JP2017095432A - アクロレイン誘導体活性抑制剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】 バラ科植物果実抽出物、特にリンゴ果実抽出物を含有することを特徴とする。
【選択図】図1
Description
[各種素材含有試料及びアクロレイン溶液の調製]
リンゴ果実抽出物は、アップルフェノンC‐100(アサヒフード アンド ヘルスケア)をサンプルとして用いた。また比較素材として、高い抗酸化力を有することが知られているL(+)−アスコルビン酸(和光純薬)、及びその誘導体であるリン酸アスコルビルマグネシウム(アイ・ティー・オー)を用いた。
これら3素材をそれぞれ純水に1%となるように溶解し、これを段階希釈して各種濃度のサンプル溶液を調製した。アクロレイン試薬としては、Acrolein Monomer(東京化成工業)を用い、これを純水に0.005%となるように溶解した。
カルボニル基検出試薬である4−Hydrazino−7−nitrobenzofurazan Hydrazine(NBD−H;東京化成工業)をN,N−dimethyl formamide(DMF;和光純薬)で25mMとなるように溶解した。その後Trifluoroacetic acid(TFA;ナカライテスク)を0.05%含有する純水で、前記NBD−H含有DMF溶液を0.25mMに希釈した。
96穴プレートの各ウェルに、上記の素材含有溶液25μL及びアクロレイン含有溶液を50μL添加し、1分間プレートシェイクした。その後、ウェル内の溶液の蒸発を防ぐためプレート表面をシールで密閉した状態で37℃、2時間インキュベートした。その後、シールを剥がし、前述のアクロレイン検出試薬を各ウェルに25μL添加し、1分間プレートシェイクした。その後プレートを常温、暗所にて30分間静置したのち、マイクロプレートリーダーにて蛍光強度を測定した(励起波長:470nm、蛍光波長:550nm)。実験結果を図1に示す。
3素材において、それぞれ素材を添加していない条件における蛍光強度値をアクロレイン残存率100%とした。アクロレインの残存率は、この蛍光強度値で素材添加時の蛍光強度値を除すことにより算出した。図1のグラフに示したアクロレイン失活率は100%からアクロレイン残存率の差をとることで算出した。
[リンゴ果実抽出物及びアクロレイン含有培養液の調製]
リンゴ果実抽出物としてはアップルフェノンC−100(アサヒフード アンド ヘルスケア)、アクロレイン試薬としてはAcrolein Monomer(東京化成工業)を用いた。5%ウシ胎児血清(FBS)を含むダルベッコ変法イーグル培地「ニッスイ」(DMEM、日水製薬)に、アクロレインを終濃度0.0005%となるよう添加した。このアクロレイン含有培地にリンゴ果実抽出物を各種濃度で溶解し、リンゴ果実抽出物及びアクロレイン含有培養液を作製した。
不死化ヒト表皮細胞株HaCaTを96穴プレートに5×104/wellで播種し、37℃、5%CO2インキュベーターにて24時間培養した。培養液を廃棄し、細胞をPBS(−)液で洗浄後、前記リンゴ果実抽出物及びアクロレイン含有培地を各ウェルに100μL添加し、さらに24時間培養した。
前記の培養液を廃棄し、細胞をPBS(−)液で洗浄後、−20℃の冷メタノールを各ウェルに100μL添加し−20℃で5分間冷却し細胞を固定した。メタノールを廃棄し、細胞をPBS(−)液で洗浄後、20μMFTSCを含有する0.1M MES−Na(pH5.5)を各ウェルに100μL添加し、37℃、5%CO2インキュベーターにて1時間静置した。ウェル内の溶液を廃棄し、各ウェルに100μLのPBS(−)液を添加し、マイクロプレートリーダーで蛍光測定した(励起波長:492nm、蛍光波長:516nm)。
ウェル内の溶液を破棄し、各ウェルに0.5%オクチルフェノールエトキシレート(和光純薬)溶液を50μL添加し、細胞内タンパク質を溶解した。その後TaKaRa BCA Protein Assay Kit(タカラバイオ)の調製液をウェルに50μL添加し37℃で10分インキュベートし、マイクロプレートリーダーで吸光度を測定した(吸光波長:550nm)。BSA(ウシ血清アルブミン、SIGMA)換算でタンパク量を算出した。実験データをまとめたものを表1に示す。
表1はアクロレイン及び各種濃度のリンゴ果実抽出物をHaCaT細胞に作用させたときの細胞内の総タンパク質量平均値の比(ratio%)とt検定値(p)を示す。表2はアクロレイン及び各種濃度のリンゴ果実抽出物をHaCaT細胞に作用させたときの細胞内の総タンパク質量におけるカルボニル化タンパク質量平均値の割合の比(ratio%)とt検定値(p)を示す。すなわち、前述の[細胞内のカルボニル化タンパク質量評価]で得た値を[細胞内の総タンパク質量評価]で得た値で除した値の比である。群間における有意差の有無については表1と同様なスチューデントのt検定値(p)を用いて判定し、p<0.05を有意差あり(*)とした。
以下の実施例3および比較例3における表内の配合量は特に断らない限り重量%を示す。
皮膚用クリームの調製(表3、実施例3)
(1)流動パラフィン 6.0(重量%)
(2)ミリスチン酸イソプロピル 3.0
(3)シクロペンタシロキサン 2.5
(4)ジメチコン 2.0
(5)ベヘニルアルコール 3.4
(6)ワセリン 2.0
(7)ステアリン酸ソルビタン 1.5
(8)セテス−20 3.4
(9)トコフェロール 0.02
(10)クエン酸 0.05
(11)1,3−ブチレングリコール 1.0
(12)メチルパラベン 0.15
(13)プロピルパラベン 0.07
(14)ジプロピレングリコール 1.9
(15)リンゴ未成熟果実抽出物 0.003
(16)精製水 残部
上記原料(1)〜(9)を混合し、遮光し、80℃で加熱撹拌した。・・・油相
他方、(10)〜(16)を混合し、80℃で加熱撹拌した。・・・水相
遮光した状態で80℃で油相を撹拌しながら、水相を添加し、ホモジナイザーで均一に乳化した。全行程は、遮光して行うのが望ましく、また、遮光して保存することが望ましい。リンゴ未成熟果実抽出物は着色しやすいので遮光下としたが、遮光せず行うことも可である。
前述の皮膚用クリームの調製と、リンゴ未成熟果実抽出物を加えないことを除けば全く同様にして、比較用クリーム(表3、比較例3)を製造した。製造時と保存時の遮光も、実施例と全く同様にした。
20代から50代までのボランティア女性によって、実施例3と比較例3(対照群)とで、あまり年代に偏りのない評価パネルを実施例15人(平均年齢35歳)、比較例14人(平均年齢36歳)で構成した。
肌のキメについて、試験後にテープストリッピング法(非特許文献14)で両目下部の角層最外層を採取し、前後の状態変化を調べた。
パネルには、試験の目的を説明し、日光浴を避けるなどの注意事項を周知したが、各メンバーが実施例に相当するか比較例に相当するかは明かさなかった。
各人について、試験前後の面積比を求め、平均を出した。
角層標本の観察面積は2.4平方cmとした。
一標本当り、重なり合っていない角層細胞のうち、大きい方から5個の細胞を選び、その面積の総和を測定した。各人について、試験前後の総和の比を計算した。一般に、角層面積が大きいほどキメがよいと判断される。
実施例3と比較例3で、肌特性のハリとキメについて改善効果が認められた。また、何ら負の差異は認められなかった。
Claims (7)
- バラ科植物果実抽出物を有効成分とするアクロレイン誘導体の活性を抑制する薬剤。
- アクロレイン誘導体の活性を抑制する薬剤が皮膚への活性抑制であることを特徴とする請求項1記載の薬剤。
- バラ科植物果実抽出物がリンゴ果実抽出物であることを特徴とする請求項1、2記載のアクロレイン誘導体の活性を抑制する薬剤。
- リンゴ果実抽出物がリンゴ未成熟果実抽出物であることを特徴とする請求項1、2、3記載のアクロレイン誘導体の活性を抑制する薬剤。
- アクロレイン誘導体の活性を抑制する薬剤が皮膚のハリを保つことを特徴とする請求項1、2、3、4記載の薬剤。
- アクロレイン誘導体の活性を抑制する薬剤が皮膚のキメを整えることを特徴とする請求項1、2、3、4、5記載の薬剤。
- アクロレイン誘導体の活性を抑制する薬剤が皮膚外用剤であることを特徴とする請求項1、2、3、4、5、6記載の薬剤。
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| CN116439344A (zh) * | 2023-03-10 | 2023-07-18 | 宿迁市产品质量监督检验所 | 辛弗林或者橙皮苷和辛弗林二元联用作为丙烯醛抑制剂的应用 |
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| CN116439344B (zh) * | 2023-03-10 | 2024-03-29 | 宿迁市产品质量监督检验所 | 辛弗林或者橙皮苷和辛弗林二元联用作为丙烯醛抑制剂的应用 |
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