JP2016532124A - 全身性炎症反応症候群（ｓｉｒｓ）または敗血症を呈する患者らにおける死亡リスクを評価する方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】全身性炎症反応症候群（ＳＩＲＳ）または敗血症を呈する患者らにおける死亡リスクを評価する方法の提供。【解決手段】本発明は、生体サンプル中のｓＣＤ１２７の発現を測定する工程を含む、全身性炎症反応（ＳＩＲＳ）または敗血性症候群を提示する患者らにおける死亡リスクを評価する方法を提供する。【選択図】なし
Description
本発明は、一般的に医療分野、特に集中治療の分野に関する。
より正確には、本発明は、全身性炎症反応またはＳＩＲＳを患者に発生する手術、熱傷、外傷などの傷害を受けた敗血症状態の患者、すなわちＳＥＰＳＩＳ、特に重度ＳＥＰＳＩＳ、別名重篤なＳＥＰＳＩＳを示す患者、好ましくは敗血症ショックの患者における死亡リスクを評価する方法に関する。
敗血症は、感染と関係のある全身性炎症反応症候群である。
重度敗血症とは、動脈性低血圧および／もしくは低潅流ならびに／または少なくとも１つの器官の機能不全と関連する敗血症である。
敗血症ショックは、妥当な輸液蘇生や昇圧治療を施したにもかかわらず持続する低血圧と関連する重度ＳＥＰＳＩＳである。
ＳＥＰＳＩＳ、重度ＳＥＰＳＩＳおよび敗血症ショックの差異は、主に生体機能の全てに対する崩壊度の大きさに帰する。
敗血症性症候群を示すＳＩＲＳの患者たち、すなわちＳＥＰＳＩＳ、重度ＳＥＰＳＩＳ、または敗血症ショックの結果として敗血症状態にある患者たちは、集中治療室における死亡の主因の１つである。
したがって、ＳＩＲＳ、ＳＥＰＳＩＳまたは重度ＳＥＰＳＩＳ患者、特に敗血症ショックの状態にある患者における死亡リスクを推定することは、個別治療の提供を可能にし、死のリスクを減少させようと試みるには最も重要である。
集中治療室に入院した患者の症状の重症度は、様々な臨床的および生理学的パラメーターの補助により一般に推定される。それらを特に使用して、生存／死亡に関する予測スコアを定義することができる。これらには、特にＳＯＦＡ（Ｓｅｑｕｅｎｔｉａｌ Ｏｒｇａｎ Ｆａｉｌｕｒｅ ＡｓｓｅｓｓｍｅｎｔまたはＳｅｐｓｉｓ−ｒｅｌａｔｅｄ Ｏｒｇａｎ Ｆａｉｌｕｒｅ Ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ）およびＳＡＰＳＩＩ（Ｓｉｍｐｌｉｆｉｅｄ Ａｃｕｔｅ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ Ｓｃｏｒｅ ＩＩ）（また、ＩＧＳ ＩＩ［Ｉｎｄｉｃｅ ｄｅ Ｇｒａｖｉｔｅ Ｓｉｍｐｌｉｆｉｅ ＩＩ］）重症度スコアが含まれる。集中治療患者たちの実体的コホートを使用することによって定義されるこれらの合成スコアは、循環血小板数、ビリルビン血症、利尿、年齢、または体温など多数の臨床生物学的パラメーターを含む。数値を算出することにより、これらのスコアを使用して、１つ以上の生理的システム（例えば：心血管、腎臓、脳）の機能が攻撃を受けている程度を評価することができる。それらは、集中治療室への入院の第１日目の間に算出される。ＳＡＰＳＩＩスコアの場合、スコアに含まれ、最初の２４時間の間または集中治療中の期間に測定されるパラメーターのうち最悪の値だけが考慮される。
しかし、患者病歴の臨床的パラメーターの積極的調査を実施するには医師が必要となるので、これらのスコアは臨床用途にほとんど実用的でない。
したがって、当然生死にかかわる可能性がある重篤な症状にある、集中治療室に入院している患者における死亡リスクを容易に且つ迅速に評価するために使用し得る他の手段、特に測定可能なマーカーを供給する真の必要性がある。事実、死亡リスクの増加した対象を識別し得るということは、その支援、追跡および療法をより適切に行い得ることを意味することになる。
この文脈において、本発明は、全身性炎症反応（ＳＩＲＳ）を発生する重度傷害（手術、熱傷、外傷など）を受けた患者、または、ＳＥＰＳＩＳ、特に重度ＳＥＰＳＩＳを示す患者、および好ましくは敗血症ショックの状態にある患者における死亡リスクの増加を予測し得る新規「バイオマーカー」を提供することを提案する。この「バイオマーカー」の発現レベルを研究することは、患者の死亡リスクを容易に且つ迅速に評価することができ、可能な全ての予防手法をその後取ることができることを意味する。
したがって本発明は、第１の態様において、全身性炎症反応もしくはＳＩＲＳを発生する手術、熱傷、外傷などの傷害または感染を受けた患者における死亡リスクを評価する方法であって：前記患者から得た生体サンプル、別名試験サンプル中のｓＣＤ１２７の発現を測定する工程と、ｓＣＤ１２７の発現を参照値と比較した後に死亡リスクの増加があるかどうか結論する工程とを含むか、それらのみからなる方法を提供する。
本発明の方法は、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏで実施される方法である。本方法は、例えば、ＳＯＦＡおよびＳＡＰＳＩＩ重症度スコアとは対照的に、直接測定可能なマーカーを提供することによって、特に集中治療室に入院しているか救急の患者において死亡リスクを容易に評価可能になるという長所を有し、測定は患者のベッドサイドやそのそばの検査室において実施することができる。マーカーの測定は、自動分析機械によってまたは迅速試験として公知の試験方法によって実施するのに十分に適している。
ｓＣＤ１２７は、ＣＤ１２７、つまりＩＬ−７受容体の可溶性または血漿形態である。ＣＤ１２７、またはＩＬ−７受容体のα鎖は、造血成長因子受容体スーパーファミリーのメンバーである７５キロダルトン（ｋＤａ）の糖タンパク質である。それは、ＣＤ１３２（共通γｃ鎖）と共同して膜において発現されて、ＩＬ−７受容体を形成する。この受容体は、分化、生存およびリンパ球増殖において重要な役割を果たす。ＣＤ１２７は、細胞外の２１９アミノ酸（ａａ）部分、２５ａａ膜貫通部分、および１９５ａａ細胞質内部分によって構成される。ＣＤ１２７をコードしているｍＲＮＡの選択的スプライシングによって生成されるｓＣＤ１２７と表示される可溶性／血漿形態の存在は、１９９０年にＧｏｏｄｗｉｎ ＲＧら（Ｃｅｌｌ、１９９０年、２３、９４１〜９５１頁）によって記述されているが、今のところその生物学的機能はほとんど理解されていない。
本発明の文脈において、用語「ｓＣＤ１２７」は、ＩＬ−７受容体もしくはＩＬ７Ｒのα鎖またはＩＬ７Ｒ−αまたはＩＬ７ＲＡまたはＣＤＷ１２７としても公知である、ＩＬ−７受容体の可溶性または循環性形態（血漿もしくは血清形態としても知られる）を意味するために使用され、特にＧｏｏｄｗｉｎら（Ｃｅｌｌ、１９９０年、２３、９４１〜９５１頁）に記述され、Ｃｒａｗｌｅｙら（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、２０１０年、１８４、４６７９〜４６８７頁）によってアッセイされている。
特に、本発明によるＣＤ１２７の、したがってｓＣＤ１２７の参照核酸配列は、好ましくは以下の通りである：Ｅｎｓｅｍｂｌ：ＥＮＳＧ０００００１６８６８５、ＨＰＲＤ−ＩＤ：００８９３およびヌクレオチド配列：ＮＭ＿００２１８５．２、ＶＥＧＡ遺伝子：ＯＴＴＨＵＭＧ００００００９０７９１。
さらに、本発明によるＣＤ１２７の、したがってｓＣＤ１２７の参照タンパク質配列は、好ましくは以下の通りである：ＮＰ＿００２１７６ ＸＰ＿９４２４６０；バージョン：ＮＰ＿００２１７６．２ ＧＩ：２８６１０１５１。
本発明の方法の文脈において試験しようとするサンプルは、死亡リスクを評価しようとする患者から採取される生体サンプルである。特に、この型の生体サンプルは、マーカーｓＣＤ１２７を含有可能なサンプルから選択される。
本発明の文脈において、用語「全身性炎症反応」または「ＳＩＲＳ」は、以下の基準のうち少なくとも２つと関連する応答を意味することを意図する：温度＞３８℃または＜３６℃、心拍数＞９０回／分、呼吸数＞２０回／分またはｐａＣＯ２＜３２ｍｍＨｇ、白血球＞１２０００個／ｍｍ３または＜４０００個／ｍｍ３（Ｂｏｎｅら、Ｃｈｅｓｔ、１９９２年、１６４４〜１６５５頁）。
本発明は、ＳＥＰＳＩＳ、特に重度ＳＥＰＳＩＳを示す患者らにおける好ましい用途を示す。特に好ましい方式において、本発明の方法は、敗血症ショックの状態にある患者における死亡リスクを評価するのに特に有利である。感染後にＳＩＲＳを示す敗血症状態（ＳＥＰＳＩＳ、重度ＳＥＰＳＩＳ、および敗血症ショック）の患者らにおいて、感染は様々な起源、特に細菌、ウイルスまたは真菌起源であり得る。
第１の好ましい実施において、本発明の方法を利用して、第１の参照値と比較して試験サンプルにおいてｓＣＤ１２７の過剰発現が実証される場合に、患者の死亡リスクの増加があると結論することができる。
用語「過剰発現」は、参照値に対する発現レベルの有意な増加を意味する。当業者は、実施しようとする比較、例えば複数のサンプル集団もしくは異なる型のサンプルの比較、１つのサンプル集団もしくは同じ型のサンプルにおける経時的変化の比較、などに応じて、ｓＣＤ１２７の発現レベルと比較されるべき参照値を決定するために、使用すべき統計的試験を決定することができる。また、試験されるサンプルの型（例えば血漿、血清、または血液）、実施される免疫学的分析の型（例えばブロット、ＥＬＩＳＡ）または使用される分析機器の型などに応じて、ｓＣＤ１２７の発現レベルの有意な増加を決定することができる。
この実施において、第１の参照値は、生存したことが分かっている全身性炎症反応を発生する傷害または感染を受けた患者、特に生存したことが分かっているＳＥＰＳＩＳを示す患者、および好ましくは生存したことが分かっている敗血症ショックの患者から得られる生体サンプルにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現レベルに対応し得る。
参照サンプルが、試験サンプルを採取する時刻より早い時刻に採取された場合であっても、この状況において、第１の参照値を構成するｓＣＤ１２７の発現の測定は、死亡リスクを評価しようとする患者から得られるサンプルで実施されるｓＣＤ１２７の発現の測定と並行して、すなわち同時に、は実施されることが好ましい。
この第１の参照値は、生存したことが分かっている全身性炎症反応（ＳＩＲＳ）を発生する手術、熱傷、外傷などの傷害または感染を受けた複数の患者、特に生存したことが分かっているＳＥＰＳＩＳを示す複数の患者、好ましくは生存したことが分かっている敗血症ショックの状態にある複数の患者から得られるサンプルのプールで測定されるｓＣＤ１２７の発現レベルの平均値に対応し得る。「プール」される参照サンプルが、試験サンプルを採取する時刻より早い時刻に採取された場合であっても、この状況において、第１の参照値を構成するｓＣＤ１２７の発現の測定は、死亡リスクを評価しようとする患者から得られるサンプルで実施されるｓＣＤ１２７の発現を測定する前に、は実施されることが好ましい。
この第１の好ましい実施において、特に敗血症ショックの状態にある患者の死亡リスクを評価するために、試験サンプル、および必要に応じて、第１の参照値を得るために使用される生体サンプルにおけるｓＣＤ１２７の発現の測定は、敗血症ショック後４日以内もしくは４日目（Ｄ４）、好ましくは敗血症ショック後３日以内もしくは３日目（Ｄ３）、より好ましくは敗血症ショック後２日以内もしくは２日目（Ｄ２）、特に好ましくは敗血症ショック後のその日のうちもしくは１日目（Ｄ１）に実施される。換言すれば、この第１の参照値は、敗血症ショック後４日以内、３日以内、２日以内、その日のうちにまたは敗血症ショックの４日目、３日目、２日目、１日目に作製される。本発明のこの第１の実施の特に有利な実施によると、第１の参照値は、敗血症ショック後２日以内もしくはその日のうちに、または２日目もしくは１日目に作製され、それは、試験される患者の死亡リスクを非常に早期に決定できることを意味する。
第２の好ましい実施によると、本発明の方法を使用して、試験サンプルにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現が第２の参照値と比較して有意に減少しない場合に、患者における死亡リスクの増加があると結論することができる。当業者は、パーセンテージの有意な減少を決定することができ、その減少は、試験サンプルの型（例えば血漿、血清または血液）、または免疫学的分析の型（例えばブロット、ＥＬＩＳＡ）、または分析を行う機器などによって決まる。一般に、試験サンプルにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現が、この第２の参照値と比較して３０％を超えて減少しない、好ましくは２５％を超えて減少しない、特に２０％を超えて減少しない、またはこの第２の参照値と比較して１５％を超えてもしくは１０％を超えて減少しなかった場合、死亡リスクの増加が結論される。
この第２の参照値は、事前にサンプル採取される、前記同じ患者から得られる生体サンプルにおいて、すなわち死亡リスクを評価しようとする患者から得られ、試験サンプルの時刻より早い時刻に得られる生体サンプルにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現レベルに対応し得る。用語「早い」または「前に」は、時間的により早いことを意味するために使用される。好ましくは、第２の参照値は、試験サンプルの直前、すなわち、患者から採取されるサンプルの順序において試験サンプルに先行する生体サンプルにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現レベルに対応する。
この第２の好ましい実施において、特に敗血症ショックの状態にある患者の死亡リスクを評価するために、試験サンプルにおけるｓＣＤ１２７の発現は、敗血症ショックの７日後（Ｄ７）もしくは約７日後、より好ましくは敗血症ショックの４日後もしくは約４日後、特に敗血症ショックの約３日後または３日後、さらにより好ましくは敗血症ショックの約２日後または２日後に測定される。
例として、早いサンプルは、敗血症ショック後４８時間以内もしくは４８時間後、および試験サンプルの少なくとも２４時間前に採取することができ、好ましくは、早いサンプルは、敗血症ショック後４８時間以内もしくは４８時間後に採取され、試験サンプルは、早いサンプルを採取した後４８時間以内または早いサンプルを採取した４８時間後に採取される。
したがって、本発明の方法は、全ての状況において、試験サンプルを採取した患者における死亡リスクの増加の有無を結論するために、試験サンプルにおけるｓＣＤ１２７の発現を測定する前に、試験サンプルにおいて検出されるべき発現レベルと比較するための参照値（第１の参照値か第２の参照値かにかかわらず）を早い時間に得る工程を含むことができる。
したがって、これらの参照値は、それらが第１の参照値かもしくは第２の参照値か、事前にまたは同時に得られたかにかかわらず、試験サンプルにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現の値と比較される。
試験サンプルとも称される本発明の方法が実施されるサンプルは、動物またはヒト起源であってもよく、好ましくはヒト起源である。
試験サンプルは、生体液、例えば血液、特に静脈から採取される全血（すなわち白血球、赤血球、血小板および血漿を含有する）、血清、血漿、ならびに気管支肺胞洗浄液から選択することができる。
好ましくは、前記患者から得られる試験サンプルは、血漿または血清のサンプルである。
参照値（それらが第１の参照値かまたは第２の参照値かにかかわらず）を決定できるサンプル、別名「参照サンプル」は、試験サンプル（生体液）に関し、異なる性質、特に上述の生物学的性質、のものであってもよい。有利なことに、これらの生体サンプルは、試験しようとする生体サンプルと同じ性質のものであり、または、少なくともｓＣＤ１２７の発現の検出および／もしくは定量化に関して参照値を構成することに適合する性質のものである。
特に、第１の参照値を得るために、これらのサンプルは、死亡リスクを評価しようとする対象もしくは患者のものと、特に同じ性別、および／または、類似か同一の年齢、および／または、同じ民族的出身など、同じ特徴もしくは共通の特徴を多く有する個体から得られることが好ましい。この場合、参照サンプルは、生存したことが分かっている全身性炎症反応（ＳＩＲＳ）を発生する手術、熱傷、外傷などの傷害または感染を受けた複数の患者、特に生存したことが分かっているＳＥＰＳＩＳを示す複数の患者、および好ましくは生存したことが分かっている敗血症ショックの状態にある複数の患者から得られる生体サンプルのプールにおいて測定されるレベルに対応するｓＣＤ１２７の平均値を含有するように調整された任意の生物学的もしくは非生物学的サンプルによって構成されてもよい。この状況、および特に好ましい変形において、参照サンプルは、その患者／患者たちが生存したことが分かっている敗血症ショックの状態にある１名以上の患者から得られる。
特に、第２の参照値を得るためには、参照サンプルは、死亡リスクを評価しようとしており、かつ試験サンプルを採取した患者から得られ生体サンプルであることが好ましく、ただし、試験サンプルの時刻より早い時刻に採取されたサンプルから得られる。好ましくは、第２の参照値は、試験サンプルの時刻の直前の時刻に採取された生体サンプル、すなわちサンプルが患者から採取される順序において試験サンプルに先行するサンプルから得られる。
特定の実施において、本発明の方法は、ＳＯＦＡおよび／またはＳＡＰＳＩＩ重症度スコアのうち少なくとも一方を推定することと組み合わせて、ｓＣＤ１２７の発現を測定して、全身性炎症反応（ＳＩＲＳ）を発生する傷害または感染を受けた患者、特に敗血症ショックの状態にある患者の死亡リスクを評価する工程を含む。この実施において、ＳＯＦＡスコアは、好ましくは、Ｄ．Ｌ．Ｖｉｎｃｅｎｔら、Ｉｎｔｅｎｓｉｖｅ Ｃａｒｅ Ｍｅｄ．１９９６年；２２：７０７〜７１０頁に記述されるように算出され、かつ／あるいは、ＳＡＰＳＩＩスコアは、好ましくは、Ｄ．Ｒ．Ｌｅ Ｇａｌｌら、ＪＡＭＡ、１９９３年；２７０：２９５７〜６３頁に記述されるように算出される。
本発明の文脈において、用語「発現を測定する」は、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏ測定を意味することを意図する。さらに、この用語は、ｓＣＤ１２７の、好ましくはタンパク質レベルでの、検出および定量化を意味することを意図する。
この点において、ｓＣＤ１２７タンパク質発現の存在決定および／または測定に関係するか否かにかかわらず、当業者によく知られている検出および／または定量化の任意の方法を使用して、本発明を実施することができる。ｓＣＤ１２７タンパク質の発現を測定する方法の例として、特に、Ｃｒａｗｌｅｙら、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、２０１０年、１８４、４６７９〜４６８７頁に記述されているものを挙げることができる。
特に、ｓＣＤ１２７の発現レベルは、ｓＣＤ１２７に特異的な手段もしくは試薬の補助により測定され、その手段もしくは試薬を使用して、直接的または間接的に発現の存在を決定しおよび／または発現レベルを定量化することができる。
ｓＣＤ１２７を検出および／または定量化することが可能であり、言及することができる手段もしくは試薬の例は特異的抗体であり、その抗体はポリクローナルもしくはモノクローナル、好ましくはモノクローナル、またはそのフラグメントもしくは誘導体、例えばＦａｂ、Ｆ（ａｂ）’２、Ｓｖ、ｓｃＦｖフラグメント、あるいは抗体類似体、特に競合特性を持つ親和性タンパク質であってもよい（Ｎａｎｏｆｉｔｉｎｓ［商標］）。
これらの手段または試薬の好ましい例は、ＩＬ−７受容体の可溶形態に特異的な、すなわちこの受容体の不溶性の細胞／膜形態のＣＤ１２７を認識しないものである。しかしながら、分析されるサンプルの性質（例えば血漿または血清対細胞または全血を含有する生体サンプル）など他の何らかの手段によってこれら２つの形態を区別することが可能な限り、可溶形態またはｓＣＤ１２７とＩＬ−７受容体の細胞形態またはＣＤ１２７の両方を認識する手段または試薬を使用してもよい。
ｓＣＤ１２７がタンパク質レベルで検出および／または定量化される場合、ウェスタンブロット、ＥＬＩＳＡ、ＲＩＡ、ＩＲＭＡ、ＦＩＡ、ＣＬＩＡ、ＥＣＬ、フローサイトメトリーもしくは免疫細胞学など標準的な技術を使用することができる。
特に有利には、ｓＣＤ１２７の発現は、タンパク質レベルで、好ましくはＥＬＩＳＡ技術の補助により測定される。
本発明において、特にこの特定の実施において、ｓＣＤ１２７の発現レベルは、抗ｓＣＤ１２７抗体の補助により測定されることが好ましく、その抗体はモノクローナルまたはポリクローナル、特に抗ｓＣＤ１２７モノクローナル抗体であってもよい。例として、Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ（登録商標）から販売されているＲ３４．３４抗ヒトＣＤ１２７モノクローナル抗体または、Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ（登録商標）から販売されている抗ＣＤ１２７ポリクローナル抗体を使用することができる。
ｓＣＤ１２７の発現の測定に関する上記の指示および選好の全ては、試験サンプルおよび参照サンプルにおけるこの発現の測定に等しく適用できる。
第２の態様において、本発明は、全身性炎症反応もしくはＳＩＲＳを発生する手術、熱傷、外傷などの傷害または感染を受けた患者、特にＳＥＰＳＩＳ、特に重度ＳＥＰＳＩＳを示す患者における死亡リスクを評価するための、ｓＣＤ１２７発現のｉｎ ｖｉｔｒｏ測定またはｅｘ ｖｉｖｏ測定の使用も提供する。
好ましくは、この使用は、敗血症ショックの状態にある患者における死亡リスクを評価するのに特に有利である。
さらに、本発明の使用の文脈において、ｓＣＤ１２７の発現は、タンパク質レベルで、特にＥＬＩＳＡ技術の補助により好ましくは測定される。
特に、ｓＣＤ１２７の発現は、モノクローナルまたはポリクローナル抗ｓＣＤ１２７抗体、好ましくはモノクローナル抗ｓＣＤ１２７抗体を使用して測定できる。上記の抗体は、本発明のこの第２の態様において使用することもできる。
より広い態様において、本方法およびその組合せに関する上記の好ましい実施の全ては、使用に関する好ましい実施も構成する。より具体的には、本発明による使用は、特に、ＳＯＦＡおよび／またはＳＡＰＳＩＩ重症度スコアの少なくとも一方の推定値と組み合わせてｓＣＤ１２７の発現を測定して、全身性炎症反応（ＳＩＲＳ）を発生する傷害または感染を受けた患者、特に敗血症ショックの状態にある患者における死亡リスクを評価する工程を含むことができる。
第３の態様において、本発明は：前記生体サンプルにおいてｓＣＤ１２７の発現を測定するための特異的手段または試薬と、生存したことが分かっている患者からのサンプルのプールにおいて測定される量の平均に相当する量のｓＣＤ１２７を含有するように調整されたサンプルである陽性対照サンプル、および／または、生存しなかったことが分かっている患者からのサンプルのプールにおいて測定される量の平均に相当する量のｓＣＤ１２７を含有するように調整されたサンプルである陰性対照サンプルを含む、生体サンプルにおけるｓＣＤ１２７の発現をｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏ測定するためのキットも提供する。
したがって本発明によるキットは、前記生体サンプルにおけるｓＣＤ１２７の発現、および少なくとも１つの対照サンプルを測定するための特異的手段または試薬を含む。
特に、本発明のキットを使用して、全身性炎症反応（ＳＩＲＳ）を発生する手術、熱傷、外傷などの傷害または感染の対象となった入院患者、特に敗血症ショックの状態にある患者における死亡リスクを評価することができる。
好ましくは、生体サンプル中のｓＣＤ１２７の発現を測定するために使用でき、本発明のキット中に存在する特異的手段または試薬を使用して、ｓＣＤ１２７の発現を、好ましくはタンパク質レベルで検出および／または定量化することができる。
特に好ましい実施形態において、本発明のキットは、測定しようとする前記生体サンプルにおけるｓＣＤ１２７の発現を可能にする特異的手段または試薬として、モノクローナルまたはポリクローナル抗ｓＣＤ１２７抗体、特にモノクローナル抗体を含有する。
別の陽性対照サンプルは、生存したことが分かっている少なくとも１名の患者から得られる生体サンプルであってもよい。同様に、別の陰性対照サンプルは、生存しなかったことが分かっている少なくとも１名の患者から得られる生体サンプルでもよい。それが陽性対照か陰性対照かにかかわらず、この型の対照サンプルは、全身性炎症反応（ＳＩＲＳ）を発生する手術、熱傷、外傷などの傷害または感染を受けた１名以上の患者、特にＳＥＰＳＩＳを示す１名以上の患者、好ましくは敗血症ショックの状態にある１名以上の患者から特に得られる。
好ましくは、キットは陽性対照サンプルと陰性対照サンプルの両方を含み、特にそれぞれは上で定義した調整されたサンプルから選択される。
本発明は、本発明の方法を実施するための、特に、全身性炎症反応（ＳＩＲＳ）を発生する手術、熱傷、外傷などの傷害または感染を受けた患者、特にＳＥＰＳＩＳ、特に重度ＳＥＰＳＩＳを示す患者における死亡リスクを評価するための本発明のキットの使用も包含する。好ましくは、本発明のキットを使用することにより、敗血症ショックの状態にある患者における死亡リスクを評価することが可能になる。
本方法およびその組合せに関する上記の好ましい実施の全ては、本発明のキットおよびその使用の好ましい実施形態も構成する。
非限定的な例として、本発明の主題の実施を示す添付の図を参照して作成される以下の説明から、他の様々な特徴が明らかになる。
＜方法＞
＜生体サンプル＞
血漿サンプルを、敗血症ショック後１〜２日目（Ｄ１〜２）および３〜４日目（Ｄ３〜４）に敗血症ショックの７０名の患者から採取し、次いで保管した（遡及的なコホート）。血漿サンプルを、４１名の健常ボランティア対象からも採取した。
＜生体サンプル＞
血漿サンプルを、敗血症ショック後１〜２日目（Ｄ１〜２）および３〜４日目（Ｄ３〜４）に敗血症ショックの７０名の患者から採取し、次いで保管した（遡及的なコホート）。血漿サンプルを、４１名の健常ボランティア対象からも採取した。
敗血症ショックのため集中治療に入院した２８日後に、７０名の患者のうち１４名の患者、すなわち２０％が生存しなかった（「ＮＳ」）、一方で５６名の患者が生存した（「ｓ」）。
＜ＥＬＩＳＡによるＩＬ−７受容体の可溶形態（ｓＣＤ１２７）のアッセイ＞
「コーティング」
水（ｐＨ９．６）５００ｍＬ中にＮａ２ＣＯ３０．８ｇ、ＮａＨＣＯ３１．４ｇおよびＮａＮ３０．１ｇを含有する「コーティング」緩衝液を調製した。
「コーティング」
水（ｐＨ９．６）５００ｍＬ中にＮａ２ＣＯ３０．８ｇ、ＮａＨＣＯ３１．４ｇおよびＮａＮ３０．１ｇを含有する「コーティング」緩衝液を調製した。
「コーティング」緩衝液に希釈した捕捉抗体（Ａｂ）（マウス抗ヒトＣＤ１２７モノクローナル抗体Ｒ３４．３４、Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ［登録商標］）１００μＬを、プレートのウェル当たり（［Ａｂ］＝８μｇ／ｍＬ）で付着させた。次いでプレートを、覆い、４℃で終夜インキュベートした。
ウェルの内容物を次いで吸引し、ウェルを少なくとも３００μＬの０．０５％ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ２０洗浄緩衝液で３回洗浄した。各洗浄において液体の全てを慎重に除去した。最後の洗浄の後、プレートを吸着性の紙の上に反転させ、微量の緩衝液を全て排除した。
「ブロッキング」
ウェル当たりブロッキング緩衝液（１０％ウシ胎仔血清［ＦＣＳ］／ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ２０、０．０５％）１５０μＬの補助により非特異的定着をブロッキングし、次いでプレートを３７℃で１時間インキュベートした。
ウェル当たりブロッキング緩衝液（１０％ウシ胎仔血清［ＦＣＳ］／ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ２０、０．０５％）１５０μＬの補助により非特異的定着をブロッキングし、次いでプレートを３７℃で１時間インキュベートした。
再び、ウェルの内容物を吸引し、ウェルを少なくとも３００μＬの０．０５％ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ２０洗浄緩衝液で３回洗浄した。各洗浄において液体の全てを慎重に除去した。最後の洗浄の後、プレートを吸着性の紙の上に反転させ、微量の緩衝液を全て排除した。
サンプルおよび対照
Ｃ．Ｊａｎｏｔ−Ｓａｒｄｅｔら、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ、２０１０年、２８、１１５〜１２３頁にしたがって、ＰＢＳ５％ＦＣＳ希釈緩衝液に希釈したヒト組換えＩＬ−７Ｒα／ＣＤ１２７Ｆｃキメラ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，カタログ番号：３０６−ＩＲ）を用いて、換算表を以下の表１に記載の通り作製した。
Ｃ．Ｊａｎｏｔ−Ｓａｒｄｅｔら、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ、２０１０年、２８、１１５〜１２３頁にしたがって、ＰＢＳ５％ＦＣＳ希釈緩衝液に希釈したヒト組換えＩＬ−７Ｒα／ＣＤ１２７Ｆｃキメラ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，カタログ番号：３０６−ＩＲ）を用いて、換算表を以下の表１に記載の通り作製した。
サンプルまたは対照（６０ｎｇ／ｍＬならびに１０ｎｇ／ｍＬの濃度で即時におよびアリコートに再構成したＣＤ１２７Ｆｃキメラの溶液）１００μＬを、各ウェルに添加し、次いでプレートを３７℃で１時間インキュベートした。
再び、ウェルの内容物を吸引し、ウェルを少なくとも３００μＬの０．０５％ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ２０洗浄緩衝液で３回洗浄した。各洗浄において液体の全てを慎重に除去した。最後の洗浄の後、プレートを吸着性の紙の上に反転させ、微量の緩衝液を全て排除した。
検出抗体
ＰＢＳ／５％ＦＣＳに希釈した検出抗体（１％ＴＢＳ−ＢＳＡ１ｍＬで再構成したビオチン化ヤギポリクローナル抗ＣＤ１２７抗体、Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ［登録商標］）１００μＬを各ウェルに添加し（［Ａｂ］＝２００ｎｇ／ｍＬ）、次いでプレートを３７℃で１時間インキュベートした。
ＰＢＳ／５％ＦＣＳに希釈した検出抗体（１％ＴＢＳ−ＢＳＡ１ｍＬで再構成したビオチン化ヤギポリクローナル抗ＣＤ１２７抗体、Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ［登録商標］）１００μＬを各ウェルに添加し（［Ａｂ］＝２００ｎｇ／ｍＬ）、次いでプレートを３７℃で１時間インキュベートした。
再び、ウェルの内容物を吸引し、ウェルを少なくとも３００μＬの０．０５％ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ２０洗浄緩衝液で３回洗浄した。各洗浄において液体の全てを慎重に除去した。最後の洗浄の後、プレートを吸着性の紙の上に反転させ、微量の緩衝液を全て排除した。
露出
ストレプトアビジン−ＨＲＰ１００μＬを、各ウェルに添加した（［ストレプトアビジン−ＨＲＰ］＝８μＬ／ｍＬ）。次いでプレートを覆い、周囲温度で３０分間インキュベートした。
ストレプトアビジン−ＨＲＰ１００μＬを、各ウェルに添加した（［ストレプトアビジン−ＨＲＰ］＝８μＬ／ｍＬ）。次いでプレートを覆い、周囲温度で３０分間インキュベートした。
再び、ウェルの内容物を吸引し、ウェルを少なくとも３００μＬの０．０５％ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ２０洗浄緩衝液で３回洗浄した。各洗浄において液体の全てを慎重に除去した。最後の洗浄の後、プレートを吸着性の紙の上に反転させ、微量の緩衝液を全て排除した。この洗浄ステージにおいて、吸引の前にウェルを１分間〜２分間洗浄緩衝液により浸漬した。
発色基質ＴＭＢ（３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン、ｂｉｏＭｅｒｉｅｕｘ ＃ＸＸ７ＬＦ１ＵＣ）の２つのフラスコを、体積対体積で混合し、この基質溶液１００μＬを各ウェルに付着させた。次いでプレートを覆い、周囲温度で３０分間インキュベートした。
最終的に、プレートを、４５０ｎｍでの吸光度測定により読み取った。
＜多変量解析＞
Ｃｏｘモデルにより、「危険率」およびその９５％信頼区間（９５％ＣＩ）とその有意性を推定した。ＳＡＰＳＩＩおよびＳＯＦＡスコアは、その値と死のリスク（生存者対非生存者）との直線関係を仮定して連続変数の形態でモデルに含まれた。統計分析は、ＳＰＳＳ（バージョン１７．０、ＳＰＳＳ、Ｃｈｉｃａｇｏ、ＩＬ）およびＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ（バージョン５．０３、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ、Ｌａ Ｊｏｌｌａ、ＣＡ）ソフトウェアを使用して実施した。０．０５未満のｐ値を、有意と見なした。
Ｃｏｘモデルにより、「危険率」およびその９５％信頼区間（９５％ＣＩ）とその有意性を推定した。ＳＡＰＳＩＩおよびＳＯＦＡスコアは、その値と死のリスク（生存者対非生存者）との直線関係を仮定して連続変数の形態でモデルに含まれた。統計分析は、ＳＰＳＳ（バージョン１７．０、ＳＰＳＳ、Ｃｈｉｃａｇｏ、ＩＬ）およびＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ（バージョン５．０３、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ、Ｌａ Ｊｏｌｌａ、ＣＡ）ソフトウェアを使用して実施した。０．０５未満のｐ値を、有意と見なした。
＜生存比較分析（「対数順位（ｌｏｇ ｒａｎｋ）」検定）＞
ＲＯＣ（受診者動作特性）曲線を、上記のソフトウェアを使用して生成し、ヨーデン指数により最良の感度および特異性を得るために最適化された濃度または最適ｓＣＤ１２７閾値を定義した。この指標は、考察しているマーカーの増分値について感度と特異性のパラメーターを組み合わせるものである。したがって、最も高いヨーデン指数を提供するマーカーの最適化した濃度、すなわち最適化した感度および特異性を決定した。この最適化した値に基づいて患者たちの層化後にカプランマイヤー生存曲線を得た。群間の生存の差異を、これらの生存曲線の傾きに基づいて算出した「対数順位」検定および「危険率」（および９５％の信頼区間）を使用して評価した。
ＲＯＣ（受診者動作特性）曲線を、上記のソフトウェアを使用して生成し、ヨーデン指数により最良の感度および特異性を得るために最適化された濃度または最適ｓＣＤ１２７閾値を定義した。この指標は、考察しているマーカーの増分値について感度と特異性のパラメーターを組み合わせるものである。したがって、最も高いヨーデン指数を提供するマーカーの最適化した濃度、すなわち最適化した感度および特異性を決定した。この最適化した値に基づいて患者たちの層化後にカプランマイヤー生存曲線を得た。群間の生存の差異を、これらの生存曲線の傾きに基づいて算出した「対数順位」検定および「危険率」（および９５％の信頼区間）を使用して評価した。
＜結果＞
ＩＬ−７受容体の可溶形態（ｓＣＤ１２７）のアッセイ
血漿ｓＣＤ１２７の濃度を、敗血症ショックの７０名の患者由来血漿サンプルにおいて上記の通り測定し、これらの患者におけるＳＯＦＡおよびＳＡＰＳＩＩ重症度スコアを、入院の最初の２４時間に利用可能な臨床的および生理学的データに基づいて評価した。
ＩＬ−７受容体の可溶形態（ｓＣＤ１２７）のアッセイ
血漿ｓＣＤ１２７の濃度を、敗血症ショックの７０名の患者由来血漿サンプルにおいて上記の通り測定し、これらの患者におけるＳＯＦＡおよびＳＡＰＳＩＩ重症度スコアを、入院の最初の２４時間に利用可能な臨床的および生理学的データに基づいて評価した。
同じ測定を、４１名の健常ボランティア対象（ＨＶ）から得たサンプルでも実施した。
結果を、下記の表２〜４に要約する。
敗血症ショックの患者の死亡を予測するｓＣＤ１２７の能力
研究しようとする事象、すなわち死亡率に関して、血漿ｓＣＤ１２７の濃度の測定の予測能力を研究した。２つの参照スコア、ＳＡＰＳＩＩおよびＳＯＦＡの予測能力についても、同じ事象について研究した。
研究しようとする事象、すなわち死亡率に関して、血漿ｓＣＤ１２７の濃度の測定の予測能力を研究した。２つの参照スコア、ＳＡＰＳＩＩおよびＳＯＦＡの予測能力についても、同じ事象について研究した。
結果を、敗血症ショックの７０名の患者における、Ｄ１〜２に測定したｓＣＤ１２７のＲＯＣ（受診動作特性）曲線ならびにＳＡＰＳＩＩおよびＳＯＦＡ重症度スコアの形で図１に表す。
下記の表２に報告する曲線下面積の評価は、公知のＳＯＦＡおよびＳＡＰＳＩＩスコアの予測成績が血漿ｓＣＤ１２７の測定のそれと比較できることを意味する。
Ｄ１〜２に測定したｓＣＤ１２７の値について、ヨーデン指数を使用して最適な閾値を４４．４５ｎｇ／ｍＬと定義した。その閾値は、感度８６％；特異性７１％、陽性予測値（試験が閾値を越える場合に、患者が死亡することになる確率）４３％および陰性予測値（試験がこの閾値以下である場合、患者が生存することになる確率）９５％をもたらした。
同様に、Ｄ３〜４に測定したｓＣＤ１２７の値について、最適な閾値を４８．１０ｎｇ／ｍＬと定義し、その閾値は、感度７１％；特異性８６％、陽性予測値５６％および陰性予測値９２％をもたらした。
これと比較して、Ｄ１に測定したＳＯＦＡスコアでは、感度は６４．３％、特異性は６６．１％であり、陽性予測値３２．１％および陰性予測値８８．１％であった。
Ｄ１に測定したＳＡＰＳＩＩスコアでは、感度は７１．４％、特異性は５５．４％であり、陽性予測値２８．６％および陰性予測値８８．６％であった。
したがって、Ｄ１〜２における患者由来血漿中のｓＣＤ１２７の濃度の測定が、敗血症ショック後の死の予測について従来使用されてきたＳＯＦＡおよびＳＡＰＳＩＩスコアより良好な能力を有することをこれらの結果は示している（ＲＯＣ曲線下面積に基づく）。
多変量解析
ｓＣＤ１２７の血漿中濃度と敗血症ショックの患者に対する公知の危険因子と比較される死のリスク（ＳＡＰＳＩＩおよびＳＯＦＡスコアによって評価される機能不全の器官の初期重症度および数）との関連の独立性を評価するために、単一および多変量ロジスティック回帰分析を上記の通り実施した。
ｓＣＤ１２７の血漿中濃度と敗血症ショックの患者に対する公知の危険因子と比較される死のリスク（ＳＡＰＳＩＩおよびＳＯＦＡスコアによって評価される機能不全の器官の初期重症度および数）との関連の独立性を評価するために、単一および多変量ロジスティック回帰分析を上記の通り実施した。
ＳＯＦＡスコア、ＳＡＰＳＩＩスコアならびにＤ１〜２およびＤ３〜４において得られるｓＣＤ１２７の測定との多変量解析を実施した。下記の表３および４に要約される結果は、ｓＣＤ１２７の測定が、敗血症ショック後の死亡率の予測に関する公知の２つの危険因子、すなわちＳＯＦＡおよびＳＡＰＳＩＩから完全に独立しているマーカーであることを示す。
カプランマイヤー生存曲線
Ｄ１〜２とＤ３〜４におけるｓＣＤ１２７のＲＯＣ曲線およびヨーデン指数を使用して決定した最適な閾値に基づき生存曲線を確立した。ＳＡＰＳＩＩスコアに基づく患者の層化後の生存曲線も生成した（５３に等しい閾値）。結果を図２Ａ、２Ｂおよび２Ｃに示す。
Ｄ１〜２とＤ３〜４におけるｓＣＤ１２７のＲＯＣ曲線およびヨーデン指数を使用して決定した最適な閾値に基づき生存曲線を確立した。ＳＡＰＳＩＩスコアに基づく患者の層化後の生存曲線も生成した（５３に等しい閾値）。結果を図２Ａ、２Ｂおよび２Ｃに示す。
Ｄ１〜２（図２Ａ）かＤ３〜４（図２Ｂ）かにかかわらず、これらの結果は、ｓＣＤ１２７の最適な閾値の関数として引かれる２本の生存曲線の間の有意差を示す（Ｄ１〜２［図２Ａ］：「危険率」＝１０．２２；［９５％ＣＩ］：３．３６〜３１．１３；ｐ＜０．００１、「対数順位」検定；Ｄ３〜４［図２Ｂ］：「危険率」＝２８．５０；［９５％ＣＩ］：７．５１９〜１０８．０）；ｐ＜０．００１、「対数順位」検定。
それに対し、ＳＡＰＳＩＩスコアに基づく層化後、死亡率に有意差は実証されなかった（図２Ｃ：ｐ＝０．０８２、「対数順位」検定、「危険率」＝２．５５、［９５％ＣＩ］：０．８８７〜７．３０９）。
最終的に、上記の通り、Ｄ１〜２とＤ３〜４におけるｓＣＤ１２７のＲＯＣ曲線およびヨーデン指数を使用して決定した最適な閾値と、ＳＡＰＳＩＩの最適な閾値（５３に等しい閾値）に基づく患者の層化後の、ｓＣＤ１２７の増大値とＳＡＰＳＩＩスコアの増大値との組合せの死のリスクの予測能力を評価した。したがって対応する生存曲線も生成し、その結果をそれぞれ図３Ａおよび３Ｂに表す。
Ｄ１〜２かＤ３〜４かにかかわらず、これらの結果は、最も低い濃度のｓＣＤ１２７および最も低いＳＡＰＳＩＩスコアを有する患者たちは、より高い濃度のｓＣＤ１２７および最も高いＳＡＰＳＩＩスコアを有する患者たちと比較して、生存の可能性がはるかに高いことを示している：
Ｄ１〜２（図３Ａ）：ｐ＜０．００１、対数順位検定、危険率＝１２．９８；［９５％ＣＩ］：３．４５３〜４８．８３。
Ｄ３〜４（図３Ｂ）：ｐ＜０．００１、対数順位検定、危険率＝５０．９４；［９５％ＣＩ］：９．３５２〜２７７．４）。
Ｄ１〜２（図３Ａ）：ｐ＜０．００１、対数順位検定、危険率＝１２．９８；［９５％ＣＩ］：３．４５３〜４８．８３。
Ｄ３〜４（図３Ｂ）：ｐ＜０．００１、対数順位検定、危険率＝５０．９４；［９５％ＣＩ］：９．３５２〜２７７．４）。
これらの結果は、ｓＣＤ１２７とＳＡＰＳＩＩまたはＳＯＦＡスコアの少なくとも一方とを組み合わせた測定が、集中治療に入院している患者たちの死亡率の予測力を増大し得ることを実証している。
結果として、この一連の結果は、血漿中のｓＣＤ１２７の発現を測定することが、集中治療室に入院している患者、特に敗血症ショックの状態にある患者における死亡リスクを評価するには非常に有用で、信頼性の高い免疫学的マーカーであることを実証している。加えて、このパラメーターは、これらのスコアによる死のリスクの予測能力を改善するために通常の臨床スコアと組み合わせることができる。
本発明の範囲を逸脱せずに様々な修飾が提供され得るので、本発明は、記載および表示されている例に限定されない。
Claims (18)
- 全身性炎症反応を発生する傷害または感染を受けた患者における死亡リスクを評価する方法であって：
前記患者から得た生体サンプル、別名試験サンプル中のｓＣＤ１２７の発現を測定する工程と、
ｓＣＤ１２７の発現を参照値と比較した後に死亡リスクの増加があるかどうか結論する工程
とを含む方法。 - 生体サンプルが、ＳＥＰＳＩＳ、特に重度ＳＥＰＳＩＳを示す患者から得られることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
- 生体サンプルが、敗血症ショックの状態にある患者から得られることを特徴とする、請求項２に記載の方法。
- 第１の参照値と比較して試験サンプルにおいてｓＣＤ１２７の過剰発現が実証される場合に、前記患者における死亡リスクの増加があると結論することを特徴とする、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
- 第１の参照値が、生存したことが分かっている全身性炎症反応またはＳＩＲＳを発生する傷害または感染を受けた患者から得られる生体サンプルにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現レベルに対応するか、生存したことが分かっている全身性炎症反応またはＳＩＲＳを発生する傷害または感染を受けた複数の患者から得られるサンプルのプールにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現レベルの平均値に対応することを特徴とする、請求項４に記載の方法。
- 第１の参照値が、生存したことが分かっている敗血症ショックの患者から得られる生体サンプルにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現レベルに対応するか、生存したことが分かっている敗血症ショックの複数の患者から得られるサンプルのプールにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現レベルの平均値に対応することを特徴とする、請求項４または請求項５に記載の方法。
- 試験サンプル、および必要に応じて、第１の参照値を得るために使用される生体サンプルにおけるｓＣＤ１２７の発現が、敗血症ショック後２日以内もしくはその日のうちに、または、敗血症ショックの２日後もしくは１日後に測定されることを特徴とする、請求項３〜６のいずれか一項に記載の方法。
- 試験サンプルにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現が第２の参照値と比較して有意に減少しない場合に、前記患者における死亡リスクの増加が結論付けられることを特徴とする、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
- 第２の参照値が、同じ患者から先に得られた生体サンプルにおいて測定されるｓＣＤ１２７の発現レベルに対応することを特徴とする、請求項８に記載の方法。
- 試験サンプルにおけるｓＣＤ１２７の発現が、敗血症ショックの４日後もしくは約４日後（Ｄ４）、特に敗血症ショックの３日後もしくは約３日後（Ｄ３）、より好ましくは敗血症ショックの２日後（Ｄ２）もしくは約２日後に測定されることを特徴とする、請求項３、８または９のいずれか一項に記載の方法。
- 前のサンプルが、敗血症ショック後４８時間以内または４８時間後かつ試験サンプルの少なくとも２４時間前に採取されることを特徴とする、請求項１０に記載の方法。
- ｓＣＤ１２７の発現の測定を、ＳＯＦＡおよび／またはＳＡＰＳＩＩ重症度スコアのうち少なくとも一方を推定することと組み合わせて前記患者における死亡リスクを評価することを特徴とする、請求項１〜１１のいずれかに記載の方法。
- ｓＣＤ１２７の発現が、抗ｓＣＤ１２７抗体、特にモノクローナル抗ｓＣＤ１２７抗体の補助により測定されることを特徴とする、請求項１〜１２のいずれかに記載の方法。
- 全身性炎症反応を発生する傷害または感染を受けた患者における死亡リスクを評価するための、ｓＣＤ１２７の発現のｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏ測定の使用。
- 患者が、敗血症ショックの状態にある患者であることを特徴とする、請求項１４に記載の使用。
- ｓＣＤ１２７の発現が、抗ｓＣＤ１２７抗体、好ましくはモノクローナル抗ｓＣＤ１２７抗体の補助により測定されることを特徴とする、請求項１４または請求項１５に記載の使用。
- 生体サンプルにおいてｓＣＤ１２７の発現を測定するための特異的手段または試薬と、
生存したことが分かっている全身性炎症反応を発生する傷害または感染を受けた複数の患者からのサンプルのプールにおいて測定される量の平均に相当する量のｓＣＤ１２７を含有するように調整されたサンプルである陽性対照サンプル、および／または、生存しなかったことが分かっている全身性炎症反応を発生する傷害または感染を受けた複数の患者からのサンプルのプールにおいて測定される量の平均に相当する量のｓＣＤ１２７を含有するように調整されたサンプルである陰性対照サンプル
を含む、生体サンプルにおけるｓＣＤ１２７の発現をｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏ測定するためのキット。 - 前記生体サンプル中のｓＣＤ１２７の発現を測定するための特異的手段または試薬として抗ｓＣＤ１２７抗体を含有することを特徴とする、請求項１７に記載のキット。
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