JP2009517078A - 幹細胞のホーミングおよび生着を改善する方法 - Google Patents

Abstract

細胞生着能を高める方法が提供される。この方法は、細胞集団を、細胞集団に変化をもたらすために十分な期間にわたって所定量のニコチンアミドにエクスビボまたはインビトロで供することを含み、それによって細胞生着能を高める。

Description

本発明は、移植された細胞のホーミング効率、保持効率および生着効率を改善するための方法に関連する。

骨髄移植（ＢＭＴ）は、骨髄から得られた多能性造血細胞を患者に移植する臨床的手法である。ＢＭＴは、悪性腫瘍、重症複合免疫不全症（ＳＣＩＤ）、先天的または遺伝的に明らかにされた造血異常、貧血、再生不良性貧血、白血病および大理石骨病をはじめとするいくつかの血液学的障害における優れた治療である。

原始的または多能性造血幹細胞は通常、骨髄に存在しているが、臍血は、移植可能な造血幹細胞／前駆細胞の別の機能的な供給源である（Ｇｌｕｃｋｍａｎ，Ｅ．他、１９８９、Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．、３２１：１１７４）。これらの原始的造血細胞のすべてがその表面ＣＤ３４抗原によって特定され得る。造血幹細胞は、２つの主要な経路の一方に沿って、すなわち、リンパ球系幹細胞または骨髄系幹細胞のいずれかに分化する。両者はさらに、それぞれのタイプの成熟した血液細胞のための前駆細胞に分化する。これらの前駆細胞は自己複製のための能力を失っており、また、定められた細胞系譜への分化が決定している。従って、リンパ球系幹細胞はＴ前駆細胞またはＢ前駆細胞に分化し、骨髄系幹細胞は、赤血球、好中球、好酸球、好塩基球、単球、マスト細胞および血小板のための前駆細胞に分化する。

定常状態条件のもとでは、造血幹細胞および造血前駆細胞の大部分が骨髄に存在しており、これらの細胞のごく僅かが末梢血において検出可能であるにすぎない。しかしながら、幹細胞は骨髄抑制剤および／または特定の造血増殖因子による処理によって末梢血内に動員させることができる。様々な研究により、宿主に注入された末梢血幹細胞（ＰＢＳＣ）が、骨髄由来の幹細胞および前駆細胞と比較したとき、生着について潜在的能力が高いことを示すことが明らかにされている。従って、化学療法、造血増殖因子、または、これらの様式の組合せによって動員されたＰＢＳＣが現在、自家移植および非自家移植の両方の状況で使用される［Ａｎｄｅｒｌｉｎｉ，Ｐ．およびＫｏｒｂｌｉｎｇ，Ｍ．（１９９７）、Ｓｔｅｍ．Ｃｅｌｌｓ、１５、９〜１７］。非自家移植の場合、幹細胞のドナーは健康な個体であり、幹細胞を血流内に動員するための手法は、最小限の不快を伴って達成しなければならない。この場合、造血増殖因子による幹細胞の動員は、抗成長性薬物（すなわち、シクロホスファミド）による動員よりも好まれる。

幹細胞および前駆細胞に加えて、より分化した細胞を、細胞機能不全または細胞死によって特徴づけられる特定の器官または組織の疾患または状態を治療するために、移植のために使用することができる。多くのそのような疾患について、現在の医学的治療または外科的手法は不十分であるか、または存在しないかのいずれかである。細胞治療が、これらの状態のための回復治療を提供するために、存在している細胞に取って代わり得るか、または、存在している細胞を強化することができる。移植のために好適である例示的な細胞タイプには、神経組織由来の細胞、肝細胞、筋細胞、網膜細胞、内分泌細胞、メラノサイト、ケラチノサイトおよび軟骨細胞が挙げられる。移植された細胞の生着により、組織機能が再確立に成功し得ることが、動物モデルおよびヒト研究の両方で示されている。従って、ニューロンを、例えば、パーキンソン病および他の神経変性疾患のために移植することができる。筋肉細胞（例えば、筋芽細胞など）を、例えば、虚血性の心臓の筋障害を治療するために移植することができる。小島細胞を、糖尿病、および／または、インスリンおよびグルカゴンに関連する他の疾患または状態を治療する移植することができる。分化した血液細胞（例えば、リンパ球および樹状細胞など）はまた、例えば、ＮＫ細胞による養子免疫治療のために移植することができる。

しかしながら、様々な研究では、移植された細胞（例えば、肝細胞および神経細胞など）の大部分が移植後に身体から除かれ、目標の器官または組織に局在化しないことが示されている（Ｄｅ Ｒｏｏｓ他、Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ、１９９７、６３：５１３〜１８；Ｇａｇａｎｄｅｅｐ他、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ、１９９９、６：７２９〜３６）。移植された細胞のホーミング、保持および生着を改善するための様々な努力（例えば、移植前におけるＣｏｎＡによる肝細胞の治療（Ｉｔｏ他、Ｍｕｓｃｌｅ Ｎｅｒｖｅ、１９９８、２１：２９１〜７）など）はこれまで、わずかに効果的であるにすぎない。従って、様々な努力が、移植のためのより多くの数の細胞を提供するために、新しく調製された細胞をプールおよび貯蔵するための方法に向けられている（例えば、米国特許第６７１３２４５号および同第６８２１７７９号（Ｋｏｏｐｍａｎｓ他）を参照のこと）。

移植後、細胞はその目標組織に向かって遊走するであろう。化学誘因物質（例えば、特定のサイトカイン（ＣＸＣＬ１〜ＣＸＣＬ１６およびＣＣＬ１〜ＣＣＬ２７）など）が、細胞をその目的に向かわせることを助ける。ストローマ細胞由来因子１α（ＳＤＦ−１α）（これはＣＸＣＬ１２とも呼ばれる）が、造血幹細胞および神経幹細胞を含めて、ＣＤ３４^＋細胞の強力な化学誘因物質であり（Ａｉｕｔｉ、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．、１９９７、１８５：１１１〜１２０）、発達期間中（ＭｃＧｒａｔｈ、Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．、１９９９、２１３：４４２〜４５６）および成人期の期間中（Ｉｍａｉ、Ｂｒ．Ｊ．Ｈａｅｍａｔｏｌ．、１９９９、１０６：９０５〜９１１）において多くの組織で広く発現する。この因子はまた、非幹細胞（例えば、Ｔリンパ球など）を化学的に誘引する。ＣＸＣケモカイン受容体４（ＣＸＣＲ４）はＳＤＦ−１αについての同族受容体であり、幹細胞上に発現する。近年の研究では、ＳＤＦ−１α／ＣＸＣＲ４が、障害時における幹細胞の分子的プログラムおよびホーミングを活性化する経路として関係している（Ｊａｉｍｅ Ｉｍｉｔｏｌａ他、Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ、２００４（Ｄｅｃｅｍｂｅｒ ２８）、１０１（５２）：１８１１７〜１８１２２）。

ＣＤ２６／ジペプチジルペプチダーゼＩＶ（ＤＰＰＩＶ）（ジペプチド（例えば、ＳＤＦ−１αなど）をプロリンまたはアラニンの後でポリペプチド鎖のＮ末端から切断する膜結合した細胞外ペプチダーゼ）は、造血細胞および他の細胞におけるその発現が分化および活性化によって調節される系譜非特異的な抗原である。ケモカインのタンパク質分解的切断が、細胞がケモカインによって誘因および／または活性化され得ることに関して関係している（Ｂａｇｇｉｏｌｉｎｉ，Ｍ．、１９９８、Ｎａｔｕｒｅ、３９２：５６５）。

いくつかの機能的研究では、ＣＤ２６／ＤＰＰＩＶがＴ細胞および造血細胞の遊走および動員において果たす役割が間接的に示される［Ｓｈｉｏｄａ他（１９９８）、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９５：６３３１］。ＣＤ３４^＋細胞に対する内因性ＣＤ２６／ＤＰＰＩＶ活性の阻害は、ＳＤＦ−１αに対するこれらの細胞の走化性応答を高めることが示された（Ｃｈｒｉｓｔｏｐｈｅｒｓｏｎ ＫＷ ２ｎｄ他、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２００４（Ａｕｇ １３）、３０５（５６８６）：１０００〜１００３；Ｃｈｒｉｓｔｏｐｈｅｒｓｏｎ ＫＷ ２ｎｄ、Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ、２００２（Ｄｅｃ １５）、１６９（１２）：７０００〜７００８）。その一方で、ＤＰＰＩＶを伴うＳＤＦ−１αのＮ末端短縮化によってでは、ＣＤ３４^＋臍血細胞は遊走を誘導しない。

ニコチンアミド（ＮＡ）（ナイアシン（ビタミンＢ３）のアミド形態）は、モノＡＤＰリボシルトランスフェラーゼ活性およびポリＡＤＰリボシルトランスフェラーゼ活性を有するＮＡＤ（＋）依存性酵素の塩基交換基質および強力な阻害剤である。ＡＤＰリボシル化は多様な生物学的プロセスの修飾に関係する（Ｃｏｒｄａ Ｄ、Ｄｉ Ｇｉｒｏｌａｍｏ Ｍ．２００３；２２（９）：１９５３−１９５８；Ｒａｎｋｉｎ ＰＷ他、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．１９８９；２６４：４３１２−４３１７；Ｂａｎａｓｉｋ Ｍ．他、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．１９９２；２６７：１５６９−１５７５；Ｕｅｄａ Ｋ，Ｈａｙａｉｓｈｉ Ｏ、Ａｎｎｕ Ｒｅｖ Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９８５；５４：７３−１００；Ｓｍｉｔｈ Ｓ．Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｓｃｉ．２００１；２６：１７４−１７９；Ｖｉｒａｇ Ｌ，Ｓｚａｂｏ Ｃ．Ｐｈａｒｍ．Ｒｅｖｉｅｗｓ．２００２；５４：３７５−４２９）。

モノＡＤＰリボシル化反応またはポリＡＤＰリボシル化反応に関わる内因性ＡＤＰリボシルトランスフェラーゼは、細胞のシグナル伝達に関与する様々な分子（例えば、コアヒストン（ｄｅ ｌａ Ｃｒｕｚ Ｘ、Ｌｏｉｓ Ｓ他、Ｂｉｏｅｓｓａｙｓ、２００５、２７（２）：１６４〜７５）、ヘテロ三量体ＧＴＰ結合（Ｇ）タンパク質のαサブユニット、小さいＧＴＰａｓｅのＲｈｏ、モノマーアクチンおよび伸長因子２（ＥＦ−２）など）を修飾する。これらの翻訳後修飾は、これらのタンパク質によって調節される細胞機能の活性化または不活性化を引き起こす（Ｌｕｐｉ Ｒ他、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ、２０００、２７５：９４１８〜９４２４；Ｌｕｐｉ Ｒ他、Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ．、２００２、３６７：１〜７；Ｙａｕ Ｌ他、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、２００３、２７０：１０１〜１１０）。

米国特許出願公開第２００４／０２４７５７４号は、骨髄への幹細胞ホーミングを改善すること、および、動員されたドナー幹細胞の数を増大させることの両方によって幹細胞移植物の生着効率を改善するためのＣＤ２６阻害剤の使用を教示する。この特許出願はＣＤ２６の表面発現のダウンレギュレーションを教示せず、むしろ、ＣＤ２６の触媒活性のダウンレギュレーションを教示する。具体的には、米国特許出願公開第２００４／０２４７５７４号は、ＣＤ２６の表面発現をダウンレギュレーションするためのニコチンアミドの使用を教示していない。

ＰＣＴ出願ＩＬ０３／０００６４は、幹細胞および前駆細胞をエクスビボ拡大する際の分化を阻害するための、ニコチンアミド、および、ＣＤ３８の他の阻害剤の使用を開示する。しかしながら、ＰＣＴ ＩＬ０３／０００６４は、細胞のホーミング、保持および生着を高めるためのニコチンアミドの投与、または、３日以下の短い間隔についての幹細胞および前駆細胞へのニコチンアミドの投与、非幹細胞集団および非前駆細胞集団（すなわち、分化決定された細胞集団）へのニコチンアミドの投与、または、細胞増殖のための条件を与えることなくニコチンアミドを投与することを教示していない。

従って、現在利用可能な治療において記載される欠点を克服し、移植された細胞の細胞遊走能、細胞保持能および細胞ホーミング能を高めるための組成物および方法を提供することが、本発明の目的である。

本発明の１つの態様によれば、細胞生着能を高める方法が提供され、この場合、この方法は、細胞集団を、細胞ホーミング能および細胞生着能を高めるために十分な期間にわたって所定量のニコチンアミドにエクスビボまたはインビトロで供することを含み、下記の少なくとも１つによってさらに特徴づけられる：
（ｉ）細胞集団が造血幹細胞および／または造血前駆細胞の集団であり、期間が、幹細胞の拡大のためには不十分であるように選択されるか、あるいは、幹細胞および／または前駆細胞の拡大のためには不十分な条件のもとで選択される；
（ｉｉ）ニコチンアミドの量および期間が、幹細胞および／または前駆細胞の拡大のためではなく、細胞集団の細胞によるＣＤ２６の発現をダウンレギュレーションするために十分であるように選択される；
（ｉｉｉ）細胞集団が、造血細胞、造血幹細胞、単核細胞、初期肝臓前駆細胞、分化決定された前駆細胞、非造血幹細胞および非造血前駆細胞、または、胚性幹細胞および胚性前駆細胞を含まない；
（ｉｖ）供することは栄養物の非存在下で行われる；
（ｖ）供することはサイトカインの非存在下で行われる；
（ｖｉ）供することはＦＬＴ−３リガンドの非存在下で行われる；
（ｖｉｉ）供することは幹細胞因子（ＳＣＦ）の非存在下で行われる；
（ｖｉｉｉ）供することは顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）の非存在下で行われる；
（ｉｘ）供することは初期作用サイトカインの非存在下で行われる；
（ｘ）供することは後期作用サイトカインの非存在下で行われる。

本発明の別の態様によれば、細胞を対象に移植する方法が提供され、この場合、この方法は、（ａ）そのような細胞を含む細胞集団を、細胞におけるホーミングおよび生着を高めるために十分な期間にわたって所定量のニコチンアミドにエクスビボで供すること、ただし、この方法は、下記の少なくとも１つによってさらに特徴づけられる：
（ｉ）細胞集団が造血幹細胞および／または造血前駆細胞の集団であり、期間が、幹細胞の拡大のためには不十分であるように選択されるか、あるいは、幹細胞および／または前駆細胞の拡大のためには不十分な条件のもとで選択される；
（ｉｉ）ニコチンアミドの量および期間が、幹細胞および／または前駆細胞の拡大のためではなく、細胞集団の細胞によるＣＤ２６の発現をダウンレギュレーションするために十分であるように選択される；
（ｉｉｉ）細胞集団が、造血細胞、造血幹細胞、単核細胞、初期肝臓前駆細胞、分化決定された前駆細胞、非造血幹細胞および非造血前駆細胞、または、胚性幹細胞および胚性前駆細胞を含まない；
（ｉｖ）供することは栄養物の非存在下で行われる；
（ｖ）供することはサイトカインの非存在下で行われる；
（ｖｉ）供することはＦＬＴ−３リガンドの非存在下で供行われる；
（ｖｉｉ）供することは幹細胞因子（ＳＣＦ）の非存在下で行われる；
（ｖｉｉｉ）供することは顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）の非存在下で行われる；
（ｉｘ）供することは初期作用サイトカインの非存在下で行われる；
（ｘ）供することは後期作用サイトカインの非存在下で行われる；
および、続いて、
（ｂ）細胞をその必要性のある対象に移植すること
を含む。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、対象はヒト対象である。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、ニコチンアミドが、ニコチンアミド、ニコチンアミド類似体、ニコチンアミド代謝物、ニコチンアミド類似体代謝物、および、それらの誘導体からなる群から選択される。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、細胞集団が、筋肉、皮膚、骨、リンパ器官、膵臓、肝臓、胆嚢、腎臓、消化管器官、気道器官、生殖器官、尿路器官、血液関連器官、胸腺、脾臓、ならびに、神経系器官からなる群から選択される器官に由来する。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、細胞集団は、造血細胞、単核細胞、初期肝臓前駆細胞、分化決定された前駆細胞、非造血幹細胞および非造血前駆細胞、または、胚性幹細胞および胚性前駆細胞を含まない。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、細胞集団は幹細胞を含む。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、幹細胞が、造血細胞、臍帯血細胞、動員された末梢血細胞、骨髄細胞、ならびに、胚性幹細胞および／または胚性前駆細胞からなる群から選択される供給源に由来する。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、幹細胞が骨髄または末梢血に由来する。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、幹細胞が新生児の臍帯血に由来する。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、幹細胞が単核細胞分画物に由来する。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、幹細胞は造血幹細胞について濃縮される。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、幹細胞の生着能を高める方法、および、移植する方法は、造血幹細胞について濃縮された細胞集団を、エクスビボで供する工程の前に、または、エクスビボで供する工程と同時に、または、エクスビボで供する工程の後で選択する工程をさらに含む。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、選択する工程がＣＤ３４により行われる。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、幹細胞の生着能を高める方法、および、移植する方法は、初期造血幹細胞について濃縮された細胞集団を、エクスビボで供する工程の前に、または、エクスビボで供する工程と同時に、または、エクスビボで供する工程の後で選択する工程をさらに含む。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、選択する工程がＣＤ１３３により行われる。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、選択する工程がＣＤ３４／ＣＤ３８により行われる。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、期間が１週間〜１８週間の間である。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、期間が１日〜７日の間である。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、期間が２日〜４日の間である。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、期間が１２時間〜３０時間の間である。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、期間が７２時間を越えない。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、細胞集団が造血幹細胞および造血前駆細胞の集団であり、期間が、幹細胞の拡大のためには不十分であるように選択される。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、細胞集団が造血幹細胞および造血前駆細胞の集団であり、供することが、幹細胞の拡大のためには不十分である条件のもとで行われる。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、幹細胞の拡大のためには不十分である条件が、栄養物の非存在、後期作用サイトカインの非存在、および、初期作用サイトカインの非存在からなる群から選択される。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、期間が、細胞におけるＣＤ２６の発現をダウンレギュレーションするためには十分であるが、細胞増殖のためには不十分である。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、ニコチンアミドの濃度が０．０１ｍｇ／ｍｌ〜６０ｍｇ／ｍｌである。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、ニコチンアミドの効果的な量が１．０ｍｇ／ｋｇ体重〜４０ｍｇ／ｋｇ体重である。

記載された好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、ニコチンアミドの効果的な量が１０ｍｇ／ｋｇ体重〜２０ｍｇ／ｋｇ体重である。

本発明のさらに別の態様によれば、上記方法による高まったホーミングおよび／または生着によって特徴づけられる細胞を含む細胞集団が提供される。

本発明のさらなる態様によれば、そのような細胞集団を有効成分として含み、かつ、医薬的に許容され得るキャリアを含む医薬組成物が提供される。

本発明のさらなる態様によれば、幹細胞の生着および／またはホーミングを改善するために特定される医薬品を製造するためのニコチンアミドの使用が提供される。

本発明は、幹細胞の動員および遊走を幹細胞移植前および幹細胞移植後の両方で高めるための方法を提供することによって、現在知られている形態の欠点に対処することに成功している。

別途定義されない限り、本明細書中で使用されるすべての技術的用語および科学的用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書中に記載される方法および材料と類似または同等の方法および材料を本発明の実施または試験において使用することができるが、好適な方法および材料が下記に記載される。矛盾する場合には、定義を含めて、本特許明細書が優先する。加えて、材料、方法および実施例は例示にすぎず、限定であることは意図されない。

図面の簡単な記述
本明細書では本発明を単に例示し図面を参照して説明する。特に詳細に図面を参照して、示されている詳細が例示として本発明の好ましい実施態様を例示考察することだけを目的としており、本発明の原理や概念の側面の最も有用でかつ容易に理解される説明であると考えられるものを提供するために提示していることを強調するものである。この点について、本発明を基本的に理解するのに必要である以上に詳細に本発明の構造の詳細は示さないが、図面について行う説明によって本発明のいくつもの形態を実施する方法は当業者には明らかになるであろう。

図１ａ〜図１ｉは、ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスの骨髄への造血幹細胞のホーミングに対するニコチンアミドの影響のフローサイトメトリー分析のグラフ表示である。非培養の単核細胞、または、サイトカインおよびニコチンアミドを含む３週間における拡大後の子孫全体（サイトカイン＋ＮＡ）、または、サイトカインだけを含む３週間にわたる拡大後の子孫全体（サイトカイン）をＣＦＳＥにより標識し、非致死線量が照射されたＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスに注入した（５ｘ１０^４個のＣＤ３４^＋細胞、および、ニコチンアミドを含む３週間にわたる拡大の後、または、含まない３週間にわたる拡大の後での５ｘ１０^４個のＣＤ３４^＋細胞の子孫すべてを含有する非培養群については１０ｘ１０^６細胞／マウス；１８０ｘ１０^４個のＣＤ３４^＋細胞を含有する２０ｘ１０^６細胞／マウス）。図１ａは、移植後におけるＣＦＳＥ＋／ＣＤ３４＋細胞のホーミングを示すレシピエントの骨髄細胞のフローサイトメトリーの結果のヒストグラムである。図１ｂは、移植後におけるＣＦＳＥ＋細胞全体のホーミングを示すレシピエントの骨髄細胞のフローサイトメトリーの結果のヒストグラムである。ヒト細胞のホーミングが、分析された１０００００個のＢＭ細胞あたりの陽性事象（サイトメトリー）の数として表される。それぞれの棒が３つの独立した実験の平均±ＳＥを表す（実験群あたり６匹〜７匹のマウス）。非注入マウスから得られた骨髄細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｃ）、および、非培養細胞が注入されたマウスから得られた骨髄細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｄおよび図１ｇ）、サイトカインとともに培養された細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｅおよび図１ｈ）、ならびに、サイトカインおよびニコチンアミドとともに培養された細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｆおよび図１ｉ）が示される。ＢＭにホーミングするヒト細胞全体が、低い側方散乱（ｙ軸）およびＣＦＳＥ発現のｌｏｇ蛍光分布（ｘ軸）に基づいてゲート処理される（領域Ｒ２を参照のこと）（図１ｃ〜図１ｆ）。ＣＦＳＥの明るい蛍光は、標識されたヒト細胞を少なくとも１ｌｏｇによって非標識のマウス細胞から分離するために十分であった。Ｒ２にゲート処理された細胞を、その後、ＣＦＳＥ（ｘ軸）およびＣＤ３４−ＡＰＣ（ｙ軸）について分析した（図１ｇ〜図１ｉ）。上側および下側の右側象限はヒト細胞全体を表し、一方、上側の右側象限は、ＢＭにホーミングするヒトＣＤ３４＋細胞を表す。

図２は、造血細胞のインビトロ遊走に対するニコチンアミドの影響を示すヒストグラムである。３週間の培養の前（非培養）、または、サイトカインおよびニコチンアミドを含む３週間の培養の後（サイトカイン＋ＮＡ）、または、サイトカインだけを含む３週間の培養の後（サイトカイン）のいずれかにおける精製ＣＤ３４＋細胞のＣＸＣＬ１２（１００ｎｇ／ｍｌ）誘導によるトランスウェル遊走（ｎ＝３、^＊ｐ＜０．０２、^＊＊ｐ＜０．０５）を、本明細書中下記に記載されるように測定した。ニコチンアミドの存在下で培養された細胞の高まった遊走に留意すること。

図３は、剪断流のもとでの固定化接着分子への細胞のＶＬＡ４媒介による結合に対するニコチンアミドの影響を示すグラフである。本明細書中上記の図１および図２で記載されるように培養されたＣＤ３４＋細胞を、ポリスチレン上に１０μｌのドットとして吸着させた固定化ＶＣＡＭ−１に対する、剪断ストレスのもとでの捕獲および阻止について分析した。細胞沈降事象および阻止をビデオ写真によって灌流（剪断ストレス）下で分析した。アッセイされた細胞集団は、培養前の細胞（非培養、白丸）、図２で記載されるような、サイトカインとともに培養された細胞（培養、黒丸）、ならびに、サイトカインおよびニコチンアミドとともに培養された細胞（培養＋ＮＡ、黒三角）であった。接着分子媒介の結合に対するニコチンアミドの著しい一貫した影響に留意すること。

図４ａ〜図４ｆは、ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスに移植されたヒト造血細胞のホーミングおよび生着に対するニコチンアミドの影響のグラフ表示である。図４ａおよび図４ｂは移植前の細胞集団におけるヒト（ＣＤ４５＋）細胞の割合を示す：非培養ＣＤ３４^＋細胞（非培養、灰色の楕円）、サイトカインだけへの３週間の暴露の後の培養物の子孫全体（サイトカイン単独、黒塗りの楕円）、または、サイトカインおよびニコチンアミドへの３週間の暴露の後の培養物の子孫全体（サイトカイン＋ＮＡ、矢印）。移植後４週間での生着率をＮＯＤ／ＳＣＩＤの骨髄におけるヒトＣＤ４５細胞のフローサイトメトリー（ｙ軸）によって求めた。ＳＣＩＤ再増殖細胞（ＳＲＣ）の数を、それぞれの用量における生着頻度をプロットすることによって計算した。得られた曲線は、非培養ＣＤ３４＋細胞（図４ｃ）、サイトカインを含む培養物（図４ｄ）、または、サイトカインおよびニコチンアミドを含む培養物（図４ｅ）におけるＳＲＣの推定頻度を示す。それぞれのボックスに示された数字は、最尤推定量を使用するＳＲＣの計算された頻度を示す。図４ｆは、ＦＡＣＳによって測定されたときの、ニコチンアミドとともに３週間培養された１２ｘ１０^３個のＣＤ３４^＋細胞の子孫が移植された代表的なマウスにおける生着したヒト細胞の免疫表現型を示す。マウスの骨髄細胞を、ＦＩＴＣコンジュゲート化抗ＣＤ４５（ヒト）、および、示されるようなヒト分化マーカーに対する抗体により二重標識した。二重の陽性細胞の割合がそれぞれの象限に示される。ニコチンアミド治療されたマウスにおける生着が、サイトカインだけにより治療されたマウスと比較したとき、７倍を越えて高まることに留意すること（図４ｄ）。

図５ａ〜図５ｃは、分化促進条件のもとで培養された細胞の生着能に対するニコチンアミド（ＮＡ）の影響のグラフ表示である。培養を、精製された臍血由来のＣＤ３４＋細胞を用いて、ＳＣＦ、ＴＰＯ、ＩＬ−６およびＦＬＴ３（それぞれ、５０ｎｇ／ｍｌ）ならびにＩＬ−３（２０ｎｇ／ｍｌ）が補充され、１０ｍＭのニコチンアミドを含む培地（サイトカイン＋ＮＡ、矢印）、または、ニコチンアミドを含まない培地（サイトカイン、楕円）において開始した。３週間後、細胞を集め、示されたようにＳＣＩＤマウスに移植した。マウスには、１．２５〜５ｘ１０^４個のＣＤ３４＋細胞、または、拡大後のその子孫を移植した。マウスを４週間後に屠殺し、骨髄細胞をＣＤ３４＋細胞（ヒト前駆細胞）およびＣＤ４５＋（ヒト）細胞の存在についてＦＡＣＳによって分析した。マウスは、ヒト（ＣＤ４５＋）細胞の数が骨髄集団の０．５％以上を構成したときには生着したとして記録した。図５ａは、移植された細胞の用量（５．０Ｘ１０^４個、２．５Ｘ１０^４個および１．２５Ｘ１０^４個の細胞）のそれぞれについて、移植されたマウスの総数あたりの生着陽性マウスの数を示す。図５ｂおよび図５ｃは、１．２５Ｘ１０^４個のＣＤ３４＋細胞により開始された培養に由来する細胞が移植されたマウスの骨髄における総ヒト（ＣＤ４５＋）細胞の割合（図５ｂ）およびヒト前駆細胞（ＣＤ４５＋ＣＤ３４＋）細胞の割合（図５ｃ）を示す。総ヒト細胞、および、ニコチンアミド処理から生じたヒト前駆細胞の両方の高まった生着に留意すること。

本発明は、移植可能な細胞のホーミングおよび生着を改善するための方法の発明である。

本発明の原理および作用が、付随する説明を参照してより十分に理解することができる。

本発明の少なくとも１つの実施形態を詳しく説明する前に、本発明は、その適用において、下記の説明において示される細部、または、実施例によって例示される細部に限定されないことを理解しなければならない。本発明は他の実施形態が可能であり、または、様々な方法で実施または実行されることができる。また、本明細書中で用いられる表現法および用語法は記述のためであって、限定であると見なしてはならないことを理解しなければならない

成功した血液移植および骨髄移植（自家および同種の両方）は、髄腔にホーミングすることができ、かつ、すべてがそろった造血細胞系譜を、時宜を得た様式で再生することができる造血幹細胞の十分な数を注入することを必要とする。骨髄から血液内への幹細胞の呼び寄せは動員と呼ばれるか、または、より一般には幹細胞動員と呼ばれる。幹細胞動員および／または幹細胞ホーミングの強化が、成功した幹細胞移植をもたらすことは十分に明らかにされている。

ＳＤＦ−αは造血幹細胞および造血前駆細胞（ＨＳＣ／ＨＰＣ）を化学的に誘引しており、骨髄からのＨＳＣ／ＨＰＣの動員において、また同様に、幹細胞ホーミングにおいて非常に重要な役割を果たすと考えられる。

ＣＤ２６は、プロリン残基又はアラニン残基のいずれかを最後から２番目の位置に有するポリペプチドからＮ末端のジペプチドを切断することができるジペプチジルペプチダーゼＩＶ（ＤＰＰＩＶ）活性をその細胞外ドメインに有することが知られている、広範囲に分布する１１０ｋＤａの細胞表面の糖タンパク質である。ＣＤ２６は、ＳＤＦの活性を、後者をその２位のプロリンにおいて切断することによって阻害し、それにより、その幹細胞動員／ホーミング機能を阻害する。

米国特許出願公開第２００４／０２４７５４７号は、骨髄への幹細胞ホーミングを改善すること、および、動員されたドナー幹細胞の数を増大させることの両方によって幹細胞移植物の生着効率を改善するためのＣＤ２６阻害剤の使用を開示する。この特許出願は、ＣＤ２６の表面発現をダウンレギュレーションすることを教示せず、むしろ、ＣＤ２６の触媒活性をダウンレギュレーションすることを教示する。具体的には、米国特許出願公開第２００４／０２４７５７４号は、ＣＤ２６の表面発現をダウンレギュレーションするためのニコチンアミドの使用を教示していない。

本発明を実施に移しているとき、本発明者は、ニコチンアミドが、ＣＤ２６の細胞表面での発現をダウンレギュレーションし、接着分子およびインテグリン分子の発現および機能を高め、誘導された移植可能な細胞の遊走を増大させ、かつ、移植可能な細胞のホーミングおよび生着をインビボで著しく改善するために首尾良く使用できることを発見した。

本明細書中下記および下記の実施例の節において明らかにされるように、本発明者は、ニコチンアミドとの細胞の短期間のインキュベーションが、ＣＤ２６の発現をダウンレギュレーションするために十分であることを示した。ＣＤ２６を発現するＣＤ３４＋細胞およびＡＣ１３３＋細胞における著しい減少が、ニコチンアミドとのわずかに２０時間のインキュベーションの後で認められた。

より重要なことに、ニコチンアミドは、細胞結合および細胞阻止のプロセスにとって非常に重要な分子の機能性を高めることにおいて効果的であることが示された。実際、ニコチンアミド暴露後におけるインビトロでの細胞遊走能の評価では、ニコチンアミドが、ニコチンアミドとともに培養された移植可能な細胞において、ＣＸＣＬ１２誘導可能な遊走、ならびに、ＶＣＡＭ−１におけるＶＬＡ−４媒介の結合および保持をともに高めたことが示された（下記の実施例３を参照のこと）。細胞遊走のプロセスは広範囲の様々な細胞において「認識」ペア（例えば、ＶＬＡ−４およびＶＣＡＭ−１など）によって媒介されるので、この驚くべき発見は、ニコチンアミド、ならびに、ニコチンアミドの誘導体および類似体が、多様な起源および様々な分化段階の細胞について結合および保持（これらは、移植された細胞がホーミングに成功し、生着し、かつ、宿主組織を再増殖（ｒｅｐｏｐｕｌａｔｅ）することができることにとって非常に重要である）を高めることにおいて効果的であり得ることを示している。

ニコチンアミド処理された細胞を用いた実際のインビボ移植実験では、細胞生着能および細胞ホーミング能に対するニコチンアミドの影響についての確実な証拠がもたらされた。下記の実施例２では、単核細胞をＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスへの移植に先だってニコチンアミドにさらすことにより、骨髄へのホーミングが、ニコチンアミドを含むことなく培養された同一の細胞よりも６倍増大したことが示される。その上さらに、下記の実施例４では、細胞の明らかに最適でない用量において、コントロールの培養細胞はＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスにおける骨髄の再増殖を引き起こすことができなかった一方で、ニコチンアミド処理された細胞の移植は大きい程度の生着および成功した再増殖をもたらしたことが示される。

まとめると、これらの結果から、細胞ホーミングおよび細胞生着におけるニコチンアミドについての新規な役割、ならびに、細胞移植におけるそのようなものとしての新規な役割が示唆される。

従って、本発明の１つの態様によれば、細胞ホーミング能および細胞生着能を高める方法が提供され、この場合、この方法は、細胞集団を、細胞ホーミング能および細胞生着能を高めるために十分な期間にわたって所定量のニコチンアミドにエクスビボまたはインビトロで供することを含む。

本明細書中で使用される表現「細胞生着能を高める」は、標的組織への改善されたホーミング、改善された接着、および、低下した拒絶などから生じ得る、細胞移植の効率、特性または迅速さにおける改善を示す。細胞生着能を評価するための方法には、例えば、本明細書中下記に詳しく記載されるように、細胞遊走技術および他のインビトロ技術、ならびに、実際のインビボ移植から得られた組織および器官の組織学評価、免疫学的評価および／または放射線学的評価が含まれる。幹細胞の自己複製能を長期コロニー形成（ＬＴＣ−ＣＦＵｃ）によってインビトロで求めることができ、または、ＳＣＩＤ−Ｈｕマウスモデルにおけるインビボ生着によって求めることができる。ＳＣＩＤ−Ｈｕマウスモデルでは、ヒト胎児の胸腺組織および肝臓組織またはヒト胎児のＢＭ組織が移植されたＣ．Ｂ．１７ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄ（ＳＣＩＤ）マウスが用いられ、このモデルは、推定されるヒト造血幹細胞を評価するための適切なモデルを提供する。ヒト胎児組織によるＳＣＩＤマウスの再構成のために、このモデルは、ヒト起源の造血性微小環境における幹細胞の増殖（この場合には、増殖するためのヒト造血幹細胞）および機能をもたらす。マウスは典型的には放射線照射され、その後、幹細胞が移植片に送達され、再構成が、再増殖した器官のＦＡＣＳおよび免疫組織化学をはじめとする多数の方法によって測定される（Ｈｕｍｅａｕ Ｌ．他、Ｂｌｏｏｄ（１９９７）、９０：３４９６；また、下記の材料および実験方法を参照のこと）。

本明細書中で使用される用語「エクスビボ」は、細胞が、生きている生物から取り出され、その生物の体外で（例えば、試験管において）増殖させられるプロセスを示す。

本明細書中で使用される用語「インビトロ」は、研究室で維持される１つ以上の細胞株（例えば、ＮＴｅｒａ２神経細胞、胚性細胞株など）に由来する細胞が生物の体外で操作されるプロセスを示す。そのような細胞株は、多くの場合、不死化された細胞である。

本明細書中で使用される表現「細胞集団」は、移植のために好適である細胞集団を含む細胞の均一または不均一な単離された集団を示す。好ましい実施形態において、本発明のこの態様の細胞集団の少なくとも一部がＣＤ２６またはＶＬＡ−４を細胞表面に発現する。

本明細書中で使用される表現「幹細胞」は、細胞塊を組織または身体において生じさせることに関わる最も初期の再生可能な細胞集団、および、幾分かより分化し、それにもかかわらず、分化決定されておらず、最も初期の再生可能な細胞集団の一部となるために容易に逆戻りすることができる初期の前駆細胞の両方を示す。

本明細書中で使用される表現の「非幹」細胞、「非前駆」細胞および「分化決定された」細胞は、再生可能な細胞集団の一部となるために逆戻りする能力を一般にはもはや保持していない様々な分化段階にある細胞を示す。幹細胞、前駆細胞、および、非幹性で、前駆細胞でない分化決定された細胞をエクスビボ培養する様々な方法が、細胞培養の技術分野では広く知られている。この目的のために、例えば、Ｆｒｅｓｈｎｅｙによる書籍「Ｃｕｌｔｕｒｅ ｏｆ Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌｓ−Ａ Ｍａｎｕａｌ ｏｆ Ｂａｓｉｃ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ」（Ｗｉｌｅｙ−Ｌｉｓｓ、Ｎ．Ｙ．（１９９４）、第３版）（その教示は本明細書により参考として組み込まれる）を参照のこと。

本発明の細胞集団は自家ドナーまたは非自家ドナー（同種または異種）に由来し得る。

好ましい実施形態において、移植用の細胞は幹細胞および／または前駆細胞であり、幹細胞集団の供給源は、ＣＤ３４＋細胞または他の造血幹細胞について濃縮されていない未分画の単核細胞調製物である。別の実施形態において、幹細胞は、当該技術分野で知られている幹細胞マーカー（例えば、ＣＤ３４＋、ＣＤ３４＋／ＣＤ３８−、ＣＤ１３３＋、ＣＤ３４＋／Ｌｉｎ−および他の幹細胞マーカーなど）によって特定される。さらに別の実施形態において、幹細胞集団の供給源は、幹細胞マーカーに従った選択によって造血幹細胞について濃縮されている幹細胞である。

例えば、本発明の幹細胞は、造血細胞、臍帯血細胞、および、動員された末梢血細胞からなる群から選択される供給源に由来し得る。

本明細書中で使用される「ニコチンアミド」は、ニコチンアミド、ならびに、ニコチンアミド、その類似体、および、ニコチンアミドまたはニコチンアミド類似体の代謝物に由来する産物（例えば、ＮＡＤ、ＮＡＤＨおよびＮＡＤＰＨなど）を示す。

本明細書中で使用される表現「ニコチンアミド類似体」は、ニコチンアミドと類似して作用することが知られている任意の分子を示す。ニコチンアミド類似体の代表的な例には、限定されないが、ベンズアミド、ニコチンチオアミド（ニコチンアミドのチオール類似体）、ニコチン酸およびα−アミノ−３−インドールプロピオン酸が挙げられる。

本明細書中で使用される用語「対象」は哺乳動物対象を示し、好ましくは、ヒト対象を示す。

表現「ニコチンアミド誘導体またはニコチンアミド類似体誘導体」は、ニコチンアミドそのものまたはニコチンアミドの類似体の任意の構造的誘導体を示す。そのような誘導体の例には、限定されないが、置換されたベンズアミド、置換されたニコチンアミドおよびニコチンチオアミド、ならびに、Ｎ−置換されたニコチンアミドおよびニコチンチオアミドが挙げられる。

加えて、または、代替として、幹細胞の動員を、当該技術分野では広く知られている動員剤を使用して幹細胞移植のための細胞を集める前に行うことができる。一般に、動員プロセスは、膜結合した幹細胞因子（ＳＣＦ）の脱落および放出、前駆細胞の増殖、ならびに、接着分子の活性化および／または分解をもたらす化学療法、および、サイトカイン（例えば、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）など）による反復した刺激による好中球および破骨細胞のストレス誘導による活性化によって開始される。本発明に従って使用することができる動員剤には、ＤＮＡ損傷剤、１つだけの化学療法剤（例えば、シクロホスファミド）、混合化学療法方式［例えば、イホスファミド、カルボプラチンおよびエトポシド（ＩＣＥ）、ならびに、メチルプレドニゾロン、ａｒａ−ｃおよびシスプラチン（ＥＳＨＡＰ）］、サイトカイン（例えば、Ｇ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＳＣＦ、ＦＬＴ−３リガンドなど）、および、ケモカイン（例えば、ＩＬ−８、ＭＩＰ−１α、ＧｒｏβおよびＳＤＦ−１など）が含まれるが、これらに限定されない。投与様式、ならびに、動員を達成するために必要とされる時間枠、および、動員される細胞のタイプは、使用された分子に依存する。例えば、Ｇ−ＣＳＦは通常、単独で、または、治療の後で、５μｇ／ｋｇ〜１０μｇ／ｋｇの用量として５日〜１０日にわたって毎日投与される。動員方式の調節が医師によって行われ、また、Ｃｏｔｔｋｅｒ−Ｆｏｘ他（２００３）、Ｈｅｍａｔｏｌｏｇｙ、４１９〜４３７において総説される。

移植のための細胞を調製する様々な方法が当該技術分野では広く知られている。非幹細胞を調製するために、細胞を、個々の細胞を組織の結合している細胞外マトリックスから解離することによってドナー組織から得ることができる。特定の領域からの組織が、無菌手順を使用して取り出され、細胞が、酵素（例えば、トリプシン、コラゲナーゼおよびＤＮＡｓｅなど）による処理を含めて、当該技術分野で知られている任意の方法を使用して、または、鈍器などを用いた物理的な解離方法を使用することによって解離させられる。

移植のために調製された細胞は生理学的溶液において維持されるか、あるいは、懸濁状態で、または、固定された基体の表面で培養される。細胞を支持することができる好適な培養培地には、ＨＥＭ、ＤＭＥＭ、ＲＰＭＩおよびＦ−１２などが含まれる。要求されるならば、培地は、細胞の代謝のために要求される補充物（例えば、グルタミンおよび他のアミノ酸、ビタミン、ミネラルおよび有用なタンパク質（例えば、トランスフェリンなど）など）を含有することができる。培地はまた、酵母、細菌および真菌による汚染を防止するための抗生物質（例えば、ペニシリン、ストレプトマイシンおよびゲンタマイシンなど）を含有することができる。細胞が培養されることになるならば、条件は生理学的な条件（好ましくは、約６〜約８のｐＨおよび約３０℃〜約４０℃の温度）に近づけなければならない。培養培地は、場合により、少なくとも１つの増殖誘導性の増殖因子（例えば、ＥＧＦ、アンフィレグリン、酸性線維芽細胞増殖因子（ａＦＧＦまたはＦＧＦ−１）、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦまたはＦＧＦ−２）、トランスフォーミング増殖因子α（ＴＧＦ−α）、サイトカイン（例えば、Ｇ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＳＣＦ、ＦＬＴ−３リガンドなど）、および／または、ケモカイン（例えば、ＩＬ−８、ＭＩＰ−１α、ＧｒｏβおよびＳＤＦ−１など）、ならびに、それらの組合せにより補充され得る。増殖誘導性の増殖因子に加えて、他の増殖因子を培養培地に加えることができ、これらには、ＮＧＦ、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）および甲状腺刺激ホルモン放出ホルモン（ＴＲＨ）などが含まれる。

特定の細胞タイプの選択および濃縮を、形態学的手段、物理的手段、免疫組織学的手段（ＦＡＣＳ）または他の手段によって行うことができる（例えば、肝臓組織からの肝細胞の分離、グリア細胞からのニューロンの分離、または、膵臓組織からの小島細胞の単離など）。新鮮な細胞調製物または培養された細胞調製物は、当該技術分野で知られている任意の方法によって必要とされるまで凍結保存することができる。細胞は、特定の凍結保護剤を含有する等張性の溶液（好ましくは、細胞培養培地）に懸濁することができる。そのような凍結保護剤には、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）およびグリセロールが含まれる。細胞を移植のために調製および保存するためのさらなる方法が当該技術分野では知られており、また、例えば、Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ（ＫｉｐｓｈｉｄｚｅおよびＳｅｒｒｕｙｓ編、Ｌｏｎｄｏｎ、ＵＫ、２００４）に詳しく開示される。

幹細胞を調製する様々な方法が当該技術分野では広く知られており、一般には、１つ以上の幹細胞マーカー（例えば、ＣＤ３４、ＣＤ１３３など）を発現するか、あるいは、分化した細胞のマーカーを有さない細胞を選択することである。選択は通常、ＦＡＣＳによるか、または、免疫磁石分離であるが、核酸方法（例えば、ＰＣＲなど）によってもまた可能である（本明細書中下記における材料および実験方法を参照のこと）。胚性幹細胞およびその回収方法が当該技術分野では広く知られており、例えば、Ｔｒｏｕｎｓｏｎ ＡＯ（Ｒｅｐｒｏｄ Ｆｅｒｔｉｌ Ｄｅｖ（２００１）、１３：５２３）、Ｒｏａｃｈ ＭＬ（Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ（２００２）、１８５：１）、および、Ｓｍｉｔｈ ＡＧ（Ａｎｎｕ Ｒｅｖ Ｃｅｌｌ Ｄｅｖ Ｂｉｏｌ（２００１）、１７：４３５）に記載される。成体幹細胞は、成体の組織に由来する幹細胞であり、これもまた、当該技術分野では広く知られている。成体幹細胞を単離する方法、または、成体幹細胞について濃縮する方法が、例えば、下記に記載される：Ｍｉｒａｇｌｉａ，Ｓ．他（１９９７）Ｂｌｏｏｄ ９０：５０１３，Ｕｃｈｉｄａ，Ｎ．他（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９７：１４７２０，Ｓｉｍｍｏｎｓ，Ｐ．Ｊ．他（１９９１）Ｂｌｏｏｄ ７８：５５，Ｐｒｏｃｋｏｐ ＤＪ（Ｃｙｔｏｔｈｅｒａｐｙ（２００１）３：３９３），Ｂｏｈｍｅｒ ＲＭ（Ｆｅｔａｌ Ｄｉａｇｎ Ｔｈｅｒ（２００２）１７：８３）およびＲｏｗｌｅｙ ＳＤ他（Ｂｏｎｅ Ｍａｒｒｏｗ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ（１９９８）２１：１２５３），Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ Ｄａｎｉｅｌ Ｒ．Ｍａｒｓｈａｋ（編者）Ｒｉｃｈａｒｄ Ｌ．Ｇａｒｄｎｅｒ（編者），出版社：Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，（２００１）およびＨｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ．Ａｎｔｈｏｎｙ Ｄ．Ｈｏ（編者）Ｒｉｃｈａｒｄ Ｃｈａｍｐｌｉｎ（編者），出版社：Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ（２０００）。

ニコチンアミドは広範囲の様々な細胞タイプにおいて生着能およびホーミング能を高め得ることが理解される。例えば、ニコチンアミドはＣＤ２６の表面発現をダウンレギュレーションすることができ、ＶＬＡ−４、ＣＸＣＲ−２または他の接着分子を発現する任意の細胞タイプからのＶＬＡ−４、ＣＸＣＲ−２または他の接着分子の機能性を高めることができ、また、これらの分子は多様な起源の細胞集団において広く発現されるので、本発明のこの態様の細胞集団は、選択された細胞タイプのより均一な集団だけでなく、非選択の細胞集団（例えば、組織からの粗細胞調製物、あるいは、単核の幹細胞および／または前駆細胞など）を含むことができる。

本明細書中で使用される表現「造血性単核細胞」は、血液サンプルに存在する白血球のレパートリー全体を示し、通常、造血性の分化決定された細胞の大きい割合と、造血幹細胞および造血前駆細胞の小さい割合とを含む造血性単核細胞を示す。健康なヒトにおいて、白血球は、造血系譜の分化決定された細胞および分化した細胞の混合物（典型的には、単核細胞の９９％超が、系譜決定された細胞である）を含み、これには、例えば、系譜決定された前駆細胞のＣＤ３４^＋ＣＤ３３^＋（骨髄性の分化決定された細胞）、ＣＤ３４^＋ＣＤ３^＋（リンパ系の分化決定された細胞）、ＣＤ３４^＋ＣＤ４１^＋（巨核球性の分化決定された細胞）、および、分化した細胞、すなわち、ＣＤ３４⁻ＣＤ３３^＋（骨髄球、例えば、顆粒球および単球など）、ＣＤ３４⁻ＣＤ３^＋、ＣＤ３４⁻ＣＤ１９^＋細胞（それぞれ、Ｔ細胞およびＢ細胞）、ＣＤ３４⁻ＣＤ４１^＋（巨核球）、ならびに、造血幹細胞および初期前駆細胞（例えば、ＣＤ３４^＋の系譜陰性（Ｌｉｎ⁻）、ＣＤ３４⁻の系譜陰性、ＣＤ３４^＋ＣＤ３８⁻など）（典型的には、１％未満）が含まれる。

造血性単核細胞は、典型的には、血液サンプルをＦｉｃｏｌｌ−Ｈｙｐａｑｕｅ層に加え、密度クッション遠心分離後、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｈｙｐａｑｕｅと、血清との間に存在する境界を集めることによって血液サンプルから得られ、この場合、そのような境界層は本質的にはすべてが、血液サンプルに存在する白血球からなる。

現在、造血幹細胞は、上記で記載されたような示差的な密度遠心分離によって得られる造血性単核細胞のさらなる濃縮によって得ることができる。このさらなる濃縮プロセスは、典型的には、免疫分離（例えば、免疫磁石分離またはＦＡＣＳなど）によって行われ、造血幹細胞について濃縮される細胞分画物をもたらす（造血幹細胞の濃縮の詳細な説明については、本明細書中下記の、材料および実験手順の節を参照のこと）。

用いられた細胞の起源およびその組成にかかわらず、細胞が得られると、細胞は、移植後の細胞の生着およびホーミングを高めるために十分な期間にわたって所定量のニコチンアミドに供される（所定量のニコチンアミドと接触させられる）。そのような期間は、必要に応じて、短時間であり得るか、または、より長い時間であり得る。１つの好ましい実施形態において、接触させることが、ＣＤ２６の表面発現をダウンレギュレーションするために十分な期間にわたって行われる。別の好ましい実施形態において、細胞が造血幹細胞であり、接触させることが、幹細胞の増殖（これは拡大とも呼ばれる）のためには不十分であり、一方、ＣＤ２６の表面発現をダウンレギュレーションするためには十分な期間にわたって行われる。さらに別の実施形態において、接触させることが、ＶＬＡ−４、ＣＸＣＲ２、ならびに、他の接着分子および／またはインテグリン分子の機能性を増大させるために十分な期間にわたって行われる。

タンパク質の細胞表面での発現を明らかにする様々な方法が当該技術分野では広く知られている。例には、免疫学的方法（例えば、ＦＡＣＳ分析（実施例の節を参照のこと）など）、ならびに、生化学的方法（細胞表面の標識化、例えば、放射能、蛍光、アビジン−ビオチン）が挙げられる。

細胞増殖をアッセイする様々な方法が当該技術分野では広く知られている（例えば、ＭＴＴ、チミジン取り込み、ＦＡＣＳなど）。細胞倍加速度もまた文献に由来し得ることが理解される。

細胞タイプおよびその意図された使用に依存して、細胞は、長期間の接触のために、すなわち、１週間以上の期間にわたってニコチンアミドにエクスビボで供することができ、また、細胞は、移植のための使用に先だって、ニコチンアミドと接触させて保存することさえできる。さらに、特定の実施形態によれば、短期間の暴露が望ましい。長期間接触させることが、１週間〜１８週間（好ましくは３週間〜９週間、より好ましくは２週間〜５週間、最も好ましくは２週間〜３週間）の間で可能である。短期間接触させることが、１週間〜２週間（好ましくは１週間以下、より好ましくは１日〜５日の間）にわたって可能である。

本発明を実施に移しているとき、ニコチンアミドへの造血幹細胞の２０時間の暴露が、細胞ホーミングおよび細胞生着にとって非常に重要であるＣＤ２６の発現における低下をもたらすためには十分であるが、幹細胞の拡大または増殖を行わせるためには不十分であったことが発見された。従って、本発明の１つの実施形態によれば、細胞は、数日を超えない期間にわたって、好ましくは３０時間の期間にわたって、より好ましくは１時間〜３０時間の期間にわたって、一層より好ましくは５時間〜３０時間の期間にわたって、一層より好ましくは１０時間〜３０時間の期間にわたってニコチンアミドにエクスビボで供される。別の好ましい実施形態において、細胞は幹細胞および／または前駆細胞であり、ニコチンアミドに対する暴露継続期間は、幹細胞の拡大のためには不十分であるように選択されるか、または、幹細胞の拡大のためには不十分な条件（例えば、サイトカインの非存在、栄養分の非存在、最適でない温度など）のもとで選択される。

ニコチンアミドは、好ましくは、０．０１ｍｇ／ｍｌ〜６０ｍｇ／ｍｌ（好ましくは１ｍｇ／ｍｌ〜４０ｍｇ／ｍｌ、より好ましくは５ｍｇ／ｍｌ〜３０ｍｇ／ｍｌ、最も好ましくは１０ｍｇ／ｍｌ〜２０ｍｇ／ｍｌ）の最終濃度で与えられる。培養培地および培地補充物の選択は細胞およびその意図された使用に依存する。

１つの好ましい実施形態において、ニコチンアミドに供された細胞は、所定の期間にわたるニコチンアミドへの暴露の後、さらなるエクスビボ拡大を伴うことなく、その必要性のある対象への移植のために使用することができる。ニコチンアミドへの暴露は、ニコチンアミドへのエクスビボ暴露の前、および、好ましくは、生着のためのその使用の直前を含めて、当該技術分野で広く知られているさらなるエクスビボ処理（例えば、拡大、選択、遺伝子改変など）を受けている細胞に対して行われ得ることが理解される。

ニコチンアミドにさらされた後、細胞は、その後、その必要性のある対象に移植（投与）することができる。下記には、本発明の教示に従って取り組むことができるいくつかの臨床的適用がまとめられる。

造血細胞移植：造血細胞の移植が様々な遺伝性疾患または悪性疾患のための優れた治療になってきている。初期の移植手法では、骨髄（ＢＭ）集団全体が利用されたが、現在では、幹細胞（ＣＤ３４^＋細胞）について濃縮された、より明確にされた集団が使用されている［Ｖａｎ Ｅｐｐｓ、Ｂｌｏｏｄ Ｃｅｌｌｓ、２０：４１１（１９９４）］。骨髄に加えて、そのような細胞は他の供給源（例えば、末梢血（ＰＢ）および新生児臍帯血（ＣＢ）など）に由来し得る［Ｅｍｅｒｓｏｎ、Ｂｌｏｏｄ、８７：３０８２（１９９６）］。ＢＭと比較したとき、ＰＢ細胞を用いた移植は汎血球減少症の期間を短くし、感染および出血の危険性を低下させる［Ｂｒｕｇｇｅｒ、Ｎ Ｅｎｇｌ Ｊ Ｍｅｄ、３３３：２８３、１９９５；Ｗｉｌｌｉａｍｓ、Ｂｌｏｏｄ、８７：１６８７（１９９６）；Ｚｉｍｍｅｒｍａｎ、Ｊ Ｈｅａｍａｔｏｔｈｅｒａｐｙ、５：２４７（１９９６）］。

ＰＢを移植のために使用することのさらなる利点がその入手性である。ＰＢ移植についての律速要因は、循環する多能性幹細胞／前駆細胞の数が少ないことである。

十分なＰＢ由来幹細胞を移植のために得るために、これらの細胞は、化学療法およびサイトカインを用いた治療による骨髄から循環へのその動員の後での反復した白血球搬出によって「集められる」［Ｂｒｕｇｇｅｒ、Ｎ Ｅｎｇｌ Ｊ Ｍｅｄ、３３３：２８３、１９９５；Ｗｉｌｌｉａｍｓ、Ｂｌｏｏｄ、８７：１６８７（１９９６）］。そのような治療は、正常なドナーには明らかに適していない。

エクスビボ拡大された幹細胞を移植のために使用することは下記の利点を有する［Ｋｏｌｌｅｒ、Ｂｌｏｏｄ、８２：３７８（１９９３）；Ｌｅｂｋｏｗｓｋｉ、Ｂｌｏｏｄ Ｃｅｌｌｓ、２０：４０４（１９９４）］：

そのような使用は、成体造血系を再構築するために要求される血液量を少なくし、また、動員および白血球搬出の必要性を取り除くことができる［Ｂｒｕｇｇｅｒ、Ｎ Ｅｎｇｌ Ｊ Ｍｅｄ、３３３：２８３、１９９５］。

そのような使用は、少数のＰＢ細胞またはＣＢ細胞の貯蔵を可能性のある将来の使用のために可能にする。

悪性腫瘍を有するレシピエントの自家移植の場合、自家注入における混入する腫瘍細胞が、多くの場合、疾患の再発の一因となる［Ｂｒｕｇｇｅｒ、Ｎ Ｅｎｇｌ Ｊ Ｍｅｄ、３３３：２８３、１９９５］。ＣＤ３４^＋幹細胞を選択および拡大することにより、最終的な移植物における腫瘍細胞の負荷量が少なくなる。

培養物はＴリンパ球の著しい枯渇をもたらし、これは、移植片対宿主病を低下させるために同種移植片の状況では有用であり得る。

臨床研究では、少数のＰＢ ＣＤ３４^＋細胞に由来するエクスビボ拡大された細胞の移植により、造血が、高用量の化学療法により治療されたレシピエントにおいて回復され得ることが示されるが、その結果は、これらの培養細胞の長期にわたるインビボ造血能についての確固たる結論を未だ可能にしていない［Ｂｒｕｇｇｅｒ、Ｎ Ｅｎｇｌ Ｊ Ｍｅｄ、３３３：２８３、１９９５；Ｗｉｌｌｉａｍｓ、Ｂｌｏｏｄ、８７：１６８７（１９９６）］。

成功した移植のためには、長期間にわたる生着だけでなく、血球減少症期の持続期間を短くすることが非常に重要である。中間および後期の前駆細胞を移植物に含めることにより、ドナー由来の成熟した細胞の産生を加速することができ、それにより、血球減少症期を短くすることができる。従って、エクスビボ拡大された細胞が、造血の短期間の回復および長期間の修復を最適化するために、本明細書中上記で記載されたようにニコチンアミドに供された幹細胞および／または前駆細胞に加えて、より分化した細胞を含むことが重要である。拡大された中間および後期の分化決定された細胞（特に、好中球系譜および巨核球系譜に分化決定された細胞）を、拡大された幹細胞および／または前駆細胞と一緒に含むことは、この目的に役立つに違いない［Ｓａｎｄｓｔｒｏｍ、Ｂｌｏｏｄ、８６：９５８（１９９５）］。

そのような培養物は、造血を、骨髄が完全に除かれたレシピエントで修復することにおいて、同様にまた、従来の放射線療法または化学療法の後でのレシピエントの骨髄の回復を短くするための支援策を提供することにおいて有用であり得る。

組織再生：本発明の幹細胞集団は、組織再生を促進させるために使用することができる。幹細胞の移植は、再生医療、再建手術、組織工学、新しい組織を再生すること、および、病的器官または傷害器官を本来のように治癒することにおける利益のために非常に有望である（総説については、Ｃｚｙｚ他、Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ、２００３、３８４：１３９１〜４０；Ｓｙｌｖｅｓｔｅｒ他、Ａｒｃｈ Ｓｕｒｇ、２００４、１３９：９３〜９９を参照のこと）。さらに、ニューロンおよび支持するグリア細胞がハンチングトン病の治療における移植のために使用されており（米国特許第６５２４８６５号（Ｆｒｅｅｄ他））、また、膵臓の小島細胞がＩ型糖尿病およびＩＩ型糖尿病のための移植のために使用されつつある（例えば、米国特許第６３２６２０１号（Ｆｕｎｇ他）および同第７０４５３４９号（Ｂｅｎｅｄｉｃｔ他）を参照のこと）。筋肉および筋肉由来細胞が臨床的使用について研究中であり、傷害を受けた心臓組織、骨組織および関節構造体に移植されたときには有望な結果を示している（米国特許第６８６６８４２号（Ｃｈａｎｃｅｌｌｏｒ他）を参照のこと）。従って、本発明の１つの態様によれば、生着または移植のための細胞は、筋肉、皮膚、骨、リンパ器官、膵臓、肝臓、胆嚢、腎臓、消化管器官、気道器官、生殖器官、尿路器官、血液関連器官、胸腺、脾臓および神経系器官からなる群から選択される器官に由来することができる。本発明の方法によって埋め込みのために調製することができる細胞の例には、初代培養物、ならびに、確立された細胞株が挙げられる。これらの例には、膵臓小島細胞、ヒト包皮線維芽細胞、ベータ細胞インスリノーマ、ＮＴ２細胞、胚性細胞、胚性幹細胞、肝細胞、ドーパミンを分泌する腹側中脳細胞、神経芽細胞様細胞、副腎髄質細胞、Ｔ細胞、および、これらの組合せなどが挙げられるが、これらに限定されない。この部分的な列挙から理解され得るように、すべてのタイプの細胞（皮膚、神経、血液、器官、筋肉、腺、骨、消化系、生殖系および免疫系の細胞を含む）、ならびに、すべての起源種の細胞をこの方法によって首尾良く調製することができる。

近年の報告では、移植または輸注された幹細胞が、幹細胞が由来した組織とは異なる非相同的組織において再生を高めることができることが明らかにされている。例えば、梗塞した心筋における高まった筋発生および血管形成が骨髄幹細胞注入後に認められている（Ｔｓｅ他、Ｌａｎｃｅｔ、２００３、３６１：４７〜７９；Ｊａｃｋｓｏｎ他、Ｊ Ｃｌｉｎ Ｉｎｖｅｓｔ、２００１、１０７：１３９５〜４０２；Ｏｒｌｉｃ他、Ｎａｔｕｒｅ、２００１、４１０：７０１〜５；Ｌｅｅ他、Ｃｅｌｌ Ｃｙｃｌｅ、２００５、４：８６１〜６４；Ｎａｇａｙａ他、Ａｍ Ｊ Ｈｅａｒｔ Ｃｉｒｃ Ｐｈｙｓ、２００４、２８７：Ｈ２６７０〜７６）。他の研究では、骨髄幹細胞、内皮幹細胞および骨格筋幹細胞が虚血性腎障害において有益であることが示されている（Ｔｏｇｅｌ他、ＡＪＰ Ｒｅｎａｌ Ｐｈｙｓ、２００５、２８９：Ｆ３１〜Ｆ４２、および、Ａｒｒｉｅｒｏ他、ＡＭＪ Ｒｅｎ Ｐｈｙｓ、２００４、２８７：Ｆ６２１〜２７）。

遺伝子治療：成功した長期間の遺伝子治療のためには、導入遺伝子がそのゲノムに安定的に組み込まれている高頻度の遺伝子改変された細胞が必須要件である。例えば、ＢＭ組織において、細胞の大部分が、細胞周期に沿って循環する前駆細胞である一方で、幹細胞は細胞集団のほんの小さい割合を構成するだけであり、また、幹細胞のほとんどが、休止している非循環の状態にある。ウイルスに基づくベクター（例えば、レトロウイルスベクター）は活発な細胞分裂を宿主ゲノム内への導入遺伝子の組み込みのために必要とする。従って、新鮮な幹細胞への遺伝子移入は非常に非効率的である。選択された細胞集団をエクスビボで貯蔵および処理することができること、ならびに、それらのホーミング能および生着能を高めることができることは、遺伝子改変された細胞の移植を首尾良く使用することの増大した可能性を提供する［Ｐａｌｍｉｔｅｒ、Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ、９１（４）：１２１９〜１２２３（１９９４）］。

養子免疫治療：エクスビボ拡大された明確なリンパ系サブ集団が、様々な悪性腫瘍、免疫不全症、ウイルス疾患および遺伝的疾患の養子免疫療法のために研究および使用されている［Ｆｒｅｅｄｍａｎ、Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、２：４６（１９９６）；Ｈｅｓｌｏｐ、Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、２：５５１（１９９６）；Ｐｒｏｔｔｉ、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ、５６：１２１０（１９９６）］。

この治療では、要求される免疫応答が高められるか、または、不完全な機能が置き換えられる。この方法は、非常に多数の自家キラーＴ細胞、また同様に、同種のエクスビボ拡大された非特異的なキラーＴ細胞、および、続いて、エクスビボ拡大された特異的な腫瘍浸潤性リンパ球を使用して、Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ他によって臨床的に開拓された［Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ、Ｊ Ｎａｔｌ Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔ、８５：６２２、１９９３］。

機能的に活性な抗原提示細胞を同様に、サイトカインにより支持された培養において、ＣＤ３４^＋のＰＢ細胞の出発集団から成長させることができる。これらの細胞は可溶性のタンパク質抗原を自家Ｔ細胞にインビトロで提示することができ、従って、高用量の化学療法の後での微小残存病変の免疫治療のための新しい見込みをもたらす。抗原提示する樹状細胞のエクスビボ拡大が同様に研究されており、これは、現在提案されている技術のさらなる有望な適用である［Ｂｅｒｎｈａｒｄ、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ、１０：９９（１９９５）；Ｆｉｓｃｈ、Ｅｕｒ Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ、２６：５９５（１９９６）；Ｓｉｅｎａ、Ｅｘｐｔ Ｈｅｍａｔｏｌ、２３：１４６３（１９９６）］。

エクスビボ適用についてのさらなる例：
分化した非幹性細胞、ならびに、ニコチンアミドによる幹細胞および前駆細胞の治療のさらなる適用には、皮膚再生、肝臓再生、筋肉再生、骨粗鬆症における適用のための骨成長の刺激、ならびに、関節障害および関節炎障害を治療するための軟骨細胞／軟骨芽細胞および／または滑液細胞の移植が含まれる。

本発明の１つの態様によれば、細胞集団を本明細書中上記で記載された特徴に従ってニコチンアミドとエクスビボで接触させることは、幹細胞または非幹細胞の集団を、そのような細胞をその必要性のある対象の器官に埋め込むためにエクスビボまたはインビボで調製するために利用することができる。

本発明の細胞は、器官内への直接的な注入、血流内への注入、腹腔内注入などの手段によって移植することができる。好適な移植方法は、所望される器官への埋め込まれた細胞のホーミングおよび生着を、所望される器官特異的な遺伝子またはマーカーの発現、ならびに、対象の由来する器官の機能をモニターすることによって決定することができる。例えば、膵臓では、正常血糖の維持、インスリンおよび／またはＣペプチドの分泌が、本明細書中下記に開示されるような細胞置換治療の後における糖尿病宿主動物に対する機能修復の尺度であり得る。例えば、肝臓では、アルブミン合成をモニターすることができる。

本発明の細胞集団は、それ自体、本発明の細胞集団を含有する培養培地と一緒に与えることができ、また、培養培地から単離することができ、また、医薬的に許容され得るキャリア、ならびに、細胞の生着および／または器官の機能を促進し得るさらなる薬剤（例えば、免疫抑制剤、抗体、増殖因子）と組み合わせることができる。従って、本発明の細胞集団は、医薬的に許容され得るキャリアまたは希釈剤（例えば、無菌の生理的食塩水および水性緩衝溶液など）において投与することができる。そのようなキャリアおよび希釈剤の使用は当該技術分野では広く知られている。

本発明の組成物は、所望されるならば、有効成分（例えば、細胞）を含有する１つまたは複数の単位投薬形態物を含有し得るパックまたはディスペンサーデバイス（例えば、ＦＤＡ承認キットなど）で提供され得る。パックは、例えば、ブリスターパックのような、金属ホイルまたはプラスチックホイルを含むことができる。パックまたはディスペンサーデバイスには、投与のための説明書が付随し得る。パックまたはディスペンサーデバイスはまた、医薬品の製造、使用または販売を規制する政府当局によって定められた形式で、容器に関連した通知によって適応させることがあり、この場合、そのような通知は、組成物の形態、あるいはヒトまたは動物への投与の当局による承認を反映する。そのような通知は、例えば、処方薬物について米国食品医薬品局によって承認されたラベル書きであり得るか、または、承認された製品添付文書であり得る。医薬的に適合し得るキャリアに配合された本発明の調製物を含む組成物もまた、上でさらに詳述されたように、適応される状態を処置するために調製され、適切な容器に入れられ、かつ標識され得る。

本発明の方法に従って調製された細胞は、それ自体で対象に投与されることができ、または、好適なキャリアまたは賦形剤と混合される医薬組成物で投与されることができる。

本明細書中で使用される「医薬組成物」は、本明細書中に記載の有効成分の１つまたは複数と、他の化学的成分（例えば、生理学的に好適なキャリアおよび賦形剤など）との調製物を示す。医薬組成物の目的は、生物に対する化合物の投与を容易にすることである。

以降、交換可能に使用されうる表現「生理学的に許容され得るキャリア」および表現「医薬的に許容され得るキャリア」は、生物に対する著しい刺激を生じさせず、投与された化合物の生物学的な活性および性質を阻害しないキャリアまたは希釈剤を示す。アジュバントはこれらの表現に含まれる。

本明細書中において、用語「賦形剤」は、有効成分の投与をさらに容易にするために医薬組成物に添加される不活性な物質を示す。賦形剤の非限定的な例には、炭酸カルシウム、リン酸カルシウム、様々な糖およびデンプン、セルロース誘導体、ゼラチン、植物油およびポリエチレングリコールが含まれる。

薬物の配合および投与のための様々な技術が“Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ”（Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．、Ｅａｓｔｏｎ、ＰＡ）に見出され得る（これは参考として本明細書中に全体が組み込まれる）。

好適な投与経路には、例えば、経口送達、直腸送達、経粘膜送達、特に経鼻送達、腸管送達または非経口送達（これには、筋肉内注射、皮下注射および髄内注射、ならびに、クモ膜下注射、直接的な脳室内注射、静脈内注射、腹腔内注射、鼻内注射または眼内注射が含まれる）が含まれ得る。

あるいは、例えば、患者の組織領域に直接的に医薬組成物の注射をすることによって、全身的な方法よりも局所的に医薬組成物を投与し得る。

本発明に従って使用される医薬組成物は、医薬品として使用され得る調製物への有効成分の加工を容易にする賦形剤および補助剤を含む１つまたは複数の生理学的に許容され得るキャリアを使用して従来の様式で配合することできる。適正な配合は、選ばれた投与経路に依存する。

注射の場合、医薬組成物の有効成分は、水溶液において、好ましくは生理学的に適合し得る緩衝液（例えば、ハンクス溶液、リンゲル溶液、または生理学的な生理的食塩緩衝液など）において配合することができる。経粘膜投与の場合、浸透されるバリヤーに対して適切な浸透剤が配合において使用される。そのような浸透剤はこの分野では一般に知られている。

本発明に関連した使用のために好適な医薬組成物には、有効成分が、その意図された目的を達成するために効果的な量で含有される組成物が含まれる。より具体的には、「治療効果的な量」は、治療されている対象の病状（例えば、虚血）を予防、緩和あるいは改善するために効果的であるか、または、治療されている対象の生存を延ばすために効果的である、有効成分（例えば、核酸構築物）の量を意味する。

治療効果的な量の決定は、特に本明細書中に提供される詳細な開示を考慮して、十分に当業者の能力の範囲内である。

本発明の方法において使用される任意の調製物について、治療効果的な量または用量は、最初はインビトロでアッセイおよび細胞培養アッセイから推定することができる。例えば、用量は所望の濃度または滴定量を得るために動物モデルにおいて配合することが可能であり、そのような情報は、ヒトにおける有用な用量をより正確に決定するために使用することができる。

本明細書中に記載される有効成分の毒性および治療効力は、細胞培養または実験動物における、インビトロで標準的な薬学的手法によって、明らかにすることができる。これらのインビトロでの細胞培養アッセイおよび動物研究から得られたデータは、ヒトにおける使用に対する投薬量範囲を決定するために使用することができる。投薬量は、用いられる投薬形態および利用される投与経路に依存して変化し得る。正確な配合、投与経路および投薬量は、患者の状態を考慮して個々の医師によって選ぶことができる（Ｆｉｎｇｌ他、（１９７５）「Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ Ｂａｓｉｓ ｏｆ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ」，Ｃｈ．１ｐ．１参照）。

処置される状態の重篤度および応答性に依存して、投薬は、単回または複数回投与で行うことができ、この場合、処置期間は、数日から数週間まで、または治療が達成されるまで、または疾患状態の軽減が達成されるまで続く。

投与される組成物の量は、当然のことではあるが、処置されている患者、苦痛の重篤度、投与様式、処方医の判断などに依存する。

本発明のさらなる目的、利点および新規な特徴が、限定であることが意図されない下記の実施例を検討したとき、当業者には明らかになる。加えて、本明細書中上記に描かれるような、また、下記の請求項の節において特許請求されるような本発明の様々な実施形態および態様のそれぞれは、実験的裏付けが下記の実施例において見出される。

次に下記の実施例が参照されるが、下記の実施例は、上記の説明と一緒に、本発明を非限定様式で例示する。

本願で使用される用語と、本発明で利用される実験方法には、分子生化学、微生物学および組み換えＤＮＡの技法が広く含まれている。これらの技法は文献に詳細に説明されている。例えば以下の諸文献を参照されたい：「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ」Ｓａｍｂｒｏｏｋ他（１９８９）；Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｒ．Ｍ．編「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ」Ｉ〜ＩＩＩ巻（１９９４）、Ａｕｓｕｂｅｌ他著；「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ」Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓ，米国メリーランド州バルチモア（１９８９）；Ｐｅｒｂａｌ著「Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ」Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，米国ニューヨーク（１９８８）；Ｗａｔｓｏｎ他、「Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ＤＮＡ」Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｂｏｏｋｓ、米国ニューヨーク；Ｂｉｒｒｅｎ他編「Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ Ｓｅｒｉｅｓ」１〜４巻、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、米国ニューヨーク（１９９８）；米国特許の４６６６８２８号、４６８３２０２号、４８０１５３１号、５１９２６５９号および５２７２０５７号に記載される方法；Ｃｅｌｌｉｓ，Ｊ．Ｅ．編「Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｈａｎｄｂｏｏｋ」Ｉ〜ＩＩＩ巻（１９９４）；Ｃｏｌｉｇａｎ，Ｊ．Ｅ．編「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ」Ｉ〜ＩＩＩ巻（１９９４）；Ｓｔｉｔｅｓ他編「Ｂａｓｉｃ ａｎｄ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ」（第８版）、Ａｐｐｌｅｔｏｎ ＆ Ｌａｎｇｅ、米国コネティカット州ノーウォーク（１９９４）；ＭｉｓｈｅｌｌとＳｈｉｉｇｉ編「Ｓｅｌｅｃｔｅｄ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ」、Ｗ．Ｈ． Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏ．、米国ニューヨーク（１９８０）；また利用可能な免疫検定法は、例えば以下の特許と科学文献に広範囲にわたって記載されている：米国特許の３７９１９３２号、３８３９１５３号、３８５０７５２号、３８５０５７８号、３８５３９８７号、３８６７５１７号、３８７９２６２号、３９０１６５４号、３９３５０７４号、３９８４５３３号、３９９６３４５号、４０３４０７４号、４０９８８７６号、４８７９２１９号、５０１１７７１号および５２８１５２１号；Ｇａｉｔ，Ｍ．Ｊ．編「Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ」（１９８４）；Ｈａｍｅｓ，Ｂ．Ｄ．およびＨｉｇｇｉｎｓ Ｓ．Ｊ．編「Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ」（１９８５）；Ｈａｍｅｓ，Ｂ．Ｄ．およびＨｉｇｇｉｎｓ Ｓ．Ｊ．編「Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ａｎｄ Ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ」（１９８４）；Ｆｒｅｓｈｎｅｙ，Ｒ．Ｉ．編「Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ」（１９８６）；「Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ Ｃｅｌｌｓ ａｎｄ Ｅｎｚｙｍｅｓ」ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ（１９８６）；「Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ」Ｐｅｒｂａｌ，Ｂ．著（１９８４）および「Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ」１〜３１７巻、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ；「ＰＣＲ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：Ａ Ｇｕｉｄｅ Ｔｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ Ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ」、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、米国カリフォルニア州サンディエゴ（１９９０）；Ｍａｒｓｈａｋ他、「Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｆｏｒ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ−Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｃｏｕｒｓｅ Ｍａｎｕａｌ」、ＣＳＨＬ Ｐｒｅｓｓ、（１９９６）；なおこれらの文献類は、あたかも本願に完全に記載されているように援用するものである。その他の一般的な文献は、本明細書を通じて提供される。それらの文献に記載の方法は当業技術界で周知であると考えられ、読者の便宜のために提供される。それらの文献に含まれるすべての情報は本願に援用するものである。

材料および実験手順
臍帯血サンプル
細胞を正常な満期分娩の後の臍帯血から得た（インフォームドコンセントを得た）。サンプルを分娩後２４時間以内にＲｕｂｉｎｓｔｅｉｎ他［Ｒｕｂｉｎｓｔｅｉｎ他、Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ、１９９５、９２（２２）：１０１１９〜１０１２２］に従って集め、凍結した。使用前に、細胞を、２．５％のヒト血清アルブミン（ＨＡＳ、Ｂａｙｅｒ Ｃｏｒｐ．、Ｅｌｋｈａｒｔ、ＩＮ、米国）を含有するデキストラン緩衝液（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ、米国）において解凍し、Ｆｉｃｏｌｌｌ−Ｈｙｐａｑｕｅグラジエント（１．０７７ｇ／ｍＬ；Ｓｉｇｍａ）に重ね、８００ｘｇで３０分間遠心分離した。境界層の単核細胞を集め、０．５％のＨＳＡを含有するリン酸塩緩衝化生理的食塩水（ＰＢＳ、Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ）で３回洗浄した。ＣＤ３４＋細胞を精製するために、単核細胞分画物を、「ＭｉｎｉＭＡＣＳ ＣＤ３４前駆細胞単離キット」（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ Ｂｅｒｇｉｓｃｈ、Ｇｌａｄｂａｃｈ、ドイツ）を製造者の説明書に従って使用して２回の免疫磁石ビーズ分離に供した。このようにして得られたＣＤ３４＋集団の純度は、フローサイトメトリーによって評価されたとき、９５％〜９８％であった。

ＣＤ３４＋細胞のＦＡＣＳ分析
ＣＤ２６について陽性である前駆細胞の割合を、ＣＤ３４＋細胞を、Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎから購入した抗ＣＤ２６ ＦＩＴＣにより染色することによって求めた。

エクスビボ拡大
精製されたＣＤ３４＋細胞を、ＭＥＭα培地、１０％ウシ胎児血清（ＦＣＳ）およびサイトカイン（トロンボポイエチン（ＴＰＯ）、インターロイキン−６（ＩＬ−６）、ＦＬＴ−３リガンドおよび幹細胞因子（ＳＣＦ）、それぞれが５０ｎｇ／ｍｌの最終濃度である）（Ｐｅｒｐｏ Ｔｅｃｈ，Ｉｎｃ．、Ｒｏｃｋｙ Ｈｉｌｌ、ＮＪ）において、５ｍＭのニコチンアミド（ＮＡ）（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）とともに、または、ニコチンアミドを含むことなく、１ｘ１０^４細胞／ｍｌで培養バッグ（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｆｌｕｏｒｏｓｅａｌ Ｃｏ．、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）において培養し、空気における５％ＣＯ_２の加湿雰囲気において３７℃でインキュベーションした。ＮＡの様々な濃度（１ｍＭ〜１０ｍＭ）を用いて行われた予備的研究では、これら４つのサイトカインとの組合せにおいて、５ｍＭが最適なＮＡ濃度であったことが示された（データは示されず）。第３週まで、培養物には、同じ体積の新鮮な培地を毎週与え、その後、毎週、半分に減らした。細胞計数、コロニー形成ユニット（ＣＦＵｃ）アッセイおよび免疫表現型分析を本明細書中下記に記載されるように行った。

ＣＤ３４＋細胞の免疫表現型決定
ＭｉｎｉＭＡＣＳで再単離されたＣＤ３４＋細胞を、１％ＢＳＡを含有するＰＢＳにより洗浄し、ＣＤ３４＋Ｌｉｎ−細胞を決定するために、ＰＥコンジュゲート化抗ＣＤ３４抗体、および、ＣＸＣＲ４に対するＦＩＴＣコンジュゲート化抗体、ＶＬＡ−４に対するＦＩＴＣコンジュゲート化抗体（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ Ｉｎｔｎｌ，Ｉｎｃ．、Ｔｅｍｅｃｕｌａ、ＣＡ、米国）、ＬＦＡ−１に対するＦＩＴＣコンジュゲート化抗体（ＩＱ ｐｒｏｄｕｃｔ）、ＣＤ３８に対するＦＩＴＣコンジュゲート化抗体、または、様々な分化抗原（ＣＤ３８、ＣＤ３３、ＣＤ１４、ＣＤ１５、ＣＤ３、ＣＤ６１、ＣＤ１９）に対するＦＩＴＣコンジュゲート化抗体の混合物により（４℃で３０分間）二重染色した。（ＣＤ３４、ＣＤ３８およびＣＤ６１に対する抗体をＤＡＫＯ Ｇｌｏｓｔｒｕｐ，Ｇｒｏｕｐ（Ｃａｒｐｅｎｔｅｒｉａ、ＣＡ、米国）から購入し、一方、それ以外の抗体をＢｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ａｎｄ Ｃｏ（Ｓａｎ Ｊｏｓｅ、ＣＡ、米国）から購入した）。その後、細胞を上記緩衝液で洗浄し、ＦＡＣＳｃａｌｉｂｕｒ（登録商標）フローサイトメーター（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ａｎｄ Ｃｏ．、Ｓａｎ Ｊｏｓｅ、ＣＡ）を使用して分析した。１０^４個の細胞の放射を、対数増幅を使用して測定し、ＣｅｌｌＱｕｅｓｔソフトウエア（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ａｎｄ Ｃｏ、Ｓａｎ Ｊｏｓｅ、ＣＡ、米国）を使用して分析した。ＦＡＣＳ分析の結果がＣＤ３４＋細胞の百分率として示される。ＣＤ３４＋ＣＤ３８−細胞およびＣＤ３４＋Ｌｉｎ−細胞の絶対数を培養におけるＣＤ３４＋細胞の総数から計算した。

ＣＦＳＥ標識化
非培養細胞または培養細胞を洗浄し、血清非含有培地に１０^７細胞／ｍＬ未満で再懸濁した。ＣＦＳＥ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ，Ｉｎｃ．、Ｅｕｇｅｎｅ、ＯＲ、米国）を５μｇ／ｍｌの最終濃度で加え、細胞を３７℃で１０分間インキュベーションした。色素の取り込みを１０％ＦＣＳの添加によって停止させた。標識化の後、細胞を、１０％ＦＣＳが補充されたＰＢＳで３回洗浄し、蛍光強度についてフローサイトメトリーによって分析し、その後、非致死量の線量が照射されたＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスに静脈内注入した（マウスあたり１千万個〜２千万個の細胞）。

インビトロ遊走アッセイ
１００ｎｇ／ｍｌのＣＸＣＬ１２（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）を含有するＲＰＭＩ＋１０％ＦＣＳ（０．６ｍｌ）をＣｏｓｔｅｒ２４ウェル「トランスウェル」培養プレート（Ｃｏｒｎｉｎｇ，Ｉｎｃ、Ｃｏｒｎｉｎｇ、ＮＹ）の下部チャンバーに入れた。１００μｌの培地における細胞（２ｘ１０^５個）を上部チャンバーに多孔性メンブラン（細孔サイズ、５μｍ）の上に導入した。４時間後、細胞を両方のチャンバーから集め、フローサイトメトリー（ＦＡＣＳｓｏｒｔ、Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ａｎｄ Ｃｏ、Ｓａｎ Ｊｏｓｅ、ＣＡ、米国）によって計数した。自発的遊走のコントロール遊走を、ＣＸＣＬ１２を下部チャンバーに伴うことなく行った。

ホーミングのインビボ分析
ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウス（８週齢〜１０週齢）（Ｈａｒｌａｎ Ｌｔｄ．、イスラエル）に、非致死量の線量を（６７ｃＧｙ／分において３７５ｃＧｙで）照射し、２４時間後、ＣＦＳＥ標識の培養ＣＢ細胞または非培養ＣＢ細胞のいずれかを、尾静脈を介して接種した。マウスを注入後２４時間で屠殺し、骨髄サンプルを、その大腿骨および脛骨を４℃でＩＭＤＭにより流すことによって得た。ヒト細胞のホーミングを、標識されていないマウス細胞のバックグラウンドを上回るＣＦＳＥ染色細胞の視覚化によりフローサイトメトリーによって検出した。ＣＦＳＥの明るい蛍光は、標識されたヒト細胞を標識されていないマウス細胞から少なくとも１ｌｏｇによって分離するために十分であった。ヒト前駆細胞のホーミングを定量化するために、骨髄細胞をＡＰＣコンジュゲート化抗ヒトＣＤ３４モノクローナル抗体により染色し、ＣＦＳＥ^＋ＣＤ３４^＋細胞（ヒト前駆細胞）を計数した。それぞれのサンプルについて、１０００００個の事象を記録し、分析した。

ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスへのヒトＣＤ３４^＋細胞の移植
ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスを無菌の内部換気ケージ（Ｔｅｃｈｎｉｐｌａｓｔ、Ｂｕｇｕｇｉａｔｔｅ、イタリア）において飼育および維持した。８週齢のマウスに、上記で記載されたように、非致死量の線量を照射した。その後、マウスに、新鮮な精製されたＣＢ由来ＣＤ３４^＋細胞、または、培養で３週間後のその子孫全体を、尾静脈を介して接種した。ドナーの変動性を避けるために、数ユニットに由来するＣＢ由来のＣＤ３４^＋細胞をプールし、拡大培養ならびに群への注入のために使用した。マウスを第４週で屠殺し、骨髄サンプルを、その大腿骨および脛骨を４℃でＩＭＤＭにより流すことによって得た。ＮＯＤ／ＳＣＩＤ骨髄細胞のフローサイトメトリー分析を、ヒト細胞の生着を特定するために、ヒト白血球分化抗原に対するモノクローナル抗体を使用して、本明細書中上記で記載されたように行った。

ＳＣＩＤ再増殖細胞（ＳＲＣ）の定量化
ＳＲＣの頻度を、限界希釈分析、および、ポアソン統計学を以前に記載されたような一ヒットモデルに適用することによって定量化した。マウスは、その骨髄細胞の０．５％がヒトＣＤ４５を発現したならば、生着が陽性であるとして記録した。ＳＲＣの頻度、および、個々の集団の間での統計学的比較を、Ｌ−Ｃａｌｃソフトウエア（ＳｔｅｍＣｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｖａｎｃｏｕｖｅｒ、ＢＣ）を使用して最尤推定量によって計算した。

剪断流実験
可溶性の精製された７ドメインのヒトＶＣＡＭ−１（ｓＶＣＡＭ−１）を固定量のキャリア（２μｇ／ｍｌのＨＳＡ）と被覆培地（２０ｍＭの重炭酸ナトリウムにより緩衝化されたＰＢＳ、ｐＨ８．５）において混合し、単独で、あるいは、示された量の無傷のケモカインまたは熱不活性化されたケモカインとともに、３７℃で２時間、ポリスチレンプレート（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ａｎｄ Ｃｏ、Ｓａｎ Ｊｏｓｅ、ＣＡ、米国）における１０μｌのスポットとして吸着させた。プレートを洗浄し、ＨＳＡ（２０ｍｇ／ｍｌ）によりブロッキング処理した。ＶＣＡＭ−１部位密度を、^１２５Ｉ標識された抗ＶＣＡＭ−１ ｍＡｂ（４Ｂ９）を使用して評価した。非培養細胞、および、ニコチンアミドを含む培養、または、ニコチンアミドを含まない培養の後の細胞の細胞単層と、ＶＣＡＭ−１／ケモカインにより被覆された基体とを、フローチャンバーの下部表面（２６０μｍのすき間）として組み立て、結合培地により徹底的に洗浄した。フローチャンバーを倒立型位相差顕微鏡（Ｄｉａｐｈｏｔ３００；Ｎｉｋｏｎ Ｅｕｒｏｐｅ ＢＶ、Ｂａｄｈｏｅｖｅｄｏｒｐ、オランダ）のステージに載せた。すべてのフロー実験を３７℃で行った。細胞を、自動化されたシリンジポンプにより生じる所望の流速でチャンバーに通して１０^６細胞／ｍｌで灌流した。細胞灌流の全継続期間を長積算ＬＩＳ−７００ＣＣＤビデオカメラ（Ａｐｐｌｉｔｅｃｈ Ｒｉｇｉｃａｍ、イスラエル）およびＴｉｍｅ Ｌａｐｓｅ ＳＶＨＳ−Ｖｉｄｅｏレコーダー（ＡＧ−６７３０；Ｐａｎａｓｏｎｉｃ、日本）によりビデオテープに記録した。接着性基体とのすべての細胞相互作用を、０．９ｍｍの場経路に沿った個々の細胞の動きを１分間にわたって手作業で追うことによって求めた。ＶＣＡＭ−１保有表面との細胞相互作用は９５％超であり、４つのインテグリンに依存していた。それぞれの実験において、すべての事象を、基体のすぐ近くを流れる一定の細胞集団に対して正規化した。束縛（ｔｅｔｈｅｒ）のそれぞれのカテゴリーの頻度をユニットの百分率（事象ｘ細胞^−１ｘ１０^２）で表した；０．５ｄｙｎ／ｃｍ^２、１ｄｙｎ／ｃｍ^２および１．５ｄｙｎ／ｃｍ^２で測定された１％ユニットは、平均±範囲またはＳＤとして表されたとき、１．５ｘ１０^−３事象ｘ細胞^−１ｍｍ^−１ｓ^−１、３ｘ１０^−３事象ｘ細胞^−１ｍｍ^−１ｓ^−１および４．５ｘ１０^−３事象ｘ細胞^−１ｍｍ^−１ｓ^−１の束縛率に対応する。

統計学
ノンパラメトリックのウィルコクソンランク検定を、研究群の間における違いを検定するために適用した。適用された検定のすべてが両側であり、５％以下のｐ値を、統計学的に有意であると見なした。データを、ＳＡＳソフトウエア（ＳＡＳ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ、Ｃａｒｙ、ＮＣ）を使用して分析した。

実験結果
実施例１
ニコチンアミドはＣＤ３４^＋細胞上でのＣＤ２６／ジペプチジルペプチダーゼＩＶの発現をダウンレギュレーションする
ＨＳＣ ＣＤ２６の膜発現に対する、ニコチンアミドとの短期間のインキュベーションの影響を、ＦＡＣＳ分析によって検討した。

新たに精製されたＣＤ３４＋細胞をＣＤ２６の発現についてＦＡＣＳ分析し（Ｔ−０）、その後、ニコチンアミド（５ｍＭ）の存在下／非存在下で２０時間インキュベーションし（Ｔ−２０時間）、再びＦＡＣＳ分析した。下記の表１にまとめられる二連の実験で明らかにされるように、ニコチンアミドの存在下での２０時間のインキュベーション（Ｔ−２０）の後において、ＣＤ２６の発現が、ニコチンアミドの非存在下で２０時間維持された細胞、ならびに、新たに精製されたＣＤ３４＋細胞（Ｔ−０）と比較したとき、ニコチンアミドの存在によって著しく低下した（２倍〜３倍の低下）。

実施例２
ニコチンアミドは培養細胞の骨髄ホーミングを増大させる
培養細胞の低下した生着効率は、少なくとも部分的には、非培養細胞と比較して、そのホーミング能力における欠如に起因すると考えられている（Ｓｚｉｌｖａｓｓｙ，Ｓ．Ｊ．他、Ｂｌｏｏｄ、２０００、９５：２８２９〜３７）。培養細胞のホーミングに対するニコチンアミドの影響を評価するために、ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスに、５ｘ１０^４個のＣＤ３４＋細胞（０．５％のＣＤ３４＋細胞）を含有する１０ｘ１０^６個の非培養の単核細胞（ＭＮＣ）を移植したか、あるいは、ニコチンアミドとともに、または、ニコチンアミドを含まずに、サイトカインを含む培養で３週間後の全子孫を移植した（それぞれの移植が１８０ｘ１０^４個のＣＤ３４＋細胞を含有する）。移植前に、細胞をＣＦＳＥにより標識した。移植後２４時間で、レシピエントマウスのマウス骨髄にホーミングしたＣＦＳＥ標識されている細胞全体およびＣＦＳＥ標識されているＣＤ３４＋細胞をＦＡＣＳによって定量した。

同じ数の細胞およびＣＤ３４＋細胞が両方の培養群から移植されたとしても、ニコチンアミド処理されたＣＤ３４＋細胞のホーミングは、非培養のＣＤ３４＋細胞のホーミングと比較して６倍高く、一方、ニコチンアミドへの暴露を伴わないＣＤ３４＋細胞のホーミングはほんの２倍高かったにすぎない（ｎ＝２１、ｐ＜０．０５）（図１ａ）。培養細胞（ＭＮＣ）のホーミングは、ニコチンアミド非治療の細胞と比較して、ニコチンアミド処理の細胞に関して２倍高く、非培養のＭＮＣのホーミングと類似していた（ｎ＝２１、ｐ＜０．０５）（図１ｂ）。図１ｃ〜図１ｉは、非培養細胞または培養細胞が移植された代表的なマウスのＦＡＣＳ分析ドットプロットを示す。

実施例３
ニコチンアミドはケモカイン受容体および接着分子の機能性を増大させる
ケモカイン分子および接着分子における変化は、発現または機能性のいずれかであっても、培養されたＣＤ３４＋細胞におけるホーミング欠如を引き起こすことが示唆されており、これは、細胞が特異的な「ドッキング」リガンドに結合することが、循環から標的組織への細胞の効率的な通過のために非常に重要であるからである（Ｆｏｇｕｅｎｎｅ，Ｊ．他、Ｈａｅｍａｔｏｌｏｇｉｃａ、２００５、９０：４４５〜５１）。これは、様々な細胞タイプ（筋肉細胞、リンパ球、好酸球など）にわたるインテグリン分子および接着分子（例えば、ＶＬＡ−４およびＬＦＡ−１など）の広範囲の分布を考慮すると特に重要である。細胞のホーミングおよび生着のニコチンアミド媒介による強化におけるそのような接着分子および関連した分子の役割を明らかにするために、インビトロ遊走、および、接着分子の超遅発活性化抗原（ＶＬＡ−４）の機能性に対するニコチンアミドの影響を調べた。

トランスウェル遊走アッセイを使用して、非培養の造血細胞および培養された造血細胞のＣＸＣＬ１２誘導による遊走を、インテグリン分子および接着分子の機能に対するニコチンアミドの影響を評価して調べた。ＣＸＣＬ１２は、処理されたＣＤ３４＋細胞および非処理のＣＤ３４＋細胞の両方の遊走を強力に刺激した（図２ｄ）。しかしながら、ＣＸＣＬ１２誘導による遊走は、ニコチンアミドとともに培養された細胞（サイトカイン＋ＮＡ）の方が、ニコチンアミドを含むことなく培養された細胞（ｐ＞０．０２）または非培養の細胞（ｐ＝０．０５）と比較して著しく高かった（図２）。これらの結果から、ＮＡによるＣＤ３４＋細胞の処理は、そのリガンドＣＸＣＬ１２に対するＣＸＣＲ４の応答性を潜在的に増大させることができ、これにより、ニコチンアミド処理された細胞の高まった生着能およびホーミング能をもたらすことが示唆される。

接着分子に対する細胞結合の機能的性質を、剪断流分析を使用して調べたとき、ＶＣＡＭにおけるＶＬＡ−４媒介による結合および保持に対するニコチンアミドの強い影響が明らかにされた。図３は、ニコチンアミドにより処理された細胞において明らかである剪断ストレスによる除去に対して抵抗性である最初に沈降した細胞の割合が著しく高まったことを示す。

従って、図２および図３における結果から、移植前における細胞のニコチンアミド処理が、非培養の細胞またはサイトカイン単独で培養された細胞と比較したとき、増大した初期捕捉および固定化ＶＣＡＭ−１に対する結合、ならびに、増大した流れのもとでの保持によって示されるように、これらの細胞における接着分子およびサイトカイン関連分子の機能を増大させ、細胞遊走を高め、従って、細胞の移植可能性を高めることが明らかにされる。

実施例４
ＮＡはサイトカイン培養細胞のＳＣＩＤ再増殖能力を増大させた
ニコチンアミド処理を、ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスの再増殖によって、移植された細胞のホーミングおよび生着を高めることができることについて調べた。再増殖能力を評価するために、ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスに、最適でない移植、および、マウスの一部におけるその後の非生着を達成するために意図された用量の範囲にわたる非培養のＣＤ３４＋細胞（ｎ＝１２）、または、３週間の拡大をサイトカインとともに行った後のその子孫（ｎ＝１２）、または、３週間の拡大をサイトカイン＋ＮＡとともに行った後のその子孫（ｎ＝１３）を移植した。ヒト細胞の生着を移植後４週間で評価した。マウスは、レシピエントの骨髄細胞０．５％がＣＤ４５抗原を発現したならば（ＣＤ４５＋ならば）、生着が陽性であるとして記録した。図４ａに示されるように、３ｘ１０^３個のＣＤ３４^＋細胞の移植は非培養細胞において生着をもたらさなかった。同様に、サイトカインのみと培養された３ｘ１０^３個のＣＢ ＣＤ３４^＋細胞の子孫もまた、生着することができなかった。しかしながら、培養におけるニコチンアミドの存在はマウスにおいて３ｘ１０^３個のＣＢ ＣＤ３４^＋細胞の５０％の生着をもたらした。６ｘ１０^３個の細胞の用量範囲では（図４ｂ）、新鮮なＣＢ ＣＤ３４^＋細胞がマウスのわずかに１６．７％において生着しただけであり、これに対して、サイトカインとともに培養された６ｘ１０^３個のＣＤ３４^＋細胞の子孫はマウスの３３．３％において生着した。対照的に、同じ用量範囲で、サイトカインおよびニコチンアミドとともに培養された細胞の子孫はマウスの１００％において生着した（図４ｂ）。

ＳＣＩＤ再増殖細胞（ＳＲＣ）の頻度を、本明細書中上記で記載されるような最尤推定量を使用して計算した（図４ｃ〜図４ｅ）。非培養ＣＤ３４^＋細胞におけるＳＲＣの頻度は３６７５６個の細胞中１個であった（９５％の信頼区間［ＣＩ］、１／１１３３６６〜１／１１９１７）（図４ｃ）。サイトカインだけとともに培養された細胞におけるＳＲＣ頻度は１９９８２において１であり（ＣＩ、１／４７９７２〜１／８３２３）（図４ｄ）、ニコチンアミドおよびサイトカインの存在下で培養された細胞におけるＳＲＣ頻度は著しく高く、２６２０個の細胞中１個であった（ＣＩ、１／５１２７〜１／１３３９）（図４ｅ）。従って、ニコチンアミドを含む培養条件は、非培養細胞の１４倍の数のＳＲＣを支持し、サイトカイン単独で培養された細胞の７．６倍のＳＲＣを支持した。図４ｆは、ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスにおいて生着した、ＮＡ処理された培養細胞のインビボ多系譜分化を明らかにする。

ＩＬ−３処理された細胞におけるホーミングおよび生着に対するニコチンアミドの影響：ＩＬ−３は、移植された細胞の分化を促進させること、および、移植された細胞のＳＣＩＤ再増殖能力を弱めることが報告されている。ニコチンアミドが、サイトカインにさらされた細胞の生着能を調節するかを調べるために、ＩＬ−３とともに培養されたＣＢ由来のＣＤ３４^＋細胞に対するニコチンアミドの影響を評価した。移植実験では、ニコチンアミドによる処理が実際に、ＩＬ−３補充された培養物のＳＣＩＤ再増殖能を増大させたことが示された。図５ａは、１．２５〜５Ｘ１０^４個の細胞を注入した後における生着の割合を示す。図５ｂ〜図５ｃは、この実験で評価された最も低い細胞用量（１．２５Ｘ１０^４個の細胞）を移植した後における総ヒト細胞（図５ｂ）および前駆細胞（図５ｃ）の生着を示す。結果は、ヒト（ＣＤ４５＋）細胞が、ニコチンアミド処理の細胞が移植された５匹のマウスのうちの５匹の骨髄に存在するが、サイトカイン単独で処理された細胞が移植された５匹のマウスのうちのわずかに２匹にしか存在しないことを示す。移植後４週間でのヒト前駆細胞（ＣＤ４５＋ＣＤ３４＋）の生着は、ニコチンアミドとともに培養された細胞が移植されたマウスにおいてのみ認められただけであった。

本明細書中上記にもたらされる結果は、ニコチンアミドへの細胞の暴露が、細胞生着および細胞ホーミングにとって非常に重要である接着分子およびインテグリン分子の発現および機能を高め、また、細胞遊走能を増大させることができ、また、移植された細胞の優れた生着およびホーミングを明瞭に提供することを明瞭に示している。従って、ニコチンアミドを、高まったホーミング能および生着能を有する移植用の細胞調製物を提供するために使用することができる。

明確にするため別個の実施態様で説明されている本発明の特定の特徴は単一の実施態様に組み合わせて提供することもできることは分かるであろう。逆に、簡潔にするため単一の実施態様で説明されている本発明の各種の特徴は別個にまたは適切なサブコンビネーションで提供することもできる。

本発明はその特定の実施態様によって説明してきたが、多くの別法、変更および変形があることは当業者には明らかであることは明白である。従って、本発明は、本願の請求項の精神と広い範囲の中に入るこのような別法、変更および変形すべてを包含するものである。本願で挙げた刊行物、特許および特許願ならびにＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号はすべて、個々の刊行物、特許もしくは特許願またはＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号が各々あたかも具体的にかつ個々に引用提示されているのと同程度に、全体を本明細書に援用するものである。さらに、本願で引用または確認したことは本発明の先行技術として利用できるという自白とみなすべきではない。

参考として本明細書中に全体が組み込まれるＰＣＴ出願ＩＬ０３／０００６４の教示は、本発明および添付の請求項の範囲から除外されることが意図される。

移植後におけるＣＦＳＥ＋／ＣＤ３４＋細胞のホーミングを示すレシピエントの骨髄細胞のフローサイトメトリーの結果のヒストグラム（図１ａ）および移植後におけるＣＦＳＥ＋細胞全体のホーミングを示すレシピエントの骨髄細胞のフローサイトメトリーの結果のヒストグラム（図１ｂ）である。 非注入マウスから得られた骨髄細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｃ）、および、非培養細胞が注入されたマウスから得られた骨髄細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｄ）、サイトカインとともに培養された細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｅ）、ならびに、サイトカインおよびニコチンアミドとともに培養された細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｆ）が示される。 非培養細胞が注入されたマウスから得られた骨髄細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｇ）、サイトカインとともに培養された細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｈ）、ならびに、サイトカインおよびニコチンアミドとともに培養された細胞の代表的なフローサイトメトリー分析（図１ｉ）が示される。 造血細胞のインビトロ遊走に対するニコチンアミドの影響を示すヒストグラムである。 剪断流のもとでの固定化接着分子への細胞のＶＬＡ４媒介による結合に対するニコチンアミドの影響を示すグラフである。 ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスに移植されたヒト造血細胞のホーミングおよび生着に対するニコチンアミドの影響のグラフ表示である：移植前の細胞集団におけるヒト（ＣＤ４５＋）細胞の割合（図４ａおよび図４ｂ）；非培養ＣＤ３４＋細胞におけるＳＲＣの推定頻度（図４ｃ）、サイトカインを含む培養物におけるＳＲＣの推定頻度（図４ｄ）を示す。 ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスに移植されたヒト造血細胞のホーミングおよび生着に対するニコチンアミドの影響のグラフ表示である：サイトカインおよびニコチンアミドを含む培養物におけるＳＲＣの推定頻度（図４ｅ）およびＦＡＣＳによって測定されたときの、ニコチンアミドとともに３週間培養された１２ｘ１０^３個のＣＤ３４^＋細胞の子孫が移植された代表的なマウスにおける生着したヒト細胞の免疫表現型（図４ｆ）を示す。 分化促進条件のもとで培養された細胞の生着能に対するニコチンアミド（ＮＡ）の影響のグラフ表示である。

Claims (59)

1. 細胞ホーミング能および細胞生着能を高める方法であって、この方法は、細胞集団を、細胞ホーミング能および細胞生着能を高めるために十分な期間にわたって所定量のニコチンアミドにエクスビボまたはインビトロで供することを含み、下記の少なくとも１つによってさらに特徴づけられる、方法：
   （ｉ）前記細胞集団が造血幹細胞および／または造血前駆細胞の集団であり、前記期間が、幹細胞の拡大のためには不十分であるように選択されるか、あるいは、幹細胞および／または前駆細胞の拡大のためには不十分な条件のもとで選択される；
   （ｉｉ）前記ニコチンアミドの量および前記期間が、幹細胞および／または前駆細胞の拡大のためではなく、前記細胞集団の細胞によるＣＤ２６の発現をダウンレギュレーションするために十分であるように選択される；
   （ｉｉｉ）前記細胞集団が、造血細胞、造血幹細胞、単核細胞、初期肝臓前駆細胞、分化決定された前駆細胞、非造血幹細胞および非造血前駆細胞、または、胚性幹細胞および胚性前駆細胞を含まない；
   （ｉｖ）前記供することは栄養物の非存在下で行われる；
   （ｖ）前記供することはサイトカインの非存在下で行われる；
   （ｖｉ）前記供することはＦＬＴ−３リガンドの非存在下で行われる；
   （ｖｉｉ）前記供することは幹細胞因子（ＳＣＦ）の非存在下で行われる；
   （ｖｉｉｉ）前記供することは顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）の非存在下で行われる；
   （ｉｘ）前記供することは初期作用サイトカインの非存在下で行われる；
   （ｘ）前記供することは後期作用サイトカインの非存在下で行われる。
2. 前記ニコチンアミドが、ニコチンアミド、ニコチンアミド類似体、ニコチンアミド代謝物、ニコチンアミド類似体代謝物、および、それらの誘導体からなる群から選択される、請求項１に記載の方法。
3. 前記細胞集団は幹細胞を含む、請求項１に記載の方法。
4. 前記細胞集団は、造血細胞、造血幹細胞、単核細胞、初期肝臓前駆細胞、分化決定された前駆細胞、非造血幹細胞および非造血前駆細胞、または、胚性幹細胞および胚性前駆細胞を含まない、請求項１に記載の方法。
5. 前記細胞集団が、筋肉、皮膚、骨、リンパ器官、膵臓、肝臓、胆嚢、腎臓、消化管器官、気道器官、生殖器官、尿路器官、血液関連器官、胸腺、脾臓、ならびに、神経系器官からなる群から選択される器官に由来する、請求項１に記載の方法。
6. 前記細胞集団が、造血細胞、臍帯血細胞、動員された末梢血細胞、骨髄細胞、ならびに、胚性細胞からなる群から選択される供給源に由来する、請求項３に記載の方法。
7. 前記細胞集団が、骨髄または末梢血に由来する、請求項１に記載の方法。
8. 前記細胞集団が、新生児の臍帯血に由来する、請求項３に記載の方法。
9. 前記細胞集団が、単核細胞分画物に由来する、請求項３に記載の方法。
10. 前記細胞集団が、造血幹細胞について濃縮される、請求項１に記載の方法。
11. 造血幹細胞について濃縮された細胞集団を、前記エクスビボで供する工程の前に、または、前記エクスビボで供する工程と同時に、または、前記エクスビボで供する工程の後で選択する工程をさらに含む、請求項１に記載の方法。
12. 前記選択する工程がＣＤ３４により行われる、請求項１１に記載の方法。
13. 初期造血幹細胞および／または初期造血前駆細胞について濃縮された細胞集団を、前記エクスビボで供する工程の前に、または、前記エクスビボで供する工程と同時に、または、前記エクスビボで供する工程の後で選択する工程をさらに含む、請求項１に記載の方法。
14. 前記選択する工程がＣＤ１３３により行われる、請求項１３に記載の方法。
15. 前記選択する工程がＣＤ３４／ＣＤ３８により行われる、請求項１０に記載の方法。
16. 前記期間が１週間〜１８週間の間である、請求項１に記載の方法。
17. 前記期間が１日〜７日の間である、請求項１に記載の方法。
18. 前記期間が２日〜４日の間である、請求項１に記載の方法。
19. 前記期間が１２時間〜３０時間の間である、請求項１に記載の方法。
20. 前記細胞集団が造血幹細胞および造血前駆細胞の集団であり、前記期間が、幹細胞の拡大のためには不十分であるように選択される、請求項１に記載の方法。
21. 前記期間が１２時間〜３０時間の間である、請求項２０に記載の方法。
22. 前記細胞集団が造血幹細胞および造血前駆細胞の集団であり、前記供することが、幹細胞の拡大のためには不十分である条件のもとで行われる、請求項１に記載の方法。
23. 前記幹細胞の拡大のためには不十分である条件が、栄養物の非存在、後期作用サイトカインの非存在、および、初期作用サイトカインの非存在からなる群から選択される、請求項２２に記載の方法。
24. 前記期間が、細胞におけるＣＤ２６の発現をダウンレギュレーションするためには十分であるが、細胞増殖のためには不十分である、請求項１に記載の方法。
25. 前記ニコチンアミドの濃度が０．０１ｍｇ／ｍｌ〜６０ｍｇ／ｍｌである、請求項１に記載の方法。
26. 前記ニコチンアミドの効果的な量が１０ｍｇ／ｋｇ体重〜２０ｍｇ／ｋｇ体重である、請求項１に記載の方法。
27. 前記細胞が培養された細胞である、請求項１に記載の方法。
28. 前記細胞が細胞増殖のための条件の存在下でニコチンアミドと接触させられる、請求項１に記載の方法。
29. 細胞を対象に移植する方法であって、この方法は、
    （ａ）細胞を含む細胞集団を、前記細胞におけるホーミングおよび生着を高めるために十分な期間にわたって所定量のニコチンアミドにエクスビボで供すること、ただし、この方法は、下記の少なくとも１つによってさらに特徴づけられる：
    （ｉ）前記細胞集団が造血幹細胞および／または造血前駆細胞の集団であり、前記期間が、幹細胞の拡大のためには不十分であるように選択されるか、あるいは、幹細胞および／または前駆細胞の拡大のためには不十分な条件のもとで選択される；
    （ｉｉ）前記ニコチンアミドの量および前記期間が、幹細胞および／または前駆細胞の拡大のためではなく、前記細胞集団の細胞によるＣＤ２６の発現をダウンレギュレーションするために十分であるように選択される；
    （ｉｉｉ）前記細胞集団が、造血細胞、造血幹細胞、単核細胞、初期肝臓前駆細胞、分化決定された前駆細胞、非造血幹細胞および非造血前駆細胞、または、胚性幹細胞および胚性前駆細胞を含まない；
    （ｉｖ）前記供することは栄養物の非存在下で行われる；
    （ｖ）前記供することはサイトカインの非存在下で行われる；
    （ｖｉ）前記供することはＦＬＴ−３リガンドの非存在下で行われる；
    （ｖｉｉ）前記供することは幹細胞因子（ＳＣＦ）の非存在下で行われる；
    （ｖｉｉｉ）前記供することは顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）の非存在下で行われる；
    （ｉｘ）前記供することは初期作用サイトカインの非存在下で行われる；
    （ｘ）前記供することは後期作用サイトカインの非存在下で行われる；
    および、続いて、
    （ｂ）細胞をその必要性のある対象に移植すること
    を含む方法。
30. 前記細胞集団は、造血細胞、造血幹細胞、単核細胞、初期肝臓前駆細胞、分化決定された前駆細胞、非造血幹細胞および非造血前駆細胞、または、胚性幹細胞および胚性前駆細胞を含まない、請求項２９に記載の方法。
31. 対象はヒト対象である、請求項２９に記載の方法。
32. 前記ニコチンアミドが、ニコチンアミド、ニコチンアミド類似体、ニコチンアミド代謝物、ニコチンアミド類似体代謝物、および、それらの誘導体からなる群から選択される、請求項２９に記載の方法。
33. 前記細胞集団は幹細胞を含む、請求項２９に記載の方法。
34. 前記細胞集団は、造血細胞、造血幹細胞、単核細胞、初期肝臓前駆細胞、分化決定された前駆細胞、非造血幹細胞および非造血前駆細胞、または、胚性幹細胞および胚性前駆細胞を含まない、請求項２９に記載の方法。
35. 前記細胞集団が、筋肉、皮膚、骨、リンパ器官、膵臓、肝臓、胆嚢、腎臓、消化管器官、気道器官、生殖器官、尿路器官、血液関連器官、胸腺、脾臓、ならびに、神経系器官からなる群から選択される器官に由来する、請求項２９に記載の方法。
36. 前記細胞集団が、造血細胞、臍帯血細胞、動員された末梢血細胞、ならびに、骨髄細胞からなる群から選択される供給源に由来する、請求項３３に記載の方法。
37. 前記細胞集団が、骨髄または末梢血に由来する、請求項３３に記載の方法。
38. 前記細胞集団が、新生児の臍帯血に由来する、請求項３３に記載の方法。
39. 前記細胞集団が、単核細胞分画物に由来する、請求項３３に記載の方法。
40. 造血幹細胞について濃縮された細胞集団を、前記エクスビボで供する工程の前に、または、前記エクスビボで供する工程と同時に、または、前記エクスビボで供する工程の後で選択する工程をさらに含む、請求項２９に記載の方法。
41. 前記選択する工程がＣＤ３４により行われる、請求項４０に記載の方法。
42. 初期造血幹細胞および／または初期造血前駆細胞について濃縮された細胞集団を、前記エクスビボで供する工程の前に、または、前記エクスビボで供する工程と同時に、または、前記エクスビボで供する工程の後で選択する工程をさらに含む、請求項２９に記載の方法。
43. 前記選択する工程がＣＤ１３３により行われる、請求項４２に記載の方法。
44. 前記選択する工程がＣＤ３４／ＣＤ３８により行われる、請求項４０に記載の方法。
45. 前記期間が１週間〜１８週間の間である、請求項２９に記載の方法。
46. 前記期間が１日〜７日の間である、請求項２９に記載の方法。
47. 前記期間が２日〜４日の間である、請求項２９に記載の方法。
48. 前記期間が１２時間〜３０時間の間である、請求項２９に記載の方法。
49. 前記細胞集団が造血幹細胞および造血前駆細胞の集団であり、前記期間が、幹細胞の拡大のためには不十分であるように選択される、請求項２９に記載の方法。
50. 前記期間が１２時間〜３０時間の間である、請求項４９に記載の方法。
51. 前記細胞集団が造血幹細胞および造血前駆細胞の集団であり、前記供することが、幹細胞の拡大のためには不十分である条件のもとで行われる、請求項２９に記載の方法。
52. 前記幹細胞の拡大のためには不十分である条件が、栄養物の非存在、後期作用サイトカインの非存在、および、初期作用サイトカインの非存在からなる群から選択される、請求項５１に記載の方法。
53. 前記期間が、細胞におけるＣＤ２６の発現をダウンレギュレーションするためには十分であるが、細胞増殖のためには不十分である、請求項２９に記載の方法。
54. 前記期間が１２時間〜３０時間の間である、請求項４１に記載の方法。
55. 前記ニコチンアミドの濃度が１ｍｇ／ｍｌ〜２０ｍｇ／ｍｌである、請求項２９に記載の方法。
56. 幹細胞を含む前記細胞集団が、拡大された、分化していない細胞の集団である、請求項２９に記載の方法。
57. 工程（ａ）の後に前記幹細胞および／または前駆細胞をエクスビボ拡大する工程をさらに含む、請求項２９に記載の方法。
58. 請求項１に記載の方法による高まった生着能および／またはホーミング能によって特徴づけられる細胞を含む細胞集団。
59. 請求項５８に記載の細胞集団を有効成分として含み、かつ、医薬的に許容され得るキャリアを含む医薬組成物。

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