JP2014226065A - 微粒子分離用マイクロ流路チップ、移流集積ユニット、微粒子分離用システム及び微粒子分離方法 - Google Patents
微粒子分離用マイクロ流路チップ、移流集積ユニット、微粒子分離用システム及び微粒子分離方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2014226065A JP2014226065A JP2013106824A JP2013106824A JP2014226065A JP 2014226065 A JP2014226065 A JP 2014226065A JP 2013106824 A JP2013106824 A JP 2013106824A JP 2013106824 A JP2013106824 A JP 2013106824A JP 2014226065 A JP2014226065 A JP 2014226065A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- fine particles
- sheath liquid
- flow path
- chip
- advection
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Abstract
Description
(2)前記捕捉部位で捕捉される微粒子の大きさをX、分離・除去される微粒子の大きさをYとした場合、前記主流路及び前記分岐流路の幅FはY<F<X、前記捕捉部位の幅Gは1X<G<10X、前記主流路、前記分岐流路及び前記捕捉部位の深さHは1X<H<10Xであることを特徴とする上記(1)に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
(3)前記幅Gが1X<G<2X、前記深さHが1X<H<2Xであることを特徴とする上記(2)に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
(4)前記幅FがY<F<0.8Xであることを特徴とする上記(2)又は(3)に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
(5)前記主流路、前記分岐流路及び前記捕捉部位の下方に、幅がF、深さJがY<Jの流路が更に形成されていることを特徴とする上記(1)〜(4)の何れか一に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
(6)基板、該基板上に形成された主流路、及び該主流路の幅より大きく且つ主流路上に形成された捕捉部位を含み、前記主流路が基板の中心から放射状に形成されていることを特徴とする微粒子分離用マイクロ流路チップ。
(7)前記捕捉部位で捕捉される微粒子の大きさをX、分離・除去される微粒子の大きさをYとした場合、前記主流路の幅AはY<A<X、前記捕捉部位の幅Bは1X<B<10Xであり、前記捕捉部位の深さCは1X<C<10X、前記捕捉部位における主流路の深さDはY<Dであり、前記捕捉部位以外の主流路の深さEはE=C+Dであることを特徴とする上記(6)に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
(8)前記幅Bが1X<B<2X、前記深さCが1X<C<2Xであることを特徴とする上記(7)に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
(9)前記幅AがY<A<0.8Xであることを特徴とする上記(7)又は(8)に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
(10)前記基板上に、放射状に伸びた前記主流路の先端部分を連結する円状の溝部が形成されていることを特徴とする上記(1)〜(9)の何れか一に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
(11)前記捕捉部位で捕捉される微粒子がCTCで、除去される微粒子が血球細胞であることを特徴とする上記(1)〜(10)の何れか一に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
(12)シース液注入口、サンプル注入口、シース液移流集積用平面部及びサンプル移流集積用平面部を少なくとも含む移流集積ユニット。
(13)シース液吸引パッドを装着する孔及びシース液吸引口を更に含むことを特徴とする上記(12)に記載の移流集積ユニット。
(14)シース液を毛管力で吸引する孔及びシース液吸引口を更に含むことを特徴とする上記(12)に記載の移流集積ユニット。
(15)上記(1)〜(11)の何れか一に記載されている微粒子分離用マイクロ流路チップ、
上記(12)〜(14)の何れか一に記載されている移流集積ユニット、
前記微粒子分離用マイクロ流路チップを回転させる回転手段、及び
シース液吸引手段、
を少なくとも含む微粒子分離用システム。
(16)前記微粒子分離用マイクロ流路チップに形成されている捕捉部位に捕捉された微粒子を取り出す微粒子抽出手段及び微粒子を検出する検出手段を更に含むことを特徴とする上記(15)に記載の微粒子分離用システム。
(17)核酸を増幅するPCR手段を更に含むことを特徴とする上記(16)に記載の微粒子分離用システム。
(18)前記微粒子分離用マイクロ流路チップの捕捉部位に磁場を発生させる磁場発生装置及び/又は電場を発生させる電場発生装置を更に含むことを特徴とする上記(15)〜(17)の何れか一に記載の微粒子分離用システム。
(19)上記(1)〜(11)の何れか一に記載されている微粒子分離用マイクロ流路チップを、
該微粒子分離用マイクロ流路チップを回転させる回転手段上に載置し、前記微粒子分離用マイクロ流路チップ上に、シース液注入口、サンプル注入口、シース液移流集積用平面部及びサンプル移流集積用平面部を少なくとも含む移流集積ユニットを配置し、
前記回転手段を回転させながら、前記シース液注入口からシース液を注入し、前記サンプル注入口からサンプルを注入することで前記微粒子分離用マイクロ流路チップとシース液移流集積用平面部及びサンプル移流集積用平面部を相対移動させ、相対移動により発生したメニスカスにより目的とする微粒子を前記微粒子分離用マイクロ流路チップに形成された捕捉部位に捕捉し、
シース液吸引手段によりシース液を吸引することで、除去される微粒子をシース液とともに微粒子分離用マイクロ流路チップから除去することを特徴とする微粒子分離方法。
(20)前記捕捉部位で捕捉される微粒子がCTCで、除去される微粒子が血球細胞であることを特徴とする上記(19)に記載の微粒子分離方法。
1.ネガティブフォトレジスト(SU−8)をSiの基板上にスピンコートし、ホットプレート上でプリベイクする。
2.捕捉部位、捕捉部位以外の主流路部分及び溝部を形成するためのクロムマスク等のフォトマスクを用い露光する。
3.ホットプレート上でポストエクスポージャーベイクを行い、現像液(PMシンナー等)を用い現像した後、超純水を用いリンスし、スピンドライヤー等で水分をとばし乾燥させる。
4.2段目のSU−8のネガティブフォトレジストをスピンコートし、プリベイクする。
5.捕捉部位の下段の主流路、捕捉部位以外の主流路部分及び溝部を形成するためのクロムマスク等を用い露光する。
6.ポストエクスポージャーベイク、現像、リンスを行い、パターンを形成する。
7.形成されたパターンを、ポリジメチルシロキサン(PDMS)に転写する。
8.形成されたパターンからPDMSを分離する。
9.PDMS表面を親水化する。
<実施例1>
先ず、シリコン基板をアセトン・エタノール・超純水の順に、45kHzで5分間ずつ超音波洗浄機により有機洗浄し、145℃で20分間ベイクした。次に、シリコン基板上にSU−8をスピンコートし、ホットプレート上で95℃で30分間、プリベイクした。次に、捕捉部位14が図2(4)の形状で、溝部15が図1に示す形状のクロムマスクを用い露光後、ホットプレート上で95℃で2分間、ポストエクスポージャーベイクを行い、PMシンナーを用い現像した。現像後は、超純水を用いリンスし、スピンドライヤー等で水分をとばし乾燥させた。形成されたパターンを、ポリジメチルシロキサン(PDMS)に転写し、転写後、両者を分離し、PDMS表面をプラズマ処理(周波数50kHz,出力700W、30秒間)により親水化した。
図4に示されているように、溝部を形成せず主流路を伸ばした以外は、上記実施例1と同様の手順でチップを作製した。
<実施例3>
移流集積ユニットは、アクリルを材料にして、切削工具(三菱マテリアル社製のドリル及びエンドミル)を用いた切削加工により作製した。図15は実施例2で作製した移流集積ユニットをチップ1に対面する方向から撮影した写真で、シース液注入口51、サンプル注入口52、及びシース液吸引口56の孔のサイズは直径2mmであった。また、シース液平面部53の2つの円弧の幅は8mm、短い円弧の長さは4.1mmで、サンプル平面部54の2つの円弧の幅は10mm、短い円弧の長さは9.2mmであった。更に、孔55の幅は4mm、孔55の円弧の長さは46mmであった。
<実施例4>
シース液を毛管力で吸引する孔55の幅を150μm、前記孔55を設ける平面部をシース液平面部及びサンプル平面部より約500μm厚くした以外は、上記実施例3と同様の手順で移流集積ユニットを作製した。図16は、実施例4で作製した移流集積ユニットのシース液を毛管力で吸引する孔55部分の拡大写真である。
採取したヒト血液20μlに、10×105個の緑色蛍光タンパク質(GFP)導入MKN−45(人胃がん)細胞を添加して、がん患者の血液を模した血液サンプル(CTCを含む全血)を作製した。なお、がん細胞の平均粒径は25μmであった。
〔血液サンプルからのCTC分離実験〕
実施例1で作製した微粒子分離用マイクロ流路チップをシステム30の回転手段40の上に載置し、実施例2で作製した移流集積ユニットを前記微粒子分離用マイクロ流路チップとの間隔が約500μmとなるようにセットした。また、移流集積ユニットの孔55には、微粒子分離用マイクロ流路チップの溝部15に均一に当接するようにコットンを挿入した。回転手段40を0.3rpmで回転しながら、主流路を流れるシース液(リン酸緩衝生理食塩水(PBS))の速度が600μm/sとなるようにシース液を貯めたボトルからクレンメを用いてシース液を供給する一方、シース液吸引口56にシリコンチューブ(アズワン社製)の一端を接続し、他端をマイクロシリング(KD Scientific社製)に接続してシース液を吸引した。また、サンプルは8.3μl/sとなるように供給した。捕捉されたCTCは、蛍光顕微鏡により確認した。
〔主流路を流れるシース液の速度変化実験〕
実施例2で作製したチップ及び実施例4で作製した移流集積ユニットを用い、チップと移流集積ユニットのシース液平面部及びサンプル平面部の間隔が約500μm、チップと移流集積ユニットの孔55がほぼ当接するようにセットした以外は、実施例5と同様の条件で実験を行った。実験中、任意の間隔で主流路を流れるシース液の流速をビデオ撮影により測定したところ、シース液が移流集積ユニットの孔から毛管力により吸引が開始された以降は、シース液がほぼ一定の流速で主流路を流れたことを確認できた。
Claims (20)
- 基板、該基板上に形成された主流路、該主流路から分岐し再び主流路に接続する分岐流路、及び該分岐流路に形成され分岐流路の幅より大きな微粒子の捕捉部位を含み、前記主流路が基板の中心から放射状に形成されていることを特徴とする微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- 前記捕捉部位で捕捉される微粒子の大きさをX、分離・除去される微粒子の大きさをYとした場合、前記主流路及び前記分岐流路の幅FはY<F<X、前記捕捉部位の幅Gは1X<G<10X、前記主流路、前記分岐流路及び前記捕捉部位の深さHは1X<H<10Xであることを特徴とする請求項1に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- 前記幅Gが1X<G<2X、前記深さHが1X<H<2Xであることを特徴とする請求項2に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- 前記幅FがY<F<0.8Xであることを特徴とする請求項2又は3に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- 前記主流路、前記分岐流路及び前記捕捉部位の下方に、幅がF、深さJがY<Jの流路が更に形成されていることを特徴とする請求項1〜4の何れか一項に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- 基板、該基板上に形成された主流路、及び該主流路の幅より大きく且つ主流路上に形成された捕捉部位を含み、前記主流路が基板の中心から放射状に形成されていることを特徴とする微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- 前記捕捉部位で捕捉される微粒子の大きさをX、分離・除去される微粒子の大きさをYとした場合、前記主流路の幅AはY<A<X、前記捕捉部位の幅Bは1X<B<10Xであり、前記捕捉部位の深さCは1X<C<10X、前記捕捉部位における主流路の深さDはY<Dであり、前記捕捉部位以外の主流路の深さEはE=C+Dであることを特徴とする請求項6に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- 前記幅Bが1X<B<2X、前記深さCが1X<C<2Xであることを特徴とする請求項7に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- 前記幅AがY<A<0.8Xであることを特徴とする請求項7又は8に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- 前記基板上に、放射状に伸びた前記主流路の先端部分を連結する円状の溝部が形成されていることを特徴とする請求項1〜9の何れか一項に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- 前記捕捉部位で捕捉される微粒子がCTCで、除去される微粒子が血球細胞であることを特徴とする請求項1〜10の何れか一項に記載の微粒子分離用マイクロ流路チップ。
- シース液注入口、サンプル注入口、シース液移流集積用平面部及びサンプル移流集積用平面部を少なくとも含む移流集積ユニット。
- シース液吸引パッドを装着する孔及びシース液吸引口を更に含むことを特徴とする請求項12に記載の移流集積ユニット。
- シース液を毛管力で吸引する孔及びシース液吸引口を更に含むことを特徴とする請求項12に記載の移流集積ユニット。
- 請求項1〜11の何れか一項に記載されている微粒子分離用マイクロ流路チップ、
請求項12〜14の何れか一項に記載されている移流集積ユニット、
前記微粒子分離用マイクロ流路チップを回転させる回転手段、及び
シース液吸引手段、
を少なくとも含む微粒子分離用システム。 - 前記微粒子分離用マイクロ流路チップに形成されている捕捉部位に捕捉された微粒子を取り出す微粒子抽出手段及び微粒子を検出する検出手段を更に含むことを特徴とする請求項15に記載の微粒子分離用システム。
- 核酸を増幅するPCR手段を更に含むことを特徴とする請求項16に記載の微粒子分離用システム。
- 前記微粒子分離用マイクロ流路チップの捕捉部位に磁場を発生させる磁場発生装置及び/又は電場を発生させる電場発生装置を更に含むことを特徴とする請求項15〜17の何れか一項に記載の微粒子分離用システム。
- 請求項1〜11の何れか一項に記載されている微粒子分離用マイクロ流路チップを、該微粒子分離用マイクロ流路チップを回転させる回転手段上に載置し、
前記微粒子分離用マイクロ流路チップ上に、シース液注入口、サンプル注入口、シース液移流集積用平面部及びサンプル移流集積用平面部を少なくとも含む移流集積ユニットを配置し、
前記回転手段を回転させながら、前記シース液注入口からシース液を注入し、前記サンプル注入口からサンプルを注入することで前記微粒子分離用マイクロ流路チップとシース液移流集積用平面部及びサンプル移流集積用平面部を相対移動させ、相対移動により発生したメニスカスにより目的とする微粒子を前記微粒子分離用マイクロ流路チップに形成された捕捉部位に捕捉し、
シース液吸引手段によりシース液を吸引することで、除去される微粒子をシース液とともに微粒子分離用マイクロ流路チップから除去することを特徴とする微粒子分離方法。 - 前記捕捉部位で捕捉される微粒子がCTCで、除去される微粒子が血球細胞であることを特徴とする請求項19に記載の微粒子分離方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2013106824A JP6244589B2 (ja) | 2013-05-21 | 2013-05-21 | 微粒子分離用マイクロ流路チップ、移流集積ユニット、微粒子分離用システム及び微粒子分離方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2013106824A JP6244589B2 (ja) | 2013-05-21 | 2013-05-21 | 微粒子分離用マイクロ流路チップ、移流集積ユニット、微粒子分離用システム及び微粒子分離方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2014226065A true JP2014226065A (ja) | 2014-12-08 |
JP6244589B2 JP6244589B2 (ja) | 2017-12-13 |
Family
ID=52126492
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2013106824A Active JP6244589B2 (ja) | 2013-05-21 | 2013-05-21 | 微粒子分離用マイクロ流路チップ、移流集積ユニット、微粒子分離用システム及び微粒子分離方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP6244589B2 (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2017188346A1 (ja) * | 2016-04-27 | 2017-11-02 | 国立大学法人 東京大学 | マイクロファイバーを用いた血中循環細胞の捕捉及び回収用材料及び当該材料を用いる方法 |
JP2019503197A (ja) * | 2016-01-26 | 2019-02-07 | チン,リードン | 単一の細胞の単離のためのマイクロ流体のアリコート |
KR20190096566A (ko) * | 2018-02-09 | 2019-08-20 | 광운대학교 산학협력단 | 메니스커스 곡면을 갖는 시료 내 입자 분리 장치 및 방법 |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2000514928A (ja) * | 1997-05-23 | 2000-11-07 | ガメラ バイオサイエンス コーポレイション | ミクロ流体工学システムでの流動運動を駆動するために向心的加速を使用するための装置および方法 |
JP2007186456A (ja) * | 2006-01-13 | 2007-07-26 | Foundation For The Promotion Of Industrial Science | 単一直径アルギン酸マイクロビーズの製造方法、その製造装置およびマイクロビーズの配列方法、その配列装置 |
JP2008116211A (ja) * | 2006-10-31 | 2008-05-22 | Kitakyushu Foundation For The Advancement Of Industry Science & Technology | セルセパレータ及びそれを用いた細胞分離方法 |
JP2009300433A (ja) * | 2008-05-15 | 2009-12-24 | Toray Ind Inc | 分析チップ |
JP2012521219A (ja) * | 2009-03-24 | 2012-09-13 | ユニバーシティ オブ シカゴ | SlipChip装置および方法 |
-
2013
- 2013-05-21 JP JP2013106824A patent/JP6244589B2/ja active Active
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2000514928A (ja) * | 1997-05-23 | 2000-11-07 | ガメラ バイオサイエンス コーポレイション | ミクロ流体工学システムでの流動運動を駆動するために向心的加速を使用するための装置および方法 |
JP2007186456A (ja) * | 2006-01-13 | 2007-07-26 | Foundation For The Promotion Of Industrial Science | 単一直径アルギン酸マイクロビーズの製造方法、その製造装置およびマイクロビーズの配列方法、その配列装置 |
JP2008116211A (ja) * | 2006-10-31 | 2008-05-22 | Kitakyushu Foundation For The Advancement Of Industry Science & Technology | セルセパレータ及びそれを用いた細胞分離方法 |
JP2009300433A (ja) * | 2008-05-15 | 2009-12-24 | Toray Ind Inc | 分析チップ |
JP2012521219A (ja) * | 2009-03-24 | 2012-09-13 | ユニバーシティ オブ シカゴ | SlipChip装置および方法 |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2019503197A (ja) * | 2016-01-26 | 2019-02-07 | チン,リードン | 単一の細胞の単離のためのマイクロ流体のアリコート |
WO2017188346A1 (ja) * | 2016-04-27 | 2017-11-02 | 国立大学法人 東京大学 | マイクロファイバーを用いた血中循環細胞の捕捉及び回収用材料及び当該材料を用いる方法 |
JPWO2017188346A1 (ja) * | 2016-04-27 | 2019-02-28 | 国立大学法人 東京大学 | マイクロファイバーを用いた血中循環細胞の捕捉及び回収用材料及び当該材料を用いる方法 |
KR20190096566A (ko) * | 2018-02-09 | 2019-08-20 | 광운대학교 산학협력단 | 메니스커스 곡면을 갖는 시료 내 입자 분리 장치 및 방법 |
KR102077643B1 (ko) | 2018-02-09 | 2020-04-07 | 광운대학교 산학협력단 | 메니스커스 곡면을 갖는 시료 내 입자 분리 장치 및 방법 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP6244589B2 (ja) | 2017-12-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP5704590B2 (ja) | サイズ選択マイクロキャビティアレイを用いた循環腫瘍細胞の検出 | |
TWI588262B (zh) | 用於分離或富集化細胞的方法及組合物 | |
Moon et al. | Continuous separation of breast cancer cells from blood samples using multi-orifice flow fractionation (MOFF) and dielectrophoresis (DEP) | |
JP6308525B2 (ja) | 微粒子分離用チップ、該微粒子分離用チップを用いた微粒子分離用システム及び微粒子分離方法 | |
JP6611223B2 (ja) | 微粒子分離用チップ、該微粒子分離用チップを用いた微粒子分離用システム、該部粒子分離用システムを用いた微粒子分離方法及び微粒子抽出方法 | |
JP6326582B2 (ja) | 微粒子分離用マイクロ流路チップ、該チップを用いた微粒子分離用システム及び微粒子分離方法 | |
US20150087016A1 (en) | Method For Processing Blood Sample | |
CN104073428A (zh) | 一种细胞分离微结构系统 | |
CN109486653A (zh) | 基于微流控和免疫磁分离双重策略的痕量细胞捕获系统 | |
US20150076049A1 (en) | Microfilter and apparatus for separating a biological entity from a sample volume | |
Gourikutty et al. | An integrated on-chip platform for negative enrichment of tumour cells | |
Zhou et al. | Nanoparticle modification of microfluidic cell separation for cancer cell detection and isolation | |
JP6244589B2 (ja) | 微粒子分離用マイクロ流路チップ、移流集積ユニット、微粒子分離用システム及び微粒子分離方法 | |
CN108795692B (zh) | 稀有细胞捕获系统及其应用 | |
JP2017508614A (ja) | 粒子濾過装置および粒子濾過方法 | |
TWM583456U (zh) | 具有珠體繫留結構的微流道晶片及微流道結構 | |
CN206570309U (zh) | 一种循环肿瘤细胞分选富集装置 | |
TWM583855U (zh) | 具有不平整結構的微流道晶片及微流道結構 | |
TWM583455U (zh) | 具有增阻區段的微流道晶片及微流道結構 | |
TWM581591U (zh) | 具有小孔徑緩流區段的微流道晶片及微流道結構 | |
Mengzheng et al. | A Novel Rare Cell Sorting Microfluidic Chip Based on Magnetic Nanoparticle Labels | |
US20230383239A1 (en) | Microscale cell filter | |
TWM581592U (zh) | 具有彎曲流道的微流道晶片及微流道結構 | |
Zhang et al. | On-chip sample preparations for point-of-care cellular analysis of blood | |
Esmaeilsabzali | Development of a microfluidic platform for size-based enrichment and immunomagnetic isolation of circulating tumour cells |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20160517 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20160517 |
|
A977 | Report on retrieval |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007 Effective date: 20170131 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20170221 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20170421 |
|
TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20171003 |
|
A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20171025 |
|
R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 6244589 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
S533 | Written request for registration of change of name |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313533 |
|
R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
S111 | Request for change of ownership or part of ownership |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313117 |
|
R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |