JP2009102288A - 脂肪蓄積阻害剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】ハマナス類の花または偽果、またはマイカイの花に含まれるtellimagrandinIを主成分とする、脂肪細胞への脂肪蓄積阻害剤。
【選択図】なし
Description
(1)ハマナス花抽出物の作成
北海道北見産乾燥ハマナス(Rosa rugosa thumb)花1kgに10Lの50(V/V)%エタノール水溶液を加えて、室温下一晩放置した。この混合物をろ過し、不溶物を回収し再度50%エタノール水溶液6Lを加えて一晩抽出した。得られた抽出液をすべて合わせ、減圧下溶媒を溜去し、凍結乾燥後、抽出物551.5gを得た。
中国市場品乾燥マイカイ(Rosa maikwai Hara)の花1kgに10Lの50(V/V)%エタノール水溶液を加えて、室温下一晩放置した。この混合物をろ過し、不溶物を回収し再度50%エタノール水溶液6Lを加えて一晩抽出した。得られた抽出液をすべて合わせ、減圧下溶媒を溜去し、凍結乾燥後、抽出物526.7gを得た。
上記北見産乾燥ハマナス花抽出物100.4gを水300mlに溶解し、MCI GELCHP20P(平均粒径75/150μm、三菱化学社製)を充填(内径10.0cmx28cm)したカラムに附し、水3L、50(V/V)%アセトン水溶液3Lならびにアセトン2Lで溶出した。得られた50%アセトン水溶液画分を減圧下にて溶媒を溜去し、凍結乾燥後、ポリフェノール画分30.6gを得た。
北海道紋別市で採集した乾燥ハマナス(Rosa rugosa thumb)の花500gに3Lの70(V/V)%アセトン水溶液を加えて、室温下一晩放置した。この混合物をろ過し、不溶物を回収し再度70%アセトン水溶液1.5Lを加えて一晩抽出した。この混合物をろ過し、不溶物を回収し30(V/V)%アセトン水溶液1.5Lで上記と同様の操作を2回行い、得られた抽出液をすべて合わせ、減圧下アセトンを溜去し、残留物に酢酸エチルを加え、水層と酢酸エチル層に分配し、酢酸エチル層を回収した。水層に再び酢酸エチルを加え分配し、計3回分配操作を行った。得られた酢酸エチル層を減圧下にて溶媒を溜去し29.2gの粉末を得た。
移動層:エタノール/水/アセトン(容積比が100/0/0、90/10/0、80/20/0、70/30/0、60/40/0、54/36/10、48/32/20、42/28/30、36/24/40および0/0/100の順で溶出を行った。)
移動層:メタノール/水(15/8、20/80、25/75および30/70)+0.3%容量のギ酸添加。
カラム:Inaertsil ODS−3(φ4.6x150mm、ジーエルサイエンス株式会社製)
移動層:12.5%(V/V)アセトニトリル水溶液+0.2%容量のギ酸添加
カラム温度:40℃
流速:1ml/min
検出波長:280nm(UV)
(1)脂肪細胞への分化・誘導
マウス前駆脂肪細胞3T3−L1は、大日本住友製薬株式会社から購入した。3T3−L1の培養は、10%calf serum(大日本住友製薬Lot.No.8979H)、100units/mlのペニシリンならびに100mg/mlのストレプトマイシン(Gibco社製)を含むDMEM培地(Sigma社製)で継代培養した。
脂肪細胞の蓄積脂肪量はオイルレッド0染色液を用い細胞内の脂肪滴を染色し、その染色液を吸光度法を用いて測定した。
すなわち、24ウェルプレートに播種したのち分化誘導したものを用いた。8日間培養後PBSで洗浄した後、10%ホルマリン溶液で固定した。その後、0.5%オイルレッド0/イソプロピルアルコール溶液:蒸留水=6:4の割合で混合した溶液を、各ウェルに加え15分間染色した。染色後、蒸留水で3回よく洗浄し検鏡した。検鏡後、各ウェルにイソプロパノールを500μl添加し、10分間室温で溶解した後、吸光度法(570nm)により細胞中の脂肪量を測定した。
細胞は上記の方法により、10×104cells/wellで12ウェルプレートに播種したのち分化誘導したものを用いた。8〜10日間培養後PBSで洗浄した後、細胞溶解バッファー(25mM Tris−HCl/1mM EDTA,pH7.5)に溶解後、超音波破砕を行った。Triglyceride E−test(和光純薬株式会社製)を用いてトリグリセライド量を測定した。求められたトリグリセライド量は、タンパク質含量で補正した。タンパク質の測定は、BCA Protein Assay Kit(PIERCE社製)を用いた。
(1)Glycerol−3−phoshate dehydrogenase(GPDH)活性の測定
GPDH活性の測定は、上記の方法により細胞を播種したのち分化誘導したものを用いた。8日間培養後PBSで洗浄した後、酵素抽出バッファーに溶解後、超音波破砕を行った。12,800×g、4分間遠心後、上清を回収し、測定溶液とした。活性の測定は、GPDHActivity Measurement Kit(株式会社プライマリーセル社製)を使用した。得られたGPDH活性は、タンパク質含量で補正した。タンパク質の測定は、トリグリセライド量の測定試験と同じ方法を用いた。
遺伝子発現は、real time RT−PCR(ABI7500PE、Applied Biosystems社製)を用いて測定した。3T3−L1細胞からのRNAの抽出は、Trizol Reagents(インビトロジェン社製)に溶解し、ポリトロンを用いてホモジナイズした後、フェノールクロロホルム法で粗抽出した。精製はRNeasy Mini Kit(Qiagen社製)を使用しDNaseI処理を行った。回収したtotal RNAの純度は、アガロース電気泳動と吸光度により確認を行った。cDNA合成は0.1μgのTotal RNAを鋳型として、Taqman Reverse Transcription Reagents(Applied Biosystems社製)を用いて行った。すなわち、全RNA 0.1μg、1xTaqman RT Buffer、5.5mM 塩化マグネシウム、500μM dNTPs、2.5μM Randam Hexamer、0.4U/μl RNase InhibitorとMultiScribe Reverse Transcriptase 1.25U/μlを含む25μlの反応液中で反応させた。cDNA合成反応は、25℃で10分間の前加熱の後、48℃で60分間のRT反応を行い、引き続き95℃で5分間の後加熱を行った。次に得られたcDNAを鋳型として、1xSYBR Green PCR Master Mix、各0.2μ MFor ward primerおよびReverse Primerを含む20μlの反応液中で反応を行った。PCR反応は、50℃で2分間、95℃で10分間の熱変性の後、95℃で15秒間、60℃で1分間の反応を40サイクル行った。実験に使用した6種類のプライマーは、Primer3を用いて設計した。それぞれの遺伝子発現の定量は、β−Actinの発現量を内部標準としてΔΔCt法により算出した。
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