JP2000507828A

JP2000507828A - アルツハイマー病の診断および治療法

Info

Publication number: JP2000507828A
Application number: JP9535410A
Authority: JP
Inventors: ジルクレスト，バーバラ，エイ．; ヤール，ミーナ
Original assignee: ザトラスティーズオブボストンユニバーシティー
Priority date: 1996-03-29
Filing date: 1997-03-28
Publication date: 2000-06-27
Also published as: US20040254110A1; US6242416B1; CA2250075C; DE69736976T2; AU719038B2; CA2250075A1; DE69736976D1; EP0890105B1; US20020051988A1; AU2424597A; US6696303B2; EP0890105A1; WO1997037228A1; ATE346303T1

Abstract

(57)【要約】培養した神経稜由来のメラニン細胞を用いるアルツハイマー病を発病する個体の危険性の評価方法が記載されている。また、神経親和体受容体（ｐ７５^NTR）に結合し、β−アミロイドのｐ７５^NTRへの結合を競合的に阻害するペプチドを用いるアルツハイマー病の治療方法が記載されている。

Description

【発明の詳細な説明】アルツハイマー病の診断および治療法関連出願本出願は、１９９６年３月２９日に出願された先願番号第０８／６２５，７６５号の一部継続出願であり、その全ての教示は参考文献として本明細書に含まれる。発明の背景痴呆とは、記憶喪失、判断力、会話および姿勢保持機能の低下を含め、個体の過去の知的水準が著しく損なわれることを特徴とする、心的な退化の状態を言い、しばしば情緒的無反応を伴う（ＷＥＢＳＴＥＲ’ＳＭＥＤＩＣＡＬＤＥＳＫＤＩＣＴＩＯＮＡＲＹ，Ｍｅｒｒｉａｍ−Ｗｅｂｓｔｅr，Ｉｎｃ．，Ｓｐｒｉｎｇｆｉｅｌｄ，マサチューセッツ、１６９ページ（１９８６））。痴呆の主たる原因は、神経が変性するアルツハイマー病（ＡＤ）で、その患者数は世界で１７００万人ないし２０００万人にも上っている（Ｙａｍａｚａｋｉ，Ｔ．ら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１２９；４３１−４４２（１９９５）；Ｂｒｉｎａｇａ，Ｍ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６９；９１７−９１８（１９９５）；Ｌａｖｙ−Ｌａｈａｄ、Ｅ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６９；９７０−９７２（１９９５）；Ｌａｖｙ−Ｌａｈａｄ、Ｅ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６９；９７３ −９７７（１９９５））。ＡＤの特徴は、痴呆が進行することと、脳にβ−アミロイド蛋白質が沈着し、変性したニューロンのクラスターに囲まれた「老人斑」が病理学的に観察される点にある。β−アミロイドそれ自体は、７７０アミノ酸の膜に結合β−アミロイド前駆体蛋白質（ＡＰＰ）のフラグメントであり、ニューロン組織と非ニューロン組織の両方に発現される。アルツハイマー病の具体的な原因は未だ究明されていない。常染色体優性ＡＤの一つを持つ家族内でのβＡＰＰ遺伝子の変異が、β−アミロイド合成の増加と脳への蓄積と関係していることが発見された。βＡＰＰの受容体は、低密度リポ蛋白質受容体に関連する蛋白質、ＡｐｏＥであることが確認されており、ＡＤ患者ではこの受容体蛋白質、細胞膜内のβＡＰＰの切断を担う酵素、βＡＰＰの合成および／または細胞外マトリックス分子のいずれか、または複合して異常が見られ、その結果、過剰なβ−アミロイドの沈着と神経毒性が観察されるのではないかと推定されている。しかし、他の公知のβＡＰＰ遺伝子の変異がＡＤを引き起こす機構やβＡＰＰ遺伝子の変異が認められていない非家族性のＡＤの病態生理学に関してはよく分かっていない。それゆえ、個々の痴呆の原因がアルツハイマー病かどうかを診断することは、非常に困難である。陽電子射出断層撮影法（ＰＥＴ）を使用したり（Ｒｅｉｍａｎ，Ｅ．Ｍ．ら、Ｎｅｗ．Ｅｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ．，３３４：７５２−７５８（１９９６）、個々のＡｐｏＥの遺伝子型を決定したり、あるいは脳脊髄液中のβ− アミロイド蛋白質のレベルを測定した最近の報告は希望をもたせるものである。しかし、今のところβ−アミロイドの老人斑の存在を決定する剖検がアルツハイマー症の唯一の確定診断法である。現在までのところ、アルツハイマー病の研究に使用されているインビトロ系は、神経稜の起源がニューロンと同じでない悪性細胞もしくは形質転換した細胞、または下部脊椎ニューロン培養物からなる。正常なヒトの神経稜由来の細胞を使用するアルツハイマー病のモデル系を持つことになれば大きな利益をもたらしてくれるだろう。しかし、今のところそのようなモデル系は開発されていない。最近の研究によると、アルツハイマー病によるＣＮＳニューロンへの損傷は、臨床的に症状が現れる数年前に始まることが明らかにされている（Ｒｅｉｍａｎ，Ｅ．Ｍ．ら、ＮｅｗＥｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ．，３３４；７５２−７５８（１９９６））。アルツハイマー病を発病する危険性の評価を正確かつ簡単にアッセイしたいという要望は非常に大きい。発明の概要本発明は、アルツハイマー病、およびβ−アミロイド蛋白質または神経細胞の表面に局在する低親和性神経成長因子受容体の異常活性化により介在される神経変性症を診断し、治療する方法に関する。たとえば、自己免疫性脳脊髄炎、ハンティングトン病、ピック病、皮質底部変性症、進行性核上性麻痺、ゲロートマン −シャウスラー−シェインカー（Ｇｅｒｏｔｍａｎ−Ｓｈａｕｓｓｌｅｓｒ−Ｓｃｈｅｉｎｋｅｒ）症候群、ニーマン−ピック病、進行性核上性麻痺が本発明に包含される。本明細書で使用されているβ−アミロイド蛋白質という用語は、β −アミロイド蛋白質（４．２ｋＤのポリペプチド（Ｓｅｌｋｏｅ，Ｄ．Ｊ．，Ｎｅｕｒｏｎ，６；４８７−４９８（１９９１）；ＧｌｅｎｎｅｒＧ．Ｇ．およびＷｏｎｇ，Ｃ．Ｗ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ，１２０；８８５−８９０（１９９３）、概要は本明細書の引用文献に収録されている）、β−アミロイド前駆体蛋白質（βＡＰＰ）、ならびにβ−アミロイド１−４０ペプチド、β−アミロイド１−４２ペプチド、β−アミロイド２５− ３６ペプチドまたはβ−アミロイド２８−３０ペプチドを含む、β−アミロイドペプチドと本明細書で呼んでいる、β−アミロイドおよびβ−アミロイド前駆体蛋白質の断片を包含している（β−アミロイド蛋白質も本明細書ではβ−アミロイドと呼ぶ）。 β−アミロイド蛋白質が介在する神経変性症には、中枢神経系（ＣＮＳ）ニューロン等の神経稜由来の細胞に影響を及ぼす病気、およびβ−アミロイド蛋白質、βＡＰＰまたはβ−アミロイドペプチドがニューロンの変性または神経細胞の死に至る過程を開始または悪化させる病気が包含される。低親和神経成長因子の異常活性化が介在する神経変性症には、天然に存在するリガンド以外の物質、神経成長因子によって活性化され、その結果、アポトーシスによる細胞死に至る病気が包含される。本発明に包含される神経変性症は、罹患した個体において進行性の痴呆が見られることによって特徴づけられる。具体的には、神経組織におけるβ−アミロイドペプチドの沈着とそれに続く神経細胞の変性、細胞死および進行性痴呆によって特徴づけられる神経変性症としてのアルツハイマー病が本発明に包含される。さらに具体的には、本発明は、個体から得られた表皮メラニン細胞を含むインビトロアッセイ系を用いて、その個体がアルツハイマー病を発症する危険性を評価する方法に関する。表皮メラニン細胞は表皮（皮膚）および脊椎動物の毛球に存在するメラニン細胞である。本発明は、出願人ら自身が発見した、ヒトメラニン細胞が中枢神経系のニューロン（アルツハイマー病によって主に影響を受ける細胞）と著しい類似性を示すという知見と、メラニン細胞がニューロンと同じシグナル分子を利用して、生存し続けるかプログラム化された細胞死（アポトーシス）を選ぶかを決定しているという知見とに基づいている。たとえば、神経細胞は神経成長因子（ＮＧＦ）に対して、高い親和性（ｐ１４０^trkA）と低い親和性（ｐ７５^NTR）を発現する。本明細書で説明するように、出願人らは、これらの神経成長因子受容体はメラニン細胞でも発現されること、および、β−アミロイドはメラニン細胞表面で発現された低親和性の成長因子受容体、ｐ７５^NTRに結合することを明らかにしている。出願人らは、本明細書において、ｐ７５^NTRにβ−アミロイドが結合すると受容体が活性化され、メラニン細胞のアポトーシス細胞死を引き起こすことも明らかにしている。さらに、出願人らは、神経成長因子または生物学的に活性な断片、アナログもしくはそれらの誘導体を投与することによって、β−アミロイドが仲介するアポトーシスが競合的に遮断される可能性があることも明らかにしている。神経成長因子は、β− アミロイドより高い受容体親和性を有するｐ７５^NTRについての生理学的なリガンドである。さらに、出願人らは、メラニン細胞が、本質的に（前駆体蛋白質の形で）β− アミロイドを分泌し、外的な刺激、たとえばＵＶ照射に応答して分泌量を増すことを明らかにしている。このようにして、本明細書に記載する結果に基づいて、出願人らは、皮膚の生検材料から容易に得られるメラニン細胞がアルツハイマー病の研究および診断に妥当なモデル細胞であることを確立した。提案した診断試験では、β−アミロイド蛋白質に曝露したあとにのメラニン細胞のアポトーシスの誘導、および／または神経成長因子（ＮＧＦ）を追加することによるこのアポトーシスの遮断が容易に起きるかどうかは、細胞ドナーのアルツハイマー病を発症する素因と相関している。患者の皮膚生検材料から培養したメラニン細胞を標準化した対照の細胞系と比較する。β−アミロイド蛋白質またはペプチドを培養物に導入し、β−アミロイド蛋白質がｐ７５^NTRに結合することによって起きるメラニン細胞のアポトーシスを測定する。β−アミロイド蛋白質またはペプチドがｐ７５^NTRに結合するとｐ７５^NTRが活性化され、メラニン細胞のアポトーシスによる細胞死が生じる。したがって、一般的には、β−アミロイドによるｐ７５^NTRの活性化の測定は、培養したメラニン細胞のアポトーシスによる細胞死の測定である。アポトーシスによる細胞死は、核断片へのヨウ化プロピジウムの取り込み、ターミナルデオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼ存在下においてフルオレセインで標識したｄＵＴＰを使ったＤＮＡ鎖の切断の標識化（ＴＵＮＥＬ反応）、または断片化ＤＮＡ（ＤＮＡはしご（ｌａｄｄｅｒ））の解析など、数ある標準的なパラメータのどれを使っても容易に評価される。次に、個体から得られたメラニン細胞に発現したｐ７５^NTRの活性化と対照メラニン細胞に発現したｐ７５^NTRの活性化とを比較する。個体のメラニン細胞のｐ７５^NTRの活性化より、対照のメラニン細胞におけるｐ７５^NTRの活性化の方が大きい場合は、個体のアルツハイマー病を発症する危険性がより高いことを示唆している。さらに本発明は、アルツハイマー病またはβ−アミロイド蛋白質と関連するか、もしくはアポトーシスによって神経細胞の死を引き起こすp７５^NTRの活性化に起因するその他の神経変性症を治療する方法、または発症する危険性を軽減する方法にも関係する。提案されたアルツハイマー病の治療法では、ｐ７５^NTRに対する確立された親和性を持つ、リジン−グリシン−アラニンからなるトリペプチドまたはその他の類似のペプチドを含む組成物を、適当な経路を通って、β−アミロイドにより誘導されるアポトーシスによる細胞死の危険がある中枢神経系（ＣＮＳ）のニューロンへ送り、ｐ７５^NTRへのβ−アミロイドの結合を遮断する。さらにｐ７５^NTRに結合するβ−アミロイドと競合させたり、たとえばアポトーシス阻害蛋白質、Ｂｌｃ−２、のアップレギュレーションを通して、損傷を受けたニューロン内の細胞の生存プログラムを活性化するために、神経成長因子（ＮＧＦ）、ＮＧＦの生物学的に活性な断片アナログ（ここで、生物学的な活性とは、ニューロンやメラニン細胞等の神経由来細胞に発現されるｐ７５^NTRに対する断片、アナログまたは誘導体の結合能力として定義される）および／またはその他の神経親和体（ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｉｎｓ）を投与することもできる。治療に使用されるペプチドは、β−アミロイドの親和性と同等か、それより大きな、しかしＮＧＦやその他の神経親和体の親和性より低い受容体親和性を持つように設計される。さらに本発明は、物質をスクリーニングし、β−アミロイドによって介在される神経細胞のアポトーシス、またはｐ７５^NTRの活性化を阻害または低減することができるそれらの物質を同定するインビトロの方法、およびこれらの方法によって同定される物質に関連する。アルツハイマー病は破滅的であり、最後には死に至る疾患である。アルツハイマー病を早期に検出することは、神経の変性と死を防止もしくは実質的に軽減することへの早期介入を可能にするだろう。現在、アルツハイマー病を処置する有効な治療法はほとんど存在しない。効果的な治療が行えるようになるにつれ、従来の臨床的な判断基準では信頼できる診断がほとんど不可能な場合に、病気の進行の早い時期から合理的な治療が可能になるだろう。アルツハイマー病またはその他の神経変性症の進行を遅らせることができる治療物質が入手できるようになれば、それらの個々の人々にとって大きな恵みになるだろう。図面の簡単な説明図１は、ｐ７５^NTRへの結合に対するペプチドとβ−アミロイドの競合を示す実験結果を表すグラフである。図２は、β−アミロイド存在下における、細胞の生存に対するペプチドの効果の実験結果を表すグラフである。発明の詳細な説明本発明は、メラニン細胞が、神経成長因子（Ｐｅａｃｏｃｋｅ，Ｍ．，ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８５：５２８２−５２８６（１９８８）；Ｙａａｒ，Ｍ．，ら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｏｉｌ．，１１５：８２１− ８２８（１９９１）；Ｙａａｒ，Ｍ．，ら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．，９４：１５５０−１５６２（１９９４）および塩基性線維芽細胞成長因子（Ｈａｌａｂａｎ，Ｒ．ら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．，１２：１５４−１６１（１９９２）に対して高いおよび低い親和性を示す受容体を含む、中枢神経系ニューロンと多くのシグナル伝達経路を共有する神経稜由来の細胞であるという出願人らの知見に基づいている。本明細書では、ニューロンとのこうした著しい類似性に基づいて、培養したヒトメラニン細胞が、アルツハイマー病研究のモデル系を提供することを明らかにする。より具体的には、本発明は、個体から得られた培養表皮メラニン細胞を使用する、その個体のβ−アミロイド蛋白質が介在するアルツハイマー病を発病する危険性を評価するインビトロアッセイ法に関する。また、本発明は、アルツハイマー病もしくはβ−アミロイド蛋白質が介在するその他の神経変性症の治療に効果的な治療物質を評価するためのメラニン細胞培養モデルの使用に関する。以下で説明するように、これらの方法は、β−アミロイド蛋白質が、メラニン細胞や中枢神経ニューロンの表面上で発現される７５キロダルトン（ｋＤ）の神経親和体受容体（ｐ７５^NTR）（本明細書では低親和性の神経成長因子受容体もしくはｐ７５神経成長因子受容体とも呼ぶ）に結合するという出願人らの知見と、ｐ７５^NTRにβ−アミロイドが結合すると細胞死（アポトーシス）に至る経路が活性化されるという出願人らの知見とに基づいている。メラニン細胞はアルツハイマー病のモデル系を提供するインビトロの研究から、β−アミロイド蛋白質がアルツハイマー病に中心的な役割を演じていることが明らかにされている。悪性細胞系（Ｂｏｌａｎｄ，Ｋ．，ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７０：２８０２２−２８０２８（１９９５））または脊椎動物の神経細胞培養物（Ｍａｒｋ，Ｒ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，１５：６２３９−６２４９（１９９５）を使用してアルツハイマー病の病態生理学を理解しようとする試みから、β−アミロイド蛋白質のアミノ酸残基１〜４０または２５〜３５からなるβ−アミロイドペプチドを添加すると、神経毒性と細胞死がもたらされることが明らかにされている。特に、β−アミロイド蛋白質のアミノ酸残基１−４０、アミノ酸残基１−４２、または、より限定的には、アミノ酸残基２５−３５からなるβ−アミロイドペプチドが神経毒性と細胞死をもたらす。最近の研究では、β−アミロイドによって誘導される神経毒性がアポトーシスの古典的な特徴を示すことも明らかにされている。β−アミロイド前駆体蛋白質（本明細書ではβＡＰＰとも呼ぶ）は、哺乳類の神経組織および非神経組織において広く発現されている。βＡＰＰは脳と腎臓で最も発現が著しい。そして脳ではニューロンが特に高い発現を示す。出願人らは、ヒトのメラニン細胞およびメラニン細胞由来の細胞も、本質的に、βＡＰＰを合成して分泌することを明らかにしている。紫外線照射等の細胞障害を受けると、βＡＰＰの分泌が増し、培養細胞の近傍のβＡＰＰ濃度が高まる（Ａｎｄｅｒｓｅｎ，Ｗ．ら、Ｊ．Ｉｎｖｅｓｔ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．，１０４：５８５Ａｂｓｔ．１８２（１９９５年４月）。出願人らは、本明細書において、正常なヒトのメラニン細胞にβアミロイド１ −４０ペプチドを低濃度（１μＭ以下）に添加すると、細胞収率の変化を伴わないで、ニューロンの軸索に類似するメラニン細胞の細胞突起である、樹状突起の大きな伸長が見られる。β−アミロイドペプチドの濃度をさらに高くするとメラニン細胞の細胞収率は次第に減少し、残存する細胞は不健康に見える。さらに、これらの培養物では、ＡＤの患者で観察されるインビボの「老人斑」に似た、凝集して死滅しつつあるメラニン細胞からなるプラーク様の構造の集中的な発達が見られる。さらに、出願人らは、本明細書において、２５μＭ以上のβ−アミロイド１− ４０中にメラニン細胞培養物を維持すると、対照培養物と比べて、アポトーシス細胞の割合が顕著に増加し、Ｂａｘ蛋白質の発現が約３倍アップレギュレートされることを明らかにする。最近のインビボおよびインビトロのデータは、β −アミロイドによって誘発される神経の死が、プログラムされた細胞死またはアポトーシスの古典的な特徴を示すことを示唆している（Ｃｏｔｍａｎ，Ｃ．Ｗ．およびＡｎｄｅｒｓｏｎ，Ａ．Ｊ．，Ｍｏｌ．Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．，１０：１９−４５（１９９５）；Ｓｕ，Ｊ．Ｈ．ら、Ｎｅｕｒｏｒｅｐｏｒｔ，５：２５２９−２５３３（１９９４）。ニューロンにおけるアポトーシスを調節する分子経路が部分的に突き止められている。証拠は、癌原遺伝子Ｂｃl−２の産生が、生存に関して神経栄養因子に依存しているニューロンでのアポトーシスの開始を遅らせることを示唆している（Ａｌｌｓｏｐｐ，Ｔ．Ｅ．ら、Ｃｅｌｌ，７３：２９５−３０７（１９９３）；Ｇａｒｃｉａ，Ｉ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５８：３０２−３０４（１９９２））。反対に、２１ｋＤ(7)Ｂｃｌ−２関連蛋白質、Ｂａｘ、の過剰発現は、アポトーシスによる細胞死を促進する（Ｏｌｔｖａｉ，Ｚ．Ｎ．ら、Ｃｅｌｌ，７４：６０９−６１９（１９９３））。メラニン細胞は、ＮＧＦに対して親和性の低いｐ７５^NTRおよび親和性の高い１４０ｋＤのｔｒｋＡ（ｐ１４０^trk ^A）受容体の両方を発現し、ＮＧＦをメラニン細胞に供して、ＮＧＦに曝露されたニューロンで起こると推定されているように、おそらくｐ１４０^trk ^A分子と多重ｐ７５^NTR分子の等位結合を通して、ｐ１４０^NTRの経路が活性化され、つぎにそれが細胞内のシグナル伝達経路を活性化してＢｃｌ−２の発現を高め、細胞の生存を高める。さらに、出願人らは、本明細書において、βアミロイドが競合的にｐ７５^NTR と結合することを明らかにしている。以前に公開された研究から、ｐ７５^NTRに対する特異的な結合部位は、得られたＮＧＦ蛋白質のアミノ酸２９−３６であり（Ｕｌｒｉｃｈ，Ａ．ら、Ｎａｔｕｒｅ３０３：８２１−８２５（１９８３）、そして、もしリジン−グリシン−リジンの配列（ＮＧＦの残基３２−３４）をリジン−グリシン−アラニンに変えると、そのペプチドは、受容体に対する親和性が元のＮＧＦの約半分になることが示唆されている。β−アミロイド蛋白質のアミノ酸残基２８−３０はリジン−グリシン−アラニンである。さらに、コンピュータを使用したβアミロイドの構造解析は、これらのアミノ酸が、蛋白質のループ状に巻いた部分に存在している確率が高いことを明らかにしており、そのことは、このβ−アミロイドペプチドの配列が、受容体の結合にある役割を演じていることを示唆している。それゆえ、アミノ酸２４−３１：ＶＧＳＮＫＧＡＩ（配列番号：１）からなる β−アミロイド断片の初めと終わりの端に２つのシステイン残基を結合することによって環状構造のデカペプチドを合成した。非放射性ペプチドは、¹²⁵Ｉ−β −アミロイドの結合を競合的に阻害し、５０％阻害濃度は、２５ｎＭであった。さらに、β−アミロイド２００ｎＭは、細胞収率を６０％まで低下させた（ｐ＜０．０２）。しかし、この細胞損失は、ペプチド（２００ｎＭ）によって阻止された。ペプチドだけでは、細胞収率に何ら影響を与えなかった。これらの知見は、アルツハイマー病におけるニューロンのアポトーシスが、β−アミロイドとｐ７５^NTRの相互作用から生じることを示唆している。また、データは、β−アミロイドの結合部位をブロックする合成ペプチドを送り込めば、β−アミロイドが介在するニューロンの死を防止できるかもしれないことを示唆している。かくして、ＣＮＳニューロンと表皮メラニン細胞の間に十分な類似性があるという上記知見に基づき、アルツハイマー病に対する診断アッセイおよび薬物の開発研究にこれらの知見を利用することが可能となる。アルツハイマー病のインビトロアッセイ本明細書に記載のメラニン細胞モデル系は、アルツハイマー病を発病する危険性がある個体を、早期に同定するのに使用することができる。現在、アルツハイマー病が発病する機構としては、３種類が知られもしくは推定されている：１．）ＣＮＳニューロンによるβ−アミロイドの産生もしくは分泌、または両者の増加。家族性のアルツハイマー病患者に見られる機能不全は、認識されたβＡＰＰの変異の１つから生じることが分かっている；２．）理由はまだよく分かっていないが、分泌されるβ−アミロイドの微妙な構造変化かあるいはＣＮＳにおける細胞外マトリックスの微妙な異常によって起こるのではないかと憶測されている、β−アミロイドペプチドの局部的な過度の凝集による、生理的なβ−アミロイドの濃度に対する感度が高くなる；３．）βＡＰＰを結合し、内部化し、分解することが知られているニューロン表面上における、低密度リポ蛋白質受容体関連蛋白質の発現、または機能の低下およびβＡＰＰの分解とその機能不全により、細胞外β−アミロイドの量は増加する。メラニン細胞を、被検者から得られた皮膚の生検材料から単離する。すなわち、試験メラニン細胞。皮膚の生検を標準的な皮膚化学の方法で実施する。典型的には、局所麻酔を行ったのち、個体の皮膚から３〜４ｍｍパンチ生検を採取する。生検材料には、都合の良い部位を選ぶことができる。本明細書では、皮膚から単離されたメラニン細胞も表皮メラニン細胞と呼ぶ。個体から採取したメラニン細胞を、本明細書に記載の標準的な実験条件下、典型的には、無血清培地を使って培養する。メラニン細胞の対照培養物も同様の条件下に維持する。対照のメラニン細胞を、病気でないことが分かっている個体、新生児の包皮または入手可能なメラニン細胞系から得ることができる（たとえば、パーク（Ｐａｒｋ，Ｈ−Ｖ）ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ，．２６８：１１７４２−１１７４９（１９９３）を参照）。すべてのメラニン細胞がｐ７５^NTRおよびｐ１４０^{trk A}受容体蛋白質を発現する。安定した生存可能なメラニン細胞培養物を確保するため、培養物をこれらの条件下で約２日間維持した。メラニン細胞が生存可能なままである限り、比較的長く培養液を維持することができる。培養物を安定化させたあと、β−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドを培養物に導入する。本明細書で定義しているように、β−アミロイド蛋白質には、β−アミロイド蛋白質はもちろん、β−アミロイド前駆体蛋白質も含まれる。β−アミロイドペプチドとしては、β−アミロイド１−４０ペプチド；β −アミロイド１−４２ペプチド；β−アミロイド２５−３６ペプチド；およびβ −アミロイド２８−３０ペプチドが挙げられる。β−アミロイド蛋白質とβ−アミロイドペプチドは、例えば、カルフォルニア州、トランスのバッケムカリフォルニア（ＢａｃｈｅｍＣａｌｉｆｏｒｎｉａ）等の様々な供給元から商業的に入手することができる。β−アミロイド蛋白質およびβ−アミロイドペプチドを、既知の実験技術を使って、化学合成、または組み替え的に作製することもできる。培地に加えたβ−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドを、典型的には、細胞培養液に相溶性の緩衝液に溶解する。培養液に添加するβ−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの濃度は、０μＭ〜１００μＭ、典型的には１μＭ〜５０μＭの範囲で変えることができる。β−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの典型的な１回の投与量は約２５μＭである。添加されるβ−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの濃度は、ｐ７５^NTR に結合して、活性化するのに十分な濃度である。本明細書で定義しているように、β−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドによるｐ７５^NTRの活性化は、メラニン細胞におけるアポトーシス細胞死の経路の開始または活性化を意味する。本明細書でさらに定義されているように、ｐ７５^NTRの活性化は、Ｂａｘ蛋白質の誘導またはスフィンゴミエリンの加水分解の開始をも意味する。メラニン細胞培養物を、β−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの存在下に、生じたｐ７５^NTRの活性化が検出できるのに十分な時間、典型的には約３日間維持する。しかし１日程度の短さにすることもできるし、８日程度の長さにすることもできる。試験メラニン細胞のｐ７５^NTRの活性化と対照メラニン細胞のｐ７５^NTRの活性化を比較する。 β−アミロイドによるｐ７５^NTRの活性化はメラニン細胞のアポトーシスによる細胞死をもたらす。アポトーシスは良く知られている実験法によって測定される。本明細書の実施例１に記載してあるように、メラニン細胞の収率を測定する方法をアポトーシスの測定に使用した。アポトーシスは細胞収率を下げる。電子細胞計数機器など（たとえば、クールター（Ｃｏｕｌｔｅｒ）^TM細胞計数器）を用いたり、血球計を使って細胞数を人手で数えることによるなどにより生細胞数をカウントして細胞収率を測定する。また、実施例１に記載してあるように、培養液を、死につつあるおよび／または死んだメラニン細胞を含むプラーク状の構造物の存在について顕微鏡観察によって評価することができる。これらのプラークもβ−アミロイドの沈着物を含む。実施例２に記載されているように、ｐ７５^NTRの活性化は、Ｂａｘ蛋白質発現の誘発を測定する検定法を用いて測定することもできる。Ｂａｘは、アポトーシスによる細胞死の経路に関与しているＢｃｌ−２関連蛋白質である。Ｂａｘ発現の増加は、アポトーシスの誘導を示唆している。Ｂａｘ蛋白質発現の測定は、細胞中のＲＮＡを測定する標準的な実験技術を使って、細胞中に発現されるＢａｘｍＲＮＡの増加を測定することによって行うことができる。Ｂａｘの誘導は、ウェスタンブロット分析における抗Ｂａｘ抗体を使って測定することもできる。アポトーシスは、ヨウ化プロピジウムの核断片への取り込みの測定、ＴＵＮＥＬ反応、または断片化したＤＮＡの表示によって測定することもできる。試験メラニン細胞のｐ７５^NTRの活性化が対照メラニン細胞のｐ７５^NTRの活性化より大きければ、試験メラニン細胞を採取した個体が、β−アミロイドに対して標準化した対照細胞系より鋭敏な神経稜細胞を有することを示唆している。個体の神経稜細胞が、β−アミロイドに対して、より敏感であれば、その個体はアルツハイマー病を発病する危険性があると予想するのが妥当である。メラニン細胞がβ−アミロイドに対して異常に敏感な被検者の場合、細胞外マトリクス分子の合成と沈着のキャラクタリーゼーションを、これらの細胞外分子とβ−アミロイドペプチドとの相互作用を測定するメラニン細胞培養法を用いて、さらに行うことができる。本明細書に記載した培養メラニン細胞検定法は、患者の神経稜細胞上の低密度リポ蛋白質受容体関連蛋白質の機能を評価するのにも有用である。ニューロンは、構成的にβ−アミロイド前駆体蛋白質を分泌する。β−アミロイドは、アルツハイマー病患者に見られる顕著な特徴である老人斑の主要成分であるので、ニューロンの周囲を囲むβ−アミロイド蛋白質および／またはβ−アミロイドペプチドのレベルが高いことは、アルツハイマー病の存在と相関性があるものと見るのが妥当である。本明細書に記載するメラニン細胞培養アッセイ法を使用して、患者の神経稜細胞が、構成的にもしくは外的な刺激に応答して、標準化した対照の細胞系より多量に、そして高いレベルでβ−アミロイドを合成もしくは分泌、または合成し分泌するかどうかを測定することができる。対照メラニン細胞培養液中より、試験メラニン細胞培養液中の方がβ−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの分泌が多ければ、その個体はアルツハイマー病を発病する危険性が高いことを示唆している。上記のように、数多くのアルツハイマー病に至る病理学的な機構が知られ、または推定されている。本明細書に記載したように、出願人らは、上述の機構すべてが収束する最終的な経路が、ＮＧＦ、ｐ７５^NTRおよびｐ１４０^trkAからなる受容体複合体の有益な活性化のかわりに、アポトーシスへ導くｐ７５^NTRの活性化のみであることを明らかにしている。従って、個体のアルツハイマー発病の危険性の測定は、個体のメラニン細胞表面に発現されるｐ７５^NTR対ｐ１４０^trkA のレベルを測定することによって行うことができる。ｐ７５^NTR対ｐ１４０^trkA の比が大きな個体は、アルツハイマー病発現の危険性を持つと言えるだろう。したがって、本明細書に記載するメラニン細胞培養物を使って、個体がアルツハイマー病を発現する危険性があるかどうかを予想することは妥当と言える。さらに、メラニン細胞培養法を使って、所定の個体がどのような機構で病気、例えば、β−アミロイドが異常に敏感なのか、β−アミロイド蛋白質の分泌量が高いのか、あるいは発現されるｐ７５^NTR対ｐ１４０^trkAの比が異常なのかといったこと、を発現する可能性があるかを予想することも妥当であり、したがって、特にその異常性に的を絞った治療アプローチの選択を可能にする。また、本発明のメラニン細胞培養法は、後で述べるように、個体における有効性を測定するような、治療物質をスクリーンするのに有効である。このように、アルツハイマー病に対する既知の素因を持つか、または従来の臨床的な判断基準に基づいたアルツハイマー病の診断を受けた個体に対して、示されたインビトロでの有効な物質で治療が行われ、その結果、病気の症状を軽減する機会が増すことになる。有効なアルツハイマー病治療法の評価ＮＧＦは２つの受容体：ｔｒｋＡ癌原遺伝子の蛋白質産生物であるｐ１４０^tr ^kA 膜貫通チロシンキナーゼ受容体、およびいくつかの神経親和体に対する７５ｋＤの低親和性膜貫通受容体であるｐ７５^NTRに結合する。ｐ１４０^trkAは、ｐ７５^NTR非存在下でＮＧＦによって誘導される効果を仲介すると報告されている（Ｖｅｒｄｉ，Ｊ．Ｍ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９１：３９４９−３９５３（１９９４））。また、ｐ７５^NTRが、ｔｒｋＡ非存在下において発現しているニューロンのアポトーシスを介在し、ｐ７５^NGF受容体の変化が神経の生存を増進しうることが報告されている（Ｃａｔｈａｒｉｎａ，Ｆ．Ｅ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，１７２５：１７２９−１７３２（１９９６年１２月６日号））。しかし、ＮＧＦのシグナルの変換におけるｐ７５^NTRの機能上の重要性については、以前として議論が分かれている。ｐ７５^NTRとｐ１４０^trkAの同時発現は、ＮＧＦの機能的な高親和性の結合を生じることが報告された（Ｂａｔｔｌｅｍａｎ，Ｄ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，１３：９４１−９５１（１９９３））。しかし、ｐ１４０^trkAを発現しない細胞内でのｐ７５^NTRの活性化は、スフィンゴミエリンシグナリング経路の活性化によってそれらのアポトーシスを誘導することも報告された。従って、ｐ７５^NTRは、二重の役割を持つ可能性がある。ｐ１４０^trkAと組み合わさると、チロシンキナーゼ依存性経路を通してシグナルを送り（Ｄｏｂｒｏｗｓｋｙ，Ｔ．Ｔ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６５：１５９６（１９９４）、生存するが、単独で活性化されると、スフィンゴミエリン経路を通してシグナルを送り、アポトーシスに至るのかもしれない。ＮＧＦのｐ７５^NTRへの結合は、ＮＧＦのβ−ヘアピンループの一部であるアミノ酸残基２９−３６、ＴＤＩＫＧＫＥＶ（配列番号：２）を通して仲介されている（Ｉｂａｎｅｚ，Ｃ．Ｆ．ら、Ｃｅｌｌ，６９：３２９−３４１（１９９２））。３４位のリジン（Ｋ）をアラニン（Ａ）で置換すると、得られる変異ＮＧＦ分子はｐ７５^NTRを結合するが、親和性は５０％に低下する。興味深いことに、β−アミロイドにおいて、１−４０および２５−３５β−アミロイドペプチドの両方に存在するアミノ酸残基２８−３０は、β−アミロイドによるｐ７５^NTR の結合を可能にすると思われる配列、ＫＧＡである。β−アミロイドをコンピュータを用いて構造解析することにより、ＫＧＡ残基がループ状に巻いた位置にある可能性が高い（＞６０％）ことを示し、この４０アミノ酸ペプチドの中のどの部分も確率が最も高く、この配列がｐ７５^NTRに対する結合部位を構成していることを示唆している。さらに、ｐ７５^NTRの発現は、おそらく受容体の結合と活性化を通して、細胞上のβ−アミロイドの毒性効果を高めることが報告されている。上述のデータに基づけば、β−アミロイド蛋白質の特定の３つのアミノ酸配列リジン−グリシン−アラニン（ＫＧＡ）が、ＣＮＳニューロン上の７５ｋＤ膜貫通神経親和体受容体に結合し、細胞内Ｂａｘレベルの増加によって一部仲介される、プログラム化された細胞死の経路を活性化すると考えることは、理にかなっている。また、β−アミロイドペプチドの結合を競合的に阻害することは、この異常型受容体の活性化と、その結果生じるアポトーシスを遮断すると考えても、無理なことではない。たとえば、完全な長さのＮＧＦ、またはその生物学的に活性な断片、アナログ、誘導体、変種または変異体は、かわりにｐ１４０^{trk A}の結合と等位的なｐ７５^NTRの優先的な結合をもたらし、その結果、神経細胞を生存させる、第二のシグナル伝達経路の活性化を生じる。ＮＧＦまたはＮＧＦの断片、誘導体、アナログ、変種または変異体の「生物学的な活性」という用語は、本明細書では、そのＮＧＦがｐ７５^NGF受容体に特異的に結合する活性として定義される。該活性は、本明細書に記載する方法、または当業者に公知の他の方法によって測定することができる。ＮＧＦ断片、アナログ、誘導体、変種または変異体の別の生物学的な活性とは、よく知られた実験技術を用いて測定される特異的な免疫応答を誘導する抗原性である。たとえば、生物学的に活性なＮＧＦ断片は、ＮＧＦに対して特異的な抗体（抗ＮＧＦ抗体）を産生する免疫応答を誘導することができる。「アナログ」という用語は、本明細書では、その蛋白質の生物学的な活性を有する、内因性ＮＧＦのアミノ酸配列に対して十分な同一性を有しているアミノ酸配列を意味する。たとえば、ポリペプチドのアナログは、ポリペプチドのアミノ酸配列に、１以上のアミノ酸残基がＮＧＦのアミノ酸残基と異なっているが、依然としてｐ７５^NTR結合活性は有するような、「サイレント」変化を導入することができる。このような違いの例としては、残基の付加、欠失、置換が挙げられる。また、ＮＧＦの生物学的な活性を多少とも有している蛋白質も本発明に包含される。本発明は、本明細書に記載されているＮＧＦの生物学的に活性な断片の生産と使用も包含される。そのような断片には、ＮＧＦの全長アミノ酸配列のごく一部であるが、なお生物学的な活性を有する断片を含めることができる。本明細書に使用されるように、「生物学的に活性な断片」という用語は、完全な長さの蛋白質の生物学的なもしくは生理学的な効果を発揮できるか、または完全な長さの蛋白質の生物学的な特徴、たとえば抗原性を有するＮＧＦ断片を意味する。該活性と特性については本明細書に記載されている。該断片は、内部欠失ばかりでなく、アミノ末端およびカルボキシル末端の欠失により作製することもできる。たとえば、酵素分解により得られるような蛋白質の活性な断片も含まれる。該ペプチド断片は生物学的な活性について試験を行うことができる。ＮＧＦの「誘導体」および「変種」は、修飾されたＮＧＦである。これには、ｐ５７^NTRと関連するアミノ酸配列の変化によって修飾されたＮＧＦが含まれる。これには、さらに、ＮＧＦの先端を切ったりハイブリッド型も含まれるが、これらに限定されるものではない。「先端を切った」型は、たとえば、Ｃ末端領域を除去するように修飾されたＮＧＦの短縮したバージョンを指す。「ハイブリッド」型には、たとえばＮＧＦと別の蛋白質とから構成される融合蛋白質等のように、２つ以上の蛋白質部分で構成されているＮＧＦが含まれる。変種は、当業者に公知の方法を使用して作製することができる。ＮＧＦ遺伝子は、当業者に公知の技術、たとえば部位特異的変異誘発やオリゴヌクレオチド変異誘発等を使って、インビトロまたはインビボで変異させることができる。ＮＧＦ配列の操作は蛋白質レベルでもうまく行うことができる。多数ある化学的修飾法のどれでも公知技術によって実施することができ、限定はないが、臭化シアン、トリプシンおよびパパインによる特異的な化学的切断が挙げられる。また、たとえば、熱によりまたは固体表面に固定化することにより、構造的に修飾または変性することも可能である。本発明のＮＧＦの断片、アナログ、誘導体、変種または変異体のアミノ酸配列を、ＮＧＦをコードする本来のＤＮＡもしくは変種ＤＮＡ内に適当なヌクレオチドの変化を導入するか、目的とするＮＧＦをインビトロで合成することにより、当業者に公知の方法でｐ７５^NTRへのＮＧＦの結合を最適化するように変えることもできる。ＮＧＦが、β−アミロイドよりｐ７５^NTRに対して高い親和性を有し、ＮＧＦが細胞環境に存在すると、この神経親和体はｐ１４０^trkA受容体と等位的なｐ７５^NTRに優先的に結合してｐ１４０^trkAを活性化し、細胞を生存へ導くと考えることは妥当である。しかし、表面におけるｐ７５^NTRの発現が増加し、または細胞外空間におけるβ−アミロイドのレベルが高くなる条件下では、飽和量のＮＧＦが存在しなければ、β−アミロイドのｐ７５^NTRへの結合とそれに続くスフィンゴミエリン経路の活性化からアポトーシスによる細胞死が起きるのかもしれない。ＣＮＳでは、高齢者、特にｐ７５^NTR結合に必要なアミノ酸配列を含むβ− アミロイド断片の遺伝子的に決定された過剰産生を行う高齢者でこのような状況が起きるかもしれない。正常なヒトメラニン細胞は、周囲の信号に対してＣＮＳニューロンと同じように応答し、アルツハイマー病の有効な治療法を研究するための妥当なモデル系になるように思われる。このように、本発明は細胞の生存を増進し、β−アミロイドによって誘導されるアポトーシスによる細胞死を阻止する物質を開発し評価するために、培養メラニン細胞のモデル系を使用する方法も包含する。具体的には、本発明の方法は、アルツハイマー病を治療するための物質を同定し、評価するするために使用することができる。たとえば、メラニン細胞培養液モデルは、β−アミロイドのｐ７５ＮＴＲ結合を遮断し、その結果、β−アミロイドによって介在されるニューロンのアポトーシスを遮断する物質を同定するために使用することができる。上で述べたように、リジン−グリシン−アラニンからなるトリペプチドは、アルツハイマー病の症状を緩和するための治療として使用する候補物質である。メラニン細胞培養モデル系は、ｐ７５^NTRと結合するであろう最適な組成を決定し、有益なＮＧＦ結合を妨害することなく、アポトーシスを誘導するβ−アミロイドリガンドの結合を遮断する、ＫＧＡ配列を含む他のペプチドやＫＧＡトリペプチドの様々なアナログを同定し、評価するのに使用することができる。候補物質の評価は、ＡＤの危険性がある、またはＡＤの診断を受けた個体から特定して採取したメラニン細胞を使って行われるので、有効な候補物質を同定する確率は非常に高い。一度候補物質が同定されると、ＣＮＳへ輸送しなければならない物質の治療レベルは、各個体からのインビトロのメラニン細胞培養液を使って正確に測定することができる。候補物質の濃度の滴定は、本明細書に記載されているメラニン細胞培養モデル系を使って行うことができる。また、神経稜由来の細胞のｐ７５^NTR受容体の異常な活性化に起因するアポトーシスから生じる神経変性症を治療するための治療方法も本発明に包含される。具体的には、β−アミロイドが介在するアポトーシスによるニューロンの変性または死から生じる痴呆の症状を示す個体に対する治療方法を包含する。β−アミロイドが仲介するアポトーシスは、アルツハイマー病の一番代表的な目印であり、それゆえ、具体的にはアルツハイマー病の患者を治療する方法も本発明に包含される。治療方法は、ある物質、たとえばトリペプチドＫＧＡまたはそのアナログをその物質とＣＮＳのニューロンとが接触できる方法で、個体に投与することを含む。たとえば、ペンタペプチドＣＫＧＡＣ（配列番号：３）またはそのアナログを当業者に良く知られた方法によって化学合成することができる。たとえば、ジスルフィド結合によって、ペンタペプチドの末端の側面に位置するシステイン残基を連結して、ペプチドがｐ７５^NTRに結合し、その結果、アポトーシスを阻害または防止するのに必要な立体配座を維持することができる。ＫＧＡまたはそのアナログが結合活性に適する配置に保持される限り、ペプチドの長さをペンタペプチドより長くすることができる。たとえば、本明細書に記載されているように、アミノ酸配列ＣＶＧＳＮＫＧＡＩＣ（配列番号：４）を用いて環状ペプチドが作られており、これらのペプチドはｐ７５^NTRへの結合に対してβ−アミロイドペプチドと競合する。ペプチドまたは他の物質の投与または輸送は、遺伝子の導入または遺伝子治療に使用される方法に類するやり方で行うことができる。たとえば、ペプチドをコードするＤＮＡの有効量を、中枢神経系ニューロンを標的とするウイルスベクター構造物に挿入することができる。ＤＮＡ挿入片は、標的細胞中のＤＮＡ発現に必要な配列も含んでいる。ゲーラー（Ｇｅｌｌｅｒ，Ａ．Ｉ．）およびブレアケフィールド（Ｂｒｅａｋｅｆｉｅｌｄ，Ｘ．Ｏ．）、Ｓｃｉｅｎｃｅ２４１：１６６７−１６６９（１９８８）および米国特許第５，２８８，６４１号（Ｒｏｉｚｍａｎ１９９４）に記載されている単純ヘルペスウイルス−１（ＨＳＶ− ｌ）ベクターが特に有用である。その全ての教示は参考文献として本明細書に含まれる。遺伝子銃も使用できる。また、頭蓋内への投与も使用することができる。さらに、インビボ試験法は、ＷＯ９６／４０８９５号に記載の形質転換マウス等の、現在の技術で認められているマウスモデルを用いて、実施することができ、その全ての教示は参考文献として本明細書に含まれる。このような試験法は当業者に良く知られている。以下の実施例により、発明の内容をより具体的に説明するが、決してこれだけに限定することを意図するものではない。実施例１：正常なヒトのメラニン細胞に対するβ−アミロイドの効果正常なヒトのメラニン細胞に対するβ−アミロイドの効果を決定するため、培養液に各種濃度（０．０２５〜５０μＭ）の、ＨＰＬＣで精製した、アミノ酸１ −４０に相当するβ−アミロイド断片を添加した。最初の４０個のアミノ酸を逆の順序（４０−１）で含む合成ペプチドを負の対照として使用した。表皮成長因子（１０ｎｇ／ｍｌ）（ＣｏｌｌａｂｏｒａｔｉｖｅＲｅｓｅａｒｃｈ）、インシュリン（１０μｇ／ｍｌ）（Ｓｉｇｍａ）、トリヨードチロニン（１０^-9Ｍ）（ＣｏｌｌａｂｏｒａｔｉｖｅＲｅｓｅａｒｃｈ）、トランスフェリン（１０μｇ／ｍｌ）（Ｓｉｇｍａ）、ヒドロコルチゾン（１．４×１０^-6 Ｍ）（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ）、コレラ毒素（１０^-9Ｍ）（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ）および塩基性線維芽細胞成長因子（ｂａｓｉｃＦＧＦ）（１０ｎｇ／ｍｌ）（ＣｏｌｌａｂｏｒａｔｉｖｅＲｅｓｅａｒｃｈ）を加えた無血清の培地１９９（ＧｉｂｃｏＢＲＬＧａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ，ＭＤ）でメラニン細胞を培養した。播種後２日間、細胞を種々の濃度のβ−アミロイド１−４０または対照ペプチド４０−１（０−５０μＭ）（ＢａｃｈｅｍＣａｌｉｆｏｒｎｉａ，Ｔｏｒｒａｎｃｅ，ＣＡ）で補足した。β−アミロイドを添加して３日後に細胞収率を決定すると、１−４０ペプチドと共に培養した培養液では、投与量に依存して細胞収率が低下することが分かる。対照の４０−１ペプチドと共に培養した培養液では、細胞収率に対する効果は認められなかった。２５〜３０μＭのβ−アミロイド１−４０の存在下に培養したメラニン細胞の収率は、β−アミロイドを添加する前の細胞収率を１００％として比較すると、５９％±１７％減少した。対照の４０−１ペプチドの存在下に培養した２連の培養物の細胞収率は、８％±３２％の細胞収率増加であった（ｐ＜０．０２、ペアーでのｔ検定）。４０−１対照ペプチドの存在下に培養したメラニン細胞は、多角的な形態に対して典型的な二極的な形態を持つ。１−４０ペプチドの存在下で培養したメラニン細胞の大部分は丸い形をし、シャーレの表面からはがれかけている。回帰分析から、β−アミロイド１−４０の濃度が高くなると細胞収率は有意に低下するのに対して（Ｒ²＝０．８４７５、ｐ＜０．００００１）、β−アミロイド４０−１では細胞収率に対して有意な影響は認められないことが立証された（Ｒ²＝０．０６、ｐ＝０．４４）。４回の実験を合わせると、３〜５日以内に β−アミロイド１−４０は、メラニン細胞の収率を５０％以上低下させたのに対して（ｐ＜０．０２、ペアーでのｔ検定）、対照である４０−１β−アミロイドペプチドは、同じ濃度で、細胞収率に何ら影響を及ぼさなかった。実施例２：メラニン細胞のプラーク形成に対するβ−アミロイド１−４０の効果実施例１で述べたのと同様にして培養したメラニン細胞培養液についてプラークの形成を評価した。いくつかの培養液では、集合して次第に大きくなった死にかけのメラニン細胞からなるプラーク様の構造の発現が認められた。それはアルツハイマー病の患者の脳について記述された老人斑を想起させる。実施例３：メラニン細胞に対するβ−アミロイドおよびＮＧＦの効果ニューロン内では、癌原遺伝子Ｂｃｌ−２の蛋白質産物が、様々な刺激が引き金となるアポトーシスの開始を遅らせる。他方、Ｂｃｌ−２関連蛋白質（Ｂａｘ）の過度の発現は、この細胞死を加速する。 β−アミロイドが仲介するメラニン細胞の死の機構を調べるため、２５μＭの１−４０または２５−３５β−アミロイドペプチドで処理したメラニン細胞内のＢａｘレベルを検査した。処理して４日以内に、β−アミロイドの１−４０断片またはβ−アミロイドの２５−３５断片のいずれかで刺激したメラニン細胞では、対照の４０−１断片、または同様な大きさのＨＰＬＣで精製した無関係な蛋白質で処理したメラニン細胞と比較して３倍のＢａｘが誘発された。メラニン細胞は上記と同様に培養した。２５μＭのβ−アミロイド断片１−４０、４０−１もしくは２５−３５、または負の追加対照として２５μＭのＨＰＬＣで精製したウシのコルチコトロピン放出因子（ＣＲＦ）（ＢａｃｈｅｍＣａｌｉｆｏｒｎｉａ）（ＭＷ４．７ｋＤ）を添加して４日後、１μｇ／ｍｌのアプロチニンと７５μｇ／ｍｌのフェニルメチルスルホニルフルオリド（ＰＭＳＦ）の存在下、ＲＩＰＡ緩衝液（５０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、０．１５ＭＮａＣｌ、０．５％デオキシコール酸ナトリウム、１％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００）で細胞を抽出し、１〜３秒間超音波処理し、遠心分離した。レーン当たり４０μｇの蛋白質を１２％ＳＤＳ／ＰＡＧＥ上で分離し、ニトロセルロース紙上にブロットした（一晩、２５Ｖ）。負荷量が等しいことを確認するため、二連の１３％ＳＤＳ／ＰＡＧＥを実施し、ＣｏｏｍａｓｉｅＢｌｕｅＲ２５０で染色した。ブロットを抗Ｂａｘ抗体（１：１０００倍希釈）（１次抗体）、続いて西洋わさびペルオキシダーゼと複合したヤギの抗ラビットＩｇＧ（２次抗体）（１：５００倍希釈）（Ｂｉｏ−ＲａｄＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）とインキュベートした。高感度化学発光キット（ＡｍｅｒｓｈａｍＣｏｒｐ．）を用いて結合した抗体を検出した。ＯｆｔｏＴＭプログラム（ＬｉｇｈｔｓｏｕｒｃｅＣｏｍｐｕｔｅｒＩｍａｇｅｓ，Ｉｎｃ．）を使用して、オートラジオグラムをマッキントッシュII型コンピュータに取り込んだ。スキャン分析は、ＳｃａｎＡｎａｌｙｓｉｓＴＭ６８０００プログラム（Ｂｉｏｓｏｆｔ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＵＫ）を使ってバンドの手動解像で行った。 β−アミロイドペプチド１−４０および２５−３５は、４０−１ペプチドと比較して、Ｂａｘレベルが増加した（各々２７０％および１６０％）。実施例４：β−アミロイドによって誘発される細胞死に対するＮＧＦの効果神経成長因子（ＮＧＦ）は、アルツハイマー病の動物モデルと臨床試験的な治療において、認識機能を向上させコリン作動性ニューロンの減少を緩和することが報告されている（Ｃｔｏ，Ａ．ら、Ｂｅｈａｖ．ＢｒａｉｎＲｅｓ．，５７：２５５−２６１（１９９３）；Ｌａｐｃｈａｋ，Ｐ．Ａ．，Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．，１２４：１６−２０（１９９３）；Ｏｌｓｏｎ，Ｌ．ら、Ｊ．Ｎｅｕｒａｌ．Ｔｒａｎｓｍ．Ｐａｒｋ．Ｄｉｓ．Ｄｅｍｅｎｔ．Ｓｅｃｔ．，４：７９ −９５（１９９２））。また、最近、ＮＧＦがＢｃｌ−２のレベルをアップレギュレーションすることによって、メラニン細胞のアポトーシスを遅らせることが報告された（Ｚｈａｉ，Ｓ．ら、Ｅｘｐ．ＣｅｌｌＲｅｓ．）。ＮＧＦの添加が、β−アミロイドによって誘発される細胞死からメラニン細胞を保護するかどうかが研究された。β−アミロイドを添加したメラニン細胞にＮＧＦを添加すると、３〜５日以内に細胞収率が増進され、ドナー間で保護の度合いに変動はあったものの、ほとんどのドナーで生存細胞の形態がかなり改善された。予備的なデータによれば、ＮＧＦを添加するとβ−アミロイドによって誘発されるＢａｘのアップレギュレーションは低下し、細胞内のＢｃｌ−２レベルは上昇することが示唆された。このことは、ＮＧＦがβ−アミロイドによって仲介されるシグナルの伝達を妨害することを示唆している。メラニン細胞を、ヒドロコルチゾンを欠いたホルモンを添加した培地で上記と同様にして培養した。細胞は、５０ｎｇ／ｍｌのＮＧＳまたは希釈剤の存在下に２５μＭのβ−アミロイド１−４０を添加された。代表的な視野の写真が得られ、β−アミロイドとＮＧＦまたはβ−アミロイドと希釈剤を添加して４８時間後に生きている細胞（広がっている）の百分率を決定した。β−アミロイドとＮＧＦを添加した培養液の場合の９６±１．４％に対して、β−アミロイドと希釈剤が存在する場合、７７±８．５％が広がっているように見えた。β−アミロイドと希釈剤を供給されなかった培養液では、シャーレの表面に広がっていた細胞までが液胞化し、全体的に、ＮＧＦを添加した培養液中の細胞のように健康には見えなかった。 β−アミロイドに曝露されたメラニン細胞は、ＮＧＦが不在下では死にかかっているのに対して、ＮＧＦが存在すると、細胞は健康に見え、シャーレ表面に広がっている。各条件で、少なくとも４００個の細胞を数えた。実施例５：β−アミロイドはｐ７５神経成長因子受容体と結合する β−アミロイドがｐ７５^NTRと結合するかどうかを決定するため、ジスクシンイミジルスベレートの存在下にｐ７５^NTRを過剰発現させ永久にトランスフェクトした培養線維芽細胞（ｐ７５^NTR−ＮＩＨ３Ｔ３細胞）に、¹²⁵Ｉ１−４０ β−アミロイドペプチドを添加し、緊密に会合した蛋白質を架橋させた。つづいて、細胞を抗ｐ７５^NTR抗体または無関係なマウスのＩｇＧで免疫的沈降させた。オートラジオグラムには、抗ｐ７５^NTR抗体で免疫沈降させた溶解液にのみ７５〜８０ｋＤのサイズの蛋白質のバンドが現れた。非標識ＮＧＦの濃度を高くしながら¹²⁵Ｉ１−４０β−アミロイドの競合分析を行った結果、１−４０β− アミロイドはＮＧＦにより競合除去され得ることが明らかになった。しかし、¹² ⁵ Ｉ１−４０の残余結合があることは、１−４０β−アミロイドが、さらに別の細胞表面受容体を持っている可能性のあることを示唆している。それは、最近同定されたセルピン酵素複合体受容体かもしれない。得られた結果は、ｐ７５^NTRがβ−アミロイドの受容体であることを示しており、正常な細胞の培地中に高ピコモル濃度から、低ナノモル濃度で分泌されていると報告されているペプチドである。ｐ７５^NTR−ＮＩＨ３Ｔ３細胞を１０％ＦＢＳを補給したＤＭＥＭ中で、ペニシリン（４５ｎｇ／ｍｌ）、ストレプトマイシン（６８ｎｇ／ｍｌ）およびイヒグロマイシンＢ（１７．５ｎｇ／ｍｌ）の存在下に培養した。８０％コンフルエンスで、ＥＤＴＡでシャーレから細胞をはがし、ＤＭＥＭ中、懸濁状態で、５ μＣｉの¹²⁵Ｉ β−アミロイド１−４０と４℃で１時間インキュベートした。インキュベーション後、１ｍＭのジスクシンイミジルスベレートを３０分間添加した。遠心分離にかけたのち、ＲＩＰＡ緩衝液（５０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．０、０．１５ＭＮａＣｌ、０．５％デオキシコール酸ナトリウム、４．５ｍＭＭｇＣ₂、１％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００、１ｍＭフェニルメチルスルホニルフルオリド（ＰＭＳＦ）および１μｇ／ｍｌアプロチニン）で細胞溶解し、１〜３秒間超音波処理し、それから１５μｌのプロテインＧ＋プロテインＡアガロースとｐＨ８．０に調整した１ＭＮａＣｌの存在下に、抗ｐ７５^NTR 抗体（マウスモノクロナルＩｇＧ１、ＣｅｄａｒｌａｎｅＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓＬｔｄ．，オンタリオ、カナダ）または対照としてのマウスＩｇＧで、４０℃、１６時間免疫沈降させた。２０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．０、１ＭＮａＣｌ、５ｍＭＭｇＣｌ₂、０．２％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００および１ｍＭＰＭＳＦで数回洗ったのち、免疫沈降物を８％ＰＡＧＥで分離し、オートラジオグラフィに供した。抗ｐ７５^NTR抗体で免疫沈降させた溶解液にのみ分子量が〜０ｋＤのバンドが現れ、無関係なマウスＩｇＧで免疫沈降させた溶解液には存在しなかった。ｐ７５^NTR−ＮＩＨ３Ｔ３細胞を結合培地（ＤＭＥＭ、１０ｍＭＨＥＰＥＳ、０．１ｍｇ／ｍｌチトクロームＣ、０．０１％Ｔｗｅｅｎ８０、１ｍｇ／ｍｌ）中、¹²⁵Ｉ β−アミロイド１−４０および各種濃度（０〜１００ｎｇ／ｍｌＢＳＡ）中、４０℃で２時間インキュベートした。ＰＢＳ中でリンスした後、細胞を１ＮＮａＯＨに溶解し、細胞溶解物から等量の蛋白質のγ線をカウントした。ＮＧＦは、濃度に依存して¹²⁵Ｉ β−アミロイドの結合を阻害し、ＮＧＦの濃度１００ｎｇ／ｍｌにおいて、最大３８％の阻害が認められた。そして、統計的に匹敵する結合は２５ｎｇ／ｍｌの濃度で観察された。実施例６：環状ペプチドは、ｐ７５^NTRへのβ−アミロイドの結合を競合的に阻害するｐ７５^NTR３Ｔ３細胞、０．５μＣｉ ¹²⁵Ｉ β−アミロイド１−４０および各種濃度（０〜４００ｎＭ）の環状ペプチドＣＶＧＳＮＫＧＡＩＣ（配列番号：４）を懸濁状態で４時間、４℃でインキュベートした。１．５×１０⁵個の細胞からの溶解液をカウンテイングにかけた。図１に示したように、環状ペプチドは、濃度に依存して、¹²⁵Ｉ β−アミロイド１−４０の結合を阻害し、５０％の阻害は、予想された環状ペプチド濃度、２５ｎＭにおいて観察された。この実験は、環状ペプチドが、ｐ７５^NTR受容体への結合に対して、β−アミロイドと競合しうることを示している。実施例７：細胞の生存に対するペプチドの効果２００ｎＭのβ−アミロイド１−４０、２００ｎＭの環状ペプチドＣＶＧＳＮＫＧＡＩＣ（配列番号：４）、２０ｎＭのβ−アミロイド１−４０および２００ｎＭの環状ペプチド、または希釈剤のみを添加した無血清培地でｐ７５^NTR３Ｔ３細胞を培養した。β−アミロイドを添加したのち、１２０時間にわたって細胞収率を決定した結果、他のすべての培養物と比較して、２００ｎＭβ−アミロイド１−４０と培養した培養物の細胞収率が顕著に低いことが分かった（図２参照）。均等物当業者は、日常的な実験手法を使用して、本明細書に記載してある具体的な実施例に等価な多くのものを認め、確認することができよう。このような均等物は以下に述べる請求の範囲に包含される。

【手続補正書】特許法第１８４条の８第１項【提出日】１９９８年５月２８日（１９９８．５．２８）【補正内容】アルツハイマー病の診断および治療法関連出願本出願は、１９９６年３月２９日に出願された先願番号第０８／６２５，７６５号の一部継続出願である。発明の背景痴呆とは、記憶喪失、判断力、会話および姿勢保持機能の低下を含め、個体の過去の知的水準が著しく損なわれることを特徴とする、心的な退化の状態を言い、しばしば情緒的無反応を伴う（ＷＥＢＳＴＥＲ’ＳＭＥＤＩＣＡＬＤＥＳＫＤＩＣＴＩＯＮＡＲＹ，Ｍｅｒｒｉａｍ−Ｗｅｂｓｔｅｒ，Ｉｎｃ．，Ｓｐｒｉｎｇｆｉｅｌｄ，マサチューセッツ、１６９ページ（１９８６））。痴呆の主たる原因は、神経が変性するアルツハイマー病（ＡＤ）で、その患者数は世界で１７００万人ないし２０００万人にも上っている（Ｙａｍａｚａｋｉ，Ｔ．ら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏ１．，１２９；４３１−４４２（１９９５）；Ｂｒｉｎａｇａ，Ｍ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６９；９１７−９１８（１９９５）；Ｌａｖｙ−Ｌａｈａｄ、Ｅ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６９；９７０−９７２（１９９５）；Ｌａｖｙ−Ｌａｈａｄ、Ｅ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６９；９７３ −９７７（１９９５））。ＡＤの特徴は、痴呆が進行することと、脳にβ−アミロイド蛋白質が沈着し、変性したニューロンのクラスターに囲まれた「老人斑」が病理学的に観察される点にある。β−アミロイドそれ自体は、７７０アミノ酸の膜に結合β−アミロイド前駆体蛋白質（ＡＰＰ）のフラグメントであり、ニューロン組織と非ニューロン組織の両方に発現される。 βＡＰ産生酵素およびその阻害剤を単離できるように、ＡＰＰが開裂できるかまたは開裂できないＡＰＰ基質系を開発する目的で、ＡＰＰおよびβＡｐｐの変異物（ｍｕｔｅｉｎ）が作製されている（ＥＰ−Ａ−０５８４４５２）。アルツハイマー病の具体的な原因は未だ究明されていない。常染色体優性ＡＤの一つを持つ家族内でのβＡＰＰ遺伝子の変異が、β−アミロイド合成の増加と脳への蓄積と関係していることが発見された。βＡＰＰの受容体は、低密度リポ蛋白質受容体に関連する蛋白質、ＡｐｏＥであることが確認されており、ＡＤ患者ではこの受容体蛋白質、細胞膜内のβＡＰＰの切断を担う酵素、βＡＰＰの合成および／または細胞外マトリックス分子のいずれか、または複合して異常が見られ、その結果、過剰なβ−アミロイドの沈着と神経毒性が観察されるのではないかと推定されている。実施例３：メラニン細胞に対するβ−アミロイドおよびＮＧＦの効果ニューロン内では、癌原遺伝子Ｂｃｌ−２の蛋白質産物が、様々な刺激が引き金となるアポトーシスの開始を遅らせる。他方、Ｂｃｌ−２関連蛋白質（Ｂａｘ）の過度の発現は、この細胞死を加速する。 β−アミロイドが仲介するメラミン細胞の死の機構を調べるため、２５μＭの１−４０または２５−３５β−アミロイドペプチドで処理したメラミン細胞内のＢａｘレベルを検査した。処理して４日以内に、β−アミロイドの１−４０断片またはβ−アミロイドの２５−３５断片のいずれかで刺激したメラニン細胞では、対照の４０−１断片、または同様な大きさのＨＰＬＣで精製した無関係な蛋白質で処理したメラニン細胞と比較して３倍のＢａｘが誘発された。メラニン細胞は上記と同様に培養した。２５μＭのβ−アミロイド断片１−４０、４０−１もしくは２５−３５、または負の追加対照として２５μＭのＨＰＬＣで精製したウシのコルチコトロピン放出因子（ＣＲＦ）（ＢａｃｈｅｍＣａｌｉｆｏｒｎｉａ）（ＭＷ４．７ｋＤ）を添加して４日後、１μｇ／ｍｌのアプロチニンと７５μｇ／ｍｌのフェニルメチルスルホニルフルオリド（ＰＭＳＦ）の存在下、ＲＩＰＡ緩衝液（５０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、０．１５ＭＮａＣｌ、０．５％デオキシコール酸ナトリウム、１％Ｔｒｉｔｏｎ^TM Ｘ−１００）で細胞を抽出し、１〜３秒間超音波処理し、遠心分離した。レーン当たり４０μｇの蛋白質を１２％ＳＤＳ／ＰＡＧＥ上で分離し、ニトロセルロース紙上にブロットした（一晩、２５Ｖ）。負荷量が等しいことを確認するため、二連の１３％ＳＤＳ／ＰＡＧＥを実施し、ＣｏｏｍａｓｉｅＢｌｕｅＲ２５０で染色した。ブロットを抗Ｂａｘ抗体（１：１０００倍希釈）（１次抗体）、続いて西洋わさびペルオキシダーゼと複合したヤギの抗ラビットＩｇＧ（２次抗体）（１：５００倍希釈）（Ｂｉｏ−ＲａｄＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）とインキュベートした。高感度化学発光キット（ＡｍｅｒｓｈａｍＣｏｒｐ．）を用いて結合した抗体を検出した。ＯｆｔｏＴＭプログラム（ＬｉｇｈｔｓｏｕｒｃｅＣｏｍｐｕｔｅｒＩｍａｇｅｓ，Ｉｎｃ．）を使用して、オートラジオグラムをマッキントッシュII型コンピュータに取り込んだ。スキャン分析は、ＳｃａｎＡｎａｌｙｓｉｓＴＭ６８０００プログラム（Ｂｉｏｓｏｆｔ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＵＫ）を使ってバンドの手動解像で行った。８０％コンフルエンスで、ＥＤＴＡでシャーレから細胞をはがし、ＤＭＥＭ中、懸濁状態で、５μＣｉの¹²⁵Ｉ β−アミロイド１−４０と４℃で１時間インキュベートした。インキュベーション後、１ｍＭのジスクシンイミジルスベレートを３０分間添加した。遠心分離にかけたのち、ＲＩＰＡ緩衝液（５０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．０、０．１５ＭＮａＣｌ、０．５％デオキシコール酸ナトリウム、４．５ｍＭＭｇＣｌ₂、１％Ｔｒｉｔｏｎ^TM Ｘ−１００、１ｍＭフェニルメチルスルホニルフルオリド（ＰＭＳＦ）および１μｇ／ｍｌアプロチニン）で細胞溶解し、１〜３秒間超音波処理し、それから１５μｌのプロテインＧ＋プロテインＡアガロースとｐＨ８．０に調整した１ＭＮａＣｌの存在下に、抗ｐ７５^NTR抗体（マウスモノクロナルＩｇＧ１、ＣｅｄａｒｌａｎｅＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓＬｔｄ．，オンタリオ、カナダ）または対照としてのマウスＩｇＧで、４０℃、１６時間免疫沈降させた。２０ｍＭＴｒｉｓ− ＨＣｌ、ｐＨ８．０、１ＭＮａＣｌ、５mＭ MgＣｌ₂、0．２％Ｔｒｉｔｏｎ^TM Ｘ−１００および１ｍＭＰＭＳＦで数回洗ったのち、免疫沈降物を８％ＰＡＧＥで分離し、オートラジオグラフィに供した。抗ｐ７５^NTR抗体で免疫沈降させた溶解液にのみ分子量が〜０ｋＤのバンドが現れ、無関係なマウスＩｇＧで免疫沈降させた溶解液には存在しなかった。ｐ７５^NTR−ＮＩＨ３Ｔ３細胞を結合培地（ＤＭＥＭ、１０ｍＭＨＥＰＥＳ、０．１ｍｇ／ｍｌチトクロームＣ、０．０１％Ｔｗｅｅｎ^TM ８０、１ｍｇ／ｍｌ）中、¹²⁵Ｉ β−アミロイド１−４０および各種濃度（０〜１００ｎｇ／ｍｌＢＳＡ）中、４０℃で２時間インキュベートした。ＰＢＳ中でリンスした後、細胞を１ＮＮａＯＨに溶解し、細胞溶解物から等量の蛋白質のγ線をカウントした。ＮＧＦは、濃度に依存して¹²⁵Ｉ β−アミロイドの結合を阻害し、ＮＧＦの濃度１００ｎｇ／ｍｌにおいて、最大３８％の阻害が認められた。そして、統計的に匹敵する結合は２５ｎｇ／ｍｌの濃度で観察された。実施例６：環状ペプチドは、ｐ７５^NTRへのβ−アミロイドの結合を競合的に阻害するｐ７５^NTR３Ｔ３細胞、０．５μＣｉ ¹²⁵Ｉ β−アミロイド１−４０および各種濃度（０〜４００ｎＭ）の環状ペプチドＣＶＧＳＮＫＧＡＩＣ（配列番号：４）を懸濁状態で４時間、４℃でインキュベートした。１９．ｐ７５神経成長因子受容体と結合して、β−アミロイド蛋白質またはペプチドのｐ７５神経成長因子受容体への結合を阻害する、アミノ酸配列リジン−グリシン−アラニンを含有する、アルツハイマー病の治療などの治療法における使用のためのペプチド。２０．個体においてアルツハイマー病を治療する薬剤の製造のための、中枢神経系ニューロン細胞上で発現されるｐ７５神経成長因子受容体に結合する、アミノ酸配列リジン−グリシン−アラニンまたはリジン−グリシン−リジンを含有するペプチドの使用。２１．中枢神経系ニューロン細胞上で発現されるｐ７５神経成長因子受容体に結合する、アミノ酸配列リジン−グリシン−アラニンまたはリジン−グリシン−リジンを含有するペプチドの、ニューロン細胞のβ−アミロイド蛋白質が介在するアポトーシスの危険性を軽減する薬剤の製造のための使用。２２．ｐ７５神経成長因子受容体と結合する、アミノ酸配列リジン−グリシン− アラニンまたはリジン−グリシン−リジンを含有する、アルツハイマー病の治療などの治療法における使用のためのペプチド。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ｃ１２Ｑ 1/68 Ｇ０１Ｎ 33/53 ＤＧ０１Ｎ 33/53 33/68 33/68 Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ (72)発明者ヤール，ミーナアメリカ合衆国マサチューセッツ 02067 シャロン，ランターンレーン 53

Claims

【特許請求の範囲】１．下記工程：ａ）個体から得られるｐ７５神経成長因子受容体を発現する表皮メラニン細胞を培養して成長させる工程、ｂ）β−アミロイド蛋白質またはペプチドがｐ７５神経成長因子受容体を活性化するのに十分な濃度で、工程ａ）のメラニン細胞培養物中にβ−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドを導入する工程、ｃ）ｐ７５神経成長因子受容体がβ−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドにより活性化されるかどうかを測定する工程；およびｄ）工程ｂ）で培養されたメラニン細胞のｐ７５神経成長因子受容体の活性化と、β−アミロイド蛋白質またはペプチドの存在下で同様に培養された対照メラニン細胞のｐ７５神経成長因子受容体の活性化とを比較する工程、ここで対照メラニン細胞中のｐ７５神経成長因子受容体の活性化より大きな、工程ｂ）のメラニン細胞のｐ７５神経成長因子受容体の活性化は、個体がアルツハイマー病を発病する危険があるという指標である、を含む、β−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドのｐ７５神経成長因子受容体の活性化と関連するアルツハイマー病を発病する個体の危険性の評価方法。２．ｐ７５神経成長因子受容体が活性化されるかどうかの測定が、メラニン細胞の細胞収率を測定するアッセイ、Ｂａｘ蛋白質発現の誘導を測定するアッセイ、メラニン細胞アポトーシスの開始を測定するアッセイまたはメラニン細胞培養物中のプラーク様構造の存在を測定するアッセイからなる群より選ばれるアッセイ法をさらに含む、請求項１記載の方法。３．メラニン細胞アポトーシスの開始を測定するアッセイが、ヨード化プロピジウム（ｐｒｏｐｉｄｕｉｍｉｏｄｉｎｅ）の核断片への取り込みの測定、ＴＵＮＥＬ反応または断片化ＤＮＡの確認からなる群より選ばれるアッセイである、請求項２記載の方法。４．β−アミロイドペプチドが、β−アミロイド１−４０ペプチド；β−アミロイド１−４２ペプチド；β−アミロイド２５−３６ペプチドまたはβ−アミロイド２８−３０ペプチドからなる群より選ばれるペプチドである、請求項１記載の方法。５．β−アミロイド蛋白質が、β−アミロイド前駆体蛋白質である、請求項１記載の方法。６．工程ｂ）におけるβ−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの濃度が約１μＭ〜約１００μＭである、請求項１記載の方法。７．工程ａ）において、メラニン細胞の一連の複数の培養物が維持され；工程ｂ）において、一連の各培養物が約０μＭ〜約１００μＭの範囲の漸増濃度のβ− アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドを受け取るように、β−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドを各培養物に添加し、ｃ）工程において、ｐ７５神経成長因子受容体の活性化を測定して、添加されたβ−アミロイド蛋白質ペプチドの濃度と相関させる、請求項１記載の方法。８．下記工程：ａ）メラニン細胞培養物を維持するのに好適な条件下で、個体から得られるｐ７５神経成長因子受容体を発現する表皮メラニン細胞を培養し、それにより試験培養物を作製する工程、およびｐ７５神経成長因子受容体を発現する表皮メラニン細胞の対照細胞系を培養し、それにより対照培養物を作製する工程、ｂ）試験培養物および対照培養物により産生されたβ−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイド前駆体蛋白質の量を測定する工程、ならびにｃ）産生したβ−アミロイド前駆体蛋白質またはβ−アミロイド蛋白質の量を比較する工程、ここで、対照培養物におけるβ−アミロイド前駆体蛋白質またはペプチドの産生より大きな試験培養物中のβ−アミロイド前駆体蛋白質または蛋白質の産生が、個体がアルツハイマー病の危険性があることの指標である、を含む、ｐ７５神経成長因子受容体のβ−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの活性化と関連するアルツハイマー病を発病する個体の危険性の評価方法。９．β−アミロイド前駆体蛋白質またはβ−アミロイド蛋白質の産生がノーザンブロット分析により測定され、メラニン細胞中に発現されるβ−アミロイド前駆体蛋白質ｍＲＮＡまたはβ−アミロイド蛋白質ｍＲＮＡの量を測定する、請求項８記載の方法。１０．β−アミロイド前駆体蛋白質またはβ−アミロイド蛋白質の産生が、β− アミロイド前駆体蛋白質またはβ−アミロイド蛋白質に対して特異的な抗体を用いるウエスタンブロット分析により測定される、請求項８記載の方法。１１．工程ａ）の後、培養物がＵＶ照射にさらされる、請求項８記載の方法。１２．下記工程：ａ）個体から得られた表皮メラニン細胞を培養する工程、ｂ）培養されたメラニン細胞の表面上で発現されるｐ７５神経成長因子およびｐ１４０チロシンキナーゼＡ受容体の量を測定する工程、ならびにｃ）発現されたｐ１４０チロシンキナーゼＡの量と比較して発現されたｐ７５神経成長因子の量の割合を測定する工程、を含む、ｐ７５神経成長因子受容体のβ−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの活性化に関連するアルツハイマー病を発病する個体の危険性の評価方法。１３．β−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの、中枢神経系ニューロン細胞上で発現されるｐ７５神経成長因子受容体への結合を阻害する工程を含み、個体にアミノ酸配列リジン−グリシン−アラニンを含有するペプチドを投与し、それによりペプチドがｐ７５神経成長因子受容体に結合してβ−アミロイド蛋白質またはペプチドのｐ７５神経成長因子受容体への結合を阻害する工程を含む、個体におけるアルツハイマー病の治療方法。１４．ペプチドが配列番号４である、請求項１３記載の方法。１５．β−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの、中枢神経系ニューロン細胞上で発現されるｐ７５神経成長因子受容体への結合を阻害する工程を含み、脊椎動物にアミノ酸配列リジン−グリシン−アラニンを含有するペプチドを投与し、それによりペプチドがｐ７５神経成長因子受容体に結合して、β−アミロイド蛋白質またはペプチドのｐ７５神経成長因子受容体への結合を阻害する工程を含む、ニューロン細胞のβ−アミロイド蛋白質が介在するアポトーシスの危険性を軽減する方法。１６．ペプチドが配列番号４である、請求項１５記載の方法。１７．個体においてアルツハイマー病を治療する薬剤の製造のための、ｐ７５神経成長因子受容体に結合して、β−アミロイド蛋白質またはβ−アミロイドペプチドの中枢神経系ニューロン細胞上で発現されるｐ７５神経成長因子受容体への結合を阻害する、アミノ酸配列リジン−グリシン−アラニンを含有するペプチドの使用。１８．ｐ７５神経成長因子受容体に結合して、β−アミロイド蛋白質またはペプチドの中枢神経系ニューロン細胞上で発現されるｐ７５神経成長因子受容体への結合を阻害する、アミノ酸配列リジン−グリシン−アラニンを含有するペプチドの、ニューロン細胞のβ−アミロイド蛋白質が介在するアポトーシスの危険性を軽減する薬剤の製造のための使用。１９．ｐ７５神経成長因子受容体と結合して、β−アミロイド蛋白質またはペプチドのｐ７５神経成長因子受容体への結合を阻害する、アミノ酸配列リジン−グリシン−アラニンを含有する、アルツハイマー病の治療などの治療法における使用のためのペプチド。