JP2019529385A - Cns障害を治療するための方法及びベクター - Google Patents
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Abstract
Description
[0021]特定の実施形態では、治療用タンパク質をコードするコドン最適化核酸バリアントがベクターで採用される。特定の態様では、そのようなコドン最適化核酸バリアントは、コードされる治療用タンパク質について、その転写及び/又は翻訳の増加を実現する。そのようなコドン最適化核酸バリアントは、治療用タンパク質をコードする非コドン最適化核酸と比較して、特定のコドン最適化核酸バリアントについて、例えば0.5〜10倍の発現増加を示し得る。
[0141]この実施例は、アデノ随伴ウイルス血清4型(AAV4)の脳室内注射を通じて異なるApoEアイソフォームを過剰発現させた後、app/psマウスにおけるアミロイド沈着の進行の変化について試験した。
[0146]要するに、AAV4ベクターを注射したAPP/PSマウスにおいて、GFP及びhuApoEを免疫検出した。GFPシグナルが、脳室エリア全体(上側パネル)及び脳室内側を覆う細胞、並びにヒトAPOEにおいて認めることができた。
[0149]In vivoでの二光子画像法を使用して、生存動物におけるアミロイド沈着物を経時的に追跡した。要するに、APP/PSマウス(7月齢)に、ApoE2、ApoE3、ApoE4、及びVenusをコードするAAV4ベクターを定位的に注射した。1週間後、頭蓋窓を移植し、開頭後、アミロイド沈着物を経時的に画像化した。2カ月後、動物を絶命せしめ、死後分析を実施した。
[0152]In vivoでの二光子画像法は、2カ月間にわたり、各アミロイド沈着物のサイズ変化について、その追跡を可能にした。プラークのサイズは、安定なままであるか、経時的に増加又は減少し得る。T1/T0とT2/T1の間のサイズ比の分布は、AAV4−ApoE4を注射したマウスでは、その他の群と比較して、アミロイドプラークがそれよりも大きくなる傾向が認められることを示している(国際公開第2015/077473号に示す図3)。
[0153]AAV4注射から2カ月後、死後の立体解析学的評価より、AAV4−ApoE4注射した動物は、皮質内により高密度のアミロイドプラークを有する一方、その他の群の間では相違を検出することはできないことが判明した(国際公開第2015/077473号に示す図4A)。このようなアミロイド沈着物数の増加は、プラークをThioS又はBam10で標識したときに認められる。但し、Bam10とThioSの間の比の変化は検出されなかった。注射から5カ月後、各ApoEアイソフォームの効果は、2カ月と比較してそれより顕著である(国際公開第2015/077473号に示すように図4B)。マウスにAAV4−ApoE4を注射したとき、沈着物の密度の有意な増加を認めたが、一方ApoE2について逆の効果を検出した。やはり、Bam10とThioSの間の比の変化は検出されなかった。
[0154]アレイトモグラフィーを使用して、アミロイド沈着物周辺のプレ及びポストシナプスエレメントの密度を正確に決定した。この新しい画像化法は、組織分子構造を高分解能で画像化する能力をもたらす。アレイトモグラフィーは、試料の超薄切片化(70nm)、免疫染色、及び3D再構成に基づく。アミロイドプラーク及びポストシナプスマーカーPSD95について染色されたアレイトモグラフィーサンプルの代表的な画像。アレイトモグラフィー画像は、ポストシナプスマーカーPSD95の数の減少がアミロイド沈着物周辺に認められるが、しかしこの効果は、プラークから離れたところでは消滅することを示している。プラーク近傍又は遠方におけるプレシナプスマーカー(シナプシン−1)及びポストシナプスマーカーの定量を、AAV4を注射したマウスの各群において決定した(国際公開第2015/077473号に示す図5A〜D)。プレ及びポストシナプスエレメントについて広範囲にわたる定量化を行い、シナプシン1及びPSD95の密度の減少は、アミロイドプラークと関連すること、この効果はAPP/PS1マウスの脳内でApoE4が過剰発現したときに劇的に増幅されることを確認した(国際公開第2015/077473号に示す図5C、図5D)。ApoE4の過剰発現は、その他の群との比較においてアミロイド沈着物近傍の脊椎喪失の増加と関連する。逆に、シナプシン斑の密度は、ApoE2で処置した動物の方がプラーク周辺においてより高い。
[0155]AAVウイルス血清4型を脳室内に注射すると、大脳の実質全体を通じて可溶性の組換えタンパク質の持続的且つ慢性的な過剰生成を引き起こした。ApoE2、ApoE3、及びApoE4の過剰発現は、APP/PSマウスにおける病理学の経過に対して差動的に影響を及ぼし、そのため、ApoE4を注射したとき、ApoE3と比較してアミロイド負荷の進行が有意に高まった。反対に、ApoE2は、保護効果と関連し、いくつかのアミロイド沈着物は注射から2カ月後にはもはや検出不可能である。死後の免疫組織学的分析では、ApoE4の有害な作用を確認した。ApoE4が持続的に過剰生成すると、アミロイド沈着物周辺に認められたシナプス消失がApoE3と比較して増悪したが、ApoE2の効果は軽度であった。本試験は、ApoEアイソフォーム、アミロイドーシスの進行、及びシナプス消失の間のin vivoにおける直接的な関連性を実証した。
[0156]脳障害、例えばアルツハイマー病等に対する遺伝子療法を実現するために、哺乳動物において治療用酵素レベルが長期にわたり定常状態を実現することができるか確認する必要があった。上衣細胞(脳内の脳室内側を覆う細胞)に形質導入し、脳脊髄液(CSF)中に標的酵素を分泌させ得ることが発見された。アデノ随伴ウイルス(AAV4)は、マウスモデルの上衣に高効率で形質導入することができることが確認された(Davidsonら、PNAS, 28:3428-3432, 2000)。マウスでは、疾患脳内に貯えられた基質レベルがAAV4処置後に正常化することが認められた。
[0163]アルツハイマー病(AD)は最も頻度の高い加齢性神経変性障害であり、主要な公衆衛生上の懸念となっている。ADの遅発性散発性の形態と関連する感受性遺伝子の中でも、アポリポタンパク質Eε4(APOE遺伝子;ApoEタンパク質)対立遺伝子は、並外れて最も重要な遺伝的リスク因子である。APOEε4が1コピー存在しても、最も一般的なAPOEε3対立遺伝子と比較して、疾患発症リスクを実質的に3倍増加させる一方、2コピーでは12倍増加させる。興味深いことに、APOEε2は逆の効果を有し、防御因子でもあり、この特別な対立遺伝子の遺伝質は、APOE3/3と比較して、ADの年齢調整リスクを約半分に減少させる。認知症の発症の平均年齢もこれらのリスクプロファイルに対応しており、APOE4/4保因者は60代半ばに発症し、APOE2/3保因者は90代前半に発症する(ほぼ30年のずれ)一方、APOE3/3個体は発症年齢がその間、つまり1970代半ばである。
AAV4−APOEを脳室内注射すると、脳においてAPOE発現が安定化し、ヒトApoEが持続的に産生される
[0167]アポリポタンパク質Eは自然に分泌されるタンパク質であり、アストロサイト及びミクログリア細胞によって主に産生され、脳実質全体にわたり拡散することができる。本発明者らは、GFP(コントロール)又は各APOE対立遺伝子をコードするAAV血清4型を、7月齢のAPP/PS1マウスの側脳室に注射することによって、この特性の利点を利用した。大脳領域がADの特徴的病変によって冒されていることを考慮すると、この戦略は複数回の実質内注射と比較して大きな利点をもたらした。
[0171]GFP又は様々なApoEアイソフォームを発現するベクターをAPP/PS1マウスに形質導入し、その5カ月後に安楽死させた。アミロイドプラーク負荷の分析により、5カ月後において、AAV4−APOE4を注射した動物の皮質において、APOE2を発現する動物と比較して、アミロイド沈着密度の有意な増加が観察されたことが判明した。AAV4−GFP及びAAV4−APOE3処置マウスにおけるプラーク密度は中間レベルで互いに相違しなかった(国際公開第2015/077473号に示す図16A)。
[0177]5カ月後、ApoE4はアミロイド沈着物の密度増加に関連したのに対して、ApoE2では逆の効果が観察された。これは、アミロイドβの沈着、排出、又はその両方の速度の変化を反映している可能性がある。ApoEバリアントがアミロイドーシスの動的進行にどのように影響を与えるか評価するために、in vivoでの二光子画像法を使用し、アミロイドプラークの形成及び排出の動力学を追跡した。7月齢の時点でマウスにAAV4ベクターを脳室内注射し、1回目のイメージングセッションを実施するために、注射から1週間後に頭蓋窓を移植した(T0)。1カ月(T1)及び2カ月(T2)後、アミロイド沈着物を同一視野内で画像化した。2回目のイメージングセッションの後、死後分析のためにマウスを安楽死させた。
[0180]シナプス消失は認知機能障害と最も良好に相関するパラメーターである。本発明者らは、ApoE4が存在すると、ヒトAD患者の脳内シナプスオリゴマーAβのレベルがより高くなることと関連すること、及びApoE3と比較して、アミロイドプラーク周辺のシナプス密度の有意な減少を引き起こすことを最近明らかにした(R. M. Koffieら、Apolipoprotein E4 effects inAlzheimer’s disease are mediated by synaptotoxicoligomeric amyloid-beta. Brain 135, 2155 (Jul, 2012); T. Hashimotoら、Apolipoprotein E, Especially Apolipoprotein E4, Increases theOligomerization of Amyloid beta peptides. J Neurosci 32, 15181 (Oct 24, 2012))。更に、最近のin vitroでの証拠より、ApoE4は、Aβ誘発性のシナプス消失に対してそれを防御することができなかったことが実証された(M. Buttiniら、Modulation of Alzheimer-likesynaptic and cholinergic deficits in transgenic mice by human apolipoprotein Edepends on isoform, aging, and overexpression of amyloid beta peptides but noton plaque formation. J Neurosci 22, 10539 (Dec 15, 2002); A. Sen, D. L. Alkon,T. J. Nelson, Apolipoprotein E3 (ApoE3) but not ApoE4 protects against synapticloss through increased expression of protein kinase C epsilon. J Biol Chem 287,15947 (may 4, 2012))。従って、各ApoEアイソフォームの連続的で広範囲の分布は、APP/PSマウスの脳内Aβの沈着及び排出の動力学だけではなく、アミロイド沈着物周辺のシナプスの完全性にも差動的に影響を与え得るという仮説を立てた。
[0183]次に、ISF内に異なるApoEアイソフォームが存在すると、それと同一の細胞外コンパートメントに含まれる可溶性アミロイド種の量を変化させ得るかという問題に取り組んだ。異なるトランスジェニックマウス系統において、本発明者らのこれまでの知見を検証するために、別のADモデルであるTg2576マウスに注射することを選択する。Tg2576マウスは、スウェーデン突然変異を含有する突然変異形態のAPPを過剰発現し、所定の年齢において、APP/PS1マウスよりもはるかに軽度の表現型を示す。16〜18月齢の動物コホートに注射したところ、アミロイド沈着物がAAV4−APOE形質導入時に既に存在していた。遺伝子移入から3カ月後、微小透析プローブを海馬に挿入し、サンプルを採取して、ISF内の各APOEバリアントに関連する初期の変化について特徴づけを行った。
[0187]実施例1〜3内の上記試験は国際公開第2015/077473号に記載されており、防御性ApoEアイソフォームをコードする導入遺伝子を含むAAVベクターをアルツハイマー病動物モデルのCNS中に投与したときのその治療有効性を示している。従って、上記試験は、AAVベクターによりCNSに送達された防御性ApoEアイソフォームはアルツハイマー病の治療法となる、という提案を裏付ける。
APOE ELISA
[0188]特異的ELISAアッセイ法を、ヒトAPOEタンパク質及び内因性マウスAPOEタンパク質の両方を検出するのに使用した。要するに、ELISAプレートを、1.5μg/mlのヤギ抗APOE抗体(マウスAPOEを検出するため)、又は1.5μg/mlのWUE4抗体(ヒトAPOEを検出するため)を用いて一晩コーティングし、PBS中で希釈した1%脱脂乳を用いて37℃で1.5時間ブロックした。ヒト組換えapoEタンパク質(ヒト特異的アッセイ用、Biovision社)、又は脳抽出物から内作したマウス標準(マウス特異的アッセイ用)を標準として使用し、サンプルをELISAバッファー(PBSに溶解した0.5%BSA及び0.025%ツイーン20)中で希釈し、一晩インキュベートした。洗浄後、ヒトに対して特異的(ヤギ−apoe Millipore;1:10,000)、又はマウスに対して特異的(Abcam ab20874;1:2,000)検出抗体をそれぞれ使用し、その後該当するHRP結合二次抗体と共に1.5時間インキュベーションした。TMB基質を使用してシグナルの顕色を実施した後、H3PO4を使用して溶液を停止した。比色分析結果を450nmで測定した。
[0189]Aβ40及びAβ42の濃度を、製造業者の指示に基づき、BNT−77/BA−27(Aβ40用)及びBNT−77/BC−05(Aβ42用)サンドイッチELISA(Wako社)により測定した。捕捉及び検出の両方について同一のN末端(残基1〜16)抗体を用いた82E1/82E1サンドイッチELISA(Immuno−Biological Laboratories社)を使用して、Aβオリゴマーを定量した(W. Xiaら、A specific enzyme-linkedimmunosorbent assay for measuring beta-amyloid protein oligomers in humanplasma and brain tissue of patients with Alzheimer disease. Arch Neurol 66, 190(Feb, 2009))。
[0001]本出願は、2016年9月2日出願の米国仮特許出願第62/383,274号の優先権を主張する。掲載されているすべてのテキスト、表、及び配列を含む上記出願の全内容は、参照として本明細書に組み込まれている。
Claims (46)
- 治療用タンパク質を哺乳動物の中枢神経系に送達する方法であって、
AAVカプシドタンパク質を含むrAAV粒子と、一対のAAV末端逆位反復配列の間に挿入された、前記治療用タンパク質をコードする核酸を含むベクターとを、前記哺乳動物の非中枢神経系(CNS)細胞、器官、又は組織に投与するステップを含み、
前記ステップは、前記非CNS細胞、器官、又は組織が、前記哺乳動物の中枢神経系に治療用タンパク質が送達されている前記哺乳動物の循環中に前記治療用タンパク質を発現及び分泌するように、前記哺乳動物内の前記非CNS細胞、器官、又は組織を感染させるのに有効な方式でなされる、方法。 - 哺乳動物における中枢神経系(CNS)疾患を治療する方法であって、
AAVカプシドタンパク質を含むrAAV粒子と、一対のAAV末端逆位反復配列の間に挿入された、治療用タンパク質をコードする核酸を含むベクターとを、前記哺乳動物の非中枢神経系(CNS)細胞、器官、又は組織に投与するステップを含み、
前記ステップは、前記非CNS細胞、器官、又は組織が、前記哺乳動物の中枢神経系に治療用タンパク質が送達されている前記哺乳動物の循環中に前記治療用タンパク質を発現及び分泌するように、前記哺乳動物内の前記非CNS細胞、器官、又は組織を感染させるのに有効な方式でなされる、方法。 - 哺乳動物における中枢神経系(CNS)疾患を治療する方法であって、AAVカプシドタンパク質を含むrAAV粒子と、一対のAAV末端逆位反復配列の間に防御性ApoEアイソフォームをコードする核酸を含むベクターとを、前記哺乳動物の非中枢神経系(CNS)細胞、器官、又は組織に投与するステップを含み、前記ステップは、肝臓の細胞が、前記哺乳動物の中枢神経系に防御性ApoEアイソフォームが送達されている前記哺乳動物の循環中に前記防御性ApoEアイソフォームを発現及び分泌するように、前記哺乳動物内の前記肝臓の細胞を感染させるのに有効な方式でなされる、方法。
- 哺乳動物における眼球の疾患を治療する方法であって、AAVカプシドタンパク質を含むrAAV粒子と、一対のAAV末端逆位反復配列の間に挿入された、前記治療用タンパク質をコードする核酸を含むベクターとを、前記哺乳動物の非眼球細胞、器官、又は組織に投与するステップを含み、前記ステップは、前記非眼球細胞、器官、又は組織が、前記哺乳動物の眼球の器官又は組織に治療用タンパク質が送達されている前記哺乳動物の循環中に前記治療用タンパク質を発現及び分泌するように、前記哺乳動物内の前記非眼球細胞、器官、又は組織を感染させるのに有効な方式でなされる、方法。
- 前記哺乳動物が、アルツハイマー病、リソソーム蓄積症、ニューロンセロイドリポフスチン沈着症(NCL)、例えば幼児NCL、遅発性幼児NCL、若年性NCL(バッテン病)、成人NCL、又はムコ多糖症(例えば、MPS IV又はMPS VII)等のうちの1つ若しくは複数の症状を有する、呈する、又はそれらを有するリスクに晒されている、請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記治療用タンパク質又は防御性ApoEアイソフォームが、前記哺乳動物に有益な効果又は治療効果をもたらす量で発現される、請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記治療用タンパク質又は防御性ApoEアイソフォームが、CNS疾患の物理的、生理学的、CNS/脳の病態生理学、生化学的、組織学的、又は行動学的特徴に対して、前記哺乳動物に有益な効果又は治療効果をもたらす量で発現される、請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記治療用タンパク質が、防御性ApoEアイソフォームである、請求項1、2及び4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記防御性ApoEアイソフォームが、ヒトApoEε2と少なくとも70%同一である、請求項3又は8に記載の方法。
- 循環性ApoE4のレベルが、総循環性ApoEレベルと比較して低減される、請求項3又は8に記載の方法。
- 前記治療用タンパク質が、TPP1である、請求項1、2及び4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記TPP1が、ヒトTPP1と少なくとも70%同一である、請求項11に記載の方法。
- 前記治療用タンパク質が、CLN3、PPT1、CLN6、又はCLN8である、請求項1、2及び4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記CLN3、PPT1、CLN6、又はCLN8が、ヒトCLN3、PPT1、CLN6、又はCLN8と少なくとも70%同一である、請求項13に記載の方法。
- 前記治療用タンパク質が、ガラクトサミン−6−スルファターゼである、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ガラクトサミン−6−スルファターゼが、ヒトガラクトサミン−6−スルファターゼと少なくとも70%同一である、請求項15に記載の方法。
- 前記治療用タンパク質が、β−グルクロニダーゼである、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記β−グルクロニダーゼが、ヒトβ−グルクロニダーゼと少なくとも70%同一である、請求項17に記載の方法。
- 前記治療用タンパク質をコードする核酸が、前記治療用タンパク質をコードするシトシン−グアニンジヌクレオチド(CpG)が低減されていない核酸と比較して、CpGが低減されている、請求項1〜18のいずれか一項に記載の方法。
- 前記治療用タンパク質をコードする核酸が、前記治療用タンパク質をコードする野生型核酸と比較して、シトシン−グアニンジヌクレオチド(CpG)が低減されている、請求項1〜19のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ベクターが、イントロン、発現制御エレメント、フィラーポリヌクレオチド配列、及び/又はポリAシグナルのうちの1つ若しくは複数、又はその組合せを更に含む、請求項1〜20のいずれか一項に記載の方法。
- 一対のITRが、AAV1、AAV2、AAV3、AAV4、AAV5、AAV6、AAV7、AAV8、AAV9、AAV10、AAV11、AAV12、LK01、LK02、LK03、AAV4−1、AAV−2i8のITRのうちのいずれかの配列又はその混合物に由来する又はそれを含む、請求項1〜21のいずれか一項に記載の方法。
- 前記AAVカプシドタンパク質が、AAV1、AAV2、AAV3、AAV4、AAV5、AAV6、AAV7、AAV8、AAV9、AAV10、AAV11、AAV12、LK01、LK02、LK03、AAV4−1、AAV−2i8のITRのうちのいずれかの配列又はその混合物に由来する又はそれを含む、請求項1〜22のいずれか一項に記載の方法。
- 前記非CNS細胞、器官、若しくは組織、又は非眼球細胞、器官、若しくは組織が、哺乳動物の内分泌細胞、器官、又は組織を含む、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記非CNS細胞、器官、若しくは組織、又は非眼球細胞、器官、若しくは組織が、肝臓の細胞、肝臓又は肝臓の組織、及び膵臓の細胞、膵臓又は膵臓の組織を含む、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記非CNS細胞、器官、若しくは組織、又は非眼球細胞、器官、若しくは組織が、肝臓の肝細胞又は膵島を含む、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記肝臓の細胞が、肝臓の肝細胞を含む、請求項3に記載の方法。
- 前記rAAV粒子が、前記哺乳動物1キログラム当たり、ベクターゲノム約1×108〜1×1010個、1×1010〜1×1011個、1×1011〜1×1012個、1×1012〜1×1013個、又は1×1013〜1×1014個(vg/kg)の範囲の用量で投与される、請求項1〜27のいずれか一項に記載の方法。
- 前記rAAV粒子が、前記哺乳動物1キログラム当たり、ベクターゲノム1×1012個(vg/kg)未満の用量で投与される、請求項1〜27のいずれか一項に記載の方法。
- 前記rAAV粒子が、前記哺乳動物1キログラム当たり、ベクターゲノム約5×1011個(vg/kg)の用量で投与される、請求項1〜27のいずれか一項に記載の方法。
- 所望の治療効果を実現するために、投与される前記rAAV粒子が、前記哺乳動物の体重1キログラム当たり、少なくともベクターゲノム(vg)1×1010個(vg/kg)であるか、又は前記哺乳動物の体重1kg当たり、vg約1×1010〜1×1011個の間であるか、又は前記哺乳動物の体重1kg当たり、vg約1×1011〜1×1012個の間(例えば、約1×1011〜2×1011vg/kg、又は約2×1011〜3×1011vg/kg、又は約3×1011〜4×1011vg/kg、又は約4×1011〜5×1011vg/kg、又は約5×1011〜6×1011vg/kg、又は約6×1011〜7×1011vg/kg、又は約7×1011〜8×1011vg/kg、又は約8×1011〜9×1011vg/kg、又は約9×1011〜1×1012vg/kg)であるか、又は前記哺乳動物の体重1kg当たり、vg約1×1012〜1×1013個の間である、請求項1〜27のいずれか一項に記載の方法。
- 前記哺乳動物が、前記治療用タンパク質及び/又は前記rAAV粒子に対する実質的な免疫応答を起こさない、請求項1〜31のいずれか一項に記載の方法。
- 前記哺乳動物が、前記治療用タンパク質及び/又は前記rAAV粒子に対する実質的な体液性免疫応答を起こさない、請求項1〜31のいずれか一項に記載の方法。
- 前記哺乳動物が、少なくとも連続して1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、又は14日、週、又は月にわたり、前記治療用タンパク質及び/又は前記rAAV粒子に対する実質的な免疫応答を起こさない、請求項1〜33のいずれか一項に記載の方法。
- 前記哺乳動物が、前記治療用タンパク質及び/又は前記rAAV粒子に対する検出可能な免疫応答を起こさない、請求項1〜31のいずれか一項に記載の方法。
- 前記哺乳動物が、前記治療用タンパク質及び/又は前記rAAV粒子に対する検出可能な体液性免疫応答を起こさない、請求項1〜31のいずれか一項に記載の方法。
- 前記哺乳動物が、少なくとも連続して1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、又は14日、週、又は月にわたり、前記治療用タンパク質及び/又は前記rAAV粒子に対する検出可能な体液性免疫応答を起こさない、請求項1〜31のいずれか一項に記載の方法。
- 前記哺乳動物が、前記哺乳動物において前記治療用タンパク質の治療効果を遮断するのに十分な、前記治療用タンパク質及び/又は前記rAAV粒子に対する免疫応答を起こさない、請求項1〜31のいずれか一項に記載の方法。
- 前記哺乳動物が、少なくとも連続して1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、又は14日、週、又は月にわたり、前記哺乳動物において治療効果を遮断するのに十分な、前記治療用タンパク質及び/又は前記rAAV粒子に対する免疫応答を生成しない、請求項1〜31のいずれか一項に記載の方法。
- 空のAAVカプシドの投与を更に含む、請求項1〜39のいずれか一項に記載の方法。
- 前記空のAAVカプシドが、前記rAAV粒子と共に製剤化され、前記哺乳動物に投与される、請求項40に記載の方法。
- 前記空のAAVカプシドが、rAAVベクター粒子の量と等しい又はそれ未満の量で投与又は製剤化される、請求項40又は41に記載の方法。
- 前記空のAAVカプシドが、空のAAVカプシドrAAV粒子の約1.0〜100倍過剰に投与又は製剤化される、請求項40又は41記載の方法。
- 前記投与するステップが、対象の体循環中への輸注又は注射を含む、請求項1〜43のいずれか一項に記載の方法。
- 前記投与するステップが、対象の体循環中への静脈内又は動脈内の輸注又は注射を含む、請求項1〜43のいずれか一項に記載の方法。
- 前記投与するステップが、対象の肝門脈中への輸注又は注射を含む、請求項1〜43のいずれか一項に記載の方法。
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