JP2017537893A - 抗cs1抗体および抗体薬結合体 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2014年10月31日提出の米国特許仮出願第62/073,824号の、35 U.S.C. § 119(e)の下での恩典を主張し、その内容は全体が参照により本明細書に組み入れられる。
本出願は配列リストを含み、これはASCIIフォーマットで電子的に提出しており、その全体が参照により本明細書に組み入れられる。2015年10月22日に作製した前記ASCIIコピーは、381493-838US(136841)_SL.txtと命名し、サイズは77,289バイトである。
本出願は、特に、公知の抗CS1抗体とは異なるエピトープに結合する新しい抗CS1抗体、新しい抗CS1抗体を含む抗体薬物結合体(「ADC」)、新しい抗体およびADCを含む組成物、新しい抗体およびADCの作製法、ならびに生物学的プロセスを調節し、疾患を処置するための新しい抗体およびADCの使用法に関する。
多発性骨髄腫(「MM」)は、骨髄中の過剰の単型的形質細胞ならびに血清および/または尿中のモノクローナル免役グロブリンのレベル上昇によって特徴付けられる、生殖後(postgerminal)成熟B細胞から生じる不治の悪性病変である(Lonial et al., 2012, J Clin Oncol 30:1953-1959(非特許文献1))。一般的な臨床的続発症には、溶解性骨病変、骨折、骨髄抑制、および腎不全が含まれる。米国において、推定年間診断数は20,000件である(Lonial et al., 2012, J Clin Oncol 30:1953-1959(非特許文献1))。MMはすべての血液悪性病変の15%およびすべての悪性病変の2%を占める(Lonial et al., 2012, J Clin Oncol 30:1953-1959(非特許文献1))。高用量化学療法および幹細胞移植の進歩により、MMにおける全生存(OS)および無再発の疾患期間が改善された(Lonial et al., 2012, J Clin Oncol 30:1953-1959(非特許文献1))が、再発は不可避である。プロテアソーム阻害剤(現在承認されている:Velcade(登録商標)(ボルテゾミブ)、Kyprolis(登録商標)(カルフィルゾミブ))、ならびに免疫調節薬のサリドマイド、Revlimid(登録商標)(レナリドマイド)、およびPomalyst(登録商標)(ポマリドマイド)などの、より新しい治療薬が、新しく診断された、再発した、または難治性疾患の患者で臨床的恩典を示した(Lonial et al., 2012, J Clin Oncol 30:1953-1959(非特許文献1))。これらの治療の進歩にもかかわらず、再発性または難治性MMの長期コントロールは、ほとんどのMM患者にとって医学的に必要なままである。免疫調節薬(IMiD)およびプロテアソーム阻害剤の両方に抵抗性の進行性疾患は、特に不良な予後を伴う(Lonial et al., 2012, J Clin Oncol 30:1953-1959(非特許文献1))。したがって、既存の第一世代薬剤を増強し、患者の転帰を改善し続けるために、さらなる新規治療薬がおおいに必要とされている。
1つの局面において、本開示は、文献に報告されている抗CS1抗体、特に抗体LucX(およびそのヒト化型、PDL241)、エロツズマブおよびLuc34.3.8(例えば、PCT公報WO 2004/100898、WO 2005/102387、およびWoo, et al., 2013, Arthritis Res Ther 15(6):R207参照)が結合するエピトープとは異なるエピトープで、ヒトCS1(「HuCS1」;SEQ ID NO:1)に特異的に結合する、新しい抗体、および/または結合断片を提供する。新しい抗体の1つは独特のエピトープに結合する。この抗体はインビボですぐれた抗増殖特性を示す。エロツズマブとは異なり、本明細書に記載の新しい抗体および結合断片はすべて、カニクイザルCS1(「CmCS1」;SEQ ID NO:3)と交差反応する。この特性は、カニクイザルでの安全性試験を可能にするため、好都合である。
(I) [D-L-XY]n-Ab
式中、各「D」は、他とは独立に、細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質を表し;各「L」は、他とは独立に、リンカーを表し;「Ab」は、本明細書に記載の抗CS1抗体または結合断片などの、抗CS1抗原結合部分を表し;各「XY」は、リンカー上の官能基Rxと抗体上の「相補的」官能基Ryとの間で形成される連結を表し、かつnはADCのDARを表す。1つの具体的態様において、各「D」は同じであり、各「L」は同じであり、かつ「Ab」は抗体または結合断片である。具体的態様において、ADCは、「D」がオーリスタチン、例えば、MMAEまたはMMAFであり、「L」がリソソーム酵素によって切断可能なリンカーであり、「XY」がマレイミドとスルフヒドリル基との間で形成される連結であり、「Ab」が抗体Hu34C3またはその結合断片であり、かつnが2、3または4である、構造式(I)の化合物である。
本開示は、HuCS1に特異的に結合し、CmCS1と交差反応性である抗体、抗体を含むADC、抗体および/またはADCを含む組成物、抗CS1抗体をコードするポリヌクレオチド、抗CS1抗体を産生可能な宿主細胞、抗CS1抗体およびADCの作製法、ならびに抗CS1抗体ADCの様々な使用法に関する。
本明細書に記載の抗体、結合断片、ADCおよびポリヌクレオチドは、多くの態様において、それらのそれぞれのポリペプチドまたはポリヌクレオチド配列によって記載する。特に記載がないかぎり、ポリペプチド配列はN→Cの配向で提供し;ポリヌクレオチド配列は5'→3'の配向で提供する。以下の表1に示すとおり、ポリペプチド配列のために、遺伝的にコードされたアミノ酸に対し通常の3文字または1文字略号を用いる。
本明細書において他に定義されていない限り、本開示に関して用いられる科学的および技術的用語は、当業者によって一般に理解される意味を有する。
本開示の1つの局面は、文献に報告されている抗CS1抗体が結合するエピトープとは異なるエピトープで、ヒトHuCS1(SEQ ID NO:1)に特異的に結合し、かつPDL241、エロツズマブおよびLuc34.3.8が結合するエピトープとは異なるエピトープに特異的に結合する、新しい抗CS1抗体に関する。さらに、エロツズマブとは異なり、新しい抗体はCmCS1と交差反応し、これは、カニクイザルでそれらの生物学的特性を試験または確認することが可能になるという利点を提供する。
Ki = IC50/(1+[参照Ab濃度]/Kd)
式中、IC50は参照抗体の結合の50%低減を生じる試験抗体の濃度であり、Kdは参照抗体の解離定数、すなわちそのHuCS1に対する親和性の尺度である。本明細書において開示する抗CS1抗体と競合する抗体は、本明細書に記載の検定条件下で、10pM〜10nMのKiを有し得る。
本開示は、本開示の抗CS1抗体の免役グロブリン軽鎖および重鎖遺伝子をコードする核酸分子、そのような核酸分子を含むベクター、および抗CS1抗体を産生可能な宿主細胞を含む。
本開示のもう1つの局面は、本明細書に記載の抗CS1抗体を含む抗体薬物結合体(ADC)に関する。ADCは一般に、1つまたは複数のリンカーによってそれに連結された1つまたは複数の細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質を有する、本明細書に記載の抗CS1抗体および/または結合断片を含む。具体的態様において、ADCは構造式(I)の化合物またはその塩である:
(I) [D-L-XY]n-Ab
式中、各「D」は、他とは独立に、細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質(「薬物」)を表し;各「L」は、他とは独立に、リンカーを表し;「Ab」は、本明細書に記載の抗CS1抗体または結合断片などの、抗CS1抗原結合部分を表し;各「XY」は、リンカー上の官能基Rxと抗体上の「相補的」官能基Ryとの間で形成される連結を表し、かつnはADCに連結された薬物の数、またはADCの薬物 対 抗体比(DAR)を表す。
細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質は、細胞、特に癌および/または腫瘍細胞の成長および/もしくは複製を阻害すること、ならびに/またはそれらを死滅させることが公知の、任意の作用物質であり得る。細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性特性を有する多くの作用物質が、文献において公知である。細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質のクラスの非限定例には、例としてであるが、限定ではなく、放射性核種、アルキル化剤、トポイソメラーゼI阻害剤、トポイソメラーゼII阻害剤、DNA挿入剤(例えば、小溝結合剤などの溝結合剤)、RNA/DNA代謝拮抗剤、細胞周期調節剤、キナーゼ阻害剤、タンパク質合成阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ阻害剤、ミトコンドリア阻害剤、および有糸分裂阻害剤が含まれる。
本明細書に記載のADCにおいて、細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質は抗体にリンカーによって連結されている。ADCの細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質を抗体に連結しているリンカーは、短い、長い、疎水性、親水性、可動性もしくは剛性であってもよく、またはリンカーが異なる特性を有するセグメントを含み得るように、それぞれ独立に前述の特性の1つまたは複数を有するセグメントで構成されてもよい。リンカーは、複数の作用物質を抗体上の単一の部位に共有結合するように多価であってもよく、または単一の作用物質を抗体上の単一の部位に連結するように一価であってもよい。
一定の態様において、選択したリンカーはインビボで切断可能である。切断可能なリンカーは、化学的または酵素的に不安定または分解可能な連結を含み得る。切断可能なリンカーは、一般には、薬物を遊離するために、細胞質における還元、リソソーム中の酸性条件への曝露、または細胞内の特異的プロテアーゼもしくは他の酵素による切断などの、細胞内部でのプロセスに頼っている。切断可能なリンカーは、一般には、化学的または酵素的のいずれかで切断可能な1つまたは複数の化学結合を組み込む一方で、リンカーの残りは切断不可能である。一定の態様において、リンカーは、ヒドラゾンおよび/またはジスルフィド基などの、化学的に不安定な基を含む。化学的に不安定な基を含むリンカーは、原形質といくつかの細胞質画分との間の差異を示す特性を利用する。ヒドラゾン含有リンカーのための、薬物放出を促進する細胞内条件は、エンドソームおよびリソソームの酸性環境であり、その一方で、ジスルフィド含有リンカーは、高いチオール濃度、例えば、グルタチオンを含むサイトゾル中で還元される。一定の態様において、化学的に不安定な基を含むリンカーの原形質安定性は、化学的に不安定な基の近くの置換基を用いて立体障害を導入することによって増大し得る。
式中、DおよびAbはそれぞれ細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質(薬物)ならびにAbを表し、nは抗体に連結された薬物-リンカーの数を表す。リンカー(Ig)などの一定のリンカーにおいて、リンカーは2つの切断可能な基−ジスルフィドおよびヒドラゾン部分を含む。そのようなリンカーについて、無修飾遊離薬物の有効な放出は酸性pHまたはジスルフィド還元および酸性pHを必要とする。(Ih)および(Ii)などのリンカーは、単一のヒドラゾン切断部位で有効であることが示されている。
式中、DおよびAbはそれぞれ薬物および抗体を表し、nは抗体に連結された薬物-リンカーの数を表し、Rは各出現時に、例えば、水素またはアルキルから独立に選択される。一定の態様において、ジスルフィド結合の近くの立体障害が増大すると、リンカーの安定性が増大する。(Ij)および(Il)などの構造は、1つまたは複数のR基をメチルなどの低級アルキルから選択すると、インビボでの安定性増大を示す。
などのジペプチドから選択される。一定の態様において、より長いペプチドは疎水性であるため、より長いペプチドよりもジペプチドが好ましい。
式中、X-Dは無修飾薬物を表す。
式中:
ペプチドは、リソソーム酵素によって切断可能なペプチド(C→Nで図示され、カルボキシ「末端」およびアミノ「末端」は示していない)を表し;
Tは、1つもしくは複数のエチレングリコール単位または1つのアルキレン鎖、あるいはその組み合わせを含むポリマーを表し;
Raは、水素、アルキル、スルホネートおよびメチルスルホネートから選択され;
pは0〜5の範囲の整数であり;
qは0または1であり;
xは0または1であり;
yは0または1であり;
は、リンカーの細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質への連結点を表し;かつ
*は、リンカーの残りの部分への連結点を表す。
から選択される。一定の態様において、ジペプチドは:Cit-Val;およびAla-Valから選択される。
式中:
ペプチドは、リソソーム酵素によって切断可能なペプチド(C→Nで図示され、カルボキシ「末端」およびアミノ「末端」は示していない)を表し;
Tは、1つもしくは複数のエチレングリコール単位または1つのアルキレン鎖、あるいはその組み合わせを含むポリマーを表し;
Raは、水素、アルキル、スルホネートおよびメチルスルホネートから選択され;
pは0〜5の範囲の整数であり;
qは0または1であり;
xは0または1であり;
yは0または1であり;
は、リンカーの細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質への連結点を表し;かつ
*は、リンカーの残りの部分への連結点を表す。
切断可能なリンカーは一定の利点を提供し得るが、本明細書に記載のADCを構成するリンカーは、切断可能でなくてもよい。切断不可能なリンカーでは、薬物の放出は、原形質といくつかの細胞質画分との間の差異を示す特性に依存しない。薬物の放出は、抗原仲介性飲食作用およびリソソーム画分への送達によりADCが内部移行し、ここで抗体が細胞内タンパク質分解を通じてアミノ酸のレベルにまで分解された後に起こると推論される。このプロセスは、薬物、リンカー、およびリンカーが共有結合したアミノ酸残基によって形成される薬物誘導体を放出する。切断不可能なリンカーとの結合体からのアミノ酸薬物代謝物は、切断可能なリンカーとの結合体と比べて、親水性が高く、かつ一般には膜透過性が低く、それにより傍観者効果が低く、かつ非特異的毒性が低くなる。一般に、切断不可能なリンカーを有するADCは、切断可能なリンカーを有するADCよりも、循環中に高い安定性を有する。切断不可能なリンカーはアルキレン鎖であってもよく、または、例えば、ポリアルキレングリコールポリマー、アミドポリマーに基づくなどの、本質的にポリマー性であってもよく、またはアルキレン鎖、ポリアルキレングリコールおよび/もしくはアミドポリマーのセグメントを含んでいてもよい。
式中:
Raは、水素、アルキル、スルホネートおよびメチルスルホネートから選択され;
Rxはリンカーを抗体に共有結合することが可能な官能基を含む部分であり;かつ
はリンカーの細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質への連結点を表す。
は細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質への連結点を表す)。
様々な基を用いて、リンカー-薬物シントンを抗体に連結してADCを得てもよい。連結基は、本質的に求電子性であり得:マレイミド基、活性化ジスルフィド、NHSエステルおよびHOBtエステルなどの活性エステル、ハロホルメート、酸ハロゲン化物、ハロアセトアミドなどのハロゲン化アルキルおよびベンジルが含まれる。以下に論じるとおり、本開示に従って用いることができる、「自己安定化」マレイミドおよび「架橋ジスルフィド」に関係する新興の技術もある。用いる具体的な基は、部分的には、抗体への連結部位に依存することになる。
当業者には公知のとおり、特定のADCのために選択したリンカーは、抗体への連結部位(例えば、lys、cysまたは他のアミノ酸残基)、薬物ファルマコフォアの構造的制約および薬物の親油性を含むが、それらに限定されない、様々な因子によって影響を受け得る。ADCのために選択する具体的なリンカーは、具体的な抗体/薬物の組み合わせのために、これらの異なる因子の平衡を保つようなものであるべきである。ADCにおけるリンカーの選択によって影響を受ける因子の再検討については、Nolting, Chapter 5 ''Linker Technology in Antibody-Drug Conjugates,'' In: Antibody-Drug Conjugates: Methods in Molecular Biology, vol. 1045, pp. 71-100, Laurent Ducry (Ed.), Springer Science & Business Medica, LLC, 2013を参照されたい。
本明細書に記載のADCは、周知の化学を用いて合成してもよい。選択する化学は、特に、細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質の同一性、リンカーおよびリンカーを抗体に連結するために用いる基に依存することになる。一般には、式(I)のADCを以下のスキームに従って調製してもよい:
D-L-Rx+Ab-Ry→(I) [D-L-XY]n-Ab
式中、D、L、Ab、XYおよびnは前に定義したとおりであり、かつRxおよびRyは、前述のとおり、互いに共有結合を形成することが可能な相補的基を表す。
本明細書に記載の抗体および/またはADCは、抗体および/またはADCならびに1つまたは複数の担体、賦形剤および/または希釈剤を含む組成物の形であってもよい。組成物は、獣医学的用途またはヒトにおける薬学適用途などの具体的な用途のために製剤化されてもよい。組成物の形態(例えば、乾燥粉末、液体製剤など)ならびに用いる賦形剤、希釈剤および/または担体は、抗体および/またはADCの所期の用途、ならびに、治療的用途のためには、投与の様式に依存することになる。
本明細書に記載の抗体および/またはADCを含む医薬組成物を用いて、形質細胞腫瘍、例えば、MMを処置する。典型的には、医薬組成物を用いて、新しく診断されたものから再発性、および再発性かつ難治性の範囲の、意義不明の単クローン性免役グロブリン血症(MGUS)、形質細胞腫、くすぶり型-無症候性MM、および症候性MMを処置することができる。
1EBMT:欧州血液骨髄移植学会;IBMTR:国際骨髄移植登録機構;ABMTR:自家血液および骨髄移植登録機構。
2非分泌型骨髄腫のみの患者では、骨髄中の形質細胞の初期数の>50%の低減(部分奏功)または初期数の25〜49%の低減(最小奏功)が必要とされる。
3非分泌型骨髄腫では、骨髄形質細胞は>25%、絶対数で少なくとも10%増加すべきで;MRI検査は選択した患者において有用であり得る。
投与する抗体および/またはADCの量は、処置中の特定の疾患、投与の様式、所望の治療的恩典、疾患の病期または重症度、患者の年齢、体重および他の特徴などを含むが、それらに限定されない、様々な因子に依存することになる。有効用量の決定は当業者の能力の範囲内である。
以下の実施例は、本明細書に記載の抗体およびADCの例示的態様の一定の特徴および特性を強調しており、これらは例示のために提供するにすぎず、限定的ではない。
様々な抗CS1抗体を生成し、同定するために用いる方法を以下に記載する。
全長ヒトCS1(FL-HuCS1)cDNAをラージ細胞からCS1遺伝子に隣接しているプライマーを用いて単離した。PCR産物をゲル精製し、FL-HuCS1の安定な発現を可能にするベクター中に連結した。FL-HuCS1をコードするプラスミドを大規模で精製し、DNA塩基配列決定により確認した。
カニクイザルCS1(CmCS1)の細胞外ドメイン(ECD)をコードするDNAを活性化PBMC細胞からCmCS1のECDに隣接しているプライマーを用いて単離した。PCR産物をゲル精製し、ヒトIgG1(ヒトFc-γ1)の定常領域をコードするベクター中に連結した。CmCS1 ECD-huIgG1をコードするプラスミドを大規模で精製し、DNA塩基配列決定により確認した。
50μgのFL-HuCS1をコードするプラスミドを直線化し、エタノール中で沈澱させ、洗浄し、500μLの滅菌PBS中に再懸濁した。NS0細胞(ECACC Catalog # 85110503)を冷PBS中で2回洗浄し、PBS中2×107細胞/mLで再懸濁した。500μLのNS0細胞懸濁液(1×107細胞に対応)を再懸濁した直線化FL-HuCS1プラスミドと混合した。細胞を1.5Vおよび3μFでBioRad Gene pulserを用いて電気穿孔した。電気穿孔の後、細胞を100mLのDMEM完全培地に加え、T75フラスコ中に播種した。形質移入の24時間後、G418をDMEM完全培地に1μg/mLで加えた。第10日に、陽性形質移入体をフローサイトメトリーにより同定し、48穴および24穴プレート中で増殖させた。陽性形質移入体を再度スクリーニングし、FL-HuCS1を高発現するクローンを増殖させ、免疫化い用いた。
CmCS1 ECD-HuIgG1プラスミドを用いて、HEK-293細胞を安定に形質移入した。形質移入は、Lipofectamine(Invitrogen)を製造者の指示に従い推奨通りに用いて実施した。簡単に言うと、HEK-293細胞を10cmプレート上で成長させ、冷PBS中で2回洗浄し、Opti-MEM培地でカバーした。Lipofectamine(10μL)をCmCS1 ECD-huIgG1プラスミド(2μg)と10分間混合し、次いで調製したHEK-293細胞に加えた。形質移入の24時間後、G418をDMEM完全培地に1μg/mLで加えた。G418耐性細胞を96穴プレートにサブクローニングし、CmCS1 ECD-huIgG1高発現クローンをELISAで同定した。
CmCS1 ECD-huIgG1融合タンパク質を発現する安定な形質移入体を、600mLのグルコース添加剤を含むDMEM完全培地中で5日間増殖させた。融合タンパク質をプロテインAセファロースカラム上で精製し、1×PBSに対して透析した。CmCS1 ECD-huIgG1の還元型および非還元型をクーマシー染色によって分析した。CmCS1 ECD-huIgG1を抗HuIgG1を用いてのウエスタンブロットでも分析し、N-末端配列決定により確認した。
FL-huCS1を発現する照射NS0細胞または精製した組換えCmCS1 ECD-huIgG1融合タンパク質を用いて、BALB/cおよびSJLマウスを足蹠から免疫化した。簡単に言うと、マウスを全量25μL中10μgのCmCS1 ECD-huIgG1タンパク質または500万個の照射NSO-huCS1細胞および等量のGerbuMMアジュバントで後足蹠に免疫化した。足蹠免疫化を3日または4日間隔で4回実施した。NSO-huCS1細胞を最初の2回の免疫化に用い、CmCS1 ECD-huIgG1融合タンパク質をその後の追加免疫に用いた。
NSO-huCS1およびCmCS1 ECD-huIgG1で免疫化したマウスを屠殺した。膝窩リンパ節をマウスから摘出した。リンパ球をリンパ節から単離し、リンパ球をマウス骨髄腫細胞系統NS0と、電気融合(BTX ECM2001)装置を用いて融合させることにより、ハイブリドーマを生成した。融合細胞を96穴プレートに2×106細胞/プレートの密度で播種した。うまく融合した細胞の選択を、ヒポキサンチン、アミノプテリン、およびチミジン(HAT)を含む培地を用いて行った。
ハイブリドーマによって分泌された抗体の特異性を、ELISAによるヒトCS1 ECD-huIgG1およびCmCS1 ECD-huIgG1への結合、ならびに陰性対照CLL1 ECD-huIgG1への非結合によって判定した。ヒトCS1-ECD-huIgG1、CmCS1 ECD-huIgG1、またはCLL1 ECD-huIgG1を、ヤギ抗ヒトIgG(Fc特異的)抗体であらかじめコーティングしたプレート上に捕捉した。ハイブリドーマ上清をタンパク質に結合させ、HRP結合ロバ抗マウスIgG(H+L)抗体で検出した。ヒトおよびカニクイザルの両方を認識したが、CLL融合タンパク質を認識しなかったハイブリドーマを、内因性に発現するOPM-2細胞上のhuCS1分子への結合について、標準のフローサイトメトリープロトコルを用いて、さらに試験した。簡単に言うと、OPM-2細胞をハイブリドーマ上清と氷上で30分間インキュベートした。徹底的に洗浄した後、細胞をフィコエリトリン結合ヤギ抗マウスIgG特異的抗体と氷上で30分間インキュベートした。細胞を再度洗浄し、Becton Dickinson FACSCaliburで細胞表面結合抗体の存在について分析した。免疫化戦略のパラメーターの概要および同定したクローンの数を、以下の表4に提供する。ヒト/カニクイザルCS1交差反応性抗体の大多数はSJL系統で生成し(N=28)、一方、BALB/cマウスにおける同様の免疫化は単一のヒト/カニクイザルCS1交差反応性抗体をもたらした。
例示的抗CS1抗体を、公知の抗CS1抗体PDL241とのフローサイトメトリーに基づく競合検定で試験した。競合検定により、本明細書に記載の抗体がPDL241が結合するものとは異なるエピトープに結合することを確認する。
ヒトCS1を形質移入した293s細胞(データポイントごとに300,000細胞)をAF488標識したPDL241抗体と、様々な濃度でインキュベートした。80%の最大結合が起こる濃度を特定し(6μg/mL)、その後の競合検定に用いた。
結果を図4に示す。抗体Mu4F2だけがPDL241と競合し、PDL241と同じエピトープに結合する。Mu12D10、Mu14C11、Mu27A12、Mu27H1、Mu28A6、Mu31D2、Mu34C3およびMu30C1を含む、試験した他の抗体はすべて、PDL241と競合せず、PDL241が結合するものとは別のエピトープに結合する。
HuCS1およびCmCS1に結合し、PDL241との結合について競合しない抗体を、ADCとして結合した場合の細胞の増殖を阻害するそれらの能力について試験した。
すべての抗体を、モノメチルオーリスタチンE(「MMAE」;オーリスタチン微小管阻害剤)、モノメチルオーリスタチンF(「MMAF」;オーリスタチン微小管阻害剤)およびデュオカルマイシン(DNA損傷薬)のそれぞれに、以前に記載された方法(Doronina et al., 2003, Nat Biotechnology 21(7):778-784;Polson et al., 2007, Blood 1102:616-623)を用いて結合した。各ADCの薬物負荷はほぼ同等であった。HuCS1を発現する10,000〜20,000個の細胞(L-363ヒト多発性骨髄腫細胞)を96穴プレートに播種し、異なる量のADCを細胞に加えた。ADCの添加の4日後、細胞生存度をCellTiter-Blue(登録商標) Cell Viability Assay(Promega)を用いて測定し、IC50値を計算した。
試験したすべてのADCのIC50値を、以下の表5に提供する。試験したすべてのADCは細胞の増殖を阻害した。
抗体Mu34C3、Mu31D2およびMu27A12を含む、ADCとしての3つの最も強力な増殖阻害剤の基礎を形成した抗体を、ヒト化のために選択し、標準の方法を用いてヒト化した。
1. マウス配列(ドナー配列)のフレームワークおよびCDR残基を決定する
2. MOEソフトウェアにより既存の抗体に対する相同性に基づいてVH-VL構造モデルを作製する
3. CDRループ構造のために重要な、CDRの5Å以内またはVH/VL界面近くの残基、および、バーニアゾーン残基を含むVH/VL界面の残基を同定する
4. Kabatナンバリングスキームに従って残基を割り当てる
5. 重鎖および軽鎖CDRのカノニカル構造を決定する
6. 可能なアクセプターフレームワークと同じCDRカノニカル構造を有する、ヒトVHおよびVLフレームワーク配列を同定する
7. マウスドナー配列に最良の同一性および最高の類似性を有する、ヒト接合領域配列(JHおよびJk)を同定する
8. マウスドナー配列を、同じ(または最も類似した)CDRカノニカル構造を有する可能なヒトアクセプター配列と整列させる。これは、下記を比較することにより、VHおよびVL配列で別々に行う:
a. 全V領域の同一性および類似性
b. CDR残基を除く、全V領域の同一性および類似性
c. CDRループ構造およびVH/VL界面のために重要なフレームワーク残基
d. CDRループ構造およびVH/VL界面のために重要なCDR配列およびフレームワーク残基
9. すべての整列からの残基を考慮し、アクセプター配列としてVHのために1つまたは2つの最良のヒトフレームワーク配列およびVLのために1〜2つの配列を同定する。2つの選択したVHまたはVL配列は、異なるサブグループからであるべきである。
10. ドナーマウスCDR配列を選択したヒトフレームワーク配列上に移植して、ヒト化抗体VHおよびVL配列を作製する
a. N連結グリコシル化部位(N{P}S/T)がないことを確認するためにチェックする
b. N末端GlnをGluに変更することを考慮する
c. 可能な脱アミド化(NG、NS、NN)、異性化(DG、DS、DH)、タンパク質分解(DP)部位についてスクリーニングし、さらなる傾向操作(liability engineering)について目印を付ける
11. ヒト化およびマウスドナー配列を比較して、2つの間で異なり、CDRループ構造またはVH/VL界面のために重要な、フレームワーク残基を同定する。これらは逆突然変異候補である。
前述の方法を適用することにより、モノクローナル抗体Mu34C3、Mu27A12およびMu31D2のVHおよびVL鎖のCDR配列を、異なるヒト重鎖および軽鎖アクセプター配列上に移植した。
モノクローナル抗体Mu34C3のVHおよびVL配列との整列に基づき、以下の公知のヒト配列を選択した:
1. 重鎖アクセプター配列を構築するためのIGHV3-7*01およびIGHJ6*01
2. 軽鎖アクセプター配列を構築するためのIGKV2-29*02およびIGKJ4*01
モノクローナル抗体Mu27A12のVHおよびVL配列との整列に基づき、以下の公知のヒト配列を選択した:
1. 重鎖アクセプター配列を構築するためのIGHV3-7*01およびIGHJ6*01
2. 軽鎖アクセプター配列を構築するためのIGKV2-29*02およびIGKJ4*01
モノクローナル抗体Mu31D2のVHおよびVL配列との整列に基づき、以下の公知のヒト配列を選択した:
1. 重鎖アクセプター配列を構築するためのIGHV3-7*01およびIGHJ4*01
2. 軽鎖アクセプター配列を構築するためのIGKV2-28*01およびIGKJ4*01
ヒト化抗体Hu34C3、Hu31D2およびHu27A12を、公知の抗CS1抗体PDL241、エロツズマブおよびLuc34.3.8とのフローサイトメトリーに基づく競合検定で試験した。競合検定により、抗体Hu34C3、Hu31D2およびHu27A12がPDL241、エロツズマブおよびLuc34.3.8が結合するものとは異なるエピトープに結合することを確認する。
ヒトCS1を形質移入した293s細胞をAF488標識したPDL241抗体と、様々な濃度でインキュベートした。80%の最大結合が起こる濃度を特定した(5μg/mL)。形質移入した293s細胞(データポイントごとに300,000細胞)を10倍過剰の非標識試験抗体(50μg/mL)と30分間(氷上で)インキュベートした。インキュベーション後、5μg/mLのAF488標識PDL241を細胞に加え、氷上で30分間インキュベートした。このインキュベーション後、細胞をPBS+1%FBSで洗浄し、AF488標識PDL241の結合をフローサイトメトリーで判定した。AF488標識PDL241結合を20%阻害しなかった任意の抗体を、PDL241と競合せず、PDL241が結合するものとは異なるエピトープに結合すると考える。抗体MSL109を陰性対照として試験し、PDL241とは異なるエピトープに結合することが以前に判明している(Woo, 2013, Arthritis Res Ther 15(6):R207参照)エロツズマブを陽性対照として試験した。
検定の結果を図5に提供する。Hu27A12、Hu34C3およびHu31D2は、PDL241と競合せず、PDL241とは異なるエピトープに結合する。
同様の実験を10μg/mLのAF488標識したエロツズマブで実施した。形質移入した293s細胞(データポイントごとに300,000細胞)を10倍過剰の非標識抗体(100μg/mL)と30分間(氷上で)インキュベートした。インキュベーション後、10μg/mLのAF488標識エロツズマブを細胞に加え、氷上で30分間インキュベートした。このインキュベーション後、細胞をPBS+1%FBSで洗浄し、AF488標識エロツズマブの結合をフローサイトメトリーで判定した。AF488標識エロツズマブ結合を20%阻害しなかった任意の抗体を、エロツズマブと競合せず、エロツズマブが結合するものとは異なるエピトープに結合すると考える。抗体MSL109を陰性対照として試験し、エロツズマブとは異なるエピトープに結合することが以前に判明している(Woo, 2013, Arthritis Res Ther 15(6):R207参照)PDL241を陽性対照として試験した。
検定の結果を図6に提供する。Hu27A12、Hu34C3およびHu31D2は、エロツズマブと競合せず、エロツズマブとは異なるエピトープに結合する。
同様の実験を2μg/mLのAF488標識したLuc34.3.8で実施した。HuCS1を発現するL-363細胞(ヒト多発性骨髄腫細胞系統)(データポイントごとに300,000細胞)を10倍過剰の非標識試験抗体(20μg/mL)と30分間(氷上で)インキュベートした。インキュベーション後、2μg/mLのAF488標識Luc34.3.8を細胞に加え、氷上で30分間インキュベートした。このインキュベーション後、細胞をPBS+1%FBSで洗浄し、AF488標識PDL241の結合をフローサイトメトリーで判定した。AF488標識Luc34.3.8結合を20%阻害しなかった任意の抗体を、Luc34.3.8と競合せず、Luc34.3.8が結合するものとは異なるエピトープに結合すると考える。抗体MSL109を陰性対照として試験し、Luc34.3.8とは異なるエピトープに結合することが以前に判明している(Williams et al.への米国特許第8,433,646号参照)エロツズマブを陽性対照として試験した。
検定の結果を図7に提供する。Hu27A12、Hu34C3およびHu31D2は、Luc34.3.8と競合せず、Luc34.3.8とは異なるエピトープに結合する。
本明細書に記載の様々な例示的抗CS1抗体で実施したフローサイトメトリーに基づく競合実験は、Hu34C3は、PDL241、エロツズマブおよびLuc34.3.8が結合するエピトープとは異なるエピトープに結合することに加えて、独特のエピトープに結合することを示す。
ヒトCS1を形質移入した293s細胞をAF488標識したHu34C3抗体と、様々な濃度でインキュベートした。80%の最大結合が起こる濃度を特定した(10μg/mL)。競合検定のために、形質移入した293s細胞(データポイントごとに300,000細胞)を10倍過剰の非標識試験抗体(100μg/mL)と30分間(氷上で)インキュベートした。インキュベーション後、10μg/mLのAF488標識Hu34C3を細胞に加え、氷上で30分間インキュベートした。このインキュベーション後、細胞をPBS+1%FBSで洗浄し、AF488標識Hu34C3の結合をフローサイトメトリーで判定した。AF488標識Hu34C3結合を20%阻害しなかった任意の抗体を、Hu34C3と競合せず、Hu34C3が結合するものとは異なるエピトープに結合すると考える。抗体MSL109を陰性対照として試験し、Hu34C3とは異なるエピトープに結合することが本明細書において判明しているエロツズマブを陽性対照として試験した。
競合検定の結果を図8に示す。試験した抗CS1抗体(Hu27A12およびHu31D2を含む)はどれも、Hu34C3と競合せず、Hu34C3は独特のエピトープに結合することを示している。
3つの例示的ヒト化抗体Hu27A12、Hu34C3およびHu31D2の結合親和性をフローサイトメトリーで評価し、エロツズマブのものと比較した。
L-363細胞を異なる量の試験抗体と氷上で30分間インキュベートした。細胞をPBS+1%FBSで3回洗浄した。PE結合ヤギ抗ヒトFc抗体を細胞に加え、氷上で30分間インキュベートした。細胞をPBS+1%FBSで3回洗浄し、結合をフローサイトメトリーで定量した。
結果を以下の表6に提供する。
DAR平均値4を有するHu34C3-MMAE ADCを、2段階の化学工程−Hu34C3のジスルフィド還元と、続いて、以下に示すマレイミドカプロイルバリン-シトルリンパラアミノベンジルアルコール(「PABA」)モノメチルオーリスタチン(「vcMME」)でのアルキル化(結合)により調製した。
DAR平均値4を有するHu34C3-MMAF ADCを、実施例8の方法により、結合段階においてマレイミドカプロイルモノメチルオーリスタチンFを用いて調製した。
抗体Hu34C3、Hu31D2およびHu27A12をそれぞれMMAEと、実施例8の手順を用いてDAR平均値4まで結合した。これらのADCを、Miyakawa et al., 2004, Biochemical and Biophysical Research Communications 313:258-262によって記載されたU266多発性骨髄腫インビボモデルで試験した。MSL109およびMMAEとDAR4まで結合したMSL109(上記のとおりに調製)を対照として試験した。
いくつかの例示的な新しい抗CS1抗体を、実施例8に記載のとおりに、MMAEにDAR平均値4まで結合し、インビトロおよびインビボで、ヒト多発性骨髄腫細胞系統、MOLP-8に対して試験した。MSL109 MMAE DAR4を対照として試験した。インビトロ増殖検定を実施例3に記載のとおりに実施した。Hu34C3 MMAE DAR4およびMu176.1.1 MMAE DAR4はほぼ同等のインビトロ効力を示し、いずれもインビトロで試験した6つの他の抗体よりもすぐれていた(図10)。
上記実施例11で試験したのと同じ抗体パネルを、MOLP-8由来異種移植片においてインビボで試験した。SCIDマウスの右側腹部に10×106のヒト多発性骨髄腫由来MOLP-8生細胞を皮下に接種した。注入量は、無血清培地およびMatrigel(BD、Franklin Lakes、NJ)の1:1混合物からなる0.1mLであった。腫瘍体積が約160mm3になれば、担癌マウスを等しい腫瘍体積平均値の群に分類した。必要なコホートへの無作為化および腫瘍のサイズマッチングの直後に治療を開始した。治療開始時のマウスの体重は約25gであった。腫瘍体積を1週間に2〜3回評価した。腫瘍の寸法を電子カリパスで測定し、腫瘍体積を式:V=1/2×長さ×幅×高さを用いて計算した。試験第0日を細胞接種の日と定義した。マウスを示したADCにより3mg/kg q4dx3(4日毎に1回、合計3回)で処置した。驚くことに、Hu34C3 MMAE DAR4は有意なインビボ活性を示す唯一のADCであった。Mu176.1.1 MMAE DAR4はインビトロでHu34C3に匹敵する活性を有していたが、インビボでは有意に劣っていた。クローン176.1.1はHu34C3と競合せず、CS1上の異なるエピトープに結合する。この差がインビボで観察された有効性の欠如に寄与しているのかもしれない(図11)。
Hu34C3よりも高いHuCS1結合親和性を有するHu34C3のいくつかの変異体を、Hu34C3のVH鎖およびVL鎖におけるCDRの各残基を系統的に変異させることにより同定した。変異体のVHおよびVL領域ならびにそれぞれのCDRの配列を、配列Hu34C3 S55E(SEQ ID NO:12)およびHu34C3 N30L(SEQ ID NO:13)として図2に示す。それらの結合親和性(FACSにより判定し、Hu34C3に比べて)を以下の表7に提供する。
Hu34C3のN30L、S55EおよびN30L/S55E変異体をHEK293細胞中で標準の方法を用いて産生し、MMAEにDAR4まで結合し、L-363細胞によるインビトロ増殖検定においてHu34C3-MMAE DAR4と比較した。S55E、N30LおよびS55E/N30L変異体はすべて、野生型に比べて強い活性を示した(図12)。
SCIDマウスの右側腹部に10×106のヒト多発性骨髄腫由来L-363生細胞を皮下に接種した。注入量は、無血清培地およびMatrigel(BD、Franklin Lakes、NJ)の1:1混合物からなる0.1mLであった。腫瘍体積が約100mm3になれば、担癌マウスを等しい腫瘍体積平均値の群に分類した。必要なコホートへの無作為化および腫瘍のサイズマッチングの直後に治療を開始した。治療開始時のマウスの体重は約25gであった。腫瘍体積を1週間に2〜3回評価した。腫瘍の寸法を電子カリパスで測定し、腫瘍体積を式:V=1/2×長さ×幅×高さを用いて計算した。試験第0日を細胞接種の日と定義した。マウスをMSL109 MMAE DAR4(対照)、Hu34C3 MMAE DAR4、Hu34C3 N30L MMAE DAR4、またはHu34C3 S55E/N30L MMAE DAR4のいずれかにより3mg/kg q4dx4(4日毎に1回、合計4回)で処置した。試験したADCはすべて有効であった。興味深いことに、HuCS1への親和性が増強された変異体を含むADCは、インビボ検定において野生型Hu34C3を含むADCよりも有効ではなかった。(図13)。
Hu34C3およびアイソタイプ対照抗体、AB095をPBD(ピロロベンゾジアゼピンSGD-1882)と、2段階の化学工程:ジスルフィド還元と、続いて、マレイミドカプロイルバリン-アラニン(「val-ala」)ピロロベンゾジアゼピン(「PBD」)でのアルキル化(結合)によりDAR平均値2まで結合した。
OPM-2異種移植片を調製し、前に記載のとおりに実施した。The Jackson LaboratoryからのNSGマウス(NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ)(系統コード05557)を用いた。この系統はエフェクター細胞を欠き、すべての抗体のADCCメカニズムを排除する。破傷風トキソイドを標的とする抗体、AB095を対照として試験した。試験ADCの投与を、等しい質量のPBD成分が送達されるように標準化した。結果を図15に示す。Hu34C3 PBD DAR2は用量群のアイソタイプ対照(AB095 PBD DAR2)よりも統計学的に高い抗腫瘍活性を示さなかった。
Hu34C3およびアイソタイプ対照抗体、AB095を239位のセリンをシステインに変異させることにより改変した(S239C)。これらの変異抗体(Hu34C3 S239CおよびAB095 S239C)をPBD(ピロロベンゾジアゼピン)と、実施例15に記載のとおりに結合し、インビトロでヒト多発性骨髄腫細胞系統、L-363およびMM1.Sに対して試験した。インビトロ増殖検定を実施例3に記載のとおりに実施した。Hu34C3 S239C-PBDは、OPM-2およびL-363細胞で、アイソタイプ対照抗体(AB095 S239C-PBD)よりもすぐれたインビトロ効力を示した(それぞれ図16Aおよび16B)。
Hu34C3およびアイソタイプ対照抗体、AB095をSN-38と、実施例8に記載の2段階化学工程により、それぞれ個別に結合し、それぞれの場合にDAR4材料を生成した。SN-38のフェノール性OHによりSN-38が付着しているリンカー-薬物部分(「SN-38リンカー-薬物」)、またはSN-38の3級OHによりSN-38が付着しているリンカー-薬物部分(「CL-38リンカー-薬物」)のいずれかで、結合を実施した。
OPM-2異種移植片を調製し、前に記載のとおりに実施した。The Jackson LaboratoryからのNSGマウス(NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ)(系統コード05557)を用いた。この系統はエフェクター細胞を欠き、すべての抗体のADCCメカニズムを排除する。破傷風トキソイドを標的とする抗体、AB095を対照として試験した。試験ADCの投与を、等しい質量のSN38成分が送達されるように標準化した。
抗腫瘍活性を増強する試みにおいて、Hu34C3のFc領域を改変した。ADCC活性、FcRn結合、および飲作用を変更する、いくつかの変異を作製した。これらの変異体のMMAE DAR4 ADCを、以前に記載のとおり(van Rhee, et al., 2009 Mol. Cancer Therapeutics 8: 2616-24)、SCIDマウスのOPM-2異種移植モデルにおいてインビボで試験した。破傷風トキソイドを標的とするIgG1アイソタイプ抗体、AB095のMMAE ADCを対照として試験した。結果を図19Aに示す。抗体Hu34C3 mut1は、CD16への結合を低減し、ADCC活性を有意に阻害する変異を含む、IgG1アイソタイプ抗体である。抗体Hu34C3 mut2は、同様の変異を含む、IgG2アイソタイプ抗体である。驚くことに、野生型Hu34C3に比べてADCC活性を失った変異体は、野生型Hu34C3と同様のインビボ活性を維持していた。これは、抗体Hu34C3の抗腫瘍活性はADCC活性に依存しないが、主にMMAEペイロードを送達するその能力によることを示唆している。これは、抗腫瘍活性がADCC依存的である他の抗CS1抗体とは対照的である(例えば、Hsi et al., 2008, Clin Cancer Res 14(9):2775-2784;Woo, 2013, Arthritis Res Ther 15(6):R207参照)。
Hu34C-MMAE DAR4 ADCの抗腫瘍活性を、実施例12に記載のとおり、MOLP-8異種移植インビボモデルで、Hu34C3-MMAF DAR4 ADCと比較した。抗体MSL109(10mg/kgで投与)、MSL109-MMAE(6mg/kgで投与)およびMSL109-MMAF(6mg/kgで投与)を対照として試験した。試験ADCを6mg/kgで4日毎に3回投与した。公開された報告は、MMAF ADCはより強力な毒素であると示唆している(例えば、Doronina et al., 2006 Biocon. Chem 170(1):114-124参照)。驚くことに、このMOLP-8異種移植モデルにおいて、Hu34C3-MMAE ADCはHu34C3-MMAF ADCよりも有意にすぐれた活性を示した(図20)。
実施例8に記載のとおりに調製したHu34C3-MMAE DAR4の粗製製剤は、0個の連結MMAE分子を有する抗体、2個の連結MMAE分子を有する抗体、4個の連結MMAE分子を有する抗体、6個の連結MMAE分子を有する抗体および8個の連結MMAE分子を有する抗体からなる、DAR平均値4を有する不均一混合物を生じる(例えば、図21参照)。2分子の連結MMAEを有するHu34C3 ADCの濃縮製剤(すなわち、Hu34C3-MMAE E2、図22〜29において「Hu34C3 E2」と呼ぶ)および4分子の連結MMAEを有するもの(すなわち、Hu34C3-MMAE E4、図22〜24において「Hu34C3 E4」と呼ぶ)を、実施例8に記載のとおりに調製したHu34C3-MMAE DAR4から単離した。加えて、2または4分子の連結MMAEを有するHu34C3 ADCの濃縮製剤(すなわち、Hu34C3-MMAE E2E4、図28において「Hu34C3 E2E4」と呼ぶ)をHu34C3-MMAE DAR4製剤から単離した。
luc2(Promega、Madison、WI、USA)およびmCherry(Clontech、Mountain View、CA、USA)の融合作成物をLenti Xレンチウイルスベクター(Clontech)中にクローニングした。ヒト多発性骨髄腫細胞系統、LP-1にレンチウイルス粒子を48時間形質導入し、融合作成物を安定に発現する細胞のプールを2μg/mLのピューロマイシンを用いて2週間選択し、その後LP-1 luc2-mCherry(LP-1-LMC)と呼んだ。LP-1-LMC細胞をインビトロで第3継代まで増殖させた。第-1日に、雌SCIDベージュマウスを3グレイで全身照射して、腫瘍細胞生着の増大を可能にした。第0日に、マウス1匹あたり500万個のLP-1-LMC細胞を尾静脈から静脈内接種した。第22日または第30日に、生物発光シグナルの全身ROI分析に基づき、動物を処置群にサイズマッチングさせた。段階分け時の平均生物発光シグナルは約5×106光子/秒であった。データ計算をLiving Image、Version 4.4を用いて行った。
L-363、MM1.SおよびMOLP-8異種移植片を調製し、試験を実施例12に一般に記載のとおりに実施した。The Jackson LaboratoryからのNSGマウス(NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ)(系統コード05557)を用いた。この系統はエフェクター細胞を欠き、すべての抗体のADCCメカニズムを排除する。この系統を用いることで、ADDC活性とは無関係にHu34C3-MMAE E2およびHu34C3-MMAE E4 ADC活性の評価が可能になる。破傷風トキソイドを標的とする抗体である、非結合抗体AB095(10mg/kgで投与)および非結合Hu34C3(10mg/kgで投与)を対照として試験した。試験ADCの投与を、等しい質量のMMAE成分が送達され、IgG成分では2倍差となるように、標準化した(すなわち、Hu34C3-MMAE E2は10mg/kgで投与し;Hu34C3-MMAE E4は5mg/kgで投与した)。結果を図23に示す。L-363(図23A)およびMM1.S(図23B)モデルにおいて、標準化したMMAE送達質量に基づいて比較した場合、Hu34C3-MMAE E2はHu34C3-MMAE E4よりも有意に良好な抗腫瘍活性を示した。Hu34C3-MMAE E2およびHu34C3-MMAE E4はMOLP-8モデルでは同様に有効であった(図23C)。非結合Hu34C3はこのモデルで活性を示さなかった。
Sprague-Dawleyラットに単一用量の粗製Hu34C3-MMAE DAR4(30mg/kg)、Hu34C3-MMAE E4(40mg/kg)またはHu34C3-MMAE E2(80mg/kg)を静脈内に投与した。ラットを苦痛の徴候(被毛の乱れ、反応性および体重減少)について毎日観察し、確立されたプロトコルに従って安楽死させた。血液試料をADCの注射の5日後および10日後に採取した。これらの試料を、細胞数および血液化学の変化について、VetScanおよびHemavet機器を用いて分析した。
非GLP用量範囲検出試験において、Hu34C3-MMAE E2をカニクイザルに3週間毎(Q3W)の投与間隔で合計2用量(第1日および第22日)を30分間のIV注入により投与し、第29日に剖検した。この試験で用いた試験材料は、Hu34C3-MMAE E2、Hu34C3-MMAE E4、Hu34C3-MMAE DAR4および非結合Hu34C3抗体の比較を含んでいた。
ボルテゾミブ([(1R)-3-メチル-1-[[(2S)-1-オキソ-3-フェニル-2-[(ピラジニルカルボニル)アミノ]プロピル]アミノ]ブチル]ボロン酸としても公知;商標VELCADEとしてMillennium Pharmaceuticals, Inc.、Cambridge、MA 02139によって市販)と併用してのHu34C3-MMAE E2の有効性を、OPM-2の皮下異種移植片で判定した(van Rhee, et al., 2009 Mol. Cancer Therapeutics 8: 2616-24)。この実験ではエフェクター細胞陰性マウスを用いた(NSG系統)。Hu34C3-MMAE E2またはボルテゾミブによる処置は有意な腫瘍成長阻害をきたした(それぞれ54%および58%のTGImax値)(図25)。Hu34C3-MMAE E2およびボルテゾミブの組み合わせは、Hu34C3-MMAE E2またはボルテゾミブ単独に比べて、腫瘍成長の阻害の有意な増強(TGImax 93%)を示した。
カルフィゾミブ((S)-4-メチル-N-((S)-1-(((S)-4-メチル-1-((R)-2-メチルオキシラン-2-イル)-1-オキソペンタン-2-イル)アミノ)-1-オキソ-3-フェニルプロパン-2-イル)-2-((S)-2-(2-モルホリノアセトアミド)-4-フェニルブタンアミド)ペンタンアミドとしても公知;商標KyprolisとしてOnyx Pharmaceuticals, Inc.、South San Francisco、CAによって市販)と併用してのHu34C3-MMAE E2の有効性を、OPM-2の皮下異種移植片で判定した。この実験ではエフェクター細胞陰性マウスを用いた(NSG系統)。Hu34C3-MMAE E2による処置は有意な腫瘍成長阻害をきたした(45%のTGImax値)。カルフィゾミブによる処置は腫瘍サイズに有意に影響をおよぼさなかった(<10%のTGImax)(図26Aおよび26B)。Hu34C3-MMAE E2およびカルフィゾミブの組み合わせは、Hu34C3-MMAE E2単独とほぼ同等のレベルで腫瘍成長を阻害した(TGImax 43%(図26A)およびTGImax 59%(図26B))。
ポマリドマイド(4-アミノ-2-(2,6-ジオキソピペリジン-3-イル)イソインドール-1,3-ジオンとしても公知;商標POMALYSTとしてCelgene Corporation、Summit、NJ 07901によって市販)および/またはデキサメタゾン((8S,9R,10S,11S,13S,14S,16R,17R)-9-フルオロ-11,17-ジヒドロキシ-17-(2-ヒドロキシアセチル)-10,13,16-トリメチル-6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17-ドデカヒドロ-3H-シクロペンタ[a]フェナントレン-3-オンとしても公知)と併用してのHu34C3-MMAE E2の有効性を、OPM-2細胞の皮下異種移植片で判定した(van Rhee et al., 2009 Mol. Cancer Therapeutics 8: 2616-24)。この実験ではエフェクター細胞陰性マウスを用いた(NSG系統)。ビヒクル(PBS/DMSO)を対照として試験した。ADCを3または6mg/kg i.p.で投与し;ポマリドマイドを20mg/kg i.p.で、およびデキサメタゾンを10mg/kg i.p.で投与した。
Hu34C3-MMAE E2の有効性を、L-363細胞の皮下異種移植片で判定した(Tai et al., 2008 Blood 112(4): 1329-37)。これらの異種移植片をエロツズマブ(10mg/kg)およびレナリドマイド(50mg/kg)で2週間処置した。エロツズマブは1週間に2回投与し;レナリドマイドは1週間に5回投与した。この2週間の処置終了時に、エロツズマブ/レナリドマイド処置群は52%TGImaxを有していた。これらの腫瘍を再度無作為化し、エロツズマブ/レナリドマイド処置を継続するか、またはHu34C3-MMAE E2E4(Hu34C3-MMAE E2およびHu34C3-MMAE E4の50:50混合物)を投与した。Hu34C3MMAE E2E4による処置は有意な腫瘍成長の遅延を誘導した(TGImax=75%)が、エロツズマブ/レナリドマイド処置は成長のわずかな遅延を示した(図28)。
Hu34C3-MMAE E2の有効性を、OPM-2細胞の皮下異種移植片で判定した(van Rhee et al., 2009 Mol. Cancer Therapeutics 8: 2616-24)。これらの異種移植片はボルテゾミブで1週間に2回、2週間処置した。この2週間の処置終了時に、このボルテゾミブ処置群で中等度の反応が見られた(66%TGImax)。これらの腫瘍を再度無作為化し、ボルテゾミブ処置を継続するか、またはレナリドマイド+デキサメタゾン、ポマリドマイド、Hu34C3-MMAE E2、もしくはHu34C3-MMAE E2+ポマリドマイド処置に切り換えた。Hu34C3-MMAE E2(5mg/kg)+ポマリドマイドの組み合わせ(90%TGImax)は、Hu34C3-MMAE E2またはポマリドマイド単独での処置に比べて、有意に高い有効性を示した。Hu34C3-MMAE E2は、2倍のレベル(10mg/kg)で投与した場合、ポマリドマイドと併用しての中用量Hu34C3-MMAE E2(5mg/kg)とほぼ同等の有効性を示した(図29)。
Claims (57)
- ヒトCS1を発現する細胞の結合について、表3に挙げる抗体から選択される対照抗体と競合する抗体。
- 対照抗体が抗体Hu34C3である、請求項1記載の抗体または結合断片。
- 実施例6の競合結合検定において、対照抗体の結合を少なくとも20%減少させる、請求項2記載の抗体。
- (i)3つのCDRを含むVH鎖;および(ii)3つのCDRを含むVL鎖を含み、
VH CDR#1は式
を有し、式中:
X1は芳香族残基であり;
VH CDR#2は式
を有し、式中:
X2は極性残基または酸残基であり、
X3は極性残基、非極性残基または酸性残基であり、
X4は芳香族残基であり、
X5は脂肪族残基であり、
X6は脂肪族残基であり、かつ
X7は小型残基であり;
VH CDR#3は式
を有し、式中:
X8は芳香族残基であり;
VL CDR#1は式
を有し、式中:
X9は極性残基または芳香族残基であり、
X10は極性残基または塩基性残基であり、かつ
X11は極性残基または脂肪族残基であり;
VL CDR#2は
であり;かつ
VL CDR#3は式
を有し、式中:
X12は芳香族残基である、請求項1記載の抗体。 - 配列がSEQ ID NO:8に対応するVH鎖および配列がSEQ ID NO:10に対応するVL鎖を含む、請求項1記載の抗体。
- 配列がSEQ ID NO:34に対応する重鎖および配列がSEQ ID NO:35に対応する軽鎖を含む、請求項1〜7のいずれか一項記載の抗体。
- IgG1である、請求項1記載の抗体。
- 実施例5の競合結合検定において、ヒトCS1を発現する細胞の結合について、PDL241、エロツズマブおよびLuc34.3.8からなる群より選択される対照抗体と競合しない、請求項1記載の抗体。
- 遊離スルフヒドリル基をもつ1つまたは複数の還元システイン残基を有する、請求項1記載の抗体。
- リンカーによって請求項1〜11のいずれか一項記載の抗体に連結された細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質を含む、抗体薬物結合体(「ADC」)。
- 1〜10の範囲の薬物 対 抗体比平均値を有する、請求項12記載のADC。
- 2〜4の範囲の薬物 対 抗体比平均値を有する、請求項12記載のADC。
- リンカーがリソソーム酵素によって切断可能である、請求項12記載のADC。
- リソソーム酵素がカテプシンBである、請求項13記載のADC。
- リンカーが構造式(IVa)もしくは(IVb)またはその塩のセグメントを含む、請求項16記載のADC:
式中:
ペプチドは、リソソーム酵素によって切断可能なペプチド(C→Nで図示され、カルボキシ「末端」およびアミノ「末端」は示していない)を表し;
Tは、1つもしくは複数のエチレングリコール単位または1つのアルキレン鎖、あるいはその組み合わせを含むポリマーを表し;
Raは、水素、アルキル、スルホネートおよびメチルスルホネートから選択され;
pは0〜5の範囲の整数であり;
qは0または1であり;
xは0または1であり;
yは0または1であり;
は、リンカーの細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質への連結点を表し;かつ
*は、リンカーの残りの部分への連結点を表す。 - リソソーム酵素がβ-グルクロニダーゼである、請求項15記載のADC。
- リンカーが切断不可能でる、請求項12記載のADC。
- リンカーが、1〜6つのエチレングリコール単位を有するポリエチレングリコールセグメントを含む、請求項12記載のADC。
- 細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質がカリケアマイシン、メイタンシノイド、オーリスタチンおよびドキソルビシンからなる群より選択される、請求項12記載のADC。
- 細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質がMMAEまたはMMAFである、請求項12記載のADC。
- 構造式(I)の化合物またはその塩である、請求項12記載のADC:
(I) [D-L-XY]n-Ab
式中:
Dは抗悪性腫瘍薬であり;
Lはリンカーであり;
Abは抗体であり;
XYは、リンカーLを抗体Abに連結する共有結合を表し;かつ
nは2〜8の範囲の整数である。 - nが2、3または4である、請求項24記載のADC。
- リンカーLがリソソーム酵素によって切断可能である、請求項24記載のADC。
- XYが、抗体Ab上のアミノ基と形成される連結である、請求項24記載のADC。
- XYがアミドまたはチオ尿素である、請求項26記載のADC。
- XYが、抗体Ab上のスルフヒドリル基と形成される連結である、請求項24記載のADC。
- XYがチオエーテルである、請求項29記載のADC。
- XYが、マレイミドとスルフヒドリル基との間で形成される連結である、請求項29記載のADC。
- nが2または4である、請求項32記載のADC。
- Dがオーリスタチンである、請求項32記載のADC。
- 請求項12〜35のいずれか一項記載のADCならびに担体、賦形剤および/または希釈剤を含む、組成物。
- ヒトにおける医薬用途のために製剤化される、請求項36記載の組成物。
- 単位剤形である、請求項37記載の組成物。
- 請求項1〜11のいずれか一項記載の抗体を、構造式(III)D-L-Rxのシントンと、シントンが該抗体にシントンを共有結合させる条件下で接触させることによって形成される、ADC:式中、Dは細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質であり、Lはリンカーであり、かつRxは、シントンを該抗体に共有結合することが可能な官能基を含む。
- 抗体がHu34C3である、請求項39記載のADC。
- 細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質がオーリスタチンである、請求項39記載のADC。
- Rxがマレイミドを含む、請求項39記載のADC。
- 抗体がHu34C3であり、かつ細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質がMMAEである、請求項39記載のADC。
- 接触させる段階が、ADCがDAR 2、3または4を有するような条件下で実施される、請求項39〜43のいずれか一項記載のADC。
- 請求項39記載のADCならびに賦形剤、担体および/または希釈剤を含む、組成物。
- ヒトにおける医薬用途のために製剤化される、請求項45記載の組成物。
- 単位剤形である、請求項46記載の組成物。
- 請求項1〜11のいずれか一項記載の抗体を、構造式(III)D-L-Rxのシントンと、シントンが該抗体にシントンを共有結合させる条件下で接触させる段階を含む、ADCの作製法:式中、Dは細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質であり、Lはリンカーであり、かつRxは、シントンを該抗体に共有結合することが可能な官能基を含む。
- 抗体がHu34C3である、請求項48記載の方法。
- 細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質がオーリスタチンである、請求項48記載の方法。
- Rxがマレイミドを含む、請求項48記載の方法。
- 抗体がHu34C3であり、かつ細胞傷害性および/または細胞増殖抑制性作用物質がMMAEである、請求項48記載の方法。
- 形質細胞腫瘍を患っている対象に、治療的恩典を提供するのに十分な量の請求項12〜35のいずれか一項記載のADCを投与する段階を含む、形質細胞腫瘍を処置する方法。
- 形質細胞腫瘍が多発性骨髄腫である、請求項53記載の方法。
- ADCを単剤療法として投与する、請求項53記載の方法。
- ADCを、多発性骨髄腫を処置するために一般に用いられる別の薬剤に対して補助的にまたは該薬剤と共に付加的に投与する、請求項53記載の方法。
- 他の薬剤がボルテゾミブ、ポマリドマイド、レナリドマイドおよびデキサメタゾンの1つまたは複数である、請求項53記載の方法。
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