンバーにカプセル化され、異なる治療薬が別のチャンバーにカプセル化される。この例では、膵臓前駆体を含むチャンバーのみが穿孔されている。
膵臓内胚葉系細胞を送達するための有孔装置を使用する1つの利点は、細胞の増殖能力が増加することである。孔によって、生存率を改善する宿主脈管構造と細胞間接触が可能になる。孔によって、装置チャンバーを拡張することができ、有孔装置の内部により多くの細胞が入る余地ができる。細胞増殖能力の増加によって、細胞質量が増加し、細胞質量の増加が細胞容量の増加に相関する。出願人は、適切な細胞容量が同じサイズの装置(例えば、EN20、EN100、EN250等)に添加されると、有孔装置の最終細胞容量(移植後約12〜16週で細胞は成熟する)がインタクト又は無孔装置よりかなり多いことを示した。実際には、最終(成熟した)細胞容量は、無孔又はインタクトな装置に比べて、有孔装置において約5〜6倍多い。これは、それ以外の同サイズの細胞送達装置の投与能力を改善する。
Cペプチド=0.3889x+245.53
この式は、0.9852の定量R2の補正を有する。定量のR2係数は、回帰直線がどの程度実データポイントに近似するかを示す統計的測定値である。R2が1であることは、回
帰直線がデータに完全に一致することを示す。したがって、式に示されるCペプチドとIEQの相関は、強力な又は高い信頼水準を有する。
2000=0.3889x+245.53→(2000−245.53)/0.3889
=x→x=4511.36IEQ
vent immune rejection of human ESC−derived allografts Cell Stem Cell 2014 14(1):121−130を参照のこと、参照によりその全体が本明細書に援用される。
本明細書に記載の実施形態は、組合せ製品を開示し、細胞又は治療薬を添加した装置を示し、それぞれ単独で候補となる医療装置又は細胞産物になり得るが、一緒に組合せ製品を作製する。一実施形態において、組合せ製品は細胞が添加される有孔装置を指す。これは「有孔組合せ製品」と呼ばれる。装置(有孔又は無孔)は、限定されないが、EN20、EN100、EN250又はEN大容量を含む本明細書に記載のマクロ細胞送達装置であり得る。組合せ製品は、装置のサイズを特定し得、例えば、VC−01−20は細胞が添加されたEN20を意味する。(有孔又は無孔)装置に添加される細胞は、限定されないが、胚体内胚葉、PDX1陽性内胚葉、PDX1陽性前腸内胚葉、膵臓内胚葉、PDX1及びNKX6.1を発現する膵臓内胚葉細胞、内分泌前駆体、NKX6.1及びINSを発現する内分泌前駆体、未成熟ベータ細胞、NKX6.1、INS及びMAFBを発現する未成熟ベータ細胞、成熟内分泌細胞、INS、GCG、SST及びPPを発現する成熟内分泌細胞、成熟ベータ細胞、並びにINS及びMAFAを発現する成熟ベータ細胞であってもよい。
免疫抑制化合物で宿主を治療しながら、成熟した膵島を移植することは以前から開示されている。米国特許出願第9,062,290号を参照のこと、参照によりその全体が本明細書に援用される。しかし、カルシニューリン阻害剤は、(1)糖尿病誘発性であり(糖尿病を発症する)(Crutchlow MF、Transplant−associated hyperglycemia:a new look at an old problem Clin J Am Soc Nephrol.2(2):343−55(2007))でレビューされた)、(2)マウスの内在性膵臓細胞の再生に負に影響する(Heit J、Calcineurin/NFAT signaling regulates pancreatic beta−cell growth and function Nature 21;443(7109):345−9(2006)and Nir T, Recovery from diabetes in mice
by beta cell regeneration J Clin Invest
117(9):2553−61(2007)を参照のこと)ことが報告された。このように、未成熟な膵臓前駆体がカルシニューリン阻害剤の存在下でin vivoに成熟するかどうかについて、仮に成熟する場合、宿主が免疫抑制薬で治療を受けている場合、成熟した移植片が生存し、機能することができるかどうかについては知られておらず、予測することができなかった。
Guide 26(38)を参照のこと。
において、有孔装置は、細胞外膜に積層され、宿主に面しているNWFの少なくとも1つの層を含み、宿主は免疫抑制薬による治療を受ける。一実施形態において、免疫抑制薬は、カルシニューリン阻害剤、代謝拮抗薬免疫抑制薬及びその組み合わせから成る群から選択される。一実施形態において、免疫抑制薬は、シクロスポリンA(CsA)、ミコフェノール酸モフェチル(MMF)、タクロリムス(TAC)及びその組み合わせから成る群から選択される。一実施形態において、免疫抑制薬は、無孔装置を移植された宿主に投与される。
vivoでインスリンを産生することを含む。
の免疫抑制薬を宿主に投与し、膵臓内胚葉が哺乳類動物でインスリン産生細胞に成熟することを可能にし、それにより哺乳類動物においてインスリンを産生する方法。
ヒト多能性幹細胞由来の膵臓細胞のカプセル化については、Martinson等、米国特許出願第8278106号、2012年10月2日出願に記載されている。移植可能なカプセル化装置と使用されるツール及び器具は、米国特許第14/254,844号、2014年4月16日出願、及び米国意匠特許出願第29/488,209号、第29/488,217号、第29/488,191号、第29/488,204号に記載されている。移植可能な装置に細胞を添加する器具及び方法については、2014年10月13に出願されたPCT/US2014/060306号に記載されている。「LOADING SYSTEM FOR AN ENCAPSULATION DEVICES」は、米国特許出願第14/000,864号、2013年8月21日出願に記載されている。「3−DIMENSIONAL LARGE CAPACITY CELL ENCAP
SULATION DEVICE ASSEMBLIES」は、米国特許出願第14/201,630号、2014年3月7日出願、米国意匠特許出願第29/447,944号、第29/509,102号、第29/484,363号、第29/484,360号、第29/484,359号、第29/484,357号、第29/484,356号、第29/484,355号、第29/484,362号、第29/484,358号に記載されている。「CELL ENCAPSULATION DEVICES」は、米国意匠特許出願第29/408,366、第29/517,319号、第29/408,368号、第29/518,513号、第29/518,516号、第29/408,370号、第29/517,144号、第29/423,365号、第29/530,325号に記載されている。「CULTURING OF HUMAN EMBRYONIC STEM CELLS INTO PANCREATIC ENDOCRINE CELLS」は第 13/998,884号及び第62/352,968号に記載されている。「FORAMINOUS IMPLANT」は、国際公開第WO1993/02635号に記載されている。前述の参考の特許/出願はそれぞれ参照によりその全体が本明細書に援用される。
EN20装置は、一般的に3つの層:1)内部の細胞除外膜、2)中央の膜リング、及び3)織りメッシュの外層から構成される。製造プロセスの間、3つの部品が一緒に超音波接合(又は密封)される場合、細胞除外膜は、特に溶接部と管腔の間の移行領域の近くで、目の詰まったメッシュによって圧縮され得る。装置の極端な屈曲も、膜の領域を圧縮し得る。これらの圧縮領域は、潜在的に、膜に割れ目ができ、装置の統合性を損なう(例えば、装置からの細胞漏れ)可能性がある。装置の構造的統合性を改善し、同時にその機能性(細胞除外、血管形成、生体適合性等)維持するために、追加の材料及び/又は層の試験を行った。不織布は、潜在的な介在性のバッファ層として認識された。
むDulbecco培地に培養し、各コホートについてEN20サイズの装置に別々に添加した。
c−peptide ELISA、cat#10−1141−01)を使用して、血液試料の血清のヒトCペプチドを分析した。
層されない)、Cペプチド値は、移植後13週(NWF(3)あり装置の1603pM対EN20 Control−2装置の644pM、NWF(1)あり装置の1482pM対EN20 Control−2装置の644pM)と16週(NWF(3)あり装置の2186pM対EN20 Control−2の826pM、NWF(1)あり装置の2285pM対EN20 Control−2の826pM)でEN20 Control−2装置を移植されたマウスより約2.5倍高かった。(表8を参照のこと)
細胞除外膜層に対するNWF層の積層の効果をさらに調べた。小さいサイズの20μLの細胞送達装置の少なくとも3つの構成を構築した(「EN20」)。対照の装置は、最
内層の細胞除外膜と最外層のメッシュから構成された(「EN20 Control」)。実験用装置は、最内層の細胞除外膜、中央のNWF及び最外層のメッシュから構成された。一構成において、NWFを細胞除外膜に積層しなかった(「EN20−NWF(2)」)。別の構成において、熱と圧力を使用してNWFを細胞除外膜に積層した(「EN20−NWF(2)−HL」)。細胞除外膜及びNWFの熱積層(すなわち、熱スタッキング)を標準的な熱プレス機械(例えばARB Arbor Press、Plastic
Assembly Systems)を使用して行った。プレスを305〜320oF
に加熱し、0〜6PSIの圧力を3フィート/分又は10フィート/分の速度で加えた。
出願人は、マクロ細胞送達装置の穿孔の最適な数(密度)を特徴付けようとする。以下の表2は、穿孔された不織布ありの有孔細胞送達装置と不織布なしの有孔細胞送達装置を記載し、密度(装置の約100ミクロンにつき穿孔の数)を変える。概して、NWF層は
、その不織布構造により不同の孔又はギャップを有することに留意されたい。そのため、100ミクロン未満の孔又はギャップがあり得、100ミクロンより大きい孔又はギャップもあり得る。NWF層は、基本重量が約0.4〜0.75oz/yd^2であり、公称厚みが約127〜約228μm、繊維径が26μmを有し得る。装置に孔を開ける方法は様々あるが、例えば、全層を互いの上部で最初に積層し、その後、装置の両側又は壁の各層を穿孔する。あるいは、細胞除外層を穿孔し、その後、NWF層を含むその他の無孔層の装置と合わせる。レーザーでの穿孔は、孔サイズ(直径)及び穿孔の数(密度)をかなり制御する。以下の表2の群1〜3では、細胞除外膜をレーザーで穿孔して、約50〜120μmで平均直径が約87μmであり、互いに約1mm、1.5mm又は2mm間隔の孔を形成した。小ゲージの皮下針を使用して、対照群(群4及び群5)の各層に互いに約2mmの孔を手動で作製した。
のを補助し、それにより細胞生存率及び分化が増加すると予想しているため、このことは驚くべきことだった。
前述の実施例3、表2に記載の有孔送達装置を移植されたラットでは、マウスのインタクトな装置に比べて、経時的にCペプチド含有量が増加することを示した(例えば、インタクトな装置について図7の点線を参照のこと)。図7は、様々な穿孔の構成によって生成されたCペプチドを示し、NWF層を有する有孔装置では、(インスリン含有量を示す)Cペプチドが最大約30、35又は40週まで増加することを示す。約15週で、有孔装置の細胞は、無孔装置に移植された細胞よりも約50%も多くのCペプチドを生成する。16週で、有孔装置の細胞によって生成された平均のCペプチドは2,696ピコモルであり(図7、SP−2016−149)、図3に記載のようにIEQに対するCペプチドのレベルの直線関係に基づいており、装置につき約6,300IEQであり、すなわち細胞量は約6300IEQである。約39週までに、有孔装置の細胞は、9,244ピコモルの平均Cペプチド値を有し(図7、SP−2015−128)、再び図3に基づいており、装置につき約23,100IEQの用量である。
量を達成することができる。したがって、一実施形態において、有孔装置の細胞は、インタクト又は無孔装置と同じサイズ容量につき、投与能力を改善する。
膵島置換療法について、有孔装置の治療用細胞を移植することは、慢性免疫抑制療法を必要とする。死体からの膵島移植細胞の維持免疫抑制ではタクロリムス(TAC)等のカルシニューリン阻害剤を使用するが、シクロスポリン(CsA)、抗増殖剤及びミコフェノール酸モフェチル(MMF)を使用する頻度は少ない。カルシニューリン阻害剤は、(1)糖尿病誘発性であり(糖尿病を発症する、Crutchlow等(2007)、前述)、(2)マウスの内在性膵臓の再生に負に影響する(Heit(2006)、前述及びNir(2007)、前述)。このように、免疫抑制薬の投与から生じる有害事象は、増殖はin vivoのカプセルに包まれた膵臓内胚葉の成熟の重要な要素であるため、膵臓内胚葉の成熟について予想され得、膵臓内胚葉細胞移植片から生じる成熟したベータ細胞についても予想され得る。
カルシニューリン阻害剤代謝拮抗薬免疫抑制薬に暴露されたときの有孔装置にカプセル化された膵臓内胚葉がインスリン産生細胞に成熟する能力を評価した。表12は研究プロトコルの概要を示す。通常の食事(対照)、250mg/kgのシクロスポリンA(CsA−250)を含む食事、250mg/kgのシクロスポリンAと500mg/kgのミコフェノール酸モフェチル(CsA−250+MMF500)を含む食事、又は150mg/kgのタクロリムスと500mg/kgのミコフェノール酸モフェチル(TAC−150+MMF500)を含む食事をヌードラットにそれぞれ与えた。食事に順化して2週間後、ラットに実施例1〜4に記載の有孔装置で送達されるPECを移植した。
実施例1〜4は、NWFを組み入れると、NWFが細胞除外膜層に対する積層の有無から独立して、及び装置の孔密度(孔の数)から独立して、カプセルに包まれた細胞と送達装置の構造及び機能が増加することを示した。実施例5は、ヒト多能性幹細胞に由来する膵臓前駆体が、宿主がカルシニューリン阻害剤(例えばCsA)の免疫抑制レジメンで治療を受けると、実際は、生存し、発生し、機能性膵臓内分泌細胞に成熟し得ることを示し、このことはこれまで記載されたことがなく、出願人が開示するまで知られていなかった。実施例6は、膵臓前駆体がカルシニューリン阻害剤の免疫抑制レジメンだけでなく、代謝拮抗薬免疫抑制薬の免疫抑制レジメンにおいて生存することができることをさらに示した。
ベルが高かった。図12(インタクトな送達装置及び無孔装置、CsA−MMFによる治療なしを比較)を参照のこと。興味深いことに、CsA−MMFを投与され、有孔NWF送達装置を移植した動物のヒトCペプチドレベルは、同種の有孔NWF送達装置を移植したが、CsA−MMF免疫抑制薬を投与されていない動物より約2倍(1.6倍)高かった。図12を参照のこと。このヒトCペプチドの増加は、NWF送達装置とCsA−MMF免疫抑制レジメンの組み合わせの相乗効果の結果であり得る。この改善されたヒトCペプチドレベルは、NWF単独及び/又はISDとの併用によって軽減された改善された宿主の血管新生の結果であり得る。
Claims (20)
- 不織布層及びPDX1陽性膵臓内胚葉細胞を含む細胞送達装置を含む組合せ製品。
- 前記細胞組合せ製品が細胞除外膜をさらに含み、前記不織布層が前記細胞送達装置の前記細胞除外膜に対して外側にある請求項1に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層及び前記細胞除外膜が共に積層される請求項1又は請求項2に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層及び前記細胞除外膜が穿孔を含む請求項2又は請求項3に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層が穿孔されず、前記細胞除外膜が穿孔される請求項2又は請求項3に記載の組合せ製品。
- 前記組合せ製品が免疫抑制薬で治療を受けたラットに移植される請求項1から5の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記PDX1陽性膵臓内胚葉細胞が膵臓前駆細胞である請求項1から6の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記PDX1陽性膵臓内胚葉細胞が膵臓内分泌細胞である請求項1から6の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記PDX1陽性膵臓内胚葉細胞が膵臓ベータ細胞である請求項1から6の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層及び前記細胞除外膜の前記穿孔が150ミクロン以下の直径を有する請求項4又は請求項6から9の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層及び前記細胞除外膜の前記穿孔が100ミクロン以下の直径を有する請求項4又は請求項6から9の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層及び前記細胞除外膜の前記穿孔が75ミクロン以下の直径を有する請求項4又は請求項6から9の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層及び前記細胞除外膜の前記穿孔が50ミクロン以下の直径を有する請求項4又は請求項6から9の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層及び前記細胞除外膜の前記穿孔が約1.0mm離れている請求項4又は請求項6から13の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層及び前記細胞除外膜の前記穿孔が約1.5mm離れている請求項4又は請求項6から13の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層及び前記細胞除外膜の前記穿孔が約2mm離れている請求項4又は請求項6から13の何れか1項に記載の組合せ製品。
- 前記不織布層及び前記細胞除外膜がそれぞれ、装置につき約40個未満の穿孔を含む請
求項4又は請求項6から16の何れか1項に記載の組合せ製品。 - 前記不織布層及び前記細胞除外膜がそれぞれ、装置につき約20個未満の穿孔を含む請求項4又は請求項6から16の何れか1項に記載の組合せ製品。
- a)哺乳類動物宿主に免疫抑制薬を投与し、
b)膵臓内胚葉細胞を含む有孔装置を前記哺乳類動物宿主に移植し、及び
c)前記哺乳類動物宿主の前記有孔装置において前記膵臓内胚葉細胞集団を成熟させ、前記前駆細胞集団がインスリン分泌細胞を産生し、それによって哺乳類動物でインスリンが産生することを含む哺乳類動物でインスリンを産生する方法。 - 前記哺乳類動物宿主がヒト又はラットである請求項19に記載の方法。
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