JP2016525095A - 神経変性疾患 - Google Patents
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Abstract
Description
[ペプチドの環化]
直鎖状ペプチドの環化を達成するために、ここで記載される3つの技術、すなわち側鎖−側鎖、側鎖−主鎖および頭−尾(head−to−tail)(C末端−N末端)環化を用いた。頭−尾環化は、広く研究されており、(1分子あたり2つ以下の)指向された(directed)Cys−Cysジスルフィド環化に関与しうる。反応を注視することで、確実に100%環化される。合成には、(1)高希釈濃度下での古典的な溶液相での直鎖状ペプチド環化および(2)担体上での(resin−based)環化の2つの主要なアプローチが用いられる。固相合成(1)において、2つの異なるプロトコールを採用した:
(a)イミダゾール、3酸、4アミン’またはアルコールなどの側鎖官能基を介して固定されたペプチドの担体上環化を行った。ペプチドをC末端でエステルとして直交に(orthogonally)保護した後、通常のBocまたはFmoc合成を通じて結合し、ケン化、環化および切断した。
PC12細胞はクローンであり、副腎髄質由来の褐色細胞腫細胞株である(Greene and Tischler,1976,Proc Natl Acad Sci U S A 73:2424−2428;Mizrachi et al.,1990,Proc Natl Acad Sci U S A 87:6161−6165)。これらは容易に培養でき、すぐに実験的操作に用いることができる。クロム親和性細胞は神経堤に由来するが、アクセス可能な末梢器官(副腎髄質)の中心に存在するため、これらは脳への「窓」を提供すると記述されている(Bornstein et al.,2012,Mol Psychiatry 17:354−358)。当該細胞は、神経変性における未知の主要プロセスの研究のために、強力で、新規であるが、in vitroモデルとして役立ち、これが当該プロジェクトで有用な理由は以下のとおりである:アルツハイマー患者の副腎髄質は、CNSにおいて見られるものとよく似た多様な病理学的特徴を示し、例えば、アミロイド前駆体タンパク質(APP)の発現と同様に、多数のLewy小体様封入物、神経原線維変化および一対のらせん状フィラメントがある(Takeda et al.,1994,Neurosci Lett 168:57−60)。さらに、AppleyardおよびMacdonald(1991,Lancet 338:1085−1086)は、おそらく促進された血漿中への分泌に起因し、AChEの可溶な(すなわち放出可能な)形態のみがADの副腎から選択的に除去されることを実証しており、AD患者ではこれが上昇している(Atack et al.,1985, J Neurol Sci 70:1−12;Berson et al.,2008,Brain 131:109−119)。
結合アッセイを行うため、PC12膜を得た。PC12細胞を100mmプレート上でコンフルエントになるまで成長させた。成長培地を除去し、4.5μg/μlアプロチニンおよび0.1mMフッ化フェニルメチルスルホニル(PMSF)を含有する氷冷50mM Tris−HClバッファー(pH7.4)を添加した。細胞を機械的に脱離させ、4℃で4分間遠心分離(1040×g)しペレット化した。ペレットをPolytronでホモジナイズし、4℃で20分間遠心分離(13000×g)した。ペレットを新しいバッファー中で再懸濁し、37℃で10分間インキュベートし、内在性の神経伝達物質を除いた。続いて、サンプルを再懸濁した。最終ペレットをバッファー中で再懸濁し、Bradford試薬(Sigma−Aldrich,St.Louis,MO)を用いてタンパク質濃度を算出した。細胞膜の調製は−80℃で保管した。
提供元(Abcam,Cambridge UK)が示すように、βアミロイド(1−42)線維を調製した。βアミロイド(1−42)1mgを1,1,1,3,3,3−ヘキサフルオロ−2−プロパノール(HFIP)212μlおよびNH4OH 10μl中に溶解した。超音波処理およびチューブあたり10μlずつ分けた後、高速真空乾燥機(Thermo Fisher Scientific,Loughborough,UK)で乾燥し、−20℃で保管した。実験のため、サンプルをDMSO(5mM)2μlおよびHCl(0.01N)98μl中に希釈して繊維形成させ、37℃で一晩インキュベートした。
PC12膜との結合のため、50mM Tris−HCl中に希釈した異なる濃度のAChEペプチドT30、βアミロイドまたは環状T14非存在下または存在下(0.1、0.5、0.7、1、2、10μM)で、最終量0.5mlとし、5nM[3H]イベルメクチン(American Radiolabeled Chemicals,USA)とともに(PC12膜50μgを含有する)50mM Tris−HClバッファー中に希釈した膜0.25mlを含有するポリスチレンチューブ(VWR International Ltd;Leicestershire,UK)内で、4℃で2時間インキュベーションをそれぞれ行った。その後、サンプルを、Harvester(Brandel;MD,USA)により0.5% ポリエチレンイミン(polyethylenemine)中に予め浸漬したBrandel GBガラス繊維フィルター(MD,USA)を通して濾過した。チューブを氷冷50mM Tris−HClバッファーで3回洗浄した。300SL液体シンチレーションカウンター(Lablogic Systems Limited,UK)を用いて、シンチレーションスペクトロメトリーにより、チューブ内の放射能をカウントした。全てのチューブについて、非特異(30μMイベルメクチンで処理した細胞)値を差し引くことにより、特異的結合を算出した。
用いた細胞生存アッセイは、毒性スクリーニング向けのスルホローダミンB(SRB)比色アッセイである。実験前日、コラーゲンコート96ウェルプレート上に、40,000細胞/ウェルの濃度で細胞を播種した。細胞濃度は、Fuchs−Rosenthalチャンバーにより測定した。環状T14(0.1〜100μM)ならびにT30、T14およびAβ(10μM)を単独で、または環状T14(0.1および0.7μM)と組み合わせて含有するMEMで試薬を調製した。処理後、培地を交換し、10%トリフルオロ酢酸(TCA)100μlを添加して4℃で1時間置くことにより、細胞を固定した。その後、細胞を水で洗浄し、0.057%SRBの1%酢酸(HAc)溶液100μlを用いて、室温で30分間染色した。染色後、過剰なSRBを除去するために細胞を1%HAcで洗浄した後、10mM Tris−HCl塩基(pH10.5)200μlでインキュベートして5分間振とうし、タンパク質に結合した染色剤を可溶化した。吸光度測定は、VMax Kinetic Microplate Reader(Molecular Devices)内で、490nmで行った。
AChE活性は、AChE活性に起因するチオール基の存在を測定するEllman試薬を用いて測定した。細胞生存アッセイのため、実験前日に細胞を播種した。細胞を、異なる濃度の環状T14(0.1−100μM)ならびにT30、T14およびAβ 10μMを単独で、または環状T14(0.1および0.7μM)と組み合わせて処理した。処理後、各処理の上清(灌流液)を回収し、各条件につき25μLを新しい平底96ウェルプレートに添加し、Ellman試薬(溶液A:139mM KH2PO4および79.66mM K2HPO4、pH7.0;溶液B(基質):11.5mMヨウ化アセチルチオコリン;溶液C(試薬):8mM 5,5’−ジチオビス(2−ニトロ安息香酸)および15mM NaHCO3)175μlを添加した。33(A):3(B):4(C)の比で3種類の溶液の混合物としてEllman試薬を調製した。吸光度測定は、実験を通して通常の間隔(3、10、30および60分)で、405nmで測定した。
Fluo−4(Life Technologies Corporation, UK)をロードした細胞内の蛍光変化を測定することにより、細胞内Ca2+増加をモニターした。脳切片を、βアミロイド、環状T14、またはβアミロイド+環状T14を含有する、124mM NaCl、3.7mM KCl、26mM NaHCO3、2mM CaCl2、1.3mM MgSO4、1.3mM KH2PO4および10mMグルコース;pH:7.1内で2時間インキュベートした。2時間後、下記を含有するロード培地1.2ml/ウェルとともに、切片を暗所下室温で40分間インキュベートした:Tyrode塩溶液(TSS;137mM NaCl、2.7mM KCl、1.0mM MgCl2、2.5mM CaCl2、0.2mM NaH2PO4、12.0 NaHCO3、5.5グルコース、pH7.4)、Fluo−4(2μM)、Pluronic F127(0.02%)およびプロベネシド(2mM)。プロベネシドは、マルチドラッグ耐性タンパク質の阻害剤、イオントランスポーターであり、細胞からの蛍光分子の排出を妨げる。インキュベーション後、切片をTSSで洗浄し、1200μl/ウェルのTSSおよびプロベネシドを含有する脱エステル化培地を添加した。切片を22℃の暗所下で20分間インキュベートした。蛍光測定(励起波長485nm、発光波長538nm)は、Fluostar Optima(BMG,UK)プレートリーダー内で記録した。
MEM、培養血清、抗生物質、コラーゲン、スルホローダミンB、イベルメクチンおよびバッファー試薬は、Sigma−Aldrich社(St.Louis,MO)より入手した。T30、T14、AChEペプチドおよび環状T14は、Genosphere Biotechnologies(France)により合成された。ペプチドのストックは、蒸留水で希釈した。
異なる技術のそれぞれにおいて、12以上の実験の百分率値の平均によって統計分析を行った。多重処理群および同一コントロール間での比較は、一元配置分散分析(ANOVA)およびGraphPAD Instat(GraphPAD software,San Diego,CA)を用いたTukey’s post−hoc試験により行った。これらの試験は、各処理の平均と各他処理の平均とを比較する;すなわち、全ての一対比較のセットに同時に適用し、2平均間の相違が標準誤差よりも大きいことが許容されうる場所を特定する。統計的有意性は、P値<0.05で取られた。グラフは、GraphPAD Prism 6(GraphPAD software,San Diego,CA)を用いてプロットした。結合実験の場合、結果は、1分あたりのカウント(cpm)として得て、コントロールに対する割合に変換した。GraphPad Prismを用いて、結果を一部位競合結合(one site competition binding)モデルにフィッティングした。カルシウムの結果の場合には、GraphPad Prismを用いて、非線形回帰曲線を用いた単一部位Hill式(a single site Hill equation)に対する実験データポイントの対数をフィッティングすることにより、EC50値を算出した。
本発明者は、α7ニコチン性アセチルコリン受容体のアロステリック部位を選択的に標的とし、T14/T30との結合に対して競合(compete)し、またβアミロイドに拮抗(antagonise)する物質を合成した。当該物質は、C末端のリジン残基に連結されるN末端のアラニン残基とともに、アミノ酸配列AEFHRWSSYMVHWK[配列番号:4]を有するT14の環形態である。Genosphere Biotechnologies(France)は、直鎖状ペプチドをN末端へC末端ラクタムに変換することにより、環化を行った。以下の実験では、いかにして環状T14ペプチドが確立されたT30ペプチドおよびアミロイドのin vitroの毒性効果を阻害するのかについて、初めて実証する。
細胞生存検出法としてスルホローダミンB(SRB)を用いて、実施例1で製造した環状T14でPC12細胞を1時間処理した。その結果、細胞生存において変化が観察されず、100μM(100nM:98.76±15.15;700nM:106.94±19.92;1μM:104.82±10.9;100μM:93.58±11.62)の濃度では毒性を有しないことが示唆された(図1参照)。
次に、本発明者は、環状T14がアセチルコリンエステラーゼ(AChE)の酵素活性に影響を及ぼすのか否かを確かめることにした。AChE酵素活性は、アセチルコリンエステラーゼ活性アッセイを用いて測定した。本発明者は、環状T14(2μM)が存在しても、アセチルコリンエステラーゼの酵素活性に影響を及ぼさないのに対し、ガランタミン(2μM)は強力に阻害することを発見した(図2参照)。
次に、本発明者は、環状T14が過酸化水素による非特異的毒性効果からPC12細胞を保護するのか否かを究明した。図3で見られるように、H2O2を単独または環状T14と組み合わせて供した場合、顕著な差が見られなかった。
細胞生存検出法としてSRBを用いて、(4A)βアミロイド、(4B)直鎖状T14、もしくは(4C)T30を単独で、または環状T14(100nM)と組み合わせて用いて、PC12細胞を1時間処理した。図4に示すように、3つのペプチド単独では、細胞生存率の減少をもたらしたが(Aβ:69.875±4.38;T14:83.02±5.385およびT30:68.395±3.095)、環状T14と組み合わせた場合は、細胞が驚くほどに死から守られた(Aβ+C14:94.475±7.4;T14+C14:99.4±12.475;T30+C14:88.59±8.785)。
比色Ellmanアッセイを用いて、毒刺激後の代償的応答(compensatory response)としてのAChE活性を評価した。直鎖状T14およびT30(10μM)を単独で、または環状T14(100μM)と組み合わせて用いて、細胞を1時間処理した(図5参照)。全てのペプチドは、AChE活性の増加を誘導し(T30:129.10±1.18;T14:123.0±0.62)、環状T14と組み合わせた場合において部分的に阻害された(T30+C14:110.58±0.80;T14+C14:112.30±1.39)。
ここで用いられる準備のために、βアミロイド、T30およびT14にとって、α7nAChE(α7ニコチン性アセチルコリン受容体)が標的であることを実証するため。[3H]イベルメクチン結合アッセイは、PC細胞膜上で行い、対数用量−応答によりリガンド[3H]イベルメクチンが結合する受容体のアロステリック部位のアフィニティーの減少を実証した(表1、図6参照)。
低μM濃度の環状T14は、ガランタミンに類似したアフィニティーで、しかしそれよりも顕著に優れた有効性で、[3H]イベルメクチンを置き換えた。
細胞生存検出法としてSRBを用いて、βアミロイドを単独で、または環状T14(1nM)もしくはガランタミン(100nM)と組み合わせて用いて、PC12細胞を1時間処理した。図8に示すように、環状T14は、ガランタミン(98.79±14.21)に比べて、用量として2桁低いオーダーでAβ毒性から保護した(97.34±9.57)。
細胞生存検出法としてSRBを用いて、βアミロイドを0.5nMから100nMまで濃度を増加させた環状T14と組み合わせて用いて、PC12細胞を1時間処理した(0.5:88.49±10;1:97.34±9.57;10:102.28±8.53;50:101.79±13.99;100:103.68±6.34)。全保護のための閾値用量は1nMであった(図9)。
蛍光測定を用いて、1μM 環状T14、10μM βアミロイド、およびその組み合わせを用いて、2時間処理後のカルシウムレベル変化を検出した。環状T14は細胞内カルシウム基準レベルを変化させなかったのに対し、βアミロイドは細胞内カルシウムレベルの増加を誘導し、これは環状T14によってベースラインに戻されている(図10参照)。
生存試験を用いて、本発明者は、α7ニコチン性受容体のアロステリック部位に対し、現在臨床使用されている薬(例えば、ガランタミン(10μM))に比べ、T30は約3桁高い結合アフィニティーを有することを示した(5nM)。
環状T14は、T30およびアミロイドベータペプチドの働きに拮抗するα7ニコチン性受容体の、新規のα7ニコチン性受容体不活性アロステリックモジュレーターである。環状T14は、新規のα7ニコチン性受容体拮抗薬である。非特異剤である過酸化水素からの保護が無効力であったことから、環状T14の阻害作用は選択的であり受容体媒介性であることが示唆される。環状T14は、多様な試験においてT30の毒性効果に拮抗することから、環状T14は、アミロイドに対するのと同様に、T30に対する結合と競合することにより、α7ニコチン性受容体上のアロステリック部位を通じたカルシウムのさらなる流入を防止することが示唆される。この有効な置換は、環状ペプチドの向上した安定性によって説明されるであろう。
本発明者は、α7受容体上のアロステリック部位に対して、現在臨床で使用されている薬(例えば、ガランタミン(10μM))に比べ、T30が約3桁高い結合アフィニティー(5nM)を有することを直近で示している。実際、この観察から、なぜ上記のかような薬が比較的期待外れであるのか(表1参照;Kramp&Herrling,2011,Neurodegenerative Dis 8,44−94)が示唆されるであろう:アルツハイマー患者の脳において過剰である内在性T30が重要な部位を既に占有している場合、低アフィニティー競合によって置換されないであろう。しかしながら、ここで示唆されるように、非常に類似するまたは優れた結合アフィニティーを有する薬によって阻害されるであろう(図7参照)。ゆえに、そのような薬は、きわめて有効な薬である可能性を有する。
本発明者は、環状T14の特定の構造を用いて、環状T14の三次元形態を模倣しつつ、血液脳関門をより速やかに通過できるような、より小さな化合物を設計することが可能となるであろうと考えている。
<背景>
水および有機溶媒における化合物の溶解性は、それが胃や腸などの体内の生理学的障壁を越える能力に強く影響を及ぼす。薬が脳疾患(例えば認知症)をターゲットとしている場合、さらなる障壁を越える必要があり、それが血液脳関門である。LogPとしても知られる分配係数は、化合物が水または有機溶媒中で可溶化する能力を評価し、化合物が異なる生理学的障壁を越える能力に関連する。
[溶媒の調製]
下記のとおり、溶媒の飽和を行った。水存在下で1−オクタノールを室温で24時間撹拌した。1−オクタノール存在下でmQ水を室温で24時間撹拌した。その後、溶液を静置して、室温で一晩平衡化した。シリンジと針を用いて飽和溶媒を回収し、さらに使用時まで室温で保管した。
飽和水および飽和1−オクタノールをガラス管内に下記の比で置いた:各チューブは環状T14を0.25mg当量含有した。その後、全てのチューブを室温で4時間混合した。撹拌後、チューブを室温で静置して平衡化した。
検量線のための環状T14の濃度は、0.5mg.ml−1、0.25mg.ml−1、0.13mg.ml−1、0.066mg.ml−1、0.033mg.ml−1および0.016mg/ml−1であった。検量線の吸光度を280nmで測定した。
各サンプルのいずれの分画についても、針付きのシリンジを用いて別個に回収した。280nmで全分画の吸光度を測定し、検量線に基づいて全分画の濃度を算出した。下記式により、環状T14の分配係数を計算した。
環状T14の平均LogPは、−0.5899であった。LogPが負の値であることは、化合物が親水的であることを意味する。しかしながら、LogPが0に近いことは、化合物が親油性環境においても同様に可溶であることに対応する。ゆえに、NBP14がBBBを越えることが説明できる。
NBP14のT30毒性に対するさらなる保護効果を特徴づけるため、本発明者は、下記の方法セクションで述べるように、3種類のin vitro系((A)カルシウム流入;(B)AChE放出;(C)細胞生存率)に効果をもたらす濃度を算出した。
[(A)カルシウム流入]
実験前日、96ウェルプレートの成長培地200μl中にPC12細胞を播種する。実験当日、(提供元のプロトコールのとおりに)Fluo−8溶液(Abcam)を調製する。次に、成長培地100μlを除去し、Fluo−8溶液100μlを添加する。T30およびNBP−14を用いた処理を加え、インキュベーター内で30分間および室温で30分間インキュベートする。
AChE活性の変化を検出するのに用いたプロトコールは、上記したものと同様である。
以前用いたSRB技術の改善として、Cell Counting Kit−8(CCK−8)を用いた。きわめて水に可溶なテトラゾリウム塩であるWST−8を用いることにより、電子輸送体存在下での還元により、CCK−8は水に可溶なホルマザン染料を産生する。WST−8は細胞内でデヒドロゲナーゼにより還元され、黄色を呈した生成物(ホルマザン)が生成し、これは組織培養培地に可溶である。細胞内でのデヒドロゲナーゼ活性によって産生されるホルマザン染料の量は、生存細胞数に直接的に比例する。実験前日、96ウェルプレートの成長培地200μlにPC12細胞を播種する。T30およびNBP−14を用いた処理を加え、インキュベーター内で1時間インキュベートする。
上記のように、T30は、αニコチン性受容体の陽性アロステリックモジュレーターである。ゆえに、第一のアゴニストであるアセチルコリンを用いて、コントロールカルシウム流入を100%とした基準に従って評価した。T30(5μM)は、この効果を171.05%±6.21%;N=3まで促進した。NBP−14濃度を増加させ(5、7、9、10、20、50、70、1000、5000nM)、これらT30誘導型増加の拮抗作用を決定した。(各)値(%)は、134.2497±6.85、120.8612±8.65、113.9162±8.82、140.776±12.16、115.83±7.67、110.3213±13.21、125.9596±0.1、99.85±0.32、115.1942±9.84、79.99±14.04である。図13は、NBP−14が濃度に応じてT30効果を阻害し、低nM範囲で保護的であることを示している。
上記のように、PC12細胞は、「代償的な(compensatory)」反応(すなわち、放出されるAChE活性の増加:169.45%±2.11%;N=3)を伴って、T30の毒性効果に応答する。本発明者は、5μM T30に対するNBP−14の用量依存的な効果を見つけた。本結果(図14)は、高nM濃度でNBP−14がAChEの代償効果から保護することを示す。(各)値(%)は、130.73±1.84、111.68±2.26、92.78±0.99、82.56±2.38、68.90±0.92、65.12±1.32、61.04±0.97、79.43±1.69±1.24、83.91±1.24、89.55±1.25である。
T30(5μM)は、25%の細胞生存率の減少(74.309%±2.87%;N=3)をもたらし、NBP−14によって濃度−効果により次第に阻害された(図15)。(各)値(%)は、76.25±7.51、67.04±4.35、76.04±4.22、71.36±1.64、79.02±10.22、75.1±3.9、62.43±3.01、78.10±2.16、116.65±3.62、107.79±5.10である。NBP−14は、高nM範囲でT30誘導型細胞死から保護する。
<背景>
T30ペプチドは、アセチルコリンエステラーゼ(AChE)の30アミノ酸セグメントであり、そこからT14が切断される。両方とも同一の効果をもたらすことから、これらの活性配列はT14に、および同様にT30に存在することが示唆される。高度に調節的な物質としての哺乳類脳切片のT14の生物活性は、既に研究で示されている。異なる濃度で、興奮および抑制の両方を含む皮質ネットワークを調節するT14の効果が報告されている:低濃度では、ペプチドがα7受容体を介してカルシウム流入増加のトリガーとなるが、高濃度では、ニューロンの可塑性を誘発する(Greenfield et al.,2004)のと同様に、チャネルを不活性化させる過剰量のカルシウムをもたらし(Badin et al.,2013;Bon and Greenfield,2003)。
・刺激パラダイム:(視床皮質の反復刺激に一致する)40Hz二連(paired)パルス刺激
・灌流パラダイム:2段階で実行された時期(epoch)−各薬剤灌流(コントロール、0.1μM T30などという)につき、新しい灌流を行い、薬剤が実際の濃度に到達するまでの時間があるよう、記録期間(同様に15分間)前に15分間灌流させ、濃度依存的な効果を誘導して一旦記録した。一つの灌流時期を30分続行し、各灌流時期について最後15分間のみを考慮して読み取った。
[脳切片の調製]
雄のウィスターラット(14〜17日齢;全15個体)を、イソフルランで麻酔した:100%w/wイソフルラン10mLを、麻酔チャンバー(ガラスボックス20×15×15cm)底部のコットンベッドに注ぎ、ラットを麻酔効果が発現するまで45秒以下置いた。各麻酔ラットの後足をつまみ、適切な麻酔深度であるか確認した。一度麻酔が確認されたら、速やかにラットの首をはね、脳を酸素化した氷冷人工脳脊髄液(「切片化する(slicing)」aCSF mmol換算:120 NaCl、5 KCl、20 NaHCO3、2.4 CaCl2、2 MgSO4、1.2 KH2PO4、10 グルコース、6.7 HEPES塩および3.3 HEPES酸;pH:7.1)に7〜8時間浸漬し、脳を切片化する時間を設けた。Vibratome(Leica VT1000S)を用いて、視床(VPN)および第一体性感覚皮質(バレル領域)を含む脳のブロックから傍矢状の切片(400μm厚さ)を切り出し、室温でaCSFを含有するバブラーポット(bubbler pot)に移し(「記録する(recording)」aCSF mmol換算:124 NaCl、3.7 KCl、26 NaHCO3、2 CaCl2、1.3 MgSO4、1.3 KH2PO4および10 グルコース;pH:7.1)、これは電気生理学記録およびVSDIで用いたものと同一であった。切片を酸素化(95%O2−5%CO2)「記録(recording)」aCSFに置き、VSD染色前に最低1時間再灌流した。
切片を暗所の95%O2−5%CO2でバブリングしたaCSFで満たした高湿度チャンバー内に置いた。色素溶液(4% 0.2mM スチリル色素ピリジニウム4−[2−[6−(ジブチルアミノ)−2−ナフタレニル]−エチニル]−1−(3−スルホプロピル)ヒドロキシド(Di−4−ANEPPS,Invitrogen,Paisley,UK)(Tominaga et al.,2000)の46%aCSF溶液、ウシ胎児血清46%、DMSO3.5%およびクレモフォール(cremophore)EL0.4%)を上記の切片に注いだ(Badin et al.,2013)。VSD記録開始に際し、切片を小さな濾紙上に記録浴内に置き、切片が生存するように保ち、切片の上に置かれた家庭用のプラスチック枠を用いて大まかに秤量した。蛍光VSDであるため、光毒性および漂白の有害な影響を最小限に保つため、Di−4−ANEPPS染色中および染色後における全て切片の取り扱いは、ほぼ完全な暗所で行った。(刺激電極が置かれる)VPNを、海馬の先端から内包の側面までの距離について特定した。
T30溶液およびNBP−14溶液は、各実験開始時に新鮮なように調製し、小分けのストック溶液を「記録(recording)」aCSFに適量添加し、Minipulse 3ポンプ(Gilson Scientific Ltd,Bedfordshire,UK)を用いて毎分1.5mLの定速での灌流に適用した。灌流条件は2つに分けた:前半は記録しない15分間灌流で構成され、適切な濃度に達した後、後半の灌流条件を開始し、ここでは次の15分間の灌流について記録をとり(平均30スナップショット)、灌流条件あたり全部で30分間とした。
VSDIが製造した4×4mm(100×100ピクセル)二次元画像から、全体的な誘発シグナルである、活性化タイムコース、広がりおよび強度などの重要なデータを抽出した。各VSDI実験について、ピーク応答を包含する、刺激後0〜200msの間の各スナップショットデータは、各条件(T30およびT30対NBP−14実験の両方とも、1条件につき全部で30スナップショットである)に対して、測定および平均化されたこれらのパラメータを有する。これを達成するため、活性領域から対象領域(ROI)を選択し、対象領域内で記録された最大活性の20%より高い活性を示すものとして、アクティブピクセルを隔離する閾値でフィルターした後の最大応答幅を取り囲んだ。その後、かようなデータを蓄積して、記録された効果を測定するための定性的な「時空」マップ(図19)とともに、活性化強度範囲の詳細な定量的グラフ(図16、17、18)を作成し、同様に、得られた時空データの正確な視覚表示を作成した。全てのデータの取り扱いおよび分析はMathematica 8(Wolfram Research,USA)を用いて行い、全ての統計データ(Analysis of Variance−ANOVA)は、R Studioを用いたデータに適合する非線形複合効果モデル(non−linear mixed effects models)を用いて行った。全ての統計試験について、P<0.05は有意であるとみなした。データは、平均±S.E.Mとして表す。
図16は、(A)発光蛍光強度、および(B)アクティブピクセルの広がりに対するT30の用量増加効果を示す。各ピクセルは、40×40μmの寸法を有し、10未満の別個のニューロンの活性に起因する特異的な蛍光を意味する。記録浴内のT30濃度が増加することで、アクティブピクセルから発する蛍光強度が減少する。これは、単一ピクセル量からより高い蛍光読み取りに至る相当な同時に起きるニューロン膜の非局在として、誘起されるニューロン集団活性の非同期を示唆しており、ここでは反対の効果が見られている(より低い同調性)。さらに、強度グラフ(図16A)からわかるように、ここでは40Hz二連パルス刺激パラダイムが用いられる。当該結果より、T30処理に起因して全体的な蛍光が減少するだけでなく、(40Hz二連パルスで、75ms(第1パルスの25ms後)に誘起される)第2パルスは最初のパルスの規模に比べて促進が大幅に減少することもわかる。
Badin,A.S.,J.Eraifej, and S.Greenfield.2013.in vitroでのラット眼窩前頭皮質の光学イメージングによって明らかにされた新規ペプチドの高分解能時空生物活性:神経変性疾患のための可能な含意.Neuropharmacology.73C:10−18.
Bon, C.L., and S.A.Greenfield.2003.アセチルコリンエステラーゼ由来ペプチドの生物活性:モルモット海馬における電気生理学的特性評価.Eur J Neurosci.17:1991−1995.
Collins,T.F.,E.O.Mann,M.R.Hill,E.J.Dommett, and S.A.Greenfield.2007.ニューロンアセンブリのダイナミクスは麻酔ではなく鎮痛薬によって調節される.Eur J Anaesthesiol.24:609−614.
Devonshire,I.M.,E.J.Dommett,T.H.Grandy,A.C.Halliday, and S.A.Greenfield.2010a.同時電気生理学的記録およびin vivo光学イメージングによって明らかにされるように、環境的な充実はラットバレル皮質における感覚誘発活動の特定の構成要素を分化的に修飾する.Neuroscience.170:662−669.
Devonshire,I.M.,T.H.Grandy,E.J.Dommett, and S.A.Greenfield.2010b.複合光学イメージングおよび電気生理学によって明らかにされたラットバレル皮質における感覚処理に対するウレタン麻酔の影響.Eur J Neurosci.32:786−797.
Grandy,T.H.,S.A.Greenfield, and I.M.Devonshire.2012.in vivoでの電位感受性色素の評価:脳脈動アーチファクトを効果的に除去した後の薬理学的副作用とシグナルノイズ比.Journal of neurophysiology.108:2931−2945.
Greenfield,S.A.,T.Day,E.O.Mann, and I.Bermudez.2004.新規ペプチドはアルファ7ニコチン性受容体の応答を調節する:脳における可能な栄養毒性のメカニズムの含意.J Neurochem.90:325−331.
Mann,E.O.,T.Tominaga,M.Ichikawa, and S.A.Greenfield.2005.in vitroでの海馬活動の時空間パターンのコリン作動性変調.48:118−133.
Tominaga,T.,Y.Tominaga,H.Yamada,G.Matsumoto, and M.Ichikawa.2000.Di−4−ANEPPS染色ラット海馬切片の神経活動における電気生理学的シグナルおよび光シグナルの定量化.Journal of neuroscience methods.102:11−23.。
<背景>
アルツハイマー病患者の動物モデルとは異なり、一部のパーキンソン病のラットは十分に確立されており、容易に定量化できる。したがって、片側の線条体内にT30注射を投与し、毒の行動的影響を観察した。以降の実験では、注入側のDAニューロン喪失を誘発し、反対側のDAニューロンには作用しない公知の神経毒である6−ヒドロキシドーパミン(6−OHDA)に対するNBP14の潜在的な保護効果を観察した。埋め込んだカニューレを介して内側前脳束(MFB)にNBP−14を投与した。6−ヒドロキシドーパミンは、10mg/kgで投与した。
ケタミン(10%:0.1ml/kg体重)およびキシラジン(2%;0.01ml/kg)で動物を麻酔した。その後、20mg/ml 6−OHDA(0.02%アスコルビン酸溶液)2μLを動物のMFBに定位的に注射した。病変座標は、前頂(bregma)および硬膜(dura)についてcm単位で設定される:L−1.7mm;AP−3.6mm;DV−8.0mm。注射(注射速度2μl/5min)後、1分間注射針を残して逆流を回避した後、ゆっくりと引っ込めた。
全試験の結果は、平均(MEAN)群値±SEMとして表されるであろう。一元ANOVAによるデータの分析およびTukey試験により、処理効果の有意性を調べた。この研究は、実験動物の取扱いおよび使用における倫理的行動委員会に対して、本研究が規則および規制を遵守することを掲げる申請書を提出して承認を得た上で行った。
[NBP14効果]
肢配置試験のR/L比の分析は、運動機能の片側のみの損傷を反映する。2日目(すなわち、6−OHDA注射から2日後かつNBP−14注射から1日後)、6−OHDA賦形剤で処理したときとの間で、肢配置のR/L比に顕著な差があった:それぞれ、7.54±1.63対3.62±0.55(p<0.05)。肢配置試験で見られたように、NBP−14で処理した場合、1回用量後に損傷した前肢の運動性が改善した(図21)。
<背景>
過剰なカルシウムが、アミロイド前駆タンパク質(APP)の異常な切断、ゆえにアミロイドベータ(Aβ)の放出を引き起こすことについては、既に確立されている(Hartigan&Johnson,1999;Cai et al.,2012)。本発明者は、T30がPC12細胞内でカルシウム流入を約70%増加させることを示しており、かようなカルシウムの増加は、アミロイドの産生および全長APP分子の結果的な減少を引き起こす可能性がある。
[タンパク質可溶化プロトコール]
PC12膜内でAPPを検出するのに十分なタンパク質を得るため、ペトリ皿にPC12細胞を成長培地とともに1週間置き、タンパク質を可溶化する前に、T30およびNBP−14で1時間処理した。細胞が90%コンフルエンスに達するまで成長させ、成長培地を除去し、HBSS2mlで再懸濁した。細胞懸濁液を15mlチューブに移し、1000rpmで5分間遠心した。その後、上清を捨て、プロテアーゼインヒビター(1μl:1ml PMSFおよび3μl:1ml アプロチニン)を加えたLysisバッファー(20mM Tris、137mM NaCl、1% Triton X−100、2mM EDTA;pH8)にペレットを再懸濁し、Polytronを用いて10秒間粉砕した。次に、粉砕したペレットを1.5mlエッペンドルフに分け、4℃で2時間回転または撹拌した。2時間後、エッペンドルフを15000rpmで20分間遠心し、上清を取った。Bradford試薬を用いて、各エッペンドルフに含まれるタンパク質を定量した。
APP検出のため、約25μgのタンパク質を用いた。プロトコールを開始する前に、試薬を以下のとおり調製した:
下部ゲル(10%)(重合20分)
10ml(2ゲル):3.6ml H2O MQ、2.42ml アクリルアミドおよび1.3ml ビスアクリルアミド、2.5ml Tris−HCl 1.5M pH8.8、0.11ml SDS 10%、0.06ml 過硫酸アンモニウム 10%、6.67μl TEMED(最終構成要素)
上部ゲル(5%)(重合20分)
5ml(2ゲル):3.67ml H2O MQ、0.48ml アクリルアミドおよび0.26ml ビスアクリルアミド、0.625ml Tris−hCl 1M pH6.8、0.05ml SDS 10%、25μl 過硫酸アンモニウム 10%、5μl TEMED
Tris−HCl 1.5M pH8.8
100ml:18.16gr Tris塩基、qsp 100ml H2O MQ、pH8.8
Tris−HCl 1M pH6.8
100ml:12.1gr Tris塩基、qsp 100ml H2O MQ、pH6.8
サンプルバッファー(4X)
8ml:3.2ml SDS 10%、1.6ml グリセロール、2ml Tris−HCl 1M pH6.8、0.8ml B−メルカプトエタノール、0.4ml ブロモフェノールブルー 0.1%またはレッド(実験には1Xを使用)
ランニングバッファー(10X)
1L:30.3g Tris塩基、144gr グリシン、10gr SDS、qsp 1L H2O MQ(実験には1Xを使用)。
a)下部および上部アクリルアミドゲルを調製する。APPゲルの%は、10%下部ゲルおよび5%スタッキングゲルである。
プロトコールを開始する前に、試薬を以下のとおり調製する:
転写バッファー(1X)
1L:3.03g Tris塩基、14.4gr グリシン、200ml メタノール、qsp 1L H2O MQ
TBSバッファー(4X)
1L:24.25gr Tris塩基、60gr NaCl、qsp 1L H2O MQ、pH7.5
TBS−Tweenバッファー
1L:250ml TBS 4X、0.5ml Tween20、qsp 1L H2O MQ。
1)電気的転写
a)PVDFメンブレンを活性化する:MeOH中で1分間、MQ H2O中で2分間
b)PVDFメンブレン、紙、スポンジを転写バッファーに10分間つける
c)サンドイッチを作製し、ゲルからPDVFメンブレンへのタンパク質の転写を実行する:0.2Aで2時間。
a)メンブレンの非特異部位を(TBS−Tに溶解した)5%ミルクでブロックする
b)1:500希釈(20μl:10ml)の(TBST/ミルク5%に溶解した)一次抗体:抗アミロイド前駆タンパク質(ab2072、ウサギ)とともに、4℃で一晩インキュベーション
c)TBS−Tでメンブレンを洗浄する(5分×2)
d)1:5000希釈(20μl:10ml)の(TBS−Tに溶解した)二次抗体:抗ウサギHRP(ヤギ)とともに、室温で45分間インキュベーション
e)TBS−Tでメンブレンを洗浄する(5分×2+10分×1)
f)Chemiboxオプション(白色光)を用いて写真を撮影し、マーカーバンドの位置を参照する
g)抗体検出のためECL試薬(HRP)を添加し(各コンポーネントにつき1ml)、Chemiboxオプション(光無し)を用いて数枚撮影する。
処理1時間後、培養培地を回収し、培養培地を希釈剤として用いて1:100に希釈した。その後、4連の各希釈サンプルを、AnaSpec(Fremont,CA,USA)のELISA検出キットで提供されるプレート内に置いた。その後、製造元のプロトコールに従って検出を行った。簡潔には、検出抗体50μl存在下でサンプルを4時間インキュベートした。その後、プレートを洗浄溶液で7回洗浄し、キットで提供されている3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジン(TMB)とともに15分間インキュベートした。サンプルを呈示した後、停止溶液で反応を停止し、450nmにおける光学濃度を読み取った。
(i)図23に示すように、T30はPC12細胞膜における全長APPのレベルを減少させ、これはNBP14によって反転する効果であった。値は、コントロール(100%±10.98);T30 5μM(67.82%±6.23%)およびT30+NBP−14 0.5μM(126%±1.12%)である。
Claims (31)
- 治療または診断における使用のための、環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 神経変性疾患の治療、改善または予防における使用のための、環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記神経変性疾患は、アルツハイマー病;パーキンソン病;ハンチントン病;運動ニューロン疾患;脊髄小脳1型、2型、および3型;筋萎縮性側索硬化症(ALS);ならびに前頭側頭型認知症からなる群より選択され、好ましくはアルツハイマー病である、請求項2に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- アセチルコリンエステラーゼ(AChE)のC末端に由来するアミノ酸配列、またはそのトランケーションを含む、環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、α7ニコチン性受容体の選択的アロステリックモジュレーターである、請求項1〜4のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、α7ニコチン性受容体のアロステリック部位を通じたカルシウムのさらなる流入を防止する、請求項1〜5のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、βアミロイドの結合をアウトコンピート(outcompete)する、請求項1〜6のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、単離または精製されている、請求項1〜7のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、末端付加(tailed)アセチルコリンエステラーゼ(T−AChE)のC末端に由来するアミノ酸配列、またはそのトランケーションを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載の環状ポリペプチドまたはその誘導体もしくは類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、アセチルコリンエステラーゼのC末端を形成する最後の300、200、100または50アミノ酸に由来するアミノ酸配列、またはそのトランケーションを含む、請求項1〜9のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、アセチルコリンエステラーゼのC末端を形成する最後の40アミノ酸に由来するアミノ酸配列、またはそのトランケーションを含む、請求項1〜10のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記アセチルコリンエステラーゼは、配列番号1で定義されるアミノ酸配列を実質的に含む、請求項1〜11のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、8〜40アミノ酸残基、または10〜30アミノ酸、または12〜20アミノ酸を含む、請求項1〜12のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、環状の配列番号3、4、5もしくは6、またはその機能性変異体もしくはフラグメントを含む、請求項1〜13のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、環状の配列番号6、またはその機能性変異体もしくはフラグメントを含み、この際、x1は塩基性アミノ酸残基、好ましくはヒスチジン(H)であり;x2は塩基性アミノ酸残基、好ましくはアルギニン(R)であり;x3は芳香族アミノ酸残基、好ましくはトリプトファン(W)であり;x4は脂肪族ヒドロキシル側鎖を有するアミノ酸残基、好ましくはセリン(S)であり;およびx5はトリプトファン(W)またはメチオニン(M)である、請求項1〜14のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体または類似体は、環状の配列番号4、またはその機能性変異体もしくはフラグメントを含む、請求項1〜15のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 環状ポリペプチド、その誘導体または類似体を含む、受容体アロステリックモジュレーター。
- 受容体アロステリックモジュレーターとしての使用のための、環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記環状ポリペプチド、その誘導体もしくは類似体または受容体は、請求項1〜16のいずれか1項で定義される、請求項17に記載の受容体アロステリックモジュレーター、または請求項18に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 治療または診断における使用のための、請求項1〜16のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体もしくは類似体、または請求項17に記載の受容体アロステリックモジュレーター。
- 神経変性疾患の治療、改善または予防における使用のための、請求項1〜16のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体もしくは類似体、または請求項17に記載の受容体アロステリックモジュレーター拮抗薬。
- 治療される前記神経変性疾患は、「グローバル(Global)」ニューロンの損傷または死を特徴とする、請求項21に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記神経変性疾患は、アルツハイマー病;パーキンソン病;ハンチントン病;運動ニューロン疾患;脊髄小脳1型、2型、および3型;筋萎縮性側索硬化症(ALS);ならびに前頭側頭型認知症からなる群より選択される、請求項21または22に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 治療される前記神経変性疾患は、アルツハイマー病、パーキンソン病、または運動ニューロン疾患である、請求項21〜23のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 治療される前記神経変性疾患は、アルツハイマー病である、請求項21〜24のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体。
- 前記ポリペプチド、その誘導体または類似体は、環状の配列番号4、またはその機能性変異体もしくはフラグメントを含む、請求項17〜25のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体もしくは類似体、または受容体アロステリックモジュレーター。
- 治療上有効な量の請求項1〜16のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体もしくは類似体、または請求項17に記載の受容体アロステリックモジュレーターと、必要に応じて、薬学的に許容される賦形剤と、を含む薬剤組成物。
- 治療上有効な量の請求項1〜16のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体もしくは類似体、または請求項17に記載の受容体アロステリックモジュレーターと、薬学的に許容される賦形剤と、を組み合わせることを含む、請求項27に記載の薬剤組成物の製造方法。
- 前記ポリペプチド、その誘導体または類似体は、環状の配列番号4、またはその機能性変異体もしくはフラグメントを含む、請求項27に記載の組成物または請求項28に記載の方法。
- α7ニコチン性受容体を探索するためのin vitroまたはex vivoの分析法における、請求項1〜16のいずれか1項に記載の環状ポリペプチド、その誘導体または類似体の使用方法。
- 前記方法は、α7ニコチン性受容体のアロステリック部位を調査することを含み、必要に応じて、前記方法はα7ニコチン性受容体を通じたカルシウムのさらなる流入を防止することを含む、請求項26に記載の使用方法。
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