JP2009538142A - メタロ−ベータ−ラクタマーゼの検出に使用されるプライマー - Google Patents

メタロ−ベータ−ラクタマーゼの検出に使用されるプライマー Download PDF

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Abstract

ある種のベータ−ラクタマーゼに典型的な核酸に特異的であるオリゴヌクレオチドを提供する。これらのプライマーは、試料中、特に、グラム陰性菌の臨床分離体中のファミリー特異的なベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸を同定するための方法に用いることができる。

Description

本出願は、参照により全体として本明細書中に援用される、２００６年５月２５日に出願された米国仮特許出願第６０／８０８，４４１号に対する利益を主張する。
ベータ−ラクム抗生物質（例えば、ペニシリン、セファロスポリン、及びカルバペネム）の使用及び過剰使用の不穏な結果は、新規なベータ−ラクタマーゼの開発及び普及となってきた。ベータ−ラクタマーゼは、抗生物質を不活性化するために、ペニシリン、セファロスポリン、カルバペネム、及び関連した化合物のベータ−ラクタム環を開環する酵素である。ベータ−ラクタマーゼの産生は、グラム陰性菌の中でベータ−ラクタム抗生物質への耐性の重要なメカニズムである。
幅広い範囲のセファロスポリンは、伝統的な広範囲のベータ−ラクタマーゼ、例えばＴＥＭ−１、２、及びＳＨＶ−１による分解に耐性となるように特異的に設計されてきた。幅広い範囲のセファロスポリンに対する微生物耐性は、幅広い範囲のベータ−ラクタマーゼ（ＥＳＢＬ）と呼ばれる伝統的なベータ−ラクタマーゼの変異形態の産生であった。ＥＳＢＬを産生するＥｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒｉａｃｅａｅは、最初に、１９８３年及び１９８４年に欧州で報告されたが、ＥＳＢＬは、現在、南極を除く万国で患者から回収した多様な属の起源で見出されている。ＥＳＢＬを産生する微生物の出現は、欧州により普及したいくつかの型（ＴＥＭ−３）、米国において普及した他の型（ＴＥＭ−１０、ＴＥＭ−１２及びＴＥＭ−２６）と共に幅広く変化し、他のものは世界中で見られる（ＳＨＶ−２及びＳＨＶ−５）。これらの酵素は、新規なセファロスポリン及びアズトレオナムを加水分解することができる。生化学及び分子技術を用いた試験により、多くのＥＳＢＬは、伝統的なＴＥＭ−１、ＴＥＭ−２又はＳＨＶ−１ベータ−ラクタマーゼの誘導体であり、いくつかは１以上の酸置換基によって親酵素とは異なっていることが指示されている。
さらに、カルバペネムを加水分解するベータ−ラクタマーゼは、ペニシリン相互作用タンパク質のレパートリーにおいてごく最近掲載されたベータ−ラクタマーゼのいくつかである。これらの酵素は、選択的にカルバペネムを加水分解することによって、最大限広範囲の抗菌活性を有する−ラクタム種であるカルバペネムに対する耐性を与えることに関与する（Ｒａｓｍｕｓｓｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ａｇｅｎｔｓ ａｎｄ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ，４７（２）：２２３−２３２（Ｆｅｂ．１９９７））。分子レベルでは、これらの酵素は、活性部位にセリンを有するベータ−ラクタマーゼのＡ類群又は唯一同定されたメタロ−ベータ−ラクタマーゼを表すＢ類酵素に属し得る（Ａｍｂｌｅｒ，Ｐｈｉｌｏｓ．Ｔｒａｎｓ．Ｒ．Ｓｏｃ．Ｌｏｎｄｏｎ Ｂｉｏｌ．，２８９：３２１−３３１（１９８０））。
メタロ−ベータ−ラクタマーゼは、アズトレオナムを除いて、大部分のベータ−ラクタムを加水分解する。したがって、高レベルでこれらの酵素を産生する多くの病原体は、オキシイミノセファロスポリン及びカルバペネムを含む大多数のベータ−ラクタム抗生物質に耐性である。メタロ−ベータ−ラクタマーゼは、セリンベータ−ラクタマーゼと比較して独特であり、それは、これらの酵素が基質の加水分解に金属イオン亜鉛を必要とするからである（Ｃｒｉｃｃｏ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｈａｒｍ．Ｄｅｓｉｇｎ，５：９１５−９２７（１９９９））。
組み込まれたメタロ−ベータ−ラクタマーゼの最初の報告には、１９８８年に日本特許から得られたＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ分離体が記載されていた（Ｗａｔａｎａｂｅ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．，３５：１４７−１５１（１９９１））。それ以来、メタロ−ベータ−ラクタマーゼをコードする可動遺伝因子の出現が、世界中に分布した多くの種類のグラム陰性菌（例えば、Ｓｅｒｒａｔｉａ ｍａｒｃｅｓｃｅｎｓ、Ｅ．ｃｏｌｉ、Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ、及びＡｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｓｐｐ．）を含むようにＰ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａを超えて拡張してきた（Ｗａｌｓｈ ｅｔ ａｌ．，Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｒｅｖ．，７５：３０６−３２５（２００５））。これらの種類の分離体を報告した領域には、アジア及び欧州のいくつかの国；ブラジル、カナダ、米国を含むアメリカ；及びオーストラリアが含まれる（Ｗａｌｓｈ ｅｔ ａｌ．，Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｒｅｖ．，７５：３０６−３２５（２００５））。例えば、Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａによるメタロ−ベータ−ラクタマーゼの獲得がこの病原体によって引き起こされる感染に対する治療の少ない利用可能な意見を減少させるために、これらのデータは妨害された。さらに、メタロ−ベータ−ラクタマーゼが発現される遺伝因子の可動性は、他のグラム陰性病原体に広がるこの耐性機構の可能性を増加させる（Ｗａｌｓｈ ｅｔ ａｌ．，Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｒｅｖ．，７５：３０６−３２５（２００５））。
ベータ−ラクタマーゼをコードする遺伝子は、多くの場合、アミノグリコシド、テトラサイクリン、スルホンアミド、トリメトプリム、及びクロラムフェニコールを含む他の抗生物質類に耐性な遺伝子も含む大型プラスミドに配置されることが特に関心がある。さらに、複数のメタロ−ベータ−ラクタマーゼを産生する、病原体に対する傾向が高まっている。これらの開発物は、広範囲なグラム陰性属全体で起こり、抗生物質に耐性なメカニズムの増加している複雑なレパートリーの共通のグラム陰性病原体それ自体が有用である最近の進化的発生を示す。臨床的には、これは、感染した患者に対する効果的な治療を同定することの困難さを増加させる。
したがって、例えば、臨床分離体又は試料に存在する可能性があるベータ−ラクタマーゼのタイプを迅速かつ正確に同定し得る技術が必要である。これは、細菌感染を治療するのに必要な抗生物質の選択において重要な意味合いを含む。
本発明は、ある種のベータ−ラクタマーゼ酵素（典型的には、コードする遺伝子）に典型的な核酸に特異的であるオリゴヌクレオチドプライマーの使用に関する。より具体的には、本発明は、試料、特にグラム陰性菌の臨床分離体中のファミリー特異的なベータ−ラクタマーゼ核酸（典型的には、遺伝子）を同定するためのプライマーを使用する。本発明の特定のプライマーは、配列番号１〜１０に記載されるプライマー配列を含む。本明細書中で使用するとき、ベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸は、遺伝子又はその一部を含む。「遺伝子」とは、本明細書中で使用するとき、ペプチド（例えば、ポリペプチド及び／又はタンパク質）の産生に関与する核酸（例えば、ＤＮＡ分子）のセグメント又は断片である。遺伝子は、コーディング領域（即ち、調節要素）並びに個々のコーディングセグメント（エクソン）間に介在している配列（イントロン、例えば、非コーディング領域）に先行する（上流）及び続く（下流）領域を含むことができる。用語「コーディング領域」とは、本明細書においては幅広く使用され、ＲＮＡに転写され得る領域を意味し、転写されたＲＮＡは、必ずしも必要ではないが、さらに、プロセッシングされたｍＲＮＡを生じ得る。
さらに、臨床試料に存在するベータ−ラクタマーゼを同定する方法が提供される。好ましくは、用意される臨床試料は、ベータ−ラクタム抗生物質に耐性を有するグラム陰性菌として特徴付けられる。この方法は、オリゴヌクレオチドプライマーの対を用意すること（ここで、この対の１つのプライマーはセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーはアンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の異なる部分に相補的である）；前記プライマーをベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせること；同時に、各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを伸長して、各プライマーにアニーリングされた鎖に相補的な伸長産物を合成すること（ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は各対の他のプライマーに対する伸長産物の合成用の鋳型として利用する）；増幅産物を分離すること；及び、ベータ−ラクタマーゼ遺伝子のタイプに典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析することを含む。
上述される方法は、メタロ−ベータ−ラクタマーゼのＩＭＰファミリー、及びメタロ−ベータ−ラクタマーゼのＶＩＭファミリーの核酸に特異的であるオリゴヌクレオチドプライマーを使用することができる。使用され得るプライマーには、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ、Ｓｅｒｒａｔｉａ ｍａｒｃｅｓｃｅｎｓ、Ｅ．ｃｏｌｉ、Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｓｐｐ．、Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ ｃｌｏａｃａｅ、Ｃｉｔｒｏｂａｃｔｅｒ ｆｒｅｕｎｄｉｉ、Ｍｏｒｇａｎｅｌｌａ ｍｏｒｇａｎｉｉ、Ｈａｆｎｉａ ａｌｖｅｉ又は外来ＤＮＡを受け入れることができる任意の他のグラム陰性微生物由来のメタロ−ベータ−ラクタマーゼの核酸に特異的であるものが含まれる。
本発明における使用に適切なオリゴヌクレオチドプライマーには、ＩＭＰ−ファミリー、例えば、ＩＭＰ−１、ＩＭＰ−２、ＩＭＰ−４、ＩＭＰ−５、ＩＭＰ−６、ＩＭＰ−７、ＩＭＰ−８、ＩＭＰ−９、ＩＭＰ−１０、ＩＭＰ−１１、ＩＭＰ−１３、ＩＭＰ−１８、ＩＭＰ−１９、及びＩＭＰ−２１と指定されるもののメタロ−ベータ−ラクタマーゼの核酸に特異的であるプライマーが含まれる。本発明における使用に適切な他のオリゴヌクレオチドプライマーは、メタロ−ベータ−ラクタマーゼのＶＩＭファミリーの核酸に特異的であるプライマーが含まれる。現在、メタロ−ベータ−ラクタマーゼのＶＩＭファミリーは、非常に関連付けられ、ＶＩＭ型メタロ−ベータ−ラクタマーゼに特異的である本発明のプライマーは、全部ではないが、殆どのＶＩＭ遺伝子を同定すると考えられている。当該技術分野において、現在知られているＶＩＭ−ファミリーベータ−ラクタマーゼは、ＶＩＭ−１〜ＶＩＭ−１０、ＶＩＭ−１１Ａ、及びＶＩＭ−１１Ｂとして指定されたものを含む。
本発明は、さらに、試料中のベータ−ラクタマーゼ、例えばメタロ−ベータ−ラクタマーゼを検出及び／又は同定するための診断キットに関する。この検出及び／又は同定は、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって実行されてもよい。このようなキットは、対象とするベータ−ラクタマーゼ核酸、例えばベータ−ラクタマーゼのＩＭＰファミリー及びベータ−ラクタマーゼのＶＩＭファミリーにハイブリダイズすることができる少なくとも１つのプライマー；正及び負の対照、及び対象とするベータ−ラクタマーゼ核酸を同定するためのプロトコールを包装し、含み、別々に包装されたものを含んでもよい。プライマー（複数）は、配列番号１〜１０からなる群から選択されてもよい。
本発明のプライマーを提供する。
本発明は、試料（例えば、グラム陰性菌の臨床分離体）中のファミリー特異的なベータ−ラクタマーゼ核酸（例えば、それをコードする遺伝子の少なくともあるセグメント）に特徴的である核酸の検出に関する。具体的には、本発明は、独特のプライマー及びポリメラーゼ連鎖反応を用いてベータ−ラクタマーゼ核酸（好ましくは、遺伝子又は遺伝子の少なくともあるセグメント）の検出に関する。本発明のプライマー及び方法を用いて、例えば、ＩＭＰファミリー及びＶＩＭファミリーに属するメタロ−ベータ−ラクタマーゼが同定され得る。
本発明のプライマー及び方法は、種々の目的、例えば、外来ＤＮＡを受け入れることができる任意のグラム陰性微生物の中で、カルバペネムに加えて、第３世代のセファロスポリンに対する耐性に関与した初代ベータ−ラクタマーゼ（単数又は複数）の同定に有用である。このようなグラム陰性菌には、限定されないが、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ（Ｗａｌｓｈ ｅｔ ａｌ．，Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｒｅｖｉｅｗｓ，１８（２）：３０６−３２５（２００５）；Ｐａｔｒｉｃｅ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．，３７（５）：９６２−９６９（１９９３））；並びにＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ及びＫｌｅｂｓｉｅｌｌａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ（Ｔｈｏｍｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．，３６（９）：１８７７−１８８２（１９９２））が含まれる。ベータ−ラクタマーゼの他の供給源には、例えば、広範囲のＥｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｐｐ．、Ｃｉｔｒｏｂａｃｔｅｒ ｆｒｅｕｎｄｉｉ、Ｍｏｒｇａｎｅｌｌａ ｍｏｒｇａｎｉｉ、Ｐｒｏｖｉｄｅｎｃｉａ ｓｐｐ．、及びＳｅｒｒａｔｉａ ｍａｒｃｅｓｃｅｎｓ（Ｊｏｎｅｓ，Ｄｉａｇ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓｅａｓｅ．，３１（３）：４６１−４６６（１９９８））が含まれる。追加のベータ−ラクタマーゼ遺伝子供給源には、Ｐｒｏｔｅｕｓ ｍｉｒａｂｉｌｉｓ（Ｂｒｅｔ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．，４２（５）：１１１０−１１１４（１９９８））；Ｙｅｒｓｉｎｉａ ｅｎｔｅｒｏｃｏｌｉｔｉｃａ（Ｂａｒｎａｕｄ ｅｔ ａｌ．，ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｌｅｔｔｅｒｓ，１４８（１）：１５−２０（１９９７））；及びＫｌｅｂｓｉｅｌｌａ ｏｘｙｔｏｃａ（Ｍａｒｃｈｅｓｅ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．，４２（２）：４６４−４６７（１９９８））が挙げられる。
本発明の方法は、新規なプライマーを用いて、ポリメラーゼ連鎖反応による配列増幅法（ＰＣＲ）の使用を伴う。米国特許第４，６８３，１９５号（Ｍｕｌｌｉｓら）には、核酸の増幅、検出、及び／又はクローニングのためのプロセスが記載されている。好ましくは、この増幅法は、モル過剰のオリゴヌクレオチドプライマー対を用いて、細菌、特にグラム陰性菌から対象とする核酸（典型的には、ＤＮＡ）を含む試料の処置に関し、対象とする核酸を含む試料を加熱し、２つの一本鎖の相補性核酸鎖を得ること、これらの核酸鎖を含む試料にプライマーを添加すること、ハイブリダイゼーションを可能にする適切な温度条件下で特定の鎖に各プライマーをアニーリングさせること、各プライマーを伸長するために、モル過剰のヌクレオチド三リン酸及びポリメラーゼを与えて、所望の核酸の増幅に用いることができる相補的な伸長産物を形成すること、増幅した核酸を検出すること、及び、対象とする特異的なベータ−ラクタマーゼに特徴的であるサイズ特異的なアンプリコン（下記に示される）に対する増幅した核酸を分析することを含む。加熱、アニーリング、及び合成のこのプロセスは、何回も繰り返され、各サイクルに伴って、所望の核酸が大量に増加する。短期間に、容易に精製及び同定され得る特異的な核酸、例えばＤＮＡ分子を得ることができる。
オリゴヌクレオチドプライマーには、核酸のセンス鎖の少なくとも一部に実質的に相補的である１つのプライマー、及び核酸のアンチセンス鎖の少なくとも一部に実質的に相補的である１つのプライマーが含まれる。本明細書中で使用するとき、実質的に相補的であるとは、１以上のヌクレオチド塩基の変化が標的核酸にハイブリダイズするそれらの能力に影響を及ぼさないプライマーを指す。伸長産物を形成するプロセスは、好ましくは、各プライマーの３’末端からのアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーがアニーリングされている核酸鎖に相補的である伸長産物を合成することを伴い、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、他のプライマーに相補的な配列を含む。増幅産物は、好ましくは、ゲル電気泳動を用いたサイズ分画によって検出される。この方法の変形は、米国特許第４，６８３，１９５号（Ｓａｉｋｉら）に掲載されている。ポリメラーゼ連鎖反応による配列増幅法はまた、Ｓａｉｋｉ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３０，１３５０−１３５４（１９８５）及びＳａｉｋｉ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３２４，１６３−１６６（１９８６）に掲載されている。
「オリゴヌクレオチド」とは、本明細書中で使用するとき、任意の長さのヌクレオチド、リボヌクレオチド又はデオキシリボヌクレオチドの重合形態を指す。オリゴヌクレオチドなる用語は、特に、一次構造を指し、したがって、二本鎖及び一本鎖ＤＮＡ分子、並びに二本鎖及び一本鎖ＲＮＡ分子が含まれる。
「プライマー」とは、本明細書中で使用するとき、対象とする核酸の少なくとも一部に相補的であるオリゴヌクレオチドであり、核酸へのハイブリダイゼーション後に、ポリメラーゼ連鎖反応に対して開始点として利用されてもよい。用語「プライマー」又は「オリゴヌクレオチドプライマー」とは、本明細書中で使用するとき、さらに、対象とする核酸の少なくとも一部に高程度の核酸配列類似性を有するヌクレオチド配列を有するプライマーを指す。配列類似性の「高程度」とは、典型的には、少なくとも約８０％の核酸配列類似性、好ましくは少なくとも約９０％の核酸配列類似性を有するプライマーを指す。配列類似性は、例えば、ＧＣＧ ＦａｓｔＡ（Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ｇｒｏｕｐ，Ｍａｄｉｓｏｎ，Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ）、ＭａｃＶｅｃｔｏｒ ４．５（Ｋｏｄａｋ／ＩＢＩソフトウェアパッケージ）又は当該技術分野において知られている他の適切なシークエンシングプログラム若しくは方法などの配列技術を用いて測定することができる。
用語「相補体」及び「相補的」とは、本明細書中で使用するとき、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で特定の核酸分子にハイブリダイズすることができる核酸を意味する。ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件には、例えば、約５０℃〜約６５℃の温度、約１．５ミリモル濃度（ｍＭ）〜約２．０ｍＭの塩化マグネシウム（ＭｇＣｌ２）濃度が挙げられる。このようにして、特定のＤＮＡ分子は、典型的には、特定のＤＮＡ分子と核酸との間でハイブリダイゼーションが生じる場合、核酸に相補的である。ある種の条件下では、ハイブリダイゼーションは、ＤＮＡ分子及び核酸が完全には相補的ではないが、１以上の位置でミスマッチがある場合でさえも生じる場合がある。特定のＤＮＡ分子が核酸分子の全長にハイブリダイズする場合、特定のＤＮＡ分子は、典型的には、「全長の相補体」である。「相補的」とは、さらに、二本鎖の核酸分子において結合する水素を介して結合するプリン及びピリミジンの能力を指す。下記の塩基対は相補的である：グアニンとシトシン；アデニンとチミン；アデニンとウラシル。
本明細書中で使用するとき、用語「増幅された分子」、「増幅された断片」、及び「アンプリコン」とは、核酸及びその相補配列の少なくとも一部のコピーである核酸分子（典型的には、ＤＮＡ）を指す。このコピーは、核酸配列において、元々の分子及びその相補配列に対応する。アンプリコンは、広範囲な方法によって検出及び分析され得る。これらには、例えば、ゲル電気泳動、一本鎖ＤＮＡ 高次構造多型（ｓｉｎｇｌｅ ｓｔｒａｎｄ ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎａｌ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ：ＳＳＣＰ）、制限断片長多型（ｒｅｓｔｒｉｃｔｉｏｎ ｆｒａｇｍｅｎｔ ｌｅｎｇｔｈ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ：ＲＦＬＰ）、キャピラリーゾーン電気泳動（ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｚｏｎｅ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ：ＣＺＥ）などが含まれる。好ましくは、アンプリコンは、当業者に知られている技術に従って、ゲル電気泳動及び適切な大きさにしたマーカーを用いて検出することができ、したがって、ベータ−ラクタマーゼのタイプが同定される。
プライマーは、合成又は天然に生じるオリゴヌクレオチドであり、対象とするベータ−ラクタマーゼを含むＤＮＡ分子の領域に相補的である産物の合成を開始する点として作用し得る。プライマーには、ストリンジェントな条件下で、所定のベータ−ラクタマーゼの核酸分子の少なくとも１つの鎖の少なくとも一部にハイブリダイズすることができるヌクレオチドが含まれる。好ましくは、本発明のプライマーは、典型的には、少なくとも約１２ヌクレオチド、より好ましくは少なくとも約１５ヌクレオチドを有する。好ましくは、プライマーは、約３５未満のヌクレオチド、より好ましくは約２５未満のヌクレオチドを有する。プライマーは、約５０〜１３００塩基対のプライムされた産物を選択的に生じるように選択される。
場合により、本発明に従って使用されるプライマーは、標識成分を含む。この標識成分は、同位体標識、蛍光標識、ポリペプチド標識、及び色素放出化合物から選択され得る。標識成分は、典型的には、結合した標識を有するヌクレオチドを含むことによって、プライマーに取り込まれる。同位体標識には、好ましくは、ベータ、ガンマ又はアルファ放射体である化合物が含まれ、より好ましくは、同位体標識は、３２Ｐ、３５Ｓ、及び１２５Ｉの群から選択される。蛍光標識は、典型的には、高から低への電子状態を通過する際の可視線を発光する色素化合物であり、この場合、エネルギーの吸収及び発光の時間間隔は、相対的に短く、一般に、約１０−８〜約１０−３秒のオーダーである。利用可能な適切な蛍光化合物には、例えば、フルオロセイン及びローダミンが含まれる。本発明に従って利用可能な適切なポリペプチド標識には、抗原（例えば、ビオチン、ジゴキシゲニンなど）、及び酵素（例えば、セイヨウワサビ・ペルオキシダーゼ）が含まれる。色素放出化合物は、典型的には、ケミルミネッセンスシステムの成分の化学反応に起因して、吸収されたエネルギーの発光（典型的には、光）として定義されるケミルミネッセンスシステムが含まれ、光が酸素に関与する化学反応によって生じるオキシルミネッセンスが挙げられる。
ある種のベータ−ラクタマーゼに特異的であるこれらのプライマーの好ましい例は次のとおりであり、プライマーの記号表示の「Ｆ」は５’上流プライマーを指し、「Ｒ」は３’下流プライマーを指す。好ましいプライマーとして下記に列挙される１を超える上流プライマー及び１を超える下流プライマーを有するベータ−ラクタマーゼについては、種々の組合せを用いることができる。典型的には、本発明のプライマーを利用するハイブリダイゼーション条件には、例えば、約４０℃〜約６８℃のハイブリダイゼーション温度、約１．５ｍＭ〜約２．０ｍＭのＭｇＣｌ２濃度が挙げられる。より低いか又はより高い温度、及びより高濃度のＭｇＣｌ２を用いることができるが、これは、プライマーの特異性を下げる結果となる場合がある。
下記のプライマーは、ＩＭＰ−ファミリー及びＶＩＭ−ファミリー、即ち、ＩＭＰ−型及びＶＩＭ−型のベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸に特異的である（図１）。ベータ−ラクタマーゼの「型」は、ある意味ではベータ−ラクタマーゼの別の「型」とは異なってもよいことが理解される。しかしながら、いずれかのこのような相違にも関わらずに、ベータ−ラクタマーゼの両方の「型」は、典型的には、同じプライマーを用いて同定される。例えば、ＶＩＭ−１１Ａ（ＶＩＭ−１１−型ベータ−ラクタマーゼ）は、ＶＩＭ−１１Ｂ（別のＶＩＭ−１１−型ベータ−ラクタマーゼ）とは１個の変異により相違するが、ＶＩＭ−１１Ａベータ−ラクタマーゼに典型的な核酸に特異的であるプライマーはまた、ＶＩＭ−１１Ｂベータ−ラクタマーゼに典型的な核酸に特異的であるプライマーであってもよい（例えば、ＶＩＭ−型ベータ−ラクタマーゼＶＩＭ−１１Ａを同定するプライマーはまたＶＩＭ−型ベータ−ラクタマーゼＶＩＭ−１１Ｂを同定する）。
下記のプライマーは、ＩＭＰ−１−型、ＩＭＰ−４−型、ＩＭＰ−５−型、ＩＭＰ−６−型、ＩＭＰ−７−型、ＩＭＰ−９−型、ＩＭＰ−１０−型、及びＩＭＰ−１８−型のベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸に特異的である。
プライマー名：ＩＭＰ−１Ｆ
プライマー配列：５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）
プライマー名：ＩＭＰ−１Ｒ
プライマー配列：５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）
ＩＭＰ−１−型、ＩＭＰ−４−型、ＩＭＰ−５−型、ＩＭＰ−６−型、ＩＭＰ−７−型、ＩＭＰ−９−型、ＩＭＰ−１０−型、及び／又はＩＭＰ−１８−型のベータ−ラクタマーゼのいずれかを含むことが知られている試料に配列番号１及び配列番号２のプライマー配列を含むプライマー対を使用すると、典型的には、３２８塩基対のサイズ特異的なアンプリコンが得られる。
下記のプライマーは、ＩＭＰ−９−型、ＩＭＰ−１１−型、及びＩＭＰ−２１−型のベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸に特異的である。
プライマー名：ＩＭＰ９１１Ｆ
プライマー配列：５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）
プライマー名：ＩＭＰ９１１Ｒ
プライマー配列：５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）
ＩＭＰ−９−型、ＩＭＰ−１１−型、及び／又はＩＭＰ−２１−型のベータ−ラクタマーゼのいずれかを含むことが知られている試料に配列番号３及び配列番号４のプライマー配列を含むプライマー対を使用すると、典型的には、４０３塩基対のサイズ特異的なアンプリコンが見出される。
下記のプライマーは、ＩＭＰ−２−型、ＩＭＰ−８−型、ＩＭＰ−１３−型、及びＩＭＰ−１９−型のベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸に特異的である。
プライマー名：ＩＭＰ２８１３Ｆ
プライマー配列：５’−ＣＧＡＧＡＡＧＣＴＴＧＡＡＧＡＡＧＧＴ−３’（配列番号５）
プライマー名：ＩＭＰ２８１３Ｒ
プライマー配列：５’−ＧＣＴＧＴＣＧＣＴＡＴＧＧＡＡＡＴＧＴＧ−３’（配列番号６）
ＩＭＰ−２−型、ＩＭＰ−８−型、ＩＭＰ−１３−型、及び／又はＩＭＰ−１９−型のベータ−ラクタマーゼのいずれかを含むことが知られている試料に配列番号５及び配列番号６のプライマー配列を含むプライマー対を使用すると、典型的には、２２０塩基対のサイズ特異的なアンプリコンが得られる。
下記のプライマーは、ＩＭＰ−１８−型のベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸に特異的である。
プライマー名：ＩＭＰ１８ＳＥＱＦ
プライマー配列：５’−ＧＧＴＧＴＡＧＴＣＡＣＡＡＡＡＣＡＣＧＧ−３’（配列番号７）
プライマー名：ＩＭＰ１８ＳＷＱＲ
プライマー配列：５’−ＣＡＧＧＴＡＡＣＣＡＡＡＣＣＡＣＴＡＣＧ−３’（配列番号８）
ＩＭＰ−１８−型のベータ−ラクタマーゼのいずれかを含むことが知られている試料に配列番号７及び配列番号８のプライマー配列を含むプライマー対を使用すると、典型的には、３６４塩基対のサイズ特異的なアンプリコンが見出される。
上記プライマー（配列番号１〜配列番号８）は、現在知られている大部分（例えば、少なくとも約８３％）のＩＭＰ遺伝子を同定するものと考えられている。
下記のプライマーは、ベータ−ラクタマーゼ酵素のＶＩＭファミリーに典型的な核酸に特異的である。
プライマー名：ＶＩＭ１Ｆ
プライマー配列：５’−ＧＧＴＧＴＴＴＧＧＴＣＧＣＡＴＡＴＣＧＣ−３’（配列番号９）
プライマー名：ＶＩＭ１Ｒ
プライマー配列：５’−ＣＣＡＴＴＣＡＧＣＣＡＧＡＴＣＧＧＣＡＴＣ−３’（配列番号１０）
ＶＩＭ−型のベータ−ラクタマーゼのいずれかを含むことが知られている試料に配列番号９及び配列番号１０のプライマー配列を含むプライマー対を使用すると、典型的には、５０４塩基対のサイズ特異的なアンプリコンが見出される。
上記で記載される種々の他のプライマー又はそれらのプライマーの変異体はまた、本発明の方法に従って調製され、使用され得る。例えば、代替のプライマーは、高Ｇ／Ｃ含量（即ち、グアニン及びシトシン残基の割合）を有する領域を含むことが知られているか又は疑われる標的化されたベータ−ラクタマーゼに基づいて設計することができる。本明細書中で使用するとき、標的核酸中の「高Ｇ／Ｃ含量」は、典型的には、約６０％〜約９０％のグアニン及びシトシン残基の割合を有する領域が含まれる。したがって、調製したプライマーの変化は、例えば、プライマーのハイブリダイゼーション温度又はアニーリング温度、使用されるプライマーのサイズ、同定されるべき特異的な耐性遺伝子又は核酸の配列を変更する。よって、プライマー又はプライマー対のＧ／Ｃ含量の操作、例えば、増加又は減少は、本方法の検出感度を増加させるのに役立つ場合がある。
さらに、試料中の疑われる核酸に依存して、サイズを変更する本発明のプライマーが調製され得る。典型的には、本発明のプライマーは、長さにして約１２ヌクレオチド〜約３５ヌクレオチド、好ましくは長さにして約１５ヌクレオチド〜約２５ヌクレオチドである。本発明のオリゴヌクレオチドは、当該技術分野において知られている技術によって容易に合成することができる（例えば、Ｃｒｅａ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（Ｕ．Ｓ．Ａ．），７５：５７６５（１９７８）を参照されたい）。
一度プライマーが設計されると、それらの特異性は、下記の方法を用いて試験することができる。臨床対象の標的核酸に依存して、核酸鋳型は、耐性遺伝子を発現するか又は含むことが知られている細菌性対照株から調製される。この対照株は、本明細書中で使用するとき、「正の対照」核酸（典型的には、ＤＮＡ）を指す。さらに、「負の対照」核酸（典型的には、ＤＮＡ）は、対象とする標的遺伝子以外の耐性遺伝子を発現することが知られている１以上の細菌株から単離することができる。ポリメラーゼ連鎖反応を用いると、設計されたプライマーは、上述される検出方法において用いられ、正及び負の対照試料、及び対象とする耐性遺伝子を含むことが疑われる少なくとも１つの試験試料において用いられる。正及び負の対照は、効果的及び定性的な（又は、極めて定量的な）手段を提供し、それにより、試験臨床試料の対象とする遺伝子の有無を検証する。低い割合のプライマー対を用いた場合には、他のベータ−ラクタマーゼ遺伝子との可能な交差反応性が観察される場合があることは承知すべきである。しかしながら、任意の交差反応性の増幅産物のサイズ及び／又は強度は、非常に異なり、したがって、負の結果として容易に評価及び破棄され得る。
本発明はまた、例えばＰＣＲ分析によってファミリー特異的なベータ−ラクタマーゼ酵素を同定するためのキットに関する。本発明のキットは、典型的には、対象とするベータ−ラクタマーゼに特異的な１以上のプライマー対、１以上の正の対照、１以上の負の対照、及びポリメラーゼ連鎖反応を用いて対象とするベータ−ラクタマーゼを同定するためのプロトコールを含む。負の対照には、対象とするベータ−ラクタマーゼ以外の耐性ベータ−ラクタマーゼをコードする核酸（典型的には、ＤＮＡ）分子が含まれる。負の対照核酸は、裸の核酸（典型的には、ＤＮＡ）分子であるか又は細菌細胞に挿入されていてもよい。好ましくは、負の対照核酸は、二本鎖とされる；しかしながら、一本鎖にした核酸を使用してもよい。正の対照は、対象とするベータ−ラクタマーゼのファミリー由来のベータ−ラクタマーゼをコードする核酸（典型的には、ＤＮＡ）を含む。正の対象核酸は、裸の核酸分子であるか又は例えば細菌細胞に挿入されてもよい。好ましくは、正の対象核酸は、二本鎖とされる；しかしながら、一本鎖にした核酸を使用してもよい。典型的には、核酸は、細菌の溶解物から得られる。
したがって、本発明は、一般的な利用性を有するであろうファミリー特異的なベータ−ラクタマーゼを特徴付け及び同定のためのキットを提供する。好ましくは、このキットには、ポリメラーゼ（典型的には、ＤＮＡポリメラーゼ）酵素、例えばＴａｑポリメラーゼなどが含まれる。本発明のキットはまた、好ましくは、ベータ−ラクタマーゼ遺伝子又はその遺伝子の隣接領域に特異的な少なくとも１つのプライマー対を含む。ポリメラーゼ酵素と適合可能なバッファーシステムも含まれ、当該技術分野において周知である。場合により、少なくとも１つのプライマー対は、標識された成分、蛍光標識、ポリペプチド標識、及び色素放出化合物を含んでもよい。キットは、反応容器などの、例えばＰＣＲ分析に必要な１以上の更なる手段に加えて、さらに、少なくとも１つの内部試料対照を含むことができる。必要に応じて、細菌試料由来の核酸は単離され得て、次に、本発明の提供されたプライマーセットを用いてＰＣＲ分析に供されてもよい。
別の態様では、臨床試料、特にグラム陰性菌を含む臨床試料中のファミリー特異的なベータ−ラクタマーゼ酵素は、「マイクロチップ」検出法において本明細書に記載されたプライマーによって検出可能である。マイクロチップ検出法では、臨床試料に含まれる複数のベータ−ラクタマーゼの核酸、例えば遺伝子、ヒト介入のための最小要件を用いて検出可能である。マイクロエレクトロニクス産業から借用した技術は、特に、これらの末端に適している。例えば、マイクロマシーン及びホトリソグラフィー手法は、１つのチップ基材上で複数の並行した微視的規模の成分を生成することができる。材料を大量生産することができ、再現性は優れている。微視的規模のサイズは、材料の必要性を最小にする。したがって、ヒトの操作は、微視的規模で複数の本発明のプライマーを固相化することができるマイクロチップ型表面を設計することによって最小化することができる。
マイクロチップ検出法は、一般に、大規模のハイブリダイゼーションなどの様々な応用に用いることができる、例えば、表面、典型的にはガラス上のオリゴヌクレオチドの高密度のアレイの形成を含む（Ｒｏｔｈ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｅｎｇ．，１：２６５−２９７（１９９９））。この方法を用いて、表面上で直接的に合成若しくはプリントする、標的としての２つのタイプの核酸を用いる応用、又は一本鎖にしたｃＤＮＡの共有若しくは非共有結合が知られている。
マイクロチップ検出の方法の１つによれば、短鎖オリゴヌクレオチドのアレイは、固相化学合成において一般に知られている方法を用いて、表面上で直接的に合成することができる。これは、一般に、大部分のアレイをマスクし、マスクされていない部分を活性化し、アレイの活性化したセグメントの５’−ヒドロキシ基へのカップリングを生成するためのホスホルアミダイトを添加するか又はインクジェットプリンティング技術を用いて表面上でアレイを直接プリントすることによって達成される。
あるいは、ｃＤＮＡアレイなどのより長い配列の生成に関しては、表面に分子を接着させるためのスポッティング法を用いることができる。この方法では、例えば、配列は、クローンから作られ、精製され、場合により増幅される。次に、これらの配列は、ポリリジンで表面を被覆することによって、又は陽イオン性にするためにアミノシランで化学的に処理することによってガラス表面に非共有結合させる。この方法による配列の接着は、一般に、非特異的であり、分子によって複数の接着部位を伴ってもよい。表面への配列の接着について知られている更なる方法は、非対象ＰＣＲによって生成されたアミノ修飾されたｃＤＮＡを水素化ホウ素ナトリウムを用いてシリル化ガラスに共有結合させることである（Ｒｏｔｈ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｅｎｇ．，１：２６５−２９７（１９９９））。
したがって、本発明の目的は、パラレルスクリーニング法を提供することであり、この場合、複数の連続反応は、複数のパラレル試料ウェルに検出されるべき複数の核酸鎖のそれぞれに対する１つの反応ウェル内で自動的に個別に行われる。これらの連続反応は、このデバイスの複数の各パラレルのレーン内で同時稼働において行われる。「パラレル」とは、本明細書中で使用するとき、作用が同一なウェルを意味する。「同時」とは、１つの予めプログラムされた稼働を意味する。同じ装置内で自動的に実行される複数の反応は、試料操作及び労務を最小にする。
このようにして、本発明は、マイクロチップ上の反応チャンバーである複数の反応ウェルを提供し、各反応ウェルは、個別化され各各アレイを含み、提供される基材、反応条件及びそのウェルでの反応の順番によって独自に特定されるベータ−ラクタマーゼ遺伝子を検出するために用いられる。したがって、このチップは、臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ遺伝子を同定するための方法として用いることができる。
本方法の目的及び利点は、下記の実施例によってさらに例証されるが、これらの実施例に引用された特定の材料及びその量、並びに他の条件及び詳細は、本発明を不当に制限するために構成されるべきではない。
Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ分離体由来のＩＭＰ−１８メタロ−ベータ−ラクタマーゼの同定
最近の報告に基づいて、インテグロンに挿入された可動遺伝子カセットで実行される取り込まれたメタロ−ベータ−ラクタマーゼの２つの主要なファミリーがある（Ｗａｌｓｈ ｅｔ ａｌ．，Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｒｅｖ．，１８：３０６−３２５（２００５））。本明細書中に開示されたものを含み、ＩＭＰメタロ−ベータ−ラクタマーゼの１８変異体、及びＶＩＭメタロ−ベータ−ラクタマーゼの１１変異体があり、（Ｗａｔａｎａｂｅ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．，３５：１４７−１５１（１９９１））、これには、ＶＩＭ−２（Ｌｏｌａｎｓ ｅｔ ａｈ，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．，４９：３５３８−３５４０（２００５））及びＶＩＭ７（Ｔｏｌｅｍａｎ ｅｔ ａｈ，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．，４８：３２９−３３２（２００４））を同定している、米国からのメタロ−ベータ−ラクタマーゼに関する２つの公開された報告がある。
この試験で調査されたカルバペネム耐性Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ分離体は、米国南西でのオートバイ事故の犠牲者の気管吸引物から回収された。メタロ−ベータ−ラクタマーゼのＩＭＰファミリーの新規なメンバーを生じることが分かった。
この分離体は、Ｐｈｏｅｎｉｘシステム（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｓｐａｒｋｓ，ＭＤ）によって同定された。抗生物質の感受性は、製造業者の推奨に従って、Ｄａｄｅ Ｂｅｈｒｉｎｇ ＭｉｃｒｏＳｃａｎ（Ｓａｃｒａｍｅｎｔｏ，ＣＡ）によって提供され、臨床研究所規格委員会（ＮＣＣＬＳ）の基準（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ ｆｏｒ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｓｔａｎｄａｒｄｓ，“Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ Ｓｔａｎｄａｒｄｓ ｆｏｒ Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｉｌｉｔｙ Ｔｅｓｔｉｎｇ，”Ｆｏｕｒｔｅｅｎｔｈ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎａｌ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ ２４，Ｗａｙｎｅ，ＰＡ（２００４））に従って解釈された調査用の乾燥パネルを用いたブロス微量希釈法によって測定した。データを表１に示す。
Figure 2009538142
メタロ−ベータ−ラクタマーゼ産生は、Ｅｔｅｓｔメタロ−ベータ−ラクタマーゼストリップ（ＡＢ ＢＩＯＤＩＳＫ，Ｓｏｌｎａ，Ｓｗｅｄｅｒｎ）を用いて表現型的に調査された。Ｅｔｅｓｔによって、ＥＤＴＡの存在下で、イミペネムのＭＩＣにおいて３２倍以上の減少があった（≧２５６から８μｇ／ｍｌ）。
ｂｌａＩＭＰ−１様遺伝子は、この遺伝子に隣接した遺伝子内部のＩＭＰ−１−ファミリー特異的プライマーを用いて、ＰｌａｔｉｎｕｍＴａｑ（ＨＩＦＩ）ポリメラーゼ（Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ，Ｒｏｃｈｅ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．，Ｂｒａｎｃｈｂｕｒｇ，Ｎ．Ｊ．）を含むＧｅｎｅ Ａｍｐ ＤＮＡ増幅キットにより、ＤＮＡ Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ４８０装置（Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ，Ｃｅｔｕｓ，Ｎｏｒｗａｌｋ，ＣＮ）で実行したＰＣＲ増幅によって検出された。反応混合物の組成物は下記の通りである：１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．３）、５０ｍＭ ＫＣｌ、２ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．２ｍＭの濃度の４種のデオキシヌクレオシド酸リン酸の各々、１．２ユニットのＰｌａｔｉｎｕｍ Ｔａｑ（ＨＩＦＩ）を総量４９μｌで含む。全量１μｌの試料溶解物を反応混合物に添加し、この混合物を素早く遠心し、５０μｌの鉱油をその表面上で層にした。ＰＣＲプログラムは、９６℃、１５秒の最初の変性段階、次に、９６℃、１５秒のＤＮＡ変性の２５サイクル、４２℃、１５秒のプライマーアニーリング、及び７２℃、２分のプライマー伸長からなる。７８１塩基対の全長産物の増幅は、上述されるＰＣＲによって得られた。フォワードプライマーは、５’−ＧＴＴＡＧＡＡＡＡＧＧＡＡＡＡＧＴＡＴＧ−３’であり、リバースプライマーは、５’−ＴＧＣＴＧＣＡＡＣＧＡＣＴＴＧＴＴＡＧ−３’であった。
ＰＣＲ産物は、少なくとも２つ別々の場合に生じ、ＡＢＩ Ｐｒｉｓｍ ３１００−Ａｖａｎｔ Ｇｅｎｅｔｉｃアナライザー（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ，ＣＡ）を用いて、自動化されたサイクルシークエンシングによって配列決定された。配列整列及び分析は、ＢＬＡＳＴプログラムを用いてオンラインで実行された（ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ）。配列翻訳は、ＤＮＡＳＩＳ分析プログラムを用いて行った（Ｈｉｔａｃｈｉ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ Ｃｏ．，Ｓａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ，ＣＡ）。この遺伝子に対するＧｅｎＢａｎｋ受入番号は、ＡＹ７８０６７４であり、この酵素は、ＩＭＰ−１８と称された。
ＩＭＰ−８及びＩＭＰ−１４は、ＩＭＰ−１８に最も密接に関連したベータ−ラクタマーゼであった。ＩＭＰ−１８は、ＩＭＰ−１４とは、２１個のアミノ酸で異なり、９１％同一性を示し、一方、ＩＭＰ−８は、２９個のアミノ酸で異なり、８８％の同一性を示した。したがって、ＩＭＰ−１８は、このファミリー群の異なる変異体を示す。
本明細書中に引用された全ての特許、特許書類、刊行物、ＡＴＣＣ寄託書、電気的に利用可能なマテリアル（例えば、ＧｅｎＢａｎｋアミノ酸及びヌクレオチド配列提出物）などの完全な開示は、各々が個別に援用されているかのように全体として参照により援用される。本発明に対する様々な変更及び代替は、本発明の範囲及び精神から逸脱することなしに、当業者に明確となる。本発明は、本明細書に記載された例示的な態様及び実施例によって過度に限定されることは意図されず、このような実施例及び態様は、続く、本明細書に記載された特許請求の範囲によってのみ限定されることが意図された本発明の範囲を用いてのみ、一例として示されることが理解されるべきである。
全ての表題は、読者の利便性のためにあり、そのように特定されなければ、表題に続くテキストの意味を限定するように使用されるべきではない。

Claims (39)

  1. ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択されるプライマー。
  2. ５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）；
    ５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択されるプライマー。
  3. ５’−ＣＧＡＧＡＡＧＣＴＴＧＡＡＧＡＡＧＧＴ−３’（配列番号５）；
    ５’−ＧＣＴＧＴＣＧＣＴＡＴＧＧＡＡＡＴＧＴＧ−３’（配列番号６）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択されるプライマー。
  4. ５’−ＧＧＴＧＴＡＧＴＣＡＣＡＡＡＡＣＡＣＧＧ−３’（配列番号７）；
    ５’−ＣＡＧＧＴＡＡＣＣＡＡＡＣＣＡＣＴＡＣＧ−３’（配列番号８）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択されるプライマー。
  5. ５’−ＧＧＴＧＴＴＴＧＧＴＣＧＣＡＴＡＴＣＧＣ−３’（配列番号９）；
    ５’−ＣＣＡＴＴＣＡＧＣＣＡＧＡＴＣＧＧＣＡＴＣ−３’（配列番号１０）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択されるプライマー。
  6. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を用意し；
    該臨床試料をＩＭＰ−１、ＩＭＰ−４、ＩＭＰ−５、ＩＭＰ−６、ＩＭＰ−７、ＩＭＰ−１０又はＩＭＰ−１８ベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸に特異的であるオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  7. プライマーが、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項６に記載の方法。
  8. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を用意し；
    該臨床試料を配列５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）又はその全長の相補鎖、及び５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）又はその全長の相補鎖と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  9. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を用意し；
    臨床試料をＩＭＰ−１１又はＩＭＰ−２１ベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸に特異的であるオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  10. プライマーが、
    ５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）；
    ５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）；及び
    その全長の相補鎖
    から選択される、請求項９に記載の方法。
  11. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を用意し；
    該臨床試料を配列−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）又はその全長の相補鎖、及び５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）又はその全長の相補鎖を有するオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  12. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を容易し；
    臨床試料をＩＭＰ−２、ＩＭＰ−８、ＩＭＰ−１３又はＩＭＰ−１９ベータ−ラクタマーゼ酵素によって典型的な核酸に特異的であるオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  13. プライマーが、
    ５’−ＣＧＡＧＡＡＧＣＴＴＧＡＡＧＡＡＧＧＴ−３’（配列番号５）；
    ５’−ＧＣＴＧＴＣＧＣＴＡＴＧＧＡＡＡＴＧＴＧ−３’（配列番号６）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項１２に記載の方法。
  14. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を容易し；
    臨床試料を配列５’−ＣＡＣＣＡＣＧＡＧＡＡＴＡＡＣＣ−３’（配列番号５）又はその全長の相補鎖、及び５’−ＧＣＣＴＴＧＡＡＣＴＣＧＡＣＣＧ−３’（配列番号６）又はその全長の相補鎖を有するオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  15. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を容易し；
    該臨床試料をＩＭＰ−１８ベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸に特異的であるオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  16. プライマーが、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；
    ５’−ＧＧＴＧＴＡＧＴＣＡＣＡＡＡＡＣＡＣＧＧ−３’（配列番号７）；
    ５’−ＣＡＧＧＴＡＡＣＣＡＡＡＣＣＡＣＴＡＣＧ−３’（配列番号８）；及び
    それらの全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項１５に記載の方法。
  17. プライマーが、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；及び
    それらの全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項１６に記載の方法。
  18. プライマーが、
    ５’−ＧＧＴＧＴＡＧＴＣＡＣＡＡＡＡＣＡＣＧＧ−３’（配列番号７）；
    ５’−ＣＡＧＧＴＡＡＣＣＡＡＡＣＣＡＣＴＡＣＧ−３’（配列番号８）；及び
    それらの全長の相補鎖
    からなる群から選択される請求項１に記載の方法。
  19. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を用意し；
    該臨床試料を５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）又はその全長の相補鎖；５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）又はその全長の相補鎖５’−ＧＧＴＧＴＡＧＴＣＡＣＡＡＡＡＣＡＣＧＧ−３’（配列番号７）又はその全長の相補鎖；及び５’−ＣＡＧＧＴＡＡＣＣＡＡＡＣＣＡＣＴＡＣＧ−３’（配列番号８）又はその全長の相補鎖からなる群から選択されるオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  20. プライマーが、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；及び
    それらの全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項１９に記載の方法。
  21. プライマーが、
    ５’−ＧＧＴＧＴＡＧＴＣＡＣＡＡＡＡＣＡＣＧＧ−３’（配列番号７）；
    ５’−ＣＡＧＧＴＡＡＣＣＡＡＡＣＣＡＣＴＡＣＧ−３’（配列番号８）；及び
    それらの全長の相補鎖から選択される、請求項１９に記載の方法。
  22. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を用意し；
    該臨床試料をＩＭＰ−９ベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸に特異的であるオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  23. プライマーが、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；
    ５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）；
    ５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）；及び
    それらの全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項２２に記載の方法。
  24. プライマーが、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；及び
    それらの全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項２３に記載の方法。
  25. プライマーが、
    ５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）；
    ５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）；及び
    それらの全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項２３に記載の方法。
  26. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を用意し；
    該臨床試料を５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）又はその全長の相補鎖；５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）又はその全長の相補鎖；５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）又はその全長の相補鎖；５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）又はその全長の相補鎖からなる群から選択されるオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物の合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  27. プライマーが、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；及び
    それらの全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項２６に記載の方法。
  28. プライマーが、
    ５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）；
    ５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項２６に記載の方法。
  29. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を用意し；
    該臨床試料をベータ−ラクタマーゼ酵素のＶＩＭ−ファミリーに典型的な核酸に特異的であるオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  30. プライマーが、
    ５’−ＧＧＴＧＴＴＴＧＧＴＣＧＣＡＴＡＴＣＧＣ−３’（配列番号９）；
    ５’−ＣＣＡＴＴＣＡＧＣＣＡＧＡＴＣＧＧＣＡＴＣ−３’（配列番号１０）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項１７に記載の方法。
  31. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を用意し；
    該臨床試料を配列５’−ＧＧＴＧＴＴＴＧＧＴＣＧＣＡＴＡＴＣＧＣ−３’（配列番号９）又はその全長の相補鎖、及び５’−ＣＣＡＴＴＣＡＧＣＣＡＧＡＴＣＧＧＣＡＴＣ−３’（配列番号１０）又はその全長の相補鎖を有するオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含む前記方法。
  32. 臨床試料中のベータ−ラクタマーゼ核酸を同定する方法であって、
    臨床試料を用意し；
    該臨床試料をベータ−ラクタマーゼ酵素に典型的な核酸に特異的であるオリゴヌクレオチドプライマーの対と接触させ、ここで、該対の１つのプライマーは、センス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり、各対のその他のプライマーは、アンチセンス鎖のベータ−ラクタマーゼ核酸の少なくとも一部に相補的であり；
    該プライマー（複数）をベータ−ラクタマーゼ核酸にアニーリングさせ；
    各プライマーの３’末端からアニーリングされたプライマーを同時に伸長して、各プライマーにアニーリングされた核酸鎖（複数）に相補的である伸長産物を合成し、ここで、ベータ−ラクタマーゼ核酸から分離後の各伸長産物は、各対のその他のプライマーのための伸長産物合成用の鋳型として用いられ；
    増幅した産物を分離し；及び
    ベータ−ラクタマーゼ核酸に典型的なサイズに対して分離した増幅産物を分析する
    ことを含み、ここで、前記プライマーが、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；
    ５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）；
    ５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）；
    ５’−ＣＧＡＧＡＡＧＣＴＴＧＡＡＧＡＡＧＧＴ−３’（配列番号５）；
    ５’−ＧＣＴＧＴＣＧＣＴＡＴＧＧＡＡＡＴＧＴＧ−３’（配列番号６）；
    ５’−ＧＧＴＧＴＡＧＴＣＡＣＡＡＡＡＣＡＣＧＧ−３’（配列番号７）；
    ５’−ＣＡＧＧＴＡＡＣＣＡＡＡＣＣＡＣＴＡＣＧ−３’（配列番号８）；
    ５’−ＧＧＴＧＴＴＴＧＧＴＣＧＣＡＴＡＴＣＧＣ−３’（配列番号９）；
    ５’−ＣＣＡＴＴＣＡＧＣＣＡＧＡＴＣＧＧＣＡＴＣ−３’（配列番号１０）；及び
    それらの全長の相補鎖
    からなる群から選択される前記方法。
  33. ＩＭＰファミリーベータ−ラクタマーゼ核酸を検出するための診断キットであって、
    （ａ）ベータ−ラクタマーゼ核酸にハイブリダイズすることができる少なくとも１つのプライマー対；
    （ｂ）少なくとも１つの正の対照及び少なくとも１つの負の対照；及び
    （ｃ）ベータ−ラクタマーゼ核酸を同定するためのプロトコール
    を含む、ここで、プライマーは、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；
    ５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）；
    ５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）；
    ５’−ＣＧＡＧＡＡＧＣＴＴＧＡＡＧＡＡＧＧＴ−３’（配列番号５）；
    ５’−ＧＣＴＧＴＣＧＣＴＡＴＧＧＡＡＡＴＧＴＧ−３’（配列番号６）；
    ５’−ＧＧＴＧＴＡＧＴＣＡＣＡＡＡＡＣＡＣＧＧ−３’（配列番号７）；
    ５’−ＣＡＧＧＴＡＡＣＣＡＡＡＣＣＡＣＴＡＣＧ−３’（配列番号８）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される前記診断キット。
  34. プライマーが、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項３３に記載の診断キット。
  35. プライマーが、
    ５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）；
    ５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項３３に記載の診断キット。
  36. プライマーが、
    ５’−ＣＧＡＧＡＡＧＣＴＴＧＡＡＧＡＡＧＧＴ−３’（配列番号５）；
    ５’−ＧＣＴＧＴＣＧＣＴＡＴＧＧＡＡＡＴＧＴＧ−３’（配列番号６）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項３３に記載の診断キット。
  37. プライマーが、
    ５’−ＧＧＴＧＴＡＧＴＣＡＣＡＡＡＡＣＡＣＧＧ−３’（配列番号７）；
    ５’−ＣＡＧＧＴＡＡＣＣＡＡＡＣＣＡＣＴＡＣＧ−３’（配列番号８）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される、請求項３３に記載の診断キット。
  38. ＶＩＭファミリーベータ−ラクタマーゼ核酸を検出するための診断キットであって、
    （ａ）ベータ−ラクタマーゼ核酸にハイブリダイズすることができる少なくとも１つのプライマー対；
    （ｂ）少なくとも１つの正の対照及び少なくとも１つの負の対照；及び
    （ｃ）ベータ−ラクタマーゼ核酸を同定するためのプロトコール
    を含み、ここで、プライマーは、
    ５’−ＧＧＴＧＴＴＴＧＧＴＣＧＣＡＴＡＴＣＧＣ−３’（配列番号９）；
    ５’−ＣＣＡＴＴＣＡＧＣＣＡＧＡＴＣＧＧＣＡＴＣ−３’（配列番号１０）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される前記診断キット。
  39. メタロ−ベータ−ラクタマーゼ核酸を検出するための診断キットであって、
    （ａ）ベータ−ラクタマーゼにハイブリダイズすることができる少なくとも１つのプライマー対；
    （ｂ）少なくとも１つの正の対照及び少なくとも１つの負の対照；及び
    （ｃ）ベータ−ラクタマーゼ核酸を同定するためのプロトコール、ここで、プライマーは、
    ５’−ＧＧＡＡＴＡＧＡＧＴＧＧＣＴＴＡＡＴＴＣ−３’（配列番号１）；
    ５’−ＣＡＡＣＣＡＧＴＴＴＴＧＣＣＴＴＡＣＣ−３’（配列番号２）；
    ５’−ＣＣＴＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＴＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号３）；
    ５’−ＧＴＡＡＧＣＴＴＣＡＡＧＡＧＣＧＡＣＧ−３’（配列番号４）；
    ５’−ＣＧＡＧＡＡＧＣＴＴＧＡＡＧＡＡＧＧＴ−３’（配列番号５）；
    ５’−ＧＣＴＧＴＣＧＣＴＡＴＧＧＡＡＡＴＧＴＧ−３’（配列番号６）；
    ５’−ＧＧＴＧＴＡＧＴＣＡＣＡＡＡＡＣＡＣＧＧ−３’（配列番号７）；
    ５’−ＣＡＧＧＴＡＡＣＣＡＡＡＣＣＡＣＴＡＣＧ−３’（配列番号８）；
    ５’−ＧＧＴＧＴＴＴＧＧＴＣＧＣＡＴＡＴＣＧＣ−３’（配列番号９）；
    ５’−ＣＣＡＴＴＣＡＧＣＣＡＧＡＴＣＧＧＣＡＴＣ−３’（配列番号１０）；及び
    その全長の相補鎖
    からなる群から選択される前記診断キット。
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