JP2017533920A - ウイルス粒子を用いた癌免疫療法 - Google Patents

Abstract

ウイルスまたはウイルス様粒子の治療有効量を、治療を必要とする対象に投与することを含み、該ウイルス粒子が、該対象において非複製性および非感染性である、該対象における癌を処置する方法が記載される。該方法は、免疫系が腫瘍に応答し得るように腫瘍への直接の免疫刺激試薬の適用で腫瘍微小環境を修飾する、インサイチュ・ワクチン療法のタイプを表す。【選択図】図３

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１４年１１月７日出願の米国特許仮出願第６２／０７６，５４３号、２０１５年１月２６日出願の米国特許仮出願第６２／１０７，６１７号、および２０１５年５月１１日出願の米国特許仮出願第６２／１５９，３８９号の優先権を主張するものであり、それらの仮出願は、参照により本明細書に組み入れられる。

連邦の後援による研究の表明
本発明は、米国国立衛生研究所によって授与されたＮＩＨトレーニング・グラントＮｏ
．５Ｔ３２ＡＩ００７３６３−２２、ＮＩＨトレーニング・グラントＮｏ．Ｔ３２ ＨＬ１０５３３８、およびグラントＮｏ．ＮＩＨ １ Ｕ５４ ＣＡ１５１６６２、ならびに米国国立科学財団によって授与されたグラントＮｏ．ＣＭＭＩ １３３３６５１の下、米国政府の支援によってなされた。米国政府は、本発明において特定の権利を有する。

背景
転移癌は、原発組織にかかわらず、一様に予後不良である。従来の化学および放射線療法は、後期疾患にはほとんど無効である。腫瘍免疫学の新興分野は、新しい治療選択を提起している。免疫チェックポイント阻害剤、キメラ抗原受容体細胞療法、および腫瘍関連抗原癌ワクチンなど、抗腫瘍免疫の誘導を探求する新規治療薬は、有望であるが、癌の免疫療法の開発は初期段階にあり、免疫療法は、他の癌療法と同じく、最適な効力のために組み合わせるのが相応しいようである。各癌のタイプは、特有であるが、多くの固形腫瘍は、肺に転移する。診断的切開を制限した選択肢が、転移の疑われる部位または確認された腫瘍への免疫刺激性試薬の直接適用である。このアプローチ、つまりインサイチュ・ワクチン療法は、局所微小環境を調整することができ、Ｔ細胞チェックポイント阻害抗体などの治療と同様に、免疫抑制を緩和して、腫瘍によって発現される抗原に対して抗腫瘍免疫を強化することができる。

現在まで、癌治療としてナノ粒子に至る研究は、送達基盤としてのそれら、つまり抗腫瘍免疫の刺激のために腫瘍関連抗原および免疫アゴニストを粒子に負荷すること、または毒性低下の手段として腫瘍へ送達される既存の従来型化学療法薬を粒子に負荷すること、に集中していた。Ｓｈｅｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｗｉｌｅｙ Ｉｎｔｅｒｄｉｓｃｉｐ Ｒｅｖ Ｎａｎｏｍｅｄ Ｎａｎｏｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．， ６（５）：４９６−５０５ （２０１４）。しかし、ナノ粒子が自然免疫細胞と相互作用し、それに取り込まれる傾向があるため、取り込む自然免疫集団の特徴をナノ粒子が変化させるなら、免疫刺激剤、免疫調整剤および免疫刺激剤としての能力をナノ粒子に与えられる。

ウイルス様粒子（ＶＬＰ）は、特定のウイルスの三次元カプシド構造への外被タンパク質の自然な組織化を指す。これらの粒子は、活性ウイルスと同様に、２０〜５００ｎｍのサイズ範囲内であるが、それらは、ウイルス核酸が欠如している。ＶＬＰは既に、感染性の同等物であるＢ型肝炎ウイルス（Ｈａｌｐｅｒｉｎ ｅｔ ａｌ．， Ｖａｃｃｉｎｅ， ３０（１５）：２５５６−６３ （２０１２））およびヒトパピローマウイルス（Ｍｏｒｅｉｒａ ｅｔ ａｌ．， Ｈｕｍ Ｖａｃｃｉｎ．， ７（７）：７６８−７５ （２０１１））に対する抗ウイルスワクチンの抗原成分として展開されている。ＶＬＰを利用するワクチンは現在、癌を引き起こすウイルスへの感染を予防することによって、癌罹患率の低下に寄与している。

ＶＬＰ療法の効力が、ＶＬＰが担う特異的抗原アレイを超えて拡大すること、およびそれらが、ＶＬＰに含まれる任意の抗原を担わない感染物質に対して免疫応答を刺激し得る生来の免疫原性を有し得ること、が近年の研究で実証された。Ｒｙｎｄａ−Ａｐｐｌｅ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｎｏｍｅｄ．， ９（１２）： １８５７−６８ （２０１４）。ＶＬＰは、肺の感染性疾患のマウスモデルの気道において、防御性の免疫応答を誘導する能力を示した。ＶＬＰ処置は、マウスを、メチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）（Ｒｙｎｄａ− Ａｐｐｌｅ ｅｔ ａｌ．， Ａｍ Ｊ Ｐａｔｈｏｌ．， １８１（１）： １９６−２１０ （２０１２））および コクシエラ・バーネッティー（Ｗｉｌｅｙ ｅｔ ａｌ．， ＰＬｏＳ ＯＮＥ．， ４（９）：ｅ７１４２ （２００９））によって引き起こされた細菌性肺炎から防御した。ＶＬＰはまた、様々なインフルエンザモデルのマウスを防御することが示された。Ｐａｔｔｅｒｓｏｎ ｅｔ ａｌ．， ＡＣＳ Ｎａｎｏ．， ７（４）：３０３６−４４ （２０１３）； Ｒｉｃｈｅｒｔ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ．， ４４（２）：３９７−４０８ （２０１４）。これらのモデルにおける防御性免疫は、動員、活性化および抗原処理能力増大、誘導型気管支随伴リンパ組織（ｉＢＡＬＴ）の形成、ならびにＣＤ４^＋ＴおよびＢリンパ球、ＣＤ８^＋Ｔ細胞の刺激に関連した。これらの研究で自然免疫および獲得免疫の両方のロバストな誘導が報告されたこと、ならびに用いられたＶＬＰが感染性物質に抗原として関係せず、ＶＬＰが粒子の生来の免疫調整性を通して治療効果を発揮すると思われたことに留意することが重要である。いずれのＶＬＰも、その免疫調整の機構的原理は分かっていないが、一部のＶＬＰが他よりも高い能力を有する可能性がある。

概要
本発明者らは、本来は肺感染性疾患モデルで観察される、ウイルスおよびウイルス様粒子、ならびにそれらの特有の治療特性が新しい適用例、つまり肺癌などの癌の処置に用いられ得るか否かを検討した。原発性肺癌は、米国では、乳癌に次ぐ二番目に多い癌である。さらに、乳房、膀胱、結腸、腎臓、黒色腫、および前立腺などの他の主要な癌のほとんどは、肺に転移することが多い。米国では黒色腫の罹患率が上昇しており、転移性疾患では予後不良で現在、５年生存率が１０％未満であるため、それらの研究は黒色腫に集中している。Ｆｌａｈｅｒｔｙ ｅｔ ａｌ， Ｎ Ｅｎｇｌ Ｊ Ｍｅｄ．， ３６３（９）：８０９−１９ （２０１０）。本発明者らは、抗腫瘍免疫介在性の効力が、乳癌、卵巣癌、および結腸癌のモデルに適用されるか否か、原発部位および転移部位の両方が処置されるか否かについても研究した。

ササゲモザイクウイルス（ＣＰＭＶ）は、異なる均一な３０ｎｍサイズの正二十面体構造に自己組織化するタンパク質性ナノ粒子である。それは、それぞれが低分子と高分子の外被タンパク質単位の、６０コピーからなる。Ｙｉｌｄｉｚ ｅｔ ａｌ， Ｊ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ， １７２（２）：５６８−７８ （２０１３）。ＣＰＭＶは、植物内での分子農業を通して産生され得る植物ウイルスである。詳細には、本明細書で提供される実施例で用いられる該粒子は、任意の核酸を担わないＶＬＰ系のエンプティＣＰＭＶ（ｅｍｐｔｙ ＣＰＭＶ）（ｅＣＰＭＶ）であり、それゆえそれは、非複製性であり、ヒトの健康および農業への見通しとして安全であると見なされ得る。植物内産生は、大腸菌由来の他のＶＬＰ系の副産物であり得るエンドトキシン混入を予防する。該粒子は計測可能で、一定範囲の温度（４〜６０℃）および溶媒:緩衝液混合物に対して安定しており、中空コア中の、または外被タンパク質に共有結合でつながった薬物または抗原などのカーゴを送達するように修飾させることができる。Ａｌｊａｂａｌｉ ｅｔ ａｌ， Ｍｏｌ Ｐｈａｒｍ．， １０（１）：３―１０ （２０１３）。本発明者らは、転移性肺黒色腫および皮膚黒色腫、ならびに他の癌（乳房、結腸、卵巣）のモデルにおける免疫療法剤としてのｅＣＰＭＶナノ粒子の効力を検討し、マウスモデルにおいてインサイチュ・ワクチン療法試薬としての顕著な効力を有することを見出している。

本発明者らのアプローチは、薬物または抗原の送達のためのビヒクルとしてのｅＣＰＭＶ粒子に依存するのではなく、むしろその生来の免疫原性に依存する。この免疫原性は、該粒子が吸入される場合、または皮膚腫瘍への腫瘍内投与によって、もしくは播種された転移性卵巣癌を処置する際にＩＰ投与として投与される場合に、比類なく強力になるようである。肺腫瘍の処置の場合、該粒子が、定着した肺腫瘍を有するマウスに気管内注射され、この免疫刺激性処置が、それらの腫瘍の拒絶、および遠位腫瘍の成長を予防する全身免疫をもたらす。ｅＣＰＭＶ粒子は単独で、全身抗腫瘍免疫を刺激することができる。ｅＣＰＭＶは、肺微小環境を、腫瘍細胞の播種または連続成長が起こり難くすることができる。本発明者らは、腫瘍細胞が既に播種されていることが確定されるチャレンジ後３日目の時点で処置する。これらの細胞が存続し、単に増殖できないかどうか、またはそれらが免疫系によって能動的に排除されるか否かは、分かっていない。

本発明者らは、明らかな免疫刺激性成分を有さないエンプティ・ササゲモザイクウイルス（ｅＣＰＭＶ）のウイルス様粒子（ＶＬＰ）が、効果的な抗腫瘍性免疫応答を刺激し得ることを実証した。ｅＣＰＭＶ ＶＬＰを免疫系によって認識する手法は、まだ特徴づけられていない。マウスにおける試験では、ｅＣＰＭＶウイルス様粒子（ＶＬＰ）が、肺腫瘍の定着後のマウスによって吸入された場合のこの能力が実証されている。これは、抗腫瘍効果を有する任意のタイプのＶＬＰによる生来の免疫刺激能力の初めての実証である。

本発明は、以下の図面を参照することでより即座に理解され得る。

Ａ−Ｂ。ｅＣＰＭＶナノ粒子が生来の免疫原性であることを示した棒グラフを提供する。（Ａ）ｅＣＰＭＶに暴露された骨髄由来樹状細胞（ＢＭＤＣ）が、インビトロで高レベルの炎症促進性サイトカインを産生する。（Ｂ）チオグリコラートによって誘発された初代マクロファージもまた、同パネルのサイトカインを有意に高レベルに分泌する。両方の細胞型を、ｅＣＰＭＶ（濃灰色の棒）２０μｇと共に２４時間培養し、複合化されたＬｕｍｉｎｅｘアッセイを利用して、サイトカインレベルを分析した。 Ａ−Ｄ。ｅＣＰＭＶ吸入が、Ｂ１６Ｆ１０肺腫瘍担持マウスにおける免疫細胞組成およびサイトカイン／ケモカイン環境の劇的変化を誘導することを示したグラフを提供する。（Ａ）ＰＢＳ（上左）またはｅＣＰＭＶ（上右）で処置された非腫瘍担持マウス、およびＰＢＳ（下左）またはｅＣＰＭＶ（下右）で処置されたＢ１６Ｆ１０肺腫瘍担持マウスの生存するＣＤ４５^＋細胞でプレゲートされた（ｐｒｅ−ｇａｔｅｄ）代表的なＦＡＣＳプロット。Ｂ１６Ｆ１０マウスを、Ｂ１６Ｆ１０ ＩＶ注射後７日目に処置した。肺を、ＰＢＳまたはｅＣＰＭＶ １００μｇの気管内注射の２４時間後に採取した。標識は、（ｉ）静止好中球、（ｉｉ）肺胞マクロファージ、（ｉｉｉ）単球ＭＤＳＣ、（ｉｖ）顆粒球ＭＤＳＣ、（ｖ）腫瘍浸潤好中球、および（ｖｉ）活性化好中球、を示す。円で囲った群のそばの数値は、ＣＤ４５^＋細胞に対する割合％である。矢印は、ＴＩＮ（青色）およびＣＤ１１ｂ^＋で活性化された好中球（赤色）を示す。補足データで利用可能なゲーティング方策。（Ｂ）ｅＣＰＭＶ吸入によって誘導された自然細胞サブセットの変化を、パネル（Ａ）に示したのと同様に、ＣＤ４５^＋細胞（上）および細胞総数（下）に対する割合として定量している。（Ｃ）Ａｌｅｘａ４８８で標識されたＣＰＭＶ、クラスＩＩ、およびＣＤ８６活性化マーカの取り込みを示す、ＴＩＮ、活性化好中球、肺胞マクロファージ、および単球ＭＤＳＣの代表的なヒストグラム。（Ｄ）Ｂ１６Ｆ１０肺腫瘍担持マウスの肺は、パネル（Ａ）と同様に、ｅＣＰＭＶで処置された場合に、高レベルの炎症促進性サイトカインおよび走化性物質を示した。 Ａ−Ｄ。ｅＣＰＭＶ吸入がＢ１６Ｆ１０転移様肺腫瘍（Ｂ１６Ｆ１０ ｍｅｔａｓｔａｔｉｃ−ｌｉｋｅ ｌｕｎｇ ｔｕｍｏｒｓ）の形成を予防することを示したグラフおよび画像を提供する。（Ａ）実験計画の略図。（Ｂ）腫瘍チャレンジ後２１日目のｅＣＰＭＶ処置およびＰＢＳ処置Ｂ１６Ｆ１０腫瘍担持マウスの肺の写真。（ＣおよびＤ）Ｂ１６Ｆ１０肺転移様腫瘍病変を、（Ｃ）では数、または（Ｄ）ではメラノサイト特異的Ｔｙｒｐ１ ｍＲＮＡ発現に関するｑＲＴ−ＰＣＲアッセイ、の両方で定量した。 Ａ−Ｄ。Ｂ１６Ｆ１０肺モデルにおけるｅＣＰＭＶ処置効力が免疫介在性であることを示したグラフを提供する。（Ａ）ｅＣＰＭＶ吸入は、マウスがＩｌ−１２を欠損している場合には腫瘍進行に有意な影響を及ぼさなかった。（Ｂ）処置効力はまた、Ｉｆｎ−γの非存在下で消失した。（Ｃ）同じくＴ、Ｂ、およびＮＫ細胞が欠如したＮＯＤ／ｓｃｉｄ／Ｉｌ２Ｒ−γ^−／−マウスは、ｅＣＰＭＶ吸入療法に応答することができなかった。（Ｄ）Ｌｙ６Ｇ ｍＡｂを有する好中球の除去は、処置効力を消失させる。 Ａ−Ｄ。ｅＣＰＭＶ免疫療法が転移乳癌、側腹部黒色腫、結腸癌、および卵巣癌モデルで成功することを示したグラフおよび画像を提供する。（Ａ）４Ｔ１乳房腫瘍をチャレンジされたマウス、およびＰＢＳを気管内注射されたマウスは、急速に発達し（ＩＶＩＳ画像）、２４日目に生じた転移性腫瘍によって死亡したが（カプラン・マイヤー）、ｅＣＰＭＶの気管内注射を受けたマウスでは、腫瘍の発達が遅延し、生存が有意に延長した。（Ｂ）ｅＣＰＭＶを直接注射された皮膚内の側腹部Ｂ１６Ｆ１０腫瘍を担持するマウス（矢印は処置日を示す）は、ＰＢＳ注射対照に比較して著しく遅延した腫瘍進行を示し、ｅＣＰＭＶ処置マウスの半数では、腫瘍が完全に消失した。（Ｃ）皮膚内の側腹部ＣＴ２６結腸腫瘍を担うマウスもまた、ｅＣＰＭＶの直接注射に応答し（矢印は処置日を示す）、ＰＢＳ注射対照に比較して成長が有意に遅延した。（Ｄ）ｅＣＰＭＶは、ＩＤ８−Ｄｅｆｂ２９／Ｖｅｇｆ−Ａ卵巣癌をチャレンジされたマウスでも治療の成功を立証し、ＰＢＳ注射対照に比較して、ＩＰ注射された場合に生存を有意に改善した。 Ａ−Ｂ。皮膚Ｂ１６Ｆ１０のｅＣＰＭＶ処置が全身抗腫瘍免疫を誘導することを示した時間図（Ａ）およびグラフ（Ｂ）を提供する。

詳細な記載
他に定義されていなければ、本明細書で用いられる全ての技術的および科学的用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって共通して理解されるものと同じ意義を有する。本発明の記載で用いられる用語法は、特定の実施形態のみを記載しており、本発明の限定を意図するものではない。本明細書で言及された全ての発行物、特許出願、特許、および他の参考資料は、全体として参照により組み入れられる。

定義
本発明の記載および添付の特許請求の範囲で用いられる単数形「ａ」、「ａｎ」および「ｔｈｅ」は、他に明確な断りがなければ、複数形も包含するものとする。加えて、エンドポイントによる数値範囲の列挙は、その範囲内に含まれる全ての数値を包含する（例えば、１〜５は、１、１．５、２、２．７５、３、３．８０、４、５などを包含する）。

本明細書で用いられる用語「ペプチド」、「ポリペプチド」および「タンパク質」は、互換的に用いられており、ペプチド結合によって共有結合でつながれたアミノ酸残基で構成された化合物を指す。タンパク質またはペプチドは、少なくとも２つのアミノ酸を含んでいなければならず、タンパク質またはペプチドの配列を構成し得るアミノ酸の最大数に限定はない。ポリペプチドは、ペプチド結合によって互いに連結された２つ以上のアミノ酸を含む任意のペプチドまたはタンパク質を包含する。本明細書で用いられる場合、その用語は、例えば当該技術分野で共通してペプチド、オリゴペプチドおよびオリゴマーと称される短鎖と、当該技術分野で一般にタンパク質と称され、多くの型が存在する長鎖と、の両方を指す。「ポリペプチド」はとりわけ、例えば生物学的活性断片、実質的に相同なポリペプチド、オリゴペプチド、ホモダイマー、ヘテロダイマー、ポリペプチドの変種、修飾ポリペプチド、誘導体、類似体、融合タンパク質を包含する。該ポリペプチドは、天然ペプチド、組換えペプチド、合成ペプチド、またはそれらの組み合わせを包含する。タンパク質は、受容体または非受容体であり得る。「Ａｐａ」は、アミノペンタン酸である。

「核酸」は、ポリヌクレオチドを指し、ポリリボヌクレオチドおよびポリデオキシリボヌクレオチドを包含する。

本明細書で用いられる「処置すること」は、疾患もしくは障害の影響を改善すること、または疾患もしくは障害の進行を遅延、停止もしくは逆行させることを意味する。その単語は、疾患もしくは障害の症状の重症度、および／または疾患もしくは障害の症状の頻度を低下させることを包含する。

本明細書で用いられる用語「対象」は、ヒトまたは非ヒト動物であり得る。非ヒト動物としては、例えば家畜およびペット、例えばヒツジ、ウシ、ブタ、イヌ、ネコおよびネズミの哺乳動物、ならびに爬虫類、鳥類および魚類が挙げられる。好ましくは対象は、ヒトである。

言語「有効量」または「治療有効量」は、用いられる化合物に応じて、対象において効果的な造影または治療を提供するのに効果的である本発明の実践に用いられる組成物の非毒性であるが十分な量を指す。その結果は、疾患もしくは障害の兆候、症状または原因の低減および／または軽減、または生物系の任意の他の望ましい改変であり得る。任意の個々の例における適切な治療量は、日常的実験法を利用して当業者によって決定され得る。

「防護的」または「予防的」処置は、疾患または障害に関連する病態を発症するリスクを低減する目的で、疾患もしくは障害の兆候を示さない対象、または疾患もしくは障害の初期徴候のみを示す対象に投与される処置である。

「治療的」処置は、疾患または障害の病態の兆候を排除または消失する目的で、それらの兆候を示す対象に投与される処置である。

「医薬的に許容し得る担体」は、本明細書において、本発明の組成物などの活性医薬成分を、過度の毒性または他の合併症を伴わずに、該活性医薬成分の生物活性を維持しながら対象に送達するのに適した組成物を指す。マンニトール、スクロース、ポリソルベート−８０およびリン酸緩衝液などのタンパク質安定化賦形剤が、典型的にはそのような担体に見出されるが、該担体は、これらの化合物に限定されるものと解釈されるべきではない。

一態様において、本発明は、ウイルスまたはウイルス様粒子の治療有効量を、治療を必要とする対象に投与することによって、該対象における癌を処置する方法を提供する。ウイルスまたはウイルス様粒子は、対象の感染を回避するために対象において非複製性および非感染性でなければならない。幾つかの実施形態において、該ウイルス粒子は、対象における腫瘍の付近に投与される。腫瘍の付近へのウイルス粒子の投与は、腫瘍微小環境において高局所濃度のウイルス粒子を提供するための、直接の腫瘍部位への投与を含む。

幾つかの実施形態において、ウイルス核酸が存在しないウイルス様粒子（ＶＬＰ）が用いられる。核酸が欠如したウイルス様粒子は、導入される対象にかかわらず、非複製性および非感染性である。ウイルス様粒子の例が、エンプティ・ササゲモザイクウイルス粒子である。他の実施形態において、ウイルス粒子は、ウイルス粒子内に核酸を含む。核酸は、存在するならば、典型的にはウイルスをコードする核酸であろう。しかし幾つかの実施形態において、ウイルス核酸は、外因性核酸と置換されている場合がある。幾つかの実施形態において、核酸はＲＮＡであるが、他の実施形態において、核酸はＤＮＡである。核酸を含むウイルス粒子は、感染され得ない対象の中に導入される場合であっても、非複製性および非感染性であろう。例えば植物ウイルス粒子は典型的には、動物対象に導入される場合、非複製性および非感染性であろう。

幾つかの実施形態において、該ウイルスは、植物ウイルスである。しかしバクテリオファージまたは哺乳動物ウイルスを、本発明の幾つかの実施形態で用いることができる。植物ウイルスが用いられる場合、幾つかの実施形態において、植物ウイルスは、植物ピコルナウイルスである。植物ピコルナウイルスは、セコウイルス科に属するウイルスであり、哺乳動物ピコマウイルスと共に、ピコルナウイルス目に属する。植物ピコルナウイルスは、比較的小さく、正二十面体カプシドを有する非エンベロープのプラス鎖ＲＮＡウイルスである。植物ピコルナウイルスは、それらと他のピコルナウイルスとを識別するさらなる特性を複数有し、セコウイルス亜科として分類される。幾つかの実施形態において、該ウイルス粒子は、コモウイルス亜科から選択される。コモウイルス亜科からのウイルスの例としては、ササゲモザイクウイルス、ソラマメウイルトウイルス１、およびタバコ輪点ウイルスが挙げられる。さらなる実施形態において、該ウイルス粒子は、コモウイルス属のものである。コモウイルスの好ましい例は、ササゲモザイクウイルス粒子である。

ウイルスまたはウイルス様粒子は、当業者に知られる様々な方法に従って得ることができる。植物ウイルス粒子が用いられる実施形態において、該ウイルス粒子は、植物ウイルスに感染し植物の抽出物から得ることができる。例えばササゲモザイクウイルスは、播種から１０日以内に感染し得るササゲ（ｂｌａｃｋ ｅｙｅｄ ｐｅａ）植物の中で発育することができる。植物は、例えばウイルスを含有する液体で葉をコーティングすること、およびその後、好ましくは研磨剤粉末の存在下で、葉を摩擦して、葉の表面を傷つけて葉の侵入および植物の感染を可能にすること、によって感染し得る。感染後１または２週間以内に葉を回収して、ウイルスナノ粒子を抽出する。ササゲモザイクウイルスの場合、ウイルス１００ｍｇを、５０本もの少ない植物から得ることができる。感染させた植物の抽出を利用して植物ピコルナウイルス粒子を得るための手順は、当業者に知られている。Ｗｅｌｌｉｎｋ Ｊ．， Ｍｅｔｈ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ， ８， ２０５−２０９ （１９９８）を参照されたい。ウイルス様粒子を得るための手順も、入手することができる。Ｓａｕｎｄｅｒｓ ｅｔ ａｌ．， Ｖｉｒｏｌｏｇｙ， ３９３（２）：３２９−３７ （２００９）。これらの両方の参考資料の開示は、参照により本明細書に組み入れられる。

ウルス粒子投与による癌の処置
本発明は、ウイルスまたはウイルス様粒子の治療有効量を、治療を必要とする対象に投与することによる、該対象における癌を処置する方法を提供する。理論に束縛されるのを望むものではないが、ウイルス粒子は、癌への免疫応答を誘発することから、抗癌作用を有すると思われる。「癌」または「悪性疾患」は、同義的用語として用いられ、細胞の未制御で異常な増殖、罹患した細胞を局所に、または血流およびリンパ系を通して身体の他の部分に伝播する（即ち、転移する）能力、ならびに複数の特徴的な構造的および／または分子的特性のいずれか、を特徴とする複数の疾患のいずれかを指す。「癌細胞」は、複数のステップでの新生物発達の早期、中間、または進行段階の細胞を指す。新生物発達の早期、中間および進行段階の特性は、顕微鏡検査法を利用して記載されてきた。新生物発達の三段階それぞれでの癌細胞は一般に、転座、反転、欠失、同腕染色体、モノソミー、および過剰染色体をはじめとする異常な核型を有する。癌細胞は、「過形成細胞」、即ち悪性発達の早期段階にある細胞、「形成異常細胞」、即ち新生物発達の中間段階にある細胞、および「新生物細胞」、即ち新生物発達の進行段階にある細胞を包含する。癌の例は、肉腫、乳癌、肺癌、脳癌、骨癌、肝臓癌、腎臓癌、結腸癌および前立腺癌である。幾つかの実施形態において、該ウイルス粒子は、非限定的に黒色腫、乳癌、結腸癌、肺癌、および卵巣癌からなる群から選択される癌を処置するのに用いられる。幾つかの実施形態において、該ウイルス粒子は、肺癌を処置するのに用いられる。吸入が、肺癌を処置する際にウイルスまたはウイルス様粒子を投与する好ましい方法である。しかし、吸入されたウイルス粒子は、全身免疫応答を刺激する能力の結果として、肺以外の癌を処置することができる。例えば幾つかの実施形態において、該ウイルス粒子は、癌が生じた最初の部分以外の１つまたは複数の部位に伝播した転移癌を処置するのに用いられる。他の実施形態において、該ウイルスまたはウイルス様粒子は、他の組織内の腫瘍の付近に投与され得る。

幾つかの実施形態において、該方法は、癌を焼灼するステップをさらに含む。癌を焼灼することは、クライオアブレーション、熱アブレーション、放射線療法、化学療法、ラジオ波焼灼術、電気穿孔、アルコール焼灼術、高密度焦点式超音波治療法、光線力学療法、モノクローナル抗体投与、免疫療法、および免疫毒素投与からなる群から選択される方法を利用して完遂され得る。

幾つかの実施形態において、癌を焼灼するステップは、対象に抗癌剤の治療有効量を投与することを含む。抗癌剤の例としては、血管形成阻害剤、例えば、アンギオスタチンＫ１〜３、ＤＬ−α−ジフルオロメチル−オルニチン、エンドスタチン、フマギリン、ゲニステイン、ミノサイクリン、スタウロスポリン、および（±）−サリドマイド；ＤＮＡ挿入剤または架橋剤、例えばブレオマイシン、カルボプラチン、カルムスチン、クロラムブシル、シクロフォスファミド、シスプラチン、メルファラン、ミトキサントロン、およびオキサリプラチン；ＤＮＡ合成阻害剤、例えばメトトレキサート、３−アミノ−１，２，４−ベンゾトリアジン１，４−ジオキシド、アミノプテリン、シトシンβ−Ｄ−アラビノフラノシド、５−フルオロ−５’−デオキシウリジン、５−フルオロウラシル、ガンシクロビル、ヒドロキシ尿素、およびマイトマイシンＣ；ＤＮＡ−ＲＮＡ転写調節因子、例えば、アクチノマイシンＤ、ダウノルビシン、ドキソルビシン、ホモハリントニン、およびイダルビシン；酵素阻害剤、例えばＳ（＋）−カンプトテシン、クルクミン、（−）−デグエリン、５，６−ジクロロベンゾイミダゾール１−β−Ｄ−リボフラノシド、エトポシド、ホルメスタン、ホストリエシン、ヒスピジン、シクロクレアチン、メビノリン、トリコスタチンＡ、チルホスチンＡＧ３４、およびチルホスチンＡＧ８７９；遺伝子調節因子、例えば、５−アザ−２’−デオキシシチジン、５−アザシチジン、コレカルシフェロール、４−ヒドロキシタモキシフェン、メラトニン、ミフェプリストン、ラロキシフェン、全てのトランス−レチナール、全てのトランス−レチノイン酸、９−シス−レチノイン酸、レチノール、タモキシフェン、およびトログリタゾン；微小管阻害剤、例えばコルヒチン、ドラスタチン１５（ｄｏｌｏｓｔａｔｉｎ １５）、ノコダゾール、パクリタキセル、ポドフィロトキシン、リゾキシン、ビンブラスチン、ビンクリスチン、ビンデシン、およびビノレルビン；様々な他の抗腫瘍剤、例えば１７−（アリルアミノ）−１７−デメトキシゲルダナマイシン、４−アミノ−１，８−ナフタルイミド、アピゲニン、ブレフェルジンＡ、シメチジン、ジクロロメチレン二リン酸、ロイプロリド、黄体形成ホルモン放出ホルモン、ピフィスリン−α、ラパマイシン、タプシガルギン、およびビクニン、ならびにそれらの誘導体（造影剤に関する定義）が挙げられる。

幾つかの実施形態において、癌を焼灼するステップは、癌免疫療法を含む。癌免疫療法は、免疫系を利用して悪性疾患と戦うことに照準を合わせた治療的介入に基づく。それは、非特異的アプローチと特異的アプローチに分別することができる。非特異的な癌免疫療法は、癌免疫療法において効果的であることが知られた特異的サイトカイン（例えば、ＩＬ−２、インターフェロン、サイトカイン誘導物質）での処置など、一般に免疫系の一部を活性化することに照準を合わせている。

これに対して特異的癌免疫療法は、癌細胞上で選択的にもしくはそこでのみ発現される、または悪性疾患に関連する（通常は腫瘍部位に隣接する）他の細胞によって主に発現される、特定の抗原に基づく。特異的癌免疫療法は、受動的アプローチと能動的アプローチに群分けされ得る。

受動的な特異的癌免疫療法において、免疫系の成分に由来する癌関連の特定構造に特異性を有する物質を、患者に投与する。最も傑出していて成功したアプローチが、確定された癌関連構造に対するヒト化またはマウス／ヒトキメラモノクローナル抗体での処置である（トラスツズマブ、リツキシマブ、セツキシマブ、ベバシズマブ、アレムツズマブなど）。該薬理学的活性物質は、患者の体内に十分な濃度が存在する限り、活性を発揮し、それゆえ投与は、薬物動態的および薬力学的考察に基づいて反復されなければならない。

その一方で、能動的な特異的癌免疫療法は、癌細胞を認識して破壊するために患者の免疫系の抗原特異的刺激に照準を合わせている。それゆえ、能動的な特異的癌免疫療法は一般に、ワクチン療法のアプローチである。自家または同種全腫瘍細胞（ほとんどの例で、より良好な免疫認識のために遺伝子修飾されている）、腫瘍細胞溶解物、腫瘍関連抗原（遺伝子操作または化学合成によって生成）、タンパク質抗原由来のペプチド、腫瘍関連抗原をコードするＤＮＡワクチン、腫瘍抗原の代替物、例えばワクチン抗原として用いられる抗イディオタイプ抗体などを用いたワクチン療法など、遂行される癌ワクチンアプローチには多くのタイプが存在する。これらの種々のアプローチは通常、定量的および定性的に十分な免疫応答を誘発するために、適切なワクチンアジュバントおよび他の免疫調整物質と共に投与される（多くの新規なワクチンアジュバントアプローチは、癌ワクチンの開発と並行して遂行されている）。他の組み合わせの癌ワクチンアプローチは、免疫系の最も重要な抗原提示細胞として樹状細胞（ＤＣ）を操作することに依存している。例えば腫瘍抗原または腫瘍細胞溶解物の負荷、腫瘍抗原をコードする遺伝子でのトランスフェクション、およびインビボターゲティングが、癌処置のために本発明のウイルスまたはウイルス様粒子と共に用いられ得る適切な免疫療法である。

カーゴ分子
幾つかの実施形態において、該ウイルス粒子は、カーゴ分子を負荷されるか、またカーゴ分子に結合される。種々の異なるタイプのカーゴ分子が、ウイルス粒子中に負荷され得るか、またはウイルス粒子に結合され得る。ウイルス粒子中に負荷されたカーゴ分子は、ウイルスカプシド内に収まるために十分、小さくなければならない（即ち、典型的な正二十面体カプシドでは１０ｎｍ以下のサイズを有する）。本発明の好ましいカーゴ分子としては、抗腫瘍剤が挙げられる。あるいはウイルス粒子中に負荷されるというよりむしろ、カーゴ分子をウイルス粒子に結合させることができる。カーゴ分子は、直接的または間接的にウイルス粒子に連結され得る（例えば、リンカー基を介して）。幾つかの実施形態において、カーゴ分子は、該薬剤と反応し得る官能基に直接結合している。例えば、アミノまたはスルフヒドリル基などの求核基は、酸無水物もしくは酸ハロゲン化物などのカルボニル含有基と、または良好な脱離基（例えば、ハロゲン化物）を含有するアルキル基と反応し得る。あるいは適切な化学的リンカー基が用いられ得る。リンカー基は、該薬剤またはウイルス粒子のいずれかで置換基の化学反応性を上昇させ、それによりカップリング効率を上昇させるよう働き得る。カーゴ分子をウイルス粒子に結合させるための部位として適した好ましい基は、ウイルス外被タンパク質中に存在する１つまたは複数のリシン残基である。

ウイルス粒子の投薬量および配合
本発明の構築物は、インビボで用いられる場合、好ましくは混合物および医薬的に許容し得る担体を含む医薬組成物として投与される。負荷されるピコルナウイルスは、０．００１〜９９．９ｗｔ％、より好ましくは約０．０１〜９９ｗｔ％、より好ましくは０．１〜９５ｗｔ％の量で医薬組成物中に存在し得る。

ウイルス粒子、またはこれらの粒子を含む医薬組成物は、所望の効果を提供するように設計された任意の方法によって投与され得る。投与は、腸内または非経口的、例えば経口、経直腸、大槽内、膣内、腹腔内または局所で行われ得る。非経口投与法としては、血管内投与（例えば、静脈内ボーラス注射、静脈内輸液、動脈内ボーラス注射、動脈内輸液および脈管系へのカテーテル注入）、標的組織の周辺および内部への注射、皮下輸液を含む皮下注射または沈着（ｄｅｐｏｓｉｔｉｏｎ）（浸透圧ポンプなどによる）、筋肉注射、腹腔内注射、ＣＮＳ腫瘍のための頭蓋内および髄腔内投与、ならびに例えばカテーテルまたは他の配置デバイスによる、標的エリアへの直接適用が挙げられる。

肺癌を有する対象にウイルス粒子を投与するための好ましい方法は、吸入による。例えばウイルス粒子を、対象の肺に気管内投与することができる。吸入による投与の場合、ウイルス粒子は、好ましくはエアロゾルまたは粉末として配合される。ナノ粒子の肺送達のための様々な方法が、Ｍａｎｓｏｕｒ ｅｔ ａｌ．， Ｉｎｔ Ｊ Ｎａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅ． ２００９；４：２９９−３１９に議論されており、その開示は、参照により本明細書に組み入れられる。

該組成物はまた、所望の配合に応じて、医薬的に許容し得る非毒性担体または希釈剤を含むことができ、それらは、動物またはヒトの投与のための医薬組成物を配合するために一般に用いられるビヒクルとして定義される。該希釈剤は、その組み合わせの生物活性に影響を及ぼさないように選択される。そのような希釈剤の例は、蒸留水、生理学的リン酸緩衝生理食塩水、リンゲル液、デキストロース溶液、およびハンクス液である。加えて、該医薬組成物または配合剤はまた、他の担体、アジュバント、または非毒性、非治療性、非免疫原性の安定化剤などを含み得る。

適切な用量は、用いられる治療剤または造影剤に応じて大きく変動し得る。静脈内投与のための典型的な医薬組成物は、各対象に１日あたり約０．１ｍｇ〜約１０ｇであろう。しかし他の実施形態において、約１ｍｇ〜約１ｇ、または約１０ｍｇ〜約１ｇの用量が、用いられ得る。該組成物の単回または反復投与が、対象によって要求および耐容される投薬量および頻度に応じて、投与され得る。任意の事象において、投与レジメンは、対象を効果的に処置するよう、本発明の組成物の十分量を提供しなければならない。

該配合剤は、簡便には単位投与剤形で提供され得、調剤の業界で周知の方法のいずれかによって調製され得る。好ましくはそのような方法は、ウイルス粒子を、１種または複数の補助的成分を構成する医薬的に許容し得る担体と会合（ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ）させるステップを含む。一般に該配合剤は、活性剤を液体担体、微粉末固体担体、またはそれらの両方と均一かつ緊密に会合させ、その後、必要に応じて、生成物を所望の配合剤に成形することによって調製される。本発明の方法は、対象、好ましくは哺乳動物、より好ましくはヒトに、所望の効果を生じるのに効果的な量の本発明の組成物を投与することを含む。

当業者は、対象のサイズおよび体重；疾患浸透の度合い；対象の年齢、健康および性別；投与経路；ならびに投与が局所であるか、または全身であるかなどの因子を考慮することによって、所与の対象に投与されるウイルス粒子の有効量を容易に決定することができる。当業者は、対象の具体的状況および要件に適合するように適切な投薬量および投与計画を導くことができる。例えば、投与されるウイルス粒子の適切な用量は、殺傷される癌細胞の体積、またはウイルス粒子が投与される腫瘍の体積から推定され得る。

活性剤の有用な投薬量は、インビトロ活性および動物モデルにおけるインビボ活性を比較することによって決定され得る。マウスおよび他の動物における有効な投薬量をヒトに外挿する方法は、当該技術分野で知られている。治療的または防護的処置を完遂するのに適した量は、治療的または防護的有効用量として定義される。防護的および治療的レジメンの両方において、薬剤は通常、効果が実現されるまで複数回の投薬で投与される。ウイルス粒子の有効用量は、投与手段、標的部位、患者の生理学的状態、患者がヒトか、または動物か、投与される他の薬剤、および処置が防護的か、または治療的か、をはじめとする多くの異なる因子に応じて変動する。

本発明の特定の実施形態をより明瞭に記載するために、実施例が含まれている。しかし、本発明の範囲内に非常に様々な他の実施形態が存在しており、それらは、本明細書に提供された特定の実施形態に限定されるべきではない。

実施例
実施例１：植物由来ウイルス様ナノ粒子免疫療法によるインサイチュ・ワクチン療法は転移癌を抑制する
現在の治療法は多くの場合、転移癌には無効であり、新興の免疫療法は、有望ではあるが、開発の初期段階である。インサイチュ・ワクチン療法は、免疫系が腫瘍に対して効果的に応答し得るように、腫瘍に直接適用された免疫刺激性試薬で免疫抑制性微小環境を修飾する工程を指す。本発明者らは、ウイルス様ナノ粒子での肺腫瘍担持マウスの処置が、肺の免疫環境を調整して、Ｂ１６Ｆ１０転移様病変の発達を予防し得ると仮定した。この実施例は、ササゲモザイクウイルス（ＣＰＭＶ）由来の自己組織化ウイルス様粒子の吸入が、静脈内チャレンジ後のマウスの肺において、腫瘍の発達を抑制することを示している。ＣＰＭＶ処置マウスとＰＢＳ処置マウスとの腫瘍量の不均等は顕著であり、その効果は、Ｉｆｎ−γ^−／−、Ｉｌ−１２^−／−、またはＮＯＤ／ｓｃｉｄ／Ｉｌ２Ｒγ^−／−マウスでは認められなかったため、免疫介在性である。効力はまた、Ｌｙ６Ｇ^＋細胞の非存在下では欠如していた。ＣＰＭＶナノ粒子は、腫瘍微小環境内の顆粒球細胞によって急速に取り込まれて、ロバストな活性化およびサイトカイン／ケモカイン産生をもたらした。ＣＰＭＶナノ粒子は、安定していて非毒性であり、高度にスケーラブルで、薬物および抗原によって修飾可能である。これらの特性が、その生来の免疫原性および免疫原性の低い腫瘍への著しい効力と合わさることで、ＣＰＭＶは、肺に転移した癌への魅力的な新規免疫療法として提起される。加えて、ＣＰＭＶは、皮膚黒色腫、転移性乳癌、結腸癌、および卵巣癌をはじめとする様々な他の腫瘍モデルにおいて明確な処置効力を呈した。これは、ウイルス様ナノ粒子が治療効力の立証された癌免疫療法として用いられるという最初の報告である。

材料と方法
ｅＣＰＭＶ生成および特徴づけ
外被タンパク質前駆体ＶＰ６０およびそれを成熟形態に切断する２４Ｋウイルスプロテイナーゼの遺伝子を含むバイナリープラスミドｐＥＡＱｅｘｐｒｅｓｓ−ＶＰ６０−２４Ｋで形質転換されたアグロバクテリウム・ツメファシエンスＬＢＡ４４０４の培養物を用いたニコチアナ・ベンサミアーナ植物のアグロインフィルトレーションを通して、ｅＣＰＭＶカプシドを生成した。インフィルトレーションの６日後に、葉を回収して、確立した手順を利用してｅＣＰＭＶを抽出した。粒子濃度を、ＵＶ／ｖｉｓ分光法を利用して測定し（ε_{２８０ｎｍ}＝１．２８ｍｇ^−１ｍＬｃｍ^−１）、粒子の完全性を透過型電子顕微鏡測定および高速タンパク質液体クロマトグラフィー（ｆａｓｔ ｐｒｏｔｅｉｎ ｌｉｑｕｉｄ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）によって決定した。

マウス
雌Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ（０１Ｃ５５）を、米国国立癌研究所またはＪａｃｋｓｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙから購入した。雌Ｉｌ−１２ｐ３５^−／−（００２６９２）、Ｉｆｎ−γ^−／−（００２２８７）、ＢＡＬＢ／ｃ（０００６５１）、およびＮＯＤ／ｓｃｉｄ／Ｉｌ２Ｒγ^−／−（００５５５７）マウスは、Ｊａｃｋｓｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙから購入した。マウスの試験は全て、 Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ａｎｉｍａｌ Ｃａｒｅ ａｎｄ Ｕｓｅ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ ｏｆ Ｄａｒｔｍｏｕｔｈに従って実施した。

腫瘍モデル
Ｂ１６Ｆ１０ネズミ黒色腫細胞株を、Ｄｒ．Ｄａｖｉｄ Ｍｕｌｌｉｎｓ（Ｇｅｉｓｅｌ Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ ａｔ Ｄａｒｔｍｏｕｔｈ Ｃｏｌｌｅｇｅ，ニューハンプシャー州ハノーバー所在）から得た。４Ｔ１−ルシフェラーゼネズミ乳癌細胞は、Ａｓｈｕｔｏｓｈ Ｃｈｉｌｋｏｔｉ （Ｄｕｋｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，ノースカロライナ州ダーラム所在）によって提供された。Ｂ１６Ｆ１０、４Ｔ１−ｌｕｃ、およびＣＴ２６を、完全培地（１０％ＦＢＳおよびペニシリン／ストレプトマイシンを補充されたＲＰＭＩ）で培養した。ＩＤ８−Ｄｅｆｂ２９／Ｖｅｇｆ−Ａ同所性重度卵巣癌細胞を、過去に記載された通り、ピルビン酸ナトリウムを補充された完全培地で培養した。Ｌｉｚｏｔｔｅ ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｃｏｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ， ３：ｅ２８９２６． ｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ２０１４。細胞を採取して、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で洗浄して、腫瘍モデルに応じて以下の手法で注射した：１．２５×ｌ０^５個の生存細胞をＰＢＳ２００μＬ中で尾静脈に静脈内注射（Ｂ１６Ｆ１０転移肺）、１．２５×ｌ０^５個の生存細胞をＰＢＳ３０μＬ中で右側腹部に皮内注射（Ｂ１６Ｆ１０側腹部）、１×ｌ０^５個の生存細胞をＰＢＳ３０μＬ中で右側腹部に皮内注射（ＣＴ２６側腹部）、２×ｌ０^６個の生存細胞をＰＢＳ２００μＬ中で腹腔内注射（ＩＤ８−Ｄｅｆｂ２９／Ｖｅｇｆ−Ａ腹腔卵巣）。４Ｔ１−ｌｕｃ腫瘍チャレンジの場合、１×ｌ０^５個の生存細胞をＰＢＳ３０μＬ中で０日目に左乳房脂肪パッドに注入し、腫瘍が肺に自然に転移したことが確定された１６日目に、腫瘍を外科的に摘出した。原発性４Ｔ１−ｌｕｃ腫瘍の完全な摘出が、バイオルミネッセンス造影によって確認された。Ｂ１６Ｆ１０およびＩＤ８−Ｄｅｆｂ２９／Ｖｅｇｆ−Ａは、Ｃ５７ＢＬ６Ｊ株の同系であるが、ＣＴ２６および４Ｔ１−ｌｕｃは、ＢＡＬＢ／ｃバックグランドの同系である。

ｅＣＰＭＶ処置計画
Ｂ１６Ｆ１０を静脈内にチャレンジされたＷＴ、Ｉｌ−１２^−／−、Ｉｆｎ−γ^−／−、ＮＯＤ／ｓｃｉｄ／Ｉｌ２Ｒγ^−／−、およびＬｙ６Ｇ欠失マウスに挿管して、腫瘍チャレンジ後３、１０および１７日目にＰＢＳ５０μＬ中のｅＣＰＭＶ １００μｇを気管内注射した。肺チャレンジ実験の場合、転移様病変およびチロシナーゼ発現の定量のために、マウスを２１日目に安楽死させた。４Ｔ１−ｌｕｃ担持マウスに、１６日目に（原発性腫瘍摘出と同日）、そして再度２３日目に（腫瘍摘出後７日目）、ＰＢＳ５０μＬ中のｅＣＰＭＶ ２０μｇを気管内注射した。Ｂ１６Ｆ１０側腹部腫瘍に、腫瘍が１０ｍｍ^２に達したら腫瘍チャレンジ後７日目に、そして再度１４日目に、ｅＣＰＭＶ １００μｇを腫瘍内注射した。ＣＴ２６側腹部腫瘍に、腫瘍が１０ｍｍ^２に達したら腫瘍チャレンジ後８日目に、そして再度１５日目に、ｅＣＰＭＶ １００μｇを腫瘍内注射した。側腹部腫瘍の径を１日おきに測定し、腫瘍の径が２００ｍｍ^２に達したら、マウスを安楽死させた。ＩＤ８−Ｄｅｆｂ２９／Ｖｅｇｆ−ＡマウスにｅＣＰＭＶ １００μｇを、腫瘍チャレンジ後７日目に開始して１週間に１回ＩＰ注射し、マウスが腹水の増加により３５ｇに達したら、マウスを安楽死させた。

抗体およびフローサイトメトリー
抗マウス抗体は、ＢｉｏｌｅｇｅｎｄのＣＤ４５（３０−Ｆ１１）、ＭＨＣ−ＩＩ（Ｍ５１１４．１５．２）、ＣＤ８６（ＧＬ−１）、ＣＤ１１ｂ（Ｍ１／７０）、Ｆ４／８０（ＢＭ８）、およびＬｙ６Ｇ （１Ａ８）、ならびにｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅのＣＤ１６／ＣＤ３２（９３）に特異性があった。ＷＴおよびＢ１６Ｆ１０肺腫瘍担持マウスにＡｌｅｘａ４８８標識ＣＰＭＶ粒子１００μｇを気管内注射し、その２４時間後に麻酔した。肺を採取し、Ｍｉｌｔｅｎｙｉマウス肺溶解キット（ｃａｔ＃１３０−０９５−９２７）を用いて単一細胞懸濁液に溶解した。赤血球細胞を１５０ｍＭ ＮＨ４Ｃｌ、１０ｍＭ ＫＨＣＯ３、および０．５ｍＭ ＥＤＴＡの溶解緩衝液を用いて除去した。フローサイトメトリーを、ＭＡＣＳＱｕａｎｔアナライザー（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ）で実施した。データを、ＦｌｏｗＪｏソフトウエア バージョン８．７を用いて解析した。

チロシナーゼｍＲＮＡ発現の分析
全肺を溶解して、総ＲＮＡを、ＲＮｅａｓｙキット（Ｑｉａｇｅｎ、７４１０４）を用いて抽出した。ｃＤＮＡを、ｉＳｃｒｉｐｔ（商標）ｃＤＮＡ合成キット（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、１７０−８８９１）を用いて合成した。ｉＱ（商標）ＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｒｅｅｎ Ｓｕｐｅｒｍｉｘ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、１７０−８８８２）を０．５μＭ濃度のプライマーと共に用いて、ＣＦＸ９６（商標）Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ ＰＣＲ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）で、ｑ−ＰＣＲを実施した。ｍＲＮＡ転写産物の倍率変化を、ΔΔＣＴ法を利用して計算し、全ての試料をマウスＧａｐｄｈに正規化した。

サイトカインアッセイ
インビボサイトカインデータの場合、全ての肺ホモジネートを、腫瘍チャレンジ後８日目であるｅＣＰＭＶ粒子１００μｇ吸入後２４時間目に、Ｂ１６Ｆ１０肺腫瘍担持マウスから採取した。インビトロサイトカインの結果では、骨髄由来樹状細胞（ＢＭＤＣ）およびチオグリコラート刺激腹腔マクロファージ（両者ともＣ５７ＢＬ６マウス由来）を、ｅＣＰＭＶまたはＰＢＳ ２０μｇのいずれかと共に、９６ウェル丸底プレート内の完全培地２００μＬ中で１×１０^６細胞／ウェルで培養した。上清を、２４時間インキュベーションの後に採取した。サイトカインを、マウス３２ｐｌｅｘ Ｌｕｍｉｎｅｘアッセイ（ＭＰＸＭＣＹＴＯ７０ＫＰＭＸ３２、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）を用いて定量した。

細胞除去
マウスに、Ｂｉｏ−Ｘ−Ｃｅｌｌから購入したｍＡｂ除去Ｌｙ６Ｇ（ｃｌｏｎｅ １Ａ８）（ｃａｔ＃ＢＥ００７５−１） を注射し、ｅＣＰＭＶ処置の１日前と、その後、生存実験の期間に１週間に１回、５００μｇ用量でＩＰ投与した。肺内の標的細胞集団の９５％を超える除去が、フローサイトメトリーにより確認された。

ＩＶＩＳ造影
マウスに、ＰＢＳ中のホタルＤ−ルシフェリン（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ ｃａｔ＃１２２７９６）を１５０ｍｇ／ｋｇでＩＰ注射し、１０分間静置した。Ｘｅｎｏｇｅｎ ＶｉｖｏＶｉｓｉｏｎ ＩＶＩＳ Ｂｉｏｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ ａｎｄ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｉｍａｇｅｒプラットフォームを用いて造影を実施し、Ｌｉｖｉｎｇ Ｉｍａｇｅ ４．３．１ソフトウエア（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ）で分析した。

統計解析
他に断りがなければ、実験は全て４〜１２個の生物学的重複測定で少なくとも２回反復し、結果は反復測定間で類似していた。図は、ｐ＜０．０５の統計学的有意性を^＊として、ｐ＜０．０１を^＊＊として、ｐ＜０．００１を^＊＊＊として表す。ｐ値＜０．０５は、統計学的に有意と見なした。棒グラフのデータは、対応がないスチューデントｔ検定を利用して計算した。エラーバーは、表された実験の中でアッセイされたそれぞれの試料の平均の標準誤差を表す。側腹部腫瘍の成長曲線を、二要因分散分析を利用して解析した。生存実験では、生存解析に関してログランク・マンテル・コックス検定を利用した。統計解析は、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ ４ソフトウエアを用いて実施した。

結果
ｅＣＰＭＶナノ粒子は生来の免疫原性である
気道の病原感染の処置としてＶＬＰを用いた過去に発表された研究は、種々のシステムを利用し、様々な度合いの免疫調整能力を報告している。加えてこれらの試験は多くの場合、ＶＬＰに含まれる抗原への免疫応答に注目しており、粒子自体の生来の免疫原性ではなく、それはＶＬＰに関しては決定的に示されていない。Ｂｅｓｓａ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ． ３８（１）： １１４−２６ （２００８）。その上、一部のＶＬＰが他よりも刺激性であるかについては、分かっていない。これらの理由で、そして本発明者らが提案した新規な免疫療法としてのｅＣＰＭＶ（ｅＣＰＭＶは、ＲＮＡが欠如した「空の」ササゲモザイクウイルス粒子を指す）の使用のために、本発明者らは最初、生来の免疫原性の測定を探求した。ｅＣＰＭＶ ＶＬＰを、Ｃ５７ＢＬ６マウスから採取された骨髄由来樹状細胞（ＢＭＤＣ）および初代マクロファージのインビトロ培養物に添加した。ｅＣＰＭＶ粒子と共に２４時間培養して、ＢＭＤＣ（図１Ａ）およびマクロファージ（図１Ｂ）の両方を、Ｉｌ−β、Ｉｌ−６、Ｉｌ−１２ｐ４０、Ｃｃ１３（ＭＩＰ１−α）、およびＴｎｆ−αをはじめとする標準的炎症促進性サイトカインを高レベルで分泌するように誘導して、本発明者らにｅＣＰＭＶが生来の免疫刺激性であると結論づけさせた。

ｅＣＰＭＶ吸入は、Ｂ１６Ｆ１０肺腫瘍微小環境を根本的に改変する
次に、肺微小環境に及ぼすｅＣＰＭＶ吸入の免疫調整作用を、免疫細胞の組成と、サイトカインおよびケモカインレベルの変化の両方に関して決定した。ＣＤ１１ｂ活性化マーカ（Ｃｏｓｔａｎｔｉｎｉ ｅｔ ａｌ．， Ｉｎｔ Ｉｍｍｕｎｏｌ．， ２２（１０）：８２７−３８ （２０１０））（図２Ａの上のパネル）およびＣＤ８６共刺激マーカのアップレギュレーションによる評価で、ｅＣＰＭＶへの非腫瘍担持マウス肺の暴露による、暴露後２４時間目のＬｙ６Ｇ^＋好中球の有意な活性化が明らかとなった。該粒子のＡｌｅｘａ４８８標識は、細胞の追跡を可能にし、それにより本発明者らは、それが、特にｅＣＰＭＶを取り込む、このＣＤ１１ｂ^＋Ｌｙ６Ｇ^＋活性化好中球サブセットであることを確認することができた。

Ｂ１６Ｆ１０黒色腫を担持するマウスの肺から、より複雑な免疫細胞組成が明らかとなった。７日目までに、免疫抑制性ＣＤ１１ｂ^＋Ｌｙ６Ｇ⁻Ｆ４／８０^ｌｏクラスＩＩ⁻ＳＳＣ^ｌｏ単球骨髄由来免疫抑制細胞（ＭＤＳＣ）およびＣＤ１１ｂ^＋Ｌｙ６Ｇ^＋Ｆ４／８０⁻クラスＩＩ^ｍｉｄＳＳＣ^ｈｉ顆粒球ＭＤＳＣ（図２Ａの下のパネル）の大きな集団の出現を、観察することができた。Ｇａｂｒｉｌｏｖｉｃｈ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ Ｒｅｖ Ｉｍｍｕｎｏｌ．， （４）：２５３−６８ （２０１２）。本発明者らはまた、獲得免疫応答と、高レベルの炎症促進性サイトカインの産生と、ＴおよびＮＫ細胞の動員と、腫瘍細胞への直接の細胞毒性と、の共同作用を通して抗腫瘍効果を発揮することが知られている「腫瘍浸潤好中球」または「Ｎ１好中球」として文献に記載されたＣＤ１１ｂ^＋Ｌｙ６Ｇ^＋クラスＩＩ^ｍｉｄＣＤ８６^ｈｉ細胞の小集団の存在を観察した。Ｆｒｉｄｌｅｎｄｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｃｅｌｌ． １６（３）： １８３−９４ （２００９）； Ｍａｎｔｏｖａｎｉ ｅｔ ａｌ， Ｎａｔ Ｒｅｖ Ｉｍｍｕｎｏｌ． （８） ：５１９−３１ （２０１１）。Ｂ１６Ｆ１０担持肺へのｅＣＰＭＶ吸入は、投与後２４時間目の免疫細胞組成を劇的に改変した。腫瘍浸潤好中球（ＴＩＮ）およびＣＤ１１ｂ^＋Ｌｙ６Ｇ^＋活性化好中球集団の有意な増加、ならびにＣＤ１１ｂ⁻Ｌｙ６Ｇ^＋静止好中球の減少（図２Ａの下のパネル。矢印参照）もまた、観察された。ＴＩＮおよび活性化ＣＤ１１ｂ^＋好中球集団は、ＣＤ４５^＋細胞の割合として、そして総数としても劇的に増加した（図２Ｂ）。興味深いこととして、これらの好中球亜集団はｅＣＰＭＶ粒子の大部分を取り込み、特にＴＩＮはＣＤ１１ｂ^＋活性化好中球の１０倍多くのｅＣＰＭＶを取り込んだ（図２Ｃ）。単球ＭＤＳＣ、静止好中球、および肺胞マクロファージ集団は、ｅＣＰＭＶを取り込まず、顆粒球ＭＤＳＣは、不均等な取り込みを示した。ＴＩＮおよび活性化好中球集団はまた、ＭＨＣクラス−ＩＩおよびＴＩＮを発現し、特に高レベルの共刺激性マーカＣＤ８６を示し、潜在的抗原提示およびＴ細胞プライミング能力が示された。有意な変化は、単球または顆粒球ＭＤＳＣの数においては観察されなかった。

ｅＣＰＭＶによる好中球集団の活性化は、ｅＣＰＭＶまたはＰＢＳで処置されたＢ１６Ｆ１０腫瘍担持肺の全肺ホモジネートで実施された複合化されたサイトカイン／ケモカインアレイから回収されたデータと一致している（図２Ｄ）。具体的には、好中球走化性物質ＧＭ−ＣＳＦ、Ｃｘｃｌ１、Ｃｃｌ５、およびＭＩＰ−１αの有意な増加、ならびにＧＭ−ＣＳＦ、Ｉｌ−１β、Ｉｌ−９、Ｃｘｃｌ１、Ｃｘｃｌ９、Ｃｘｃｌ１０、Ｃｃｌ２５、ＭＩＰ−１αおよびＭＩＰ−１βなどの活性化好中球により産生されることが知られたサイトカインおよびケモカインの有意な増加が、認められた。興味深いこととして、本発明者らは、肺の免疫学に関連して有害であり得る古典的な炎症促進性サイトカインであるＩｌ−６またはＴｎｆ−αレベルの有意な増加を観察しなかった。

ｅＣＰＭＶ吸入は、Ｂ１６Ｆ１０転移様肺腫瘍の発達を抑制する
本発明者らは次に、肺のｅＣＰＭＶ粒子の生来の免疫原性が、高悪性度の転移性肺癌のＢ１６Ｆ１０静脈内モデルにおいて抗腫瘍免疫を誘導し得るか否かを検討した。実際に、ｅＣＰＭＶ １００μｇの１週間に１回の気管内注射（図３Ａ）は、転移様腫瘍病変の数（図３のＢおよびＣ）およびチロシナーゼ発現（図３Ｄ）の両方による評定として、腫瘍量の有意な減少をもたらした。チロシナーゼ関連タンパク質１（Ｔｙｒｐ１）は、メラノサイト特異的遺伝子であり（Ｚｈｕ ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．， ７３（７）：２１０４−１６ （２０１３））、肺におけるその発現は、Ｂ１６Ｆ１０腫瘍細胞に制限され、腫瘍発達の定量的測定が可能で、転移様病変の様々なサイズに関して対照として働く。

ｅＣＰＭＶ吸入の抗腫瘍効力は免疫介在性である
本発明者らは、以下のトランスジェニックマウス：Ｉｌ−１２^−／−、Ｉｆｎ−γ^−／−、およびＮＯＤ／ｓｃｉｄ／ＩＬ２Ｒγ^−／−において、図３に記載された実験計画を再度実施することにより、免疫系が処置効力に必要か否かを決定した。ｅＣＰＭＶ処置マウスとＰＢＳ処置マウスの間の肺腫瘍量の有意差が、Ｉｌ−１２（図４Ａ）、Ｉｆｎ−γ（図４Ｂ）の非存在下で、またはＴ、ＢおよびＮＫ細胞が欠如したＮＳＧマウスにおいて（図４Ｃ）、観察されなかった。

ｅＣＰＭＶは、Ｂ１６Ｆ１０腫瘍担持マウスの肺において蓄積し、肺の好中球を活性化させる（図２Ａ〜Ｃ）。加えて、好中球関連サイトカインおよびケモカインの有意な増加が、ｅＣＰＭＶ吸入後のマウス肺において検出された（図２Ｄ）。それゆえモノクローナル抗体を用いて好中球を除去して、処置効力に関する好中球の必要性を評定した。腫瘍担持マウスの肺に由来する好中球の除去によって、本発明者らがＷＴマウスで観察した抗腫瘍効果が消失した（図４Ｄ）。これをＩｌ−１２^−／−、Ｉｆｎ−γ^−／−、およびＮＳＧマウスで観察された効力の欠如と合わせることで、本発明者らは、Ｂ１６Ｆ１０発達に及ぼすｅＣＰＭＶ吸入の抗腫瘍効果が、肺腫瘍微小環境の免疫調整を通しており、特に好中球区分の存在を必要とすると結論づけた。

ｅＣＰＭＶの抗腫瘍効力は、Ｂ１６Ｆ１０静脈内肺モデルに制限されない
本発明者らは、ｅＣＰＭＶ処置効力がＢ１６Ｆ１０転移肺モデルに制限されるか否か、または免疫調整性抗腫瘍効果が他のモデルに通用し得るかどうかの確認を探求した。移植可能であるが、真に転移性のモデルである４Ｔ１ ＢＡＬＢ／ｃ同系乳癌モデルを、最初に用いた。乳房脂肪パッド中で定着された４Ｔ１腫瘍は、１６日目までに肺に転移し、その時点で原発腫瘍が外科的に除去され、ｅＣＰＭＶ処置が開始され、肺腫瘍発達に影響を及ぼすために気管内に注射された。４Ｔ１細胞はまた、ルシフェラーゼを発現し、それにより本発明者らは、転移性肺腫瘍の発達を追跡することができた。ｅＣＰＭＶ粒子を気管内に処置されたマウスは、肺腫瘍の発生を有意に遅延させ、生存を有意に延長した（図５Ａ）。ｅＣＰＭＶおよびＰＢＳ処置群のマウスは、外科的摘出日に、同等の原発性乳房脂肪パッド腫瘍量を有した。それゆえ腫瘍発達および生存における差は、処置によるものであった。いずれの群のマウスも、原発性乳房脂肪パッド腫瘍の再発に見舞われなかった。

ｅＣＰＭＶ粒子のＢ１６Ｆ１０および４Ｔ１転移肺モデルにおける明らかな効力が、肺免疫環境に特有であるか否かを決定するために、皮膚腫瘍を処置する能力もテストした。皮内Ｂ１６Ｆ１０黒色腫（図５Ｂ）およびＣＴ２６結腸腫瘍（図５Ｃ）の両方の発育が、ｅＣＰＭＶの直接注射後に有意に遅延し、そしてＢ１６Ｆ１０ ｅＣＰＭＶ処置マウスの半数において、わずか二回の処置後に、腫瘍が完全に消失した（図５Ｂ）。

最後に、ｅＣＰＭＶの治療効果を、播種された腹腔重度卵巣癌のモデルにおいて検討した。Ｃｏｎｅｊｏ−Ｇａｒｃｉａ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ Ｍｅｄ．， （９）：９５０−８ （２００４）。ｅＣＰＭＶを１週間に１回処置されたＩＤ８−Ｄｅｆｂ２９／Ｖｅｇｆ−Ａをチャレンジされたマウスは、ＰＢＳ処置対照に比較して有意に改善された生存を示した（図５Ｄ）。事実、ｅＣＰＭＶを投与されたマウスは、生存する弱毒化リステリア・モノサイトゲネス株（Ｌｉｚｏｔｔｅ ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｃｏｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ， ３：ｅ２８９２６． ｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ２０１４）、無毒性のトキソプラズマ・ゴンジイ（Ｂａｉｒｄ ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．， ７３（１３）：３８４２−５１ （２０１３））、アゴニスト性ＣＤ４０とポリ（Ｉ：Ｃ）との組み合わせ（Ｓｃａｒｌｅｔｔ ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．， ６９（１８）：７３２９−３７ （２００９））、またはＩｌ−１０阻害抗体（Ｈａｒｔ ｅｔ ａｌ．， Ｔ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．， ２：２９ （２０１１））をはじめとするこのモデルで試行された他の免疫療法薬に比較して、より長期間生存した。インビトロでの高濃度の該粒子への暴露は、癌細胞の生存能力または増殖に影響を有さなかったため、テストされたモデルにおけるｅＣＰＭＶの抗腫瘍効果が、直接的な腫瘍細胞の細胞毒性に起因し得ないことに留意することが重要である。論理的結論は、ｅＣＰＭＶナノ粒子処置によって誘導された顕著な抗腫瘍効果が完全に免疫介在性であり、多様な解剖学的部位の種々の腫瘍モデルに通用し得る。

考察
ｅＣＰＭＶナノ粒子は、驚くほど高度に免疫療法性があり、腫瘍免疫環境を明確に調整する。該粒子に暴露されたＢＭＤＣおよびマクロファージは、選択的な炎症促進性サイトカインをロバストに分泌した（図１ＡおよびＢ）。ｅＣＰＭＶ粒子を植物内で産生させ、その後、植物混入物を、ポリビニル−ポリピロリドンを用いて抽出し、ＰＥＧ沈殿およびスクロース勾配超遠心分離を通してｅＣＰＭＶを単離し、最後に、該粒子をウルトラペレッティング（ｕｌｔｒａｐｅｌｌｅｔｉｎｇ）により濃縮した。純度をＵＶ／Ｖｉｓ吸収、透過型電子顕微鏡測定（ＴＥＭ）、高速タンパク質液体クロマトグラフィー（ＦＰＬＣ）、およびＳＤＳゲル電気泳動によりチェックした。Ｗｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ， １３（１２）：３９９０−４００１ （２０１２）。混入物は、これらの手順の際には検出されなかった。その後、粒子をＰＢＳに再懸濁させた。加えて、ｅＣＰＭＶは、ＴＬＲ３／７を刺激し得るＲＮＡが完全に欠如している。それゆえ本発明者らは、ｅＣＰＭＶの高い免疫原性が、ウイルス外被タンパク質のサイズ、形状、または生来の免疫認識によるものと結論づけている。これは、エンドトキシンのような免疫原性混入物、または精製工程で除去することが困難なウイルス核酸を含み得る大腸菌または他の系の中で製造される異なるウイルス様またはタンパク質ケージナノ粒子である。

ｅＣＰＭＶ吸入は、肺腫瘍微小環境を転換させ、腫瘍の免疫療法への応答に最小限に関連する集団であるＬｙ６Ｇ^＋好中球の存在を必要とする。注目すべきこととして、ｅＣＰＭＶ粒子は、Ｌｙ６Ｇ^＋好中球を特異的に標的化するようである。ｅＣＰＭＶは、癌細胞（Ｓｔｅｉｎｍｅｔｚ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｎｏｍｅｄ． ６（２）：３５１−６４ （２０１１））、および一部の抗原提示細胞（Ｇｏｎｚａｌｅｚ ｅｔ ａｌ．， ＰＬｏＳ ＯＮＥ． ４（１１）：ｅ７９８１ （２００９））の表面ビメンチンに結合することが示されているが、これが肺の常在好中球が該粒子を内在化しているメカニズムであるか否か、またはビメンチンの表面発現がネズミ好中球の特色であるか否かについては、分かっていない。ｅＣＰＭＶは、静止好中球を標的化し、それらを活性化ＣＤ１１ｂ^＋表現型に変換し、さらに追加のＣＤ１１ｂ^＋活性化好中球およびＣＤ１１ｂ^＋クラスＩＩ^＋ＣＤ８６^ｈｉ腫瘍浸潤好中球の動員を誘導するようである。事実、これらの２つの集団、つまり活性化好中球および腫瘍浸潤または「Ｎ１」好中球は、ｅＣＰＭＶ肺暴露後、急速に有意に変化する唯一の自然免疫細胞集団であり、両者とも、ＣＤ４５^＋細胞に対する割合％および細胞総数を劇的に増加させた（図２Ｂ）。好中球は、規準的にはアポトーシスを受ける前に細菌を迅速に飲み込んで殺傷する微生物感染の歩哨と見られているが、それらは、腫瘍免疫学において創発的役割を有する。依然として議論の的であるが、好中球は、マクロファージの文献で認識されたＭ１／Ｍ２分極と類似の表現型可塑性を有するようである。腫瘍進行の増進と相関する、Ｂ１６Ｆ１０転移性肺、ヒト肝臓癌、肉腫、および肺腺癌モデルにおける免疫抑制性で血管新生促進性の「腫瘍関連好中球」集団の浸潤が、研究により示された。あるいは、腫瘍常在性免疫抑制好中球の除去、それらから炎症促進性表現型への変換、または腫瘍微小環境に浸潤するための活性化好中球の動員が、治療効力に関連する。活性化好中球は、活性酸素中間体（ＲＯＩ）の放出を介して腫瘍細胞を直接殺傷し、ＣＤ４^＋Ｔ細胞をプライミングして、それらをＴｈ１表現型に分極し、ＣＤ８^＋Ｔ細胞をクロスプライミングして、ＮＫ細胞の生存、増殖、細胞毒性活性およびＩＦＮ−γ産生を調整する。活性化好中球はまた、黒色腫モデルにおける抗腫瘍免疫療法の効力に相関するＣＤ４^＋およびＣＤ８^＋Ｔ細胞を動員し得るＣｘｃｒ３リガンド Ｃｘｃｌ９およびＣｘｃｌ１０を産生し得る。免疫刺激性好中球集団の増加を示したデータ（図２Ｂ）は、好中球の走化性物質ＧＭ−ＣＳＦ、Ｃｘｃｌ１、Ｃｃｌ５、およびΜΙΡ-Ια、ならびに好中球によって産生されることが知られているサイトカインおよびケモカイン、例えばＧＭ−ＣＳＦ、Ｉｌ−１β、Ｉｌ−９、Ｃｘｃｌ１、Ｃｘｃｌ９、Ｃｘｃｌ１０、Ｃｃｌ２、ＭＩＰ−１αおよびＭＩＰ−１βの増加が観察された、サイトカインのデータ（図２Ｄ）と一致する。同様にこのデータは、好中球がｅＣＰＭＶ抗腫瘍効力に必要であることを示すインビボ腫瘍進行データと一致する。興味深いこととして、多くのサイトカインおよびケモカインレベルが、ｅＣＰＭＶ処置後に統計学的に有意な度合いまで上昇したが、実際の腫瘍量の劇的差に比較すると、変化が控えめであった（図３のＢ〜Ｄ）。その上、肺におけるアップレギュレートの際に組織損傷を引き起こすことで知られる炎症促進性サイトカインＴｎｆ−αまたはＩｌ−６の増加は、観察されなかった。それゆえ、肺腫瘍のｅＣＰＭＶ処置は効果的で、急性肺障害を引き起こし得る種類の炎症促進性サイトカイン応答を誘発しないと思われる。

ｅＣＰＭＶ吸入は、単剤療法として顕著な効力を示し（図３）、非常に明確に免疫介在性である（図４）。ｅＣＰＭＶ粒子が腫瘍細胞を直接殺傷せず、または任意の抗原性オーバーラップをＢ１６Ｆ１０腫瘍と共有しないが、Ｔｈ１関連サイトカインＩｌ〜１２（図４Ａ）およびＩｆｎ−γ（図４Ｂ）、獲得免疫（図４Ｃ）ならびに好中球（図４Ｄ）を必要とする抗腫瘍応答を誘発するため、上記のことは新規である。これにより、ｅＣＰＭＶの生来の免疫原性が、肺に導入されると、腫瘍微小環境の免疫寛容原性を破壊し、本質的には、抑制される既存の抗腫瘍免疫応答のブレーキを外すこと、またはあらためて抗腫瘍応答を発生させることが示唆される。

この研究から、ｅＣＰＭＶ療法が側腹部Ｂ１６Ｆ１０、卵巣癌、ならびに転移乳癌および結腸癌の２つのＢＡＬＢ／ｃモデルにおいて同等に目覚ましく働くため、静脈内Ｂ１６Ｆ１０転移肺モデルにおけるｅＣＰＭＶ抗腫瘍効力が、Ｃ５７ＢＬ６マウス株またはＢ１６Ｆ１０モデルのアーチファクトでないことも示される（図５）。４Ｔ１乳癌細胞における構成的ルシフェラーゼ発現、ならびにＢ１６Ｆ１０およびＣＴ２６の皮内チャレンジによって、本発明者らは、Ｂ１６Ｆ１０肺モデルでは実行可能でない手法で、腫瘍進行を定量的に測定することができた。これらのモデルにおいて本発明者らは、腫瘍進行を有意に遅延させ、Ｂ１６Ｆ１０およびＣＴ２６皮内腫瘍の場合には、定着した腫瘍の急速な退縮、および腫瘍の境界内に制限されたままで周囲組織に影響を及ぼさないと思われる壊死中心の形成（図５のＢおよびＣ）を誘発する、強力で迅速な抗腫瘍効果を観察した。腫瘍内注射後３日目というｅＣＰＭＶへのそのような早期応答は、ｅＣＰＭＶ粒子が自然免疫細胞介在性抗腫瘍応答を誘発していることを示すのであろう。しかし、これらの腫瘍への免疫細胞浸潤、およびそのような細胞の表現型を測定するための追跡調査は、興味深いであろう。

これは、癌免疫療法として、そしてさらに腫瘍微小環境内の好中球を特異的に標的化および活性化して下流の抗腫瘍免疫応答を調和させる免疫療法として用いられるＶＬＰ系ナノ粒子の初めての報告である。ｅＣＰＭＶナノ粒子は単独で、免疫原性であり、単剤療法として高度に効果的である。しかしそれは、腫瘍抗原、薬物、または免疫アジュバントのナノ担体としても作用することができ、ｅＣＰＭＶがその免疫療法効力をさらに増進および改善するペイロードを送達するように修飾され得るという関心の高い可能性を開拓することができる。

本発明者らは、ｅＣＰＭＶが種々の臓器を起源とする腫瘍に対して効果的な免疫療法であることを実証した。ｅＣＰＭＶ療法は、他の生物体および小分子と同等の用量で十分耐容性があり、観察可能な毒性副作用を有さない。要約すると、ｅＣＰＭＶ自己組織化ＶＬＰは、抗腫瘍免疫の力を解放することによって治療効力を発揮する癌処置のための関心の高い新規プラットフォームである。

実施例２：皮膚Ｂ１６Ｆ１０のｅＣＰＭＶ処置は全身抗腫瘍免疫を誘導する
図６に示される通り、本発明者らは、皮膚の黒色腫を定着させ、それに直接ｅＣＰＭＶ粒子を注射した（１００μｇ／注射。矢印は注射日を示す）。マウスの半数において、これが腫瘍の完全な消失をもたらしている。治癒したマウスにおいて、その後、本発明者らは、４週間は無処置で、同じ腫瘍細胞で再チャレンジしたが、本発明者らは、反対の側腹部に腫瘍細胞を注射した。それらのマウスのほとんどが、続発腫瘍を発生しなかった。明瞭にするために、原発腫瘍に粒子を直接注射したが、続発腫瘍を担持するマウスは、処置を受けなかった。それらは、全身の抗腫瘍免疫記憶のみに依存しなければならなかった。ｅＣＰＭＶは、最初の腫瘍において局所適用されたが、全身免疫を誘導した。「再チャレンジ」マウスは、直接注射され、退縮および消失したＢ１６Ｆ１０皮膚腫瘍を過去に有したマウスであった。

本明細書で引用された全ての特許、特許出願、および発行物、ならびに電子的に入手可能な材料の全ての開示は、参照により組み入れられる。前述の詳細な記載および実施例は、理解の明瞭さのためだけに示されている。それらから、不必要な限定が理解されるべきではない。本発明は、当業者に明白な変形のために図示および記載された厳密な詳細に限定されず、特許請求の範囲によって定義された発明に含まれる。

Claims (16)

1. 必要とする対象における癌を処置する方法であって、ウイルスまたはウイルス様粒子の治療有効量を前記対象に投与することを含み、前記ウイルスまたはウイルス様粒子が、前記対象において非複製性および非感染性である、方法。
2. 前記ウイルスが、植物ウイルスである、請求項１に記載の方法。
3. 前記ウイルスが、植物ピコルナウイルスである、請求項１に記載の方法。
4. 前記植物ピコルナウイルスが、コモウイルス属のウイルスである、請求項３に記載の方法。
5. 前記植物ピコルナウイルスが、ササゲモザイクウイルスである、請求項３に記載の方法。
6. 前記ウイルス粒子が、前記対象の腫瘍の付近に投与される、請求項１に記載の方法。
7. 前記ウイルス粒子が、医薬的に許容し得る担体と共に投与される、請求項１に記載の方法。
8. 前記癌が、転移癌である、請求項１に記載の方法。
9. 前記癌が、黒色腫、乳癌、結腸癌、肺癌、および卵巣癌からなる群から選択される、請求項１に記載の方法。
10. 前記癌が、肺癌である、請求項１に記載の方法。
11. 前記ウイルス粒子が、吸入によって投与される、請求項１０に記載の方法。
12. 前記ウイルス粒子が、非感染性ウイルス粒子である、請求項１に記載の方法。
13. 前記ウイルス粒子が、カーゴ分子を負荷されるか、またはカーゴ分子に結合される、請求項１に記載の方法。
14. 前記カーゴ分子が、抗癌剤である、請求項１３に記載の方法。
15. 前記癌を焼灼するステップをさらに含む、請求項１に記載の方法。
16. 抗癌剤の治療有効量を前記対象に投与することをさらに含む、請求項１に記載の方法。

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