JP2014054218A - 忌避剤候補物質のスクリーニング方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】忌避剤候補物質のスクリーニング方法、該方法に利用可能な細胞等を提供すること。
【解決手段】 忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、特定の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入され当該嗅覚受容体を発現する形質転換細胞又はその細胞膜画分と、被験物質とを接触させ、前記嗅覚受容体の活性又はそれと相関する指標値を測定する第一工程と、（２）工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を、対照と比較して、当該嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を変動させる被験物質を選択する第二工程とを含む方法 等。
【選択図】なし
【解決手段】 忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、特定の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入され当該嗅覚受容体を発現する形質転換細胞又はその細胞膜画分と、被験物質とを接触させ、前記嗅覚受容体の活性又はそれと相関する指標値を測定する第一工程と、（２）工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を、対照と比較して、当該嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を変動させる被験物質を選択する第二工程とを含む方法 等。
【選択図】なし
Description
本発明は、忌避剤候補物質のスクリーニング方法等に関する。
昆虫は様々な匂い物質を認識して行動反応を生じる。昆虫の嗅覚器には嗅神経細胞が存在しており、個々の嗅神経細胞には嗅覚受容体が発現している。匂い物質と嗅覚受容体が結合することにより、嗅神経細胞が活性化され、匂いのシグナルがより高次の神経回路へと送られる。
昆虫の行動を制御する活性を有する匂い物質は、その作用により、誘引剤、忌避剤、または繁殖撹乱剤等としての利用が期待される。このような物質を見出す方法として、例えば、被験物質を被験昆虫に施用し被験昆虫の行動変化を観察することにより被験物質の作用を評価する方法が用いられてきた。当該方法は、被験昆虫の飼育及び管理や、被験物質施用後の被験昆虫の行動変化の観察に多大な手間と時間を要し、多数の被験物質の網羅的な試験が困難であった。
昆虫の行動を制御する活性を有する匂い物質は、その作用により、誘引剤、忌避剤、または繁殖撹乱剤等としての利用が期待される。このような物質を見出す方法として、例えば、被験物質を被験昆虫に施用し被験昆虫の行動変化を観察することにより被験物質の作用を評価する方法が用いられてきた。当該方法は、被験昆虫の飼育及び管理や、被験物質施用後の被験昆虫の行動変化の観察に多大な手間と時間を要し、多数の被験物質の網羅的な試験が困難であった。
昆虫の行動を制御する活性を有する物質を見出すために、多数の被験物質を迅速に試験する方法等の開発が望まれている。
本発明は、特定の嗅覚受容体を利用する忌避剤候補物質のスクリーニング方法、並びに、該スクリーニング方法で使用され得る、嗅覚受容体、当該嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチド及び当該ポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換細胞等を提供する。
即ち、本発明は、
１．忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、
（１）以下の嗅覚受容体からなる群：
（A1）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体、
（A2）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（A3）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、及び
（A4）配列番号１から１３のいずれかのアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列においてアミノ酸番号２８７以降のアミノ酸を欠失したアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
から選ばれる１以上の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入され当該嗅覚受容体を発現する形質転換細胞又はその細胞膜画分と、被験物質とを接触させ、前記嗅覚受容体の活性又はそれと相関する指標値を測定する第一工程と、
（２）工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を、対照と比較して、当該嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法（以下、本発明スクリーニング方法と記すこともある。）；
２．嗅覚受容体が、2-Undecanoneにより活性化される嗅覚受容体である前項１に記載のスクリーニング方法；
３．形質転換細胞が、培養細胞を宿主細胞とする形質転換細胞である前項１に記載のスクリーニング方法；
４．形質転換細胞が、嗅覚受容体共受容体をコードするポリヌクレオチドがさらに導入され当該嗅覚受容体共受容体と上記嗅覚受容体とを発現する形質転換細胞である前項１から３のいずれかに記載のスクリーニング方法；
５．嗅覚受容体共受容体が、以下の嗅覚受容体共受容体からなる群：
（C1）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体、
（C2）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、嗅覚受容体と共役して陽イオンを細胞内へ流入させる能力を有する嗅覚受容体共受容体、及び
（C3）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体のオーソログ；
から選ばれる嗅覚受容体共受容体である前項４に記載のスクリーニング方法：
６．工程（２）における対照が：
(a)被験物質を接触させていない前記形質転換細胞もしくはその細胞膜画分における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値、又は
(b)前記嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞もしくはその細胞膜画分における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値、
である前項１から４のいずれかに記載のスクリーニング方法；
７．工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞と被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、上記形質転換細胞における上記嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値である前項１から６のいずれかに記載のスクリーニング方法；
８．嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値が、細胞内カルシウム量、細胞膜電位又は細胞内cAMP量である前項７に記載のスクリーニング方法；
９．工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞の細胞膜画分と被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、前記細胞膜画分へのGTPの結合量である前項１から６のいずれかに記載のスクリーニング方法；
１０．工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞の細胞膜画分と標識リガンドおよび被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、前記細胞膜画分への標識リガンドの結合量である前項１から６のいずれかに記載のスクリーニング方法；
１１．被験物質の忌避効果を評価するための指標を提供する研究ツールとしての、前項１に記載の嗅覚受容体を機能可能な形で発現する細胞の使用；
１２．被験物質の忌避効果を評価するための指標を提供する研究ツールとしての、前項１に記載の嗅覚受容体またはそれをコードするポリヌクレオチドの使用；
１３．以下の嗅覚受容体からなる群から選ばれる嗅覚受容体：
（B1）配列番号１から１１、５１又は５５のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体、
（B2）配列番号２で示されるアミノ酸配列において１個以上６個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B3）配列番号２で示されるアミノ酸配列と９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B4）配列番号３で示されるアミノ酸配列において１個以上９個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B5）配列番号３で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B6）配列番号４で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B7）配列番号４で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B8）配列番号５で示されるアミノ酸配列において１個以上３個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B9）配列番号６で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B10）配列番号７で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B11）配列番号７で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B12）配列番号８で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる嗅覚受容体、
（B13）配列番号９で示されるアミノ酸配列において１個以上６個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B14）配列番号９で示されるアミノ酸配列と９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B15）配列番号１０で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B16）配列番号１１で示されるアミノ酸配列において１個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B17）配列番号５１で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、及び
（B18）配列番号５１で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
１４．2-Undecanoneにより活性化される嗅覚受容体である前項１３記載の嗅覚受容体；
１５．前項１３又は１４に記載の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチド；
１６．配列番号１６から２６、５０又は５４のいずれかで示される塩基配列を有する前項１５記載のポリヌクレオチド；
１７．前項１５又は１６記載のポリヌクレオチドの塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド；
１８．前項１５から１７のいずれかに記載のポリヌクレオチドと、宿主細胞において機能可能なプロモーターとが機能可能な形で連結されてなるポリヌクレオチド；
１９．前項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチドを含有するベクター；
２０．宿主細胞内で複製可能なベクターに、前項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチドを組込む工程を有するベクターの製造方法；
２１．前項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換細胞；
２２．前項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチド又は前項１９に記載のベクターを宿主細胞に導入する工程を有する形質転換細胞の製造方法；及び
２３．前項１５又は１６記載のポリヌクレオチドが導入され当該ポリヌクレオチドにコードされる嗅覚受容体を発現する形質転換細胞を培養し、産生された嗅覚受容体を回収する工程を有する嗅覚受容体の製造方法；
等を提供する。
即ち、本発明は、
１．忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、
（１）以下の嗅覚受容体からなる群：
（A1）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体、
（A2）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（A3）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、及び
（A4）配列番号１から１３のいずれかのアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列においてアミノ酸番号２８７以降のアミノ酸を欠失したアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
から選ばれる１以上の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入され当該嗅覚受容体を発現する形質転換細胞又はその細胞膜画分と、被験物質とを接触させ、前記嗅覚受容体の活性又はそれと相関する指標値を測定する第一工程と、
（２）工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を、対照と比較して、当該嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法（以下、本発明スクリーニング方法と記すこともある。）；
２．嗅覚受容体が、2-Undecanoneにより活性化される嗅覚受容体である前項１に記載のスクリーニング方法；
３．形質転換細胞が、培養細胞を宿主細胞とする形質転換細胞である前項１に記載のスクリーニング方法；
４．形質転換細胞が、嗅覚受容体共受容体をコードするポリヌクレオチドがさらに導入され当該嗅覚受容体共受容体と上記嗅覚受容体とを発現する形質転換細胞である前項１から３のいずれかに記載のスクリーニング方法；
５．嗅覚受容体共受容体が、以下の嗅覚受容体共受容体からなる群：
（C1）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体、
（C2）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、嗅覚受容体と共役して陽イオンを細胞内へ流入させる能力を有する嗅覚受容体共受容体、及び
（C3）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体のオーソログ；
から選ばれる嗅覚受容体共受容体である前項４に記載のスクリーニング方法：
６．工程（２）における対照が：
(a)被験物質を接触させていない前記形質転換細胞もしくはその細胞膜画分における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値、又は
(b)前記嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞もしくはその細胞膜画分における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値、
である前項１から４のいずれかに記載のスクリーニング方法；
７．工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞と被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、上記形質転換細胞における上記嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値である前項１から６のいずれかに記載のスクリーニング方法；
８．嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値が、細胞内カルシウム量、細胞膜電位又は細胞内cAMP量である前項７に記載のスクリーニング方法；
９．工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞の細胞膜画分と被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、前記細胞膜画分へのGTPの結合量である前項１から６のいずれかに記載のスクリーニング方法；
１０．工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞の細胞膜画分と標識リガンドおよび被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、前記細胞膜画分への標識リガンドの結合量である前項１から６のいずれかに記載のスクリーニング方法；
１１．被験物質の忌避効果を評価するための指標を提供する研究ツールとしての、前項１に記載の嗅覚受容体を機能可能な形で発現する細胞の使用；
１２．被験物質の忌避効果を評価するための指標を提供する研究ツールとしての、前項１に記載の嗅覚受容体またはそれをコードするポリヌクレオチドの使用；
１３．以下の嗅覚受容体からなる群から選ばれる嗅覚受容体：
（B1）配列番号１から１１、５１又は５５のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体、
（B2）配列番号２で示されるアミノ酸配列において１個以上６個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B3）配列番号２で示されるアミノ酸配列と９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B4）配列番号３で示されるアミノ酸配列において１個以上９個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B5）配列番号３で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B6）配列番号４で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B7）配列番号４で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B8）配列番号５で示されるアミノ酸配列において１個以上３個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B9）配列番号６で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B10）配列番号７で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B11）配列番号７で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B12）配列番号８で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる嗅覚受容体、
（B13）配列番号９で示されるアミノ酸配列において１個以上６個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B14）配列番号９で示されるアミノ酸配列と９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B15）配列番号１０で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B16）配列番号１１で示されるアミノ酸配列において１個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B17）配列番号５１で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、及び
（B18）配列番号５１で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
１４．2-Undecanoneにより活性化される嗅覚受容体である前項１３記載の嗅覚受容体；
１５．前項１３又は１４に記載の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチド；
１６．配列番号１６から２６、５０又は５４のいずれかで示される塩基配列を有する前項１５記載のポリヌクレオチド；
１７．前項１５又は１６記載のポリヌクレオチドの塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド；
１８．前項１５から１７のいずれかに記載のポリヌクレオチドと、宿主細胞において機能可能なプロモーターとが機能可能な形で連結されてなるポリヌクレオチド；
１９．前項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチドを含有するベクター；
２０．宿主細胞内で複製可能なベクターに、前項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチドを組込む工程を有するベクターの製造方法；
２１．前項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換細胞；
２２．前項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチド又は前項１９に記載のベクターを宿主細胞に導入する工程を有する形質転換細胞の製造方法；及び
２３．前項１５又は１６記載のポリヌクレオチドが導入され当該ポリヌクレオチドにコードされる嗅覚受容体を発現する形質転換細胞を培養し、産生された嗅覚受容体を回収する工程を有する嗅覚受容体の製造方法；
等を提供する。
本発明により、特定の嗅覚受容体を利用する忌避剤候補物質のスクリーニング方法、並びに、該スクリーニング方法で使用され得る、嗅覚受容体、当該嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチド及び当該ポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換細胞等が提供可能となる。
昆虫の嗅覚受容体（odorant receptor）は、7回膜貫通構造を有する膜受容体であり、匂い物質等のリガンドにより活性化されると、細胞内シグナル伝達を活性化させ、三量体Gタンパク質を介してcAMP量を増加させる。嗅覚受容体は嗅覚受容体共受容体（odorant receptor co-receptor）とヘテロ複合体を形成し、ナトリウムイオン、カルシウムイオンなどの陽イオンを細胞内に流入させる活性を示す。
本発明スクリーニング方法は、忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、
（１）以下の嗅覚受容体からなる群：
（A1）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体、
（A2）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（A3）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、及び
（A4）配列番号１から１３のいずれかのアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列においてアミノ酸番号２８７以降のアミノ酸を欠失したアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
から選ばれる１以上の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入され当該嗅覚受容体を発現する形質転換細胞又はその細胞膜画分と、被験物質とを接触させ、前記嗅覚受容体の活性又はそれと相関する指標値を測定する第一工程と、
（２）工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を、対照と比較して、当該嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法である。
本発明スクリーニング方法で使用される形質転換細胞は、以下の嗅覚受容体からなる群Ａ：
（A1）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体；
（A2）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
（A3）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；及び
（A4）配列番号１から１３のいずれかのアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列においてアミノ酸番号２８７以降のアミノ酸を欠失したアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
から選ばれる１以上の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入され当該嗅覚受容体を発現する形質転換細胞である。
（１）以下の嗅覚受容体からなる群：
（A1）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体、
（A2）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（A3）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、及び
（A4）配列番号１から１３のいずれかのアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列においてアミノ酸番号２８７以降のアミノ酸を欠失したアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
から選ばれる１以上の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入され当該嗅覚受容体を発現する形質転換細胞又はその細胞膜画分と、被験物質とを接触させ、前記嗅覚受容体の活性又はそれと相関する指標値を測定する第一工程と、
（２）工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を、対照と比較して、当該嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法である。
本発明スクリーニング方法で使用される形質転換細胞は、以下の嗅覚受容体からなる群Ａ：
（A1）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体；
（A2）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
（A3）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；及び
（A4）配列番号１から１３のいずれかのアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列においてアミノ酸番号２８７以降のアミノ酸を欠失したアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
から選ばれる１以上の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入され当該嗅覚受容体を発現する形質転換細胞である。
上記群Ａから選ばれる嗅覚受容体としては、より具体的には、以下の群Ｂ：
（B1）配列番号１から１１、５１又は５５のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体、
（B2）配列番号２で示されるアミノ酸配列において１個以上６個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B3）配列番号２で示されるアミノ酸配列と９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B4）配列番号３で示されるアミノ酸配列において１個以上９個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B5）配列番号３で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B6）配列番号４で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B7）配列番号４で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B8）配列番号５で示されるアミノ酸配列において１個以上３個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B9）配列番号６で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B10）配列番号７で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B11）配列番号７で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B12）配列番号８で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる嗅覚受容体、
（B13）配列番号９で示されるアミノ酸配列において１個以上６個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B14）配列番号９で示されるアミノ酸配列と９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B15）配列番号１０で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B16）配列番号１１で示されるアミノ酸配列において１個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
（B17）配列番号５１で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、及び
（B18）配列番号５１で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
から選ばれる嗅覚受容体を挙げることができる。
上記の群Ａ及びＢに示される嗅覚受容体は、例えば2-Undecanoneにより活性化され、細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を発揮する。
（B1）配列番号１から１１、５１又は５５のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体、
（B2）配列番号２で示されるアミノ酸配列において１個以上６個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B3）配列番号２で示されるアミノ酸配列と９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B4）配列番号３で示されるアミノ酸配列において１個以上９個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B5）配列番号３で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B6）配列番号４で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B7）配列番号４で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B8）配列番号５で示されるアミノ酸配列において１個以上３個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B9）配列番号６で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B10）配列番号７で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B11）配列番号７で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B12）配列番号８で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる嗅覚受容体、
（B13）配列番号９で示されるアミノ酸配列において１個以上６個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B14）配列番号９で示されるアミノ酸配列と９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B15）配列番号１０で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B16）配列番号１１で示されるアミノ酸配列において１個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
（B17）配列番号５１で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、及び
（B18）配列番号５１で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
から選ばれる嗅覚受容体を挙げることができる。
上記の群Ａ及びＢに示される嗅覚受容体は、例えば2-Undecanoneにより活性化され、細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を発揮する。
上記の群Ａ及びＢに示される嗅覚受容体のアミノ酸配列において、群Ａの（A1）に示される嗅覚受容体のアミノ酸配列との間に認められることのある相違は、一部のアミノ酸の欠失、置換、付加等である。これらには、例えば、上記群Ａの（A1）で示される蛋白質が細胞内で受けるプロセシングによる欠失が含まれる。また、該蛋白質が由来する生物の種差や個体差等により天然に生じる遺伝子変異や、部位特異的変異導入法、ランダム変異導入法、突然変異処理等によって人為的に導入される遺伝子変異等により生じるアミノ酸の欠失、置換、付加等が含まれる。
かかる欠失、置換、付加等を受けるアミノ酸の数は、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を嗅覚受容体が発揮することのできる範囲内の数であれば良い。上記群Ａの（A2）における「複数のアミノ酸」としては、例えば、２、３、４、５、６、７、１０、１５、２０、２５、３０、３５、もしくは４０個のアミノ酸が挙げられる。上記群Ｂの（B2）、（B4）、（B6）、（B8）、（B10）、（B13）及び（B17）における「欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸」の数としては、好ましくは１もしくは２個が挙げられる。
アミノ酸の置換としては、例えば、疎水性、電荷、ｐＫ、立体構造上における特徴等の類似したアミノ酸への保存的置換をあげることができる。このような置換としては、具体的には例えば、(1)グリシン、アラニン；(2)バリン、イソロイシン、ロイシン；(3)アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、グルタミン、(4)セリン、スレオニン；(5)リジン、アルギニン；(6)フェニルアラニン、チロシン等のグループ内での置換が挙げられる。
かかるアミノ酸の欠失、付加若しくは置換（以下、総じてアミノ酸の改変と記すこともある。）を人為的に行う手法としては、例えば、上記群Ａの（A1）で示される嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドに対して部位特異的変異導入を施し、その後このポリヌクレオチドを常法により発現させる手法が挙げられる。ここで部位特異的変異導入法としては、例えば、アンバー変異を利用する方法（ギャップド・デュプレックス法、Nucleic Acids Res.,12,9441-9456(1984)）、変異導入用プライマーを用いたＰＣＲによる方法等が挙げられる。
アミノ酸の改変を人為的に行う手法としては、例えば、上記群Ａの（A1）で示される嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドに対してランダムに変異導入を施し、その後このポリヌクレオチドを常法により発現させる手法も挙げられる。ここでランダムに変異を導入する手法としては、例えば、上記のアミノ酸配列のいずれかをコードするポリヌクレオチドを鋳型とし、それぞれのポリヌクレオチドの全長を増幅できるようなプライマー対を用い、基質に用いるdATP、dTTP、dGTP、dCTPの各々の添加濃度を通常とは変化させた反応条件や、或いはポリメラーゼの反応を促進させるMg２＋の濃度を通常よりも増加させた反応条件でＰＣＲを行う方法等が挙げられる。このようなＰＣＲの手法としては、例えば、Method in Molecular Biology, (31), 1994, 97-112 に記載される方法があげられる。また、WO0009682号公報に記載される方法をあげることもできる。
かかる欠失、置換、付加等を受けるアミノ酸の数は、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を嗅覚受容体が発揮することのできる範囲内の数であれば良い。上記群Ａの（A2）における「複数のアミノ酸」としては、例えば、２、３、４、５、６、７、１０、１５、２０、２５、３０、３５、もしくは４０個のアミノ酸が挙げられる。上記群Ｂの（B2）、（B4）、（B6）、（B8）、（B10）、（B13）及び（B17）における「欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸」の数としては、好ましくは１もしくは２個が挙げられる。
アミノ酸の置換としては、例えば、疎水性、電荷、ｐＫ、立体構造上における特徴等の類似したアミノ酸への保存的置換をあげることができる。このような置換としては、具体的には例えば、(1)グリシン、アラニン；(2)バリン、イソロイシン、ロイシン；(3)アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、グルタミン、(4)セリン、スレオニン；(5)リジン、アルギニン；(6)フェニルアラニン、チロシン等のグループ内での置換が挙げられる。
かかるアミノ酸の欠失、付加若しくは置換（以下、総じてアミノ酸の改変と記すこともある。）を人為的に行う手法としては、例えば、上記群Ａの（A1）で示される嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドに対して部位特異的変異導入を施し、その後このポリヌクレオチドを常法により発現させる手法が挙げられる。ここで部位特異的変異導入法としては、例えば、アンバー変異を利用する方法（ギャップド・デュプレックス法、Nucleic Acids Res.,12,9441-9456(1984)）、変異導入用プライマーを用いたＰＣＲによる方法等が挙げられる。
アミノ酸の改変を人為的に行う手法としては、例えば、上記群Ａの（A1）で示される嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドに対してランダムに変異導入を施し、その後このポリヌクレオチドを常法により発現させる手法も挙げられる。ここでランダムに変異を導入する手法としては、例えば、上記のアミノ酸配列のいずれかをコードするポリヌクレオチドを鋳型とし、それぞれのポリヌクレオチドの全長を増幅できるようなプライマー対を用い、基質に用いるdATP、dTTP、dGTP、dCTPの各々の添加濃度を通常とは変化させた反応条件や、或いはポリメラーゼの反応を促進させるMg２＋の濃度を通常よりも増加させた反応条件でＰＣＲを行う方法等が挙げられる。このようなＰＣＲの手法としては、例えば、Method in Molecular Biology, (31), 1994, 97-112 に記載される方法があげられる。また、WO0009682号公報に記載される方法をあげることもできる。
「配列同一性」とは、２つの塩基配列又は２つのアミノ酸配列間の同一性をいう。前記「配列同一性」は、比較対象の配列の全領域にわたって、最適な状態にアラインメントされた２つの配列を比較することにより決定される。ここで、比較対象の塩基配列又はアミノ酸配列の最適なアラインメントにおいては、付加又は欠失（例えばギャップ等）を許容してもよい。このような配列同一性は、例えば、FASTA［Pearson & Lipman, Proc. Natl. Acad. Sci. USA，4, 2444-2448(1988)］、BLAST［Altschulら、Journal of Molecular Biology, 215, 403-410(1990)］、CLUSTAL W［Thompson,Higgins＆Gibson, Nucleic Acid Research, 22, 4673-4680(1994a)］等のプログラムを用いて相同性解析を行いアラインメントを作成することによって算出することができる。上記のプログラムは、例えば、DNA Data Bank of Japan［国立遺伝学研究所 生命情報・ＤＤＢＪ研究センター (Center for Information Biology and DNA Data Bank of Japan ；CIB/DDBJ)内で運営される国際ＤＮＡデータバンク］のホームページ等において、一般的に利用可能である。また、配列同一性は市販の配列解析ソフトウェアを用いて求めることもできる。具体的には例えば、GENETYX-WIN Ver.5（ソフトウェア開発株式会社製）」を用い、Lipman-Pearson法［Lipman, D. J. and Pearson, W.R., Science, 227, 1435-1441,(1985)］により相同性解析を行ってアラインメントを作成することにより算出することができる。
上記群Ａの（A3）および（A4）に記載の「９０％以上の配列同一性」としては、例えば９０、９５、９８、または９９％以上の配列同一性が挙げられる。上記群Ｂの（B5）、（B7）、（B11）及び（B18）に記載の「９８％以上の配列同一性」としては、例えば９８または９９％以上の配列同一性が挙げられる。
上記群Ａの（A3）および（A4）に記載の「９０％以上の配列同一性」としては、例えば９０、９５、９８、または９９％以上の配列同一性が挙げられる。上記群Ｂの（B5）、（B7）、（B11）及び（B18）に記載の「９８％以上の配列同一性」としては、例えば９８または９９％以上の配列同一性が挙げられる。
上記群Ａの（A4）に記載の嗅覚受容体としては、例えば、配列番号１１で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体を挙げることができる。配列番号１１で示されるアミノ酸配列は、配列番号１で示されるアミノ酸配列のアミノ酸番号１から２８６で示されるアミノ酸配列とアラインメントされるアミノ酸配列を有するが、配列番号１で示されるアミノ酸配列のアミノ酸番号２８７からカルボキシ末端までのアミノ酸配列とアラインメントされるアミノ酸配列を欠失している。
配列番号１２で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号XP_310062で示されるアミノ酸配列である。配列番号１２で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号２７で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号XM_310062で示される塩基配列である。
配列番号１３で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号XP_310064で示されるアミノ酸配列である。配列番号１３で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号２８で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号XM_310064で示される塩基配列である。
配列番号５３で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号XP_317124で示されるアミノ酸配列である。配列番号５３で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号５２で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号XM_317124で示される塩基配列である。
配列番号５７で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号XP_315048で示されるアミノ酸配列である。配列番号５７で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号５６で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号XM_315048で示される塩基配列である。
配列番号５９で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号XP_309205で示されるアミノ酸配列である。配列番号５９で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号５８で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号XM_309205で示される塩基配列である。
配列番号１３で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号XP_310064で示されるアミノ酸配列である。配列番号１３で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号２８で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号XM_310064で示される塩基配列である。
配列番号５３で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号XP_317124で示されるアミノ酸配列である。配列番号５３で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号５２で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号XM_317124で示される塩基配列である。
配列番号５７で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号XP_315048で示されるアミノ酸配列である。配列番号５７で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号５６で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号XM_315048で示される塩基配列である。
配列番号５９で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号XP_309205で示されるアミノ酸配列である。配列番号５９で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号５８で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号XM_309205で示される塩基配列である。
本形質転換細胞には、嗅覚受容体共受容体をコードするポリヌクレオチドがさらに導入されていてもよい。かかる嗅覚受容体共受容体としては、例えば、群Ｃ：
（C1）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体；
（C2）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、嗅覚受容体と共役して陽イオンを細胞内へ流入させる能力を有する嗅覚受容体共受容体；及び
（C3）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体のオーソログ；
から選ばれる嗅覚受容体共受容体を挙げることができる。
（C1）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体；
（C2）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、嗅覚受容体と共役して陽イオンを細胞内へ流入させる能力を有する嗅覚受容体共受容体；及び
（C3）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体のオーソログ；
から選ばれる嗅覚受容体共受容体を挙げることができる。
上記の群Ｃに示される嗅覚受容体共受容体のアミノ酸配列において、群Ｃの（C1）に示される嗅覚受容体共受容体のアミノ酸配列との間に認められることのある相違は、一部のアミノ酸の欠失、置換、付加等である。これらには、例えば、上記群Ｃの（C1）で示される蛋白質が細胞内で受けるプロセシングによる欠失が含まれる。また、該蛋白質が由来する生物の種差や個体差等により天然に生じる遺伝子変異や、部位特異的変異導入法、ランダム変異導入法、突然変異処理等によって人為的に導入される遺伝子変異等により生じるアミノ酸の欠失、置換、付加等が含まれる。
かかる欠失、置換、付加等を受けるアミノ酸の数は、嗅覚受容体と共役して陽イオンを細胞内へ流入させる能力を嗅覚受容体共受容体が発揮することのできる範囲内の数であれば良い。アミノ酸の置換としては、例えば、疎水性、電荷、ｐＫ、立体構造上における特徴等の類似したアミノ酸への保存的置換をあげることができる。このような置換としては、具体的には例えば、(1)グリシン、アラニン；(2)バリン、イソロイシン、ロイシン；(3)アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、グルタミン、(4)セリン、スレオニン；(5)リジン、アルギニン；(6)フェニルアラニン、チロシン等のグループ内での置換が挙げられる。
かかるアミノ酸の欠失、付加若しくは置換を人為的に行う手法としては、例えば、上記群Ｃの（C1）で示される嗅覚受容体共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドに対して部位特異的変異導入を施し、その後このポリヌクレオチドを常法により発現させる手法が挙げられる。
アミノ酸の改変を人為的に行う手法としては、例えば、上記群Ｃの（C1）で示される嗅覚受容体共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドに対してランダムに変異導入を施し、その後このポリヌクレオチドを常法により発現させる手法も挙げられる。
かかる欠失、置換、付加等を受けるアミノ酸の数は、嗅覚受容体と共役して陽イオンを細胞内へ流入させる能力を嗅覚受容体共受容体が発揮することのできる範囲内の数であれば良い。アミノ酸の置換としては、例えば、疎水性、電荷、ｐＫ、立体構造上における特徴等の類似したアミノ酸への保存的置換をあげることができる。このような置換としては、具体的には例えば、(1)グリシン、アラニン；(2)バリン、イソロイシン、ロイシン；(3)アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、グルタミン、(4)セリン、スレオニン；(5)リジン、アルギニン；(6)フェニルアラニン、チロシン等のグループ内での置換が挙げられる。
かかるアミノ酸の欠失、付加若しくは置換を人為的に行う手法としては、例えば、上記群Ｃの（C1）で示される嗅覚受容体共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドに対して部位特異的変異導入を施し、その後このポリヌクレオチドを常法により発現させる手法が挙げられる。
アミノ酸の改変を人為的に行う手法としては、例えば、上記群Ｃの（C1）で示される嗅覚受容体共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドに対してランダムに変異導入を施し、その後このポリヌクレオチドを常法により発現させる手法も挙げられる。
上記群Ｃの（C2）に記載の「７０％以上の配列同一性」としては、例えば、７０、７５、８０、８５、９０、９５、９８、または９９％以上の配列同一性が挙げられる。
上記群Ｃの（C3）に記載の「配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体のオーソログ」としては、例えば、ガンビエハマダラカ及びショウジョウバエ以外の昆虫由来の嗅覚受容体共受容体が挙げられる。
上記群Ｃの（C3）に記載の「配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体のオーソログ」としては、例えば、ガンビエハマダラカ及びショウジョウバエ以外の昆虫由来の嗅覚受容体共受容体が挙げられる。
配列番号１４で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号AAR14938で示されるアミノ酸配列であり、ガンビエハマダラカ（Anopheles gambiae）由来の嗅覚受容体共受容体のアミノ酸配列である。配列番号１４で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号２９で示される塩基配列や、NCBIデータベースにおいて登録番号AY363725で示される塩基配列を挙げることができる。
配列番号１５で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号NP_524235で示されるアミノ酸配列であり、ショウジョウバエ（Drosophila melanogaster）由来の嗅覚受容体共受容体のアミノ酸配列である。配列番号１５で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号３０で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号NM_079511で示される塩基配列である。
配列番号１５で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースにおいて登録番号NP_524235で示されるアミノ酸配列であり、ショウジョウバエ（Drosophila melanogaster）由来の嗅覚受容体共受容体のアミノ酸配列である。配列番号１５で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、例えば、配列番号３０で示される塩基配列を挙げることができ、該塩基配列はNCBIデータベースにおいて登録番号NM_079511で示される塩基配列である。
上記群Ａおよび群Ｂに示される嗅覚受容体、並びに、上記群Ｃに示される嗅覚受容体共受容体は、例えば、これら受容体又は共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを用いて後述の方法に従い調製することができる。上記群Ａおよび群Ｂに示される嗅覚受容体がリガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力、並びに、上記群Ｃに示される嗅覚受容体共受容体が嗅覚受容体と共役して陽イオンを細胞内へ流入させる能力は、後述の方法に準じて測定することができる。
上記群Ａおよび群Ｂに示される嗅覚受容体（以下、本嗅覚受容体と記すこともある。）のアミノ酸配列をそれぞれコードするポリヌクレオチド、並びに、上記群Ｃに示される嗅覚受容体共受容体（以下、本共受容体と記すこともある。）のアミノ酸配列をそれぞれコードするポリヌクレオチドは、例えば、ガンビエハマダラカ（Anopheles gambiae）やショウジョウバエ（Drosophila melanogaster）等の目的とする昆虫の組織から、Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) 等に記載される遺伝子工学的方法に準じて取得することができる。
ガンビエハマダラカ等のハマダラカは、例えば、Malaria Research and Reference Reagent Resource Center等から入手可能である。
ｃＤＮＡライブラリーを作製するためには、まず、ガンビエハマダラカやショウジョウバエ等の目的とする昆虫の組織由来の全ＲＮＡを調製する。
具体的には例えば、目的とする昆虫の頭部等の組織を塩酸グアニジンやグアニジンチオシアネート等のタンパク質変性剤を含む溶液中で粉砕し、さらに当該粉砕物にフェノール、クロロホルム等を加えることによりタンパク質を変性させる。変性タンパク質を遠心分離により除去した後、回収された上清画分から塩酸グアニジン／フェノール法、SDS−フェノール法、グアニジンチオシアネート／CsCl法等の方法により全ＲＮＡを抽出する。尚、これらの方法に基づいた市販のキットとしては、例えば、TRIzol試薬（インビトロジェン社）、Isogen（ニッポンジーン社製）等が挙げられる。
得られた全ＲＮＡを鋳型としてオリゴdTプライマーをＲＮＡのポリA配列にアニールさせ、逆転写酵素により一本鎖ｃＤＮＡを合成する。更に一本鎖ｃＤＮＡを鋳型とし、かつ大腸菌RNaseHを用いてＲＮＡ鎖にニックとギャップを入れることにより得られるＲＮＡ断片をプライマーとして大腸菌のＤＮＡポリメラーゼIを用いて二本鎖のｃＤＮＡを合成することもできる。得られたｃＤＮＡは、フェノールクロロホルム抽出、エタノール沈殿等の通常の方法により精製、回収する。尚、これらの方法に基づいた市販のキットとしては、例えば、ｃＤＮＡ合成システムプラス（アマシャムバイオサイエンス社製）やSuperScript Choice System（インビトロジェン社製）等が挙げられる。
得られた二本鎖ｃＤＮＡを、例えば、プラスミドpUC118やファージλgt10等のベクターとリガーゼとを用いて連結することによりｃＤＮＡライブラリーを作製することができる。
ゲノムＤＮＡライブラリーを作製するためには、ガンビエハマダラカやショウジョウバエ等の目的とする昆虫の組織片から、例えば、Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) 等に記載される通常の方法に準じてゲノムＤＮＡを調製する。
例えば、試料が頭部の場合には、抽出緩衝液［10mM Tris-HCl (pH8.0), 0.1 mM EDTA (pH8.0), 20μ g/ml, 0.5%SDS］を組織重量に対し10倍量（v/w）加え粉砕し、さらにProteinaseKを最終濃度100μｌ/ml になるように加え混合する。この混合物を50℃で３時間保温した後、フェノール／クロロホルム等を加えることによりタンパク質を変性させる。変性タンパク質を遠心分離等により除去した後、回収された上清画分にエタノールを添加しゲノムＤＮＡを沈殿させ回収する。得られたゲノムＤＮＡをλgt10等のベクターとリガーゼを用いて連結することによりゲノムＤＮＡライブラリーを得ることができる。
目的とする昆虫のRNA、ｃＤＮＡライブラリー、ゲノムＤＮＡ又はゲノムＤＮＡライブラリー等が市販されている場合は、それらを利用してもよい。
ガンビエハマダラカ等のハマダラカは、例えば、Malaria Research and Reference Reagent Resource Center等から入手可能である。
ｃＤＮＡライブラリーを作製するためには、まず、ガンビエハマダラカやショウジョウバエ等の目的とする昆虫の組織由来の全ＲＮＡを調製する。
具体的には例えば、目的とする昆虫の頭部等の組織を塩酸グアニジンやグアニジンチオシアネート等のタンパク質変性剤を含む溶液中で粉砕し、さらに当該粉砕物にフェノール、クロロホルム等を加えることによりタンパク質を変性させる。変性タンパク質を遠心分離により除去した後、回収された上清画分から塩酸グアニジン／フェノール法、SDS−フェノール法、グアニジンチオシアネート／CsCl法等の方法により全ＲＮＡを抽出する。尚、これらの方法に基づいた市販のキットとしては、例えば、TRIzol試薬（インビトロジェン社）、Isogen（ニッポンジーン社製）等が挙げられる。
得られた全ＲＮＡを鋳型としてオリゴdTプライマーをＲＮＡのポリA配列にアニールさせ、逆転写酵素により一本鎖ｃＤＮＡを合成する。更に一本鎖ｃＤＮＡを鋳型とし、かつ大腸菌RNaseHを用いてＲＮＡ鎖にニックとギャップを入れることにより得られるＲＮＡ断片をプライマーとして大腸菌のＤＮＡポリメラーゼIを用いて二本鎖のｃＤＮＡを合成することもできる。得られたｃＤＮＡは、フェノールクロロホルム抽出、エタノール沈殿等の通常の方法により精製、回収する。尚、これらの方法に基づいた市販のキットとしては、例えば、ｃＤＮＡ合成システムプラス（アマシャムバイオサイエンス社製）やSuperScript Choice System（インビトロジェン社製）等が挙げられる。
得られた二本鎖ｃＤＮＡを、例えば、プラスミドpUC118やファージλgt10等のベクターとリガーゼとを用いて連結することによりｃＤＮＡライブラリーを作製することができる。
ゲノムＤＮＡライブラリーを作製するためには、ガンビエハマダラカやショウジョウバエ等の目的とする昆虫の組織片から、例えば、Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) 等に記載される通常の方法に準じてゲノムＤＮＡを調製する。
例えば、試料が頭部の場合には、抽出緩衝液［10mM Tris-HCl (pH8.0), 0.1 mM EDTA (pH8.0), 20μ g/ml, 0.5%SDS］を組織重量に対し10倍量（v/w）加え粉砕し、さらにProteinaseKを最終濃度100μｌ/ml になるように加え混合する。この混合物を50℃で３時間保温した後、フェノール／クロロホルム等を加えることによりタンパク質を変性させる。変性タンパク質を遠心分離等により除去した後、回収された上清画分にエタノールを添加しゲノムＤＮＡを沈殿させ回収する。得られたゲノムＤＮＡをλgt10等のベクターとリガーゼを用いて連結することによりゲノムＤＮＡライブラリーを得ることができる。
目的とする昆虫のRNA、ｃＤＮＡライブラリー、ゲノムＤＮＡ又はゲノムＤＮＡライブラリー等が市販されている場合は、それらを利用してもよい。
上記のような一本鎖又は二本鎖ｃＤＮＡ、又は、ｃＤＮＡライブラリー若しくはゲノムＤＮＡライブラリーから、配列番号１６から２８、５０、５２、５４、５６又は５８のいずれかで示される塩基配列の部分塩基配列又は当該部分塩基配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いるＰＣＲ反応や、上記ｃＤＮＡライブラリーやゲノムＤＮＡライブラリーから、配列番号１６から２８、５０、５２、５４、５６又は５８のいずれかで示される塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド又は当該塩基配列の部分塩基配列を有するポリヌクレオチドをプローブとして用いるハイブリダイゼーション法により、本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドを取得することができる。
ＰＣＲに用いられるプライマーとしては、例えば、約15塩基から約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、配列番号１６から２８、５０、５２、５４、５６又は５８のいずれかで示される塩基配列の５’側の翻訳開始点から始まる塩基配列を有するオリゴヌクレオチド、及び、配列番号１６から２８、５０、５２、５４、５６又は５８のいずれかで示される塩基配列の３’側の翻訳終了点から始まる塩基配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを挙げることができる。具体的には、フォワードプライマーとしては、例えば、配列番号３５、３６、６２、６４、６５、６７または６９で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。また、リバースプライマーとしては、例えば、配列番号３７、６３、６６、６８または７０で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。ＰＣＲは、例えば、KOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いて、９５℃で３０秒間、次いで６０℃で３０秒間、次いで６８℃で2分間の保温を１サイクルとしてこれを４０サイクル行う。このようなＰＣＲで増幅されたＤＮＡ断片を、必要に応じて低融点アガロース電気泳動等に供して精製した後、エタノール沈殿により回収することにより、精製し回収することができる。
ハイブリダイゼーション法に用いられるプローブとしては、例えば、配列番号１６から２８、５０、５２、５４、５６又は５８のいずれかで示される塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド、又は、当該ポリヌクレオチドの部分塩基配列を有するポリヌクレオチド等が挙げられる。ハイブリダイゼーションの条件としては、例えば、6×SSC（0.9M塩化ナトリウム、0.09Mクエン酸ナトリウム）、5×デンハルト溶液（0.1(w/v)フィコール400、0.1(w/v)ポリビニルピロリドン、0.1(w/v)BSA）、0.5(w/v)SDS及び100μg/ml変性サケ精子ＤＮＡ存在下に、65℃で保温し、次いで１×SSC（0.15M塩化ナトリウム、0.015Mクエン酸ナトリウム）及び0.5(w/v)SDS存在下に、室温で15分間の保温を２回行い、さらに0.1×SSC（0.015M 塩化ナトリウム、0.0015Mクエン酸ナトリウム）及び0.5(w/v)SDS存在下に、68℃で30分間保温する条件等を挙げることができる。また、例えば、5xSSC、50mMHEPES pH7.0、10xデンハルト溶液及び20μg/ml変性サケ精子ＤＮＡ存在下に65℃にて保温し、次いで2xSSC中で室温にて３０分間の保温を行い、さらに0.1xSSC中で６５℃にて４０分間の保温を２回行う条件を挙げることもできる。
本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドは、例えば、配列番号１６から２８、５０、５２、５４、５６又は５８で示される塩基配列に基づいて、例えばホスファイト・トリエステル法（Hunkapiller, M.et al., Nature, 310, 105, 1984）等の通常の方法に準じて、核酸の化学合成を行うことにより調製することもできる。本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドの塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチドも、同様に調製することができる。
ＰＣＲに用いられるプライマーとしては、例えば、約15塩基から約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、配列番号１６から２８、５０、５２、５４、５６又は５８のいずれかで示される塩基配列の５’側の翻訳開始点から始まる塩基配列を有するオリゴヌクレオチド、及び、配列番号１６から２８、５０、５２、５４、５６又は５８のいずれかで示される塩基配列の３’側の翻訳終了点から始まる塩基配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを挙げることができる。具体的には、フォワードプライマーとしては、例えば、配列番号３５、３６、６２、６４、６５、６７または６９で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。また、リバースプライマーとしては、例えば、配列番号３７、６３、６６、６８または７０で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。ＰＣＲは、例えば、KOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いて、９５℃で３０秒間、次いで６０℃で３０秒間、次いで６８℃で2分間の保温を１サイクルとしてこれを４０サイクル行う。このようなＰＣＲで増幅されたＤＮＡ断片を、必要に応じて低融点アガロース電気泳動等に供して精製した後、エタノール沈殿により回収することにより、精製し回収することができる。
ハイブリダイゼーション法に用いられるプローブとしては、例えば、配列番号１６から２８、５０、５２、５４、５６又は５８のいずれかで示される塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド、又は、当該ポリヌクレオチドの部分塩基配列を有するポリヌクレオチド等が挙げられる。ハイブリダイゼーションの条件としては、例えば、6×SSC（0.9M塩化ナトリウム、0.09Mクエン酸ナトリウム）、5×デンハルト溶液（0.1(w/v)フィコール400、0.1(w/v)ポリビニルピロリドン、0.1(w/v)BSA）、0.5(w/v)SDS及び100μg/ml変性サケ精子ＤＮＡ存在下に、65℃で保温し、次いで１×SSC（0.15M塩化ナトリウム、0.015Mクエン酸ナトリウム）及び0.5(w/v)SDS存在下に、室温で15分間の保温を２回行い、さらに0.1×SSC（0.015M 塩化ナトリウム、0.0015Mクエン酸ナトリウム）及び0.5(w/v)SDS存在下に、68℃で30分間保温する条件等を挙げることができる。また、例えば、5xSSC、50mMHEPES pH7.0、10xデンハルト溶液及び20μg/ml変性サケ精子ＤＮＡ存在下に65℃にて保温し、次いで2xSSC中で室温にて３０分間の保温を行い、さらに0.1xSSC中で６５℃にて４０分間の保温を２回行う条件を挙げることもできる。
本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドは、例えば、配列番号１６から２８、５０、５２、５４、５６又は５８で示される塩基配列に基づいて、例えばホスファイト・トリエステル法（Hunkapiller, M.et al., Nature, 310, 105, 1984）等の通常の方法に準じて、核酸の化学合成を行うことにより調製することもできる。本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドの塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチドも、同様に調製することができる。
上記のような一本鎖又は二本鎖ｃＤＮＡ、又は、ｃＤＮＡライブラリー若しくはゲノムＤＮＡライブラリーから、配列番号２９又は３０で示される塩基配列の部分塩基配列又は当該部分塩基配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いるＰＣＲ反応や、上記ｃＤＮＡライブラリーやゲノムＤＮＡライブラリーから、配列番号２９又は３０で示される塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド又は当該塩基配列の部分塩基配列を有するポリヌクレオチドをプローブとして用いるハイブリダイゼーション法により、本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを取得することができる。
ＰＣＲに用いられるプライマーとしては、例えば、約15塩基から約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、配列番号２９又は３０で示される塩基配列の５’側の翻訳開始点から始まる塩基配列を有するオリゴヌクレオチド、及び、配列番号２９又は３０で示される塩基配列の３’側の翻訳終了点から始まる塩基配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを挙げることができる。具体的には、フォワードプライマーとしては、例えば、配列番号３１又は３３で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。また、リバースプライマーとしては、例えば、配列番号３２又は３４で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。ＰＣＲは、例えば、KOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いて、９５℃で３０秒間、次いで６０℃で３０秒間、次いで６８℃で2分間の保温を１サイクルとしてこれを４０サイクル行う。このようなＰＣＲで増幅されたＤＮＡ断片を、必要に応じて低融点アガロース電気泳動等に供して精製した後、エタノール沈殿により回収することにより、精製し回収することができる。
ハイブリダイゼーション法に用いられるプローブとしては、例えば、配列番号２９又は３０で示される塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド、又は、当該ポリヌクレオチドの部分塩基配列を有するポリヌクレオチド等が挙げられる。ハイブリダイゼーションの条件としては、例えば、上述の条件を挙げることができる。
本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドは、例えば、配列番号２９又は３０で示される塩基配列に基づいて、例えばホスファイト・トリエステル法（Hunkapiller, M.et al., Nature, 310, 105, 1984）等の通常の方法に準じて、核酸の化学合成を行うことにより調製することもできる。
ＰＣＲに用いられるプライマーとしては、例えば、約15塩基から約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、配列番号２９又は３０で示される塩基配列の５’側の翻訳開始点から始まる塩基配列を有するオリゴヌクレオチド、及び、配列番号２９又は３０で示される塩基配列の３’側の翻訳終了点から始まる塩基配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを挙げることができる。具体的には、フォワードプライマーとしては、例えば、配列番号３１又は３３で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。また、リバースプライマーとしては、例えば、配列番号３２又は３４で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。ＰＣＲは、例えば、KOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いて、９５℃で３０秒間、次いで６０℃で３０秒間、次いで６８℃で2分間の保温を１サイクルとしてこれを４０サイクル行う。このようなＰＣＲで増幅されたＤＮＡ断片を、必要に応じて低融点アガロース電気泳動等に供して精製した後、エタノール沈殿により回収することにより、精製し回収することができる。
ハイブリダイゼーション法に用いられるプローブとしては、例えば、配列番号２９又は３０で示される塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド、又は、当該ポリヌクレオチドの部分塩基配列を有するポリヌクレオチド等が挙げられる。ハイブリダイゼーションの条件としては、例えば、上述の条件を挙げることができる。
本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドは、例えば、配列番号２９又は３０で示される塩基配列に基づいて、例えばホスファイト・トリエステル法（Hunkapiller, M.et al., Nature, 310, 105, 1984）等の通常の方法に準じて、核酸の化学合成を行うことにより調製することもできる。
このようにして得られた本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、及び、本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドは、例えば、Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) 等に記載された遺伝子工学的方法に準じてベクターにクローニングすることができる。具体的には例えば、TAクローニングキット（Invitrogen社）やpBluescriptII（Stratagene社）等の市販のプラスミドベクターを用いてクローニングすることができる。
得られたポリヌクレオチドの塩基配列は、Maxam Gilbert法（例えば、Maxam, A. M. & W. Gilbert, Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 74, 560, 1977等に記載される）やSanger法（例えば、Sanger, F. & A. R. Coulson, J. Mol. Biol., 94, 441, 1975, Sanger, F. & Nicklen & A. R. Coulson, Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 74, 5463, 1977等に記載される）に準じて確認することができる。ABI社製モデル377等の自動ＤＮＡシークエンサーを用いる場合には、対応するＤＮＡシークエンスキット、例えば、ABI社製Big Dye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit等を用いることができる。
得られたポリヌクレオチドの塩基配列は、Maxam Gilbert法（例えば、Maxam, A. M. & W. Gilbert, Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 74, 560, 1977等に記載される）やSanger法（例えば、Sanger, F. & A. R. Coulson, J. Mol. Biol., 94, 441, 1975, Sanger, F. & Nicklen & A. R. Coulson, Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 74, 5463, 1977等に記載される）に準じて確認することができる。ABI社製モデル377等の自動ＤＮＡシークエンサーを用いる場合には、対応するＤＮＡシークエンスキット、例えば、ABI社製Big Dye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit等を用いることができる。
本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、及び、本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドは、該ポリヌクレオチドが導入される宿主細胞において機能可能なプロモーターと機能可能な形で連結されてもよい。ここで、「機能可能な形で連結させる」とは、前記ポリヌクレオチドが導入される宿主細胞において、プロモーターの制御下に前記ポリヌクレオチドが発現されるように、該プロモーターと前記ポリヌクレオチドとを結合させることを意味する。
宿主細胞で機能可能なプロモーターとしては、導入される宿主細胞内でプロモーター活性を示すポリヌクレオチドをあげることができる。例えば、宿主細胞が大腸菌である場合には、大腸菌のラクトースオペロンのプロモーター（lacP）、トリプトファンオペロンのプロモーター(trpP)、アルギニンオペロンのプロモーター(argP)、ガラクトースオペロンのプロモーター(galP)、tacプロモーター、T7プロモーター、T3プロモーター、λファージのプロモーター(λ-pL、λ-pR)等をあげることができる。宿主細胞が出芽酵母である場合にはADH1プロモーターなどをあげることができる。宿主細胞が動物細胞や分裂酵母である場合には、例えば、ラウス肉腫ウイルス(RSV)プロモーター、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーター、シミアンウイルス(SV40)の初期又は後期プロモーター、マウス乳頭腫ウイルス(MMTV)プロモーター等をあげることができる。宿主細胞が昆虫細胞である場合には、ポリヘドリン遺伝子のプロモーターやp10遺伝子のプロモーター等のバキュロウィルス由来のプロモーターを挙げることができる。
宿主細胞で機能可能なプロモーターとしては、導入される宿主細胞内でプロモーター活性を示すポリヌクレオチドをあげることができる。例えば、宿主細胞が大腸菌である場合には、大腸菌のラクトースオペロンのプロモーター（lacP）、トリプトファンオペロンのプロモーター(trpP)、アルギニンオペロンのプロモーター(argP)、ガラクトースオペロンのプロモーター(galP)、tacプロモーター、T7プロモーター、T3プロモーター、λファージのプロモーター(λ-pL、λ-pR)等をあげることができる。宿主細胞が出芽酵母である場合にはADH1プロモーターなどをあげることができる。宿主細胞が動物細胞や分裂酵母である場合には、例えば、ラウス肉腫ウイルス(RSV)プロモーター、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーター、シミアンウイルス(SV40)の初期又は後期プロモーター、マウス乳頭腫ウイルス(MMTV)プロモーター等をあげることができる。宿主細胞が昆虫細胞である場合には、ポリヘドリン遺伝子のプロモーターやp10遺伝子のプロモーター等のバキュロウィルス由来のプロモーターを挙げることができる。
本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、及び、本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドは、該ポリヌクレオチドが導入される宿主細胞において利用可能なベクター、例えば、宿主細胞中で複製可能な遺伝情報を含み、自立的に増殖でき、宿主細胞からの単離、精製が可能であり、検出可能なマーカーをもつベクターに、通常の遺伝子工学的手法に準じて組み込まれてもよい。ここで、本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、及び、本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドは、該ポリヌクレオチドが導入される宿主細胞において機能可能なプロモーターと機能可能な形で連結されていてもよい。
上記ベクターとしては、具体的には大腸菌を宿主細胞とする場合、例えばプラスミドpUC119(宝酒造社製)や、ファージミドpBluescriptII(Stratagene社製)等を上げることができる。出芽酵母を宿主細胞とする場合は、プラスミドpGBT9、pGAD424、pACT2(Clontech社製)などをあげることができる。哺乳類動物細胞を宿主細胞とする場合はpRc/RSV、pRc/CMV(Invitrogen社製)等のプラスミド、ウシパピローマウイルスプラスミドpBPV(アマシャムファルマシアバイオテク社製)もしくはEBウイルスプラスミドpCEP4(Invitrogen社製)等のウイルス由来の自律複製起点を含むベクター、ワクシニアウイルス等のウイルスなどをあげることができる。昆虫類動物細胞を宿主細胞とする場合には、バキュロウイルス等の昆虫ウイルスやpVL1392,pVL1393（Pharmingen社製）等のトランスファーベクターをあげることができる。
宿主細胞において機能するプロモーターをあらかじめ保有するベクターを使用する場合には、ベクター保有のプロモーターと発現させようとするポリヌクレオチドとが機能可能な形で連結するように、該プロモーターの下流に前記ポリヌクレオチドを挿入する。宿主細胞において機能するプロモーターをあらかじめ保有するベクターとしては、例えば、大腸菌を宿主細胞とする場合には、pBR322、pUC12、pUC119、pBluescript等、バチルス属細菌を宿主細胞とする場合には、pUB110、pC194等、酵母を宿主細胞とする場合には、Yip5、Yep24等、昆虫細胞を宿主細胞とする場合には、AcNPV等、動物細胞を宿主細胞とする場合には、pUC18、pcDNA3.1、pcDNA6.2、p3XFLAG-CMV10等の公知のプラスミドを挙げることができる。
上記ベクターとしては、具体的には大腸菌を宿主細胞とする場合、例えばプラスミドpUC119(宝酒造社製)や、ファージミドpBluescriptII(Stratagene社製)等を上げることができる。出芽酵母を宿主細胞とする場合は、プラスミドpGBT9、pGAD424、pACT2(Clontech社製)などをあげることができる。哺乳類動物細胞を宿主細胞とする場合はpRc/RSV、pRc/CMV(Invitrogen社製)等のプラスミド、ウシパピローマウイルスプラスミドpBPV(アマシャムファルマシアバイオテク社製)もしくはEBウイルスプラスミドpCEP4(Invitrogen社製)等のウイルス由来の自律複製起点を含むベクター、ワクシニアウイルス等のウイルスなどをあげることができる。昆虫類動物細胞を宿主細胞とする場合には、バキュロウイルス等の昆虫ウイルスやpVL1392,pVL1393（Pharmingen社製）等のトランスファーベクターをあげることができる。
宿主細胞において機能するプロモーターをあらかじめ保有するベクターを使用する場合には、ベクター保有のプロモーターと発現させようとするポリヌクレオチドとが機能可能な形で連結するように、該プロモーターの下流に前記ポリヌクレオチドを挿入する。宿主細胞において機能するプロモーターをあらかじめ保有するベクターとしては、例えば、大腸菌を宿主細胞とする場合には、pBR322、pUC12、pUC119、pBluescript等、バチルス属細菌を宿主細胞とする場合には、pUB110、pC194等、酵母を宿主細胞とする場合には、Yip5、Yep24等、昆虫細胞を宿主細胞とする場合には、AcNPV等、動物細胞を宿主細胞とする場合には、pUC18、pcDNA3.1、pcDNA6.2、p3XFLAG-CMV10等の公知のプラスミドを挙げることができる。
本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを宿主細胞に導入することにより、本形質転換細胞が得られる。ここで、本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドは、宿主細胞において機能可能なプロモーターと機能可能な形で連結されていてもよく、ベクターに組み込まれていてもよい。
宿主細胞としては、例えば、Escherichia coli K12等の大腸菌、Bacillus subtilis MI114等のバチルス属細菌、Saccharomyces cerevisiae AH22等の酵母、Spodoptera frugiperda 由来の Sf細胞系もしくはTrichoplusia ni由来のHighFive細胞系等の昆虫細胞、COS7細胞等の動物細胞等を挙げることができる。好ましくは、哺乳動物由来の培養細胞、具体的には、COS7細胞、CHO細胞、HEK293細胞、HEK293FT細胞、Hela細胞、PC12細胞、N1E-115細胞、SH-SY5Y細胞等を挙げることができる。
宿主細胞としては、例えば、Escherichia coli K12等の大腸菌、Bacillus subtilis MI114等のバチルス属細菌、Saccharomyces cerevisiae AH22等の酵母、Spodoptera frugiperda 由来の Sf細胞系もしくはTrichoplusia ni由来のHighFive細胞系等の昆虫細胞、COS7細胞等の動物細胞等を挙げることができる。好ましくは、哺乳動物由来の培養細胞、具体的には、COS7細胞、CHO細胞、HEK293細胞、HEK293FT細胞、Hela細胞、PC12細胞、N1E-115細胞、SH-SY5Y細胞等を挙げることができる。
本形質転換細胞としては、本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドと本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドとが宿主細胞に導入された形質転換細胞を挙げることもできる。ここで、本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドは、宿主細胞において機能可能なプロモーターと機能可能な形で連結されていてもよく、ベクターに組み込まれていてもよい。本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドと本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドとは、同一のベクターに組み込まれていてもよく、それぞれ別のベクターに組み込まれていてもよい。
上記のポリヌクレオチドやベクターを宿主細胞へ導入する方法としては、宿主細胞に応じた通常の導入方法を適用することができる。例えば、大腸菌を宿主細胞とする場合は、J.Sambrook,E.F.Frisch,T.Maniatis著；モレキュラー クローニング第２版（Molecular Cloning 2nd edition）、コールドスプリング ハーバーラボラトリー（Cold Spring Harbor Laboratory）発行、1989年等に記載される塩化カルシウム法やエレクトロポレーション法等の通常の方法を用いることができる。また、哺乳類動物細胞又は昆虫類動物細胞を宿主細胞とする場合は、例えば、リン酸カルシウム法、DEAEデキストラン法、エレクトロポレーション法、又はリポフェクション法等の一般的な遺伝子導入法に準じて前記細胞に導入することができる。酵母を宿主細胞とする場合は、例えばリチウム法を基にしたYeast transformation kit(Clontech社製)などを用いて導入することができる。
本形質転換細胞を選抜するには、例えば、本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドや本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドと同時にマーカー遺伝子を宿主細胞へ導入し、マーカー遺伝子の性質に応じた方法で細胞を培養する。マーカー遺伝子が、宿主細胞に致死活性を示す選抜薬剤に対する薬剤耐性を付与する遺伝子である場合には、例えば、該薬剤を添加した培地を用いて、上記ポリヌクレオチドが導入された宿主細胞を培養する。薬剤耐性付与遺伝子と選抜薬剤の組み合わせとしては、例えば、ネオマイシン耐性付与遺伝子とネオマイシンとの組み合わせ、ハイグロマイシン耐性付与遺伝子とハイグロマイシンとの組み合わせ、ブラストサイジンＳ耐性付与遺伝子とブラストサイジンＳとの組み合わせなどをあげることができる。マーカー遺伝子が宿主細胞の栄養要求性を相補する遺伝子である場合には、例えば、該栄養素を含まない最少培地を用いて、上記ポリヌクレオチドが導入された細胞を培養する。
本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドや本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞の染色体に導入されてなる本形質転換細胞を取得するには、例えば、上記ポリヌクレオチドとマーカー遺伝子を有するベクターとを制限酵素等で消化することにより直鎖状にした後、これらを前述の方法で宿主細胞へ導入して該細胞を通常数週間培養し、導入されたマーカー遺伝子の発現を指標にして目的とする形質転換細胞を選抜し取得する。また、例えば、上記のような選抜薬剤に対する耐性付与遺伝子と上記ポリヌクレオチドとを含有するベクターを前述の方法で宿主細胞に導入し、該細胞を選抜薬剤が添加された培地で数週間以上継代培養して、コロニー状に生き残った選抜薬剤耐性クローンを純化培養することにより、上記ポリヌクレオチドが宿主細胞の染色体に導入されてなる本形質転換細胞を選抜し取得することもできる。導入された上記ポリヌクレオチドが宿主細胞の染色体に組み込まれたことを確認するには、例えば、当該細胞のゲノムＤＮＡを通常の遺伝子工学的方法に準じて調製し、調製されたゲノムＤＮＡから、導入されたポリヌクレオチドの部分塩基配列を有するオリゴヌクレオチドをプライマーに用いるＰＣＲや、導入されたポリヌクレオチドをプローブに用いるサザンハイブリダイゼーション等の方法を利用して、上記ポリヌクレオチドの存在を検出する。
本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドと本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドとが宿主細胞に導入された形質転換細胞としては、例えば、被験物質として2-Undecanoneを当該形質転換細胞に接触させた場合の嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値が、被験物質を接触させていない場合の前記指標値よりも、より高い形質転換細胞を好ましく選抜することもできる。
本形質転換細胞を選抜するには、例えば、本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドや本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドと同時にマーカー遺伝子を宿主細胞へ導入し、マーカー遺伝子の性質に応じた方法で細胞を培養する。マーカー遺伝子が、宿主細胞に致死活性を示す選抜薬剤に対する薬剤耐性を付与する遺伝子である場合には、例えば、該薬剤を添加した培地を用いて、上記ポリヌクレオチドが導入された宿主細胞を培養する。薬剤耐性付与遺伝子と選抜薬剤の組み合わせとしては、例えば、ネオマイシン耐性付与遺伝子とネオマイシンとの組み合わせ、ハイグロマイシン耐性付与遺伝子とハイグロマイシンとの組み合わせ、ブラストサイジンＳ耐性付与遺伝子とブラストサイジンＳとの組み合わせなどをあげることができる。マーカー遺伝子が宿主細胞の栄養要求性を相補する遺伝子である場合には、例えば、該栄養素を含まない最少培地を用いて、上記ポリヌクレオチドが導入された細胞を培養する。
本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドや本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞の染色体に導入されてなる本形質転換細胞を取得するには、例えば、上記ポリヌクレオチドとマーカー遺伝子を有するベクターとを制限酵素等で消化することにより直鎖状にした後、これらを前述の方法で宿主細胞へ導入して該細胞を通常数週間培養し、導入されたマーカー遺伝子の発現を指標にして目的とする形質転換細胞を選抜し取得する。また、例えば、上記のような選抜薬剤に対する耐性付与遺伝子と上記ポリヌクレオチドとを含有するベクターを前述の方法で宿主細胞に導入し、該細胞を選抜薬剤が添加された培地で数週間以上継代培養して、コロニー状に生き残った選抜薬剤耐性クローンを純化培養することにより、上記ポリヌクレオチドが宿主細胞の染色体に導入されてなる本形質転換細胞を選抜し取得することもできる。導入された上記ポリヌクレオチドが宿主細胞の染色体に組み込まれたことを確認するには、例えば、当該細胞のゲノムＤＮＡを通常の遺伝子工学的方法に準じて調製し、調製されたゲノムＤＮＡから、導入されたポリヌクレオチドの部分塩基配列を有するオリゴヌクレオチドをプライマーに用いるＰＣＲや、導入されたポリヌクレオチドをプローブに用いるサザンハイブリダイゼーション等の方法を利用して、上記ポリヌクレオチドの存在を検出する。
本嗅覚受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドと本共受容体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドとが宿主細胞に導入された形質転換細胞としては、例えば、被験物質として2-Undecanoneを当該形質転換細胞に接触させた場合の嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値が、被験物質を接触させていない場合の前記指標値よりも、より高い形質転換細胞を好ましく選抜することもできる。
本形質転換細胞において、本嗅覚受容体や本共受容体を発現させるには、例えば、本形質転換細胞を培養液の中で培養する。
本形質転換細胞の培養条件は、本形質転換細胞の種類に応じた条件を適宜選択する。
例えば、本形質転換細胞が微生物である場合には、微生物の培養に通常使用される液体培地又は平板培地を用いて培養する。培養温度は、微生物の生育可能温度内から選ぶことができ、例えば、約１５℃から約４０℃を挙げることができる。培地のpHも、微生物の生育可能範囲から選ぶことができ、例えば、約６から約８の培地pHで培養するのが一般的である。培養時間は、培養条件により異なるが、通常、約１日間から約５日間である。温度シフト型やＩＰＴＧ誘導型等の誘導型の発現プラスミドを用いる場合には、誘導時間は１日間以内が好ましく、通常数時間程度である。
本形質転換細胞が昆虫細胞の場合には、昆虫細胞の種類に応じて適した培養条件とする。例えば、FBS及びYeastlateを含むGrace's medium等の昆虫細胞用培地を用いて培養する。培養温度は、約２５℃から約３５℃を挙げることができる。培地のpHも、昆虫細胞の生育可能範囲から選ぶことができ、例えば、約６から約８を挙げることができる。培養時間は、その他の培養条件により異なるが、通常、約１日間から約５日間である。Baculovirus等のウィルスを含む形質転換細胞の場合は、培養時間は細胞質効果が現れて細胞が死滅する前まで、例えば約３日間から約７日間とするのが好ましい。
本形質転換細胞が哺乳動物細胞の場合には、哺乳動物細胞の種類に応じて適した培養条件とする。例えば、FBSを添加したDMEM培地（ニッスイ社製等）を用いて５％CO２存在下、数日毎に新しい培地に交換しながら培養する。哺乳動物細胞がコンフルエントになるまで増殖したら、例えば、トリプシン溶液を加えて個々の細胞に分散させ、得られた細胞の懸濁液を数倍に希釈して新しいシャーレに播種し継代を続ける。培養温度は、約３６℃から約３８℃を挙げることができる。培地のpHも、哺乳動物細胞の生育可能範囲から選ぶことができ、例えば、約６から約８を挙げることができる。培養時間は、培養条件により異なるが、通常、約２日間から約５日間である。
本形質転換細胞の培養条件は、本形質転換細胞の種類に応じた条件を適宜選択する。
例えば、本形質転換細胞が微生物である場合には、微生物の培養に通常使用される液体培地又は平板培地を用いて培養する。培養温度は、微生物の生育可能温度内から選ぶことができ、例えば、約１５℃から約４０℃を挙げることができる。培地のpHも、微生物の生育可能範囲から選ぶことができ、例えば、約６から約８の培地pHで培養するのが一般的である。培養時間は、培養条件により異なるが、通常、約１日間から約５日間である。温度シフト型やＩＰＴＧ誘導型等の誘導型の発現プラスミドを用いる場合には、誘導時間は１日間以内が好ましく、通常数時間程度である。
本形質転換細胞が昆虫細胞の場合には、昆虫細胞の種類に応じて適した培養条件とする。例えば、FBS及びYeastlateを含むGrace's medium等の昆虫細胞用培地を用いて培養する。培養温度は、約２５℃から約３５℃を挙げることができる。培地のpHも、昆虫細胞の生育可能範囲から選ぶことができ、例えば、約６から約８を挙げることができる。培養時間は、その他の培養条件により異なるが、通常、約１日間から約５日間である。Baculovirus等のウィルスを含む形質転換細胞の場合は、培養時間は細胞質効果が現れて細胞が死滅する前まで、例えば約３日間から約７日間とするのが好ましい。
本形質転換細胞が哺乳動物細胞の場合には、哺乳動物細胞の種類に応じて適した培養条件とする。例えば、FBSを添加したDMEM培地（ニッスイ社製等）を用いて５％CO２存在下、数日毎に新しい培地に交換しながら培養する。哺乳動物細胞がコンフルエントになるまで増殖したら、例えば、トリプシン溶液を加えて個々の細胞に分散させ、得られた細胞の懸濁液を数倍に希釈して新しいシャーレに播種し継代を続ける。培養温度は、約３６℃から約３８℃を挙げることができる。培地のpHも、哺乳動物細胞の生育可能範囲から選ぶことができ、例えば、約６から約８を挙げることができる。培養時間は、培養条件により異なるが、通常、約２日間から約５日間である。
本形質転換細胞において、本嗅覚受容体コードするポリヌクレオチドや本共受容体コードするポリヌクレオチドが発現していることを確認する方法として、例えば、通常の遺伝子工学的方法を用いて前記ポリヌクレオチドの転写産物を検出する方法を挙げることができる。具体的には、RT-PCRまたはリアルタイムPCRにより、本嗅覚受容体または本共受容体をコードするmRNAを検出する方法を挙げることができる。また、通常のタンパク質工学的方法を用いて前記ポリヌクレオチドの翻訳産物を検出する方法を挙げることもできる。具体的には、本形質転換細胞から調製されたタンパク質抽出液を、本嗅覚受容体または本共受容体を認識する抗体を用いてウエスタンブロット分析する方法を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法において「被験物質」としては、特に限定は無く、例えば、抗体を含むタンパク質、ペプチド、ヌクレオチド、アミン、糖質もしくは脂質等の非ペプチド性化合物、有機低分子化合物、無機低分子化合物、醗酵生産物、細胞抽出液、植物抽出液、動物組織抽出液等を挙げることができる。被験物質の形態としては、特に限定は無く、固体、液体、基剤との混合物、縣濁液又は溶液等を挙げることができる。縣濁液若しくは溶液とする場合、通常、水、pH緩衝液、メチルセルロース溶液、生理食塩水、有機溶媒水溶液等が用いられる。有機溶媒としては、エタノールやジメチルスルホキシドを挙げることができる。
被験物質の接触量、接触回数及び接触時間は、例えば、本形質転換細胞に重篤な影響を及ぼさない範囲内から選ぶことができる。
本嗅覚受容体は、昆虫に対して忌避効果を示すことが知られている2-Undecanoneによって活性化される。よって、例えば、本嗅覚受容体を活性化する能力を有する被験物質は忌避剤の候補物質として期待される。
本発明スクリーニング方法の工程（１）における「接触」は、当業者に汎用されている方法で実施することができる。被験物質を本形質転換細胞に接触させる場合、その接触方法には特に限定はなく、例えば、本形質転換細胞を含む培養液・寒天培地等の中に、約0.001mMから約1mM程度の濃度となるように被験物質を添加する。被験物質を本形質転換細胞の細胞膜画分に接触させる場合、その接触方法には特に限定はなく、例えば、本形質転換細胞の細胞膜画分を含む溶液等の中に、約0.001mMから約1mM程度の濃度となるように被験物質を添加する。
本発明スクリーニング方法工程（１）及び（２）における「嗅覚受容体の活性又はそれと相関する指標値」としては、例えば、後述する、嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値、細胞膜画分へのGTPの結合量又は細胞膜画分への標識リガンドの結合量等を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法の工程（２）における対照としては、例えば、被験物質を接触させていない本形質転換細胞において工程（１）と同様に測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を挙げることができる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞において工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値とを比較する。ここで「被験物質を接触させていない本形質転換細胞」としては、例えば、溶媒のみを接触させた本形質転換細胞を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法の工程（２）における対照としては、例えば、本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞に被験物質を接触させて工程（１）と同様に測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を挙げることもできる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞において工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値とを比較する。ここで「本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞」としては、例えば、本共受容体のみを発現させた形質転換細胞を挙げることができる。
かかる対照とする嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値は、被験物質を接触させた本形質転換細胞における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値と工程（１）において併行して測定して求めてもよいし、別途測定して求めてもよい。
本発明スクリーニング方法の工程（２）において、例えば、被験物質と接触させた本形質転換細胞における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値の測定値が、上述の陰性対照とする指標値の測定値よりも高ければ、当該被験物質が、前記本形質転換細胞が発現する本嗅覚受容体を活性化させる効果を有することを意味し、当該被験物質を忌避剤候補物質として選択することができる。
被験物質の接触量、接触回数及び接触時間は、例えば、本形質転換細胞に重篤な影響を及ぼさない範囲内から選ぶことができる。
本嗅覚受容体は、昆虫に対して忌避効果を示すことが知られている2-Undecanoneによって活性化される。よって、例えば、本嗅覚受容体を活性化する能力を有する被験物質は忌避剤の候補物質として期待される。
本発明スクリーニング方法の工程（１）における「接触」は、当業者に汎用されている方法で実施することができる。被験物質を本形質転換細胞に接触させる場合、その接触方法には特に限定はなく、例えば、本形質転換細胞を含む培養液・寒天培地等の中に、約0.001mMから約1mM程度の濃度となるように被験物質を添加する。被験物質を本形質転換細胞の細胞膜画分に接触させる場合、その接触方法には特に限定はなく、例えば、本形質転換細胞の細胞膜画分を含む溶液等の中に、約0.001mMから約1mM程度の濃度となるように被験物質を添加する。
本発明スクリーニング方法工程（１）及び（２）における「嗅覚受容体の活性又はそれと相関する指標値」としては、例えば、後述する、嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値、細胞膜画分へのGTPの結合量又は細胞膜画分への標識リガンドの結合量等を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法の工程（２）における対照としては、例えば、被験物質を接触させていない本形質転換細胞において工程（１）と同様に測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を挙げることができる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞において工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値とを比較する。ここで「被験物質を接触させていない本形質転換細胞」としては、例えば、溶媒のみを接触させた本形質転換細胞を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法の工程（２）における対照としては、例えば、本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞に被験物質を接触させて工程（１）と同様に測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を挙げることもできる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞において工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値とを比較する。ここで「本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞」としては、例えば、本共受容体のみを発現させた形質転換細胞を挙げることができる。
かかる対照とする嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値は、被験物質を接触させた本形質転換細胞における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値と工程（１）において併行して測定して求めてもよいし、別途測定して求めてもよい。
本発明スクリーニング方法の工程（２）において、例えば、被験物質と接触させた本形質転換細胞における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値の測定値が、上述の陰性対照とする指標値の測定値よりも高ければ、当該被験物質が、前記本形質転換細胞が発現する本嗅覚受容体を活性化させる効果を有することを意味し、当該被験物質を忌避剤候補物質として選択することができる。
本発明スクリーニング方法としては、例えば、
工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞と被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、上記形質転換細胞における上記嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値である本発明スクリーニング方法；すなわち、
忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、
（１）被験物質と、本形質転換細胞とを接触させ、当該形質転換細胞における嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を測定する第一工程と、
（２）工程（１）で測定された細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を、対照と比較して、前記形質転換細胞における細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法（以下、本発明スクリーニング方法１と記すこともある。）を挙げることができる。
工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞と被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、上記形質転換細胞における上記嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値である本発明スクリーニング方法；すなわち、
忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、
（１）被験物質と、本形質転換細胞とを接触させ、当該形質転換細胞における嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を測定する第一工程と、
（２）工程（１）で測定された細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を、対照と比較して、前記形質転換細胞における細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法（以下、本発明スクリーニング方法１と記すこともある。）を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法１の工程（１）及び（２）における「細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値」としては、当業者に汎用されている指標値を用いることができる。例えば、細胞内カルシウム濃度、膜電位、細胞内cAMP量等を指標値として用いることができる。「細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を測定する」方法としては、当業者に汎用されている検出方法等を用いることができる。例えば、通常の生化学的手法、分子生物学的手法、または電気生理学的手法等を用いて細胞内カルシウム濃度、膜電位、または細胞内cAMP量を分析する。多数の被験物質について細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を機械的に効率よく測定する方法としては、後述のような細胞内カルシウム濃度の測定方法を好ましく挙げることができる。
「細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値」の測定として、例えば、通常の細胞内カルシウム濃度の測定方法を利用して、被験物質により引き起こされる細胞内カルシウムイオン濃度の一過性の上昇を検出する。
細胞内カルシウム濃度の測定方法として、カルシウム感受性蛍光指示薬を用いる方法が挙げられる。カルシウム感受性蛍光指示薬としては、例えばfura−２、fluo−３、fluo−４などが使用できる。これらの指示薬は細胞内に取り込まれた後、遊離のカルシウムイオンとの相互作用により蛍光強度が増大する。したがって、指示薬を含有する細胞の細胞内カルシウムイオン濃度の上昇は直接、蛍光強度の増大として現れる。具体的には本形質転換細胞をカルシウム感受性蛍光指示薬を含む緩衝溶液中で１時間程度培養してカルシウム感受性蛍光指示薬を細胞内に取り込ませる。次いで本形質転換細胞を被検物質と接触させ、カルシウム感受性蛍光指示薬に由来する蛍光の強度を測定する。
細胞内カルシウム濃度を測定する別の方法としてはカルシウム結合性タンパク質を利用する方法が挙げられる。カルシウム結合性タンパク質としてはAequorinなどが使用できる。Aequorinはカルシウムイオンと結合すると活性化されてセレンテラジンなどの基質を酸化して発光する。したがって、Aequorinを発現する細胞の細胞内カルシウムイオン濃度の上昇は直接、発光量の増大として現れる。
これらの細胞内カルシウム濃度測定法を、本形質転換細胞に作用する化合物の評価に利用するために、例えば、本形質転換細胞にさらにAequorinを発現させてもよい。Aequorinを本形質転換細胞で発現させるには当分野で公知の任意の方法を用いることができる。Aequorin発現プラスミド、本嗅覚受容体発現プラスミド、及び本共受容体発現プラスミドを同時に細胞に導入することも可能である。Aequorin、本嗅覚受容体及び本共受容体の発現には、プラスミドのほかにこれらのタンパク質をコードする塩基配列を含有するウイルスベクターやこれらのタンパク質をコードするmRNAを利用することもできる。具体的にはAequorinを発現させた本形質転換細胞をセレンテラジンなどのAequorinの基質を含む緩衝溶液中で１時間から１２時間程度培養してセレンテラジンなどのAequorinの基質を細胞内に取り込ませる。次いでAequorinを発現している本形質転換細胞を被検物質と接触させ、Aequorinに由来する発光の強度を測定する。
上記の蛍光強度または発光量の測定は、例えば、ＣＣＤカメラ、ルミノメーター、または、任意の他の好適な光学システムを使用して行うことができる。利用可能な市販の光学システムとしては、例えば、FlexStation 3やFLIPR（モレキュラーデバイス社製）、FDSS7000（浜松ホトニクス社製）、FDSS／μＣＥＬＬ（浜松ホトニクス社製）などが挙げられる。
例えば、上記のようにして細胞内カルシウム濃度に相関する蛍光強度または発光量を測定し、同様に、陰性対照における蛍光強度または発光量も測定する。陰性対照における蛍光強度または発光量を100％とし、被験物質を接触させた本形質転換細胞で検出された蛍光強度または発光量のパーセンテージを算出する。被験物質を接触させた本形質転換細胞において検出された蛍光強度または発光量の前記パーセンテージが、例えば120％以上、好ましくは150％以上、更に好ましくは200％以上になる被験物質を工程（２）において忌避剤候補物質として選択する。
細胞内カルシウム濃度の測定方法として、カルシウム感受性蛍光指示薬を用いる方法が挙げられる。カルシウム感受性蛍光指示薬としては、例えばfura−２、fluo−３、fluo−４などが使用できる。これらの指示薬は細胞内に取り込まれた後、遊離のカルシウムイオンとの相互作用により蛍光強度が増大する。したがって、指示薬を含有する細胞の細胞内カルシウムイオン濃度の上昇は直接、蛍光強度の増大として現れる。具体的には本形質転換細胞をカルシウム感受性蛍光指示薬を含む緩衝溶液中で１時間程度培養してカルシウム感受性蛍光指示薬を細胞内に取り込ませる。次いで本形質転換細胞を被検物質と接触させ、カルシウム感受性蛍光指示薬に由来する蛍光の強度を測定する。
細胞内カルシウム濃度を測定する別の方法としてはカルシウム結合性タンパク質を利用する方法が挙げられる。カルシウム結合性タンパク質としてはAequorinなどが使用できる。Aequorinはカルシウムイオンと結合すると活性化されてセレンテラジンなどの基質を酸化して発光する。したがって、Aequorinを発現する細胞の細胞内カルシウムイオン濃度の上昇は直接、発光量の増大として現れる。
これらの細胞内カルシウム濃度測定法を、本形質転換細胞に作用する化合物の評価に利用するために、例えば、本形質転換細胞にさらにAequorinを発現させてもよい。Aequorinを本形質転換細胞で発現させるには当分野で公知の任意の方法を用いることができる。Aequorin発現プラスミド、本嗅覚受容体発現プラスミド、及び本共受容体発現プラスミドを同時に細胞に導入することも可能である。Aequorin、本嗅覚受容体及び本共受容体の発現には、プラスミドのほかにこれらのタンパク質をコードする塩基配列を含有するウイルスベクターやこれらのタンパク質をコードするmRNAを利用することもできる。具体的にはAequorinを発現させた本形質転換細胞をセレンテラジンなどのAequorinの基質を含む緩衝溶液中で１時間から１２時間程度培養してセレンテラジンなどのAequorinの基質を細胞内に取り込ませる。次いでAequorinを発現している本形質転換細胞を被検物質と接触させ、Aequorinに由来する発光の強度を測定する。
上記の蛍光強度または発光量の測定は、例えば、ＣＣＤカメラ、ルミノメーター、または、任意の他の好適な光学システムを使用して行うことができる。利用可能な市販の光学システムとしては、例えば、FlexStation 3やFLIPR（モレキュラーデバイス社製）、FDSS7000（浜松ホトニクス社製）、FDSS／μＣＥＬＬ（浜松ホトニクス社製）などが挙げられる。
例えば、上記のようにして細胞内カルシウム濃度に相関する蛍光強度または発光量を測定し、同様に、陰性対照における蛍光強度または発光量も測定する。陰性対照における蛍光強度または発光量を100％とし、被験物質を接触させた本形質転換細胞で検出された蛍光強度または発光量のパーセンテージを算出する。被験物質を接触させた本形質転換細胞において検出された蛍光強度または発光量の前記パーセンテージが、例えば120％以上、好ましくは150％以上、更に好ましくは200％以上になる被験物質を工程（２）において忌避剤候補物質として選択する。
「細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値」の測定として、例えば、通常の膜電位変化の検出方法を利用して、被験物質により引き起こされる膜電位の一過性の変化を検出する。
膜電位の変化を検出する方法としては、膜電位感受性色素を使用する方法が挙げられる。膜電位感受性色素としては、例えばFLIPR Membrane Potential Assay Kit（モレキュラーデバイス社製）やDiSBAC4(3)（インビトロジェン社製）などが使用できる。これらの膜電位感受性色素は細胞に取り込まれた後、細胞の膜電位変化に応じて蛍光強度を変化させることから、膜電位感受性色素を取り込んだ細胞の膜電位変化は蛍光強度の変化として現れる。具体的には本形質転換細胞を膜電位感受性色素を含む緩衝溶液中で１時間程度培養して膜電位感受性色素を細胞内に取り込ませる。次いで本形質転換細胞を被検物質と接触させ、膜電位感受性色素に由来する蛍光の強度を測定する。
上記の蛍光強度の測定は、例えば、ＣＣＤカメラ、ルミノメーター、または、任意の他の好適な光学システムを使用して行うことができる。利用可能な市販の光学システムとしては、例えば、FlexStation 3やFLIPR（モレキュラーデバイス社製）、FDSS7000（浜松ホトニクス社製）、FDSS／μＣＥＬＬ（浜松ホトニクス社製）などが挙げられる。
例えば、上記のようにして細胞内膜電位に相関する蛍光強度を測定し、同様に、陰性対照における蛍光強度も測定する。陰性対照における蛍光強度変化よりも、被験物質を接触させた本形質転換細胞において検出された蛍光強度変化が大きくなる被験物質を工程（２）においてにおいて忌避剤候補物質として選択する。
膜電位の変化を検出する方法としては、膜電位感受性色素を使用する方法が挙げられる。膜電位感受性色素としては、例えばFLIPR Membrane Potential Assay Kit（モレキュラーデバイス社製）やDiSBAC4(3)（インビトロジェン社製）などが使用できる。これらの膜電位感受性色素は細胞に取り込まれた後、細胞の膜電位変化に応じて蛍光強度を変化させることから、膜電位感受性色素を取り込んだ細胞の膜電位変化は蛍光強度の変化として現れる。具体的には本形質転換細胞を膜電位感受性色素を含む緩衝溶液中で１時間程度培養して膜電位感受性色素を細胞内に取り込ませる。次いで本形質転換細胞を被検物質と接触させ、膜電位感受性色素に由来する蛍光の強度を測定する。
上記の蛍光強度の測定は、例えば、ＣＣＤカメラ、ルミノメーター、または、任意の他の好適な光学システムを使用して行うことができる。利用可能な市販の光学システムとしては、例えば、FlexStation 3やFLIPR（モレキュラーデバイス社製）、FDSS7000（浜松ホトニクス社製）、FDSS／μＣＥＬＬ（浜松ホトニクス社製）などが挙げられる。
例えば、上記のようにして細胞内膜電位に相関する蛍光強度を測定し、同様に、陰性対照における蛍光強度も測定する。陰性対照における蛍光強度変化よりも、被験物質を接触させた本形質転換細胞において検出された蛍光強度変化が大きくなる被験物質を工程（２）においてにおいて忌避剤候補物質として選択する。
「細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値」の測定として、例えば、細胞内cAMP濃度の測定方法を利用して、被験物質により引き起こされる細胞内cAMP濃度の一過性の上昇を検出する。
細胞内cAMP濃度の測定方法として、抗cAMP抗体を利用してcAMPを検出する方法を挙げることができる。当該方法には、例えばHitHunter（DiscoveRx社製）やcAMP dynamic 2 kit（Cisbio Bioassays社製）などの市販のcAMP定量キットを使用することもできる。
細胞内cAMP濃度を測定する別の方法としては、GloSensor（Promega社登録商標）などのレポータータンパク質を利用する方法が挙げられる。GloSensorは、遺伝子改変により、ホタルルシフェラーゼの内部にcAMP結合タンパク質の一部が挿入されたバイオセンサータンパク質である。GloSensorにcAMPが結合すると、GloSensorの構造が変化して発光量が増加する。したがって、GloSensorを発現する細胞の細胞内cAMP濃度の上昇は、発光量の増大として現れる。この細胞内cAMP濃度測定法を、本形質転換細胞に作用する化合物の評価に利用するために、例えば、GloSensorを発現する形質転換細胞をあらかじめ作製し、この形質転換細胞に、本嗅覚受容体発現プラスミド及び本共受容体発現プラスミドを導入して、本形質転換細胞を作製してもよい。又は、本嗅覚受容体発現プラスミド及び本共受容体発現プラスミドが導入された本形質転換細胞に、さらにGloSensorを発現させてもよい。GloSensorを細胞で発現させるには、当分野で公知の任意の方法を用いることができる。GloSensor発現プラスミド、本嗅覚受容体発現プラスミド、及び本共受容体発現プラスミドを同時に細胞に導入することも可能である。GloSensor、本嗅覚受容体及び本共受容体の発現には、プラスミドのほかにこれらのタンパク質をコードする塩基配列を含有するウイルスベクターやこれらのタンパク質をコードするmRNAを利用することもできる。具体的にはGloSensorを発現させた本形質転換細胞をGloSensor cAMP reagent（プロメガ社製）を含む緩衝溶液中で２時間程度培養して、GloSensor cAMP reagent（プロメガ社製）を細胞内に取り込ませる。次いでGloSensorを発現している本形質転換細胞を被検物質と接触させ、GloSensorに由来する発光の強度を測定する。
上記のようにして細胞内cAMP濃度を測定する場合の本形質転換細胞には、Ｇタンパク質をさらに発現させてもよい。本形質転換細胞において発現させるＧタンパク質としては、例えば、アデニル酸シクラーゼを活性化するタイプのＧタンパク質のαサブユニットを挙げることができ、より具体的には、本形質転換細胞の宿主細胞と同種または近縁種の生物由来のＧαｓタンパク質を挙げることができる。かかるＧタンパク質を細胞で発現させるには、当分野で公知の任意の方法を用いることができる。
上記の発光量の測定は、例えば、ＣＣＤカメラ、ルミノメーター、または、任意の他の好適な光学システムを使用して行うことができる。利用可能な市販の光学システムとしては、例えば、EnVision（パーキンエルマー社製）、FlexStation 3やFLIPR（モレキュラーデバイス社製）、FDSS7000（浜松ホトニクス社製）、FDSS／μＣＥＬＬ（浜松ホトニクス社製）などが挙げられる。
例えば、上記のようにして細胞内cAMP濃度をcAMP定量キットを用いて定量し、同様に、陰性対照におけるcAMP量も定量する。陰性対照におけるcAMP量を100％とし、被験物質を接触させた本形質転換細胞でのcAMP量のパーセンテージを算出する。被験物質を接触させた本形質転換細胞において検出されたcAMP量の前記パーセンテージが、例えば120％以上、好ましくは150％以上、更に好ましくは200％以上になる被験物質を、工程（２）において忌避剤候補物質として選択する。
また例えば、上記のようにして細胞内cAMP濃度に相関する発光量を測定し、同様に、陰性対照における発光量も測定する。陰性対照における発光量を100％とし、被験物質を接触させた本形質転換細胞で検出された発光量のパーセンテージを算出する。被験物質を接触させた本形質転換細胞において検出された発光量の前記パーセンテージが、例えば120％以上、好ましくは150％以上、更に好ましくは200％以上になる被験物質を、工程（２）において忌避剤候補物質として選択する。
細胞内cAMP濃度の測定方法として、抗cAMP抗体を利用してcAMPを検出する方法を挙げることができる。当該方法には、例えばHitHunter（DiscoveRx社製）やcAMP dynamic 2 kit（Cisbio Bioassays社製）などの市販のcAMP定量キットを使用することもできる。
細胞内cAMP濃度を測定する別の方法としては、GloSensor（Promega社登録商標）などのレポータータンパク質を利用する方法が挙げられる。GloSensorは、遺伝子改変により、ホタルルシフェラーゼの内部にcAMP結合タンパク質の一部が挿入されたバイオセンサータンパク質である。GloSensorにcAMPが結合すると、GloSensorの構造が変化して発光量が増加する。したがって、GloSensorを発現する細胞の細胞内cAMP濃度の上昇は、発光量の増大として現れる。この細胞内cAMP濃度測定法を、本形質転換細胞に作用する化合物の評価に利用するために、例えば、GloSensorを発現する形質転換細胞をあらかじめ作製し、この形質転換細胞に、本嗅覚受容体発現プラスミド及び本共受容体発現プラスミドを導入して、本形質転換細胞を作製してもよい。又は、本嗅覚受容体発現プラスミド及び本共受容体発現プラスミドが導入された本形質転換細胞に、さらにGloSensorを発現させてもよい。GloSensorを細胞で発現させるには、当分野で公知の任意の方法を用いることができる。GloSensor発現プラスミド、本嗅覚受容体発現プラスミド、及び本共受容体発現プラスミドを同時に細胞に導入することも可能である。GloSensor、本嗅覚受容体及び本共受容体の発現には、プラスミドのほかにこれらのタンパク質をコードする塩基配列を含有するウイルスベクターやこれらのタンパク質をコードするmRNAを利用することもできる。具体的にはGloSensorを発現させた本形質転換細胞をGloSensor cAMP reagent（プロメガ社製）を含む緩衝溶液中で２時間程度培養して、GloSensor cAMP reagent（プロメガ社製）を細胞内に取り込ませる。次いでGloSensorを発現している本形質転換細胞を被検物質と接触させ、GloSensorに由来する発光の強度を測定する。
上記のようにして細胞内cAMP濃度を測定する場合の本形質転換細胞には、Ｇタンパク質をさらに発現させてもよい。本形質転換細胞において発現させるＧタンパク質としては、例えば、アデニル酸シクラーゼを活性化するタイプのＧタンパク質のαサブユニットを挙げることができ、より具体的には、本形質転換細胞の宿主細胞と同種または近縁種の生物由来のＧαｓタンパク質を挙げることができる。かかるＧタンパク質を細胞で発現させるには、当分野で公知の任意の方法を用いることができる。
上記の発光量の測定は、例えば、ＣＣＤカメラ、ルミノメーター、または、任意の他の好適な光学システムを使用して行うことができる。利用可能な市販の光学システムとしては、例えば、EnVision（パーキンエルマー社製）、FlexStation 3やFLIPR（モレキュラーデバイス社製）、FDSS7000（浜松ホトニクス社製）、FDSS／μＣＥＬＬ（浜松ホトニクス社製）などが挙げられる。
例えば、上記のようにして細胞内cAMP濃度をcAMP定量キットを用いて定量し、同様に、陰性対照におけるcAMP量も定量する。陰性対照におけるcAMP量を100％とし、被験物質を接触させた本形質転換細胞でのcAMP量のパーセンテージを算出する。被験物質を接触させた本形質転換細胞において検出されたcAMP量の前記パーセンテージが、例えば120％以上、好ましくは150％以上、更に好ましくは200％以上になる被験物質を、工程（２）において忌避剤候補物質として選択する。
また例えば、上記のようにして細胞内cAMP濃度に相関する発光量を測定し、同様に、陰性対照における発光量も測定する。陰性対照における発光量を100％とし、被験物質を接触させた本形質転換細胞で検出された発光量のパーセンテージを算出する。被験物質を接触させた本形質転換細胞において検出された発光量の前記パーセンテージが、例えば120％以上、好ましくは150％以上、更に好ましくは200％以上になる被験物質を、工程（２）において忌避剤候補物質として選択する。
本発明スクリーニング方法１の工程（２）における対照としては、例えば、被験物質を接触させていない本形質転換細胞において工程（１）と同様に測定された細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を挙げることができる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞において工程（１）で測定された細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値とを比較する。ここで「被験物質を接触させていない本形質転換細胞」とは、例えば、溶媒のみを接触させた本形質転換細胞を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法１の工程（２）における対照としては、例えば、本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞に被験物質を接触させて工程（１）と同様に測定された細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を挙げることもできる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞において工程（１）で測定された細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値とを比較する。ここで「本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞」としては、例えば、本共受容体のみを発現させた形質転換細胞を挙げることができる。
かかる対照とする細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値は、被験物質を接触させた本形質転換細胞における細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値と工程（１）において併行して測定して求めてもよいし、別途測定して求めてもよい。
本発明スクリーニング方法１の工程（２）において、例えば、被験物質と接触させた本形質転換細胞における細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値の測定値が、上述の陰性対照とする指標値の測定値よりも高ければ、当該被験物質が、前記本形質転換細胞が発現する本嗅覚受容体を活性化させる効果を有することを意味し、当該被験物質を忌避剤候補物質として選択することができる。
本発明スクリーニング方法１の工程（２）における対照としては、例えば、本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞に被験物質を接触させて工程（１）と同様に測定された細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値を挙げることもできる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞において工程（１）で測定された細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値とを比較する。ここで「本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞」としては、例えば、本共受容体のみを発現させた形質転換細胞を挙げることができる。
かかる対照とする細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値は、被験物質を接触させた本形質転換細胞における細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値と工程（１）において併行して測定して求めてもよいし、別途測定して求めてもよい。
本発明スクリーニング方法１の工程（２）において、例えば、被験物質と接触させた本形質転換細胞における細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値の測定値が、上述の陰性対照とする指標値の測定値よりも高ければ、当該被験物質が、前記本形質転換細胞が発現する本嗅覚受容体を活性化させる効果を有することを意味し、当該被験物質を忌避剤候補物質として選択することができる。
一般的に、GPCRを発現する細胞がGPCRを活性化する被験物質により刺激されると、G-タンパク質αサブユニットにGTPが結合する。この現象はGPCR及びG-タンパク質を発現する細胞の膜画分でも観察される。従って、細胞膜画分へのGTP結合量を増大させる被験物質をGPCRの活性化物質として選択することができる。即ち、本嗅覚受容体のGPCRとしての機能を指標に本嗅覚受容体を活性化する物質を選択することができる。
本発明スクリーニング方法としては、例えば、
工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞の細胞膜画分と被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、前記細胞膜画分へのGTPの結合量である本発明スクリーニング方法；すなわち、
忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、
（１）被験物質と、本形質転換細胞の細胞膜画分とを接触させ、当該細胞膜画分へのGTPの結合量を測定する第一工程と、
（２）工程（１）で測定されたGTPの結合量を、対照と比較して、前記細胞膜画分へのGTPの結合量を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法（以下、本発明スクリーニング方法２と記すこともある。）を挙げることができるである。
本発明スクリーニング方法２の工程（１）及び（２）における「細胞膜画分へのGTPの結合量」を評価する方法としては、当業者に汎用されている公知の方法を用いることができる。例えば、通常G-タンパク質αサブユニットに結合したGTPはGDPに分解される。従って、G-タンパク質への結合能はあるがGTPアーゼにより分解されないようなGTPアナログを用いて、このGTPアナログのG-タンパク質への結合量を測定することができる。このようなGTPアナログとしては、例えばGTPγS、GppNHp等が挙げられる。また、GTPアナログの細胞膜画分への結合量を測定するにあたっては、例えばGTPアナログを放射標識しておき、細胞膜画分に標識GTPアナログを添加して一定時間インキュベートした後、細胞膜画分の放射活性を測定すればよい。
具体的には例えば、本形質転換細胞の細胞膜画分と放射標識したGTPアナログを含む溶液へ被験物質を添加し一定時間インキュベートした後、細胞膜画分の放射活性を液体シンチレーションカウンター等で測定する。細胞膜画分を調製する方法は、それ自体公知の通常用いられる方法に従い行うことができる。対照におけるGTPの結合量を100％とし、被検物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分で測定されたGTPの結合量をパーセンテージで算出する。工程（２）においては、被験物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分において測定されたGTPの結合量が、例えば110％以上、好ましくは125％以上、更に好ましくは150％以上になる被験物質を、忌避剤候補物質として選択する。
本発明スクリーニング方法２の工程（２）における対照としては、例えば、被験物質を接触させていない本形質転換細胞の細胞膜画分において工程（１）と同様に測定されたGTPの結合量を挙げることができる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分において工程（１）で測定されたGTPの結合量とを比較する。ここで「被験物質を接触させていない本形質転換細胞の細胞膜画分」としては、例えば、溶媒のみを接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法２の工程（２）における対照としては、例えば、本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞に被験物質を接触させて工程（１）と同様に測定された細胞膜画分におけるGTPの結合量を挙げることもできる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分において工程（１）で測定されたGTPの結合量を比較する。ここで「本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞」としては、例えば、本共受容体のみを発現させた形質転換細胞を挙げることができる。
かかる対照とするGTPの結合量は、被験物質を接触させた本形質転換細胞におけるGTPの結合量と工程（１）において併行して測定して求めてもよいし、別途測定して求めてもよい。
本発明スクリーニング方法２の工程（２）において、例えば、被験物質と接触させた本形質転換細胞におけるGTPの結合量の測定値が、上述の陰性対照とする指標値の測定値よりも高ければ、当該被験物質が、前記本形質転換細胞が発現する本嗅覚受容体を活性化させる効果を有することを意味し、当該被験物質を忌避剤候補物質として選択することができる。
本発明スクリーニング方法としては、例えば、
工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞の細胞膜画分と被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、前記細胞膜画分へのGTPの結合量である本発明スクリーニング方法；すなわち、
忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、
（１）被験物質と、本形質転換細胞の細胞膜画分とを接触させ、当該細胞膜画分へのGTPの結合量を測定する第一工程と、
（２）工程（１）で測定されたGTPの結合量を、対照と比較して、前記細胞膜画分へのGTPの結合量を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法（以下、本発明スクリーニング方法２と記すこともある。）を挙げることができるである。
本発明スクリーニング方法２の工程（１）及び（２）における「細胞膜画分へのGTPの結合量」を評価する方法としては、当業者に汎用されている公知の方法を用いることができる。例えば、通常G-タンパク質αサブユニットに結合したGTPはGDPに分解される。従って、G-タンパク質への結合能はあるがGTPアーゼにより分解されないようなGTPアナログを用いて、このGTPアナログのG-タンパク質への結合量を測定することができる。このようなGTPアナログとしては、例えばGTPγS、GppNHp等が挙げられる。また、GTPアナログの細胞膜画分への結合量を測定するにあたっては、例えばGTPアナログを放射標識しておき、細胞膜画分に標識GTPアナログを添加して一定時間インキュベートした後、細胞膜画分の放射活性を測定すればよい。
具体的には例えば、本形質転換細胞の細胞膜画分と放射標識したGTPアナログを含む溶液へ被験物質を添加し一定時間インキュベートした後、細胞膜画分の放射活性を液体シンチレーションカウンター等で測定する。細胞膜画分を調製する方法は、それ自体公知の通常用いられる方法に従い行うことができる。対照におけるGTPの結合量を100％とし、被検物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分で測定されたGTPの結合量をパーセンテージで算出する。工程（２）においては、被験物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分において測定されたGTPの結合量が、例えば110％以上、好ましくは125％以上、更に好ましくは150％以上になる被験物質を、忌避剤候補物質として選択する。
本発明スクリーニング方法２の工程（２）における対照としては、例えば、被験物質を接触させていない本形質転換細胞の細胞膜画分において工程（１）と同様に測定されたGTPの結合量を挙げることができる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分において工程（１）で測定されたGTPの結合量とを比較する。ここで「被験物質を接触させていない本形質転換細胞の細胞膜画分」としては、例えば、溶媒のみを接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法２の工程（２）における対照としては、例えば、本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞に被験物質を接触させて工程（１）と同様に測定された細胞膜画分におけるGTPの結合量を挙げることもできる。即ち、当該陰性対照と、被験物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分において工程（１）で測定されたGTPの結合量を比較する。ここで「本嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞」としては、例えば、本共受容体のみを発現させた形質転換細胞を挙げることができる。
かかる対照とするGTPの結合量は、被験物質を接触させた本形質転換細胞におけるGTPの結合量と工程（１）において併行して測定して求めてもよいし、別途測定して求めてもよい。
本発明スクリーニング方法２の工程（２）において、例えば、被験物質と接触させた本形質転換細胞におけるGTPの結合量の測定値が、上述の陰性対照とする指標値の測定値よりも高ければ、当該被験物質が、前記本形質転換細胞が発現する本嗅覚受容体を活性化させる効果を有することを意味し、当該被験物質を忌避剤候補物質として選択することができる。
本形質転換細胞から調製された細胞膜画分に、標識されたリガンドが結合している状態において、これに被験物質を共存させると、被験物質と標識リガンドとの競合から、両者の本嗅覚受容体への親和性に応じて、標識リガンドが細胞膜画分から遊離し、細胞膜画分に結合した標識リガンドの量が減少する。従って、細胞膜へ結合している標識リガンドの量を測定することにより、被験物質の本嗅覚受容体への結合能を算定することができる。このようにして求められた本嗅覚受容体への結合能を指標として、本嗅覚受容体を活性化する物質の候補を選択することができる。
本発明スクリーニング方法としては、例えば、
工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞の細胞膜画分と標識リガンドおよび被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、前記細胞膜画分への標識リガンドの結合量である本発明スクリーニング方法；すなわち、
忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、
（１）標識リガンドおよび被験物質と、本形質転換細胞の細胞膜画分とを接触させ、当該細胞膜画分への標識リガンドの結合量を測定する第二工程と、
（２）工程（１）で測定された標識リガンドの結合量を、対照と比較して、前記細胞膜画分への標識リガンドの結合量を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法（以下、本発明スクリーニング方法３と記すこともある。）を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法３の工程（１）及び（２）における「細胞膜画分への標識リガンドの結合量」を評価する方法としては、当業者に汎用されている公知の方法を用いることができる。例えば、標識リガンドの細胞膜画分への結合量を測定するにあたっては、細胞膜画分の放射活性を液体シンチレーションカウンター等で測定する。標識リガンドとしては、例えば、トリチウム標識されたリガンド等を用いることができる。
具体的には例えば、本形質転換細胞の細胞膜画分と放射標識リガンドを含む溶液へ溶媒のみを添加して一定時間インキュベートした後、細胞膜画分の放射活性を液体シンチレーションカウンター等で測定し、放射標識リガンドの細胞膜画分への総結合量を測定する。同様に、本形質転換細胞の細胞膜画分と放射標識リガンドを含む溶液へ大過剰の非放射標識リガンドを添加して一定時間インキュベートした後、細胞膜画分の放射活性を測定し、放射標識リガンドの細胞膜画分への非特異的結合量を測定する。ここで大過剰とは、標識リガンドに対して例えば100倍以上の量のことをいう。本形質転換細胞の細胞膜画分への放射標識リガンドの特異的結合量は、上記の総結合量から非特異的結合量を引いた値として算定する。
同様に、本形質転換細胞の細胞膜画分と放射標識リガンドを含む溶液へ被験物質を添加して一定時間インキュベートした後、細胞膜画分の放射活性を液体シンチレーションカウンター等で測定する。被験物質が本形質転換細胞の細胞膜画分への結合能を有する場合には、得られる放射標識リガンドの細胞膜画分への結合量は、上記で測定した放射標識リガンドの細胞膜画分への総結合量より小さくなる。このようにして本形質転換細胞の細胞膜画分に対する被験物質の結合能を調べることができる。
放射標識リガンドの細胞膜画分への総結合量を100％とし、放射標識リガンドの細胞膜画分への非特異的結合量を0％とし、被験物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分で測定された放射標識リガンドの結合量をパーセンテージで算出する。工程（２）においては、被験物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分において測定された放射標識リガンドの結合量が、例えば90％以下、好ましくは75％以下、更に好ましくは50％以下になる被験物質を、本嗅覚受容体への結合能を有する物質とし、本嗅覚受容体を活性化する物質の候補として選択する。
本発明スクリーニング方法としては、例えば、
工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞の細胞膜画分と標識リガンドおよび被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、前記細胞膜画分への標識リガンドの結合量である本発明スクリーニング方法；すなわち、
忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、
（１）標識リガンドおよび被験物質と、本形質転換細胞の細胞膜画分とを接触させ、当該細胞膜画分への標識リガンドの結合量を測定する第二工程と、
（２）工程（１）で測定された標識リガンドの結合量を、対照と比較して、前記細胞膜画分への標識リガンドの結合量を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法（以下、本発明スクリーニング方法３と記すこともある。）を挙げることができる。
本発明スクリーニング方法３の工程（１）及び（２）における「細胞膜画分への標識リガンドの結合量」を評価する方法としては、当業者に汎用されている公知の方法を用いることができる。例えば、標識リガンドの細胞膜画分への結合量を測定するにあたっては、細胞膜画分の放射活性を液体シンチレーションカウンター等で測定する。標識リガンドとしては、例えば、トリチウム標識されたリガンド等を用いることができる。
具体的には例えば、本形質転換細胞の細胞膜画分と放射標識リガンドを含む溶液へ溶媒のみを添加して一定時間インキュベートした後、細胞膜画分の放射活性を液体シンチレーションカウンター等で測定し、放射標識リガンドの細胞膜画分への総結合量を測定する。同様に、本形質転換細胞の細胞膜画分と放射標識リガンドを含む溶液へ大過剰の非放射標識リガンドを添加して一定時間インキュベートした後、細胞膜画分の放射活性を測定し、放射標識リガンドの細胞膜画分への非特異的結合量を測定する。ここで大過剰とは、標識リガンドに対して例えば100倍以上の量のことをいう。本形質転換細胞の細胞膜画分への放射標識リガンドの特異的結合量は、上記の総結合量から非特異的結合量を引いた値として算定する。
同様に、本形質転換細胞の細胞膜画分と放射標識リガンドを含む溶液へ被験物質を添加して一定時間インキュベートした後、細胞膜画分の放射活性を液体シンチレーションカウンター等で測定する。被験物質が本形質転換細胞の細胞膜画分への結合能を有する場合には、得られる放射標識リガンドの細胞膜画分への結合量は、上記で測定した放射標識リガンドの細胞膜画分への総結合量より小さくなる。このようにして本形質転換細胞の細胞膜画分に対する被験物質の結合能を調べることができる。
放射標識リガンドの細胞膜画分への総結合量を100％とし、放射標識リガンドの細胞膜画分への非特異的結合量を0％とし、被験物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分で測定された放射標識リガンドの結合量をパーセンテージで算出する。工程（２）においては、被験物質を接触させた本形質転換細胞の細胞膜画分において測定された放射標識リガンドの結合量が、例えば90％以下、好ましくは75％以下、更に好ましくは50％以下になる被験物質を、本嗅覚受容体への結合能を有する物質とし、本嗅覚受容体を活性化する物質の候補として選択する。
上述の本発明のスクリーニング方法において、被験物質の代わりに「対照物質」となり得るポジティブコントロール又はネガティブコントロールを用いてスクリーニングを実施することもできる。
ここで、「ポジティブコントロール」としては、本嗅覚受容体に作用しその下流の細胞内シグナル伝達量を増大させる効果を有する任意の物質が挙げられ、具体的には2-Undecanoneが挙げられる。「ネガティブコントロール」としては、被験物質溶液に含まれる溶媒、または、バックグランドとなる試験系溶液等が挙げられる。
「対照物質」をネガティブコントロールとする場合、被験物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」が、対照物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」よりも大きければ、当該被験物質は「本嗅覚受容体を活性化する効果」を有すると評価する。一方、被験物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」が、対照物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」と同程度若しくは小さければ、当該被験物質は「本嗅覚受容体を活性化する効果」を有さないと評価することができる。
対照物質をポジティブコントロールとする場合、被験物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」と、対照物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」とを比較することにより、被験物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」の大小を評価する。
このようにして、本嗅覚受容体を活性化する効果を有する被験物質を選択することができる。本発明のスクリーニング方法によれば、被験物質を被験昆虫に施用し被験昆虫の行動変化を観察する方法に比べて、多数の被験物質の短時間での試験が可能となる。
ここで、「ポジティブコントロール」としては、本嗅覚受容体に作用しその下流の細胞内シグナル伝達量を増大させる効果を有する任意の物質が挙げられ、具体的には2-Undecanoneが挙げられる。「ネガティブコントロール」としては、被験物質溶液に含まれる溶媒、または、バックグランドとなる試験系溶液等が挙げられる。
「対照物質」をネガティブコントロールとする場合、被験物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」が、対照物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」よりも大きければ、当該被験物質は「本嗅覚受容体を活性化する効果」を有すると評価する。一方、被験物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」が、対照物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」と同程度若しくは小さければ、当該被験物質は「本嗅覚受容体を活性化する効果」を有さないと評価することができる。
対照物質をポジティブコントロールとする場合、被験物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」と、対照物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」とを比較することにより、被験物質が有する「本嗅覚受容体を活性化する効果」の大小を評価する。
このようにして、本嗅覚受容体を活性化する効果を有する被験物質を選択することができる。本発明のスクリーニング方法によれば、被験物質を被験昆虫に施用し被験昆虫の行動変化を観察する方法に比べて、多数の被験物質の短時間での試験が可能となる。
以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
実施例１（発現プラスミドの作製）
（１）本共受容体の発現プラスミド
（1-1）ハマダラカ由来本共受容体の発現プラスミド
ガンビエハマダラカ（Anopheles gambiae）Kisum系統またはG3系統の頭部を液体窒素で凍結させた後、TRIzol（インビトロジェン社製）を加えて液体窒素存在下で乳鉢と乳棒を用いて破砕した。得られた破砕物から、TRIzol試薬に添付の説明書に従いRNAを抽出した。抽出されたRNAを、RNA精製キット（RNeasy Mini Kit; QIAGEN社製）を用い、当該キットに添付された説明書に従って精製した。得られたTotal RNAを鋳型にし、Super Script III逆転写酵素（インビトロジェン社製）を添加し、５５℃で５０分間、次いで７５℃で１５分間保温することにより逆転写反応を行い、cDNAを得た。得られたcDNA溶液2μlを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーAgOR7-5’（５’−caccatgcaagtccagccgaccaagtacgtcggcct；配列番号３１）、１０μMのリバースプライマーAgOR7-3’（５’−ttacttcagctgcaccagcaccatgaagt；配列番号３２）及びKOD Plus DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたDNAをアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約1.4kbのDNAを回収した。回収されたDNAをpENTR/D−TOPOベクター（インビトロジェン社製）へクローニングし、pENTR-AgOR7と名付けたプラスミドを得た。４μlのpENTR-AgOR7、１μlのpcDNA6.2V5-DEST及び２μlのLRクロナーゼII（インビトロジェン社製）を混合し室温で1時間保持した。得られた混合物を大腸菌へ導入しクローニングすることにより、pcDNA6.2-AgOR7と名付けたプラスミドを得た。プラスミドpcDNA6.2-AgOR7の塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析したところ、配列番号２９で示される塩基配列を含有することが判った。配列番号２９で示される塩基配列は配列番号１４で示されるアミノ酸配列をコードする。
（1-2）ショウジョウバエ由来本共受容体の発現プラスミド
ショウジョウバエ（Drosophila melanogaster）成虫RNA（TAKARA社製）を鋳型に用いて、Super Script III逆転写酵素（インビトロジェン社製）を添加し、５５℃で５０分間、次いで７５℃で１５分間保温することにより逆転写反応を行い、cDNAを得た。得られたcDNA2μlを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーDmOR83b-5’（５’−caccatgacaacctcgatgcagccgagcaagt；配列番号３３）、１０μMのリバースプライマーDmOR83b-3’（５’−ttacttgagctgcaccagcaccataaagt；配列番号３４）及びKOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約1.5kbのDNAを回収した。回収されたDNAをpENTR/D−TOPOベクター（インビトロジェン社製）へクローニングし、pENTR-DmOR83bと名付けたプラスミドを得た。４μlのpENTR-DmOR83b、１μlのpcDNA6.2V5-DEST及び２μlのLRクロナーゼII（インビトロジェン社製）を混合し室温で1時間保持した。得られた混合物を大腸菌へ導入しクローニングすることにより、pcDNA6.2-DmOR83bと名付けたプラスミドを得た。プラスミドpcDNA6.2-DmOR83bの塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析したところ、配列番号３０で示される塩基配列を含有することが判った。配列番号３０で示される塩基配列は配列番号１５で示されるアミノ酸配列をコードする。
（１）本共受容体の発現プラスミド
（1-1）ハマダラカ由来本共受容体の発現プラスミド
ガンビエハマダラカ（Anopheles gambiae）Kisum系統またはG3系統の頭部を液体窒素で凍結させた後、TRIzol（インビトロジェン社製）を加えて液体窒素存在下で乳鉢と乳棒を用いて破砕した。得られた破砕物から、TRIzol試薬に添付の説明書に従いRNAを抽出した。抽出されたRNAを、RNA精製キット（RNeasy Mini Kit; QIAGEN社製）を用い、当該キットに添付された説明書に従って精製した。得られたTotal RNAを鋳型にし、Super Script III逆転写酵素（インビトロジェン社製）を添加し、５５℃で５０分間、次いで７５℃で１５分間保温することにより逆転写反応を行い、cDNAを得た。得られたcDNA溶液2μlを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーAgOR7-5’（５’−caccatgcaagtccagccgaccaagtacgtcggcct；配列番号３１）、１０μMのリバースプライマーAgOR7-3’（５’−ttacttcagctgcaccagcaccatgaagt；配列番号３２）及びKOD Plus DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたDNAをアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約1.4kbのDNAを回収した。回収されたDNAをpENTR/D−TOPOベクター（インビトロジェン社製）へクローニングし、pENTR-AgOR7と名付けたプラスミドを得た。４μlのpENTR-AgOR7、１μlのpcDNA6.2V5-DEST及び２μlのLRクロナーゼII（インビトロジェン社製）を混合し室温で1時間保持した。得られた混合物を大腸菌へ導入しクローニングすることにより、pcDNA6.2-AgOR7と名付けたプラスミドを得た。プラスミドpcDNA6.2-AgOR7の塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析したところ、配列番号２９で示される塩基配列を含有することが判った。配列番号２９で示される塩基配列は配列番号１４で示されるアミノ酸配列をコードする。
（1-2）ショウジョウバエ由来本共受容体の発現プラスミド
ショウジョウバエ（Drosophila melanogaster）成虫RNA（TAKARA社製）を鋳型に用いて、Super Script III逆転写酵素（インビトロジェン社製）を添加し、５５℃で５０分間、次いで７５℃で１５分間保温することにより逆転写反応を行い、cDNAを得た。得られたcDNA2μlを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーDmOR83b-5’（５’−caccatgacaacctcgatgcagccgagcaagt；配列番号３３）、１０μMのリバースプライマーDmOR83b-3’（５’−ttacttgagctgcaccagcaccataaagt；配列番号３４）及びKOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約1.5kbのDNAを回収した。回収されたDNAをpENTR/D−TOPOベクター（インビトロジェン社製）へクローニングし、pENTR-DmOR83bと名付けたプラスミドを得た。４μlのpENTR-DmOR83b、１μlのpcDNA6.2V5-DEST及び２μlのLRクロナーゼII（インビトロジェン社製）を混合し室温で1時間保持した。得られた混合物を大腸菌へ導入しクローニングすることにより、pcDNA6.2-DmOR83bと名付けたプラスミドを得た。プラスミドpcDNA6.2-DmOR83bの塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析したところ、配列番号３０で示される塩基配列を含有することが判った。配列番号３０で示される塩基配列は配列番号１５で示されるアミノ酸配列をコードする。
（２）本嗅覚受容体発現プラスミド
(2-1)
実施例１（1-1）で調製されたハマダラカKisum系統頭部由来のcDNA2μlを鋳型に用いて、１０μMのフォワードプライマーAgOR46-1-5’(a)（５’−caccatggttgtgttcgaaccactggacga；配列番号３５）、１０μMのリバースプライマーAgOR46-1-3’（５’−ctagaaaatgtccttcagcagaagatagaa；配列番号３７）及びKOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたPCR産物を鋳型に用いて、１０μMのフォワードプライマーAgOR46-2-5’(a)（５’−tggaattctgcagatcaccatggttgtgttcgaaccactggacga；配列番号６２）、１０μMのリバースプライマーAgOR46-2-3’（５’−gccactgtgctggatctagaaaatgtccttcagcagaagatagaa；配列番号６３）及びKOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。２回目のPCRで得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約1.2kbのDNAを回収してこれをインサートDNAとした。pcDNA3.1（インビトロジェン社製）をEcoRVで消化したものをベクターとして用い、これに前記インサートDNAをIn-Fusion HD Cloning Kit（TAKARA社製）を用いて連結した後、大腸菌へ導入してクローニングした。得られた複数の大腸菌クローンからそれぞれプラスミドを抽出し塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析した。配列番号１６で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46aと名付けた。配列番号１６で示される塩基配列は配列番号１で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２０で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46pと名付けた。配列番号２０で示される塩基配列は配列番号５で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２１で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46tと名付けた。配列番号２１で示される塩基配列は配列番号６で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-2)
１回目のPCRにおいて、フォワードプライマーAgOR46-1-5’(a)（５’−caccatggttgtgttcgaaccactggacga；配列番号３５）に替えてAgOR46-1-5’(b) （５’−caccatggttgtgttcgatccactggacga；配列番号３６）を用い、２回目のPCRにおいて、フォワードプライマーAgOR46-2-5’(a) （５’−tggaattctgcagatcaccatggttgtgttcgaaccactggacga；配列番号６２）に替えてAgOR46-2-5’(b) （５’−tggaattctgcagatcaccatggttgtgttcgatccactggacga；配列番号６４）を用い、実施例１(2-1)と同様にして、複数の大腸菌クローンを得た。得られた大腸菌クローンからそれぞれプラスミドを抽出し塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析した。配列番号２６で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46gと名付けた。配列番号２６で示される塩基配列は配列番号１１で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２２で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46vと名付けた。配列番号２２で示される塩基配列は配列番号７で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２３で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46wと名付けた。配列番号２３で示される塩基配列は配列番号８で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２４で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46xと名付けた。配列番号２４で示される塩基配列は配列番号９で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２５で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46zと名付けた。配列番号２５で示される塩基配列は配列番号１０で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-3)
ハマダラカKisum系統頭部由来のcDNAに替えてハマダラカG3系統頭部由来のcDNAを用い、実施例１(2-1)と同様にして、複数の大腸菌クローンを得た。得られた大腸菌クローンからそれぞれプラスミドを抽出し塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析した。配列番号１６で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46aと名付けた。配列番号１７で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46kと名付けた。配列番号１７で示される塩基配列は配列番号２で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号１８で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46lと名付けた。配列番号１８で示される塩基配列は配列番号３で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号１９で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46mと名付けた。配列番号１９で示される塩基配列は配列番号４で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-4)
実施例１で調製したハマダラカKisum系統頭部由来のcDNA2μlを鋳型に用いて、１０μMのフォワードプライマーAgOR9-5’(a)（５’−caccatggttaggcttttcttcagcaaaac；配列番号６５）、１０μMのリバースプライマーAgOR9-3’（５’−ctaatccgtcatcgatctcaaaactgcca；配列番号６６）及びKOD Plus DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたPCR産物を鋳型に用いて上記と同様のPCRを再度行った。２回目のPCRで得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約1.3kbのDNAを回収してこれをインサートDNAとした。回収されたDNAをpENTR/D−TOPOベクター（インビトロジェン社製）へクローニングし、pENTR-AgOR9と名付けたプラスミドを得た。４μlのpENTR-AgOR9、１μlのpcDNA6.2V5-DEST及び２μlのLRクロナーゼII（インビトロジェン社製）を混合し室温で1時間保持した。得られた混合物を大腸菌へ導入しクローニングすることにより、pcDNA6.2-AgOR9と名付けたプラスミドを得た。プラスミドpcDNA6.2-AgOR9の塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析したところ、配列番号５０で示される塩基配列を含有することが判った。配列番号５０で示される塩基配列は配列番号５１で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-5)
実施例１で調製したハマダラカG3系統頭部由来のcDNA2μlを鋳型に用いて、１０μMのフォワードプライマーAgOR32-1-5’(a)（５’−caccatgtctcagctcaatgaatttccgg；配列番号６７）、１０μMのリバースプライマーAgOR32-1-3’（５’−tcaagtttttttctcgttcaagtcagcc；配列番号６８）及びKOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたPCR産物を鋳型に用いて、１０μMのフォワードプライマーAgOR32-2-5’(a)（５’−tggaattctgcagatcaccatgtctcagctcaatgaatttccgg；配列番号６９）、１０μMのリバースプライマーAgOR32-2-3’（５’−gccactgtgctggattcaagtttttttctcgttcaagtcagcc；配列番号７０）を用いて上記と同様のPCRを行った。得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約1.2kbのDNAを回収してこれをインサートDNAとした。pcDNA3.1（インビトロジェン社製）をEcoRVで消化したものをベクターとして用い、これに前記インサートDNAをIn-Fusion HD Cloning Kit（TAKARA社製）を用いて連結した後、大腸菌へクローニングすることによりpcDNA3.1-AgOR32と名付けたプラスミドを得た。プラスミドpcDNA3.1-AgOR32の塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析したところ、配列番号５４で示される塩基配列を含有することが判った。配列番号５４で示される塩基配列は配列番号５５で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-6)
配列番号５８で示される塩基配列を有する二本鎖DNAを合成する。得られたDNAをpcDNA3.1ベクターにクローニングし、プラスミドpcDNA3.1-AgOR36を得る。配列番号５８で示される塩基配列は配列番号５９で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-1)
実施例１（1-1）で調製されたハマダラカKisum系統頭部由来のcDNA2μlを鋳型に用いて、１０μMのフォワードプライマーAgOR46-1-5’(a)（５’−caccatggttgtgttcgaaccactggacga；配列番号３５）、１０μMのリバースプライマーAgOR46-1-3’（５’−ctagaaaatgtccttcagcagaagatagaa；配列番号３７）及びKOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたPCR産物を鋳型に用いて、１０μMのフォワードプライマーAgOR46-2-5’(a)（５’−tggaattctgcagatcaccatggttgtgttcgaaccactggacga；配列番号６２）、１０μMのリバースプライマーAgOR46-2-3’（５’−gccactgtgctggatctagaaaatgtccttcagcagaagatagaa；配列番号６３）及びKOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。２回目のPCRで得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約1.2kbのDNAを回収してこれをインサートDNAとした。pcDNA3.1（インビトロジェン社製）をEcoRVで消化したものをベクターとして用い、これに前記インサートDNAをIn-Fusion HD Cloning Kit（TAKARA社製）を用いて連結した後、大腸菌へ導入してクローニングした。得られた複数の大腸菌クローンからそれぞれプラスミドを抽出し塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析した。配列番号１６で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46aと名付けた。配列番号１６で示される塩基配列は配列番号１で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２０で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46pと名付けた。配列番号２０で示される塩基配列は配列番号５で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２１で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46tと名付けた。配列番号２１で示される塩基配列は配列番号６で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-2)
１回目のPCRにおいて、フォワードプライマーAgOR46-1-5’(a)（５’−caccatggttgtgttcgaaccactggacga；配列番号３５）に替えてAgOR46-1-5’(b) （５’−caccatggttgtgttcgatccactggacga；配列番号３６）を用い、２回目のPCRにおいて、フォワードプライマーAgOR46-2-5’(a) （５’−tggaattctgcagatcaccatggttgtgttcgaaccactggacga；配列番号６２）に替えてAgOR46-2-5’(b) （５’−tggaattctgcagatcaccatggttgtgttcgatccactggacga；配列番号６４）を用い、実施例１(2-1)と同様にして、複数の大腸菌クローンを得た。得られた大腸菌クローンからそれぞれプラスミドを抽出し塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析した。配列番号２６で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46gと名付けた。配列番号２６で示される塩基配列は配列番号１１で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２２で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46vと名付けた。配列番号２２で示される塩基配列は配列番号７で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２３で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46wと名付けた。配列番号２３で示される塩基配列は配列番号８で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２４で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46xと名付けた。配列番号２４で示される塩基配列は配列番号９で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号２５で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46zと名付けた。配列番号２５で示される塩基配列は配列番号１０で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-3)
ハマダラカKisum系統頭部由来のcDNAに替えてハマダラカG3系統頭部由来のcDNAを用い、実施例１(2-1)と同様にして、複数の大腸菌クローンを得た。得られた大腸菌クローンからそれぞれプラスミドを抽出し塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析した。配列番号１６で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46aと名付けた。配列番号１７で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46kと名付けた。配列番号１７で示される塩基配列は配列番号２で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号１８で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46lと名付けた。配列番号１８で示される塩基配列は配列番号３で示されるアミノ酸配列をコードする。配列番号１９で示される塩基配列を含有するプラスミドをpcDNA3.1-AgOR46mと名付けた。配列番号１９で示される塩基配列は配列番号４で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-4)
実施例１で調製したハマダラカKisum系統頭部由来のcDNA2μlを鋳型に用いて、１０μMのフォワードプライマーAgOR9-5’(a)（５’−caccatggttaggcttttcttcagcaaaac；配列番号６５）、１０μMのリバースプライマーAgOR9-3’（５’−ctaatccgtcatcgatctcaaaactgcca；配列番号６６）及びKOD Plus DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたPCR産物を鋳型に用いて上記と同様のPCRを再度行った。２回目のPCRで得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約1.3kbのDNAを回収してこれをインサートDNAとした。回収されたDNAをpENTR/D−TOPOベクター（インビトロジェン社製）へクローニングし、pENTR-AgOR9と名付けたプラスミドを得た。４μlのpENTR-AgOR9、１μlのpcDNA6.2V5-DEST及び２μlのLRクロナーゼII（インビトロジェン社製）を混合し室温で1時間保持した。得られた混合物を大腸菌へ導入しクローニングすることにより、pcDNA6.2-AgOR9と名付けたプラスミドを得た。プラスミドpcDNA6.2-AgOR9の塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析したところ、配列番号５０で示される塩基配列を含有することが判った。配列番号５０で示される塩基配列は配列番号５１で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-5)
実施例１で調製したハマダラカG3系統頭部由来のcDNA2μlを鋳型に用いて、１０μMのフォワードプライマーAgOR32-1-5’(a)（５’−caccatgtctcagctcaatgaatttccgg；配列番号６７）、１０μMのリバースプライマーAgOR32-1-3’（５’−tcaagtttttttctcgttcaagtcagcc；配列番号６８）及びKOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたPCR産物を鋳型に用いて、１０μMのフォワードプライマーAgOR32-2-5’(a)（５’−tggaattctgcagatcaccatgtctcagctcaatgaatttccgg；配列番号６９）、１０μMのリバースプライマーAgOR32-2-3’（５’−gccactgtgctggattcaagtttttttctcgttcaagtcagcc；配列番号７０）を用いて上記と同様のPCRを行った。得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約1.2kbのDNAを回収してこれをインサートDNAとした。pcDNA3.1（インビトロジェン社製）をEcoRVで消化したものをベクターとして用い、これに前記インサートDNAをIn-Fusion HD Cloning Kit（TAKARA社製）を用いて連結した後、大腸菌へクローニングすることによりpcDNA3.1-AgOR32と名付けたプラスミドを得た。プラスミドpcDNA3.1-AgOR32の塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析したところ、配列番号５４で示される塩基配列を含有することが判った。配列番号５４で示される塩基配列は配列番号５５で示されるアミノ酸配列をコードする。
(2-6)
配列番号５８で示される塩基配列を有する二本鎖DNAを合成する。得られたDNAをpcDNA3.1ベクターにクローニングし、プラスミドpcDNA3.1-AgOR36を得る。配列番号５８で示される塩基配列は配列番号５９で示されるアミノ酸配列をコードする。
（３）Aequorin発現プラスミド
Aequorinをコードする配列番号３８で示される塩基配列がpMD19ベクターにクローニングされたプラスミドであるpMD19-AEQの１００ngを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーAEQ-5’（５’−caccatgacaagcaaacaatactc；配列番号４０）、１０μMのリバースプライマーAEQ-3’（５’−ttaggggacagctccaccgtag；配列番号４１）及びKOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約600bpのDNAを回収した。回収されたDNAをpENTR/D−TOPOベクター（インビトロジェン社製）へクローニングし、pENTR-AEQと名付けたプラスミドを得た。配列番号３８で示される塩基配列は配列番号３９で示されるアミノ酸配列をコードする。４μlのpENTR-AEQ、１μlのpcDNA6.2V5-DEST及び２μlのLRクロナーゼII（インビトロジェン社製）を混合し室温で1時間保持した。得られた混合物を大腸菌へ導入しクローニングすることにより、pcDNA6.2-AEQと名付けたプラスミドを得た。プラスミドpcDNA6.2-AEQの１００ngを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーIn-Fusion AEQ-5’（５’−gtggcggccgctcgaggccaccatgacaagcaaacaatactc；配列番号４２）、１０μMのリバースプライマーIn-Fusion AEQ-3’（５’−gccctctagactcgagttaggggacagctccaccgtag；配列番号４３）及びKOD neo Plus DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたDNAをアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約600bpのDNAを回収してこれをインサートDNA1とした。pcDNA3.1（インビトロジェン社製）をXhoIで消化したものをベクターとして用い、これに前記インサートDNA1をIn-Fusion HD Cloning Kit（TAKARA社製）を用いて連結した後、大腸菌へ導入しクローニングすることによりpcDNA3.1-AEQと名付けたプラスミドを得た。pcDNA3.1-AEQの１００ngを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーIn-Fusion AEQ-5’（５’−gtggcggccgctcgaggccaccatgacaagcaaacaatactc；配列番号４２）、１０μMのリバースプライマーIn-Fusion AEQ-3’（５’−gccctctagactcgagttaggggacagctccaccgtag；配列番号４３）及びKOD neo Plus DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたDNAをアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約600bpのDNAを回収してこれをインサートDNA2とした。pcDNA3.1(hygro)（インビトロジェン社製）をXhoIで消化したものをベクターとして用い、これに前記インサートDNA2をIn-Fusion HD Cloning Kit（TAKARA社製）を用いて連結した後、大腸菌へ導入しクローニングすることによりpcDNA3.1(hygro)-AEQと名付けたプラスミドを得た。
Aequorinをコードする配列番号３８で示される塩基配列がpMD19ベクターにクローニングされたプラスミドであるpMD19-AEQの１００ngを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーAEQ-5’（５’−caccatgacaagcaaacaatactc；配列番号４０）、１０μMのリバースプライマーAEQ-3’（５’−ttaggggacagctccaccgtag；配列番号４１）及びKOD Plus neo DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたPCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約600bpのDNAを回収した。回収されたDNAをpENTR/D−TOPOベクター（インビトロジェン社製）へクローニングし、pENTR-AEQと名付けたプラスミドを得た。配列番号３８で示される塩基配列は配列番号３９で示されるアミノ酸配列をコードする。４μlのpENTR-AEQ、１μlのpcDNA6.2V5-DEST及び２μlのLRクロナーゼII（インビトロジェン社製）を混合し室温で1時間保持した。得られた混合物を大腸菌へ導入しクローニングすることにより、pcDNA6.2-AEQと名付けたプラスミドを得た。プラスミドpcDNA6.2-AEQの１００ngを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーIn-Fusion AEQ-5’（５’−gtggcggccgctcgaggccaccatgacaagcaaacaatactc；配列番号４２）、１０μMのリバースプライマーIn-Fusion AEQ-3’（５’−gccctctagactcgagttaggggacagctccaccgtag；配列番号４３）及びKOD neo Plus DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたDNAをアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約600bpのDNAを回収してこれをインサートDNA1とした。pcDNA3.1（インビトロジェン社製）をXhoIで消化したものをベクターとして用い、これに前記インサートDNA1をIn-Fusion HD Cloning Kit（TAKARA社製）を用いて連結した後、大腸菌へ導入しクローニングすることによりpcDNA3.1-AEQと名付けたプラスミドを得た。pcDNA3.1-AEQの１００ngを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーIn-Fusion AEQ-5’（５’−gtggcggccgctcgaggccaccatgacaagcaaacaatactc；配列番号４２）、１０μMのリバースプライマーIn-Fusion AEQ-3’（５’−gccctctagactcgagttaggggacagctccaccgtag；配列番号４３）及びKOD neo Plus DNAポリメラーゼ（東洋紡製）を用いてPCRを行った。得られたDNAをアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出された約600bpのDNAを回収してこれをインサートDNA2とした。pcDNA3.1(hygro)（インビトロジェン社製）をXhoIで消化したものをベクターとして用い、これに前記インサートDNA2をIn-Fusion HD Cloning Kit（TAKARA社製）を用いて連結した後、大腸菌へ導入しクローニングすることによりpcDNA3.1(hygro)-AEQと名付けたプラスミドを得た。
（４）Ｇタンパク質の発現プラスミド
ヒト脳由来cDNAライブラリー（TAKARA社製）２０ngを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーGNAS1-5’（５’−atgggctgcctcgggaacagta；配列番号４８）、１０μMのリバースプライマーGNAS1-3’（５’−ttagagcagctcgtactgacga；配列番号４９）及びVent DNAポリメラーゼ（New England Biolabs社製）を用いてPCRを行う。得られたDNAをアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出される約1.2kbのDNAを回収する。回収されたDNAの3’末端にLA-Taq DNAポリメラーゼ（TAKARA社製）を用いてdATP（デオキシアデノシン三リン酸）を付加する。得られたDNAをフェーノール／クロロホルム抽出し、エタノール沈殿する。得られたDNAをpCR2.1-TOPOベクター（インビトロジェン社製）へクローニングし、pCR2.1-hGsと名付けたプラスミドを得る。pCR2.1-Gsを制限酵素HindIII及びXbaIで二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供する。当該ゲル上で検出される約1.2kbのバンドを切り出し、インサートDNAとする。プラスミドpcDNA3.1(hygro) （インビトロジェン社製）をHindIII及びXbaIで二重消化したものをベクターとして用い、これに前記インサートDNAをライゲースを用いて連結した後、大腸菌へ導入しクローニングすることにより、ヒトＧｓタンパク質（Stimulatory G-Protein）発現プラスミドを得る。このようにして得られるプラスミドをpcDNA3.1(hygro)-hGsと呼ぶ。プラスミドpcDNA3.1(hygro)-hGsの塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析したところ、配列番号６０で示される塩基配列を含有することが判った。配列番号６０で示される塩基配列は配列番号６１で示されるアミノ酸配列をコードする。
ヒト脳由来cDNAライブラリー（TAKARA社製）２０ngを鋳型に用い、１０μMのフォワードプライマーGNAS1-5’（５’−atgggctgcctcgggaacagta；配列番号４８）、１０μMのリバースプライマーGNAS1-3’（５’−ttagagcagctcgtactgacga；配列番号４９）及びVent DNAポリメラーゼ（New England Biolabs社製）を用いてPCRを行う。得られたDNAをアガロースゲル電気泳動した後、当該ゲル上で検出される約1.2kbのDNAを回収する。回収されたDNAの3’末端にLA-Taq DNAポリメラーゼ（TAKARA社製）を用いてdATP（デオキシアデノシン三リン酸）を付加する。得られたDNAをフェーノール／クロロホルム抽出し、エタノール沈殿する。得られたDNAをpCR2.1-TOPOベクター（インビトロジェン社製）へクローニングし、pCR2.1-hGsと名付けたプラスミドを得る。pCR2.1-Gsを制限酵素HindIII及びXbaIで二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供する。当該ゲル上で検出される約1.2kbのバンドを切り出し、インサートDNAとする。プラスミドpcDNA3.1(hygro) （インビトロジェン社製）をHindIII及びXbaIで二重消化したものをベクターとして用い、これに前記インサートDNAをライゲースを用いて連結した後、大腸菌へ導入しクローニングすることにより、ヒトＧｓタンパク質（Stimulatory G-Protein）発現プラスミドを得る。このようにして得られるプラスミドをpcDNA3.1(hygro)-hGsと呼ぶ。プラスミドpcDNA3.1(hygro)-hGsの塩基配列をDNAシーケンサーを用いて解析したところ、配列番号６０で示される塩基配列を含有することが判った。配列番号６０で示される塩基配列は配列番号６１で示されるアミノ酸配列をコードする。
実施例２（発現プラスミドの細胞への導入）
（１）
293FT細胞（Invitrogen社から購入）を10ｃｍシャーレに３×１０6ｃｅｌｌｓ／シャーレで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養した。実施例１（1-1）で得られたハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7の3μgと、実施例１（２）で得られた本嗅覚受容体発現プラスミドのいずれかの3μgとを、12.5μlのPlus試薬及び31.25μlのリポフェクトアミンLTX（インビトロジェン社製）と混合し、３０分間保持した後、前記細胞にトランスフェクションした。トランスフェクション４時間後に９６Ｗｅｌｌプレートに８×１０４ｃｅｌｌｓ／Ｗｅｌｌで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養し、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞を得た。
（１）
293FT細胞（Invitrogen社から購入）を10ｃｍシャーレに３×１０6ｃｅｌｌｓ／シャーレで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養した。実施例１（1-1）で得られたハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7の3μgと、実施例１（２）で得られた本嗅覚受容体発現プラスミドのいずれかの3μgとを、12.5μlのPlus試薬及び31.25μlのリポフェクトアミンLTX（インビトロジェン社製）と混合し、３０分間保持した後、前記細胞にトランスフェクションした。トランスフェクション４時間後に９６Ｗｅｌｌプレートに８×１０４ｃｅｌｌｓ／Ｗｅｌｌで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養し、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞を得た。
（２）
293FT細胞（Invitrogen社から購入）を10ｃｍシャーレに３×１０6ｃｅｌｌｓ／シャーレで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養した。実施例１（1-1）で得られたハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7の3μgと、実施例１（２）に記載の本嗅覚受容体発現プラスミドのいずれかの3μgと、実施例１（３）で得られたAequorin発現プラスミドpcDNA3.1(hygro)-AEQの8μgとを、12.5μlのPlus試薬及び31.25μlのリポフェクトアミンLTX（インビトロジェン社製）と混合し、３０分間保持した後、前記細胞にトランスフェクションした。トランスフェクション４時間後に９６Ｗｅｌｌプレートに８×１０４ｃｅｌｌｓ／Ｗｅｌｌで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養し、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞を得た。
（３）
本嗅覚受容体発現プラスミドに替えてpcDNA3.1を用いた以外は、実施例２（２）と同様にして、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドが導入され本嗅覚受容体発現プラスミドが導入されていない対照細胞を得た。
（４）
ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドに替えて実施例１（1-2）で得られたショウジョウバエ由来本共受容体発現プラスミドpcDNA6.2-DmOR83bを用い、本嗅覚受容体発現プラスミドとしてpcDNA3.1-AgOR46lを用い、実施例２（２）と同様にして、ショウジョウバエ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞を得た。
（５）
HEK293細胞を１０ cmシャーレに２×１０6ｃｅｌｌｓ／シャーレで播種し、１0％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養した。GloSensorの発現プラスミドであるpGloSensor-22F cAMP plasmid（プロメガ社製）24μgを60μlのリポフェクトアミン２０００（インビトロジェン社製）及び３mlのOPTI-MEM（インビトロジェン社製）と混合し、２０分間保持した。得られた混合物を上記細胞にトランスフェクションした。トランスフェクション４時間後に培地を交換し、更に２０時間培養した。得られた細胞を１０ cmシャーレに４×１０５ｃｅｌｌｓ／シャーレで播種し、終濃度200μg/mlとなるようにハイグロマイシン（ナカライテスク社製）を培地に添加して更に１０日間培養した。得られたハイグロマイシン耐性細胞株コロニーをクローニングし、293-pGloSensor 2Aと名付けた安定形質転換細胞を得た。
得られた安定形質転換細胞293-pGloSensor 2Aを６Ｗｅｌｌプレートに１×１０6ｃｅｌｌｓ／Ｗｅｌｌで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養した。実施例１（1-1）で得られたハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7の3μgと、実施例１（2-1）（2-2）及び（2-3）で得られた本嗅覚受容体発現プラスミドのいずれかの3μgと、実施例１（４）に記載のヒトＧｓタンパク質発現プラスミドpcDNA3.1(hygro)-hGsの2μgとを、20μlのリポフェクトアミン２０００（インビトロジェン社製）と混合した。得られた混合物を２０分間保持した後、前記細胞にトランスフェクションした。トランスフェクション４時間後に培地を交換し、更に２０時間培養した。
得られた細胞を９６Ｗｅｌｌプレートに６×１０４ｃｅｌｌｓ／Ｗｅｌｌで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２時間培養し、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとヒトＧｓタンパク質発現プラスミドとGloSensorとが導入された本形質転換細胞を得た。
293FT細胞（Invitrogen社から購入）を10ｃｍシャーレに３×１０6ｃｅｌｌｓ／シャーレで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養した。実施例１（1-1）で得られたハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7の3μgと、実施例１（２）に記載の本嗅覚受容体発現プラスミドのいずれかの3μgと、実施例１（３）で得られたAequorin発現プラスミドpcDNA3.1(hygro)-AEQの8μgとを、12.5μlのPlus試薬及び31.25μlのリポフェクトアミンLTX（インビトロジェン社製）と混合し、３０分間保持した後、前記細胞にトランスフェクションした。トランスフェクション４時間後に９６Ｗｅｌｌプレートに８×１０４ｃｅｌｌｓ／Ｗｅｌｌで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養し、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞を得た。
（３）
本嗅覚受容体発現プラスミドに替えてpcDNA3.1を用いた以外は、実施例２（２）と同様にして、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドが導入され本嗅覚受容体発現プラスミドが導入されていない対照細胞を得た。
（４）
ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドに替えて実施例１（1-2）で得られたショウジョウバエ由来本共受容体発現プラスミドpcDNA6.2-DmOR83bを用い、本嗅覚受容体発現プラスミドとしてpcDNA3.1-AgOR46lを用い、実施例２（２）と同様にして、ショウジョウバエ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞を得た。
（５）
HEK293細胞を１０ cmシャーレに２×１０6ｃｅｌｌｓ／シャーレで播種し、１0％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養した。GloSensorの発現プラスミドであるpGloSensor-22F cAMP plasmid（プロメガ社製）24μgを60μlのリポフェクトアミン２０００（インビトロジェン社製）及び３mlのOPTI-MEM（インビトロジェン社製）と混合し、２０分間保持した。得られた混合物を上記細胞にトランスフェクションした。トランスフェクション４時間後に培地を交換し、更に２０時間培養した。得られた細胞を１０ cmシャーレに４×１０５ｃｅｌｌｓ／シャーレで播種し、終濃度200μg/mlとなるようにハイグロマイシン（ナカライテスク社製）を培地に添加して更に１０日間培養した。得られたハイグロマイシン耐性細胞株コロニーをクローニングし、293-pGloSensor 2Aと名付けた安定形質転換細胞を得た。
得られた安定形質転換細胞293-pGloSensor 2Aを６Ｗｅｌｌプレートに１×１０6ｃｅｌｌｓ／Ｗｅｌｌで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２４時間培養した。実施例１（1-1）で得られたハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7の3μgと、実施例１（2-1）（2-2）及び（2-3）で得られた本嗅覚受容体発現プラスミドのいずれかの3μgと、実施例１（４）に記載のヒトＧｓタンパク質発現プラスミドpcDNA3.1(hygro)-hGsの2μgとを、20μlのリポフェクトアミン２０００（インビトロジェン社製）と混合した。得られた混合物を２０分間保持した後、前記細胞にトランスフェクションした。トランスフェクション４時間後に培地を交換し、更に２０時間培養した。
得られた細胞を９６Ｗｅｌｌプレートに６×１０４ｃｅｌｌｓ／Ｗｅｌｌで播種し、１０％FBSを含むDMEM培地（ナカライテスク社製）中で、３７℃、５％CO２条件下にて約２時間培養し、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとヒトＧｓタンパク質発現プラスミドとGloSensorとが導入された本形質転換細胞を得た。
実施例３（本発明スクリーニング方法）
実施例２（１）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46aとが導入された本形質転換細胞」にFLIPR Membrane Potential Assay Kit （Molecular devices社製）のマニュアルに従い、培養液と等量の膜電位感受性色素を含むLoading Bufferを添加し、さらに３０分間、３７℃、５％CO２条件下で培養した。次いで被験物質として100μM、500μM、または1mMの2-Undecanone（東京化成工業社製）をFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の蛍光強度を測定した。結果を図１に示す。2-Undecanoneの濃度が100μM、500μMと増大するにつれて、蛍光強度の増大が認められた。発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46aにコードされる、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有する本嗅覚受容体が、2-Undecanoneによって活性化され、細胞内シグナル伝達量を増加させることが示された。
実施例２（１）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46aとが導入された本形質転換細胞」にFLIPR Membrane Potential Assay Kit （Molecular devices社製）のマニュアルに従い、培養液と等量の膜電位感受性色素を含むLoading Bufferを添加し、さらに３０分間、３７℃、５％CO２条件下で培養した。次いで被験物質として100μM、500μM、または1mMの2-Undecanone（東京化成工業社製）をFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の蛍光強度を測定した。結果を図１に示す。2-Undecanoneの濃度が100μM、500μMと増大するにつれて、蛍光強度の増大が認められた。発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46aにコードされる、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有する本嗅覚受容体が、2-Undecanoneによって活性化され、細胞内シグナル伝達量を増加させることが示された。
実施例４（本発明スクリーニング方法）
実施例２（２）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」の培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）及び0.3%のBSAを含むHanks-HEPES （20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置した。次いで被験物質として500μMの2-Undecanone（東京化成工業社製）をFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の発光量を測定した。発光量は、対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した細胞での発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」を2-Undecanoneと接触させた場合の発光量は483であった。発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lにコードされる、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有する本嗅覚受容体が、2-Undecanoneによって活性化され、細胞内シグナル伝達量を増加させることが示された。
実施例２（３）で得られた「対照細胞」の培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）及び0.3%のBSAを含むHanks-HEPES （20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置した。次いで被験物質として500μMの2-Undecanone（東京化成工業社製）をFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の発光量を測定した。発光量は、対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した細胞での発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、「対照細胞」を2-Undecanoneと接触させた場合の発光量は91であった。
実施例２（２）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」の培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）及び0.3%のBSAを含むHanks-HEPES （20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置した。次いで被験物質として500μMの2-Undecanone（東京化成工業社製）をFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の発光量を測定した。発光量は、対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した細胞での発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」を2-Undecanoneと接触させた場合の発光量は483であった。発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lにコードされる、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有する本嗅覚受容体が、2-Undecanoneによって活性化され、細胞内シグナル伝達量を増加させることが示された。
実施例２（３）で得られた「対照細胞」の培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）及び0.3%のBSAを含むHanks-HEPES （20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置した。次いで被験物質として500μMの2-Undecanone（東京化成工業社製）をFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の発光量を測定した。発光量は、対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した細胞での発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、「対照細胞」を2-Undecanoneと接触させた場合の発光量は91であった。
実施例５（本発明スクリーニング方法）
実施例２（４）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-DmOR83bと発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」の培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）及び0.3%のBSAを含むHanks-HEPES（20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置した。次いで、被験物質として500μMの2-Undecanone（東京化成工業社製）をFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の発光量を測定した。発光量は対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した場合の発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、「発現プラスミドpcDNA6.2-DmOR83bと発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」を2-Undecanoneと接触させた場合の発光量は179であった。配列番号１５で示されるアミノ酸配列を有するショウジョウバエ由来本共受容体を、本形質転換細胞で発現させる本共受容体として、本発明のスクリーニング方法に用いることができることが示された。
実施例２（４）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-DmOR83bと発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」の培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）及び0.3%のBSAを含むHanks-HEPES（20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置した。次いで、被験物質として500μMの2-Undecanone（東京化成工業社製）をFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の発光量を測定した。発光量は対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した場合の発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、「発現プラスミドpcDNA6.2-DmOR83bと発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」を2-Undecanoneと接触させた場合の発光量は179であった。配列番号１５で示されるアミノ酸配列を有するショウジョウバエ由来本共受容体を、本形質転換細胞で発現させる本共受容体として、本発明のスクリーニング方法に用いることができることが示された。
実施例６（本発明スクリーニング方法）
実施例２（２）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR9とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」、「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR32とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」及び「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR36とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」の培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）及び0.3%のBSAを含むHanks-HEPES （20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置した。次いで被験物質として1mMの2-Undecanone（東京化成工業社製）をFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中にそれぞれ添加するとともに、細胞の発光量を測定した。発光量は対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した場合の発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとが導入された上記本形質転換細胞においてそれぞれ、2-Undecanoneと接触させた場合に、対照よりも多い発光量が検出された。上記本形質転換細胞に導入されたそれぞれの発現プラスミドにコードされる、配列番号５１、５５、又は５９で示されるアミノ酸配列を有する本嗅覚受容体が、2-Undecanoneによって活性化され、細胞内シグナル伝達量を増加させることが示された。
実施例２（２）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR9とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」、「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR32とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」及び「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR36とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」の培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）及び0.3%のBSAを含むHanks-HEPES （20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置した。次いで被験物質として1mMの2-Undecanone（東京化成工業社製）をFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中にそれぞれ添加するとともに、細胞の発光量を測定した。発光量は対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した場合の発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとが導入された上記本形質転換細胞においてそれぞれ、2-Undecanoneと接触させた場合に、対照よりも多い発光量が検出された。上記本形質転換細胞に導入されたそれぞれの発現プラスミドにコードされる、配列番号５１、５５、又は５９で示されるアミノ酸配列を有する本嗅覚受容体が、2-Undecanoneによって活性化され、細胞内シグナル伝達量を増加させることが示された。
実施例７（本発明スクリーニング方法）
実施例２（５）で得られた「ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとヒトＧｓタンパク質発現プラスミドとGloSensorとが導入された本形質転換細胞」の培養液を除去し、Assay buffer（０．２% GloSensor cAMP stock reagent（プロメガ社製）と１０%FBSとを含むCO2-independent medium (インビトロジェン社製)）に置換し、さらに２時間、室温で静置した。被験物質として2-Undecanone（東京化成工業社製）を最終濃度が1mMになるように前記細胞の培養液中に添加した後、２０分間静置した。得られた細胞の発光量をプレートリーダーであるEnVision（パーキンエルマー社製）で測定した。測定は２分おきに計５回行い、得られた測定値の平均値を算出した。発光量は、対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した細胞での発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、上記本形質転換細胞においてそれぞれ、2-Undecanoneと接触させた場合に、対照よりも多い発光量が検出された。上記本形質転換細胞にそれぞれ導入された発現プラスミドにコードされる、配列番号１から１１のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する本嗅覚受容体が、2-Undecanoneによって活性化され、細胞内シグナル伝達量を増加させることが示された。
実施例２（５）で得られた「ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとヒトＧｓタンパク質発現プラスミドとGloSensorとが導入された本形質転換細胞」の培養液を除去し、Assay buffer（０．２% GloSensor cAMP stock reagent（プロメガ社製）と１０%FBSとを含むCO2-independent medium (インビトロジェン社製)）に置換し、さらに２時間、室温で静置した。被験物質として2-Undecanone（東京化成工業社製）を最終濃度が1mMになるように前記細胞の培養液中に添加した後、２０分間静置した。得られた細胞の発光量をプレートリーダーであるEnVision（パーキンエルマー社製）で測定した。測定は２分おきに計５回行い、得られた測定値の平均値を算出した。発光量は、対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した細胞での発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、上記本形質転換細胞においてそれぞれ、2-Undecanoneと接触させた場合に、対照よりも多い発光量が検出された。上記本形質転換細胞にそれぞれ導入された発現プラスミドにコードされる、配列番号１から１１のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する本嗅覚受容体が、2-Undecanoneによって活性化され、細胞内シグナル伝達量を増加させることが示された。
実施例８（ハマダラカ触角における本嗅覚受容体の発現分析）
ハマダラカ雌より触覚を単離した。単離された触角にＴＲＩｚｏｌ試薬（インビトロジェン社製）を１ｍｌ加え、これをホモジナイザーでホモジナイズした。ホモジナイズされた混和物を室温で５分間保持した後、これに２００μｌのクロロホルムを加えた。得られた混合物をボルテックスで十分に混合した後、更に室温で３分間保持した。その後、得られた混合物を遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、１０分間）することにより上清を得た。得られた上清に０．５ｍｌのイソプロパノールを加えた後、これを遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、１０分間）することによりＲＮＡを沈殿させた。沈殿させたＲＮＡを回収し、これを１００μｌのＭｉｌｌｉＱに懸濁した。この懸濁されたＲＮＡ溶液をＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（キアゲン社製）を用いて更に精製した。得られたＲＮＡ溶液中のＲＮＡ濃度を分光光度計を用いて測定した。このようにして調製されたＲＮＡ２０ｎｇを鋳型に用い、１μｌのＲａｎｄａｍ Ｈｅｘａｍｅｒｓ（アプライドバイオシステムズ社製）及びスーパースクリプトIIIＲＮＡ逆転写酵素（インビトロジェン社製）を用いて逆転写反応を行った。得られた逆転写産物0.１μｌを鋳型に用い、本嗅覚受容体ｍRNA検出用の以下のプライマーセット及びKOD Plus Neo ポリメラーゼ（東洋紡社製）を用いてＰＣＲを行った。
配列番号１６、１７、１８、２０、２１、２２、２４、２５、２６及び２７でそれぞれ示される塩基配列の部分配列を有するＤＮＡを増幅可能なプライマーセットＯＲ４６：
フォワードプライマーAgOR46 RT primer1-5’（5’−CTGGGATACGAAACCATTCCTC；配列番号４４）及び
リバースプライマーAgOR46 RT primer1-3’（5’−GTCGTGTTGAGGCTGATTAGAA；配列番号４５）
配列番号１９、２３及び２８でそれぞれ示される塩基配列の部分配列を有するＤＮＡを増幅可能なプライマーセットＯＲ４７：
フォワードプライマーAgOR47 RT primer1-5’（5’−CATCGCCGAGGGTATGTTAT；配列番号４６）及び
リバースプライマーAgOR47 RT primer1-3’（5’−GCCGTGTTGAGTCTAATCAGGA；配列番号４７）
得られたＰＣＲ産物を２％アガロースゲルにて電気泳動した後、当該ゲルをエチジウムブロマイド染色した。結果を図２に示す。プライマーセットOR46から期待される１９７ｂｐの増幅DNAに相当するバンドと、プライマーセットOR47から期待される１６２ｂｐの増幅DNAに相当するバンドが確認された。
ハマダラカ雌より触覚を単離した。単離された触角にＴＲＩｚｏｌ試薬（インビトロジェン社製）を１ｍｌ加え、これをホモジナイザーでホモジナイズした。ホモジナイズされた混和物を室温で５分間保持した後、これに２００μｌのクロロホルムを加えた。得られた混合物をボルテックスで十分に混合した後、更に室温で３分間保持した。その後、得られた混合物を遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、１０分間）することにより上清を得た。得られた上清に０．５ｍｌのイソプロパノールを加えた後、これを遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、１０分間）することによりＲＮＡを沈殿させた。沈殿させたＲＮＡを回収し、これを１００μｌのＭｉｌｌｉＱに懸濁した。この懸濁されたＲＮＡ溶液をＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（キアゲン社製）を用いて更に精製した。得られたＲＮＡ溶液中のＲＮＡ濃度を分光光度計を用いて測定した。このようにして調製されたＲＮＡ２０ｎｇを鋳型に用い、１μｌのＲａｎｄａｍ Ｈｅｘａｍｅｒｓ（アプライドバイオシステムズ社製）及びスーパースクリプトIIIＲＮＡ逆転写酵素（インビトロジェン社製）を用いて逆転写反応を行った。得られた逆転写産物0.１μｌを鋳型に用い、本嗅覚受容体ｍRNA検出用の以下のプライマーセット及びKOD Plus Neo ポリメラーゼ（東洋紡社製）を用いてＰＣＲを行った。
配列番号１６、１７、１８、２０、２１、２２、２４、２５、２６及び２７でそれぞれ示される塩基配列の部分配列を有するＤＮＡを増幅可能なプライマーセットＯＲ４６：
フォワードプライマーAgOR46 RT primer1-5’（5’−CTGGGATACGAAACCATTCCTC；配列番号４４）及び
リバースプライマーAgOR46 RT primer1-3’（5’−GTCGTGTTGAGGCTGATTAGAA；配列番号４５）
配列番号１９、２３及び２８でそれぞれ示される塩基配列の部分配列を有するＤＮＡを増幅可能なプライマーセットＯＲ４７：
フォワードプライマーAgOR47 RT primer1-5’（5’−CATCGCCGAGGGTATGTTAT；配列番号４６）及び
リバースプライマーAgOR47 RT primer1-3’（5’−GCCGTGTTGAGTCTAATCAGGA；配列番号４７）
得られたＰＣＲ産物を２％アガロースゲルにて電気泳動した後、当該ゲルをエチジウムブロマイド染色した。結果を図２に示す。プライマーセットOR46から期待される１９７ｂｐの増幅DNAに相当するバンドと、プライマーセットOR47から期待される１６２ｂｐの増幅DNAに相当するバンドが確認された。
実施例９（本発明スクリーニング方法）
実施例２（２）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46aとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」、「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」、「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR9とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」、「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR32とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」又は「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR36とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」と、実施例２（３）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現ベクターpcDNA3.1とAequorin発現プラスミドとが導入された対照細胞」のそれぞれの培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）及び0.3%のBSAを含むHanks-HEPES （20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置する。次いで、被験物質を前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の発光量を測定する。発光量は対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した場合の発光量を100とした場合の相対値として算出する。得られる結果から、上記本形質転換細胞に導入された発現プラスミドにコードされる本嗅覚受容体を活性化し細胞内シグナル伝達量を増加させる被験物質を選抜する。
実施例２（２）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46aとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」、「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR46lとAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」、「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR9とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」、「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR32とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」又は「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR36とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」と、実施例２（３）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現ベクターpcDNA3.1とAequorin発現プラスミドとが導入された対照細胞」のそれぞれの培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）及び0.3%のBSAを含むHanks-HEPES （20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置する。次いで、被験物質を前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の発光量を測定する。発光量は対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した場合の発光量を100とした場合の相対値として算出する。得られる結果から、上記本形質転換細胞に導入された発現プラスミドにコードされる本嗅覚受容体を活性化し細胞内シグナル伝達量を増加させる被験物質を選抜する。
実施例１０（本発明スクリーニング方法）
実施例２（２）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR32とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」の培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）および0.3%のBSAを含むHanks-HEPES （20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置した。次いで被験物質として1mMのDecanoic acidをFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の発光量を測定した。発光量は対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した場合の発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとが導入された上記本形質転換細胞において、Decanoic acidと接触させた場合に、対照よりも多い発光量が検出された。Decanoic acidが、上記本形質転換細胞に導入された発現プラスミドにコードされる、配列番号５５で示されるアミノ酸配列を有する本嗅覚受容体を活性化し細胞内シグナル伝達量を増加させる物質であることが示された。
実施例２（２）で得られた「発現プラスミドpcDNA6.2-AgOR7と発現プラスミドpcDNA3.1-AgOR32とAequorin発現プラスミドとが導入された本形質転換細胞」の培養液を除去してAssay buffer（0.5 μM セレンテラジンh（プロメガ社製）および0.3%のBSAを含むHanks-HEPES （20 mM pH 7.4））に置換し、さらに４時間、室温で静置した。次いで被験物質として1mMのDecanoic acidをFlexstation3（Molecular devices社製）を用いて前記細胞の培養液中に添加するとともに、細胞の発光量を測定した。発光量は対照物質としてジメチルスルホキシドを添加した場合の発光量を100とした場合の相対値として算出した。その結果、ハマダラカ由来本共受容体発現プラスミドと本嗅覚受容体発現プラスミドとが導入された上記本形質転換細胞において、Decanoic acidと接触させた場合に、対照よりも多い発光量が検出された。Decanoic acidが、上記本形質転換細胞に導入された発現プラスミドにコードされる、配列番号５５で示されるアミノ酸配列を有する本嗅覚受容体を活性化し細胞内シグナル伝達量を増加させる物質であることが示された。
本発明により、特定の嗅覚受容体を利用する忌避剤候補物質のスクリーニング方法、並びに、該スクリーニング方法で使用され得る、嗅覚受容体、当該嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチド及び当該ポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換細胞等が提供可能となる。
［配列表フリ−テキスト］
［配列表フリ−テキスト］
配列番号３１
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３２
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３３
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３４
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３５
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３６
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３７
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４０
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４１
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４２
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４３
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４４
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４５
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４６
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４７
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４８
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４９
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６２
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６３
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６４
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６５
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６６
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６７
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６８
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６９
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号７０
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３２
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３３
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３４
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３５
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３６
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号３７
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４０
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４１
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４２
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４３
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４４
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４５
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４６
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４７
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４８
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号４９
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６２
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６３
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６４
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６５
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６６
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６７
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６８
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号６９
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号７０
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
Claims (23)
- 忌避剤候補物質のスクリーニング方法であって、
（１）以下の嗅覚受容体からなる群：
（A1）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体、
（A2）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（A3）配列番号１から１３、５１、５３、５５、５７または５９のいずれかで示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、及び
（A4）配列番号１から１３のいずれかのアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列においてアミノ酸番号２８７以降のアミノ酸を欠失したアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体；
から選ばれる１以上の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入され当該嗅覚受容体を発現する形質転換細胞又はその細胞膜画分と、被験物質とを接触させ、前記嗅覚受容体の活性又はそれと相関する指標値を測定する第一工程と、
（２）工程（１）で測定された嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を、対照と比較して、当該嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値を変動させる被験物質を選択する第二工程と
を含む方法。 - 嗅覚受容体が、2-Undecanoneにより活性化される嗅覚受容体である請求項１に記載のスクリーニング方法。
- 形質転換細胞が、培養細胞を宿主細胞とする形質転換細胞である請求項１に記載のスクリーニング方法。
- 形質転換細胞が、嗅覚受容体共受容体をコードするポリヌクレオチドがさらに導入され当該嗅覚受容体共受容体と上記嗅覚受容体とを発現する形質転換細胞である請求項１から３のいずれかに記載のスクリーニング方法。
- 嗅覚受容体共受容体が、以下の嗅覚受容体共受容体からなる群：
（C1）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体、
（C2）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、嗅覚受容体と共役して陽イオンを細胞内へ流入させる能力を有する嗅覚受容体共受容体、及び
（C3）配列番号１４または１５で示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体共受容体のオーソログ；
から選ばれる嗅覚受容体共受容体である請求項４に記載のスクリーニング方法。 - 工程（２）における対照が：
(a)被験物質を接触させていない前記形質転換細胞もしくはその細胞膜画分における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値、又は
(b)前記嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチドが導入されていない細胞もしくはその細胞膜画分における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値、
である請求項１から４のいずれかに記載のスクリーニング方法。 - 工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞と被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、上記形質転換細胞における上記嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値である請求項１から６のいずれかに記載のスクリーニング方法。
- 嗅覚受容体からの細胞内シグナル伝達量又はそれと相関する指標値が、細胞内カルシウム量、細胞膜電位又は細胞内cAMP量である請求項７に記載のスクリーニング方法。
- 工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞の細胞膜画分と被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、前記細胞膜画分へのGTPの結合量である請求項１から６のいずれかに記載のスクリーニング方法。
- 工程（１）における被験物質との接触が、上記形質転換細胞の細胞膜画分と標識リガンドおよび被験物質との接触であり、工程（１）及び（２）における嗅覚受容体活性又はそれと相関する指標値が、前記細胞膜画分への標識リガンドの結合量である請求項１から６のいずれかに記載のスクリーニング方法。
- 被験物質の忌避効果を評価するための指標を提供する研究ツールとしての、請求項１に記載の嗅覚受容体を機能可能な形で発現する細胞の使用。
- 被験物質の忌避効果を評価するための指標を提供する研究ツールとしての、請求項１に記載の嗅覚受容体またはそれをコードするポリヌクレオチドの使用。
- 以下の嗅覚受容体からなる群から選ばれる嗅覚受容体：
（B1）配列番号１から１１、５１又は５５のいずれかで示されるアミノ酸配列を有する嗅覚受容体、
（B2）配列番号２で示されるアミノ酸配列において１個以上６個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B3）配列番号２で示されるアミノ酸配列と９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B4）配列番号３で示されるアミノ酸配列において１個以上９個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B5）配列番号３で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B6）配列番号４で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B7）配列番号４で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B8）配列番号５で示されるアミノ酸配列において１個以上３個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B9）配列番号６で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B10）配列番号７で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B11）配列番号７で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B12）配列番号８で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる嗅覚受容体、
（B13）配列番号９で示されるアミノ酸配列において１個以上６個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B14）配列番号９で示されるアミノ酸配列と９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B15）配列番号１０で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B16）配列番号１１で示されるアミノ酸配列において１個のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、
（B17）配列番号５１で示されるアミノ酸配列において１個以上８個以下のアミノ酸が欠失、付加もしくは置換されたアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体、及び
（B18）配列番号５１で示されるアミノ酸配列と９８％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を有し、リガンドに依存して細胞内シグナル伝達を活性化させる能力を有する嗅覚受容体。 - 2-Undecanoneにより活性化される嗅覚受容体である請求項１３記載の嗅覚受容体。
- 請求項１３又は１４に記載の嗅覚受容体をコードするポリヌクレオチド。
- 配列番号１６から２６、５０又は５４のいずれかで示される塩基配列を有する請求項１５記載のポリヌクレオチド。
- 請求項１５又は１６記載のポリヌクレオチドの塩基配列に対し相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド。
- 請求項１５から１７のいずれかに記載のポリヌクレオチドと、宿主細胞において機能可能なプロモーターとが機能可能な形で連結されてなるポリヌクレオチド。
- 請求項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチドを含有するベクター。
- 宿主細胞内で複製可能なベクターに、請求項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチドを組込む工程を有するベクターの製造方法。
- 請求項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換細胞。
- 請求項１５から１８のいずれかに記載のポリヌクレオチド又は請求項１９に記載のベクターを宿主細胞に導入する工程を有する形質転換細胞の製造方法。
- 請求項１５又は１６記載のポリヌクレオチドが導入され当該ポリヌクレオチドにコードされる嗅覚受容体を発現する形質転換細胞を培養し、産生された嗅覚受容体を回収する工程を有する嗅覚受容体の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2012201284A JP2014054218A (ja) | 2012-09-13 | 2012-09-13 | 忌避剤候補物質のスクリーニング方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2012201284A JP2014054218A (ja) | 2012-09-13 | 2012-09-13 | 忌避剤候補物質のスクリーニング方法 |
Publications (1)
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|---|---|
| JP2014054218A true JP2014054218A (ja) | 2014-03-27 |
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|---|---|
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Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2016202112A (ja) * | 2015-04-27 | 2016-12-08 | 株式会社豊田中央研究所 | 嗅覚受容体を用いたにおいの評価方法 |
| WO2022024903A1 (ja) * | 2020-07-27 | 2022-02-03 | 住友化学株式会社 | ニトロ化合物検出素子 |
-
2012
- 2012-09-13 JP JP2012201284A patent/JP2014054218A/ja active Pending
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|---|---|---|---|---|
| JP2016202112A (ja) * | 2015-04-27 | 2016-12-08 | 株式会社豊田中央研究所 | 嗅覚受容体を用いたにおいの評価方法 |
| WO2022024903A1 (ja) * | 2020-07-27 | 2022-02-03 | 住友化学株式会社 | ニトロ化合物検出素子 |
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