JP7373100B2 - 細胞培養用基材及び培養方法 - Google Patents
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Description
本発明は、細胞培養分野における、細胞培養用基材及び培養方法に関するものである。
個体のすべての細胞に分化しうる分化多能性（pluripotency）を保ちつつ、無限に増殖できる自己複製能を併せ持つ胚性幹細胞（ＥＳ細胞）がヒトにおいて樹立されて以来、ＥＳ細胞を、インビトロで主要臓器細胞へと分化誘導する研究が盛んに行われている。また、体細胞へ特定の遺伝子を導入することにより、ＥＳ細胞のように分化多能性と自己複製能を併せ持つヒト人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）が作られてからは、ＥＳ細胞に加え、ｉＰＳ細胞を用いて、インビトロで主要臓器細胞へと分化誘導する研究が盛んに行われている。
これらの多能性幹細胞は、様々な組織や臓器の細胞に分化する能力とほぼ無限に増殖する能力をもつため、病気の原因の解明、新しい薬の開発、細胞移植治療などの再生医療への応用などが期待されている。特に、ヒト胚性幹細胞（ｈＥＳＣ）やヒト人工多能性幹細胞（ｈｉＰＳＣ）などのヒト多能性幹細胞（ｈＰＳＣ）は、創薬や再生医療への応用が期待され、近年、多くの研究・開発がなされている（非特許文献１：D. A. Robinton et al., Nature. 2012 Jan 18; 481(7381): 295-305.）。
多能性幹細胞を安全に、かつ再現性良く培養し、増殖させることは、これらの細胞を応用する上で必須の技術となっている。特に、再生医療の分野においては、幹細胞を未分化状態で多量に扱う必要があることから、天然及び合成の高分子を用いて多能性幹細胞の増殖を支持すると同時に多分化能を維持する技術について様々な研究が行われている（非特許文献２：Fan Y., et al., Stem Cell Rev. 2015 Feb;11(1):96-109.、非特許文献３：Chen YM, et al., Sci Rep. 2017 Mar 23;7:45146.）。
未分化状態でｈＰＳＣを維持するために現在最もよく使用されている手法は、支持細胞（例えば、マウス胚性線維芽細胞（ＭＥＦ）や、ヒト包皮線維芽細胞、ヒト脂肪由来細胞など）上で培養を行うという方法である（非特許文献４：L.G. Villa-Diaz et al., Stem Cells. 2013 Jan; 31(1): 1-7.）。しかし、支持細胞を用いたｈＰＳＣの培養は、時間がかかり、支持細胞のロットごとにばらつきが生じるという問題があり、また、支持細胞からの物質のコンタミの懸念もある。
或いは、ｈＰＳＣを、細胞外マトリックス上、例えば、マトリゲル上もしくはゲルトレックス上において培養を行うという方法である。マトリゲルなどの細胞培養用の細胞外マトリックスは、主成分として、ラミニン、コラーゲンＩＶ、へパラン硫酸プロテオグリカン、及びエンタクチン／ニドゲンを含み、さらに、様々な増殖因子などを含むEngelbreth-Holm-Swarm（ＥＨＳ）マウス肉腫から分離された基質により構成されている。これらは、多くのｈＥＳＣ株の多分化能を支持することが報告されているが（非特許文献５：K G. Chen, et al., Cell Stem Cell. 2014 Jan 2; 14(1): 13-26.）、厳密な組成が明らかでなく、異種生物由来成分を含むものであるため、このような培養条件を用いた場合にはｈＰＳＣの臨床応用が妨げられる恐れがある。
また、ＭＥＦやマトリゲルを用いた場合は、ヒトに由来しないＮ－グリコリルノイラミン酸（Ｎｅｕ５Ｇｃ）などの免疫原性エピトープや、異種感染ウイルスのヒトへの伝播に関する懸念がある。
或いは、ｈＰＳＣを、細胞外マトリックス上、例えば、マトリゲル上もしくはゲルトレックス上において培養を行うという方法である。マトリゲルなどの細胞培養用の細胞外マトリックスは、主成分として、ラミニン、コラーゲンＩＶ、へパラン硫酸プロテオグリカン、及びエンタクチン／ニドゲンを含み、さらに、様々な増殖因子などを含むEngelbreth-Holm-Swarm（ＥＨＳ）マウス肉腫から分離された基質により構成されている。これらは、多くのｈＥＳＣ株の多分化能を支持することが報告されているが（非特許文献５：K G. Chen, et al., Cell Stem Cell. 2014 Jan 2; 14(1): 13-26.）、厳密な組成が明らかでなく、異種生物由来成分を含むものであるため、このような培養条件を用いた場合にはｈＰＳＣの臨床応用が妨げられる恐れがある。
また、ＭＥＦやマトリゲルを用いた場合は、ヒトに由来しないＮ－グリコリルノイラミン酸（Ｎｅｕ５Ｇｃ）などの免疫原性エピトープや、異種感染ウイルスのヒトへの伝播に関する懸念がある。
ｈＥＳＣやｈｉＰＳＣなどの細胞の製造を、ＧＭＰに適合した施設において大規模に行うことが現在求められているが、支持細胞の存在が特にｈＰＳＣの利用を妨げている。
また、ｈＰＳＣの多分化能の維持のためには、培地中に塩基性線維芽細胞成長因子（ｂＦＧＦ）を添加することが必要であるが、ｂＦＧＦは、高価で、また長期に安定に保存することが困難であり、そのことも、ｈＰＳＣの工業的製造を妨げている。
ＦＧＦは、幹細胞の培養を安定して行なうために一般的に培地に添加されており、無血清培地においても重要性が高い成分の１つとなっている。しかしながら、培地中での安定性が低いことが知られており、細胞培養において高頻度の培地交換が要求される要因ともなっている。このことも、ｈＰＳＣの工業的製造を妨げている。
また、ｈＰＳＣの多分化能の維持のためには、培地中に塩基性線維芽細胞成長因子（ｂＦＧＦ）を添加することが必要であるが、ｂＦＧＦは、高価で、また長期に安定に保存することが困難であり、そのことも、ｈＰＳＣの工業的製造を妨げている。
ＦＧＦは、幹細胞の培養を安定して行なうために一般的に培地に添加されており、無血清培地においても重要性が高い成分の１つとなっている。しかしながら、培地中での安定性が低いことが知られており、細胞培養において高頻度の培地交換が要求される要因ともなっている。このことも、ｈＰＳＣの工業的製造を妨げている。
これまでに、ある種の硫酸化多糖類がＦＧＦを分解、変性、失活等から保護する作用を有することが報告されている。例えば、特許文献１（ＷＯ９２／１３５２６号パンフレット）には、カラギーナンがｂＦＧＦを安定化することが開示されている。特許文献２（特開平０２－１３８２２３号公報）には、ＦＧＦもしくはそのムテインと硫酸化グルカンとを水性媒体中で接触させることを特徴とするＦＧＦもしくはそのムテインの安定化方法等が開示されている。非特許文献６（J. Cell. Physiol., 1986, 128, 475-484）には、ヘパリン又はヘキシウロニルヘキソサミノグリカン硫酸（ＨＨＳ－４）がｂＦＧＦを不活性化から保護しその生理活性を増強することが記載されている。
一方、培地内に陰イオン修飾ヒアルロン酸を含有させてなるヒト細胞を培養する方法が報告されている（特許文献３：特開２００６－２１１９２０号公報）。そこでは、ヒト間葉系細胞が、陰イオン修飾ヒアルロン酸によってその増殖が促進されることが記載されている。
また、硫酸化多糖類である硫酸化ヒアルロン酸をコーティングした生体組織補填剤が報告されている（特許文献４：特許第５０８８８６４号公報）。そこでは、硫酸化度が、０．６又は１．０の硫酸化ヒアルロン酸をコートした生体組織補填剤が、軟骨細胞の増殖及び軟骨への分化能を促進していることが記載されている。
その他、硫酸化ヒアルロン酸を用いて細胞を活性化させ、神経細胞への分化・成熟を促進することができる培地及び培養方法が報告されている（特許文献５：特開２００９－２７８８７３号公報）。そこでは、硫酸化度が、０．４又は１．０の硫酸化ヒアルロン酸が用いられており、硫酸化ヒアルロン酸とＦＧＦ－２とを組み合わせて添加することにより、細胞を活性化させ、神経細胞への分化・成熟を促進することができると記載されている。
その他、硫酸化ヒアルロン酸を用いて細胞を活性化させ、神経細胞への分化・成熟を促進することができる培地及び培養方法が報告されている（特許文献５：特開２００９－２７８８７３号公報）。そこでは、硫酸化度が、０．４又は１．０の硫酸化ヒアルロン酸が用いられており、硫酸化ヒアルロン酸とＦＧＦ－２とを組み合わせて添加することにより、細胞を活性化させ、神経細胞への分化・成熟を促進することができると記載されている。
D. A. Robinton et al., Nature. 2012 Jan 18; 481(7381): 295-305
Fan Y., et al., Stem Cell Rev. 2015 Feb;11(1):96-109
Chen YM, et al., Sci Rep. 2017 Mar 23;7:45146
L.G. Villa-Diaz et al., Stem Cells. 2013 Jan; 31(1): 1-7
K G. Chen, et al., Cell Stem Cell. 2014 Jan 2; 14(1): 13-26
Gospodarowics D., et al,, J. Cell. Physiol., 1986, 128, 475-484
本発明は、ｈＰＳＣの培養や抗体を産生するハイブリドーマの培養において、培養効率を向上させることができる新たな細胞培養用基材又は培養方法を提供することを目的とする。
本発明者らは鋭意研究をした結果、比較的高い硫化度の硫酸化ヒアルロン酸を用いることにより、ｈＰＳＣの培養や抗体を産生するハイブリドーマの培養において、培養効率を向上させることができることを見いだし、本発明を完成した。
本発明の一つの観点において、比較的高い硫化度の硫酸化ヒアルロン酸を用いることにより、フィーダー細胞を用いなくてもｈＰＳＣを未分化状態に維持した或いは多分化能を維持した状態で培養増殖させることができる。
本発明の別の一つの観点において、比較的高い硫化度の硫酸化ヒアルロン酸を用いることにより、抗体産生ハイブリドーマの培養において、抗体産生量を増加させることができる。
より具体的には本発明は以下の細胞培養方法及び細胞培養用基材を含むものである。
本発明の一つの観点において、比較的高い硫化度の硫酸化ヒアルロン酸を用いることにより、フィーダー細胞を用いなくてもｈＰＳＣを未分化状態に維持した或いは多分化能を維持した状態で培養増殖させることができる。
本発明の別の一つの観点において、比較的高い硫化度の硫酸化ヒアルロン酸を用いることにより、抗体産生ハイブリドーマの培養において、抗体産生量を増加させることができる。
より具体的には本発明は以下の細胞培養方法及び細胞培養用基材を含むものである。
（細胞培養方法）
本発明は一つの観点において、比較的高い硫酸化度の硫酸化ヒアルロン酸（硫酸化度が、ヒアルロン酸２糖単位当たりの硫酸基数（以下、「硫酸化度（硫酸基数／２糖単位）」という表現を用いる場合がある）で、約１．３以上、好ましくは約１．５以上、より好ましくは、約２．０以上である硫酸化ヒアルロン酸）を用いることにより、支持細胞を用いなくてもｈＰＳＣを未分化状態に維持した或いは多分化能を維持した状態で培養増殖するための細胞培養方法を提供する。
本発明は別の観点において、比較的高い硫酸化度（硫酸化度（硫酸基数／２糖単位）が、約１．３以上、好ましくは約１．５以上、より好ましくは約２．０以上、さらに好ましくは約３．０以上）の硫酸化ヒアルロン酸を用いることにより、支持細胞及びｂＦＧＦを用いなくても、ｈＰＳＣを未分化状態に維持した或いは多分化能を維持した状態で培養増殖するための細胞培養用方法を提供する。
本発明は一つの観点において、比較的高い硫酸化度の硫酸化ヒアルロン酸（硫酸化度が、ヒアルロン酸２糖単位当たりの硫酸基数（以下、「硫酸化度（硫酸基数／２糖単位）」という表現を用いる場合がある）で、約１．３以上、好ましくは約１．５以上、より好ましくは、約２．０以上である硫酸化ヒアルロン酸）を用いることにより、支持細胞を用いなくてもｈＰＳＣを未分化状態に維持した或いは多分化能を維持した状態で培養増殖するための細胞培養方法を提供する。
本発明は別の観点において、比較的高い硫酸化度（硫酸化度（硫酸基数／２糖単位）が、約１．３以上、好ましくは約１．５以上、より好ましくは約２．０以上、さらに好ましくは約３．０以上）の硫酸化ヒアルロン酸を用いることにより、支持細胞及びｂＦＧＦを用いなくても、ｈＰＳＣを未分化状態に維持した或いは多分化能を維持した状態で培養増殖するための細胞培養用方法を提供する。
（細胞培養用基材）
本発明はまた別の観点において、支持細胞を用いない、場合により支持細胞に加えてさらにｂＦＧＦを用いないｈＰＳＣの培養において、ｈＰＳＣを未分化状態に維持した或いは多分化能を維持した状態で培養増殖するための、比較的高い硫酸化度（硫酸化度（硫酸基数／２糖単位）が、約１．３以上、好ましくは約１．３～約３．０）の硫酸化ヒアルロン酸が、場合により細胞外マトリックスとともに、コートされた細胞培養用基材を提供する。
本発明はまた別の一つの観点において、上記の細胞培養用基材を用いた、ｈＰＳＣの培養方法を提供する。
本発明はまた別の観点において、支持細胞を用いない、場合により支持細胞に加えてさらにｂＦＧＦを用いないｈＰＳＣの培養において、ｈＰＳＣを未分化状態に維持した或いは多分化能を維持した状態で培養増殖するための、比較的高い硫酸化度（硫酸化度（硫酸基数／２糖単位）が、約１．３以上、好ましくは約１．３～約３．０）の硫酸化ヒアルロン酸が、場合により細胞外マトリックスとともに、コートされた細胞培養用基材を提供する。
本発明はまた別の一つの観点において、上記の細胞培養用基材を用いた、ｈＰＳＣの培養方法を提供する。
本発明はさらにまた別の観点において、比較的高い硫酸化度（硫酸化度（硫酸基数／２糖単位）が、好ましくは約１．３以上、より好ましくは約２．０以上、さらに好ましくは約３．０以上）の硫酸化ヒアルロン酸を加えた培地を用いて、抗体産生能をもつハイブリドーマを培養して抗体を産生する方法を提供する。
具体的には、本発明は以下の態様を含むものである。
［１］硫酸化ヒアルロン酸が表面にコートされた細胞培養用基材。
［２］前記硫酸化ヒアルロン酸は、Ｓ含量にて約７％以上（好ましくは１０％以上）の硫酸化度である硫酸化ヒアルロン酸である上記［１］に記載の細胞培養用基材。
［３］前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して少なくとも約１．３以上の割合で導入されている上記［１］に記載の細胞培養用基材。
［４］前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して約１．３～約３．０の割合で導入されている、上記［３］に記載の細胞培養用基材。
［５］前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して３．０以上の割合で導入されている、上記［３］に記載の細胞培養用基材。
［６］多能性幹細胞の培養用基材であって、多能性幹細胞を未分化状態に維持するための培養に用いることを特徴とする上記［１］～［５］のいずれか一つに記載の細胞培養用基材。
［７］前記多能性幹細胞が、ｉＰＳ細胞である上記［６］に記載の細胞培養用基材。
［８］前記硫酸化ヒアルロン酸が、細胞外マトリックス、たんぱく質又はポリマーとともに表面にコートされた上記［１］～［７］のいずれか一つに記載の細胞培養用基材。
［９］前記硫酸化ヒアルロン酸が、細胞外マトリックス、たんぱく質又はポリマー中に均一に分散された状態で存在することを特徴とする上記［８］に記載の細胞培養用基材。
［１０］上記［１］～［９］のいずれか一つに記載の細胞培養用基材を含む細胞培養器具。
［１１］上記［１］～［９］のいずれか一つに記載の細胞培養用基材を用いて、多能性幹細胞（好ましくは、ＥＳ細胞又はｉＰＳ細胞）を培養し、その分化能を維持することを特徴とする多能性幹細胞の培養方法。
［１］硫酸化ヒアルロン酸が表面にコートされた細胞培養用基材。
［２］前記硫酸化ヒアルロン酸は、Ｓ含量にて約７％以上（好ましくは１０％以上）の硫酸化度である硫酸化ヒアルロン酸である上記［１］に記載の細胞培養用基材。
［３］前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して少なくとも約１．３以上の割合で導入されている上記［１］に記載の細胞培養用基材。
［４］前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して約１．３～約３．０の割合で導入されている、上記［３］に記載の細胞培養用基材。
［５］前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して３．０以上の割合で導入されている、上記［３］に記載の細胞培養用基材。
［６］多能性幹細胞の培養用基材であって、多能性幹細胞を未分化状態に維持するための培養に用いることを特徴とする上記［１］～［５］のいずれか一つに記載の細胞培養用基材。
［７］前記多能性幹細胞が、ｉＰＳ細胞である上記［６］に記載の細胞培養用基材。
［８］前記硫酸化ヒアルロン酸が、細胞外マトリックス、たんぱく質又はポリマーとともに表面にコートされた上記［１］～［７］のいずれか一つに記載の細胞培養用基材。
［９］前記硫酸化ヒアルロン酸が、細胞外マトリックス、たんぱく質又はポリマー中に均一に分散された状態で存在することを特徴とする上記［８］に記載の細胞培養用基材。
［１０］上記［１］～［９］のいずれか一つに記載の細胞培養用基材を含む細胞培養器具。
［１１］上記［１］～［９］のいずれか一つに記載の細胞培養用基材を用いて、多能性幹細胞（好ましくは、ＥＳ細胞又はｉＰＳ細胞）を培養し、その分化能を維持することを特徴とする多能性幹細胞の培養方法。
［１２］多能性幹細胞（好ましくは、ＥＳ細胞又はｉＰＳ細胞）を培養する方法であって、以下の工程：
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地を用いて、支持細胞を含まない培養条件にて細胞を培養する工程、ここで、前記硫酸化ヒアルロン酸は、Ｓ含量にて約７％以上（好ましくは約１０％以上、より好ましくは約１３％以上、さらに好ましくは約１４％以上）の硫酸化度である、
を含むことを特徴とする培養方法。
［１３］多能性幹細胞（好ましくは、ＥＳ細胞又はｉＰＳ細胞）を培養する方法であって、以下の工程：
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地を用いて、支持細胞を含まない培養条件にて細胞を培養する工程、ここで、前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して少なくとも約１．３以上（好ましくは約２．０以上、より好ましくは約２．５以上、さらに好ましくは約３．０以上、よりさらに好ましくは約３．５以上）の割合で導入されている、
を含むことを特徴とする培養方法。
［１４］前記培養条件が、さらにｂＦＧＦを含まない培養条件である、上記［１２］又は［１３］に記載の培養方法。
［１５］前記培養する工程が、細胞外マトリックス、たんぱく質又はポリマーが存在する状態で行われる、上記［１２］～［１４］のいずれか一つに記載の培養方法。
［１６］前記多能性幹細胞が、ヒトｉＰＳ細胞である上記［１２］～［１５］のいずれか一つに記載の培養方法。
［１７］抗体を産生する能力を有するハイブリドーマを培養して抗体を産生する方法であって、以下の工程：
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で細胞を培養する工程、ここで、前記硫酸化ヒアルロン酸は、Ｓ含量にて７％以上（好ましくは１０％以上、さらに好ましくは１３％以上、より好ましくは１４％以上）の硫酸化度である、
を含むことを特徴とする方法。
［１８］抗体を産生する能力を有するハイブリドーマを培養して抗体を産生する方法であって、以下の工程：
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で細胞を培養する工程、ここで、前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して少なくとも１．３以上（好ましくは２．０以上、より好ましくは２．５以上、さらに好ましくは３．０以上、よりさらに好ましくは３．５以上）の割合で導入されている硫酸化度である、
を含むことを特徴とする方法。
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地を用いて、支持細胞を含まない培養条件にて細胞を培養する工程、ここで、前記硫酸化ヒアルロン酸は、Ｓ含量にて約７％以上（好ましくは約１０％以上、より好ましくは約１３％以上、さらに好ましくは約１４％以上）の硫酸化度である、
を含むことを特徴とする培養方法。
［１３］多能性幹細胞（好ましくは、ＥＳ細胞又はｉＰＳ細胞）を培養する方法であって、以下の工程：
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地を用いて、支持細胞を含まない培養条件にて細胞を培養する工程、ここで、前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して少なくとも約１．３以上（好ましくは約２．０以上、より好ましくは約２．５以上、さらに好ましくは約３．０以上、よりさらに好ましくは約３．５以上）の割合で導入されている、
を含むことを特徴とする培養方法。
［１４］前記培養条件が、さらにｂＦＧＦを含まない培養条件である、上記［１２］又は［１３］に記載の培養方法。
［１５］前記培養する工程が、細胞外マトリックス、たんぱく質又はポリマーが存在する状態で行われる、上記［１２］～［１４］のいずれか一つに記載の培養方法。
［１６］前記多能性幹細胞が、ヒトｉＰＳ細胞である上記［１２］～［１５］のいずれか一つに記載の培養方法。
［１７］抗体を産生する能力を有するハイブリドーマを培養して抗体を産生する方法であって、以下の工程：
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で細胞を培養する工程、ここで、前記硫酸化ヒアルロン酸は、Ｓ含量にて７％以上（好ましくは１０％以上、さらに好ましくは１３％以上、より好ましくは１４％以上）の硫酸化度である、
を含むことを特徴とする方法。
［１８］抗体を産生する能力を有するハイブリドーマを培養して抗体を産生する方法であって、以下の工程：
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で細胞を培養する工程、ここで、前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して少なくとも１．３以上（好ましくは２．０以上、より好ましくは２．５以上、さらに好ましくは３．０以上、よりさらに好ましくは３．５以上）の割合で導入されている硫酸化度である、
を含むことを特徴とする方法。
本発明によれば、ｈＰＳＣの培養や抗体を産生するハイブリドーマの培養において、培養効率を向上させることができる。
以下、本発明を、例示的な実施態様を例として、本発明の実施において使用することができる好ましい方法及び材料とともに説明する。なお、文中で特に断らない限り、本明細書で用いるすべての技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者に一般に理解されるのと同じ意味をもつ。また、本明細書に記載されたものと同等又は同様の任意の材料及び方法は、本発明の実施において同様に使用することができる。また、本明細書に記載された発明に関連して本明細書中で引用されるすべての刊行物及び特許は、例えば、本発明で使用できる方法や材料その他を示すものとして、本明細書の一部を構成するものである。
本明細書中で、「Ｘ～Ｙ」という表現を用いた場合は、下限としてＸを、上限としてＹを含む意味で用いる。本明細書中で「約」とは、±１０％を許容する意味で用いる。
本発明において「硫酸化ヒアルロン酸」とは、 β－Ｄ－Ｎ－アセチルグルコサミンとβ－Ｄ－グルクロン酸が交互に結合してできた直鎖状の高分子多糖であるヒアルロン酸の水酸基の一部又は全てが硫酸基で置換された物質をいう。
硫酸化の程度は「硫酸化度」として表される。本明細書中では、硫酸化度は、硫酸化ヒアルロン酸分子中の硫酸含量（Ｓ含量）（％）、或いは、構成単位である２糖単位における硫酸基の導入数（０～４）で表される。
硫酸含量（比濁法）は、Dogson-Priceの比濁法（Dogson, K. S. and Price, R.G., A note on the determination of the ester sulphate content of sulphated polysaccharides, Biochem J. vol 84(1),106-110, 1962）により、硫酸カリウムを標準として測定できる。また、硫酸含量（重量法）は、JIS JB. 2.17.3 硫酸塩－重量法に準じた方法を用いて測定できる。硫酸化度はまた、導入される硫酸基の平均個数で表すこともできる。硫酸基は、２糖単位で、０～４個導入され得る。平均個数で表す場合は、硫酸化ヒアルロン酸の分子量をもとに、２糖単位における硫酸基の平均個数をＳ含量より算出できる。
本発明で用いる硫酸化ヒアルロン酸（以下、単に「硫酸化ヒアルロン酸」という場合がある）は、比較的高い硫酸化度を有するヒアルロン酸である。硫酸化ヒアルロン酸は、具体的な化合物としては、硫酸基数／２単糖として、１．０又はそれ以下の硫酸化度のヒアルロン酸が報告されている（例えば、特開２００９－２７８８７３号公報参照）。本発明において用いる硫酸化ヒアルロン酸は、そのＳ含量は比濁法にて約７％以上であり、また、硫酸基数／２単糖は約１．３以上である。
硫酸化の程度は「硫酸化度」として表される。本明細書中では、硫酸化度は、硫酸化ヒアルロン酸分子中の硫酸含量（Ｓ含量）（％）、或いは、構成単位である２糖単位における硫酸基の導入数（０～４）で表される。
硫酸含量（比濁法）は、Dogson-Priceの比濁法（Dogson, K. S. and Price, R.G., A note on the determination of the ester sulphate content of sulphated polysaccharides, Biochem J. vol 84(1),106-110, 1962）により、硫酸カリウムを標準として測定できる。また、硫酸含量（重量法）は、JIS JB. 2.17.3 硫酸塩－重量法に準じた方法を用いて測定できる。硫酸化度はまた、導入される硫酸基の平均個数で表すこともできる。硫酸基は、２糖単位で、０～４個導入され得る。平均個数で表す場合は、硫酸化ヒアルロン酸の分子量をもとに、２糖単位における硫酸基の平均個数をＳ含量より算出できる。
本発明で用いる硫酸化ヒアルロン酸（以下、単に「硫酸化ヒアルロン酸」という場合がある）は、比較的高い硫酸化度を有するヒアルロン酸である。硫酸化ヒアルロン酸は、具体的な化合物としては、硫酸基数／２単糖として、１．０又はそれ以下の硫酸化度のヒアルロン酸が報告されている（例えば、特開２００９－２７８８７３号公報参照）。本発明において用いる硫酸化ヒアルロン酸は、そのＳ含量は比濁法にて約７％以上であり、また、硫酸基数／２単糖は約１．３以上である。
本発明の培養方法に従い、支持細胞を用いずに多能性幹細胞の培養を行う場合に用いる硫酸化ヒアルロン酸とは、導入された硫酸基の平均個数は、約１．３以上、好ましくは約１．５以上、より好ましくは約２．０以上、さらに好ましくは約２．５以上である。
本発明の培養方法に従い、支持細胞及びｂＦＧＦを用いずに多能性幹細胞の培養を行う場合に用いる硫酸化ヒアルロン酸とは、導入された硫酸基の平均個数は、約１．３以上、好ましくは約１．５以上、より好ましくは約２．０以上、さらに好ましくは約３．０以上である。
本発明の培養方法に従えば、支持細胞及びｂＦＧＦを用いずに、多能性幹細胞の培養を行うことができ、多能性幹細胞を、未分化状態を維持した或いは多分化能を維持した状態で培養できる。ただし、硫酸化ヒアルロン酸を含有しかつｂＦＧＦを含んだ培地での培養も本発明に含まれ、本発明の一部である。
本発明の培養方法に従い、支持細胞及びｂＦＧＦを用いずに多能性幹細胞の培養を行う場合に用いる硫酸化ヒアルロン酸とは、導入された硫酸基の平均個数は、約１．３以上、好ましくは約１．５以上、より好ましくは約２．０以上、さらに好ましくは約３．０以上である。
本発明の培養方法に従えば、支持細胞及びｂＦＧＦを用いずに、多能性幹細胞の培養を行うことができ、多能性幹細胞を、未分化状態を維持した或いは多分化能を維持した状態で培養できる。ただし、硫酸化ヒアルロン酸を含有しかつｂＦＧＦを含んだ培地での培養も本発明に含まれ、本発明の一部である。
支持細胞を用いない、場合により支持細胞に加えてさらにｂＦＧＦを用いない多能性幹細胞の培養に用いる、硫酸化ヒアルロン酸がコートされた本発明の細胞培養用基材において、用いられる硫酸化ヒアルロン酸は、導入された硫酸基の平均個数が、約１．３以上、好ましくは約１．３～約３．０である硫酸化ヒアルロン酸である。
また、上記の培養において、用いられる本発明の細胞培養用基材は、好ましくは細胞外マトリックスとともに上記硫酸化ヒアルロン酸がコートされた細胞培養用基材である。
硫酸化ヒアルロン酸がコートされた本発明の細胞培養用基材を用いて、支持細胞及びｂＦＧＦを用いないで、多能性幹細胞の培養を行うことができ、多能性幹細胞を、未分化状態を維持した或いは多分化能を維持した状態で培養できる。ただし、ｂＦＧＦを含んだ培地での本発明の細胞培養用基材の使用も排除するものではなく、ｂＦＧＦを添加した培地での培養に用いられる本発明の細胞培養用基材も本発明に含まれ、本発明の一部である。
また、上記の培養において、用いられる本発明の細胞培養用基材は、好ましくは細胞外マトリックスとともに上記硫酸化ヒアルロン酸がコートされた細胞培養用基材である。
硫酸化ヒアルロン酸がコートされた本発明の細胞培養用基材を用いて、支持細胞及びｂＦＧＦを用いないで、多能性幹細胞の培養を行うことができ、多能性幹細胞を、未分化状態を維持した或いは多分化能を維持した状態で培養できる。ただし、ｂＦＧＦを含んだ培地での本発明の細胞培養用基材の使用も排除するものではなく、ｂＦＧＦを添加した培地での培養に用いられる本発明の細胞培養用基材も本発明に含まれ、本発明の一部である。
本発明の培養方法に従い、抗体産生能をもつハイブリドーマの培養を行う場合に用いる硫酸化ヒアルロン酸とは、硫酸化度が、硫酸含量にて、約７％以上、好ましくは約１０％以上、より好ましくは約１３％以上、さらに好ましくは約１４％以上である。
本発明の培養方法に従い、抗体産生能をもつハイブリドーマの培養を行う場合に用いる硫酸化ヒアルロン酸とは、導入された硫酸基の平均個数は、約１．３以上、好ましくは約１．５以上、より好ましくは約２．５以上、さらに好ましくは約３．０以上、よりさらに好ましくは約３．５以上である。
本発明の培養方法に従い、抗体産生能をもつハイブリドーマの培養を行う場合に用いる硫酸化ヒアルロン酸とは、導入された硫酸基の平均個数は、約１．３以上、好ましくは約１．５以上、より好ましくは約２．５以上、さらに好ましくは約３．０以上、よりさらに好ましくは約３．５以上である。
硫酸化ヒアルロン酸は、既知の硫酸化反応を用いて、ヒアルロン酸と硫酸化剤を適当な溶媒に溶解させ、加熱下に反応させることにより得ることができる。また、硫酸化度の調整は、公知の方法を参考にして、用いる硫酸化剤の使用量を適宜変更することにより行うことができる。硫酸化度の測定は、例えば、上記した方法により行うことができるが、他に、酸加水分解して生成する硫酸イオンをイオンクロマトグラフィーによって定量することにより行うこともできる。
硫酸化反応において使用される溶媒としては、当該技術分野において一般に使用できる溶媒が制限なく使用できるが、例えば、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、Ｎ－メチルピロリドン、Ｎ，Ｎ－ジメチルアセトアミド、ピリジン、Ｎ，Ｎ－ジメチルアクリルアミド、又はこれらの混合溶媒等をあげることができる。
硫酸化剤としては、当該技術分野において一般に使用できる硫酸化剤が制限なく使用できるが、例えば、無水硫酸とピリジン、ピコリン、２，６－ルチジン、トリメチルアミン、トリエチルアミン、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド、ジオキサン等の錯体、或いは、硫酸－ジシクロヘキシルカルボジイミド、クロロスルホン等をあげることができる。また、硫酸化反応においては反応系内に、トリフルオロ酢酸やトリフルオロメタンスルホン酸等の酸触媒を添加しても良い。
硫酸化の反応温度及び反応時間は、特に限定されるものではないが、例えば、０～１００℃で、５分～５日が挙げられる。
本発明で用いることができる硫酸化ヒアルロン酸の分子量は特に制限なく、何れの分子量の硫酸化ヒアルロン酸も用いることができる。本発明においては、以下の実施例で示されるように、低分子量のヒアルロン酸（例えば、平均分子量が１０万程度のもの）、高分子量のヒアルロン酸（例えば、平均分子量が６０万のもの）の何れも用いることができる。本発明において硫酸化ヒアルロン酸の分子量を言うときは、当該技術分野において一般に用いられる表示法の何れかで示される分子量を意味し、これに限定されないが、例えば、原料であるヒアルロン酸の動粘度から算出した分子量を用いることができる。
本発明の細胞培養用基材は、細胞培養のための基材の表面に硫酸化ヒアルロン酸をコートすることにより製造できる。細胞培養のための基材としては、細胞培養に関する技術分野で用いられている細胞培養のための基材を制限なく用いることができるが、例えば、動物細胞培養用のシャーレやプレートに用いられる基材を用いることができる。
このような基材となり得る材料は、これに制限されるものではないが、例えば、ポリプロピレン、ポリスチレン、高密度ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート共重合体、ポリカーボネート、ポリエーテルサルフィン、ＭＰＣポリマーをあげることができる。
このような基材となり得る材料は、これに制限されるものではないが、例えば、ポリプロピレン、ポリスチレン、高密度ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート共重合体、ポリカーボネート、ポリエーテルサルフィン、ＭＰＣポリマーをあげることができる。
本発明において、硫酸化ヒアルロン酸が「表面にコートされた」とは、硫酸化ヒアルロン酸が細胞培養用基材の表面に、物理的に結合又は保持された状態を意味し、単に接着している状態も含む。物理的に結合とは、非共有結合的又は共有結合的に結合した状態を意味し、これに限定されないが、例えば、イオン的に結合している状態、直接又はリンカー等を介して共有結合している状態をあげることができる。共有結合させる手段は、基材表面の物理化学的性質や表面に提示されている反応基に応じて、適宜選択できる。例えば、光反応性架橋剤を用いて、直接又はリンカーを介して結合させることができる。基材表面に硫酸化ヒアルロン酸が保持されている状態とは、これに限定されないが、例えば、硫酸化ヒアルロン酸と基材間の親和性に基づき、硫酸化ヒアルロン酸が基材表面に保持されている状態をあげることができる。例えば、硫酸化ヒアルロン酸を含有する溶液又は溶媒を基材表面に塗布した後、溶液又は溶媒を除去することによっても、硫酸化ヒアルロン酸が表面にコートされた細胞培養用基材を作成することができる。溶液又は溶媒を除去する方法は、特に制限がなく、例えば、常温乾燥、高温乾燥、減圧乾燥その他を用いることができる。
その他、細胞外マトリックス等の高分子物質ともに表面にコートされる場合は、細胞外マトリックス等の高分子物質の中に硫酸化ヒアルロン酸が保持された状態で基材表面に硫酸化ヒアルロン酸が保持されている状態も含まれる。
その他、細胞外マトリックス等の高分子物質ともに表面にコートされる場合は、細胞外マトリックス等の高分子物質の中に硫酸化ヒアルロン酸が保持された状態で基材表面に硫酸化ヒアルロン酸が保持されている状態も含まれる。
本発明の細胞培養用基材において表面にコートされる硫酸化ヒアルロン酸の量は、培養目的に応じて、硫酸化ヒアルロン酸がコートされていない基材で細胞を培養した場合に比べて細胞の培養、増殖を促進できる限り特に制限されないが、例えば、量としては、約０．０５μｇ／ｃｍ2以上、好ましく約０．５μｇ／ｃｍ2以上、より好ましくは約１μｇ／ｃｍ2以上、よりさらに好ましくは約２μｇ／ｃｍ2以上をあげることができる。表面にコートされる硫酸化ヒアルロン酸の厚みは、特に制限はないが、使用目的、調製方法、コスト等を勘案して適宜選択することができる。
本発明の細胞培養用基材はまた、硫酸化ヒアルロン酸とともに、たんぱく質、ポリマー又は細胞外マトリックス等の高分子物質をその表面にコートしたものを含む。これらの高分子は、これに限定されないが、硫酸化ヒアルロン酸を保持する役目を果たす。用いることができるたんぱく質としては、細胞の培養・増殖を阻害するものでなければ特に制限なく用いることができ、例えば、アルブミン、トランスフェリン、コラーゲン、フィブロネクチン、Ｆｃ融合タンパク質などのキメラタンパク質、細胞接着を補助するペプチド断片などをあげることができる。用いることができるポリマーとしては、細胞の培養・増殖を阻害するものでなければ特に制限なく用いることができ、例えば、ポリリシン、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、乳酸とグリコール酸の共重合ポリマーをあげることができる。硫酸化ヒアルロン酸とともにコートされる高分子物質としては、細胞外マトリックスが好ましい。硫酸ヒアルロン酸とともに細胞外マトリックスをコートすることにより、細胞の培養、増殖の効率をさらに高めることができる。細胞外マトリックスとしては、例えば、マトリゲル、ラミニン、ラミニン５１１、プロテオグリカン等をあげることができる。本発明の細胞培養用基材の表面にコートされる細胞外マトリックスの量は、使用細胞、使用目的、培養条件その他に応じて適宜選択できるが、例えば、マトリゲルを用いる場合はマトリゲルを用いた細胞培養についての報告を参考にすることができる。
本発明の細胞培養用基材において、硫酸化ヒアルロン酸を高分子物質とともにコートする方法は特に制限がない。例えば、細胞外マトリックスとともにコートする場合は、これに限定されないが、細胞外マトリックス（例えば、マトリゲル）を溶解した培地に硫酸化ヒアルロン酸を添加し混合溶液を調製したのち、混合溶液を、培養基材の表面に塗布し、例えば培養シャーレに加えることにより調製できる。このようにして調製した硫酸化ヒアルロン酸と細胞外マトリックスが表面にコートされた細胞培養用基材（例えば、培養シャーレ）は、そのまま使用しても良いが、使用まで保存した後使用することもできる。保存方法は、コートに用いる細胞外マトリックスに応じて適宜選択することができ、常温、冷蔵、冷凍保存をあげることができる。例えば、細胞外マトリックスとしてマトリゲルを用いた場合は、冷蔵又は冷凍保存が望ましい。使用に際しては、表面にコートされていない細胞外マトリックスと硫酸化ヒアルロン酸を含む培地を除去し、その後、培地及び細胞を添加し培養を行う。
本発明の細胞培養用基材において、硫酸化ヒアルロン酸が高分子物質（例えば、たんぱく質、ポリマー又は細胞外マトリックス）とともに表面にコートされている場合、硫酸化ヒアルロン酸が高分子物質中に均一に分散された状態で保持されるのが好ましい。混合物中の硫酸化ヒアルロン酸の濃度が高すぎると、硫酸化ヒアルロン酸は相互に凝集したり繊維状に伸びたりした状態となり好ましくない。高分子物質中に保持される硫酸化ヒアルロン酸の量は、例えば、シャーレ等の培養用基材に添加する前の混合溶液中の硫酸化ヒアルロン酸の濃度を適宜選択することにより調整することができ、それにより、高分子物質中に均一に分散した硫酸化ヒアルロン酸がコートされた本発明の細胞培養用基材を調製できる。
本発明の一態様である細胞培養用基材は、硫酸化ヒアルロン酸が表面にコートされた細胞培養用基材、及び、硫酸化ヒアルロン酸が高分子物質、例えばマトリゲル等の細胞外マトリックス、タンパク質又はポリマーとともにコートされた細胞培養用基材の何れも含む。硫酸化ヒアルロン酸が表面にコートされた細胞培養用基材は、無菌状態で製造すること又は製造後に滅菌処理することも可能である。滅菌処理は、硫酸化ヒアルロン酸とともに用いられる成分に応じて、当業者が適宜選択することができるが、例えば、滅菌処理方法としては、これに限定されないが、例えば、電子線、ガンマ線、エチレンオキシド、高圧蒸気（オートクレーブ）をあげることができる。硫酸化ヒアルロン酸がマトリゲル等の細胞外マトリックスとともにコートされた細胞培養用基材は、常法に従って無菌状態で製造することが好ましい。
本発明の細胞培養用基材は、細胞培養のための容器、器具や装置の一部に用いることもできる。そのような培養容器、器具、装置も本発明に含まれる。細胞培養のための容器、器具、及び装置は、細胞培養のために一般に用いられているものを制限なく用いることができる。
本発明はまた、本発明の細胞培養用基材を用いて、多能性幹細胞を、未分化状態を維持したまま又は分化能を有した状態で培養、増殖させる細胞の培養方法である。
本発明の細胞培養方法又は本発明の細胞培養用基材を用いる培養で使用する多能性幹細胞は、例えば、ＥＳ細胞やｉＰＳ細胞をあげることができるが、好ましくは、ヒトＥＳ細胞又はヒトｉＰＳ細胞であり、特に好ましくはヒトｉＰＳ細胞である。
細胞の培養条件は、培養を目的とする細胞の種類、培養目的に応じ、適宜選択でき、そのような培養条件は、種々報告されているので、それを参考に行えばよい。
本発明の細胞培養方法又は細胞培養用基材を用いると、支持細胞（フィーダー細胞）を用いることなく多能性幹細胞の培養ができる。また、本発明の細胞培養用基材を用いて多能性幹細胞を培養する場合は、未分化状態を維持するために通常必要とされるｂＦＧＦの添加量を低減又は添加不要とすることができる。
つまり、本発明は、その一態様として、多能性幹細胞を、未分化な状態又は分化能を有する状態で、細胞の増殖を支持するための支持細胞層を用いずに、場合により支持細胞に加えてさらにｂＦＧＦを用いずに、安定かつ一貫して増殖させるための培養方法を提供するものである。
細胞の培養条件は、培養を目的とする細胞の種類、培養目的に応じ、適宜選択でき、そのような培養条件は、種々報告されているので、それを参考に行えばよい。
本発明の細胞培養方法又は細胞培養用基材を用いると、支持細胞（フィーダー細胞）を用いることなく多能性幹細胞の培養ができる。また、本発明の細胞培養用基材を用いて多能性幹細胞を培養する場合は、未分化状態を維持するために通常必要とされるｂＦＧＦの添加量を低減又は添加不要とすることができる。
つまり、本発明は、その一態様として、多能性幹細胞を、未分化な状態又は分化能を有する状態で、細胞の増殖を支持するための支持細胞層を用いずに、場合により支持細胞に加えてさらにｂＦＧＦを用いずに、安定かつ一貫して増殖させるための培養方法を提供するものである。
本発明はまた、比較的高い硫酸化度の硫酸化ヒアルロン酸を用いた抗体の製造のための培養方法を含むものである。本発明の培養方法に従い、抗体産生能を有するハイブリドーマを、硫酸化ヒアルロン酸とともに培養することにより、抗体の産生能を顕著に増加させることができる。
本発明に従って、抗体産生のための培養において用いることができる硫酸化ヒアルロン酸は、上記した比較的高い硫酸化度を有する硫酸化ヒアルロン酸、具体的には、Ｓ含量にて７％以上（好ましくは１０％以上、さらに好ましくは１３％以上、より好ましくは１４％以上）の硫酸化度を有する硫酸化ヒアルロン酸、或いは、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して少なくとも１．３以上（好ましくは２．０以上、より好ましくは２．５以上、さらに好ましくは３．０以上、よりさらに好ましくは３．５以上）の割合で導入されている硫酸化ヒアルロン酸であり、低分子量硫酸化ヒアルロン酸及び高分子量硫酸化ヒアルロン酸の何れも用いることができる。本発明の抗体の製造のための培養方法において、培地中に添加される硫酸化ヒアルロン酸の量は、用いる細胞、培養条件等により適宜選択することができるが、これに限定されないが、例えば、０．１～１００μｇ／ｍＬ、好ましくは１～１００μｇ／ｍＬの濃度にて培地に添加される。培地は、特に制限されず、ハイブリドーマを用いた抗体産生において使用することができる何れの培地も用いることができるが、例えば、ＲＰＭＩ－１６４０培地、ダルベッコ改変イーグル培地、 Nutrient Mixture F-12 Ham、Dulbecco's Modified Eagle's Medium/Nutrient Mixture F-12 Ham、Iscove's Modified Dulbecco's Medium、GIT培地をあげることができる。また、抗体を産生するハイブリドーマの培養条件等は、自体公知の方法を適宜参考として行うことができる。
本発明はまた、本発明の細胞培養用基材を用いて、抗体の産生能力を有する細胞を培養する方法も含む。本発明の細胞培養用基材を用いて、抗体産生能力のある細胞を培養すると、抗体の産生量を顕著に増加させることができる。
よって、本発明は、他の一態様として、抗体産生細胞を培養して抗体を製造するための細胞培養方法と細胞培養用基材を提供するものである。
本発明に従って、抗体産生のための培養において用いることができる硫酸化ヒアルロン酸は、上記した比較的高い硫酸化度を有する硫酸化ヒアルロン酸、具体的には、Ｓ含量にて７％以上（好ましくは１０％以上、さらに好ましくは１３％以上、より好ましくは１４％以上）の硫酸化度を有する硫酸化ヒアルロン酸、或いは、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して少なくとも１．３以上（好ましくは２．０以上、より好ましくは２．５以上、さらに好ましくは３．０以上、よりさらに好ましくは３．５以上）の割合で導入されている硫酸化ヒアルロン酸であり、低分子量硫酸化ヒアルロン酸及び高分子量硫酸化ヒアルロン酸の何れも用いることができる。本発明の抗体の製造のための培養方法において、培地中に添加される硫酸化ヒアルロン酸の量は、用いる細胞、培養条件等により適宜選択することができるが、これに限定されないが、例えば、０．１～１００μｇ／ｍＬ、好ましくは１～１００μｇ／ｍＬの濃度にて培地に添加される。培地は、特に制限されず、ハイブリドーマを用いた抗体産生において使用することができる何れの培地も用いることができるが、例えば、ＲＰＭＩ－１６４０培地、ダルベッコ改変イーグル培地、 Nutrient Mixture F-12 Ham、Dulbecco's Modified Eagle's Medium/Nutrient Mixture F-12 Ham、Iscove's Modified Dulbecco's Medium、GIT培地をあげることができる。また、抗体を産生するハイブリドーマの培養条件等は、自体公知の方法を適宜参考として行うことができる。
本発明はまた、本発明の細胞培養用基材を用いて、抗体の産生能力を有する細胞を培養する方法も含む。本発明の細胞培養用基材を用いて、抗体産生能力のある細胞を培養すると、抗体の産生量を顕著に増加させることができる。
よって、本発明は、他の一態様として、抗体産生細胞を培養して抗体を製造するための細胞培養方法と細胞培養用基材を提供するものである。
以下、実施例により、本発明を具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
実施例１：硫酸化ヒアルロン酸の調製
硫酸化ヒアルロン酸は、ヒアルロン酸を硫酸化することにより調製した。ヒアルロン酸の硫酸化は、既知の硫酸化反応を用い、条件を適宜調整することにより、種々の硫酸化度のものを製造した。硫酸化に用いたヒアルロン酸は、分子量が１０万のもの（以下、低分子量ヒアルロン酸という）及び６０万のもの（以下、高分子量ヒアルロン酸という）を用いた。
硫酸化ヒアルロン酸の調製は、まず少量レベル（用いたヒアルロン酸量、１ｇ）で、次いで、スケールアップしたレベル（用いたヒアルロン酸量、２０ｇ）で行った。
調製した硫酸化ヒアルロン酸について硫酸化度を確認した。結果を以下に示す。表１は、低分子量ヒアルロン酸を用いて調製した硫酸化ヒアルロン酸の硫化度を測定した結果であり、表２は、高分子量ヒアルロン酸を用いて調製した硫酸化ヒアルロン酸の硫化度を測定した結果である。「Ｓ含量（比濁法）」は、Dogson-Priceの比濁法により測定した結果であり、「Ｓ含量（重量法）」は、JIS JB. 2.17.3 硫酸塩－重量法に準じた方法を用いて測定した結果である。また、「硫酸化度」は、導入される硫酸基の数を、２糖単位当たりの平均個数で表したものである。
硫酸化ヒアルロン酸は、ヒアルロン酸を硫酸化することにより調製した。ヒアルロン酸の硫酸化は、既知の硫酸化反応を用い、条件を適宜調整することにより、種々の硫酸化度のものを製造した。硫酸化に用いたヒアルロン酸は、分子量が１０万のもの（以下、低分子量ヒアルロン酸という）及び６０万のもの（以下、高分子量ヒアルロン酸という）を用いた。
硫酸化ヒアルロン酸の調製は、まず少量レベル（用いたヒアルロン酸量、１ｇ）で、次いで、スケールアップしたレベル（用いたヒアルロン酸量、２０ｇ）で行った。
調製した硫酸化ヒアルロン酸について硫酸化度を確認した。結果を以下に示す。表１は、低分子量ヒアルロン酸を用いて調製した硫酸化ヒアルロン酸の硫化度を測定した結果であり、表２は、高分子量ヒアルロン酸を用いて調製した硫酸化ヒアルロン酸の硫化度を測定した結果である。「Ｓ含量（比濁法）」は、Dogson-Priceの比濁法により測定した結果であり、「Ｓ含量（重量法）」は、JIS JB. 2.17.3 硫酸塩－重量法に準じた方法を用いて測定した結果である。また、「硫酸化度」は、導入される硫酸基の数を、２糖単位当たりの平均個数で表したものである。
本発明で用いる硫酸化ヒアルロン酸は、比較的高い硫酸化度を有するものである。本明細書では、比較的高い硫酸化度を有するが、その中でも硫酸化度が低いものを低硫酸化ヒアルロン酸、具体的には、硫酸化度（硫酸基数／２単糖）が約１．５程度のものを低硫酸化ヒアルロン酸、硫酸化度が高いものを高硫酸化ヒアルロン酸、具体的には、硫酸化度（硫酸基数／２単糖）が３以上のものを高硫酸化ヒアルロン酸とよぶ。上記表に示されている、高硫酸化ヒアルロン酸は、硫酸基に置換可能な水酸基の殆どが硫酸化されていることを示している。
実施例２：ｉＰＳ／ＥＳ細胞の培養
ヒトｉＰＳ細胞を、その未分化性を維持した状態で培養、増殖させるには、マウス由来の支持細胞上での培養、及び、培地へのｂＦＧＦの添加が必要である。この両者が無い状態での培養では、ヒトｉＰＳ細胞は速やかに分化する。よって、この両者の添加の必要性は、未分化性を維持したｉＰＳ細胞を大量に培養するための妨げとなっている。
そこで、実施例１で調製した高硫酸化ヒアルロン酸を培地に加えることにより、支持細胞やｂＦＧＦがない状態でもヒトｉＰＳ細胞が未分化性を維持して培養、増殖できるか検討した。
ヒトｉＰＳ細胞（ｈｉＰＳＣ）として、ＭＲＣ－ｈｉＰＳ＿Ｆｅｔｃｈ（細胞番号：ＮＩＨＳ０６０４）及びＭＲＣ－ｈｉＰＳ＿Ｔｉｃ（細胞番号：ＪＣＲＢ１３３１）（いずれもExp.Cell Res.315(2009)2727-2740に記載、国立生育医療センターから入手）を使用した。各々の細胞を、１０ｎｇ／ｍＬの濃度でｂＦＧＦ（和光純薬社製）を加えたｉＰＳｅｌｌｏｎ（Cell-Sight社製）中において、１０μｇ／ｍＬのマイトマイシン Ｃ（シグマ社製）で不活化したＭＥＦｓ上で維持した。
上記ｈｉＰＳ細胞（ｈｉＰＳ＃１６及びｈｉＰＳ＃２５）を、支持細胞とｂＦＧＦが無い状態で、１０μｇ／ｍｌの濃度になるように高硫酸化ヒアルロン酸（分子量１０万）を添加したｈｉＰＳ細胞用培地（DMEM/F-12 (Gibco)、20 % KnockOut Serum Replacement XenoFree (Thermo Fisher Scientific)、0.1 mM Non-Essential Amino Acids Solution (Thermo Fisher Scientific)、1 % Penicillin-Streptomycin(Thermo Fisher Scientific)、0.1 mM 2-Mercaptoethanol (Gibco)、2 mM L-Glutamine (Gibco)）に加え、これを用いてマトリゲル（BD Bioscience）を処理した培養皿上で３日間培養した。３日後に、形成された未分化なｈｉＰＳ細胞のコロニー数をカウントし定量的に解析した。結果を、図１に示す。他の条件と比べ、高硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地では、未分化なｈｉＰＳ細胞のコロニー数が顕著に増加した。硫酸化ヒアルロン酸の有無のそれぞれの条件における形成されたコロニーの写真を図２に示す。Ａは、支持細胞及びｂＦＧＦを加えず培養した場合の結果であり、Ｂは、支持細胞及びｂＦＧＦを加えないが、高硫酸化ヒアルロン酸を加えた場合の結果である。高硫酸化ヒアルロン酸を加えることにより、支持細胞及びｂＦＧＦが無くとも、ｈｉＰＳ細胞の未分化性が維持されていることが確認された。
ヒトｉＰＳ細胞を、その未分化性を維持した状態で培養、増殖させるには、マウス由来の支持細胞上での培養、及び、培地へのｂＦＧＦの添加が必要である。この両者が無い状態での培養では、ヒトｉＰＳ細胞は速やかに分化する。よって、この両者の添加の必要性は、未分化性を維持したｉＰＳ細胞を大量に培養するための妨げとなっている。
そこで、実施例１で調製した高硫酸化ヒアルロン酸を培地に加えることにより、支持細胞やｂＦＧＦがない状態でもヒトｉＰＳ細胞が未分化性を維持して培養、増殖できるか検討した。
ヒトｉＰＳ細胞（ｈｉＰＳＣ）として、ＭＲＣ－ｈｉＰＳ＿Ｆｅｔｃｈ（細胞番号：ＮＩＨＳ０６０４）及びＭＲＣ－ｈｉＰＳ＿Ｔｉｃ（細胞番号：ＪＣＲＢ１３３１）（いずれもExp.Cell Res.315(2009)2727-2740に記載、国立生育医療センターから入手）を使用した。各々の細胞を、１０ｎｇ／ｍＬの濃度でｂＦＧＦ（和光純薬社製）を加えたｉＰＳｅｌｌｏｎ（Cell-Sight社製）中において、１０μｇ／ｍＬのマイトマイシン Ｃ（シグマ社製）で不活化したＭＥＦｓ上で維持した。
上記ｈｉＰＳ細胞（ｈｉＰＳ＃１６及びｈｉＰＳ＃２５）を、支持細胞とｂＦＧＦが無い状態で、１０μｇ／ｍｌの濃度になるように高硫酸化ヒアルロン酸（分子量１０万）を添加したｈｉＰＳ細胞用培地（DMEM/F-12 (Gibco)、20 % KnockOut Serum Replacement XenoFree (Thermo Fisher Scientific)、0.1 mM Non-Essential Amino Acids Solution (Thermo Fisher Scientific)、1 % Penicillin-Streptomycin(Thermo Fisher Scientific)、0.1 mM 2-Mercaptoethanol (Gibco)、2 mM L-Glutamine (Gibco)）に加え、これを用いてマトリゲル（BD Bioscience）を処理した培養皿上で３日間培養した。３日後に、形成された未分化なｈｉＰＳ細胞のコロニー数をカウントし定量的に解析した。結果を、図１に示す。他の条件と比べ、高硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地では、未分化なｈｉＰＳ細胞のコロニー数が顕著に増加した。硫酸化ヒアルロン酸の有無のそれぞれの条件における形成されたコロニーの写真を図２に示す。Ａは、支持細胞及びｂＦＧＦを加えず培養した場合の結果であり、Ｂは、支持細胞及びｂＦＧＦを加えないが、高硫酸化ヒアルロン酸を加えた場合の結果である。高硫酸化ヒアルロン酸を加えることにより、支持細胞及びｂＦＧＦが無くとも、ｈｉＰＳ細胞の未分化性が維持されていることが確認された。
実施例３：未分化因子の発現の確認
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で培養したｈｉＰＳ細胞について、未分化性維持に必須の転写因子（ＯＣＴ４、ＫＬＦ４、ＮＡＮＯＧ）の発現量を免疫ブロットにより測定することで、未分化性を確認した。結果を図３に示す。
培地中の高硫酸化ヒアルロン酸は、支持細胞やｂＦＧＦが無い状態でも未分化性維持転写因子の発現量を促進し、未分化性維持に寄与していることが示唆された。
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で培養したｈｉＰＳ細胞について、未分化性維持に必須の転写因子（ＯＣＴ４、ＫＬＦ４、ＮＡＮＯＧ）の発現量を免疫ブロットにより測定することで、未分化性を確認した。結果を図３に示す。
培地中の高硫酸化ヒアルロン酸は、支持細胞やｂＦＧＦが無い状態でも未分化性維持転写因子の発現量を促進し、未分化性維持に寄与していることが示唆された。
実施例４：培養基材への硫酸化ヒアルロン酸の接着
硫酸化ヒアルロン酸を、細胞培養用の基材に接着させ、その接着量を評価した。
表面処理の異なる種々の細胞培養用の基材に、硫酸化ヒアルロン酸を接着させ、接着量を確認した。細胞培養用基材としては、ＢＤ（Becton Dickinson）社製 細胞培養処理シャーレ（35mm、ポリスチレン、真空ガスプラズマ処理による親水性処理）、ＢＤ社製 未処理シャーレ（35mm、ポリスチレン、疎水性表面）、ＢＤ ＮＨ2処理（６ well、ポリスチレン、アミノ基付加表面）、ＢＤ ＣＯＯＨ（６ well、ポリスチレン、カルボキシル基付加表面）、ＩＷＡＫＩ社製 細胞培養処理（６ well、ポリスチレン、親水性処理）、住友ベークライト社製 細胞培養処理（６ well、ポリスチレン、親水性処理）、住友ベークライト社製 未処理（６ well、ポリスチレン、疎水性表面）を用いた。硫酸化ヒアルロン酸は、低分子量の高硫酸化ヒアルロン酸を用いた。具体的には、硫酸化ヒアルロン酸をＰＢＳバッファーに溶解し、３７℃で１時間保温し、接着しなかった硫酸化ヒアルロン酸はＰＢＳで洗浄した。硫酸化ヒアルロン酸の接着量は、ＤＭＭＢ法（Connect Tissue Res. 1982;9(4):247-8. A direct spectrophotometric microassay for sulfated glycosaminoglycans in cartilage cultures.Farndale RW, Sayers CA, Barrett AJ.）により評価した。結果を以下の表に示す。接着量は、面積当たり（９．６ｃｍ2）の硫酸化糖鎖接着量（μｇ）を示した。１００μｇ／ｍＬ，１０μｇ／ｍＬはコート時の処理濃度である。ｕ．ｄ．は測定限界以下
硫酸化ヒアルロン酸を、細胞培養用の基材に接着させ、その接着量を評価した。
表面処理の異なる種々の細胞培養用の基材に、硫酸化ヒアルロン酸を接着させ、接着量を確認した。細胞培養用基材としては、ＢＤ（Becton Dickinson）社製 細胞培養処理シャーレ（35mm、ポリスチレン、真空ガスプラズマ処理による親水性処理）、ＢＤ社製 未処理シャーレ（35mm、ポリスチレン、疎水性表面）、ＢＤ ＮＨ2処理（６ well、ポリスチレン、アミノ基付加表面）、ＢＤ ＣＯＯＨ（６ well、ポリスチレン、カルボキシル基付加表面）、ＩＷＡＫＩ社製 細胞培養処理（６ well、ポリスチレン、親水性処理）、住友ベークライト社製 細胞培養処理（６ well、ポリスチレン、親水性処理）、住友ベークライト社製 未処理（６ well、ポリスチレン、疎水性表面）を用いた。硫酸化ヒアルロン酸は、低分子量の高硫酸化ヒアルロン酸を用いた。具体的には、硫酸化ヒアルロン酸をＰＢＳバッファーに溶解し、３７℃で１時間保温し、接着しなかった硫酸化ヒアルロン酸はＰＢＳで洗浄した。硫酸化ヒアルロン酸の接着量は、ＤＭＭＢ法（Connect Tissue Res. 1982;9(4):247-8. A direct spectrophotometric microassay for sulfated glycosaminoglycans in cartilage cultures.Farndale RW, Sayers CA, Barrett AJ.）により評価した。結果を以下の表に示す。接着量は、面積当たり（９．６ｃｍ2）の硫酸化糖鎖接着量（μｇ）を示した。１００μｇ／ｍＬ，１０μｇ／ｍＬはコート時の処理濃度である。ｕ．ｄ．は測定限界以下
次いで、硫酸化糖鎖の培養用基材への共有結合による接着を検討した。具体的には、以下のようにして、光反応性ジアジリン化合物を用いて、硫酸化糖鎖を培養用基材に共有結合させた。
ＳＤＡ（NHS-Diazirine）を５０ｍＭの濃度で溶解し、アミノ基を有する培養シャーレに添加し、３０分間室温で反応させ、シャーレ表面にＤｉａｚｉｒｉｎｅを結合させた。これに硫酸化糖鎖（コンドロイチン硫酸Ｄ）を添加しＵＶ照射により基材表面に結合させた。その結果、硫酸化糖鎖の培養用基材（シャーレ）への共有結合による接着が確認できた。これにより、光反応性ジアリジン化合物を用いた方法で、ＢＤ ＮＨ2 ６ｗellプレート等に対して硫酸化ヒアルロン酸を含む硫酸化糖鎖の結合が可能であることが判った。
ＳＤＡ（NHS-Diazirine）を５０ｍＭの濃度で溶解し、アミノ基を有する培養シャーレに添加し、３０分間室温で反応させ、シャーレ表面にＤｉａｚｉｒｉｎｅを結合させた。これに硫酸化糖鎖（コンドロイチン硫酸Ｄ）を添加しＵＶ照射により基材表面に結合させた。その結果、硫酸化糖鎖の培養用基材（シャーレ）への共有結合による接着が確認できた。これにより、光反応性ジアリジン化合物を用いた方法で、ＢＤ ＮＨ2 ６ｗellプレート等に対して硫酸化ヒアルロン酸を含む硫酸化糖鎖の結合が可能であることが判った。
実施例５：硫酸化ヒアルロン酸及びマトリゲルの培養基材へのコーティング
硫酸化ヒアルロン酸に加えて細胞基質マトリックスをさらにコーティングした培養基材を作製し、それを用いた培養を検討した。
ｉＰＳ細胞の培養に使用される基底膜マトリックス（マトリゲル（登録商標）、Corning社）と硫酸化ヒアルロン酸の混合コートを行った。硫酸化ヒアルロン酸は、低分子量（分子量１０万）の硫酸化ヒアルロン酸を用いた。具体的には、以下のようにして、培養用基材へのコーティングを行った。マトリゲルを２．５％になるように細胞培養用培地ＤＭＥＭで溶解し、そこに硫酸化ヒアルロン酸を２μｇ／ｍｌ、１０μｇ／ｍｌ又は１００μｇ／ｍｌとなるように添加して混合し、次いで混合液を培養シャーレに加え、３７℃、５％ ＣＯ2条件下で１時間保温した、シャーレは使用まで凍結して保存し、使用前にマトリゲルを含む細胞培養用培地を抜き取り使用した。
作製した培養基材の表面の硫酸化ヒアルロン酸濃度を確認するために、ＤＭＭＢ法で硫酸化糖を定量した。結果、培養基材表面面積９ｃｍ2あたりの硫酸化ヒアルロン酸濃度は、コート添加量が２μｇ／ｍｌ、１０μｇ／ｍｌ又は１００μ／ｍｌで、それぞれ、０．９６μｇ、５．１１μｇ、８．０８μｇであった。また、顕微鏡にて表面の状態を確認した結果、コート添加量が１０μｇ／ｍｌでは、硫酸化ヒアルロン酸がマトリゲル中に均一に分散していることが確認できた。
硫酸化ヒアルロン酸に加えて細胞基質マトリックスをさらにコーティングした培養基材を作製し、それを用いた培養を検討した。
ｉＰＳ細胞の培養に使用される基底膜マトリックス（マトリゲル（登録商標）、Corning社）と硫酸化ヒアルロン酸の混合コートを行った。硫酸化ヒアルロン酸は、低分子量（分子量１０万）の硫酸化ヒアルロン酸を用いた。具体的には、以下のようにして、培養用基材へのコーティングを行った。マトリゲルを２．５％になるように細胞培養用培地ＤＭＥＭで溶解し、そこに硫酸化ヒアルロン酸を２μｇ／ｍｌ、１０μｇ／ｍｌ又は１００μｇ／ｍｌとなるように添加して混合し、次いで混合液を培養シャーレに加え、３７℃、５％ ＣＯ2条件下で１時間保温した、シャーレは使用まで凍結して保存し、使用前にマトリゲルを含む細胞培養用培地を抜き取り使用した。
作製した培養基材の表面の硫酸化ヒアルロン酸濃度を確認するために、ＤＭＭＢ法で硫酸化糖を定量した。結果、培養基材表面面積９ｃｍ2あたりの硫酸化ヒアルロン酸濃度は、コート添加量が２μｇ／ｍｌ、１０μｇ／ｍｌ又は１００μ／ｍｌで、それぞれ、０．９６μｇ、５．１１μｇ、８．０８μｇであった。また、顕微鏡にて表面の状態を確認した結果、コート添加量が１０μｇ／ｍｌでは、硫酸化ヒアルロン酸がマトリゲル中に均一に分散していることが確認できた。
１０μｇ／ｍＬの硫酸化ヒアルロン酸を混合させたマトリゲルをコートした培養皿を用い、ｂＦＧＦを加えずに培養を行った。具体的には、フィーダー細胞及びｂＦＧＦを加えずに、マトリゲルのみ、１０μｇ／ｍｌ ヒアルロン酸（ＨＡ）混合マトリゲル、１０μｇ／ｍｌ 低硫酸化ヒアルロン酸（ＨＡ－ＬＳ）混合マトリゲル、１０μｇ／ｍｌ 高硫酸化ヒアルロン酸（ＨＡ－ＨＳ）混合マトリゲルをコートしたプレート上に、ｈｉＰＳ細胞（ｈｉＰＳ＃１６及びｈｉＰＳ＃２５）をそれぞれ播種し、培養した。その結果、低硫酸化ヒアルロン酸、高硫酸化ヒアルロン酸の何れを用いた場合でも、培養２日目において、未分化性を維持しているコロニーが観察された。結果を図４に示す。
実施例６：抗体産生能の増強
硫酸化ヒアルロン酸による抗体産生能の増強効果を確認した。
硫酸化ヒアルロン酸は、実施例１で調製した、低分子量の低硫酸化ヒアルロン酸（分子量１０万）（ＨＡ－ＬＳ）、低分子量の高硫酸化ヒアルロン酸（分子量１０万）（ＨＡ－ＨＳ）を用いた。比較例として、硫酸化されていないヒアルロン酸（ＨＡ）、デルマタン硫酸を用いた。
培地は、ＵｌｔｒａＤｏｍａ－ＰＦ培地（LONZA社から購入）を用い、ヒアルロン酸、低及び高硫酸化ヒアルロン酸、及びデルマタン硫酸を、それぞれ１０μg/ｍｌの濃度となるように添加した。
細胞は、ＩｇＧを産生するハイブリドーマであるＧＧＲ１２株を用いた。
抗体産生を常法に従い行った。具体的には、ハイブリドーマを４ｘ１０4cells/mlの濃度にて播種し、硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で３日間培養し、細胞数及び培養液中の抗体量を測定した。抗体量（抗体濃度）は、抗ＩｇＧポリクローナル抗体を用いて、サンドイッチＥＬＩＳＡにより測定した。結果を図５に示す。
細胞数（細胞増殖）は、いずれの化合物を添加した培地で培養しても差がなかった。しかし、抗体産生量は、硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で有意に増加しており、高硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地では３倍以上に増加していた。
硫酸化ヒアルロン酸による抗体産生能の増強効果を確認した。
硫酸化ヒアルロン酸は、実施例１で調製した、低分子量の低硫酸化ヒアルロン酸（分子量１０万）（ＨＡ－ＬＳ）、低分子量の高硫酸化ヒアルロン酸（分子量１０万）（ＨＡ－ＨＳ）を用いた。比較例として、硫酸化されていないヒアルロン酸（ＨＡ）、デルマタン硫酸を用いた。
培地は、ＵｌｔｒａＤｏｍａ－ＰＦ培地（LONZA社から購入）を用い、ヒアルロン酸、低及び高硫酸化ヒアルロン酸、及びデルマタン硫酸を、それぞれ１０μg/ｍｌの濃度となるように添加した。
細胞は、ＩｇＧを産生するハイブリドーマであるＧＧＲ１２株を用いた。
抗体産生を常法に従い行った。具体的には、ハイブリドーマを４ｘ１０4cells/mlの濃度にて播種し、硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で３日間培養し、細胞数及び培養液中の抗体量を測定した。抗体量（抗体濃度）は、抗ＩｇＧポリクローナル抗体を用いて、サンドイッチＥＬＩＳＡにより測定した。結果を図５に示す。
細胞数（細胞増殖）は、いずれの化合物を添加した培地で培養しても差がなかった。しかし、抗体産生量は、硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で有意に増加しており、高硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地では３倍以上に増加していた。
上記の詳細な記載は、本発明の目的及び対象を単に説明するものであり、添付の特許請求の範囲を限定するものではない。添付の特許請求の範囲から離れることなしに、記載された実施態様に対しての、種々の変更及び置換は、本明細書に記載された教示より当業者にとって明らかである。
本発明の培養方法を用いると、大規模な細胞の製造の妨げとなっている支持細胞（フィーダー細胞）を用いなくとも、未分化状態に維持した或いは多分化能を維持した状態でｈＰＳＣを培養、増殖可能となる。また、本発明の培養方法は、ハイブリドーマによる抗体の産生量を増加させることができる。
Claims (18)
- 多能性幹細胞の未分化状態を維持して培養するための細胞培養用基材であって、ヒアルロン酸の構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して少なくとも１．３以上の割合で導入されている硫酸化ヒアルロン酸が表面にコートされた細胞培養用基材。
- 前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して３．０以上の割合で導入されている、請求項１に記載の細胞培養用基材。
- 前記多能性幹細胞が、ｉＰＳ細胞である請求項１又は２に記載の細胞培養用基材。
- 前記多能性幹細胞が、ヒトＥＳ細胞又はヒトｉＰＳ細胞である請求項１又は２に記載の細胞培養用基材。
- 前記硫酸化ヒアルロン酸が、細胞外マトリックスとともに表面にコートされた請求項１～４のいずれか一つに記載の細胞培養用基材。
- 前記硫酸化ヒアルロン酸が、細胞外マトリックス中に均一に分散された状態で存在することを特徴とする請求項５に記載の細胞培養用基材。
- 請求項１～６のいずれか一つに記載の細胞培養用基材を含む細胞培養器具。
- 請求項１～６のいずれか一つに記載の細胞培養用基材を用いて、多能性幹細胞を培養し、未分化状態を維持することを特徴とする多能性幹細胞の培養方法。
- 多能性幹細胞の未分化状態を維持して培養する方法であって、ヒアルロン酸の構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して１．３以上の割合で導入されている硫酸化ヒアルロン酸及び細胞外マトリックスを添加した培地にて、支持細胞を用いず、かつ、未分化状態維持因子を培地に添加しない培養条件にて細胞を培養することを特徴とする培養方法。
- 前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して３．０以上の割合で導入されている、請求項９に記載の培養方法。
- 前記未分化状態維持因子がｂＦＧＦである請求項９又は１０に記載の培養方法。
- 前記多能性幹細胞が、ｉＰＳ細胞である請求項９～１１のいずれか一つに記載の培養方法。
- 前記多能性幹細胞が、ヒトＥＳ細胞又はヒトｉＰＳ細胞である請求項９～１１のいずれか一つに記載の培養方法。
- 前記硫酸化ヒアルロン酸が、１０μｇ／ｍＬの濃度にて培地に添加される請求項９～１３のいずれか一つに記載の培養方法。
- 抗体を産生する能力を有するハイブリドーマを培養して抗体を産生する方法であって、以下の工程：
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で細胞を培養する工程、ここで、前記硫酸化ヒアルロン酸は、Ｓ含量にて７％以上の硫酸化度である、
を含むことを特徴とする方法。 - 前記硫酸化度が１３％以上である請求項１５に記載の方法。
- 抗体を産生する能力を有するハイブリドーマを培養して抗体を産生する方法であって、以下の工程：
硫酸化ヒアルロン酸を添加した培地で細胞を培養する工程、ここで、前記硫酸化ヒアルロン酸は、構成単位である２糖単位に対して硫酸基が平均して少なくとも１．３以上の割合で導入されている硫酸化度である、
を含むことを特徴とする方法。 - 前記硫酸化度が、硫酸基が平均して３．０以上の割合で導入されている請求項１７に記載の方法。
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| JP2012147793A (ja) | 2008-03-17 | 2012-08-09 | Agency For Science Technology & Research | 幹細胞培養のためのマイクロキャリア |
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