JP2018513672A - トロンビン及びその分解ポリペプチドの精製及び定量化方法 - Google Patents

Abstract

α−トロンビンの精製方法並びに液体タンパク質溶液中のα−トロンビン及びその分解ポリペプチドの定量化方法が提供される。本方法は、一工程陰イオン交換クロマトグラフィー方法を採用する。本方法は、均質な翻訳後修飾α−トロンビンの精製及び／又は定量を可能にする。本方法は、β−トロンビンの精製及び／又は定量にも使用することができる。

Description

液体タンパク質溶液中のα−トロンビン、均質にグリコシル化されたα−トロンビン、及び／又はトロンビン分解ポリペプチドの分析及び定量化を可能にする方法が提供される。特に、単一クロマトグラフィー工程を採用する分析及び定量的方法が提供される。また、トロンビン分解ポリペプチドなしにα−トロンビン及び／又は均質にグルコシル化されたα−トロンビンの効率的かつ確実な精製を可能にする方法が提供される。本発明は、β−トロンビンの精製及び／又は定量にも使用することができる。

トロンビンは、いくつかの市販製品における臨床用途に広く使用されるセリンプロテアーゼである。これは、外科用ドレッシングの一般的な成分であり、フィブリン糊、接着剤、及びシーラントなどの止血系において、フィブリノーゲン及び他のタンパク質と組み合わせて使用されてきた。フィブリンシーラントは、典型的には、フィブリノーゲン成分及びトロンビン成分を含む。両成分が混合されると（例えば、出血創傷又は外科的切開に適用されるときに）、トロンビンは、フィブリノーゲンペプチドをフィブリノーゲンから切断し、よって後者が不溶性フィブリンポリマー／シーラントを生成することを可能にする。

水性液体形態の濃縮（例えば、５００ＩＵ／ｍＬ超）精製トロンビンは、主に自己消化の結果、長期間の保存中に活性の低下を示す場合がある。よって、トロンビン分解の評価は、トロンビンの安定性を決定するために不可欠な物理化学分析ツールである。

哺乳類のα−トロンビンは、２本のジスルフィド結合ポリペプチド鎖Ａ及びＢで構成されている。Ｂ鎖は、翻訳後修飾され（例えば、グリコシル化により）、フィブリノーゲン及び他のタンパク質に対してトロンビンのタンパク質分解活性を呈する。α−トロンビンは、β−トロンビン及びγ−トロンビンポリペプチド誘導体に自己消化し、これらは、ゲル電気泳動及びウエスタンブロットにより一部特定することができる。

トロンビン自己消化は、特に高濃度でトロンビンを製造及び保存する際の主な課題である。トロンビン分解ポリペプチド（β−トロンビン及びγ−トロンビン誘導体）を特定するための当該技術分野において既知の方法は、トロンビンとその分解ポリペプチドとの間の分離（変性分離）が不十分である、及び／又は労力がかかる、のいずれかの点において不適切である。したがって、定量は正確ではなく、かつ／又は不可能である。

背景技術は、以下を含む：
Ｂｏｉｓｓｅｌ ＪＰ ｅｔ ａｌ．「Ｃｏｖａｌｅｎｔ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ ｏｆ ｂｅｔａ ａｎｄ ｇａｍｍａ ａｕｔｏｌｙｔｉｃ ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ ｏｆ ｈｕｍａｎ ａｌｐｈａ−ｔｈｒｏｍｂｉｎ」．Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．１９８４ Ｍａｙ １０；２５９（９）：５６９１〜５６９７、Ｃｈａｎｇ ＪＹ．「Ｔｈｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ ａｎｄ ｐｒｏｔｅｏｌｙｔｉｃ ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｉｅｓ ｏｆ ａｕｔｏｌｙｓｅｄ ｈｕｍａｎ ｔｈｒｏｍｂｉｎ」．Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ．１９８６ Ｄｅｃ １５；２４０（３）：７９７〜８０２、Ｋａｒｌｓｓｏｎ Ｇ．「Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｈｕｍａｎ ａｌｐｈａ−ｔｈｒｏｍｂｉｎ ｂｙ ｈｙｄｒｏｐｈｏｂｉｃ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｈｉｇｈ−ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｌｉｑｕｉｄ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ」．Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐｒ Ｐｕｒｉｆ．２００３ Ｊａｎ；２７（１）：１７１〜１７４、欧州特許第ＥＰ ０４４３７２４号、及び国際公開第２００４／１０３５１９号。

Ｂｏｉｓｓｅｌらは、異なるトロンビン分解ポリペプチドを分離するために、ＣＥＸ−ＨＰＬＣ、その後のＲＰ−ＨＰＬＣによる分析の使用を説明している。Ｃｈａｎｇは、ＳＥＣクロマトグラフィーによって分離され、ＲＰ−ＨＰＬＣを使用して更に分析した純トロンビン画分のＨＰＬＣ分析を説明している。上記の方法は、トロンビンを定量し、それを他のタンパク質から分離するために、少なくとも２つの分離工程を必要とする短所を持つ。

Ｋａｒｌｓｓｏｎは、トロンビン分解産物を分離するために、疎水性相互作用クロマトグラフィー（ＨＩＣ）を説明している。

欧州特許第ＥＰ ０４４３７２４号は、ウイルス安全トロンビンの調製方法を開示しているが、この方法は、変性であり、異なるトロンビン分解産物間、又は異なるα−トロンビン翻訳後変異型間の分離を示さない。

国際公開第２００４／１０３５１９号は、タンパク質などの荷電分子を、それらの等電点（ｐＩ）に従い分離するための方法を開示しており、荷電分子を単離するために採用される系及び緩衝組成物を含む。

上記の技術の欠点を克服する、α−トロンビン又はβ−トロンビンを定量化するための分析方法、及びタンパク質溶液から活性で未変性のα−トロンビン又はβ−トロンビンを精製するための方法に対して、依然として満たされていないニーズがある。

溶液中のα−トロンビン及び／又は均質な翻訳後修飾α−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法が提供され、この溶液は、α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド（β−トロンビン及び／又はγ−トロンビンポリペプチド）、翻訳後修飾α−トロンビン種、又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む。

未変性の、例えば、未分解の機能的な活性α−トロンビン及び／又は均質な翻訳後修飾α−トロンビンの良好な分離を提供することにより、α−トロンビンを、タンパク質溶液から精製するための方法も提供し、この溶液は、α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド（β−トロンビン及び／又はγ−トロンビンポリペプチド）、翻訳後修飾α−トロンビン種、又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む。

均質なα−トロンビングリコフォームを、不均質なグリコシル化α−トロンビン種を含む溶液から精製するための方法も提供される。

β−トロンビンと、α−トロンビン、例えば、翻訳後修飾α−トロンビン種、γ−トロンビン、又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中のβ−トロンビンを精製及び／又は定量化するための方法も提供される。

本明細書で使用される場合、「のうちの少なくとも１つ」という用語は、機能において接続的及び離接的の両方である。例えば、「Ａ、Ｂ、又はＣのうちの少なくとも１つ」という表現は、Ａのみ、Ｂのみ、Ｃのみ、Ａ及びＢ共に、Ａ及びＣ共に、Ｂ及びＣ共に、又はＡ、Ｂ、及びＣ共にという意味である。

均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、均質にグリコシル化されたα−トロンビン、又は均質にグリコシル化された及び均質にシアリル化されたα−トロンビンであり得る。

本出願に従う均質なα−トロンビングリコフォームは、「均質にグリコシル化されたα−トロンビン」又は「均質にグリコシル化された及び均質にシアリル化されたα−トロンビン種」であり得る。

典型的には、グリコフォームは、付加されたグリカン又は多糖類の数及び／又は種類に関してのみ異なるタンパク質のイソ型である。糖タンパク質は、いくつかの異なるグリカンからなる場合が多く、付加された糖類が変化する。

多くの場合、「グリカン」及び「多糖」という用語は、糖タンパク質などの複合糖質の炭水化物部分を指す。グリカンは、単糖残基のホモ−又はヘテロポリマーであり得、直鎖状又は分枝状であり得る。グリカンは、負電荷を有する、又は有しない糖類を保有し得る。

本方法は、溶液を陰イオン交換体と接触させる工程を含む。本方法は、確実かつ再現可能な性能を得ること、高度に精製され、活性なα−トロンビン及び／又は均質な翻訳後修飾α−トロンビンを提供すること、並びにα−トロンビン、均質な翻訳後修飾α−トロンビン、及び／又はその分解ポリペプチドの正確な定量を可能にする。本方法は、β−トロンビン単独の定量及び／又は精製も可能にする。

一態様では、α−トロンビンを、α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液から精製するための方法が提供され、本方法は、１−溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、２−差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィー（ＡＥＸ）により、α−トロンビンを、α−トロンビン分解ポリペプチド（例えば、β−トロンビン及び／又はγ−トロンビンポリペプチドから）及び／又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程と、３−α−トロンビン画分を回収し、それにより精製α−トロンビンを得る工程と、を含む。

いくつかの実施形態では、本方法は、差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィー（ＡＥＸ）により、α−トロンビンを、α−トロンビン分解ポリペプチド（例えば、β−トロンビン及び／又はγ−トロンビンポリペプチド）及び別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程を含む。

一実施形態では、α−トロンビンは、ヒト血液又は血漿源からのものである。別の実施形態では、α−トロンビンは、組み換え体源からのものである。

本明細書で使用される、「分離」という用語は、典型的には、特定の化合物を、特定の化合物及び別の化合物を含む溶液から単離することを指す。

一態様では、均質にグリコシル化されたα−トロンビンを、不均質にグリコシル化されたα−トロンビンを含む溶液から精製するための方法が提供され、本方法は、１−溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、２−差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィー（ＡＥＸ）により、均質にグリコシル化されたα−トロンビンを、不均質にグリコシル化されたα−トロンビンから分離する工程と、３−均質にグリコシル化されたα−トロンビン画分を回収し、それにより精製された均質にグリコシル化されたα−トロンビンを得る工程と、を含む。

一態様では、均質にグリコシル化されたα−トロンビンを、不均質にグリコシル化されたα−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液から精製するための方法が提供される。別の態様では、均質にグリコシル化されたα−トロンビンを、不均質にグリコシル化されたα−トロンビン、α−トロンビン分解ポリペプチド、又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つを含む溶液から精製するための方法が提供される。本方法は、１−溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、２−差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィー（ＡＥＸ）により、均質にグリコシル化されたα−トロンビンを分離する工程と、３−均質にグリコシル化されたα−トロンビン画分を回収し、それにより精製された均質にグリコシル化されたα−トロンビンを得る工程と、を含む。

いくつかの実施形態では、工程１の接触工程後に、洗浄工程が均一濃度の緩衝液／溶液を使用して実施される。

本発明の一実施形態では、本方法は、トロンビン含有溶液を陰イオン交換体に装填する工程と、均一濃度溶液で洗浄する工程と、洗浄した画分を廃棄する工程と、ｐＨ勾配などの不均一濃度溶液を使用して、所望のα−トロンビン画分を溶出する工程と、を含む。均一濃度溶液の使用は、典型的には、液体クロマトグラフィーにおける一定の組成の移動相の使用に関連する。

「所望のα−トロンビン画分」は、典型的には、例えば、均質な翻訳後修飾α−トロンビン、例えば、均質にグリコシル化されたα−トロンビン又は均質にグリコシル化された及び均質にシアリル化されたα−トロンビンを含む、精製及び／又は定量が意図される溶液中に存在する任意のα−トロンビンを指す。

一態様では、均質なα−トロンビングリコフォームを、不均質なグリコシル化されたα−トロンビン種を含む溶液から精製するための方法が提供され、本方法は、
溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィーにより、均質なα−トロンビングリコフォームを、不均質な種から分離する工程と、
均質なα−トロンビングリコフォーム画分を回収し、
それにより精製された均質なα−トロンビングリコフォームを得る工程と、を含む。

一実施形態では、本方法は、精製された均質なα−トロンビングリコフォームを定量化する工程も含む。

別の態様では、α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中のα−トロンビンを定量化するための一工程又は単一工程クロマトグラフィー方法が提供され、本方法は、差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、α−トロンビンを、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程と、α−トロンビン画分を回収する工程と、α−トロンビンを定量化する工程と、を含む。別の態様では、α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中のα−トロンビンを定量化するための一工程又は単一工程クロマトグラフィー方法が提供され、本方法は、溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、ｐＨ勾配などの差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、α−トロンビンを、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程と、α−トロンビン画分を回収する工程と、α−トロンビンを定量化する工程と、を含む。

いくつかの実施形態では、α−トロンビンは、哺乳類、例えば、ヒト若しくはブタの血漿源、又は組み換えタンパク質からのものである。

本明細書に開示されるクロマトグラフィー方法は、当業者に既知の全ての技法を使用して実施され得る。例えば、高性能液体クロマトグラフィー装置、高速タンパク質液体クロマトグラフィー（ＦＰＬＣ）、及び／又は接続型検出器を備える、若しくは備えていない単独型カラムが採用され得る。

一実施形態では、陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー方法が使用される。高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ；高圧液体クロマトグラフィーとも称される）は、典型的には、試料混合物を含有する加圧液体溶媒を固体吸着物質で充填したカラムに通すために、ポンプに依存する技法である。試料中の各成分は、吸着物質とわずかに異なって相互作用し、成分の分離をもたらす。ＨＰＬＣは、動作圧力が非常に高い（５０〜３５０バール）ため、従来の（「低圧」）液体クロマトグラフィーと区別される。ＨＰＬＣ装置の機械式ポンプのいくつかのモデルは、時間で変化する比率で複数の溶媒を一緒に混合し、移動相において組成物の勾配を生成することができる。紫外線（ＵＶ）、フォトダイオードアレイ（ＰＤＡ）、又は質量分析などの様々な検出器が普及している。検出は、１９０〜４００ｎｍ（Ａ_{１９０ｎｍ}〜Ａ_{４００ｎｍ}）で、ＵＶ吸光度検出器を使用して実施することができる。一実施形態では、アミンが溶出緩衝液に含まれる場合、吸光度は約Ａ_{２８０ｎｍ}で測定される。

典型的には、クロマトグラフィー分離、例えば、ＨＰＬＣの実行は、少なくとも以下の工程からなる：平衡化カラムを試料／混合物と接触させる、例えば、それらで装填する（「装填」）。装填後、洗浄工程が実施され得る。この工程後、分離された成分がカラムから溶出される。これは、均一濃度で（装填及び／又は平衡化工程と比較したとき、緩衝液組成を変更することなく）、又は勾配（緩衝液の特性、例えば、塩濃度、極性、ｐＨのうちの少なくとも１つを変更する）を通して実施することができる。一実施形態では、溶出は直線勾配を使用して実施される。次の工程では、カラムを再生することができる（「カラム再生」）、つまり、任意の残留物質をカラムから溶出するために、変更した特性（塩濃度、極性、ｐＨ）の最高濃度で、残留成分に追加時間を与える。再生は、別の方法としては、他の緩衝液の特性を変更することにより（溶出工程中には変更されない）実施することができる。最終工程（「カラム平衡化」）は、カラムが更なる使用に好適である元の状態にカラムを戻すことを可能にする、平衡化工程であり得る。記載される工程は、別の方法としては、ＦＰＬＣ装置及び／又は単独型カラムを使用して実施することができる。クロマトグラフィー分離は、Ｈｉｄａｙａｔ Ｕｌｌａｈ Ｋｈａｎ（２０１２）．Ｔｈｅ Ｒｏｌｅ ｏｆ Ｉｏｎ Ｅｘｃｈａｎｇｅ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ ｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，Ｉｏｎ Ｅｘｃｈａｎｇｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｃｈａｐｔｅｒ １４，３３１〜３３４に記載されるように、当該技術分野において周知である。

有利に、本発明に従う方法は、未変性α−トロンビンの、トロンビン溶液中のその分解ポリペプチドから及び／又は他のタンパク質からの良好なピーク分離を提供する。典型的には、クロマトグラフィー方法において、「良好な分離」／「良好なピーク分離」は、成分の溶出の代表として検出されるピークが重複しない、つまり、検出器の応答がピーク間でベースラインレベルに戻る、成分の効率的な分離と考えられる。「良好なピーク分離」という用語はまた、溶出ピーク間の明確な区別が現れるが、検出器の応答がピーク間でベースラインレベルに完全に戻らない、「十分な分離」も含むことを意味する。

分離／分離能の有効性が視覚的に評価され得る。別の方法としては、又は加えて、クロマトグラフィーカラムが互いから成分を分離する程度である分離能（Ｒｓ）は、数学的に定義することができ、分離能は選択されたピークとそれの前のピークのピーク保持時間との間の差を定数１．１８で乗じて、ピーク高さの５０％のピーク幅の合計で除すことである。「保持時間」という用語は、溶出の代表として、注入の時点とピーク頂点（ピークの最上点）の検出時点との間の間隔を指す。

一般的に、２又はそれ以上の分離能レベルが成分の良好な分離と考えられ、ピークの良好な定量化を可能にする。１．５又はそれ以上（２未満）の分離能は、分離及び／又は定量化を可能にする「十分な分離」と考えられる。

本方法の一実施形態では、α−トロンビンピークとその分解ポリペプチドとの間の分離能は、約１．５〜約８の範囲である。

本方法の一実施形態では、トロンビン溶液中のα−トロンビンピークと他のタンパク質との間の分離能は、８よりも高い。

本方法の一実施形態では、異なるα−トロンビン種ピーク間の分離能は、約１．５〜約８の範囲である。

一実施形態では、異なるα−トロンビン分解ポリペプチド（β−トロンビン及びγ−トロンビン）間の分離能は、１．５より低く、例えば、０に等しい。一実施形態では、β−トロンビン及びγ−トロンビンは同じピークで溶出する。別の実施形態では、ある特定のβ−トロンビン形態は、別個のピークで溶出し、例えば、溶液中のβ−トロンビンと他の成分との間の分離能は約１．５〜約８である。したがって、一態様では、本発明は、β−トロンビンを、β−トロンビンと、α−トロンビン、γ−トロンビン、又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液から精製するための方法も提供し、本方法は、
溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィーにより、β−トロンビンを、α−トロンビン、γ−トロンビン、及び／又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程と、β−トロンビン画分を回収し、それにより精製β−トロンビンを得る工程と、を含む。

「β−トロンビン画分」という用語は、典型的には、差次的溶出条件下での、緩衝液を用いた、装填された陰イオン交換体（例えば、装填されたカラム）の溶出後に回収された画分を指す。

別の態様では、本発明は、β−トロンビンと、α−トロンビン、γ−トロンビン、又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中のβ−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法を提供し、本方法は、溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、β−トロンビンを、α−トロンビン、γ−トロンビン、及び／又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程と、β−トロンビンを定量化する工程と、を含む。

いくつかの実施形態では、本方法は、分離したβ−トロンビン、α−トロンビン、及び／又はγ−トロンビン含有画分を特定する工程を更に含む。いくつかの実施形態では、本方法は、α−トロンビン及び／又はγトロンビンを定量化する工程を更に含む。

いくつかの実施形態では、本方法は、差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィーにより、β−トロンビンを、α−トロンビン、γ−トロンビン、及び別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程を含む。

いくつかの実施形態では、クロマトグラフィー方法は、陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー方法である。いくつかの実施形態では、差次的溶出条件は、例えば、アミン又はアミンの混合物を含む溶離剤を使用することにより生成される、ｐＨ勾配を含む。いくつかの実施形態では、陰イオン交換体は、非多孔質粒子でできている。

別の態様では、本発明は、本発明の方法により得ることができる、精製β−トロンビン、単離したβ−トロンビン、及び本明細書に記載される、精製／単離したβ−トロンビンを含む製剤／キットを提供する。

いくつかの実施形態では、本方法は、均質な翻訳後修飾α−トロンビン画分の単離及び回収を可能にする。いくつかの実施形態では、均質な翻訳後修飾は、均質なグリコシル化である。いくつかの実施形態では、均質な翻訳後修飾は、均質なグリコシル化及びシアリル化である。いくつかの実施形態では、分離／回収したα−トロンビン画分は、均質なグリコシル化α−トロンビンである。いくつかの実施形態では、均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、単一のグリコフォームにより表される。いくつかの実施形態では、分離／回収したα−トロンビングリコフォームは、均質にグリコシル化及び／又はシアリル化されている。いくつかの実施形態では、単離、分離、及び／又は回収した翻訳後修飾α−トロンビン、例えば、均質なα−トロンビングリコフォームの均質性は、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９３％、少なくとも９４％、少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％、又は少なくとも１００％同一性のレベルである。例えば、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、９９、又は１００％未満であり、５０〜５５％、５０〜６０％、５０〜６５％、５０〜７０％、５０〜７５％、５０〜８０％、５０〜８５％、５０〜９０％、５０〜９５％、５０〜９９％、５０〜１００％、５５〜６０％、５５〜６５％、５５〜７０％、５５〜７５％、５５〜８０％、５５〜８５％、５５〜９０％、５５〜９５％、５５〜９９％、５５〜１００％、６０〜６５％、６０〜７０％、６０〜７５％、６０〜８０％、６０〜８５％、６０〜９０％、６０〜９５％、６０〜９９％、６０〜１００％、６５〜７０％、６５〜７５％、６５〜８０％、６５〜８５％、６５〜９０％、６５〜９５％、６５〜９９％、６５〜１００％、７０〜７５％、７０〜８０％、７０〜８５％、７０〜９０％、７０〜９５％、７０〜９９％、７０〜１００％、７５〜８０％、７５〜８５％、７５〜９０％、７５〜９５％、７５〜９９％、７５〜１００％、８０〜８５％、８０〜９０％、８０〜９５％、８０〜９９％、８０〜１００％、８５〜９０％、８５〜９５％、８５〜９９％、８５〜１００％、９０〜９５％、９０〜９９％、９０〜１００％、９５〜９９％、９５〜１００％同一性など、開示されるパーセントの間の任意の範囲を含む。また別の実施形態では、α−トロンビンは、未修飾であり、例えば、グリコシル化されない。

いくつかの実施形態では、タンパク質溶液は、別のタンパク質、α−トロンビン分解ポリペプチド（例えば、β−トロンビンポリペプチド及び／又はγ−トロンビンポリペプチド）、翻訳後修飾されないα−トロンビン（未修飾α−トロンビン）、又は翻訳後修飾α−トロンビンのうちの少なくとも１つを含む。

いくつかの実施形態では、溶液は、未修飾及び翻訳後修飾α−トロンビンの混合物を含む。

いくつかの実施形態では、溶液は、α−トロンビンの異なるグリコフォーム種を含む、不均質な翻訳後修飾α−トロンビンを含む。

いくつかの実施形態では、溶液は、例えば、溶液に添加されたタンパク質であり得る、別のタンパク質又はタンパク質断片を含む。いくつかの実施形態では、タンパク質は、例えば、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）である。本方法のいくつかの実施形態では、溶液は、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つを含む。

本方法のいくつかの実施形態では、溶液は、α−トロンビン分解ポリペプチド又はＨＳＡのうちの少なくとも１つを含む。

本方法のいくつかの実施形態では、溶液は、α−トロンビン分解ポリペプチド及びＨＳＡのうちの少なくとも１つを含む。

いくつかの実施形態では、本方法は、溶液を陰イオン交換カラム上に装填する工程を含む。いくつかの実施形態では、本方法は、バッチ式形態で、溶液を陰イオン交換体と接触させる工程を含む。

本明細書で使用される場合、「バッチ方法」、「バッチ式」、及び「バッチ形態」は一般的に、溶液が、典型的には単段吸着手順において、樹脂と接触させられる技法を指す。「単段吸着手順」は、精製プロセスの成分全て（例えば、樹脂及び溶液）が、例えば、撹拌タンク、バッチリアクター、又は槽で共にインキュベートされ、吸着が連続様式で実施される手順を指す。樹脂結合画分は、次に、遠心分離及び／又は濾過の追加工程により回収され得る。

いくつかの実施形態では、接触前、例えば、装填前に、交換体／カラムを、１０．５のｐＨ〜約ｐＨ７．０（例えば、９．１のｐＨ）に平衡化する。平衡化は、１０．５のｐＨ〜約ｐＨ７．０（例えば、９．１のｐＨ）で交換体を平衡化するのに好適な緩衝液（複数可）を使用して実施され得る。

一実施形態では、緩衝液はアミンの混合物を含む。いくつかの実施形態では、平衡化に使用されるアミン混合物は、ピペラジン、トリエタノールアミン、ビス−トリスプロパン、１−メチルピペラジン、ビシン、ビス−トリス、ジエタノールアミン、ジエチルアミン、１−ヒスチジン、イミダゾール、ピリジン、トリシン、トリエタノールアミン、及び／又はトリスを含む。

いくつかの実施形態では、平衡化に使用されるアミン混合物は、ピペラジン、トリエタノールアミン、ビス−トリスプロパン、及び１−メチルピペラジンからなる。いくつかの実施形態では、平衡化緩衝液中のアミンの濃度は、約１〜約１００ｍＭの範囲、例えば、約１０〜約２０ｍＭの範囲又は約２０ｍＭである。

接触中、例えば、装填中の流量は、約０．１〜約１．４ｍＬ／分の範囲であり得る。いくつかの実施形態では、α−トロンビンの分解ポリペプチド、α−トロンビン、均質なα−トロンビングリコフォーム、及び／又は別のタンパク質間の分離を可能にする条件は、陰イオン交換体／カラムを溶出のためのｐＨ勾配条件に曝すなど、差次的溶出条件を適用することを含む。

いくつかの実施形態では、差次的溶出条件は、ｐＨ勾配を、例えば、段階的又は連続して（例えば、直線）適用することを含む。典型的には、「連続勾配」は、溶離剤の組成が、徐々に、連続して、及び一定して変更される勾配として定義されるが、「段階的勾配」は、溶離剤の組成の即時変更を含む。

いくつかの実施形態では、勾配の長さは、５分〜１００分、又は５分〜６０分の範囲である。別の実施形態では、勾配の長さは、２５分より長い、例えば、３０より長い、又は３５分より長い。いくつかの実施形態では、勾配の長さは、２５分〜３５分超の範囲、又は２５分〜３０分超の範囲である。

一実施形態では、溶出は、陰イオン交換体の平衡化に使用された緩衝液と同じもので実施される。

いくつかの実施形態では、直線ｐＨ勾配は、約９．１〜約ｐＨ３．４の範囲など、約ｐＨ１０．５〜約ｐＨ２．０である。

いくつかの実施形態では、ｐＨ勾配は、アミン又はアミンの混合物を含む溶離剤を使用して生成される。いくつかの実施形態では、直線ｐＨ勾配は、アミンの混合物を含む溶離剤緩衝液を使用して生成される。いくつかの実施形態では、差次的溶出条件中で使用されるアミン混合物は、ピペラジン、トリエタノールアミン、ビス−トリスプロパン、１−メチルピペラジン、ビシン、ビス−トリス、ジエタノールアミン、ジエチルアミン、１−ヒスチジン、イミダゾール、ピリジン、トリシン、トリエタノールアミン、及び／又はトリスを含む。いくつかの実施形態では、差次的溶出条件中で使用されるアミン混合物は、ピペラジン、トリエタノールアミン、ビス−トリスプロパン、及び１−メチルピペラジンからなる。いくつかの実施形態では、緩衝液中の各アミンの濃度は、約１〜約１００ｍＭの範囲である。いくつかの実施形態では、緩衝液中の各アミンの濃度は、約２０ｍＭである。

いくつかの実施形態では、直線ｐＨ勾配は、アミンの混合物を含む２つの溶離剤緩衝液を使用して生成される。いくつかの実施形態では、直線ｐＨ勾配は、同じアミンの混合物を含む２つの溶離剤緩衝液を使用して生成される。典型的には、溶出緩衝液のｐＨは、溶出の間の緩衝液ＡとＢとの間の比率に依存する。いくつかの実施形態では、緩衝液Ａは約９．１のｐＨを有し、緩衝液Ｂは約３．４のｐＨを有し、緩衝液Ａの濃度は約４０％から約６０％に減少し、緩衝液Ｂの濃度は約６０％から約４０％に増加する。いくつかの実施形態では、緩衝液Ａは約９．１のｐＨを有し、緩衝液Ｂは約３．４のｐＨを有し、緩衝液Ａの濃度は約１００％から約０％に減少し、緩衝液Ｂの濃度は約０％から約１００％に増加する。いくつかの実施形態では、緩衝液Ａは約９．１のｐＨを有し、緩衝液Ｂは約３．４のｐＨを有し、緩衝液Ａの濃度は約９０％から約０％に減少し、緩衝液Ｂの濃度は約１０％から約１００％に増加する。いくつかの実施形態では、毎分の緩衝液Ｂの増加％は、約０．１％〜約１０％の範囲、又は約３．５％〜約４．５％の範囲である。いくつかの実施形態では、毎分の緩衝液Ｂの増加％は、約３．５％、３．７５％、４％、４．２５％、又は４．５％からなる群から選択される。いくつかの実施形態では、毎分の緩衝液Ｂの増加％は、約３．５％である。

いくつかの実施形態では、溶出条件は、約０．１〜約１．４ｍＬ／分、又は約０．２５〜１．０ｍＬ／分、又は０．５ｍＬ／分〜０．８ｍＬ／分、又は約０．８〜約１．０ｍＬ／分の流量を含む。いくつかの実施形態では、溶出条件は、約１ｍＬ／分の流量を含む。

いくつかの実施形態では、溶出条件は、以下の工程を含む：毎分約０．１％〜約１０％、約０．５％〜約１０％、又は約３．５％〜約４．５％の緩衝液Ｂの直線増加／傾きで、９０％〜１００％緩衝液Ｂ。

いくつかの実施形態では、溶出条件は、以下の工程を含む：毎分約０．１％〜約１０％、約０．５％〜約１０％、又は約３．５％〜約４．５％の緩衝液Ｂの直線増加／傾きで、０％〜１００％緩衝液Ｂ。

いくつかの実施形態では、溶出条件は、以下の工程を含む：毎分約３．５％の緩衝液Ｂの直線増加／傾きで、９０％〜１００％緩衝液Ｂ。

いくつかの実施形態では、溶出条件は、以下の工程を含む：毎分約３．５％の緩衝液Ｂの直線増加／傾きで、０％〜１００％緩衝液Ｂ。

本方法のいくつか実施形態では、陰イオン交換体は、弱又は強陰イオン交換体である。本方法のいくつかの実施形態では、陰イオン交換体は、四級アンモニウム正荷電基からなる。本方法のいくつかの実施形態では、陰イオン交換体は、約１〜約１０００μｍ、例えば、５μｍのポリマービーズがベースである。本方法のいくつかの実施形態では、ポリマービーズは、ポリ（スチレン／ジビニル／ベンゼン）からなる。本方法のいくつかの実施形態では、陰イオン交換体は、非多孔質又は多孔質の粒子からなり、例えば、粒子の孔は、約１２０〜１０００オングストローム（Å）の範囲である。本方法のいくつかの実施形態では、陰イオン交換体は、非多孔質粒子からなる。本方法のいくつかの実施形態では、陰イオン交換体は、単分散粒子からなる。

本方法のいくつかの実施形態では、以下の特性のうちの少なくとも１つを有する陰イオン交換カラムが使用される：１．７〜１０ｍｍの範囲の幅（例えば、４．６ｍｍ）、及び１０〜２５０ｍｍの範囲の長さ（例えば、２５０ｍｍ）。

本方法のいくつかの実施形態では、１．７〜１０ｍｍの範囲の幅（例えば、４．６ｍｍ）、及び１０〜２５０ｍｍの範囲の長さ（例えば、２５０ｍｍ）を有する陰イオン交換カラムが使用される。

本方法のいくつかの実施形態では、本方法は、一工程クロマトグラフィー方法、例えば、追加のクロマトグラフィー及び／又は分離工程（複数可）がない一種のクロマトグラフィー方法からなる。

いくつかの実施形態では、精製方法は、陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー、高速タンパク質液体クロマトグラフィー（ＦＰＬＣ）により、及び／又は接続型検出器を備える、若しくは備えていない単独型カラムにより実施される。

いくつかの実施形態では、本方法は分析目的のためである。

ある特定の実施形態では、本明細書に提供される方法により得ることができる精製α−トロンビンが本明細書において提供される。

別の態様では、単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンが本明細書において提供される。いくつかの実施形態では、α−トロンビンは、哺乳類の血漿源、例えば、ヒト又はブタの血漿源からのものである。別の態様では、哺乳類の血液又は血漿源からの単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンが本明細書において提供される。

いくつかの実施形態では、翻訳後修飾はグリコシル化である。いくつかの実施形態では、翻訳後修飾は、グリコシル化及びシアリル化である。いくつかの実施形態では、均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、単一／特定のグリコフォームにより表される。いくつかの実施形態では、α−トロンビングリコフォームは更にシアリル化されている。いくつかの実施形態では、α−トロンビングリコフォームは均質にシアリル化されている。いくつかの実施形態では、単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、均質にグリコシル化されたα−トロンビンである。いくつかの実施形態では、単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、１つの特定のグリコフォームにより表される。いくつかの実施形態では、単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、均質にシアリル化されたα−トロンビンである。

また別の態様では、本明細書に開示される、精製α−トロンビン又は単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンを含む製剤が本明細書において提供される。いくつかの実施形態では、精製α−トロンビン又は単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、本明細書に開示される方法により得られる。製剤のいくつかの実施形態では、α−トロンビンは、哺乳類の血漿源からのものである。いくつかの実施形態では、α−トロンビンは、血液又は血漿源からのものである。いくつかの実施形態では、本製剤は、薬学的に許容される担体又は希釈剤を含む。本明細書に開示される製剤は、冷凍又は凍結乾燥させることができる。

別の態様では、精製α−トロンビン、均質な翻訳後修飾α−トロンビン、又はβ−トロンビンを含む製剤を表面に適用することを含む、対象の表面に、止血処置、封止、移植片固定、創傷治癒、及び／又は吻合を提供する方法が本明細書において提供される。製剤は、フィブリノーゲンを含む溶液で適用され得る。表面は、出血性又は非出血性部位であってよい。対象は、ヒト対象であってもよい。

別の態様では、本発明は、止血処置、封止、移植片固定、創傷治癒、抗接着、及び／又は吻合のための、上記に開示される、単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン、精製α−トロンビン、又はβ−トロンビンを含む製剤の使用に関する。

別の態様では、上記に開示される、精製α−トロンビン、均質な翻訳後修飾α−トロンビン、又はβ−トロンビンを含む、アンプル、バイアル、及び／又は注射器などの容器、並びに任意選択で適用装置、及び／又は使用説明書を含むキットが提供される。

別の態様では、第１成分として、上記に開示される、単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン又は精製した均質な翻訳後修飾α−トロンビングリコフォームを含む容器を含むキットが提供される。

いくつかの実施形態では、キットは、例えば、第２成分としてゼラチンを含む容器を含む。キットは更にフィブリノーゲンを含み得る。いくつかの実施形態では、キットは、例えば、第２成分としてフィブリノーゲンを含む容器を含む。キットは、少なくとも１つの容器及び少なくとも１つのラベルを含み得る。好適な容器として、例えば、アンプル、バイアル、注射器、及び管が挙げられる。容器は、例えば、ガラス、金属、又はプラスチックで作製され得る。

本発明のこれら及び他の態様及び実施形態は、以下の本発明の詳細な説明及び図面を参照することにより明らかとなるであろう。

α−トロンビンの精製及び／定量に関する本明細書に開示される全ての実施形態はまた、β−トロンビンの精製及び／又は定量にも関する。

ＨＳＡ、トロンビン溶液、製剤化トロンビン、及び水のいくつかの試料の逆相高性能液体クロマトグラフィー（ＲＰ−ＨＰＬＣ）を使用して得られた、溶出ピークの領域の代表的なクロマトグラムの拡大図を示す。注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、ｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡ、及びｄ）ブランク試料として１００μＬのＨＰＬＣグレードの水であった。 全ての図において、試料の描写は、クロマトグラムの開始に基づいて上から下に示され、注入された試料（上から下）は、クロマトグラム上に列記される。異なる試料の実行が、重なったオーバーレイとして１つの図に示される。全てのグラフにおいて、ｙ軸は吸光度単位（ＡＵ）として表示され、ｘ軸は分として表示される。 陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー（ＡＥＸ−ＨＰＬＣ）、及びｐＨ８．０の直線ＮａＣｌ塩勾配による溶出を使用して得られた、溶出ピークの領域の代表的なクロマトグラムの拡大図を示す。注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、ｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡ、及びｄ）ブランク試料として１００μＬの緩衝液Ａであった。 ＡＥＸ−ＨＰＬＣに注入され、ｐＨ６．０の直線ＮａＣｌ塩勾配を使用して溶出された、異なる試料に関して得られた代表的なクロマトグラムを示す。注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、ｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡ、及びｄ）ブランク試料として１００μＬの緩衝液Ａであった。 ｐＨ７．５の直線ＮａＣｌ塩勾配でＡＥＸ−ＨＰＬＣを使用して得られた、溶出ピークの領域の代表的なクロマトグラムの拡大図を示す。注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、ｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡ、及びｄ）ブランク試料として１００μＬの緩衝液Ａであった。 ｐＨ８．０の直線ＮａＮＯ_３塩勾配でＡＥＸ−ＨＰＬＣを使用して得られた、溶出ピークの領域の代表的なクロマトグラムを示す。注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、及びｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡであった。 ｐＨ９．１〜ｐＨ３．４の直線ｐＨ勾配でＡＥＸ−ＨＰＬＣを使用して得られた、注入された試料の代表的なクロマトグラムを示す。注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、ｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡ、及びｄ）ブランク試料として１００μＬの緩衝液Ａであった。溶出は、アミン系緩衝液で実施された。 図６に示されるクロマトグラムのトロンビン溶出領域の拡大図である。 ＡＥＸ−ＨＰＬＣ、並びに０．２５、０．５、０．７５、及び１ｍＬ／分の異なる流量の直線ｐＨ勾配での溶出を使用して得られたクロマトグラムの拡大図を示す。注入された試料は、各試験した流量に関して、３０μＬのトロンビン溶液であった。 分離／分離能（目視検査により評価された）に対する直線勾配の傾きの作用を示す。毎分の緩衝液Ｂの異なる増加％が評価された：４．５％、４．２５％、４％、３．７５％、及び３．５％。注入された試料は、各試験した増加に関して、３０μＬのトロンビン溶液であった。 １．０ｍＬ／分の流量で、ＡＥＸ−ＨＰＬＣを使用して得られた、α、β、及びγトロンビン標準品、トロンビン溶液、並びにブランク試料として緩衝液Ａの重ねられたクロマトグラムを示す。トロンビン市販標準品との比較により、トロンビン溶液に関して、異なるトロンビンピークが特定された。 毎分３．５％のＢの傾きで、１００％緩衝液Ａ〜１００％緩衝液ＢのＡＥＸ−ＨＰＬＣ直線ｐＨ勾配を使用してトロンビン溶液から分離された異なるトロンビンピークを示す。溶出ピークを収集し、定性的ツールとしてウエスタンブロットを使用して、更に特定した。 ＨＰＬＣ−ＡＥＸにより分離された異なるトロンビン種のクロマトグラムを示す。シアル酸除去を受けたトロンビン溶液及び処理されなかったトロンビン溶液を注入した。結果は、シアル酸除去が本トロンビン種の電荷に影響を及ぼし、これが次に、溶出プロファイルに影響を及ぼし、クロマトグラムの左側へのピークの全体的なシフト（未処理のトロンビン溶液と比較したとき）をもたらすことを示す。 毎分３．５％の緩衝液Ｂの増加及び１．０ｍＬ／分の流量条件で、ＡＥＸ−ＨＰＬＣ直線ｐＨ勾配を使用して得られた、注入されたトロンビン試料の完全な長さのクロマトグラムを示す。結果は、ヒト血清アルブミン、異なる均質な翻訳後修飾α−トロンビン種に対応するいくつかのα−トロンビンピーク、及びアセチルトリプトファン間の完全な分離を示す。 α−トロンビン種及び分解ポリペプチド溶出領域の拡大図を示す。

本明細書に提供される方法は、一部、例えば、翻訳後修飾（例えば、グリコシル化及び／又はシアリル化レベル）に関して、未変性α−トロンビンが、陰イオン交換クロマトグラフィー（ＡＥＸ）を利用することにより、不均質なタンパク質溶液から単離／精製され得るという発見に基づく。また、本発明に従う方法は、α−トロンビン又はβ−トロンビンが他のタンパク質、例えば、ヒト血清アルブミン及び／又はウシ血清アルブミンなどの安定剤を含む溶液から単離／精製され得るという発見に基づく。

本発明に従う方法は、溶液中のトロンビン濃度に対して大量の他のタンパク質の存在下でα−トロンビン又はβ−トロンビンの高分離能精製及び／又は定量を可能にすることが意外にも分かった。

より具体的には、本発明に従う方法は、大量の他のタンパク質、例えば、ヒト血清アルブミン、ウシ血清アルブミンなどの安定剤を含む不均質な溶液からの、高分離能で異なる均質な翻訳後修飾α−トロンビン種（例えば、均質なα−トロンビングリコフォーム）を精製及び／又は定量化を可能にする。

いくつかの実施形態では、他のタンパク質、例えば、血清アルブミンは、約０．４〜約５０ｍｇ／ｍｌ、例えば、約５〜約６．５ｍｇ／ｍｌの濃度で溶液中に存在する。いくつかの実施形態では、溶液中のトロンビン濃度は、約１００〜約１００００ＩＵ／ｍｌ、例えば、約８００〜約１２００ＩＵ／ｍｌの範囲、又は約０．３ｍｇ／ｍｌである。いくつかの実施形態では、トロンビン（ＩＵ）対他のタンパク質（ｍｇ）の比率は、約１：１０〜約１：４０、又は約１：１４〜約１：２７の範囲である。

特に、未変性の翻訳後修飾α−トロンビンの、トロンビン製剤中のその分解ポリペプチド及び他のタンパク質からの良好なピーク分離を提供することにより、α−トロンビンを、トロンビン含有溶液から精製及び／又は定量するための一工程クロマトグラフィー方法が本明細書において提供される。また、トロンビン溶液／製剤中のα−トロンビン、その分解ポリペプチド、及び他のタンパク質（例えば、ＨＳＡ）間で分離するためのツールも本明細書において提供される。

「未変性α−トロンビン」は、例えば、α−トロンビンの無傷の、未分解の、及び／又は機能的な形態を指す。

従来、トロンビンは、逆相クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、陽イオン交換クロマトグラフィー、及び／又はＳＤＳ−ＰＡＧＥ、並びにウエスタンブロットを使用して精製及び分析された。

α−トロンビンを、α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド（例えば、β−トロンビン及び／又はγ−トロンビンポリペプチド）又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液から精製するための方法が本明細書において提供され、本方法は、溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、差次的溶出条件、例えば、ｐＨ勾配を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィーにより、α−トロンビンを、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程と、α−トロンビン画分を回収し、それにより精製α−トロンビンを得る工程と、を含む。

均質な翻訳後修飾α−トロンビン種（例えば、均質なα−トロンビングリコフォーム）を、不均質な翻訳後修飾α−トロンビン種（例えば、不均質にグリコシル化されたα−トロンビン種）、及び任意選択で、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つを含む溶液から精製するための方法も本明細書において提供され、本方法は、溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、差次的溶出条件、例えば、ｐＨ勾配により、均質な翻訳後修飾α−トロンビン種を、別のα−トロンビン翻訳後修飾種から、並びに任意選択で、α−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は別のタンパク質から分離する工程と、均質な翻訳後修飾α−トロンビン画分を回収し、それにより、精製した均質な翻訳後修飾α−トロンビン種を得る工程と、を含む。

「精製する（purifying）」、「精製する（to purify）」などの用語は、α−トロンビン（例えば、均質な翻訳後修飾α−トロンビン）又はβ−トロンビンを、それを含む溶液から除去、単離、又は分離することを指す。α−トロンビン含有溶液は、α−トロンビン分解ポリペプチド（β−トロンビン及び／又はγ−トロンビン）、別のタンパク質、及び／又は他のα−トロンビン翻訳後種も含み得る。β−トロンビン含有溶液は、α−トロンビン、γ−トロンビン、別のタンパク質、及び／又はα−トロンビン翻訳後種も含み得る。

「接触させる」という用語は、結合相互作用が正荷電基と溶液中に存在する任意の結合パートナー、例えば、α−トロンビン又はβ−トロンビンとの間で生じる様式で、溶液を、正荷電基を含む陰イオン交換体と十分に密接に接触させる、任意の種類の結合作用を指す。溶液は、正荷電基とα−トロンビン又はβ−トロンビンとの間の接触及び／又は結合を可能にする十分な時間期間、例えば、１分又はそれ以上、陰イオン交換体と共にインキュベートされ得る。

「α−トロンビン画分」という用語は、典型的には、差次的溶出条件下で、緩衝液を用いた装填した陰イオン交換体（例えば、装填カラム）の溶出後に回収された画分を指す。一実施形態では、回収したα−トロンビン画分は、α−トロンビンのみからなる。別の実施形態では、回収したα−トロンビン画分は、１つの均質なα−トロンビン種からなる。別の実施形態では、回収したα−トロンビン画分は、均質なα−トロンビングリコフォーム画分からなる。

「精製α−トロンビン」という用語は、典型的には、陰イオン交換クロマトグラフィー方法を使用して、出発トロンビン含有溶液中に存在するα−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は別のタンパク質からのα−トロンビンの単離後に得られたα−トロンビン調製物を指す。本明細書で使用される場合、「精製α−トロンビン」という用語は、陰イオン交換クロマトグラフィー方法を使用して、不均質な翻訳後修飾α−トロンビン溶液からの均質な翻訳後修飾α−トロンビンの単離後に得られた、均質な翻訳後修飾α−トロンビン、例えば、均質にグリコシル化された及び／又はシアリル化されたα−トロンビン調製物も指す。「精製した均質なα−トロンビングリコフォーム」という用語は、典型的には、陰イオン交換クロマトグラフィー方法を使用して、出発トロンビン含有溶液中に存在するα−トロンビン分解ポリペプチド、不均質なグリコシル化α−トロンビン種、及び／又は別のタンパク質からのα−トロンビングリコフォームの単離後に得られた、均質なα−トロンビングリコフォーム調製物を指す。

一実施形態では、精製α−トロンビンは、分解ポリペプチドを含まない未変性タンパク質である。

一実施形態では、精製α−トロンビンは、均質な翻訳後修飾α−トロンビン種である。別の実施形態では、精製α−トロンビンは、未修飾α−トロンビン種である。別の実施形態では、精製α−トロンビンは、均質なα−トロンビングリコフォームである。

精製α−トロンビン調製物は、様々な翻訳後修飾α−トロンビンを含む溶液から単離された均質な翻訳後修飾種からなり得る。出発トロンビン溶液は、未修飾α−トロンビン種も含み得る。

単離した翻訳後修飾α−トロンビンは、グリコシル化、又はグリコシル化及びシアリル化され得る。グリコシル化及び／又はシアリル化の程度は、異なる種間で変動し得る。アンテナは、二分岐から五分岐まで、様々な程度で分岐し得る。シアル酸は、Ｎ−アセチルノイラミン酸又はＮ−グリコリルノイラミン酸などの、ノイラミン酸（５−アミノ−３，５−ジデオキシ−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−ノン−２−ウロソン酸）の誘導体のいずれかであり得る。

「α−トロンビン」は、未修飾α−トロンビン、均質又は不均質なα−トロンビン、均質な翻訳後修飾α−トロンビン、例えば、均質にグリコシル化されたα−トロンビン若しくは均質にグリコシル化された及び均質にシアリル化されたα−トロンビン、又は均質にシアリル化されたα−トロンビン、並びに不均質な翻訳後修飾α−トロンビン、例えば、不均質にグリコシル化された又はグリコシル化及びシアリル化されたα−トロンビンを含み得る。α−トロンビンは、哺乳類血液及び／又は血漿源、例えば、ヒト、ウシの血漿、若しくはブタ血漿源から、又は組み換え体源からのものであり得る。

いくつかの実施形態では、「別のタンパク質」／「他のタンパク質」は、例えば、製剤の安定化のためにトロンビン製剤中に含まれるヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）、又は任意の他のタンパク質である。「別のタンパク質」は、α、β、及びγ−トロンビンとは異なる。「別のタンパク質」は、プロトロンビン、免疫グロブリン、ＨＳＡなど、血液又は血漿に見られ得る多くのタンパク質であり得る。別のタンパク質は、タンパク質断片であり得る。いくつかの実施形態では、別のタンパク質は、ヒト血清アルブミン及び／又はウシ血清アルブミンなどの安定剤である。

「陰イオン交換クロマトグラフィー」という用語は、分子がそれらの正味電荷に基づき分離される分離技法を指す。陰イオン交換体は、陰イオン又は負に荷電された粒子を付着させる又は結合させるそれらの能力に対して命名される。陰イオン交換体は、当該技術分野において周知である（Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ ｅｄｉｔｅｄ ｂｙ Ｋｅｎｎｅｙ ａｎｄ Ｆｏｗｅｌｌ Ｖｏｌｕｍｅ １１；Ｃｈａｐｔｅｒ １６，２４９〜２５８；Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ，１９９２）。陰イオン交換体では、樹脂は、正に荷電され、分子は、緩衝液ｐＨがタンパク質の等電点を超える場合、結合する。「等電点」という用語は、分子が正味電荷を持たない場合のｐＨを指す。等電点を下回るｐＨを有する媒質では、分子は、正味正電荷を持ち、それを上回る場合、分子は、正味負電荷を持つ。「陰イオン交換体」及び「陰イオン交換マトリックス」という用語は、本明細書において交換可能に使用される。

本明細書で使用される場合、「支持体」及び「樹脂」という用語は、担体、又は正荷電基を付着、固定化、担持、若しくは安定させるために使用される任意のマトリックスを含む。支持体は、Ｈｅｒｍａｎｓｏｎ ＧＴ，Ｍａｌｌｉａ ＡＫ ａｎｄ Ｓｍｉｔｈ ＰＫ １９９２「Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ Ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｌｉｇａｎｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ」ｐｐ．１〜４５ Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＵＳＡに記載されるように、当該技術分野において周知である。

本発明の方法を実施するための支持体は、正荷電基を含む分子、すなわち、正電荷を持つ化学基を含む分子に結合することができる任意の材料から作製され得る。固体支持体としては、マトリックス、カラム、カバースリップ、クロマトグラフィー材料、フィルタ、顕微鏡スライド、試験管、バイアル、瓶、ＥＬＩＳＡ支持体、ガラス若しくはプラスチック表面、クロマトグラフィー膜、シート、粒子、電磁ビーズを含むビーズ、ゲル、粉末、繊維等が挙げられるが、これらに限定されない。

本発明の一実施形態では、支持体は、クロマトグラフィーで利用可能な材料の形態である。本発明の別の実施形態では、支持体は、クロマトグラフィー膜の形態である。支持体は、アガロース、セファロース、アクリルビーズ、セルロース、制御多孔性ガラス、シリカゲル、デキストランなどの親水性材料、疎水性材料、又はポリアクリルアミド若しくはポリスチレンがベースの材料など、有機人工／合成ポリマーを含み得る。典型的な材料／ポリマーは、Ｓｅｐｈａｃｒｙｌ（登録商標）（Ｐｈａｒｍａｃｉａ，Ｓｗｅｄｅｎ）、Ｕｌｔｒａｇｅｌ（登録商標）（Ｂｉｏｓｅｐａｒａ，Ｆｒａｎｃｅ）ＴＳＫ−Ｇｅｌ Ｔｏｙｏｐｅａｒｌ（登録商標）（Ｔｏｓｏ Ｃｏｒｐ．，Ｊａｐａｎ）、ＨＥＭＡ（Ａｌｌｔｅｃｈ Ａｓｓ．（Ｄｅｅｒ−ｆｉｅｌｄ，Ｉｌｌ．，ＵＳＡ）、Ｅｕｐｅｒｇｉｔ（登録商標）（Ｒｏｈｍ Ｐｈａｒｍａ，Ｄａｒｍｓｔａｄｔ，Ｇｅｒｍａｎｙ）の商品名下で市販されている。また、アズラクトン系材料（３Ｍ，Ｓｔ．Ｐａｕｌ，Ｍｉｎｎ．，ＵＳＡ）。一実施形態では、支持体は、Ａｇａｒｏｓｅ（登録商標）又はＳｅｐｈａｒｏｓｅ（登録商標）を含む。これらの材料は市販されている。典型的には、陰イオン交換樹脂又は陰イオン交換ポリマーは、通常、有機ポリマー基質から作製された微小ビーズの形態の不溶性マトリックス（又は支持構造体）である。

本方法のいくつかの実施形態では、ビーズは、約１〜約１０００μｍ、又は例えば、５μｍのサイズである。ビーズは、非多孔質又は多孔質の粒子であり得る。ビーズは、単分散（すなわち、実質的にサイズが均質）粒子であり得る。一実施形態では、ビーズは、１．７μｍ〜１０μｍの範囲である。

陰イオン交換体は、弱又は強陰イオン交換体であり得る。弱陰イオン交換体は、一般的に、弱塩基を含む交換体を指し、一方、強陰イオン交換体は、一般的に、より広いｐＨ範囲にわたってその電荷を持続することができる強塩基を含む交換体を指す。

本方法のいくつかの実施形態では、正荷電基は、アンモニウム、アルキルアンモニウム、ジアルキルアンモニウム、トリアキルアンモニウム、四級アンモニウム、アルキル基、Ｈ^＋、Ｎａ^＋、Ｋ^＋、Ｃａ^２＋、Ｍｇ^２＋、アミノ官能基、及びそれらの組み合わせからなる群から選択される。

樹脂ビーズは、適切な媒質中に懸濁され得、得られたスラリーは、例えば、本明細書において、「カラム精製」と称されるクロマトグラフィーカラム中で使用され得る。別の方法としては、カラムは、充填済形態で購入することができる。

「カラム精製」及び「カラムクロマトグラフィー」は、一般的に、溶液（移動相）がある特定の流量で、充填された樹脂を含むカラムを通って移動することができる技法を指し、個々の成分又はいくつかの成分が樹脂（固定相）によって、すなわち、クロマトグラフィー材料によって吸着される。未結合材料は、混合物がそれを通過した後に、カラムのもう一方の側から回収することができる。ある特定の溶出条件を使用することにより、異なる化合物と固定相との間の結合を変更することが可能であり、それにより特定の精製化合物を１つずつカラムから溶出することにつながる。カラム精製は、Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ ｅｄｉｔｅｄ ｂｙ Ｋｅｎｎｅｙ ａｎｄ Ｆｏｗｅｌｌ Ｖｏｌｕｍｅ １１；Ｃｈａｐｔｅｒ １６，２４９〜２５８；Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ，１９９２に記載されるように、当該技術分野において周知である。

典型的には、樹脂のスラリーがカラム内に注がれる。それが沈降した後、タンパク質混合物／溶液が適用される前に、カラムを緩衝液中で予備平衡化する。別の方法としては、充填済カラムを購入することができる。未結合タンパク質は、フロースルー及び／又は後続の緩衝液洗浄液に現れる。樹脂に結合するタンパク質は保持され、塩又はｐＨ／極性調整により溶出され得る。「未結合材料」／「未結合画分」という用語は、典型的には、例えば、平衡化に使用された同じ緩衝液及び／又はトロンビン含有溶液をカラムに装填するのに使用された緩衝液（「結合緩衝液」）で装填カラムの洗浄後に廃棄された画分を指す。「不均一濃度溶液」は、溶出条件として使用される。「不均一濃度溶液」は、典型的には、例えば、カラムを装填、洗浄、及び／若しくは平衡化するために使用された溶液及び／若しくは条件とは異なる溶液及び／若しくは条件、並びに／又は前の工程で使用された溶液とは異なる溶液を指す。溶出条件は、移動相の組成におけるシフトを採用し、そのため、結合緩衝液によって創出された結合環境の要因が変化する。

一般的に、平衡化は、ｐＨ及び／又は伝導率及び／又はＵＶ指数が安定するまで実施される。一実施形態では、平衡化は、緩衝液の≧５カラム容量で実施される。一実施形態では、平衡化は、緩衝液の１〜５カラム容量で実施される。

「溶出条件」という用語は、不均一濃度条件、例えば、カラムを装填及び／若しくは平衡化するために使用された溶液及び／若しくは条件とは異なる、並びに／又は前の工程に使用された溶液とは異なる溶液及び／若しくは条件の使用を指す。溶出工程（例えば、勾配溶出）の開始点及び／又は終了点で使用された溶液及び／又は条件は、洗浄、装填、及び／又は再生工程中に使用された溶液及び／又は条件と同一であり得る。「溶出条件」という用語は、塩濃度及び／又はｐＨ／極性における変化が生じる勾配溶出も指し得る。溶出条件は、タンパク質及び分解ポリペプチドが分離され、差次的に溶出されるような条件である。本発明に従う方法は、不均一濃度溶液を用いた少なくとも１つの溶出工程を含む。溶出条件は、典型的には、塩濃度の増加及び／又はｐＨ／極性の変化を伴う。溶出にｐＨ勾配を使用することが効率的であることが本明細書において見出された。

本方法のいくつかの実施形態では、本方法は、１つのクロマトグラフィー工程、すなわち、単一クロマトグラフィー工程からなる。

典型的には、「一工程クロマトグラフィー方法」又は「１つのクロマトグラフィー工程」又は「一工程陰イオン交換クロマトグラフィー」という用語は、追加のクロマトグラフィー及び／又は分離工程（複数可）なしに、直接試料材料に対して陰イオン交換体により実施される、α−トロンビン、均質又は不均質なα−トロンビン、均質な翻訳後修飾α−トロンビン、例えば、均質にグリコシル化されたα−トロンビン、又は均質にグリコシル化された及び均質にシアリル化されたα−トロンビン、未修飾α−トロンビン、不均質な翻訳後修飾α−トロンビン、例えば、不均質にグリコシル化された若しくはグリコシル化及びシアリル化されたα−トロンビン、並びに／又はトロンビン分解ポリペプチド、あるいはβ−トロンビンの精製及び／又は定量を可能にする方法を指す。

本発明の一実施形態では、カラム精製が利用される。別の実施形態では、陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー方法が使用される。カラムは、繰り返し使用するために、溶液成分の溶出後に再生され得る。装填から再生までの合計実行時間は、３０〜１２０分の範囲、例えば、約４６、５５分であり得る。一実施形態では、勾配分離は２８．６分かかる。

本発明に従う分離は、差次的溶出条件を採用することにより実施される。「差次的溶出条件」という用語は、α−トロンビンの、その分解ポリペプチドから、及び／若しくは別のタンパク質からの分離、均質な翻訳後修飾α−トロンビン種の、トロンビン分解ポリペプチド、別のタンパク質、及び／若しくは不均質な翻訳後修飾α−トロンビン種からの分離、均質なα−トロンビングリコフォームの、不均質な翻訳後修飾α−トロンビン種、例えば、グリコシル化α−トロンビン種からの分離、均質なα−トロンビングリコフォームの、α−トロンビン分解ポリペプチド、別のタンパク質、若しくは不均質な翻訳後修飾α−トロンビン種のうちの少なくとも１つからの分離、並びに／又はβ−トロンビンの、α−トロンビン、γ−トロンビン、及び／若しくは別のタンパク質からの分離を可能にする条件を指す。

溶出条件は、塩濃度及び／又は溶出緩衝液のｐＨの変化を伴い得る。一実施形態では、差次的溶出条件は、ｐＨの変化、例えば、ｐＨ勾配を含む。一実施形態では、本発明に従い使用される樹脂は、本発明に従うｐＨ範囲で作業するのに適切である。一実施形態では、樹脂は、有機材料（メタノール及び／又はアセトニトリル）に曝すのに適している。

カラム容量は約０．０３〜約５３ｍＬの範囲であり得る。本発明の一実施形態では、カラム容量は約４．１ｍＬ、例えば、４．１５ｍＬである。別の実施形態では、ピークの大半は１つのカラム容量内で収集される。

追加の実施形態では、本方法は、分析方法、例えば、物理化学分析方法であり、一工程クロマトグラフィー方法として実施され得る。

いくつかの実施形態では、本方法は、分離したα−トロンビン、β−トロンビン、及び／又はγ−トロンビン含有画分を特定する工程を更に含む。

いくつかの実施形態では、本方法は、異なる翻訳後修飾α−トロンビンを特定する工程を更に含む。異なるグリコシル化は、質量分析、キャピラリー電気泳動を使用して、異なるＨＰＬＣ方法を使用することにより、又は当該技術分野において既知の任意の他の方法により分析され得る。

一実施形態では、異なる画分／ピークは、試料セットを注入した後に視覚的に特定される。典型的には、ピークプロファイルは確実であり、したがって、各ピークは容易に特定することができる。別の実施形態では、異なるトロンビンピークは、α、β、及びγトロンビン標準品をＨＰＬＣに注入し、トロンビン溶液の相関ピークを特定することにより特定される。別の実施形態では、異なるトロンビンピークは、α、β、及びγトロンビン標準品に対して溶出したピークを実行する、並びに／又はα−、β−及びγ−トロンビンの既知の分子サイズに基づき、ウエスタンブロット分析により特定される。

本明細書において、α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中のα−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法が提供され、本方法は、差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、α−トロンビンを、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程と、α−トロンビン画分を回収する工程と、α−トロンビンを定量化する工程と、を含む。

本明細書において、不均質な翻訳後修飾α−トロンビンと、任意選択で、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中の均質な翻訳後修飾α−トロンビン（例えば、均質なグリコフォーム）を定量化するための一工程クロマトグラフィー方法が提供され、本方法は、差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、均質な翻訳後修飾α−トロンビンを溶液から分離する工程と、均質な翻訳後修飾α−トロンビン画分を回収する工程と、均質な翻訳後修飾α−トロンビンを定量化する工程と、を含む。本明細書において、α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中のα−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法が提供され、本方法は、溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、α−トロンビンを、α−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程と、α−トロンビンを定量化する工程と、を含む。

いくつかの実施形態では、本方法は、差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、α−トロンビンを、α−トロンビン分解ポリペプチド及び別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程を含む。

いくつかの実施形態では、本方法は、１つ又は２つ以上の分解ポリペプチド、例えば、β−トロンビン及び／又はγ−トロンビンポリペプチドを定量化する工程を更に含む。

また、本明細書において、不均質な翻訳後修飾α−トロンビンと、任意選択でα−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中の均質な翻訳後修飾α−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法も提供され、本方法は、溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、均質な翻訳後修飾α−トロンビンを、不均質な翻訳後修飾α−トロンビンから、並びに任意選択で、α−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程と、均質な翻訳後修飾α−トロンビンを定量化する工程と、を含む。一実施形態では、溶液は、α−トロンビン分解ポリペプチド（β−トロンビン及び／又はγ−トロンビン）、及び／又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つを含む。

いくつかの実施形態では、溶液は、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つを更に含み、本方法は、均質な翻訳後修飾α−トロンビンを、α−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つからも分離する工程を含む。いくつかの実施形態では、本方法は、均質な翻訳後修飾α−トロンビンを、α−トロンビン分解ポリペプチド及び別のタンパク質のうちの少なくとも１つから分離する工程を含む。

定量は、例えば、積分を計算することにより、例えば、クロマトグラムのピーク下面積を測定することにより実施することができる。ピークは、ピークを積分し、ピーク面積を溶出された総面積と比較すること、又はピーク高さを評価することのいずれかにより定量化することができる。面積又は高さは、標準品が使用される場合、絶対数に変換され得るか、又は相対ピーク面積が評価され得る。

本方法のいくつかの実施形態では、分離工程は、差次的溶出条件を適用する工程を含む。いくつかの実施形態では、溶出条件はｐＨ勾配を適用することを含む。いくつかの実施形態では、溶出条件は直線ｐＨ勾配を適用することを含む。典型的には、直線ｐＨ勾配は、経時的に、徐々にかつ等しくｐＨを変更する勾配として定義される。いくつかの実施形態では、ｐＨ勾配は、約ｐＨ９．１〜約ｐＨ３．４である。いくつかの実施形態では、直線ｐＨ勾配は、アミン又はアミンの混合物を含む溶離剤を使用して生成される。いくつかの実施形態では、溶離剤はアミンの混合物を含む。いくつかの実施形態では、アミン系緩衝液は、ピペラジン、トリエタノールアミン、ビス−トリスプロパン、１−メチルピペラジン、及びこれらの混合物を含む。いくつかの実施形態では、緩衝液中の各アミンの濃度は、約１〜約１００ｍＭの範囲、例えば、約１０〜約２０ｍＭの範囲又は約２０ｍＭである。ｐＨ勾配の創出に好適な、類似する特性を有する緩衝液、例えば、異なるｐＨ値のリン酸緩衝液が使用され得る。本明細書に列記されないが、陰イオン交換体からのトロンビンの溶出に好適な緩衝系を構築するために、代替化合物を使用することができる。

結果は、ＡＥＸ−ＨＰＬＣ及びｐＨ９．１〜ｐＨ３．４の直線勾配を使用した溶出がＨＳＡ、アセチルトリプトファン、α−トロンビン分解ポリペプチド、及びα−トロンビン間で良好な分離能をもたらすことを示す。したがって、一実施形態では、ｐＨ９．１〜ｐＨ３．４の直線ｐＨ勾配溶出工程は差次的溶出条件として使用される。一実施形態では、ＨＰＬＣは、０．８０ｍＬ／分の流量で５分の装填工程、０．８０ｍＬ／分の流量で２０分の直線ｐＨ勾配溶出工程を含み、直線ｐＨ勾配は同じアミンの混合物を含む２つの溶出緩衝液を使用することにより生成され、緩衝液Ａの濃度は９０％から０％に減少し、緩衝液Ｂは１０％から１００％に増加し、緩衝液Ｂの増加は毎分４．５％である。別の実施形態では、ＨＰＬＣは、０．８０ｍＬ／分の流量で１５分のカラム平衡化工程を含む。別の実施形態では、ＨＰＬＣは、０．８０ｍＬ／分の流量で５分のカラム再生工程を含む。

いくつかの実施形態では、溶出工程中の温度は約１０℃〜約５０℃の範囲であり、例えば、約２５℃である。

いくつかの実施形態では、直線ｐＨ勾配溶出工程中の流量は、０．２５、０．５、０．７５、及び１ｍＬ／分である。結果は、α−トロンビンとその分解ポリペプチドとの間の分離能が流量の増加と共に増加し、最良の分離能が１．０ｍＬ／分の流量で達成されたことを示す。したがって、一実施形態では、直線ｐＨ勾配溶出工程中の流量は０．７５ｍＬ／分より高く、例えば、約１．０ｍＬ／である。

結果は、より広いｐＨ範囲のカラムからのタンパク質の溶出がピーク間のより良い分離をもたらすことを示す。したがって、一実施形態では、直線ｐＨ勾配溶出工程は、同じアミンの混合物及び濃度からなる２つの溶出緩衝液を使用することにより生成され、緩衝液Ａの勾配濃度は１００％から０％に減少し、緩衝液Ｂは０％から１００％に増加し、緩衝液Ｂの増加は毎分約４．５％である。このような実施形態では、直線ｐＨ勾配溶出工程は約２２分であり得る。

トロンビン溶液のカラム装填から、最大カラム再生工程（例えば、装填工程、直線勾配溶出工程、カラム再生工程、及びカラム平衡化工程を含む）までの合計実行時間は、３０〜１２０分の範囲、例えば、４６〜６１分の範囲、例えば、約４６、５１、５６、及び６１分の合計実行時間であり得、溶出工程は２０〜３５分の範囲、例えば、約２０、２５、３０、及び３５分であり得る。結果は、５６及び６１分の合計実行時間で（３０及び３５分の長さの勾配溶出工程）、トロンビンピークに明確な領域で溶出する追加のピークがより短い実行時間と比較したときに分離されたことを示す。したがって、一実施形態では、２５分より長い直線勾配溶出工程が実施される。

結果は、毎分４．５％、４．２５％、４％、３．７５％、及び３．５％の直線ｐＨ傾き勾配での溶出が異なるトロンビンピークの分離に有効であり、３．５％の増加が最良の分離プロファイルを有することを示す。傾き勾配は、１つを超える緩衝液が溶出緩衝液として使用されるとき、毎分の緩衝液Ｂのパーセントの増加により影響を受け得る。典型的には、毎分の緩衝液Ｂのパーセントの増加がより低いと、毎分の緩衝液Ｂのパーセントの増加がより高いときと比較して、傾きがより浅くなり、それによりタンパク質の溶出プロファイルに影響を及ぼす。したがって、いくつかの実施形態では、溶出は、毎分３．５〜４．５％の緩衝液Ｂの傾き、例えば、３．５％の傾きで、１００％緩衝液Ａ〜１００％緩衝液Ｂの直線ｐＨ勾配で実施される。

いくつかの実施形態では、α−トロンビンを含む出発溶液（精製及び／又は定量化される）は、別のタンパク質を更に含み、実質的に分解ポリペプチドを欠く（例えば、溶液は総トロンビン量に対して１０％ｗ／ｗ未満のβ−トロンビン及び／又はγ−トロンビンを含有する）。

いくつかの実施形態では、α−トロンビンを含む出発溶液は、分解ポリペプチド、例えば、β−トロンビン及び／又はγ−トロンビンを更に含む。いくつかの実施形態では、α−トロンビンを含む出発溶液は、別のタンパク質を含まずに分解ポリペプチドを更に含む。

いくつかの実施形態では、α−トロンビンを含む出発溶液は、分解ポリペプチド（例えば、β−トロンビン及び／又はγ−トロンビン）、及び別のタンパク質を更に含む。

いくつかの実施形態では、β−トロンビンを含む出発溶液は、α−トロンビンを更に含み、γ−トロンビン及び／又は別のタンパク質を欠く。いくつかの実施形態では、β−トロンビンを含む出発溶液は、γ−トロンビンを更に含み、α−トロンビン及び／又は別のタンパク質を欠く。いくつかの実施形態では、β−トロンビンを含む出発溶液は、別のタンパク質を更に含み、α−トロンビン及び／又はγ−トロンビンを欠く。いくつかの実施形態では、β−トロンビンを含む出発溶液は、α−トロンビン及びγ−トロンビンを更に含み、別のタンパク質を欠く。いくつかの実施形態では、β−トロンビンを含む出発溶液は、α−トロンビン及び別のタンパク質を更に含み、γ−トロンビンを欠く。いくつかの実施形態では、β−トロンビンを含む出発溶液は、γ−トロンビン及び別のタンパク質を更に含み、α−トロンビンを欠く。いくつかの実施形態では、β−トロンビンを含む出発溶液は、α−トロンビン、γ−トロンビン、及び別のタンパク質を更に含む。

出発溶液は、不均質な翻訳後修飾α−トロンビン及び／又は未修飾のα−トロンビンを含み得る。いくつかの実施形態では、出発溶液は別のタンパク質を含む。いくつかの実施形態では、出発溶液は別のタンパク質を欠く。

溶液中のトロンビン濃度は、約２〜約１００００ＩＵ／ｍＬ、約１００〜約１００００ＩＵ／ｍＬ、約２〜約４０００ＩＵ／ｍＬ、約８００〜約３０００ＩＵ／ｍＬ、又は約８００〜約１２００ＩＵ／ｍＬの範囲であり得、総タンパク質濃度は、約０．３〜約５５ｍｇ／ｍｌ、約０．３〜約１０ｍｇ／ｍｌ、又は約１〜約７ｍｇ／ｍｌの範囲であり得る。いくつかの実施形態では、１０００ＩＵ／ｍｌは０．３ｍｇ／ｍｌに等しい。溶液は約６．９〜約７．１の範囲のｐＨであり得、５．０〜６．５ｍｇ／ｍＬのヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）、及びアセチルトリプトファンなどの他の安定剤を含み得る。

α−トロンビンを含む溶液は、例えば、８００〜１２００ＩＵ／ｍｌの範囲のトロンビン活性、約５．７〜６．５ｍｇ／ｍｌの総タンパク質濃度、及びｐＨ６．９〜７．１の５．０〜６．５ｍｇ／ｍｌのヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）を有する、トロンビン製剤又は製剤化トロンビン（例えば、賦形剤及び／又は安定剤を含むトロンビン溶液）、例えば、医薬品を含む溶液であり得る。トロンビン製剤は、他の安定剤、例えば、アセチルトリプトファンを含み得る。一実施形態では、トロンビンの製剤に使用されるＨＳＡは、安定剤であるアセチルトリプトファンを含む。

本明細書で使用される場合、「賦形剤」という用語は、薬学的組成物に加えられる不活性物質を指す。賦形剤の例としては、ヒトアルブミン、マンニトール、酢酸ナトリウム、及び注射用水が挙げられるが、これらに限定されない。溶液中のヒトアルブミンは約２〜約８ｍｇ／ｍｌの範囲であり得る。マンニトールは約１５〜約２５ｍｇ／ｍｌの濃度範囲であり得る。酢酸ナトリウムも約２〜約３ｍｇ／ｍｌの範囲で溶液に加えられ得る。

一実施形態では、トロンビン溶液は、約３０００ＩＵ／ｍｌのトロンビン、約１ｍｇ／ｍｌの総タンパク質濃度、ｐＨ６．９〜７．１の２０ｍＭ酢酸ナトリウムを含む。別の実施形態では、トロンビン製剤は、８００〜１２００ＩＵ／ｍｌの範囲のトロンビン、約５．７〜６．５ｍｇ／ｍｌの総タンパク質濃度、及びｐＨ６．９〜７．１の５．０〜６．５ｍｇ／ｍｌのヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）を含む。

溶液は塩化カルシウムを含み得る。溶液中の塩化カルシウム濃度は、５．８８ｍｇ／ｍｌの濃度など、約２〜約６．２ｍｇ／ｍｌの範囲、又は約５．６〜約６．２ｍｇ／ｍｌの範囲であり得る。

トロンビン凝固活性は、例えば、欧州薬局方アッセイ（０９０３／１９９７）の手順によって直接、斜面上における移動距離を測定すること（又は落下試験モデル）によって、及び／又は当該技術分野において既知の任意の他の方法によって測定することができる。

トロンビン活性は、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ ＳＴ４ Ｃｏａｇｕｌａｔｉｏｎ Ａｎａｌｙｚｅｒなどの血栓形成を検出するために、機械的終点検出系を備えた凝固分析器、又はフィブリン血栓形成による濁度の変化を測定する装置を使用して決定され得る。

トロンビン活性を測定することができる別の方法は、トロンビンの発色性又は蛍光性ペプチド基質を使用することである。多くの場合、この方法では、可溶化トロンビンが過剰の発色性又は蛍光性基質と混合される。トロンビンは基質を切断し、分光光度計又は蛍光光度計で監視することができる発色団又はフルオロフォアを放出する。発色性又は蛍光性基質の例としては、それぞれ、β−Ａｌａ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−ｐ−ニトロアニリドジアセテート及びＺ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−ＡＭＣ［Ｚ＝ベンジルオキシカルボニル；ＡＭＣ＝７−アミノ−４−メチルクマリン］が挙げられる。放出された発色団又はフルオロフォアの率はトロンビンの活性に相関し得る。

トロンビンは、血液組成物から調製され得る。血液組成物は、全血液、又は血液画分、すなわち、血漿などの全血液の画分であり得る。トロンビンの起源は、自家であることが可能であるため、患者自身の血液から、プールされた血液又は画分から製造される。トロンビン溶液は、ヒト又は哺乳動物の血漿から調製され得る。一実施形態では、トロンビンは、原核細胞における組み換え法により調製され得る。

一実施形態では、トロンビン溶液は、高純度ヒトトロンビンを含有する減菌溶液（ｐＨ６．８〜７．２）として製剤化され得る。トロンビン製剤は、ヒトトロンビン（８００〜１２００ＩＵ／ｍＬ）、塩化カルシウム、ヒトアルブミン、マンニトール、酢酸ナトリウム、及び注射用水を含有し得る。一実施形態では、トロンビンは、例えば本明細書に組み込まれる米国特許第５，１４３，８３８号に記載されるように、クリオ除去血漿からプロトロンビンをクロマトグラフィーにより精製した後、塩化カルシウムにより活性化することによって製造される。

別の態様では、本明細書において、α−トロンビン及び別のタンパク質（例えば、ヒト血清アルブミン）を含む製剤化トロンビン（例えば、医薬品）中のα−トロンビンを定量化するための一工程分析方法が提供され、本方法は、製剤化トロンビンを陰イオン交換体と接触させる工程と、差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、α−トロンビンを別のタンパク質から分離する工程と、α−トロンビンを定量化する工程と、を含む。いくつかの実施形態では、差次的溶出条件は、例えば、アミン又はアミンの混合物を含む溶離剤を使用することにより生成される、ｐＨ勾配を含む。いくつかの実施形態では、陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー方法が使用される。いくつかの実施形態では、陰イオン交換体は、非多孔質粒子でできている。いくつかの実施形態では、製剤化トロンビンは、望ましくないα−トロンビン分解ポリペプチド（β−トロンビン及び／又はγ−トロンビンポリペプチド）を更に含み、本方法はα−トロンビンを分解ポリペプチドから分離する工程を含む。いくつかの実施形態では、製剤化トロンビンは分解ポリペプチドを含有しない。

本明細書において使用するとき、不定冠詞「ａ」及び「ａｎ」は、文脈が明確にそうでない旨を表さない限り、「少なくとも１つの」又は「１つ又は２つ以上の」を意味する。

本明細書において使用するとき、「含む（comprising）」、「含む（including）」、「有する」という用語、及びそれらの文法的変形は、記載される特徴、工程、又は構成要素を特定するものとして理解されるが、１つ又は２つ以上の追加的特徴、工程、構成要素、又はこれらの群の追加を排除するものではない。

「約」という用語が数値に先行するとき、「約」という用語は、±１０％を示すことが意図される。

「トロンビン」又は「トロンビンポリペプチド」は、血液凝固カスケードの一部であり、フィブリノーゲンをフィブリンの不溶性鎖に変換すると共に、他の凝固関連反応を触媒する、哺乳類セリンプロテアーゼである。ヒトにおいて、プロトロンビンは、Ｆ２遺伝子によってコードされ、得られるポリペプチドは、補助因子（ＦＶａ）と共に第Ｘａ因子又は他のセリンプロテアーゼにより凝固カスケード内でタンパク質分解により切断され、トロンビンを生成する。トロンビンは、とりわけ、いくつかの止血製品中の活性成分として機能する。例えば、フィブリンシーラントは、典型的にフィブリノーゲン成分及びトロンビン成分を含む。両方の成分が混合されるとき（例えば、出血性創傷に適用されるとき）、トロンビンはフィブリノーゲンを切断し、止血特性を有するフィブリンポリマーが形成される。フィブリンシーラントは、典型的には、商業的な供給元又は特定の地域の輸血センターより入手される血液製剤である。フィブリン糊の調製に一般的に使用される成分は、フィブリノーゲン、トロンビン、第ＶＩＩＩ因子、第ＸＩＩＩ因子、フィブロネクチン、ビトロネクチン、及びフォンビルブランド因子（ｖＷＦ）である。フィブリンシーラントは、典型的には、とりわけフィブリノーゲン、トロンビン、及び第ＸＩＩＩ因子が関与する酵素反応によって形成される。「フィブリンシーラント」及び「フィブリン糊」という用語は交換可能である。

ヒトトロンビンは、ジスルフィド結合によって接合された２つのポリペプチド鎖Ａ及びＢからなる、２９５アミノ酸タンパク質である。α−トロンビンのＢ鎖は、フィブリノーゲン及び他のタンパク質に対するトロンビンのタンパク質分解活性に関与し、β−トロンビン及びγ−トロンビン分解ポリペプチドをもたらすその自己溶解活性に関与する。Ａｒｇ１０６−Ｔｙｒ１０７結合でのＢ鎖の切断は、７０アミノ酸Ｂ１断片及び１８８アミノ酸β−トロンビ（Ｂ２）形態をもたらす。γ−トロンビンは、Ｌｙｓ１９０−Ｇｌｙ１９１結合でのβ−トロンビンＢ２鎖の更なる切断により生成される。典型的には、トロンビンのこれらのタンパク質分解形態は、未変性α−トロンビンよりもフィブリノーゲンをフィブリンの不溶性鎖に変換する能力を低減した。

ヒトα−トロンビンＢ鎖は、更に翻訳後修飾されて、例えば、グリコシル化により、未修飾形態と比較したとき、及び／又は翻訳後修飾の他の形態と比較したとき、おそらく、より強力かつ／又は安定したトロンビン形態をもたらす（他のグリコシル化タンパク質に関しては、Ｒｉｃａｒｄｏ Ｊ．Ｓｏｌａ ａｎｄ Ｋａｉ Ｇｒｉｅｂｅｎｏｗ．「Ｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ：Ａｎ Ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ Ｓｔｒａｔｅｇｙ ｔｏ Ｏｐｔｉｍｉｚｅ Ｅｆｆｉｃａｃｙ」．ＢｉｏＤｒｕｇｓ．２０１０；２４（１）：９〜２１により示される）。成熟α−トロンビンは、その「重鎖」上に単一のＮ結合グリコシル化部位を有する。ノイラミン酸とも称されるシアル酸は、糖タンパク質の生物学的利用能、機能、安定性、及び代謝に重要である。α−トロンビンのグリコシル化形態（成熟した天然のヒトα−トロンビン、アミノ酸残基Ｎ４１６）は、１〜５個のシアル酸残基で更にシアリル化され得る。したがって、α−トロンビンは異なるシアリル化度／レベルを含有し得、例えば、α−トロンビンはグリコシル化部位でＮ−アセチルノイラミン酸（ＮＡＮＡ）残基（シアル酸）の量が変動し得る。シアリル化度は、タンパク質の効力及び安定性に影響を及ぼし得る。典型的には、シアリル化レベルが高いほど、効力が高くなり、安定性が高くなる。

結果は、陰イオン交換クロマトグラフィーによるα−トロンビンの分離が異なる量のＮＡＮＡを含有する多くのα−トロンビンピークの分離を可能にすることを示す。結果は、グリカンの末端からＮＡＮＡ残基を除去することができる酵素であるＮ−アセチルノイラミニダーゼを用いたトロンビンの処理がトロンビンの溶出プロファイルに影響を及ぼし、クロマトグラムの左側へのピークの全体的なシフト（未処理のトロンビンと比較したとき）をもたらすことを示す。したがって、本発明の方法は、例えば、ＮＡＮＡ含量において差がある、異なるα−トロンビングリコフォームを精製及び／又は定量化するために使用され得る。一実施形態では、本発明に従う方法は、ＡＥＸ−ＨＰＬＣを使用して、ＮＡＮＡの実質的に同一のプロファイルを含む異なる均質なα−トロンビン種を精製／単離するために使用され得る。別の実施形態では、本発明に従う方法は、均質な翻訳後修飾α−トロンビンを、タンパク質溶液から、及び／又は不均質な翻訳後修飾α−トロンビンを含む溶液から精製／単離するために使用され得る。

「翻訳後修飾」は、タンパク質生合成における工程である。タンパク質は、ｍＲＮＡをポリペプチド鎖に翻訳するリボソームによって作製される。ポリペプチド鎖は、それらが最終タンパク質産物に成熟する前に、翻訳後修飾、例えば、切断、折り畳み、及び他のプロセスを受ける。

翻訳後、アミノ酸の翻訳後修飾は、それを他の生化学官能基に付加すること、アミノ酸の化学性質を変更すること、又は構造を変更する（例えばジスルフィド架橋の形成）ことにより、タンパク質の機能の範囲を拡大する。修飾は、グリコシル化、リン酸化、ユビキチン化、メチル化、ニトロシル化、アセチル化、脂質化であり得る。典型的には、修飾はタンパク質の挙動、例えば、酵素の活性化及び不活性化を制御する。

典型的には、グリコシル化は、タンパク質の折り畳み、立体構造、分布、安定性、及び活性に対して顕著な作用を有する。グリコシル化は、核転写因子の単純な単糖修飾から高度に複雑な分枝状多糖変更にわたるタンパク質への糖部分の付加を含む。リン酸化は、細胞周期、成長、アポトーシス、及びシグナル伝達経路を含む、多くの細胞プロセスの調節において重要な役割を果たす。窒素への１炭素メチル基の移動又はアミノ酸側鎖への酸素の移動であるメチル化（それぞれ、Ｎ−及びＯ−メチル化）は、タンパク質の疎水性を増加させ、カルボン酸に結合したときに、負のアミノ酸電荷を中和することができる。ユビキチン化において、ユビキチンは、ユビキチンのＣ末端グリシンを介して標的タンパク質のリジンの

に付加される７６個のアミノ酸からなる８−ｋＤａポリペプチドである。ポリユビキチン化タンパク質は、ユビキチン化タンパク質の分解及びユビキチンの再利用を触媒する２６Ｓプロテアソームにより認識される。ヒストンメチル化及び脱メチル化は転写のためのＤＮＡの利用能に影響を及ぼすため、メチル化は、エピジェネティック調節の周知の機構である。アミノ酸残基は、修飾の作用を増加させるために、単一のメチル基又は複数のメチル基に抱合され得る。

「未修飾α−トロンビン」は、翻訳後修飾を受けなかったα−トロンビン、例えば、非グリコシル化及び／又はしたがって、非シアリル化α−トロンビンを指す。

「均質な翻訳後修飾α−トロンビン」は、例えば、グリコシル化及び／又はシアリル化レベルに関して、実質的に同一の形態のα−トロンビンを指す。異なるα−トロンビン分子間の均質性は、同じ翻訳後修飾、例えば、同じグリコシル化を有することによって表されるが、各トロンビン分子は異なるレベル及び／又は形態の他の修飾を有することができる。α−トロンビンは、α−トロンビンのグリコシル化及び／又はシアリル化形態であり得る。一実施形態では、均質なα−トロンビンは均質にグリコシル化されている。別の実施形態では、均質なα−トロンビンは均質にシアリル化されている。グリコシル化α−トロンビンは、０〜５個のシアル酸残基を有し得る。いくつかの実施形態では、均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、１、２、３、４、又は５個のシアル酸残基を有するシアリル化α−トロンビンである。

本明細書で使用される場合、α−トロンビン及び未修飾α−トロンビンの異なる／不均質な翻訳後修飾α−トロンビン集団は、「異なるα−トロンビン種」としても知られる。不均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、異なるグリコシル化及び／又はシアリル化形態を有し得る。

本明細書で使用される場合、「α−トロンビングリコフォーム」は、均質にグリコシル化及び／又はシアリル化されたα−トロンビン種を指す。

いくつかの実施形態では、本明細書に記載される方法を使用して調製されるα−トロンビンは、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９３％、少なくとも９４％、少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％、又は少なくとも１００％同一性のレベルまで均質である。例えば、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、９９、又は１００％未満であり、５０〜５５％、５０〜６０％、５０〜６５％、５０〜７０％、５０〜７５％、５０〜８０％、５０〜８５％、５０〜９０％、５０〜９５％、５０〜９９％、５０〜１００％、５５〜６０％、５５〜６５％、５５〜７０％、５５〜７５％、５５〜８０％、５５〜８５％、５５〜９０％、５５〜９５％、５５〜９９％、５５〜１００％、６０〜６５％、６０〜７０％、６０〜７５％、６０〜８０％、６０〜８５％、６０〜９０％、６０〜９５％、６０〜９９％、６０〜１００％、６５〜７０％、６５〜７５％、６５〜８０％、６５〜８５％、６５〜９０％、６５〜９５％、６５〜９９％、６５〜１００％、７０〜７５％、７０〜８０％、７０〜８５％、７０〜９０％、７０〜９５％、７０〜９９％、７０〜１００％、７５〜８０％、７５〜８５％、７５〜９０％、７５〜９５％、７５〜９９％、７５〜１００％、８０〜８５％、８０〜９０％、８０〜９５％、８０〜９９％、８０〜１００％、８５〜９０％、８５〜９５％、８５〜９９％、８５〜１００％、９０〜９５％、９０〜９９％、９０〜１００％、９５〜９９％、９５〜１００％同一性など、開示されるパーセントの間の任意の範囲を含む。

本開示は、α−トロンビン、例えば、均質な翻訳後修飾α−トロンビンの均質な集団／種を単離する方法を提供する。更に、α−トロンビンの精製した均質な集団、並びに単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン及び薬学的に許容される担体又は希釈剤を含む製剤が提供される。

また別の態様では、本明細書に開示される、精製α−トロンビン又は単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンを含む製剤が本明細書において提供される。いくつかの実施形態では、精製α−トロンビン又は単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、本明細書に開示される方法により得られる。いくつかの実施形態では、精製α−トロンビン又は単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンは、本明細書に開示される方法により得ることができる。製剤のいくつかの実施形態では、α−トロンビンは、哺乳類の血漿源からのものである。いくつかの実施形態では、本製剤は、薬学的に許容される担体又は希釈剤を含む。本明細書に開示される製剤は、冷凍又は凍結乾燥させることができる。

精製α−トロンビン又は均質な翻訳後修飾α−トロンビンを含む製剤は、対象の表面に適用され得る。製剤は、フィブリノーゲンを含む溶液で適用され得る。製剤は、例えば、止血、組織固定、移植片固定、創傷治癒、及び吻合において使用されてもよい。

また別の態様では、本明細書に開示される、精製β−トロンビンを含む製剤が本明細書において提供される。いくつかの実施形態では、精製β−トロンビンは、本明細書に開示される方法により得られる。精製β−トロンビンを含む製剤は、対象の表面に適用され得る。製剤は、フィブリノーゲンを含む溶液で適用され得る。製剤は、例えば、止血、組織固定、移植片固定、創傷治癒、及び吻合において使用されてもよい。

「精製β−トロンビン」という用語は、典型的には、陰イオン交換クロマトグラフィー方法を使用して、出発トロンビン含有溶液中に存在するα−トロンビン、γ−トロンビン、及び／又は別のタンパク質からのβ−トロンビンの単離後に得られたβ−トロンビン調製物を指す。「単離」とは、一般的に、「単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン」又は「単離したβ−トロンビン」に言及するとき、指定の分子又は化合物が、自然界で分子又は化合物が見られる生物全体から分離されており、別個のものである、及び／又は分子をその意図する目的のために用いることができるように、他の分子を十分に含まないことを意味する。

「薬学的に許容される担体又は希釈剤」は、製剤中の構成体と相溶性であり、過剰な毒性、刺激、アレルギー反応、又は他の合併症なしに、妥当な有益性／危険性の比に見合う、ヒト及び動物の組織と接触した使用に好適な試薬、化合物、材料、組成物、希釈剤を指す。本明細書に開示される製剤との使用に好適な薬学的に許容される担体は、液体、半固体、及び固体材料であり得る。担体は、スポンジ、フィルム、ギブス、外科用ドレッシング、又は包帯であり得る。

別の態様では、本発明に従う有効量の製剤を対象に適用する工程を含む、止血処置、封止、移植片固定、創傷治癒、抗接着、及び／又は吻合を必要とする対象にそれを行う方法が本明細書において提供される。「治療有効量」又は「有効量」という用語は、疾患、障害、又は状態を予防する又は処置する（ある症状又は全ての症状を緩和する）のに必要な用量を指す。有効量は、製剤の投与に応答した、疾患の経過中の任意の変化に基づいて判断され得る。有効用量は、対象の年齢及び体重、疾患及びその重症度（例えば、早期か末期か）、並びに当業者によって認識され得る他の要因に応じて変えることができる。

別の態様では、水性液体トロンビン製剤中のトロンビン活性の安定化における使用可能性について化合物をスクリーニングするための方法が本明細書において提供され、本方法は、所与の時間の間、試験化合物を、α−トロンビンを含む溶液と共にインキュベートする工程と、インキュベーション後、本明細書に開示される方法に従うα−トロンビン及び／又は分解ポリペプチド（例えば、β−トロンビン及び／又はγ−トロンビンポリペプチド）を定量化する工程と、トロンビン活性の安定化における使用可能性を有する、１つ又は２つ以上の好適な試験化合物を特定する工程と、を含み、好適な化合物は、初期のα−トロンビン含量と比較して、約７０％〜約１００％のレベルでα−トロンビン含量を維持する化合物であり、かつ／又は試験化合物の不在下での分解ポリペプチドのレベルと比較したとき、約０％〜約３０％まで分解ポリペプチドのレベルを低減する化合物である。

「トロンビン活性の安定化」とは、例えば、トロンビン自己消化活性の低減を指す。「トロンビン活性の安定化」とは、トロンビン水溶液、例えば、濃縮トロンビン溶液として、例えば室温で、１日間超、−１８℃又はそれ以下で２年間超、及び／又は２〜８℃で１ヶ月間超保存したとき、フィブリノーゲンのフィブリンへの変換活性を含む、異種基質に対するトロンビンの生物活性を著しく損なわせることなく、トロンビン活性を維持することを指す場合もある。「室温」は、約２０℃〜約２５℃、又は２２℃〜約２５℃の温度を含むように意図されている。「トロンビン活性」は、トロンビンが媒介する、タンパク質を含む異種基質の変換、例えば、フィブリノーゲンのフィブリンへの変換に加えて、第ＶＩＩＩ因子の第ＶＩＩＩａ因子への変換、第ＸＩ因子の第ＸＩａ因子への変換、第ＸＩＩＩ因子の第ＸＩＩＩａ因子への変換、及び第Ｖ因子の第Ｖａ因子への変換を含むことを意味する。「異種基質」は、トロンビン以外の基質、好ましくはタンパク質基質である。いくつかの実施形態では、トロンビン活性は、フィブリノーゲンのフィブリンへの変換を指す。

「安定化」という用語は、例えば、初期トロンビン活性と比較して、約７０％〜約１００％（例えば、約９０〜１００％）のレベルで、トロンビン液体製剤内のトロンビン活性／効力を維持することを意味する。

いくつかの実施形態では、化合物（複数可）は、トロンビンの自己消化を、約７０％〜約１００％、約７０％〜約９５％、約７０％〜約９０％、又は約７０％〜約８０％阻害し、約７０％〜約１００％、約７０％〜約９５％、約７０％〜約９０％、又は約７０％〜約８０％のトロンビン生物活性を保持する。

「試験化合物」又は「試験物質」という用語は、トロンビンを安定させる能力が本発明の方法により定義される、化学的に定義された化合物又は化合物の混合物である。これらの化合物又は化合物の混合物は、Ｄａｖｅ Ａ．Ｐａｒｋｉｎｓ ａｎｄ Ｕｌｌａ Ｔ．Ｌａｓｈｍａｒ「Ｔｈｅ ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｂｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ ｐｒｏｄｕｃｔｓ」．ＰＳＴＴ Ｖｏｌ．３，Ｎｏ．４ Ａｐｒｉｌ ２０００などに記載される、当該技術分野において既知の賦形剤（複数可）／安定剤であり得る。

「初期α−トロンビン含量」という用語は、例えば、凍結トロンビン製剤を解凍した直後、トロンビン粉末を再構築した直後、及び／又は自己分解を可能にする条件下（例えば、８００ＩＵ／ｍｌ〜１０，０００ＩＵ／ｍｌ又はそれ以上のトロンビン濃度で、例えば、−１８℃又はそれ以下で２年間超、２〜８℃で１ヶ月間超、及び／若しくは室温で１日間超保存）で液体トロンビンを保存する前のトロンビン液体製剤において測定されたフィブリノーゲンに対するトロンビンの活性を指す。

いくつかの実施形態では、インキュベーション時間は、水性トロンビン溶液、例えば、濃縮トロンビン溶液として、１日間超（例えば、室温で）、−１８℃又はそれ以下で２年間超、及び／又は２〜８℃で１ヶ月間超である。

「分解ポリペプチド」という用語は、β−トロンビン及び／又はγ−トロンビンポリペプチドを指す。

「表面」という用語は、肉眼で見ることができる皮膚の外部表面、及び生物の内部構造の一部である内部体部位の表面を指し得る。外部表面として、顔の皮膚、喉、頭皮、胸部、背部、耳、首、手、肘、臀部、膝、及び他の皮膚部位が挙げられるが、これらに限定されない。内部体部位の例として、外部環境に曝される体腔又は解剖学的開口部、並びに鼻孔、唇、耳部、子宮、膣及び卵巣を含む生殖器領域、肺、肛門、脾臓、肝臓、及び心筋などの内臓が挙げられるが、これらに限定されない。表面は、出血性又は非出血性部位であってよい。

本明細書に開示される製剤及びキットは、組織及び臓器移植片固定のため、手術創傷を封止するため、止血を提供することを含む血管手術において、抗接着のため、並びに動脈、消化管、及び気管吻合のために、内部的及び外部的に使用することができる。

本明細書で使用される場合、「対象」はヒト及び哺乳類起源の動物を含む。一実施形態では、対象は、手術患者又は創傷患者である。

精製α−トロンビン及び／又は精製β−トロンビンは止血製品において使用され得る。α−トロンビン又はβ−トロンビンは、フィブリンシーラントを形成するために、フィブリノーゲンと組み合わせて使用され得る。

フィブリノーゲンは、初期血液組成物から調製され得る。血液組成物は、全血、又は血液画分、すなわち、血漿などの全血の産物であり得る。本発明の一実施形態では、フィブリノーゲン成分は、血漿由来のタンパク質溶液である生物学的有効成分（ＢＡＣ）から構成され、これはトラネキサム酸及び／若しくはアルギニン、リジン、それらの薬学的に許容される塩などの安定剤、又はこれらの混合物を更に含み得る。ＢＡＣは、クリオプレシピテート、特に濃縮クリオプレシピテート由来であり得る。

「クリオプレシピテート」という用語は、全血より調製した凍結血漿から得られる血液成分を指す。クリオプレシピテートは、凍結血漿を低温、典型的には０〜４℃の温度で解凍すると得ることができ、フィブリノーゲン及び第ＸＩＩＩ因子を含有する沈殿物の形成をもたらす。沈殿物は、例えば、遠心分離によって回収し、１２０ｍＭ塩化ナトリウム、１０ｍＭクエン酸三ナトリウム、１２０ｍＭグリシン、９５ｍＭアルギニン塩酸塩を含有する緩衝液などの好適な緩衝液に溶解することができる。ＢＡＣの溶液は、例えば、米国特許第６，１２１，２３２号（Ｂ）及び国際公開第９８３３５３３号に記載されるように、第ＶＩＩＩ因子、フィブロネクチン、フォンビルブランド因子（ｖＷＦ）、ビトロネクチンなどを更に含み得る。好ましくは、ＢＡＣの組成物は、トラネキサム酸及びアルギニン塩酸塩などの安定剤を含み得る。典型的には、ＢＡＣ中のフィブリノーゲンの量は、約４０〜約６０ｍｇ／ｍＬの範囲である。ＢＡＣの溶液中のトラネキサム酸の量は、約８０〜約１１０ｍｇ／ｍＬであり得る。塩酸アルギニンの量は、約１５〜約２５ｍｇ／ｍＬであり得る。

必要に応じて、溶液は生理学的適合性を有するｐＨ値に緩衝される。緩衝液は、グリシン、クエン酸ナトリウム、塩化ナトリウム、塩化カルシウム、及び溶媒としての注射用蒸留水から構成され得る。グリシンは組成物中に約６〜約１０ｍｇ／ｍＬの量で存在してよく、クエン酸ナトリウムは約１〜約５ｍｇ／ｍＬの範囲でよく、塩化ナトリウムは約５〜約９ｍｇ／ｍＬの範囲でよく、塩化カルシウムは約０．１〜０．２ｍｇ／ｍＬの濃度でよい。

別の実施形態では、ＢＡＣ組成物中のプラスミノーゲン及びプラスミンの濃度を、例えば、米国特許第７，１２５，５６９号（Ｂ）、欧州特許第１，３９０，４８５号、及び国際公開第０２０９５０１９号に記載される方法を使用して、１５μｇ／ｍｌ又はそれ以下、例えば５μｇ／ｍｌ又はそれ以下のプラスミノーゲンにまで低下させる。本発明の別の実施形態では、ＢＡＣ組成物中のプラスミノーゲン及びプラスミンの濃度を低下させるとき、組成物は、トラネキサム酸及びアプロチニンを含有しない。フィブリノーゲン溶液は、ＢＡＣ２成分（ＥＶＩＣＥＬ（登録商標））又は他の任意のフィブリノーゲン含有溶液、例えば、精製された組み換えフィブリノーゲン又はヒト血漿から産生されたクリオプレシピテートであってもよい。

フィブリノーゲンは、自家の、プール血漿を含むヒト、又は非ヒト源であり得る。フィブリノーゲンは、組み換え方法によって調製されるか、又は化学的に修飾され得ることも可能である。

以下の実施例は、本発明の特定の実施形態を実証するものであるが、本発明の範囲を限定するものではなく、むしろ本発明の完全な説明に寄与するものとして解釈すべきである。

全ての実施例に関して、本明細書では以下の用語が使用される。
「トロンビン溶液」は、ｐＨ６．９〜７．１の２０ｍＭ酢酸ナトリウム中、約３０００ＩＵ／ｍｌのトロンビン、約１ｍｇ／ｍｌの総タンパク質濃度のトロンビンの溶液を指す。

「トロンビン製剤」又は「製剤化トロンビン」は、８００〜１２００ＩＵ／ｍｌの範囲のトロンビン活性、約５．７〜６．５ｍｇ／ｍｌの総タンパク質濃度、及びｐＨ６．９〜７．１の５．０〜６．５ｍｇ／ｍｌのヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）を有する、製剤化トロンビン医薬品ＥＶＩＴＨＲＯＭ（登録商標）Ｔｈｒｏｍｂｉｎ、Ｔｏｐｉｃａｌ（Ｈｕｍａｎ）（ＥＴＨＩＣＯＮ，Ｉｎｃ．）、又はＥＶＩＣＥＬ（登録商標）Ｆｉｂｒｉｎ Ｓｅａｌａｎｔ（ＥＴＨＩＣＯＮ，Ｉｎｃ．）のトロンビン成分を指す。トロンビンの製剤に使用されるＨＳＡは、安定剤であるアセチルトリプトファンを含む。

以下の全ての実施形態では、トロンビン溶液は、存在するトロンビンが製剤化されておらず（例えば、安定剤を含まない）、また高濃縮されておらず（約３０００ＩＵ／ｍｌ）、したがって、トロンビンがより速く分解する傾向にある（「トロンビン製剤」中に存在するトロンビンと比較して）ため、トロンビン分解ポリペプチドを含む「対照試料」として使用された。

以下の実施例では、ツールは、α−トロンビン、その分解ポリペプチド、及び存在する場合、ＨＳＡ間の分離を提供する、並びにα−トロンビン及びその分解ポリペプチドを定量化するそれらの能力について評価された。

一般に、「良好な分離」とは、ピーク間の「ベースライン分離能」と考えられる。「ベースライン分離能」は、分析物の溶出の代表として検出されたピークが重複しない、分析物の十分な分離を意味する、つまり、検出器の応答がピーク間のベースラインレベルに戻る。

「十分な分離」とは、溶出ピーク間に明確な違いが現れるが、検出器の応答がピーク間でベースラインレベルに完全に戻らない。

不十分な分離は、ピークの重複がクロマトグラムに現れるときと考えられる。

値で示されない限り、分離能／分離レベルは視覚的に評価された。数値が以下の実施例において列記される場合、クロマトグラフィーカラムが互いに成分を分離する程度である分離能（Ｒ_ｓ）は、数学的に以下のように定義される：分離能は、選択されたピークとその前のピーク保持時間との間の差を１．１８の定数で乗じた後、ピーク高さの５０％のピーク幅の合計で除したものである。

２又はそれ以上の分離能レベルは、「ベースライン分離能」と考えられ、したがって、良好な分離を示し、ピークの良好な定量を可能にする。１．５又はそれ以上（２未満）の分離能は、分離及び定量化を可能にする「十分な分離」と考えられる。

クロマトグラフィー方法の有効性に関して、「分離」及び「分離能」という用語は交換可能に使用される。

実施例１：ＨＳＡ、トロンビン溶液、及び製剤化トロンビンの逆相高性能液体クロマトグラフィー（ＲＰ−ＨＰＬＣ）
タンパク質及びその断片を分離する標準的な手順は、逆相モードのＨＰＬＣ装置を採用する。ＲＰ−ＨＰＬＣ方法の基本原理は、デュアルポンプ、極性カラム、及び検出器からなる装置である。タンパク質を装置に注入し、カラムに保持させる。有機溶媒の濃度を増加すると、カラムに保持されたタンパク質及びペプチドがカラムから解放され、検出器に溶出し、ここで、所与の時間で溶出したタンパク質の量に基づいて、応答が取得される。

以下の実施例では、Ｃ４カラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ，Ｊｕｐｉｔｅｒ，００Ｇ−４１６７−Ｂ０，４．６×２５０ｍｍ）を備えたＲＰ−ＨＰＬＣは、α−トロンビン、その分解ポリペプチド、及び存在する場合、ＨＳＡ間を分離し、α−トロンビン及びその分解ポリペプチドを定量化するためのツールとして評価された。

ＨＰＬＣ分析は、１００μＬの注入ループを備えたＷａｔｅｒｓ Ａｌｌｉａｎｃｅ分離モジュールｅ２６９５を使用して実施され、フォトダイオードアレイ（ＰＤＡ）検出器２９９８（Ａ_{１９０ｎｍ}〜Ａ_{４５０ｎｍ}を走査する）は、５０℃の一体型Ｗａｔｅｒｓカラムオーブンと共に使用された。

分離に使用された有機溶媒／溶液は、
緩衝液Ａ：ＨＰＬＣグレードの水＋０．１％（ｖ／ｖ）トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）、
緩衝液Ｂ：アセトニトリル＋０．１％（ｖ／ｖ）トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）であった。

異なる溶液勾配（経時的な緩衝液Ａと緩衝液Ｂの比率）が評価された。

注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、ｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡ、及びｄ）ブランク試料としての１００μＬのＨＰＬＣグレードの水であった。

全ての実験において、異なる注入容量は、トロンビン溶液中のトロンビンが製剤化トロンビンと比較したとき、より濃縮されたという事実に基づいた。

注入前に、全ての試料を、０．４５μｍのポリビニリデンジフルオリド（ＰＶＤＦ）膜（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、より大きい粒子、例えば、凝集体を濾過するため）を通して濾過した。ＨＰＬＣに注入するまで、試料を一体型試料コンパートメント中で、１０℃で保存した。

図１は、溶出ピークの領域の代表的なクロマトグラムの拡大図を示す。

全ての図において、試料の描写は、クロマトグラムの開始に基づいて上から下に示され、注入された試料（上から下）は、クロマトグラム上に列記される。異なる試料の実行は、重なったオーバーレイとして１つの図に示される。

ＨＡＳとトロンビンとの主ピーク間に分離があるが、全体的に十分な分離は達成されなかった。カラムから溶出されたピークは非常に近接しているため、信頼できるピークの分離及び／又は定量はできなかった。

温度、カラム化学（異なる試験したＲＰカラムは以下に列記される）、移動相化学（メタノールなど）、及び勾配を含む条件を変更した、追加の実験が実施されたが、α−トロンビン及びその分解ポリペプチド、並びに／又は他のタンパク質、例えばＨＳＡ間の分離能は改善されなかった。

上述のように、分離及び定量化のために、以下の追加のＲＰカラムが試験された：Ｃ４，５μｍ，３００Ａ，４．６×２５０ｍｍ；Ｓｅｐａｘ ＢｉｏＣ１８，３μｍ，３００Ａ，４．６×１５０ｍｍ；ＬｉＣｈｒｏＣＡＲＴ，５μｍ，３００Ａ，４×２５０ｍｍ；Ｓｅｐａｘ Ｃ８，５μｍ，３００Ａ，４×２５０ｍｍ；Ｗａｔｅｒｓ ＸＢｒｉｄｇｅ Ｃ４，３．５μｍ，３００Ａ，４×２５０ｍｍ。

したがって、ＲＰ−ＨＰＬＣは、分解ポリペプチド及び／又はＨＳＡの存在下でのα−トロンビンの「一工程」若しくは「単一カラム分離」及び／又は定量化が所望される場合、適切なツールではないと結論付けられた。

実施例２：陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー（ＡＥＸ−ＨＰＬＣ）並びに直線塩勾配及びｐＨ８．０を使用した溶出
タンパク質及びその断片を分離するための標準的な手順は、陰イオン交換モードのＨＰＬＣ装置を採用する。ＡＥＸ−ＨＰＬＣ方法の基本原理は、デュアルポンプ、極性カラム、及び検出器からなる装置である。タンパク質を装置に注入し、カラムに保持する。溶媒特性（例えば、塩濃度、ｐＨ）を変更すると、カラムに保持されたタンパク質及びペプチドがカラムから解放され、検出器に溶出し、ここで、所与の時間で溶出したタンパク質の量に基づいて、応答が取得される。

この実験において、陰イオン交換カラムを使用したＨＰＬＣ分析は、α−トロンビン、その分解ポリペプチド、及び存在する場合、ＨＳＡ間を分離し、α−トロンビン及びその分解ポリペプチドを定量化するためのツールとして評価された。

ＡＥＸ−ＨＰＬＣ分析は、１００μＬの注入ループを備えたＷａｔｅｒｓ Ａｌｌｉａｎｃｅ分離モジュールｅ２６９５を使用して実施され、ＰＤＡ検出器は、Ａ_{２２０ｎｍ}及びＡ_{２８０ｎｍ}で使用され、一体型Ｗａｔｅｒｓカラムオーブンは２５℃で使用された。使用されたカラムはＳｅｐａｘ ４０３ＮＰ５−４６２５（Ｓｅｐａｘ Ｐｒｏｔｅｏｍｉｘ ＳＡＸ−ＮＰ５ ＮＰ ４．６×２５０ｍｍ ４０３ＮＰ５−４６２５）であった。カラム（幅４．６ｍｍ及び長さ２５０ｍｍ）は、５μｍのポリマービーズがベースである。ビーズは、四級アンモニウム化学を有し、非多孔質の単分散粒子である。

ＡＥＸ−ＨＰＬＣからの溶出に関して、緩衝液Ａ：ＨＰＬＣグレードの水中２０ｍＭトリス（ｐＨ８．０）と、緩衝液Ｂ：ＨＰＬＣグレードの水中２０ｍＭトリス（ｐＨ８．０）及び１Ｍ ＮａＣｌとの間の直線塩勾配が使用された。

注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、ｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡ、及びｄ）ブランク試料としての１００μＬの緩衝液Ａであった。

注入前に、全ての試料を、孔径０．４５μｍのＰＶＤＦ膜を有する４ｍｍ注射器フィルタを通して濾過した。ＨＰＬＣに注入するまで、試料を一体型試料コンパートメント中で、１０℃で保存した。実行時間は、３７分であり、使用された流量は０．８ｍＬ／分であり、圧力は約１８０００ｋＰａ（２６００ｐｓｉ）であった。

図２は、溶出ピークの領域の代表的なクロマトグラムの拡大図を示す。

結果は、ｐＨ８．０の溶出緩衝液及び１Ｍ ＮａＣｌまでの直線塩勾配を用いたＡＥＸ−ＨＰＬＣが十分な分離を提供せず、かつ／又は信頼できる定量化を可能にしなかったことを示す。カラムから溶出されたピークは互いに非常に近接し、分離能は十分ではなかった。

実施例３：ＡＥＸ−ＨＰＬＣ並びに直線塩勾配及びｐＨ ６．０を使用した溶出
先行の実施例は、ｐＨ８．０及び直線塩勾配で、α−トロンビン、その分解ポリペプチド、及びＨＳＡ間の分離が限られたことを示した。

この実施例では、１Ｍ ＮａＣｌまでの増加勾配でｐＨ６．０のリン酸緩衝液を使用した溶出が、実施例２において記載される、カラム、装置、及び実験設定を使用して評価された。

ＡＥＸ−ＨＰＬＣからの溶出に関して、緩衝液Ａ：ＨＰＬＣグレードの水中２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）と、緩衝液Ｂ：ＨＰＬＣグレードの水中２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）及び１Ｍ ＮａＣｌとの間の直線塩勾配が使用された。

注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、ｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡ、及びｄ）ブランク試料としての１００μＬの緩衝液Ａであった。

図３は、異なる試料に関して得られた代表的なクロマトグラムを示す。

結果は、ｐＨ６．０の溶出緩衝液及び１Ｍ ＮａＣｌまでの塩勾配を用いたＡＥＸ−ＨＰＬＣが十分な分離を提供せず、かつ／又は信頼できる定量化を可能にしなかったことを示す。

クロマトグラムに見られるアセチルトリプトファンは、ＨＳＡ製剤中に存在する安定剤である。

実施例４：ＡＥＸ−ＨＰＬＣ並びに直線塩勾配及びｐＨ７．５を使用した溶出
先行の実施例は、ｐＨ６．０（実施例３）及び８．０（実施例２）の溶出緩衝液を用いた分離が限られたことを示したため、ｐＨ７．５の溶出緩衝液を試験した。

ＨＰＬＣ分析及び条件は実施例２に記載されるように実施された。溶出は、ＮａＣｌの増加直線勾配でｐＨ７．５のトリス緩衝液を使用して実施された。使用された緩衝液は、緩衝液Ａ：ＨＰＬＣグレードの水中２０ｍＭトリス（ｐＨ７．５）及び緩衝液Ｂ：２０ｍＭトリス（ｐＨ７．５）及び１Ｍ ＮａＣｌであった。

注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、ｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡ、及びｄ）ブランク試料としての１００μＬの緩衝液Ａであった。結果を図４（拡大図）に示す。結果は、ｐＨ７．５の溶出緩衝液及び１Ｍ ＮａＣｌまでの塩勾配を用いたＡＥＸ−ＨＰＬＣが十分な分離を提供せず、かつ／又は信頼できる定量化を可能にしなかったことを示す。

実施例５：ＡＥＸ−ＨＰＬＣ並びに直線ＮａＮＯ_３塩勾配及びｐＨ８．０を使用した溶出
ＮａＣｌの代替えとして、ＮａＮＯ_３（硝酸ナトリウム）が、トロンビン分解ポリペプチドを、α−トロンビンから、及び溶液中の残りのタンパク質、例えば、ＨＳＡから分離するその能力に関して評価された。

直線塩勾配は、緩衝液Ａ：ＨＰＬＣグレードの水中２０ｍＭトリス（ｐＨ８．０）と緩衝液Ｂ：２０ｍＭトリス（ｐＨ８．０）／１Ｍ ＮａＮＯ_３との間で評価された。カラム、装置、及び実験設定は実施例２に記載される通りであった。

注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、及びｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡであった。結果を図５に示す。上述のように、トロンビン溶液は分解ポリペプチドを含有した。

結果は、溶離剤としてのＮａＮＯ_３を使用することにより、ＨＳＡ、アセチルトリプトファン、及びトロンビン間の分離が大幅に増加されるが、十分な分離能がトロンビンとその分解ポリペプチド間で達成されなかったことを示す。

実施例６：ＡＥＸ−ＨＰＬＣ及びｐＨ９．１〜ｐＨ３．４の直線勾配を使用した溶出
ＡＥＸ−ＨＰＬＣ樹脂から溶出した関連ピーク間の分離を達成するために塩勾配を使用する代替えとして、アミン系緩衝液を使用するｐＨ勾配が評価された。緩衝液のアミンの性質により、検出はＡ_{２８０ｎｍ}で実施された。

緩衝液Ａ及びＢは、２０ｍＭピペラジン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｐ４５９０７）、２０ｍＭトリエタノールアミン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｔ９５３４）、２０ｍＭビス−トリスプロパン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｂ４６７９）、及び２０ｍＭ １−メチルピペラジン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，１３０００〜１）を含有した。

緩衝液は、ＨＣｌで滴定することにより、ｐＨ９．１（緩衝液Ａ）及びｐＨ３．４（緩衝液Ｂ）に調整された。合計実行時間は４６分であった。全ての実験において、直線勾配は、工程２と３との間に実行され（下の表１を参照されたい）、直線勾配の実行時間は２０分であった。工程２及び３の間に、材料はカラムから溶出される。

注入された試料は、ａ）３０μＬのトロンビン溶液、ｂ）１００μＬの製剤化トロンビン、ｃ）１００μＬの５ｍｇ／ｍｌ ＨＳＡ、及びｄ）ブランク試料としての１００μＬの緩衝液Ａであった。

緩衝液間の流量条件及び比率を表１に示す。溶出緩衝液のｐＨは、緩衝液ＡとＢとの間の比率に依存する。一般に、典型的なＨＰＬＣ実行は少なくとも以下の工程からなる：
平衡化したカラムに材料を装填する（工程１と２との間の時間、「装填」）。

この工程後、材料をカラムから溶出する（工程２と３との間、「直線勾配」）。これは、均一濃度で（装填及び／又は平衡化工程と比較したとき、緩衝液組成を変更することなく）、又は勾配（緩衝液の特性、例えば、塩濃度、極性／ｐＨのうちの１つを変更する）を通して実施することができる。この実施例では、溶出は直線勾配を使用して実施された。

次の工程では、カラムが再生され得る（工程３と４との間、「カラム再生」）、つまり、カラムから任意の残存材料を溶出するために、変更した特性（塩濃度、極性、ｐＨ）の最高濃度で、残存材料に追加時間を与える。

最後の工程（工程５と６との間、「カラム平衡化」）は、カラムが追加分離に適する元の状態にカラムを戻すための平衡化工程である。

条件、カラム、及び装置は実施例２に記載される通りであった。

−工程１と２との間−装填−５分。
−工程２と３との間−直線勾配−２０分。緩衝液Ｂの増加は毎分４．５％であった。
−工程３と４との間−「カラム再生」−５分。
−工程５と６との間−「カラム平衡化」−１５分。

下の表全てにおいて、工程は同じ様式で特徴付けされ、番号付けされる。

図６は、注入された試料の代表的なクロマトグラムを示す。図７は、図６からのクロマトグラムのトロンビン溶出領域の拡大図である。

結果は、良好な分離能が、ＨＳＡ、アセチルトリプトファン、及びトロンビン間で得られたことを示す。記載される条件で、いくつかのトロンビンピークが得られた（図６に最も良く示される）。以下の実施例では、トロンビンピークの分離能を更に強化するために、追加のパラメータが検査された。

実施例７：ＡＥＸ−ＨＰＬＣ及び異なる流量の直線ｐＨ勾配を使用した溶出
異なるトロンビンピーク間でより良い分離を得るために、温度（実施例２〜７と同様２５℃で）及びｐＨ勾配を一定に維持したまま、異なる流量が評価された。

緩衝液Ａ及びＢは実施例６と同じであった。プログラム（下の表２を参照されたい）は４回操作された。各回で流量は異なった：０．２５、０．５、０．７５、及び１ｍＬ／分。

評価された勾配は下の表２に示される通りである。

注入された試料は、各試験した流量に関して、３０μＬのトロンビン溶液であった。

図８は、実施された流量スクリーンのクロマトグラムの拡大図を示す。

ＨＳＡ、アセチルトリプトファン、及びトロンビン間の分離（目視検査）は、流量の増加による影響は受けなかった（データ示さず）。

α−トロンビンとその分解ポリペプチドとの間の分離能が流量の増加と共に増加することが示された（図８）。最良の分離能は１．０ｍＬ／分で達成され、例えば、より多くのピークが観察された。

実施例８：ＡＥＸ−ＨＰＬＣ及び１００％緩衝液ＡからのｐＨ勾配を使用した溶出
この実施例では、分離分離能に対して、前の実施例と比較してより高いｐＨでＡＥＸ−ＨＰＬＣ方法を開始する作用が評価された。この目的のため、９０％（表２に使用されるように）の代わりに、１００％緩衝液Ａ（表３を参照されたい）でのｐＨ勾配が使用された。工程１、２、５、及び６において、緩衝液Ａのパーセントが９０であり、緩衝液Ｂのパーセントが１０であったのみで、対照として、同じセットの試料が表３に記載される様式で実行された。

緩衝液Ａ及びＢは実施例６と同じであった。特に記載されない限り、実験設定は実施例６と同じであった。

ピーク間の分離能は視覚的に評価された。表３は勾配及び流量条件を示す。

−緩衝液Ｂの増加は毎分４．５５％であった。

結果（データ示さず）は、より高いｐＨで勾配を開始することにより、トロンビンピークのより良い分離能が得られたことを示した。したがって、より広いｐＨ範囲のカラムからのタンパク質の溶出はピーク間のより良い分離をもたらす。

以下の実施例では、１００％緩衝液ＡのｐＨ勾配が使用された。

実施例９：ＡＥＸ−ＨＰＬＣ及び勾配実行時間を増加した直線ｐＨ勾配を使用する溶出
異なるトロンビンピーク間のより良い分離／分離能を得るために、実施例６の実行時間と比較したとき、各々５分ずつ５１、５６、及び６１分の合計実行時間（すなわち、工程２と３との間の時間が２０から２５、３０から３５分に増加した）への勾配増加（すなわち、時間増加は工程２と３との間であった）が評価された。４６分の実行時間（実施例６と同様に）も試験された。分離能は各ピークからその前のピークまでの間で測定された。

特に記載されない限り、実験設定は表３に列記されるパラメータを使用する実施例８と同じであった。

トロンビン溶液（３０μＬ）を注入した。緩衝液Ａ及びＢは実施例６と同じである。表４、５、６、及び７は、それぞれ、保持時間、並びに４６、５１、５６、及び６１分の合計実行時間で達成された分離能を示す。保持時間は、注入時と溶出の代表としてのピーク頂点（ピークの最も上方の点）検出との間の間隔である。

結果は、５６及び６１分の合計実行時間で（３０及び３５分の勾配の長さ）、トロンビンピークに明確な領域で溶出する追加のピークがより短い実行時間と比較したときに分離されたことを示す。

有利に、明確なトロンビン領域で溶出する追加のピークを得るために、２５分より長い勾配の長さが使用され得る。

次の実施例では、５６分の合計実行時間が使用された。

実施例１０：分離分離能に対する直線勾配の作用
異なる直線傾き勾配は、トロンビンピークの分離を改善するそれらの能力について評価された（工程２と３との間に使用された勾配）。傾きは毎分の緩衝液Ｂのパーセントの増加により影響を受ける。毎分の緩衝液Ｂのパーセント増加が低いと、毎分の緩衝液Ｂのパーセント増加がより高いときと比較したとき、より浅い傾きとなり、それによりタンパク質の溶出プロファイルに影響を及ぼす。勾配が異なる出発ｐＨを使用することにより影響を受けた実施例８とは対照的に、この実施例では、勾配は毎分異なる速度でｐＨ値が増加することにより影響を受けた（開始点及び終了点のｐＨは全ての試料において等しい）。

緩衝液Ａ及びＢは実施例６と同じであった。特に記載されない限り、実験設定は実施例６と同じであった。トロンビン溶液（３０μＬ）を注入した。緩衝液Ａ（３０μＬ）はブランクとして使用された（示さず）。

毎分の緩衝液Ｂのパーセント増加が評価された：４．５％、４．２５％、４％、３．７５％、及び３．５％。例えば、毎分４．５％のパーセントが使用されたとき、最初の１分後に毎分４．５％の緩衝液Ｂが得られ、２分後に毎分９％の緩衝液Ｂが得られ、３分後に毎分１３．５％の緩衝液Ｂが得られるなど、毎分最大１００％までの緩衝液Ｂが得られる。各分で、緩衝液Ａは総溶液を１００％にするように使用された。

典型的には、より浅い傾きは実行時間の増加となる。実行時間は次の通りであった：列記される緩衝液Ｂのパーセントに対して、それぞれ、４８、４９．５、５１、５２．７、及び５４．６分。

図９は、評価された異なる勾配について得られたクロマトグラムを示し、目視検査は分離分離能を決定するために実施された。

結果は、全ての試験した傾きがトロンビンピーク間で満足な／十分な分離を示し、３．５％の増加が最良の分離を有することを示す（拡大図に見られる、データ示さず）。

実施例１１：ＡＥＸ−ＨＰＬＣに市販の標準品を注入することによる異なるトロンビンピークの特定
クロマトグラムにおいてトロンビンピークを特定するために、１．０ｍＬ／分の流量を使用して、α、β、及びγトロンビン標準品に加えて、実施例７と同様にトロンビン溶液が注入された。

標準品（Ｈａｅｍａｔｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ；Ｈｕｍａｎ ａｌｐｈａ−Ｔｈｒｏｍｂｉｎ、ＨＴＩ ＨＣＴ−００２０、Ｈｕｍａｎ ｂｅｔａ−Ｔｈｒｏｍｂｉｎ、ＨＴＩ−００２２、Ｈｕｍａｎ ｇａｍｍａ−Ｔｈｒｏｍｂｉｎ、ＨＴＩ−００２１）は、注入前に０．３ｍｇ／ｍＬに希釈された。３０μＬのトロンビン溶液、α−、β−、及びγ−標準品各々１００μＬがＨＰＬＣに注入された。緩衝液Ａはブランクとして使用された。

緩衝液Ａ及びＢは、実施例７に記載されるのと同じであり、表２に示されるプログラムにおいて使用された。

図１０は重複したクロマトグラムを示す。標準品について得られたピークに基づき、トロンビン溶液の相関するピークを特定し、それにより、α−トロンビンとその分解ポリペプチドβ及びγトロンビンとの間の分離が達成され得ることを確認することが可能であった。加えて、α−トロンビンがクロマトグラムにおいて複数のピークとして溶出することが特記された。

実施例１２：定性的ツールとしてウエスタンブロットを使用するトロンビンピークの特定
前の実施例では、トロンビンピークの特定は、ＡＥＸ−ＨＰＬＣにおいて、市販のα、β、及びγトロンビン標準品の注入により実施された。

上記の結果を裏付けるために、この実施例では、トロンビンピークは注入されたトロンビン溶液から収集され、既知のサイズのα−トロンビン及びその分解ポリペプチド、β−並びにγ−トロンビンに基づく市販の標準品（実施例１１と同様）に対して、ウエスタンブロットにより更に定性的に特定された。

十分な量のβ及びγトロンビンを得るために、ＨＰＬＣに注入する前に、一晩など、室温で（約２０〜２５℃）少なくとも１２時間、トロンビンの自己分解を強化する条件下で、トロンビン溶液をインキュベートした。実験設定は実施例１０と同様であり、３．５％Ｂ／分の増加が使用された。６０μＬの試料（四つ組で）及び１００μＬの緩衝液Ａが注入された。

明確なピーク（図１１及び表８に示され、特定される）が４つの別個の実行から収集され（各ピークに存在するタンパク質量が少ないため）、プールされ（視覚的特定及び保持時間に従い）、回収量が大きいため凍結乾燥された。各凍結乾燥され、プールされたピークは再構築された（ＳＤＳ−ＰＡＧＥの可能な装填容量に限りがあるため、初期容量と比較して低い容量の水中で）。得られたプールされた試料を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分離し、ニトロセルロースシート上に移し、ポリクローナル抗α−トロンビンに対して免疫ブロットした（データ示さず）。α、β、γの混合物を対照として使用した。

ピークはウエスタンブロットにおいて得たバンドの分子量に基づき、及び標準品のα、β、γミックスとの比較により特定された。

ウエスタンブロットにおいて得られた結果は、トロンビンの分解ポリペプチドはピーク３、５、及び５ａにおいて溶出することを示す。類似する分子量を有するピーク１、２、４、６、及び８は、α−トロンビンとして特定された。「特定されず」と表示されるピークの相対面積は「特定された」ピークと比較して小さかった。

機構に束縛されるものではないが、α−トロンビンはＨＰＬＣ−ＡＥＸ系においていくつかのピークに分離され、おそらく、それらの正味電荷が異なるいくつかのα−トロンビン種に相当する。

実施例１１及び１２の結果は、有利に、α、β、γ−トロンビン、α−トロンビン種、並びにＨＳＡ（ＨＳＡ分離のデータはこの実施例において示されない）間の完全な分離が毎分３．５％の緩衝液Ｂの傾きを用いた１００％緩衝液Ａ〜１００％緩衝液ＢのＡＥＸ−ＨＰＬＣ直線ｐＨ勾配を使用して得ることができることを示す。緩衝液の組成は、実施例６に記載される通りである。

実施例１３：ＨＰＬＣ−ＡＥＸにより分離されたα−トロンビン種の特定
本実施例の目的は、ＨＰＬＣ−ＡＥＸクロマトグラフィーにおいてα−トロンビンについて検出された複数のピークを特徴付けることであった。α−トロンビンの異なる種が異なる翻訳後修飾α−トロンビン形態によるものであるかを探求した。いくつかの翻訳後修飾がある。グリコシル化が１つの可能性である。グリコシル化はタンパク質の活性に影響を及ぼすため（Ｒｉｃａｒｄｏ Ｊ．Ｓｏｌａ ａｎｄ Ｋａｉ Ｇｒｉｅｂｅｎｏｗ．「Ｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ：Ａｎ Ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ Ｓｔｒａｔｅｇｙ ｔｏ Ｏｐｔｉｍｉｚｅ Ｅｆｆｉｃａｃｙ」．ＢｉｏＤｒｕｇｓ．２０１０；２４（１）：９〜２１）、以下の実施例はグリコシル化に焦点を当てる。

ヒトα−トロンビンは、その「重鎖」上に単一のＮ結合グリコシル化部位を有する。ＨＰＬＣ−ＡＥＸクロマトグラフィーにおいて分離されたα−トロンビンがＮ結合ブリコシル化部位上の異なるシアリル化レベル、すなわち、グリコシル化部位に様々な量のＮ−アセチルノイラミン酸（ＮＡＮＡ）（シアル酸）を含有するα−トロンビンに相当するという可能性を探求した。

この目的のため、トロンビン溶液は製造者の指示に従い（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｎ２８７６）、Ｎ−アセチルノイラミニダーゼ処理を受けた。Ｎ−アセチルノイラミニダーゼ（ＮＡＮａｓｅ）は、ＮＡＮＡ残基をグリカンの末端から除去することができる酵素である。これらの荷電糖残基を除去することにより、グリコシル化タンパク質の各々の全体的な電荷が同じレベルとなる。

次の工程では、ＮＡＮａｓｅ処理したトロンビン溶液を、実施例１２に記載されるようにＡＥＸ−ＨＰＬＣ系に注入した。処理しなかったトロンビン溶液は対照として注入された。

結果（図１２）は、ＮＡＮａｓｅによるトロンビンの処理が溶出プロファイルに影響を及ぼし、クロマトグラムの左側へのピークの全体的なシフト（未処理のトロンビン溶液と比較したとき）をもたらすことを示す。シアル酸残基の負電荷の損失により、所与のｐＨでのトロンビンのタンパク質正味電荷が増加し、それによりカラムからの溶出をより早くさせる。これらの結果をかんがみて、多くのピークがＮＡＮＡ含量の相違に起因すると結論付けることができる。

実施例１４：タンパク質溶液からの均質な翻訳後修飾α−トロンビンの精製
前の実施例では、α−トロンビンが異なる量のＮＡＮＡ／シアリル化レベルを含有する明確なピークに分離され得ることが分かった。

この実施例では、目的は、ＡＥＸ−ＨＰＬＣを使用して、実質的に同一のプロファイルのＮＡＮＡを含有する均質なα−トロンビン種を単離することであった。以下の条件を使用した。

使用されたカラムは、実施例２と同様、Ｓｅｐａｘ ４０３ＮＰ５−４６２５、幅４．６ｘ長さ２５０ｍｍであった。３０μＬのトロンビン溶液、１００μＬの製剤化トロンビン、及び１００μＬの緩衝液Ａ（示さず）を注入した。

樹脂からのタンパク質の溶出は、２０ｍＭピペラジン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｐ４５９０７）、２０ｍＭトリエタノールアミン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｔ９５３４）、２０ｍＭビス−トリスプロパン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｂ４６７９）、及び２０ｍＭ １−メチルピペラジン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，１３０００〜１）を含むｐＨ勾配を使用して実施された。緩衝液は、ｐＨ９．１（緩衝液Ａ）及びｐＨ３．４（緩衝液Ｂ）に調整された。

毎分３．５％の緩衝液Ｂの増加での直線ｐＨ勾配、及び表９に示される流量条件を使用した。

図１３は、２つの溶出したトロンビン試料の完全な長さのクロマトグラムを示す。図１４は、α−トロンビン種及び分解ポリペプチド溶出領域の拡大図を示す。

製剤化トロンビンのクロマトグラムに関して、ＨＳＡ、いくつかの荷電α−トロンビン種（矢印で示される）、及びアセチルトリプトファン間の完全な分離が達成され得ることが分かる。

トロンビン溶液のクロマトグラムに関して、いくつかの荷電α−トロンビン種（矢印で示される）と分解ポリペプチドとの間の完全な分離が達成され得ることが分かる。

これらの結果は、異なる均質なα−トロンビン種がトロンビン含有試料において互いから分離され得ることを示す。また、結果は、分離の質が、均質な翻訳後修飾α−トロンビンを、タンパク質溶液及び／又は不均質な翻訳後修飾α−トロンビンを含む溶液から精製することを可能にすることを示す。

実施例１５：均質な翻訳後修飾α−トロンビン及びトロンビン分解ポリペプチドの定量化
先行の実施例は、ＮＡＮＡの均質な含量を含有するα−トロンビンピークがＡＥＸ−ＨＰＬＣにより十分に分離され得ることを示す。ピークの完全な分離は、関連する分離されたピークの積分を計算することにより、トロンビン含有溶液中のα、β、γトロンビン変異型の定量化を可能にする（表１０を参照されたい）。ＡＥＸ−ＨＰＬＣに使用された条件は前の実施例に記載される通りであった。

^＊面積はソフトウェアによって計算されたピーク下積分面積を指す。
^＊＊計算されたピーク合計面積からの相対面積。

全てのα−トロンビン種及び分解ポリペプチドの定量が得られたことが示された。

本方法は、有利に、溶液中に存在する全てのタンパク質からのα−トロンビンの量を定量化するため、及び／又は好適な製剤をスクリーニングするためにも使用され得る。

また、結果は、本発明の方法を使用して、１種のβ−トロンビンが精製され、定量化され得ることを示す。

本明細書で様々な実施形態について記載したが、それらの実施形態に対する多くの修正及び変形が実施されてもよい。また、材料が特定の構成要素に関して開示されているが、他の材料が使用されてもよい。以上の説明及び以下の特許請求の範囲は、そのような修正及び変形を全て包含することが意図される。

全体又は部分的に、参照によって本明細書に組み込まれるとされるいずれの特許、刊行物、又はその他の開示物も、組み込まれる内容が既存の定義、記載、又は本開示に記載されているその他の開示物と矛盾しない範囲でのみ本明細書に組み込まれるものとする。したがって、また必要な範囲で、本明細書に明瞭に記載される開示内容は、参照により本明細書に組み込まれるあらゆる矛盾する記載に優先するものとする。

本出願のいずれの参照文献の引用又は指定も、このような文献が本発明の先行技術として利用可能であることを認めるものと解釈されるべきではない。

節の表題は、ここでは本明細書の理解を容易にするために用いられ、必ずしも限定するものと解釈されるべきではない。

〔実施の態様〕
（１） α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中の前記α−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法であって、
前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、前記α−トロンビンを、前記α−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は前記別のタンパク質のうちの前記少なくとも１つから分離する工程と、
前記α−トロンビンを定量化する工程と、を含む、一工程クロマトグラフィー方法。
（２） １つ又は２つ以上の分解ポリペプチドを更に定量化する、実施態様１に記載の方法。
（３） 前記分離したα−トロンビンが、均質な翻訳後修飾α−トロンビンであり、それにより均質な翻訳後修飾α−トロンビンを定量化する、実施態様１又は２に記載の方法。
（４） 前記均質な翻訳後修飾α−トロンビンが、均質なグリコシル化α−トロンビンであり、それにより均質なグリコシル化α−トロンビンを定量化する、実施態様３に記載の方法。
（５） 前記分離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンが、均質なシアリル化α−トロンビンであり、それにより均質なシアリル化α−トロンビンを定量化する、実施態様４に記載の方法。

（６） 前記溶液が前記別のタンパク質を含み、前記別のタンパク質がヒト血清アルブミンである、実施態様１〜５のいずれかに記載の方法。
（７） 不均質な翻訳後修飾α−トロンビンを含む溶液中の均質な翻訳後修飾α−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法であって、
前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、前記均質な翻訳後修飾α−トロンビンを、前記不均質な翻訳後修飾α−トロンビンから分離する工程と、
前記均質な翻訳後修飾α−トロンビンを定量化する工程と、を含む、一工程クロマトグラフィー方法。
（８） 前記溶液が、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つを更に含み、前記方法が、前記均質な翻訳後修飾α−トロンビンを、前記α−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は前記別のタンパク質のうちの前記少なくとも１つからも分離する工程を含む、実施態様７に記載の方法。
（９） 前記差次的溶出条件が、ｐＨ勾配を含む、実施態様１〜８のいずれかに記載の方法。
（１０） 前記ｐＨ勾配が、アミン又はアミンの混合物を含む溶離剤を使用することにより生成される、実施態様９に記載の方法。

（１１） 前記陰イオン交換体が、非多孔質粒子でできている、実施態様１〜１０のいずれかに記載の方法。
（１２） 前記クロマトグラフィー方法が、陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー方法である、実施態様１〜１１のいずれかに記載の方法。
（１３） α−トロンビンを、前記α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液から精製するための方法であって、
前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィーにより、前記α−トロンビンを、前記α−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は前記別のタンパク質のうちの前記少なくとも１つから分離する工程と、
α−トロンビン画分を回収する工程と、
それにより精製α−トロンビンを得る工程と、を含む、方法。
（１４） 前記α−トロンビンが、ヒト血液又は血漿源からのものである、実施態様１３に記載の方法。
（１５） 前記回収したα−トロンビン画分が、均質な翻訳後修飾α−トロンビンであり、それにより精製した均質な翻訳後修飾α−トロンビンを得る、実施態様１３又は１４に記載の方法。

（１６） 前記回収した均質な翻訳後修飾α−トロンビンが、均質なグリコシル化α−トロンビンであり、それにより精製した均質なグリコシル化α−トロンビンを得る、実施態様１５に記載の方法。
（１７） 前記回収した均質な翻訳後修飾α−トロンビンが、均質なシアリル化α−トロンビンであり、それにより精製した均質なシアリル化α−トロンビンを得る、実施態様１６に記載の方法。
（１８） 前記溶液が前記別のタンパク質を含み、前記別のタンパク質がヒト血清アルブミンである、実施態様１３〜１７のいずれかに記載の方法。
（１９） 前記方法が、１つのクロマトグラフィー工程からなる、実施態様１３〜１８のいずれかに記載の方法。
（２０） 均質なα−トロンビングリコフォームを、不均質なグリコシル化α−トロンビン種を含む溶液から精製するための方法であって、
前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィーにより、前記均質なα−トロンビングリコフォームを前記不均質な種から分離する工程と、
均質なα−トロンビングリコフォーム画分を回収する工程と、
それにより精製した均質なα−トロンビングリコフォームを得る工程と、を含む、方法。

（２１） 前記精製した均質なα−トロンビングリコフォームを更に定量化する、実施態様２０に記載の方法。
（２２） 前記差次的溶出条件が、ｐＨ勾配を含む、実施態様１３〜２１のいずれかに記載の方法。
（２３） 前記ｐＨ勾配が、アミン又はアミンの混合物を含む溶離剤を使用することにより生成される、実施態様２２に記載の方法。
（２４） 前記陰イオン交換体が、非多孔質粒子でできている、実施態様１３〜２３のいずれかに記載の方法。
（２５） 単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン。

（２６） 前記α−トロンビンが、ヒト血漿源からのものである、実施態様２５に記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン。
（２７） 均質にグリコシル化されたα−トロンビンである、実施態様２５又は２６に記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン。
（２８） 前記α−トロンビンが、１つの特定のグリコフォームで表される、実施態様２５〜２７のいずれかに記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン。
（２９） 均質にシアリル化されたα−トロンビンである、実施態様２８に記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン。
（３０） 実施態様１３〜２４のいずれかに記載の方法により得ることができる精製α−トロンビン。

（３１） 実施態様２５〜２９のいずれかに記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン及び／又は実施態様３０に記載の精製α−トロンビンを含む、製剤。
（３２） 止血処置、封止、移植片固定、創傷治癒、抗接着、及び／又は吻合のための、実施態様３１に記載の製剤の使用。
（３３） 第１の成分として、実施態様２０〜２４のいずれかに記載の方法により得ることができる精製した均質なα−トロンビングリコフォーム、及び／又は実施態様２５〜２９のいずれかに記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンを含む容器を含む、キット。
（３４） β−トロンビンと、α−トロンビン、γ−トロンビン、又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中の前記β−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法であって、
前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、前記β−トロンビンを、前記α−トロンビン、γ−トロンビン、及び／又は前記別のタンパク質のうちの前記少なくとも１つから分離する工程と、
前記β−トロンビンを定量化する工程と、を含む、一工程クロマトグラフィー方法。
（３５） 前記クロマトグラフィー方法が、陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー方法である、実施態様３４に記載の方法。

（３６） β−トロンビンを、前記β−トロンビンと、α−トロンビン、γ−トロンビン、又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液から精製するための方法であって、
前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィーにより、前記β−トロンビンを、前記α−トロンビン、γ−トロンビン、及び／又は別のタンパク質のうちの前記少なくとも１つから分離する工程と、
β−トロンビン画分を回収する工程と、
それにより精製β−トロンビンを得る工程と、を含む、方法。
（３７） 前記差次的溶出条件が、ｐＨ勾配を含む、実施態様３４〜３６のいずれかに記載の方法。
（３８） 前記ｐＨ勾配が、アミン又はアミンの混合物を含む溶離剤を使用することにより生成される、実施態様３７に記載の方法。
（３９） 前記陰イオン交換体が、非多孔質粒子でできている、実施態様３４〜３８のいずれかに記載の方法。
（４０） 実施態様３６〜３９のいずれかに記載の方法により得ることができる精製β−トロンビン。

（４１） 単離したβ−トロンビン。
（４２） 実施態様４０に記載の精製β−トロンビン及び／又は実施態様４１に記載の単離したβ−トロンビンを含む、製剤。
（４３） 止血処置、封止、移植片固定、創傷治癒、抗接着、及び／又は吻合のための、実施態様４２に記載の製剤の使用。
（４４） 第１の成分として、実施態様４０に記載の精製β−トロンビン及び／又は実施態様４１に記載の単離したβ−トロンビンを含む容器を含む、キット。
（４５） 水性液体トロンビン製剤中のトロンビン活性の安定化における使用可能性について化合物をスクリーニングするための方法であって、所与の時間の間、試験化合物を、α−トロンビンを含む溶液と共にインキュベートする工程と、前記インキュベーション後、実施態様１、２、６、又は９〜１２のいずれかに記載のα−トロンビン及び／又は分解ポリペプチドを定量化する工程と、トロンビン活性の安定化における使用可能性を有する１つ又は２つ以上の好適な試験化合物を特定する工程と、を含み、好適な化合物が、初期のα−トロンビン含量と比較して、約７０％〜約１００％のレベルで前記α−トロンビン含量を維持し、かつ／又は前記試験化合物の不在下の分解ポリペプチドのレベルと比較したとき、約０％〜約３０％まで分解ポリペプチドのレベルを低減する化合物である、方法。

Claims (45)

1. α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中の前記α−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法であって、
   前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
   差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、前記α−トロンビンを、前記α−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は前記別のタンパク質のうちの前記少なくとも１つから分離する工程と、
   前記α−トロンビンを定量化する工程と、を含む、一工程クロマトグラフィー方法。
2. １つ又は２つ以上の分解ポリペプチドを更に定量化する、請求項１に記載の方法。
3. 前記分離したα−トロンビンが、均質な翻訳後修飾α−トロンビンであり、それにより均質な翻訳後修飾α−トロンビンを定量化する、請求項１又は２に記載の方法。
4. 前記均質な翻訳後修飾α−トロンビンが、均質なグリコシル化α−トロンビンであり、それにより均質なグリコシル化α−トロンビンを定量化する、請求項３に記載の方法。
5. 前記分離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンが、均質なシアリル化α−トロンビンであり、それにより均質なシアリル化α−トロンビンを定量化する、請求項４に記載の方法。
6. 前記溶液が前記別のタンパク質を含み、前記別のタンパク質がヒト血清アルブミンである、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
7. 不均質な翻訳後修飾α−トロンビンを含む溶液中の均質な翻訳後修飾α−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法であって、
   前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
   差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、前記均質な翻訳後修飾α−トロンビンを、前記不均質な翻訳後修飾α−トロンビンから分離する工程と、
   前記均質な翻訳後修飾α−トロンビンを定量化する工程と、を含む、一工程クロマトグラフィー方法。
8. 前記溶液が、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つを更に含み、前記方法が、前記均質な翻訳後修飾α−トロンビンを、前記α−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は前記別のタンパク質のうちの前記少なくとも１つからも分離する工程を含む、請求項７に記載の方法。
9. 前記差次的溶出条件が、ｐＨ勾配を含む、請求項１〜８のいずれか一項に記載の方法。
10. 前記ｐＨ勾配が、アミン又はアミンの混合物を含む溶離剤を使用することにより生成される、請求項９に記載の方法。
11. 前記陰イオン交換体が、非多孔質粒子でできている、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の方法。
12. 前記クロマトグラフィー方法が、陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー方法である、請求項１〜１１のいずれか一項に記載の方法。
13. α−トロンビンを、前記α−トロンビンと、α−トロンビン分解ポリペプチド又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液から精製するための方法であって、
    前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
    差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィーにより、前記α−トロンビンを、前記α−トロンビン分解ポリペプチド及び／又は前記別のタンパク質のうちの前記少なくとも１つから分離する工程と、
    α−トロンビン画分を回収する工程と、
    それにより精製α−トロンビンを得る工程と、を含む、方法。
14. 前記α−トロンビンが、ヒト血液又は血漿源からのものである、請求項１３に記載の方法。
15. 前記回収したα−トロンビン画分が、均質な翻訳後修飾α−トロンビンであり、それにより精製した均質な翻訳後修飾α−トロンビンを得る、請求項１３又は１４に記載の方法。
16. 前記回収した均質な翻訳後修飾α−トロンビンが、均質なグリコシル化α−トロンビンであり、それにより精製した均質なグリコシル化α−トロンビンを得る、請求項１５に記載の方法。
17. 前記回収した均質な翻訳後修飾α−トロンビンが、均質なシアリル化α−トロンビンであり、それにより精製した均質なシアリル化α−トロンビンを得る、請求項１６に記載の方法。
18. 前記溶液が前記別のタンパク質を含み、前記別のタンパク質がヒト血清アルブミンである、請求項１３〜１７のいずれか一項に記載の方法。
19. 前記方法が、１つのクロマトグラフィー工程からなる、請求項１３〜１８のいずれか一項に記載の方法。
20. 均質なα−トロンビングリコフォームを、不均質なグリコシル化α−トロンビン種を含む溶液から精製するための方法であって、
    前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
    差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィーにより、前記均質なα−トロンビングリコフォームを前記不均質な種から分離する工程と、
    均質なα−トロンビングリコフォーム画分を回収する工程と、
    それにより精製した均質なα−トロンビングリコフォームを得る工程と、を含む、方法。
21. 前記精製した均質なα−トロンビングリコフォームを更に定量化する、請求項２０に記載の方法。
22. 前記差次的溶出条件が、ｐＨ勾配を含む、請求項１３〜２１のいずれか一項に記載の方法。
23. 前記ｐＨ勾配が、アミン又はアミンの混合物を含む溶離剤を使用することにより生成される、請求項２２に記載の方法。
24. 前記陰イオン交換体が、非多孔質粒子でできている、請求項１３〜２３のいずれか一項に記載の方法。
25. 単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン。
26. 前記α−トロンビンが、ヒト血漿源からのものである、請求項２５に記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン。
27. 均質にグリコシル化されたα−トロンビンである、請求項２５又は２６に記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン。
28. 前記α−トロンビンが、１つの特定のグリコフォームで表される、請求項２５〜２７のいずれか一項に記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン。
29. 均質にシアリル化されたα−トロンビンである、請求項２８に記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン。
30. 請求項１３〜２４のいずれか一項に記載の方法により得ることができる精製α−トロンビン。
31. 請求項２５〜２９のいずれか一項に記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビン及び／又は請求項３０に記載の精製α−トロンビンを含む、製剤。
32. 止血処置、封止、移植片固定、創傷治癒、抗接着、及び／又は吻合のための、請求項３１に記載の製剤の使用。
33. 第１の成分として、請求項２０〜２４のいずれか一項に記載の方法により得ることができる精製した均質なα−トロンビングリコフォーム、及び／又は請求項２５〜２９のいずれか一項に記載の単離した均質な翻訳後修飾α−トロンビンを含む容器を含む、キット。
34. β−トロンビンと、α−トロンビン、γ−トロンビン、又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液中の前記β−トロンビンを定量化するための一工程クロマトグラフィー方法であって、
    前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
    差次的溶出条件により、陰イオン交換クロマトグラフィーで、前記β−トロンビンを、前記α−トロンビン、γ−トロンビン、及び／又は前記別のタンパク質のうちの前記少なくとも１つから分離する工程と、
    前記β−トロンビンを定量化する工程と、を含む、一工程クロマトグラフィー方法。
35. 前記クロマトグラフィー方法が、陰イオン交換高性能液体クロマトグラフィー方法である、請求項３４に記載の方法。
36. β−トロンビンを、前記β−トロンビンと、α−トロンビン、γ−トロンビン、又は別のタンパク質のうちの少なくとも１つとを含む溶液から精製するための方法であって、
    前記溶液を陰イオン交換体と接触させる工程と、
    差次的溶出条件を使用して、陰イオン交換クロマトグラフィーにより、前記β−トロンビンを、前記α−トロンビン、γ−トロンビン、及び／又は別のタンパク質のうちの前記少なくとも１つから分離する工程と、
    β−トロンビン画分を回収する工程と、
    それにより精製β−トロンビンを得る工程と、を含む、方法。
37. 前記差次的溶出条件が、ｐＨ勾配を含む、請求項３４〜３６のいずれか一項に記載の方法。
38. 前記ｐＨ勾配が、アミン又はアミンの混合物を含む溶離剤を使用することにより生成される、請求項３７に記載の方法。
39. 前記陰イオン交換体が、非多孔質粒子でできている、請求項３４〜３８のいずれか一項に記載の方法。
40. 請求項３６〜３９のいずれか一項に記載の方法により得ることができる精製β−トロンビン。
41. 単離したβ−トロンビン。
42. 請求項４０に記載の精製β−トロンビン及び／又は請求項４１に記載の単離したβ−トロンビンを含む、製剤。
43. 止血処置、封止、移植片固定、創傷治癒、抗接着、及び／又は吻合のための、請求項４２に記載の製剤の使用。
44. 第１の成分として、請求項４０に記載の精製β−トロンビン及び／又は請求項４１に記載の単離したβ−トロンビンを含む容器を含む、キット。
45. 水性液体トロンビン製剤中のトロンビン活性の安定化における使用可能性について化合物をスクリーニングするための方法であって、所与の時間の間、試験化合物を、α−トロンビンを含む溶液と共にインキュベートする工程と、前記インキュベーション後、請求項１、２、６、又は９〜１２のいずれか一項に記載のα−トロンビン及び／又は分解ポリペプチドを定量化する工程と、トロンビン活性の安定化における使用可能性を有する１つ又は２つ以上の好適な試験化合物を特定する工程と、を含み、好適な化合物が、初期のα−トロンビン含量と比較して、約７０％〜約１００％のレベルで前記α−トロンビン含量を維持し、かつ／又は前記試験化合物の不在下の分解ポリペプチドのレベルと比較したとき、約０％〜約３０％まで分解ポリペプチドのレベルを低減する化合物である、方法。

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