JP2018500450A - 明確に定義された分解性ポリ(プロピレンフマレート)ポリマー及びその合成のための拡張可能な方法 - Google Patents
明確に定義された分解性ポリ(プロピレンフマレート)ポリマー及びその合成のための拡張可能な方法 Download PDFInfo
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Abstract
Description
(0001) 本出願は、2014年11月18日に出願された米国仮特許出願第62/081219号、名称「Products and Methods for Synthesis and Functionalization of Resorbable Materials, and use thereof as a Medical Device」、及び2015年3月27日に出願された米国仮特許出願第62/139,196号、名称「Well−Defined Degradable Poly(Propylene Fumarate) Polymers and Scalable Methods for the Synthesis Thereof」の利益を主張し、これらは両方とも、参照により全体が本明細書に組み込まれる。
(0002) 本出願の主題は、The University of Akron及びThe Ohio State Universityの間の共同研究契約に従って開発された。
(00107) 本明細書において別段に記載されない限り、使用された材料は、以下の表5.1に記載されるものである。
ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)の代表的合成
(00112) 500mLの丸底フラスコ内で、無水マレイン酸(MAn)70.06g(714mmol)及びプロピレンオキシド(PO)50.0mL(714mmol)を、100mLのトルエン中に、窒素雰囲気下で室温で溶解した。持続的な磁気撹拌により、モノマーの全てがトルエン中に溶解した後、272.34mg(2.38mmol、MAn/Mg(OEt)2のモル比=300:1)のMg(OEt)2を混合物に添加し、還流冷却器を装備したシリコーン油浴内にフラスコを移動し、80℃で重合を開始させた。重合を進行させ、決められた時点(3時間、6時間、18時間、24時間及び48時間)でアリコートを採取した。MAn/Mg(OEt)2=200:1、100:1のモル比を取り入れた同様の試験もまた行った。指定された重合時間の後、系を窒素下で周囲温度まで冷却し、減圧条件に供して揮発性材料を除去した。残渣を、無機Mg(OEt)2化合物を除去するために微量の塩酸(HCl)を含有する水で洗浄したクロロホルム(CHCl3)で希釈した。回転蒸発後に有機層をヘキサンに注ぎ込み、沈殿したポリマー混合物を、最小限の量のCHCl3中に再び溶解した。次いで、残渣を回転蒸発により濃縮した。真空下で一晩周囲温度で生成物を乾燥させ、全ての揮発性物質を除去した後、ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)が得られ、次いで、1H NMR特性決定後の各時点で、分子質量及び質量分布特性をサイズ排除クロマトグラフィー(SEC)により特性決定した。1H NMR(300MHz,クロロホルム−d δ ppm 1.13〜1.41(d,3H,OCH2CH(CH3)O)、4.04〜4.36(m,2H,OCH2CH(CH3)O)、5.23〜5.30(m,1H,OCH2CH(CH3)O)、6.24〜6.42(m,2H,CH=CH(シス配置))図1を参照されたい。
ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)の異性化のための一般手順
(00113) 水還流冷却器を装備した丸底フラスコ内でポリマーをCHCl3中に溶解した後、ジエチルアミン(0.15当量)をポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)に添加し、窒素雰囲気下、55℃で24時間の異性化を開始させた。次いで、混合物を、回転蒸発により濃縮し、リン酸緩衝生理食塩水(0.5M、pH=6)で洗浄して、ジエチルアミンを除去した。次いで、有機層をヘキサン中で数回沈殿させ、不純物を除去した。沈殿物を回収し、真空下、室温で一晩保持し、全ての揮発性物質を除去した。次いで、特性決定のために1HNMRを使用した。1H NMR(300MHz,クロロホルム−d)δ ppm 1.11〜1.43(d,3H,OCH2CH(CH3)O)、4.09〜4.39(m,2H,OCH2CH(CH3)O)、5.21〜5.35(m,1H,OCH2CH(CH3)O)、6.83〜6.91(m,2H,CH=CH(トランス配置))。
1.ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)の合成
(00114) 2Lの丸底フラスコ内で、無水マレイン酸(2856mmol)及びプロピレンオキシド(2856mmol)を、窒素下、周囲温度でトルエン(400mL)中に溶解した。磁気撹拌で全てのモノマーをトルエン中に溶解した後、Mg(OEt)2(119mmol;MAn:Mg(OEt)2のモル比=24:1)を混合物に添加し、水還流冷却器を装備したシリコーン油浴内にフラスコを移動して、80℃で40時間の重合を開始させた。指定された重合時間の後、系を窒素下で室温まで冷却し、蒸発させて全ての揮発性物質を除去し、次いで、無機化合物を除去するために微量のHClを含有する水で洗浄されたCHCl3で希釈した。回転蒸発後、有機層をヘキサンに注ぎ込み、沈殿したポリマー混合物を最小限の量のCHCl3中に再び溶解し、次いでこれを回転蒸発により濃縮した。真空下で一晩室温で生成物を乾燥させ、全ての揮発性物質を除去した後、ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)(PPM)が得られ、次いで、1H NMR特性決定及び13C NMR特性決定後、分子質量及び質量分布特性をSECにより特性決定した(SEC:Mn 1200Da;1H NMRは図1を参照されたい;13C NMRは図2中に示されている)。13C NMR(300MHz,クロロホルム−d)δ(ppm):164.64、164.63、164.35;130.42、129.92、129.78、129.25;69.15;66.37;16.19。
(00115) 水還流冷却器を装備した丸底フラスコ内でポリマーをCHCl3(1mol/L)中に溶解した後、ジエチルアミン(0.15当量)をポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)に添加し、窒素雰囲気下、55℃で20時間の異性化を開始させた。次いで、混合物を、回転蒸発により濃縮し、リン酸緩衝生理食塩水(0.5M、pH=6)で洗浄して、ジエチルアミンを除去した。有機層を分離後に回収し、有機層に硫酸ナトリウムを添加して水を除去した。次いで、濃縮された有機層をヘキサン中で数回沈殿させ、不純物を除去した。沈殿物を回収し、真空中室温で一晩保持し、全ての揮発性物質を除去し、次いで、1H−NMR特性決定後に、分子質量及び質量分布特性を特性決定した。表1(PPF試料番号2、Mn 1270Da、Dm 1.5)及び図1を参照されたい。
(Mn=0.7kDa、1.27kDa、1.86kDa、2.45kDa、及び3.16kDa)
(00116) 以下の表6に記載の重合パラメータを使用して、実施例2において上述の大量バッチPPF手順を使用して0.7kDa、1.27kDa、1.86kDa、2.45kDa、及び3.16kDaのMnを有するPPFポリマーを合成した。
(00120) 別段に指定されない限り、実施例3において合成されたPPF試料の固有粘度は、Ubbelohde粘度計を使用して、THF中で35℃で測定した。各PPF試料(Mn:0.7kDa、1.27kDa、1.86kDa、2.45kDa、及び3.16kDa)を秤量し、メスフラスコ(10mL)内でTHF中に希釈した。新たに蒸留したTHFを、0.45μmフィルタでメスフラスコに10mLの標線まで添加し、封止した。毛細管粘度計を純THFで清浄化した。恒温水浴を、35℃の温度を維持するように加熱した。毛細管粘度計を、恒温浴内で少なくとも15分間事前に平衡化し、熱平衡を確立した。注射器を使用して、毛細管粘度計の上部ボールの1/3超まで液体を充填し、次いで液体を下方に流動させた。ストップウォッチを使用して、液体が毛細管粘度計の第1の線を通過する時間を記録し、液体が毛細管粘度計の第2の線を通過したら、記録を終了した。この期間の時間を記録した。流動時間は、少なくとも5回記録した。毛細管粘度計を、PPF及びTHFで調製された5.0mLの溶液でフィルタにより再充填した。毛細管粘度計を、恒温浴内に戻した。上述のように、少なくとも3回流動時間を測定し、記録した。次いで、5.0mL、3.0mL及びさらに1.8mL又は2.0mL(結果に依存する)の純THF溶媒を、それぞれフィルタを使用して毛細管粘度計内に添加し、対応する流動時間をそれぞれ少なくとも3回測定及び記録した。各PPFポリマーに対する計算及び実験の詳細は、実施例5〜9に記される。
実験
(00121) 材料及び機器。恒温浴、Ubbelohde毛細管粘度計(Cannon State College、PA、16804、0016、USA、50 L79)、ストップウォッチ(精度:0.01秒)、ポリ(プロピレンフマレート)(PPF)試料、純THF溶媒、化学天秤、メスフラスコ(10mL)、フィルタ(0.45μm)。
(00124) 流動時間。実験において、異なる濃度(c0、c1、c2、c3、及びc4)を有する溶液の流動時間が得られた。流動時間の平均値及び誤差を計算した。700DaのPPFの代表的データを、表7に示す。
Hugginsの式:
(式5)
ηsp/c=[η]+k’[η]2c (5)
Kraemerの式:
(式6)
ln(ηr)/c=[η]+k”[η]2c (6)
ηsp/c及びln(ηr)/cは共に、図10に示されるように、origin 8.0によりcに対してプロットされた(以下の表9も参照されたい)。図10のηsp/c対cのフィッティングされた線に関して、origin 8.0により直線フィッティングが得られた。
[η]=0.00253L/g
σ[η]=0.000134L/g
[η]l=(0.00253±0.000134)L/g
同様に、固有粘度と濃度との間の関係は、lnηr/c=0.00322+0.0000025cであり、式6と比較すると、以下が得られる。
[η]2=(0.00322±0.00012)L/g
[η]の平均が、最終結果として処理される。
実験
(00129) この実施例において使用された材料及び機器、ならびに調製は、上記実施例4及び5に記載のものと同じであった。
(00131) 流動時間。実験において、異なる濃度(c0、c1、c2、c3、及びc4)を有する溶液の流動時間が得られた。流動時間の平均値及び誤差を計算した。1270DaのPPFの代表的データを、表10に示す。
Hugginsの式:
(式5)
ηsp/c=[η]+k’[η]2c (5)
Kraemerの式:
(式6)
ln(ηr)/c=[η]+k”[η]2c (6)
ηsp/c及びln(ηr)/cは共に、図11に示されるように、origin 8.0によりcに対してプロットされた(以下の表12も参照されたい)。図11のηsp/c対cのフィッティングされた線に関して、origin 8.0により直線フィッティングが得られた。
[η]=0.00498L/g
σ[η]=0.00000159L/g
[η]l=(0.00498±0.00000159)L/g
[η]2=(0.00482±0.0000117)L/g
実験
(00137) この実施例において使用された材料及び機器、ならびに調製は、上記実施例4に記載のものと同じであった。
(00139) 流動時間。実験において、異なる濃度(c0、c1、c2、c3、及びc4)を有する溶液の流動時間が得られた。流動時間の平均値及び誤差を計算した。1860DaのPPFの代表的データを、表13に示す。
Hugginsの式:
(式5)
ηsp/c=[η]+k’[η]2c (5)
Kraemerの式:
(式6)
ln(ηr)/c=[η]+k”[η]2c (6)
ηsp/c及びln(ηr)/cは共に、図12に示されるように、origin 8.0によりcに対してプロットされた(以下の表15も参照されたい)。図12のηsp/c対cのフィッティングされた線に関して、origin 8.0により直線フィッティングが得られた。
[η]=0.00487L/g [η]=0.00487L/g
σ[η]=0.00024L/g σ[η]=0.00024L/g
[η]l=(0.00487±0.00024)L/g [η]l=(0.00487±0.00024)L/g
[η]2=(0.00571±0.000109)L/g [η]2=(0.00571±0.000109)L/g
実験
(00147) 流動時間。実験において、異なる濃度(c0、c1、c2、c3、c4)を有する溶液の流動時間が得られた。流動時間の平均値及び誤差を計算した。2450DaのPPFの代表的データを、表16に示す。
Hugginsの式:
(式5)
ηsp/c=[η]+k’[η]2c (5)
Kraemerの式:
(式6)
ln(ηr)/c=[η]+k”[η]2c (6)
ηsp/c及びln(ηr)/cは共に、図13に示されるように、origin 8.0によりcに対してプロットされた(以下の表18も参照されたい)。図13のηsp/c対cのフィッティングされた線に関して、origin 8.0により直線フィッティングが得られた。
[η]=0.00611L/g
σ[η]=0.0000282L/g
[η]l=(0.00611±0.0000282)L/g
[η]2=(0.00633±0.000072)L/g
実験
(00153) この実施例において使用された材料及び機器、ならびに調製は、上記実施例4に記載のものと同じであった。
(00155) 流動時間。実験において、異なる濃度(c0、c1、c2、c3、c4)を有する溶液の流動時間が得られた。流動時間の平均値及び誤差を計算した。3160DaのPPFの代表的データを、表19に示す。
Hugginsの式:
(式5)
ηsp/c=[η]+k’[η]2c (5)
Kraemerの式:
(式6)
ln(ηr)/c=[η]+k”[η]2c (6)
ηsp/c及びln(ηr)/cは共に、図14に示されるように、origin 8.0によりcに対してプロットされた(以下の表21も参照されたい)。図14のηsp/c対cのフィッティングされた線に関して、origin 8.0により直線フィッティングが得られた。
[η]=0.00722L/g
σ[η]=0.00041L/g
[η]l=(0.00722±0.0004)L/g
[η]2=(0.00837±0.000136)L/g
(00161) 1496Daの分子質量(Mn)を有するポリ(プロピレンフマレート)(PPF)を、印刷試験に使用した。ポリマーの粘度を低減するために、ジエチルフマレート(DEF)(Sigma−Aldrich、St. Louis、MO)を、PPFに1:3の質量比で添加した。熱と共に、DEFを溶媒として使用して、光開始剤及びオキシベンゾンを溶解してから、3:1のPPF対DEFの質量比の樹脂に添加した。ドラフト内でこの混合物を撹拌し、200°Fで加熱した。次いで、光開始剤Irgacure 819及びIrgacure 784(BASF、Ludwigshafen、Germany)、ならびにオキシベンゾン(Sigma−Aldrich)を添加することにより、3:1のPPF:DEF混合物から光架橋に好適な樹脂を形成し、追加のDEFを添加して、1:1のPPF:DEFの質量比を達成した。最終樹脂配合物は、1:1のPPF対DEFの質量比を有し、PPF及びDEFの重量当たり、3%のIrgacure 819、0.4%のIrgacure 784、及び0.7%のオキシベンゾンを含有していた。
(00162) EnvisionTEC Perfactory(商標)3 Mini Multi Lens(Dearborn、MI)を使用して、PPF樹脂に対する硬化試験を行った。硬化試験は、3Dスキャフォールドを成功裏に印刷するPPFの可能性を測定するために行った。30秒、60秒、及び90秒の露光時間で重複試験(n=4)を行った。露光時間は、3Dスキャフォールドの1層を印刷するのに要する時間に関連する。硬化試験を開始する前に、材料厚ゲージ(MTG)(Checkline Electromatic、Cedarhurst、NY)を使用して、2つの顕微鏡スライドの厚さを測定した。350mW dm−2の標的放射照度の正方形のUVマスクを生成するように、Perfactory(商標)3を較正した。較正中、1つのガラススライドの厚さを考慮した。均質性を確保するために、以前に言及した樹脂をドラフト内で200°F近くまで加熱及び撹拌した。硬化試験を開始するために、ピペットを使用して、較正に使用された顕微鏡スライドの中心に5〜7滴の樹脂を滴下した。適切な試験時間を反映させるために、Perfactory(商標)3上で露光時間を調節した。UV光の正方形マスクの上のPerfactory(商標)3の較正プレート上にスライドを設置し、硬化試験を開始した。硬化試験の完了後、スライドをプリンタから外した。樹脂を含有するスライドの上部を拭くことができるように、スライドを裏返した。これは、スライドからいかなる過剰の液体樹脂も除去されること、また硬化した正方形の樹脂のみが残留することを確実とするために行った。別のスライド、すなわち試験前に測定されたスライドを、硬化した材料を含有するスライドの上に設置した。MTGを使用して、このスライドのスタックを測定した。間に硬化した材料を有する2つのスライドの厚さを、間に材料を有さずに互いにスタックされた2つのスライドの厚さと比較した。これらの2つの測定値の間の差を取って、硬化した材料の厚さを得た。このプロセスを、各硬化試験に対して繰り返した(n=4)。
(00163) 3Dスキャフォールドの印刷を開始するために、350mW dm−2の公称放射照度のUVマスクを生成するようにEnvisionTEC Perfactory(商標)3 3Dプリンタを較正した。スキャフォールド構成を選択し、SolidWorksソフトウェア(Dassault Systemes SolidWorks Corp.、Waltham、MA)を使用して以前に作成された設計ファイルを得た。選択されたスキャフォールド構成は、350μmの正方形の細孔及び底部に支持部を有する螺旋スリーブ設計であった(図15を参照されたい)。50mLの樹脂を、Perfactory(商標)3 3Dプリンタのベースプレートに注ぎ込んだ。ビルドファイルは、Perfactory(商標)Software Suite 2.6(EnvisionTEC、Dearborn、MI)を使用して、コンピュータからプリンタに送信された。Perfactory(商標)3Dプリンタは、75mm焦点距離レンズを使用して操作した。これにより、XY平面での42μmのネイティブ解像度が可能であった。XY平面における21μmのネイティブ解像度を可能にする解像度強化モジュール(ERM)は、この試験には使用しなかった。印刷ジョブは、4時間11分で完了した。スキャフォールドが終了したら、付随したスキャフォールドを含有するビルドプレートをプリンタから取り外した。スキャフォールドを、まず70%アセトンで洗浄して、スキャフォールドの細孔内からいかなる未硬化樹脂も除去した。次いで、スキャフォールドを70%のEtOHで軽く濯ぎ、続いてdH2Oで濯いだ。圧縮空気を使用して、スキャフォールドを優しく乾燥させた。次いで、剃刀の刃を使用してスキャフォールドをビルドプレートから取り外した(プラスチックカード又はスクレーパもまた使用され得る)。スキャフォールドを顕微鏡スライド上に立てて設置し、さらに8時間UVチャンバ内に入れて、さらなる架橋を完了させた。
(00164) 開環法により合成された吸収性ポリ(プロピレンフマレート)(PPF)が3Dプリントされ得ることを保証するために、我々は、EnvisionTEC(Dearborn、MI)Perfactory P3光架橋ベースデバイスにおける3D印刷試験に、1496Daの分子質量を有する材料を試験した。ポリマーの粘度を低減するために、ジエチルフマレート(DEF)(Sigma−Aldrich、St. Louis、MO)を、PPFに1:3の質量比で添加した。次いで、ドラフト内でこの混合物を撹拌し、200°Fで加熱した。次いで、光開始剤Irgacure 819及びIrgacure 784(BASF、Ludwigshafen、Germany)、ならびにオキシベンゾン(Sigma−Aldrich)を添加することにより、1:3のDEF:PPF混合物から光架橋に好適な樹脂を形成し、追加のDEFを添加して、最終樹脂組成を1:1のDEF:PPF、3%のIrgacure 819、0.4%のIrgacure 784、及び0.7%のオキシベンゾンとした。熱と共に、DEFを溶媒として使用して、光開始剤及びオキシベンゾンを溶解してから、3:1のPPF:DEFの樹脂に添加した。
(00166) Olympus Stereoscope(Center Valley、PA)を使用して、スキャフォールドを画像化し、スキャフォールドの特徴及び個々に湾曲した層をさらに詳細に描写した(図15を参照されたい)。
(00167) 薄いフィルムを形成するために使用する前に、均質性を確保するために上記実施例3の樹脂を加熱した。薄いフィルムを形成するために、ホールピペットを使用して、スライドガラスの中央に、縦方向に5〜7滴の樹脂を滴下した。第2のスライドガラスをゆっくりと第1のスライドの上に置き、樹脂が2つのスライドの間に均一に広がる間気泡が形成されないことを確実にした。スライドを、UVチャンバ(3D Systems、Rock Hill、SC)内に30分間設置した。この時点の後、スライドを取り外し、剃刀の刃を使用して、部分的に架橋したPPF樹脂の薄いフィルムをスライドから剥がした。フィルムを、各縁に沿って1cmとなるように正方形に切り出した。切り出した正方形を2つのスライドの間に挟んで湾曲を防止し、UVチャンバ内に7.5時間戻して、さらなる架橋を完了させた。
(00168) 直接接触アッセイを開始する前に、薄いフィルムを洗浄及び滅菌した。洗浄プロトコルは、生成中に導入された表面残屑を除去するための、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(DPBS)(Life Technologies、Carlsbad、CA)中で15分の洗浄から開始した。これに続いて、70%のアセトン中で30分、20分、及び10分の3回の別個の洗浄を行った。アセトン洗浄の合間に、フィルムをDPBS中に含浸し、フィルムから過剰のアセトンを除去し、完全に乾燥するのを防止した。このプロトコルは、それぞれDPBS中で15分のさらに2回の洗浄を完了することにより終了する。薄いフィルムに洗浄プロトコルが2回行われるように、この全プロセスを繰り返した。洗浄後、37℃、5%CO2のインキュベータ内で、薄いフィルムをDPBS中に72時間含浸させた。
(00169) マウス線維芽細胞、L929細胞株(Sigma−Aldrich、St. Louis、MO)を、直接接触アッセイの標準を概説したISO標準10993−5に従うin vitro細胞毒性分析に使用した。製造者により概説されるように、10%ウマ血清(Sigma−Aldrich、St. Louis、MO)及び1%ペニシリン−ストレプトマイシン(Life Technologies、Carlsbad、CA)を含有する最小必須培地(MEM)(Sigma−Aldrich、St. Louis、MO)を用いて、L929細胞を培養した。24ウェルポリスチレン細胞培養プレート(Corning Life Sciences、Corning、NY)にウェル当たり75,000細胞で細胞を播種した。直接接触アッセイを開始する前に、細胞をカバースリップ上で約80%の密集度まで成長させた。カバースリップは、染色後に除去し、蛍光顕微鏡下での検査のために顕微鏡スライドに載せることができるように使用した。
(00170) 上記実施例17の細胞培養物を使用して、ISO標準10993−5に従い、直接接触試験を行った。24時間、48時間及び72時間で細胞毒性を評価した。試験を開始するために、細胞を含有するウェルから培地を吸引した。次いで、PPFの薄いフィルムを、各ウェル内の細胞単層の上に置いた。次いで、ウェルを被覆するのに十分であるが、薄いフィルムが細胞単層の上に浮上しないようにしながら、約150μLの培地を再び各ウェルに添加した。次いで、細胞及び薄いフィルムを、37℃及び5% CO2で、24時間、48時間又は72時間インキュベートした。その後、蛍光顕微鏡法により材料の細胞毒性を評価し、後述のように分析した(実施例19及び20を参照されたい)。蛍光下において死滅細胞が赤色で示され、生存細胞が緑色で示される生存/死滅溶液により、細胞をインキュベートした。画像化を行い、緑色=生存細胞及び赤色=死滅細胞である画像において結果を定性的に評価した。これらの評価から、試験したPPFポリマーが毒性ではないことが決定された。
(00171) Olympus Stereoscope(Center Valley、PA)を使用して、スキャフォールドを画像化し、スキャフォールドの特徴及び個々に硬化した層をさらに詳細に描写した(図15を参照されたい)。上に記載されたように、生存/死滅染色を行って、PPFの細胞毒性を評価した。細胞毒性キット(Life Technologies、Carlsbad、CA)を使用して、2μΜのカルセインAM及び4μΜのエチジウムホモ二量体−1(EthD−1)を含む溶液をDPBS中で調製した。薄いフィルム、及び対照として機能するものを含有するウェルを、150μLの生存/死滅溶液により、室温で30分間、暗所条件下でインキュベートした。前述のように培養され、次いで生存/死滅溶液中でのインキュベーションの前に70%メタノールで30分間インキュベートされた細胞を、陽性細胞毒性対照として使用した。陰性非細胞毒性対照として、生存/死滅染色の前に細胞をポリスチレン培養プレート上で標準条件で培養し、他の処理は行わなかった。生存/死滅溶液によるインキュベーション後、以下の実施例20に記載のように、12.8MPデジタルカメラ(Olympus、Center Valley、PA)を装備したOlympus CKX41蛍光顕微鏡を用いて画像を撮影した。
(00172) カバースリップ上で生存/死滅染色を行って、実施例17の細胞培養物に対するPPFの細胞毒性を評価した。細胞毒性キット(Life Technologies、Carlsbad、CA)を使用して、2μΜのカルセインAM及び4μΜのエチジウムホモ二量体−1(EthD−1)を含む溶液をDPBS中で調製した。付着した細胞を有するカバースリップを、生存/死滅溶液により、室温で30分間、暗所条件下でインキュベートした。70%メタノール中で30分間インキュベートされた細胞を、陽性細胞毒性対照として使用した。陰性非細胞毒性対照として、細胞をHDPE培養プレート上で標準条件で培養した。生存/死滅溶液でのインキュベーション後、カバースリップをウェルプレートから取り外し、画像化のために顕微鏡スライド上に載せた。画像は、落射蛍光キット(Nikon、千代田、東京)及び5.0MP CCDデジタルカメラ(Amscope、Irvine、CA)を装備した倒立Diaphot−TMD顕微鏡(Nikon、千代田、東京、東京)で撮影した。生存細胞が緑色の蛍光を発し、死滅細胞が赤色の蛍光を発する画像から、結果を定性的に評価した。これらの評価から、試験したPPFポリマーが毒性ではないことが決定された。
(00173) 本発明の一実施形態によるPPFポリマーを使用して、上記実施例12に記載の手順を用いて多孔質3Dスキャフォールドを印刷した。PPFポリマーは、1260ダルトンの数平均分子量Mn及び1.5のDmを有し、上記実施例1〜3に記載のように合成された。図17A〜Eに示される多孔質3Dスキャフォールドを生成するために使用された樹脂は、PPFポリマー対DEFの1:1の質量比を有する溶液を使用して作製され、光開始剤としての30.0mg/g(DEF+PPF)のIrgacure−819(BAPO)(BASF、Germany)、光開始剤としての4.0mg/g(DEF+PPF)のI−784(BASF、Germany)、及び光吸収色素としての7.0mg/g(DEF+PPF)の2−ヒドロキシ−4−メトキシベンゾフェノン(オキシベンゾン又はHMBとしても知られる)(Sigma−Aldrich Co.、St. Louis、MO)を含有していた。3D印刷されたスキャフォールドは、Schoenジャイロイド多孔質構造を有する、略円筒形状であった(図17A〜Dを参照されたい)。それらは、88.2%の空隙率であり、約200μmのストラット直径及び約700μmの細孔直径を有する。図17Eを参照されたい。3D印刷されたスキャフォールドは、約5mmの高さ、及び約10mmの直径を有しており、硬化時の収縮は、X−Y=17.16±0.26%;Z=13.96±0.32%(収縮後の実際のサイズ:h=4.30±0.02;φ=8.28±0.03)であった。5つの3D印刷されたスキャフォールドを秤量し、次いで、0.1MのNaOH(13.0pH)溶液中に、静的条件下、37℃で7日間含浸した(n=5)。第2のセットの5つの3D印刷されたスキャフォールド(K〜O)を秤量し、次いで、0.1MのNaOH(13.0pH)溶液中に、静的条件下、37℃で14日間含浸した。処理された試料(A〜E)及び(K〜O)を秤量し、分解速度を決定し、図18にプロットした。5つの他の非分解試料(C1〜C5)を、対照として使用した。
(00174) 試料C1〜C5(対照:非分解)、A〜E(処理後)、及び(K〜O)(上記実施例21に記載)を乾燥させ、450Nロードセルを装備したBOSE ElectroForce 3230機器を使用して、その動的機械特性(損失弾性率、貯蔵弾性率、TanΔ)を分析した。結果を図19〜22に報告する。
(00175) 次いで、同じBOSE ElectroForce 3230機器及び450Nロードセルを使用して、1.0%/秒の歪み速度で試料C1〜C5(対照:非分解)及びA〜E(処理後)(上記実施例21に記載)を破断まで圧縮し、その応力及び歪み特性を分析した。平均ヤング率は、26MPaと推定された。対照試料(C1〜C5)の降伏応力(σy)は、1.27±0.06MPaであった。7日間処理された試料(A〜E)の場合、σyは、0.69±0.04Mpaであり、14日間処理された試料(K〜O)の場合、σyは、0.51±0.12であった。結果を図23及び24に示す。
Claims (30)
- 約450ダルトンから約3500ダルトンの数平均分子量(Mn)及び1.0から2.0の分子質量分布(Dm)を有する、3D印刷における使用のためのポリ(プロピレンフマレート)ポリマー。
- 前記数平均分子量(Mn)が、約700ダルトンから約3200ダルトンである、請求項1に記載のポリ(プロピレンフマレート)ポリマー。
- 約−25℃から約12℃のガラス転移温度(Tg)を有する、請求項1に記載のポリ(プロピレンフマレート)ポリマー。
- 約980ダルトンから約5900ダルトンのピーク数平均分子量を有する、請求項1に記載のポリ(プロピレンフマレート)ポリマー。
- 約0.025dL/gから約0.078dL/gの固有粘度を有する、請求項1に記載のポリ(プロピレンフマレート)ポリマー。
- 1%w/w未満のポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)ポリマー鎖を含有する、請求項1に記載のポリ(プロピレンフマレート)ポリマー。
- ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)ポリマー鎖を含有しない、請求項1に記載のポリ(プロピレンフマレート)ポリマー。
- 3D印刷における使用のためのポリ(プロピレンフマレート)ポリマーを作製するための方法であって、
A.不活性雰囲気下で、無水マレイン酸及びプロピレンオキシドを好適な溶媒中に溶解するステップと;
B.好適な開始剤を、ステップAの溶液に添加するステップと;
C.ステップBの混合物を、約60℃から約120℃の温度まで、約0.5時間から約100時間の期間加熱して、ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)ポリマーを生成するステップと;
D.ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)ポリマーを回収及び精製するステップと;
E.ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)を好適な溶媒中に溶解し、触媒を添加するステップと;
F.ステップEの混合物を、約5℃から約80℃の温度まで、約5時間から約100時間の期間加熱して、ポリ(プロピレンフマレート)ポリマーを生成するステップと
を含む方法。 - ステップAの溶媒が、トルエン、テトラヒドロフラン(THF)、ジオキサン、及びそれらの組合せからなる群から選択される、請求項9に記載の方法。
- ステップAの溶媒が、トルエンである、請求項9に記載の方法。
- ステップBの開始剤が、マグネシウムエトキシド(Mg(OEt)2)である、請求項9に記載の方法。
- ステップAの無水マレイン酸対ステップBの開始剤又はステップAのプロピレンオキシド対ステップBの開始剤のいずれかのモル比が、約3:1から約400:1である、請求項9に記載の方法。
- ステップDが、
G.不活性雰囲気下でステップCの混合物を冷却するステップと;
H.ステップGの混合物から揮発性化合物を蒸発させるステップと;
I.クロロホルム又はジクロロメタンを、ステップHの混合物に添加するステップと;
J.ステップIの溶液を水溶液で洗浄し、それにより有機層及び水層を形成するステップと;
K.ステップJの有機層を回収し、それを非極性有機溶媒に添加して、ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)ポリマーを沈殿させるステップと;
L.ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)ポリマーを回収するステップと;
M.ポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)ポリマーを少量の好適な溶媒中に溶解し、蒸発により溶液を濃縮するステップと;
N.ステップMの濃縮された溶液を真空下で乾燥させて、精製されたポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)ポリマーを生成するステップと
をさらに含む、請求項9に記載の方法。 - 不活性雰囲気が、窒素を含む、請求項14に記載の方法。
- 揮発性化合物が、蒸留又は減圧によりステップGの混合物から蒸発される、請求項14に記載の方法。
- ステップLのポリ(無水マレイン酸−co−プロピレンオキシド)ポリマーが、分液漏斗により回収される、請求項14に記載の方法。
- ステップMの好適な溶媒が、クロロホルム又はジクロロメタンを含む、請求項14に記載の方法。
- ステップEの溶媒が、クロロホルム、テトラヒドロフラン(THF)、ジオキサン、及びそれらの組合せからなる群から選択される、請求項9に記載の方法。
- ステップEの溶媒が、クロロホルムである、請求項9に記載の方法。
- ステップEの触媒が、ジエチルアミンである、請求項9に記載の方法。
- ステップCが、周囲温度で行われる、請求項9に記載の方法。
- ポリ(プロピレンフマレート)ポリマーを回収及び精製するステップをさらに含む、請求項9に記載の方法。
- O.ステップFの混合物を蒸発により濃縮するステップと;
P.ステップOの混合物を緩衝水溶液で洗浄して触媒を除去し、それにより有機層及び水層を形成するステップと;
Q.有機層を回収するステップと;
R.有機層を蒸発により濃縮するステップと;
S.無機乾燥剤、酸性プロトン又は分子篩を添加して、残留水を除去するステップと;
T.ステップSの混合物を濾過して、無機乾燥剤、酸性プロトン又は分子篩を除去するステップと;
U.ステップTの混合物を非極性有機溶媒中に添加して、ポリ(プロピレンフマレート)ポリマーを沈殿させるステップと;
V.ステップUのポリ(プロピレンフマレート)ポリマーを回収するステップと;
W.ステップVのポリ(プロピレンフマレート)ポリマーを真空下で乾燥させて、精製されたポリ(プロピレンフマレート)ポリマーを生成するステップと
を含む、請求項23に記載の方法。 - ステップOの混合物が、回転蒸発又は減圧により濃縮される、請求項24に記載の方法。
- ステップPの緩衝水溶液が、リン酸緩衝生理食塩水を含む、請求項24に記載の方法。
- ステップQの有機層が、分液漏斗により回収される、請求項24に記載の方法。
- ステップRの有機層が、蒸留、回転蒸発又は減圧により濃縮される、請求項24に記載の方法。
- ステップRの混合物に硫酸ナトリウムが添加されて、残留水が除去される、請求項24に記載の方法。
- ステップUの非極性有機溶媒が、ヘキサンを含む、請求項24に記載の方法。
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