JP2017195878A

JP2017195878A - 創傷の分類及び予後のための方法及びキット

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Publication number: JP2017195878A
Application number: JP2017081862A
Authority: JP
Inventors: ダルザッククレールデュガスト; Dugast Darzacq Claire; グザヴィエダルザック; Darzacq Xavier; メーテノワゼ; Noizet Maite; エミリーラグッテ; Lagoutte Emilie; クロリスユーグルースト; Roest Crollius Hugues; マルレーヌグラティニー; Gratigny Marlene; マリエルブシュバシェ; Bouschbacher Marielle
Original assignee: Centre National de la Recherche Scientifique CNRS; Universite Paris Diderot Paris 7; Ecole Normale Superieure; Vivatech Co
Current assignee: Centre National de la Recherche Scientifique CNRS; Universite Paris Diderot Paris 7; Ecole Normale Superieure; Vivatech Co
Priority date: 2012-03-30
Filing date: 2017-04-18
Publication date: 2017-11-02
Also published as: EP3421614A1; EP2831267A1; JP6211052B2; CN104540963A; WO2013144672A1; EP2831269A1; JP2015513898A; CA2868606A1; BR112014024129A2; US20150126447A1; WO2013144349A1; US20150087527A1; WO2013144348A1; CN104540963B; EP3421615A1

Abstract

【課題】哺乳動物の創傷の分類及び予後のための方法及びキットの提供。前記方法は、慢性又は非治癒の創傷のような病理学上の癒傷を特徴づけることができる分子サインを定義する。
【解決手段】哺乳動物からの創傷のサンプルにおいて、異なる分子マーカーをコードする遺伝子の発現のレベルを測定するステップを含む、非治癒又は慢性の創傷組織の診断又は予後の方法であって、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、特定の遺伝子のうちの少なくとも１つが発現の増加を示し、又は、少なくとも特定のｍｉＲＮＡが発現の減少を示し、又は、特定の遺伝子のうちの少なくとも１つが正常な発現を示し、又は、特定の遺伝子のうちの少なくとも１つが発現の減少を示し、又は、特定のｍｉＲＮＡのうちの少なくとも１つが発現の増加を示す方法。
【選択図】なし

Description

本発明は、特にヒトにおける、哺乳動物の創傷の分類及び予後のための方法及びキットに関する。この方法は、慢性又は非治癒の創傷のような病理学上の癒傷を特徴づけることができる分子サインを定義する。

自然の癒傷は、３つの連続的な段階；それぞれの段階は、特定の細胞活性によって特徴付けられる：炎症の段階、増殖の段階、及びリモデリングの段階、に分けられる。

炎症の段階と呼ばれる、最初の段階は、損傷の後数分で始まる。血管の破裂は、主にフィブリン及びフィブロネクチンから構成される血塊形成を引き起こす。血塊は部分的に損傷を満たし、損傷内へ炎症細胞が移動し得る。炎症細胞は、創傷を清拭するために動員される。血小板は、癒傷に関与する細胞（好中球及びマクロファージ、線維芽細胞及び内皮細胞のような炎症細胞）の動員を引き起こす、成長因子又はサイトカインのような、因子を分泌する。

第二の段階は、増殖の段階と呼ばれ、肉芽組織の発達に相当する。線維芽細胞は創傷エリアに移動し、増殖し、及び細胞外マトリクス（ＥＣＭ）タンパク質の分泌によって、新しい仮の細胞外マトリクスを形成する。その際、内皮細胞は、損傷の血管化又は血管新生を促進するために移動する。肉芽組織の内部で、線維芽細胞は活性化し、α−平滑筋アクチン（平滑筋細胞中にあるものと類似する）のそれらの発現のおかげで、収縮性の特性を呈する筋線維芽細胞に分化する。筋線維芽細胞は、創傷の収縮をもたらすとして、癒傷において重要な役割を有する。最終的に、角化細胞は、創傷の端から移動し、表皮を再構成するために、増殖し、及び分化する。

癒傷プロセスの最後の段階は、創傷が閉じた後に現れる。それは、肉芽組織のリモデリングに相当する。肉芽組織は再組織化され、正常な真皮が主にＩ型コラーゲンからなるように、ＩＩＩ型コラーゲンがＩ型コラーゲンに取って代わられる。この段階の間、過剰の筋線維芽細胞は、アポトーシスにより除去される。この癒傷の最後の段階は長い。損傷の後１年、瘢痕は再構築され；若干の赤色を帯び、より薄い。

しかしながら、このプロセスは複雑なだけではなく、脆弱でもあり；中断又は失敗に影響され、慢性又は非治癒の創傷の形成、又は異常な傷跡の形成がもたらされる。これに寄与するであろう要因は、疾患（糖尿病、静脈又は動脈の疾患のような）、年齢、感染、又は組織局在を含む。

慢性又は非治癒の創傷
慢性の創傷は、部分的に、十分な処置の方法の不足のため、世界的な健康問題である。２０１０年には、世界中の７百万以上の人々が、慢性の創傷に苦しみ、少なくとも１０％、１年で増加していると推測される。

慢性の創傷は、時折、非治癒の創傷である。慢性の創傷の共通の型は、これらに限定されないが、静脈下腿潰瘍、糖尿病性下腿潰瘍、褥瘡性潰瘍、動脈下腿潰瘍、これらが混在した病因（静脈及び動脈）、又はこれらと未知の病因を含む。正しく治癒されないとき慢性となる、急性の創傷も発見し得る。

非治癒の創傷又は慢性の創傷は、患者、医療関係者、及びヘルスケアシステムにとっての課題である。それらは、数百万の人々にとっての生活の質をかなり損ない、生産性の損失、及びヘルスケアにかかる金額の点で、社会に負担を与える。

癒傷は、組織の完全性、及び機能の回復に導く、機能的な経路である。慢性の創傷又は非治癒の創傷は、正常な修復のプロセスが妨害されるとき、発生する。癒傷についての生物学を理解することで、医師は、適切な処置の選択によって、癒傷を最適化できる。

慢性又は非治癒の創傷において、自然治癒のプロセスが変質し、それによって、治癒が長期化、不完全となり、時には創傷が閉じない。慢性の創傷は、いくつかの要因が正常な炎症及び増殖の段階の中断をもたらすとき、起こる。このように、創傷が閉じ、治癒される最良の処置を適合するための、非治癒又は慢性の創傷の診断にとっての、信頼性の高い方法が必要である。創傷のより良い治療、及び治療の期限の緩和も必要である。

いくつかの病理学上の疾患、又は特定の解剖学的局在において、早期の創傷の潜在的な兆候、発症の診断は、創傷の発達を妨げるのを助け得る。創傷がすでに発達した状態において、創傷の診断又は予後の知識は、患者が、治療からの最大の利益を受けることを可能にするだろう。このように、この創傷の処置は、創傷の初期段階において、もし正しく治癒されないリスクがあるなら、とりわけ、その創傷に適合する。

患者が慢性又は非治癒の創傷が発達しやすいかどうか、さらに、もし慢性の創傷が発達するなら、患者がどのように特定の治療に応じることになるかを知ることは有益である。このように、重要な目的は、早期及び改良された、処置の選択を提供するために、慢性又は非治癒の創傷のための診断又は予後の方法を見極めることである。

いくつか共通の臨床的／病理的要因は、創傷が「治癒」し得るか、若しくは「非治癒」であり得るか、又は急性の創傷が慢性になり得るかどうかを予め判断するのに役立ち得るが、創傷の種類を識別するための特定の臨床検査はない。Ｓｙｓｔａｇｅｎｉｘによって商品化されたＷｏｕｎｄｃｈｅｃｋｓｔａｔｕｓ（登録商標）は、プロテアーゼ活性を測定できるようにするものであるが、治癒できなかった他の慢性の創傷より早く、良好に治癒できた慢性の創傷を識別するのに十分なほど明確ではない。

例えば、創傷の臨床的観察のような現在の技術は、慢性又は非治癒の創傷の発達を予測するのに失敗し、患者を創傷の治癒の転帰で分類するのに不十分である。もし、慢性又は非治癒の創傷の発達のリスクにある患者が見極められなければ、好適な予防措置又は処置を、潜在的に優れた有効性のある対象となる計画で使用できない。

国際公開公報第２０１１／０３３２４９は、分子マーカー又は遺伝子に基づく創傷の分類及び予後のための方法及びキットを開示する。

しかしながら、創傷の行く末の早期の診断又は予後の方法が当該技術分野で必要とされたままである。特に、これらに限定されないが、静脈下腿潰瘍、糖尿病性下腿潰瘍、褥瘡性潰瘍、及び動脈下腿潰瘍、非治癒の急性の創傷のような、慢性又は非治癒の創傷の診断又は予後の感度が高い及び信頼性の高い方法が必要である。

それゆえ、創傷の転帰の診断又は予後の方法を提供することが本発明の目的である。

本発明の第１の態様において、非治癒又は慢性の創傷組織の診断又は予後の方法が提供され、前記方法は、哺乳動物からの創傷において、異なる分子マーカーをコードする遺伝子の発現のレベルを測定するステップを含み、前記遺伝子は以下のとおり定義される：
前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＰＯＵ２Ｆ２、ＡＭＩＧＯ２、ＣＣＬ１１、ＣＤＣ４５Ｌ、ＣＳＦ２、ＣＳＦ３、ＦＯＸＳ１、ＧＯＳ２、ＩＦ４４Ｌ、ＩＮＨＢＡ、ＫＰＲＰ、ＬＣＰ１、ＬＰＡＲ３、ＭＩＣＡＬ２、ＭＴ１Ｆ、ＭＴ１Ｍ、ＰＯＬＱ、ＲＲＭ２、ＳＥＲＰＩＮＡ９、ＳＯＸ９、ＳＴＣ１、ＴＦＩＰ２、及びＵＣＮ２のうちの少なくとも１つが発現の増加を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、少なくとも以下のｍｉＲＮＡ：
ＡＣ０８４３６８．１が発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＣＮＮ１、及びＫＲＴ１６のうちの少なくとも１つが正常な発現を示し、
又は、哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝：
ＡＣＴＣ１、ＡＤＡＭＴＳ７、ＣＦＢ、ＣＯＭＰ、ＥＣＭ２、ＥＤＩＬ３、ＥＦＨＤ１、ＦＯＬＲ１、ＩＴＧＡ１１、ＫＩＴ、ＬＢＨ、ＬＧＲ５、ＭＥＤ１２Ｌ、ＭＦＡＰ５、ＮＲ４Ａ３、ＯＭＤ、ＰＡＬＭ、ＰＨＡＣＴＲ３、ＰＩ１６、ＰＰＡＲＧ、ＰＴＨ１Ｒ、ＰＴＸ３、ＲＣＡＮ２、ＲＳＰＯ１、ＳＰＯＮ２、ＴＡＧＬＮ、ＴＭＥＭ３７、ＴＭＳＢ４Ｙ、ＴＸＮＩＰ、及びＷＦＤＣ１のうちの少なくとも１つが発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したときに、以下のｍｉＲＮＡ：
ＭＩＲ１４７Ｂ、及びＭＩＲ１１８１のうちの少なくとも１つが発現の増加を示す。

本発明の好ましい実施形態において、非治癒又は慢性の創傷組織の診断又は予後の方法も、哺乳動物からの創傷のサンプルにおいて、異なる分子マーカーをコードする遺伝子の発現のレベルを測定するステップを含み、前記遺伝子は以下のとおり定義される：
前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較するとき、以下の遺伝子：
ＡＣＴＣ１、ＡＤＡＭＴＳ７、ＣＯＭＰ、ＥＣＭ２、ＥＤＩＬ３、ＥＦＨＤ１、ＦＯＬＲ１、ＩＴＧＡ１１、ＬＢＨ、ＬＧＲ５、ＭＥＤ１２Ｌ、ＭＦＡＰ５、ＯＭＤ、ＰＡＬＭ、ＰＨＡＣＴＲ３、ＰＩ１６、ＰＴＨ１Ｒ、ＲＳＰＯ１、ＳＰＯＮ２、ＴＡＧＬＮ、ＴＭＥＭ３７、ＴＭＳＢ４Ｙ、ＴＸＮＩＰ、及びＷＦＤＣ１のうちの少なくとも１つが発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、少なくとも以下のｍｉＲＮＡ：
ＡＣ０８４３６８．１が発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＣＮＮ１、及びＫＲＴ１６のうちの少なくとも１つが正常な発現を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＣＣＬ１１、ＣＤＣ４５Ｌ、ＣＳＦ２、ＣＳＦ３、ＧＯＳ２、ＩＦ４４Ｌ、ＫＰＲＰ、ＬＣＰ１、ＬＰＡＲ３、ＭＴ１Ｆ、ＭＴ１Ｍ、ＰＯＬＱ、ＲＲＭ２、ＳＥＲＰＩＮＡ９、ＳＴＣ１、及びＴＦＩＰ２のうちの少なくとも１つが発現の増加を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下のｍｉＲＮＡ：
ＭＩＲ１４７Ｂ、及びＭＩＲ１１８１のうちの少なくとも１つが発現の増加を示す。

本発明の具体的な実施態様において、非治癒又は慢性の創傷組織の診断又は予後の方法も、哺乳動物からの創傷のサンプルにおいて、異なる分子マーカーをコードする遺伝子の発現のレベルを測定するステップを含み、前記遺伝子が以下のとおり定義される：
前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＡＣＴＡ２、ＡＰＯＤ、ＦＧＦ９、ＩＤ４、ＰＯＳＴＮ、及びＳＭＡＤ３のうちの少なくとも１つが発現の減少を示し、
ＣＸＣＬ１、ＣＸＣＬ５、ＣＸＣＬ６、ＭＭＰ１０、ＭＭＰ３、ＳＥＲＰＩＮＢ２、ＳＰＨＫ１、ＨＡＬＰＮ１、及びＣＴＧＦのうちの少なくとも１つが発現の増加を示す。

本発明の別の具体的な実施態様において、非治癒又は慢性の創傷組織の診断又は予後の方法も、哺乳動物からの創傷のサンプルにおいて、異なる分子マーカーをコードする遺伝子の発現のレベルを測定するステップを含み、前記遺伝子が以下のとおり定義される：
前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＡＣＴＡ２、ＦＧＦ９、ＩＤ４、及びＰＯＳＴＮのうちの少なくとも１つが発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＣＸＣＬ１、ＣＸＣＬ５、ＣＸＣＬ６、ＭＭＰ１０、ＭＭＰ３、及びＳＥＲＰＩＮＢ２のうちの少なくとも１つが発現の増加を示す。

「慢性の創傷」又は「慢性の創傷組織」又は「非治癒の創傷」とは、例えば、静脈下腿潰瘍、糖尿病性下腿潰瘍、褥瘡性潰瘍、及び動脈下腿潰瘍から選ばれる疾患、又は非治癒の急性の創傷又は非治癒の創傷を意味する。

本発明における、遺伝子の完全な同一性はＮＣＢＩデータベース（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／）で入手可能であり、又は当業者にとっては周知である。

本発明の好ましい態様において、創傷組織はヒトの組織であり、正常な皮膚線維芽細胞は正常ヒト皮膚線維芽細胞（ＮＨＤＦ）である。

本発明の好ましい態様において、正常な皮膚線維芽細胞は、前記哺乳動物の健康な皮膚に基づき、好ましくは、正常な皮膚線維芽細胞は、同じ動物又は個体の健康な皮膚に基づく。

上で使用される用語「遺伝子の発現のレベルの測定」は、対照を参照した質的及び／又は量的な検出（レベルの測定）を意味する。典型的には、遺伝子の発現のレベルの測定は、例えば、サンプル又ｉｎｓｉｔｕハイブリダイゼーションで実施されるＲＴ−ＰＣＲ、又は、ＬｙｎｘＴｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ’ ＭａｓｓｉｖｅｌｙＰａｒａｌｌｅｌＳｉｇｎａｔｕｒｅＳｅｑｕｅｎｃｉｎｇ（ＭＰＳＳ）、Ｐｏｌｏｎｙシーケンシング、４５４パイロシーケンシング、Ｉｌｌｕｍｉｎａ（Ｓｏｌｅｘａ）シーケンシング、ＳＯＬｉＤシーケンシング、Ｉｏｎ半導体シーケンシング、ＤＮＡナノボールシーケンシング、Ｈｅｌｉｏｓｃｏｐｅ（登録商標）単分子シーケンシング、ＳｉｎｇｌｅＭｏｌｅｃｕｌｅリアルタイム（ＲＮＡＰ）、ＳｉｎｇｌｅＭｏｌｅｃｕｌｅＳＭＲＴ（登録商標）シーケンシング、ＮａｎｏｐｏｒｅＤＮＡシーケンシング、ＶｉｓｉＧｅｎＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓアプローチのような、ハイスループットのシーケンシングで測定できる。

典型的には、前記測定はサンプルを、プローブ、プライマー又はリガンドのような選択的な試薬と接触させること、及び、それによって、存在を検出すること、又はサンプルに元々存在する、注目する核酸の量を測定することを含む。接触は、プレート、マイクロタイターディッシュ、試験管、ウェル、ガラス、又はカラムのような、任意の好適な装置で実施させてもよい。特定の実施形態において、核酸アレイ又は特定のリガンドアレイのような試薬で覆われた基質上で接触は実施される。基質は、ガラス、プラスティック、ナイロン、紙、金属、ポリマー等を含む、任意の好適な支持体のような固体又は半固体の基質であってもよい。基質は、スライド、膜、ビーズ、カラム、又はゲルのような種々の形態及びサイズであってもよい。接触は、試薬及びサンプルの核酸の間で形成される、核酸ハイブリッドのような検出可能な複合体に好適な任意のコンディションの下で行ってもよい。

特定の実施形態において、遺伝子の発現のレベルの測定は、前記遺伝子のＲＮＡを定量化することにより測定される。前記ＲＮＡは、ｍＲＮＡ及びｍｉＲＮＡから選ばれるのが好ましい。好ましくは、前記ＲＮＡがｍＲＮＡである。

ｍＲＮＡの量を測定するための方法は、当該技術分野において周知である。例えば、サンプル（例えば、患者から用意された細胞又は組織）に含まれる核酸は、まず、標準の方法、例えば、製造業者の説明書に従い、溶解酵素若しくは薬液の使用、又は核酸結合樹脂による抽出、により抽出される。その後、抽出されたｍＲＮＡは、ハイブリダイゼーション（例えば、Ｎｏｒｔｈｅｒｎブロット分析）によって検出されてよい。

あるいは、抽出されたｍＲＮＡは、標的遺伝子における領域の増幅を可能にする、特定のオリゴヌクレオチドプライマーを用いて、ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）による逆転写及び増幅のような、一対の逆転写及び増幅に供されてもよい。好ましくは、定量的又は半定量的なＲＴ−ＰＣＲが用いられる。リアルタイムの定量的又は半定量的なＲＴ−ＰＣＲは特に有利である。抽出されたｍＲＮＡは、逆転写及び増幅されてもよく、その後、増幅されたシーケンスが、好適なプローブを用いるハイブリダイゼーションによって、又は直接シーケンス法、若しくはハイスループットシーケンシング、若しくは当該技術分野で公知の、任意の他の適切な方法によって検出されてもよい。

他の増幅の方法は、リガーゼ連鎖反応（ＬＣＲ）、転写介在増幅（ＴＭＡ）、鎖置換増幅（ＳＤＡ）、及び核酸配列ベース増幅（ＮＡＳＢＡ）を含む。

少なくとも１０のヌクレオチドを有し、本願明細書の注目するＲＮＡ対する配列相補性又は相同性が存在する核酸は、ハイブリダイゼーションプローブ又は増幅プライマーとして役立つことが分かる。そのような核酸は同一である必要はないが、典型的には、同程度のサイズの相同領域に対して、少なくとも約８０％が同一であり、より好ましくは少なくとも８５％が同一であり、さらにより好ましくは少なくとも９０％、さらに好ましくは少なくとも９５％が同一であると理解される。ある実施形態において、ハイブリダイゼーション検出のための、検出可能なラベルのような適切な手段と組み合わせて核酸を使用することが有利であるだろう。実に様々な適切なラベルは、蛍光性、放射性、酵素、又は他のリガンド（例えば、アビジン／ビオチン）を含み、当該技術分野で公知である。

プローブは、典型的には、１０〜１０００、例えば１０〜８００、より好ましくは１５〜７００、典型的には２０〜５００のヌクレオチド長の１本鎖の核酸を含む。プライマーは、典型的には、増幅されるべき関心対象の核酸と完全又はほぼ完全に適合されるように設計された、１０〜２５のヌクレオチド長の、短い１本鎖の核酸である。プローブ及びプライマーは、それらがハイブリダイズする核酸に対して「特異的」になり、すなわち、好ましくは、ハイストリンジェンシーのハイブリダイゼーション条件（最高融解温度Ｔｍ、例えば、５０％ホルムアミド、３ｘ、５ｘ又は６ｘＳＣＣに対応する。ＳＣＣは０．１５ＭＮａＣＩ、０．０１５ＭＮａ−クエン酸塩である）下でハイブリダイズする。

本発明の方法において、ＲＮＡの存在、好ましくは全ＲＮＡ、及びより好ましくはｍＲＮＡの量が、創傷組織の試験されたサンプルにおいて、分析される。ＲＮＡの含有を測定するために利用できる全ての技術が使用される。前記技術は、ノーザンブロット、逆転写定量的ポリメラーゼ連鎖反応、ＮａｎｏＳｔｒｉｎｇＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、マイクロアレイ技術、又はＳｅｒｉａｌＡｎａｌｙｓｉｓｏｆＧｅｎｅＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎ（ＳＡＧＥ）を含んでいてもよい。本発明において、ＬｙｎｘＴｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ’ ＭａｓｓｉｖｅｌｙＰａｒａｌｌｅｌＳｉｇｎａｔｕｒｅＳｅｑｕｅｎｃｉｎｇ（ＭＰＳＳ）、Ｐｏｌｏｎｙシーケンシング、４５４パイロシーケンシング、Ｉｌｌｕｍｉｎａ（Ｓｏｌｅｘａ）シーケンシング、ＳＯＬｉＤシーケンシング、Ｉｏｎ半導体シーケンシング、ＤＮＡナノボールシーケンシング、Ｈｅｌｉｏｓｃｏｐｅ（登録商標）単分子シーケンシング、ＳｉｎｇｌｅＭｏｌｅｃｕｌｅリアルタイム（ＲＮＡＰ）、ＳｉｎｇｌｅＭｏｌｅｃｕｌｅＳＭＲＴ（登録商標）シーケンシング、ＮａｎｏｐｏｒｅＤＮＡシーケンシング、ＶｉｓｉＧｅｎＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓアプローチ、のようなハイスループットシーケンシングも使用できる。

本発明の別の実施形態において、サンプルにおける遺伝子の発現のレベルの測定も、対応するコードされたタンパク質を定量化することにより、実施されてもよい。タンパク質成分の測定のために利用できる全ての技術は、使用され得る。

このような方法は、サンプル中に存在する目標のタンパク質と選択的に相互作用することができる結合パートナーとサンプルの接触を含む。結合パートナーは、一般に、ポリクローナル又はモノクローナル、好ましくはモノクローナルであってよい抗体である。

タンパク質の存在は、競合法、直接反応、又はサンドイッチ型アッセイのような、イムノアッセイを含む標準の電気泳動及び免疫診断の技術を用いて検出され得る。そのような分析は、これらに限定されないが、ウェスタンブロット；凝集検査；ＥＬＩＳＡのような酵素ラベル介在イムノアッセイ；ビオチン／アビジン型アッセイ；ラジオイムノアッセイ；免疫電気泳動法；免疫沈降などを含む。反応には、一般に、蛍光性、化学発光性、放射性、酵素によるラベル、若しくは染色分子のようなラベルを明らかにすること、又は抗原及び抗体若しくはそれらと反応する抗体の複合体の形成を検出するための他の方法を含む。

上述のアッセイは、一般に、抗原−抗体複合体が結合している固相支持体から未結合のタンパク質を液相中に分離することを伴う。本発明の実施に使用することができる固体支持体には、ニトロセルロース（例えばメンブラン又はマイクロタイターウェルの形状のもの）；ポリ塩化ビニル（例えば、シート又はマイクロタイターウェル）；ポリスチレンラテックス（例えばビーズ又はマイクロタイタープレート）；ポリフッ化ビニリデン；ジアゾ化紙；ナイロンメンブラン；活性化ビーズ、磁気応答性ビーズなどのような基質が含まれる。

より具体的には、ＥＬＩＳＡ方法を用いることができ、マイクロタイタープレートのウェルが被験タンパク質に対する抗体のセットで被覆される。次いで、マーカータンパク質を含有する、又は含有する疑いのあるサンプルが、被覆後のウェルに添加される。抗体−抗原複合体を形成させるために十分なインキュベーション時間の後に、プレートを洗浄して未結合の部分を除去し、検出可能にラベルされた二次結合分子を添加することができる。二次結合分子は、捕捉された任意のサンプルマーカータンパク質と反応させられプレートが洗浄され、当技術分野で周知の方法を用いて、二次結合分子の存在が検出される。

本発明の別の態様において、任意の１以上の上述の方法を実施するためのキットであって、少なくとも１つの標的遺伝子の発現レベルを検出し、定量化するためのプローブを含むキットが提供される。

「プローブ」とは、ハイストリンジェンシーのハイブリダイゼーション条件（最高融解温度Ｔｍ、例えば、５０％ホルムアミド、３ｘ、５ｘ又は６ｘＳＣＣに対応する。ＳＣＣは０．１５ＭＮａＣＩ、０．０１５ＭＮａ−クエン酸塩である）下で、標的遺伝子とハイブリダイズする、１０〜１０００、例えば１０〜８００、より好ましくは１５〜７００、典型的には２０〜５００ヌクレオチド長の１本鎖の核酸を示す。

本発明のさらなる態様によれば、上述の方法の任意の一つを実施するためのキットであって、以下の（１）及び（２）を含むキットが提供される：
（１）表１に明示された全ての遺伝子の発現レベルを検出し、定量化するための複数のプローブ、
（２）任意に、前記プローブの使用に付属している試薬及び説明書。

本発明のさらに一層好ましい態様では、以下の（１）及び（２）を含む、哺乳動物の創傷組織の予後を測定するためのキットが提供される：
（１）表１の遺伝子のそれぞれ１における、少なくとも１つのＲＮＡ又はタンパク質の発現レベルを検出し、定量化するための複数のプローブ、
（２）任意に、前記プローブの使用に付属している試薬及び説明書。

理想的には、説明書は、前記遺伝子のそれぞれの発現レベルを測定する方法が記載されている。

本発明のさらなる態様によれば、任意の１以上の上述のプローブのセットを含む、又はからなるマイクロアレイが提供される。本発明に係るキットは、ＩｏｎＰｒｏｔｏｎＳｅｑｕｅｎｃｅｒ（ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）のような装置を使用してもよい。

本発明の別の態様において、患者における創傷型を測定するためのキットであって、少なくとも２つマイクロアレイを含み、それぞれ、上述の方法の一つにおいて明示された全ての遺伝子の発現レベルを検出し、定量化するための複数のプローブを含む前記キットが提供される。

本発明のさらなる態様において、前記創傷組織が慢性又は非治癒であるかどうかを識別するための、創傷組織の分類、又は予後の測定、及び創傷組織の分類又は予後に基づく適切な処置の選択のために、任意の１以上の上述の方法を実施するステップを含む、創傷を処置するための方法が提供される。

本発明の別の態様において、慢性の又は非治癒の創傷における、ＰＩ１６の発現の増加による治療が提供される。前記治療は、慢性の又は非治癒の創傷の処置のためのＰＩ１６の活性化因子の使用によってもよい。

癒傷における線維芽細胞の役割
線維芽細胞は、癒傷のプロセスに関与し、これは、筋線維芽細胞に変化し、最終的にアポトーシスに入り得る、動態化した線維芽細胞への無活動の線維芽細胞からの分化のいくつかのステップを伴う。慢性又は非治癒の創傷において、このプロセスは誤制御され、線維芽細胞は筋線維芽細胞の分化を開始し損ない、創傷において、疑似老化線維芽細胞と呼ばれる正常に機能しない線維芽細胞として見出される（ＴｅｌｇｅｎｈｏｆｆＤ，ＳｈｒｏｏｔＢ（２００５）慢性の癒傷における細胞老化のメカニズム、ＣｅｌｌＤｅａｔｈＤｉｆｆｅｒ１２：６９５−６９８）。本発明の狙いは、全体のゲノムスケールで、このプロセスの間中、活性化又は非活性化し得る異なる遺伝子をマッピングすることであり、こうして、慢性又は非治癒の創傷の分子サインを供給する。

制限された複製の細胞周期を可能にし、こうして、遺伝情報の欠損を回避するヒト線維芽細胞は、老化という生理学的なプロセスに入る能力を有する。それは、通常、細胞がすでに数回の複製（複製老化と呼ばれ、テロメア長に依存する）を行ったときに起こるが、環境ストレスに応答しても起こり得る（ＭｕｌｌｅｒＭ（２００９）細胞老化：分子メカニズム、インビボ有意性、及びレドックス考慮事項、ＡｎｔｉｏｘｉｄＲｅｄｏｘＳｉｇｎａｌ１１：５９−９８）。老化細胞は、細胞周期を停止するが、代謝活性を維持する（ＴｅｌｇｅｎｈｏｆｆＤ，ＳｈｒｏｏｔＢ（２００５）慢性の癒傷における細胞老化メカニズム、ＣｅｌｌＤｅａｔｈＤｉｆｆｅｒ１２：６９５−６９８）。

慢性創傷の線維芽細胞は、自らの機能性のいくらかを失い、より具体的には、自らの複製機能の一部又は全てを失う（ＴｅｌｇｅｎｈｏｆｆＤ，ＳｈｒｏｏｔＢ（２００５）慢性の癒傷における細胞老化メカニズム、ＣｅｌｌＤｅａｔｈＤｉｆｆｅｒ１２：６９５−６９８）。創傷において、ヒト線維芽細胞はまた、マトリクスリモデリングを誘導するタンパク質である、ＡＰＡ−１のアップレギュレーションと関連し、これは、偽老化線維芽細胞表現型がテロメア減少により誘導されないことを証明している（ＢｅｎａｎｔｉＪＡ，ＷｉｌｌｉａｍｓＤＫ，ＲｏｂｉｎｓｏｎＫＬ，ＯｚｅｒＨＬ，ＧａｌｌｏｗａｙＤＡ（２００２）細胞老化関連タンパク質ＡＰＡ−１による細胞外基質リモデリング遺伝子の導入、ＭｏｌＣｅｌｌＢｉｏｌ２２：７３８５−７３９７）。このように、慢性創傷における老化線維芽細胞は、より具体的には、テロメア短縮よりも慢性炎症のために、現れるだろう（ＴｅｌｇｅｎｈｏｆｆＤ，ＳｈｒｏｏｔＢ（２００５）慢性の癒傷における細胞老化メカニズム、ＣｅｌｌＤｅａｔｈＤｉｆｆｅｒ１２：６９５−６９８）。

ＴＡＧＬＮのような、いくつかの生物学的マーカーは、先行技術に記載されている（ＴｈｗｅａｔｔＲ，ＬｕｍｐｋｉｎＣＫ，Ｊｒ．，ＧｏｌｄｓｔｅｉｎＳ（１９９２）平滑筋タンパク質をエンコードする新規な遺伝子が、老化ヒト線維芽細胞において、過剰発現する。ＢｉｏｃｈｅｍＢｉｏｐｈｙｓＲｅｓＣｏｍｍｕｎ１８７：１−７）。この発表において、遺伝子の発現は老化細胞において増加するが、発明者らによって使用された慢性の又は非治癒の創傷モデルにおいて、ＴＡＧＬＮの遺伝子発現は、正常な線維芽細胞の遺伝子発現と比較する場合減少する。

［ＹｏｏｎＩＫ，ＫｉｍＨＫ，ＫｉｍＹＫ，ＳｏｎｇＩＨ，ＫｉｍＷ，ＫｉｍＳ，ＢａｅｋＳＨ，ＫｉｍＪＨ，ＫｉｍＪＲ（２００４）ｃＤＮＡマイクロアレイ技術によるヒト皮膚線維芽細胞における複製の老化関連遺伝子の調査、ＥｘｐＧｅｒｏｎｔｏｌ３９：１３６９−１３７８］において、ＧＯＳ２は、包皮線維芽老化細胞において過剰発現されることが記載されている。しかしながら、この文献において、線維芽細胞は複製老化であり、２０より多い倍化の集団の後に得られるのに対して、本発明において、本発明者らが、慢性又は非治癒の創傷モデルで研究した場合、線維芽細胞は偽老化であり、複製老化ではない。

皮膚線維芽細胞は、ヒトの細胞が異なるドナーから得られるため、よい実験材料である。ところで、線維芽細胞は、ＥＣＭタンパク質を分泌し、創傷収縮に導く筋線維芽細胞で分化するので、癒傷における重要な細胞を代表する。

いくつかの生物学的マーカーは、異なる組織：例えば、肺におけるＣＣＬ１１（ＰｕｘｅｄｄｕＩ，ＢａｄｅｒＲ，ＰｉｌｉｐｏｎｓｋｙＡＭ，ＲｅｉｃｈＲ，Ｌｅｖｉ−ＳｃｈａｆｆｅｒＦ，ＢｅｒｋｍａｎＮ（２００６）、ＣＣ型ケモカインエオタキシン／ＣＣＬｌｌがヒト肺線維芽細胞に対する選択的な線維形成促進性の効果を有する、ＪＡｌｌｅｒｇｙＣｌｉｎＩｍｍｕｎｏｌ１１７：１０３−１１０）又は滑膜線維芽細胞におけるＴＦＩＰ２（ＳｃａｉｆｅＳ，ＢｒｏｗｎＲ，ＫｅｌｌｉｅＳ，ＦｉｌｅｒＡ，ＭａｒｔｉｎＳ，ＴｈｏｍａｓＡＭ，ＢｒａｄｆｉｅｌｄＰＦ，ＡｍｆｔＮ，ＳａｌｍｏｎＭ，ＢｕｃｋｌｅｙＣＤ（２００４）制限酵素断片ディファレンシャルディスプレイ法による、滑膜線維芽細胞において差異的に発現される遺伝子の検出、Ｒｈｅｕｍａｔｏｌｏｇｙ（Ｏｘｆｏｒｄ）４３：１３４６−１３５２）から、すでに線維芽細胞で説明されている。

正常ヒト皮膚線維芽細胞を用いて行った実験の略図である。 αＳＭＡｍＲＮＡのレベルの、異なる実験における定量ＲＴ−ＰＣＲによる測定である。 αＳＭＡ及びチューブリンの発現の、異なる実験におけるウェスタンブロット法による測定である。リストＩＩ、ＩＩＩの定義である。ＰＩ１６ｍＲＮＡの発現（ｍｏｃｋｓｉＲＮＡ、又はＰＩ１６ｓｉＲＮＡ）である。 αＳＭＡｍＲＮＡの発現（ｍｏｃｋｓｉＲＮＡ、又はＰＩ１６ｓｉＲＮＡ）である。Ｔ＋Ｅ−条件における異なる時間点でのＰＩ１６ｍＲＮＡの発現である。Ｔ−Ｅ＋条件における異なる時間点でのＰＩ１６ｍＲＮＡの発現である。Ｔ＋Ｅ＋条件における異なる時間点でのＰＩ１６ｍＲＮＡの発現である。（表１）非治癒又は慢性の創傷に対する遺伝子サインのリストである。（表１）非治癒又は慢性の創傷に対する遺伝子サインのリストである。（表１）非治癒又は慢性の創傷に対する遺伝子サインのリストである。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。（表２）実施された全ての実験において同定された全ての遺伝子転写物のリスト（リストＩＩ及びＩＩＩ）である。

病変に応じて、線維芽細胞は、創傷に移動し、その創傷において、リモデリングの段階の間、最終的にアポトーシスに入り得る収縮性の筋線維芽細胞に分化する。この分化のプロセスは、環境的に調整された組織培養条件において体外で検討されなければならない、それゆえ、適時に、異なる遺伝子発現のパターンの調整された遷移がなされ得る。

材料及び方法
慢性の創傷の体外モデルの形成
慢性又は非治癒の創傷の体外モデルを、病理を再現するために、培養した線維芽細胞上の慢性の創傷からの滲出物を加えることによって形成した。次いで、遺伝子発現を、慢性又は非治癒の創傷の分子サインを定義するために検討した。

ヒトの外植片から分離した、ＮＨＤＦをＰｒｏｍｏｃｅｌｌから購入した。ＮＨＤＦを、ＤＭＥＭ−Ｆ１２（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）において培養し、１０％ＦＣＳ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、５μｇ／ｍＬのインスリン、及び１ｎｇ／ｍＬのｂ−ＦＧＦ（ＰｒｏｍｏＫｉｎｅ））を補充した。

滲出物を収集するために、混合された潰瘍を有する４人の患者を募集した（平均年齢７６歳；範囲５７〜８８歳）。患者の選択のために、創傷の病因：糖尿病、末梢動脈疾患、栄養失調、に潜在的に関連する、何れの他の併存疾患の要因を除外することを決定した。滲出物を、陰圧治療から収集した。細胞片を取り除くために、１，５００×ｇで３分間、全ての滲出物を遠心分離した。上清をろ過し、使用するまでの間、−８０℃で保存した。アリコートを、ＢＣＡ方法（Ｓｉｇｍａ）に従って、タンパク質の濃度を測定するために使用した。

実験のために、４８時間に亘って、細胞をインスリン及びｂ−ＦＧＦ欠乏の状態にした。次いで、その細胞を、４日間、１０％ＦＣＳ、ｌＯｎｇ／ｍＬのＴＧＦ−βΙ（Ｐｒｏｍｏｃｅｌｌ）を補充した、ＤＭＥＭ−Ｆ１２中のコラーゲンで覆われた培養プレート上で培養した。線維芽細胞分化に対する滲出物の効果を識別するために、４点を試験した：未処置の細胞（Ｔ−Ｅ−）、ＴＧＦ−βΙ（Ｔ＋Ｅ−）で処置された線維芽細胞、滲出物（Ｔ−Ｅ＋）で処置された細胞、及び最終的に、同時にＴＧＦ−βΙ及び滲出物で処置された線維芽細胞（Ｔ＋Ｅ＋）。

線維芽細胞分化の効率を、筋線維芽細胞マーカー、α平滑筋アクチン（αＳＭＡ）の発現を分析することにより見積もった。

このαＳＭＡの発現を、ＲＴ−ｑＰＣＲ（ｍＲＮＡレベル）及びウェスタンブロット（タンパク質）によって評価した。

ウェスタンブロット法アッセイ
全体のタンパク質を、溶解バッファー（ＴＲＩＳ、ＮａＣＩ、ＮＰ４０、ＥＤＴＡ、ＩＭＤＴＴ）を有する細胞を剥がすことにより取り出し、氷の中で３０分培養した。細胞片を取り除くため、サンプルを、１３，０００×ｇで、１０分間、４℃で、遠心分離し、使用するまでの間、−２０℃で保存した。タンパク質濃度を、ＢＣＡ方法（Ｓｉｇｍａ）に従って測定した。全体のタンパク質の等量（２０μｇ）をＮｕＰＡＧＥ１０％ＢＩＳ−Ｔｒｉｓゲル（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に載せ、１５０Ｖでマイグレーションにより分離し、１時間３０Ｖでニトロセルロース膜（Ｗｈａｔｍａｎ）に移動した。次いで、α−ＳＭＡ（Ａｂｃａｍ）及びチューブリン（Ａｂｃａｍ）のために、膜を染色した。インキュベーションの後、二次抗体、ヤギ抗ウサギＩｇＧ及びヤギ抗マウスＩｇＧのそれぞれを、セイヨウワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）（Ｐｒｏｍｅｇａ）にコンジュゲートさせた。シグナルを、ＨＳＷＢＳｕｂｓｔｒａｔｅ（Ｕｐｔｉｍａ，Ｉｎｔｅｒｃｈｉｍ）を使用したＥＣＬ化学発光によって検出した。バンドを、スキャナーを用いてデジタル化し、同じブロットの全てのバンド密度間の比をソフトウェア（ＩｍａｇｅＪ１．４３ｕ，６４−ｂｉｔ）によって計算した。関連するα−ＳＭＡの発現を、チューブリンに対するそれぞれの値に正規化した。

全ＲＮＡサンプルの調製
実験の４日後、処置された線維芽細胞をトリゾール試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で溶解し、−８０℃で保存した。次いで、ＲＮＡを、クロロホルムを用いて精製し、イソプロパノールによって沈殿させた。全ＲＮＡを、ＮａｎｏＤｒｏｐ２０００ｃ分光光度計（ＴｈｅｒｍｏＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で定量した。ｃＤＮＡに対する５００ｎｇ全ＲＮＡの逆転写を、ＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔＩＩＩＲＴ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）及びＲＮＡｓｅＯＵＴ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いるオリゴｄＴ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で行った。ｃＤＮＡを−２０℃で保存した。

定量的リアルタイムＲＴ−ＰＣＲ
定量的リアルタイムＰＣＲ（ＲＴ−ｑＰＣＲ）を、５μＬの１：２０希釈ｃＤＮＡを用いて、ＭａｘｉｍａＳＹＢＲＧｒｅｅｎｑＰＣＲＭａｓｔｅｒＭｉｘ（Ｆｅｒｍｅｎｔａｓ）を使用するＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ４８０ｓｙｓｔｅｍ（Ｒｏｃｈｅ）で行った。順方向及び逆方向プライマーを、Ｅｕｒｏｆｉｎｓ（ＭＷＧ、αＳＭＡ順方向：ＣＴＧＴＴＴＴＣＣＣＡＴＣＣＡＴＴＧＴＧ、αＳＭＡ逆方向：ＣＣＡＴＧＴＴＣＴＡＴＣＧＧＧＴＡＣＴＴ）によってデザインし、１００μΜストックを−２０℃で保存した。順方向及び逆方向プライマーのペアを、それぞれのＲＴ−ｑＰＣＲ反応のために使用した。循環条件は以下のとおりであった：初期は９５℃１０分間、９５℃１５秒間の４５サイクルに続いて、５８℃３０秒間、７２℃２０秒間。ＴＭ曲線を評価するため、Ｃｐを測定するため、及びそれぞれの増幅反応に対する相対濃度を概算するため、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ４８０ＳＷ１．５を使用した。

発現のタイミング
ＮＨＤＦ（正常ヒト皮膚線維芽細胞）を、異なる時間（ｌ〜９６時間）、これまでに記載されたとおりに、ＴＧＦｂｅｔａ及び／又は滲出物で処置した。処置後ｍＲＮＡを抽出し、ＰＩ１６ｍＲＮＡのレベルをＲＴｑＰＣＲによって評価した。

ｓｉＲＮＡのトランスフェクション
ＰＩ１６の発現を、特定の低分子干渉ＲＮＡ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いて一時的にトランスフェクションしたヒト皮膚線維芽細胞によって、ノックダウンした。２つの異なるｓｉＲＮＡを試験した。トランスフェクションのために、線維芽細胞をトリプシン処理し、コラーゲンが覆われた６ウェルプレート上に播種した。ＴＧＦ−β１及び／又は滲出物を、先ほど説明したように培地に添加した。次いで、６日間、製造業者の説明書に従って、１０ｎΜｓｉＲＮＡ及び４μＬのＩＮＴＥＲＦＥＲｉｎ試薬（ＰｏｌｙＰｌｕｓ）で、ＮＨＤＦを処置した。十分なノックダウンを維持するために、二次トランスフェクションを、４８時間で実施した。標的となるｍＲＮＡのノックダウンをＲＴ−ｑＰＣＲによって確認した。対照として、模擬のｓｉＲＮＡ（外因性及び非存在のＧＦＰｍＲＮＡに対して向けられた）を、細胞へのｓｉＲＮＡトランスフェクションの推定される影響を回避するために使用した。

結果
慢性又は非治癒の創傷モデルのために、慢性の創傷の滲出物を、細胞培養（滲出物の全タンパク質５００μｇ／ｍＬ）に添加した。その実施した実験を図１に示す：４日間、細胞を処置していないか（Ｔ−Ｅ−）、ＴＧＦβだけ（Ｔ＋Ｅ−）、滲出物だけ（Ｔ−Ｅ＋）又はＴＧＦβ及び滲出物（Ｔ＋Ｅ＋）で処置しているか。これまでに説明したアッセイを、分化のレベルを評価するために使用した。慢性の創傷の滲出物は、αＳＭＡの発現を減少させる（ｍＲＮＡ及びタンパク質、図２及び３）。これは、慢性の創傷の滲出物が明らかに線維芽細胞の分化を抑制していることを示している。これは、慢性の創傷において、偽の老化線維芽細胞とも呼ばれる、不機能の線維芽細胞を見出すことができたという事実と相関している。

慢性又は非治癒の創傷モデルにおける線維芽細胞の異なる処置の際の、発現した遺伝子を分析するために、ｍＲＮＡ大規模シークエンシングを実現する。

全ＲＮＡをトリゾールによって抽出した。異なる処置がされた細胞の全ＲＮＡの当量（５〜６μｇ）を、無水エタノールにより沈殿させ、ＲＮＡシーケンシングのための酢酸ナトリウムによって補充した。

ｍＲＮＡシーケンシングを、ＦａｓｔｅｎｓＳＡ（Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）により行った。ＲＮＡを、全ＲＮＡとして送り、ポリＡ精製の２ラウンド後、逆転写及びｃＤＮＡライブラリーを終えた。シーケンシングをＨｉＳｅｑ２０００（Ｉｌｌｕｍｉｎａ）で行った。

一つの遺伝子は異なるアイソフォームを含み、いくつかのアイソフォームは１以上のエクソンを共通に有し得る。残念ながら、それぞれのアイソフォームに存在するリードの数が数えられ、遺伝子全体において融合されるとき、時折、同じリードが数回数えられ、このように、たくさんのアイソフォームを用いる遺伝子のための分析を偏らせる。この問題を解決するために、エクソン被覆の最大部分に対応するそれぞれの遺伝子に対する架空の転写物を作ること、及びこれらの全体において存在するリードの数を数えることを決定した。正規化及び差次的発現ステップの分析後、１．１０^−３以下に調整したｐ値に関連する差次的発現のみを示す遺伝子を維持した。完全なリスト（ｌｏｇＦＣの絶対値が２以上である）を研究するために、ｌｏｇＦＣ（ＦｏｌｄＣｈａｎｇｅ）に補助フィルターを適用した。

病理的な癒傷分析：慢性又は非治癒の創傷
本発明の狙いは、創傷が慢性若しくは非治癒の創傷か、又はそうでないかを測定するために、遺伝子が２つの状態の間で差異的に発現されるかどうかを知ることであった。

基準となるＴ−Ｅ−ポイント（正常皮膚線維芽細胞）で、２つの状態間の遺伝子転写物の存在量を比較する。２つのリスト（図４に定義されるように）は検討された：リストＩＩはＴ−Ｅ＋及びＴ−Ｅ−を比較し、リストＩＩＩはＴ＋Ｅ＋及びＴ−Ｅ−を比較した。正常な皮膚線維芽細胞とのリストＩＩ及びＩＩＩの比較は、分化のプロセス中に慢性の滲出物による影響を受けた遺伝子のリストを提供し、実際、病理の状況に影響を受けた遺伝子が、慢性の癒傷において発見された。このように、リストＩＩ及びＩＩＩは、慢性又は非治癒の創傷の状況を表す。調整されたＰ値、及び測定されたＬｏｇＦＣフィルターを用いて、４０９の遺伝子がリストＩＩにおいて異なって発現されたことが確認され、１００６の遺伝子がリストＩＩＩにおいて確認された。

いくつかの遺伝子は、それらの高い増加又は減少する発現のおかげで、特に興味深い。例えば、ＰＩ１６の発現は、非治癒又は慢性の創傷において、大きく減少する。

ＴＧＦβ処置の後、ＰＩ１６ｍＲＮＡは、通常、過剰発現するが、ｓｉＲＮＡ処置後、ＰＩ１６ｍＲＮＡレベルの効率的なノックダウンに注目できる（図５Ａ）。かなり興味深いことに、ＰＩ１６をダウンレギュレートする際、αＳＭＡ（図５Ｂ）ｍＲＮＡのＴＧＦβが引き起こされたレベルの、全ての（ｓｉＲＮＡＰＩ１６＿７に対する）又は部分的な（ｓｉＲＮＡＰＩ１６＿５に対する）抑制に気付かされる。２種のｓｉＲＮＡの効果におけるこれらの違いは、ＰＩ１６ｍＲＮＡのノックダウンの効率と関連付けられる。これらの結果は、ＴＧＦβ処置後のＰＩ１６ｍＲＮＡの発現パターンの研究と、完全に一致している。確かに、ＴＧＦβ処置後、ＰＩ１６ｍＲＮＡを大いにアップレギュレートし、滲出物の処置により、完全にダウンレギュレートする（徐々に拡大して）（図６）。

結果として、我々は、ＰＩ１６の過剰発現が線維芽細胞における筋線維芽細胞の分化への増加に関連することを示唆する。反対に、ＰＩ１６のダウンレギュレーションは、線維芽細胞の非分化の作用と関係がある（滲出物の処置又はｓｉＲＮＡのアプローチを用いる）。このように、ＰＩ１６は、治療にとって本命の候補である。本発明も、慢性又は非治癒の創傷の状態において、それらの発現が増加することからなる治療に向けられる。

Claims

哺乳動物からの創傷のサンプルにおいて、異なる分子マーカーをコードする遺伝子の発現のレベルを測定するステップを含む、非治癒又は慢性の創傷組織の診断又は予後の方法であって、
前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＰＯＵ２Ｆ２、ＡＭＩＧＯ２、ＣＣＬ１１、ＣＤＣ４５Ｌ、ＣＳＦ２、ＣＳＦ３、ＦＯＸＳ１、ＧＯＳ２、ＩＦ４４Ｌ、ＩＮＨＢＡ、ＫＰＲＰ、ＬＣＰ１、ＬＰＡＲ３、ＭＩＣＡＬ２、ＭＴ１Ｆ、ＭＴ１Ｍ、ＰＯＬＱ、ＲＲＭ２、ＳＥＲＰＩＮＡ９、ＳＯＸ９、ＳＴＣ１、ＴＦＩＰ２、及びＵＣＮ２のうちの少なくとも１つが発現の増加を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、少なくとも以下のｍｉＲＮＡ：
ＡＣ０８４３６８．１が発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＣＮＮ１、及びＫＲＴ１６のうちの少なくとも１つが正常な発現を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＡＣＴＣ１、ＡＤＡＭＴＳ７、ＣＦＢ、ＣＯＭＰ、ＥＣＭ２、ＥＤＩＬ３、ＥＦＨＤ１、ＦＯＬＲ１、ＩＴＧＡ１１、ＫＩＴ、ＬＢＨ、ＬＧＲ５、ＭＥＤ１２Ｌ、ＭＦＡＰ５、ＮＲ４Ａ３、ＯＭＤ、ＰＡＬＭ、ＰＨＡＣＴＲ３、ＰＩ１６、ＰＰＡＲＧ、ＰＴＨ１Ｒ、ＰＴＸ３、ＲＣＡＮ２、ＲＳＰＯ１、ＳＰＯＮ２、ＴＡＧＬＮ、ＴＭＥＭ３７、ＴＭＳＢ４Ｙ、ＴＸＮＩＰ、及びＷＦＤＣ１のうちの少なくとも１つが発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下のｍｉＲＮＡ：
ＭＩＲ１４７Ｂ、及びＭＩＲ１１８１のうちの少なくとも１つが発現の増加を示す方法。
請求項１に記載の非治癒又は慢性の創傷組織の診断又は予後の方法であって、哺乳動物からの創傷のサンプルにおいて、異なる分子マーカーをコードする遺伝子の発現のレベルを測定するステップを含み：
前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＡＣＴＣ１、ＡＤＡＭＴＳ７、ＣＯＭＰ、ＥＣＭ２、ＥＤＩＬ３、ＥＦＨＤ１、ＦＯＬＲ１、ＩＴＧＡ１１、ＬＢＨ、ＬＧＲ５、ＭＥＤ１２Ｌ、ＭＦＡＰ５、ＯＭＤ、ＰＡＬＭ、ＰＨＡＣＴＲ３、ＰＩ１６、ＰＴＨ１Ｒ、ＲＳＰＯ１、ＳＰＯＮ２、ＴＡＧＬＮ、ＴＭＥＭ３７、ＴＭＳＢ４Ｙ、ＴＸＮＩＰ、及びＷＦＤＣ１のうちの少なくとも１つが発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、少なくとも以下のｍｉＲＮＡ：
ＡＣ０８４３６８．１が発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＣＮＮ１、及びＫＲＴ１６のうちの少なくとも１つが正常な発現を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＣＣＬ１１、ＣＤＣ４５Ｌ、ＣＳＦ２、ＣＳＦ３、ＧＯＳ２、ＩＦ４４Ｌ、ＫＰＲＰ、ＬＣＰ１、ＬＰＡＲ３、ＭＴ１Ｆ、ＭＴ１Ｍ、ＰＯＬＱ、ＲＲＭ２、ＳＥＲＰＩＮＡ９、ＳＴＣ１、及びＴＦＩＰ２のうちの少なくとも１つが発現の増加を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下のｍｉＲＮＡ：
ＭＩＲ１４７Ｂ、及びＭＩＲ１１８１のうちの少なくとも１つが発現の増加を示す方法。
請求項１又は２に記載の方法であって、さらに：
前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＡＣＴＡ２、ＡＰＯＤ、ＦＧＦ９、ＩＤ４、ＰＯＳＴＮ、及びＳＭＡＤ３のうちの少なくとも１つが発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＣＸＣＬ１、ＣＸＣＬ５、ＣＸＣＬ６、ＭＭＰ１０、ＭＭＰ３、ＳＥＲＰＩＮＢ２、ＳＰＨＫ１、ＨＡＬＰＮ１、及びＣＴＧＦのうちの少なくとも１つが発現の増加を示す方法。
請求項１〜３の何れか１項に記載の方法であって、さらに：
前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＡＣＴＡ２、ＦＧＦ９、ＩＤ４、及びＰＯＳＴＮのうちの少なくとも１つが発現の減少を示し、
又は、前記哺乳動物の正常な皮膚線維芽細胞における発現と比較したとき、以下の遺伝子：
ＣＸＣＬ１、ＣＸＣＬ５、ＣＸＣＬ６、ＭＭＰ１０、ＭＭＰ３、及びＳＥＲＰＩＮＢ２のうちの少なくとも１つが発現の増加を示す方法。
前記創傷組織がヒトの創傷組織であり、正常な皮膚線維芽細胞が正常ヒト皮膚線維芽細胞（ＮＨＤＦ）である、請求項１〜４の何れか１項に記載の方法。
前記正常な皮膚線維芽細胞が、前記哺乳動物の健康な皮膚に基づき、より好ましくは、前記創傷組織及び前記正常な皮膚線維芽細胞が同じ動物又は個体に基づく、請求項１〜５の何れか１項に記載の方法。
対応するＲＮＡの定量化によって、前記遺伝子の発現のレベルが測定される、請求項１〜６の何れか１項に記載の方法。
前記ＲＮＡがｍＲＮＡ及びｍｉＲＮＡから選ばれる、請求項７に記載の方法。
前記遺伝子の発現のレベルが、ｍｉＲＮＡの発現を除いて、対応するコードされたタンパク質の定量化によって測定される、請求項１〜８の何れか１項に記載の方法。
前記タンパク質が、抗体を用いることにより測定される、請求項９に記載の方法。
請求項１〜１０の何れか１項に記載の方法を実施するためのキットであって、以下の（１）及び（２）を含むキット：
（１）表１に明示された全ての遺伝子の発現レベルを検出し、定量化するための複数のプローブ、
（２）任意に、前記プローブの使用に付属している試薬及び説明書。
以下の（１）及び（２）を含む、哺乳動物の創傷の予後を決めるためのキット：
（１）表１の遺伝子のそれぞれ１における、少なくとも１つのＲＮＡ又はタンパク質についての発現レベルを検出し、定量化するための複数のプローブ
（２）任意に、前記プローブの使用に付属している試薬及び説明書。
１以上の、請求項１１又は１２に記載のプローブのセットからなるマイクロアレイ。
患者における創傷の転帰を測定するためのキットであって：
請求項１〜１０の何れか１項に記載の方法において明示された全ての遺伝子の発現レベルを検出し、定量化するための複数のプローブを含む、少なくとも２つのマイクロアレイを含むキット。
前記創傷組織が慢性又は非治癒であるかを識別するための創傷組織の分類又は予後の測定、及び前記創傷組織の分類又は予後に基づく適切な処置の選択のために、請求項１〜１０の何れか１項に記載の方法を実施するステップを含む、創傷を処置するための方法。
慢性又は非治癒の創傷の状態における、前記ＰＩ１６の発現の増加による治療。