JP2016204289A - 抗がん剤 - Google Patents

Abstract

【課題】本発明は、副作用が全くなく、安全にがんの治療や予防に使用できる抗がん剤を提供することを課題とする。
【解決手段】下記式（１）で表されるフォスファチジルコリン及び下記式（２）で表されるフォスファチジルコリンからなる群より選択される１種以上を有効成分とすることを特徴とする、抗がん剤。
［化１］

【選択図】なし

Description

本発明は、副作用が全くなく、安全にがんの治療や予防に使用できる抗がん剤に関する。

胃がんは、日本において死亡率が肺がんについで２番目に高く、年間１１万人（男性１位、女性３位）が罹患している。胃がんに対する従来の抗がん剤としては、ＴＳ−１（テガフール・ギメラシル・オテラシルカリウム）、ＣＤＤＰ（シスプラチン）、ＣＰＴ−１１（イリノテカン）、ＴＸＬ（パクリタキセル）等がある。しかし、これら化学療法では、骨髄細胞抑制によって白血球数や血小板の減少や、貧血が引き起こされ、さらに消化器系の副作用として悪心や嘔吐、下痢、口内炎等が生じる。これらの副作用に加えて、薬剤によっては高頻度に脱毛をきたすこともあり、どれも患者にはとって優しいものではない。その他、分子標的薬として、胃がんではハーセプチンが最近使用されているが、ハーセプチンについても、悪寒、頭痛、発熱、悪心、下痢の他、重度の場合は心不全、アナフィラキシー様症状、肺障害の重篤な副作用（気管支痙攣、重度の血圧低下、急性呼吸促迫症候群等）が報告されている。従って、究極的には抗がん作用を保持し、かつ副作用の全くない抗がん剤の開発が切望される。

一方で、動物の生体内に多く存在し、細胞膜の重要な構成成分であるリン脂質として、フォスファチジルコリン（ＰＣ）がある。組織内のＰＣ量と、細胞増殖やがん化の関係について、幾つか報告されている。例えば、非特許文献１には、甲状腺乳頭がん患者より摘出した甲状腺について、イメージング質量顕微鏡（Ultraflex II TOF/TOF; Bruker Daltonics）を用いてＰＣの含有量を調べたところ、正常部位に比べてがん部位ではＰＣ−３４：２〔ＰＣ（１６：０／１８：２）〕が多かったことが報告されている。また、非特許文献２には、マウス胎児皮膚由来の培養細胞株ＮＩＨ３Ｔ３細胞において、ＰＣ−３６：４〔ＰＣ（１６：０／２０：４）〕がＡｋｔのＳｅｒ４７３のリン酸化を抑制し、Ａｋｔの活性化抑制及び細胞増殖抑制を引き起こすことが報告されている。

Ishikawa，et al.，PLOS ONE，2012，vol.7，e48873． Koeberle，et al.，Proceedings of the National Academy of Sciences，2013，vol.110(7)，p.2546−2551．

本発明は、副作用が全くなく、安全にがんの治療や予防に使用できる抗がん剤を提供することを目的とする。

本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、胃がん組織とその近傍の正常組織におけるＰＣ種についてｉＭＳｃｏｐｅスクリーニングを行い、特定の２種類のＰＣ種が、胃がん特異的に発現が減少していることを見出し、さらに当該２種類のＰＣ種が各種胃がん細胞株に対して抗がん活性を示すことを見出し、本発明を完成させた。

すなわち、本発明は、以下の抗がん剤を提供するものである。
［１］ 下記式（１）で表されるフォスファチジルコリン及び下記式（２）で表されるフォスファチジルコリンからなる群より選択される１種以上を有効成分とすることを特徴とする、抗がん剤。

［２］ 消化管がんの治療又は予防に用いられる、前記［１］の抗がん剤。
［３］ 胃がんの治療又は予防に用いられる、前記［１］の抗がん剤。
［４］ がん組織又はがん化が疑われる組織に直接噴霧又は塗布される、前記［１］〜［３］のいずれかの抗がん剤。
［５］ 経口投与される、前記［１］〜［３］のいずれかの抗がん剤。
［６］ 前記フォスファチジルコリンがミセル又はリポソームを形成している、前記［１］〜［５］のいずれかの抗がん剤。

本発明に係る抗がん剤は、元々生体内に存在するリン脂質であるＰＣを有効成分とする。このため、本発明に係る抗がん剤は、副作用を起こすことなく、非常に安全に、がんの治療や予防に使用することができる。

実施例１において、正常胃部位と胃がん部位のＨＥ染色像（上段）、ＰＣ−３４：２のシグナル強度画像（中段）、及びＰＣ−３６：４のシグナル強度画像（下段）である。 実施例１において、播種から１４日後の各細胞の透過光画像である。 実施例１において、ＫｒａｓＶ１２過剰発現細胞に卵黄ＰＣ、ＰＣ−３４：２、又はＰＣ−３６：４のリポソームを添加した場合のフォーカスフォーメーションアッセイの結果を示した図である。 実施例２において、卵黄ＰＣ、ＰＣ−３４：２、又はＰＣ−３６：４を添加した各細胞の細胞増殖性を示した図である。 実施例２において、卵黄ＰＣ、ＰＣ−３４：２、又はＰＣ−３６：４を添加した各細胞の細胞増殖性を示した図である。 実施例３において、卵黄ＰＣ、ＰＣ−３４：２、又はＰＣ−３６：４を添加した各細胞の細胞増殖性を示した図である。 実施例４において、卵黄ＰＣ又はＰＣ−３４：２を添加した各細胞の細胞増殖性を示した図である。 実施例５において、６０μＭの卵黄ＰＣ、ＰＣ−３４：２、又はＰＣ−３６：４を添加したＭＫＮ−７細胞、ＭＫＮ−２８細胞、及びＴＭＫ−１細胞の抗Ａｋｔ（ｐａｎ）抗体、抗ｐＴ３０８ Ａｋｔ抗体、及び抗ｐＳ４７３ Ａｋｔ抗体を用いたウェスタンブロッティングの染色像である。 実施例６において、ＴＭＫ−１細胞を移植した担がんモデルの腫瘍体積Ｖ（ｍｍ^３）を経時的に測定した結果を示した図である。 実施例６において、ＴＭＫ−１細胞を移植した担がんモデルのＰＣ接種開始から１８日目の腫瘍組織の写真図である。 実施例６において、ＴＭＫ−１細胞を移植した担がんモデルの腫瘍組織の、Ａｋｔのリン酸化状態を調べたウェスタンブロッティングの染色像である。 実施例６において、ＭＫＮ−２８細胞を移植した担がんモデルの腫瘍体積Ｖ（ｍｍ^３）を経時的に測定した結果を示した図である。 実施例６において、ＭＫＮ−２８細胞を移植した担がんモデルのＰＣ接種開始から１８日目の腫瘍組織の写真図である。 実施例７において、卵黄ＰＣ又はＰＣ−３４：２を添加した各細胞の細胞増殖性を示した図である。 参考例１において、正常胃粘膜（図中、「Ａｄｊａｃｅｎｔ ｔｉｓｓｕｅ」）と胃がん部（図中、「Ｔｕｍｏｒ」）のＬＰＣＡＴ３の発現量スコアの結果を示した図である。 参考例１において、ＬＰＣＡＴ３低発現群とＬＰＣＡＴ３高発現群の生存曲線を示した図である。 参考例２において、胃がん患者から採取された５種の病理サンプルと８種の胃がん由来培養細胞株について、ＬＰＣＡＴ３の発現量を調べたウェスタンブロッティングの染色像である。 参考例３において、ＮＩＨ３Ｔ３細胞に、ＫｒａｓＶ１２及び／又はＬＰＣＡＴ３を過剰発現させた場合のフォーカスフォーメーションアッセイの結果を示した図である。 参考例４において、ＧＦＰ−ＬＰＣＡＴ３安定発現株及びＧＦＰ安定発現株の細胞増殖性を示した図である。

本発明に係る抗がん剤は、下記式（１）で表されるＰＣ（ＰＣ−３４：２）及び下記式（２）で表されるＰＣ（ＰＣ−３６：４）からなる群より選択される１種以上を有効成分とすることを特徴とする。

ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４は、Ａｋｔの活性化抑制により増殖抑制作用を有するものである。このため、本発明に係る抗がん剤は、様々な組織のがんに対して抗がん活性を示し得るが、特に、消化管がんに対して有効であり、胃がん、十二指腸がん、大腸がん、食道がんの治療に用いられることが好ましく、胃がんの治療に用いられることが特に好ましい。

ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４は、いずれも元々生体内にあるＰＣ種であり、本発明に係る抗がん剤は、副作用なく安全に使用することができる。このため、本発明に係る抗がん剤は、がん治療のみならず、がん予防にも好適に用いられる。中でも、消化管がんの予防に用いられることが好ましく、胃がん、十二指腸がん、大腸がん、食道がんの予防に用いられることがより好ましく、胃がんの予防に用いられることが特に好ましい。

本発明に係る抗がん剤の投与経路は特に限定されるものではないが、標的となるがん組織又はがん化が疑われる組織に直接接触投与することが好ましい。ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４は、他のリン脂質と同様に、リポソーム又はミセルの状態で細胞表面に接着すると、エンドサイトーシス等により細胞内に取り込まれる。つまり、ＰＣ−３４：２及び／又はＰＣ−３６：４のリポソーム又はミセルを有効成分とすることにより、本発明に係る抗がん剤は、標的となるがん組織又はがん化が疑われる組織に直接接触させるだけで、標的組織内の細胞に導入され、抗がん作用を発揮させることができる。

例えば、胃がんの治療又は予防に用いられる場合には、本発明に係る抗がん剤は、経口投与される剤型とすることが好ましい。食後に経口摂取することにより、本発明に係る抗がん剤は胃内で直接胃がん組織に接触できる。同様に、十二指腸がんの治療又は予防に用いられる場合には、本発明に係る抗がん剤は、腸溶性製剤とすることが好ましい。

本発明に係る抗がん剤を噴霧剤とすることにより、消化管内の標的組織に直接噴霧投与することもできる。例えば、カメラで視認した消化管表面に薬剤等を噴霧又は散布することが可能な内視鏡を用いることにより、食道内視鏡検査、胃内視鏡検査、大腸内視鏡検査を行った際に、がん化している又はがん化が疑われる消化管表面に本発明に係る抗がん剤を噴霧することができる。なお、本発明に係る抗がん剤は、副作用がないため、がん化が疑われない場合であっても、予防処置として消化管全面に噴霧することも好ましい。

ＰＣ−３４：２及び／又はＰＣ−３６：４のリポソーム又はミセルは、常法により形成させることができる。本発明に係る抗がん剤は、リポソーム等を形成するために、ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４以外のリン脂質を含有していてもよい。ＰＣ−３４：２等による抗がん作用を充分に発揮させられる点から、リポソーム等を構成する成分に占めるＰＣ−３４：２及び／又はＰＣ−３６：４の割合は、１０％以上が好ましく、３０％以上がより好ましく、５０％以上がさらに好ましく、８０％以上がよりさらに好ましく、１００％が特に好ましい。

本発明に係る抗がん剤は、通常の方法によって、散剤、顆粒剤、カプセル剤、錠剤、チュアブル剤、徐放剤などの経口用固形剤、溶液剤、シロップ剤などの経口用液剤、注射剤、スプレー剤、貼付剤、軟膏剤などに製剤化することができる。本発明に係る抗がん剤としては、ＰＣ−３４：２及び／又はＰＣ−３６：４をリポソーム又はミセルの状態で包含することができるカプセル剤、経口用液剤、注射剤、スプレー剤であることが好ましい。

本発明に係る抗がん剤は、有効成分であるＰＣ−３４：２及び／又はＰＣ−３６：４に、製剤上の必要に応じて、賦形剤、結合剤、滑沢剤、崩壊剤、流動化剤、溶剤、溶解補助剤、緩衝剤、懸濁化剤、乳化剤、等張化剤、安定化剤、防腐剤、抗酸化剤、矯味矯臭剤、着色剤等を配合して製剤化される。

賦形剤としては、乳糖、ブドウ糖、Ｄ−マンニトールなどの糖類、デンプン、結晶セルロースなどのセルロース類、エリスリトール、ソルビトール、キシリトールなどの糖アルコール類、リン酸二カルシウム、炭酸カルシウム、カオリンなどが挙げられる。結合剤としては、α化デンプン、ゼラチン、アラビアゴム、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、結晶セルロース、Ｄ−マンニトール、トレハロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコールなどが挙げられる。滑沢剤としては、ステアリン酸、ステアリン酸カルシウム、タルク、ショ糖脂肪酸エステル、ポリエチレングリコールなどが挙げられる。崩壊剤としては、クロスポビドン（架橋ポリビニルピロリドン）、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース、デンプン、アルギン酸、アルギン酸ナトリウムなどが挙げられる。流動化剤としては、ケイ酸、無水ケイ酸、ケイ酸アルミニウム、ケイ酸カルシウム、メタケイ酸アルミン酸マグネシウム化合物、酸化アルミニウム、水酸化アルミニウム、酸化マグネシウム、水酸化マグネシウムなどが挙げられる。溶剤としては、精製水、生理的食塩水などが挙げられる。溶解補助剤としては、デキストラン、ポリビニルピロリドン、安息香酸ナトリウム、エチレンジアミン、サリチル酸アミド、ニコチン酸アミド、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油誘導体などが挙げられる。緩衝剤としては、例えば、クエン酸ナトリウム水和物、酢酸ナトリウム水和物、炭酸水素ナトリウム、トロメタモール、ホウ酸、ホウ砂、リン酸水素ナトリウム水和物、リン酸二水素ナトリウムなどが挙げられる。懸濁化剤あるいは乳化剤としては、ラウリル硫酸ナトリウム、アラビアゴム、ゼラチン、レシチン、モノステアリン酸グリセリン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシメチルセルロースナトリウムなどのセルロース類、ポリソルベート類、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油などが挙げられる。等張化剤としては、乳糖、ブドウ糖、Ｄ−マンニトールなどの糖類、塩化ナトリウム、塩化カリウム、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、尿素などが挙げられる。安定化剤としては、ポリエチレングリコール、デキストラン硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウムなどが挙げられる。防腐剤としては、パラオキシ安息香酸エステル類、クロロブタノール、ベンジルアルコール、フェネチルアルコール、クロロクレゾール、デヒドロ酢酸、ソルビン酸などが挙げられる。抗酸化剤としては、亜硫酸塩、アスコルビン酸などが挙げられる。矯味矯臭剤としては、医薬及び食品分野において通常に使用される甘味料、香料などが挙げられる。着色剤としては、医薬及び食品分野において通常に使用される着色料が挙げられる。

本発明に係る抗がん剤は、そのまま使用してもよく、その他の成分も含む医薬用組成物として使用することもできる。当該医薬用組成物に含まれるその他の成分としては、例えば、前記の賦形剤、結合剤、滑沢剤、崩壊剤、流動化剤、溶剤、溶解補助剤、緩衝剤、懸濁化剤、乳化剤、等張化剤、安定化剤、防腐剤、抗酸化剤、矯味矯臭剤、着色剤等が挙げられる。また、当該医薬用組成物は、本発明に係る抗がん剤以外の他の有効成分を含有していてもよい。例えば、ＰＣ−３４：２及び／又はＰＣ−３６：４で形成したリポソームが、他の抗がん剤を内包するように構成されていてもよい。

本発明に係る抗がん剤は、哺乳動物に投与されるものであることが好ましく、ヒトや、マウス、ラット、ウサギ、モルモット、ハムスター、サル、ヒツジ、ウマ、ウシ、ブタ、ロバ、イヌ、ネコ等の家畜や実験動物に投与されるものであることがより好ましく、ヒトに投与されるものであることがさらに好ましい。

次に実施例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。

＜細胞培養＞
細胞培養株ＮＩＨ３Ｔ３細胞、ＴＭＫ−１細胞、ＭＫＮ−７細胞、ＭＫＮ−４５細胞、ＡＧＳ細胞、ＭＫＮ−１細胞、ＭＫＮ−２８細胞、ＭＫＮ−７４細胞、及びＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞は、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎから購入したものを用いた。
これらの細胞の細胞培養は、１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）と、１００Ｕ／ｍＬペニシリン（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）と１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を含有するＲＰＭＩ１６４０培地（ＳＩＧＭＡ社製）中で行った。

＜ウェスタンブロッティング＞
以下の実施例において、ウェスタンブロッティングは次のようにして行った。
細胞又は組織をＳＤＳ（ドデシル硫酸ナトリウム）サンプルバッファー（６２．５ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ６．８，２％ ＳＤＳ，１０％ グリセロール，５％ ２−メルカプトエタノール）で溶解しライゼートを調製した。１０μｇのライゼートを９５℃で３分間加熱した後、８％ ＳＤＳポリアクリルアミド電気泳動を行った。電気泳動後のタンパク質をＰＶＤＦ（ポリフッ化ビニリデン）メンブレン（Ａｍｅｒｓｈａｍ ＨｙｂｏｎｄＴＭ−Ｐ；ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製）にトランスファーした後、１％スキムミルク含有ＴＢＳ（Ｔｒｉｓ−ｂｕｆｆｅｒｄ ｓａｌｉｎｅ）−Ｔ（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ７．４, ０．０１％ Ｔｗｅｅｎ ２０）で１時間ブロッキングした。
ブロッキング後のメンブレンに対して、一次抗体を４℃で一晩反応させた後、ＴＢＳ−Ｔで当該メンブレンを３回洗浄した後、さらに二次抗体と室温で１時間反応させた。シグナルは、Ｐｉｅｒｃｅ ｗｅｓｔｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ Ｐｌｕｓ（Ｔｈｅｒｍｏ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ社製）とＡｍｅｒｓｈａｍ Ｈｙｐｅｒｆｉｌｍ（登録商標）ＥＣＬ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製）を使用して検出した。

使用した一次抗体は、抗Ａｋｔ（ｐａｎ）抗体（１：１０００；Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ社製）、 抗ｐＴ３０８ Ａｋｔ抗体（１：１０００；Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ社製）、抗ｐＳ４７３ Ａｋｔ抗体（１：１０００；Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ社製）、抗Ｒａｓ抗体（１：２００００；Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）、抗β−ｔｕｂｕｌｉｎ抗体（１：２０００；ＳＩＧＭＡ社製）、抗ＬＰＣＡＴ３抗体（１：２００００；Ｃｌｏｕｄ−Ｃｌｏｎｅ社製）、である。また、使用した二次抗体は、抗マウスＩｇＧ ＨＲＰ（ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ）標識抗体又は抗ラビットＩｇＧ ＨＲＰ標識抗体（いずれもＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製）である。

［実施例１］
（１）ＰＣ種のスクリーニング
副作用の全くない抗がん剤の発見を目指すため、胃がん特異的に発現が減少しているＰＣ種のスクリーニングをｉＭＳｃｏｐｅにて行った。ｉＭＳｃｏｐｅは、光学顕微鏡と質量分析計を融合した分析計測機器である。

＜病理サンプル＞
全ての患者サンプルは浜松医科大学病院のものを使用した。手術検体から摘出した胃がん部と隣接する正常胃粘膜部分は、摘出後液体窒素で凍結し、−８０℃で保存した。本研究は、浜松医科大学倫理委員会の承認を得て行われた。

＜イメージングマススペクトロメトリ用サンプル調製＞
凍結組織（病理サンプル）を３０分間−２０℃に静置した後、クリオスタット（ＣＭ１９５０；Ｌｅｉｃａ Ｍｉｃｒｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）を使用して８μｍ厚の組織切片を作製した。組織切片は、ヘマトキシリン・エオジン染色（ＨＥ染色）にて胃がん部と正常胃粘膜を同定した。隣接切片を、ＩＴＯ（ｉｎｄｉｕｍ−ｔｉｎ−ｏｘｉｄｅ）コートスライドグラス（Ｂｒｕｋｅｒ Ｄａｌｔｏｎｉｃｓ社製）に載せて溶かし、接着させた。その後、作製した切片をゆっくりと室温にし、２，５−ジヒドロキシ安息香酸（ＤＨＢ；ＳＩＧＭＡ社製）を均一に蒸着させた。

＜イメージングマススペクトロメトリとそのデータ解析＞
全てのイメージングマススペクトロメトリは、四重極型イオントラップを装備した大気圧Ｍａｔｒｉｘ Ａｓｓｉｓｔｅｄ Ｌａｓｅｒ Ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ／Ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ（ＭＡＬＤＩ）であるｉＭＳｃｏｐｅ（島津製作所製）で行った。マススペクトルの取得はｉＭＳｃｏｐｅのソフトウェアで行った。ソフトウェアにより目的とするサンプルの解析領域、走査するレーザーの間隔、レーザー径、走査する各点に照射するレーザーの数、解析対照とするｍ／ｚの範囲を設定した。各設定はレーザー照射が７．５μｍ間隔、レーザー径が最小、ｍ／ｚが５００−１２００、レーザーショット数が２００／ｐｉｘｅｌで１０００Ｈｚであった。得られたマススペクトルデータは、ＣｌｉｎＰｒｏＴｏｏｌｓ ２．２（Ｂｒｕｋｅｒ Ｄａｌｔｏｎｉｃｓ社製）によって、ベースラインの差し引き、スムージング、ｔｏｔａｌ ｉｏｎ ｃｕｒｒｅｎｔでのノーマライズ、ピークピキングを行った。その際のｔｏｔａｌ ｉｏｎ ｃｕｒｒｅｎｔは、スペクトル中の全ピークの和とした。スペクトル処理のパラメーターは、ベースライン（Ｔｏｐ Ｈａｔ ａｌｇｏｒｉｔｈｍ, ｍｉｎｉｍａｌ ｂａｓｅｌｉｎｅ ｗｉｄｔｈ ｓｅｔ １０％）、解像度（５００ｐｐｍ）、スムージング（Ｓａｖｉｔｚｋｙ Ｇｏｌａｙ, ５ｃｙｃｌｅ, ２ｍ／ｚ幅）とした。ピークピッキングは、シグナル／ノイズ閾値５で行った。胃がん部位と隣接する正常胃粘膜部分（正常胃部位）のシグナル強度は、ＣｌｉｎＰｒｏｔ Ｐｅａｋ Ｓｔａｔｉｓｔｉｃ Ｃａｌｃｕｌａｔｉｏｎで計算した。多変量統計解析は、ｓｕｐｅｒｖｉｓｅｄ ｎｅｕｒａｌ ｎｅｔｗｏｒｋアルゴリズムで行った。その際の有意差の検定は、Ｗｅｌｃｈ’ｓ ｔ−ｔｅｓｔを使用した。

各ＰＣ種の胃がん部位と正常胃部位のシグナル強度及び正常胃部位に対する胃がん部位の強度比（［胃がん部位］／［正常胃部位］）を表１に示す。この結果、ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４が、胃がん組織において優位に発現減少している分子として同定された。図１に、正常胃部位と胃がん部位のＨＥ染色像（上段）、ＰＣ−３４：２のシグナル強度画像（中段）、及びＰＣ−３６：４のシグナル強度画像（下段）を示す。

（２） 抗がん活性の確認
ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４の抗がん活性を、ＫｒａｓＶ１２を過剰発現させたＮＩＨ３Ｔ３細胞（ＫｒａｓＶ１２過剰発現細胞）を用いて調べた。

＜ＫｒａｓＶ１２発現ベクターの作製＞
ｐｃＤＮＡ３．１−ＫｒａｓＶ１２を鋳型にして、ＰｒｉｍｅＳＴＡＲ ＨＳ ＤＮＡ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｔａｋａｒａ社製）とフォワードプライマー（５’−ＣＴＣＣＧＣＧＧＡＴＣＣＡＡＧＣＴＴＧＣＴＧＡＡＡ−３’）（配列番号１）とリバースプライマー（５’−ＡＧＧＧＧＣＧＧＡＴＣＣＴＣＡＴＴＡＣＡＴＡＡ−３’）（配列番号２）を用いてＰＣＲを行い、ｃＤＮＡを増幅した。増幅したｃＤＮＡをｐＱＣＸＩＮ（ＢＤ Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）のＢａｍＨＩサイトにクローニングし、ＫｒａｓＶ１２発現用ベクター（ｐＱＣＸＩＮ−ＫｒａｓＶ１２）を作製した。

＜リン脂質の調製＞
各種リン脂質（卵黄ＰＣ、ＰＣ−３４：２、及びＰＣ−３６：４）はＡｖａｎｔｉ Ｐｏｌａｒ Ｌｉｐｉｄｓから購入した。各種リン脂質は、クロロホルムに溶解し、暗所下、−８０℃で保存した。各種リン脂質のリポソームは、４０℃で２０分間超音波処理することによって形成した。形成したリポソームは、１０％又は５％ＦＢＳ含有ＲＰＭＩ１６４０培地に添加して懸濁した後、細胞へ加えた。

＜フォーカスフォーメーションアッセイ＞
まず、ＫｒａｓＶ１２過剰発現細胞を準備した。具体的には、細胞密度が１．３×１０^５／３．５ｃｍディッシュとなるように播いてから２４時間後のＮＩＨ３Ｔ３細胞に、２５０ｎｇのｐＱＣＸＩＮ−Ｋ−ｒａｓＶ１２ベクターを、ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いてトランスフェクションした。トランスフェクションから２４時間後、トリプシンで細胞を剥がし、１枚の３．５ｃｍディッシュから回収した細胞を４枚の１０ｃｍディッシュに播いた。

この４枚の１０ｃｍディッシュに播種された細胞に、リポソーム化した各種リン脂質（終濃度６０μＭ）を含む又は含まない５％ＦＢＳ含有ＲＰＭＩ１６４０培地で培養し、４日毎に培地を交換した。播種から１４日後に、各ディッシュに形成されたフォーカス数を計測した。

播種から１４日後の各ディッシュ中の細胞の透過光画像を図２に、各ディッシュに形成されたフォーカス数の計測結果を図３に、それぞれ示す。また、各ディッシュの細胞のＲａｓ及びβ−チューブリンの発現量をウェスタンブロッティングにより確認した。ウェスタンブロッティングの結果も図３に示す。この結果、卵黄ＰＣリポソームを培地に添加したＫｒａｓＶ１２過剰発現細胞では、リポソーム無添加のものと同程度のフォーカスが形成されていた。これに対して、ＰＣ−３４：２又はＰＣ−３６：４のリポソームを培地に添加したＫｒａｓＶ１２過剰発現細胞では、形成されたフォーカス数が有意に減少しており、ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４が、ＫｒａｓＶ１２過剰発現細胞の増殖を抑制し、抗がん活性を示すことがわかった。

［実施例２］
胃がん由来の８種の培養細胞株（ＴＭＫ−１細胞、ＭＫＮ−７細胞、ＭＫＮ−４５細胞、ＡＧＳ細胞、ＭＫＮ−１細胞、ＭＫＮ−２８細胞、ＭＫＮ−７４細胞、及びＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞）に対して、卵黄ＰＣ、ＰＣ−３４：２、又はＰＣ−３６：４のリポソームを導入し、細胞増殖に対する影響を調べた。細胞増殖試験は、Ｃｅｌｌ Ｃｏｕｎｔｉｎｇ Ｋｉｔ（Ｄｏｊｉｎｄｏ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）を使用して行った。
具体的には、９６ウェルプレートに３×１０^３個／ウェルの細胞密度になるように細胞を播き、リポソーム化した各種ＰＣを終濃度６０μＭとなるように含有する培地で培養した。リポソーム処理後から０、２４、又は４８時間後に、１０μＬのＷＳＴ−８を加え、３７℃で２時間静置した。静置後の各ウェルについて、マイクロプレートリーダー（Ｓｙｎｅｒｇｙ ＨＴ ｗｉｔｈ ＫＣ４；セントラル科学貿易社製）を用いて４５０ｎｍの吸光度を測定した。

測定結果を図４〜５に示す。この結果、全ての培養細胞株において、ＰＣ処理後４８時間後には、卵黄ＰＣを添加した細胞よりも、ＰＣ−３４：２、又はＰＣ−３６：４を添加した細胞のほうが、４５０ｎｍの吸光度が小さく、ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４が、胃がん由来の培養細胞株に対して広く抗がん活性を有することが確認された。

［実施例３］
非がん培養細胞株であるＮＩＨ３Ｔ３細胞と、胃がん由来の培養細胞株ＭＫＮ−２８細胞に対して、卵黄ＰＣ、ＰＣ−３４：２、又はＰＣ−３６：４のリポソームを濃度を振って導入し、細胞増殖に対する影響を調べた。なお、ＭＫＮ−２８細胞は、実施例２において、ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４のがん細胞に対する増殖抑制作用が比較的強かった細胞株である。

具体的には、細胞に添加するリポソーム濃度を、１、１０、５０、１００、５００、又は２０００ｎＭとし、ＷＳＴ−８の培地への添加をリポソーム処理後４８時間経過時点のみとした以外は、実施例２と同様にして細胞増殖試験を行った。ＰＣ処理後４８時間後の各ウェルの４５０ｎｍの吸光度の測定結果を図６に示す。この結果、ＮＩＨ３Ｔ３細胞では、リポソームの種類による増殖性の変化は観察されなかった。これに対して、ＭＫＮ−２８細胞では、リポソーム濃度が１００ｎＭ以上において、ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４により細胞増殖が抑制されており、この細胞増殖抑制作用はリポソーム濃度依存的に高くなっていた。

［実施例４］
実施例２において、ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４のがん細胞に対する増殖抑制作用が比較的強かったＭＫＮ−７細胞と、ＰＣ−３４：２等のがん細胞に対する増殖抑制作用が比較的弱かったＴＭＫ−１細胞に対して、卵黄ＰＣ又はＰＣ−３４：２のリポソームを濃度を振って導入し、細胞増殖に対する影響を調べた。

具体的には、細胞に添加するリポソーム濃度を、１、１０、５０、１００、５００、又は２０００ｎＭとし、ＷＳＴ−８の培地への添加をリポソーム処理後４８時間経過時点のみとした以外は、実施例２と同様にして細胞増殖試験を行った。ＰＣ処理後４８時間後の各ウェルの４５０ｎｍの吸光度の測定結果を図７に示す。この結果、ＴＭＫ−１細胞及びＭＫＮ−７細胞の両方において、ＰＣ−３４：２による細胞増殖抑制作用が観察された。

［実施例５］
ＭＫＮ−７細胞、ＭＫＮ−２８細胞、及びＴＭＫ−１細胞に対して、実施例３と同様にして、卵黄ＰＣ、ＰＣ−３４：２、又はＰＣ−３６：４のリポソームを６０μＭ添加した細胞について、ＰＣ処理後４８時間経過後のＡｋｔのリン酸化状態を、抗Ａｋｔ（ｐａｎ）抗体、抗ｐＴ３０８ Ａｋｔ抗体、及び抗ｐＳ４７３ Ａｋｔ抗体を用いたウェスタンブロッティングにより調べた。

ウェスタンブロッティングにより各抗体で染色されたバンドを図８に示す。この結果、いずれの細胞においても、ＰＣ−３４：２又はＰＣ−３６：４を導入した細胞では、卵黄ＰＣを導入した細胞に比べて、ｐＴ３０８ Ａｋｔのバンドが薄くなっており、ＡｋｔのＴ３０８のリン酸化が抑制されていること、すなわち、ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４がＡｋｔのリン酸化を標的としていること、が確認された。

［実施例６］
ヌードマウスに、胃がん細胞株ＭＫＮ−２８細胞及びＴＭＫ−１細胞を移植した担がんモデルに卵黄ＰＣ、ＰＣ−３４：２、又はＰＣ−３６：４のリポソームを投与し、腫瘍組織の大きさの経時的変化を測定し、各ＰＣの抗がん活性を調べた。

具体的には、ＰＢＳ（リン酸生理食塩水）（−）に懸濁した胃がん細胞を５週齢のメスヌードマウス（ＢＡＬＢ／ｃ Ｊｃｌ ｎｕ／ｎｕ；日本クレア社から購入）の皮下に移植した。ＭＫＮ−２８細胞の移植用懸濁液は、１×１０^６／１００μＬに調製し、ＴＭＫ−１細胞の移植用懸濁液は、５×１０^５／１００μＬに調製した。その後、経時的に腫瘍の長径と短径を計測した。腫瘍体積Ｖ（ｍｍ^３）は、下記式により求めた。式中、ａは腫瘍の長径（ｍｍ）、ｂは腫瘍の短径（ｍｍ）である。

Ｖ＝ ａ × ｂ^２ × ０．５

腫瘍体積が１００ｍｍ^３前後に達してから、各種リン脂質の接種を開始した。リン脂質の接種は、１回の接種量がマウスの体重当たり１０ｍｇ／ｋｇとなるように、３日に１回、尾静脈注射にて接種させた。なお、各リン脂質は、溶媒（０．５％ 生理食塩水、０．５％エタノール）に溶解させた後、３７℃で均一になるまで超音波処理し、リポソームを形成させた状態でマウスに接種させた。実験終了後、腫瘍組織はウェスタンブロッティング用に−８０℃保存した。全てのマウスは、浜松医科大学附属動物実験施設で維持し、餌と水をａｄ ｌｉｂｉｔｕｍで与え、気温を２３±２℃、照明（１２時間の明暗サイクル）にて飼育した。

ＴＭＫ−１細胞を移植した担がんモデルについて、腫瘍体積の測定結果を図９に示し、ＰＣ接種開始から２７日目の腫瘍組織の写真を図１０に示し、当該腫瘍組織中のＡｋｔのリン酸化状態を、抗Ａｋｔ（ｐａｎ）抗体、抗ｐＴ３０８ Ａｋｔ抗体、及び抗ｐＳ４７３ Ａｋｔ抗体を用いたウェスタンブロッティングにより調べた結果を図１１に示す。同様に、ＭＫＮ−２８細胞を移植した担がんモデルについて、腫瘍体積の測定結果を図１２に示し、ＰＣ接種開始から１８日目の腫瘍組織の写真を図１３に示す。この結果、ＰＣ−３４：２又はＰＣ−３６：４を接種した担がんモデルでは、卵黄ＰＣを接種した担がんモデルよりも有意に腫瘍組織が小さく、胃がん細胞の増殖が抑制されていることが確認された。また、ＰＣ−３４：２又はＰＣ−３６：４を接種した担がんモデル中の腫瘍組織では、ＡｋｔのＴ３０８のリン酸化が抑制されていることも確認された。さらに、全ての担がんモデルにおいて、全く副作用は見られなかった。これらの結果から、ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４は、ｉｎ ｖｉｖｏにおいても、副作用を示すことなく、有意な抗がん活性を持つことがわかった。

［実施例７］
食道がん由来の培養細胞株ＫＹＳＥ１５０細胞と２種の大腸がん由来の培養細胞株ＨＣＴ１１６細胞及びＤＬＤ−１細胞に対して、卵黄ＰＣ又はＰＣ−３４：２のリポソームを導入し、細胞増殖に対する影響を調べた。細胞増殖試験は、実施例２と同様にして行った。

各ウェルの４５０ｎｍの吸光度を測定した結果を図１４に示す。この結果、全ての培養細胞株において、ＰＣ処理後４８時間後には、卵黄ＰＣを添加した細胞よりも、ＰＣ−３４：２を添加した細胞のほうが、４５０ｎｍの吸光度が小さく、ＰＣ−３４：２が、胃がん由来の培養細胞株のみならず、食道がん由来の培養細胞株や大腸がん由来の培養細胞株に対しても抗がん活性を有することが確認された。

［参考例１］
ＰＣ−３４：２及びＰＣ−３６：４は、リゾリン脂質アシル基転移酵素の１種であるＬＰＣＡＴ３（ｌｙｓｏｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ ａｃｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ ３）により合成される。そこで、胃がん患者から採取されたＦＦＰＥ（ホルマリン固定パラフィン包埋）組織について、ＬＰＣＡＴ３発現量を調べた。

ＦＦＰＥ組織のＬＰＣＡＴ３発現量は、免疫組織染色の染色強度から調べた。具体的には、まず、ＦＦＰＥ組織からＴＭＡ（組織マイクロアレイ）を３μｍ厚、直径２ｍｍの小切片として作製した。ＴＭＡは、７１４個（３５７個の正常胃粘膜と３５７個の胃がん部）の組織切片を含んでいた。脱パラフィンした切片をマイクロ波で抗原賦活化し、一次抗体で処理した。一次抗体として抗ＬＰＣＡＴ３マウスモノクローナル抗体（１：２００；Ｃｌｏｕｄ−Ｃｌｏｎｅ社製）を使用した。一次抗体後の切片は、Ｈｉｓｔｏｆｉｎｅ Ｓｉｍｐｌｅ Ｓｔａｉｎ ＭＡＸ−ＰＯ（Ｎｉｃｈｉｒｅｉ社製）で染色した。胃がん及び正常胃粘膜におけるＬＰＣＡＴ３の発現量は、染色強度から４段階にスコア化した（青色はスコア０、青−茶色はスコア１、茶色はスコア２、明るい茶色はスコア３）。

正常胃粘膜（図中、「Ａｄｊａｃｅｎｔ ｔｉｓｓｕｅ」）と胃がん部（図中、「Ｔｕｍｏｒ」）のＬＰＣＡＴ３の発現量スコアの結果を図１５に示す。この結果、胃がん部におけるＬＰＣＡＴ３の発現量は、正常胃粘膜よりも明らかに低くなっていた。

また、胃がん患者のうち、ＬＰＣＡＴ３発現量スコアが０又は１の患者群（ＬＰＣＡＴ３低発現群）と、２又は３の患者群（ＬＰＣＡＴ３高発現群）とについて、生存曲線を調べた。生存曲線は、手術日から死亡又は最終受診日までの期間をもとに算出した。Ｋａｐｌａｎ−Ｍｅｉｅｒ法とｌｏｇ−ｒａｎｋ ｔｅｓｔを使用し、ＬＰＣＡＴ３低発現群とＬＰＣＡＴ３高発現群の差を解析した。計算はＲのグラフィカルインターフェイスであるＥＺＲソフトウェア（Ｓａｉｔａｍａ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｃｅｎｔｅｒ製）を用いて行った。

ＬＰＣＡＴ３低発現群とＬＰＣＡＴ３高発現群の生存曲線を図１６に示す。この結果、ＬＰＣＡＴ３高発現群に比べてＬＰＣＡＴ３低発現群では生存率が低かった。

［参考例２］
剖検例（がんなし）の胃から採取された５種の病理サンプルと実施例２において使用した８種の胃がん由来培養細胞株について、ＬＰＣＡＴ３の発現を、抗ＬＰＣＡＴ３抗体及び抗β−ｔｕｂｕｌｉｎ抗体を用いたウェスタンブロッティングにより確認した。ウェスタンブロッティングの結果を図１７に示す。この結果、８種の胃がん由来培養細胞株では、ＬＰＣＡＴ３の発現量が低かった。

［参考例３］
ＫｒａｓＶ１２を過剰発現させたＮＩＨ３Ｔ３細胞（ＫｒａｓＶ１２過剰発現細胞）におけるＬＰＣＡＴ３の発現量の細胞増殖への影響を調べた。

＜ＬＰＣＡＴ３発現用ベクターの作製＞
ヒト精巣のＲＮＡを鋳型としてＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ ＩＩＩ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）とｐｏｌｙＡプライマーを用いて逆転写反応を行い、得られたｃＤＮＡを鋳型にＰｈｕｓｉｏｎ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（ＮＥＷ ＥＮＧＬＡＮＤ ＢｉｏＬａｂｓ社製）とフォワードプライマー（５’−ＧＣＧＡＧＡＴＣＴＡＴＧＧＣＧＴＣＣＴＣＡＧＣＧＧＡＧＧＧＧＧＡＣＧ−３’）（配列番号３）とリバースプライマー（５’−ＧＣＧＣＴＣＧＡＧＴＴＡＴＴＣＣＡＴＣＴＴＣＴＴＴＡＡＣＴＴＣＴＣＴ−３’）（配列番号４）とを用いてＰＣＲを行い、ＬＰＣＡＴ３のｃＤＮＡを増幅した。増幅したｃＤＮＡをｐｃＤＮＡ３．１（＋）（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）のＢａｍＨＩ−ＸｈｏＩサイトにクローニングし、ＬＰＣＡＴ３発現用ベクター（ｐｃＤＮＡ３．１（＋）−ＬＰＣＡＴ３）を作製した。

＜フォーカスフォーメーションアッセイ＞
まず、ＫｒａｓＶ１２過剰発現細胞を準備した。具体的には、細胞密度が１．３×１０^５／３．５ｃｍディッシュとなるように播いてから２４時間後のＮＩＨ３Ｔ３細胞に、２５０ｎｇのｐＱＣＸＩＮ−Ｋ−ｒａｓＶ１２ベクターと２５０ｎｇのｐｃＤＮＡ３．１（＋）−ＬＰＣＡＴ３ベクター又はｐｃＤＮＡ３．１（＋）ベクターを、ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いてトランスフェクションした。トランスフェクションから２４時間後、トリプシンで細胞を剥がし、１枚の３．５ｃｍディッシュから回収した細胞を４枚の１０ｃｍディッシュに播いた。播種から１４日後に、各ディッシュに形成されたフォーカス数を計測した。

各ディッシュに形成されたフォーカス数の計測結果を図１８に示す。また、各ディッシュの細胞のＲａｓ及びβ−チューブリンの発現量をウェスタンブロッティングにより確認した。ウェスタンブロッティングの結果も図１８に示す。この結果、ＫｒａｓＶ１２の過剰発現により亢進された細胞増殖能は、ＬＰＣＡＴ３の過剰発現により抑制されることが確認された。

［参考例４］
ＬＰＣＡＴ３を安定的に過剰発現させる株を作製し、ＬＰＣＡＴ３の過剰発現の細胞増殖への影響を調べた。

＜ＧＦＰ−ＬＰＣＡＴ３発現用ベクターの作製＞
まず、参考例３で得たＬＰＣＡＴ３のｃＤＮＡを、ＧＦＰ融合タンパク質の発現用ベクターｐＥＧＦＰ−Ｃ１（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）のＸｈｏＩ−ＢａｍＨＩサイトにクローニングし、ＧＦＰ−ＬＰＣＡＴ３発現用ベクター（ｐＥＧＦＰ−Ｃ１−ＬＰＣＡＴ３ベクター）を作製した。

＜ＧＦＰ−ＬＰＣＡＴ３安定発現株の作製＞
細胞密度が５×１０^６／３．５ｃｍディッシュとなるように播いてから２４時間後のＭＫＮ−２８細胞に、４μｇのｐＥＧＦＰ−Ｃ１−ＬＰＣＡＴ３ベクター又はｐＥＧＦＰ−Ｃ１ベクターを、ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いてトランスフェクションした。トランスフェクションから４８時間後細胞を１０ｃｍディッシュに播き、２５０μｇ／ｍＬのＧ４１８を含む培地に交換し、さらに１４日間培養（３日毎にＧ４１８添加培地を交換）することによって、ＧＦＰ−ＬＰＣＡＴ３を恒常的に発現する細胞（ＧＦＰ−ＬＰＣＡＴ３安定発現株）を２種類（クローンＮｏ．１８及び２０）と、ＧＦＰを恒常的に発現する細胞（ＧＦＰ安定発現株）を１種類をそれぞれ選抜した。ＧＦＰ−ＬＰＣＡＴ３及びＧＦＰの発現は、蛍光顕微鏡によって確認した。

得られたＧＦＰ−ＬＰＣＡＴ３安定発現株及びＧＦＰ安定発現株の増殖性を調べた。具体的には、９６ウェルプレートに３×１０^３個／ウェルの細胞密度になるように細胞を播いて７２時間培養した。培養開始から０、２４、４８、及び７２時間後に、１０μＬのＷＳＴ−８を加え、３７℃で２時間静置した。静置後の各ウェルについて、マイクロプレートリーダー（Ｓｙｎｅｒｇｙ ＨＴ ｗｉｔｈ ＫＣ４；セントラル科学貿易社製）を用いて４５０ｎｍの吸光度を測定した。

測定結果を図１９に示す。この結果、培養開始から４８〜７２時間後では、２種類のＧＦＰ−ＬＰＣＡＴ３安定発現株のほうがＧＦＰ安定発現株よりも４５０ｎｍの吸光度が小さく、増殖が有意に減少していた。

Claims (6)

1. 下記式（１）で表されるフォスファチジルコリン及び下記式（２）で表されるフォスファチジルコリンからなる群より選択される１種以上を有効成分とすることを特徴とする、抗がん剤。
   
2. 消化管がんの治療又は予防に用いられる、請求項１に記載の抗がん剤。
3. 胃がんの治療又は予防に用いられる、請求項１に記載の抗がん剤。
4. がん組織又はがん化が疑われる組織に直接噴霧又は塗布される、請求項１〜３のいずれか一項に記載の抗がん剤。
5. 経口投与される、請求項１〜３のいずれか一項に記載の抗がん剤。
6. 前記フォスファチジルコリンがミセル又はリポソームを形成している、請求項１〜５のいずれか一項に記載の抗がん剤。