JP2014530842A - トランスサイレチン関連アミロイドーシスの新規療法 - Google Patents
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Abstract
Description
を有するか、またはその薬学上許容可能な塩である。
Yは、COOR、テトラゾリル、CONHOR、B(OH)2またはORであり;
Xは、Oであり;かつ
R1、R2およびR3は各々独立に、水素、ハロ、OR、B(OH)2またはCF3から選択され、ここで、
Rは、水素、C1−C6アルキル、C1−C6アルケニル、C1−C6アルキニル、C1−C6シクロアルキル、C1−C6ヘテロシクリル、フェニル、キシリル、ナフチル、チエニル、インドリルまたはピリジルである]
の化合物またはその薬学上許容可能な塩である。
Yは、COOH、またはOHであり;かつ
R1、R2およびR3は各々独立に、水素、ハロ、OH、B(OH)2またはCF3から選択される]
の化合物またはその薬学上許容可能な塩である。
材料
ヒトTTRのTyr78Phe高アミロイド形成変異体である組換えY78F TTRタンパク質を、Dolado et al (Dolado I, Nieto J, Saraiva MJ, Arsequell G, Valencia G, Planas A. “Kinetic Assay for High-Throughput Screening of In Vitro Transthyretin Amyloid Fibrillogenesis Inhibitors”. J. Comb. Chem., 2005, vol. 7, p. 246-252)で報告されているように生産した。
アッセイはDolado et al(前掲)に記載の手順に従って行った。このアッセイは、Y78Fタンパク質が阻害剤とともに30分間インキュベートされる第1段階と、原線維形成がpH変化により誘導され、吸光度が1.5時間測定される第2段階の2段階を含んでなる。簡単に述べれば、アッセイは次のように行った。
上記に示した一般手順に従った後、経時的曲線を取得し、その曲線から原線維形成の初速度(V0)を吸光度の直線的増加の傾きとして計算した。阻害濃度に対して初速度をプロットすると、分析した総ての阻害剤で指数関数的減衰が得られた。データを式(1):
V0=A+B*e−C[I](1)
[式中、V0は原線維形成の初速度(吸光度単位/時、Abs*h−1)であり、[I]は阻害剤の濃度(μM)である]
に当てはめた。調節可能なパラメーターは、A(Abs*h−1)、阻害剤の高濃度での残存会合速度;B(Abs*h−1)、原線維形成の初速度の大きさまたは最大低下;およびC(μM−1)、指数定数である。A+Bは、阻害剤の不在下、アッセイ条件下での原線維形成の初速度に等しい。
材料
家族性アミロイド心筋症(FAC)に関連するヒトTTRのアミロイド形成バリエーションである組換えV122I TTRタンパク質を、実施例1で用いたY78F変異体に関して記載したものと同じ手順に従って生産した。V122I突然変異体を発現するプラスミドDNAは、以下のプライマー:5’−GGATTGGTGATGACAGCCGT−3’および5’−ACGGCTGTCATCACCAATCC−3’を用いたこと以外は、Dolado et al(前掲)においてY78Fに関して報告されている通りに部位特異的突然変異誘発により調製した。トルカポンおよびヨードジフルニサルは、実施例1に記載の通りに得た。
このアッセイは、Y78F変異体よりもアミロイド形成性の低いTTR変異体に関して、動態濁度アッセイが正確な測定に十分な感度でない場合に使用する。この72時間でのエンドポイントアッセイにより阻害剤を試験するために従った手順は、Dolado et al(前掲)に報告されている。V122I TTRは、0.4mg/mL濃度のV122Iタンパク質および3つの異なる濃度の阻害剤:3.6、7.2および21.8μM(0.5×[タンパク質]、1×[タンパク質]、および3×[タンパク質]相当)を用い、動態濁度アッセイ(実施例1)に関して上記したものと同じ条件下で阻害剤とともにインキュベートした。酸誘導(希釈バッファーの添加)の後、サンプルを振盪せずに37℃で72時間インキュベートし、次いで混合して存在する原線維を再懸濁させることによりホモジナイズした。340nmで濁度を測定し、阻害剤の不在下でのアミロイド形成に対して正規化した。
供試化合物の阻害効力を、阻害剤不含対照サンプルと比較した場合の阻害剤含有サンプルの吸光度(absorvance)減少率%として評価した。
実施例3〜6の材料
トルカポンおよびタファミディスは実施例1に記載の通りに得た。エピガロカテキン−3−ガレート(EGCG、CAS No.989−51−5)はCayman Chemicals(#70935)から購入した。組換え野生型TTR(TTR WT)、TTR Y78FおよびTTR L55P変異体は、大腸菌(Escherichia coli)BL21を用いて細菌発現系で生産した。組換えTTRを、従前に記載されているように(Ferreira et al, 2009, FEBS Lett, vol. 583, p. 3569-76)単離および精製した。TTR V30M異型接合体保有個体および対照個体から全血は、Molecular Neurobiology Group,IBMC(ポルト大学)で入手可能なサンプルコレクションから入手した。血液サンプルはEDTAの存在下で採取され、血漿分離のために遠心分離されたものであった。血漿は−20℃で冷凍されていた。
TTRのT4結合部位に小分子リガンドが結合すると、in vitroにおいてTTR四量体が安定化され、四量体の解離およびアミロイド形成を緩徐化され得る。結合を評価するために、TTR WTとの結合に関する、試験化合物のT4(Sigma−Aldrich)との競合を、微量の放射性標識[125I]T4(50.000cpm相当;125I−T4の比活性1250μCi/μg Perkin−Elmer,MA,USAから)および試験化合物または種々の濃度、すなわち、0、20、60、200、600、2000、6000および20000nM(終濃度0〜10μM)のT4(陽性対照)のいずれかの溶液100μLとともにインキュベートした一定量のTTR(100μLの60nM溶液)を用い、ゲル濾過法により定量的にアッセイした(Ferreira et al, 2011, FEBS Lett., vol. 585, p. 2424-30)。陰性対照はタンパク質と標識T4と100μLのTNE(競合物不在)を用いて調製した。溶液は総てTNEバッファー(Tris 0.1M、NaCl 0.1M、EDTA 1mM)で調製した。総てのサンプルを2反復で調製した。放射能を各サンプルで、ガンマシンチレーションカウンターWizard 14701、Wallacにて測定した。次に、サンプルを4℃で一晩インキュベートした。インキュベーション後、TTRと結合したT4を、P6DGゲル濾過カラム(1mL、BioRad)を通して濾過することにより、非結合T4から分離した。溶出したサンプルで放射能を測定した。結果は、試験化合物(競合物)のLog総濃度に対するTTR結合T4/全T4の量として表した。データは、下式:Y=Bottom+(Top−Bottom)/(1+10^(X−LogEC50))を用い、GraphPad Prismソフトウエアによる一部位結合競合非線形回帰曲線に当てはめた。
TTR四量体の解離耐性に対する供試化合物の効果を評価するために、従前に記載されているように(Ferreira et al, 2009, FEBS Lett, vol. 583, p. 3569-76)、半変性条件でのIEFによりTTR安定性を評価した。サンプルを次のように調製した。対照およびTTR V30M保有個体からのヒト血漿30μLを、試験化合物および対照(EGCG)化合物の10mM溶液5μlとともに4℃で一晩インキュベートした後、室温で1時間インキュベートした。これらの調製物に対してnative PAGE(5%アクリルアミド)を行い、TTRを含むゲルバンドを切り取り、IEFゲル(5%アクリルアミド)に適用した。IEFは、5%(v/v)両性電解質pH4〜6.5(GE Healthcare)を含有する半変性条件(4M尿素)にて、1200Vで6時間行った。タンパク質をクーマシーブルーで染色し、これらのゲルをスキャンし、ImageQuantプログラム(HP Scanjet 4470c,Hewlett Packard)を用いたデンシトメトリーを行った。化合物の不在下では、血漿TTRは、単量体、酸化単量体および四量体の種々の形態に相当するいくつかの低等電点(pI)バンドからなる特徴的なバンドパターンを示した。合計12の血漿サンプル(対照5つとTTR V30M保有7つ)を3つのIEFゲルで分析した。各処理条件について、異なるドナーから最低4サンプルを処理した。全TTR(TTR四量体+単量体)に対するTTR四量体の比率を各血漿サンプルについて計算し、図2に示した。図2に見られるように、この比率は通常、異型接合性TTR V30M保有個体由来血漿よりも正常個体由来血漿の方が高い。トルカポンにより処理は、正常または突然変異TTRの両方の非処理対照血漿に比べて、単量体型よりもTTR四量体の量を増やし、また、タファミディスよりも顕著であった。
TTR誘導性の細胞傷害性および供試化合物の予防効果を評価するために、ラット神経鞘腫細胞(RN22、American Type Cell Collection ATCCから入手)の、10%ウシ胎児血清を含むダルベッコの最小必須培地での80%コンフルエント細胞を、2μMのTTR Y78Fオリゴマーに24時間曝した。これらのオリゴマーは、10倍モル過剰(終濃度20μM)の試験化合物または対照(EGCG)の存在下または不在下のいずれかで、37℃にて6日間、可溶性TTR Y78Fをインキュベートすることにより得られたものである。次に、細胞をトリプシンで処理し、細胞溶解液を、CaspACE蛍光測定96ウェルプレートアッセイシステム(Sigma)を用いたカスパーゼ−3活性化の測定に用いた。溶解液のタンパク質濃度は、Bio−Radタンパク質アッセイキットを用いて測定した。
TTR原線維の破壊に対する試験化合物の効果を検討するために、本発明者らは、TTR L55P(PBS中2mg/ml 約3.6μM)の濾過した(0.2μmフィルター)溶液を37℃で15日間インキュベートすることにより調製したTTR前形成原線維を用いた。次に、これらのサンプルを10倍モル過剰(36μM)(終濃度)の試験化合物の不在下(対照)または存在下のいずれかで、37℃にて4日間インキュベートした。破壊効果を従前に記載されているように(Ferreira et al, 2009, FEBS Lett, vol. 583, p. 3569-76)、透過型電子顕微鏡(TEM)および動的光散乱(DLS)により評価した。
Claims (13)
- トランスサイレチン関連アミロイドーシスの予防および/または治療における使用のための、カテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤。
- トルカポンまたはその薬学上許容可能な塩である、請求項2に記載の使用のためのカテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤。
- 前記トランスサイレチン関連アミロイドーシスが家族性アミロイド多発性神経障害である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の使用のためのカテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤。
- 前記トランスサイレチン関連アミロイドーシスが老人性全身性アミロイドーシスである、請求項1〜3のいずれか一項に記載の使用のためのカテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤。
- 前記トランスサイレチン関連アミロイドーシスが軟膜アミロイドーシスである、請求項1〜3のいずれか一項に記載の使用のためのカテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤。
- 前記トランスサイレチン関連アミロイドーシスが家族性アミロイド心筋症である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の使用のためのカテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤。
- 別のCOMT阻害剤、ベンズオキサゾール誘導体、ヨードジフルニサル、ジフルニサル、レスベラトロール、タウロウルソデオキシコール酸、ドキソサイクリン(doxocycline)およびエピガロカテキン−3−ガレートからなる群から選択される付加的治療薬との併用療法によるトランスサイレチン関連アミロイドーシスの予防および/または治療において使用するための、カテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤(ただし、前記ベンズオキサゾール誘導体は式V:
Yは、COOR、テトラゾリル、CONHOR、B(OH)2またはORであり;
Xは、0であり;かつ
R1、R2およびR3は各々独立に、水素、ハロ、OR、B(OH)2またはCF3から選択され、ここで、
Rは、水素、C1−C6アルキル、C1−C6アルケニル、C1−C6アルキニル、C1−C6シクロアルキル、C1−C6ヘテロシクリル、フェニル、キシリル、ナフチル、チエニル、インドリルまたはピリジルである]
の化合物またはその薬学上許容可能な塩である)。 - 前記ベンズオキサゾール誘導体がタファミディスである、請求項8または9に記載の使用のためのカテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤。
- 前記COMT阻害剤が、注射投与形、経口投与形または徐放性投与形として投与される、請求項1〜10のいずれか一項に記載の使用のためのカテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤。
- トランスサイレチン関連アミロイドーシスの予防および/または治療のための、カテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤と、別のCOMT阻害剤、ベンズオキサゾール誘導体、ヨードジフルニサル、ジフルニサル、レスベラトロール、タウロウルソデオキシコール酸、ドキソサイクリン(doxocycline)およびエピガロカテキン−3−ガレートからなる群から選択される付加的治療薬との組合せ(ただし、前記ベンズオキサゾール誘導体は式V:
Yは、COOR、テトラゾリル、CONHOR、B(OH)2またはORであり;
Xは、0であり;かつ
R1、R2およびR3は各々独立に、水素、ハロ、OR、B(OH)2またはCF3から選択され、ここで、
Rは、水素、C1−C6アルキル、C1−C6アルケニル、C1−C6アルキニル、C1−C6シクロアルキル、C1−C6ヘテロシクリル、フェニル、キシリル、ナフチル、チエニル、インドリルまたはピリジルである]
の化合物またはその薬学上許容可能な塩である)。 - カテコール−O−メチルトランスフェラーゼ(COMT)阻害剤との併用療法でトランスサイレチン関連アミロイドーシスの予防および/または治療において使用するための、ベンズオキサゾール誘導体、ヨードジフルニサル、ジフルニサル、レスベラトロール、タウロウルソデオキシコール酸、ドキソサイクリン(doxocycline)およびエピガロカテキン−3−ガレートからなる群から選択される治療薬(ただし、前記ベンズオキサゾール誘導体は式V:
Yは、COOR、テトラゾリル、CONHOR、B(OH)2またはORであり;
Xは、0であり;かつ
R1、R2およびR3は各々独立に、水素、ハロ、OR、B(OH)2またはCF3から選択され、ここで、
Rは、水素、C1−C6アルキル、C1−C6アルケニル、C1−C6アルキニル、C1−C6シクロアルキル、C1−C6ヘテロシクリル、フェニル、キシリル、ナフチル、チエニル、インドリルまたはピリジルである]
の化合物またはその薬学上許容可能な塩である)。
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