JP2014509860A - 診断用抗体アッセイ - Google Patents
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Abstract
【選択図】なし
Description
1.いくつかの研究において、QCがAβのN-末端におけるグルタメートからのpyroGlu残基の形成を触媒することが示された(Cynisらの文献、Biochim Biophys Acta. 2006 Oct;1764(10):1618-25、Schillingらの文献、FEBS Lett. 2004 Apr 9;563(1-3):191-6);
2.AβペプチドとQCは両方とも、海馬及び皮質で大量に発現されている。これらの脳領域は、特に、ADのリスクが高い(Pohlらの文献、Proc Natl Acad Sci U S A. 1991 Nov 15;88(22):10059-63、Selkoeの文献、Physiol Rev. 2001 Apr;81(2):741-66);
3.APPは、形質膜への輸送中にβ-セクレターゼによって切断され、それにより、遊離グルタメート残基を有するAβのN-末端が生成させることができる(Greenfieldらの文献、Proc Natl Acad Sci U S A. 1999 Jan 19;96(2):742-7)。分泌小胞において、プロセシングされたAPPとQCの共局在が明らかにされた。したがって、小胞の弱酸環境において、グルタメート残基からピログルタメートへの加速的修飾が起こり得る。
4.また、他の神経変性疾患(neurodegeneratuve disease)(家族性デンマーク型(FDD)又はイギリス型認知症(FBD))は、N-末端pyroGlu修飾ペプチド、例えば、Bri2と関連しているが、対照的に、それらは、その一次構造の点では、Aβと関連していない(Vidal R.らの文献、1999 Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 4920-4925)。
本発明は特に、AβpGlu(11-x)ペプチドに高い親和性で結合することを特徴とする、抗体又はその変異体に関する。該高い親和性は、本発明との関連において、10-7M以下のKD値、好ましくは、10-8M以下のKD値、さらにより好ましくは、10-9M〜10-12MのKD値の親和性を意味する。
(定義)
用語「抗体」は、最も広範な意味で使用されており、かつ具体的には、それらが所望の生体活性を示す限り、無傷のモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、少なくとも2つの無傷の抗体から形成された多重特異性抗体(例えば、二重特異性抗体)、及び抗体断片を対象としている。抗体は、例えば、IgM、IgG(例えば、IgG1、IgG2、IgG3、もしくはIgG4)、IgD、IgA、又はIgEであることができる。しかしながら、好ましくは、抗体は、IgM抗体ではない。
1.AβpGlu(11)ペプチド又はその変異体に、好ましくは高い親和性で結合することを特徴とする、抗体。
2.前記高い親和性が、10-7M以下の解離定数(KD)値を意味する、項目1記載の抗体。
3.前記抗体が、モノクローナル抗体である、項目1又は2記載の抗体。
4.前記抗体の軽鎖の可変部分が、配列番号51のヌクレオチド配列、又は配列番号52のアミノ酸配列を有する、項目1〜3のいずれか一項記載の抗体。
5.前記抗体の重鎖の可変部分が、配列番号53のヌクレオチド配列、又は配列番号54のアミノ酸配列を有する、項目1〜4のいずれか一項記載の抗体。
6.前記抗体の軽鎖の可変部分が、前記配列番号51のヌクレオチド配列、又は前記配列番号52のアミノ酸配列を有し、かつ前記抗体の重鎖の可変部分が、配列番号53のヌクレオチド配列、又は前記配列番号54のアミノ酸配列を有する、項目1〜5のいずれか一項記載の抗体。
7.前記抗体が、Aβ13-11-6(寄託番号DSM ACC 3100)又はその機能的変異体である、項目1〜6のいずれか一項記載の抗体。
8.前記抗体が、Aβ13-11-6(寄託番号DSM ACC 3100)である、項目7記載の抗体。
9.前記抗体が、ヒト化もしくはキメラ抗体、又は高親和性を保持する抗体断片である、項目1〜8のいずれか一項記載の抗体。
10.AβpGlu(11)ペプチド又はその変異体の検出における使用のための、項目1〜9のいずれか一項記載の抗体。
11.前記変異体が、以下の群:
pGlu-Aβ11-38変異体
pGlu-Aβ11-40変異体
pGlu-Aβ11-42変異体、及び
pGlu-Aβ11-x変異体
から選択され、
ここで、xは、18〜42、より好ましくは、30〜42の整数である、項目10記載の抗体。
12.ヒトのものである、項目1〜11のいずれか一項記載の抗体。
13.高親和性を保持するダイアボディ又は単鎖抗体である、項目1〜12のいずれか一項記載の抗体。
14.項目11に記載の抗体によって結合されるエピトープに結合する、項目1〜13のいずれか一項記載の抗体。
15.項目11に記載の抗体の相補性決定領域を有する、項目1〜14のいずれか一項記載の抗体。
16.前記抗体の軽鎖の可変部分が、配列番号51のヌクレオチド配列、又は配列番号52のアミノ酸配列を有する軽鎖の可変部分を有する抗体の1以上の、例えば、1つ、2つ、又は3つの相補性決定領域と同じである1以上の、例えば、1つ、2つ、又は3つの相補性決定領域を有する、項目1〜15のいずれか一項記載の抗体。
17.前記抗体の軽鎖の可変部分が、配列番号53のヌクレオチド配列、又は配列番号54のアミノ酸配列を有する重鎖の可変部分を有する抗体の1以上の、例えば、1つ、2つ、又は3つの相補性決定領域と同じである1以上の、例えば、1つ、2つ、又は3つの相補性決定領域を有する、項目1〜16のいずれか一項記載の抗体。
18.標識されている、項目1〜17のいずれか一項記載の抗体。
19.固相に固定化されている、項目1〜18のいずれか一項記載の抗体。
20.ハイブリドーマ細胞株DSM ACC 3100から得られ得る抗体。
21.項目1〜20のいずれか一項記載の抗体を含む組成物。
22.アミロイドーシスの治療、予防、又は遅延のための、項目21記載の組成物。
23.前記アミロイドーシスが、軽度認知障害、アルツハイマー病、及びダウン症の神経変性からなる群から選択される神経変性疾患である、項目21又は22記載の組成物。
24.前記アミロイドーシスが、孤発性アルツハイマー病又は家族性アルツハイマー型認知症である、項目21又は22記載の組成物。
25.前記家族性アルツハイマー型認知症が、家族性イギリス型認知症又は家族性デンマーク型認知症である、項目24記載の組成物。
26.ハイブリドーマ細胞株DSM ACC 3100。
27.診断法又は治療法における項目1〜20のいずれか一項記載の抗体又は項目21〜25のいずれか一項記載の組成物の使用。
28.アミロイド関連の疾患又は状態の診断のための項目27記載の使用。
29.前記アミロイドーシスが、軽度認知障害、アルツハイマー病、及びダウン症の神経変性からなる群から選択される神経変性疾患である、項目28記載の使用。
30.前記アミロイドーシスが、孤発性アルツハイマー病又は家族性アルツハイマー型認知症である、項目28記載の使用。
31.前記家族性アルツハイマー型認知症が、家族性イギリス型認知症又は家族性デンマーク型認知症である、項目28記載の使用。
32.アミロイド関連の疾患又は状態、特に、アルツハイマー病の診断のためのインビトロ診断法であって、以下の工程:
項目1〜20のいずれか一項記載の抗体を、該疾患又は状態に罹患していることが疑われる対象由来の試料と接触させる工程、及び
該抗体のAβpGlu(11)タンパク質に対する結合を、該試料から検出する工程
を含む、前記インビトロ診断法。
33.項目1〜20のいずれか一項記載の抗体、及び使用説明書、及び‐任意に‐(a)さらなる生体活性物質(複数可)を含む、診断キット。
34.前記さらなる生体活性物質がグルタミニルシクラーゼの阻害剤である、項目33記載の診断キット。
35.配列番号26〜50からなる群から選択されるオリゴヌクレオチド。
(a)放射性同位体、例えば、35S、14C、125I、3H、及び131I。抗体は、例えば、免疫学の最新プロトコル(Current Protocols in Immunology), 第1巻及び第2巻, Gutigenら編, Wiley-Interscience社. New York, New York. Pubs,(1991)に記載されている技術を用いて放射性同位体で標識することができ、放射能は、シンチレーションカウンティングを用いて測定することができる。
(b)蛍光標識、例えば、希土類キレート(ユーロピウムキレート)又はフルオレセイン及びその誘導体、ローダミン及びその誘導体、ダンシル、リサミン、フィコエリスリン、並びにテキサスレッドが利用可能である。蛍光標識は、例えば、免疫学の最新プロトコル(Current Protocols in Immunology)(前掲)に開示されている技術を用いて、抗体にコンジュゲートすることができる。蛍光は、蛍光光度計を用いて定量することができる。
(c)様々な酵素-基質標識が利用可能である。酵素は一般に、様々な技術を用いて測定することができる発色基質の化学的変化を触媒する。例えば、酵素は、基質の色の変化を触媒することができ、この変化は、分光光度法によって測定することができる。或いは、酵素は、基質の蛍光又は化学発光を変化させることができる。蛍光の変化を定量するための技術は上で記載されている。化学発光基質は、化学反応によって電子的に励起されるようになり、その後(例えば、化学発光計を用いて)測定し得る光を放出することができるか、又は蛍光受容体にエネルギーを供与する。酵素的標識の例としては、ルシフェラーゼ(例えば、ホタルルシフェラーゼ及び細菌ルシフェラーゼ;米国特許第4,737,456号)、ルシフェリン、2,3-ジヒドロフタラジンジオン、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ、ウレアーゼ、セイヨウワサビペルオキシダーゼ(HRPO)などのペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、O-ガラクトシダーゼ、グルコアミラーゼ、リゾチーム、サッカライドオキシダーゼ(例えば、グルコースオキシダーゼ、ガラクトースオキシダーゼ、及びグルコース-6-リン酸デヒドロゲナーゼ)、複素環オキシダーゼ(例えば、ウリカーゼ及びキサンチンオキシダーゼ)、ラクトペルオキシダーゼ、ミクロペルオキシダーゼなどが挙げられる。酵素を抗体にコンジュゲートさせるための技術は、O'Sullivanらの文献、酵素イムノアッセイにおける使用のための酵素-抗体コンジュゲートの調製方法(Methods for the Preparation of Enzyme-Antibody Conjugates for use in Enzyme Immunoassay), Methods in Enzym(Langone及びH. Van Vunakis編), Academic Press社, New York, 73:147-166(1981)に記載されている。
(i)セイヨウワサビペルオキシダーゼ(HRPO)と、基質としての水素ペルオキシダーゼ、ここで、該水素ペルオキシダーゼは、色素前駆体(例えば、オルトフェニレンジアミン(OPD)又は3,3',5,5'-テトラメチルベンジジン塩酸塩(TMB))を酸化する;
(ii)アルカリホスファターゼ(AP)と、発色基質としてのパラ-ニトロフェニルホスフェート;及び
(iii)β-D-ガラクトシダーゼ(β-D-Gal)と、発色基質(例えば、p-ニトロフェニル-β-D-ガラクトシダーゼ)又は蛍光基質4-メチルウンベリフェリル-β-D-ガラクトシダーゼ
が挙げられる。
便宜上、本発明の抗体は、キット、すなわち、所定の量の試薬と診断アッセイを実施するための指示書とを包装して組み合わせたものとして提供することができる。抗体が酵素で標識されている場合、キットは、その酵素が必要とする基質及び補因子(例えば、検出可能な発色団又は蛍光団を提供する基質前駆体)を含む。さらに、他の添加剤、例えば、安定化剤、バッファー(例えば、ブロックバッファー又は溶解バッファー)などが含まれていてもよい。アッセイの感度を実質的に最適化する試薬の溶液中濃度を提供するために、様々な試薬の相対量を幅広く変化させることができる。特に、試薬は、溶解時に適切な濃度を有する試薬溶液を提供する賦形剤を含む、通常凍結乾燥された乾燥粉末として提供することができる。
pGlu-Aβ11-38、
pGlu-Aβ11-40、
pGlu-Aβ11-42
である。
アミロイド関連の疾患又は状態、好ましくは、アルツハイマー病の診断のためのインビトロ又はインサイチュ診断法であって、以下の工程:
本発明の抗体を、該状態又は疾患に罹患していることが疑われる対象の、好ましくは、血清、体液、もしくはCSF試料から選択される試料、最も好ましくは、血清試料;又は特定の身体部分もしくは身体領域と接触させる工程;及び
該抗体のAβpGlu(11)ペプチドに対する結合を、該試料から検出する工程:
を含む方法。
(a)アミロイドタンパク質を含むことが疑われる試料又は特定の身体部分もしくは身体領域を、AβpGlu(11)ペプチドに結合する、本発明の抗体、特に、モノクローナル抗体、又はキメラ抗体もしくはその断片、又は本発明の及び本明細書で先に記載したようなヒト化抗体もしくはその断片、及び/或いはこれらの機能的部分と接触させる工程;
(b)該抗体及び/又はその機能的部分を、AβpGlu(11)ペプチドに結合させて、免疫複合体を形成させる工程;
(c)該免疫複合体の形成を検出する工程;並びに
(d)該免疫複合体の有無を、該試料又は特定の身体部分もしくは身体領域中のAβpGlu(11)ペプチドの有無と相関させる工程
を含む、方法に関する。
(a)検討中の組織及び/又は体液を代表する試料を得ること;
(b)該試料を、アミロイドタンパク質の存在について、本発明の抗体、特に、モノクローナル抗体、又はキメラ抗体もしくはその断片、又は本発明の及び本明細書で先に記載したようなヒト化抗体もしくはその断片、並びに/又はこれらの機能的部分を用いて、試験すること;
(c)該タンパク質に結合した抗体の量を決定すること;並びに
(d)該組織及び/又は体液中の斑負荷を算出すること
を含む、方法である。
(1.1 細胞培養技術)
(1.1.1 ハイブリドーマ細胞及び抗体のスクリーニング)
Aβ種に対するモノクローナル抗体(mAb)を産生するマウスハイブリドーマ細胞は、Biogenes GmbH社(Berlin)から提供された。雌BALB/cマウスを、C-末端システイン残基にキーホールリンペットヘモシアニン(KLH)タンパク質が連結された化学合成抗原Aβ(pE11-14)で免疫化した。KLHタンパク質は強力な免疫原であり、ワクチンキャリアタンパク質として適用された。
pEVHH-59025 13-11-6(クローン13)
ハイブリドーマ細胞を、細胞培養フラスコ中、37℃で、及び5%CO2の加湿雰囲気で培養した。培養用D-MEM培地(L-グルタミン、ピルビン酸ナトリウム、4.5g/lグルコース入り、Invitrogen社)に、15%FBS及び1%MEM-NEA(非必須アミノ酸、Invitrogen社)を補充した。培養培地の使用直前に、50mM β-メルカプトエタノールのストック溶液及び200mM L-グルタミンの新鮮な解凍ストック溶液を、少なくとも50μM β-メルカプトエタノール及び2mM L-グルタミンの最終濃度で用いた。細胞の継代培養を、ルーチンに、細胞密度に応じて、週に2回行なった。細胞密度は、1×106〜2×106生細胞/mlであることとした。ハイブリドーマ細胞の継代のために、部分的接着細胞を、細胞懸濁液をピペッティングで慎重に上下させることによりボトルの底から剥離させ、ファルコンチューブに移し、300×gで5分間遠心分離した。その後、mAbを含む細胞培養上清を吸引し、その後、リザーバに収集して、4℃で貯蔵した。SPR測定のために、試料(100μl)を細胞培養上清から採取した。細胞ペレットを新鮮な培養培地で再懸濁した後、細胞密度を、Casy(登録商標) Cell Counter(Scharfe System GmbH社、Reutlingen)を用いることにより決定した。したがって、細胞懸濁液をCasy(登録商標)ton(生理食塩水溶液)に10倍希釈し、その後、100μlの細胞希釈液を9900μl Casy(登録商標)tonに移した。この装置は、電流排除により、生細胞及び死細胞の量、並びに試料中の1ml当たりの全細胞量を決定した。無傷の細胞膜を有する生細胞が電流を排除するのに対し、欠陥細胞膜を有する死細胞は導電性となる。その後、細胞を、細胞成長に応じて、1×105〜5×105生細胞/mlの密度で、T型フラスコ(要件に応じて、25cm2〜175cm2)中に播種した。
対数成長期にあり、かつ85%を超える生存率を有するハイブリドーマ細胞を凍結保存した。細胞の凍結は、できるだけ早く、少ない継代数で行なうこととした。ハイブリドーマ細胞を300×gで5分間遠心分離し、7×106生細胞/mlの濃度で、45%培養培地(D-MEM、1%MEM-NEA、15%FBS)、45%非働化胎仔ウシ血清(FBS)、及び10%ジメチルスルホキシド(DMSO)に再懸濁した。細胞懸濁液を1mlアリコートでクライオバイアルに素速く移した。1分間当たり1℃の緩徐な冷却速度を保証するために、クライオバイアルを、QUALIFREEZEのイソプロピルアルコールで満たした凍結容器の内部に入れた。この凍結容器を-80℃で最大48時間貯蔵した。その後、クライオバイアルを-196℃の液体窒素に移した。
液体窒素中で貯蔵したハイブリドーマ細胞を、氷の塊が内部に少ししか残らなくなるまで、37℃の水浴中で急速解凍した。使用された凍結培地は、4℃よりも高い温度で細胞毒性効果を有するDMSOを含んでいた。したがって、細胞培養培地は、4℃に冷却することとした。細胞懸濁液をファルコンチューブ中に移し、5mlの4℃の培養培地で液滴希釈した。細胞をすぐに300×gで5分間遠心分離し、細胞毒性のある凍結防止剤DMSOを含む上清を吸引した。細胞ペレットを37℃の加熱細胞培養培地に再懸濁し、25cm2 T型フラスコに、1 ml当たり5〜7×105生細胞の細胞密度で播種した。
ハイブリドーマ細胞を2カ月毎にマイコプラズマ汚染について調べた。したがって、Lonza社製のMycoAlert(登録商標)マイコプラズマ検出キットを用いて、細胞培養上清を検査した。このアッセイは、特定のマイコプラズマ酵素の活性を利用する選択的生化学検査である。生きたマイコプラズマを溶解させると、その酵素がMycoAlert(商標)基質と反応して、ADPからATPへの変換を触媒する。放出される光の強度がATP濃度と相関するので、ATPレベルの増加を、生物発光反応を用いて検出することができる。
ハイブリドーマ細胞は、静止懸濁培養(例えば、T型フラスコ)で、及び撹拌懸濁培養(例えば、振盪フラスコ)で成長する。抗体産生のために、ハイブリドーマ細胞を、T型フラスコ中での静止培養と並行して、約7日間、振盪フラスコ中で培養した。細胞を、3×105及び5×105細胞/mlの密度で振盪フラスコ中に播種した。細胞培養培地(D-MEM、1%MEM-NEA、15%FBS、又は超低IgG FBS)に、0.5%ゲンタマイシン、50μM β-メルカプトエタノール、及び2mM L-グルタミンを補充した。最適なガス交換を促進するために、全振盪フラスコ体積の約30%しか培地で満たさなかった。振盪フラスコ中の懸濁培養物を、37℃、5%CO2でインキュベートし、80rpmで回転させた。7日間のインキュベーションの後、細胞懸濁液をピペットでファルコンチューブに移し、500×gで10分間遠心分離した。その後、抗体を含む細胞培養上清をリザーバに収集し、4℃で貯蔵した。SPR測定のために、細胞培養上清の試料を採取した。細胞ペレットを廃棄した。
無血清培地の適用は、血清補充培地とは対照的に、産生されたmAbの精製を簡単にする。無血清培地は、BSA及びウシ免疫グロブリン(例えば、IgG)を含まず、mAbの精製を容易にする。高い細胞生存率及び抗体産生率を保証するために、細胞を、血清濃度の段階的低下によって、血清含有培地(D-MEM、15%FBS、1%MEM-NEA)から無血清条件へと適応させなければならない。したがって、細胞は、適応前に、穏やかな対数成長期にあり、生存率は90%超であることとした。以下の様々な無血清培地及び無タンパク質培地を試験した(表2を参照)。
7日間にわたる成長曲線を無血清培地及び血清含有培地中でのハイブリドーマ細胞成長の長期解析用に作成した。ハイブリドーマ細胞を振盪フラスコ中で培養した。したがって、125ml-振盪フラスコに、30mlの作業容量の細胞懸濁液を、37℃、5%CO2で播種し、80rpmで振盪させた。細胞培養上清中の細胞数及び抗体濃度の決定のために、定期的に、300μlの試料を振盪フラスコから得た。培地の最適化のために、15%FBS又は15%超低IgG-FBS(Invitrogen社)を含む血清含有培地、並びにPAA社及びGIBCO社製の無血清無タンパク質培地を試験した。
(1.2.1 親和性クロマトグラフィー)
ハイブリドーマ細胞培養上清中に濃縮されたmAbを親和性クロマトグラフィーを用いて精製した。したがって、6%架橋デキストラン支持材(GE Healthcare社、Uppsala)にカップリングした組換えプロテインGを含むHiTrap プロテインG HP(5ml)カラムを用いた。プロテインGは、G群連鎖球菌細菌の細胞表面タンパク質であるが、これは、非免疫機構によって哺乳動物IgGのFc領域に結合するIII型Fc受容体である。Fc受容体は、アルブミンの結合領域も有する。しかし、アルブミン結合部位は、組換え型のプロテインGから遺伝的に欠失されており、その結果、アルブミンとの望ましくない交差反応を回避し、したがって、FBSを含有する細胞培養上清からの抗体の精製が可能となる。しかしながら、プロテインGは、マウスIgGの他に、ウシIgGにも結合する。この理由により、ハイブリドーマ細胞の培養には、5μg/ml未満のIgGを含有する超低IgG-FBS(Invitrogen社)を用い、また、無血清及び無タンパク質培地もハイブリドーマ培養に用いた。
SDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動法は、タンパク質を電場内でのその分子量によって分離するために用いられる。洗剤のSDS(ドデシル硫酸ナトリウム)を用いて、ポリペプチドの固有の電荷をポリペプチドに対するSDSの蓄積(1.6アミノ酸当たり約1分子)によって隠した。それに関して、電気泳動移動度はタンパク質の分子量に大きく左右される。タンパク質の還元のために、プローブをSDS試料バッファー(Roti(登録商標)-Load 1、BioRad社)で1:3(v/v)の割合で希釈し、95℃で10分間インキュベートした。SDS試料バッファーは、タンパク質のジスルフィド結合を還元するβ-メルカプトエタノールを含み、抗体の重鎖と軽鎖を生じさせる。還元すべきでない試料は、β-メルカプトエタノールを含まない試料バッファー(250mM Tris-HCl pH8.0、5%(w/v)SDS、50%(v/v)グリシン、0.005%(w/v)ブロモフェノールブルー)で希釈した。バッファーを試料と1:4(v/v)の割合で希釈した。試料をポリアクリルアミドゲルに適用する前に、プローブを、30℃で30分間、軽く振盪させた。本研究では、解析すべき抗体の存在及び純度の検討のために、親和性クロマトグラフィーの画分(第1.2.1章を参照)をSDS-PAGEで調べた。タンパク質の分離を12%ポリアクリルアミドゲル(組成については、表3を参照)中で行なった。電気泳動を、1×ランニングバッファー(30.3g/l Tris、10g/l SDS、144g/lグリシン)を満たした水平カッティングチャンバー内で行ない、100Vで10分間から始めて、その後、200の定電圧に上昇させた。プローブの他に、プレステインタンパク質ラダー(10〜250kDa、Fermentas社)を分子量を参照として適用した。
透析膜の半透性を用いることによる貯蔵バッファー(2mM EDTAを含むD-PBS(pH7.13))中での抗体溶液の変換のために、透析を用いた。親和性クロマトグラフィーによる抗体精製の後、抗体を含む溶出画分を透析した。最初に、チューブの半透性、柔軟性を得るために、及び防腐剤を除去するために、透析チューブを蒸留水に浸漬させた。6〜8kDaのカットオフ閾値を有する透析チューブを抗体溶液で満たし、貯蔵バッファーに懸濁させた。この後、抗体溶液を、4℃で一晩、常に撹拌しながら、試料の100倍の容量に対して透析した。その後、濃度をUV/VIS分光法で決定した。抗体溶液を、5kDaのカットオフ閾値を有するVIVASCIENCE社製のVIVASPIN 20ml CONCENTRATOR“-チューブを用いて、少なくとも2mg/mlに高濃縮した。抗体溶液を、4℃及び3500×gで、Sigma社製のSwing-Out-Rotor中で遠心分離した。最後に、抗体を、2mM EDTAを含むD-PBS(pH7.13)に対して透析した。
mAbマウス抗Aβ11(pE)(クローン13)のビオチン化は、Aβ11(pE)ELISAで、生体試料中のAβ(pE11-x)ペプチドを特異的に検出する抗体として適用するために必要とされた。検出のために、ストレプトアビジン-ペルオキシダーゼポリマーをビオチン化抗体に添加し、それにより、ストレプトアビジンとビオチンの間での強い非共有結合的相互作用が形成された。
(1.3.1 UV/VIS-分光法)
抗Aβ11(pE)抗体の精製後、UV/VISスペクトルを決定した。タンパク質濃度の決定のために、280nmでの吸収、さらには240nm〜339nmのUVスペクトルを、Thermo Scientific社のUV-分光計UV1で測定した。タンパク質濃度を吸収A280及び減衰係数により決定した。ε=1.5の減衰係数を抗Aβ11(pE)抗体について仮定した。
精製抗Aβ11(pE)抗体を10mM NaH2PO4(pH7.14)に対して透析した。濃度をUV/VIS分光法により決定した(第1.3.1節を参照)。CD分光法のために、抗体を0.13mg/mlの濃度に希釈し、石英ガラスキュベット(d=0.1cm)に入れた。CDスペクトルをJasco J-710分光旋光計(Jasco GmbH社、Groβ-Umstadt)で190〜260nmで測定した。20℃の温度でのスペクトルを20回蓄積して測定した。その後、温度を20℃〜最大80℃に上昇させ、それにより、楕円率を5℃間隔で10回蓄積して測定した。発熱率は30K/hであり、温度は、各測定の前に180秒間平衡化された。
(1.3.3.1 CM5チップ上へのリガンドの固定化)
ヘキサフルオロイソプロパノール(HFIP)中に-80℃で貯蔵された合成Aβ(pE11-30)ペプチドを室温で解凍した。このペプチドを含むチューブをドラフト下で一晩開けたままにして、溶媒のHFIPを蒸発させた。10mM酢酸ナトリウム、pH5を用いて、ペプチドを1mg/mlの濃度に希釈した。
抗Aβ11(pE)抗体濃度の測定のために、Aβ(pE11-30)がコーティングされたCM5チップを用いた。チップ表面をペプチドで飽和させると、シグナルは約1000応答単位(RU)となった(第1.3.3.1節を参照)。細胞培養上清中に含まれるmAbを、抗体解析のためにランニングバッファー(HEPES EDTAバッファー(HBS-EP)、Biacore社)に適切に希釈した。最初に、センサーチップのフローセルをランニングバッファーですすいだ。その後、抗原に対する抗体の結合を特徴付けるために、抗Aβ11(pE)を含む抗体溶液を30μl/分の流速で300秒かけて注入した。未修飾のフローセルを参照として用いた。これは、抗体とマトリックスとの非特異的な相互作用しか示さないはずである。その後、ランニングバッファーを切替えバルブによって再び自動的に注入し、抗体の解離を誘発させた。最後に、チップを0.1M HCl(10μl)の注入によって再生し、それにより、残存する抗体をセンサー表面から除去した。結合の評価は、プログラムBIAevaluation(Biacore社、Freiburg)によって行なった。
ピログルタメート-ペプチドAβ3(pE)、Aβ11(pE)、CCL2(MCP-1として知られる)、CCL8(MCP-2として知られる)、大ガストリン、ゴナドリベリン、ニューロテンシン、オレキシンA、フィブロネクチン、コラーゲン1、及びTRH(チロトロピン放出ホルモン)に対する抗Aβ11(pE)抗体(クローン13)の交差反応性をSPRにより試験した。したがって、高濃度のピログルタメートペプチドが固定化されたCM5チップを用いた。抗体クローン13をランニングバッファーに希釈し、1μg/mlで30μl/分の流速で300秒かけて注入した。
(1.3.4.1 熱力学的パラメータの決定)
ITCにより、クローン13由来の抗Aβ11(pE)抗体の抗原Aβ11(pE)に対する結合の熱力学的パラメータを決定した。ITC実験については、親水性PEG基が親水特性を与えるという理由で、ペプチドAβ(pE11-18)-PEGを用いたため、ペプチドをITCバッファーに直接溶解させることができた。Aβ(pE11-20)を用いた以前の実験は、ペプチドの強い疎水性のために、1〜2%DMSOを用いてしか行なうことができず、それを、ITC結合特性に影響を及ぼし得るDMSOに溶解させる必要があった。最初に、抗体をITCバッファー(150mM NaCl、25mM Na2HPO4、25mM KH2PO4、1mM EDTA、pH=7.1)に対して4℃で一晩透析した。-20℃で貯蔵された凍結乾燥ペプチドを、抗体透析に使用されるのと同一のITCバッファー、pH=7.1に溶解させた。抗体と抗原は両方とも同一の溶液中になければならず、さもなければ、大きな希釈熱によって、所望の観察結果が見られなくなる。ITC実験の前に、抗体の濃度をUV/VIS 分光法により決定した(第1.3.1節を参照)。最初に、例えば、5.13μMの抗体(表4を参照)を試料セルに添加し、参照セルを蒸留水で満たした。その後、抗原を、例えば、81.78μM(表4を参照)で試料セルに注入した。抗体が2つの結合部位を有するということを念頭に置いて、抗原は、通常、抗体に対して2倍過剰であることとし、抗原は、抗体に対して少なくとも4倍過剰でセルに存在した。30回の注入(1×2μl及び29×10μl)を行ない、次の注入までの間を4分間隔とした。反応熱の測定を20℃で行なった。さらに、ITCバッファー(pH=7.1)中への滴定による抗原の希釈によってしか生成されない反応熱を決定した。したがって、抗原をITCバッファーで満たした試料セルに注入した。抗体に対する抗原の滴定時に生成される反応熱をこの値について補正した。生データの解析、並びに会合定数(KA)、反応化学量論比(n)、結合エンタルピー(ΔH)、及びエントロピー(ΔS)の決定をOriginソフトウェアのMicroCalを用いて行なった。
(1.4.1 研究PBD-0316)
AD患者(n=13)及び30人の健常対照由来の血漿及び血清試料を本研究で解析した。この43の解析試料は初期研究に由来するものであり、これらは、CRO(GALMED GmbH)を通じて集められた。これらの試料は、ADの臨床診断を有する患者及び対照群から得られたものであった。研究前の検査において、本研究の参加者全員の神経心理学的機能をいくつかの心理試験(DemTect、ミニメンタルステートテスト、時計描画テスト)により試験した。DemTectスケールは、5つの短い下位テスト(10単語のリストの反復、数字の変換、意味的単語の流暢性課題、逆方向数唱、単語リストの遅延再生)を含む、認知症についての簡易スクリーニングテストである(Kesslerらの文献、2000, Psycho 26 343-347)。ミニメンタルステート検査(MMSE)又はFolsteinテストは、認知を評価するために用いられる30点の簡易アンケートテストである。それは、認知症についてスクリーニングするために医療で一般に用いられる。約10分間で、それは、計算力、記憶、及び見当識を含む様々な機能をサンプリングする。このテストは、いくつかの領域の簡単な質問及び問題:テストの時間及び場所、単語リストの反復、計算力、言語使用及び理解、並びに基本的な運動能力を含む。
(1.4.2.1 自己-Ig-ELISAの実施及び確立)
アルツハイマー病(AD)患者及び健常対照由来の血漿試料中の自己免疫グロブリンの解析のために、自己-Ig-ELISAを実施し、確立した。特に、Aβペプチド及びBri2ペプチドのpE-N-末端に対する自己免疫グロブリンを試験することとした。自己-Ig-ELISAは、直接サンドイッチELISAの原理に従って構築される。したがって、ストレプトアビジンコーティングされたマイクロプレート(Thermo Scientific社)を、C-末端でビオチン化されているペプチドAβ(pE3-12);Aβ(pE11-20)、及びBri2(1-23)の固定化に用いた。最初に、ストレプトアビジンプレートを300μlの洗浄バッファー(25mM Tris、150mM NaCl、0.05%Tween、0.1%BSA)で3回洗浄して、プレートを清浄化し、防腐剤を除去した。その後、100μlの200ng/mlのペプチド溶液を添加し、室温(RT)で2時間インキュベートした。マイクロプレート(MTP)をカバーシートで覆って、インキュベーション時間中の蒸発を防止した。MTPを、200μl/ウェルのTween 20を含まないELISA-Blocker(ELISA-Blocker(-T))でブロッキングし、RTで1時間インキュベートした。この後、300μlの洗浄バッファーで3回洗浄することにより、未結合のペプチドを除去した。EDTA-血漿試料をELISA-Blocker+Tween 20(ELISA-Blocker(+T))に適当に希釈した。校正曲線のために、基数2の分割を行なうことにより、mAbをELISA-Blocker(+T)又は洗浄バッファーに希釈した。希釈した標準及びEDTA-血漿試料を1ウェル当たり100μlでMTPに移した。決定量に応じて、試料及び校正物質をいくつかのウェルにピペッティングして入れた。4℃で2時間のインキュベーション時間の後、新たな洗浄サイクルを続けた(300μl/ウェルの洗浄バッファーで3回)。西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)とコンジュゲートしたポリクローナルウサギ抗マウスIgを校正物質の検出に用いた。HRPとコンジュゲートしたポリクローナル抗ヒトIgであるIgG、IgG2、IgG3、IgM、又はIgAを、酵素コンジュゲート溶液として、EDTA-血漿からの自己免疫グロブリンの検出に用いた。酵素コンジュゲート溶液をELISA-Blocker(+T)で1μg/mlの濃度に希釈した。各ウェル中に、100μlの酵素コンジュゲート溶液をピペッティングし、4℃で1時間インキュベートした。洗浄サイクル(300μl/ウェルの洗浄バッファーで3回)を続けた。テトラメチルベンジジン(TMB、色原体)及び過酸化水素(基質)を含むペルオキシダーゼ基質溶液Sure Blue(KLP社)を100μl/ウェルで添加した。HRPは、2つの過酸化水素分子の水と酸素への分解を触媒し、それにより、色原体TMBのアミノ基由来の2つの電子が基質に転移される。TMBからの電子の放出(酸化)によってラジカルカチオンが生じ、これが二量体化によって安定化されて、典型的な青色を呈する。したがって、色原体の色は、電子の転移によって無色から青色へと変化させられる。溶液の色の強度は、検体濃度に比例する。RTで30分間のインキュベーションの後、酵素反応を1M H2SO4溶液でペルオキシダーゼの不活化により停止させ、TMBの二量体化を無効化した。不均衡化の後、強い黄色の二価カチオンが形成された。吸収を450nmの波長で測定し、540nmでの吸光度で補正した。450nm及び540nmでの吸収をTECAN Sunriseプレートリーダーで測定した。
例えば、マウスモデルの大脳のAβ(pE11-x)ペプチドの解析のために、Aβ(pE11-x)ELISAを確立することとした。血漿又はCSF中のpyroGlu Aβペプチドの検出は、オリゴマーの血液脳関門通過が低下する高い凝集傾向のために不可能である。
免疫組織化学(IHC)画像は、BostonのHarvard Medical SchoolのQiaoqiao Shi(C. Lemereの研究室)から好意により提供された。
(ハイブリドーマ細胞の培養:)
ハイブリドーマ細胞を、15%FBS、1%MEM-NEA(非必須アミノ酸、Gibco社)、50μg/mlゲンタマイシン(Gibco社)、及び50μM β-メルカプトエタノールを添加した、D-MEM(+L-グルタミン、+ピルビン酸-Na、4.5g/lグルコース、Gibco社)中で、37℃及び5%CO2で成長させた。細胞密度に応じて、3〜4日後に継代培養を行なった。細胞を、0.5×106細胞/mlの濃度で播種し、2〜5×106細胞/mlの細胞密度で分割を行なった。
全RNAを、NucleospinRNA単離キット(Macherey-Nagel社)のマニュアルに従って、2×106個の細胞から単離した。100ngのRNAを、オリゴ(dT)15プライマー(Promega社)及びSuperscript III逆転写酵素(Invitrogen社)を用いることにより、cDNA合成に適用した。
重鎖可変領域は、Phusion(商標)高忠実度DNAポリメラーゼ(NEW ENGLAND BioLabs社)を、プライマーMHV1〜MHV12と組み合わせたプライマーMHCG1とともに用いることにより、鋳型cDNAから増幅させた。軽鎖可変領域の増幅には、MKCとプライマーMKV1〜MKV11とのプライマー組合せを用いた(表8を参照)。
PCRにより増幅された重鎖及び軽鎖可変領域を、pJET1.2/平滑端ベクターに、CloneJET(商標)PCRクローニングキット(Fermentas社)のプロトコルに従ってクローニングした。配列決定は、pJET1.2配列決定プライマーを用いて行なった。
(2.1 抗体スクリーニング)
細胞融合、及びHAT培地によるハイブリドーマ細胞の選択の後、ハイブリドーマ細胞(いくつかの異なる単一細胞に由来する)をスクリーニングして、標的抗原Aβ11(pE)に対する特異的mAbを同定した。これらのmAbを、異なる修飾Aβペプチドに結合するその能力に関して調べた。その結果、mAbと他の修飾Aβペプチドとの交差反応の可能性が判明した。ヒドロキシ-セルロース-メンブレンにスポットされた異なる配列を有するAβペプチドを図1に示す。スクリーニングは、16種の異なるAβペプチドに対して試験された26種のハイブリドーマ細胞上清を用いて行なわれた。
抗Aβ抗体を産生するハイブリドーマ細胞を用いて予備試験を行なった。この試験において、Aβ3(pE)に対する抗体を産生するハイブリドーマ細胞の最適な培養条件を決定した。15%FBS、1%MEM-NEAA、2mM L-グルタミン、及び50μM β-メルカプトエタノールを補充した培地DMEMで培養されたハイブリドーマ細胞は、高い増殖率及び抗体産生率を有することが示された。したがって、本研究では、選ばれたハイブリドーマクローン(クローン13)を最適化された条件に従って培養した。
細胞培養上清からの抗Aβ11(pE)抗体の濃度を表面プラズモン共鳴(SPR)の原理を用いてBiacore 3000で決定した。したがって、ペプチドAβ(pE11-30)をCM5チップのセンサー表面に固定化した(第1.3.3.1節の方法を参照)。図2に、Aβ(pE11-30)の固定化を経時的なリアルタイムプロットで示す。最初に、10μg/mlのAβ(pE11-30)でカップリングを行なった。ペプチドカップリング中に、シグナルが立ち上がった(図2、印を付けたAを参照)。シグナルが低かったので、ペプチドをより高濃度の50μg/mlで再び適用した(図2、印を付けたBを参照)。手短に言うと、高濃度のペプチドをチップ表面に固定化した。細胞培養上清からの抗体含有量の決定には、高濃度の固定化ペプチドが必要であった。それにより、さらに低い抗体濃度の検出が可能となり、標準曲線の線形範囲も、より低濃度の固定化ペプチドの場合よりも高くなる。チップの過負荷は、結合研究、並びに解離速度kd及び会合速度kaのような結合速度の決定には適さなかった。抗原濃度が高いため、抗体の多重結合相互作用が可能となり(結合力の効果)、それにより、不適切な結合速度及び人為的に低い解離速度(off rate)がもたらされる。
細胞培養上清からのマウス抗Aβ11(pE)mAbのプロテインG親和性精製を簡単にするために、ハイブリドーマ細胞(クローン13)を血清含有培地(SCM)から様々な無血清(SFM)及び無タンパク質培地へと適応させた。プロテインGは、特異的にかつ高い親和性でマウス免疫グロブリンG分子に結合する。FBSに含まれるウシIgGもプロテインGから強く結合され、望ましくない交差反応が可能になる。したがって、ウシIgGが精製抗体溶出画分に含まれるのを排除するために、無血清培地又は無タンパク質培地をハイブリドーマ細胞の培養に用いることとした。
ELISA及びさらなる実験で用いられるように、クローン13由来の抗体である抗Aβ11(pE)を細胞培養上清から均質になるまで精製することとした。抗体をプロテインGセファロースカラムで精製した(第1.2.1節を参照)。結合した抗体を2つの異なる方法に従って溶出させた。最初に、酸性の0.1M グリシン-HCl溶液(pH2.7)を用い、溶出画分を、1M Tris-HCl、pH9.0による滴定によって、すぐに中和した。中和プロセスでは、酸性溶出時の抗体の起こり得る構造変化のために、抗体が強く沈殿した。
Aβ(pE11-x)ELISAにおける検出抗体として適用するために、抗Aβ11(pE)抗体をビオチン化した。抗体-ビオチン溶液を透析して、コンジュゲートされていないビオチンを除去した。1.88mg/mlのビオチン化抗体(MW 150,000)の濃度がUVスペクトルによって決定され、続いて、ビオチン化レベルがHABAアッセイによって決定された。
(2.4.1 抗体可変領域の配列決定)
以下の配列を同定した:
ビオチン化及び非ビオチン化抗Aβ11(pE)抗体の二次構造をCD分光法で調べた。ビオチン化プロセスによる二次構造のあり得る変化を解析した。10mMリン酸ナトリウム、pH7.1に溶解した130μg/mlの抗体(ビオチン化及び非ビオチン化)を用いて、CD測定を行なった。図13に、20℃での抗体の遠UV-CDスペクトルを示す。ビオチン化及び非ビオチン化抗体のスペクトルはほぼ同一であり、どちらの抗体も、β-シートタンパク質に典型的である218nmでの最小値及び200nmでの最大値を示した。これらの結果から、ビオチン化が二次構造に影響を及ぼさないことが示された。同じCDスペクトルは、同一の二次構造を示し、したがって、結合特性への影響がないことを示すが、これは、ITC又はELISAでの結合特性を含意するものではなかった。
円二色性を用いて、環境条件によって二次構造がどのように変化するかを観察することができる。熱的なタンパク質安定性は、温度の増加に伴うスペクトルの変化を追跡することにより、CDを用いて評価される。図14及び図15に、20℃〜最大80℃の温度でのビオチン化及び非ビオチン化抗Aβ11(pE)抗体のスペクトルを示す。60℃の温度から、スペクトルの軌道が変化した。β-シートタンパク質の典型的なシグナルである約201nmでの最大値は、60℃の温度で減少し、80℃で最小になった。これらの結果から、非ビオチン化及びビオチン化抗体が60℃で変性し始めることが示された(Tm≒65℃)。したがって、抗体の温度安定性は、最大60℃まで与えられた。これらの結果は、IgGの正常な範囲内にあり、かつ他の研究と一致しており、例えば、S. Freyは、モノクローナルIgGの融解温度が63℃であることを明らかにした(S. Freyらの文献、2008, Biol. Chem., Vol. 389, pp. 37-45)。どちらの抗体も、20℃〜最大60℃の範囲に、約218nmでの最小値及び201nmでの最大値を有する同一のCDスペクトルを示し、ビオチン化がタンパク質安定性に影響を及ぼさなかったことを示している。
抗Aβ11(pE)抗体のAβ(pE11-18)-PEGペプチドに対する結合を特徴付けるために、等温滴定熱量測定法(ITC)という方法を用いた(第1.3.4節を参照)。プロテインGカラムからKSCN勾配(pH7.0)及び0.1M グリシン-HCl(pH2.7)で溶出される抗体を解析した。ITCにより、反応化学量論比(N)、会合定数(KA)、結合エンタルピー(ΔH)、及びエントロピー(ΔS)を決定した。ペプチドを抗Aβ11(pE)抗体に対してITC MicroCalorimeterで第1.3.4.2節に記載の通りに滴定した。滴定曲線は、時間の関数としての秒当たりの熱を示す(図16を参照)。反応パートナーが相互作用し、結合事象の量に正比例して、熱が放出又は吸収される。抗原の各々の注入は、温度の変化をもたらす。試料セルとを参照セルの間の温度差を相殺するために、試料セルに対する熱の付加又は除去が行なわれ、これが測定シグナルとしての役割を果たす。
ピログルタメート-ペプチドCCL2(MCP-1として知られる)、CCL8(MCP-2として知られる)、大ガストリン、ゴナドリベリン、ニューロテンシン、オレキシンA、フィブロネクチン、コラーゲン1、及びTRH(チロトロピン放出ホルモン)に対する抗Aβ11(pE)抗体(クローン13)の交差反応性をSPRにより試験した(データは示さない)。試験された抗体は、いくつかのピログルタメート-ペプチドとの交差反応性を示さなかった。さらに、AβpE(3-40)及びAβpE(11-30)に対する抗体クローン13の交差反応性をSPRで試験し、それにより、この抗体をその反応性に関して比較することとした。図20に、クローン13のAβpE(11-30)及びAβpE(3-40)ペプチドに対する経時的なリアルタイムプロットを示す。
(2.5.1 自己-Ig-ELISAの確立)
AD患者及び健常対照由来の血漿試料中の自己免疫グロブリンの解析のために、抗Aβ11(pE)、抗Aβ3(pE)、及び抗Bri-2(pE1)自己抗体ELISAを確立した(表5を参照)。これらのELISAは、異なる抗体クラスIgG、IgM、IgA、サブクラス(IgG2、IgG3)、及び全免疫グロブリンIgの解析用に開発された。最適化プロセスの初めに、あまりにも高いバックグラウンドシグナルが測定され、そのため、ペプチド(200ng/ml)の固定化の後、ブロッキングを行なわなかった。したがって、ELISA-Blocker(-T)及びPBS/10%FBS/0.05%Tweenを、ブロッキングについて、並びに試料及びコンジュゲートの希釈について試験した。ELISA-Blocker(-T)は、全ての自己-Ig-ELISAにおいて最も低いバックグラウンドシグナル及び最も高いシグナルノイズ比を示した。
4G8捕捉抗体及びビオチン化抗Aβ11(pE)検出抗体を用いたサンドイッチELISAによるAβ11(pE)ELISAの実施は、弱くかつ一貫性のないシグナルを示した(結果は示さない)。ペプチドAβ(pE11-30)及びAβ(pE11-40)の検出は、弱いシグナルしか検出しなかった。どちらのAβペプチドも非常に疎水性であり、貯蔵時のペプチドの容器壁に対する付着を避けるために、ペプチド溶液をELISAで用いる直前に調製した(HFIPを蒸発させ、アルカリに溶解させた)が、やはりシグナルは検出されなかった。予想される問題は、エピトープAβ(17-24)と一緒になった捕捉4G8抗体と、エピトープAβ(pE11-15)と一緒になった検出抗体との間の立体障害によって生じる可能性があった。4G8及び抗Aβ11(pE)抗体の抗体反応性を直接試験するために、Aβペプチドを吸着させた直接ELISAを行なった。使用直前に、HFIPを蒸発させ、その後、AβペプチドをNaOHに溶解させた(RTで10分)。希釈中のペプチドがポリプロピレンバイアルに対して付着しないことを保証するために、疎水性の強いAβ(pE11-30)ペプチドをマイクロプレートで直接PBSにすぐに希釈することとした。図22及び23に、ビオチン化抗Aβ11(pE)抗体及び4G8の使用によるELISAシグナルを示す。抗Aβ11(pE)抗体は、Aβ(pE11-30)濃度依存的な様式で強いELISAシグナルを示し、ナノグラム範囲のAβペプチドを検出した。結論として、ビオチン化抗Aβ11(pE)抗体は、このペプチドを認識し、検出抗体としての適用に好適であった。
抗Aβ11(pE)抗体(クローン13)を用いて、AD患者及びトランスジェニックAPP/PS1マウス由来の脳切片の免疫染色を行なった。ヒトAD症例1〜3のIHC画像を図24に示す。
本研究では、Aβ(pE11-x)エピトープに対するクラス及びサブクラスIgG、IgM、IgA、全免疫グロブリンIg、IgG2、及びIgG3の自己抗体のレベルを検討した。目的は、AD患者のAβ自己抗体プロファイル間のあり得る相関を解析する診断用ADバイオマーカー候補を見出すことであった。したがって、ADの臨床診断を有する患者及び健常対照群に由来する血漿試料を検討した。AD患者由来の13の血漿試料及び健常対照由来の30の血漿試料を研究PBD-0316(T0+6カ月)から得た。この解析には、本研究で確立された(第1.4.2.1節を参照)自己-Ig-ELISAを用いた。結果を図26及び27に示す。
AβN11pE-xを特異的に認識するモノクローナル抗体を作製した。現在、モノクローナル抗体を発現する対応するハイブリドーマ細胞株13-11-6は、ブダペスト条約に準拠して寄託されており、ドイツブラウンシュヴァイク(Braunschweig, DE)のドイツ微生物・培養細胞収集有限会社(Deutsche Sammlung fur Mikroorganismen und Zellkulturen(DSMZ))において、寄託日2010年12月14日付けで、それぞれの寄託番号
(クローン13-11-6):DSM ACC 3100
で入手可能である。
Claims (35)
- AβpGlu(11)ペプチド又はその変異体に、好ましくは高い親和性で結合することを特徴とする、抗体。
- 前記高い親和性が、10-7M以下の解離定数(KD)値を意味する、請求項1記載の抗体。
- 前記抗体が、モノクローナル抗体である、請求項1又は2記載の抗体。
- 前記抗体の軽鎖の可変部分が、配列番号51のヌクレオチド配列、又は配列番号52のアミノ酸配列を有する、請求項1〜3のいずれか一項記載の抗体。
- 前記抗体の重鎖の可変部分が、配列番号53のヌクレオチド配列、又は配列番号54のアミノ酸配列を有する、請求項1〜4のいずれか一項記載の抗体。
- 前記抗体の軽鎖の可変部分が、配列番号51のヌクレオチド配列、又は配列番号52のアミノ酸配列を有し、かつ前記抗体の重鎖の可変部分が、配列番号53のヌクレオチド配列、又は配列番号54のアミノ酸配列を有する、請求項1〜5のいずれか一項記載の抗体。
- 前記抗体が、Aβ13-11-6(寄託番号DSM ACC 3100)又はその機能的変異体である、請求項1〜6のいずれか一項記載の抗体。
- 前記抗体が、Aβ13-11-6(寄託番号DSM ACC 3100)である、請求項7記載の抗体。
- 前記抗体が、ヒト化もしくはキメラ抗体、又は高親和性を保持する抗体断片である、請求項1〜8のいずれか一項記載の抗体。
- AβpGlu(11)ペプチド又はその変異体の検出における使用のための、請求項1〜9のいずれか一項記載の抗体。
- 前記変異体が、以下の群:
pGlu-Aβ11-38変異体
pGlu-Aβ11-40変異体
pGlu-Aβ11-42変異体、及び
pGlu-Aβ11-x変異体
から選択され、
ここで、xは、18〜42、より好ましくは、30〜42の整数である、請求項10記載の抗体。 - ヒトのものである、請求項1〜11のいずれか一項記載の抗体。
- 高親和性を保持するダイアボディ又は単鎖抗体である、請求項1〜12のいずれか一項記載の抗体。
- 請求項11に記載の抗体によって結合されるエピトープに結合する、請求項1〜13のいずれか一項記載の抗体。
- 請求項11に記載の抗体の相補性決定領域を有する、請求項1〜14のいずれか一項記載の抗体。
- 前記抗体の軽鎖の可変部分が、配列番号51のヌクレオチド配列、又は配列番号52のアミノ酸配列を有する軽鎖の可変部分を有する抗体の1以上の、例えば、1つ、2つ、又は3つの相補性決定領域と同じである、1以上の、例えば、1つ、2つ、又は3つの相補性決定領域を有する、請求項1〜15のいずれか一項記載の抗体。
- 前記抗体の軽鎖の可変部分が、配列番号53のヌクレオチド配列、又は配列番号54のアミノ酸配列を有する重鎖の可変部分を有する抗体の1以上の、例えば、1つ、2つ、又は3つの相補性決定領域と同じである、1以上の、例えば、1つ、2つ、又は3つの相補性決定領域を有する、請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体。
- 標識されている、請求項1〜17のいずれか一項記載の抗体。
- 固相に固定化されている、請求項1〜18のいずれか一項記載の抗体。
- ハイブリドーマ細胞株DSM ACC 3100から得られる抗体。
- 請求項1〜20のいずれか一項記載の抗体を含む組成物。
- アミロイドーシスの治療、予防、又は遅延のための、請求項21記載の組成物。
- 前記アミロイドーシスが、軽度認知障害、アルツハイマー病、及びダウン症の神経変性からなる群から選択される神経変性疾患である、請求項21又は22記載の組成物。
- 前記アミロイドーシスが、孤発性アルツハイマー病又は家族性アルツハイマー型認知症である、請求項21又は22記載の組成物。
- 前記家族性アルツハイマー型認知症が、家族性イギリス型認知症又は家族性デンマーク型認知症である、請求項24記載の組成物。
- ハイブリドーマ細胞株DSM ACC 3100。
- 診断法又は治療法における請求項1〜20のいずれか一項記載の抗体又は請求項21〜25のいずれか一項記載の組成物の使用。
- アミロイド関連の疾患又は状態の診断のための請求項27記載の使用。
- 前記アミロイドーシスが、軽度認知障害、アルツハイマー病、及びダウン症の神経変性からなる群から選択される神経変性疾患である、請求項28記載の使用。
- 前記アミロイドーシスが、孤発性アルツハイマー病又は家族性アルツハイマー型認知症である、請求項28記載の使用。
- 前記家族性アルツハイマー型認知症が、家族性イギリス型認知症又は家族性デンマーク型認知症である、請求項28記載の使用。
- アミロイド関連の疾患又は状態、特に、アルツハイマー病の診断のためのインビトロ診断法であって、以下の工程:
請求項1〜20のいずれか一項記載の抗体を、該疾患又は状態に罹患していることが疑われる対象由来の試料と接触させる工程、及び
該抗体のAβpGlu(11)タンパク質に対する結合を、該試料から検出する工程
を含む、前記インビトロ診断法。 - 請求項1〜20のいずれか一項記載の抗体、及び使用説明書、及び‐任意に‐(a)さらなる生体活性物質(複数可)を含む、診断キット。
- 前記さらなる生体活性物質がグルタミニルシクラーゼの阻害剤である、請求項33記載の診断キット。
- 配列番号26〜50からなる群から選択されるオリゴヌクレオチド。
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