JP2017018147A - 硫酸化化合物を含む幹細胞増殖用培地 - Google Patents

Abstract

【課題】本発明は、ＦＧＦを含む幹細胞増殖用培地において、幹細胞の増殖を促進させる手段を提供することを目的とする。更に本発明は、ＦＧＦを含む幹細胞増殖用培地を用いた幹細胞の培養方法等を提供することを目的とする。
【解決手段】本発明は、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）を含む幹細胞増殖用培地であって、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を含むことを特徴とする、培地、ＦＧＦを含む幹細胞増殖用培地を用いた幹細胞の培養方法であって、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を培地に添加することを特徴とする、方法等を提供する。
【選択図】なし

Description

本発明は、線維芽細胞成長因子を含む幹細胞増殖用培地、当該培地を用いた幹細胞の培養方法等に関する。

従来、幹細胞（胚性幹細胞、人工多能性幹細胞など）の培養は、血清を含有する培地を用いて行なわれてきた。例えば、ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）等は、細胞増殖に重要な添加物として細胞培養に汎用されている。しかしながら培養後の幹細胞を医療目的で使用する場合、異種由来成分は、血液媒介病原菌の感染源や異種抗原となる可能性がある。また血清のロット間差により培養結果にばらつきが生じる可能性もある。そのため近年では、化学的組成が明らかな培地（chemically defined medium）を用いて幹細胞を培養することが主流となってきており、無血清培地の開発が進められている。

線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）は、線維芽細胞や内皮細胞の増殖を促進する分子量16,000〜20,000のタンパク質である。ＦＧＦには、塩基性線維芽細胞成長因子（ｂＦＧＦ）、酸性線維芽細胞成長因子（ａＦＧＦ）、角質細胞成長因子（ＫＧＦ）などが含まれ、ヒトおよびマウスにおいてはそれぞれ20種以上のＦＧＦが知られている。ＦＧＦは、幹細胞の培養を安定して行なうために一般的に培地に添加されており、無血清培地においても重要性が高い成分の１つとなっている。しかしながら、ＦＧＦは他の成分と比較して高価である上に、培地中での安定性が低いことが知られており、細胞培養において高頻度の培地交換が要求される要因ともなっている。

これまでに、硫酸化多糖類がＦＧＦを分解、変性、失活等から保護する作用を有することが報告されている。
特許文献１には、カラギーナンがｂＦＧＦを安定化することが開示されている。当該文献の実施例には、ヘパリン、デキストラン硫酸、カラギーナン等の硫酸化多糖類を含む保護剤が、５倍量（w/w）のｂＦＧＦ（180μg/200μl）を、トリプシンによる加水分解（実施例１）及び熱による変性（実施例３）から保護することが記載されている。トリプシンによる加水分解からの保護には、当該保護剤に対するｂＦＧＦの重量比が５〜７以下である必要があることも開示されている（実施例２）。
特許文献２には、ＦＧＦもしくはそのムテインと硫酸化グルカンとを水性媒体中で接触させることを特徴とするＦＧＦもしくはそのムテインの安定化方法等が開示されている。当該文献の実施例には、硫酸化グルカンの添加により水性媒体中でＦＧＦの活性が安定に保持されることが開示されている。
また非特許文献１には、ヘパリン又はヘキシウロニルヘキソサミノグリカン硫酸（ＨＨＳ−４）がｂＦＧＦを不活性化から保護しその生理活性を増強することが記載されているが、当該効果は高濃度のヘパリン（20μg/ml）又はＨＨＳ−４（200μg/ml）を細胞と接触させた場合にのみ見られる一方で、ヘパリンについては高濃度（ｂＦＧＦの濃度にもよるが例えば10μg/ml以上）では毒性によるとみられる細胞増殖抑制が見られることが記載されている。

また特許文献３には、デキストラン多硫酸、ヘパリン等の多硫酸化多糖類又はその生物学的に活性な分子断片が、多分化能細胞を含む前駆細胞の保護、生存率改善及び分化調節に機能することが示されており、多硫酸化多糖類又はその生物学的に活性な分子断片と一緒に前駆細胞を含む組成物が開示されている。当該組成物中の多硫酸化多糖類の濃度は、500 ng/ml〜10 mg/mlの範囲であることが記載されている。当該組成物にはさらにＦＧＦも含まれ得ることが記載されているが、多硫酸化多糖類の上記機能とＦＧＦとの関係については全く開示されていない。
また特許文献４には、グルコースのポリマー等の糖質からなる高分子がヒト間葉系幹細胞の増殖促進に働くことが記載されているが、糖質からなる高分子の有効濃度は2.5 mg/ml〜100 mg/mlの範囲であることが開示されている。

一方、多糖以外の高分子有機化合物の硫酸化物全般が、ＦＧＦを分解、変性、失活等から保護する作用を有するか否か、或いは細胞培養において細胞の増殖に影響を与えるか否かについては全く知られていなかった。

国際公開第９２／１３５２６号パンフレット 特開平０２−１３８２２３号公報 国際公開第２００９／０７０８４２号パンフレット 国際公開第２０１１／１０８９９３号パンフレット

J. Cell. Physiol., 1986, 128, 475-484

本発明は、ＦＧＦを含む幹細胞増殖用培地において、幹細胞の増殖を促進させる手段を提供することを目的とする。更に本発明は、ＦＧＦを含む幹細胞増殖用培地を用いた幹細胞の培養方法等を提供することを目的とする。

本発明者らは、上記目的を達成すべく鋭意検討した結果、硫酸化化合物が、幹細胞増殖用培地中のＦＧＦのタンパク質量低下の抑制に働き得ること、及びＦＧＦの存在下で幹細胞の増殖促進に働くことを見出した。ＦＧＦ存在下での幹細胞の増殖促進効果を発揮するために必要な硫酸化化合物の濃度を詳細に検討したところ、意外にも、ＦＧＦのタンパク質量低下の抑制効果が低い濃度範囲で硫酸化化合物を培地に添加した場合でも、ＦＧＦ存在下での顕著な幹細胞の増殖促進効果が認められる化合物が存在した。本発明者らは、これらの知見に基づいて更に研究を重ねた結果、本発明を完成するに至った。

即ち、本発明は以下の通りである。
［１］線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）を含む幹細胞増殖用培地であって、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を含むことを特徴とする、培地（但し、硫酸化化合物が硫酸化多糖である場合における硫酸化化合物の含有量は２５０ｎｇ／ｍｌ以下）。
［２］硫酸化化合物が、硫酸化糖類である、［１］に記載の培地（但し、硫酸化糖類が硫酸化多糖である場合における硫酸化糖類の含有量は２５０ｎｇ／ｍｌ以下）。
［３］前記硫酸化糖類が、
（Ｉ）１又は２以上の下記一般式（ａ）

（式中、
ｎａは１、２又は３であり、
Ｒ^１ａ及びＲ^３ａは、同一又は異なってそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
ｎａ個のＲ^２ａは、独立してそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基である）
で表される化合物から誘導される構成単位を含み、１又は２以上の硫酸基を含む化合物、
（ＩＩ）下記一般式（ｂ）

（式中、
ｎｂは３〜１００の整数であり、
ｎｂ個のＲ^１ｂは、独立してそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
１又は２以上の硫酸基を含む）
で表される化合物、及び
（ＩＩＩ）下記一般式（ｃ）

（式中、
ｎｃは１、２又は３であり、
Ｒ^１ｃ〜Ｒ^４ｃは、同一又は異なってそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
ｎｃ個のＲ^５ｃは、独立してそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
１又は２以上の硫酸基を含む）
で表される化合物からなる群から選択される少なくとも１つである、［２］に記載の培地。
［４］硫酸化糖類が、硫酸化単糖、硫酸化二糖、硫酸化多糖、硫酸化糖アルコール及び硫酸化シクリトールからなる群から選択される少なくとも１つである、［２］又は［３］に記載の培地。
［５］硫酸化糖類における硫黄の含有度が、５重量％以上である、［２］〜［４］のいずれかに記載の培地。
［６］前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、デキストラン硫酸Ｎａ、セルロースＳＯ_３Ｎａ、キサンタンガムＳＯ_３Ｎａ、ペクチンＳＯ_３Ｎａ、フコイダン、アルギン酸ＳＯ_３Ｎａ、イヌリンＳＯ_３Ｎａ、マルトヘプタオースＳＯ_３Ｎａ、スタキオースＳＯ_３Ｎａ、マルトトリオースＳＯ_３Ｎａ、マルチトールＳＯ_３Ｎａ、スクロース８ＳＯ_３Ｋ、グルコースＳＯ_３Ｎａ、ｍｙｏ−６イノシトールＳＯ_３Ｋ、α−シクロデキストリンＳＯ_３Ｎａ、マンニトールＳＯ_３Ｎａ、キシリトールＳＯ_３Ｎａ及びエリスリトールＳＯ_３Ｎａからなる群から選択される少なくとも１つである、［２］〜［５］のいずれかに記載の培地。
［７］前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、デキストラン硫酸Ｎａ、フコイダン、キサンタンガムＳＯ_３Ｎａ、ペクチンＳＯ_３Ｎａ、マルトヘプタオースＳＯ_３Ｎａ、マルトトリオースＳＯ_３Ｎａ、マルチトールＳＯ_３Ｎａ及びスクロース８ＳＯ_３Ｋからなる群から選択される少なくとも１つである、［６］に記載の培地。
［８］前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、平均分子量２，５００〜７，５００のデキストラン硫酸Ｎａである、［２］〜［７］のいずれかに記載の培地。
［９］前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、スクロース８ＳＯ_３Ｋである、［２］〜［７］のいずれかに記載の培地。
［１０］前記スクロース８ＳＯ_３Ｋの含有量が、２５ｐｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌである、［９］に記載の培地。
［１１］硫酸化化合物が、硫酸化ポリマー（但し、硫酸化糖類は除く）である、［１］に記載の培地。
［１２］前記硫酸化ポリマーが、下記一般式（Ｉ）

（式中、
Ａは、ポリマー構成単位であり、
ｎは１〜１５００の整数であり、
Ｒ^１は、置換基を有していてもよい官能基である）
で表され、且つ１又は２以上のスルホ基を含む化合物である、［１１］に記載の培地。
［１３］硫酸化ポリマーにおける硫黄の含有度が、５重量％以上である、［１１］又は［１２］に記載の培地。
［１４］硫酸化ポリマーが、スルホ基含有ポリビニルアルコール、スルホ基含有ポリビニルアミン、スルホ基含有ポリアリルアミン、スルホ基含有ポリエチレンイミン、スルホ基含有α−ポリリジン、スルホ基含有α−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン(2/8)共重合体、α−ポリグルタミン酸−γ−タウリン、スルホ基含有トリセリン、スルホ基含有セリン、スルホ基含有分岐型ポリグリセリン及びその誘導体、並びにポリエチレンスルホン酸からなる群から選択される少なくとも１つである、［１１］〜［１３］のいずれかに記載の培地。
［１５］スルホ基含有分岐型ポリグリセリンの誘導体又はその薬学的に許容可能な塩が、分岐型ポリグリセリン−モノメチルテトラエチレングリコール−ＳＯ_３Ｎａ、分岐型ポリグリセリン−２−フルフリル−ＳＯ_３Ｎａ又は分岐型ポリグリセリン−イソプロピルオキシ−ＳＯ_３Ｎａである、上記［１４］記載の培地。
［１６］硫酸化化合物が、ジイソシアネート化合物による糖類の架橋重合体の硫酸化物である、［１］に記載の培地。
［１７］ジイソシアネート化合物による糖類の架橋重合体の硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩が、マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａ又はデキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａである、［１６］に記載の培地。
［１８］硫酸化化合物が、糖ラクトンの硫酸化物である、［１］に記載の培地。
［１９］糖ラクトンの硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩が、グルコノラクトン−ＳＯ_３Ｎａである、［１８］に記載の培地。
［２０］硫酸化化合物が、有機酸の硫酸化物である、［１］に記載の培地。
［２１］有機酸の硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩が、酒石酸−ＳＯ_３Ｎａである、［２０］に記載の培地。
［２２］線維芽細胞成長因子が塩基性線維芽細胞成長因子である、［１］〜［２１］のいずれかに記載の培地。
［２３］前記幹細胞が、間葉系幹細胞、胚性幹細胞又は人工多能性幹細胞である、［１］〜［２２］のいずれかに記載の培地。
［２４］ＦＧＦを含む幹細胞増殖用培地を用いた幹細胞の培養方法であって、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を培地に添加することを特徴とする、方法（但し、硫酸化化合物が硫酸化多糖である場合における硫酸化化合物の含有量は２５０ｎｇ／ｍｌ以下）。
［２５］硫酸化化合物が、硫酸化糖類である、［２４］に記載の方法（但し、硫酸化糖類が硫酸化多糖である場合における硫酸化糖類の含有量は２５０ｎｇ／ｍｌ以下）。
［２６］前記硫酸化糖類が、
（Ｉ）１又は２以上の下記一般式（ａ）

（式中、
ｎａは１、２又は３であり、
Ｒ^１ａ及びＲ^３ａは、同一又は異なってそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
ｎａ個のＲ^２ａは、独立してそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基である）
で表される化合物から誘導される構成単位を含み、１又は２以上の硫酸基を含む化合物、
（ＩＩ）下記一般式（ｂ）

（式中、
ｎｂは３〜１００の整数であり、
ｎｂ個のＲ^１ｂは、独立してそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
１又は２以上の硫酸基を含む）
で表される化合物、及び
（ＩＩＩ）下記一般式（ｃ）

（式中、
ｎｃは１、２又は３であり、
Ｒ^１ｃ〜Ｒ^４ｃは、同一又は異なってそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
ｎｃ個のＲ^５ｃは、独立してそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
１又は２以上の硫酸基を含む）
で表される化合物からなる群から選択される少なくとも１つである、［２５］に記載の方法。
［２７］硫酸化糖類が、硫酸化単糖、硫酸化二糖、硫酸化多糖、硫酸化糖アルコール及び硫酸化シクリトールからなる群から選択される少なくとも１つである、［２５］又は［２６］に記載の方法。
［２８］硫酸化糖類における硫黄の含有度が、５重量％以上である、［２５］〜［２７］のいずれかに記載の方法。
［２９］前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、デキストラン硫酸Ｎａ、セルロースＳＯ_３Ｎａ、キサンタンガムＳＯ_３Ｎａ、ペクチンＳＯ_３Ｎａ、フコイダン、アルギン酸ＳＯ_３Ｎａ、イヌリンＳＯ_３Ｎａ、マルトヘプタオースＳＯ_３Ｎａ、スタキオースＳＯ_３Ｎａ、マルトトリオースＳＯ_３Ｎａ、マルチトールＳＯ_３Ｎａ、スクロース８ＳＯ_３Ｋ、グルコースＳＯ_３Ｎａ、ｍｙｏ−６イノシトールＳＯ_３Ｋ、α−シクロデキストリンＳＯ_３Ｎａ、マンニトールＳＯ_３Ｎａ、キシリトールＳＯ_３Ｎａ及びエリスリトールＳＯ₃Ｎａからなる群から選択される少なくとも１つである、［２５］〜［２８］のいずれかに記載の方法。
［３０］前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、デキストラン硫酸Ｎａ、フコイダン、キサンタンガムＳＯ_３Ｎａ、ペクチンＳＯ_３Ｎａ、マルトヘプタオースＳＯ_３Ｎａ、マルトトリオースＳＯ_３Ｎａ、マルチトールＳＯ_３Ｎａ及びスクロース８ＳＯ_３Ｋからなる群から選択される少なくとも１つである、［２９］に記載の方法。
［３１］前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、平均分子量２，５００〜７，５００のデキストラン硫酸Ｎａである、［２５］〜［３０］のいずれかに記載の方法。
［３２］前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、スクロース８ＳＯ_３Ｋである、［２５］〜［３０］のいずれかに記載の方法。
［３３］前記スクロース８ＳＯ_３Ｋの含有量が、２５ｐｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌである、［３２］に記載の方法。
［３４］硫酸化化合物が、硫酸化ポリマー（但し、硫酸化糖類は除く）である、［２４］に記載の方法。
［３５］前記硫酸化ポリマーが、下記一般式（Ｉ）

（式中、
Ａは、ポリマー構成単位であり、
ｎは１〜１５００の整数であり、
Ｒ^１は、置換基を有していてもよい官能基である）
で表され、且つ１又は２以上のスルホ基を含む化合物である、［３４］に記載の方法。
［３６］硫酸化ポリマーにおける硫黄の含有度が、５重量％以上である、［３４］又は［３５］に記載の方法。
［３７］硫酸化ポリマーが、スルホ基含有ポリビニルアルコール、スルホ基含有ポリビニルアミン、スルホ基含有ポリアリルアミン、スルホ基含有ポリエチレンイミン、スルホ基含有α−ポリリジン、スルホ基含有α−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン(2/8)共重合体、α−ポリグルタミン酸−γ−タウリン、スルホ基含有トリセリン、スルホ基含有セリン、スルホ基含有分岐型ポリグリセリン及びその誘導体、並びにポリエチレンスルホン酸からなる群から選択される少なくとも１つである、［３４］〜［３６］のいずれかに記載の方法。
［３８］スルホ基含有分岐型ポリグリセリンの誘導体又はその薬学的に許容可能な塩が、分岐型ポリグリセリン−モノメチルテトラエチレングリコール−ＳＯ_３Ｎａ、分岐型ポリグリセリン−２−フルフリル−ＳＯ_３Ｎａ又は分岐型ポリグリセリン−イソプロピルオキシ−ＳＯ_３Ｎａである、上記［３７］記載の方法。
［３９］硫酸化化合物が、ジイソシアネート化合物による糖類の架橋重合体の硫酸化物である、［２４］に記載の方法。
［４０］ジイソシアネート化合物による糖類の架橋重合体の硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩が、マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａ又はデキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａである、［３９］に記載の方法。
［４１］硫酸化化合物が、糖ラクトンの硫酸化物である、［２４］に記載の方法。
［４２］糖ラクトンの硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩が、グルコノラクトン−ＳＯ_３Ｎａである、［４１］に記載の方法。
［４３］硫酸化化合物が、有機酸の硫酸化物である、［２４］に記載の方法。
［４４］有機酸の硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩が、酒石酸−ＳＯ_３Ｎａである、［４３］に記載の方法。
［４５］線維芽細胞成長因子が塩基性線維芽細胞成長因子である、［２４］〜［４４］のいずれかに記載の方法。
［４６］前記幹細胞が、間葉系幹細胞、胚性幹細胞又は人工多能性幹細胞である、［２４］〜［４５］のいずれかに記載の方法。
［４７］キシリトールＳＯ_３Ｎａ、マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａ及びグルコノラクトン−ＳＯ_３Ｎａからなる群より選択される硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩。
［４８］α−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン（５−ＳＯ_３Ｎａ）(2/8)共重合体、トリセリン−ＳＯ_３Ｎａ及び分岐型ポリグリセリン−イソプロピルオキシ−ＳＯ_３Ｎａからなる群より選択される硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩。

本発明の培地を用いれば、幹細胞を効率よく増殖させることができる。そのため培養中の培地交換の頻度を下げることができ、幹細胞の培養コストを削減することが可能となる。

本発明は、線維芽細胞成長因子を含む幹細胞増殖用培地であって、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を含むことを特徴とする、培地（以後、本発明の培地とも称する）を提供する。

本発明において、硫酸化化合物とは、任意の化合物の硫酸化物であって、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得るものをいう。

本発明において、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩が「ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く」とは、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を含有しないこと以外は同じ条件でＦＧＦ存在下で培養した幹細胞の細胞数を基準（１００％）として、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を培地に含有させた場合に、通常１００％以上、好ましくは１２０％以上の細胞数が得られることをいう。ここでＦＧＦは、後述するような幹細胞の増殖を促進し得る濃度で存在すればよい。ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働くか否かは、実施例に記載の方法等の公知の細胞増殖系を使用する方法で評価することができる。

本発明における硫酸化化合物は、好ましくは、硫酸化糖類、硫酸化ポリマー、ジイソシアネート化合物による糖類の架橋重合体の硫酸化物、糖ラクトンの硫酸化物又は有機酸の硫酸化物である。

本発明の一態様において、硫酸化化合物は、硫酸化糖類である。本発明において、硫酸化糖類は、糖類の硫酸化物である。「糖類」としては、当該技術分野で公知のものであれば特に限定されず、また新規なものであってもよい。糖類は、天然物でも合成品でもよい。本発明の培地に添加される硫酸化糖類は、好ましくは、硫酸化単糖、硫酸化二糖、硫酸化多糖、硫酸化糖アルコール又は硫酸化シクリトールである。

硫酸化糖類の一態様は、
（Ｉ）１又は２以上の下記一般式（ａ）

（式中、
ｎａは１、２又は３であり、
Ｒ^１ａ及びＲ^３ａは、同一又は異なってそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
ｎａ個のＲ^２ａは、独立してそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基である）
で表される化合物から誘導される構成単位を含み、１又は２以上の硫酸基を含む化合物（以下、硫酸化糖類Ｉ）である。

ここで、「一般式（ａ）で表される化合物から誘導される構成単位」とは、単量体である一般式（ａ）で表される化合物から誘導され、硫酸化糖類Ｉに含有される単位である（以下、便宜上、構成単位ａとも称する）。

本明細書中、「官能基」とは、有機化合物の分子内に存在し、その化合物の特徴的な反応性の原因となるような原子又は原子団を意味し、具体的には水素、炭素、窒素、酸素等で構成される。
官能基としては、例えば、水酸基、アルコキシ基、アミノ基、アシルアミノ基、カルボキシル基、エステル基、アミド基、ホルミル基、カルボニル基、ヒドロキシアルキル基、アルキル基（例えば、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ｎ−ペンチル、イソペンチル、ｔｅｒｔ−ペンチル、ネオペンチル、２−ペンチル、３−ペンチル、ｎ−ヘキシル、２−ヘキシル等の直鎖または分岐状のアルキル基、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、シクロヘプチル等の環状のアルキル基、ピロリジン、テトラヒドロフラン、テトラヒドロチオフェン等の複素環式脂肪族等）、アリール基（例えば、フェニル、ナフチル、ピリジル、ピリミジル、ピラジニル、トリアジニル、インドリジル、イミダゾリル、チアゾリル、オキサゾリル、プリニル、キノリニル等の基）等が挙げられる。
「置換基を有していてもよい官能基」における「置換基」としては、通常、糖類を構成する際に利用されるものであれば特に限定されないが、水酸基、アミノ基、カルボキシル基、ホルミル基、カルボニル基等が例示される。さらにこれらの官能基は、硫酸基、リン酸基、アセチル基、アミド基等で置換されていてもよい。置換基が２以上存在する場合は、それらは同一でも異なっていてもよい。

Ｒ^１ａ〜Ｒ^３ａを構成する官能基としては、好ましくは、水酸基、アルコキシ基、アミノ基、アシルアミノ基、カルボキシル基、ヒドロキシアルキル基、アルキル基（例、メチル）が挙げられる。該官能基が有していてもよい置換基としては、水酸基が好ましい。

また一般式（ａ）で表される構成単位中の−ＯＨは、構成単位同士の連結に関与せず硫酸化糖類の末端に位置する場合には、置換基を有していてもよい。置換基としては、例えば、硫酸基、リン酸基、アセチル基、アミド基等が挙げられる。

硫酸化糖類Ｉが、構成単位ａを２以上含む化合物である場合、各構成単位は同一でも異なっていてもよい。構成単位同士は、スペーサー（連結基）を介して連結されていてもよいが、スペーサーを介さずグリコシド結合により連結されていることが好ましい。グリコシド結合は、α型であってもβ型であってもよい。グリコシド結合の様式としては、特に限定されないが、例えば、α−１，２結合、β−１，２結合、α−１，３結合、β−１，３結合、α−１，４結合、β−１，４結合、α−１，５結合、β−１，５結合、α−１，６結合、β−１，６結合等が挙げられ、それらのいずれであってもよく、１分子中に複数の結合様式が含まれていてもよい。

間葉系幹細胞増殖に好ましい硫酸化糖類Ｉにおける構成単位ａの数は、通常１〜５，０００、好ましくは１〜５００、より好ましくは１〜５０、最も好ましくは１〜３０である。多能性幹細胞増殖に好ましい硫酸化糖類Ｉにおける構成単位ａの数は、通常１〜１０万、好ましくは１〜１万、より好ましくは１〜５，０００、最も好ましくは１〜１，０００である。

硫酸化糖類Ｉは、１又は２以上の硫酸基を含む。硫酸化糖類Ｉ全体として１又は２以上の硫酸基を含んでいればよく、構成単位がそれぞれ硫酸基を含む必要はない。硫酸基は、構成単位ａ中のＲ^１ａ〜Ｒ^３ａ中の硫酸基、又は構成単位ａ中の−ＯＨの置換基としての硫酸基であり、通常は水酸基等の硫酸化が可能な任意の官能基の硫酸化によって導入され、その位置は特に限定されない。また硫酸化糖類Ｉ中の硫酸基の数は、構成単位数や硫酸化が可能な官能基の数等によって異なり得るが、好ましくは約１．５残基／構成単位ａである。

構成単位ａを１つ含み、１又は２以上の硫酸基を含む化合物は、硫酸化単糖に相当する。

単糖としては、当該技術分野で公知のものを特に限定なく採用することができ、また新規な単糖であってもよい。糖を構成する炭素の数は限定されず、例えば、四炭糖、五炭糖、六炭糖、七炭糖等のいずれであってもよい。単糖としては、具体的には、例えばグルコース、ガラクトース、マンノース、タロース、イドース、アルトロース、アロース、グロース、キシロース、アラビノース、ラムノース、フコース、フラクトース、リボース、デオキシリボース、グルコサミン、ガラクトサミン、グルクロン酸、ガラクツロン酸等が挙げられる。硫酸化単糖は、これらの単糖の硫酸化物であり、好ましくはグルコースの硫酸化物（例えば、グルコースＳＯ_３Ｈ等）である。

構成単位ａを２以上含み、１又は２以上の硫酸基を含む化合物は、硫酸化二糖又は硫酸化多糖に相当する。

二糖は、前記単糖二分子がグリコシド結合により結合して一分子となった糖であり、当該技術分野で公知のものを特に限定なく採用することができ、また新規な二糖であってもよい。グリコシド結合の様式は特に限定されず、α−１，２結合、β−１，２結合、α−１，３結合、β−１，３結合、α−１，４結合、β−１，４結合、α−１，５結合、β−１，５結合、α−１，６結合、β−１，６結合、α−１，α−１結合、α−１，β−１結合、α−１，β−２結合等のいずれであってもよい。二糖としては、具体的には、例えばスクロース、ラクトース、マルトース、トレハロース、セロビオース、マルチトール等が挙げられる。硫酸化二糖は、これらの二糖の硫酸化物であり、好ましくはスクロースの硫酸化物（例えば、スクロース８ＳＯ_３Ｈ等）およびマルチトールの硫酸化物（例えば、マルチトールＳＯ_３Ｈ等）である。

多糖は、前記単糖三分子以上がグリコシド結合により結合して一分子となった糖であり、当該技術分野で公知のものを特に限定なく採用することができ、また新規な多糖であってもよい。多糖は、前記糖類のうち一種類のみで構成されるものでもよいし、二種類以上が組み合わさって構成されるものでもよい。多糖は、直鎖状、分岐状及び環状のいずれであってもよい。

多糖としては、例えば、アミロース、アミロペクチン、グリコーゲン、デキストリン、α−シクロデキストリン、β−シクロデキストリン、γ−シクロデキストリン、デキストラン、プルラン、セルロース及びその誘導体（例えば、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース等）、ラミナラン、カードラン、カロース、マンナン、グルコマンナン、ガラクトマンナン、キシラン、グルクロノキシラン、アラビノキシラン、アラバン、ガラクタン、ガラクツロナン、キチン、キトサン、キシログルカン、ペクチン酸及びペクチン、アルギン酸、アラビノガラクタン、グリコサミノグルカン（例えば、ヘパリン、ヘパラン硫酸、ヒアルロン酸、コンドロイチン４−硫酸、コンドロイチン６−硫酸、デルマタン硫酸、ケタラン硫酸等）、グアーガム、キサンタンガム、フコイダン、イヌリンなどが挙げられ、デキストラン、セルロース、キサンタンガム、フコイダン、アルギン酸、イヌリン、α−シクロデキストリン、マルトヘプタオース、スタキオース及びマルトトリオースが好ましい。硫酸化多糖は、これらの多糖の硫酸化物であり、上記糖類のうち既に硫酸化されているもの（例えば、ヘパリン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン４−硫酸、コンドロイチン６−硫酸、デルマタン硫酸、ケタラン硫酸、フコイダン等）については、当該糖類自体も含まれる。硫酸化多糖としては、デキストラン硫酸、セルロースの硫酸化物（即ち、セルロースＳＯ_３Ｈ）、キサンタンガムの硫酸化物（即ち、キサンタンガムＳＯ_３Ｈ）、フコイダン、アルギン酸の硫酸化物（即ち、アルギン酸ＳＯ_３Ｈ）、イヌリンの硫酸化物（即ち、イヌリンＳＯ_３Ｈ）、α−シクロデキストリンの硫酸化物（即ち、α−シクロデキストリンＳＯ_３Ｈ）、マルトヘプタオースの硫酸化物（即ち、マルトヘプタオースＳＯ_３Ｈ）、スタキオースの硫酸化物（即ち、スタキオースＳＯ_３Ｈ）及びマルトトリオースの硫酸化物（即ち、マルトトリオースＳＯ_３Ｈ）が好ましい。

硫酸化糖類の別の態様は、
（ＩＩ）下記一般式（ｂ）

（式中、
ｎｂは３〜１００の整数であり、
ｎｂ個のＲ^１ｂは、独立してそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
１又は２以上の硫酸基を含む）
で表される化合物（以下、硫酸化糖類ＩＩ）である。

官能基、並びに該官能基が有していてもよい置換基としては上述と同様のものが挙げられるが、Ｒ^１ｂを構成する官能基として好ましくは、水酸基が挙げられる。

硫酸化糖類ＩＩは、１又は２以上の硫酸基を含む。硫酸基は、上記の一般式（ｂ）におけるＲ^１ｂ中に存在する硫酸基であり、通常は水酸基等の硫酸化が可能な任意の官能基の硫酸化によって導入され、その位置は特に限定されない。また硫酸化糖類ＩＩ中の硫酸基の数は、硫酸化が可能な官能基の数等によって異なり得るが、好ましくは約１．５残基／硫酸化糖類ＩＩである。

硫酸化糖類ＩＩは、硫酸化糖アルコールに相当する。

糖アルコールは、前記単糖のカルボニル基が還元されて生成する化合物である。当該技術分野で公知のものを特に限定なく採用することができ、また新規な糖アルコールであってもよい。糖アルコールとしては、例えば、グリセリン、エリスリトール、トレイトール、アラビニトール、キシリトール、ソルビトール、マンニトール、ボレミトール、ペルセイトール等が挙げられ、エリスリトール、キシリトール及びマンニトールが好ましい。硫酸化糖アルコールは、これらの糖アルコールの硫酸化物であり、グリセリンの硫酸化物（即ち、グリセリンＳＯ_３Ｈ）、エリスリトールの硫酸化物（即ち、エリスリトールＳＯ_３Ｈ）、キシリトールの硫酸化物（即ち、キシリトールＳＯ_３Ｈ）及びマンニトールの硫酸化物（即ち、マンニトールＳＯ_３Ｈ）が好ましい。

硫酸化糖類の別の態様は、
（ＩＩＩ）下記一般式（ｃ）

（式中、
ｎｃは１、２又は３であり、
Ｒ^１ｃ〜Ｒ^４ｃは、同一又は異なってそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
ｎｃ個のＲ^５ｃは、独立してそれぞれ、置換基を有していてもよい官能基であり、
１又は２以上の硫酸基を含む）
で表される化合物である（以下、硫酸化糖類ＩＩＩ）。

官能基、並びに該官能基が有していてもよい置換基としては上述と同様のものが挙げられるが、Ｒ^１ｃ〜Ｒ^５ｃを構成する官能基として、好ましくは、水酸基が挙げられる。

硫酸化糖類ＩＩＩは、１又は２以上の硫酸基を含む。硫酸基は、上記の一般式（ｃ）におけるＲ^１ｃ〜Ｒ^５ｃの１又は２以上に存在する硫酸基であり、通常は水酸基等の硫酸化が可能な任意の官能基の硫酸化によって導入され、その位置は特に限定されない。また硫酸化糖類ＩＩＩ中の硫酸基の数は、硫酸化が可能な官能基の数等によって異なり得るが、好ましくは約１．５残基／硫酸化糖類ＩＩＩである。

硫酸化糖類ＩＩＩは、硫酸化シクリトールに相当する。

シクリトールは、ポリヒドロキシシクロアルカンであり、環状糖アルコール又はシクリットとも呼ばれる。シクリトールとしては、当該技術分野で公知のものを特に限定なく採用することができ、また新規なシクリトールであってもよい。またシクリトールには多くの異性体が知られているが、いずれの異性体であってもよい。環を構成する炭素の数も特に限定されないが、好ましくは六員環である。シクリトールとしては、例えば、イノシトール（１，２，３，４，５，６−シクロヘキサンヘキサオール）、イノシトールの誘導体（ヒドロキシ基をアミノ基、ケトン基、カルボキシル基等に置換した誘導体）等が挙げられるが、イノシトール（例えば、ｍｙｏ−イノシトール等）が好ましい。硫酸化シクリトールは、これらのシクリトールの硫酸化物であり、イノシトールの硫酸化物（例えば、ｍｙｏ−イノシトール６ＳＯ_３Ｈ）が好ましい。

硫酸化糖類における硫黄の含有度は、通常５重量％以上、好ましくは１０重量％以上であり、更に好ましくは１５重量％以上であり、上限は通常４０重量％以下、好ましくは３５重量％以下、より好ましくは３０重量％以下であり、この範囲であればＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。ここで硫黄の含有度は、硫酸化糖類中の硫酸基のみに由来する硫黄の割合を重量％で示したものであり、当該分野に公知の方法（例、ロジソン酸法、元素分析または発光分光分析）により測定することができる。例えば、後述の実施例で使用したスクロース８ＳＯ_３Ｋの硫黄含量は１９．５重量％（硫酸基含有度で４８．８重量％）、デキストラン硫酸Ｎａの硫黄含量は１９．１５重量％（硫酸基含有度４７．９重量％）である。

硫酸化糖類には、光学異性体、立体異性体、互変異性体、回転異性体、あるいは、それらの任意比率による混合物も包含される。これらは自体公知の合成手法、分離手法によりそれぞれを単品として得ることができる。例えば、光学異性体は、光学活性な合成中間体を用いる、または、合成中間体もしくは最終物のラセミ体を常法に従って光学分割することにより得ることができる。
さらに、安定同位体や放射性同位体も含まれる。

本発明の培地に含まれる硫酸化糖類は、薬学的に許容可能な塩の形態であってもよい。かかる塩としては、硫酸化糖類中に存在する硫酸基等と塩基との塩が挙げられる。具体的には、ナトリウム塩、カリウム塩などのアルカリ金属塩；カルシウム塩、マグネシウム塩などのアルカリ土類金属塩；アルミニウム塩、アンモニウム塩などの無機塩基塩；トリメチルアミン、トリエチルアミン、ピリジン、ピコリン、２，６−ルチジン、エタノールアミン、ジエタノールアミン、トリエタノールアミン、シクロヘキシルアミン、ジシクロヘキシルアミン、Ｎ，Ｎ’−ジベンジルエチレンジアミン等との有機塩基塩が挙げられ、フリー体から常法により調製することができる。硫酸化糖類の薬学的に許容可能な塩としては、硫酸基のナトリウム塩又はカリウム塩が好ましく、例えば、スクロース８ＳＯ_３Ｋ、デキストラン硫酸Ｎａ（分子量５，０００、２５，０００、５０万等）、セルロースＳＯ_３Ｎａ、キサンタンガムＳＯ_３Ｎａ、アルギン酸ＳＯ_３Ｎａ、イヌリンＳＯ_３Ｎａ、α−シクロデキストリンＳＯ_３Ｎａ、エリスリトールＳＯ_３Ｎａ、キシリトールＳＯ_３Ｎａ、マンニトールＳＯ_３Ｎａ、ｍｙｏ−イノシトール６ＳＯ_３Ｋ等が挙げられる。

尚、キシリトールＳＯ_３Ｎａは新規化合物である。

硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩の平均分子量は、特に限定されず、採用する硫酸化糖類の種類と塩の種類によって異なるが、間葉系幹細胞増殖に好ましいのは、通常５０〜１００万、好ましくは１００〜７０万、より好ましくは３００〜５０万、最も好ましくは５００〜１０万である。多能性幹細胞増殖に好ましいのは、通常５０〜５０００万、好ましくは１００〜５００万、より好ましくは３００〜２５０万、最も好ましくは５００〜５０万である。平均分子量が大きすぎると（例えば間葉系幹細胞増殖においては１００万を超えると）、一定濃度以上の添加により毒性または細胞接着阻害などによるとみられる細胞増殖抑制がみられる傾向がある。平均分子量は、ゲル浸透クロマトグラフィー等を用いて測定することができる。
例えば、デキストラン硫酸Ｎａの平均分子量としては、通常１，０００〜７０万、好ましくは１，０００〜３０万、より好ましくは１，０００〜１０万、最も好ましくは２，５００〜７，５００である。

本発明の一態様において、硫酸化化合物は、硫酸化ポリマーである。本発明において、硫酸化ポリマーは、任意のポリマーの硫酸化物である。ポリマーは、複数のモノマーが重合することにより生成する化合物であれば、当該技術分野で公知のものであっても、新規なものであってもよく、また天然物でも合成品でもよい。

本発明において、硫酸化ポリマーに硫酸化糖類は含まれない。

ポリマーの種類としては、例えば、ポリエステル、ポリビニル、ポリアミド、ポリアミン、ポリエーテル、ポリカーボネート、ポリアルキル、ポリアリール、ポリイミド、ポリウレタン、エポキシ樹脂等が挙げられ、これらの組合せによるポリマーも本発明におけるポリマーに含まれる。

ポリマーは、直鎖型ポリマー、分岐型ポリマー（例えば、くし型ポリマー、星型ポリマー、樹状ポリマー等）、架橋ポリマー等のいずれの形態のものであってもよい。

ポリマーは、１種類のモノマーが重合することにより生成するものであってもよいし、共重合体であってもよい。共重合体である場合には、重合するモノマーの配列、分岐の有無等は特に限定されず、ランダム共重合体、ブロック共重合体、グラフト共重合体等のいずれであってもよい。

本発明において用いられるポリマーは、該ポリマーを構成するモノマーの種類によっても異なるが、通常、１〜１５００程度、好ましくは３〜１０００程度のモノマーの重合体であり、分子量２００〜４０万程度、好ましくは５００〜１０万程度である。

硫酸化ポリマーは、１又は２以上の「置換基を有していてもよい官能基」を含む。本明細書中、「官能基」とは、有機化合物の分子内に存在し、その化合物の特徴的な反応性の原因となるような原子又は原子団を意味し、具体的には水素、炭素、窒素、酸素等で構成される。
官能基としては、水素、炭素、窒素、酸素等で構成される官能基が挙げられ、例えば、水酸基、アルコキシ基、アミノ基、アシルアミノ基、カルボキシル基、エステル基、アミド基、ホルミル基、カルボニル基、ヒドロキシルアルキル基、アルキル基（例えば、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ｎ−ペンチル、イソペンチル、ｔｅｒｔ−ペンチル、ネオペンチル、２−ペンチル、３−ペンチル、ｎ−ヘキシル、２−ヘキシル等の直鎖または分岐状のアルキル基、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、シクロヘプチル等の環状のアルキル基等）、ピロリジン、テトラヒドロフラン、テトラヒドロチオフェン等の複素環式脂肪族等、アリール又はヘテロアリール基（例えば、フェニル、ナフチル、ピリジニル、ピリミジル、ピラジニル、トリアジニル、インドリジル、イミダゾリル、チアゾリル、オキサゾリル、プリニル、キノリニル等の基）等が挙げられる。硫酸基の導入しやすさから、官能基としては水酸基、アミノ基及びアルキル基が好ましい。官能基が２以上存在する場合は、それらは同一でも異なってもよい。
「置換基を有していてもよい官能基」における「置換基」としては、通常、ポリマーを構成する際に利用されるものであれば特に限定されないが、スルホ基、リン酸基、アシル基、アミド基等が例示される。置換基が２以上存在する場合は、それらは同一でも異なっていてもよい。

硫酸化ポリマーは、上記ポリマーに１又は２以上のスルホ基を導入することによって得ることができる。硫酸化ポリマーを構成するモノマーがそれぞれスルホ基を含む必要はない。スルホ基は、硫酸化ポリマーを構成するモノマー中の官能基であり、モノマー中の水酸基、アミノ基等の硫酸化され得る任意の官能基の硫酸化によって導入されたものも含まれ、その位置は特に限定されない。また硫酸化ポリマー中のスルホ基の数も特に限定されず、重合するモノマーの数（重合度）や硫酸化が可能な官能基の数等によって異なり得る。
ポリマーにスルホ基を導入する方法は、特に限定されない。スルホ基があらかじめ導入されたモノマーを重合化して硫酸化ポリマーを得ることも、モノマーを重合化してポリマーとした後、得られたポリマーを硫酸化することによって硫酸化ポリマーを得ることもできる。硫酸化は当分野で公知の手法に準じて行うことができる。

硫酸化ポリマーの一態様は、下記一般式（Ｉ）

（式中、
Ａは、ポリマー構成単位であり、
ｎは１〜１５００の整数であり、
Ｒ^１は、置換基を有していてもよい官能基である）
で表され、且つ１又は２以上のスルホ基を含む化合物である。

ｎ個のＡは同一（重合体）であっても異なっていても（共重合体）よく、その結合（重合）様式も特に限定されず、直鎖型、分岐型（例えば、くし型、星型、樹状等）、架橋型等のいずれであってもよい。共重合体である場合には、重合するモノマーの配列、分岐の有無等は特に限定されず、ランダム共重合体、ブロック共重合体、グラフト共重合体等のいずれであってもよい。
ｎは、硫酸化ポリマー中の構成単位Ａの数、すなわち重合度を意味するが、本発明においてはｎは１〜１５００、好ましくは３〜１０００、より好ましくは３〜７００である。

式（Ｉ）中Ａは、ポリマー構成単位であれば、特にその構造は限定されないが、例えば炭化水素（脂肪族炭化水素、芳香族炭化水素）に由来し、酸素、窒素等を含み得る。脂肪族炭化水素としては、飽和脂肪族炭化水素（例、エタン、２−メチルブタン、ペンタン、２，２−ジメチルブタン、２，３−ジメチルブタン、ヘキサン、２−メチルペンタン、３−メチルペンタン、２，２−ジメチルペンタン、２，３−ジメチルペンタン、２，４−ジメチルペンタン、３，３−ジメチルペンタン、へプタン、２−メチルヘキサン、３−メチルヘキサン、２，２，３−トリメチルブタン、２，２−ジメチルヘキサン、２，５−ジメチルヘキサン、３，４−ジメチルヘキサン、ヘキサメチルエタン、２−メチルへプタン、４−メチルへプタン、オクタン、２，２，４−トリメチルペンタン、２，３，４−トリメチルペンタン、ノナン、デカン、ウンデカン、ドデカン、トリデカン、テトラデカン、１−ペンタデカン）や不飽和脂肪族炭化水素（例、エチレン、プロピレン、ブテン、ペンテン等のアルケン類、アセチレン、メチルアセチレンなどのアルキン類、ブタジエン、ペンタジエン等のアルカジエン類、シクロペンテン、シクロヘキセンなどのシクロアルケン類）を挙げることができる。芳香族炭化水素としては、ベンゼン、トルエン、キシレン、インデン、ナフタレン、フェナントレンなどを例示することができる。
ポリマー構成単位としては、具体的には、ポリエステル、ポリビニル、ポリアミド、ポリアミン、ポリエーテル、ポリカーボネート、ポリアリール、ポリイミド、ポリウレタン、エポキシ樹脂等の構成単位が挙げられる。

式（Ｉ）中Ｒ^１は、置換基を有していてもよい官能基である。「置換基を有していてもよい官能基」は、上述と同様のものであり、Ｒ^１を構成する官能基としては、好ましくはアルキル基（例、メチル）、カルボニル基、水酸基、アルコキシル基、アミノ基、アシルアミノ基、ヒドロキシルアルキル基、アリール基（例、フェニル）が挙げられる。該官能基が有していてもよい置換基としては、スルホ基が好ましい。

硫酸化ポリマーにおける硫黄の含有度は、通常５重量％以上、好ましくは１０重量％以上であり、更に好ましくは１５重量％以上であり、上限は４０重量％以下であり、この範囲であればＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。ここで硫黄の含有度は、硫酸化ポリマー中の硫黄の割合を重量％で示したものであり、当該分野に公知の方法ロジゾン酸法、元素分析または発光分光分析により測定することができる。例えば、後述の実施例で使用したポリアリルアミンＳＯ_３Ｎａの硫黄含有度は、１９．４３重量％（スルホ基含有度で４８．６重量％）である。

硫酸化ポリマーには、光学異性体、立体異性体、互変異性体、回転異性体、あるいは、それらの任意比率による混合物も包含される。これらは自体公知の合成手法、分離手法によりそれぞれを単品として得ることができる。例えば、光学異性体は、光学活性な合成中間体を用いる、または、合成中間体もしくは最終物のラセミ体を常法に従って光学分割することにより得ることができる。
さらに、安定同位体や放射性同位体も含まれる。

硫酸化ポリマーとしては、例えば、スルホ基含有ポリビニルアルコール（即ち、ポリビニルアルコールＳＯ_３Ｈ）、スルホ基含有ポリビニルアミン（即ち、ポリビニルアミンＳＯ_３Ｈ）、ポリエチレンスルホン酸、スルホ基含有ポリアリルアミン（即ち、ポリアリルアミンＳＯ_３Ｈ）、スルホ基含有ポリエチレンイミン（即ち、ポリエチレンイミンＳＯ_３Ｈ）、スルホ基含有α−ポリリジン（即ち、α−ポリリジンＳＯ_３Ｈ）、スルホ基含有α−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン(2/8)共重合体（即ち、α−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン（５−ＳＯ_３Ｈ）(2/8)共重合体）、α−ポリグルタミン酸−γ−タウリン、スルホ基含有トリセリン（即ち、トリセリンＳＯ_３Ｈ）、スルホ基含有セリン（即ち、セリンＳＯ_３Ｈ）、スルホ基含有分岐型ポリグリセリン（即ち、分岐型ポリグリセリンＳＯ_３Ｈ）及びその誘導体等が挙げられるが、これらに限定されない。ここでスルホ基含有分岐型ポリグリセリンの誘導体とは、スルホ基含有分岐型ポリグリセリン（即ち、分岐型ポリグリセリンＳＯ_３Ｈ）の任意の置換可能な位置に任意の官能基が結合している化合物である。スルホ基含有分岐型ポリグリセリンの誘導体又はその薬学的に許容可能な塩は、具体的には分岐型ポリグリセリン−モノメチルテトラエチレングリコール−ＳＯ_３Ｎａ、分岐型ポリグリセリン−２−フルフリル−ＳＯ_３Ｎａ、分岐型ポリグリセリン−イソプロピルオキシ−ＳＯ_３Ｎａ等が挙げられる。尚、分岐型ポリグリセリン−イソプロピルオキシ−ＳＯ_３Ｎａは新規化合物である。好ましくは、スルホ基含有ポリビニルアルコール、スルホ基含有ポリビニルアミン、ポリエチレンスルホン酸、スルホ基含有ポリアリルアミン、スルホ基含有α−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン（2/8）共重合体、α−ポリグルタミン酸−γ−タウリン及びスルホ基含有トリセリンである。

本発明の培地に含まれる硫酸化ポリマーは、薬学的に許容可能な塩の形態であってもよい。かかる塩としては、スルホ基等と塩基との塩が挙げられる。具体的には、ナトリウム塩、カリウム塩などのアルカリ金属塩；カルシウム塩、マグネシウム塩などのアルカリ土類金属塩；アルミニウム塩、アンモニウム塩などの無機塩基塩；トリメチルアミン、トリエチルアミン、ピリジン、ピコリン、２，６−ルチジン、エタノールアミン、ジエタノールアミン、トリエタノールアミン、シクロヘキシルアミン、ジシクロヘキシルアミン、Ｎ，Ｎ’−ジベンジルエチレンジアミン等との有機塩基塩が挙げられ、フリー体から常法により調製することができる。硫酸化ポリマーの薬学的に許容可能な塩としては、スルホ基のナトリウム塩が好ましく、例えば、ポリビニルアルコールＳＯ_３Ｎａ、ポリビニルアミンＳＯ_３Ｎａ、ポリエチレンスルホン酸Ｎａ等が挙げられる。

硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩の重量平均分子量は、特に限定されず、採用する硫酸化ポリマーの種類と塩の種類によって異なるが、通常２００〜４０万、好ましくは５００〜１０万、より好ましくは５００〜５万である。重量平均分子量が４０万を超えると、培地への溶解性が低下する傾向がある。重量平均分子量は、ゲル浸透クロマトグラフィー等を用いて測定することができる。

また、本発明の一態様において、硫酸化化合物は、ジイソシアネート化合物による糖類の架橋重合体の硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩である。糖類は、上記硫酸化糖類におけるものと同様であり、特に限定されないが、好ましくはマルトトリオース及びデキストランである。ジイソシアネート化合物としては、特に限定されないが、例えば、公知の脂肪族ジイソシアネート、脂環式ジイソシアネート、脂環芳香族ジイソシアネート及び芳香族ジイソシアネートが挙げられ、好ましくは脂肪族ジイソシアネートであり、より好ましくはヘキサメチレンジイソシアネートである。ジイソシアネート化合物による糖類の架橋重合体の硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩としては、好ましくは、マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａ又はデキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａである。
ジイソシアネート化合物による糖類の架橋重合体の硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩は、当該分野において公知の方法により製造することができる。例えば、マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａ、デキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａは、後述の実施例に記載の方法により合成することができる。

尚、マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａは新規化合物である。

また、本発明の一態様において、硫酸化化合物は、糖ラクトンの硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩である。糖ラクトンとは、糖類の酸化反応により誘導される環状エステル化合物をいう。糖類は、上記硫酸化糖類におけるものと同様であり、特に限定されないが、例えば、単糖、二糖及び多糖が挙げられ、好ましくはグルコースである。糖ラクトンの硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩としては、好ましくはグルコノラクトン−ＳＯ_３Ｎａである。
糖ラクトンの硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩は、当該分野において公知の方法により製造することができる。例えば、グルコノラクトン−ＳＯ_３Ｎａは、後述の実施例に記載の方法により合成することができる。

尚、グルコノラクトン−ＳＯ_３Ｎａは新規化合物である。

また、本発明の一態様において、硫酸化化合物は、有機酸の硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩である。有機酸は、水酸基等の硫酸化が可能な置換基を１つ以上有する限り特に限定されず、例えばリンゴ酸、酒石酸、クエン酸などが挙げられるが、好ましくは酒石酸である。有機酸の硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩としては、好ましくは酒石酸−ＳＯ_３Ｎａである。
有機酸の硫酸化物又はその薬学的に許容可能な塩は、当該分野において公知の方法により製造することができる。例えば、酒石酸−ＳＯ_３Ｎａは、後述の実施例に記載の方法により合成することができる。

本発明の培地中の硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩の濃度は、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る限り、任意の範囲に設定することができ、採用する硫酸化化合物の種類によって異なるが、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩の濃度が低いとＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進効果が弱くなる場合があり、その濃度が高いと硫酸化化合物自体の細胞毒性または接着阻害による細胞増殖抑制を伴う場合がある。従って、本発明の培地は、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化又はその薬学的に許容可能な塩を含むことを特徴とする。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が硫酸化多糖である場合、本発明の培地中の濃度が、２．５ｐｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がデキストラン硫酸Ｎａ（平均分子量２，５００〜７，０００）である場合、本発明の培地中の濃度が、２．５ｐｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がスクロース８ＳＯ_３Ｋ（分子量１，２８７）である場合、本発明の培地中の濃度が、２．５ｐｇ／ｍｌ〜２５μｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がマンニトールＳＯ_３Ｎａ（分子量最大７９４）である場合、本発明の培地中の濃度が、５０ｎｇ／ｍｌ〜２００ｎｇ／ｍｌ又は５００ｎｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌ、好ましくは７５ｎｇ／ｍｌ〜１５０ｎｇ／ｍｌ又は２．５μｇ／ｍｌ〜２５μｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がアルギン酸ＳＯ_３Ｎａ（分子量１万〜６０万）である場合、本発明の培地中の濃度が、１００ｎｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌ、好ましくは２５０ｎｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がフコイダン（分子量２０万〜１００万）である場合、本発明の培地中の濃度が、２．５ｎｇ／ｍｌ〜１．０μｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｎｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がセルロースＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、２５０ｐｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌ、好ましくは２.５ｎｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がキサンタンガムＳＯ_３Ｎａ（分子量２００万以上）である場合、本発明の培地中の濃度が、２．５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌ、好ましくは５ｐｇ／ｍｌ〜２００ｐｇ／ｍｌ又は１０ｎｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がペクチンＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、２．５ｎｇ／ｍｌ〜５００ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｎｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がマルトヘプタオースＳＯ_３Ｎａ（分子量最大３４９８）である場合、本発明の培地中の濃度が、２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５０ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がキシリトールＳＯ_３Ｎａ（分子量最大６６２）である場合、本発明の培地中の濃度が、２５ｐｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌ、好ましくは２５０ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がmeso-エリスリトールＳＯ_３Ｎａ（分子量最大５３０）である場合、本発明の培地中の濃度が、２５ｐｇ／ｍｌ〜２．０ｎｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜５００ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜１５０ｐｇ／ｍｌ又は２５ｎｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がマルトトリオースＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、２．５ｐｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩がマルチトールＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、１０ｎｇ／ｍｌ〜５０μｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｎｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩がポリビニルアルコールＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、２５０ｐｇ／ｍｌ〜２００ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５０ｐｇ／ｍｌ〜１００ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩がポリビニルアミンＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、５ｎｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｎｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩がポリエチレンスルホン酸Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、２５０ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｎｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩がポリアリルアミンＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、１２．５ｐｇ／ｍｌ〜２ｎｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜２００ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌ又は２５ｎｇ／ｍｌ〜１００ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩がα−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン（５−ＳＯ_３Ｎａ）(2/8)共重合体である場合、本発明の培地中の濃度が、１２．５ｐｇ／ｍｌ〜２ｎｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜２５０μｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌ又は２５ｎｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩がα−グルタミン酸−γ−タウリンＮａである場合、本発明の培地中の濃度が、１２．５ｐｇ／ｍｌ〜２ｎｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜２５０μｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌ又は２５ｎｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩がトリセリンＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、１２５ｐｇ／ｍｌ〜５ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５０ｐｇ／ｍｌ〜２．５ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩が分岐型ポリグリセリンＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、１０ｐｇ/ｍｌ〜１μｇ/ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ/ｍｌ〜２５０ｎｇ/ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩が分岐型ポリグリセリン−モノメチルテトラエチレングリコール−ＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、１２．５ｐｇ/ｍｌ〜１２．５ｎｇ/ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ/ｍｌ〜２．５ｎｇ/ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化ポリマー又はその薬学的に許容可能な塩が分岐型ポリグリセリン−イソプロピルオキシ−ＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、１２．５ｐｇ/ｍｌ〜５０ｎｇ/ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ/ｍｌ〜２５ｎｇ/ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩がデキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、２５ｐｇ／ｍｌ〜２．０ｎｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜１００ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌ又は１０ｎｇ／ｍｌ〜１００ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩がマルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、２５ｐｇ／ｍｌ〜２．０ｎｇ／ｍｌ又は１００ｎｇ／ｍｌ〜５００ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌ又は１００ｎｇ／ｍｌ〜２５０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩がグルコノラクトン−ＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、２５ｐｇ／ｍｌ〜２．０ｎｇ／ｍｌ、好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

例えば、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩が酒石酸−ＳＯ_３Ｎａである場合、本発明の培地中の濃度が、５００ｐｇ／ｍｌ〜２０ｎｇ／ｍｌ、好ましくは１ｎｇ／ｍｌ〜１０ｎｇ／ｍｌであれば、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る。

硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩は、幹細胞増殖用培地中のＦＧＦのタンパク質量低下の抑制に働き得る。ここでＦＧＦのタンパク質量低下の抑制とは、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩の存在下で一定時間インキュベーションした後、溶液中のＦＧＦタンパク質量を免疫学的に測定した場合に、ＦＧＦタンパク質量の減少が抑制されることをいう。ＦＧＦのタンパク質量低下が抑制されたか否かは、実施例に記載の方法などの公知の方法で評価することができる。例えば、ＦＧＦタンパク質量を低下させないことが公知の条件（例えば４℃７日間等）でインキュベーションした時のＦＧＦタンパク質量を１００％として、インキュベーション後のＦＧＦタンパク質量が１０％未満となる条件（例えば３７℃７日間等）でインキュベーションした場合に、インキュベーション後のＦＧＦタンパク質量が１０％以上（好ましくは３０％以上、より好ましくは５０％以上、最も好ましくは７０％以上）であれば、ＦＧＦタンパク質量の低下が抑制されたということができる。

ＦＧＦのタンパク質量低下を抑制し得る硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩は、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く傾向があるため、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩がＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働くか否かを評価する前に、培養試験に供する硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩の選定のために当該硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩がＦＧＦのタンパク質量低下を抑制し得るか否かを評価してもよい。しかしながら、ＦＧＦのタンパク質量低下を抑制する濃度範囲であっても、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩自体の細胞毒性または接着阻害による細胞増殖抑制が強く表れて、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進しない場合がある。また実施例Ｉ−１やＩＩ−１の方法においてＦＧＦのタンパク質量低下の抑制が確認されない濃度範囲であっても、微弱なＦＧＦのタンパク質量低下の抑制またはそれ以外の硫酸化化合物の働きに起因して、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖が促進される場合がある。従って、本発明の培地中の硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩の濃度範囲については、実施例に記載の方法等の細胞増殖系を使用する方法で決定される。
また、硫酸化化合物の種類によっては、細胞毒性等の細胞に与える影響を低減させるために、本発明の培地中の硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩の濃度範囲を、通常ＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないような低濃度に設定してもよい。

例えば、後述の実施例に示すように、スクロースやキシリトールの硫酸化物又はその塩（例えば、スクロース８ＳＯ_３Ｋ、キシリトールＳＯ_３Ｎａなど）は、２．５μｇ／ｍｌ以下の濃度ではＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないが、２５ｐｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌの濃度範囲であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。
また例えば、ポリビニルアミンの硫酸化物又はその塩（例えば、ポリビニルアミンＳＯ_３Ｎａ）は、２５ｎｇ／ｍｌ以下の濃度ではＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないが、１０ｎｇ／ｍｌ〜２５ｎｇ／ｍｌ（好ましくは１２．５ｎｇ／ｍｌ〜２５ｎｇ／ｍｌ）の濃度範囲であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。

また例えば、ポリアリルアミンの硫酸化物又はその塩（例えば、ポリアリルアミンＳＯ_３Ｎａ）は、２５ｎｇ／ｍｌ以下の濃度ではＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないが、１２．５ｐｇ／ｍｌ〜２ｎｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜２５ｎｇ／ｍｌ（好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜２５ｎｇ／ｍｌ）の濃度範囲であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。

また例えば、α−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン（２／８）共重合体の硫酸化物またはその塩（例えば、α−ポリグルタミン酸メチル／５−ヒドロキシ−α−ノルバリン（５−ＳＯ_３Ｎａ）(2/8)共重合体）は、２５μｇ／ｍｌ以下の濃度ではＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないが、１２．５ｐｇ／ｍｌ〜２ｎｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜２０μｇ／ｍｌ（好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌ又は２５ｎｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌ）の濃度範囲であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。

また例えば、α−ポリグルタミン酸−γ−タウリン又はその塩（例えば、α−ポリグルタミン酸−γ−タウリンＮａ）は、２．５μｇ／ｍｌ以下の濃度ではＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないが、１２．５ｐｇ／ｍｌ〜２ｎｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜２０μｇ／ｍｌ（好ましくは２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌ又は２５ｎｇ／ｍｌ〜２．５μｇ／ｍｌ）の濃度範囲であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。

また例えば、トリセリンの硫酸化物又はその塩（例えば、トリセリンＳＯ_３Ｎａ）は、２．５μｇ／ｍｌ以下の濃度ではＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないが、１２５ｐｇ／ｍｌ〜５ｎｇ／ｍｌ（好ましくは２５０ｐｇ／ｍｌ〜２．５ｎｇ／ｍｌ）の濃度範囲であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。

また例えば、デキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａは、２５ｎｇ／ｍｌ以下の濃度ではＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないが、２５ｐｇ／ｍｌ〜２．０ｎｇ／ｍｌ又は５ｎｇ／ｍｌ〜２５ｎｇ／ｍｌの濃度範囲であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。

また例えば、マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−ＳＯ_３Ｎａは、２５０ｐｇ／ｍｌ以下の濃度ではＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないが、２５ｐｇ／ｍｌ〜２５０ｐｇ／ｍｌの濃度範囲であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。

また例えば、グルコノラクトン−ＳＯ_３Ｎａは、２．５μｇ／ｍｌ以下の濃度ではＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないが、２５ｐｇ／ｍｌ〜２．０ｎｇ／ｍｌの濃度範囲であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。

また例えば、酒石酸−ＳＯ_３Ｎａは、２５０μｇ／ｍｌ以下の濃度ではＦＧＦのタンパク質量低下を抑制しないが、５００ｐｇ／ｍｌ〜２０ｎｇ／ｍｌの濃度範囲であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。

例えば、後述の実施例に示すように、硫酸化ポリマーは、ｎｇ〜μｇ／ｍｌのオーダーでの添加濃度がＦＧＦのタンパク質量低下抑制に必要であるが、ｐｇ／ｍｌの添加濃度であってもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖を促進し得る。

本発明の培地は、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）を含む。ＦＧＦとしては、塩基性線維芽細胞成長因子（ｂＦＧＦ）、酸性線維芽細胞成長因子（ａＦＧＦ）などが挙げられるが、幹細胞の増殖を促進する効果が高いことから、本発明の培地にはｂＦＧＦを用いることが好ましい。

ＦＧＦは任意の動物（例えば、ラット、マウス、モルモット、ウサギ、ヒツジ、ウマ、ブタ、ウシ、サル、ヒトなど）由来であってよいが、培養される幹細胞の種類に応じて適宜選択することができる。ヒト由来の幹細胞を培養する場合にはヒト由来であることが好ましい。ＦＧＦとしては、例えば、ヒトｂＦＧＦ（例えばEndocrine Rev., 8, 95, 1987参照）、ウシｂＦＧＦ（例えばProc. Natl. Acad. Sci. USA, 81, 6963, 1984参照）、マウスｂＦＧＦ（例えばDev. Biol., 138, 454-463, 1990参照）、ラットｂＦＧＦ（例えばBiochem. Biophys. Res. Commun., 157, 256-263, 1988参照）等が例示される。

また本発明の培地に含まれるＦＧＦは、幹細胞の増殖を促進し得る範囲において、単離／精製された天然、合成又は組換えタンパク質、変異体タンパク質（挿入、置換及び欠失変異体を含む）、フラグメント、及び化学修飾されたそれらの誘導体を含む。

本発明の培地に含まれるＦＧＦの濃度は、幹細胞の増殖を促進し得る濃度であれば特に限定されず、ＦＧＦの培地への添加時において通常１ｎｇ／ｍｌ〜３００ｎｇ／ｍｌ、好ましくは１ｎｇ／ｍｌ〜２００ｎｇ／ｍｌ、より好ましくは４ｎｇ／ｍｌ〜１００ｎｇ／ｍｌである。ＦＧＦの濃度が１ｎｇ／ｍｌ未満であると、硫酸化化合物の存在下でも幹細胞の増殖促進効果が得られない傾向がある。またＦＧＦの濃度が３００ｎｇ／ｍｌを超えると、培養コストが大きくなる傾向がある。

本明細書中、「幹細胞」とは、自己複製能及び分化／増殖能を有する未熟な細胞を意味する。幹細胞には、分化能力に応じて、多能性幹細胞（pluripotent stem cell）、複能性幹細胞（multipotent stem cell）、単能性幹細胞（unipotent stem cell）等の亜集団が含まれる。多能性幹細胞とは、生体を構成する全ての組織や細胞へ分化し得る能力を有する細胞を意味する。複能性幹細胞とは、全ての種類ではないが、複数種の組織や細胞へ分化し得る能力を有する細胞を意味する。単能性幹細胞とは、特定の組織や細胞へ分化し得る能力を有する細胞を意味する。

多能性幹細胞としては、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、胚性生殖細胞（ＥＧ細胞）、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）等を挙げることが出来る。体細胞の核を核移植することによって作製された初期胚を培養することによって樹立した幹細胞も、多能性幹細胞としてまた好ましい（Nature, 385, 810 (1997); Science, 280, 1256 (1998); Nature Biotechnology, 17, 456 (1999); Nature, 394, 369 (1998); Nature Genetics, 22, 127 (1999); Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 96, 14984 (1999); Nature Genetics, 24, 109 (2000)）。

複能性幹細胞としては、間葉系幹細胞、造血系幹細胞、神経系幹細胞、骨髄幹細胞、生殖幹細胞等の体性幹細胞等を挙げることが出来る。複能性幹細胞は、好ましくは間葉系幹細胞、より好ましくは骨髄間葉系幹細胞である。間葉系幹細胞とは、骨芽細胞、軟骨芽細胞及び脂肪芽細胞等の間葉系の細胞全て又はいくつかへの分化が可能な幹細胞又はその前駆細胞の集団を広義に意味する。

本発明の培地は、いずれの幹細胞の増殖にも好適に使用することができるが、好ましくは、間葉系幹細胞（例えば、骨髄間葉系幹細胞等）、胚性幹細胞又は人工多能性幹細胞の増殖用である。

また本発明の培地は、いずれの動物由来の幹細胞の増殖にも好適に使用することができる。本発明の培地を使用して培養され得る幹細胞は、例えば、マウス、ラット、ハムスター、モルモット等のげっ歯類、ウサギ等のウサギ目、ブタ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ等の有蹄目、イヌ、ネコ等のネコ目、ヒト、サル、アカゲザル、マーモセット、オランウータン、チンパンジーなどの霊長類等由来の幹細胞であり、好ましくは、霊長類等由来の幹細胞である。

本発明の培地の基礎培地には、自体公知のものを用いることができ、幹細胞の増殖を阻害しない限り特に限定されないが、例えばDMEM、EMEM、IMDM（Iscove's Modified Dulbecco's Medium）、GMEM（Glasgow's MEM）、RPMI-1640、α-MEM、Ham's Medium F-12、Ham's Medium F-10、Ham's Medium F12K、Medium 199、ATCC-CRCM30、DM-160、DM-201、BME、Fischer、McCoy's 5A、Leibovitz's L-15、RITC80-7、MCDB105、MCDB107、MCDB131、MCDB153、MCDB201、NCTC109、NCTC135、Waymouth's MB752/1、CMRL-1066、Williams' medium E、Brinster's BMOC-3 Medium、E8 medium（Nature Methods, 2011, 8, 424-429）、ReproFF2培地（リプロセル社）、及びこれらの混合培地等が挙げられる。また、幹細胞培養用に改変された培地や、上記基礎培地と他の培地との混合物（例えば、実施例に記載の間葉系幹細胞培地（MSCGM）を含んだDMEM等）等を用いてもよい。

本発明の培地は、自体公知の添加物を含むことができる。添加物としては、幹細胞の増殖を阻害するものでない限り特に限定されないが、例えば成長因子（例えばインスリン等）、鉄源（例えばトランスフェリン等）、ポリアミン類（例えばプトレシン等）、ミネラル（例えばセレン酸ナトリウム等）、糖類（例えばグルコース等）、有機酸（例えばピルビン酸、乳酸等）、血清タンパク質（例えばアルブミン等）、アミノ酸（例えばＬ−グルタミン等）、還元剤（例えば２−メルカプトエタノール等）、ビタミン類（例えばアスコルビン酸、ｄ−ビオチン等）、ステロイド（例えばβ−エストラジオール、プロゲステロン等）、抗生物質（例えばストレプトマイシン、ペニシリン、ゲンタマイシン等）、緩衝剤（例えばＨＥＰＥＳ等）等が挙げられる。また、従来から幹細胞の培養に用いられてきた添加物も適宜含むことができる。添加物は、それぞれ自体公知の濃度範囲内で含まれることが好ましい。

本発明の培地は、血清を含んでいてもよい。血清としては、動物由来の血清であれば、幹細胞の増殖を阻害するものでない限り特に限定されないが、好ましくは哺乳動物由来の血清（例えばウシ胎仔血清、ヒト血清等）である。血清の濃度は、自体公知の濃度範囲内であればよい。ただし、血清成分にはヒトＥＳ細胞の分化因子等も含まれていることが知られており、また血清のロット間差により培養結果にばらつきが生じる可能性もあることから、血清の含有量は低いほど好ましく、血清を含まないことが最も好ましい。更に、培養後の幹細胞を医療目的で使用する場合、異種由来成分は血液媒介病原菌の感染源や異種抗原となる可能性があるため、血清を含まないことが好ましい。血清を含まない場合、血清の代替添加物（例えばKnockout Serum Replacement（KSR）（Invitrogen）、Chemically-defined Lipid concentrated（Gibco）等）を用いてもよい。

本発明は更に、ＦＧＦを含む幹細胞増殖用培地を用いた幹細胞の培養方法であって、培地に硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を添加することを特徴とする、方法（以下、本発明の方法とも称する）を提供する。

硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩、ＦＧＦ、幹細胞及び培地については、上述の通りである。

本発明の方法は、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を培地に添加することを特徴とする。硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩の培地への添加濃度は、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る濃度であれば、特に限定されない。

硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩の培地への添加は、培地と幹細胞とを接触させる前であっても後であってもよい。また幹細胞の培養中の培地に適宜追加してもよい。
本発明の方法においては、培養中に培地交換を適宜行なってもよく、その場合、新しい培地にもＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働き得る濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩が添加される。

培地中のＦＧＦの濃度は、幹細胞の増殖を促進し得る濃度であれば特に限定されず、ＦＧＦの培地への添加時において通常１ｎｇ／ｍｌ〜３００ｎｇ／ｍｌ、好ましくは１ｎｇ／ｍｌ〜２００ｎｇ／ｍｌ、より好ましくは４ｎｇ／ｍｌ〜１００ｎｇ／ｍｌである。ＦＧＦの濃度が１ｎｇ／ｍｌ未満であると、硫酸化化合物の存在下でも幹細胞の増殖促進効果が得られない傾向がある。またＦＧＦの濃度が３００ｎｇ／ｍｌを超えると、培養コストが大きくなる傾向がある。

ＦＧＦの培地への添加は、培地と幹細胞とを接触させる前であっても後であってもよく、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を培地に添加する前であっても後であってもよい。また幹細胞の培養中の培地に適宜追加してもよい。

本発明の培地は、あらかじめ硫酸化化合物が添加されており、培養時の作業を減らすことができるため、本発明の培養方法において好ましく用いられ得る。

幹細胞の培養に用いられる培養器は、幹細胞の培養が可能なものであれば特に限定されないが、フラスコ、組織培養用フラスコ、ディッシュ、ペトリデッシュ、組織培養用ディッシュ、マルチディッシュ、マイクロプレート、マイクロウエルプレート、マルチプレート、マルチウエルプレート、マイクロスライド、チャンバースライド、シャーレ、チューブ、トレイ、培養バック、及びローラーボトルが挙げられ得る。

培養器は、細胞接着性であっても細胞非接着性であってもよく、目的に応じて適宜選ばれる。細胞接着性の培養器は、培養器の表面の細胞との接着性を向上させる目的で、細胞外マトリックス（ＥＣＭ、細胞外基質ともいう）等の任意の細胞支持用基質でコーティングされたものであり得る。細胞支持用基質は、幹細胞又はフィーダー細胞（用いられる場合）の接着を目的とする任意の物質であり得る。
フィーダー細胞を使用しない場合には、細胞外基質若しくはその活性断片、又はそれらの機能をミミックする人工物を使用して、培養を行うことが好ましい。
細胞外基質は、培養器の表面と細胞との接着を改善する目的で細胞の培養に通常使用されるものであれば特に限定されず、例えば、ラミニン（ラミニン５１１、ラミニン３３２等）、フィブロネクチン、ビトロネクチン、コラーゲン、エラスチン、アドへサミン等の公知のものを使用することができる。また細胞外基質の活性断片は、該細胞外基質と同等の細胞接着活性を有するその断片であればよく、これらも公知のものを使用することができる。例えば、特開2011-78370号公報に開示されている、ラミニン５１１のＥ８フラグメント、ラミニン３３２のＥ８フラグメント等が挙げられる。細胞外基質及びその活性断片は、市販品であってもよく、例えば、ライフテクノロジーズ、BDファルコン、バイオラミナ等から入手可能である。これらの細胞外基質及びその活性断片は、２種類以上を組み合わせて使用してもよい。また基底膜を過剰産生するマウスＥＨＳ肉腫から抽出、精製した、タンパク質や多糖類を含む複雑な基底膜成分の混合物であるマトリゲル（商品名）を使用してもよい。細胞外基質及びその活性断片は、適当な溶液中に懸濁し、細胞を培養するのに適した容器に塗布すればよい。
細胞外基質の機能をミミックする人工物も、細胞の培養に通常使用されるものであれば特に限定されず、例えば、コーニング社のシンセマックス（登録商標）やウルトラウェブ（登録商標）、シグマアルドリッチ社のHy-STEMシリーズ、ポリリジン、ポリオルニチン等の公知のものを使用することができる。
本発明において使用される細胞外基質若しくはその活性断片、又はそれらの機能をミミックする人工物は、好ましくはマトリゲル、又はラミニン５１１若しくはラミニン５１１の活性断片であり、より好ましくはラミニン５１１の活性断片（即ち、ラミニン５１１のＥ８フラグメント）である。

本発明の方法において、細胞播種方法は特に限定されない。多能性幹細胞を培養する場合には、コロニー播種であってもシングルセル播種であってもよいが、産業レベルで再生医療用の多能性幹細胞を製造するためには、厳密に手順及びスケジュールが管理された条件で、複数の作業者によって作業がなされる必要がある。そのため、播種する細胞数の厳密な調整が可能なシングルセル播種が好ましい。
シングルセル播種を行う場合、多能性幹細胞のコロニーを単一の細胞にまで解離した後、培地中に播種する。シングルセル播種は、自体公知の方法により行えばよい。例えば、細胞剥離液（トリプシン溶液等）で細胞間接着、細胞−基質間接着を弱くしたあと、スクレーパー（IWAKI社、9000-220等）等で細胞を基質から剥がし（この状態で細胞は細胞塊を形成した状態で溶液中に浮遊しており、完全なシングルセルではない）、その後ピペッティングにより細胞をシングルセルにまで解離させた後、培地に播種すればよい。播種時には、多能性幹細胞の生存のために、Y-27632（ナカライテスク社：08945-84）などのROCK阻害剤を培地に添加しておくことが好ましい。ROCK阻害剤は、播種の翌日以降は、多能性幹細胞の増殖に必要ないため、培地から除去することが好ましい。

その他の培養条件は、適宜設定できる。例えば、培養温度は、特に限定されるものではないが約３０〜４０℃、好ましくは約３７℃であり得る。ＣＯ_２濃度は、約１〜１０％、好ましくは約２〜５％であり得る。酸素分圧は、１〜１０％であり得る。

以下に実施例を示して、本発明をより詳細に説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。

＜Ｉ．硫酸化糖類、ジイソシアネート化合物による糖類の架橋重合体の硫酸化物、糖ラクトンの硫酸化物及び有機酸の硫酸化物の評価＞
合成例１ セルロースSO ₃ Na（セルロース硫酸Na）の合成
セルロース（200 mg、メルク社製）を脱水ジメチルホルムアミド（6 ml）中に溶解したのち、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（600 mg、アルドリッチ社製）を加え、70℃で一晩攪拌した。溶媒をデカンテーションにて除き、アセトンを加えて攪拌したのちろ過した。得られた固体を純水（2 ml）に溶解し、30%酢酸ナトリウム水溶液（1.5 ml）を加えて2時間室温で攪拌した。反応液にエタノール（12 ml）を加えたのち、析出物をろ過した。得られた固体を純水（5 ml）に溶解してSpectra/Por MWCO6,000-8,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体（425 mg）を得た。

合成例２〜４ キサンタンガムSO ₃ Na(キサンタンガム硫酸Na)、アルギン酸SO ₃ Na及びイヌリンSO ₃ Naの合成
以下の化合物もセルロースSO₃Naと同様の条件で硫酸化ナトリウム化を行った。

合成例５ α-シクロデキストリンSO ₃ Na（α-CD・SO ₃ Na）の合成
α-シクロデキストリン（α-CD）（200 mg、純正化学社製）を脱水ジメチルホルムアミド（6 ml）中に溶解したのち、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（600 mg）を加え、70℃で一晩攪拌した。溶媒をデカンテーションにて除き、アセトンを加えて攪拌したのちろ過した。得られた固体を純水（2 ml）に溶解し、30%酢酸ナトリウム水溶液（1.5 ml）を加えて2時間室温で攪拌した。反応液にエタノール（12 ml）を加えたのち、析出物をろ過した。得られた固体を純水（5 ml）に溶解してSpectra/Por MWCO1,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体（598 mg）を得た。

合成例６〜８ マルトヘプタオースSO ₃ Na、スタキオースSO ₃ Na、マルトトリオースSO ₃ Naの合成
以下の化合物もα-シクロデキストリンSO₃Naと同様の条件で硫酸化ナトリウム化を行った。合成例６〜８については、透析の際Spectra/Por MWCO100-500を用いた。

合成例９ マルチトールSO ₃ Naの合成
マルチトール（300 mg、東京化成社製）を脱水ジメチルホルムアミド（6 ml）中に溶解したのち、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（1.6g）を加え、70℃で一晩攪拌した。反応液を濃縮し、エタノールを加えて攪拌し濾過した。得られた固体を水に溶解し、炭酸水素ナトリウムを加えてpHを7にして攪拌後した。濃縮を3回行った後凍結乾燥して白色固体(1.17g)を得た。

合成例１１ マンニトールSO ₃ Naの合成
マンニトール（200 mg、関東化学社製）を脱水ジメチルホルムアミド（6 ml）中に溶解したのち、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（600 mg）を加え、70℃で一晩攪拌した。反応液に2規定水酸化ナトリウム水溶液を加え、pHを9にしたのち濃縮した。ゲルろ過カラム（バイオゲルp-2、バイオラッド社製）に担持させ、0.1 M炭酸水素アンモニウム水溶液を用いて溶出した。溶出液を凍結乾燥して白色固体（43 mg）を得た。

合成例１０、１２〜１４ グルコースSO ₃ Na、キシリトールSO ₃ Na、エリスリトールSO ₃ Na、グリセリンSO ₃ Naの合成
以下の化合物もマンニトールSO₃Naと同様の条件で硫酸化ナトリウム化を行った。

合成例１５ マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO ₃ Naの合成
マルトトリオース（200 mg、東京化成社製）とトリエチルアミン（28μl、純正化学社製）を脱水ジメチルホルムアミド（6 mｌ）に加え70℃で攪拌したのち、ヘキサメチレンジイソシアネート（96μl、東京化成社製）を加え、一晩攪拌した。反応液を濃縮し、水を加えて濃縮、凍結乾燥して白色固体（102 mg）を得た。
得られた白色固体（102 mg）を脱水ジメチルホルムアミド（3 ml）と三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（460 mg）を用いて合成例１と同じ条件で、硫酸ナトリウム化を行い、白色固体（332 mg）を得た。

合成例１６ デキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO ₃ Naの合成
デキストラン（200 mg、和光純薬社製）とトリエチルアミン（8.4μl、純正化学社製）を脱水ジメチルホルムアミド（200 mｌ）に加え70℃で攪拌したのち、ヘキサメチレンジイソシアネート（9.6μl、東京化成社製）を加え、一晩攪拌した。反応液を濃縮し、水を加えて濃縮、凍結乾燥して白色固体（193 mg）を得た。
得られた白色固体（100 mg）を脱水ジメチルホルムアミド（20 ml）と三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（1 g）を用いて合成例１と同じ条件で、硫酸ナトリウム化を行い、白色固体（194 mg）を得た。

合成例１７ グルコノラクトン−SO ₃ Naの合成
δ-グルコノラクトン（300 mg、純正化学社製）を脱水ジメチルホルムアミド（6 ml）に溶解したのち、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（1.14 g）を加え、70℃で一晩攪拌した。溶媒を濃縮後アセトンとエタノールでスラリー洗浄したのち、残渣に炭酸水素ナトリウム水溶液を加えて攪拌した。反応液を濃縮し、イオン交換樹脂IRA96SBAGに担持させ0.2規定の水酸化ナトリウム（100 ml）で溶出したのちFPC3500に担持させ水（100 ml）で溶出し、濃縮、乾燥し黄褐色固体（140 mg）を得た。

合成例１８ 酒石酸−SO ₃ Naの合成
酒石酸（300 mg、和光純薬社製）を脱水ジメチルホルムアミドに溶解したのち、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（835 mg）を加え、70℃で一晩攪拌した。溶媒を濃縮し、イオン交換樹脂IRA96SBに担持させ、1%トリエチルアミン水溶液（200 ml）で溶出した。イオン交換樹脂FPC3500に担持させ水（100 ml）で溶出し、濃縮、乾燥して白色固体（430 mg）を得た。

実施例Ｉ−１ 培地中のbFGF安定化評価
１．Lonza無血清培地中のbFGF安定化評価
（１）bFGF安定化評価サンプルの調製
Lonza専用完全合成培地キット（00190632、タカラバイオ社）を使用してプロトコールに従い調製した培地（Lonza無血清培地）中のbFGFの安定化について、表４に記載の被験化合物の添加による影響を評価した。被験化合物をリン酸緩衝生理食塩水に溶解し、これを無血清培地で10倍希釈して表４に記載の濃度に調整した（被験サンプル）。被験サンプルを密閉したファルコンチューブ中で37℃に7日間（表５〜８−２）または3日間（表８−３）静置したのち、ELISA測定にてbFGF濃度を定量した。尚、被験化合物を含まないリン酸緩衝生理食塩水を無血清培地で10倍希釈し、37℃又は4℃に7日間または3日間静置したものをコントロールとした。

（２）培地中のbFGFの定量（ELISA測定）
培地中のbFGFの定量には、市販の測定キット（ヒトbFGF ELISAキット、ELH-bFGF-001、Ray Biotech）を用いた。測定手順は、キットに添付されたプロトコールに従った。検量線用標品液の吸光度から作成した検量線（換算式）より、無血清培地中のbFGF濃度を算出した。尚、表５〜８中の評価基準は以下の通りである。
＋＋＋：bFGF濃度が4℃コントロールのそれに対して70%以上
＋＋：bFGF濃度が4℃コントロールのそれに対して50%以上70%未満
＋：bFGF濃度が4℃コントロールのそれに対して30%以上50%未満
−：bFGF濃度が4℃コントロールのそれに対して10%以上30%未満
×：bFGF濃度が4℃コントロールのそれに対して10%未満

表５〜８に示すように、硫酸化糖類を含まない評価サンプル（デキストリン、デキストラン１５０００、キサンタンガム、イヌリン、マルトトリオース、マルチトール、スクロース、α−シクロデキストリン（α-CD）、マンニトール、キシリトール）では、7日間37℃でインキュベートすることにより、いずれの濃度で添加した場合にも、培地中のbFGF濃度が4℃コントロールの10%未満に低下した。また37℃コントロールでも、培地中のbFGF濃度が4℃コントロールの10%未満に低下した。それに対し、硫酸化糖類を含む評価サンプルでは、培地中のbFGF濃度の低下を抑制する効果が認められた。各化合物について当該効果が認められた濃度は以下の通りである：デキストラン硫酸（5000）、250 pg/ml以上；デキストラン硫酸（25000）、2.5 ng/ml以上；デキストラン硫酸（50万）、2.5 ng/ml以上；カラギーナン、2.5μg/ml以上；セルロースSO₃Na、2.5 ng/ml以上；キサンタンガムSO₃Na、25 ng/ml以上；フコイダン、2.5 ng/ml以上；アルギン酸SO₃Na、2.5 ng/ml以上；イヌリンSO₃Na、2.5 ng/ml以上；マルトヘプタオースSO₃Na、25 ng/ml及び2.5μg/ml以上；スタキオースSO₃Na、250 ng/ml以上；マルトトリオースSO₃Na、2.5 μg/ml以上；マルチトールSO₃Na、250 ng/ml以上；スクロース8SO₃K、25μg/ml以上；グルコースSO₃Na、250μg/ml以上；myo-イノシトール6SO₃K、25μg/ml以上；α-CD SO₃Na、250 ng/ml以上；マンニトールSO₃Na、25 ng/ml以上；キシリトールSO₃Na、250 μg/ml以上；エリスリトールSO₃Na、250 μg/ml以上；グリセリンSO₃Na、2.5 mg/ml以上。
また表８−２に示すように、マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、デキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、グルコノラクトン−SO₃Na又は酒石酸−SO₃Naを含む評価サンプルでは、培地中のbFGF濃度の低下を抑制する効果が認められた。各化合物について当該効果が認められた濃度は以下の通りである：
マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、2.5 ng/ml、250 ng/ml〜2.5 mg/ml；
デキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、25 ng/ml〜2.5 mg/ml；
グルコノラクトン−SO₃Na、25μg/ml、2.5 mg/ml；
酒石酸−SO₃Na、250 ng/ml、2.5 mg/ml。

また表８−３に示すように、meso-エリスリトールSO₃Na、スクロース8SO₃K及びマルトヘプタオースSO₃Naでは、培地中のbFGF濃度の低下を抑制する効果は、37℃で3日間インキュベートした場合、7日間インキュベートした場合よりも低濃度で認められた。各化合物について当該効果が認められた濃度は以下の通りである：
meso-エリスリトールSO₃Na、25μg/ml以上；
スクロース8SO₃K、250 ng/ml以上；
マルトヘプタオースSO₃Na、25 ng/ml以上。

２．Essential 8培地又はReproFF2培地中のbFGF安定化評価
Essential 8専用培地キット（A14666SA、インビトロジェン社）を使用してプロトコールに従い調製した培地（Essential 8培地）または同様に調製したリプロセル社のReproFF2培地中のbFGFの安定化について、各種被験化合物を250 pg/ml〜2.5 mg/mlの濃度で添加した影響を評価した。被験化合物をリン酸緩衝生理食塩水に溶解し、これを無血清培地で10倍希釈して表4に記載の濃度に調整した（被験サンプル）。被験サンプルを密閉したファルコンチューブ中で37℃に7日間静置したのち、ELISA測定にてbFGF濃度を定量した。尚、被験化合物を含まないリン酸緩衝生理食塩水をEssential 8培地またはReproFF2培地で10倍希釈し、37℃または4℃に7日間静置したものをコントロールとした。

Essential 8培地を用いた場合の結果を表８−４及び８−５に示す。硫酸化物を含まない評価サンプル（デキストラン１５０００及びマルトトリオース）では、7日間37℃でインキュベートすることにより、被験化合物を250μg/ml以下の濃度で添加した場合、培地中のbFGF濃度が4℃コントロールの10%未満に低下した。また37℃コントロールでも、培地中のbFGF濃度が4℃コントロールの10%未満に低下した。それに対し、硫酸化糖類、マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、デキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、グルコノラクトン−SO₃Na又は酒石酸−SO₃Naを含む評価サンプルでは、培地中のbFGF濃度の低下を抑制する効果が認められた。各化合物について当該効果が認められた濃度は以下の通りである：
デキストラン硫酸Na（5000）、25 ng/ml以上；
デキストラン硫酸Na（25000）、2.5 ng/ml、250 ng/ml以上；
デキストラン硫酸Na（50万）、250 pg/ml、25 ng/ml以上；
デキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、250 ng/ml以上；
カラギーナン、250 ng/ml以上；
セルロースSO₃Na、25 ng/ml以上；
キサンタンガムSO₃Na、250 ng/ml〜250μg/ml；
フコイダン、25 ng/ml以上；
アルギン酸SO₃Na、250 ng/ml以上；
コンドロイチン硫酸Na、250μg/ml以上；
ペクチンSO₃Na、250 ng/ml以上；
キトサンSO₃Na、250μg/ml以上；
マルトヘプタオースSO₃Na、250 ng/ml以上；
α-CD・SO₃Na、2.5μg/ml以上；
スタキオースSO₃Na、250μg/ml以上；
マルトトリオースSO₃Na、250 ng/ml以上；
マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、250 ng/ml以上；
マルチトールSO₃Na、2.5μg/ml以上；
スクロース8SO₃K、2.5μg/ml以上；
グルコースSO₃Na、2.5μg/ml以上；
マンニトールSO₃Na、2.5μg/ml以上；
エリスリトールSO₃Na、25μg/ml以上；
myo−イノシトール6SO₃K、25μg/ml以上；
グルコノラクトンSO₃Na、25μg/ml以上；
酒石酸SO₃Na、250μg/ml以上。

ReproFF2培地を用いた場合の結果を表８−６に示す。デキストラン硫酸Na（5000）又はデキストラン硫酸Na（25000）を含む評価サンプルでは、培地中のbFGF濃度の低下を抑制する効果が認められた。各化合物について当該効果が認められた濃度は以下の通りである：
デキストラン硫酸Na（5000）、250 pg/ml以上；
デキストラン硫酸Na（25000）、250 pg/ml以上；
デキストラン硫酸Na（50万）、2.5 ng/ml以上；
カラギーナン、2.5 ng/ml以上；
コンドロイチン硫酸Na、250 pg/ml〜2.5 ng/ml、250 ng/ml、25μg/ml以上；
スクロースSO₃K、250 pg/ml以上；
ポリエチレンスルホン酸Na、2.5 ng/ml、250 ng/ml以上。

実施例Ｉ−２ 細胞増殖系での評価
１．間葉系幹細胞増殖系での評価
（１）細胞増殖
間葉系幹細胞専用培地（Lonza社、MSCGM）、又は、非働化したウシ胎児血清（Invitrogen社、GIBCO FBS）及びペニシリン−ストレプトマイシン（Sigma-Aldrich社）を含んだダルベッコ変法イーグル培地（Invitrogen社、GIBCO D-MEM）中で培養したヒト骨髄由来間葉系幹細胞（Lonza社、Human Mesenchymal Stem Cell）を、Lonza無血清培地に切り替えて培養した。このようにして無血清培養に馴化させた間葉系幹細胞を、Lonza無血清培地に懸濁させて、24ウェル培養プレート（日本ベクトンディッキンソン社、Falcon培養プレート）に20,000 cells/ウェルずつ、もしくは、6ウェル培養プレート（日本ベクトンディッキンソン社、Falcon培養プレート）に50,000 cells/ウェルずつ播種し、次にフィルター滅菌し所定の濃度に調整した被験化合物溶液を添加して、5%CO₂/37℃の条件でインキュベーター（Thermo Scientific社、フォーマインキュベーター）内で７〜８日間培養した。培地交換を行う場合は、播種した２〜３日後に行った。この際、被験化合物溶液も播種の時と同様に再度添加した。この際、各種化合物溶液も播種の時と同様に再度添加した。7〜8日間培養後、培地を取り除き、DNA定量を行った。尚、コントロールとして、被験化合物を含まないリン酸緩衝生理食塩水を添加した培地で同様に培養を行なった。

（２）DNAの定量による細胞数の算出
塩化ナトリウム（18.0g）ならびにクエン酸三ナトリウム水和物（8.83g）を純水（100ml）に溶かし、これをさらに純水で20倍に希釈した（塩化ナトリウム−クエン酸ナトリウム緩衝液）。ラウリル硫酸ナトリウム（50.4mg）を塩化ナトリウム−クエン酸ナトリウム緩衝液（252ml）に溶かしてラウリル硫酸ナトリウム溶液とした。
24ウェル培養プレート中の培地を除き、リン酸緩衝生理食塩水で洗浄した後、ラウリル硫酸ナトリウム溶液（500μl/ウェル）を添加し、37℃に4時間置いた。細胞数既知の細胞ペレットにもラウリル硫酸ナトリウム溶液（1.0ml）を添加し、37℃に4時間置いた。24ウェル培養プレート中の細胞について、この溶解液の一部（50μl）を96ウェル黒色マイクロプレートに移した。細胞ペレットを処理した溶液は、ラウリル硫酸ナトリウム溶液で順次希釈して検量線作成用溶液とした。これら検量線作成用溶液の一部（50μl）も、それぞれ96ウェル黒色マイクロプレートに移した。これら試料に、ビスベンズイミドH33258（04907-91、ナカライテスク）を塩化ナトリウム−クエン酸ナトリウム緩衝液で1,000倍希釈したDNA発色溶液を100μl/ウェルずつ添加した。添加して5分以内にマイクロプレートリーダーを用いて蛍光測定を行った（励起波長：355nm、測定波長：460nm）。作成した検量線（換算式）より24ウェルセルカルチャープレート中の細胞数を算出した。評価基準は以下の通りである。
◎：細胞数がコントロールのそれに対して120%以上
○：細胞数がコントロールのそれに対して100%以上120%未満
−：細胞数がコントロールのそれに対して50％以上100%未満
×：細胞数がコントロールのそれに対して50％未満

表９に示すように、硫酸化糖類を添加した培地ではコントロールに比べて細胞増殖が促進された（表９中、◎及び○）。各化合物について当該効果が認められた濃度は以下の通りである：デキストラン硫酸（5000）、25 pg/ml〜2.5μg/ml；デキストラン硫酸（25000）、25 pg/ml〜250 ng/ml；デキストラン硫酸（50万）、25 pg/ml〜250 ng/ml；スクロース8SO₃K、25 pg/ml〜2.5μg/ml；フコイダン、25 ng/ml〜250 ng/ml；アルギン酸SO₃Na（1万-60万）、250 ng/ml〜2.5μg/ml；マンニトールSO₃Na、100 ng/ml、2.5μg/ml〜25μg/ml；セルロースSO₃Na、250 pg/ml〜2.5μg/ml；キサンタンガムSO₃Na、25 pg/ml、25 ng/ml；マルトヘプタオースSO₃Na、25 pg/ml〜2.5 ng/ml、250 ng/ml；キシリトールSO₃Na、25 pg/ml〜2.5μg/ml；meso-エリスリトールSO₃Na、25 pg/ml〜250 pg/ml、25 ng/ml〜250 ng/ml；
マルトトリオースSO₃Na、25 pg/ml〜2.5μg/ml；マルチトールSO₃Na、25 ng/ml、2.5μg/ml。
またマルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、デキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、グルコノラクトン−SO₃Na又は酒石酸−SO₃Naを添加した培地でも、コントロールに比べて細胞増殖が促進された。各化合物について当該効果が認められた濃度は以下の通りである：
デキストラン−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、25 pg/ml〜250 pg/ml、25 ng/ml；
マルトトリオース−ヘキサメチレンジイソシアナート−SO₃Na、25 pg/ml〜250 pg/ml、250 ng/ml；
グルコノラクトン−SO₃Na、25 pg/ml〜250 pg/ml；
酒石酸−SO₃Na、2.5 ng/ml。

２．iPS細胞増殖系での評価
各種被験化合物による細胞増殖効果を人工多能性幹細胞（iPS細胞）を用いて評価した。iPSアカデミアジャパン社より購入した201B7株を、基底膜マトリックス（日本ベクトンディッキンソン社製のマトリゲル、又は大阪大学より購入したラミニン511の活性ドメインを含む断片）をコートした培養容器（日本ベクトンディッキンソン社、Falcon培養シャーレ又はFalcon培養プレート）内にて、ヒトES/iPS細胞用フィーダレス培地（リプロセル社、ReproFF2）中で増殖させた。
この培地にコロニー状態のiPS細胞を懸濁させて、元の培養の2.5〜3.5倍希釈となる量を、基底膜マトリックスをコートした６ウェル培養プレート（日本ベクトンディッキンソン社、Falcon培養プレート）に播種し、次に、フィルター滅菌し所定の濃度に調整した被験化合物溶液を添加して、5%CO₂/37℃の条件でインキュベーター（Thermo Scientific社、フォーマインキュベーター）内で6〜12日間培養した。培地交換を行う場合は、2〜3日毎に行った。この際、被験化合物溶液も播種の時と同様に再度添加した。6〜12日間培養後、培地を取り除き、トリプシン-EDTA（シグマアルドリッチ社）又はTrypLE Select（インビトロジェン社）処理により培養プレートから細胞を剥離し、細胞数を測定した。細胞数の測定は、「改訂細胞培養入門ノート, 77〜83頁, 2010年, 羊土社」に記載の方法により行った。尚、コントロールとして、被験化合物を含まないリン酸緩衝生理食塩水を添加した培地で同様に培養を行った。
また、細胞同士が解離した状態（シングルセル状態）で播種する場合には、フィルター滅菌した被験化合物溶液を、Y-27632（ナカライテスク社）を含んだ培地に所定の濃度となるように添加し、6ウェル培養プレートに分注した。これにY-27632を含んだ培地に懸濁させたiPS細胞を、100,000 cells/ウェルずつ播種し、6〜8日間培養した。播種した翌日に、被験化合物のみ添加した培地（Y-27632不含）に切り替えた。培地交換を行う場合は、2〜3日毎に行った。この際、被験化合物溶液も播種の時と同様に再度添加した。6〜8日間培養後、前記と同様の方法で細胞数を測定した。
また、別のiPS細胞用フィーダレス培地であるEssential 8培地（インビトロジェン社）中で評価を行う場合は、Essential 8培地にヒト血清アルブミン（シグマアルドリッチ社）を加えた培地で培養したiPS細胞を用いた。

評価基準は以下の通りである。
◎：細胞数がコントロールのそれに対して120%以上
○：細胞数がコントロールのそれに対して100%以上120%未満
−：細胞数がコントロールのそれに対して50％以上100%未満
×：細胞数がコントロールのそれに対して50％未満
（空欄：未評価）

表１０−１に示すように、デキストラン硫酸Na（5000）を添加した培地では、コントロールに比べて細胞増殖が促進された（表１０−１中、◎及び○）。マトリゲルを使用してReproFF2培地中で培養した場合、10 ng/ml〜50 ng/mlの濃度で細胞増殖が促進された。マトリゲルを使用してEssential 8培地中で培養した場合、5 ng/ml〜250 ng/mlの濃度で細胞増殖が促進された。ラミニン５１１の活性ドメインを含む断片を使用してEssential 8培地中で培養した場合、50 ng/mlの濃度で細胞増殖が促進された。また、表１０−２に示すように他の硫酸化糖類を培地に添加した場合でも良好なiPS細胞の増殖促進活性が確認された。
従って、硫酸化糖類を培地に添加することにより、使用する培地及び基底膜マトリックスの種類によらず、iPS細胞の増殖を促進することができることが示された。

実施例Ｉ−３ 被験化合物中の硫黄の含有度の測定
被験化合物中の硫黄の含有度（硫黄含量）と細胞増殖促進効果との関連を調べた。硫黄含量は、島津製作所社製のICPS-8100を用いて測定し、ICPS-8000 series Ver1.03を用いて解析した。硫黄の標品は、Accu Standard社製のICP-MS用スタンダードを用いた。0、1、10、30、50 ppmの硫黄標品溶液を作製し、検量線法により、0.01重量％で被験化合物を含む評価サンプルの硫黄含量を測定した。

結果を表１１に示す。細胞増殖促進効果を示す被験化合物の硫黄含量は、いずれも５重量％以上であることが示された。

以上の結果から、ごく微量の硫酸化糖類をbFGFを含有する培地に添加することで、幹細胞の増殖が促進されることが示された。

＜ＩＩ．硫酸化ポリマーの評価＞
合成例１ ポリビニルアルコールSO ₃ Naの合成
ポリビニルアルコール（200 mg、アクロス社製）を脱水ジメチルホルムアミド（6 ml、関東化学社製）中に溶解したのち、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（600 mg、アルドリッチ社製）を加え、70℃で一晩攪拌した。溶媒をデカンテーションにて除き、アセトンを加えて攪拌したのちろ過した。得られた固体を純水（2 ml）に溶解し、30%酢酸ナトリウム水溶液（1.5 ml）を加えて2時間室温で攪拌した。反応液にエタノール（12 ml）を加えたのち、析出物をろ過した。得られた固体を純水（5 ml）に溶解してSpectra/Por MWCO6,000-8,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体（425 mg）を得た。

合成例２ ポリビニルアミンSO ₃ Naの合成
ポリビニルアミン塩酸塩（300 mg、ポリサイエンス社製）を純水（25 ml）に溶解し、2規定水酸化ナトリウムを加えながらpHを9.13に調整したのち、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（2.1 g）を加えて一晩攪拌した。得られた反応液の溶媒をデカンテーションで除いたのち、30%酢酸ナトリウム（20 ml）中で30分攪拌した。反応液を純水（20 ml）に溶かしてSpectra/Por MWCO6,000-8,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体（450 mg）を得た。

合成例３ ポリアリルアミンSO ₃ Naの合成
ポリアリルアミンL（1.5 g、20%水溶液、ナカライ社製）を純水（25 ml）に溶解し、2規定水酸化ナトリウム(5.26ml)を加えたのち、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（2.9 g）を加えて一晩攪拌した。得られた反応液を濃縮したのち、30%酢酸ナトリウム（10 ml）中で2時間攪拌した。反応液を純水（20 ml）に溶かしてSpectra/Por MWCO1,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体（670 mg）を得た。

合成例４ ポリエチレンイミンSO ₃ Naの合成
ポリエチレンイミン（1.07 g, 和光純薬社製）を脱水ジメチルホルムアミド(18 ml)に溶解し、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（4.2 g）を加えて一晩攪拌した。得られた反応液の溶媒をデカンテーションで除いたのち、アセトンでスラリー洗浄し、濾過したのち30%酢酸ナトリウム（20 ml）中で30分攪拌した。反応液を純水（20 ml）に溶かしてSpectra/Por MWCO1,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体（400 mg）を得た。

合成例５ 分岐型ポリグリセリン SO ₃ Naの合成
アルゴン気流下でトリメチロイルプロパン（127mg、東京化成社製）にカリウムメトキシド（23.8mg、関東化学社製）の脱水メタノール（0.095ml、関東化学社製）溶液を加え、15分攪拌した。過剰な溶媒を減圧下で除去し、グリシドール（5.5ml、関東化学社製）を95℃にて6時間かけて滴下した。反応液を一晩攪拌したのち、メタノール（40ml）に溶かして30分攪拌した。ダウエックスモノスフィア650Cを通したのち、Spectra/Por MWCO1,000を用いて３晩透析し、濃縮乾燥して油状物（1.54 g）を得た。得られた油状物(300 mg) を脱水ジメチルホルムアミド(6 ml)に溶解し、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（1.0 g）を加えて一晩攪拌した。得られた反応液の溶媒をデカンテーションで除いたのち、アセトンでスラリー洗浄したのち30%酢酸ナトリウム（20 ml）中で30分攪拌した。反応液を純水（20 ml）に溶かしてSpectra/Por MWCO1,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体（284 mg）を得た。

合成例６ α-L-ポリリジンSO ₃ Naの合成
L-Lys(Z)-NCA(1g、中国・蘇州天馬社に製造委託)を脱水クロロホルム（20ml、関東化学社製）中で攪拌し、0℃でトリエチルアミン（0.047ml、関東化学社製）の脱水クロロホルム（1ml）溶液を加え、3日間攪拌した。反応液をトリフルオロ酢酸(10 ml、純正化学社製)に溶解し、臭化水素酸/酢酸溶液(2 ml、30%、東京化成社製)を加えて一晩攪拌した。脱水エーテル(40 ml、関東化学社製)を加えて析出する固体を濾過し、濃縮乾燥して白色固体(269 mg)を得た。得られた固体を純水（25 ml）に溶解し、1規定水酸化ナトリウム(1.29ml)を加えたのち、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（360 mg）を加えて一晩攪拌した。得られた反応液を濃縮したのち、酢酸ナトリウム（212 mg）を加えて2時間攪拌した。反応液を純水（20 ml）に溶かしてSpectra/Por MWCO100-500を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体（82 mg）を得た。

合成例７ α−Ｌ−ポリグルタミン酸メチル／α−Ｌ−５−ヒドロキシノルバリン（5-SO ₃ Na）(2/8)共重合体）[本明細書中、ポリＧｌｕ／α−５−ＯＨ−ノルバリンSO ₃ Naと略記する場合もある]の合成
γ-L-メチル-Glu-NCA（10g、中央化成社製）をアルゴン気流下で脱水ジクロロエタン（50 ml、関東化学社製）に溶解し、0℃でN,N-ジメチル-1,3-プロパンジアミン（0.007ml、関東化学社製）のジクロロエタン（0.07 ml）溶液を加え、3日間攪拌し、γ-L-メチル-ポリグルタミン酸のジクロロエタン溶液を得た。得られた反応液の一部（3 g）に脱水ジクロロエタン(9 ml)を加えアルゴン雰囲気下で水素化ホウ素リチウムテトラヒドロフラン溶液(0.7 ml、3 mol/L、関東化学社製)を滴下し一晩攪拌した。反応液に飽和塩化アンモニウム水溶液を加えしばらく攪拌した後、1規定塩酸により反応液のpHを1にした。反応液を濃縮し、メタノール/エーテル（25 ml/25 ml）中でスラリー洗浄した後濾過し、純水、メタノールで洗浄して白色固体(232 mg)を得た。得られた固体(200 mg)を脱水ジメチルホルムアミド(10 ml)に溶解し、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（700 mg）を加えて70℃で一晩攪拌した。得られた反応液に30%酢酸ナトリウム（5 ml）加えて30分攪拌した。反応液を純水（20 ml）に溶かしてSpectra/Por MWCO1,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体（130 mg）を得た。

合成例８ α−Ｌ−ポリグルタミン酸−γ−タウリンの合成
合成例７で合成したγ-メチル-ポリグルタミン酸（250 mg）を脱水ジメチルホルムアミド（10 ml）中に溶解したのち、O-（7-アザ-1H-ベンゾトリアゾール-1-イル）-N',N',N',N'-テトラメチルウロニウムヘキサフルオロリン酸塩（690 mg、渡辺化学社製）、1-ヒドロキシ-7-アザベンゾトリアゾール（247mg、渡辺化学社製）、ジイソプロピルエチルアミン（317μl、東京化成社製）、タウリン（227mg、和光純薬社製）を加え、室温で一晩攪拌した。反応終了後、純水（4.5ml）に溶解して、Spectra/Por MWCO1,000を用いて透析した。得られた溶液をさらに酸性樹脂（オルガノ社製）を用いて中和し、凍結乾燥して白色固体（90mg)を得た。

合成例９ Ｌ−トリセリンSO ₃ Naの合成
L-H-Ser-Ser-Ser-OH（300 mg、バッケム社製）を脱水ジメチルホルムアミド（10 ml）に溶解し、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体（897 mg）を加えて70℃で一晩攪拌した。反応液を濃縮したのち、2規定水酸化ナトリウム溶液でpHを9に調整し、濃縮した。得られた固体をゲルろ過カラム（バイオゲルp-2、バイオラッド社製）に担持させ、0.1 M炭酸水素アンモニウム水溶液を用いて溶出した。溶出液を凍結乾燥して白色固体（400mg）を得た。

合成例１０ 分岐型ポリグリセリン−モノメチルテトラエチレングリコール−SO ₃ Naの合成
アルゴン気流下でテトラエチレングリコールモノメチルエーテル（15g、東京化成社製）を脱水テトラヒドロフラン(45ml、関東化学社製）に溶解し、水素化ナトリウム(1.88g、関東化学社製）を少量ずつ加え、3時間攪拌した。エピクロロヒドリン(31g、東京化成社製）をゆっくり滴下し、二晩攪拌した。反応液をセライトろ過、塩化メチレン(200ml）で洗浄し、濾液を水(200ml）で2回洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過、濃縮した。酢酸エチルでシリカゲルカラム精製を行い、濃縮、乾燥して無色油状物(4.5g）を得た。
アルゴン気流下でトリメチロイルプロパン(127mg)にカリウムメトキシド(23.8mg)の脱水メタノール(0.095ml)溶液を加え、15分攪拌した。過剰な溶媒を減圧下で除去し、グリシドール(5.5ml)を95℃にて6時間かけて滴下した。反応液を一晩攪拌した後、合成したグリシジルモノメチルテトラエチレングリコール(4.5ml)を95℃にて6時間かけて滴下し、反応液をさらに一晩攪拌した。メタノール(40ml）に溶かして30分攪拌し、ダウエックスモノスフィア650Cに通したのち、Spectra/Por MWCO 1,000を用いて一晩透析し、濃縮乾燥して無色透明な油状物(4.68g)を得た。得られた油状物(300mg)を脱水ジメチルホルムアミド(6ml）に溶解し、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体(1g)を加えて70℃で一晩攪拌した。得られた反応液の溶媒をデカンテーションで除いたのち、アセトンでスラリー洗浄し、30%酢酸ナトリウム(6ml)と水(50ml)を加えて30分攪拌した。反応液を濃縮し、エタノールで洗い、Spectra/Por MWCO 1,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体(280mg）を得た。

合成例１１ 分岐型ポリグリセリン−２−フルフリル−SO ₃ Naの合成
アルゴン気流下でトリメチロイルプロパン(127mg)にカリウムメトキシド(23.8mg)の脱水メタノール(0.095ml)溶液を加え、15分攪拌した。過剰な溶媒を減圧下で除去し、グリシドール(5.5ml)を95℃にて6時間かけて滴下した。反応液を一晩攪拌した後、グリシジルイソプロピルエーテル(4.55ml、東京化成社製)を95℃にて6時間かけて滴下し、反応液をさらに一晩攪拌した。メタノール(40ml）に溶かして30分攪拌し、ダウエックスモノスフィア650Cに通したのち、Spectra/Por MWCO 1,000を用いて一晩透析し、濃縮乾燥して黄色透明な油状物(4.58g)を得た。得られた油状物(300mg)を脱水ジメチルホルムアミド(6ml）に溶解し、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体(1g)を加えて70℃で一晩攪拌した。得られた反応液の溶媒をデカンテーションで除いたのち、アセトンでスラリー洗浄し、30%酢酸ナトリウム(6ml)と水(50ml)を加えて30分攪拌した。反応液を濃縮し、エタノールで洗い、Spectra/Por MWCO1,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して白色固体(266mg）を得た。

合成例１２ 分岐型ポリグリセリン−イソプロピルオキシ−SO ₃ Naの合成
アルゴン気流下でトリメチロイルプロパン(127mg)にカリウムメトキシド(23.8mg)の脱水メタノール(0.095ml)溶液を加え、15分攪拌した。過剰な溶媒を減圧下で除去し、グリシドール(5.5ml)を95℃にて6時間かけて滴下した。反応液を一晩攪拌した後、グリシジルフルフリルエーテル(5.46ml、アルドリッチ製)を95℃にて6時間かけて滴下し、反応液をさらに一晩攪拌した。メタノール(40ml）に溶かして30分攪拌し、ダウエックスモノスフィア650Cに通したのち、Spectra/Por MWCO 1,000を用いて一晩透析し、濃縮乾燥して黄色透明な油状物(931mg)を得た。得られた油状物(300mg)を脱水ジメチルホルムアミド(6ml）に溶解し、三酸化硫黄トリメチルアミン錯体(1g)を加えて70℃で一晩攪拌した。得られた反応液の溶媒をデカンテーションで除いたのち、アセトンでスラリー洗浄し、30%酢酸ナトリウム(6ml)と水(50ml)を加えて30分攪拌した。反応液を濃縮し、エタノールで洗い、Spectra/Por MWCO 1,000を用いて一晩透析し、凍結乾燥して黒褐色固体(272mg）を得た。

実施例ＩＩ−１ 培地中のbFGF安定化評価
（１）bFGF安定化評価サンプルの調製
Lonza専用完全合成培地キット（00190632、タカラバイオ社）を使用してプロトコールに従い調製した培地（Lonza無血清培地）中のbFGFの安定化について、表１２に記載の被験化合物の添加による影響を評価した。被験化合物をリン酸緩衝生理食塩水に溶解し、これを無血清培地で10倍希釈して表１３に記載の濃度に調整した（被験サンプル）。被験サンプルを密閉したファルコンチューブ中で37℃に7日間静置したのち、ELISA測定にてbFGF濃度を定量した。尚、被験化合物を含まないリン酸緩衝生理食塩水を無血清培地で10倍希釈し、37℃又は4℃に7日間静置したものをコントロールとした。

（２）培地中のbFGFの定量（ELISA測定）
培地中のbFGFの定量には、市販の測定キット（ヒトbFGF ELISAキット、ELH-bFGF-001、Ray Biotech）を用いた。測定手順は、キットに添付されたプロトコールに従った。検量線用標品液の吸光度から作成した検量線（換算式）より、無血清培地中のbFGF濃度を算出した。尚、表１３中の評価基準は以下の通りである。
＋＋＋：bFGF濃度が4℃コントロールのそれに対して70%以上
＋＋：bFGF濃度が4℃コントロールのそれに対して50%以上70%未満
＋：bFGF濃度が4℃コントロールのそれに対して30%以上50%未満
-：bFGF濃度が4℃コントロールのそれに対して10%以上30%未満
×：bFGF濃度が4℃コントロールのそれに対して10%未満

表１３に示すように、硫酸化ポリマーを含まない評価サンプル（ポリビニルアルコール）では、7日間37℃でインキュベートすることにより、いずれの濃度で添加した場合にも、培地中のbFGF濃度が4℃コントロールの10%未満に低下した。また37℃コントロールでも、培地中のbFGF濃度が4℃コントロールの10%未満に低下した。それに対し、硫酸化ポリマーを含む評価サンプルでは、培地中のbFGF濃度の低下を抑制する効果が認められた。各化合物について当該効果が認められた濃度は以下の通りである：ポリビニルアルコールSO₃Na、25 pg/ml以上；ポリビニルアミンSO₃Na、25 ng/ml以上；ポリアリルアミンSO₃Na、250 ng/ml以上；ポリエチレンイミンSO₃Na、250 pg/ml及び 2.5 mg/ml以上；ポリエチレンスルホン酸Na、25 ng/ml以上；分岐型ポリグリセリンSO₃Na、25 ng/ml以上；ポリリジンSO₃Na、2.5μg/ml以上；α−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン（５−SO₃Na）（2/8）共重合体、250μg/ml以上；α−ポリグルタミン酸−γ−タウリン、25μg/ml以上；トリセリンSO₃Na、25μg/ml以上；セリンSO₃Na、25μg/ml以上。

２．Essential 8培地又はReproFF2培地中のbFGF安定化評価
Essential 8専用培地キット（A14666SA、インビトロジェン社）を使用してプロトコールに従い調製した培地（Essential 8培地）または同様に調製したリプロセル社のReproFF2培地中のbFGFの安定化について、各種被験化合物を250 pg/ml〜2.5 mg/mlの濃度で添加した影響を評価した。被験化合物をリン酸緩衝生理食塩水に溶解し、これを無血清培地で10倍希釈して表１２に記載の濃度に調整した（被験サンプル）。被験サンプルを密閉したファルコンチューブ中で37℃に7日間静置したのち、ELISA測定にてbFGF濃度を定量した。尚、被験化合物を含まないリン酸緩衝生理食塩水をEssential 8培地またはReproFF2培地で10倍希釈し、37℃または4℃に7日間静置したものをコントロールとした。

Essential 8培地を用いた場合の結果を表１４−１に示す。培地中のbFGF濃度の低下を抑制する効果が認められた各化合物の濃度は以下の通りである。
ポリビニルアルコールSO₃Na、25 ng/ml以上；
ポリビニルアミンSO₃Na、250 ng/ml以上；
ポリアリルアミンSO₃Na、250 ng/ml以上；
ポリエチレンイミンSO₃Na、2.5 mg/ml以上；
ポリエチレンスルホン酸Ｎａ、250 ng/ml以上；
分岐型ポリグリセリンSO₃Na、250 ng/ml以上；
分岐型ポリグリセリン−２−フルフリル−SO₃Na、25 ng/ml以上；
分岐型ポリグリセリン−メトキシテトラエチレングリコール−SO₃Na、250 ng/ml以上；
ポリリジンSO₃Na、25 μg/ml以上；
α−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン（５−SO₃Na、）（2/8）共重合体、25 μg/ml以上；
トリセリンSO₃Na、25 μg/ml以上。

ReproFF2培地を用いた場合の結果を表１４−２に示す。
ポリエチレンスルホン酸Ｎａは、2.5 μg/ml以上の添加により培地中のbFGF濃度の低下を抑制する効果が認められた。

実施例ＩＩ−２ 細胞増殖系での評価
１．間葉系幹細胞増殖系での評価
上記実施例Ｉ−１の１．と同様にして行なった。結果を表１５に示す。

表１５に示すように、硫酸化ポリマーを添加した培地ではコントロールに比べて細胞増殖が促進された（表１５中、◎及び○）。各化合物について当該効果が認められた濃度は以下の通りである：ポリビニルアルコールSO₃Na、250 pg/ml〜100 ng/ml；ポリビニルアミンSO₃Na、25 ng/ml〜250 ng/ml；ポリアリルアミンSO₃Na、25 pg/ml〜250 pg/ml、25 ng/ml；ポリエチレンスルホン酸Na、25 ng/ml〜250 ng/ml；α−ポリグルタミン酸メチル／α−５−ヒドロキシノルバリン(5-ＳＯ_３Ｎａ)(2/8)共重合体）、25 pg/ml〜250 pg/ml、25 ng/ml〜2.5μg/ml；α−グルタミン酸−γ−タウリン、25 pg/ml、25 ng/ml〜2.5μg/ml；トリセリンSO₃Na、250 pg/ml〜2.5 ng/ml;分岐型ポリグリセリンSO₃Na、25 pg/ml〜25 ng/ml、250 ng/ml;分岐型ポリグリセリン−モノメチルテトラエチレングリコール−SO₃Na、25 pg/ml〜2.5 ng/ml;分岐型ポリグリセリン−イソプロピルオキシ−SO₃Na、25 pg/ml〜25 ng/ml。

２．iPS細胞増殖系での評価
上記I−２の２．と同様にして行なった。結果を表１６に示す。

表１６に示すように、各種硫酸化ポリマーを添加した培地では、コントロールに比べて細胞増殖が促進された（表１６中、◎及び○）。

以上の結果から、ごく微量の硫酸化ポリマーをbFGFを含有する培地に添加することで、幹細胞の増殖が促進されることが示された。

実施例ＩＩ-３ 被験化合物中の硫黄の含有度の測定
上記Ｉ−３と同様にして行なった。結果を表１７に示す。

本発明によれば、ＦＧＦを含む培地を用いた幹細胞の培養において、従来用いられてきた培地よりも効率よく幹細胞を増殖させることができる。本発明によれば培養中の培地交換の頻度を下げることができることから、幹細胞の培養コストを削減することが可能となり、医療・研究開発等における幹細胞のさらなる利用促進に寄与する。

本出願は、日本で出願された特願２０１２−０８２２０５（出願日：２０１２年３月３０日）、特願２０１２−０８２６０９（出願日：２０１２年３月３０日）及び特願２０１３−０１６５０５（出願日：２０１３年１月３１日）を基礎としており、その内容は本明細書に全て包含されるものである。

Claims (16)

1. 線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）を含む幹細胞増殖用培地であって、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を含むことを特徴とする、培地であって、ここで、硫酸化化合物が、デキストラン硫酸Ｎａ、セルロースＳＯ_３Ｎａ、キサンタンガムＳＯ_３Ｎａ、ペクチンＳＯ_３Ｎａ、フコイダン、アルギン酸ＳＯ_３Ｎａ、イヌリンＳＯ_３Ｎａ、マルトヘプタオースＳＯ_３Ｎａ、スタキオースＳＯ_３Ｎａ、マルトトリオースＳＯ_３Ｎａ、マルチトールＳＯ_３Ｎａ、スクロース８ＳＯ_３Ｋ、グルコースＳＯ_３Ｎａ、ｍｙｏ−６イノシトールＳＯ_３Ｋ、α−シクロデキストリンＳＯ_３Ｎａ、マンニトールＳＯ₃Ｎａ、キシリトールＳＯ_３Ｎａ及びエリスリトールＳＯ₃Ｎａからなる群から選択される少なくとも１つの硫酸化糖類であり、かつ、
   硫酸化糖類の含有量が、２５０ｎｇ／ｍｌ以下である、培地。
2. 硫酸化糖類における硫黄の含有度が、５重量％以上である、請求項１に記載の培地。
3. 前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、平均分子量２，５００〜７，５００のデキストラン硫酸Ｎａである、請求項１又は２に記載の培地。
4. 前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、スクロース８ＳＯ_３Ｋである、請求項１〜３のいずれか一項に記載の培地。
5. 前記スクロース８ＳＯ_３Ｋの含有量が、２５ｐｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌである、請求項４に記載の培地。
6. 線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）を含む幹細胞増殖用培地であって、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を含むことを特徴とする、培地であり、ここで、硫酸化化合物が、酒石酸−ＳＯ_３Ｎａである、培地。
7. 線維芽細胞成長因子が塩基性線維芽細胞成長因子である、請求項１〜６のいずれか一項に記載の培地。
8. 前記幹細胞が、間葉系幹細胞、胚性幹細胞又は人工多能性幹細胞である、請求項１〜７のいずれか一項に記載の培地。
9. ＦＧＦを含む幹細胞増殖用培地を用いた幹細胞の培養方法であって、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を培地に添加することを特徴とする、方法であって、ここで、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩が、デキストラン硫酸Ｎａ、セルロースＳＯ_３Ｎａ、キサンタンガムＳＯ_３Ｎａ、ペクチンＳＯ_３Ｎａ、フコイダン、アルギン酸ＳＯ_３Ｎａ、イヌリンＳＯ_３Ｎａ、マルトヘプタオースＳＯ_３Ｎａ、スタキオースＳＯ_３Ｎａ、マルトトリオースＳＯ_３Ｎａ、マルチトールＳＯ_３Ｎａ、スクロース８ＳＯ_３Ｋ、グルコースＳＯ_３Ｎａ、ｍｙｏ−６イノシトールＳＯ_３Ｋ、α−シクロデキストリンＳＯ_３Ｎａ、マンニトールＳＯ₃Ｎａ、キシリトールＳＯ_３Ｎａ及びエリスリトールＳＯ₃Ｎａからなる群から選択される少なくとも１つの硫酸化糖類であり、かつ、
   硫酸化糖類の含有量が２５０ｎｇ／ｍｌ以下である、方法。
10. 硫酸化糖類における硫黄の含有度が、５重量％以上である、請求項９に記載の方法。
11. 前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、平均分子量２，５００〜７，５００のデキストラン硫酸Ｎａである、請求項９又は１０に記載の方法。
12. 前記硫酸化糖類又はその薬学的に許容可能な塩が、スクロース８ＳＯ_３Ｋである、請求項９又は１０に記載の方法。
13. 前記スクロース８ＳＯ_３Ｋの含有量が、２５ｐｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌである、請求項１２に記載の方法。
14. ＦＧＦを含む幹細胞増殖用培地を用いた幹細胞の培養方法であって、ＦＧＦ存在下で幹細胞の増殖促進に働く濃度で硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩を培地に添加することを特徴とする、方法であり、ここで、硫酸化化合物又はその薬学的に許容可能な塩が、酒石酸−ＳＯ_３Ｎａである、方法。
15. 線維芽細胞成長因子が塩基性線維芽細胞成長因子である、請求項９〜１４のいずれか一項に記載の方法。
16. 前記幹細胞が、間葉系幹細胞、胚性幹細胞又は人工多能性幹細胞である、請求項９〜１５のいずれか一項に記載の方法。