JP2014228433A - 血液凝固検査方法 - Google Patents

Abstract

【課題】マイクロ流路を用いた血液凝固検査で、より正確な血液凝固能が検査できるようにする。【解決手段】ステップＳ１０１で、流路の延在方向に直列に配列して隣り合う部分が接触して流路を流れる状態に、血漿を含む検体および凝固活性剤を、検体を先にした状態で流路に導入する。次に、ステップＳ１０２で、流路の途中に設けられた測定箇所を、検体，凝固活性剤と検体との接触領域，凝固活性剤の順に通過する過程で、接触領域および凝固活性剤の屈折率を時系列的に測定する。次に、ステップＳ１０３で、時系列的な測定により得られた結果の中で、凝固活性剤の屈折率である第１屈折率値と、接触領域の最も大きい屈折率である第２屈折率値との比較により検体の血液凝固能を判定する。【選択図】 図１

Description

本発明は、血液や血漿の凝固能を測定する血液凝固検査方法に関するものである。

血液凝固活性は、外因系の凝固因子の欠損のスクリーニングや肝機能の異常、さらに経口投与による抗凝血薬療法のモニタリングに用いられる指標などを得るための重要な項目である。

このような血液凝固検査には、ＰＴ（プロトロンビン時間：Prothrombin Time）測定法、ＡＰＴＴ（活性化部分トロンボプラスチン時間：Activated Partial Thromboplastin Time）測定法、およびフィブリノゲンテストなどが主に用いられている。これらの測定・テストは、病院内の大型分析装置を用いて実施されている。この中で、ＰＴ測定法およびＡＰＴＴ測定による検査では、凝固反応のトリガーとして、血液が凝固する主にタンパク質（トロンボモジュリンやエラグ酸）およびカルシウムイオンを血漿に混合し、混合開始から凝固完了までの時間（凝固点）を測定し、標準血漿の結果と比較して遅延時間を見積もっている。

この内外因性血液凝固ルートの血液凝固活性を測定するＰＴ法は、現在国際標準化（ＰＴ−ＩＮＲ）もされており再現性が高く信頼性の高い検査項目とされている。ＰＴ法を物理的に実施する方法として、まず、撹拌抵抗式がある。撹拌抵抗式は、試料（検体）を活性化剤と一緒に導入してフィンで撹拌し、撹拌の抵抗の上昇から血液凝固時間を測定する方法である。

また、ＰＴ測定法を実施する方法として光散乱法がある（特許文献１，２，３参照）。光散乱法は、測定容器内で、対象となる血漿に凝固活性化を促す成分を含む試薬を混合し、容器に対し光を入射させ、入射した光の散乱光の光量変化を測定して血液凝固時間を測定する方法である。散乱光量から血液凝固時間を得る方法としては、散乱光量をそのまま利用する方法、散乱光量の微分値を利用する方法、散乱光量がある一定値に達するまでの時間を求める方法がある（特許文献１参照）。

上述した撹拌抵抗式および光散乱法が、血液凝固の検査に現在一般に多く用いられている。これらの他に、熱伝導式、水晶振動子式、磁気ビーズによる凝集測定法（特許文献４参照）などが開発されている。

また、発明者らにより、マイクロ流路を備えるチップを用い、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）測定法で流速を測定することにより凝固活性を検査する方法が提案されている。この検査では、まず、凝固活性化剤（エラグ酸および塩化カルシウム）を混合することによって完全に活性化した血漿試料を測定直前に調製する。次いで、予め緩衝液を満たしてある流路内に調整した血漿試料を導入することで、血漿試料が流路内を進む流速を凝固時間に変換して求めている（特許文献５参照）。このようなマイクロ流路を用いた流速測定によれば、少量の検体で迅速な凝固活性が測定できるという利点がある。

特開平０６−０２７１１５号公報 特表２００９−５０６３３２号公報 特開平０９−２６６７９８号公報 特表平０９−５０２８００号公報 特開２０１１−２３２１３７号公報 特開２０１０−１３３７２７号公報

しかしながら、上述した流速による血液凝固検査では、正確な検査ができないという問題が発生している。血液凝固検査では、凝固活性化剤により血漿中に凝固活性物質を発生させた上で、主にフィブリンから構成される凝固物質に由来する粘性増加による流速の変化を測定している。このため、測定に使用した測定容器は不溶化したタンパク質が非特異的に吸着し、表面が汚染される。特にフィブリンはタンパク質の多くの残渣の同時相互作用を一度に可能とするような分子量の大きなタンパク質であるため、他のタンパク質と比較して非特異吸着力は高い。

このように、血液凝固検査では、検査に用いている流路内が汚染されるため、この汚染により流速が変化することになる。汚染による流速の変化は、大きな測定誤差を招き、正確な測定値が得られなくなる。このような問題を解消するためには、例えば、流路内を洗浄し、流路内を常に均一で清浄な状態に維持しておくことが考えられる。このような洗浄の技術として、例えば流路内あるいはマイクロ流路チップ毎にアルカリ洗浄液等のタンパク質除去溶媒に浸す方法、また物理的な手法として、洗浄液の噴射、超音波洗浄等を組み合わせる方法（特許文献６参照）が挙げられる。

しかしながら、洗浄を行っている間は検査ができないため、複数の検査を連続的に行う場合などは、検査のスループットが大幅に低下することになる。また、流速の測定により血液凝固検査を行う技術では、粘度に依存する流速を測定しているため、凝固能が同じでも粘度が異なる検体を測定する場合、これらの凝固能を正しく区別できない。

以上のように、マイクロ流路を用いた血液凝固検査では、少量の検体で迅速な凝固活性が測定できるという利点があるが、流速を用いる場合、正確な検査ができないという問題があった。

本発明は、以上のような問題点を解消するためになされたものであり、マイクロ流路を用いた血液凝固検査で、より正確な血液凝固能が検査できるようにすることを目的とする。

本発明に係る血液凝固検査方法は、流路の延在方向に直列に配列して隣り合う部分が接触して流路を流れる状態に、血漿を含む検体および凝固活性剤を検体を先にした状態で流路に導入する第１工程と、流路の途中に設けられた測定箇所を、検体，凝固活性剤と検体との接触領域，凝固活性剤の順に通過する過程で、接触領域および凝固活性剤の屈折率を時系列的に測定する第２工程と、測定された凝固活性剤の屈折率である第１屈折率値と、測定された接触領域の最も大きい屈折率である第２屈折率値との比較により検体の血液凝固能を判定する第３工程とを備える。なお、測定箇所における表面プラズモン共鳴測定により測定される表面プラズモン共鳴角度を屈折率値として用いればよい。

以上説明したことにより、本発明によれば、マイクロ流路を用いた血液凝固検査で、より正確な血液凝固能が検査できるようになるという優れた効果が得られる。

図１は、本発明の実施の形態における血液凝固検査方法を説明するフローチャートである。 図２は、検体２１１と凝固活性剤２１２とが、基板２０１と流路基板２０３との間に形成されたマイクロ流路２０４を流れる状態を示す説明図である。 図３は、マイクロ流路２０４を検体２１１と凝固活性剤２１２とが流れていく状態で測定される屈折率の変化を示す特性図である。 図４は、測定チップ４００およびＳＰＲ装置５００の構成を示す斜視図である。 図５は、測定チップ４００の構成を示す断面図（ａ），（ｂ）および平面図（ｃ）である。 図６は、測定領域４３１を接触領域４１３が通過する過程で測定されたＳＰＲ角度変化を示す特性図である。 図７は、屈折率が低下している接触領域に対して設定する第１高さ，第２高さ，幅のパラメータについて説明する説明図である。 図８は、センサー５０４を構成する複数のフォトダイオード素子の位置に対応させた測定領域の位置（pixel）に対応する、第１高さ（ａ），第２高さ（ｂ），幅（ｃ）のパラメータの変化を示す特性図である。 図９は、標準血漿（活性度８６％，３３％）と７５％ＰＴ凝固活性剤を用いた実験において、繰り返し測定した結果を、第２高さおよび第１高さで示した特性図である。

以下、本発明の実施の形態について図を参照して説明する。図１は、本発明の実施の形態における血液凝固検査方法を説明するフローチャートである。まず、ステップＳ１０１で、流路の延在方向に直列に配列して隣り合う部分が接触して流路を流れる状態に、血漿を含む検体および凝固活性剤を、検体を先にした状態で流路に導入する（第１工程）。流路は、例えば、表面プラズモン共鳴測定装置に装着して用いられる測定チップに形成されているマイクロ流路である。

次に、ステップＳ１０２で、流路の途中に設けられた測定箇所を、検体，凝固活性剤と検体との接触領域，凝固活性剤の順に通過する過程で、接触領域および凝固活性剤の屈折率を時系列的に測定する（第２工程）。次に、ステップＳ１０３で、時系列的な測定により得られた結果の中で、凝固活性剤の屈折率である第１屈折率値と、接触領域の最も大きい屈折率である第２屈折率値との比較により検体の血液凝固能を判定する（第３工程）。

上述した表面プラズモン共鳴測定装置で用いる測定チップでは、マイクロ流路の途中の測定箇所においては、測定装置側にＡｕの層が形成されている。よく知られているように、表面プラズモン共鳴測定では、上述した測定領域の下面に照射した光の反射光の強度により、測定領域に接触している液体の屈折率を測定する。液体が接触したＡｕ層の表面における、エバネッセント波と表面プラズモン波との共鳴が起こる角度で反射率が低くなる谷が観測される。この共鳴が起こる表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）角度は、Ａｕ層に接する液体の屈折率に依存する。従って、測定される反射光の強度の変化により、流路の測定領域を通過する液体の屈折率の変化が求められる。

ステップＳ１０２における測定の中で、まず、検体の屈折率は、測定箇所を検体が通過するまでほぼ一定の状態で測定される。これに対し、接触領域の屈折率は、接触領域が測定箇所を通過する過程で、一度上昇してから低下する。この後、凝固活性剤の屈折率が測定される。接触領域は、検体に近い領域と、中央領域と、凝固活性剤に近い領域とに分類できる。この中で、中央領域において、屈折率が最も大きくなる箇所が存在する。この屈折率が最も大きくなる箇所の屈折率（第２屈折率）と、この後で測定される凝固活性剤の屈折率（第１屈折率値）との比較により、検体の血液凝固能が判定できる。

以下、第１屈折率値と第２屈折率値とにより検体（血漿）の血液凝固能が判定できることについて、より詳細に説明する。

まず、図２に示すように、基板２０１と流路基板２０３との間に形成されたマイクロ流路２０４を、検体２１１と凝固活性剤２１２とが直列に流れていく場合、検体２１１と凝固活性剤２１２との境界部分である接触領域２１３では、拡散による混合が起こる。なお、図２では、基板２０１の上にＡｕ層２０２が形成された状態を示している。

このような２液を直列して送液している状態で、２つの物質の間で化学反応などが発生しない場合、接触領域２１３では、単に２液の中間の組成となる。例えば、凝固活性剤２１２では検体２１１における凝固反応が起きない場合、接触領域２１３では、検体２１１と凝固活性剤２１２との中間の組成となる。血漿や生化学試薬は、タンパク質を多く含むため、一般に測定される溶液の屈折率は、凝固活性剤より大きくなる。このため、凝固反応が起きない場合、マイクロ流路２０４を検体２１１と凝固活性剤２１２とが流れていく状態で測定される接触領域２１３の屈折率の変化は、図３の点線で示すようになる。

図３に示すように、測定時間が経過すると、はじめは検体２１１の屈折率が測定される。次いで、接触領域２１３の測定では、図３の点線で示すように、検体２１１と凝固活性剤２１２との中間の組成で徐々に検体２１１の屈折率に近づいていく。この後、凝固活性剤２１２の屈折率が測定される状態となる。ここで、検体２１１における屈折率は、タンパク質の濃度に大きく依存するため、異なる血漿成分では測定される屈折率値が大きく異なることになる。

一方、検体２１１に含まれる血漿が、凝固活性剤２１２により凝固反応が起きる場合、接触領域２１３では上述した状態とは異なる屈折率変化となる。例えば、血漿を含む検体２１１と凝固活性剤２１２との接触領域２１３では、凝固活性剤２１２に含まれるトロンボプラスチンが、検体２１１の血漿中に含まれるプロトロンビンをトロンビンに変換することで凝固反応を開始し、産生されたトロンビンが血漿中に含まれるフィブリノゲン２２１を不溶性タンパク質であるフィブリン２２２に変換する生化学反応を引き起こす。さらに、フィブリン２２２同士がポリマーを形成することで血栓が生じる。

このような接触領域２１３における屈折率変化を観測すると、図３の実線で示すように、検体２１１および凝固活性剤２１２よりも屈折率が高くなる領域が観測される。この現象は、マイクロ流路２０４の内壁（Ａｕ層２０２）に対するフィブリン２２２の特異的な吸着に起因する。

測定前にマイクロ流路２０４内に封入された血漿中のフィブリノゲン２２１は、Ａｕ層２０２の表面に接触すると非特異的に吸着する。これは、フィブリノゲン２２１が、タンパク質の多くの残渣の同時相互作用を一度に可能とするような大きな分子量のタンパク質であるためである。このようにフィブリノゲン２２１が吸着している状態で、後ろから凝固活性剤２１２が流れてくると、Ａｕ層２０２表面に吸着していたフィブリノゲン２２１は、凝固活性の上がった各種凝固因子の影響を受けてフィブリン２２２となる。さらに、フィブリン２２２は、活性化した第１３因子の影響によりポリマー化し、不溶化フィブリン２２３となる。これらのことにより、Ａｕ層２０２の表面近傍で、粒子が発生し、発生した粒子の体積が急激に増大すると考えられる。

ここで、直線のマイクロ流路２０４内に粒子が流れる時、速度勾配の大きい接触領域２１３の流れの中にある粒子は、粒子の周囲に循環流を生じて揚力（サフマン力）を受ける。直径ｄの球形粒子が揚力により流れと直角方向に移動するときに、粒子に作用する流体抵抗をストークスの抵抗法則で表すと、粒子の移動速度ｖ_pはサフマンの関係式より以下のように表される。

式（１）において、ｖは、液体の動粘性係数、ｕは流れ方向の液体平均速度、ｕ_pは流れ方向の粒子速度を示す。式（１）より、流れ方向の粒子速度と流れ方向の液体平均速度が等しい（ｕ_p＝ｕ）時は、揚力による粒子の移動は無視できる。しかしながら、粒子速度が流体速度と異なる場合、揚力による粒子の移動は無視できない。粒子速度が流体速度よりも大きくなる場合、粒子は流路の壁方向に移動する。一方、粒子速度が流体速度よりも小さくなる場合は、粒子は主流方向に移動する。このため、粒子速度が流体速度と異なる場合、粒子は、境界層である接触領域の外側に移動していく。

粒子速度は、流動体（流体）の流速から受ける推進力および抵抗力に影響を受ける。流体中の物体（粒子）が流れている流体から受ける抵抗力には、以下に示すニュートンの抵抗法則が知られている。

式（２）において、ρは液体密度、Ｃｄは効力係数、Ｓは物体の投影面積、Ｖは速度を示す。式（２）から、流体内の物体が大きくなり投影面積が大きくなると、物体の流体に対する抵抗力は増し、これにより粒子速度が減少するためサフマン力が大きくなる。サフマン力が大きくなると、粒子に対する流速の早い流路中心部へ移動する力が強くなる。

加えて、液中の物質は浮力の影響を受ける。浮力Ｆ_bは、流体の密度ρ_f、物体の体積Ｖ、重力加速度ｇを用い「Ｆ_b＝ρ_fＶｇ」により表される。従って、物体の表面積が増加すると浮力も大きくなり、流路内壁より離れる力が大きくなる。

前述したように、接触領域２１３に発生したフィブリン２２２は、急速にポリマー化して不溶化フィブリン２２３となる。より大きな粒子である不溶化フィブリン２２３は、マイクロ流路２０４を流れる液体の流速よりも小さい粒子速度となる。このため、上述したことから分かるように、産生された大部分の不溶化フィブリン２２３は、浮力と揚力の両者の力を受け、Ａｕ層２０２から離れ、マイクロ流路２０４の中心部へ移動するものと考えられる。

上述したように、接触領域２１３では、初期に、Ａｕ層２０２の近傍でフィブリン２２２が産生され、この後、産生されたフィブリン２２２が不溶化フィブリン２２３となり、Ａｕ層２０２より離間していくことになる。このため、時系列的に測定される屈折率は、初期にフィブリン２２２が存在する状態の値となり、フィブリン２２２の増加とともに大きくなる。この後、不溶化フィブリン２２３の産生により、測定箇所のＡｕ層２０２上（内壁部分）においては、フィブリン２２２が消化されて減少した残りの接触領域２１３における成分の屈折率が測定結果に反映され、屈折率が低下する状態が観測されるものと考えられる。この後で測定される屈折率は、凝固活性剤２１２の屈折率となる。

［実施例］
以下、実施例を用いてより詳細に説明する。まず、測定に用いた測定チップ４００およびＳＰＲ装置５００について説明する。測定チップ４００は、図４，図５に示すように、ＢＫ７ガラスからなる基板４０１と、膜厚５０ｎｍ程度のＡｕ層４０２と、流路基板４０３とから構成されている。Ａｕ層４０２は、例えば、スパッタリング法などのよく知られた堆積技術により形成すればよい。

また、流路基板４０３は、マイクロ流路４０４となる溝部，導入口４０５，および排出口４０６を備える。例えば、ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）から流路基板４０３を形成すればよい。溝部は、深さ（高さ）５０μｍ程度とすればよい。また、導入口４０５の口径は、３ｍｍとし、排出口４０６の口径は、１．５ｍｍとした。これらは、例えば、よく知られた生検トレパンにより形成すればよい。また、基板４０１と流路基板４０３とは個別に作製し、最後に、マイクロ流路４０４が測定領域に重なるように測定チップ４００を組み立てた。

Ａｕ層４０２を形成した基板４０１および流路溝を形成した流路基板４０３の各々の貼り合わせ面を、酸素ガスのプラズマ（反応イオン）の照射により活性化させた後、各々の貼り合わせ面を当接させて貼り合わせることで、両者を一体とした。プラズマの照射は、プラズマ処理装置の処理室内で実施する。プラズマは、出力７０Ｗのマイクロ波により生成し、また、処理室内には酸素を１００ｓｃｃｍで供給し、処理室内における酸素分圧は１０Ｐａとした。なお、ｓｃｃｍは流量の単位であり、０℃・１０１３ｈＰａの流体が１分間に１ｃｍ³流れることを示す。また、プラズマの照射は、５秒程度実施した。

また、排出口４０６には、負圧機構４２１が接続され、マイクロ流路４０４内の液体を、排出口４０６を介して牽引（吸引）可能としている。負圧機構４２１は、例えば、ステンレスパイプで接続された廃液タンクおよび負圧ポンプ（ＭＦＣＳ−ＶＡＣ，Ｆｌｕｉｇｅｎｔ社製）などから構成されている。

測定においては、ＳＰＲ装置５００の測定プリズム５０２に形成されている測定面５０３上に、屈折率がＢＫ７ガラスと等しいマッチングオイル（不図示）を塗布し、この上に測定チップ４００の基板４０１裏面を配置する。また、ＳＰＲ装置５００の光源５０１から出射される光の光軸上に、測定チップ４００の測定領域が重なる状態に配置する。ＳＰＲ装置５００は、例えば、エヌ・ティ・ティ・アドバンステクノロジ株式会社製の「Ｓｍａｒｔ ＳＰＲ ＳＳ−１００」である。

光源５０１から出射された光を集光してプリズム５０２に入射させ、プリズム５０２の測定面５０３に密着させている測定チップ４００の測定領域に照射する。測定チップ４００の測定領域となるマイクロ流路４０４にはＡｕ層４０２が形成されており、Ａｕ層４０２の裏面に、測定チップ４００を透過してきた集光光が照射される。

このようにして照射された集光光は、流速測定対象の流体が接触したＡｕ層４０２の裏面で反射し、いわゆるＣＣＤイメージセンサーなどの撮像素子よりなるセンサー５０４で光電変換されて強度（光強度）が得られる。このようにして得られた光強度の変化により屈折率の変化が求められる。

マイクロ流路４０４に、血漿からなる検体４１１（１０マイクロリットル）を供給して満たし、図５の（ｂ），（ｃ）に示すように、検体４１１が満たされているマイクロ流路４０４の一端の導入口４０５より凝固活性剤としてＰＴ凝固試薬４１２（１０マイクロリットル）を導入し、マイクロ流路４０４の他端の排出口４０６より、一定の圧力（負圧）で検体４１１を牽引すればよい。排出口４０６に負圧機構４２１を接続し、検体４１１を吸引すればよい。このようにすることで、マイクロ流路４０４内で他端側（導入口４０５側）に検体４１１が存在し、一端側（排出口４０６側）にＰＴ凝固試薬４１２が存在し、検体４１１の終端とＰＴ凝固試薬４１２の先端とが接触する状態で、これらがマイクロ流路４０４内を他端の方向に輸送される状態となる。

ここで、接触している接触領域４１３では、検体４１１にＰＴ凝固試薬４１２が添加されることになり、接触領域４１３では、凝固反応が起こり得る状態となっている。このため、上述したように、検体４１１とＰＴ凝固試薬４１２が配列してマイクロ流路４０４に流れる状態として接触領域４１３が形成された時点より、接触領域４１３では、凝固反応が開始されることになる。

上述したように、ＰＴ凝固試薬４１２の先端と検体４１１の終端とが接触して接触領域４１３を形成し、これらが図５に示すようにマイクロ流路４０４内を輸送されている状態で、マイクロ流路４０４内の流体の屈折率（ＳＰＲ角度）の変化を測定する。マイクロ流路４０４内の所定の測定領域４３１においてＳＰＲ角度を測定する。このＳＰＲ角度の測定においては、接触領域４１３が測定領域４３１を通過しているときのＳＰＲ角度の変化を測定する。測定領域４３１には、センサー５０４の検出領域が対応している。センサー５０４の検出領域には、複数のフォトダイオード素子が、流れの方向に並んで配置されており、測定領域４３１では、各フォトダイオード素子の位置毎に、光強度の変化（ＳＰＲ角度）が測定される。

上述した実施例における測定結果について説明する。まず、測定領域４３１内の３つの観測地点におけるＳＰＲ角度変化について、図６に示す。図６は、測定領域４３１を接触領域４１３が通過する過程で測定されたＳＰＲ角度変化を示す特性図である。

図６の（ａ）は、センサー５０４の１個目のフォトダイオード素子で検出された結果を示している。図６の（ａ）は、測定領域４３１の導入口４０５側の開始端において検出された結果を示している。

図６の（ｂ）は、センサー５０４の２４０個目のフォトダイオード素子で検出された結果を示している。図６の（ｂ）は、測定領域４３１の中央において検出された結果を示している。

図６の（ｃ）は、センサー５０４の４８０個目のフォトダイオード素子で検出された結果を示している。図６の（ｃ）は、測定領域４３１の排出口４０６側の終了端において検出された結果を示している。

図６に示すように、各測定地点において凝固活性剤の屈折率と検体（血漿）の屈折率が遷移する接触領域で、高屈折率領域が表れていることが分かる。

ここで、図７に示すように、屈折率が低下している接触領域に対し、幅、検体の屈折率力の高さ（第１高さ）、および凝固活性剤の屈折率からの高さ（第２高さ）のパラメータを設定する。第２高さは、測定された凝固活性剤の屈折率である第１屈折率値から見た接触領域で測定される最も大きい値の第２屈折率値との差であり、「第２屈折率値−第１屈折率値」の値である。

図８は、センサー５０４を構成する複数のフォトダイオード素子の位置に対応させた測定領域の位置（pixel）に対応する、第１高さ（ａ），第２高さ（ｂ），および幅（ｃ）のパラメータの変化を示す特性図である。

図８の（ａ）および（ｂ）に示すように、測定領域の開始点より終点にかけて、第１高さおよび第２高さは、ほぼ一定の状態となっている。これに対し、図８の（ｃ）に示すように、幅は、測定位置が排出口の側（下流）に行くに従って、大きい値となる。このことより、第２高さ（第２屈折率値−第１屈折率値）は、凝固活性に依存した数値を表していると考えられる。なお、幅は、検体と凝固活性剤とが混合する接触領域の広さに対応し、図８の（ｃ）に示す結果は、拡散を示すものと考えられる。

図９は、標準血漿（活性度８６％，３３％）と７５％ＰＴ凝固活性剤を用いた実験において、繰り返し測定した結果を、上述した第２高さおよび第１高さで示した特性図である。図９に示すように、活性度の高い血漿ほど、より高い値が得られていることが分かる。これは、接触領域の最も大きい屈折率である第２屈折率値が、フィブリン生産量に大きく依存し、より多くフィブリンが生産される高活性血漿の方が接触領域全体の屈折率を上昇させるためと考えられる。

以上に説明したように、本発明によれば、検体，接触領域，凝固活性剤の順に通過する過程で、接触領域および凝固活性剤の屈折率を時系列的に測定し、測定された凝固活性剤の屈折率である第１屈折率値と、測定された接触領域の最も小さい屈折率である第２屈折率値との比較により検体の血液凝固能を判定するようにしたので、マイクロ流路を用いた血液凝固検査で、より正確な血液凝固能が検査できるようになる。

本発明によれば、流速の影響を受けにくいので、例えば、従来取り外しての強力洗浄もしくは使い捨て仕様となっていた測定用セルもしくはマイクロ流路を、繰り返し使用することができ、これによりコストの軽減を図ることが可能となる。また、本発明では、流路内を通過する凝固活性剤および接触領域の屈折率を測定すればよく、測定に必要な時間は非常に短く、より迅速な測定が行えるようになる。

なお、本発明は以上に説明した実施の形態に限定されるものではなく、本発明の技術的思想内で、当分野において通常の知識を有する者により、多くの変形および組み合わせが実施可能であることは明白である。例えば、ＰＴ試験に限らずフィブリンを産生させる凝固凝固活性剤を用いることで、他の凝固測定方法も同様に行える。例えば、検体にＡＰＴＴ凝固活性剤を混合した検体を用い、凝固活性剤に塩化カルシウムを用いることで、活性化部分トロンボプラスチン時間（ＡＰＴＴ）試験に対応させることができる。また、検体はそのまま用い、凝固活性剤にトロンビン凝固活性剤を用いることで、凝固活性剤フィブリノゲン（Ｆｉｂ）濃度試験に対応させることができる。

２０１…基板、２０２…Ａｕ層、２０３…流路基板、２０４…マイクロ流路、２１１…検体、２１２…凝固活性剤、２１３…接触領域、２２１…フィブリノゲン、２２２…フィブリン、２２３…不溶化フィブリン。

Claims (2)

1. 流路の延在方向に直列に配列して隣り合う部分が接触して前記流路を流れる状態に、血漿を含む検体および凝固活性剤を前記検体を先にした状態で前記流路に導入する第１工程と、
   前記流路の途中に設けられた測定箇所を、前記検体，前記凝固活性剤と前記検体との接触領域，前記凝固活性剤の順に通過する過程で、前記接触領域および前記凝固活性剤の屈折率を時系列的に測定する第２工程と、
   測定された前記凝固活性剤の屈折率である第１屈折率値と、測定された前記接触領域の最も大きい屈折率である第２屈折率値との比較により前記検体の血液凝固能を判定する第３工程と
   を備えることを特徴とする血液凝固検査方法。
2. 請求項１記載の血液凝固検査方法において、
   前記測定箇所における表面プラズモン共鳴測定により測定される表面プラズモン共鳴角度を前記屈折率値として用いることを特徴とする血液凝固検査方法。