JP2014510146A - 放射線緩和剤および放射線保護剤としてのbpiおよびその同類物 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、Defense Advanced Research Projects Agency (DARPA) Grant HR001-08-0011およびCenter for Medical Countermeasures Research Pilot Grant 5U19A1067751の下での政府の支援によりなされた。したがって、政府は本発明において特定の権利を有する。
ヒトの放射線に対する暴露は、重篤な害、死をすら引き起こし得る。暴露は、偶発的なもの、例えば原子力プラントからの放射線漏洩から生じるものであり得る。暴露はまた、意図的なもの、例えばテロ行為から生じるものであり得る。放射線暴露の最も一般的な状況は、癌の処置などの医療的介入から生じる。この文脈における放射線は、局所的なものまたは全身性のものであり得る。局所的に適用される場合、放射線は、それにもかかわらず、放射線の経路における健康な組織に対して望まれない傷害を引き起こし得る。全身に適用される場合(すなわち全身照射)、低用量は、骨髄損傷および胃腸管に対する毒性をもたらし得る。高用量の全身照射は、永久的な骨髄損傷、腸および肺に対する毒性、ならびに時には死をもたらし得る。健康な組織を保護し、電離放射線への暴露の急性および慢性の効果を緩和する、有効な処置の必要性が存在する。
本明細書において記載されるのは、対象(個体)において、放射線への暴露(偶発的/非意図的もしくは意図的(治療としてなどの))、化学放射線療法または疾患から生じる組織の傷害を緩和する方法である。方法は、それを必要とする対象として言及される対象(個体)に、殺菌性/透過性増強タンパク質(bacterial/permeability increasing protein:BPI)、(少なくとも1、1または2以上)のBPI同類物、またはBPIとBPI同類物との両方を、暴露の効果を(部分的にまたは完全に)低減するために十分な量において投与し、それにより、当該対象における放射線暴露から生じる組織の傷害を緩和することを含む。ある態様において、放射線暴露は、原子力プラント故障の事件において生じるものなどの偶発的な放射線への暴露から、または、治療的放射、化学療法または放射線療法などの意図的な放射線への暴露から生じる。組織傷害は、例えば、造血組織(例えば骨髄)への傷害または胃腸(GI)管への傷害であり得る。特定の態様において、組織傷害は、造血毒性(hematopoietic toxicity)である。当該方法において用いられるBPI同類物として、限定されないが、rBPI21、rBPI23、rBPI50、rBPI(10−193)ala132および約20kD〜約25kDのおよその分子量を有するBPIのN末端フラグメントが挙げられる。
本発明は、一側面において、殺菌性/透過性増強タンパク質(BPI)および/またはその同類物が、単独でまたは抗生物質と組み合わせて、放射線への暴露、化学療法または疾患から生じる組織傷害を緩和することができるという、驚くべき発見に関する。本明細書において記載されるとおり、BPIおよび/またはその同類物は、単独でまたは抗生物質と組み合わせて、偶発的(accidental)または偶発的(incidental)な放射線に暴露された対象(個体)において、および/または、骨髄細胞の枯渇/不全を伴う重篤な骨髄破壊を有する対象において、造血毒性を緩和するため、血液学的機能を刺激するため、および骨髄回復を補助するために用いることができる。
材料および方法
患者の特徴
2005〜2009年にボストン小児病院(CHB)またはブリガム・アンド・ウィメンズ病院(BWH)において骨髄破壊同種HSCTを受けている患者(n=48)を、施設内審査委員会により承認された研究において、予め募集した。全ての参加者および/または法定後見人が、必要に応じて承諾および/または同意を提供した。年齢は、1〜60歳の範囲であった。血液学的悪性疾患(n=46)のための骨髄破壊レジメンは、1400cGy(n=38)もしくは1375cGy(n=1)のTBIによる化学放射線療法、または、>14mg/kgの経口もしくはIVの同等量のブスルファンを含む組み合わせ化学療法であった(n=7)。再生不良性貧血のための骨髄破壊は、シクロホスファミド200mg/kg(6gm/M2)プラスATG(n=2)であった。16人の患者がBMを受け、32人がPB幹細胞を受けた。支持治療は、施設の定められた手順に従った(48、49)。予防的経口非吸収性抗生物質を投与した:バシトラシンと、ポリミキシン(BWH)またはバンコマイシン(CHB)のいずれか。血球計算および培養を、臨床研究室の定められた手順に従って行った。16人の患者が、グラム陽性(n=15)またはグラム陰性(n=1)生物のいずれかによる菌血症を有した。体温は、試料取得の±1日以内の最大値を用いて記録した。エンドトキシン活性アッセイ(EAA)の測定は、EAAが利用可能であった場合に追加した。
PB試料を、K2−EDTAまたはヘパリンナトリウムVacutainers(商標)(Becton-Dickinson(BD)、Franklin Lakes, NJ)中に引き込み(基線、B)、その後、HSCTの日(D0)、および毎週±1日に前処置した。PBを1200gで5分間、4℃で遠心し、回収し、パイロジェンフリーチューブ中でアリコートにおいて−80℃で保存した。
BPIは、ELISA(HyCult, Uden, The Netherlands)により、製造者の説明書に従って測定した。
ヒトPBにおけるエンドトキシン測定
エンドトキシンは、EAAにより、製造者の説明書(Spectral Diagnostics, Toronto, Canada)に従って測定した(27)。
IL−6は、フローサイトメトリー(MoFlo, DakoCytomation, Glostrup, Denmark)により、抗体被覆蛍光ビーズ(Cytometric Bead Array BD Flex Sets, BD BioSciences, San Jose, CA)およびSummit v4.0ソフトウェア(DakoCytomation)を用いて測定した。
mCD14およびTLR4の測定
CD14およびTLR4の単球表面発現を、先に記載されるように(50)、抗原特異的またはアイソタイプ対照モノクローナル抗体(eBioSciences, San Diego, CA)により測定した。
オスBALB/cマウス(ストック#028, Charles River, Wilmington, MA)を、12週齢における照射に先立ち順化した。研究は、ダナ・ファーバー癌研究所のACUCにより承認されたポリシーおよびプロトコルに従って行った。マウスを、Rad Disk(商標)げっ歯類マイクロアイソレーション照射用ケージ(Braintree Scientific, Braintree, MA)中に置き、Gammacell(登録商標)40Exactor(Best Theratronics, Ottawa, Ontario)セシウム源照射器により、1回の7Gyの用量を投与した。その24時間後、マウスを、未処置のまま置くか(7Gy)、または、以下の処置の1または2以上を30日間受けさせた:1)rBPI21(XOMA(US)LLC, Berkeley, CA)の、注射1回当たり250μlの、2mg/mlのストックを、処方バッファー中で構成し、SCで1日2回、6〜8時間の間隔をあけて投与した(rBPI21/マウスは、〜42mg/kg/日であった);2)0.33g/Lのクエン酸、1.01g/Lのクエン酸ナトリウム、8.76g/Lの塩化ナトリウム、2.0g/LのPoloxamer P188、および2.0g/Lのポリソルベート80(全てSigma, St. Louis, MO)からなるrBPI21処方バッファー(VEHと表記される)の250μlを、注射用水中で溶解し、pHを5.0に調整し、濾過滅菌した;3)Baytril(登録商標)(エンロフロキサシン、MedVets, Sandy, UT)を、10mg/kg/日において、25Gの食餌用針(Cadence Science, Cranston, RI)を介した強制経口により、最初の5〜7日間にわたり与え、その後、研究終了または死亡まで、マウスに、続けて抗生物質をその場で(ad lib)水ボトル中で投与した。全てのマウスを少なくとも1日2回観察した。瀕死のマウスはCO2窒息により安楽死させた。計画された時点において、マウスをイソフルラン麻酔の過剰用量により安楽死させた(IsoFlo(登録商標)Abbott Labs, Abbott Park, IL)。
CBCを、Hemavet 950 FS血液学分析器(Drew Scientific, Waterbury, CT)において、EDTA(Becton-Dickinson, Franklin Lakes, NJ)により抗凝固剤処置した心臓血を用いて行った。血液をパイロジェンフリーエッペンドルフチューブ(USA Scientific)中でパイロジェンフリーヘパリン(APP Pharmaceutical, Schaumburg, IL)と混合し、14,000rpmで10分間遠心分離することにより、血漿を得た。単回使用のアリコートを−80°で保存した。一部の研究において、動物1個体あたり一肢からの大腿および脛骨を解剖し、10%の中性に緩衝化したホルマリン(Fisher Scientific, Pittsburg, PA)中で24時間固定し、処理した(冠状切片作製およびヘマトキシリン−エオジン(H&E)染色(Specialized Histopathology Services-Longwood, Boston, MA)を含む)。冷たいRPMI 1640培地に10%FBS(JRH Biosciences, Lenexa, KS)、L−グルタミン、HEPES、ペニシリン/ストレプトマイシンおよびゲンタマイシン(全てInvitrogen, Carlsbad, CA製)を添加したものを用いて骨から細胞を洗い流すことにより、対側大腿および脛骨をBM MNCの計数(enumeration)およびフローサイトメトリーのために用いた。低張溶解バッファー(Sigma)により赤血球を溶解した。BM MNCをトリパンブルー染色により計数(enumerate)した;生存率は、典型的には>90〜95%であった。
試料を、MassTrak Amino Acid Analysis(AAA)システム(Waters, Milford MA USA)により、AccQTag(商標)誘導体化および紫外/可視検出を用いて分析した。
有資格の血液病理学者(JK)が、大腿BMの細胞充実性を、脱灰してホルマリン固定したH&E染色したパラフィン固定切片において、Olympus BX51顕微鏡およびOlympus DP71カメラを用いて、DP Captureソフトウェアにより評価した。各動物について、2枚のスライドを2視野/スライドで、造血細胞により線有されたBM空間のパーセントについて点数化した。有資格の病理学者(J−AV)が、H&E染色したパラフィン固定冠状切片の3つの複製試料において、アポトーシス小体/400×視野を計数した。正常マウスからの試料はアイデンティティを同定したが、全ての他のものは、盲検化(deidentify)し、無作為の順序で分析のために提示した。
リムルスアメボサイトライセート(LAL)アッセイを、製造者(Charles River, Boston, MA)の説明書に従って、および先に記載されるように(51)用いて、エンドトキシンを測定した。
BM細胞を、Fcブロッキングのために、2%ラット抗マウスCD16/CD32および1%正常ラット血清でプレインキュベートし、その後、造血系列マーカー(CD3ε、CD45/B220、CD11b、Ly−6G/Ly−6C、TER 119)を有する細胞を、APC共役系列特異的抗体のカクテル、または等濃度のAPC共役アイソタイプ対照免疫グロブリン、1:20希釈のPE−ラット抗マウスSca 1(クローンD7)およびPerCP−Cy5.5−ラット抗マウスc−Kit(クローン2B8)(全てBD製)により染色した。細胞を、25分間4℃で染色し、冷たいDPBSで2回洗浄し、0.4%パラホルムアルデヒド中で再懸濁した。FACScalibur(商標)フローサイトメーター(BD)において100,000回のイベントを得、FlowJo v.7.0.5(Treestar)ソフトウェアで分析した。系列マーカーについて陰性の細胞を、BM中のlin−Sca−1−c−kit+(LK)およびlin−Sca−1+c−kit+(LSK)のパーセンテージについて評価した(図10、ゲート戦略)。正常マウスからのデータは、ナイーブなBALB/cマウスについての公開された報告と一致した(52)。
ヒトHSCT研究について、検出不能な分析物を有する試料に、検出の下限の半分における値を割り当てた。ANC、PLT、BPI、TLR4およびIL−6について、データを、対数変換の後で分析した。なぜならば、これはより正規的に近い分布をもたらすからである。これらのデータについて、対数値の幾何平均および平均の標準誤差(SEM)を1つ足したものを示すエラーバーを、次いで、元の単位に戻し変換し、対数軸上にプロットした。異なる時点における同じ患者についての値を比較する場合、基線と比較した値を用いて、マッチドペア(matched pairs)に対するWilcoxonの符号付き順位検定を用いた。発熱を有する対象または発熱を有さない対象の間の比較は、Mann-Whitney検定を用いて評価した。異なるパラメーター間の相関を評価する場合、対象内の相関は、Spearman相関係数および複数の時点からのデータを用いて計算した。計算した計数を異なる対象にわたって平均し、符号付き順位検定により有意性を試験した。他に記されない限り、全てのp値は両側性であった。Prism v. 4.0a(GraphPad Software; San Diego, CA)およびSAS v. 9.1(SAS Institute, Cary, NC)を用いて、統計学的有意性およびグラフィック出力を作製した。マウス実験についての統計学的分析は、Graph Pad Prismバージョン5により行った。Mantel-Coxログランクを用いて、生存曲線を比較した。シトルリンデータ(ここでは、データを1標本t検定により100%の理論上の平均と比較して分析した)および血液学的分析(表1)(ここでは、アンペアド(unpaired)t検定を行った)を除いて、両側t検定(Mann-Whitney)を、全体を通して行った。アンペアドt検定は、同等の分散を仮定しない。全ての実験において、P値<0.05を、帰無仮説を棄却する。図中に示される場合、*p<0.05、**p<0.01、***p<0.001。
ヒト骨髄破壊HSCTは、初期の好中球減少症、内毒血症、BPIの欠乏およびエンドトキシンに対する宿主応答の証拠に関連する。
本発明者らは、HSCTのための骨髄破壊処置を受けた患者におけるエンドトキシンおよびBPIの血漿レベルを試験した。48人の患者のうち39人は、1375(n=1)または1400(n=38)cGyのTBIを含む化学放射線療法を受けたが、9人は、破壊と組み合わせた化学療法のみを受けた。予測される通り、骨髄破壊治療に続く同種HSC注入は、PBカウントの低下および回復をもたらした(図1A)。骨髄破壊処置の完了(D0)までに、内毒血症は、容易に検出可能であった(図1B)。同時に、血漿BPI濃度は、急速に低下し(D7の中央値は71倍、四分位間の範囲は、9〜193倍低下した;図1B)、これは、絶対的な好中球カウントと相関した(ANC;Spearman r=0.66;p<0.001)。ANC最下点(D7)において、血漿BPIは、37/48の患者(77%)において検出不能であり(<100pg/mL)、エンドトキシン活性アッセイにより評価された患者の80%(27)は、内毒血症であった。
潜在的に致死性の放射線暴露をモデル化するために、本発明者らは、BALB/cマウスにおいて、BM形成不全、GI毒性および高率の初期の死亡と関連する一回照射TBIの用量を定義した。7Gyの一回照射は、12週齢のBALB/cにおいて、30日までの95〜100%の死亡率(LD95/30)と関連した(図2A)。7Gy暴露の致死性は、後に続く緩和実験の各々において、再現性よく観察された:5/90の7Gy照射マウス(5.5%)のみが、D30まで生存し、別々の実験における生存率の中央値は、12〜15日間の範囲であった。7GyのTBIの後で病理組織学により評価した小腸上皮アポトーシスは、D3において最大であり、機能的GI腸細胞の質量に直接的に比例する血漿シトルリンレベルの低下と平行した(30)(図2B)。両方のGI粘膜の所見は、D6〜9までに改善した。内毒血症はまた、D3までに検出可能であり、死亡の直前により高く急上昇するまで持続した(図7)。D3までに、BMは無形成であり(図2C)、BMの単球細胞(MNC)の含有量は、対数2つ分近く同時に低下し、これは、造血幹(LSK、Lin- Sca-1+ c-Kit+)および前駆体(LK、Lin- Sca-1- c-Kit+)細胞の減衰を含んだ(図2D、E、F)。
rBPI21と、シプロフロキサシンに類似するフルオロキノロン系抗生物質である経口ENRとの組み合わせ(rBPI21/ENR)を、LD95/30のTBI用量の7Gyの24時間後に開始し、D30まで継続することにより、D30におけるマウスの生存率の統計学的に有意な改善がもたらされた(図3)。2回の複製実験のコンポジット分析(n=50マウス/アームを集積する)において、rBPI21/ENR群の生存率は、VEH/ENRのもの(VEHは、rBPI21のための処方バッファーを表わす)、ならびにENRまたは7Gy単独群を凌いだ(ペアワイズMantel-Coxログランクにおいて、それぞれ、<.0001、0.03および<.0001)。危険性があった36個体のrBPI21/ENR処置マウスのうち2個体の死亡のみが、2週間後に起こり、一方、この間隔の間の他の群における喪失は、危険性があった動物のうちの38〜79%の範囲であった。7Gyの後でのD30の生存率は、rBPI21(1/30生存者)またはそのVEH(1/30生存者)のいずれか単独によっては改善されなかった。したがって、rBPI21単独治療は、LD95/30のTBI用量における緩和戦略としては探究しなかった。
造血に対する効果を特徴づけるために、本発明者らは、洗い流されたBM腔から回収されたBM MNCを係数した(図4)。D10において、全照射群は、処置に関わらず、月齢が一致する未照射の対照よりも少ないBM MNCを示した(p<.0001)。しかし、BM MNC含有量は、rBPI21/ENR処置マウスにおいて、単独またはENRもしくはVEH/ENRと共に7Gyを受けたマウスにおいてよりも、有意に多かった(それぞれ、p=.0003、.001および<.0001)。この同じパターンは、rBPI21/ENR処置マウスが一貫して他の群より統計学的に有意に多いBM MNC含有量を有したので、D15およびD19において繰り返された(図4)。rBPI21/ENR処置は、7Gy単独の後で観察されるより一貫して多いBM MNC含有量と関連した。
rBPI21処置は、顆粒球コロニー刺激因子(G-CSF)(図14)、マウスケラチノサイト走化性因子(マウスKC;ヒトのホモログは、Gro-アルファ、IL-8を含む)(図15)、および単球走化性タンパク質−1(MCP-1、別名ケモカイン(C−Cモチーフ)リガンド2またはCCL2)などの炎症関連ケモカインを有意に増加させる(図16)。血漿中のG-CSFおよびマウスKCのBPI刺激は、事前の放射線により増強されるが、これにアイソレートされない。理論により拘束されることは意図しないが、このことは、造血効果が現実化される1つの機序を表わす。照射およびrBPI投与の後で達成される血漿レベルは、組換えG-CSFのIVの薬理学的量の注入と一致する。データは、単独またはエンロフロキサシンと組み合わせてのrBPIをSCで1日2回(BID)投与された照射マウスにおけるG-CSFの高度に有意な増大(1〜3対数の増加)を示す。したがって、GCSFの上昇は、rBPIの関数であり、BPIとENRとの組合せに依存しない。それほどには著しくないが、統計学的に優位なG-CSFの上昇もまた、rBPIの単回注射または1日2回(BID)のSC注射のいずれかを受けた未照射のマウスにおいても観察された。
Claims (37)
- 対象において、放射線への暴露から生じる組織傷害を緩和するための方法であって、
それを必要とする対象に、殺菌性/透過性増強タンパク質(BPI)および/またはその同類物を、当該対象の放射線暴露により引き起こされた組織傷害を緩和するための有効量において投与すること
を含む、前記方法。 - 組織傷害が、造血毒性を含む、請求項1に記載の方法。
- 放射線暴露が、偶発的な放射線への暴露、化学放射線療法または放射線療法から生じる、請求項1〜2のいずれか一項に記載の方法。
- BPI同類物が、rBPI21、rBPI23、rBPI50、rBPI(10−193)ala132および約20kD〜約25kDのおよその分子量を有するBPIのN末端フラグメントからなる群より選択される、請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法。
- 抗生物質を投与することをさらに含む、請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法。
- 抗生物質が、キノロン系抗生物質である、請求項5に記載の方法。
- キノロン系抗生物質が、モキシフロキサシン、シプロフロキサシン、レボフロキサシン、ガレノキサシンおよびデラフロキサシンからなる群より選択される、請求項6に記載の方法。
- BPIおよび/またはその同類物が、対象の放射線への暴露の1日前〜2日後に投与される、請求項1〜7のいずれか一項に記載の方法。
- BPIおよび/またはその同類物が、放射線暴露の後48時間以内に投与される、請求項8に記載の方法。
- BPIおよび/またはその同類物が、経口、静脈内、または皮下投与される、請求項1〜9のいずれか一項に記載の方法。
- 対象において、放射線への暴露から生じる造血毒性を緩和するための方法であって、
それを必要とする対象に、殺菌性/透過性増強タンパク質(BPI)および/またはその同類物を、当該対象の造血毒性を緩和するための有効量において投与すること
を含む、前記方法。 - 造血毒性が、偶発的な放射線への暴露、化学放射線療法または放射線療法から生じる、請求項11に記載の方法。
- BPI同類物が、rBPI21、rBPI23、rBPI50、rBPI(10−193)ala132および約20〜25kDの分子量を有するBPIのN末端フラグメントからなる群より選択される、請求項11〜12のいずれか一項に記載の方法。
- 抗生物質を投与することをさらに含む、請求項11〜13のいずれか一項に記載の方法。
- 抗生物質が、キノロン系抗生物質である、請求項14に記載の方法。
- キノロン系抗生物質が、モキシフロキサシン、シプロフロキサシン、レボフロキサシン、ガレノキサシンおよびデラフロキサシンからなる群より選択される、請求項15に記載の方法。
- BPIおよび/またはその同類物が、対象の放射線への暴露の1日前〜2日後に投与される、請求項11〜16のいずれか一項に記載の方法。
- BPIおよび/またはその同類物が、放射線暴露の後であるが、放射線暴露の48時間以内に投与される、請求項17に記載の方法。
- BPIおよび/またはその同類物が、経口、静脈内、または皮下投与される、請求項11〜17のいずれか一項に記載の方法。
- 対象における骨髄回復のための方法であって、
それを必要とする対象に、殺菌性/透過性増強タンパク質(BPI)および/またはその同類物を、前記対象における骨髄回復のための有効量において投与すること
を含む、前記方法。 - 対象が、1または2以上の造血細胞の型または系統の欠乏を有する、請求項20に記載の方法。
- 対象が、リンパ球減少症、骨髄球減少症、白血球減少症、好中球減少症、赤血球減少症、巨核球減少症、血小板の欠乏、単球の欠乏、リンパ球の欠乏、赤血球の欠乏、好中球の欠乏、T細胞の欠乏、顆粒球の欠乏、および/または樹状細胞の欠乏を含む造血の欠乏を有する、請求項20〜21のいずれか一項に記載の方法。
- 1または2以上の造血細胞の型または系統の欠乏が、放射線への暴露、化学放射線療法、放射線療法、疾患、毒素または薬物または生物により媒介される治療から生じる、請求項22に記載の方法。
- BPI同類物が、rBPI21、rBPI23、rBPI50、rBPI(10−193)ala132および約20〜25kDの分子量を有するBPIのN末端フラグメントからなる群より選択される、請求項20〜23のいずれか一項に記載の方法。
- 抗生物質を投与することをさらに含む、請求項20〜24のいずれか一項に記載の方法。
- 抗生物質がキノロン系抗生物質である、請求項25に記載の方法。
- キノロン系抗生物質が、モキシフロキサシン、シプロフロキサシン、レボフロキサシン、ガレノキサシンおよびデラフロキサシンからなる群より選択される、請求項26に記載の方法。
- BPIおよび/またはその同類物が、経口、静脈内、または皮下投与される、請求項20〜27のいずれか一項に記載の方法。
- 対象において造血を刺激するための方法であって、
それを必要とする対象に、殺菌性/透過性増強タンパク質(BPI)および/またはその同類物を、該対象において造血を刺激するための有効量において投与すること
を含む、前記方法。 - 対象が、1または2以上の造血細胞の型または系統の欠乏を有する、請求項29に記載の方法。
- 対象が、リンパ球減少症、骨髄球減少症、白血球減少症、好中球減少症、赤血球減少症、巨核球減少症、血小板の欠乏、単球の欠乏、リンパ球の欠乏、赤血球の欠乏、好中球の欠乏、T細胞の欠乏、顆粒球の欠乏、および/または樹状細胞の欠乏を含む造血の欠陥を有する、請求項29〜30のいずれか一項に記載の方法。
- 1または2以上の造血細胞の型または系統の欠乏が、放射線への暴露、化学放射線療法、放射線療法、疾患、毒素または薬物または生物により媒介される治療から生じる、請求項31に記載の方法。
- BPI同類物が、rBPI21、rBPI23、rBPI50、rBPI(10−193)ala132および約20〜25kDの分子量を有するBPIのN末端フラグメントからなる群より選択される、請求項29〜32のいずれか一項に記載の方法。
- 抗生物質を投与することをさらに含む、請求項29〜33のいずれか一項に記載の方法。
- 抗生物質がキノロン系抗生物質である、請求項34に記載の方法。
- キノロン系抗生物質が、モキシフロキサシン、シプロフロキサシン、レボフロキサシン、ガレノキサシンおよびデラフロキサシンからなる群より選択される、請求項35に記載の方法。
- BPIおよび/またはその同類物が、経口、静脈内、または皮下投与される、請求項29〜36のいずれか一項に記載の方法。
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