JP2017506073A - Ｄｎａ−蛋白質複合体の組成及びその密度の定量評価方法 - Google Patents

Abstract

本発明の一態様は、所定のＤＮＡ遺伝子座のクロマチンにおけるヒストン、ヒストン変異体、ヒストン翻訳後修飾及び転写因子のようなＤＮＡ結合蛋白質の密度又は占有率を定量的に測定する材料及び方法を提供する。一実施形態は、特定の遺伝子座での因子平均量を測定し、抗体品質及び取扱組織に関する多くの落とし穴を制御する。他の実施形態は、キットにおいて必要な試薬及びそれらの情報と同様に、親和性試薬特異性を評価する校正及びクロマチン免疫沈降アッセイの定量を含む。他の実施形態は、遺伝子座でのヒストン修飾の密度を測定することにより状態又は疾病の診断を可能とする。【選択図】図１

Description

本特許出願は、内容が引例としてここに内包される２０１４年２月３日提出の米国暫定特許出願第６１／９３５，１２９号の利益を請求する。

本発明は、認可番号第ＮＩＨ−１Ｒ２１ＨＧ００７４２６号の米国政府の支援によりなされた。政府は、本発明に一定の権利を有する。

ゲノムの生理学的形態であるクロマチン、タンパク質及びＤＮＡの集合体は、ＤＮＡ代謝、細胞及び全有機的機能の全ての態様において、鍵となる役割を果たす基礎的なＤＮＡ機能の重要なレギュレータである。クロマチン構造の主要繰り返し単位は、ほぼ２回転分のゲノムＤＮＡが包まれた８つのコアヒストンタンパク質（２組のＨ２Ａ、Ｈ２Ｂ、Ｈ３及びＨ４）のＤＮＡ結合スプールであるヌクレオソームである。例えば球菌ヌクレアーゼ分解によって、個々のヌクレオソームを生じてもよい。ヒストンは、Ｈ１、Ｈ２Ａ、Ｈ２Ｂ、Ｈ３及びＨ４ヒストンを含み、複数のエピトープ及び翻訳後修飾を含むように修飾されてもよい。

細胞内において、ヒストンの翻訳後修飾（又はアミノ酸シークエンスの変更）は、基礎的なＤＮＡへの到達可能性を抑制し、転写活性から遺伝子の発現停止までに及ぶプロセスを制御する局所的なクロマチン状態の変化を制御することができる。これらの化学的修飾は、「後成的痕跡」と呼ばれ、ＤＮＡの標準的な塩基対形成能を変化することなく情報の他の層を追加し、互いに及びゲノムを制御する他のクロマチン態様と共同して作用する。転写、複製、幹細胞多分化能、発現停止、Ｘ染色体不活性化、ＤＮＡ修復、アポトーシス、後成的遺伝、細胞同一性保持、造血、癌、多くの中枢神経系障害、循環器系疾病、糖尿病、肥満、細菌感染症、及び、発達中の遺伝子発現のような細胞プロセスの全ては、過程又は原因に後成的修飾を含むように思われる。

クロマチン免疫沈降法（ＣｈＩＰ）は、発現及び病理学的移行における細胞同一性の機能である変化の痕跡（例えば白血病の造血幹細胞）と同様に、これらの構成的修飾がゲノム内に存在することを照会する中心的な方法論である。ＣｈＩＰは公知技術である。要するに、ＣｈＩＰは、特異的なタンパク質又はその翻訳後修飾されたものに結合し、クロマチンの特定のフラグメントをプルダウンする抗体のような親和性試薬で精査され得るタンパク質−ＤＮＡフラグメントのプール（大きなヌクレオソーム）を作成するために、機械的、物理的、化学的又は酵素的攪拌により細分化された生体のゲノム材料によるプルダウンアッセイである。ＣｈＩＰは、関連のエピトープを含むフラグメントを濃縮するために、細分化クロマチン「インプット」のプールからの親和性捕捉を用いる。間接的に捕捉されたＤＮＡフラグメントの同一性、相対的存在量及びゲノム中の位置は、公知技術のＲＴ−ＰＣＲ、次世代シークエンシング、ｄｄＰＣＲ、ｑＰＣＲ、マイクロアレイプローブハイブリダイゼーション及びＤＮＡ配列を読み取り及び定量し得る他の方法を含む多くの技術によって確認され得る。

生体内原位置で蛋白質と結合されるＤＮＡの位置についてのこの情報は、全ゲノム中におけるＤＮＡに結合された蛋白質の位置を推測し、親和性捕捉されたフラグメント、すなわち「インプット」の初期プール内の配列の数と比較して、結合された材料がＤＮＡ座に又は他のゲノム遺伝子座に対してどれくらい存在するかの評価を提供するために用いられる。言い換えると、プルダウンとしても知られる免疫沈降法によって得られた相対的濃縮を評価するために、捕捉された材料は、ｑＰＣＲ、次世代シークエンシング、その他によって分析され、ネガティブコントロールと比較される。特に、この技術は、この部位での標的エピトープの実際の存在量についての有意義な情報を提供することなく、相対的に「ゲノム中のどこに」との疑問に答える。それにもかかわらず、ＣｈＩＰは、位置決め、ヒストン標識及びヒストン変異の組み合わせがどのように遺伝子発現を制御するのか（例えば、非特許文献１〜３参照。）、又は、これらの変化がどのように細胞分化を制御するのか（例えば、非特許文献４参照。）といった洞察を提供する。さらに、これは、疾患マーカーの発見（例えば、非特許文献５〜６参照。）を含む癌及び他の病気における発生遺伝学の役割を理解する上で重要なツールである。

大規模シークエンシング又は他の分析に連結されたクロマチン免疫沈降（ＣｈＩＰ−ｓｅｑ）は、後成学的調査において中心的な実験技術として有用であるにもかかわらず、いくつもの重大な欠点に悩まされている。１つ目としては、各ＣｈＩＰ測定は相対的であり、いずれかの参照として標準化されておらず、同じ試料の異なる複写、異なる細胞及び異なる患者から得られたデータの直接比較を妨げるている。２つ目としては、オフターゲットのエピトープに対して顕著な親和性を有する同じ抗体の異なるバッチにおいてさえ、ＣｈＩＰは特異性及び親和性を変えた抗体試薬の品質にひどく依存していおり、データの偽陽性検出及び誤解をしばしばもたらす（例えば、非特許文献７〜１２参照。）。ＣｈＩＰにおける実験誤差の最大の原因は、所望のエピトープ（ヒストン修飾、変異又は転写因子のいずれか）を捕捉するために用いられる抗体親和性試薬の品質である。関連ペプチドエピトープの固定化アレイを用いて明らかにされた「ＣｈＩＰグレード」の抗体結合（例えば、非特許文献７、１０及び１２参照。）の悩ましい混乱は、益々複雑化された親和性の測定、特異性及び再現性によって悪化され、数百の市販抗体の８０％に及ぶものが厳格な品質制御を達成できていない（例えば、非特許文献１１及び１２参照。）。同じ市販抗体の異なるロットでさえ、標的に対する明確な親和性が２０倍まで変動し（例えば、非特許文献１３参照_。）、特異性差が示される（例えば、非特許文献１４参照。）。現在でも、抗体特異性を測定できるＣｈＩＰ実験はなく、データ評価は本質的に不確実である。３つ目としては、２つの異なるエピトープに対して等しい抗体親和性及び特異性を有しているとしても、エピトープ数の幅広い可変性は、ＣｈＩＰの有意義な比較を妨げるであろう（例えば、非特許文献１５及び１６参照。）。最後には、ＣｈＩＰ調製の非常に小さな相違がアウトプットデータの著しい相違を生じ、各実験間の不一致をもたらす。実験者の取扱の相違（例えば、非特許文献１７参照。）及び異なる倍率にもかかわらず各シークエンサーレーンにおける等量の試料の装填（例えば、非特許文献１８参照。）は、公正なＣｈＩＰに基づく比較問題を生じる。

ＣｈＩＰデータは正確な経験的状況にひどく依存して相対的に表現されているため、結局は保証されないであろう仮定が標準化に必要となり（例えば、非特許文献１９及び２０参照。）、又は、ピークコーリングにおいては、比較を可能とするのために経験的データの大部分を犠牲にする必要がある（例えば、非特許文献２１参照。）。ピークコーリングの他は、適用されるＣｈＩＰ−ｓｅｑの品質制御が狭く、最悪の場合には、ＣｈＩＰは再現されない（例えば、非特許文献１１，１２及び１７参照。）。現在の方法論又は技術では、これらの要素は考慮されていない。このＣｈＩＰ技術に関しては、遺伝子座特異様式によりヒストン修飾の絶対密度を測定することは不可能である。その結果、あるゲノム遺伝子座上で重複するような異なるヒストン修飾のピークは有意義に比較することはできない。さらに、実験者に不明確な経験的変化及び落とし穴は、（測定される後成的な標識と多くの疾病の状態との明確な関連にもかかわらず）ＣｈＩＰアッセイによる信頼できる患者診断を不可能とすると同時に、基礎的な科学調査におけるＣｈＩＰの利用を妨げる。

米国特許出願第２０１３／０４４５３７号

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本発明の一態様は、医療診断及び検査を可能とするＣｈＩＰのようなプルダウンアッセイを作成する材料及び方法を提供するものである。本発明は、絶対値を有するプルダウンアッセイにより得られた結果を定量化することができる。複数の試料にわたるゲノム遺伝子座で特殊なエピトープの密度を測定するための、ヌクレオソームを含む試料の評価に関する材料及び方法が提供される。

本発明の一態様においては、プルダウンアッセイの結果を恣意的単位の恣意的スケールから絶対的単位の標準化スケールに変換し、データ解釈の正確さを改善する方法がある。本発明の一実施形態においては、標準分子は、真陽性エピトープの天然様親和性、特異性及び結合活性を有する関連の翻訳後修飾を含むヒストンのような、少なくとも１つの、再構成された、遺伝子組み換えの、半合成の、及び／又は、変異を含むＤＮＡ結合蛋白質を含む。好適な実施形態においては、標準分子は、再構成された、遺伝子組み換えの、半合成の、及び／又は、変異を含むＤＮＡ結合蛋白質に結合するバーコード分子を含む。同じタイプの多くの標準分子は標準分子を構成してもよい。異なるタイプの多くの標準分子も標準分子を構成してもよい。「標準分子」は例えば複数のヒストン−同じタイプのバーコード分子であり、他の実施形態においては、例えば標準分子がライブラリにドープされた異なる濃度をそれぞれ示す多くの異なるバーコード分子を含むヒストン−バーコード分子を含む。

本発明の他の態様においては、原位置での偽陽性及び真陽性エピトープのプルダウン効率は、一組の標準分子を用いて定量され、データ解釈の正確さを改善している。一実施形態においては、一組の標準分子は、真陽性エピトープの天然様親和性、特異性及び結合力を有する少なくとも１つの、再構成された、半合成の、又は、変異を含むＤＮＡ結合蛋白質、及び、偽陽性エピトープの天然様親和性、特異性及び結合力を有する少なくとも１つの、半合成の、又は、変異を含むＤＮＡ結合蛋白質を含む。前記の一組の使用は、原位置での偽陽性及び真陽性エピトープの数を定量することができるため、プルダウンアッセイの絶対的定量化を改善する。陽性的中率が既に算出されているため、原位置での偽陽性及び真陽性エピトープの数の知識はデータ分析を改善する。ある信頼レベルでのエピトープの最小数の評価が医療的診断及び調査としてのこのような使用にとっては重要な真陽性を考慮し得るため、陽性的中率の知識はデータ分析を改善する。

本発明の他の態様においては、本発明は、クロマチン免疫沈降アッセイにおける真陽性エピトープ及び一組の標準分子の場合においては偽陽性エピトープの絶対的定量化のために標準分子又は一組の標準分子及び１つ以上の親和性試薬を含むキットを提供する。本発明の他の態様においては、本発明は、複数の試料にわたってプルダウンアッセイ結果を比較する方法を提供する。

他の態様においては、本発明は、細胞のクロマチンにおけるゲノム遺伝子座でのコアヒストンの第１エピトープの密度を測定する方法を提供する。この方法は、天然のヌクレオソームのライブラリを調製する工程を備え、前記ライブラリは、第１エピトープを有するコアヒストンを含むヌクレオソームを含み、及び、前記ゲノム遺伝子座を示すヌクレオチド配列を含む。標準分子はドープライブラリを作成するためにライブラリに添加され、前記標準分子は、（ｉ）第１エピトープを有する標準ヒストン又は標準ヒストンフラグメント、及び、（ｉｉ）バーコード分子に結合する標準ヌクレオチド配列を含む標準分子を含む再構成ヌクレオソームを含み、前記標準ヒストン又は標準ヒストンフラグメント及び標準ヌクレオチド配列は、安定的蛋白質−ＤＮＡ結合を形成する。

第１親和性試薬は、天然のヌクレオソーム及び第１エピトープを含む標準分子の量、並びに、第１エピトープを含む捕捉された天然のヌクレオソームに関する所定のヌクレオチド配列の量と、ドープライブラリ由来のインプット量の天然のヌクレオソームに関する所定のヌクレオチド配列の量とを比較することにより決定された第１エピトープに対する相対的ゲノム数を捕捉するためにドープライブラリに添加される。第１エピトープに対する標準分子捕捉効率は、捕捉された標準分子に関するバーコード配列の量と、ドープライブラリ由来のインプット量の標準分子に関する所定のヌクレオチド配列の量とを比較することにより決定される。ゲノム遺伝子座でのコアヒストンの第１エピトープの密度は、標準分子捕捉効率に対する相対的ゲノム数を比較することにより決定される。

一実施形態においては、標準分子捕捉効率の測定は、再構成ヌクレオソームのインプット量に対するバーコード分子の捕捉量の比率を含む。他の実施形態においては、相対的ゲノム数の測定は、天然のヌクレオソームのヌクレオチド配列のインプット量に対する天然のヌクレオソームのヌクレオチド配列の捕捉量の比率の比較を含む。さらなる他の実施形態においては、第１親和性試薬第１エピトープに対する抗体である。

ある実施形態においては、複数の標準分子がライブラリに添加され、各標準分子は、（ｉ）第１エピトープを有する標準ヒストンと、（ｉｉ）バーコード分子に結合する標準ヌクレオチド配列を含む標準分子とを含む再構成ヌクレオソームを含み、バーコード分子は、ライブラリに添加された標準分子を示す濃度パラメータをコード化し、少なくとも２つの異なる濃度を有する標準分子がライブラリに添加される。複数の標準分子は、（ｉ）１つ以上のオフターゲットのエピトープと、（ｉｉ）オフターゲットのエピトープの同一性及びオフターゲットのエピトープを示す濃度パラメータをコード化する標準分子バーコードとを含む再構成ヌクレオソームを含む標準分子をさらに添加してもよい。

第１親和性試薬に対するオフターゲット捕捉の特異性の測定は、オフターゲットのエピトープに対する１つ以上の捕捉効率に基づき、ゲノム遺伝子座でのコアヒストンの第１エピトープの密度の修正は、オフターゲット捕捉の特異性に基づく。第１エピトープは翻訳後修飾又は蛋白質のアイソフォームである。バーコード配列は細胞のゲノム内に存在しない配列であってもよい。

ＰＣＲ、ｑＰＣＲ、ｄｄＰＣＲ、次世代シークエンシング、ハイブリダイゼーション、オートラジオグラフィ、蛍光ラベリング、光学密度及び、及び、インターカレーター性蛍光プローブの使用からなる一群から選択された方法により、ヌクレオソームのヌクレオチド配列及び標準分子のヌクレオチド配列の少なくとも１つの数を測定してもよい。コアヒストンの第１エピトープは、セリン及びアラニンのＮ−アセチル化；セリン、スレオニン及びチロシンのリン酸化；リジンのＮ−クロトニル化、Ｎ−アセチル化；リジンのＮ６−メチル化、Ｎ６，Ｎ６−ジメチル化、Ｎ６，Ｎ６，Ｎ６−トリメチル化；アルギニンのオメガ−Ｎ−メチル化、対称性ジメチル化、非対称性ジメチル化；アルギニンのシトルリン化；リジンのユビキチン化；リジンのＳＵＭＯ化；セリン及びスレオニンのＯ−メチル化；並びに、アルギニン、アスパラギン酸及びグルタミン酸のＡＤＰ−リボース化からなる一群から選択された少なくとも１つの翻訳後アミノ酸修飾を含んでもよい。

標準分子は、二本鎖ポリヌクレオチドであってもよい。二本鎖ポリヌクレオチドは、配列ＩＤ Ｎｏ．１−１１５からなる一群から選択されたヌクレオチド配列を含んでもよい。バーコード分子は、ヌクレオチドバーコード配列分子、ロックド核酸配列及びＤＮＡ配列からなる一群から選択された分子を含んでもよい。

細胞は患者由来の細胞であってもよく、所望の遺伝子座の第１エピトープの量は、腎細胞癌、神経膠腫、神経膠肉腫、悪性星状細胞腫、骨芽細胞腫、肺癌、小細胞性肺癌、子宮頸癌、大腸癌、直腸癌、脊索腫、咽頭癌、カポジ肉腫、リンパ管肉腫、リンパ管内皮細胞肉腫、結腸直腸癌、子宮内膜癌、卵巣癌、乳癌、膵臓癌、前立腺癌、腎細胞癌、肝細胞癌、胆管癌、絨毛癌、精上皮腫、睾丸腫瘍、ウィルムス腫瘍、ユーイング癌、膀胱癌、血管肉腫、内皮肉腫、腺癌、汗腺癌、皮脂腺肉腫、乳頭肉腫、乳頭腺肉腫、嚢胞腺肉腫、気管支原性肺癌、髄様癌、マスト細胞腫、中皮腫、滑膜腫、黒色腫、平滑筋肉腫、横紋筋肉腫、神経芽細胞腫、網膜芽細胞腫、乏突起神経膠腫、聴神経腫瘍、血管芽細胞腫、髄膜腫、松果体腫、脳室上衣細胞腫、頭蓋咽頭腫、上皮癌、胚性癌腫細胞、扁平上皮癌、基底細胞癌、線維肉腫、粘液腫、粘液肉腫、神経膠腫、脂肪肉腫；ヘリコバクターピロリ、リステリア・モノサイトゲネス、シゲラ・フレックスネリ、アナプラズマ・ファゴサイトフィルム、クラミドフィラ、エプスタイン−バーウイルス、ヘルペス、ＨＩＶ、ビルハルツ住血吸虫に起因する感染症；肥満、糖尿病、心臓病；自閉症、脆弱Ｘ染色体症候群、ＡＴＲ−Ｘ症候群、アンジェルマン症候群、プラダ−ウィリ症候群、ベックウィズ−ヴィーデマン症候群、レット症候群、ルビンシュタイン−テイビ症候群、コフィン−ローリー症候群、免疫不全−セントロメア不安定性−顔貌異常症候群、α−サラセミア、白血病、ハンチントン病、精神分裂病、双極性障害、老化、痴呆、アルツハイマー病、パーキンソン病、コルネリア・デ・ランゲ症候群、歌舞伎メーキャップ症候群、シェーグレン症候群、尋常性白斑、進行性全身性硬化症、乾癬、原発性胆汁性肝硬変、クローン病及び潰瘍性大腸炎、橋本甲状腺炎、グレーブス病、炎症性腸疾患、アテローム性動脈硬化症、及び、心肥大からなる一群から選択された病気又は状態を示す。

他の実施形態は、細胞のクロマチン内のゲノム遺伝子座でコアヒストンの第１エピトープの密度を測定する方法を提供する。この方法は、クロマチンから天然のヌクレオソームのライブラリを準備する工程を備え、前記ライブラリは、コアヒストン及び基点のゲノム遺伝子座を示すヌクレオソームヌクレオチド配列をそれぞれ含むヌクレオソームを有する。標準分子はドープライブラリを作成するためにライブラリに追加され、前記標準分子は、（ｉ）第１エピトープを有する標準ヒストン又は標準ヒストンフラグメント及び（ｉｉ）バーコードを有する標準分子を含む再構成ヌクレオソームを含み、前記標準ヒストン又は標準ヒストンフラグメント及び標準分子は、安定的な蛋白質−ＤＮＡ結合を形成する。

コアヒストンの量はドープライブラリ中のゲノム遺伝子座で計測され、ドープライブラにおける標準分子の量は測定される。親和性試薬はドープライブラリに添加され、エピトープを含む捕捉標準分子の量及びドープライブラリ内のゲノム遺伝子座でのコアヒストンの量に基づき、天然のヌクレオソーム及びエピトープを含む再構成ヌクレオソームの量及びゲノム遺伝子座で測定された第１エピトープに対する相対的ゲノム数を捕捉する。捕捉された再構成ヌクレオソームの量及びドープライブラリ内の標準分子の量に基づき、エピトープに対する標準分子の捕捉効率が測定され、コアヒストンに対する第１エピトープ数及び標準分子捕捉効率に基づき、ゲノム遺伝子座でのコアヒストンの第１エピトープの相対的ゲノム数が測定される。

一実施形態においては、ドープライブラリ内のゲノム遺伝子座でのコアヒストンの量の測定は、ドープライブラリに第２親和性試薬を添加し、第２エピトープを含むヌクレオソームの量を取り出す工程と、第２エピトープを含む取り出されたヌクレオソームの量におけるヌクレオソームのヌクレオチド配列の量を測定する工程とを含み、第２エピトープはコアヒストン上に存在する不変のエピトープである。他の実施形態においては、ドープライブラリ中の標準分子の量の測定は、再構成されたヌクレオソームの量を取り出す工程と、第２エピトープを含む取り出された再構成ヌクレオソームの量における標準分子の量を測定する工程とを備え、再構成されたヌクレオソームは第２エピトープを含む。さらなる他の実施形態においては、第１親和性試薬は第１エピトープに対する抗体であり、第２親和性試薬は第２エピトープに対する抗体である。

他の態様は、配列ＩＤ Ｎｏ．１−１１５を含む配列からなる一群から選択されたヌクレオチド配列を有するヌクレオソームを含む組成を提供する。さらなる他の態様は、ここに記載された方法を実施するキットを提供する。一実施形態においては、キットは、複数のエピトープを含む１つ以上の標準分子及びバーコードを含む標準分子を含む。他の実施形態においては、キットは、複数のエピトープのうちの少なくとも１つを認識する少なくとも１つの親和性試薬を含む。

校正されたクロマチン免疫沈降実験の実施形態の１つＨ３Ｋ４ｍｅ３ ＩＣｅ−ＣｈＩＰ−ｓｅｑの概念図である。

バーコード化された合成ヌクレオソームの設計及び調製を示す。合成Ｈ３Ｋ４ｍｅ３ヌクレオソームラダーの再構成の概念図である。組換え及び半合成源由来の等モルのコアヒストンを折り畳み直すことにより作成されたヒストンオクタマーは、精製され、等量のバーコード化されたラダーＤＮＡと混合される。６０１位置決めヌクレオソーム配列に基づいたバーコード化されたヌクレオソームの位置決めＤＮＡ配列の概念図である。

（Ａ）バーコード化されたラダーＤＮＡのサイクルに対する倍率は、線形回帰により２倍段階希釈連続適合を用いたｑＰＣＲで測定される（各バー内に表示された適合のＲ^２）。（Ｂ）全てのバーコード化されたＤＮＡラダーのサイクルに対する倍率は、シークエンシングアダプタにハイブリダイズ化するプライマーを有するシークエンシングアダプタのライゲーション後の天然のゲノムＤＮＡフラグメントに対するものである。

ｍＥＳＣｓ Ｅ１４細胞ラインのＨ３Ｋ４ｍｅ３ ＩＣｅ−ＣｈＩＰ−ｓｅｑは、期待範囲内のヒストン修飾密度を示す。上のグラフは、Ｃｈｒ６のクロモソームの座標の機能であるｍＥＳＣ Ｅ１４細胞ライン内のＨＯＸＡ遺伝子クラスターの実際のＨ３Ｋ４ｍｅ３のヒストン修飾密度を示す。Illumina社製の一対の末端シークエンシングに結合されたＩＣｅ−ＣｈＩＰは、クロモソームの座標の機能であるＥ１４ ｍＥＳＣライン内のＨｏｘｅ遺伝子クラスターでの塩基対（ＨＭＤ、濃いライン、９５％信頼区間、薄いライン）に対するＨ３Ｋ４ｍｅ３修飾密度を示す。コード化及び非コード化遺伝子は各グラフの下のバー及び矢印で示される。大雑把な計数が示された下の小さなピークは、Ｈ３Ｋ４ｍｅ３ ＣｈＩＰ信号（上）及びインプット信号（下）を示す。

ＩＣｅＣｈＩＰの重要な試験である。（Ａ）ＩＰ内で測定され、ＨＥＫ２９３ Ｈ３Ｋ４ｍｅ３ ＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑからインプットされた最大のラダーメンバーに標準化された相対的なバーコードタグ数。（Ｂ）ｄｄＰＣＲ及びｑＰＣＲと比較されたＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑ。中央ラインは、クロモソーム窓の機能であるｍＥＳＣ Ｅ１４細胞ライン内の未修正Ｈ３Ｋ４ｍｅ３ヒストン修飾密度（ＨＭＤ）±９５％ＣＩ（上ライン及び下ライン）を示す。バーは、示された単位複製配列を超えて位置決めされ、ＨＭＤと同じスケールでｄｄＰＣＲ及びｑＰＣＲによりそれぞれ測定されたＨ３Ｋ４ｍｅ３を示す。

ＩＣｅＣｈＩＰは、従来のＣＨＩＰよりも再現性が高く、実験相違が大きい。（Ａ）同座でのピークの平均モノヌクレオソームＨＭＤ（％Ｈ３Ｋ４ｍｅ３）のプロットに対する２つの試料（Ｓ１及びＳ２）の比較散布図。（Ｂ）固定された１０μｇのクロマチンインプットと結合する抗体−樹脂の機能であるｍＥＳＣｓ中のＩＣｅＣｈＩＰ−ｑＰＣＲによるＤＮＭＴ３ａ座での濃縮（ＣｈＩＰデータを用いる従来の方法を示す％ＩＰ／インプット）に対するＨＭＤ（％Ｈ３Ｋ４ｍｅ３）の測定。

ＩＣｅＣｈＩＰの再現性及び頑健性。（Ａ）同じインプットからであるがＩＰ及び洗浄が異なるDrosphila S2細胞を用いた２種類のＨ３Ｋ２７ｍｅ３のＩＣｅＣｈＩＰ実験の比較。試料１データは標準ＩＣｅＣｈＩＰ条件（インプットと結合した樹脂−Ａｂを１５分間保温し、その後、５０分以上かけて５回洗浄する）を用いて作成され、試料２ＩＰは保温時間が短くし、１分以上で同体積の樹脂を流れ洗浄して行った。各データポイントは、３０００ｂｐを超える非重複窓（Ｎ＝４１１５８）を平均化した平均Ｈ３Ｋ２７ｍｅ３に対応し、不十分なインプット深さの窓は除外した（除去＞５）。技術からプールされたデータは、各プロトコールのために３つづつ作成された（独立したＩＰ及び測定）。

複数の内部標準分子を有するＩＣｅＣｈＩＰ。図９に示された小スケールのＩＣｅＣｈＩＰ実験に対するクロマチンインプット滴定。この方法は、４００細胞に相当するクロマチンまで低減する。

複数の内部標準分子を有するＩＣｅＣｈＩＰは原位置のＩＰの特異性を示す。（Ａ）それぞれメチル標識された抗体を用いた５種類のマルチ標準ＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑ実験における内部標準分子捕捉の比較（未修飾、Ｈ３Ｈ４ｍｅ３、Ｈ３Ｋ９ｍｅ３、Ｈ３Ｋ２７ｍｅ３、Ｈ３Ｋ３６ｍｅ３、Ｈ３Ｋ７９ｍｅ３２バーコード化され、同モル濃度に同時にドープされたヌクレオソームラダー）。相対的ＩＰ効率で表され、オンターゲットラダーに標準化されたデータは、未修飾ヌクレオソームと同様に、潜在的なオフターゲットのメチル化ヌクレオソームとの安易な比較を可能とする。（Ｂ）Ｈ３Ｋ４ｍｅ３の最高のオフターゲットのバックグラウンドラダーと同様に、オンターゲット標識のインプットに対するＩＰにおける大雑把なラダーの計数として示されたｍＥＳＣｓを用いたマルチ標準ＩＣｅＣｈＩＰ実験におけるＩＰ濃縮の算出。（Ｃ）Ｈ３Ｋ４ｍｅ３（Ｍ３０９Ｍ３−Ａ（例えば、非特許文献１３参照。））。（Ｄ）Ｈ３Ｋ２７ｍｅ３（Millipore ０７−４４９）。

特別の定義がない限り、ここで用いられる全ての技術的及び科学的用語は本発明の当業者により通常理解されるものと同じ意味を有するものとする。矛盾がある場合には、定義を含む本明細書が管理する。ここに記載された方法及び材料と類似又は同様な方法及び材料は本発明の実用又は試験用いられるが、好ましい方法及び材料を以下に記載する。

本明細書の文章中（特に下記請求項の文章中）の「ａ」、「ａｎ」、「ｔｈｅ」及び類似の単語の使用は、明細書内に記載され又は文章によって明確に否定されない限り、単数及び複数の両方をカバーするものと解釈される。明細書中の値の範囲の詳述は、特別の記載がない限り、単に範囲内に収まるそれぞれ分離した値を別々に参照する省略表現法として用いようとしたにすぎず、それぞれの分離した値は、まるで別々に引用されたかのように明細書中に含まれる。ここに記載された全ての方法は、特別の記載のない限り又は文章で明確に否定されない限り、いずれかの適切な順序で行うことができる。いずれか又は全ての例示或いは典型的な言語（例えば、「のような」、「例えば」）の使用は、本発明を単に啓蒙しようとしたにすぎず、特別の請求がない限り、本発明の趣旨を限定しようとするものではない。明細書中にない言語は、本発明の実用に必須である非請求要素を示すものとして解釈すべきではない。

Ｉ）定義
用語「エピトープ」は、親和性試薬の結合を引き起こす生体分子上のいずれかの部位を意味する。親和性試薬は、生体分子又は生体分子フラグメントの線状配列、生体分子又は生体分子フラグメントの形状、生体分子又は生体分子フラグメントの化学的−物理的特性、或いは、これらの組み合わせを認識し得る。

「アミノ酸」は、公知の３つの文字記号又はＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ生化学命名法委員会により推奨された１つの文字記号のいずれかにより参照される。蛋白質又はペプチド内のアミノ酸残基は以下のように短縮される。フェニルアラニンはＰｈｅ又はＦ、ロイシンはＬｅｕ又はＬ、イソロイシンはＩｌｅ又はＩ、メチオニンはＭｅｔ又はＭ、バリンはＶａｌ又はＶ、セリンはＳｅｒ又はＳ、プロリンはＰｒｏ又はＰ、スレオニンはＴｈｒ又はＴ、アラニンはＡｌａ又はＡ、チロシンはＴｙｒ又はＹ、ヒスチジンはＨｉｓ又はＨ、グルタミンはＧｌｎ又はＱ、アスパラギンはＡｓｎ又はＮ、リジンはＬｙｓ又はＫ、アスパラギン酸はＡｓｐ又はＤ、グルタミン酸はＧｌｕ又はＥ、システインはＣｙｓ又はＣ、トリプトファンはＴｒｐ又はＷ、アルギニンはＡｒｇ又はＲ、グリシンはＧｌｙ又はＧ。

用語「アミノ酸」は、天然発生アミノ酸と類似の機能を有するアミノ酸類似物及びアミノ酸模倣物と同様に、天然発生非天然アミノ酸も含む。天然にコード化されたアミノ酸は、２０種類の一般のアミノ酸（アラニン、アルギニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン、グルタミン酸、グリシン、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リジン、メチオニン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、スレオニン、トリプトファン、チロシン及びバリン）並びにピロリシン及びセレノシステインである。アミノ酸類似物は、同じ基礎的化学構造を有する化合物、すなわち、ホモセリン、ノルロイシン、メチオニンスルフォキシド、メチオニンメチルスルフォニウムのような水素、カルボキシル基、アミノ基、及び、Ｒ基に結合される炭素を意味する。このような類似物は、（ノルロイシンのような）修飾されたＲ基又は修飾されたメチルスルフォニウムを含むが、自然発生アミノ酸と同じ基礎的化学構造を保持する。

アミノ酸配列としては、当業者は、コード化された配列におけるアミノ酸単体又は少量のアミノ酸を変更、付加又は削除する核酸、ペプチド、ポリペプチド又は蛋白質配列における個々の置換、削除又は付加が、化学的に類似のアミノ酸でアミノ酸置換を生じる「保守的修飾変更」であることを認識するであろう。機能的に類似なアミノ酸を提供する保守的置換表は当業者に公知である。このような保守的修飾変更は、ここに記載された試薬の多形性変異、種間相同体／相同分子種、及び、対立遺伝子を除外しない。

ここに用いられている「抗原」は、抗体により認識され又は認識抗体が挙げられる５つ以上のアミノ酸のいずれかの（修飾又は未修飾）アミノ酸フラグメントであってもよい。ある実施形態においては、抗原は、アセチル化、メチル化（例えばモノ−、ジ−、トリ−）、リン酸化、ユビキチン化（例えばモノ−、ジ−、トリ−）、ＳＵＭＯ化、ＡＤＰ−リボシル化、シトルリン化、ビオチン化及びシス−トランス異性化のようなアミノ酸の修飾を含んでもよい。他の実施形態においては、抗原は野生型アミノ酸配列を含んでもよい。

用語「ポリペプチド」、「ペプチド」及び「蛋白質」は、アミノ酸残基のポリマーを意味するように交換可能に用いられる。すなわち、ポリペプチドの表現は、ペプチドの表現及び蛋白質の表現に並びに逆に同等に適用する。これらの用語は、１つ以上のアミノ酸残基が非天然アミノ酸であるアミノ酸ポリマーと同様に、天然発生アミノ酸ポリマーに適用する。ここで用いられているように、これらの用語は、共有ペプチド及び／又は疑似ペプチド結合によりアミノ酸残基が連結された完全長の蛋白質を含むいずれの長さのアミノ酸鎖も含む。

用語「翻訳後修飾」は、生体内又は生体外でポリペプチド鎖に含まれた後に、このようなアミノ酸に生じる又は生じるであろう天然又は非天然アミノ酸のいずれかの修飾を意味する。このような修飾は、特に限定されるものではないが、アセチル化、メチル化（例えばモノ−、ジ−、トリ−）、リン酸化、ユビキチン化（例えばモノ−、ジ−、トリ−）、ＳＵＭＯ化、ＡＤＰ−リボシル化、シトルリン化、ビオチン化及びシス−トランス異性化を含む。このような修飾は、合成的に、例えばポリペプチド合成の間に化学的に或いはポリペプチド合成又はポリペプチド精製の後に酵素的に誘導される。

用語「免疫沈降（ＩＰ）濃縮」は、インプット試料由来の内部標準分子から分かれた免疫沈降された試料由来の内部標準分子を意味する。

用語「対称的」は、ヒストンダイマー内の１つのヒストンが翻訳後修飾を含むヌクレオソームを意味する。例えば、トリメチル修飾は、ダイマー内の２つ目のヒストンＨ３上には存在しないが１つのヒストンＨ３のリジン９上に見出される。

用語「非対称的」は、ヒストンダイマー内の両ヒストンが翻訳後修飾を含むヌクレオソームを意味する。例えば、トリメチル修飾は、両ヒストンＨ３のリジン９上に見出される。

ＩＩ）内部標準校正されたＣｈＩＰ（ＩＣｅＣｈＩＰ）
現在実施されるプルダウンアッセイは、プルダウン実験の比較が不正確となる測定の単位の恣意性に悩まされており、医療診断及び調査におけるプルダウンアッセイの使用が妨げられている。データ解釈の正確性は、アッセイによる試験結果値に連結せず、実際の生体現象に連結された絶対的単位の標準化スケールにより改善される。本発明の一態様は、疾病標識同定アッセイのような医療診断においてプルダウンアッセイの使用を可能とする材料及び方法を提供する。これらの方法においては、ＣｈＩＰのようなプルダウンアッセイから得られたデータは、アッセイを特定する恣意的な値だけではなく疾病標識自身を特定する絶対的な値により特徴付けられる。これは、現在市販の方法及び技術ではしばしば不可能な、異なる試料のプルダウン由来の結果、同じ試料の異なるプルダウン、異なるエピトープのプルダウン、異なる実験室で行われたプルダウンが容易にかつ直接的に互いに比較され得ることを意味する。

本発明の一態様は、ＤＮＡ結合タンパク質、蛋白質アイソマー及び我々が内部標準校正ＣｈＩＰ（ＩＣｅＣｈＩＰ）と呼ぶ蛋白質翻訳後修飾密度の絶対的評価の方法を含む。この方法は、生物学的に有意義なスケール上のヒストン修飾の第１局所測定を提供する。このＣｈＩＰの改良は、ＣｈＩＰ読み取りが比較される非天然に生じる内部標準を用いる。内部標準としては、天然様親和性、特異性及び結合活性を有するエピトープを含むように設計された組み替え及び半合成蛋白質−ＤＮＡ複合体を我々は開発した。

これらの蛋白質−ＤＮＡ複合体は、親和性試薬に対する天然様親和性、特異性及び結合活性、並びに、位置決め配列及び特異的に配列又はバーコードを有する標準認識分子を含むＤＮＡ配列を有する蛋白質エピトープを備えたヌクレオソームを含む。ＤＮＡ−蛋白質複合体の特定認識の特異的手段を提供する「バーコード」は、特定標準半合成ヌクレオソームの同一性及び／又は濃度を同定する、例えばＤＮＡ、ポリペプチド、フルオロフォア、発色団、ＲＮＡ配列、ロックド核酸配列、親和性タグ等のようなヌクレオチド配列であってもよい。ここで、用語「天然様」は、天然に生じるエピトープと類似の親和性、特異性及び結合活性を有するいずれかの蛋白質エピトープを意味する。

図１は、ＩＣｅＣｈＩＰアッセイの一実施形態を示す。この概念図においては、（各特定のＤＮＡバーコードによりコード化された）定義された濃度にリジン４のＮ６，Ｎ６，Ｎ６−トリメチル化された修飾ヒストンＨ３を備えた標準分子の半合成ヌクレオチドラダーは、ヒト細胞核から単離され、小球菌ヌクレアーゼによる核酸消化により解放された天然のヌクレオソームのライブラリ中にドープされる。ラダードープライブラリの試料は、免疫沈降（ＩＰ）、ＤＮＡ精製及び次世代シークエンシングを施される。ラダードープライブラリの他の試料は、インプット試料として維持され、免疫沈降を施されない。ここで、免疫沈降（ＩＰ）又は「プルダウン」は、エピトープがエピトープに対して特異的な親和性試薬に接触され、ライブラリの他の成分から分離された１つ以上のエピトープを含むクロマチン、ヌクレオソーム、ＤＮＡ−蛋白質複合体又は蛋白質を精製する方法又は技術を意味する。

免疫沈降試料及びインプット試料は、ＤＮＡ配列を読み取り、定量する能力を有する方法を施される。取り出されたＤＮＡフラグメントは、参照ゲノムに基づいて相対的ゲノム位置に対応づけられ、これらのフラグメントの数は、ＩＰ（親和性試薬を用いた免疫沈降を通して生成された試料）及びインプット（免疫沈降を施されない試料）から取り出されたＤＮＡに対するゲノムの塩基対毎に測定される。シークエンシングデータからの同じ計測は、半合成ヌクレオソームを作成するために用いられた特異的なヌクレオチド配列のために行われる。ＩＰ及びインプットにおける半合成ヌクレオソームの数の比率は、ＩＰ効率を測定するために用いられ、ＩＰ及びインプットにおけるいずれかのゲノム遺伝子座に対するＤＮＡフラグメントの数の比率は、相対的濃縮を測定するために用いられる。添加された合成ヌクレオソームに対する得られたタグの計数は、天然ヌクレオソームゲノムワイドに対するヒストン修飾密度を得るための校正曲線を構成する。１００％修飾される半合成ヌクレオソームラダーに対する平均ＩＰ濃縮率は、比率の比率として所望のゲノム区間に超える修飾量を計算するために、同じエピトープを有する天然クロマチンに対するスカラー修正として用いられる。その後、ＩＰ効率は、全ゲノムのスパンに対する塩基対解像度を有するＨ３Ｋ４ｍｅ３ヒストン翻訳後修飾のヒストン修飾密度を測定するために、相対的濃縮に適用される。いくつかの実施形態においては、天然様親和性、特異性及び結合活性を有する蛋白質エピトープは、翻訳後修飾を有する蛋白質アイソフォーム及び／又は蛋白質である。例えば、エピトープは、アッセイにおいて密度が測定されたヒストン修飾又は類似の結合特性を有するエピトープであってもよい。好適な実施形態においては、ＤＮＡ−蛋白質複合体の蛋白質部分は、コアヒストンＨ２Ａ、Ｈ２Ｂ、Ｈ３、Ｈ４を含むコアヒストンオクタマー複合体である。これらの配列は、内容が参照として内包されている特許文献１に記載されている。前記コアヒストンに対する蛋白質エピトープの天然様親和性、特異性及び結合活性を再現するために、表１〜６に挙げられたものを含むいずれかのヒストン変異体が示されている。本発明の一実施形態においては、蛋白質エピトープはヒストンのフラグメントであってもよい。

本発明の他の態様においては、蛋白質−ＤＮＡ複合体は、これらの限定されないが位置決め配列及び特異的配列又はバーコードを含む標準認識分子を備える。蛋白質位置決め配列の内容は、蛋白質との特異的な天然様相互作用を通してＤＮＡ−蛋白質複合体を作成し得る。好適な実施形態においては、蛋白質位置決め配列はヌクレオソ−ム位置決め配列である。一実施形態においては、位置決め配列は、少なくとも１４６塩基対の天然又は合成二本鎖ＤＮＡ配列を含む。さらに好適な実施形態においては、蛋白質位置決め配列は、ヌクレオソームに対する親和性を示した配列の選択により作成された「６０１−Ｗｉｄｏｍ」配列−合成ヌクレオソーム結合配列である。ヌクレオソーム位置決め配列として「６０１−Ｗｉｄｏｍ」配列を我々がここに挙げたが、本実施形態は、ヌクレオソームに対する親和性を示す他の天然及び合成配列の使用を含む。

特異的配列は、ライブラリ又は少ない天然ＤＮＡ−蛋白質複合体、すなわちバーコード中のＤＮＡ−蛋白質複合体の特異的同定を可能とする。いくつかの実施形態においては、特異的配列は、特異的認識の他の手段、例えばポリペプチド、フルオロフォア、発色団、ＲＮＡ配列、ロックド核酸配列、親和性タグ等で置き換えられる。一態様においては、特異的配列は、公知のヌクレオチド分析、例えば次世代シークエンシング、ｑＰＣＲ、ＲＴ−ＰＣＲ又はｄｄＰＣＲにより分析される。特異的配列及び位置決め配列は、同じ配列であってもよく、認識分子として二重機能する。特異的配列は、位置決め配列の５’末端、位置決め配列の３’末端又は位置決め配列の両端に存在してもよい。

好適な実施形態においては、特異的配列は、研究されている有機体のゲノム配列及び試料中に見出されるであろう全ての他の配列から少なくとも１のハミング距離を維持するために、最小長の二本鎖ＤＮＡ配列である。より好適な実施形態においては、天然ゲノム配列におけるバーコードの強い識別を保証するために、各バーコードは、人及びマウスのゲノムに存在しない２つの１１塩基対（ｂｐ）配列から構成され（例えば、非特許文献２２参照。）、１１塩基対配列は人及びマウスのゲノムに対する少なくとも１つのハミング距離を保証する最短の配列である。他の実施形態においては、バーコード配列は細胞に存在しない配列である。他の実施形態においては、バーコード配列は天然に存在しない配列である。１１塩基対は人及びマウスに対する少なくとも１つハミング距離を有する可能な最短配列として挙げられいるが、前記の特異的配列として作用するためにうまく用いられる少なくとも１つのハミング距離を有する長い配列には制限がある。さらに、他の有機体のゲノムに対する少なくとも１つのハミング距離を有する特異的配列の最短配列は１１塩基対より短く、このような１１塩基対より短い配列はこれらの有機体にうまく用いられる。バーコードは分子であり、好適な実施形態においては、これらに限定されるものではないが、次世代配列及びＰＣＲを含む公知のＤＮＡ分析により分析されたＤＮＡである。バーコード配列は、所定の内部標準ヌクレオソームの濃度及び／又は同一性をコード化する。

好適な実施形態においては、特異的なヌクレオチド配列は所定の内部標準の濃度及び同一性を示す。本発明の一態様においては、特異的配列は、少なくとも又は多くとも１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、６０、７０、８０、９０又は１００塩基対の長さを有する。さらなる他の実施形態においては、位置決め配列及び特異的配列の全長は、少なくとも１００塩基対の長さを有する。好適な実施形態においては、位置決め配列及び特異的配列は表７〜１７から選択される。一態様においては、特異的配列は小球体ヌクレアーゼ耐性である。本発明の一実施形態においては、これらに限定されるものではなが位置決め配列及び特異的配列又はバーコードを有する標準分子は、配列ＩＤ Ｎｏ：１；配列ＩＤ Ｎｏ：２；配列ＩＤ Ｎｏ：３；配列ＩＤ Ｎｏ：４；配列ＩＤ Ｎｏ：５；配列ＩＤ Ｎｏ：６；配列ＩＤ Ｎｏ：７；配列ＩＤ Ｎｏ：８；配列ＩＤ Ｎｏ：９；配列ＩＤ Ｎｏ：１０；配列ＩＤ Ｎｏ：１１；配列ＩＤ Ｎｏ：１２；配列ＩＤ Ｎｏ：１３；配列ＩＤ Ｎｏ：１４；又は配列ＩＤ Ｎｏ：１５を含む。好適な実施形態においては、これらに限定されるものではないが、位置決め配列及び得意な配列又はバーコードを含む 標準分子は、配列ＩＤ Ｎｏ：１６；配列ＩＤ Ｎｏ：１７；配列ＩＤ Ｎｏ：１８；配列ＩＤ Ｎｏ：１９；配列ＩＤ Ｎｏ：２０；配列ＩＤ Ｎｏ：２１；配列ＩＤ Ｎｏ：２２；配列ＩＤ Ｎｏ：２３；配列ＩＤ Ｎｏ：２４；配列ＩＤ Ｎｏ：２５；配列ＩＤ Ｎｏ：２６；配列ＩＤ Ｎｏ：２７；配列ＩＤ Ｎｏ：２８；配列ＩＤ Ｎｏ：２９；配列ＩＤ Ｎｏ：３０；配列ＩＤ Ｎｏ：３１；配列ＩＤ Ｎｏ：３２；配列ＩＤ Ｎｏ：３３；配列ＩＤ Ｎｏ：３４；配列ＩＤ Ｎｏ：３５；配列ＩＤ Ｎｏ：３６；配列ＩＤ Ｎｏ：３７；配列ＩＤ Ｎｏ：３８；配列ＩＤ Ｎｏ：３９；配列ＩＤ Ｎｏ：４０；配列ＩＤ Ｎｏ：４１；配列ＩＤ Ｎｏ：４２；配列ＩＤ Ｎｏ：４３；配列ＩＤ Ｎｏ：４４；配列ＩＤ Ｎｏ：４５；配列ＩＤ Ｎｏ：４６；配列ＩＤ Ｎｏ：４７；配列ＩＤ Ｎｏ：４８；配列ＩＤ Ｎｏ：４９；配列ＩＤ Ｎｏ：５０；配列ＩＤ Ｎｏ：５１；配列ＩＤ Ｎｏ：５２；配列ＩＤ Ｎｏ：５３；配列ＩＤ Ｎｏ：５４；配列ＩＤ Ｎｏ：５５；配列ＩＤ Ｎｏ：５６；配列ＩＤ Ｎｏ：５７；配列ＩＤ Ｎｏ：５８；配列ＩＤ Ｎｏ：５９；配列ＩＤ Ｎｏ：６０；配列ＩＤ Ｎｏ：６１；配列ＩＤ Ｎｏ：６２；配列ＩＤ Ｎｏ：６３；配列ＩＤ Ｎｏ：６４；配列ＩＤ Ｎｏ：６５；配列ＩＤ Ｎｏ：６６；配列ＩＤ Ｎｏ：６７；配列ＩＤ Ｎｏ：６８；配列ＩＤ Ｎｏ：６９；配列ＩＤ Ｎｏ：７０；配列ＩＤ Ｎｏ：７１；配列ＩＤ Ｎｏ：７２；配列ＩＤ Ｎｏ：７３；配列ＩＤ Ｎｏ：７４；配列ＩＤ ＮＯ：配列ＩＤ Ｎｏ：７５；配列ＩＤ Ｎｏ：７６；配列ＩＤ Ｎｏ：７７；配列ＩＤ Ｎｏ：７８；配列ＩＤ Ｎｏ：７９；配列ＩＤ Ｎｏ：８０；配列ＩＤ Ｎｏ：８１；配列ＩＤ Ｎｏ：８２；配列ＩＤ Ｎｏ：８３；配列ＩＤ Ｎｏ：８４；配列ＩＤ Ｎｏ：８５；配列ＩＤ Ｎｏ：８６；配列ＩＤ Ｎｏ：８７；配列ＩＤ Ｎｏ：８８；配列ＩＤ Ｎｏ：８９；配列ＩＤ Ｎｏ：９０；配列ＩＤ Ｎｏ：９１；配列ＩＤ Ｎｏ：９２；配列ＩＤ Ｎｏ：９３；配列ＩＤ Ｎｏ：９４；配列ＩＤ Ｎｏ：９５；配列ＩＤ Ｎｏ：９６；配列ＩＤ Ｎｏ：９７；配列ＩＤ Ｎｏ：９８；配列ＩＤ Ｎｏ：９９；配列ＩＤ Ｎｏ：１００；配列ＩＤ Ｎｏ：１０１；配列ＩＤ Ｎｏ：１０２；配列ＩＤ Ｎｏ：１０３；配列ＩＤ Ｎｏ：１０４；配列ＩＤ Ｎｏ：１０５；配列ＩＤ Ｎｏ：１０６；配列ＩＤ Ｎｏ：１０７；配列ＩＤ Ｎｏ：１０８；配列ＩＤ Ｎｏ：１０９；配列ＩＤ Ｎｏ：１１０；配列ＩＤ Ｎｏ：１１１；配列ＩＤ Ｎｏ：１１２；配列ＩＤ Ｎｏ：１１３；配列ＩＤ Ｎｏ：１１４；又は配列ＩＤ Ｎｏ：１１５を含む。

記載されているように、エピトープ密度を測定する方法の一実施形態においては、標準認識分子を備えた一組の前記半合成ヌクレオソームは天然ヌクレオソームのコレクション内にドープされる。この一組は、関連の少なくとも１つのエピトープを含み、２つ以上のエピトープを内部に含む標準認識分子を有する半合成ヌクレオソームを構成する。例えば、一組の半合成ヌクレオソームは、翻訳後修飾、すなわちＨ３Ｋ９ｍｅ３及びヒストンのポリペプチド配列のような保存され又は変異されたエピトープを含んでもよい。或いは、一組の半合成ヌクレオソームは、Ｈ３Ｋ９ｍｅ３のような２つ以上の翻訳後修飾を含み、又は第２エピトープを挿入してもよい。他の態様においては、一組の標準分子は、関連のエピトープとは異なる偽陽性エピトープの天然様親和性、特異性及び結合活性を有するＤＮＡ−蛋白質複合体を備えた少なくとも１つの半合成、再構成された又は変異体を含む。好適な実施形態においては、一組の半合成又は変異体は、真陽性エピトープの天然様親和性、特異性及び結合活性を有する少なくとも１つのヌクレオソーム、並びに、偽陽性エピトープの天然様親和性、特異性及び結合活性を有する少なくとも１つのヌクレオソームを含むヌクレオソームを備える。

少ない蛋白質−ＤＮＡ複合体から天然又は半合成ヌクレオソーム群を精製するためには、親和性捕捉ステップを用い、親和性試薬は、ヌクレオソーム、例えばヒストンの変異フラグメントを認識する。一態様においては、関連のエピトープを含む親和性試薬は、抗体、モノボディ、アプタマー、Ｆａｂ又は結合ペプチドを含む。ヌクレオソーム群の精製方法は、半合成ヌクレオソーム、天然ヌクレオソーム又は半合成ヌクレオソームでドープされた天然ヌクレオソームに適合される。

ＩＣｅ−ＣｈＩＰデータ分析
一実施形態においては、ＩＣｅ−ＣｈＩＰを実施するために、ＣｈＩＰ読み取りが比較される一組の前記内部標準は、天然ＤＮＡ−蛋白質複合体のコレクション内にドープされる。以下に、これらの標準分子がどのように標準ＩＰ効率の算出に用いられるか、同様に、研究されたエピトープが変異蛋白質フラグメント、蛋白質インフォマー又は蛋白質翻訳後修飾かどうかに依存して、蛋白質又はエピトープ密度（ＰＤ）、蛋白質変異体密度（ＰＶＤ）又は蛋白質修飾密度（ＰＭＤ）が何と呼ばれるか算出するために用いられることを我々は記載する。天然様親和性、特異性及び結合活性を有するヌクレオソームを含む半合成又は変異体に基づく標準分子は、ヒストン修飾密度（ＨＭＤ）又はヒストン変異体密度（ＨＶＤ）の絶対的定量を行うことにより、クロマチン免疫沈降法を改良する。

ヒストン修飾密度は、標準化スケールであり、所定のゲノム位置に全てのヌクレオソームの特異的なエピトープを含むヌクレオソームの見かけ百分率として定義される。ヒストン修飾密度は、エピトープの非存在を意味する０％とエピトープの存在の飽和を意味する１００％との間の範囲のアナログスケールで表現される。例えば、ＧＡＰＤＨ遺伝子のヌクレオソーム＋１（転写開始部位の下流の第１ヌクレオソーム）に対して９０％のＨ３Ｋ４ｍｅ３ヒストン修飾密度は、ＧＡＰＤＨ遺伝子プロモータでヌクレオソーム＋１を含む全てのヒストンＨ３分子群において、その９０％がヒストンＨ３（Ｈ３Ｋ４ｍｅ３）のリジン４のＮ６，Ｎ６，Ｎ６−トリメチル化の翻訳後修飾され、１０％がＨ３Ｋ４ｍｅ３でないと解釈される。この例示は、略１４７塩基対の１つのヌクレオソームをまたがるゲノム領域で行われるが、１つの塩基対から全ゲノムの範囲のゲノムのいずれかのスパンに適用される。

蛋白質又はエピトープ密度を算出するためには、ゲノム遺伝子サイズ、エピトープ数、全蛋白質数及び免疫沈降効率（「ＩＰ効率」）を知る必要がある。ゲノム遺伝子座サイズはユーザーにより定義され、１つの塩基対から全ゲノムの範囲である。エピトープ数は、ゲノム遺伝子座のスパンにわたったエピトープの数として定義される。数は、蛋白質に対して化学量論的であるため、通常ＤＮＡ−蛋白質複合体に結合されたＤＮＡの量を定量することにより推測され、ＤＮＡは、例えばＰＣＲ、ＲＴ−ＰＣＲ、ｄｄＰＣＲ、次世代シークエンシング、ハイブリダイゼーション、オートラジオグラフィ、蛍光ラベリング、光学密度及び、及び、インターカレーター性蛍光プローブ等の多くの方法により容易に定量される。しかしながら、数は、光学密度、蛍光、オートラジオグラフィ、質量分析、比色アッセイ、ポリペプチドの総分解等を用いた蛋白質濃度の測定により直接測定されてもよい。

エピトープ数は、エピトープ−親和性試薬複合体がＤＮＡ−蛋白質複合体の未結合群から分離された後に特異的な親和性試薬がエピトープを認識する親和性捕捉ステップの後、測定される。エピトープ−親和性試薬複合体の殆どは、表面上にエピトープ−親和性試薬複合体を固定し、ＤＮＡ−蛋白質複合体の未結合群を洗い落とすことにより、未結合ヌクレオソームから分離される。一般的な蛋白質数は、所定のゲノム遺伝子座のスパン内で所定の生成ＤＮＡ複合体の全ての蛋白質の数として定義される。一般的な蛋白質数は、エピトープ数と同じ方法で測定される。

他の蛋白質−ＤＮＡ複合体からヌクレオソーム群を精製するために、親和性試薬がヌクレオソーム、例えばヒストンの変異体フラグメントを認識する親和性捕捉ステップを使用できる。しかしながら、蛋白質−ＤＮＡ複合体作成中に含まれる所定の変異体フラグメントが考慮されたゲノム遺伝子座サイズを超えて優勢である場合、一般的な蛋白質群に対する親和性捕捉ステップは、他の蛋白質−ＤＮＡ複合体が顕著であるという仮定のもと飛ばされる。エピトープ数及び一般的な蛋白質数は、蛋白質に対するエピトープ密度をもたらす。しかしながら、親和性捕捉ステップが１００％効率的な場合は滅多になく、２つ以上の親和性捕捉ステップが使用される場合は、捕捉効率は互いに滅多に等しくない。この問題を解決するためには、エピトープ数と一般的な蛋白質数測定との間の相対的ＩＰ効率を知る必要がある。

「ＩＰ効率」は、１つ以上のプルダウン間のエピトープの相対的取り出しを意味する。標準分子に対するＩＰ効率の知見は、１つ以上のプルダウン間の取り出しの差を修正することにより絶対的定量の実施を可能とする。一実施形態においては、前記ＩＰ効率は、天然エピトープと同じ親和性、特異性及び結合活性を有し、数を複合混合物中で容易に測定される一組の前記標準分子を用いることにより測定される。これらの半合成標準分子は、少ない天然ＤＮＡ−蛋白質複合体、親和性捕捉の対象となる試料中にドープされる。このステップの後、エピトープ数及び一般的な蛋白質密度の前記測定は、前記数測定の方法の１つを有する半合成標準分子及び少ない天然ＤＮＡ−蛋白質複合体群に対して実施される。一実施形態においては、一組の標準分子は、異なる濃度で添加される標準分子を含む。ここで、添加される濃度は、バーコードにより独特に同定される。

一実施形態においては、エピトープ数は、標準ＤＮＡ−蛋白質複合体及び天然ＤＮＡ−蛋白質複合体に対してＤＮＡ−蛋白質複合体に結合されるＤＮＡの定量により測定される。好適な実施形態においては、半合成ヌクレオソーム用のインプット材料に対するＩＰにおける所定の標準バーコードのエピトープの比率は、標準ＩＰ効率と等しい。或いは、この標準ＩＰ効率は、一般的な蛋白質数（ヒストンＨ３に対する、例えば抗体−Ｈ３一般的ＩＰにおけるバーコード計数）に対するエピトープ−特異的ＩＰにおけるバーコード数の比率として計算される。ＩＰ効率が一旦計算されると、ゲノム遺伝子座におけるＩＰ／インプットＤＮＡ又はＩＰ−エピトープ／ＩＰ−一般的蛋白質比率にこの標準ＩＰ効率を適用してもよい。これは、ゲノムＩＰ効率−インプットに存在する同じ区間を取り出すＤＮＡ量に対するＩＰにおけるエピトープ数（親和性ステップにおいて捕捉された所定のゲノム区間に対するＤＮＡ量）の比率−を標準ＩＰ効率で割ることにより計算される。或いは、これは、前記したように、いずれかのゲノム遺伝子座のＩＰを一般的なエピトープ数における同種の量で割り、次いで、標準ＩＰ効率で割ったＩＰにおける所定のゲノムＤＮＡフラグメントの比率として計算される。求められた値は、蛋白質変異体密度（ＰＶＤ）又は蛋白質修飾密度（ＰＭＤ）としても公知な蛋白質又はエピトープ密度（ＰＤ）である。

オフターゲットの特異性の修正
プルダウン実験の分析に要求される他の問題は、プルダウンアッセイに用いられる親和性試薬のオフターゲットの特異性由来の予測の正確性の低さである。用語「偽陽性」及び「オフターゲット」は、同意語であり、無差別又は非特異的な親和性試薬に接触し、不正確な結果を生じるエピトープを意味する。用語「真陽性」及び「オンターゲット」は、同意語であり、関連の又は正確な結果を生じるエピトープを意味する。

偽陽性信号の普及は、プルダウン間で変化し、プルダウンが実施される他の条件と同様に、親和性試薬（他の関連エピトープの親和性に対する所望のエピトープの本質的な結合親和性）の品質、天然クロマチンにおけるオフターゲットのエピトープに対するオンターゲットのエピトープの数、及び、親和性試薬の能力とプルダウンにおけるＤＮＡ−蛋白質複合体の負荷レベルとの比率に依存する。異なる親和性試薬に関しては、オンターゲット結合及びオフターゲット結合の両者は、異なる程度に対する見かけ上のＣｈＩＰ信号に寄与する。いずれかのソースが従来のＣｈＩＰを用いた所定の実験の範囲内で寄与する程度は未知である。オフターゲット結合の数の知見がないときは、医療診断及び調査におけるプルダウンの使用は非実用的であり、観測されたエピトープ数が顕著であるか否かを判定することはできない。陽性的中率（ＰＰＶ）が既に計算されていることからデータ解釈の正確性を改良するために、発明者は、原位置でのプルダウンアッセイにおける偽陽性及び真陽性エピトープのＩＰ効率の定量方法を見出した。ＰＰＶは、真陽性を考慮したある信頼レベルの最小エピトープ数の評価を可能とする。

正確性が計算されるため、ＩＰ効率、標準ＩＰ及び陽性的中率（ＰＰＶ）を計算する前記方法の使用も参照される。蛋白質密度のいずれかの相異が顕著であるか否かの評価を可能とするため、ＰＰＶの知見は、現在入手可能な方法及び技術では達成不可能ないずれかのデータ分析を合理化する。

ηＴＰは真陽性エピトープのＩＰ効率であり、αは真陽性の所定の重量であり、ηＦＰはオフターゲットエピトープとしても公知な偽陽性エピトープのＩＰ効率であり、βは偽陽性エピトープの重量である。重量配分の以前の知見がないときは、α＝β＝１である。この数式の他の変異並びに偽陽性及び真陽性エピトープ普及の知識の使用は、他の適用に用いられる。

ＣｈＩＰを校正する２つの代替方法：外部標準及び直接的内部標準校正を用いた包括的ヒストン修飾密度校正がある。この作業に主として用いられる相対的内部標準アプローチのように、これらの２つは、所定の遺伝子座において入手可能な全ての他のエピトープに対する精査されるエピトープの見かけ上の比率に等しい「ヒストン修飾密度」単位で表現される結果をもたらす。

包括的なヒストン修飾密度校正は、ヒストンの量に対する修飾の総比率、例えばＫ４トリメチル化された全てのＨ３の百分率の測定に依存する。質量分析又は定量ウエスタンブロット測定のいずれかから得られたこの包括的なヒストン修飾密度は、いずれかの所定の遺伝子座におけるインプット深さを修正した全てのＩＰピーク間で再分布される。包括的数測定における相当な誤差（例えば全ての修飾の潜在的形態が観測されないＭＳ正確性＋多分の曖昧さ）のほかにこの方法の不利益は、ＣｈＩＰに用いられた同じヌクレオソーム試料から作製される必要がある直交方法による外部測定であり、両方の技術における試料の取扱損失は重要な誤差源である。特に、ＩＰ効率は決して１００％ではなく（特に、これは相当に少ない）、効率が理論的最大値から外れる度合いは見かけ上のＨＭＤに比例したインフレ値に反映されるであろう。

直接内部標準校正は、本来の試料における精査されるエピトープの絶対的モル数を外挿法により推定するために、インプットにおける各内部標準ラダーメンバーの正確なモル濃度を測定するＣｈＩＰ工程を通して添加されたバーコード化ヌクレオソーム標準分子のタグ計数を測定する。この種類の校正は、小球菌ヌクレアーゼ消化を施された細胞核計数の正確性、及び、この良好な定量数から徹底的にフラグメント化されたクロマチン単離の途中で生じるバイアスのかけられた損失により限定される。高く最適化された消化及び単離条件下で消化された細胞核由来の総核酸の８０％そこそこを取り出すため、バイアスのかけられたゲノム取り出しに起因する合成誤差がある（例えば、非特許文献１参照。）。

この実施形態のさらなる他の利点は、以下のマトリクスの数式：Ａ×ｘ＝ｂを解くことにより、ヒストン修飾密度の例示上で示される偽陽性エピトープ信号から真陽性エピトープ信号にデコンボルーションする能力である。示されたデータセットに関しては、ＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑ痕跡は、以下のマトリクスの数式：Ａ×ｘ＝ｂを解くことにより、非特異的に修正される。

本発明の他の実施形態は、以下のマトリクスの数式：Ａ×ｘ＝ｂを解くことにより、ヒストン修飾密度の例示上で示される偽陽性エピトープ信号から真陽性エピトープ信号にデコンボルーションする方法を記載する。

ｘは修正されたＨＭＤスコアのマトリクスであり、Ａは修正因子のマトリクスであり、ｂは未修正ＨＭＤスコアのマトリクスであり、ｔは一組の「ａ」〜「ｚ」ヒストン標識（上付文字）由来のヒストン標識に対する抗体を用いた免疫沈降における一組の「ａ」〜「ｚ」ヒストン標識（下付文字）由来のヒストン標識に対して特異的な修正因子であり、ＨＭＤは１〜ｎの遺伝子座の所定のヒストン標識（「ａ」〜「ｚ」）に対するヒストン修飾密度であり、ＨＭＤ（Ｃｏｒ）は１〜ｎの遺伝子座の所定のヒストン標識に対する修正されたヒストン修飾密度である。

ｔは一組の「ａ」〜「ｚ」ヒストン標識（上付文字）由来のヒストン標識に対する抗体を用いた免疫沈降における一組の「ａ」〜「ｚ」ヒストン標識（下付文字）由来のヒストン標識に対して特異的な修正因子であり、ＨＭＤは１〜ｎの遺伝子座の所定のヒストン標識（「ａ」〜「ｚ」）に対するヒストン修飾密度であり、ＨＭＤ（Ｃｏｒ）は１〜ｎの遺伝子座の所定のヒストン標識に対する修正されたヒストン修飾密度である。

Σ_１ ^ＮＩＰ及びΣ_１ ^ＮインプットはＩＰ又はインプットにおける所定のバーコード数を意味し、上付は抗体が挙げられたヒストン標識を意味し、下付はプルダウンされる半合成ヌクレオソーム上の標識を意味する。

疾病診断
従来のＣｈＩＰアッセイが診療所で採用されない主な理由は、実験間の幅広いＩＰ変異における％濃縮を作成し、問題点の多く、信頼できないバイアスのかけられていない比較用とする微細な取扱相異及び可変の抗体特異性に起因してこのアッセイがしばしば再現不可能なことである。変化に敏感なＣｈＩＰのステップを行う内部標準を有することにより、ＩＣｅ−ＣｈＩＰは図６Ａ、６Ｂ及び７Ａに示された結果の複製及び信頼性に関してはさらに健全であり、ＨＭＤが普遍的で、良好に定義された内部標準に対する原位置での直接的な比較により作成された生物学的に相対的なスケールであるため、数が容易に比較される。

ヒストン修飾及び他の後成的機構は、遺伝子活性及び細胞内プロセスの調節に重要である。異なるヒストン修飾は、転写、ＤＮＡ複製及びＤＮＡ修復のような異なるプロセスを調節する。これらの修飾のいずれかの脱調節は、異型の後成的パターン及び細胞異常を生ずる遺伝子発現のバランスをシフトする。例えば、ヒストン翻訳後修飾及び変異体における変化は様々な癌において検出され、異型の修飾パターンはいくつかの場合における疾病のドライバーとして公知である（例えば、非特許文献２３及び２４参照。）。

本発明の材料及び方法は、患者、例えばヒトの患者における癌を含むヒストン翻訳後修飾における変化に関するいずれかの疾病に対する診断、予後、分類、疾病リスクの予測、参照の検出、治療の選択、治療効果の評価に用いられる。このような分析は、多分化能幹細胞を忠実に製造する所定の脱分化プロトコール又は幹細胞を特異的な細胞のタイプに分化するプロトコールの適合性を評価するために、患者の細胞又は誘導された多分化能幹細胞の生体外培養とともに用いられる。

原発癌、転移癌及び再発癌のような進行のいずれかの段階が検出される。癌の多くのタイプに関する情報は、例えばアメリカ癌協会（cancer.orgからウェブ上で入手可能）又は内科のハリソンの原理（２００５）から見出される。

本発明のある態様は、患者の発癌の可能性の評価、疾病段階の分類、及び、癌患者の治療効果の観察のような疾病予後の方法を提供する。このような方法は、ＩＣｅ−ＣｈＩＰが取扱相異及び抗体変異性を制御するためのＣｈＩＰ実験を校正するために用いられる開発に基づいている。したがって、ここに記載されたメチル化ヒストンを含む患者から取り出された細胞内の特定のヒストンＰＴＭ（例えば表１〜６参照）のレベルを測定することにより、患者が特定の疾病を発症するリスクを有しているか又は特定の疾病を既に発症しているか否かを測定することができる。例えば、ここに記載されているように、癌組織におけるヒストンＰＴＭレベルの定量は癌予後又は診断に用いられる。

本発明の多くの実施形態においては、本発明のある態様において記載された材料及び方法は、所定のゲノム遺伝子座での生体試料におけるヒストンＰＴＭ又は変異体のレベルを検出し、生体試料における疾病細胞の有無を検出するために用いられる。いくつかの実施形態においては、生体試料は、癌細胞のような疾病細胞を含むことが疑わしい組織由来の組織試料を含む。ヒトクロマチンＤＮＡ試料はいずれかの従来技術により得られる。特定の表現型又は疾病が検出される場合には、ヒストン含有試料は、関連の組織、血液細胞から、又は、適切には脳脊髄液から調製されるべきである。例えば、ヒストン含有試料は、癌に関するヒストンＰＴＭ状態を検出するために、生検組織から調製される。

適切には、組織又は細胞は、外科的処置を含む公知のいずれかの方法により得られる。他の実施形態においては、例えば腫瘍由来の癌細胞を含むことが分かっている組織試料は、疾病についての情報、例えばある治療の効果、個体の余命、特定タイプの疾病の存在等を測定するために、表１〜６に記載されたもののように、１つ以上のヒストンＰＴＭ部位でヒストンＰＴＭの存在又は量について分析される。いくつかの実施形態においては、この方法は、追加的予後又は診断方法、例えば他の疾病標識の検出等とともに用いられる。

本発明のある態様の材料及び方法は、癌を含む疾病を有することが分かった又は疑わしい個体を評価するために、又は、例えば疾病を有することを疑う必要のない個体における慣例の臨床試験として用いられる。

さらに、本発明の方法及び材料は、治療の経過の効果を評価するために用いられる。治療効果は、疾病を有する哺乳類においてここに経時的に記載された方法及び材料を用いて、ヒストン翻訳後修飾又は変異体の析出を観察することにより評価される。例えば、治療前又は治療初期の哺乳類から取り出された試料におけるレベルを比較する治療を後に行う哺乳類から取り出された生体試料におけるここに記載されたいずれかのメチル化生体標識内のヒストンメチル化の低下又は有無は有効な治療を示す。上記のヒストンＰＴＭの検出は、疾病の診断又は予後のために、単独で又は他の標識と組合わせて用いられる。

ある実施形態の材料及び方法は、疾病を有する哺乳類における治療の最適な経過を測定するために用いられる。例えば、ここに記載されたあるメチル化生体標識内のメチル化ヒストン標識の存在又はあるメチル化生体標識内メチル化の増加量は、癌を有する哺乳類の余命を示し、哺乳類に対するより積極的な治療を示す。また、相関性は、ここに記載されたメチル化生体標識でのメチル化の有無又は量と１つ又は他の抗癌剤の相対的効果とのの間で形成される。このような分析は、例えば回顧すると、すなわち引続き複数タイプの抗癌治療を経験している哺乳類から予め取り出された試料内の１つ以上のメチル化生体標識におけるここに記載された材料及び方法を用いてメチル化を検出し、上記の１つ以上のメチル化生体標識のメチル化の有無又はレベルにより公知の治療効果を相関させることにより実施される。

特定のヒストンＰＴＭの有無又はＨＭＤに基づいた診断、予後、リスク評価、分類、再発の検出又は治療を選択においては、診断、予後、リスク評価、分類、その他の間で区別される閾値に対するＰＴＭ又は変異体の量が比較される。例えば、閾値は、癌試料と所望のレベルの感受性及び特異性を有する正常な生検試料との間で十分に区別するヒストンメチル化の程度を示す。ＩＣｅ−ＣｈＩＰの使用に関しては、閾値は使用される抗体又は取扱状態に依存して変化しない。閾値又は範囲は、ＩＣｅ−ＣｈＩＰを用いて病的試料及びな正常試料における関連の特定のヒストンＰＴＭを測定し、大部分が癌化していない試料から少なくとも大部分が癌試料を区別する値を検出することにより決定される。

いくつかの実施形態においては、この方法は、個体から測定されたヒストンＰＴＭ状態に基づいた診断、予後、リスク評価又は分類の記録を含む。例えばコンピュータによる電子記録を含むいずれかのタイプの記録が期待される。

本発明のある実施形態は、患者の癌におけるヒストン翻訳後修飾状態の測定を提供する。ヒストン翻訳後修飾情報は、癌予後、評価、分類及び／又は治療に用いられる。ここに記載された方法により試験される癌は、これらに限定されるものではないが、腎細胞癌、神経膠腫、神経膠肉腫、悪性星状細胞腫、骨芽細胞腫、肺癌、小細胞性肺癌、子宮頸癌、大腸癌、直腸癌、脊索腫、咽頭癌、カポジ肉腫、リンパ管肉腫、リンパ管内皮細胞肉腫、結腸直腸癌、子宮内膜癌、卵巣癌、乳癌、膵臓癌、前立腺癌、腎細胞癌、肝細胞癌、胆管癌、絨毛癌、精上皮腫、睾丸腫瘍、ウィルムス腫瘍、ユーイング癌、膀胱癌、血管肉腫、内皮肉腫、腺癌、汗腺癌、皮脂腺肉腫、乳頭肉腫、乳頭腺肉腫、嚢胞腺肉腫、気管支原性肺癌、髄様癌、マスト細胞腫、中皮腫、滑膜腫、黒色腫、平滑筋肉腫、横紋筋肉腫、神経芽細胞腫、網膜芽細胞腫、乏突起神経膠腫、聴神経腫瘍、血管芽細胞腫、髄膜腫、松果体腫、脳室上衣細胞腫、頭蓋咽頭腫、上皮癌、胚性癌腫細胞、扁平上皮癌、基底細胞癌、線維肉腫、粘液腫、粘液肉腫、神経膠腫、又は、脂肪肉腫を含む。

ある実施形態においては、以下の疾病は本発明の方法及び材料を用いて診断されてもよい。ヘリコバクターピロリ、リステリア・モノサイトゲネス、シゲラ・フレックスネリ、アナプラズマ・ファゴサイトフィルム、クラミドフィラ、エプスタイン−バーウイルス、ヘルペス、ＨＩＶ、ビルハルツ住血吸虫に起因する細菌感染症；肥満、糖尿病、心臓病；自閉症、脆弱Ｘ染色体症候群、ＡＴＲ−Ｘ症候群、アンジェルマン症候群、プラダ−ウィリ症候群、ベックウィズ−ヴィーデマン症候群、レット症候群、ルビンシュタイン−テイビ症候群、コフィン−ローリー症候群、免疫不全−セントロメア不安定性−顔貌異常症候群、α−サラセミア、白血病、ハンチントン病、精神分裂病、双極性障害、老化、痴呆、アルツハイマー病、パーキンソン病、コルネリア・デ・ランゲ症候群、歌舞伎メーキャップ症候群、シェーグレン症候群、尋常性白斑、進行性全身性硬化症、乾癬、原発性胆汁性肝硬変、クローン病及び潰瘍性大腸炎、橋本甲状腺炎、グレーブス病、炎症性腸疾患、アテローム性動脈硬化症、及び、心肥大。

試薬及びキット
本発明の他の態様は、ここに記載された方法の１つを実施する試薬を含む試薬及びキットを提供する。試薬は適切なパッケージ又は容器に含まれる。キットは、例えばプルダウンアッセイ又はクロマチン免疫沈降アッセイにおいて、真陽性及び偽陽性エピトープの絶対的定量のためのここに記載された標準分子を含む１つ以上の試薬を含む。キットは、ここに記載された少なくとも１つの親和性試薬、例えば抗体も含む。標準分子は、真陽性エピトープに対して天然様親和性、特異性及び結合活性を有する。キットは、偽陽性エピトープに対するエピトープの天然様親和性、特異性及び結合活性を有する少なくとも１つの標準分子を含む。

他の好適な実施形態においては、前記標準分子は、天然様親和性、特異性及び結合活性を有するヒストン、ヒストンアイソフォーム又はヒストン翻訳後修飾を有して作成された半合成ヌクレオソーム並びにバーコード分子を有するＤＮＡ−蛋白質複合体を含む。様々な実施形態においては、表１〜６において定義されたものを含む当業者に公知なコアヒストン配列又は翻訳後修飾のいずれかの変異体は、エピトープの天然様親和性、特異性及び結合活性が保持される仮定のもとヒストンオクタマーを含むヒストン上に取り付けられる。好適な実施形態においては、一組の標準分子は、真陽性エピトープに対するエピトープの天然様親和性、特異性及び結合活性を有するＤＮＡ複合体の少なくとも１つの標準分子、及び、天然の少ないＤＮＡ−蛋白質複合体において存在する可能なオフターゲットエピトープ（偽陽性エピトープ）の範囲をカバーするエピトープの天然様親和性、特異性及び結合活性を有するＤＮＡ複合体の複数の標準分子から構成される。

他の実施形態においては、キットは、パッケージ又容器中に１つ以上の洗浄バッファ（例えばリン酸緩衝食塩水）及び／又は他のバッファを含む。さらなる他の実施形態においては、キットは、第２抗体又は蛋白質Ａに結合された、例えば常磁性粒子を含む捕捉試薬、例えば固相捕捉試薬の分離のために必要な試薬を含む。キットは、捕捉標準分子又は試料の量の測定に必要な試薬も含む。

キットが供給された場合、異なる成分は分離容器内に詰め込まれ、使用前の直前に混合される。分離された成分のこのようなパッケージは活性成分の機能を損失することなく長期保存を可能とする。キットは指示資料とともに供給されてもよい。指示は紙又は他の基材上に印刷され、及び／又は、読み取り可能な電子媒体として供給されてもよい。

＜実施例１＞
マウスＥＳＣ Ｅ１４株細胞のＨ３Ｋ４ｍｅ３ ＩＣｅ−ＣｈＩＰ−ｓｅｑ
生物学的に有意義なスケールにクロマチン免疫沈降を標準化するために、定義された内部標準による校正の分析化学の概念を採用した。従来の天然ＣｈＩＰにおける小球菌ヌクレアーゼフラグメント化により単離された天然モノヌクレオソームの対応物に正確に類似の翻訳後修飾を有する再構成ヌクレオソームを添加した（例えば、非特許文献２８参照。）。図４は、マウスＥＳＣ Ｅ１４株細胞のＨＯＸＡ遺伝子クラスターにおけるＨ３Ｋ４ｍｅ３ ＩＣｅ−ＣｈＩＰ−ｓｅｑのデータを示す。ヒストン修飾密度値は、期待範囲（０〜１００％）内で存在する。前記したように、Ｈ２Ｋ４ｍｅ３は、転写開始部位及びエンハンサーで主として濃縮される。

ＩＣｅ−ＣｈＩＰにおいては、このようなヌクレオソームの内部標準は、校正曲線を描くように、各ラダーメンバーの相対的濃度をコード化する短いバーコード化配列において区別される同じ修飾ヌクレオソームの「ラダー」又は一連の濃度の形態をとる。図２参照。

ヌクレオソームの内部標準の第２成分は、再構成によりヒストンオクタマーに安定的に関連され、ゲノム配列とは容易に区別される一連のバーコード化ＤＮＡ種である。一定の「６０１」ヌクレオソーム−位置決め配列（例えば、非特許文献２５参照。）、並びに、ランダムＤＮＡのＰＣＲ増幅物の含有物及び不含有物となるように選択された可変隣接バーコード配列を含む９種類のＤＮＡライブラリを作成した（図２）。バーコード配列は、ゲノムＤＮＡ配列由来の内部標準ラダーのデコンボルーションが一対の端部のシークエンシングにおける４つ以上の塩基の読み間違いに対して強固となるように、ヒト、マウス及び酵母ゲノムとは異なるように設計される。候補のバーコードは、６０１コアに隣接し、高い及び同等の増幅効率を有する明確な単一バンドのＰＣＲ生成物形性においてさらに選択された対に付加した（図３Ａ）。ＩＣｅＣｈＩＰ分析は、シークエンシング用のライブラリを調製するため又は直接測定（ｑＰＣＲ又はｄｄＰＣＲ）するために必要とするＰＣＲを読み取ることから、ラダーＤＮＡがゲノムＤＮＡに対するいずれかの増幅バイアスを示すか否かを試験する（図３Ｂ）。単一チューブ内における異なるバーコード化ＤＮＡの一連の濃度を有するヒストンオクタマーのグラジェント分析によってＩＣｅＣｈＩＰヌクレオソームラダーを調製した（例えば、非特許文献２６及び２７参照。）（図２）。

免疫沈降又はプルダウンの前に、消化されたゲノムクロマチン内にＨ３Ｋ４ｍｅ３標識を有するヌクレオソーム内部標準をドープすることによって、ＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑを実施した。ここで、Ｅ１４マウス胚性幹細胞のＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑデータを示す（図４）。天然ＣｈＩＰのディルワースプロトコールに対する微細な改良（例えば、非特許文献２８参照。）が少なくとも９５％純粋なモノクロモソームを供給するクロマチンの取り出しを最大化し（ｑＰＣＲにより＞８０％）、ユークロマチンバイアスを最小化した。次いで、この天然ヌクレオソーム群は、内部標準ラダーを添加し、免疫沈降又はプルダウンの前にハイドロキシアパタイトクロマトグラフィー精製を行った。ラダー濃度範囲が所定の天然ヌクレオソームを代表するように示されたゲノムコピー周囲のヌクレオソームラダー範囲を実現するために、小球菌ヌクレアーゼ消化の前に細胞核の数を定量した。添加されたラダーの非常に少ない量（一般的にインプットにおける総ヌクレオソームの０．０００１〜０．００２％）に関しては、シークエンシング深さを明らかに損なわず、天然ヌクレオソーム捕捉を乱さない。免疫沈降された材料及びドープされたインプットの両者に対してイルミナシークエンシングを行い、ラダーから読み取り、内部標準ＤＮＡ配列を連結させた適切なゲノム集合体を整列することにより天然ヌクレオソームを解いた。

ピーク高さが直接生生物学的意義を欠く従来のＣｈＩＰとは対照的に、ＩＣｅＣｈＩＰはヒストン修飾密度（ＨＭＤ％）、ＣｈＩＰ−ｓｅｑ特有の塩基対分解を有する所定のクロモソーム区間上に存在する標識のエピトープの実際の百分率を計算できる。良好な抗体に関しては、一般的にスパン０〜１００％のＨＭＤ％は、この範囲に規定されない（図４）。ＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑにおいては、ＩＰ及びインプットにおける内部標準読み取りの比率は、ＩＰ濃縮、全ゲノムでの塩基対に対する整列された天然ＩＰ／インプットの読み取りの比率に適用された値の直接測定である（図１）。

Ｈ３Ｋ４ｍｅ３濃縮の典型的な領域としては、マウス細胞内のＨＯＸＡ／Ｈｏｘａ遺伝子クラスターがある（例えば、非特許文献４、２９及び３０参照。）。このシークエンシング深さでは、著しく濃縮されたピークは、ＨＭＤが１％から１００％の間で変動する。これらの領域からの読み取り数が低いため、誤差評価は高占有ヌクレオソームの二分染色体付近に漸近的に添加する。塩基対区間上の少数の統計は実験誤差の大きな原因である。より大きなインプットシークエンシング深さは、４倍までのより深いシークエンシングを比較することにより識別可能である誤差の強度を低減する（誤差１∝／√深さ）。或いは、ＨＭＤは、低減された不確実性を有する大きなクロモソーム区間を超えて表現される。重要なことには、これらのデータは、物理的に妥当な範囲内であり、見かけ上の修飾密度は実験誤差内で１００％を超えることはめったにない。特に、ｍＥＳＣ Ｈ３Ｋ４ｍｅ３データセット内の６０，５３０個のピークのうち、１８，３００個のピークは、ピーク内のいずれかの点で１００％を超えるＨＭＤ／ｂｐ値を有し、１，６２７個のピークのみは、９５％信頼区間の低結合が１００％超であるＨＭＤ／ｂｐ値を有する。それにもかかわらず、ヒストン修飾密度の測定におけるこの方法の確実性のより慎重な評価が約束される。

図４におけるＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑ測定を実施する過程での内部標準の挙動は、正確性の直接評価をもたらす。Ｈ３Ｋ４ｍｅ３に対して向けられたＨＥＫ２９３ ＩＣｅＣｈＩＰのインプットに対するＩＰにおける各ラダーメンバーの観測された相対数の直線回帰は、１．０２±０．０２のスロープ及び０．９９８のＲ^２を有する標識相関を示した（図５）。付加的な独立した実験は、各ラダーメンバーが同等のＩＰ濃縮を示すことを示唆する見かけ上の系統的な逸脱なしに、非常に高い正確性を有する同様な著しい直線性を示した（図９Ｂ〜Ｄ）。これらの実験は、エピトープの量と対応ＣｈＩＰの信号強度との間に直線関係があるという第１証明を示す。このような直線性は、ＩＣｅＣｈＩＰにおけるスカラ因子相関を用いるのに必要であり、そのため、ＩＣｅＣｈＩＰスケーリングに適用する前に、完全な直線性を日常的に試験される。この実験においては、実験における細胞核数のほぼ同じ範囲内のヌクレオソーム内部標準の一連の濃度を実現していることから、この直線性は有用な作業範囲を通して存在する。我々は、イルミナシークエンシングから他の定量ＤＮＡ計数法により計算されたＨＭＤ／ｂｐを比較する方法を求めている。デジタルドロップレットＰＣＲ（ｄｄＰＣＲ）及び定量ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）は、アンプリコンのクロモソーム区間を越えて平均化されたＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑ由来のＨＭＤ／ｂｐが直接比較されるように、特定のプライマーセットにより定義されたアンプリコンに依拠する。驚いたことに、見かけ上のＨＭＤの１６％までの膨張をもたらす一対の末端シークエンシングによりインプットに対するＩＰにおけるモノヌクレオソームより大きなＤＮＡフラグメントの５．７倍の濃縮が見出された。この過剰出現は、ＤＮＡフラグメントに対するエピトープの高い原子価に由来すると考えられる「オリゴヌクレオソーム結合活性バイアス」と呼ばれる。一般的に、大きなＤＮＡフラグメントを除去するためには、一対の末端シークエンシングの未加工データを修正としてフィルター処理する。しかしながら、ｑＰＣＲ及びｄｄＰＣＲによる測定は、厳しいサイズ選択なしでモノヌクレオソーム及びオリゴヌクレオソームの間−抽出された信号で区別できない。このように、比較のために、未修正ＨＭＤ信号（図５Ｂ）を表示し、追加情報におけるモノヌクレオソーム−修正ＨＭＤを提供する。この分析に関しては、３種類の測定方法は、ｍＥＡＣｓにおけるＨｏｘＡ５遺伝子座での実験誤差内で同様であった（図５Ｂ）。さらに、ヒストンＨ３及びＨ４に対する抗体を有するＩＣｅＣｈＩＰを実施し、全ての３種類の測定方法間で区別がつかないヌクレオソームにおける２：２までの期待比率が見出された。この一致は、ＩＣｅＣｈＩＰが正確であること、又は、ＤＮＡ定量方法から独立して系統的誤差を有することを示唆する。

半合成ヒストン調製
半合成（例えば、非特許文献２７及び３１参照。）により、重要な点−ライゲーション結合は傷がなく、脱硫化ステップに続く（例えば、非特許文献３２参照。）−で区別される、ヒトヒストンＨ３．２（Ｃ１１０Ａ）Ｋ４ｍｅ３を作成した。得られたヒストンは、組換えヒストンにおける取扱いが頻繁に容易になるＣ１１０Ａ突然変異を除いては天然修飾ヒストンに一致した。Ｓ−トリル−β−メルカプトプロニオニル−ｐ−メチル−ベンズハイドリルアミン樹脂（Nova Biochem社製）上のBoc chemistry社製のＳＰＰＳ(例えば、非特許文献３３参照。)によって、Ｋ４ｍｅ３修飾を有するヒストン３の１〜２０残基に対応する配列を、ペプチドチオエステルとして合成した。この樹脂を、ＤＭＦで１時間膨張し、その後、９５％ＴＦＡ、２．５％トリイソプロピルシラン及び２．５％Ｈ_２Ｏで３分間に３回洗浄して脱保護した。４モル等価Ｂｏｃ保護アミノ酸、３．９モル等価ＨＢＴＵ及び６モル等価ＤＩＰＥＡで全てのアミノ酸を結合し、窒素攪拌しながら１０分間樹脂で保温した。結合に続いて、ＤＭＦ（代わりにＤＣＭを用いたグルタミンを除く）で樹脂を３回洗浄し、１回目がフロー洗浄のＴＦＡの３回洗浄でＢｏｃを脱保護した。最後のアミノ酸脱保護の後、ＤＭＦ、ＤＣＭ及びメタノールで樹脂を連続的に洗浄した。冷たいジエチルエーテルで沈殿させ、凍結乾燥された樹脂の全てのペプチドを、ＨＦ／ＤＭＳ／アニソール（１０：１：１）で分裂した。

切り詰められたヒストンＨ３．２Δ２０（Ｃ１１０Ａ）を、ＴＥＶプロテアーゼ分裂によりＮ末端システインが外されるように、Ｎ末端及びＡ２１に換えて位置Ｈ３．２Ｌ２０の後ろに挿入されたＴＥＶプロテアーゼ分裂部位（ＥＮＬＹＦＱ＾Ｃ）のＨｉｓ_６−ｔａｇとともに組換えで発現した。ＭＰＡＡライゲーション補助物（例えば、非特許文献３５参照。）を用いた天然化学ライゲーション（例えば、非特許文献３４参照。）を通して、組み替えヒストンＨ３．２Δ２０−Ａ２１Ｃフラグメントに、上記のＣ末端ペプチジルチオエステルを結合した。手短に言えば、３０ｍＭ ＭＰＡＡ及び２０ｍＭ ＴＣＥＰを含む最終濃度２ｍＭのＮＣＬバッファ（６Ｍ塩化グアニジウム、２００ｍＭリン酸 ｐＨ７．０）中において、ペプチジル３−メルカプトプロピオンアミドチオエステル及び切り詰められたヒストンの等モル量を混合した。もし必要であれば、ｐＨを７．０に調製し、反応物を室温で１２〜１６時間保温した。その後、ＭＡＬＤＩ ＭＳにより反応の完了を確認し、生成物を分取ＨＰＬＣ（カラム：ＹＭＣパックＣ８、２５０ｍｍ×５μｍ、３０ｎｍ）により精製した。システインのラジカル媒介脱硫化（例えば、非特許文献３２参照。）によって位置２１の天然アラニンを修復した。ＥＳＩ ＭＳにより反応の完了を確認し、分取ＨＰＬＣ（ＹＭＣパックＣ８、２５０ｍｍ×５μｍ、３０ｎｍ）により精製し、凍結乾燥した。

大腸菌中で発現させたヒトヒストン（例えば、非特許文献２７参照。）を用いて、前記したように（例えば、非特許文献２６参照。）、オクタマーを２５０〜５００μｇスケールで調製した。手短に言えば、最終濃度総ヒストン≧１ｍｇ／ｍＬの変性バッファ（５０ｍＭトリス−ＨＣｌ ｐＨ８、６．３Ｍグアニジン−ＨＣｌ、１０ｍＭ ２−メルカプトエタノール、４ｍＭ ＥＤＴＡ）中において、等モルのコアヒストンを混合し、４℃で３５００ＭＷＣＯ SnakeSkin透析チューブ中において、１６時間以上かけて５００体積の変性バッファ（２０ｍＭトリス−ＨＣｌ ｐＨ７．８、２Ｍ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、５ｍＭ ＤＴＴ）を２回交換して透析した。透析及びいずれかの沈殿材料を除去するため遠心分離に続いて、変性バッファ中に溶解された未精製オクタマーの可溶画分に対してゲルフィルタレーションクロマトグラフィー（Superdex200、１０／３００ＧＬ、GE Healthcare社製）を行った。純粋なオクタマーを含む画分を集め、Amicon Ultra-4遠心分離フィルタ（１０ｋＭＷＣＯ、Millipore社製）により（濃縮器の素通り画分をブランクとし、ε_{２８０ｎｍ}＝４４７００Ｍ^−１ｃｍ^−１で分光学的に測定した）最終濃度５〜１５μＭまで濃縮した。

ヌクレオソーム再構成に対するＤＮＡは、「６０１−Ｗｉｄｏｍ」ヌクレオソーム位置決め配列（例えば、非特許文献２５参照。）に基づく。一定の６塩基対のリンカーＤＮＡにより隣接され、それぞれがヒト及びマウスゲノムに存在しない２つの鎖状に連結された１１塩基対配列からなる（例えば、非特許文献２５参照。）２２塩基対のバーコード配列を、６０１配列の各端部に付加した。

等モルのヒストンオクタマー及びＤＮＡを最終濃度が１μＭになるように混合し、透析ボタン（Hampton Research社製）において１２〜１６時間かけて２Ｍ ＮａＣｌから２００ｍＭ ＮａＣｌまでの非直線濃度勾配を有する２０ｍＭトリス−ＨＣｌ ｐＨ７．５、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１０ｍＭ ２−メルカプトエタノーを含むバッファでこの溶液を透析することによりヌクレオソームを再構成した（例えば、非特許文献２７参照。）。透析の結果、２倍の保存バッファ（２０ｍＭ Ｎａカコジレート ｐＨ７．５、１０％ｖ／ｖグリセロール、１ｍＭ ＥＤＴＡ）、１Ｘ ＲＬプロテアーゼ阻害混合物（１ｍＭ ＰＭＳＦ、１ｍＭ ＡＢＥＳＦ、０．８μＭアプロチニン、２０μＭロイペプチン、１５μＭペプスタインＡ、４０μＭベスタチン、１５μＭ Ｅ−６４）、２００μＭ ＰＭＳＦで半合成ヌクレオソ−ムを１：１に希釈し、４℃で保存した。２Ｍ ＮａＣｌでＤＮＡを取り除き、熱化学的質量ルーラー低範囲ＤＮＡラダーで原位置において校正されたエチレンブロマイド染色アガロースゲルのデンシトメトリーを用いてＤＮＡを測定することによりヌクレオソームの濃度を３通り測定した。半合成ヌクレオソームは、長期保存バッファ（１０μＭ Ｎａカコジレート ｐＨ７．５、１００ｍＭ ＮａＣｌ、５０％グリセロール、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１Ｘ ＲＬプロテアーゼ阻害混合物、２００μＭ ＰＭＳＦ）で所望の濃度に希釈することにより調製し、−２０℃で保存した。

ＩＣｅＣｈＩＰ
ＩＣｅＣｈＩＰプロトコールは、天然ＣｈＩＰプロトコールに類似のプルダウンプロトコールである（例えば、非特許文献２８参照。）。プレート付着細胞（〜１０^７細胞／ＩＰ）を１０ｍＬのＰＢＳで２回洗浄し、３７℃で５分間５ｍＬのアキュターゼ（Millipore社製）で外し、２ｍＬの完全培地で急冷し、遠心分離（５００×ｇ、４℃で５分間）により回収した。氷冷バッファとともに氷上で全てのその後のステップを行った。細胞を、１０ｍＬＰＢＳで２回、５ｍＬのバッファＮ（１５ｍＭトリス ｐＨ７．５、１５ｍＭ ＮａＣｌ、６０ｍＭ ＫＣｌ、８．５％（ｗ／ｖ）ショ糖、５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、１ｍＭ ＣａＣｌ_２、１ｍＭ ＤＴＴ、２００μＭ ＰＭＳＦ、１Ｘ ＲＬプロテアーゼ阻害混合物）で２回洗浄した。２ＰＣＶ（詰め込まれた細胞体積）のバッファＮ内に細胞を再懸濁し、２ＰＣＶの２倍溶解バッファ（０．６％ＮＰ−４０置換物（Sigma社製）を追加したバッファＮ）を４℃で１０分間かけて添加することにより溶解した。遠心分離（５００×ｇ、４℃で５分間）により細胞核を回収し、６ＰＣＶのバッファＮ中に再懸濁した。細胞デブリを除去するために、遠心分離１３００×ｇ、バケットローターが揺り動くＳｏｒｖａｌｌ Ｌｅｇｅｎｄ ＸＴＲ、４℃で１２分間）された５０ｍＬ遠心管中の７．５ｍＬのショ糖クッション（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．９、３０％（ｗ／ｖ）ショ糖、１．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２）の表面上に再懸濁細胞核を載置した。殆どの細胞デブリは上層に留まったが、細胞核はショ糖クッションを通過して沈降し、遠心管の底に沈殿した。上澄みを処分し、２ＰＣＶのバッファＮ中に細胞核を再懸濁した。クロマチンの見かけ上の濃度を測定するために、２μＬの再懸濁細胞核を９８μＬの２Ｍ ＮａＣｌ中に３通り希釈し、Ｎａｎｏｄｒｏｐ（Thermo Scientific社製）及び使用されたクロマチンの１Ａ_２６０＝５０ｎｇ／μＬを想定する従来の因子により総核酸の２６０ｎｍの吸光度を測定した。これらの測定に基づいて、クロマチンの見かけ上の濃度をバッファＮにより１μｇ／μＬに調整した。血球計数器を用いて細胞核の量及び品質も評価した。

この段階で、半合成ヌクレオソームのラダーを天然ヌクレオソームのプール内にドープした。添加ラダーの量は、細胞に対する細胞核計数と平均ＤＮＡ含有量との積（細胞に対して２．５ゲノムコピー以下）に基づいて、プール中におけるゲノムコピーの評価量と比較した。

クロマチン結合因子の除去と同様に、細胞核溶解及び小球菌ヌクレアーゼ消化由来のデブリを除去するために、ヌクレオソームのプールにハイドロキシアパタイトクロマトグラフィー精製を行った（例えば、非特許文献２８参照。）。内部標準ラダーを有するフラグメント化クロマチンを１００μｇの総核酸分画に分け、２００μＬのＨＡＰバッファ１（３．４２ｍＭ Ｎａ_２ＨＰＯ_４及び１．５８ｍＭ ＮａＨ_２ＰＯ_４ 最終ｐＨ７．２、６００ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、２００μＭ ＰＭＳＦ）で再水和された６６ｍｇのハイドロキシアパタイト（ＨＡＰ）樹脂（Bio-Rad Macro-Prep（登録商標）セラミックハイドロキシアパタイトタイプＩ２０μｍ）と各分画を混合し、ローテータ上において４℃で１０分間保温し、その後、遠心濾過ユニット（Millipore Ultrafree（登録商標）ＭＣ−ＨＶ遠心濾過器０．４５μｍ）に適用した。カラム内のクロマチン結合樹脂を排水し、遠心分離（６００×ｇ、固定アングルローター内４℃で１分間）によって、２００μＬのＨＡＰバッファ１で４回、２００μＬのＨＡＰバッファ２（３．４２ｍＭ Ｎａ_２ＨＰＯ_４及び１．５８ｍＭ ＮａＨ_２ＰＯ_４ 最終ｐＨ７．２、１００ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、２００μＭ ＰＭＳＦ）で４回洗浄した。１００μＬのＨＡＰ溶離バッファ（３４２ｍＭ Ｎａ_２ＨＰＯ_４及び１５８ｍＭ ＮａＨ_２ＰＯ_４ 最終ｐＨ７．２、１００ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、２００μＭＰＭＳＦ）の洗浄を３回行い、ＨＡＰカラムからヌクレオソームを溶離した。ＨＡＰ精製クロマチンフラグメントの見かけ上の濃度を測定するために、４０μＬの２Ｍ ＮａＣｌ内に１０μＬのＨＡＰ溶離液を３通り希釈し、２６０ｎｍで測定した吸光度を平均化し、調整した（１Ａ_２６０＝クロマチン５０ｎｇ／μＬ）。ＣｈＩＰバッファ（２５ｍＭトリス ｐＨ７．５、５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、１００ｍＭ ＫＣｌ、１０％（ｖ／ｖ）グリセロール、０．１％（ｖ／ｖ）ＮＰ−４０置換物）でクロマチンの見かけ上の濃度を２０μｇ／ｍＬに調整した。

１０μｇのクロマチン及び１５μＬのＡＭ３９１５９抗体でＨ３Ｋ４ｍｅ３ＣｈＩＰを行い、１μｇのクロマチン及び１５μＬのＡＭ６１２７７抗体及びＡＭ６１２９９抗体（Active Motif社製）でＨ３及びＨ４ＣｈＩＰをそれぞれ行った。各ＩＰ用の初期クロマチンの１０％はＣｈＩＰインプットとして作用することを除外した。各ＩＰ実験は、各洗浄後マグネティックラック上での１分間の回収とともに１ｍＬのＣｈＩＰバッファ１で２回洗浄した５０μＬの蛋白質Ａダイナビーズ（Invitrogen社製）を用いた。樹脂を調製するには、蛋白質Ａダイナビーズに１５μＬの抗体及び８５μＬのＣｈＩＰバッファ１を添加し、ローテータ上において室温で１０分間保温し、１ｍＬのＣｈＩＰバッファ１で２回洗浄した。５００μＬのＣｈＩＰバッファ１内のクロマチン（特に示されない限り１０μｇ）をマグネティックビーズに添加し、ローテータ上において室温で１５分間保温した。１ｍＬのＣｈＩＰバッファ２吸光度を平均化し、調整した（１Ａ_２６０＝クロマチン５０ｎｇ／μＬ）。ＣｈＩＰバッファ２（ｍＭトリス ｐＨ７．５、５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、３００ｍＭ ＫＣｌ、１０％（ｖ／ｖ）グリセロール、０．１％（ｖ／ｖ）ＮＰ−４０置換物）で３回、ＣｈＩＰバッファ３（１０ｍＭトリス ｐＨ７．５、２５０ｍＭ ＬｉＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、０．５％デオキシコール酸ナトリウム、０．５％（ｖ／ｖ）ＮＰ−４０置換物）で２回洗浄した。各洗浄は１０分間の回転保温及び４℃のマグネティックラック上における１分間の回収を含む。洗浄の間に少なくとも２回のチューブ交換により非特異的なバックグラウンドを低減した。次いで、１ｍＬのＣｈＩＰバッファ１及び１ｍＬのＴＥバッファでビーズを濯ぎ、その後、２００μＬのＣｈＩＰ溶離バッファステップ（５０ｍＭトリス ｐＨ７．５、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１％ｗ／ｖ ＳＤＳ）を２回行った。各溶離ステップは９００ｒｐｍのサーモシェーカー（Eppendorf社製）内における６５℃で１０分間の保温を含む。溶離液を合わせ、ＣｈＩＰ溶離バッファをインプットに添加してＣｈＩＰ溶離液の体積を一致させた。２００ｍＭ ＮａＣｌにバッファを調整した後、１００ｎｇの小球菌ヌクレアーゼＡを混合物に添加し、８００ｒｐｍのサーモシェーカー内において６５℃で４５分間保温し、１０ｍＭ ＥＤＴＡで終了させた。次に、８００ｒｐｍのサーモシェーカー内において４２℃で２時間２０μｇのプロテアーゼＫ（Roche社製）により蛋白質消化を行った。６体積のＰＢバッファを消化物に添加し、この溶液をQiaquickカラム（Qiagen社製）に加え、次いで、７５０μＬのＰＥバッファでの洗浄（１７９００×ｇ、３０秒間）を３回行い、さらなる１分間の回転で残留エタノールを除去し、ＤＮＡを取り出し、精製した。５０℃で２５μＬのＴＥバッファを加え、遠心分離（１７９００×ｇ、１分間）を行うことによりＤＮＡを溶離した。

Illuminaライブラリ調製
ライブラリ調製に関しては、ＩＰ又はインプットから単離された１０ｎｇのＤＮＡを用いた。ＤＮＡ総量が１０ｎｇ未満の場合、全ての入手可能なＤＮＡをライブラリ調製に用いた。End-it（登録商標）End-Repairキット（Epicentre社製）（７μＬの１０倍End-itバッファ、７μＬの２．５ｍＭ ｄＮＴＰ混合物、７μＬの１０ｍＭ ＡＴＰ、１．４μＬのENd-Repair酵素混合物及び４７．６μＬのＤＮＡ溶解ＴＥバッファ）を用い、室温で４５分間保温することにより、ＤＮＡの末端を平滑末端化した。１２６μＬ（１．８体積）のAmpure ＸＰビーズ（Beckman Coulter社製）でＤＮＡを精製した。１０回上下にピペッティングしてENd-Repair混合物とビーズを混合し、室温で５分間保温した。磁石によりチューブの側面上でマグネティックビーズを回収し、磁石上において２５０μＬの８０％ＥｔＯＨで２回の３０秒間洗浄を行った。マグネティックラックからチューブを除去し、３４μＬのＴＥバッファをビーズに添加し、１０回上下にピペッティングした。マグネティックビーズは、Ａテーリングの間に溶離液から除去することなく、チューブ内に留めた。ＤＮＡの３’末端への単一のアデノシンの付加は、末端修復ＤＮＡに５μＬのＮＥＢバッファ２、１０μＬの１ｍＭ ｄＡＴＰ、１μＬのクレノーフラグメント（３’→５’ｅｘｏ−、ＮＥＢ）を添加し、３７℃で３０分間保温することにより達成した。ＤＮＡ精製に関しては、１１０μＬ（２．２体積）のＳＰＲＩバッファ（２０％ＰＥＧ６０００、２．５Ｍ ＮａＣｌ）を反応物に添加し、１０回上下にピペッティングし、室温で５分間保温した。磁石によりチューブの側面上でマグネティックビーズを回収し、磁石上において２００μＬの８０％ＥｔＯＨで２回の３０秒間洗浄を行った。マグネティックラックからチューブを取り外し、１３μＬのＴＥバッファをビーズに添加し、ピペットで混合した。マグネティックビーズは、アダプターライゲーションの間に溶離液から除去することなく、チューブ内に留めた。２倍のQuickＤＮＡライゲースバッファ、２μＬの２μＭアダプター二本鎖、１μＬのQuickＤＮＡライゲース（ＮＥＢ）を調製し、１３μＬのＡテーリングされたＤＮＡに添加し、アダプターへのライゲーションを行った。反応液を室温で１５分間保温した。ＤＮＡを精製するために、２１μＬ（０．７体積）のＳＰＲＩバッファを反応物に添加し、１０回上下にピペッティングし、室温で５分間保温した。磁石によりマグネティックビーズを回収し、２００μＬの８０％ＥｔＯＨで２回の３０秒間洗浄を行い、４６μＬのＴＥバッファで溶離した。新しいシリコンチューブに上澄みを移した。

定量ＰＣＲは、ＤＮＡライブラリを増幅するための最小ＰＣＲサイクル数を評価するために用いられる。７．１５μＬのＨ_２Ｏ、１μＬの１０倍AccuPrimeＰＣＲバッファＩＩ、最終的には０．５倍希釈になる０．２５μＬの２０倍EvaGreen（登録商標）染料（Biotum社製）、１μＬのＤＮＡライブラリ、０．２μＬの２５μＭ ＭＰ＿ＰＣＲプライマー１、０．２μＬの２５μＭ ＭＰ＿ＰＣＲプライマー２及び０．２μＬのAccuPrimeタグＤＮＡポリメラーゼ（Invitrogen社製、＃１２３３９−０１６）。Bio-Rad ＣＦＸ３８４ ｑＰＣＲ装置プログラムは、１−９５℃５分間、２−９５℃８０秒間、３−６５℃９０秒間−端部で読み取り、及び、４−２４回ステップ２に戻るように設定された。読み取りに基づいて、ライブラリを増幅するサイクル数をＣ_ｔ＋３サイクルに設定した。観察されるＣ_ｔ値が７サイクル未満の場合、テンプレートを１０倍に希釈し、手順を繰り返した。

４０μＬのＤＮＡライブラリ、５μＬの１０倍AccuPrimeＰＣＲバッファＩＩ、１μＬの２５μＭ ＭＰ＿ＰＣＲプライマー１、１μＬの２５μＭ ＭＰ＿ＰＣＲプライマー２インデックス、１μＬのAccuPrimeタグＤＮＡポリメラーゼ及び２μＬのＨ_２Ｏを混合し、Ｃ１０００（Bio-Rad社製）内で熱サイクルすることによりＤＮＡライブラリを増幅した。装置は、１−９５℃５分間、２−９５℃８０秒間、３−６５℃９０秒間、及び、４−ｑＰＣＲ（Ｃ_ｔ＋３サイクル）で決定されたサイクル数回ステップ２に戻るように設定された。９０μＬ（１．８体積）のAgencourt Ampure ＸＰビーズにより増幅されたＤＮＡを精製した。１０回上下にピペッティングによりビーズをＰＣＲ混合物と混合し、室温で５分間保温した。磁石によりチューブの側面上でマグネティックビーズを回収し、磁石上において２５０μＬの８０％ＥｔＯＨで２回の３０秒間洗浄を行った。マグネティックラックからチューブを除去し、２５μＬのＴＥバッファをビーズに添加し、１０回上下にピペッティングした。チューブの側面上でマグネティックビーズを回収し、新しいシリコンチューブに上澄みを移した。増幅されたＤＮＡのサイズ分布及び濃度は、Agilent Technologies社の２１００バイオアナライザーにより評価された。

シークエンシング及びデータ分析
シカゴ大学ゲノム機能解析コア施設によるIllumina HiSeq 2500用の標準Illuminaプロトコールを用いてクラスター作成及びシークエンシングを行った。Galaxyによりデータ分析を行った（例えば、非特許文献３７〜３９参照。）。FastQフォーマットの未加工読み取りは、まずFastQ Groomerを施した。読み取りは、起源の有機体に依存して、Bowtie2（例えば、非特許文献４０参照。）（高感度プリセットオプション、エンドツーエンドアライメント）により、末端で鎖状に連結されたバーコードの配列を有する（各バーコードがそれ自身のエントリーを有する）マウス（ＭＭ１０）の参照ゲノムに対応づけられた。ＳＡＭツール（例えば、非特許文献４１参照。）を用いて得られたＳＡＭファイルをフィルター処理した。このデータ分析経路によって、対応付けされない、対になっていない（距離＞１０００塩基対）及び間違って対にされた読み取りを除去した。繰り返し可能なゲノム配列を隠すとともに低品質読み取り及び混入物由来のノイズを除去するために、対応付け品質が２０未満の読み取りを除去した。信号の乱れを避け、ポアソンサンプリング統計を曲解しないために、対にされた読み取りを１つのエントリーに組合わせた（重複フラグメントを平板化し、隙間を埋めた）。オリゴヌクレオソーム結合活性バイアスを避けるため、別な方法で明らかに述べられた場合を除いて、２２０塩基対より長い読み取りを削除した。ゲノム区間ベッドグラフを作成するために、ＢＥＤツール（例えば、非特許文献４２参照。）を用いた。

高い正確性を獲得するために、深さが１０００〜１００読み取りであり、インプットの平均深さが少なくとも２０となる範囲のＩＰ区間を達成することを目指した。しかしながら、正確性の限定要因であるため、インプットシークエンシングが深ければ深いほど良好である。バーコードＩＰ効率を計算するために、インプット上のＩＰにおける各バーコードの全配列上の積分された区間の比率を計算した。

ｎはバーコード構成の長さであり、これが２０３塩基対の場合、ＩＰはＩＰに対する積分された計数であり、インプットはインプットに対する積分された計数である。

正確性を向上させるために、複数のバーコードに対するバーコードＩＰ効率値を平均化した。ヒストン修飾密度（ＨＭＤ）を計算するために、ＩＰ及びインプットに対するゲノム区間情報に以下の数式を適用した。

ＨＭＤ信頼区間９５％を評価するために、以下の数式を適用した。

ここで、効率の標準偏差は無視してもよく、ＩＰ及びインプットにおける読み取りのサンプリングはポアソンサンプリング統計に従う。全ゲノムにおける総ＨＭＤ含有量（修飾を有する全てのゲノム遺伝子座における全てのヌクレオソームの百分率）を計算するために、ＨＭＤ信号を積分し、ゲノム区間の総塩基対数又は報告された総ゲノムサイズで割った。

＜実施例２＞
ＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑの確認：再現性及び頑健性
複製によりＩＣｅＣｈＩＰの濃度を試験するために、ｍＥＳＣにおけるＨ３Ｋ４ｍｅ３ ＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑを繰り返し、ＨＭＤの痕跡の強固な結合を観測した。相応して、ピークでの各生物学的複製の平均ＨＭＤ値は高い相関があり（Ｒ^２＝０．９５）、分布は評価誤差内である（図６）。

異なる実験的取扱条件の結果としてＩＰ濃縮の確認は、従来のＣｈＩＰの再現性の主要な複雑因子である（例えば、非特許文献１７参照。）。各実験のアウトプット値を定義された内部標準に繋ぐことにより、ＩＣｅＣｈＩＰにより測定されたＨＭＤがより実験的変異に寛容となる。見かけ上のＣｈＩＰ濃縮が樹脂上のエピトープ結合部位の数に対するインプットクロマチンの量の関数であるため、樹脂−固定抗体に対してインプットの比率を操作することにより、実験的取扱相異をシュミレートしようと我々は努めた。直線的実行状態においては、ＩＣｅＣｈＩＰ−ｑＰＣＲによってＨ３Ｋ４ｍｅ３ ＨＭＤを試験し、ＧＡＰＤＨ遺伝子座でＨ３Ｋ４ｍｅ３の相対的に不均一なＩＰ濃縮に起因してインプットの量と無関係であることを見出した。これらの実験はＨＭＤが典型的なＣｈＩＰインプット範囲を超えて一貫していることを確認したが、異なる濃縮を引き起こす実験的条件を我々は探し求めた。所定量のインプットに関しては、免疫沈降において用いられる樹脂−固定抗体の量の変化が６倍超のＩＰ効率の範囲を生じ、Ｄｎｍｔ３Ａ及びＨｏｘａ９遺伝子座に対するこれらの実験から計算されたＨ３Ｋ４ｍｅ３密度は実験誤差内で同一であった（図６Ｂ）。同様に、ＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑ間の結合及び洗浄条件のラジカ変更は非常に類似なＨＭＤ測定を提供する（図７Ａ）。最終的に、低細胞数プロトコールの限界近くでＩＣｅＣｈＩＰの性能を試験するためにインプット量を定量し、４００細胞以下に相当するインプットに安定的に低減することを見出した（図８）。まとめると、これらのデータは、ＩＰ濃縮が実験的条件の関数として変化してもよく、ＨＭＤが安定的であり、高く再現できることを示している。

＜実施例３＞
複数ラダーＩＣｅＣｈＩＰが原位置のＩＰ特異性を測定する
見かけ上のＣｈＩＰ信号は、関連するエピトープ（例えば他のリジンメチル標識）のオンターゲット捕捉、オフターゲット捕捉、及び、抗体樹脂に対するヌクレオソームの非特異的接着の混合物である。いくつかの異なるタイプの内部標準により実施されたＩＣｅＣｈＩＰは、これらのＣｈＩＰ信号の可能な３つの源を全て測定し、最初にＣｈＩＰの適正な信号及びエラーを批判的に処理できる。３タイプの内部標準、Ｈ３Ｋ４ｍｅ３、Ｈ３Ｋ３６ｍｅ３及びＩＣｅＣｈＩＰ−ｑＰＣＲにより区別可能なＤＮＡ種（各タイプの２つのヌクレオソーム）上に再構成された未修飾ヌクレオソームでドープされたｍＥＳＣヌクレオソームを我々は不審に思った。Ｈ３Ｋ３６ｍｅ３は異なる配列内に埋め込まれたトリメチルリジンを有するように選択され、Ｈ３Ｋ３６ｍｅ３に対するこの抗体の質素なオフターゲット親和性はペプチドアレイ上で予め観測されている（例えば、非特許文献７参照。）。これらの内部標準の精査によって、未修飾ヌクレオソームバックグラウンド（１．９±０．２）を超えてＨ３Ｋ３６ｍｅ３のかろうじて検出可能な濃縮（２．８±０．４）が観測された。頑健なオンターゲット信号（８１±１０）と比較すると、この実験では３０倍の見かけ上の特異性がある。このように、Ｈ３Ｋ３６ｍｅ３結合ヌクレオソームに対する抗体のオフターゲット結合は見かけ上のＨ３Ｋ４ｍｅ３密度に対して軽微な誘因である。

より包括的な一組の内部標準を確立するために、最も研究されたヒストンＨ３内のジメチルリジン及びトリメチルリジン（例えば、非特許文献４３参照。）の多くを含むいくつかの修飾ヒストンを構成し、非常に大きな一組のバーコード化ＤＮＡテンプレートを設計した。具体的には、第１世代に対して小球菌ヌクレアーゼ耐性を推定的に付加的な態様を備える第２世代の有望なＤＮＡテンプレート（ｎ＝１００）を設計した。ｍＥＳＣ細胞核の小球菌ヌクレアーゼ消化の前後のいずれかに添加する２つの並列ＩＣｅＣｈＩＰ実験において、Ｈ３Ｋ４ｍｅ３結合ヌクレオソームに再構成された際のこれらのテンプレートの全てを試験した。この厳密な試験（以前の確認の全ての要素を本質的に同時に組合わせる）を通過した７２個の特有のバーコード化テンプレートをそれぞれ８個づつ９組に分けた。未修飾、Ｈ３Ｋ４ｍｅ３、Ｈ３Ｋ９ｍｅ３、Ｈ３Ｋ２７ｍｅ３、Ｈ３Ｋ３６ｍｅ３及びＨ３Ｋ７９ｍｅ２ヌクレオソームの６つの別々のラダーを再構成し、単一の不十分なｍＥＳＣ細胞核に当量の各ラダーをドープした。この組合わせ混合物に対して小球菌ヌクレアーゼ消化を行い、前記のようにハイドロキシアパタイト精製を行い、次いで、これらの標識のそれぞれに用いられる最もよく確認された抗体によって、不十分な大きなモノヌクレオソームを精査した。

各ＩＣｅＣｈＩＰのシークエンシングは、オフターゲット内部標準捕捉に対するオンターゲット内部標準捕捉の比較によって、抗体特異性の原位置における直接評価を提供した（図９Ａ）。満足させるほどに、Ｈ３Ｋ４ｍｅ３抗体は、これらの他のヌクレオソーム内部標準により誘発されると、高い特異性を提供した（Ｈ３Ｋ９ｍｅ３がオンターゲット捕捉の３％に相当する）。Ｈ３Ｋ９ｍｅ３及びＨ３Ｋ２７ｍｅ３抗体は、「ＡＲＫＳ」モチーフ内にある両標識として期待されるため、相互確認（それぞれオンターゲット信号の１０％及び２６％を示す）によっても全く特異的ではなかった。驚いたことには、この実験においては、最も幅広く用いられたＨ３Ｋ３６ｍｅ３及びＨ３Ｋ７９ｍｅ２に対する抗体は、全く乱雑であった（いくつかの独立したＥＮＣＯＤＥ確認を通過したにもかかわらず、最高で約２〜３倍特異的）。抗体が認識するオフターゲットヌクレオソーム標識のほとんどより遙かに少ない数であるため、質素で選択的な見かけはこれら２つの標識に対して特に問題がある。特に、同じ細胞ライン由来の質量分光測定は、Ｈ３Ｋ３６ｍｅ３及びＨ３Ｋ７９ｍｅ２が全てのＨ３の２．５％及び０．５％を占めることを伝えているが、Ｈ３Ｋ９ｍｅ３及びＨ２Ｋ２７ｍｅ３は数の大きさの順番である（例えば、非特許文献４４参照。）。このように、質素な倍数の特異性は反対方向の倍数の相異で十二分に相殺される。

オフターゲット捕捉は、５つの異なる抗体に対するヌクレオソームエピトープの数に対して直線的である（図９Ｂ〜Ｄ）。抗体特異性は変化してもよく、所定の抗体に対するバックグラウンドは決定的であり、インプットに存在するオフターゲット種の数に比例している。このように、数量として内部標準を適用するアプローチは、内部標準が直線的であり、バックグラウンド結合が質素で測定可能である場合に有効である。所定の標識に対する具体的なＨＭＤ信号は、一組の線形方程式を解くことにより修正される。これらの標識において濃縮されることを以前に伝えられた遺伝子座でのＨ３Ｋ３６ｍｅ３及びＨ３Ｋ７９ｍｅ２に対するより高い見かけ上のＨＭＤ値にもかかわらず、これらの抗体による天然のＣｈＩＰ測定と同様にＨＭＤ測定は、我々の実験における信号よりも多くのノイズを示す（図９Ａ）。逆に、これら３つの標識の全ゲノムの量を定量的に比較できるように、Ｈ３Ｋ４ｍｅ３、Ｈ３Ｋ９ｍｅ３及びＨ３Ｋ２７ｍｅ３に対するＨＭＤ値は、最小情報及び修正可能なオフターゲット結合を示す。

二倍体細胞由来のＨ３Ｋ４ｍｅ３、Ｈ３Ｋ９ｍｅ３及びＨ３Ｋ２７ｍｅ３ ＩＣｅＣｈＩＰ−ｓｅｑから実際のヒストン量の正確な測定に関しては、２つの標識由来のＨＭＤの総数が１００％を超える場合、標識のヌクレオソームの共同占有について統計的に議論する。この解釈は、非対称的及び対照的修飾ヌクレオソームとそれぞれ表現される、ヌクレオソーム内の所定の標識の２つのコピーのうちの１つと同様に、２つの異なる標識に適用する（例えば、非特許文献４４参照。）。ｍＥＳＣにおける全ての遺伝子に対するＴＳＳ局在化Ｈ３Ｋ４ｍｅ３ ＨＭＤの最高から最低へのランク順に配置されたＨ３Ｋ４ｍｅ３及びＨ３Ｋ２７ｍｅ３修飾密度に対するヒートマップのプロッティングは、これら２つの修飾の異なるパターンを有するいくつかの広いクラスの遺伝子を明らかにする。驚いたことには、代謝性／ハウスキーピング遺伝子により例示されているように、高く発現される遺伝子でＨ３Ｋ２７ｍｅ３のレベルが控えめに低減されるのに、この標識に対する最高のＨＭＤは初期の発生遺伝子の部分集合で存在する。実際に、神経性及び免疫系プロセス（５８及び６２％ Ｈ３Ｋ２７ｍｅ３）のようなｍＥＳＣにおいて不活性なクラス由来の他の抑制された後期の発生遺伝子は、抑制された細胞の分化遺伝子（７０％Ｈ３Ｋ２７ｍｅ３）に比べてＨ３Ｋ２７ｍｅ３においてほとんど濃縮されない（それぞれｐ＜１０５６、１０１９）。Drosophila S2細胞における発生遺伝子も最高のＨ３Ｋ２７ｍｅ３平均ＨＭＤを有する。

Ｈ３Ｋ４ｍｅ３標識は、いくつかの公知な機構により転写開始を促進する（例えば、非特許文献２７、２９及び４５〜４６参照。）。相対的ＣｈＩＰ−ｓｅｑピーク高さが遺伝子発現に相関される場合のＨＭＤと等しいため、先験的なＨＭＤは遺伝子発現に対する相関の試験にとっては情報価値の無いものと解釈されているかもしれない。また、Ｈ３Ｋ４ｍｅ３が生物学的に有意義なスケールで試験される場合、蓄えられたｍＲＮＡ数は、対応するＴＳＳでの見かけ上のＨＭＤの平均に依存した興味深いＳ字形状を示す。Ｈ３Ｋ４ｍｅ３密度の正確な測定を前提とすると、この曲線（５０％ＨＭＤ以下）の変曲点は、両対立遺伝子上の平均して非対称的又は対称的に修飾されたヌクレオソーム間の統計的境界にほぼ存在する。転写変異を低減するために近年示唆されているように（例えば、非特許文献４８参照。）、少ないＨＭＤ群は、ＴＳＳを超えたＨ３Ｋ４ｍｅ３の広い空間分布を単に示しているだけなのであろうか？綿密な検査は、平均ピークＨＭＤ値がマウス及びヒト細胞におけるピーク範囲に対して明確に相関があるのに対して、この分布は二峰性であり、より大きな修飾ドメインは対称的修飾に矛盾することなくより高い平均ＨＭＤ値を有するという、完全に正反対な結果を示している。

＜実施例４＞
診断ツールとしてのＩＣｅ−ＣｈＩＰ
ここに記載されたＩＣｅ−ＣｈＩＰ材料及び方法は、哺乳類試料における特定遺伝子座でのヒストンＰＴＭのレベルを検出することを目的とするアッセイへの使用を想定されている。本発明の材料及び方法は、癌を含むヒストン翻訳後修飾における変化に関するいずれかの疾病に対する診断、予後、分類、疾病リスクの予測、再発の検出、治療の選択、及び、治療効率の評価に用いられる。

例えば、２つの重要な遺伝子ＨＯＸＡ９及びＭＥＩＳ１のＨ３Ｋ７９ｍｅ２駆動性発現は、多様な遺伝子突然変異に起因する急性骨髄性白血病を高確率で発症する共通のチェックポイントである（例えば、非特許文献４９及び５０参照。）。本発明は、患者の血液試料からこれらの遺伝子座のＨ３Ｋ７９ｍｅ２ ＨＭＤを測定し、患者の細胞がこのチェックポイントを通過するか否か、及び、急性骨髄性白血病が診断されるか否かを決定するために用いられる。患者の血液試料におけるこれらの遺伝子座のＨ３Ｋ７９ｍｅ２ ＨＭＤを、正常試料由来のこれらの遺伝子座のＨ３Ｋ７９ｍｅ２ ＨＭＤと比較し、コントロールに対する患者の試料におけるＨＭＤの増加により、急性骨髄性白血病の高リスクが示される。

他の実施形態においては、疾病に対する治療を受けている哺乳類において、ここに記載されたヒストン翻訳後修飾を経過監視することにより、抗癌治療が評価される。例えば、急性骨髄性白血病治療のためのＤＯＴ１Ｌ阻害剤（例えば、非特許文献２３参照。）のようなＨ３Ｋ７９ｍｅ２−メチルトランスフェラーゼ阻害剤の投薬の前に、ＩＣｅ−ＣｈＩＰを用いて、ＨＯＸＡ９及びＭＥＩＳ１遺伝子座のＨ３Ｋ７９ｍｅ２の翻訳後修飾状態を測定できる。次いで、上記のように、治療前試料、コントロール試料又は予め確立された閾値とＨ３Ｋ７９ｍｅ２とを比較することにより、阻害剤の効果が測定される。ＩＣｅ−ＣｈＩＰは多くの試料にわたって分析を標準化するため、治療前及び治療後又は健康及び不健康の試料間比較により生物学的に相対的な情報が得られ、この比較は薬剤開発の経過を含む患者の治療効果を評価する診断に有用である。

さらに、本発明の方法および材料は、特定の薬がヒストンに効果が無く、関連のヒストン翻訳後修飾を変更する薬の特異性を示すか否かの検出に用いてもよい。

Claims (22)

1. 細胞のクロマチン内のゲノム遺伝子座でコアヒストンの第１エピトープの密度を測定する方法であって、
   前記クロマチンから天然のヌクレオソームのライブラリを準備する工程と、
   ドープライブラリを作成するために前記ライブラリに標準分子を追加する工程と、
   前記第１エピトープを含む天然のヌクレオソーム及び標準分子の量を捕捉するために前記ドープライブラリに第１親和性試薬を追加する工程と、
   前記第１エピトープを含む捕捉された天然のヌクレオソームに関する所望のヌクレオチド配列の量と、前記ドープライブラリからのインプット量における天然のヌクレオソームに関する所望のヌクレオチド配列の量とを比較することによって前記第１エピトープに対する相対的ゲノム数を測定する工程と、
   捕捉された標準分子に関するバーコード配列の量と、前記ドープライブラリからのインプット量における前記標準分子に関する所望のヌクレオチド配列の量とを比較することによって前記第１エピトープに対する標準分子捕捉効率を測定する工程と、
   前記標準分子捕捉効率に対する前記相対的ゲノム数を比較することによって前記ゲノム遺伝子座で前記コアヒストンの前記第１エピトープの密度を測定する工程とを備え、
   前記ライブラリは、前記第１エピトープを有する前記コアヒストン及び前記ゲノム遺伝子座を示すヌクレオソームヌクレオチド配列を含むヌクレオソームを有し、
   前記標準分子は、（ｉ）前記第１エピトープを有する標準ヒストン又は標準ヒストンフラグメント及び（ｉｉ）バーコード分子にリンクする標準ヌクレオチド配列を有する標準分子を含む再構成ヌクレオソームを含み、
   前記標準ヒストン又は標準ヒストンフラグメント及び前記標準ヌクレオチド配列は、安定的な蛋白質−ＤＮＡ結合を形成することを特徴とする方法。
2. 前記標準分子捕捉効率の測定は、前記再構成ヌクレオソームのインプット量に対する前記バーコード分子の捕捉量の比率の比較を含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。
3. 前記相対的ゲノム数の測定は、天然のヌクレオソームのヌクレオチド配列のインプット量に対する天然のヌクレオソームのヌクレオチド配列の捕捉量の比率の比較を含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。
4. 前記第１親和性試薬は前記第１エピトープに対する抗体であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
5. 複数の標準分子は前記ライブラリに追加され、
   前記標準分子のそれぞれは、（ｉ）前記第１エピトープを有する前記標準ヒストンと、（ｉｉ）前記バーコード分子にリンクする前記標準ヌクレオチド配列を有する前記標準分子とを備える再構成ヌクレオソームを含み、
   前記バーコード分子は、前記ライブラリに追加された前記標準分子の濃度を示す濃度パラメータをコード化し、
   少なくとも２つの異なる濃度を有する標準分子が前記ライブラリに追加されることを特徴とする請求項１に記載の方法。
6. 前記複数の標準分子は、（ｉ）１つ以上のオフターゲットのエピトープと、（ｉｉ）オフターゲットのエピトープの同一性及び前記オフターゲットのエピトープを示す濃度パラメータをコード化する標準分子バーコードとを含む再構成ヌクレオソームを有する標準分子をさらに含むことを特徴とする請求項５に記載の方法。
7. オフターゲットのエピトープに対する１つ以上の捕捉効率に基づいて、前記第１親和性試薬に対するオフターゲット捕捉の特異性を測定する工程と、
   前記オフターゲット捕捉の特異性に基づいて、前記ゲノム遺伝子座の前記コアヒストンの前記第１エピトープの密度を修正する工程とをさらに備えることを特徴とする請求項５に記載の方法。
8. 前記第１エピトープは翻訳後修飾又は蛋白質のアイソフォームであることを特徴とする請求項１に記載の方法。
9. 前記バーコード配列は前記細胞のゲノム内に存在しない配列であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
10. 前記ヌクレオソームヌクレオチド配列及び前記標準ヌクレオチド配列の少なくとも１つの数は、ＰＣＲ、ｑＰＣＲ、ｄｄＰＣＲ、次世代シークエンシング、ハイブリダイゼーション、オートラジオグラフィ、蛍光ラベリング、光学密度及び、及び、インターカレーター性蛍光プローブの使用からなる一群から選択された方法により測定されることを特徴とする請求項１に記載の方法。
11. 前記コアヒストンの前記第１エピトープは、セリン及びアラニンのＮ−アセチル化；セリン、スレオニン及びチロシンのリン酸化；リジンのＮ−クロトニル化、Ｎ−アセチル化；リジンのＮ６−メチル化、Ｎ６，Ｎ６−ジメチル化、Ｎ６，Ｎ６，Ｎ６−トリメチル化；アルギニンのオメガ−Ｎ−メチル化、対称性ジメチル化、非対称性ジメチル化；アルギニンのシトルリン化；リジンのユビキチン化；リジンのＳＵＭＯ化；セリン及びスレオニンのＯ−メチル化；並びに、アルギニン、アスパラギン酸及びグルタミン酸のＡＤＰ−リボース化からなる一群から選択された少なくとも１つの翻訳後アミノ酸修飾を含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。
12. 前記標準分子は、二本鎖ポリヌクレオチドであることを特徴とする請求項１に記載の方法。
13. 前記二本鎖ポリヌクレオチドは、配列ＩＤ Ｎｏ．１−１１５からなる一群から選択されたヌクレオチド配列を有することを特徴とする請求項１２に記載の方法。
14. 前記バーコード分子は、ヌクレオチドバーコード配列分子、ロックド核酸配列及びＤＮＡ配列からなる一群から選択された分子を含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。
15. 前記細胞は患者由来の細胞であり、
    所望の遺伝子座の前記第１エピトープの量は、腎細胞癌、神経膠腫、神経膠肉腫、悪性星状細胞腫、骨芽細胞腫、肺癌、小細胞性肺癌、子宮頸癌、大腸癌、直腸癌、脊索腫、咽頭癌、カポジ肉腫、リンパ管肉腫、リンパ管内皮細胞肉腫、結腸直腸癌、子宮内膜癌、卵巣癌、乳癌、膵臓癌、前立腺癌、腎細胞癌、肝細胞癌、胆管癌、絨毛癌、精上皮腫、睾丸腫瘍、ウィルムス腫瘍、ユーイング癌、膀胱癌、血管肉腫、内皮肉腫、腺癌、汗腺癌、皮脂腺肉腫、乳頭肉腫、乳頭腺肉腫、嚢胞腺肉腫、気管支原性肺癌、髄様癌、マスト細胞腫、中皮腫、滑膜腫、黒色腫、平滑筋肉腫、横紋筋肉腫、神経芽細胞腫、網膜芽細胞腫、乏突起神経膠腫、聴神経腫瘍、血管芽細胞腫、髄膜腫、松果体腫、脳室上衣細胞腫、頭蓋咽頭腫、上皮癌、胚性癌腫細胞、扁平上皮癌、基底細胞癌、線維肉腫、粘液腫、粘液肉腫、神経膠腫、脂肪肉腫；ヘリコバクターピロリ、リステリア・モノサイトゲネス、シゲラ・フレックスネリ、アナプラズマ・ファゴサイトフィルム、クラミドフィラ、エプスタイン−バーウイルス、ヘルペス、ＨＩＶ、ビルハルツ住血吸虫に起因する感染症；肥満、糖尿病、心臓病；自閉症、脆弱Ｘ染色体症候群、ＡＴＲ−Ｘ症候群、アンジェルマン症候群、プラダ−ウィリ症候群、ベックウィズ−ヴィーデマン症候群、レット症候群、ルビンシュタイン−テイビ症候群、コフィン−ローリー症候群、免疫不全−セントロメア不安定性−顔貌異常症候群、α−サラセミア、白血病、ハンチントン病、精神分裂病、双極性障害、老化、痴呆、アルツハイマー病、パーキンソン病、コルネリア・デ・ランゲ症候群、歌舞伎メーキャップ症候群、シェーグレン症候群、尋常性白斑、進行性全身性硬化症、乾癬、原発性胆汁性肝硬変、クローン病及び潰瘍性大腸炎、橋本甲状腺炎、グレーブス病、炎症性腸疾患、アテローム性動脈硬化症、及び、心肥大からなる一群から選択された病気又は状態を示すことを特徴とする請求項１の方法。
16. 細胞のクロマチン内のゲノム遺伝子座でコアヒストンの第１エピトープの密度を測定する方法であって、
    前記クロマチンから天然のヌクレオソームのライブラリを準備する工程と、
    ドープライブラリを作成するために前記ライブラリに標準分子を追加する工程と、
    前記ドープライブラリ内の前記ゲノム遺伝子座で前記コアヒストンの量を測定する工程と、
    前記ドープライブラリ内の標準分子の量を測定する工程と、
    前記エピトープを含む天然のヌクレオソーム及び再構成ヌクレオソームの量を捕捉するために前記ドープライブラリに親和性試薬を追加する工程と、
    前記エピトープを含む前記捕捉標準分子の量及び前記ドープライブラリ内の前記ゲノム遺伝子座での前記コアヒストンの量に基づいて、ゲノム遺伝子座で前記第１エピトープに対する相対的ゲノム数を測定する工程と、
    捕捉再構成ヌクレオソームの量及び前記ドープライブラリ内の標準分子の量に基づいて、前記エピトープに対する標準分子捕捉効率を測定する工程と、
    前記コアヒストンに対する前記第１エピトープ数及び前記標準分子捕捉効率に基づいて、前記ゲノム遺伝子座で前記コアヒストンの前記第１エピトープの前記相対的ゲノム数を測定する工程とを備え、
    前記ライブラリは、前記コアヒストン及び基点のゲノム遺伝子座を示すヌクレオソームヌクレオチド配列をそれぞれ含むヌクレオソームを有し、
    前記標準分子は、（ｉ）前記第１エピトープを有する標準ヒストン又は標準ヒストンフラグメント及び（ｉｉ）バーコードを有する標準分子を含む再構成ヌクレオソームを含み、
    前記標準ヒストン又は標準ヒストンフラグメント及び前記標準分子は、安定的な蛋白質−ＤＮＡ結合を形成することを特徴とする方法。
17. 前記ドープライブラリ中のゲノム遺伝子座で前記コアヒストンの量を計測する工程は、
    前記ドープライブラリに第２親和性試薬を添加し、第２エピトープを含むヌクレオソームの量を取り出す工程と、
    前記第２エピトープを含む取り出されたヌクレオソームの量におけるヌクレオソームのヌクレオチド配列の量を測定する工程とを備え、
    前記第２エピトープは、前記コアヒストン上に存在する不変のエピトープであることを特徴とする請求項１６に記載の方法。
18. 前記ドープライブラリ中の標準分子の量の測定は、
    再構成されたヌクレオソームの量を取り出す工程と、
    前記第２エピトープを含む前記取り出された再構成ヌクレオソームの量における前記標準分子の量を測定する工程とを備え、
    前記再構成されたヌクレオソームは前記第２エピトープを含むことを特徴とする請求項１６に記載の方法。
19. 前記第１親和性試薬は前記第１エピトープに対する抗体であり、前記第２親和性試薬は前記第２エピトープに対する抗体であることを特徴とする請求項１８に記載の方法。
20. 配列ＩＤ Ｎｏ．１−１１５を含む配列からなる一群から選択されたヌクレオチド配列を有するヌクレオソームを含むことを特徴とする組成物。
21. 複数のエピトープを含む１つ以上の標準分子及びバーコードを含む標準分子を含むことを特徴とする請求項１に記載の方法を実施するキット。
22. 前記キットは、複数のエピトープのうちの少なくとも１つを認識する少なくとも１つの親和性試薬を含むことを特徴とする請求項２１に記載のキット。

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