JP2018198610A - 体性幹細胞 - Google Patents

Abstract

【課題】膵島細胞、神経細胞、脂肪細胞、または骨形成細胞を調製する方法を提供することを目的とする。【解決手段】ＣＤ１０＋、ＣＸＣＲ４＋およびＣＤ３１＋である体性幹細胞、ならびにＣＤ１０５＋、ＣＤ４４＋およびネスチン＋である他の体性幹細胞を調製する方法、および、例えば、筋肉変性疾患のような変性疾患を治療するために該体細胞由来の肝細胞の製造および使用する方法の両方を開示する。【選択図】図１

Description

関連出願との相互参照
本出願は、２０１１年９月２８日に出願された米国仮出願第６１／５４０，１９１号に
、および２０１２年３月１２日に出願された米国仮出願第６１／６０９，５２２号にも基
づいて優先権を主張する。両先願の内容は、その全体が、これによって本明細書中に組込
まれる。

背景
幹細胞は、インビボまたはインビトロで、多くのまたは全ての細胞型（ｃｅｌｌ ｔｙ
ｐｅｓ）へ分化することができる、全能性（ｔｏｔｉｐｏｔｅｎｔ）、多能性（ｐｌｕｒ
ｉｐｏｔｅｎｔ）または多分化能（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ）の細胞である。その多能性
により、胚性幹（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ）（ＥＳ）細胞は、変性性（ｄｅｇｅｎ
ｅｒａｔｉｖｅ）または遺伝性の病気を治療するための、大きな可能性を有していると信
じられている。それでもなお、道徳的配慮は、ヒトＥＳ細胞の使用を妨げている。非胚性
由来の幹細胞は、この障害を回避するであろう。したがって、非胚性幹細胞に対して、需
要がある。

概要
本発明は、体性幹細胞および関連する方法に関する。

本発明の１つの側面は、ＣＤ１０＋、ＣＸＣＲ４＋およびＣＤ３１＋である、単離され
た体性非接着性（ｎｏｎ−ａｄｈｅｒｅｎｔ）幹細胞に関する。この細胞は、本明細書で
は“ＳＢ−３細胞”と命名される。細胞マーカーの次の記号“＋”は、抗体のアイソタイ
プコントロールによる低い蛍光染色と比較して、マーカー特異的抗体による高い蛍光染色
を意味する。細胞マーカーの次の記号“−”は、マーカー特異的抗体による蛍光染色が、
抗体のアイソタイプコントロールよるものと、同じであることを意味する。

本発明の別の側面は、ＣＤ１０５＋、ＣＤ４４＋およびネスチン＋である単離された体
性接着性（ａｄｈｅｒｅｎｔ）幹細胞に関する。この細胞は、本明細書では“ＳＢ−４細
胞”と命名される。

さらに別の側面において、本発明は、体性幹細胞の集団の複数を含む、細胞バンクを特
徴とする。体性幹細胞はそれぞれＣＤ１０＋、ＣＸＣＲ４＋およびＣＤ３１＋であり、な
らびに、集団は異なる被験者から由来する。被験者は、ヒトまたは非ヒトであり得る。

さらに別の側面において、本発明は、体性幹細胞の集団の複数を含む、細胞バンクを特
徴とする。体性幹細胞はそれぞれＣＤ１０５＋、ＣＤ４４＋およびネスチン＋であり、な
らびに、集団は異なる被験者から由来する。被験者は、ヒトまたは非ヒトであり得る。

筋肉損傷または筋肉変性疾患を治療するための方法も同様に、本発明の範囲内である。
方法は、ＣＤ１０＋、ＣＸＣＲ４＋およびＣＤ３１＋である体性幹細胞の有効量を、それ
を必要とする被験者へ投与することを含む。筋肉変性疾患の例としては、筋ジストロフィ
ー、線維筋痛、ミオパチー、皮膚筋炎、多発性筋炎、横紋筋融解、および心筋炎が挙げら
れる。

発明はさらに、筋肉損傷または筋肉変性疾患を治療するための別の方法を特徴とする。
方法は、ＣＤ１０５＋、ＣＤ４４＋およびネスチン＋である体性幹細胞の有効量を、それ
を必要とする被験者へ投与することを含む。

また、本明細書で意図される（ｃｏｎｔｅｍｐｌａｔｅｄ）のは、体性幹細胞を調製す
る方法でもある。方法は、（１）細胞の複数を含む体液試料（ｂｏｄｉｌｙ ｆｌｕｉｄ
ｓａｍｐｌｅ）（例えば、血液、骨髄、臍帯血、月経液および羊水）を被験者（例えば
、ヒトまたは非ヒト）から得ること、（２）試料が上層と下層とに分離されるまで、試料
を二価のカチオンキレート剤（例えば、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡおよびクエン酸ナトリウム）
またはヘパリンと共に容器中でインキュベートすること、（３）上層を回収すること、（
４）サイズが０．３〜６．０マイクロメートルである体性幹細胞の集団を、上層から単離
すること、および（５）特定の成長因子：Ｒ−スポンジン−１、ＳＣＦ、Ｇ−ＣＳＦ、ｂ
ＦＧＦ、ＥＧＦおよびＰＤＧＦを含む培地で単離された体性幹細胞を培養することを含む
。体性幹細胞はＣＤ１０、ＣＸＣＲ４およびＣＤ３１について陽性でありうる。これらは
また、ＣＤ１０５、ＣＤ４４およびネスチンについて陽性でありうる。

さらに意図されるのは、ＣＤ１０５＋、ＣＤ４４＋およびネスチン＋である上記体性幹
細胞から、肝臓細胞を調製する方法である。方法は、単離された体性幹細胞をアクチビン
を含む第一分化培地で培養すること；単離された体性幹細胞を塩基性線維芽細胞成長因子
（ｂＦＧＦ）および骨形成タンパク質２（ＢＭＰ２）を含む第二分化培地で培養すること
；単離された体性幹細胞を肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）、デキサメタゾン（ＤＥＸ）および
オンコスタチンＭ（ＯＳＭ）を含む第三分化培地でさらに培養すること；ならびに、こう
して得られた肝臓細胞を回収すること、肝臓細胞はアルブミン、トランスフェリンおよび
肝細胞核因子３Ｂ（ＨＮＦ３Ｂ）を発現する、を含む。

本発明はまた、体外バイオ人工肝臓デバイスを含む。デバイスは、中空繊維の配列と、
上述の手段で調製された肝臓細胞とを含むカートリッジを有する。肝臓細胞は、アルブミ
ン、アルファ−１−アンチトリプシン、第Ｖ因子、補体Ｃ３、アンチトロンビンＩＩＩお
よびトランスフェリンからなる群から選択される、１つまたはより多くのタンパク質を発
現する。約０．１μｍ〜０．３μｍの孔径を有する膜でそれぞれ形成された中空繊維間の
、毛細管外空間（ｅｘｔｒａｃａｐｉｌｌａｒｙ ｓｐａｃｅ）に、これらは配置される
。カートリッジは、一方の末端に近い側壁に第一開口部を、および他方の末端に近い側壁
に第二開口部もある、円筒状の形を有することがある。第一開口部が第一経路に固定され
、第二開口部が第二経路に固定され、２つの経路はカートリッジから遠ざかってそれぞれ
伸びる。

さらに、本発明は、急性肝不全を治療する方法を特徴とする。方法は、治療を必要とす
る被験者を同定すること、第一経路を介して被験者の動脈へおよび第二経路を介して被験
者の静脈へ上述の体外バイオ人工肝臓デバイスを取り付けること、カートリッジ内の各中
空繊維の内側の毛細管空間を通して被験者から血液を灌流すること、ならびに、中空繊維
間の毛細管外空間にて培養された肝臓細胞へ、血液からの有毒溶質のクロスオーバーを可
能にすることにより血液を浄化すること、および被験者へ戻る血液へ肝臓細胞からの必須
の代謝物質の拡散をも可能にすることを含む。被験者は、Ｃ型肝炎感染、アルコール乱用
、および薬物の過剰摂取に最も一般的に起因する、慢性肝疾患を罹患しているヒトであり
得る。ある実施形態において、被験者は肝臓移植を待っている。

本明細書で説明されるのはまた、アルブミンを製造する方法である。該方法は、上記の
方法を使用して調製された肝臓細胞を培地中で培養すること、および肝臓細胞により製造
されたアルブミンを培地から回収することを含む。

本発明の１つまたはより多くの実施形態の詳細は、添付した図面および下記の説明で述
べられる。本発明のその他の特徴、目的および利点は、説明および図面、ならびに請求項
から明らかであろう。

図面の説明
図１は、培養中のＳＢ−３細胞およびＳＢ−４細胞を示す写真である。 図２は、ヒト被験者に取り付けられている体外バイオ人工肝臓デバイスの略図の表示である。 図３ａは、体外バイオ人工肝臓デバイスに使用され得る例示的なカートリッジの写真である。 図３ｂは、例示的なカートリッジの横断面の画像である。

詳細な説明
本発明は、少なくとも一部は、（ｉ）ＣＤ１０、ＣＸＣＲ４およびＣＤ３１について陽
性である非接着性細胞（すなわち、ＳＢ−３細胞）が、３つの胚葉（ｇｅｒｍ ｌａｙｅ
ｒｓ）へ分化され得る；ならびに（ｉｉ）これらの細胞は、ＣＤ１０５、ＣＤ４４および
ネスチンについて陽性である接着性細胞（すなわち、ＳＢ−４細胞）になることができる
、という予想外の発見に基づく。

ＳＢ−３細胞およびＳＢ−４細胞
ＳＢ−３細胞およびＳＢ−４細胞は、体液試料（例えば、血液、骨髄、臍帯血、月経液
および羊水）より単離された細胞集団から調製され得る。体液試料は、ヒトまたは非ヒト
から採取され得る。上記の体性幹細胞が採取され得る非ヒトの例としては、限定されるも
のではないが、霊長類、イヌ、げっ歯類、モルモット、ネコ、ウマ、ウシ、ヒツジおよび
ブタが挙げられる。実際に、ペット動物、家畜、実験動物と疾患モデル動物が全て意図さ
れる。

体液は、被験者から引き出され、試料が上層と下層とに分離されるまで、二価のカチオ
ンキレート剤（例えば、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡおよびクエン酸ナトリウム）またはヘパリン
と共に容器中でインキュベートされる。上層から、サイズが０．３〜６．０μｍである体
性幹細胞の集団が単離され、次に、特定の成長因子（すなわち、Ｒ−スポンジン−１、Ｓ
ＣＦ、Ｇ−ＣＳＦ、ｂＦＧＦ、ＥＧＦおよびＰＤＧＦ）を含む培地で１〜３０日（例えば
、４〜１４日）培養される。培地は、１〜１００ｎｇ／ｍｌ（例えば、２〜５０ｎｇ／ｍ
ｌ、および５〜２０ｎｇ／ｍｌ）の濃度でそれぞれを含むことがある。これらの培養条件
下では、細胞の直径は６−２５μｍに増加する。

非接着性のままでいる細胞はＳＢ−３細胞であり、接着性になるものはＳＢ−４細胞で
ある。ＳＢ細胞集団中の体性幹細胞は、ＣＤ９＋、ＳＳＥＡ１＋、ＳＳＥＡ４＋、ＣＤ１
３＋またはＳｔｒｏｌ＋であり得る。例えば、いくつかはＣＤ９＋ＣＤ３４９＋である。

ＳＢ−３およびＳＢ−４細胞の両方ともに、体性幹細胞である。これらは、様々な変性
疾患または組織ダメージを治療するための、分化した機能的細胞を再生するために使用さ
れ得る。これらの細胞は容易に維持され、インビトロで拡張（ｅｘｐａｎｄｅｄ）させら
れ、定型の技術的アプローチを使用して分化が誘導され得る。加えて、動物被験者（例え
ば、マウス）へこれらの幹細胞を移植後、悪性増殖の証拠はない。これらの幹細胞は、正
常な染色体相補体（ｃｈｒｏｍｏｓｏｍａｌ ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ）を含む。それらは
、系統誘導剤（ｌｉｎｅａｇｅ−ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ａｇｅｎｔｓ）、増殖剤および分
化阻害剤に応答する。これらの利点により、それらは他の幹細胞の代わりを果たす。

本明細書における用語“幹細胞”は、全能性（ｔｏｔｉｐｏｔｅｎｔ）、多能性（ｐｌ
ｕｒｉｐｏｔｅｎｔ）、多分化能（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ）または単能性（ｕｎｉｐｏ
ｔｅｎｔ）である細胞を意味し、すなわち、１つまたはより多くの最終分化細胞型に分化
することができる。全能性幹細胞は、典型的には、どのような細胞型にも成長する能力を
有する。それらは、起源が胚性および非胚性の両方であり得る。多能性細胞は、典型的に
は、外胚葉、内胚葉、および中胚葉細胞に分化することができる。多分化能細胞は、いく
つかの異なる最終分化細胞型に分化することができる。単能性幹細胞は、ただ１つの細胞
型に分化することができる。それらは、非幹細胞からそれらを区別する自己複製の性質を
有する。上記幹細胞は、種々の組織または臓器から由来することができ、限定されるもで
はないが、血液、神経、筋肉、皮膚、腸、骨、腎臓、肝臓、膵臓および胸腺が挙げられる
。

本明細書に開示された幹細胞は、実質的に不純物がない（ｐｕｒｅ）である。幹細胞ま
たはそれに由来する細胞（例えば、分化した細胞）について言及される場合、用語“実質
的に不純物がない”とは、特定細胞が標本中の多数の細胞（即ち、２０％以上、３０％以
上、４０％以上、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上または
９５％以上）を構成することを意味する。一般に、実質的に精製された細胞の集団は、少
なくとも標本中の細胞の約７０％を、通常は標本中の細胞の約８０％を、および、特に標
本中の細胞の少なくとも約９０％（例えば、９５％、９７％、９９％または１００％）を
構成する。このように、本発明の方法は、実質的に不純物が無い特定の細胞型（例えば、
ＳＢ−３およびＳＢ−４細胞）の集団が、他の細胞型による汚染なしに得られるという利
点を提供する。

被験者からの様々な細胞を含む試料は、本発明の体性幹細胞を調製するために使用され
得る。本発明の好ましい実施形態では、ＳＢ−３およびＳＢ−４細胞は、ＳＢ細胞集団か
ら調製される。

単離された細胞が実際にＳＢ−３またはＳＢ−４細胞であることを確認するためには、
細胞表面マーカーを含む多くの特性を調べることができる。ＣＤ１０、ＣＸＣＲ４、ＣＤ
３１、ＣＤ１０５、ＣＤ４４およびネスチンのような細胞表面マーカーに対する抗体が使
用され得る。それらは、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、フィコエリス
リン（ＰＥ）または量子ドットのような好適なラベルと結合され得る。

これらの体性幹細胞の分化能を確認するために、それらは、当技術分野で公知の方法に
よって、例えば、神経グリア細胞、骨細胞、および脂肪細胞を形成するように誘導され得
る。例えば、これらの細胞は、継代され、コンフルエントまで培養され、骨形成培地また
は脂肪生成培地に移され、適当な期間（例えば、３週間）の間インキュベートされる。骨
形成についての分化能は、フォンコッサ（ｖｏｎ Ｋｏｓｓａ）染色によって可視化され
得るカルシウム蓄積の石灰化によって評価される。脂肪生成分化を調べるためには、細胞
内の脂肪滴がオイルレッドＯで染色され、顕微鏡下で観察され得る。神経分化のためには
、これらの細胞は、神経形成培地中で適切な期間（例えば７日間）インキュベートされ、
次いで、血清枯渇およびβ−メルカプトエタノールと共にインキュベーションに供され得
る。分化後、それらは、ネットワークに配置された広がった神経突起様構造を有する屈折
した細胞体の形態を示す。ＲＴ−ＰＣＲおよび系統特異的マーカーの免疫細胞化学染色は
、神経分化を確認するためにさらに行われる。マーカーの例としては、ニューロン特異的
クラスＩＩＩ β−チューブリン（Ｔｕｊ−１）、ニューロフィラメントおよびＧＦＡＰ
が挙げられる。

ＳＢ−３、ＳＢ−４細胞は、自発的分化、老化、形態学的変化、成長速度の増加、およ
びニューロンへ分化する能力の変化について兆候なしで、１０回以上、２０回以上、５０
回以上、または１００回以上の集団倍加のため、非分化培地中でさらに増殖させられ得る
。これらの幹細胞は、使用前に標準的な方法によって保存され得る。

細胞に関して本明細書において互換的に使用される用語“増殖（ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔ
ｉｏｎ）”及び“拡張（ｅｘｐａｎｓｉｏｎ）”は、分裂により同じ型の細胞の数につい
ての増加を指す。用語“分化”は、例えば、最初の細胞型とは異なる１つ以上の形態学的
特徴および／または機能を細胞が獲得する、特定の機能に特化された細胞になる成長プロ
セスを指す。用語“分化”は、分化系列決定（ｌｉｎｅａｇｅ ｃｏｍｍｉｔｍｅｎｔ）
および最終分化プロセスの両方を含む。分化は、例えば、免疫組織化学または当業者に公
知の他の手順を用いて、系統マーカーの存在または非存在をモニターすることにより、評
価され得る。前駆細胞に由来する分化した子孫細胞は、必ずとは言えないが、幹細胞の供
給源組織と同じ胚葉または組織に関連することもある。例えば、神経前駆細胞および筋肉
前駆細胞は、造血細胞系統に分化することができる。

本明細書で互換的に使用される用語“分化系列決定”と“特化（ｓｐｅｃｉｆｉｃａｔ
ｉｏｎ）”は、分化した細胞型の特に限定された範囲を形成することが決定された前駆細
胞を幹細胞が生じる、幹細胞が経るプロセスを指す。決定された前駆細胞は、しばしば、
自己複製または細胞分裂が可能である。

用語“最終分化（ｔｅｒｍｉｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ）”とは、成熟
した、完全に分化した細胞への細胞の最後の分化を指す。例えば、神経前駆細胞および筋
肉前駆細胞は造血細胞系統に分化することができ、その最終分化は特定の細胞型の成熟し
た血液細胞に至る。通常、最終分化は、細胞周期からの離脱および増殖の停止と関連して
いる。本明細書で使用される用語“前駆細胞”は、特定の細胞系統に決定され、一連の細
胞分裂によりこの系統の細胞を生じさせる細胞を指す。前駆細胞の例は、ただ１つの型の
みに分化することができるが、それ自体は完全には成熟または完全には分化していない、
筋芽細胞であろう。

ＳＢ−３またはＳＢ−４細胞の集団の複数を有する細胞バンクまたはライブラリーは、
本発明の範囲内である。これらの幹細胞は、ヒト細胞または非ヒト細胞であり得る。バン
クは、異なる被験者に由来するＳＢ−３またはＳＢ−４細胞の集団を貯蔵し；少なくとも
１つの所定の特性を各々について得るために集団におけるＳＢ−３またはＳＢ−４細胞を
特徴付け、および少なくとも１つの所定の特性に応じて各々の集団をカタログ化すること
で、作られ得る。バンクを作るためには、ＳＢ−３またはＳＢ−４細胞の集団を、さらに
拡張させることができる。特性の例は、被験者の名前、性別、身体的条件（遺伝的障害お
よびＭＨＣ情報を含む）が挙げられる。

上述したＳＢ−３細胞およびＳＢ−４細胞は両方とも、とりわけ、薬剤スクリーニング
、変性疾患の治療、および遺伝子治療において使用され得る。

スクリーニング方法
上述したＳＢ−３細胞およびＳＢ−４細胞は、細胞型に関連する疾患を治療するために
薬物が有用であり得ることを示すように、特定の細胞型に影響を与えることができる薬剤
を同定するためのスクリーニングアッセイにおいて使用され得る。例えば、ある病気（例
えば、変性疾患）を治療するための医薬候補を同定するための方法において、幹細胞を使
用することができる。この方法は、幹細胞と試験化合物を接触させ、病気においてダウン
レギュレートされるポリペプチドの発現レベルを測定するステップを含む。試験化合物の
存在下での発現レベルが、化合物の非存在下のときよりも高い場合、化合物が病気を治療
するための候補であることを示す。病気の例としては、糖尿病、神経変性疾患、関節炎、
癌、または自己免疫疾患が挙げられる。発現レベルは、ｍＲＮＡレベルまたはタンパク質
レベルのいずれかで測定され得る。

したがって、本発明の一側面は、試験薬剤と細胞とを接触させることにより、ＳＢ−３
またはＳＢ−４細胞の機能を変化させる薬剤を同定するための方法に関する。試験薬剤の
非存在下でのときと比較した場合に、試験薬剤の存在下で細胞の機能または遺伝子発現が
変化することは、試験薬剤が細胞の機能または遺伝子発現を変化させる薬剤であることを
示している。用語“試験薬剤”は、細胞内の機能または遺伝子発現を変化させる能力につ
いて調べられている任意の分子を指す。方法は、一般に、所望の活性を有するそれまで知
られていなかった分子を同定するためのスクリーニングアッセイが使用されるが、本発明
のスクリーニング方法はまた、活性を有することが知られている薬剤の特定の活性を確認
するために使用され得る。

機能は、細胞で典型的に発現される（または発現されない）遺伝子の発現でもよく、薬
剤は、発現した遺伝子の発現レベルを増加もしくは減少させることによって、または細胞
内で発現していない遺伝子を発現させる（例えば、系統特異的抗原の発現を誘導する）こ
とによって、機能を変えることができる。

一実施形態では、細胞の機能に影響を与える薬剤は、幹細胞の分化を誘導し、それによ
って分化した細胞を産生するものである。そのような分化した細胞は、多分化能ヒト幹細
胞（例えば、造血幹細胞）であってもよく、または最終分化細胞（例えば、筋細胞、肝臓
細胞、神経細胞、血液細胞、結合組織、もしくは上皮細胞）であってもよい。このように
、本方法は、膵臓ベータ細胞、肝細胞、心筋細胞、骨格筋細胞、または任意の他の細胞型
を含む最終分化細胞へ、ＳＢ−３またはＳＢ−４細胞の分化を誘導する薬剤を同定するた
め、使用され得る。このようにして同定された薬剤または化合物は、変性疾患、癌、また
は免疫疾患を治療するために使用され得る。

発現レベルは、ｍＲＮＡレベルまたはタンパク質レベルのいずれかで測定され得る。試
料中のｍＲＮＡレベルを測定する方法は、当該分野で周知である。ｍＲＮＡレベルを測定
するため、細胞は溶解されることがあり、溶解物中のｍＲＮＡのレベルは、精製されたか
否かを問わず、例えば、ハイブリダイゼーションアッセイ（検出可能に標識された遺伝子
特異的ＤＮＡまたはＲＮＡプローブを使用する）、および定量的または半定量的ＲＴ−Ｐ
ＣＲ（適切な遺伝子特異的プライマーを使用する）ことによって測定され得る。他にも、
定量的または半定量的インサイチュハイブリダイゼーションアッセイが、検出可能に（例
えば、蛍光または酵素）標識されたＤＮＡまたはＲＮＡプローブを用いて、組織切片また
は非溶解の細胞懸濁物に対して実施され得る。追加のｍＲＮＡ定量化方法は、ＲＮａｓｅ
プロテクションアッセイ（ＲＰＡ）法および遺伝子発現の連続分析（ｓｅｒｉａｌ ａｎ
ａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｇｅｎｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ、ＳＡＧＥ）法だけでなく、アレ
イ−ベースの技術を含む。

試料中のタンパク質レベルを測定する方法もまた、当該分野で周知である。それらのい
くつかは、標的タンパク質に特異的に結合する抗体（例えば、モノクローナル抗体または
ポリクローナル抗体）を使用する。このようなアッセイでは、抗体そのものまたはそれに
結合する二次抗体は、検出可能に標識され得る。他にも、抗体は、ビオチンと結合される
こともある。その存在は、検出可能に標識されたアビジン（ビオチンに結合するポリペプ
チド）によって測定され得る。これらのアプローチの組み合わせ（“多層サンドイッチ”
アッセイを含む）は、方法の感度を高めるために使用され得る。適切なラベルは、放射性
核種（例えば、^１２５Ｉ、^１３１Ｉ、^３５Ｓ、^３Ｈ、または^３２Ｐ）、酵素（例えば、ア
ルカリホスファターゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼ、ルシフェラーゼ、またはβ−ガラ
クトシダーゼ）、蛍光／発光剤（例えば、フルオレセイン、ローダミン、フィコエリトリ
ン、ＧＦＰ、ＢＦＰ、およびナノ粒子（例えば、クァンタム ドット コーポレーション
（Ｑｕａｎｔｕｍ Ｄｏｔ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ），パロアルト，カリフォルニア州
，から供給されるＱｄｏｔ（登録商標）））を含む。いくつかのタンパク質測定アッセイ
（例えば、ＥＬＩＳＡおよびウェスタンブロット）は体液または細胞溶解物に適用されて
もよく、ならびに他のもの（例えば、免疫組織学的方法および蛍光フローサイトメトリー
）は組織切片または非溶解細胞懸濁液に適用されてもよい。他の適用可能な方法は、定量
的免疫沈降および補体結合アッセイを含む。

試験化合物または薬剤は、例えば、ポリヌクレオチド、ペプチド、ペプチド模倣物、ビ
ニル性ペプトイド（ｖｉｎｙｌｏｇｏｕｓ ｐｅｐｔｏｉｄｓ）のようなペプトイド、低
有機分子などの、任意の型の分子であってもよく、ＳＢ−３またはＳＢ−４細胞の機能を
変化させる様々な方法のいずれかで作用し得る。例えば、試験薬剤は、細胞によって発現
される細胞表面受容体に結合することによって細胞外で作用することができ、それにより
、一般的には受容体に結合して受容体を介して作用するリガンドの結合によって仲介され
る機能を、変化させる。他にも、試験薬剤は、受動的にまたは能動輸送機構を介して細胞
膜を横断し、機能を変化させるために細胞内で作用するものであってもよい。

ペプチド試験薬剤は、アミノ酸またはアミノ酸類似体の任意のポリマーであってもよく
、約３〜４残基から数百または数千にまで変化しうる。ペプチド試験薬剤は、化学合成に
よって、もしくは、タンパク質精製、続いてタンパク質分解、および所望であれば、クロ
マトグラフィーもしくは電気泳動法による更なる精製の方法を用いて調製されてもよく、
または、コードするポリヌクレオチドから発現させてもよい。ペプチド試験薬剤は、公知
のペプチド、例えば、天然に存在するペプチドに基づくものでもよいが、例えば、１つま
たはより多くのアミノ酸類似体を含むことによって、天然に存在する配列と異なっていて
もよい。

ポリヌクレオチド薬剤は、ホスホジエステル結合によって共に連結された、２つ以上の
デオキシリボヌクレオチドまたはリボヌクレオチドの配列であり得る。これは、遺伝子ま
たはその一部、ｃＤＮＡ、ＲＮＡｉ薬剤、合成ポリデオキシ−リボ核酸配列などのＲＮＡ
またはＤＮＡであってもよく、および、一本鎖または二本鎖のみならずＤＮＡ／ＲＮＡハ
イブリッドであってもよい。これは、細胞から単離されることができる天然に存在する核
酸分子だけでなく、例えば、化学合成法やポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）などによる酵
素的方法によって調製され得る合成分子であってもよい。様々な実施形態において、本発
明のポリヌクレオチドは、ヌクレオシドもしくはヌクレオチド類似体、またはホスホジエ
ステル結合以外の骨格結合を含み得る。そのようなヌクレオチド類似体は当技術分野で周
知であり、市販されており、そのようなヌクレオチド類似体を含むポリヌクレオチド（パ
グラティス（Ｐａｇｒａｔｉｓ）ら，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． １５：６
８−７３，１９９７）としてでもある。

ポリヌクレオチド試験薬剤は、本明細書に開示されまたは当該技術分野において公知の
方法を用いてＳＢ−３またはＳＢ−４細胞と接触させられ、またはＳＢ−３またはＳＢ−
４細胞へ導入され得る。一般に、必ずではないが、ポリヌクレオチドは細胞に導入され、
直接的にその機能に対して、またはこれに続く転写もしくは翻訳もしくは両方に対して影
響を与える。例えば、ポリヌクレオチドはペプチド試験薬剤をコードしてもよく、細胞中
で発現させられて細胞の機能を変化させる。ポリヌクレオチド試験薬剤はまた、１つもし
くはより多くの特定の標的核酸分子を標的とするように設計され得るアンチセンス分子、
リボザイムまたは三重らせん化剤（ｔｒｉｐｌｅｘｉｎｇ ａｇｅｎｔ）であり、または
これらをコードし得る。

スクリーニングされるべき候補薬剤または化合物（例えば、タンパク質、ペプチド、ペ
プチド模倣物、ペプトイド、抗体、低分子、または他の薬）は、当該分野で公知のコンビ
ナトリアルライブラリー法における多数のアプローチのいずれかを用いて入手され得る。
このようなライブラリーとしては、ペプチドライブラリー、ペプトイドライブラリー（ペ
プチドの機能性を有するが、酵素分解に抵抗性がある新規な非ペプチド骨格を有する、分
子のライブラリー）；空間的に指定可能（ｓｐａｔｉａｌｌｙ ａｄｄｒｅｓｓａｂｌｅ
）な並列固相または液相ライブラリー；デコンボリューションまたはアフィニティークロ
マトグラフィー選別によって得られる合成ライブラリー；および、“１ビーズ１化合物”
ライブラリー、が挙げられる。例えば、ラム（Ｌａｍ），１９９７，Ａｎｔｉｃａｎｃｅ
ｒ Ｄｒｕｇ Ｄｅｓ． １２：１４５、を参照されたい。分子ライブラリーの合成方法
の例としては、例えば、Ａｎｇｅｗ．Ｃｈｅｍ．Ｉｎｔ．Ｅｄ．Ｅｎｇｌ． ３３：２０
６１；および、ギャロップら，１９９４ Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ． ３７：１２３３、に
おいて見出され得る。化合物のライブラリーは、溶液中（例えば、ホーテン（Ｈｏｕｇｈ
ｔｅｎ），１９９２，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １３：４１２−４２１）、またはビ
ーズ上（ラム（Ｌａｍ），１９９１，Ｎａｔｕｒｅ ３５４：８２−８４）、チップ上（
フォーダー（Ｆｏｄｏｒ），１９９３，Ｎａｔｕｒｅ ３６４：５５５−５５６）、細菌
上（米国特許第５，２２３，４０９号）、胞子上（米国特許第５，２２３，４０９号）、
プラスミド上（カル（Ｃｕｌｌ）ら，１９９２，ＰＮＡＳ ＵＳＡ ８９：１８６５−１
８６９）、もしくはファージ上（フェリーチ（Ｆｅｌｉｃｉ） １９９１，Ｊ．Ｍｏｌ．
Ｂｉｏｌ． ２２２：３０１−３１０；および米国特許第５，２２３，４０９号）に存在
しても良い。

治療方法
ヒト胚操作の倫理的な考慮事項を回避しつつ、変性性または遺伝性疾患を治療するため
に本明細書に開示されたＳＢ−３またはＳＢ−４細胞を使用することができる。

そのようにするために、例えば、組織または臓器の適切な成長に不可欠な機能遺伝子を
欠く患者のような、患者からのＳＢ細胞集団を単離することができる。ＳＢ細胞集団はそ
の後、ＳＢ−３細胞またはＳＢ−４細胞が得られるような条件に供される。次いで、遺伝
子の機能的なバージョンをコードする発現核酸ベクターを、これらの幹細胞への導入する
ことができる。ベクターは、リン酸カルシウム共沈殿、ＤＥＡＥ−デキストラン媒介トラ
ンスフェクション、リポフェクション、エレクトロポレーション、マイクロインジェクシ
ョン、またはウイルス媒介技術を含む、様々な技術を介して幹細胞に導入され得る。細胞
の多能性に影響を与えない方法が好ましい。そのような技術の説明は、例えば、米国特許
第７，４２２，７３６および５，５９１，６２５のような出版物に見出され得る。幹細胞
へ機能的な遺伝子を輸送した後、当該技術分野で公知の方法を用いて患者にそれらを移植
して戻すことができる。幹細胞は患者から製造されるので、治療は免疫拒絶反応を引き起
こさない。

他にも、健康な被験者から調製されたＳＢ−３またはＳＢ−４細胞から万能（ｕｎｉｖ
ｅｒｓａｌ）ドナー細胞を作製することができる。万能ドナー細胞を作製する方法は、当
技術分野で知られている。ＳＢ−３またはＳＢ−４細胞から万能多能性幹細胞を作製する
ための例示的な技術が、以下に説明される。

適当な条件下において、移植された幹細胞は機能的な組織または臓器に成長することが
できる。この成長を促すために、患者は、細胞の成長を誘導する因子が投与されてもよい
。このような因子は、低分子化合物、ペプチド、および核酸でありえる。例としては、制
限されるものではないが、トランスフォーミング成長因子β、骨形成タンパク質、および
神経成長因子が挙げられる。

万能多能性幹細胞はまた、成長または系統発生の分化メカニズムおよび分化を研究する
ために有用である。そのような細胞をモデル系として用い、全能性多能性幹細胞の発生を
特定の組織または臓器に誘導する条件を、同定することができる。さらに、当技術分野で
公知のディファレンシャルｃＤＮＡスクリーニングを用いて、成長の間に役割を果たして
いる遺伝子を単離することができる。例えば、上記の神経グリア細胞系列のような或る系
統に成長するように誘導された細胞から、ｃＤＮＡライブラリーを調製することができる
。ライブラリーは、次いで、差次的に発現される遺伝子を単離および研究するために使用
され得る。これらの単離された遺伝子はさらに、各プロセスにおけるそれらの役割を明ら
かにするために研究され得る。関連技術は、当技術分野で知られている。例えば、米国特
許第７，４２２，７３６号、を参照されたい。多能性幹細胞はまた、当技術分野で公知の
方法を用いて動物の臓器またはクローンへと成長させるために使用され得る。従って、こ
れらの細胞は、ペットおよび家畜産業にとって有益であり、絶滅危惧動物を保持するため
に使用され得る。

１つの側面において、本発明は、被験者における変性疾患を治療する方法を特徴とする
。この方法は、上記のＳＢ−３またはＳＢ−４細胞の有効量を、それを必要とする被験者
に投与することを含む。一実施形態では、これらの細胞の少なくとも１つは、組換え核酸
を含む。組換え核酸は、ポリペプチドをコードすることができ、幹細胞は、ポリペプチド
をコードするｍＲＮＡを含むことができる。変性疾患の例としては、筋肉変性疾患、肝臓
変性疾患、糖尿病、神経変性疾患、および関節炎が挙げられる。神経変性疾患の例は、パ
ーキンソン病である。

別の側面において、本発明は、被験者における自己免疫疾患を治療する方法を特徴とす
る。この方法は、上記のＳＢ−３またはＳＢ−４細胞の有効量を、それを必要とする被験
者に投与することを含む。

変性疾患は、遺伝的欠陥、損傷、適切な細胞分化の欠如（例えば、細胞増殖性疾患にお
けるもの）、正常な身体の摩耗、またはライフスタイルの選択により、影響を受けた組織
または臓器の機能または構造が、時間をかけて徐々に悪化する障害を指す。変性疾患の例
としては、神経変性疾患（例えば、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン病
、多発性硬化症および筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ））；他の神経系障害（例えば、横断
性脊髄炎、脳または脊髄への外傷後に生じる脱髄、急性脳損傷、頭部外傷、脊髄損傷、末
梢神経損傷、虚血性脳損傷、ＣＮＳの遺伝性ミエリン障害、てんかん、周生期仮死、仮死
、酸素欠乏症、てんかん重積状態、シャイ−ドレーガー症候群、自閉症、および脳卒中）
；癌（例えば、肝臓癌）もしくは抗癌治療（例えば、化学療法）から生じる症状；代謝障
害（例えば、糖尿病（ｄｉａｂｅｔｅｓ）／糖尿病（ｄｉａｂｅｔｅｓ ｍｅｌｌｉｔｕ
ｓ）およびニーマンピック病）；自己免疫または炎症関連障害（例えば、エリテマトーデ
ス、炎症性腸疾患（ＩＢＤ）、前立腺炎、変形性関節症、骨粗鬆症、関節リウマチ、狼瘡
、糖尿病、および喘息）；眼障害（例えば、緑内障、網膜色素変性症、ノリエ病、および
黄斑変性症）；心臓および循環器障害（例えば、アテローム性動脈硬化症、心不全、心筋
梗塞、および心血管疾患）；血液障害（例えば、ウィスコット−アルドリッチ症候群）；
筋ジストロフィー；消化器疾患；腎臓疾患；肝臓疾患；肺疾患、副腎疾患（例えば、アジ
ソン病）；傷害から生じる症状（例えば、熱傷、脳卒中、軽傷を含むダメージを受けた組
織、加齢ダメージを受けた細胞、および加齢ダメージを受けた組織）；老化に関連する症
状（例えば、男性型脱毛および円形脱毛症を含む脱毛）；ウイルス症状（例えば、Ｃ型肝
炎感染および後天的免疫不全症）；ならびに、障害に関連する徴候および／または症状を
回復させ、再生させ、そうでなかったら改善するために臓器移植または幹細胞が使用され
得る任意の他の障害、を含む。本発明の方法は、勃起不全の治療、および形成外科手術ま
たは女性のための乳房移植に用いられ得る。

さらに別の側面において、脳もしくはＣＮＳ組織ダメージを治療し、または被験者にお
ける疾患の症状を緩和する方法が本明細書に記載される。この方法は、脳組織ダメージを
罹患しているまたは発症するリスクがある被験者を同定することを含む。脳組織ダメージ
の例としては、脳虚血（例えば、慢性脳卒中）または神経変性疾患（例えば、パーキンソ
ン病、アルツハイマー病、脊髄小脳疾患、およびハンチントン病）によって引き起こされ
るものが挙げられる。治療方法は、上述した幹細胞または活性薬剤／化合物の有効量を、
それを必要とする被験者に投与することを伴う。

幹細胞の治療効果は、標準的な方法に従って評価され得る。例えば、脳血管新生を促進
する有効性を確認するためには、コンピュータ断層撮影（ＣＴ）、ドップラー超音波イメ
ージング（ＤＵＩ）、磁気共鳴イメージング（ＭＲＩ）、およびプロトン磁気共鳴分光法
^１Ｈ−ＭＲＳ）のような、標準的な脳画像化技術により、治療前後の被験者を検査するこ
とができる。例えば、^１Ｈ−ＭＲＳは、脳の代謝活性に相関する生化学的情報を得るため
の、非侵襲的手段を表す（ルー（Ｌｕ）ら，１９９７，Ｍａｇｎ．Ｒｅｓｏｎ．Ｍｅｄ．
３７，１８−２３）。この技術は、幹細胞移植の有無による脳虚血に関与する代謝変化
を評価するために、適用され得る。例えば、それは、ニューロンの完全性のマーカーであ
るＮ−アセチルアスパラギン酸（ＮＡＡ）の脳内濃度を調べるために、使用され得る。神
経破片（ｎｅｕｒｏｎａｌ ｄｅｂｒｉｓ）におけるＮＡＡの再分配および捕捉は、定量
神経マーカーとしてのその使用を制限するが、脳虚血における脳ＮＡＡ濃度の減少は神経
損失（ｎｅｕｒｏｎａｌ ｌｏｓｓ）または機能不全の指標と考えられ得る（ドゥムジョ
（Ｄｅｍｏｕｇｅｏｔ）ら，２００４，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ． ９０，７７６−８３
）。したがって、^１Ｈ−ＭＲＳにより測定されるＮＡＡレベルは、脳虚血後の幹細胞移植
の効果を追跡するために有用な指標である。

上述の疾患の１つについて治療される被験者は、その特定の疾患ための標準的な診断技
術によって同定され得る。“治療すること（ｔｒｅａｔｉｎｇ）”は、その疾患を罹患し
ているか発症するリスクがある被験者へ、疾患、疾患の症状、疾患に続発する病状、また
はダメージ／疾患の素因を治癒させ、和らげ、緩和させ、治療し、発症を遅らせ、予防し
、または改善する目的での、組成物（例えば、細胞組成物）の投与を指す。治療される被
験者は、関心のある症状または疾患を診断するための標準的な技術によって同定され得る
。“有効量”とは、治療される被験者において医学的に望ましい結果を生じさせることが
できる、組成物の量を指す。治療方法は、単独で、または他の薬もしくは療法と組み合わ
せて行われ得る。被験者は、ヒト、または例えばネコ、イヌもしくはウマなどの非ヒト哺
乳動物であり得る。

肝臓細胞の作製および使用
また、ＳＢ−４細胞由来の肝臓細胞を製造しおよび使用する方法も、本発明の範囲内で
ある。ＳＢ−４細胞は、アクチビンを含む培地中で５日間、次いでｂＦＧＦおよびＢＭＰ
２を含む培地で１０〜１５日間、最後にＨＧＦ、ＤＥＸ、およびＯＳＭを含む培地中で１
０〜１５日間培養されると、内胚葉細胞を形成するように分化を経る。これらの内胚葉細
胞は、すべて肝臓特異的タンパク質である、アルブミン、トランスフェリン、およびＨＮ
Ｆ３Ｂを発現する。換言すれば、ＳＢ−４細胞は、アルブミンの製造に使用するため、ま
たはバイオ人工肝臓デバイスで使用するために、肝臓細胞に分化することができる。本明
細書では、用語“肝臓細胞（ｌｉｖｅｒ ｃｅｌｌ）”は、単語“肝細胞（ｈｅｐａｔｏ
ｃｙｔｅ）”と置き換え可能である。

本発明の一実施形態は、ＳＢ−４細胞由来の肝臓細胞を使用した、体外バイオ人工肝臓
デバイスである。このようなデバイスは、病気または外傷のいずれかに起因して、肝臓に
関連する症状または損傷がある肝機能を有し、または有することが疑われる被験者を治療
するために使用される。

体外バイオ人工肝臓デバイスは、１つまたはより多くのカートリッジを含む。図２を参
照されたい。各カートリッジは、透過性または半透過性の膜で各々形成された中空繊維の
配列を含む。図３ａおよび３ｂを参照されたい。各カートリッジは、一方の末端に第一開
口部を、および他方の末端に第二開口部を備えた円筒形状を有することができ；第一開口
部は第一経路に固定され、第二開口部は第二経路に固定され、２つの経路はカートリッジ
から遠ざかって伸びる。図３ａを参照されたい。一の経路が被験者の動脈に、他方がこの
被験者の静脈に固定される。

各中空線維を形成する膜は、中空繊維の内側で培養された肝細胞へ血液から有毒溶質の
クロスオーバーを可能にすることにより（例えば、膜を通って拡散し、吸収されて代謝さ
れるビリルビン）、さらにまた、デバイス内で培養された細胞からの必須の代謝物質の被
験者へ戻る血液への拡散を可能にすることにより、血液の洗浄を可能にする。膜の選択的
透過性または半透過性の特徴はまた、被験者の血液中の免疫系の構成要素に対する機械的
バリアを提供する。典型的には、膜は、約２０，０００ダルトンから約８０，０００ダル
トンまで、一般的には約３０，０００ダルトンから約５０，０００ダルトンまでの分子量
カットオフを特徴とする。好ましい実施形態では、膜は、直径０．１μｍ〜０．３μｍ、
典型的には約０．２μｍの孔を有している。この範囲の孔直径であれば、細胞要素（ｃｅ
ｌｌｕｌａｒ ｅｌｅｍｅｎｔ）を排除しながら、タンパク質（例えば、アルブミン）お
よびタンパク質複合体が通過することを可能にし、従って、肝不全を罹患している被験者
の血清タンパク質欠乏を改善する。

本明細書で使用される用語“浄化（ｃｌｅａｎｓｅ）”または“洗浄（ｃｌｅａｎ）”
は、被験者の血液からの、不要なまたは望ましくない分子の除去を意味する。また、用語
用語“浄化（ｃｌｅａｓｎｓｅ）”または“洗浄（ｃｌｅａｎ）”はさらに、ＳＢ−４由
来の肝臓細胞からの所望の分子（すなわち、アルブミン）を、被験者へ戻す前の血液中へ
放出することを含む。

類似のデバイス、それらの使用、および作用メカニズムは、当該技術分野の当業者に知
られている。例えば、バイオ人工肝臓デバイスは、ビレス（Ｖｉｌｅｓ）ら，米国特許第
４，６７５，００２号および第４，８５３，３２４号；ジャウレギン（Ｊａｕｒｅｇｉｎ
），英国第２，２２１，８５７Ａ号；ウルフ（Ｗｏｌｆ）ら，１９７９，Ｉｎｔｅｒｎａ
ｔｉｏｎａｌ Ｊ．ｏｆ Ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ Ｏｒｇａｎｓ ２：９７−１０３；ウ
ルフ（Ｗｏｌｆ）ら，１９７８，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊ．ｏｆ Ａｒｔｉｆｉ
ｃｉａｌ Ｏｒｇａｎｓ １：４５−５１；およびエールリッヒ（Ｅｈｒｌｉｃｈ）ら，
１９７８，Ｉｎ Ｖｉｔｒｏ １４：４４３−４５０に記述されている。このようなデバ
イスはまた、ＳＢ−４細胞由来の肝臓細胞と共に使用されることが意図される。

中空繊維カートリッジは二室ユニットを有し、すなわち、一の部屋が各中空繊維の内側
に位置し、他方が中空繊維の外側に位置し、正常臓器の三次元特性を再現する。ナゼック
（Ｋｎａｚｅｋ），Ｒ．Ｈ，１９７４，Ｆｅｄｅｒ．Ｐｒｏｃ． ３３：１９７８−１９
８１；および、クー（Ｋｕ），Ｋ．ら，１９８３，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｂｉｏｅｎｇ
． ２３：７９−９５を参照されたい。

培養または増殖培地は、カートリッジ内の各中空繊維の内側の毛細管空間を通って循環
され、播種後にカートリッジ内の中空繊維間の毛細管外空間で増殖させられた細胞は、新
鮮な培地を一定の流入で供給される。サラカン（Ｔｈａｒａｋａｎ），Ｊ．Ｐ．ら，１９
８６，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｂｉｏｅｎｇ． ２８：１６０５−１６１１を参照された
い。特徴的には、１４００ｃｍ^２カートリッジは、ＳＢ−４細胞由来肝細胞の有効数（例
えば、約１×１０^９細胞）が接種され、１４〜約２１日の間コンフルエンスまで増殖させ
られる。このような中空繊維培養系は、よく知られており（例えば、ハイフェッツ（Ｈｅ
ｉｆｅｔｚ）ら，１９８９，ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ７：１９２−１９９；および
、ドノフリオ（Ｄｏｎｏｆｒｉｏ），Ｄ．，Ａｍｅｒ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．Ｌａｂ．Ｓｅｐ
ｔ． １９８９，出版＃９４０）、市販されている（例えば、Ａｎｃｈｏｒｎｅｔシリー
ズ）。

中空繊維ベースの系は、バイオ人工肝臓装置に用いられると、いくつかの利点を提供す
る。カートリッジは、非常に高密度な培養の増殖を支持する。毛管外体積に基づいて、１
５〜２０ｇの細胞が１４００ｃｍ^２ユニットで、１００ｇの細胞が７０００ｃｍ^２で増殖
させられる。細胞塊のこの量は、肝不全を患っている被験者に肝臓サポートを提供するこ
とが可能である。また、カートリッジ増殖した細胞は、分極され、その増殖は正常な肝臓
構造に近づく。細胞は毛細管空間から栄養を受け、毛細管外空間へ老廃物を分泌する。毛
細管外空間は、毒性産物の蓄積を防止するために灌流される。培地の継続的な流れおよび
インライン酸素供給器は、酸素とエネルギーのさらなる安定供給を提供する。

ほとんどの部分について、ＳＢ−４由来の肝臓細胞と共に使用されることを意図したバ
イオ人工肝臓デバイスは、被験者の体外に取り付けることにより、主として血液を処理す
る（例えば、典型的には、通常は動脈と静脈との間である、被験者の血液供給へ、デバイ
スから液体を交流させる）。このような配置は、重度の肝臓障害に罹患している被験者の
ための一時的な肝臓サポートを提供するために特に有用である。

代わりに、ＳＢ−４由来の肝臓細胞は、バイオ人工肝臓として、またはバイオ人工肝臓
サポートとして体内で使用される。このようにして使用される場合、ＳＢ−４由来の肝臓
細胞は、体内使用のために、中空線維毛細管膜内でカプセル化され、または増殖させられ
る。特徴的には、細胞は成長時にサポートに付着する。結合材料は、しかしながら、サポ
ートに細胞を付着させるために提供されてもよい（例えば、ジャウレギン（Ｊａｕｒｅｇ
ｉｎ），英国第２，２２１，８５７Ａ号を参照されたい）。ＳＢ−４由来の肝臓細胞は、
カイ（Ｃａｉ）ら，Ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ Ｏｒｇａｎｓ，１２：３８８−３９３；サン
（Ｓｕｎ）ら，１９８６，Ｔｒａｎｓ．Ａｍ．Ｓｏｃ．Ａｒｔｉｆ．Ｉｎｔｅｒｎ．Ｏｒ
ｇａｎｓ，ＸＸＸＩＩ巻：３９−４１；オシェイ（Ｏ’Ｓｈｅａ）ら，１９８４，Ｂｉｏ
ｃｈｉｍｉｃａ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａ Ａｃｔａ，８０４：１３３−１３６；サン（Ｓ
ｕｎ）ら，１９８５，Ｊ．Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ ２：１３７−１４１
；およびリム（Ｌｉｍ），米国特許第４，３９１，９０９号によって教示されるような、
アルギン酸−ポリリジン膜のような生体材料内にカプセル化される。カプセル化された細
胞およびビヒクルカプセルは、その後、被験者に腹腔内注射される。

さらに、ＳＢ−４由来の肝臓細胞は、線維芽細胞およびＳＢ−４由来の肝臓細胞を含む
合成肝臓様組織において使用され得る。典型的には、線維芽細胞と肝細胞の共培養は、肝
臓で典型的にみられる配置を、自動的には採用しない。さらに、２つの細胞型の情報交換
が不十分であるため、肝細胞は、しばしば機能的に非効率的である。この問題を解決する
ためには、細胞接着を促進するコラーゲンのパターン化されたフィルムとともに、マイク
ロ電子テクノロジーの標準的なフォトリソグラフィ技術を用いて基材（例えば、ホウケイ
酸ウェハ）を削り込むことができる。トナー（Ｔｏｎｅｒ）ら，１９９７，材料研究協会
秋季大会（Ｆａｌｌ Ｍｅｅｔｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ Ｒｅｓｅａ
ｒｃｈ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ），１−５；トナー（Ｔｏｎｅｒ）ら，１９８８，Ｎａ
ｔｕｒｅ，３９：１２８、を参照されたい。ＳＢ−４由来の肝臓細胞は、次いで、そのよ
うな表面上で培養され、コラーゲンでコーティングされた領域のみに付着し得る。線維芽
細胞は、その後、剥き出しの表面領域に導入され、周期的なパターンで２つの細胞型の密
な混合物を作り出す。この技術は、基材上の細胞型の任意の割合を可能にし、したがって
、どのような生理学的な値に調整することをも可能にする。さらに、任意のパターンサイ
ズ、形状、および数密度が、推定され、設計され得る。

遺伝子治療
本明細書に記載の幹細胞は、外因性の組換えポリペプチドを発現するために使用され得
る。従って、組換え核酸を含むそのような幹細胞は、本発明の範囲内である。組換え核酸
はポリペプチドをコードすることができ、幹細胞は、ポリペプチドをコードするｍＲＮＡ
を含むことができる。

ベータ２−ミクログロブリン遺伝子を発現しない、または細胞に対してＴリンパ球媒介
性反応を誘発するクラスＩ主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ）遺伝子によってコードさ
れる１つまたはより多くのタンパク質を発現しないように、これらの幹細胞は遺伝的に操
作され得る。これらの細胞は移植片の宿主拒絶に至らないので、万能ドナー細胞として使
用され得る。

したがって、本発明は、被験者にヘテロ核酸を導入するための方法を特徴とする。この
方法は、上述した幹細胞を得る工程であって、少なくとも１つの幹細胞がヘテロ核酸を含
み、およびそれを必要とする被験者に細胞を投与する工程を含む。ヘテロ核酸は、ポリペ
プチドをコードすることができる。

用語“ヘテロ（ｈｅｔｅｒｏｌｏｇｏｕｓ）”は相対的な用語であり、核酸の部分に関
して使用される場合は、天然で互いに同じ関係（ｒｅａｌｔｉｏｎｓｈｉｐ）で見出され
ない、２つまたはより多くの部分配列を含む核酸を指す。例として、組換え的に作製され
る核酸は、典型的には、新たな機能的核酸を作るように合成的に配置された、無関係の遺
伝子由来の２つ以上の配列を有し、例えば、１つの供給源由来のプロモーターおよび別の
供給源由来のコード領域である。２つの核酸は、それゆえ、この文脈において互いにヘテ
ロである。細胞に添加されると、組換え核酸はまた、細胞の内在性遺伝子に対してヘテロ
であろう。従って、染色体において、ヘテロ核酸は、染色体に組み込まれた非天然（非自
然的に発生する（ｎｏｎ−ｎａｔｕｒａｌｌｙ ｏｃｃｕｒｒｉｎｇ））核酸、または非
天然（非自然的に発生する）染色体外核酸を含むであろう。一方、自然に転座した染色体
の一部は、変異細胞にとって天然な内因性の核酸配列を含むため、本特許出願の文脈にお
いてヘテロとはみなされない。同様に、ヘテロタンパク質は、天然で互いに同じ関係で見
出されない、２つまたはより多くの部分配列を含むタンパク質（例えば、２つの部分配列
が単一の核酸配列によってコードされる“融合タンパク質”）を示す。このようなタンパ
ク質は、組換え技術によって生成され得る。

用語“組換え（ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ）”は、例えば、細胞、核酸、タンパク質また
はベクターに関して用いられる場合は、細胞、核酸、タンパク質またはベクターが、ヘテ
ロ核酸もしくはタンパク質の導入や、天然の核酸もしくはタンパク質の変化によって改変
されていること、または、細胞が、そのように改変された細胞に由来することを示す。従
って、例えば、組換え細胞は、天然の（自然に発生する）形態の細胞の中には見出されな
い遺伝子を発現し、または、発現されたもしくは全く発現されない下で、そうでなかった
ら正常に発現されもしくは異常に発現する、天然の遺伝子の二次複製物（ｓｅｃｏｎｄ
ｃｏｐｙ）を発現する。

上記の幹細胞および方法は、当技術分野で公知の種々の遺伝子治療において使用され得
る。遺伝子治療は、エキソビボ（ｅｘ ｖｉｖｏ）およびインビボの両方の技術を含む。
具体的には、上述した幹細胞は、オリゴヌクレオチドモジュレータまたはモジュレータを
コードする核酸分子によってエキソビボで遺伝的に操作され、次いで、操作された細胞は
治療されるべき患者に提供されている。細胞培養物は、例えば、細胞を解離し（例えば、
機械的解離による）、薬学的に許容される担体（例えば、リン酸緩衝生理食塩水）と細胞
を密接に混合することにより、患者への投与のために製剤化されてもよい。または、細胞
は、適当な生体適合性サポート上で培養され、患者に移植されてもよい。操作された細胞
は、異種またはアロタイプ拒絶反応を回避するよう、特徴的には自己由来である。そのよ
うなエキソビボ法は、当該分野で周知である。

細胞は、当技術分野で公知の技術を用いてオリゴヌクレオチドまたは核酸分子が投与さ
れることにより、操作され得る。例えば、オリゴヌクレオチドおよび他の核酸分子は、“
裸の（ｎａｋｅｄ）”核酸分子（米国特許第５，６７９，６４７号）、もしくはサポニン
（例えば、米国特許第５，７３９，１１８号を参照）もしくはカチオン性ポリアミン（例
えば、米国特許第５，８３７，５３３号参照を参照）のような細胞による核酸の取り込み
を促進する１つもしくはより多くの他の薬剤との組成物中に製剤化された核酸分子の直接
注射により；微粒子衝撃（ｍｉｃｒｏｐａｒｔｉｃｌｅ ｂｏｍｂａｒｄｍｅｎｔ）によ
り（例えば、“遺伝子銃”の使用を介して；バイオリスティック（Ｂｉｏｌｉｓｔｉｃ）
，デュポン）；脂質、細胞表面受容体もしくはトランスフェクション剤によって核酸分子
をコーティングすることにより；リポソーム、微粒子もしくはマイクロカプセル中に核酸
分子をカプセル化することにより；核に移行することが知られたペプチドに連結された核
酸分子の投与により；または、受容体を特異的に発現する細胞型を標的化するために使用
され得る、受容体媒介エンドサイトーシスを受けるリガンドに連結された核酸分子の投与
により、投与されることができる。

核酸−リガンド複合体は、核酸がリソソーム分解を回避できるように、エンドソームを
破壊する融合性ウイルスペプチドをリガンドが含む；または、特異的な受容体を標的化す
ることによって、インビボでの細胞特異的な取り込みおよび発現のために核酸分子が標的
化されるように形成され得る。また、細胞核中へのアンチセンスオリゴヌクレオチドの導
入、発現および蓄積のための効率的な方法は米国特許第６，２６５，１６７号に記載され
ており、これにより核内のセンスｍＲＮＡにアンチセンスオリゴヌクレオチドがハイブリ
ダイズすることを可能にし、それにより、アンチセンスオリゴヌクレオチドが切断された
り細胞質に輸送されたりすることを防止する。本発明はまた、核酸分子の細胞内導入、続
けて、当技術分野で公知の相同組換えによる発現のための宿主細胞ＤＮＡ内への取り込み
を意図する。

ポリヌクレオチドはまた、適切な発現ベクターに組み込まれ得る。遺伝子治療用途に適
した多数のベクターが、当該技術分野で知られている（例えば、ウイルスベクター（Ｖｉ
ｒａｌ Ｖｅｃｔｏｒｓ）：基礎科学および遺伝子治療（Ｂａｓｉｃ Ｓｃｉｅｎｃｅ
ａｎｄ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ），イートンパブリッシング社（Ｅａｔｏｎ Ｐｕｂ
ｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．）（２０００）を参照）。

発現ベクターは、プラスミドベクターであってもよい。プラスミドＤＮＡの生成および
精製方法は、迅速かつ簡単である。さらに、プラスミドＤＮＡは、典型的には、宿主細胞
のゲノムに組み込まれないが、染色体組込みが起こすことがある遺伝毒性の問題を排除す
る、別個の存在として、エピソームの位置に維持される。種々のプラスミドは、現在容易
に商業的に入手可能であり、特に哺乳動物システムで使用するように設計されている多く
と共に、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）や枯草菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓ
ｕｂｔｉｌｉｓ）由来のものを含む。本発明において使用され得るプラスミドの例として
は、限定されるものではないが、真核生物発現ベクターｐＲｃ／ＣＭＶ（インビトロジェ
ン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ））、ｐＣＲ２．１（インビトロジェン）、ｐＡｄ／ＣＭＶお
よびｐＡｄ／ＴＲ５／ＧＦＰｑ（マッシー（Ｍａｓｓｉｅ）ら，（１９９８） Ｃｙｔｏ
ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２８：５３−６４）が挙げられる。例示的な実施形態では、プラ
スミドは、ｐＲｃ／ＣＭＶ、ｐＲｃ／ＣＭＶ２（インビトロジェン）、ｐＡｄＣＭＶ５（
ＩＲＢ−ＮＲＣ）、ｐｃＤＮＡ３（インビトロジェン）、ｐＡｄＭＬＰ５（ＩＲＢ−ＮＲ
Ｃ）、またはｐＶＡＸ（インビトロジェン）である。

発現ベクターは、ウイルスベースのベクターであり得る。ウイルスベースのベクターの
例としては、制限されるものではないが、複製欠損レトロウイルス、レンチウイルス、ア
デノウイルスおよびアデノ随伴ウイルスに由来するものが挙げられる。レトロウイルスベ
クターおよびアデノ随伴ウイルスベクターは現在、インビボで、特にヒトに対する、外来
オリゴヌクレオチドまたは遺伝子の移送のための選択肢である、組換え遺伝子輸送システ
ムである。これらのベクターは、細胞への遺伝子の効率的な輸送を提供し、輸送された核
酸は、宿主の染色体ＤＮＡに安定に組み込まれる。レトロウイルスの使用のための主要な
必要条件は、それらの使用の安全性を確保することであり、特に、細胞集団中の野生型ウ
イルスの伝播の可能性に関するものである。レトロウイルスベクターが由来し得るレトロ
ウイルスとしては、限定されるものではないが、モロニーマウス白血病ウイルス、脾臓壊
死ウイルス、ラウス肉腫ウイルス、ハーベイ肉腫ウイルス、トリ白血病ウイルス、テナガ
ザル白血病ウイルス、ヒト免疫不全ウイルス、アデノウイルス、骨髄増殖性肉腫ウイルス
、および乳癌ウイルスが挙げられる。特定のレトロウイルスは、当業者に周知であるｐＬ
Ｊ、ｐＺＩＰ、ｐＷＥおよびｐＥＭを含む。

細胞バンク
本発明は、種々の幹細胞株への便利な体系的アクセスのための、幹細胞バンクまたはラ
リを特徴とする。バンクやライブラリー内のＳＢ−３またはＳＢ−４細胞は、健常な被験
者、または既知の病状、もしくは例えば、研究者のようなユーザーにとって貴重である病
状を有する被験者に由来する。また、上述した幹細胞から分化した細胞を備える細胞バン
クまたはライブラリーも、本発明の範囲内である。幹細胞から分化した細胞の例は、脳細
胞、ニューロン、アストロサイト、グリア細胞、Ｔ細胞、Ｂ細胞、軟骨細胞、骨細胞、膵
島細胞、脂肪細胞、心臓細胞、肝臓細胞、腎臓細胞、肺細胞、筋細胞、および眼細胞が挙
げられる。被験者は、ヒトまたは非ヒト脊椎動物である。幹細胞は、ヒト、マウス、ウサ
ギ、ウシ、ブタなどのような任意の哺乳類生物に由来し得る。

バンクやライブラリー中の細胞は、表現型情報、形態学的特徴、分化プロファイル、血
液型、主要組織適合遺伝子複合体、ドナーの病状、または遺伝子型情報（例えば、遺伝子
に関連する特定の核酸配列の単一ヌクレオチド多型（ＳＮＰ）、またはゲノムもしくはミ
トコンドリアＤＮＡ）を含む、所定の特徴に従ってカタログ化される。幹細胞が生存し、
機能し続けるために、細胞は、適切な条件下で（典型的には凍結により）貯蔵される。カ
タログ化では、限定されるものではないが、まとめられた記録文書、または情報が入力さ
れたコンピュータデータベースのような、各細胞集団について得られた特徴の集約された
記録を作成し続けてもよい。本質的には、この実施形態では、幹細胞バンクの作製に関す
る。幹細胞バンクは、試料の複数から、ユーザーのニーズに適した特定の幹細胞試料の選
択を容易にする。従って、本発明の別の実施形態は、別々の供給源から得られる幹細胞試
料の複数を含み、少なくとも１つの所定の特性に従って特徴付けられ、およびカタログ化
された幹細胞バンクに関する。さらなる実施形態は、複数の供給源から幹細胞試料を集め
ること；少なくとも１つの所定の特徴に従って試料をカタログ化すること、および細胞を
生存させる条件下で細胞を保存することを含む、幹細胞バンクを確立する方法に関する。

幹細胞集団を生存させていられる条件下で、個々の容器内に配置された幹細胞集団の複
数と；少なくとも１つのプロセスモジュール、ディスプレイ、および各々の幹細胞集団に
ついての少なくとも１つの特徴の情報を含む記憶媒体を含むデータベースコンピュータ；
ならびに、ユーザーによる指令に応じて前記ディスプレイ上に情報が閲覧可能にさせるた
めの、少なくとも１つのプログラムコードモジュールを含む、幹細胞バンクシステムは、
本発明の範囲内である。具体的な実施形態において、本発明は、病状を有する被験者から
得られた幹細胞を幹細胞集団が有する、幹細胞バンクシステムを特徴とする。病状は、上
述の変性疾患を含んでもよい。様々な疾患を有する異なる被験者に由来するＳＢ−３また
はＳＢ−４細胞、ならびに幹細胞は、特徴付けされる。特徴（複数可）は、データベース
コンピュータに入力される。さらに、または代わりに、細胞は、病状に必ずしも関連付け
られていない特定の表現型に基づいて、特徴付けされる。例えば、肝臓細胞は、カフェイ
ン、アルコール、医薬などの或る化合物を代謝する能力に基づいて、そのような異なる代
謝能力の遺伝的基盤またはそれに関連する基礎となる生理機能を研究するため、特徴付け
られてもよい。他の型の細胞は、機能および／または形態学的表現型に基づいて、特徴付
けされてもよい。

ある実施形態では、ＳＢ−３またはＳＢ−４細胞から分化した細胞は、操作されたベク
ター、または他の遺伝物質の導入によって、分化または脱分化に影響を与えるための条件
に供されてもよい。脱分化は、あまり分化していない細胞の特性を呈するような細胞の操
作を含む。

本発明の幹細胞ライブラリーは、上記のような手段で、変性疾患、癌または免疫障害を
治療するために使用され得る薬剤または化合物をスクリーニングするために使用され得る
。ライブラリーは、ハイスループットスクリーニングに適しており、特定の被験者のため
に特に有効な薬剤を同定するために有用である。ハイスループットスクリーニングのため
には、幹細胞は、マルチウェルプレートまたはガラススライドもしくはマイクロチップの
ウェル内に導入されることができ、試験薬剤と接触させられ得る。一般に、細胞は、整列
して、特に指定可能に整列して組織化されて、細胞および溶液を操作するために、ならび
に、特に検査されている機能に関して細胞をモニターするためにロボットが都合良く使用
される。ハイスループット形式を使用する利点は、多数の試験薬剤が並列に検査されるこ
とができ、および、希望するのであれば、試験条件と同一の条件下で対照反応も実行され
得ることである。このようにして、本発明のスクリーニング方法は、例えば細胞を所望の
細胞型に分化させるように誘導する薬剤のような、幹細胞の機能を変化させることができ
る薬剤、または、例えば調節分子の発現のレベルを高く維持することによって自然分化を
防止する薬剤を同定するための、１つの、いくつかのまたは多数の試験薬剤をスクリーニ
ングする手段を提供する。

万能ドナー細胞
上記の幹細胞は、移植のための組織適合ドナー細胞または組織を生成するために遺伝的
に操作され得る。移植および細胞療法の目標は、障害のある組織または臓器を、機能的な
ドナー組織または臓器とうまく置き換えることである。しかし、移植が成功するためには
、２つの大きな障壁：適切なドナー組織または臓器の入手と、免疫拒絶とを克服する必要
がある。障害のある組織または臓器の交換や拒絶反応の治療は、許容されるドナーの限ら
れた数、および長期の免疫抑制プロトコルと共に有毒な免疫抑制薬の同時投与の必要性に
よって制限される。従来および実験的な移植プロトコルは、主に兄弟姉妹（ｓｉｂｌｉｎ
ｇ）ドナー、同種ドナーの他の小さなプール、および異種ドナーに依存している。上述の
遺伝的に操作された幹細胞は、これらの制限を克服するために使用され得る。

より具体的には、本明細書に記載の幹細胞は、ＭＨＣクラスＩＩ分子をその表面上に発
現しないように遺伝的に操作され得る。より好ましくは、細胞は、実質的に全ての細胞表
面クラスＩおよびクラスＩＩ ＭＨＣ分子を発現しないように、操作される。本明細書で
使用される用語“発現しない”とは、応答を誘発するには不十分な量が細胞の表面に発現
されること、または発現されるタンパク質が欠損しているため応答を誘発しないことのい
ずれかを、意味する。

ＭＨＣ分子は、ＨＬＡ分子を、具体的にはクラスＨＬＡ Ａ、ＢおよびＣ、ならびにク
ラスＩＩ ＨＬＡ ＤＰ、ＤＱおよびＤＲ、ならびにそのサブクラスを意味する。この用
語は一般に、ヒトＭＨＣに特異的なものとして解釈されるが、本明細書では、ドナー細胞
種からの同等のＭＨＣ遺伝子を含むことが意図され、例えば、細胞がブタ由来のものであ
る場合、用語ＨＬＡは、ＭＨＣ ＩまたはＩＩの同等のブタＭＨＣ分子を指すであろう。
クラスＩＩ ＭＨＣ分子が除去されると、ＣＤ４＋ Ｔ細胞は、遺伝的に操作された内皮
細胞を認識せず；クラスＩおよびクラスＩＩ ＭＨＣ分子の両方が除去されると、ＣＤ４
＋やＣＤ８＋細胞はいずれも改変された細胞を認識しない。

幹細胞に施される好ましい遺伝子改変は、１）クラスＩＩ ＭＨＣ分子の組立および細
胞表面への輸送、ならびに抗原ペプチドの装填に機能する内因性の不変鎖遺伝子を破壊す
ること、および２）すべてのクラスＩ ＭＨＣ分子の細胞表面発現に必要なタンパク質を
コードする内因性β_２−ミクログロブリン遺伝子（β_２Μ遺伝子）を破壊することを含む
。代替的には、単に不変鎖遺伝子が破壊されている。不変鎖は、抗原性ペプチド断片のＭ
ＨＣクラスＩＩ分子への挿入のために必要であると考えられている。併せて、抗原ペプチ
ドとＭＨＣは、Ｔ細胞によって認識される。抗原性ペプチドの非存在下では、Ｔ細胞認識
は通常得られず、また、ＭＨＣクラスＩＩ分子は適切に折り畳まれない。したがって、不
変鎖を欠く細胞においては、ペプチドの提示が廃止され、細胞表面ＭＨＣの微小量が得ら
れたとしても、それらはペプチドを欠き、それゆえ非免疫原性であり得る。

これらの遺伝子の破壊は、相同組換え遺伝子標的化技術の手段を用いて達成され得る。
これらの技術は、当該分野で周知である。例えば、米国特許第６９１６６５４号および６
９８６８８７号を参照されたい。

組成物
本発明は、ＳＢ−３もしくはＳＢ−４細胞または活性薬剤／化合物を含む、医薬組成物
を提供する。医薬組成物は、細胞または活性薬剤／化合物、および任意に他の活性物質、
の治療上の有効量を、医薬的に許容される担体と混合することによって調製され得る。担
体は、投与経路に応じて、様々な形態を採り得る。他の活性物質の例としては、既知のま
たは上述のスクリーニング方法により同定された活性化合物が挙げられる。

上記の医薬組成物は、従来の薬学的賦形剤および調製方法を用いて調製され得る。全て
の賦形剤は、崩壊剤、溶媒、造粒剤、保湿剤、および結合剤と混合されてもよい。本明細
書で使用されるとき、用語“有効量（ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ａｍｏｕｎｔ）”または“治
療上の有効量（ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃａｌｌｙ ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ａｍｏｕｎｔ）
”は、特定の疾患の少なくとも１つの症状またはパラメータの測定可能な改善をもたらす
量を指す。上述した幹細胞の治療上の有効量は、当技術分野で公知の方法によって決定さ
れ得る。疾患を治療するための有効量は、当業者に公知の経験的方法によって容易に決定
され得る。患者に投与される正確な量は、疾患の状態および重症度、ならびに患者の体調
に応じて異なる。任意の症状またはパラメータの測定可能な改善は、当業者によって決定
され、または患者によって医師に報告され得る。なお、上記の疾患の任意の症状またはパ
ラメータの任意の臨床的または統計的に有意な減衰または改善は、本発明の範囲内である
ことが理解されるであろう。臨床的に有意な減衰または改善は、患者および／または医師
に知覚されることを意味する。

“薬学的に許容される”という語句は、ヒトに投与された場合、生理学的に許容され、
および典型的には望ましくない反応を生じないような、分子実体（ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
ｅｎｔｉｔｉｅｓ）と他の成分との組成物を指す。好ましくは、用語“薬学的に許容され
る”は、連邦もしくは州政府の規制機関によって承認され、または米国薬局方もしくは哺
乳類、特にヒトで使用するための他の一般に認められた薬局方に列挙されていることを意
味する。薬学的に許容される塩、エステル、アミドおよびプロドラッグは、健全な医学的
判断の範囲内で、過度の毒性、刺激、アレルギー反応などを伴わずに患者の組織との接触
に使用されることに適しており、妥当な利益／リスク比に相応し、およびその意図される
使用に有効であるような塩（例えば、カルボキシレート塩、アミノ酸付加塩）、エステル
、アミドおよびプロドラッグを指す。

上記の医薬組成物に適用される担体は、化合物と共に投与される希釈剤、賦形剤または
ビヒクルを指す。そのような医薬担体は、水および油などの殺菌された液体であり得る。
水または水溶液、食塩水、ならびに水性デキストロースおよびグリセロール溶液は、特に
注射用溶液のための担体として好ましく使用される。適切な医薬担体は、“レミントンの
薬学（Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ）”
Ｅ．Ｗ．マーティン（Ｍａｒｔｉｎ），第１８版に記載されている。

上記の幹細胞は、点滴もしくは注射（例えば、静脈内、髄腔内、筋肉内、腔内、気管内
、腹腔内もしくは皮下）、経口的、経皮的または当技術分野で公知の他の方法を介して、
個体に投与され得る。投与は、２週間に１回、週に１回、またはより頻繁であり得るが、
頻度は、病気または疾患の維持段階において減少させてもよい。

ヘテロおよび自己（ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ）細胞の両方が使用され得る。前者の場合、
ＨＬＡマッチングは、宿主反応を回避または最小化するために行われるべきである。後者
の場合、自己細胞は被験者から濃縮され、および精製され、ならびに、後の使用のために
保存される。細胞は、エキソビボで宿主または移植（ｇｒａｆｔ）Ｔ細胞の存在下で培養
され、および宿主に再導入されてもよい。これは、宿主が細胞を自分自身として認識し、
およびＴ細胞活性の低下を良好に提供するという利点を有することもある。

用量および投与頻度は、当業者に知られている急性期の臨床徴候のうち少なくとも１つ
以上についての、好ましくは１つを超えるものについての減少または非存在下で、寛解期
の維持を確認する臨床徴候に依存する。より一般的には、用量および頻度は、上記組成物
を用いた治療が意図された病状または疾患の病理学的徴候、ならびに臨床的および亜臨床
症状の後退に部分的に依存する。投薬量および投与レジメン（ｒｅｇｉｍｅｎ）は、治療
を受ける患者または哺乳動物被験者における年齢、性別、および体調だけでなく複合体の
利益および副作用、ならびに、当業者によって評価されるような医師の判断に応じて、調
節され得る。上記方法の全てにおいて、幹細胞は、１×１０^４〜１×１０^１０／回で被験
者に投与され得る。

以下の具体例は、単なる例示であり、どのような手段での開示の残り部分がどのような
ものであれ、限定するものではないと解釈されるべきである。さらに詳述されることなし
に、当業者は、本明細書の記載に基づいて、最大限に本発明を利用できると考えられる。
本明細書で引用された全ての刊行物は、その全体が参照されて本明細書中に援用される。
さらに、以下に提案されるいずれのメカニズムも、請求される発明の範囲を決して限定す
るものではない。

実施例１
血液試料または骨髄試料がヒトから採取され、抗凝固ＥＤＴＡチューブまたはヘパリン
チューブに入れられた。チューブを４℃で７２時間静置させた後、試料は２つの層に分離
した。赤くなった下層は、ほぼ完全に赤血球（ＲＢＣ）および白血球から構成されていた
。上層は、６μｍ未満の直径を有する、ＳＢ細胞という名前の細胞を含んでいた。ＳＢ細
胞は、米国２０１２／００３４１９４号にさらに詳細に記載されている。

ＳＢ細胞はその後、５ｎｇ／ｍｌ Ｒ−スポンジン−１、５ｎ／ｍｌ ＳＣＦ、５ｎｇ
／ｍｌ Ｇ−ＣＳＦ、２０ｎｇ／ｍｌ ｂＦＧＦ、２０ｎｇ／ｍｌ ＥＧＦ、および５ｎ
ｇ／ｍＬ ＰＤＧＦを含むＳｔｅｍＰｒｏ−３４培地（インビトロジェン）で４〜１４日
間培養された。上記培養条件下で、細胞の直径は６〜２５μｍに増加した。非接着性を維
持した細胞はＳＢ−３細胞と命名され、接着性になったものはＳＢ−４細胞と命名された
。ＳＢ−４細胞は円形または楕円形であり、ＳＢ−３細胞よりもサイズが大きい、すなわ
ち、７〜３０μｍであった。

ＣＤ３４９抗体は、ＳＢ混合物からＣＤ３４９＋細胞を単離するために使用された。ま
た、米国２０１２／００３４１９４号を参照されたい。これらのＣＤ３４９＋細胞はＳＢ
細胞と同じように培養され、また、ＳＢ−３細胞に成長し、ＳＢ−４細胞として壁に付着
する。

試験は、ＳＢ−３細胞が拡張する能力を有することを示した。ＳＢ−４細胞は、求めら
れる成長因子が添加される限り、増殖および分化を経ることができた。ＳＢ−４細胞は、
正常な核型および正常なテロメラーゼ活性を備えたまま、少なくとも４０世代を経ること
ができた。培養されたＳＢ−４細胞は、約２４時間の倍加時間（ｄｏｕｂｌｉｎｇ ｔｉ
ｍｅ）を持っていた。

ＲＴ−ＰＣＲ分析は、ＳＢ−３細胞がＣＤ１０、ＣＸＣＲ４およびＣＤ３１を発現した
が、ＣＤ９、ＣＤ３４９、ＣＤ２７１、ＣＤ１３３、ＣＤ６６ｅ、ＣＤ４５、ＣＤ２０ま
たはＣＤ４を発現しなかったことを示す。ＳＢ−４細胞は、ＣＤ１０５、ＣＤ４４および
ネスチンを発現したが、ＣＤ３４、ＣＤ９０、ＣＤ４１、ＣＤ１１７、α−フェトプロテ
イン、ＰＯＵ５Ｆ１、Ｎａｎｏｇ、Ｓｏｘ２、ＨＮＦ４ａ、ＣＤ３６、ＨＮＦ３Ｂ、Ｐａ
ｘ６またはＰａｘ７を発現しなかった。ＲＴ−ＰＣＲのためのプライマーが、以下の表１
に示される：

実施例２
ＳＢ−３が異なる細胞系統に分化することができる幹細胞であることを実証するために
、アッセイが行われた。

簡潔には、ＳＢ−３細胞は上記のようにして被検者から得られた。ＳＢ−３細胞はその
後、分化培地で培養された。リアルタイムＲＴ−ＰＣＲでの分化マーカーを検出するため
に使用される全てのプライマーは、以下の表２に記載されている：

ＳＢ−３細胞は、ニューロン（外胚葉）および膵島細胞（内胚葉）の形成についての初
期マーカーであるネスチンを発現するように誘導された。簡潔にいうと、ＳＢ−３細胞は
、１０ｎＭグルココルチコイドおよび１０％ＦＢＳを含む誘導培地中で培養された。１ヶ
月の処理後、ＲＮＡが抽出され、リアルタイムＰＣＲによって遺伝子発現が測定された。
ネスチンの発現が検出された。

内胚葉細胞は、その多角の形状によって特徴付けられる。２つの肝細胞マーカー（アル
ブミンおよびトランスフェリン）、および３つの膵島細胞マーカー（インスリン、α−フ
ェトプロテインおよびＨＮＦ４アルファ）の発現が検出された。加えて、ウェスタンブロ
ットおよびＥＬＩＳＡの両方がまた、分化した細胞中のアルブミンの発現を検出した。こ
れらの結果は、ＳＢ−３細胞が肝細胞に分化し、その一部は膵島細胞に分化したことを示
している。

外胚葉細胞は、そのフィラメント状の特徴によって特徴付けられる。神経細胞へのＳＢ
−３細胞の分化は、リアルタイムＲＴ−ＰＣＲによって確認され、ＣＤ１３３、ネスチン
、微小管関連タンパク質ＩＩ、ＧＡＢＡ受容体、ＮＲ４Ａ２、Ｎ−ｃａｍ、チロシンヒド
ロキシラーゼ、ニューロフィラメント、およびタウを含む多くの神経細胞マーカーの発現
を検出した。

さらに、ＳＢ−３細胞は、脂肪細胞や骨形成細胞、すなわち、中胚葉細胞に分化するよ
うに誘導された。ＳＢ−３細胞は、培地Ａ、Ｂ、Ｃ、ＤおよびＥ中で順次培養された。次
いで、培地が、８週間、脂肪細胞分化培地（インビトロジェン）に置換された。脂肪細胞
は、オイルレッドＯを用いて染色され、ＯＤ４９０ ＥＬＩＳＡ分光光度計で検出された
。あるいは、培地は骨形成培地（インビトロジェン）に置換された。骨形成細胞は、培地
交換後２〜４週間で観察された。骨形成細胞はアリザリンレッド（Ａｌｉｚａｒｉｎ Ｒ
ｅｄ）で染色され、そして分光光度計でＯＤ４０５ｎｍで測定されるアリザリンレッドを
細胞をから抽出することにより検出された。結果は、ＳＢ−３細胞が、脂肪細胞または骨
形成細胞に分化され得ることを示している。

他の中胚葉細胞への誘導のために、ＳＢ−３細胞は、１０ｎＭグルココルチコイドおよ
び１０％ＦＢＳを含む培地で培養された。１ヶ月の処理後、ＲＮＡが細胞から抽出され、
いくつかの遺伝子の発現が、リアルタイムＰＣＲによって測定された。ミオシン重鎖およ
び骨格ミオシン軽鎖の検出可能な発現は、ＳＢ−３細胞が心筋細胞および骨格筋細胞に分
化させられたことを示す。

上記の結果は、シグナルを受けると、ＳＢ−３細胞が活性化され、ダメージを受けた組
織を修復するために適切な組織に分化させられることを示唆している。従って、これらの
細胞は、成体多能性幹細胞を含み、ならびに遺伝子治療、遺伝子バンク、薬物スクリーニ
ングおよび万能ドナー細胞を作成するために使用され得る。また、これらの細胞は、変性
疾患、自己免疫疾患、または癌を治療するために使用され得る。

実施例３
ＳＢ−４細胞は、４つの異なる種類の培地中で培養され、分化が成功することを確認す
るために分析された。中胚葉分化を試験するために、細胞は、脂肪生成および骨形成培地
中で培養された。それらの陰性対照とそれぞれ比較した場合、オイルレッドＯおよびアリ
ザリンレッド染色は、脂肪細胞および骨細胞の有意な増加を示した。

外胚葉分化能を調べるために、ＳＢ−４細胞は、ニューロン分化培地で培養された。Ｉ
ＣＣニューロフィラメント染色およびリアルタイム−ＰＣＲからの結果は、ＳＢ−４がニ
ューロン分化能を有することを確認した。

ＳＢ−４細胞はまた、以下のような３つの異なる培地で連続して培養することにより、
肝細胞に分化するよう誘導された。

まず、ＳＢ−４細胞は、３％ウマ血清、１×抗真菌薬、１×Ｌ−グルタミン、および５
ｎｇ／ｍＬのアクチビンを含むＤＭＥＭ／高グルコース培地中で５日間培養された。次に
、細胞は、２０ｎｇ／ｍＬ ｂＦＧＦおよび５ｎｇ／ｍＬ ＢＭＰ２とアクチビンが交換
された以外は同じ培地中で、１５日間さらに培養された。最後に、細胞は、１％ウマ血清
、１０ｎｇ／ｍＬ ＨＧＦ、１０ｎＭグルココルチコイドＤＥＸおよび１０ｎｇ／ｍｌ
ＯＳＭを含むＨｅｐａｔｏ ＺＹＭＥ−ＳＦＭ培地で１５日間、または肝細胞様細胞が出
現するまで培養された。培養培地は、少なくとも週２回、日常的にリフレッシュされた。
肝細胞様細胞は、顕微鏡で観察された。さらに、それらは、下記のプライマーを用いたリ
アルタイムＲＴ−ＰＣＲにより、肝細胞マーカーの発現について試験された。

結果は、肝細胞様細胞が、実際に３つの肝細胞マーカー、すなわち、アルブミン、トラ
ンスフェリンおよびＦＴＮＦ−３ベータを発現したことを示している。

我々は、これらの肝細胞様細胞が、アンモニアなどの毒素を代謝して正常に除去し、お
よび解毒のための尿素を合成する能力を持つと考える。したがって、肝細胞様細胞は、ヒ
ト肝機能を再現し、急性肝不全の患者を支援することができる人工肝臓システムとして使
用され得る。加えて、我々の肝細胞様細胞は、小さい丸剤／医薬のための担体として使用
され得ることから、マーケティング上重要な製品であるアルブミンを生成することができ
る。

従って、これらの肝細胞様細胞は、人工肝臓システムを作製し、ドラッグデリバリーを
容易にするために使用され得る。これらの細胞はまた、肝臓変性疾患および肝臓癌を治療
するために有用であろう。

他の実施形態
本明細書に開示された全ての特徴は、任意の組み合わせで組み合わせられてもよい。本
明細書で開示した各特徴は、同一、同等、または類似の目的を果たす代替的特徴によって
置き換えられてもよい。したがって、別段の記載がないかぎり、開示された各特徴は、同
等または類似の特徴の包括的なシリーズの一例に過ぎない。

本発明の多数の実施形態が記載されている。それでもなお、本発明の精神および範囲か
ら逸脱することなく、種々の改変がなされ得ることが理解される。したがって、他の実施
形態は、以下の請求項の範囲内である。

Claims (6)

1. 膵島細胞、神経細胞、脂肪細胞、または骨形成細胞を調製する方法であって、
   単離された体細胞の集団を、前記膵島細胞、前記神経細胞、前記脂肪細胞、または前記骨形成細胞に誘導するために分化培地で培養すること、を含み、
   前記単離された体細胞の集団が
   （ｉ）ＣＤ１０＋、ＣＸＣＲ４＋、ＣＤ３１＋、ＣＤ９−、ＣＤ３４９−、ＣＤ２７１−、ＣＤ１３３−、ＣＤ６６ｅ−、ＣＤ４５−、ＣＤ２０−、およびＣＤ４−、ならびに６〜２５μｍのサイズである、または
   （ｉｉ）ＣＤ１０５＋、ＣＤ４４＋、ネスチン＋、ＣＤ３４−、ＣＤ９０−、ＣＤ４１−、ＣＤ１１７−、α−フェトプロテイン−、ＰＯＵ５Ｆ１−、Ｎａｎｏｇ−、Ｓｏｘ２−、ＨＮＦ４ａ−、ＣＤ３６−、ＨＮＦ３Ｂ−、Ｐａｘ６−、およびＰａｘ７−、ならびに７〜３０μｍのサイズであり、
   前記単離された体細胞の集団が血液試料または骨髄試料に由来する、方法。
2. 前記単離された体細胞の集団を、
   複数の細胞を含む血液試料または骨髄試料が上層と下層とに分離されるまで、前記試料をＥＤＴＡまたはヘパリンと共に容器中でインキュベートすること、
   前記上層を回収すること、
   サイズが０．３〜６．０μｍである小型体性幹細胞の集団を、前記上層から単離すること、および
   Ｒ−スポンジン−１、ＳＣＦ、Ｇ−ＣＳＦ、ｂＦＧＦ、ＥＧＦおよびＰＤＧＦを含む培地で前記小型体性幹細胞を培養して、前記単離された体細胞の集団を調製すること、
   を含むプロセスにより調製することを有する、請求項１に記載の方法。
3. 前記単離された体細胞の集団が多能性または多分化能である、請求項１または２に記載の方法。
4. 前記単離された体細胞の集団がＣＤ１０＋、ＣＸＣＲ４＋、ＣＤ３１＋、ＣＤ９−、ＣＤ３４９−、ＣＤ２７１−、ＣＤ１３３−、ＣＤ６６ｅ−、ＣＤ４５−、ＣＤ２０−、およびＣＤ４−、ならびに非接着性である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
5. 前記単離された体細胞の集団がＣＤ１０５＋、ＣＤ４４＋、ネスチン＋、ＣＤ３４−、ＣＤ９０−、ＣＤ４１−、ＣＤ１１７−、α−フェトプロテイン−、ＰＯＵ５Ｆ１−、Ｎａｎｏｇ−、Ｓｏｘ２−、ＨＮＦ４ａ−、ＣＤ３６−、ＨＮＦ３Ｂ−、Ｐａｘ６−、およびＰａｘ７−、ならびに接着性である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
6. 前記単離された体細胞の集団がヒト細胞である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。