JP2013500275A - ヒドロキシ脂肪酸化合物並びに疾患治療及び診断のためのその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
近年、試料内の多数の代謝成分を並列方式で同定することができる質量分析ベースのシステムが進歩してきている(Aharoni A, Ric de Vos CH, Verhoeven HA, Maliepaard CA, Kruppa G, Bino R, Goodenowe DB. Nontargeted metabolome analysis by use of Fourier Transform Ion Cyclotron Mass Spectrometry. Omics 2002;6:217-34、Dettmer K, Aronov PA, Hammock BD. Mass spectrometry-based metabolomics. Mass Spectrom Rev 2007;26:51-78、Want EJ, Nordstrom A, Morita H, Siuzdak G. From exogenous to endogenous: the inevitable imprint of mass spectrometry in metabolomics. J Proteome Res 2007;6:459-68)。
炎症は、がんを包含する多くのヒト疾患の根底にある重大な構成要素である。炎症がどのように生じ、体によって制御されるか、並びに食事及び環境要因が炎症にどのように影響を与えるかを理解することは、疾患の予防及び治療のために重要である。
が提供される。
a)対象由来の試料を分析して、前記試料中の式(I)の化合物の量を定量するステップと、
b)対象試料中の定量された化合物の量を、1又は2以上の標準試料中の対応する化合物の量と比較して、対象試料中の化合物の量における増加又は減少の存在又は非存在を決定するステップと、
c)前記増加又は減少を、対象のCRC健康状態若しくは健康状態における変化を診断するために、又は対象においてCRC若しくはCRCのリスクを診断するために使用するステップと
を含む、対象のCRC健康状態若しくは健康状態における変化を診断するための、又は対象においてCRC若しくはCRCのリスクを診断するための方法を本明細書においてさらに提供する。
a)対象由来の試料を分析して、試料中の式(I)の化合物の量を定量するステップと、
b)対象試料中の定量された化合物の量を、1又は2以上の標準試料中の対応する化合物の量と比較して、対象試料中の化合物の量における増加又は減少の存在又は非存在を決定するステップと、
c)増加又は減少を、対象においてhPDDを診断するために使用するステップと
を含み得る。
a)対象由来の試料を分析して、試料中の式(I)の化合物の量を定量するステップと、
b)対象試料中の定量された化合物の量を、1又は2以上の標準試料中の対応する化合物の量と比較して、対象試料中の化合物の量における増加又は減少の存在又は非存在を決定するステップと、
c)増加又は減少を、対象において炎症又は炎症性疾患を診断するために使用するステップと
を含む方法が提供される。
a)前記抗炎症薬で治療される対象由来の試料を分析して、試料中の式(I)の化合物の量を定量するステップと、
b)対象試料中の定量された化合物の量を、1又は2以上の標準試料中の対応する化合物の量と比較して、対象試料中の化合物の量における増加又は減少の存在又は非存在を決定するステップとを含み、
ここで、対象試料中の化合物の量における増加又は減少は、対象において抗炎症薬によって引き起こされる効果を指示する。
と式(III)の化合物:
とを、式(IV)の化合物:
を生成するための条件下で反応させるステップと、
(ii)TBDPS基を除去して式(V)の化合物:
を生成するステップと、
(iii)式(V)の化合物と式(VI)の化合物:
とを、式(VII)の化合物:
を生成するための条件下で反応させるステップと、
(iv)式(VII)の化合物と触媒とを、式(VIII)の化合物:
を生成するための条件下で反応させるステップと、
(v)式(VIII)の化合物の末端エステル官能基を加水分解してカルボン酸基とし、それによって表題化合物を生成するステップと
を含む、化合物D046−124を調製するための方法も、本明細書において提供される。
が提供される。
用語「有効量」は、例えば研究者又は臨床医が求めている組織、系、動物又はヒトの生物学的又は医学的応答を引き出す、化合物、薬物又は医薬品の量を意味する。さらに、用語「治療有効量」は、そのような量を受けていない対応する対象と比較した際に、疾患、障害若しくは副作用の治療、治癒、予防若しくは寛解の改善、又は疾患若しくは障害の進行速度の減少をもたらす任意の量を意味する。該用語は、その範囲内に、正常な生理学的機能を増強するために有効な量も包含する。
[実施例]
材料及び方法
患者試料選択
第一の発見プロジェクトに使用される臨床試料は、Genomics Collaborative, Inc.(GCI)社から入手し、一方、第二の発見プロジェクト及び1つのバリデーションプロジェクトのための試料はSeracare Lifesciences社から入手した。これらの会社は、特に研究を目的とした血清及び組織試料の収集及び貯蔵を専門としている。標準化されたプロトコール及び操作手順を使用して、グローバルイニシアチブの一部としての医師団により、一貫した方式で試料を収集し、処理し、貯蔵した。すべての試料は適正に承認され、臨床プロトコールは倫理審査委員会によって認可された。発見及びバリデーションコホートの両方について、GCI社及びSeracare社のバイオバンクからの患者試料選択のための試験対象患者基準は、外科手術、化学又は放射線療法を包含するあらゆる形態の治療の前に血清を採取することであった。すべての試料に、GCI社及びSeracare社において認定された病理学者によって独立に検証された詳細な病理報告書が添付されていた。GCI社製発見試料セットは、40の前治療CRC患者及び50の対照由来の血清試料を包含し、Seracare社製発見セットは、26の前治療CRC及び25の対照由来の試料を包含し、バリデーションSeracare社製セットは、70の前治療CRC及び70の対照を包含していた。大阪医科大学によって提供された発見試料は、同学の標準的な収集プロトコールに従って事前に収集され、適正に承認された、46の手術前CRC患者及び35の対照を包含していた。Chiba Japanバリデーション集団の試料は、40の手術前CRC患者及び40の対照を包含しており、同じく倫理審査プロトコール及び適正な承認下で事前に収集された。病期分類を包含する集団の概要を表1に示す。すべての試料を無作為方式で処理及び分析し、分析後に結果を非盲検化した。
血清試料を分析のために解凍するまで−80℃で貯蔵し、1度だけ解凍した。すべての抽出を氷上で実施した。FTICR−MS分析のために、最初に等体積の血清を1%アンモニア水溶液及び酢酸エチル(EtOAc,ethyl acetate)で順次に3回抽出することによって、血清試料を調製した。抽出の合間に、試料を4℃、3500rpmで10分間遠心分離し、有機層を除去し、新たなチューブに移した(抽出物A)。第三のEtOAc抽出後、0.33%ギ酸を添加し、続いてもう2回EtOAc抽出を行った。最後の有機抽出の後、残った水性成分を水で2回さらに抽出し、3:1アセトニトリルでの沈殿によってタンパク質を除去した(抽出物B)。次いで、1:5比のEtOAc対ブタノール(BuOH)を窒素下で元のBuOH出発体積に濃縮した(抽出物C)。すべての抽出物を、FTICR−MS分析まで−80℃で貯蔵した。
試料抽出物(画分C)を、ネガティブESIのためにメタノール:0.1%(v/v)アンモニア水溶液(50:50、v/v)中で10倍希釈した。APCIのために、画分A試料抽出物を希釈することなく直接注射した。分析はすべて、7.0T能動的遮蔽超電導磁石が装備されているBruker Daltonics APEX III FTICR-MS(Bruker Daltonics社製、Billerica、MA)で実施した。試料は、ESI及びAPCIを使用して1時間当たり600μLの流速で直接注入した。セリン、テトラ−アラニン、レセルピン、Hewlett-Packard社製チューニングミックス及び副腎皮質刺激ホルモン断片4〜10の標準ミックスを使用して、イオン移動/検出パラメーターを最適化した。加えて、機器製造業者の推奨に従って、イオン強度及び100〜1000amuの質量範囲にわたる広帯域蓄積を最適化するように機器条件を合わせた。上記で言及した基準物質の混合物を使用して、100〜1000amuの取得範囲にわたる質量精度の各試料スペクトルを内部較正した。線形最小二乗回帰線を使用してFTICRデータを分析し、各内部標準の質量ピークがその理論的質量と比較して1PPM未満の質量誤差を有するように質量軸値を較正した。Bruker Daltonics Inc.社製XMASS(商標)ソフトウェアを使用して、1メガワードのデータファイルサイズを取得し、2メガワードにゼロ埋めした。SINmデータ変換は、フーリエ変換及び振幅算出の前に実施した。各分析からの質量スペクトルを統合し、各ピークの正確な質量及び絶対強度を含有するピークリストを作成した。100〜1000m/zの範囲内の化合物を分析した。異なるイオン化モード及び極性にわたってデータを比較しまとめるために、水素付加物形成を想定して、検出されたすべての質量ピークをそれらの対応する中性質量に変換した。次いで、DISCOVAmetrics(商標)ソフトウェア(Phenomenome Discoveries Inc.社製、Saskatoon、SK、Canada)を使用して、自己生成した二次元(質量対試料強度)アレイを作成した。複数ファイルからのデータを統合し、次いで、この合わせたファイルを処理して、固有の質量をすべて決定した。各固有の質量の平均を決定し、y軸に表した。各ファイルについて、分析するために初めに選択した各ファイルにカラムを作製し、x軸に表した。次いで、選択されたファイルのそれぞれにおいて見られる各質量の強度を、その代表的なx,y座標に入れた。強度値を含有しない座標は、ブランクのままとした。次いで、スペクトルのそれぞれをピーク選別して、検出されたすべての代謝産物の質量及び強度を得た。次いで、すべてのモード由来のデータを併合して、1試料当たり1つのデータファイルを作成した。90すべての発見血清試料由来のデータを併合し、整列化して、各試料がカラムによって表され、各固有の代謝産物が単一の行によって表され、アレイ中の各セルが所与の試料の代謝産物強度に対応する、二次元代謝産物アレイを作成した。次いで、アレイ表を、「統計分析」において記載されている統計分析に使用した。
5つのCRC及び5つの健常者試料由来の酢酸エチル抽出物を窒素ガス下で濃縮し、70μLのイソプロパノール:メタノール:ギ酸(10:90:0.1)中で再構成した。フルスキャン用には10μL、MS/MS用には30μLの再構成した試料を、1ml/分の流速でHPLC(HP 1100、Agilent Technologies社製 Hypersil(商標) ODS 5μm、125×4mmカラム)に供した。HPLCからの溶離液を、APCI源が装着されたABI社製QSTAR(登録商標)XL質量分析計を使用してネガティブモードで分析した。フルスキャンモードにおけるスキャン型は、蓄積時間1.0000秒、質量範囲50〜1500Da、及び継続時間55分の飛行時間(TOF)であった。ソースパラメーターは次の通りであった:イオン源ガス1(GS1,Ion source gas 1)80;イオン源ガス2(GS2,Ion source gas 2)10;カーテンガス(CUR,Curtain gas)30;ネブライザー電流(NC,Nebulizer Current)−3.0;温度400℃;クラスタ分離電位(DP,Declustering Potential)−60;集束電圧(FP,Focusing Potential)−265;クラスタ分離電位2(DP2,Declustering Potential 2)−15。MS/MSモードにおいて、スキャン型は生成物イオンであり、蓄積時間は1.0000秒であり、スキャン範囲は50〜650Daであり、継続時間は55分であった。ソースパラメーターはすべて上記と同じであり、−35Vの衝突エネルギー(CE,collision energy)及び5psiの衝突ガス(CID,collision gas、窒素)を用いた。MS3作業では、励起エネルギーを180Vに設定した。
薄層クロマトグラフィー法では、すべての化学物質及び培地をSigma-Aldrich Canada Ltd.社、Oakville、ONから購入した。溶媒はすべてHPLC等級であった。分析用TLCは、プレコートシリカゲルTLCアルミニウム板(EM science社製、Kieselgel 60 F254、5×2cm×0.2mm)上で行った。化合物を、UV光(254/366nm)下で、又はヨウ素蒸気槽に入れて、1%(w/v)硫酸セリウム及び4%(v/v)H2SO4を含有する5%(w/v)リンモリブデン酸水溶液中にプレートを浸漬することによって可視化し、続いて加熱した。NMRスペクトルをBruker社製Avance質量分析計で記録し、δ値は、1H(500MHz)についてはCDCl3(7.24ppmにおけるCHCl3)を基準とし、13C NMR(125.8MHz)についてはCDCl3(77.23ppm)を基準とした。
抽出前に10ug/mlの[13C1]コール酸を血清に添加しておき、非標的FTICR−MS分析について記載されている通りに血清試料を抽出した(36nMの[13C1]コール酸の最終酢酸エチル濃度をもたらした。各試料の分析には、酢酸エチル有機画分を使用した。Randox社製血清抽出物由来の酢酸エチル中の一連の[13C1]コール酸希釈物を使用して、0.00022ug/ml〜0.222ug/mlの範囲の標準曲線を生成した。100uLの試料を、APCIプローブ付きのTurboV(商標)源が装備されている4000QTRAP(商標)に、フローインジェクション分析によって注射した。担体溶媒は90%メタノール:10%酢酸エチルであり、APCI源への流速は360uL/分であった。ソースガスパラメーターは次の通りであった:CUR:10.0、CAD:6、NC:−3.0、TEM:400、GS1:15、インターフェイスヒーターオン。「化合物」設定は次の通りであった:入口電位(EP,entrance potential):−10、及び衝突セル出口電位(CXP,collision cell exit potential):−20.0。方法は、C28分子のそれぞれについての1つの親イオン遷移(445.3〜383.4Da、447.4〜385.4Da及び449.4〜405.4Da)、及び内部標準についての単一遷移(408.3〜343.4Da)の多重反応モニタリング(MRM)に基づく。遷移のそれぞれを、250msについて総サイクル時間2.3秒間モニターした。1試料当たりの総取得時間は、およそ1分であった。許容されるすべての分析により、0.98を超える線形回帰方程式についてR2相関係数を示した。3つのC28分子のそれぞれの[13C1]コール酸等価物は、外挿濃度を0.0148ug/ml(36nM、各試料の酢酸エチル抽出物中に存在する理論量)で割って各試料中の[13C1]コール酸の回収率を決定することによって算出した。次いで、[13C1]コール酸等価物として表される代謝産物濃度を外挿し、回収率で割って正規化し、適切な抽出希釈因子を乗じて最終血清濃度を生み出した。
FTICR−MS正確な質量のアレイアライメントは、DISCOVAmetrics(商標)バージョン3.0(Phenomenome Discoveries Inc.社製、Saskatoon)を使用して実施した。Microsoft(商標)社製Office Excel(商標)2007及び三連四重極MRMデータの分布分析を使用して、FTICR−MSデータの統計分析及びグラフ化を行い、JMPバージョン8.0.1を使用して分析した。メタ分析(Fisherの逆カイ二乗法)は、SAS 9.2及びR 2.9.0を使用して行った。CRCと対照との間の有意性の決定に、対応のないStudentの両側t−検定(Two-tailed unpair Student’s t-Test)を使用した。p<0.05値は有意とみなした。JROCFIT(www.jrocfit.org)の連続データモードを使用して、ROC曲線を生成した。
FTICRメタボロミクスプロファイリング
記載した研究の実験ワークフローを図1にまとめる。治療未経験のCRC患者及び健常な対照の3つの独立な集団由来の血清の非標的メタボロミクスプロファイル(表1にまとめる)を24か月間にわたって生成した(すなわち、各研究をおよそ12か月ずつ分離した)。第一の研究は、Genomics Collaborative, Inc(GCI)社から取得された40のCRC患者及び50の対照対象を含み、第二の研究は、Seracare Lifesciences Inc社から取得された26のCRC対象及び25の対照を含み、第三の研究は、大阪(Monden et al)において事前に収集された46のCRC及び35の対照を包含するものであった。すべての事例において、液体抽出過程を介して血清代謝産物を捕捉し(上記の方法を参照)、続いて、FTICR質量分析計においてネガティブエレクトロスプレーイオン化(nESI,negative electrospray ionization)及びネガティブ大気圧化学イオン化(nAPCI,negative atmospheric pressure chemical ionization)を使用して、抽出物の直接注入を行った。各研究についてすべての対象の生じたスペクトルデータを1PPMの質量精度内で整列化し、バックグラウンドピークを減じ、カスタムインフォーマティクスソフトウェア(custom informatics software)を使用して試料特異的なスペクトルピークそれぞれの強度を含む二次元アレイ表を作成した(上記の方法を参照)。3つの独立な研究についてCRC患者と対照プロファイルとの間の代謝の差異を、図2A〜2Cに示す通りの検出された質量範囲にわたって対照平均値の正規化した対数比ピーク強度をプロットすることによって可視化した。各独立な研究において、およそ440〜600Daのスペクトル領域は、CRC患者における強度が対照と比べて一貫して低減するピークを示した(図2における緑色、黄色、橙色及び赤色の点)。平均して、この質量のクラスターは、対照と比較してCRC患者の血清における50%〜75%の低減を示し、各研究においてp値は1×10−5以下であった。
上述したFTICR−MS作業において使用したGCI社製コホート由来の血清の選択される酢酸エチル抽出物を、四重極飛行時間(Q−TOF)質量分析計と接続されたHPLCを使用して、フルスキャンAPCIネガティブイオンモードで再分析した。FTICR−MS結果と一致して、逆相HPLC後、16〜18分の保持時間で、およそ440〜600Daのピークのクラスターが無症候性対照の血清において検出されたが、CRC患者の血清には存在しなかった(図4)。6つすべてのC28バイオマーカー(m/z446、m/z448、m/z450、m/z464、m/z466及びm/z468)由来の分子イオン、並びに残ったC32及びC36マーカーの多くは、正常血清クラスター内で検出可能であった。16〜18分の保持時間内で最大400Daの抽出された質量は、両方の集団において、他の保持時間における抽出質量スペクトル(図示せず)と同様のピーク強度を示し(図4、枠の右側の領域)、CRC患者の血清に対するこの枯渇した代謝領域の特異性を強化した。
もう2つの独立な集団におけるタンデム質量分析アプローチ(方法を参照)を使用して、CRC患者の血液中におけるhPULCFAのレベルの低減をさらに確認した。該アプローチは、分析物を定量するための親−娘断片イオン組合せの計測(多重反応モニタリング;MRMと称される)に基づくものである(Zytkovicz TH, Fitzgerald EF, Marsden D, Larson CA, Shih VE, Johnson DM, Strauss AW, Comeau AM, Eaton RB, Grady GF. Tandem mass spectrometric analysis for amino, organic, and fatty acid disorders in newborn dried blood spots: a two-year summary from the New England Newborn Screening Program. Clin Chem 2001; 47:1945-55、Johnson DW, Trinh MU. Analysis of isomeric long-chain hydroxy fatty acids by tandem mass spectrometry: application to the diagnosis of long-chain 3-hydroxyacyl CoA dehydrogenase deficiency. Rapid Commun Mass Spectrom 2003; 17:171-5)。本発明者らは、方法において記載されている通り、4個の酸素を有する28の炭素hPULCFA(親質量446、448及び450;それぞれ、C28H46O4、C28H48O4及びC28H50O4)のうち3つを計測するためのアッセイを開発した。hPULFAの標識した基準物質の合成は分析時において依然進行中であったため、結果は、内部標準として各試料にスパイクされた[13C1]コール酸の等価物(CAEs,equivalents to [13C1]cholic acid)として報告する。第一の研究は、70の治療未経験のCRC対象及び70のマッチング対照を含み、その全員が米国出身の白色人種であった。各対象について3つの28炭素hPULCFAのCAEs(公称質量446、448及び450に従って命名される)を図5Aに示す。代謝産物のそれぞれの、対照と比較して有意に低いレベル(p<0.001、図5Aに示される実際の値)が、治療未経験のCRC陽性対照において観察された。ROC分析は、28炭素含有hPULCFAのそれぞれについて、0.87±0.005のAUCをもたらした(図5B)。病期ごとに患者をプロットすることにより、第I〜III期にわずかなさらなる低減を示し、7人の対象のみであるが、第IV期の対象が最小の低減を示した(図5C及び5D)。期ごとの28炭素プールの対応する平均AUCは、第I期について0.87、第II期について0.88、第III期について0.94、及び第IV期について0.66であった。
本明細書において記載されているのは、ヒドロキシル及びカルボキシル官能部分を持ち、且つ、健常な無症候性対照と比較して治療未経験のCRC患者の血清における28〜36炭素の低減を含有する、長鎖炭化水素ベースの代謝産物の発見及び予備構造的特徴付けである。高分解能FTICR−MSをバイオマーカー発見のためのフローインジェクション技術と併せて使用し、該技術を3つの独立な被験集団に適用することによって、非標的メタボロミクスの有用性を試験した。多くの場合、バイオマーカーの性能をバリデートするために単一の試料セットを半分に分割することによって使用され(Lim JY, Cho JY, Paik YH, Chang YS, Kim HG. Diagnostic application of serum proteomic patterns in gastric cancer patients by ProteinChip surface-enhanced laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry. Int J Biol Markers 2007; 22:281-6、Su Y, Shen J, Qian H, Ma H, Ji J, Ma L, Zhang W, Meng L, Li Z, Wu J, Jin G, Zhang J, Shou C. Diagnosis of gastric cancer using decision tree classification of mass spectral data. Cancer Sci 2007; 98:37-43、Chen YD, Zheng S, Yu JK, Hu X. Artificial neural networks analysis of surface-enhanced laser desorption/ionization mass spectra of serum protein pattern distinguishes colorectal cancer from healthy population. Clin Cancer Res 2004; 10:8380-5)、多くの場合、複合アルゴリズムに依存し(総説Ringner M, Peterson C, Khan J. Analyzing array data using supervised methods. Pharmacogenomics 2002; 3:403-15を参照)且つバイアスをもたらし得る(Baggerly KA, Morris JS, Coombes KR. Reproducibility of SELDI-TOF protein patterns in serum: comparing datasets from different experiments. Bioinformatics 2004; 20:777-85)「訓練/試験セット」アプローチとは対照的に、本発明者らは、世界中のいくつもの場所から収集された異なる人種的バックグラウンドの、症例にマッチングさせた3つの別々の試料セット及び対照について完全に独立な発見分析を行って、高度のロバスト性及びサンプリングバイアスの最小限の可能性を確実にした。大阪セットにおいて発見された上位50の代謝識別子(metabolic discriminators)のうちの44及び47も、それぞれGCI社製及びSeracare社製セットにおいて有意に変化した。この異例の研究協定は、非標的FTICR−MS技術が再現性のあるバイオマーカー発見原動力であることだけでなく、その疾患に関係するメタボロミクス変化が、地理的な位置及び民族全体にわたって高度に保存され得ることを示している。この簡易化法を2つのさらなる独立な被験集団に対して使用して、2つのバイオマーカー候補のための標的TQ−MRM法を開発し、次いで3つのFTICR−MS研究から生成されたROC AUCを、TQ−MRM法から生成されたROC AUCと比較することによっても、非標的FTICR−MS発見の簡易アッセイへの移行を試験した。簡易化法を使用して、同様の結果が得られた。222の治療未経験のCRC患者試料及び220の疾患のない無症候性対照を集合的に含む、合計で5つの独立な研究集団を、2つの異なる分析法を使用して評価した。実際のところ、hPULCFAの低減と、CRCが試料の5つの独立なセット全体にわたって偽陽性結果であることとの間の報告されている関連の可能性は、天文学的に低い。偽陽性率について、Fisherの逆カイ二乗法(P=−2Σk i=1log pi>CであればH0を棄却;p=5つの独立な試料のP値、k=5つの異なる試料、C=2k自由度を有するカイ二乗分布の上側(X2 0.05,10=18.31))を使用してメタ分析を実施した(L.V. H. Meta-Analysis. Journal of Educational Statistics 1992; 17:279-296、Fisher RA. Statistical methods for research workers Oliver & Boyd, 193)。メタ分析に基づいて、マーカー446及び448について生じたp値は、それぞれ2.96×10−47及び8.11×10−49で、個々のp値よりも有意であった。したがって、本発明者らは、これらの代謝産物の低減がCRCの存在と相関していると強く確信して言うことができる。
材料及び方法
細胞株:SW620、MCF−7及びRAW264.7をATCC社から購入し、高グルコースDMEM、10%FBS中、37℃、5%CO2で培養した。
hPULCFAを含有する健常ヒト血清の酢酸エチル抽出物(180mLの血清、500mgの抽出物)を、ステップ勾配溶離;アセトニトリル−水 25:75〜100%アセトニトリルを用いる逆相フラッシュカラムクロマトグラフィーに供した。ここでは、他の同様の抽出法を使用してもよく、精製及び/又は富化を、例えば、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)に限定されないが、他のクロマトグラフィーアプローチを使用して実施してもよいことに留意されたい。フラッシュカラム画分を収集し、LC/MS及びMS/MSによって分析した。CRCバイオマーカーを含有する画分をプールした(12.5mg)。APCI源が装着されたABI社製QSTAR(登録商標)XL質量分析計を負ネガティブモードで使用するHPLC(HP 1100、Agilent Technologies社製 Hypersil(商標) ODS 5μm、125×4mmカラム)接続飛行時間型質量分析に試料を供することによって、画分をhPULCFAについてモニターした。いかなる同等の質量分析計を使用してもよい。フルスキャンモードにおけるスキャン型は、蓄積時間1.0000秒、質量範囲50〜1500Da、及び継続時間55分の飛行時間(TOF)であった。ソースパラメーターは次の通りであった:イオン源ガス1(GS1)80;イオン源ガス2(GS2)10;カーテンガス(CUR)30;ネブライザー電流(NC)−3.0;温度400℃;クラスタ分離電位(DP)−60;集束電圧(FP)−265;クラスタ分離電位2(DP2)−15。MS/MSモードにおいて、スキャン型は生成物イオンであり、蓄積時間は1.0000秒であり、スキャン範囲は50〜650Daであり、継続時間は55分であった。ソースパラメーターはすべて上記と同じであり、−35Vの衝突エネルギー(CE)及び5psiの衝突ガス(CID、窒素)を用いた。
hPULCFAの生物学的活性は、A).種々の細胞ベースシステムを使用し、hPULCFA富化抽出物の活性をhPULCFAが枯渇した抽出物と比べて評価すること、並びにB).特異的なhPULCFAを合成し、その活性を決定することによって決定した。
構造:
LCMS純度 98.7%
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Claims (107)
- 式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項1に記載の化合物。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項2に記載の化合物。
- 下記構造群:
- 下記構造の化合物D046−124:
- 対象において、結腸直腸がん(CRC)を治療又は予防するのに十分な量で、式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を投与するステップを含む、前記対象においてCRCを治療又は予防する方法。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項6に記載の方法。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項7に記載の方法。
- 化合物が下記構造群:
- 化合物が下記構造のD046−124:
- 対象において、腫瘍の成長を阻害するのに十分な量で、式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を投与するステップを含む、前記対象において腫瘍成長を阻害する方法。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項11に記載の方法。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項12に記載の方法。
- 化合物が下記構造群:
- 化合物が下記構造のD046−124:
- 対象において、前記対象において胃腸(GI)障害を治療、予防又は緩和するのに十分な量で、式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を投与するステップを含む、前記対象において前記GI障害を治療又は予防する方法。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項16に記載の方法。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項17に記載の方法。
- 化合物が下記構造群:
- 化合物が下記構造のD046−124:
- それを必要とする対象において、炎症及び/又は炎症に関係する障害を予防するのに有効な量で、式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を投与するステップを含む、前記対象において前記炎症及び/又は炎症に関係する障害を治療又は予防する方法。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項21に記載の方法。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項22に記載の方法。
- 化合物が下記構造群:
- 化合物が下記構造のD046−124:
- 対象において水酸化多価不飽和超長鎖脂肪酸(hPULCFA)欠乏障害(hPDD)を治療又は予防するのに十分な量で、式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を投与するステップを含む、前記対象においてhPDDを治療又は予防する方法。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項26に記載の方法。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項27に記載の方法。
- 化合物が下記構造群:
- 化合物が下記構造のD046−124:
- 投与される化合物の量が、hPULCFAレベルを上昇させ又は修復するのに有効なものである、請求項26〜30のいずれかに記載の方法。
- a)対象由来の試料を分析して、前記試料中の式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
の量を定量するステップと、
b)前記対象試料中の定量された前記化合物の量を、1又は2以上の標準試料中の対応する前記化合物の量と比較して、前記対象試料中の前記化合物の量における増加又は減少の有無を決定するステップと、
c)前記増加又は減少を、前記対象のCRC健康状態若しくは健康状態における変化を診断するために、又は前記対象においてCRC若しくはCRCのリスクを診断するために使用するステップと
を含む、前記対象のCRC健康状態若しくは健康状態における変化を診断するための、又は前記対象においてCRC若しくはCRCのリスクを診断するための方法。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項32に記載の方法。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項33に記載の方法。
- 化合物が下記構造群:
- 試料が、対象由来の血液試料であり、ステップa)において、化合物についての正確な質量強度データを得るために、質量分析によって分析され、前記正確な質量強度データが、ステップb)において正確な質量強度における増加又は減少を特定するために、1又は2以上の標準試料から得られた対応する正確な質量強度データと比較される、請求項32に記載の方法。
- 試料が、対象由来の血液試料であり、ステップa)において、タンデム質量分析、NMR又はELISAによって分析される、請求項32に記載の方法。
- a)対象由来の試料を分析して、前記試料中の式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
の量を定量するステップと、
b)前記対象試料中の定量された前記化合物の量を、1又は2以上の標準試料中の対応する前記化合物の量と比較して、前記対象試料中の前記化合物の量における増加又は減少の有無を決定するステップと、
c)前記増加又は減少を、前記対象においてhPDDを診断するために使用するステップと
を含む、前記対象においてhPULCFA欠乏障害(hPDD)を診断する方法。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項38に記載の方法。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項39に記載の方法。
- 化合物が下記構造群:
- 試料が、対象由来の血液試料であり、ステップa)において、化合物についての正確な質量強度データを得るために、質量分析によって分析され、前記正確な質量強度データが、ステップb)において、正確な質量強度における増加又は減少を特定するために、1又は2以上の標準試料から得られた対応する正確な質量強度データと比較される、請求項38に記載の方法。
- 試料が、対象由来の血液試料であり、ステップa)において、タンデム質量分析、NMR又はELISAによって分析される、請求項38に記載の方法。
- a)対象由来の試料を分析して、前記試料中の式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
の量を定量するステップと、
b)前記対象試料中の定量された前記化合物の量を、1又は2以上の標準試料中の対応する前記化合物の量と比較して、前記対象試料中の前記化合物の量における増加又は減少の有無を決定するステップと、
c)前記増加又は減少を、前記対象において炎症又は炎症性疾患を診断するために使用するステップと
を含む、炎症又は炎症性疾患を診断する方法。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項44に記載の方法。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項45に記載の方法。
- 化合物が下記構造群:
- 試料が、対象由来の血液試料であり、ステップa)において、化合物についての正確な質量強度データを得るために、質量分析によって分析され、前記正確な質量強度データが、ステップb)において、正確な質量強度における増加又は減少を特定するために、1又は2以上の標準試料から得られた対応する正確な質量強度データと比較される、請求項44に記載の方法。
- 試料が、対象由来の血液試料であり、ステップa)において、タンデム質量分析、NMR又はELISAによって分析される、請求項44に記載の方法。
- 炎症が、IBD、クローン病及び/若しくは結腸炎から選択されるGI障害によって引き起こされる、又は炎症性疾患がそれらを包含する、請求項44〜49のいずれかに記載の方法。
- a)抗炎症薬で治療される対象由来の試料を分析して、前記試料中の式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
の量を定量するステップと、
b)前記対象試料中の定量された前記化合物の量を、1又は2以上の標準試料中の対応する前記化合物の量と比較して、前記対象試料中の前記化合物の量における増加又は減少の有無を決定するステップとを含み、
ここで、前記対象試料中の前記化合物の量における増加又は減少が、前記対象において前記抗炎症薬によって引き起こされる効果を示す、
前記抗炎症薬の効果をモニターする方法。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項51に記載の方法。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項52に記載の方法。
- 化合物が下記構造群:
- 試料が、対象由来の血液試料であり、ステップa)において、化合物についての正確な質量強度データを得るために、質量分析によって分析され、前記正確な質量強度データが、ステップb)において、正確な質量強度における増加又は減少を特定するために、1又は2以上の標準試料から得られた対応する正確な質量強度データと比較される、請求項51に記載の方法。
- 試料が、対象由来の血液試料であり、ステップa)において、タンデム質量分析、NMR又はELISAによって分析される、請求項51に記載の方法。
- 抗炎症薬で治療される対象が、炎症及び/又は炎症性状態若しくは疾患を有する、請求項51〜56のいずれかに記載の方法。
- 検出剤で標識された、請求項1〜5のいずれかに記載の化合物。
- 検出剤で標識された、請求項1〜5のいずれかに記載の化合物又はそのいずれか2以上の混合物を含む基準物質。
- 検出剤が、インビトロ又はインビボにおける検出を可能にする、安定同位体若しくは放射性同位体、酵素、又はタンパク質である、請求項59に記載の基準物質。
- 請求項59又は60に記載の基準物質と、分析物を定量化するため、又は診断検査を実施するための取扱説明書とを含むキット。
- 薬学的に許容される担体又は賦形剤と、式(I)の化合物:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
とを含む医薬組成物。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項62に記載の組成物。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項63に記載の組成物。
- 化合物が下記構造群:
- 下記構造の化合物D046−124:
- 式(I):
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
によって定義されるとおりの2以上の化合物を含む組合せ。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項67に記載の組合せ。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項67に記載の組合せ。
- 2以上の化合物が下記構造群:
- 医薬組合せ、栄養補給剤、栄養補助食品又は機能性食品として製剤化される、請求項67に記載の組合せ。
- 対象において結腸直腸がん(CRC)を治療又は予防するための、下記構造:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を有する式(I)の化合物の使用。 - 対象において結腸直腸がん(CRC)を治療又は予防するための薬剤の製造のための、以下の式(I)で示される下記構造:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を有する式(I)の化合物の使用。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項72又は73に記載の使用。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項74に記載の使用。
- 化合物が下記構造群:
- 化合物が下記構造のD046−124:
- 対象において腫瘍の成長を阻害するための、下記構造:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を有する式(I)の化合物の使用。 - 対象において腫瘍の成長を阻害するための薬剤の製造のための、下記構造:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を有する式(I)の化合物の使用。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項78又は79に記載の使用。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項80に記載の使用。
- 化合物が下記構造群:
- 化合物が下記構造のD046−124:
- 対象において胃腸(GI)障害を治療又は予防するための、下記構造:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を有する式(I)の化合物の使用。 - 対象において胃腸(GI)障害を治療又は予防するための薬剤の製造のための、下記構造:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を有する式(I)の化合物の使用。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項84又は85に記載の使用。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項86に記載の使用。
- 化合物が下記構造群:
- 化合物が下記構造のD046−124:
- それを必要とする対象において炎症及び/又は炎症に関係する障害を治療又は予防するための、下記構造:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を有する式(I)の化合物の使用。 - それを必要とする対象において炎症及び/又は炎症に関係する障害を治療又は予防するための薬剤の製造のための、下記構造:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を有する式(I)の化合物の使用。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項90又は91に記載の使用。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項92に記載の使用。
- 化合物が下記構造群:
- 化合物が下記構造のD046−124:
- 対象において水酸化多価不飽和超長鎖脂肪酸(hPULCFA)欠乏障害(hPDD)を治療又は予防するための、下記構造:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を有する式(I)の化合物の使用。 - 対象において水酸化多価不飽和超長鎖脂肪酸(hPULCFA)欠乏障害(hPDD)を治療又は予防するための薬剤の製造のための、下記構造:
[式中、Rが、炭素鎖中に少なくとも1個の二重結合を含有するヒドロキシ置換C24−C40直鎖脂肪族基を表し、前記鎖中の少なくとも1個の炭素が、ヒドロキシ基で置換されている]
を有する式(I)の化合物の使用。 - RがC28−C36脂肪族基である、請求項96又は97に記載の使用。
- 鎖中の2、3又は4個の炭素がヒドロキシ基で置換されている、請求項98に記載の使用。
- 化合物が下記構造群:
- 化合物が下記構造のD046−124:
- 化合物が、hPULCFAレベルを上昇させ又は修復するのに有効な量で投与するためのものである、請求項96〜101のいずれかに記載の使用。
-
- 化合物D046−124:
の合成における、
- 化合物D046−124:
を調製するための方法であって、
(i)式(II)の化合物:
と式(III)の化合物:
とを、式(IV)の化合物:
を生成するための条件下で反応させるステップと、
(ii)TBDPS基を除去して式(V)の化合物:
を生成するステップと、
(iii)前記式(V)の化合物と式(VI)の化合物:
とを、式(VII)の化合物:
を生成するための条件下で反応させるステップと、
(iv)前記式(VII)の化合物を触媒と、式(VIII)の化合物:
(VIII)
を生成するための条件下で反応させるステップと、
(v)前記式(VIII)の化合物の末端エステル官能基を加水分解してカルボン酸基とし、それによって表題化合物を生成するステップと
を含む方法。 - 表題化合物を単離するための1又は2以上の精製ステップをさらに含む、請求項105に記載の方法。
- 式(VII)の化合物を、ステップ(iv)において、Pd触媒の存在下、炭酸カルシウムと1気圧の水素下で反応させて、三重結合を二重結合へ選択的に変換し、それによって式(VIII)の化合物を生成する、請求項104に記載の方法。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
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