JP2008546788A - 前立腺癌に対するワクチンに関する方法及び組成物 - Google Patents

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Abstract

本発明の目的は、人に投与することによりヒトPSAに対する免疫応答をもたらす、非ヒト霊長類PSAを含む前立腺癌に対するワクチンに関する方法及び組成物を提供することである。より全般的に言えば、本発明の目的は、人における非ヒト霊長類異種抗原(例えば、タンパク質)の使用に関する方法及び組成物において、使用する非ヒト霊長類異種抗原に関して、人の生来の自己抗原に対して最適な免疫応答を誘発するために、該非ヒト霊長類異種抗原とヒト自己抗原との間の種差が相対的に少ない、方法及び組成物を提供することである。

Description

本願は、2005年6月21日に出願した同時係属中の米国仮出願第60/692238号に基づく優先権を請求する。
本発明は、全般的にワクチンに関した方法及び組成物に関し、より特定すれば、前立腺癌に対するワクチンに関した方法及び組成物に関する。
背景技術を考察する前に、その考察中の括弧[]付き番号は、本明細書の末尾に列挙した以下の書誌参考文献における番号付き参考資料を指すことに留意されたい。
背景に関して言えば、米国では、前立腺癌は、最も診察頻度の高い形態の癌であり、男性において癌の第2の死因である[2]。局所腫瘍に対する現行の治療モダリティには、外科手術及び放射線療法が挙げられ、概ね成績が良い。しかし、現行のホルモン療法は一時的にしか有効でない[3]ため、転移疾患の治療にはそれ程有益ではない。したがって、前立腺癌の新たな治療法が求められている。
CD8+細胞傷害性Tリンパ球(CTL)に基づく免疫療法は、特に、転移疾患の予防及びアジュバント治療に対して非常に有望な、1つの潜在的な新療法手段である[4、5]。CTLは、標的細胞の表面上にあるクラスI主要組織適合遺伝子複合体(MHC)との複合体において、短鎖ペプチド(8〜10アミノ酸)の形態を取る抗原を認識する。こうした細胞を直接溶解できるため、CTLは腫瘍免疫療法にとって魅力的である。
前立腺特異抗原(PSA)は、CTLによる前立腺癌細胞の特異的破壊のための腫瘍抗原として提案されてきた。前立腺に対する発現の厳密な組織特異性、前立腺癌細胞による継続的発現、並びに生化学的、遺伝的及び細胞生物学的な入手可能データの豊富さすべてのために、PSAは、前立腺癌免疫療法の潜在的標的として特徴付ける上で優れた候補である。
幾種かのPSA系ワクチンが、進行前立腺癌の患者においてPSAに対する免疫応答を刺激するために、最近実施した臨床試験で評価された。これらのワクチンは、PSAを発現する組換えワクシニアウィルス(rV−PSA)[6〜9]、リポソーム中に処方した組換えPSAタンパク質[10]、及び組換えPSAタンパク質をパルス導入した[11]、又はPSAコードRNAをトランスフェクトした[12]自家樹状細胞であった。
CD8+T細胞
CD8+T細胞の主要な生物学的機能は、体内の病原体感染細胞を除去することである。感染細胞のT細胞による認識に関わる機構は、現在では分子レベルで良く確立されており、T細胞受容体複合体(TCR)と主要組織適合遺伝子複合体クラスI分子(MHC I)に結合した抗原由来ペプチドとの相互作用に依存する。該細胞が産生するすべてのタンパク質抗原は、最終的に分解され、生成ペプチドが、細胞表面上のMHC I分子により提示される。
CD8+T細胞の発生
T細胞の発生は胸腺で起こり、その際、各T細胞クローンが最終的に特異なTCRを発現するように、TCRのα及びβ遺伝子セグメントが再編成される[13]。表面TCRを産生する発生中の胸腺細胞は、CD4及びCD8コレセプターを発現し、自己ペプチド−MHCリガンドに対する各TCRの特異性及び親和性に依存して、複雑な成熟過程を受ける。自己ペプチド−MHC分子に親和性のないTCRを発現する胸腺細胞は、プログラム細胞死の機構により死滅する。胸腺中の細胞上に発現される自己ペプチド−MHCリガンドに対し、親和性の強いTCRを発現する潜在的に有害な胸腺細胞は、物理的削除[14]、機能的不活性化[15]、又は受容体編集[16]を介して除去される。胸腺間質細胞上の自己ペプチド−MHCリガンドに対し、低いが有意な親和性を示すTCRを発現する胸腺細胞だけが、胸腺選択に生き残る[17]。
ナイーブなCD8+T細胞の再循環及び生存
T細胞のTCRが高い親和性を示す外来ペプチド−MHCリガンドに、未だ接触したことのない該T細胞は、「ナイーブ」T細胞と呼称される。こうした細胞は、健康な若年成人における二次リンパ器官中のT細胞の大半を占める。ナイーブT細胞は、脾臓、リンパ節、及び粘膜リンパ器官(腸のパイアー斑など)を含めた二次リンパ器官中を継続的に再循環する[18、19]。個々のナイーブT細胞は、二次リンパ器官中を平均して数カ月循環すると推定される[20、21]。この通常寿命中でのナイーブCD8+T細胞の生存は、自己ペプチド−MHC複合体の低親和性TCR認識[22]、及びIL−7受容体を介したシグナル伝達[23、24]によって維持されている。TCR及びIL−7受容体を介したシグナルは、ナイーブT細胞の生存に必要であるが、こうしたシグナルによって、該T細胞が正常数のT細胞を含有する宿主中で増殖することはない。対照的に、T細胞欠損宿主中に移入されると、ナイーブT細胞は増殖する。この「恒常性維持的」増殖も、IL−7[23、24]、及び自己ペプチド−MHC複合体の低親和性TCR認識[25]に依存するが、IL−2にも、CD28共刺激性(co−stimulatory)受容体にも依存しない[26]。若年者では、新たなナイーブT細胞が、胸腺により恒常的に産生され、二次リンパ器官に移送されることにより、老化したナイーブT細胞と置き換わる。対照的に、胸腺産生力が低下又は欠失した年配者では、老化細胞を残存するナイーブT細胞の増殖によって置き換え得る。
CD8+T細胞の活性化
二次リンパ器官のT細胞領域中を移動するナイーブCD8+T細胞は、体内の任意の細胞中、最高量のMHC分子を構成的に発現する大型で形状不規則な樹状細胞(DC)の濃密な網目に接触する[27]。感染や組織損傷がない場合、二次リンパ器官中の全DC集団は、CD80、CD86などの共刺激性分子の低発現を特徴とする休止状態で存在する[28]。この状態では、DCは、ナイーブT細胞の生存を維持する、低親和性の自己ペプチド−MHCリガンドの提示において重要な役割を演じることはほぼ確かである。
感染の場合、多様なウィルス性又は細菌性産物が、パターン認識受容体[29]、例えば、DCを含めた先天性免疫系の細胞上にあるToll様受容体(TLR)によって認識される。TLRシグナル伝達はDCの活性化を起こし、その結果、共刺激性分子(CD80及びCD86)の発現量増加、並びに炎症性サイトカインの産生が起こる[30]。次いで、活性化されたDCは、病原体由来ペプチド−MHCクラスI複合体をナイーブCD8+T細胞へ提示することにより機能する。TLRを介したシグナルに加え、ナイーブCD8+T細胞は、最大限に増殖し、細胞傷害性エフェクター細胞に分化するために、共刺激性CD28受容体及びIL−12受容体を介した追加のシグナルも必要とする[31〜33]。これらのすべてのシグナルは、活性化DCによりナイーブCD8+T細胞へ提供することができる[34]。
ナイーブCD8+T細胞は、インビボで抗原に曝されてから早くも48時間後に、DNA複製及び細胞分裂の兆候を示す[35〜37]。これらの事象の後、抗原特異的T細胞の個数が、この後数日間に亘り指数関数的に増加する。刺激に応じて、抗原特異的CD8+T細胞の個数は、抗原で活性化してから7〜15日後に、二次リンパ器官中で最高値に達する(図2.3)[35、38〜43]。
インビトロ実験では、ナイーブな抗原刺激T細胞による細胞分裂は、IL−2の自己分泌産生により推進される[44]。しかし、意外にもナイーブT細胞の抗原推進増殖は、インビボでIL−2にわずかにしか依存しない[45〜49]。したがって、IL−2以外に、他のシグナル又は増殖因子も、インビボでT細胞増殖を推進できるにちがいない。
インビボでのT細胞増殖は、DCからの共刺激性シグナルにより厳重に調節される。抗原刺激CD8+T細胞の増殖は、CD28がリガンドCD80及びCD86と相互作用することができないマウスでは、激減する[37、45、50]。CD40リガンドが欠損すると、T細胞増殖に類似の作用を示すが、それは、CD40シグナル伝達が抗原提示細胞上にCD80及びCD86を誘導する事実と関係するとも思われる[51]。共刺激性シグナルは、増殖因子の産生を強化することによってT細胞増殖を調節する。IL−2の抗原推進産生は、CD28シグナル伝達が消失すると著しく損なわれる[45]。
エフェクターCD8+T細胞
免疫応答が最高潮の抗原特異的CD8+T細胞は、エフェクター機能を発現し、したがって「エフェクター細胞」と呼称されることもある[52]。エフェクター細胞は、特徴的な1組の接着受容体を発現する。ナイーブ細胞と異なり、そうした細胞は、その決定的な特徴、即ち、適切なペプチド−MHCクラスI複合体を表示する標的細胞を直接死滅させる能力に寄与する、パーフォリン及びグランザイムを発現する[53]。エフェクターT細胞は、T細胞領域から離れ、多くの非リンパ組織、特に炎症を起こした抗原沈着部位の中へ移動する。細胞溶解能を有するエフェクターCD8+T細胞の非リンパ器官中への移動は、あらゆる身体部分からのペプチド−MHCクラスI複合体を表示する細胞を除去する有効な方法である。
二次リンパ器官中のエフェクターT細胞の個数は、最高潮の増殖後に激減する[35、38〜43]。エフェクターT細胞の死因となる分子的根拠は、抗原刺激の性質に応じて変化する。抗原を単回投与した後のT細胞応答の場合、その死はFas非依存性であり、Bcl−2感受性[54]であって、増殖因子の欠乏によることはほぼ確かである[55]。抗原が慢性的に提示される場合、TCRで媒介される活性化誘導細胞死(AICD)が起こり得る[56]。この種のアポトーシスは、Fasに依存し、Bcl−2から受ける阻害は弱い[55]。
IL−2は、通常はFasシグナル伝達を阻害するFLICE阻害タンパク質の活性化を阻止することにより、AICDにおける役割を演じている[57]。エフェクターCD8+T細胞の死は、炎症により調節される。炎症がない場合、最高潮の増殖後における二次リンパ及び非リンパ器官からの抗原特異的T細胞は、ほぼ完全に喪失する[58]。対照的に、LPSやIL−1などのアジュバントと共に抗原を注入した後では、より多数の細胞が喪失期から生き残る[35、58、59]。
記憶CD8+T細胞
最高潮の増殖後に非常に大多数のエフェクター細胞が死滅するが、それでも、抗原が炎症との関わりで初回に提示された場合、抗原経験T細胞の安定集団が長期間生き残る[52]。多くの点から、記憶細胞は、基礎活性化状態に戻ったエフェクター細胞と見なすことができる。実際のところ、数連の証拠から、エフェクター細胞が記憶細胞の前駆体であることが示唆される[60、61]。
ナイーブCD8+T細胞と異なり、記憶CD8+T細胞は、生存のためにMHCクラスI分子に依存しない[62]。大部分の記憶CD8+T細胞は周期を経ていないが、小比率のその記憶集団は、MHCクラスI非依存的に常に増殖している[47、62]。この増殖は、抗原特異的記憶CD8+T細胞の総数が経時的に不変であるので、死滅と均衡している。いくつかの知見によれば、IL−15はこの過程である役割を演じている。記憶CD8+T細胞の抗原非依存的増殖は、IL−15の注入により促進され[63]、IL−15に対する抗体の注入により阻止される[47]。その上、記憶CD8+T細胞は、IL−15欠乏マウスでは減少している[64]。IL−15は、先天性免疫応答中に非T細胞により産生されるので、IL−15が他の感染に応答して産生される結果、記憶CD8+T細胞が維持される可能性がある[63、65]。
前立腺特異抗原(PSA)
前立腺特異抗原(PSA)は、前立腺の線房及び導管に沿った円柱上皮細胞により、専ら産生されるカリクレイン様セリンプロテアーゼである[66〜68]。PSAは、前立腺管の内腔中に分泌され、約0.5〜5mg/mlの範囲のやや高濃度で精漿中に存在する[69]。生理学的には、PSAは、主要なゲル形成タンパク質のセメノゲリンI及びII、並びにフィブロネクチンを切断し、精子の運動性を増加させるように、精漿中で機能する[67、70、71]。PSAは、アミノ酸261個の不活性プレプロPSA前駆体として翻訳される。プレプロPSAは、プレ領域(シグナルペプチド)及びプロペプチドを構成する追加の24残基を有する。プロペプチドを放出すると、酵素活性のある、アミノ酸237個の成熟細胞外形態が生成する。PSA同様に前立腺組織中で選択的に発現されるヒト腺性カリクレイン2(hKLK2)は、プロPSAの活性化を担っている[72]。PSAは、69位アスパラギンに結合したN結合型オリゴ糖を含有することが示された[73]。
PSAはまた、低濃度で血中に放出される。前立腺癌の臨床的証拠がない健常男性では、血清中で検出されるPSAの濃度は、普通4ng/ml未満である[74〜76]。酵素活性なPSAは、α1抗キモトリプシン(ACT)と共有結合複合体を形成することにより、血中で不活性化される[77、78]。酵素不活性な(内部にクリップされた)PSAは、プロテアーゼ阻害剤と複合体を形成することができず、血中を遊離非複合形として循環する[79]。
PSAは器官特異的であり、その結果、前立腺良性増殖性(BPH)組織、前立腺原発癌組織、及び前立腺転移癌組織の上皮細胞により産生される[66、80]。正常な前立腺上皮細胞、及びBPH組織は、悪性前立腺組織より多量のPSAタンパク質を実際に産生する[81、82]。したがって、PSAは、腫瘍細胞の方が多量に産生する従来型の腫瘍マーカーではなく、むしろ外傷又は疾患に起因する前立腺構造の異常で、該酵素の間質中への「漏出」、次いで毛細血管及びリンパ管を経て血流中への「漏出」が増加する恐れがある。
臨床におけるPSAの最も一般的な使用は、前立腺癌療法をモニターするためである。患者が徹底した前立腺摘除を受けた場合、血清PSA濃度は、産生源組織がすべて除去済みなため、検知不能な濃度まで減少するはずである[83、84]。外科手術後にPSA濃度が増加するのは、その疾患が再発したことを示す[83、85、86]。PSAは、前立腺癌患者における放射線療法及び抗アンドロゲン(ホルモン)療法の好成績も反映する[87〜89]。
対癌プラスミドDNAワクチン
近年になって幾種もの腫瘍ワクチン戦略が開発されてきた。その大部分は、免疫系が認識できる腫瘍抗原の特定に依存している。DNAワクチンの接種は、腫瘍抗原に対する体液性、細胞性双方の免疫応答を誘発するそのような一手法を代表する。動物モデルを用いた試験によれば、防御的な抗腫瘍免疫応答を誘発するために、DNAワクチンの接種を使用する妥当性が実証された。しかし、人間の癌細胞が発現する大部分の腫瘍抗原は、免疫原性が弱いため、臨床状況でDNAワクチンの効力を増強するための戦略の開発が必要となる。DNAワクチンの免疫学の理解、及びCTL活性に関するDNAワクチンの効力の増加に使用される戦略の最近の進歩を以下に考察する。
DNAワクチンの免疫学
DNAワクチンは、単純なプラスミドDNA発現ベクターを普通意味する。それには、真核性プロモーターとポリアデニル化配列との間に挿入された所望の抗原、細菌性の抗生物質耐性遺伝子及び細菌性の複製起点をコードするcDNAが含有される。真核性プロモーター及びポリアデニル化配列は、哺乳類細胞中で適切な抗原発現を行うために必要であり、抗生物質耐性遺伝子及び複製起点は、細菌中でのベクターの産生を可能とする。
筋肉内(i.m.)又は皮内(i.d.)接種で裸プラスミドDNAを投与した後、宿主細胞は該DNAを取り込み、被コード抗原を産生し、次いで該抗原が免疫応答標的として機能する[90〜93]。抗原のインビボでの発現は、普遍的に活性であり、広範囲の細胞型で抗原産生を推進すると見込まれる、強力なウィルスプロモーターの使用により通常実現される。ヒトサイトメガロウィルスの前初期エンハンサー−プロモーター(CMVプロモーターの名で知られている)は、しばしば好ましいプロモーターである[94]。DNAワクチンを接種すると、抗原特異的CD4+ヘルパーT細胞の誘導などの調節構成要素、及びナイーブ抗原を認識する抗体の産生などのエフェクター構成要素からなる適応的免疫応答、並びにエフェクターのCD8+細胞傷害性Tリンパ球(CTL)が発生する。該リンパ球は、クラスI主要組織適合分子(MHCクラスI)により細胞表面上に提示される抗原由来ペプチドに向けて誘導される。
タンパク質抗原をコードするDNAのCTL応答を発生する潜在能力は、精製組換えタンパク質による免疫がCTLを効率的に誘発しないので、非常に注目を集めた([95、96]で総説されている)。その基本的機構に関するマウスにおける研究によって、DNA分子によるヘルパーCD4+T細胞の誘導及び抗原提示細胞(APC)の直接活性化は、DNAワクチンによるCTLの初回抗原刺激(priming)の成功に寄与することが明らかとなった。後者の要件は、やや重複的であると示唆された(以下を参照されたい)。
ここで、認められたDNAワクチンの免疫原性を解明しつつある重要知見を以下に要約する。
DNAワクチンを接種した後のCD8+T細胞の応答は、樹状細胞(DC)などの骨髄由来APCにより開始されることが示された[97〜99]。当該APCは、プラスミドDNAで直接トランスフェクトすることができ、次いで細胞内で抗原が産生されるか、又は他細胞が発現し、放出した抗原を取り込むこともある(後者の機構は、交差提示/交差初回抗原刺激と呼称される)[100〜102]。双方の場合とも、抗原は、APC内部のタンパク質分解性消化で処理され、生成したペプチドは、ナイーブCD8+T細胞の初回抗原刺激をするために、MHCクラスI分子により細胞表面上に提示される。これらの2機構中いずれがインビボで主要であるかは、なお論争の対象であり、異なるDNA投与法の間で変化し得る[102〜104]。
それでも、抗原のある種の修飾(ユビキチン[105]又は熱ショックタンパク質[106、107]との結合を含む)によって、従来型又は交差初回抗原刺激のMHCクラスI提示経路への標的誘導を改善し得る([108]に総説されている)。
プラスミドDNAの主鎖は、非メチル化CpGジヌクレオチドから構成され、特定の隣接ヌクレオチド(CpGモチーフと呼称される)を有する免疫賦活性ヌクレオチド配列を含有することが示された[109〜111]。真核生物対原核生物においては、CpGジヌクレオチドの利用頻度及びメチル化パターンが異なるため、このような配列は、哺乳類DNAより細菌DNAにおいて約20倍普遍性が高い[112、113]。CpGモチーフは、マウスのマクロファージ、DC及びB細胞上に発現されるが、人間では形質細胞様DC及びB細胞上にしか発現しない[115〜117]、Toll様受容体9(TLR9)[114]を介して作用することが示された。TLR9とCpG含有プラスミドDNAとの直接相互作用の結果、APC上での共刺激性分子の上方調節、並びに、先天性免疫系の多様な細胞が分泌する炎症性サイトカインIL−12、IL−6、IL−18、TNFα、IFNα/β及びIFNγの誘導が起こることが示された[118〜121]。
APCの活性化は、ナイーブCD8+T細胞の効率的な初回抗原刺激にとって重要であることが知られており、したがって、DNAワクチンの主鎖におけるある種のCpGモチーフの存在が、CTL誘導に寄与することが提案された[122]。意外にも、TLR9シグナル伝達経路が欠損したマウス(TLR9−/−又はMyD88−/−マウス)をDNAで反復免疫した結果、プラスミドDNAによるAPCの直接刺激がこうしたマウスでは観察できなかったという事実にも関わらず、野生型マウスの場合と同様に、正常なCTL応答が発現する[123、124]。この知見から、CpGモチーフによるAPCの活性化は、DNAワクチンに関しては重複的とも思われ、APCのインビボで必要な活性化は、恐らく、ヘルパーCD4+T細胞の誘導を介して間接的に起こり得ることが示唆される([125]に総説されている)。実際のところ、CD4+T細胞が枯渇している、又はCD4+T細胞区画が欠損しているマウス(CD4−/−又はMHCクラスII−/−のノックアウトマウス)におけるDNA免疫実験では、CD4+T細胞の存在が、エフェクターCTL応答の発生にとって決定的な要件であることが実証された[126〜128]。
動物モデルにおける対癌DNAワクチン
防御的抗腫瘍応答を発現する際のDNAワクチンの有用性は、マウスにおけるモデル腫瘍抗原を用いて初めて実証された。SV40ラージT抗原[146]、β−ガラクトシダーゼ[147]、ヒト癌胎児性抗原(CEA)[148]、ヒトパピローマウィルスE7[149]、又はヒトPSA[150]をコードするプラスミドによるDNA免疫は、対応する抗原を発現する同系腫瘍細胞の致死性接種から、マウスを防御することが示された。枯渇試験によって、腫瘍拒絶におけるCD8+細胞傷害性Tリンパ球の役割が証明された[147、149]。まとめると、これらの試験によって、腫瘍細胞を標的とした抗原特異的免疫応答を誘発するために、DNAワクチンを使用することの妥当性が実証されている。しかし、これらの試験に使用した抗原はすべて、事実、自己抗原を示す「正規の」腫瘍抗原より、通常はるかに免疫原性が高い外来タンパク質であった。
臨床的に見られそうな腫瘍抗原にもっと類似した腫瘍抗原に対して、DNAワクチンの効力試験を可能にする数種のマウスモデルを確立した。こうした手法は、組織特異的にモデル腫瘍抗原を発現するトランスジェニックマウスの使用[151、152]、又はヒト腫瘍抗原のマウス対応抗原を標的とするDNAワクチンの試験[153、154]に依存している。
MAGEファミリーに属する、ヒト腫瘍特異抗原に相当するマウス抗原である、P815A抗原[155]に対するDNA免疫は、CTLを誘導し、マウスを致死的腫瘍接種から防御することが示された[153]。この知見から、大部分の正常組織中で静止(silent)している天然腫瘍特異抗原に対して、T細胞が容易に誘導できることが示唆された。
対照的に、天然の腫瘍関連抗原は、免疫原性が本来低いことが示された。ヒト癌原遺伝子Her2をコードするDNAワクチンは、野生型マウスにおいて抗体応答を容易に誘発したが、その同じワクチンは、Her2トランスジェニックマウスにおいてわずかしか抗体応答を誘発せず、弱い腫瘍防御を示した[152]。同様な結果は、Her2/neuトランスジェニックマウスにおけるCTL応答についても得られた。ラットneu DNAワクチンによる免疫は、野生型マウスにおいて防御的CTL応答を誘発したが、トランスジェニック動物では無効で、CTL応答が認められなかった[156]。ラットneu DNAワクチンが、野生型マウスにおいてCTL応答を誘発できることは、neu由来CTLエピトープと、マウスHer2相当物(c−erbB−2)の対応配列とのアミノ酸配列の差異で恐らく説明できよう[156、157]。したがって、neu由来エピトープを認識できるCD8+T細胞は、野生型マウス中に存在するが、neuトランスジェニックマウス中では、胸腺選択中に枯渇したか、又は末梢においてアネルギー化していることはほぼ確かである。
こうした知見と対応して、マウスメラニン細胞分化抗原のTRP−1、TRP−2(チロシナーゼ関連タンパク質)、及びgp100に対するDNA免疫も、失敗に終わった[154、158、159]。興味深いことには、同じ試験によって、TRP−1、TRP−2又はgp100をコードする異種(ヒト)DNAでマウスを免疫すると、免疫応答が誘発され、B16マウスメラノーマ細胞による同系腫瘍接種から防御がなされた。抗腫瘍免疫は、ヒトTRP−1のワクチン接種時には抗体で、ヒトのTRP−2及びgp100の場合にはCD8+T細胞で媒介された([160]に総説されている)。こうした知見の重要な結論は、同系(マウス)遺伝子による免疫が、T細胞又は抗体の応答を誘発しないのに対し、異種(ヒト)遺伝子による免疫では、人間、マウスの両タンパク質を認識できる抗体及びCTLが生成できることである。CTL応答については、このような交差反応性の基礎をなす機構が、gp100の場合、MHCクラスI抗原との結合能が向上した、ヒト配列中の異常(heteroclitic)エピトープのランダム創生を表わすことが示された[161]。したがって、ヒトgp100をコードするDNAワクチンは、この「ヒト」エピトープを目標とし、対応するマウス内生配列(「マウス」エピトープ)も認識できるCD8+T細胞を誘導する[159、162]。交差反応性抗体応答については、異種配列内の強力なヘルパーエピトープの存在が示唆された[163]。この目的のために、動物モデルにおけるDNAワクチンに関する研究により、腫瘍防御に関して有望な結果が示された。しかし、臨床状況をより多く反映している治療手段としてDNAワクチンを使用するには、なお課題が残っている。胸腺中でのT細胞成熟中におけるT細胞全種(repertoire)の形成の基礎となる機構の理解、及び「自己」腫瘍抗原反応性のCTLの正確なマッピングをすれば、特に腫瘍関連抗原に対してより強力な免疫応答を誘発できる、DNAワクチンの合理的設計の補助に更になるはずである。
DNAワクチンの効力増強
マウスにおける試験によって、抗原特異的CTLがDNAワクチンで誘導される頻度は、ウィルス誘発応答と比較して約10分の1であり、DNAで単回免疫した後のエフェクターCTLの一次応答は、わずかに遅れて免疫してから12〜15日で最高となる[164、165]。CTL一次応答のこうした定性的差異は、プラスミドDNA投与後に産生する微量の抗原、及びインビボでのAPCの非効率的ターゲッティングに部分的に起因すると思われ、このことは相俟って、ナイーブT細胞の頑強な初回抗原刺激及び増殖を保証するには不十分である。
汎用されている塩水中DNAのi.m.又はi.d.注入と比較した場合、産生抗原量を増加させ、及び/又はインビボでのAPCのターゲッティングを改善する、数種のDNA送達手法が開発されてきた。これらの技法には、DNA被覆金粒子の皮内への微粒子銃接種、常在する抗原提示ランゲルハンス細胞のターゲッティング(「遺伝子銃(gene gun)」とも呼称される)[91、102]、DNAを表面に吸着したポリ(DL−ラクチド−co−グリコリド)(PLG)の使用[166、167]、又はi.m.若しくはi.d.DNA投与後の注入部位におけるパルス電界の印加(インビボ電気穿孔とも呼称される)が含まれる[168〜171]。ここで、裸DNAの末梢リンパ節中への直接注入が、従来のi.m.又はi.d.接種経路で得られる応答より定性的にも定量的にも優れている、強力なCTL応答を誘発することが示されたことは、注目に値する[172]。この知見は、DNA免疫後におけるナイーブT細胞の初回抗原刺激の有効性は、二次リンパ器官における抗原刺激の強度及び持続期間と相関することを示唆している。
DNAワクチンの免疫原性は、プラスミドがコードする抗原の様々な修飾によっても増強することができる。コードDNA配列のコドン最適化によって、DNAワクチンの接種後、抗原発現が増加する結果、抗体及びCTLの優れた応答が生じることが示された[173、174]。抗原をユビキチン単量体[105]又は熱ショックタンパク質[106、175]に連結すると、抗原特異的CTL応答が増加したが、その増加は、従来型又はクロスプライミング型のMHCクラスI提示経路に対する、これら融合タンパク質のターゲッティングの改善を介して起こると推測される。
DNAワクチンによる免疫応答の誘発を最適化する別の戦略は、ヘルパーCD4+T細胞の誘導が、エフェクターCTL及び抗体の応答の発生に相当寄与するという事実に基づいている(セクション4.1を参照されたい)。強力なヘルパーエピトープを含有する微生物抗原又はウィルス抗原と、腫瘍抗原とを連結することによってヘルパーCD4+T細胞の支援を得ると、DNAワクチンの接種後、腫瘍抗原に対する抗体及びCTLの応答が増加することが示された([176]に総説されている)。
腫瘍抗原特異的なCTL応答を強化することを目的とした、このような腫瘍抗原−「ヘルパー」抗原融合構築体の設計には、更に検討が必要であることに言及することは重要である。免疫優性の現象として知られている、大型抗原由来のごく少数のペプチドエピトープへCTL応答が天然では集中することが、DNAワクチンについても観察される[177、178]。したがって、CTL応答が、「ヘルパー」抗原由来のエピトープではなく、腫瘍抗原由来のエピトープに対して発現することを保証するために、融合体の「ヘルパー」部分にある潜在的なCTLエピトープはすべて、除去すべきである[179、180]。
TLR9−/−及びMyD88−/−マウスにおける最近の実験によって、プラスミドDNA主鎖によるAPCの活性化は、免疫応答の誘発に必須ではないことが実証された[123、124]が、APCのCpG媒介刺激は、DNAワクチンにある種のアジュバント効果を与えることができよう。合成オリゴデオキシヌクレオチド(CpG−ODN)の形態で与えられるCpGモチーフは、DNAワクチン接種後の抗体及びCTL応答をより良好に促進するアジュバントとして作用することが示された([181]に総説されている)。CpG−ODNのアジュバント効果は、DNAワクチンの低用量と組み合わせると非常に顕著であるが、それより高用量のDNAワクチンを用いるとわずかに過ぎない[182]。マウスにおいて最適な免疫賦活活性を与えるCpG−ODNは、霊長類で機能するものとは配列が異なることを強調することは、重要である[183]。
DNAワクチンの効力を強化する他の数種の戦略は、サイトカイン及び共刺激性分子を含めた多様な免疫賦活分子の使用に集中してきた([184、185]に総説されている)。これらのアジュバントは、組換えタンパク質の形態で、又は選択したその分子をコードする別個のプラスミドとして投与することができる。このような手法を支える論理は、サイトカイン/共刺激性分子を介して追加のシグナルを与えることによる、T細胞の初回抗原刺激の促進に共通して基づいており、そうではなくてプラスミドDNAワクチンを単独で使用した場合、最適とはならない恐れがある。この手法の成績良好な適用例には、IL−12発現性プラスミドと共にCEAコードプラスミドで免疫したマウスにおける、腫瘍の攻撃に対して防御を向上させる抗体及びCTL応答の強化[186]と、抗原コードDNAワクチン及びマウスの顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM−CSF)を発現するプラスミドの併用投与後における抗体/CTL応答の強化が含まれる([187]、[188])。
前記戦略はすべて、全般的に、モデル抗原をコードするDNAワクチンの免疫原性を増加させることが示されたが、適切なマウスモデル、及びより重要には臨床状況において、免疫原性の弱い「自己」腫瘍抗原に対して、DNA接種後のCTLの初回抗原刺激又は抗体応答を向上させるために選択される戦略は、未だ確固として確立されてはいない。
臨床状況における対癌DNAワクチン
ここでは、HPV関連肛門異形成[213]、転移性結腸直腸癌[212]、B細胞リンパ腫[214]、転移性メラノーマ[215、216]、及び前立腺癌[211、217]の患者において、腫瘍関連抗原を標的としたDNAワクチンに関して最近行ったいくつかの第I相臨床試験を考察する。これらの試験では、DNAワクチン接種の分野内での現在の進歩を良く代表している、異なったDNA送達技法及びアジュバントを多種採用した。
これらの試験の大多数では、標準的な段階的用量増加方式に従ったが、個々の患者にはDNAワクチンの段階的用量増加をしなかった。DNAワクチンの接種は単剤療法として適用し、当該患者は、試験参加前の少なくとも3週間以内に他種の療法をまったく受けていなかったが、但し前立腺癌の試験については、患者はホルモン療法を同時に受けていた[217]。
これらの試験に登録した患者数が限られていたため、その試験すべてにおける主目的は、プラスミドDNA投与の安全性の評価、ワクチンが用量依存的に誘発する免疫応答のモニター、及びワクチン誘発免疫応答と臨床的便益との相関性の評価であった。
総合すると、これらの試験によって、DNAの反復投与は十分に許容され、注入1回当たり最大2mgに達するDNA用量でも用量制限的な毒性は認められないことが示された[212]ので、DNAによる反復免疫は安全な処置であることが実証された。
免疫応答の誘発に関しては、「外来」抗原は、「自己」腫瘍関連抗原より免疫原性が強いことが示された。ヒトパピローマウィルスE7由来のCTLエピトープ(複数も)をコードするDNAワクチンの接種によって、被験者12人中10人に、IFNγ ELISPOTアッセイで検出されるT細胞応答が誘発された[213]。CEA及びB型肝炎表面抗原(このHbsAgは、対照「外来」抗原として試験中に含めてある)をコードする二重発現プラスミドは、反復免疫された患者8人中6人にHbsAg特異的抗体応答を誘発した[212]。マウス免疫グロブリン(Ig)の定常領域に対するリンパ増殖性応答又は抗体応答も、キメラIg分子をコードするプラスミドDNAでワクチン接種した患者12人中8人に認められた[214]。対照的に、自家腫瘍関連抗原に対する免疫応答率は、相対的に低かった。前記試験において、CEA特異的抗体応答は認められず、患者17人中4人しかCEAに対するリンパ増殖性応答を発現しなかったが、この結果は、プラスミドDNA免疫の用量又は投与計画と明確な関係を示さなかった[212]。同様に、キメラIg分子で免疫された患者は、自家腫瘍由来のイディオタイプ(Id)決定基に対して、12人中1人しか一時的T細胞応答を発現しなかった[214]。修飾gp100抗原をコードするDNAで免疫されたメラノーマ患者では、gp100由来HLA−A2制限CTLエピトープに対するCTL応答は検出されなかった[215]が、これは、同じDNA構築体をコードする組換え家禽ポックスウィルスが、以前実施の試験で患者14人中4人にCTL活性を誘発することが示された[218]という事実と相容れない。新規なチロシナーゼ由来HLA−A2制限エピトープに対する一時的CTL応答は、このエピトープをコードするプラスミドDNAをリンパ節中へ注入されたメラノーマ患者、全体で24人中11人に認められた[216]。
DNAワクチンと、PSMAを発現する組換えアデノウィルスとの反復投与を組み合わせた試験では、すべての患者が、PSMAプラスミドDNA注入に対して陽性のDTH応答を最終的に発現したため、PSMAに対する細胞免疫応答の誘発が示唆されたが、こうした結果は、従来型の他のインビトロアッセイによりそれ以上確認されなかった[217]。
ホルモン不応性前立腺癌の患者におけるDNAワクチン接種に関して、本発明者等が最近行った臨床試験では、患者9人中2人にPSA特異的なT細胞免疫応答が認められたが、両応答者ともDNAの最高試験用量を受けたコホートに属していた[211]。腫瘍関連抗原に対するT細胞免疫応答が用量依存的に誘発される傾向は、これらのうち数種の試験で認められた[211、214]が、CTLの存在を確証することを目的とした、反応性T細胞のエピトープ特異性は、未だ決定されていない。
単剤療法としてのDNAワクチン接種の臨床的便益は、わずかに過ぎず、それには以下のことが含まれていた。即ち、B細胞リンパ腫の患者1人が、骨髄の腫瘍退行を体験したこと[214]、高度な肛門性器異形成の被験者3人が、部分的な組織応答を得たこと[213]、前立腺癌の患者2人が、血清PSA濃度の減少で判定した場合、疾患の安定化を示したこと[211]、及びチロシナーゼに対して検出可能な免疫応答を示したメラノーマ患者11人が、免疫応答を示さなかった患者13人と比較して、優れた生存率を示したこと[216]である。臨床的便益とワクチン誘発免疫応答との相関性は、後者の2試験においてしか認められなかった[211、216]。
要約すると、DNAワクチンの反復接種は、人間のT細胞免疫応答の誘発に必要と思われる高DNA用量(1mg程度)でも、臨床状況において良好な安全性プロファイルを示した。低い応答頻度は、これらの試験に登録した進行段階の患者の低下した免疫状態から、部分的には生じた恐れがある。今後の臨床試験では、寛解期中の、又は残留疾患がごくわずかの患者に集中することができ、その場合、DNAワクチンのより明確な臨床的便益が表れ易い。
異種ワクチン
自己抗原より外来抗原に対して免疫応答を誘発する方が、当然ながら容易である。その理由から、抗原をできる限り外来性にし、それでもなお自己タンパク質に対して免疫を誘発することが、有益である。これを実施する一戦略は、ナイーブな自己タンパク質に外来タンパク質を結合することである。このための汎用タンパク質は、キーホールリンペットシアノゲンである。KLHに対する免疫応答の誘発は、結合しているタンパク質に対して免疫応答を誘発することがしばしばある。
別の戦略は、ナイーブな自己タンパク質に類似しているが、別の動物種から採取したタンパク質を使用することである。これは、異種タンパク質と呼称される。この戦略は、前立腺特異膜抗原(PSMA)と称する前立腺抗原を用いてなされた。Wolchok等は、マウスにヒトPSMAを使用し、マウスにおいてマウスPSMAに対する良好な免疫応答を誘発した。現在、ヒトにおいてげっ歯類異種PSMAを用いた臨床試験が行われている。
異種タンパク質を使用する戦略は、他の種において使用されてきた。ヒトチロシナーゼは、メラノーマのイヌを免疫するために使用された。一般に、当該の種は、種間の差異が大きくなるように選択されてきた。
公表資料には、免疫応答を誘発するための異種性又は異種抗原の使用が記載されている。これには、ヒトPSAがマウスにおいて使用された場合のような、異種抗原の偶発的だが、未認知の使用が含まれる。それには、異種抗原の意図的な使用も含まれる。異種抗原の意図的な使用の一例は、対メラノーマワクチン用のヒト抗原によるイヌの免疫である(Bergmanら、2003、「異種ヒトチロシナーゼでDNAワクチンを接種した後における進行性悪性メラノーマのイヌの長期生存:第1相試験(Long−term survival of dogs with advanced malignant melanoma after DNA vaccination with xenogeneic human tyrosinase:a phase 1 trial)」、Clinical Cancer Research、9:1284−1290)。こうした公表資料には、ナイーブ自己抗原に対して最適な免疫応答を誘発するために、異種タンパク質とナイーブタンパク質との種間差が最小限となる異種タンパク質の使用については記載がない。
ヒトタンパク質PSAは、1970年代に発見され、その特性が決定された。該PSAタンパク質は、1979年に初めて精製された。抗ウサギ血清が該タンパク質から調製され、組織が分析された。ヒトPSAは、前立腺組織だけに見出され、他の組織には見出されなかった。Wangら、「ヒト前立腺特異抗原の精製(Purification of a human prostate specific antigen)」、1979、Invest.Urol.17:159−63。他者は、他の組織中により少量のヒトPSAを見出した。それは、肺及び乳房の腫瘍における他の上皮様細胞中に低濃度で発現する。Zarghamiら、「肺腫瘍における前立腺特異抗原mRNAの発現頻度(Frequency of expression of prostate−specific antigen mRNA in lung tumors)」、1997、Am J Clin Pathol 108(2):184−90。Smithら、「前立腺特異抗原のメッセンジャーRNAは非前立腺細胞中に発現される:微小転移巣の検出との関係(Prostate−specific antigen messenger RNA is expressed in non−prostate cells:implications for detection of micrometastases)」、1995 Cancer Res.55(12):2640−44。
ヒト前立腺特異抗原に対する遺伝子は、1989年に配列が決定された。Digbyら、「ヒト前立腺特異抗原(PSA)の遺伝子:構造及びカリクレイン様遺伝子との連鎖(Human prostate specific antigen(PSA)gene:structure and linkage to kallifrein−like gene)」、1989 Nucleic Acids Research、17(5):2137。Klobeckら、「ヒト前立腺特異抗原のゲノム配列(Genome sequence of human prostate specific antigen)」、1989 nucleic Acids Research、17(10):3981。
ヒト(Homo Sapiens)PSAは、Genebankにおいて記録されている。一配列は、Genebank受入番号AJ459783に列挙されている。別の配列は、1988年に公表され、Genebank受入番号X07730として寄託された(Schulzら、「完全な成熟ヒト前立腺特異抗原(PSA)を包含するcDNAの配列及び非スプライシングリーダー配列(Sequence of a cDNA clone encompassing the complete mature human Prostate Specific Antigen(PSA)and an unspliced leader sequence)」。1998 Nucleic Acids Research 16(13):6226)。更に別のヒトcDNA配列は、Genebank受入番号BC056665として列挙されている。
非ヒト霊長類(non−human primate)カニクイザル(Macaca fasicularis)の前立腺特異抗原前駆体cDNAのcDNA配列は、Genebank受入番号AY647976として公表されている。
その上、アカゲザル(Macaca mulatta)前立腺特異抗原のcDNA配列は、Genebank受入番号X73560として公表されている。
前出3遺伝子の比較によって、ヒトPSAと、アカゲザル又はカニクイザルのPSA cDNAとの間に30塩基対の差異のあることが示されている。この差異は3.8%である。生成アミノ酸の差異は、ヒトPSAと比較してアカゲザルPSAで9.9%であり、ヒトと比較してカニクイザルPSAで10.7%である。
添付した3ページのDNA配列の比較(図1A、1B及び1C)から、ヒトPSAのcDNA遺伝子配列(Genebank受入番号BC056665のcDNA)、Maccaca mulatto PSAのcDNA遺伝子配列、及びMacaca fasicularis PSAのcDNA遺伝子配列の間の相同性が示されている。
前記で考察した科学文献は別として、公開及び交付された特許を検討すると、関連する以下の特許及び公開特許出願が明らかとなる。
米国公開出願第20040141958号は、治療用ワクチン接種の新規な方法を開示し、CTLエピトープを表示する外来ペプチドとの自己ペプチド又はタンパク質の使用を考察している。これはキメラタンパク質であろう。この出願は、ナイーブタンパク質に対する交差反応免疫を誘発するために、外来タンパク質全体の使用を扱っていない。
米国特許第5925362号は、ヒト前立腺特異抗原により抗腫瘍応答を引き出す方法を開示している。この特許は、2部構成を必要とする前立腺癌ワクチンについて記載している。一方はヒトPSAであり、他方は、その場でヒトPSAを産生する発現系である。これはヒトPSAを発現するDNAワクチンである。この特許は、異種PSAのDNAワクチンの使用については記載していない。
米国特許第6165460号は、ヒト前立腺特異抗原(PSA)に対する免疫応答の生成を開示している。この特許は、PSAのDNAワクチンについて記載している。1クレームでは、PSAを発現するために使用するポックスウィルスベクターが記載されている。この特許は、ヒトPSAを明示しておらず、異種PSAの記載がない。別のクレームでは、PSA(又はPSA CTLエピトープ)の使用に続く、追加PSAの第2投与が教示されている。これは、異なるPSA発現ベクター又はPSAタンパク質自体による追加免疫を含めた、従来型のワクチン追加免疫戦略である。第3のクレームでは、CTLエピトープ単独の使用が記載されている。ワクチンの評価に使用した動物モデルは、ヒトPSAを用いるアカゲザルモデルであったが、人間においてアカゲザルPSAを使用するという正反対の手法に関する記載はない。
米国特許第6818751号、第6800746号、第6759515号、第6664377号、第6657056号、第6630305号、第6620922号、第6613872号、第6329505号、第6262245号、第6261562号、第6854206号のすべては、前立腺癌の診断、前立腺特異ペプチドに対するモノクローナル抗体の生成、及び前立腺癌の免疫療法を目的とした、該前立腺特異ペプチドの使用を記載している。こうした特許は、免疫原として異種PSAの使用を論じていない。
米国特許第6699483号は、前立腺癌ワクチンにおいてヒト前立腺癌3細胞系の使用を採用した癌治療を開示している。該細胞系は、人間由来であり、広範囲の抗原を表示する。この特許は、異種細胞系、異種PSAの使用、又はDNAワクチンの使用を記載していない。
前記考察から、ワクチンに関して、異種手法を含めた非常に多様な手法が、科学文献において検討されてきた。
本発明のために、関連する要点の概要を見直す。
非ヒト抗原を人間の中に導入すると、ヒト免疫応答が非ヒト抗原に対する抗体を産生することは知られている。
ある種の限定された特定例では、特定例の非ヒト抗原を人間の中に導入すると、ヒト免疫応答が特定例の類似ヒト抗原に対する抗体を産生すると考えられている。
前立腺特異抗原(PSA)を有するのは、霊長類だけである。人間はヒトPSAを有し、非ヒト霊長類は非ヒト霊長類PSAを有する。マウス、イヌなどの種は、カリクレインタンパク質であるセリンプロテアーゼを有するが、そうしたものは、PSAとは見なせないほど十分にPSAとは異なっている。
非ヒト霊長類には、とりわけアカゲザル及びチンパンジーが含まれる。
ヒトPSAは、アミノ酸約260個の配列を有する(図2、セクション「huPSA」を参照されたい)。アカゲザルPSAは、アミノ酸約260個の配列を有する(図2、セクション「rhPSA」を参照されたい)。アカゲザルPSAのアミノ酸配列中のアミノ酸約10%は、ヒトPSAのアミノ酸配列中のアミノ酸と異なる。
ヒトPSAとアカゲザルPSAなどの異種PSAとの間には類似性かあるが、ヒトPSAとアカゲザルPSAとの差異は、ヒトPSAを検出する臨床検査では、アカゲザルPSAなどの異種PSAが検出されそうにないほどの有意差である。
人間の前立腺癌に特に注目すると、ヒト前立腺癌の治療には前立腺全体の外科的除去が必要である。更に前立腺癌を治療するには、外科的除去を免れた前立腺細胞を死滅させることが試される。この点から、抗前立腺ワクチンは、外科的除去を免れた前立腺細胞すべてを死滅させるように設計すべきである。
ヒト前立腺細胞はヒトPSAを産生し、ヒト前立腺癌に対するワクチンは、ヒトPSAを産生するヒト細胞を死滅させるヒト免疫応答を誘発すべきである。このようにして、外科手術を免れた前立腺細胞は、ヒト前立腺癌に対するワクチンによるワクチン接種の結果、死滅することになろう。
従来技術から見て、使用する異種抗原(例えば、タンパク質)に関して、ある人における生来の自己抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、異種抗原とそのヒト自己抗原との間に種間差が相対的に少ない異種抗原を、その人に使用することが望ましかろうということは、本発明を生んだ本発明者等の一洞察である。
本発明を生んだ本発明者等の別の洞察は、使用する非ヒト霊長類異種抗原(例えば、タンパク質)に関して、ある人における生来の自己抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、非ヒト霊長類異種抗原とそのヒト自己抗原との間に種間差が相対的に少ない非ヒト霊長類異種抗原を、その人に使用することが望ましかろうということである。
本発明を生んだ本発明者等のより特定の洞察は、使用する非ヒト霊長類異種PSA抗原に関して、ある人における生来の自己PSA抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、非ヒト霊長類異種PSA抗原とそのヒト自己PSA抗原との間に種間差が相対的に少ない非ヒト霊長類異種PSA抗原を、その人に使用することが望ましかろうということである。
本発明を生んだ本発明者等の更により特定の洞察は、ヒトPSAに対してアミノ酸相同性が≧88%で≦98%(又は、2〜12%の差)である非ヒトPSAを用いて、人間におけるヒトPSAに対し免疫応答を誘発する方法を提供することが、望ましかろうということである。
より具体的には、主題の方法は、非ヒト霊長類から単離したPSAを得ること、及び該非ヒト霊長類PSAを分子的に変化させて、そのアミノ酸相同性をヒトPSAに対して最適な相同性均衡に調節することを包含する。より具体的には、非ヒト霊長類PSAのアミノ酸配列が、人間において非ヒト霊長類PSAに対する免疫応答を誘発するのに十分なだけヒトPSAのアミノ酸配列と異なるが、人間においてヒトPSAに対する免疫応答を生じるのに十分なだけ類似している相同性を有するように、最適な相同性均衡を取ることが好ましい。
本発明は、DNA配列の発現により、ヒトPSAとの相同性が88%〜98%のアミノ酸配列を有するタンパク質が産生される前記DNA配列も包含する。本発明は、DNA又はRNAワクチンなどのポリヌクレオチドワクチンにおける、該DNA配列の使用も包含する。
人工作製PSAではなく非ヒト霊長類PSAを使用する論理は、セリンプロテアーゼ活性を維持するタンパク質の自然選択における変化すべてによって、類似の立体配座を有するタンパク質が選択されることである。これは、該タンパク質の立体配座依存性の領域に対する免疫応答は、ヒトPSA及び霊長類異種PSAとの間で類似又は同一である可能性がそれだけ高いことを意味する。
本発明によれば、ワクチンの送達は、例えば、トランスフェクションの化学促進剤を用いる、若しくは用いない注入、微粒子銃、又は電気穿孔を含めた多様な方法によりなし得る。
したがって、前記一団の従来技術が、非ヒト動物モデルにおいていくつかの免疫応答を引き出すために異種抗原を使用することは、周知であることを示しているが、前記従来技術は、所望の特徴を以下の通り組み合わせた、対前立腺癌ワクチンに関する方法及び組成物を教示することも、示唆することもない。即ち、(1)外科的除去を免れた前立腺細胞を死滅させるように設計されている抗前立腺ワクチンは、(2)ヒトPSAを産生するヒト細胞を死滅させるヒト免疫応答を誘発し、(3)ホルモン療法に限定されることがなく、(4)使用する異種抗原(例えば、タンパク質)に関して、ある人における生来の自己抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、異種抗原とそのヒト自己抗原との間に種間差が相対的に少ない異種抗原を、その人に使用し、(5)使用する非ヒト霊長類異種抗原(例えば、タンパク質)に関して、ある人における生来の自己抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、非ヒト霊長類異種抗原とそのヒト自己抗原との間に種間差が相対的に少ない非ヒト霊長類異種抗原を、その人に使用し、(6)使用する非ヒト霊長類異種PSA抗原に関して、ある人における生来の自己PSA抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、非ヒト霊長類異種PSA抗原とそのヒト自己PSA抗原との間に種間差が相対的に少ない非ヒト霊長類異種PSA抗原を、その人に使用する。前記所望の特性は、以下のその説明から明らかにされるように、本発明の対前立腺癌ワクチンに関する独特の方法及び組成物によって提供される。従来技術に対する本発明の他の利点も、明白にされよう。
本発明の目的は、外科的除去を免れた前立腺細胞のすべてを死滅させるように設計されている、対前立腺癌ワクチンに関する新規で改良された方法及び組成物を提供することである。
本発明の更に別の目的は、ヒトPSAを産生するヒト細胞を死滅させるヒト免疫応答を誘発する、対前立腺癌ワクチンに関する新規で改良された方法及び組成物を提供することである。
本発明の更に別の目的は、ホルモン療法に限定されない、対前立腺癌ワクチンに関する新規で改良された方法及び組成物を提供することである。
本発明の更に別の目的は、使用する異種抗原(例えば、タンパク質)に関して、ある人における生来の自己抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、異種抗原とそのヒト自己抗原との間に種間差が相対的に少ない異種抗原を、その人に使用する、対前立腺癌ワクチンに関する新規で改良された方法及び組成物を提供することである。
本発明のなお更なる目的は、使用する非ヒト霊長類異種抗原(例えば、タンパク質)に関して、ある人における生来の自己抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、非ヒト霊長類異種抗原とそのヒト自己抗原との間に種間差が相対的に少ない非ヒト霊長類異種抗原を、その人に使用する、対前立腺癌ワクチンに関する新規で改良された方法及び組成物を提供することである。
本発明の更に別の目的は、使用する非ヒト霊長類異種PSA抗原に関して、ある人における生来の自己PSA抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、非ヒト霊長類異種PSA抗原とそのヒト自己PSA抗原との間に種間差が相対的に少ない非ヒト霊長類異種PSA抗原を、その人に使用する、対前立腺癌ワクチンに関する新規で改良された方法及び組成物を提供することである。
本発明の一態様に従えば、非ヒト霊長類PSAと、人間に投与するための医薬として許容可能な担体とを含む物質組成物が提供される。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類PSAと、人間に投与するための医薬として許容可能な担体とで構成されるワクチンが、人間のために提供される。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類PSAが、ヒトPSAに対して抗体を産生するヒト免疫応答を誘発するワクチンが提供される。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAに対する免疫応答を得ることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するために、非ヒト霊長類PSAの使用が提供される。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAを含有するヒト細胞に対して、ヒトPSA免疫応答が細胞傷害性細胞性免疫を起こすワクチンが提供される。
本発明の別の態様に従えば、人間を治療する方法が、ある人に非ヒト霊長類PSAを入れるために、その人に非ヒト霊長類DNA配列を導入するステップを含む。
本発明の別の態様に従えば、人間において抗原に対する免疫応答を得ることを目的として、人間に投与するワクチンを調製する該抗原を用意するために、非ヒト霊長類DNA配列の使用が提供される。本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAに対する免疫応答を得ることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するために、PSAに対する非ヒト霊長類DNA配列の使用が提供される。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAに対する抗体を産生するヒト免疫応答を誘発するために、人に非ヒト霊長類PSAを導入するステップを含む、人間において前立腺癌を治療する方法が提供される。
本発明の別の態様に従えば、人に非ヒト霊長類PSAを導入するステップを含み、ヒト免疫応答がヒトPSAに対する抗体の産生を起こす、人間において前立腺癌を治療する方法が提供される。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAを含有する細胞に対する細胞傷害性細胞性免疫を含む免疫応答を誘発するために、人に非ヒト霊長類PSAを導入するステップを含む、人間において前立腺癌を治療する方法が提供される。
本発明の別の態様に従えば、人に非ヒト霊長類PSAを導入するステップを含み、ヒト免疫応答が、ヒトPSAを含有する細胞に対して細胞傷害性細胞性免疫を起こす、人間において前立腺癌を治療する方法が提供される。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類抗原を発現する核酸ワクチンをヒト細胞中に送達する方法であって、核酸ワクチンのある量をヒト組織に投与するステップ、及び電界を該ヒト組織に印加するステップを含み、それにより、非ヒト霊長類抗原を発現する該核酸ワクチンが、該ヒト組織における細胞中に送達される方法が提供される。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類PSAを発現する核酸ワクチンをヒト細胞中に送達する方法であって、核酸ワクチンのある量をヒト組織に投与するステップ、及び電界を該ヒト組織に印加するステップを含み、それにより、非ヒト霊長類PSAを発現する該核酸ワクチンが、該ヒト組織における細胞中に送達される方法が提供される。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類PSAの遺伝子由来の遺伝子配列を含む、人間のためのDNAワクチンが提供される。
本発明の別の態様に従えば、人間においてヒトPSAに対する免疫応答を誘発する方法であって、人に非ヒトPSAを導入するステップを含み、該非ヒトPSAが、ヒトPSAと88%以上で98%以下の範囲にあるアミノ酸相同性を備える方法が提供される。
本発明の別の態様に従えば、人間においてヒトPSAに対する免疫応答を誘発する方法であって、非ヒトPSAの遺伝子由来の遺伝子配列を人に導入するステップを含む方法が提供される。該非ヒトPSA遺伝子配列は、人において非ヒトPSAとして発現される。導入される該非ヒト遺伝子配列は、ヒトPSAの遺伝子由来の遺伝子配列と塩基対相同性を備え、その相同性は、88%以上で98%以下の範囲にある。好ましくは、請求項18に記載の方法。該相同性は、92%以上で99%以下の範囲にある。
本発明の別の態様に従えば、ヒト抗原に対する免疫応答を得ることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するために、非ヒト霊長類抗原を発現するベクターの使用が提供される。一観点では、該ベクターはDNAベクターであってもよい。別の観点では、該ベクターはRNAベクターであってもよい。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAに対する免疫応答を得ることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するための、非ヒト霊長類PSAを発現するベクターの使用が提供される。一観点では、該ベクターはDNAベクターであってもよい。別の観点では、該ベクターはRNAベクターであってもよい。
これらの事項は、本発明の更に他の目的と一緒に、本発明を特徴付ける、新規性に関する多様な特徴と共に、本開示に添付され、その一部を形成する特許請求の範囲に特に指摘されている。本発明、その操作上の利点、及びその使用で実現される特定の目的に関する理解を深めるために、添付の図面、及び本発明の好ましい実施形態が例示されている記載事項を参照すべきである。
本発明の以下の詳細な説明の調査を済ませば、本発明の理解が深まり、前記目的並びに前記以外の目的がより明白となろう。このような説明では、添付してある以下の図面を参照している。
使用する異種抗原(例えば、タンパク質)に関して、ある人における生来の自己抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、異種抗原とそのヒト自己抗原との間に種間差が相対的に少ない異種抗原を、その人に使用する方法及び装置が提供される。
関連する種間差は、図1A、1B、1C及び2に図示されている。
本発明の一態様に従えば、非ヒト霊長類PSAと、人間に投与するための医薬として許容可能な担体とを含む物質組成物が提供される。以下の実施例1を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類PSAと、人間に投与するための医薬として許容可能な担体とを備える、人間のためのワクチンが提供される。以下の実施例1を参照されたい。
(実施例1)
ここでは、組換え非ヒト霊長類PSAを含有するワクチン製剤を作製する、各ステップの説明がなされている。
組換え非ヒト霊長類PSAを含有するワクチン製剤は、ワクチン用の標準的アジュバントを用いて製剤することができる。一製剤は、抗原(組換えアカゲザルPSA)90mg、0.7mg/mlのアルミニウム、及び140mMの塩化ナトリウムを含有することができる。この製剤は、以下の方法によって作製することができる。
まず、3種の溶液を作製する。
第1に、Alhydrogel(Accurate Chemical and Scientific Corporation、Westbury NYの製品)を10mM MOPS緩衝液(pH7.4)に希釈し、最終アルミニウム濃度を2.1%とすることにより、2.1mg/mlの水酸化アルミニウム混合物を作製する。後者の混合物中に使用されるAlhydrogelの容量は、Alhydrogel付随の挿入書きを参照することにより決定される。
第2に、組換えアカゲザルPSAを10mM MOPS緩衝液中で最終濃度270mg/mlに希釈する。
第3に、3%塩化ナトリウム水溶液(420mM)を調製する。
第1溶液及び第2溶液(ahydrogel溶液及び組換えアカゲザルPSA溶液)を等容量(例えば、各1ml)で混合する。その混合物を徹底的に反転させながら4℃、30分間静かに混合する。
最後に、混合物中のAlhydrogel(例えば、各1ml)の容量に等しい容量の塩化ナトリウムを添加することにより、ワクチン混合物を希釈し、塩化ナトリウム濃度を140mMにする。このように作製して得た最終ワクチン混合物は、非ヒト霊長類PSAと、人間に投与するための医薬として許容可能な担体とを含む物質組成物を提供する。
実施例1で用いる組換えアカゲザルPSAの産生は、昆虫細胞中に組換えアカゲザルPSAタンパク質を発現させることにより、実現される。手短に言うと、rhPSA遺伝子配列を、hisタグ及びプロテアーゼシグナル切断部位のための配列と一緒にした融合遺伝子として、バキュロウィルス中にクローニングする。組換えrhPSAタンパク質は、転写及び翻訳により産生される。
製剤中で用いる組換えrhPSAタンパク質は、バキュロウィルス感染昆虫細胞の溶解物からアフィニティクロマトグラフィーを用いて精製後、hisタグをプロテアーゼで切断し、サイズ排除クロマトグラフィーを経て、逐次透析によるリフォールディングを行う。逐次透析は、尿素濃度を減少させながら緩衝液中で実施することができる。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類PSAが、ヒトPSAに対する抗体を産生するヒト免疫応答を誘発するワクチンが提供される。上記の実施例1を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAに対する免疫応答を得ることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するために、非ヒト霊長類PSAの使用が提供される。上記の実施例1を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAを含有するヒト細胞に対して、ヒト免疫応答が細胞傷害性細胞性免疫を起こすワクチンが提供される。上記の実施例1を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、人間を治療する方法には、非ヒト霊長類DNA配列を含有するベクターをある人に導入し、その人において非ヒト霊長類PSAを発現させるステップが含まれる。該ベクターは、DNA又はRNAベクターでもよい。ベクターの例は、哺乳類発現用のプラスミド、ウィルスRNA若しくはDNA、メッセンジャーRNA、又は、哺乳類細胞中に導入すると、非ヒト霊長類PSAの発現を起こす他の核酸構築体である。下記の実施例2を参照されたい。
(実施例2)
一方法では、CMVプロモーターの制御下で非ヒト霊長類PSAを発現する、プラスミドを含有するDNAワクチンが調製される。該プラスミドは、細菌性複製起点及びカナマイシン抵抗性遺伝子などの抗生物質抵抗性遺伝子のような、プラスミドの産生に必須の他のDNA配列を含有する。該プラスミドは、半強度リン酸緩衝塩水などの適切な担体中、0.5〜5μg/μlの濃度で混合される。投与には、半インチの27ゲージ針を付けたツベルクリン型シリンジ中に該プラスミド混合物を装入する。該プラスミド混合物20〜50μlを三角筋上の皮膚中又は前腕上に皮内注入する。
次いで、平行2列の針付き電極(直径0.3mmの針、列間距離4mm、1列中の針間距離1mm、1列中針4本、及び針長さ3mm)を、注入部位の各側に1列の針を置いて皮膚中深さ2〜3mmまで挿入する。次いで、電気穿孔パルスを挿入電極に印加する。パルスの1手順は、1125V/cmを2パルス、持続時間50マイクロ秒、及びパルス間隔0.125秒、続いて0.5秒後に、275V/cmを8パルス、持続時間10ミリ秒、及びパルス間隔0.125秒からなる。
本発明の別の態様に従えば、人間における抗原に対する免疫応答を得ることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するために、非ヒト霊長類DNA配列を含有するベクターの使用が提供される。上記の実施例2を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAに対する免疫応答を得ることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するために、非ヒト霊長類DNA配列を含有するベクターの使用が提供される。上記の実施例2を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAに対する抗体を産生するヒト免疫応答を誘発するために、人に非ヒト霊長類PSAを導入するステップを含む、人間において前立腺癌を治療する方法が提供される。非ヒト霊長類PSA、及び非ヒトPSAを発現するベクターについては、上記の実施例1及び2を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類PSA、又は非ヒトPSAを発現するベクターを人に導入するステップを含み、ヒト免疫応答がヒトPSAに対する抗体の産生を起こす、人間において前立腺癌を治療する方法が提供される。非ヒト霊長類PSA、及び非ヒトPSAを発現するベクターについては、上記の実施例1及び2を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAを含有する細胞に対する細胞傷害性細胞性免疫を含む免疫応答を誘発するために、非ヒト霊長類PSA、又は非ヒトPSAを発現するベクターを人に導入するステップを含む、人間において前立腺癌を治療する方法が提供される。非ヒト霊長類PSA、及び非ヒトPSAを発現するベクターについては、上記の実施例1及び2を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類PSA、又は非ヒトPSAを発現するベクターを人に導入するステップを含み、ヒト免疫応答が、ヒトPSAを含有する細胞に対して細胞傷害性細胞性免疫を起こす、人間において前立腺癌を治療する方法が提供される。非ヒト霊長類PSA、及び非ヒトPSAを発現するベクターについては、上記の実施例1及び2を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、非ヒトPSAを発現する核酸ワクチンをヒト細胞中に送達する方法であって、核酸ワクチンのある量をヒト組織に投与するステップ、及び電界を該ヒト組織に印加するステップを含み、それにより、非ヒト霊長類抗原を発現する該核酸ワクチンが、該ヒト組織における細胞中に送達される方法が提供される。上記の実施例2、及び下記の実施例3を参照されたい。
(実施例3)
電界の印加は、電気穿孔法を行うことによって使用することができる。適切な電気穿孔法は、そのすべてが参照により本明細書に組み込まれている、米国特許第6010613号、第6603998号及び第6713291号に開示されている。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類PSAを発現する核酸ワクチンをヒト細胞中に送達する方法であって、核酸ワクチンのある量をヒト組織に投与するステップ、及び電界を該ヒト組織に印加するステップを含み、それにより、非ヒト霊長類PSAを発現する該核酸ワクチンが、該ヒト組織における細胞中に送達される方法が提供される。上記の実施例2及び3を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、非ヒト霊長類PSAの遺伝子由来の遺伝子配列を含む、人間のためのDNAワクチンが提供される。
本発明の別の態様に従えば、人間においてヒトPSAに対する免疫応答を誘発する方法であって、人に非ヒトPSAを導入するステップを含み、該非ヒトPSAが、ヒトPSAと88%以上で98%以下の範囲にあるアミノ酸相同性を備える方法が提供される。非ヒトPSAについては、上記の実施例1を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、人間においてヒトPSAに対する免疫応答を誘発する方法であって、非ヒトPSAの遺伝子由来の遺伝子配列を人に導入するステップを含む方法が提供される。該非ヒトPSA遺伝子配列は、人において非ヒトPSAとして発現される。導入される該非ヒト遺伝子配列は、ヒトPSAの遺伝子由来の遺伝子配列と塩基対相同性を備え、その相同性は、88%以上で98%以下の範囲にある。好ましくは、該相同性は、92%以上で99%以下の範囲にある。上記の実施例2を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、ヒト抗原に対する免疫応答を得ることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するために、非ヒト霊長類抗原を発現するベクターの使用が提供される。一観点では、該ベクターはDNAベクターであってもよい。別の観点では、該ベクターはRNAベクターであってもよい。上記の実施例2を参照されたい。
本発明の別の態様に従えば、ヒトPSAに対する免疫応答を得ることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するための、非ヒト霊長類PSAを発現するベクターの使用が提供される。一観点では、該ベクターはDNAベクターであってもよい。別の観点では、該ベクターはRNAベクターであってもよい。上記の実施例2を参照されたい。
ヒトPSAを産生するヒト細胞を攻撃することを目的とした、ヒト免疫系の刺激における非ヒト霊長類PSA(例えば、アカゲザルPSA)の有用性は、図3及び4に例示した証拠により証明されている。
図4は、pVAX/rhPSAをトランスフェクトした単球由来のヒト樹状細胞による刺激に対するヒトT細胞の応答を示す。未成熟ヒト単球性樹状細胞は、ヒト単球のサイトカインにおける増殖により調製した。ヒト単球由来樹状細胞に、pVAX/rhPSAをトランスフェクトした。該細胞は、ポリI:Cを含む培地中でのインキュベーションにより成熟した。成熟後、該細胞を用いて、インビトロ免疫において自家性ヒトT細胞を刺激した。再刺激2回の後、IFNγ ELISPOTアッセイを用いてヒトPSA特異性を評価した。特異的T細胞は、対照のヒト血清アルブミン(HSA)を用いて刺激したT細胞と比較した。その応答は、アカゲザルPSA形質導入ヒト樹状細胞で刺激された細胞における、ヒトPSA特異的T細胞の応答を示す。このことは、インビトロ免疫において、アカゲザルPSAで刺激されたヒトT細胞は、ヒトPSAを含有するヒト細胞を攻撃することを示唆するように応答することを示している。
ヒト樹状細胞の前記トランスフェクションについては、トランスフェクトされた細胞がアカゲザルPSAを実際に発現していることを実証するために、ウェスタンブロットを行った。より具体的には、図3は、pVAX/rhPSA(アカゲザルPSAを発現するプラスミド)及び対照プラスミド(pVAX)をトランスフェクトした、ヒト樹状細胞におけるアカゲザルPSAの発現を示す。ウェスタンブロットから、アカゲザルPSAに対して予想される30キロダルトンのタンパク質の発現が示される。その発現のために、pVAX/rhPSA及び対照プラスミドを、電気穿孔によって未成熟ヒト樹状細胞中に形質導入した。細胞を24時間後にウェスタンブロットで分析し、アカゲザルPSAを30キロダルトンのバンドとして検出した。
本発明の使用法及び操作法に関しては、前記開示から明白であり、したがって、使用法及び操作法に関する考察は、これ以上述べる必要はない。
前立腺の外科的除去を免れた人の前立腺細胞を死滅させるために有利に使用し得る、対前立腺癌ワクチンに関する新規で改良された方法及び組成物を提供することにより、本発明が上記の目的すべてを実現することは、前記から明白である。本発明を用いれば、ヒトPSAを産生するヒト細胞の死滅を生じるヒト免疫応答を誘発させる、対前立腺癌ワクチンに関する方法及び組成物が提供される。本発明を用いれば、ホルモン療法に限定されない、対前立腺癌ワクチンに関する方法及び組成物が提供される。本発明を用いれば、使用する異種抗原(例えば、タンパク質)に関して、ある人における生来の自己抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、異種抗原とそのヒト自己抗原との間に種間差が相対的に少ない異種抗原を、その人に使用する、対前立腺癌ワクチンに関する方法及び組成物が提供される。本発明を用いれば、使用する非ヒト霊長類異種抗原(例えば、タンパク質)に関して、ある人における生来の自己抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、非ヒト霊長類異種抗原とそのヒト自己抗原との間に種間差が相対的に少ない非ヒト霊長類異種抗原を、その人に使用する、対前立腺癌ワクチンに関する方法及び組成物が提供される。本発明を用いれば、使用する非ヒト霊長類異種PSA抗原(例えば、タンパク質)に関して、ある人における生来の自己PSA抗原に対し最適な免疫応答を誘発するために、非ヒト霊長類異種PSA抗原とそのヒト自己PSA抗原との間に種間差が相対的に少ない非ヒト霊長類異種PSA抗原を、その人に使用する、対前立腺癌ワクチンに関する方法及び組成物が提供される。
したがって、現状の判断から本発明のうちで最も実用的で好ましい実施形態(複数も)に関して特に且つ詳細に、本発明を図面で示し、十分に前記してきたが、サイズ、材料、形状、形態、機能及び操作法、組立て並びに使用における変更を含むが、それだけに限らないその多くの改変が、本明細書に示した原理及び概念から逸脱せずになし得ることは、当業者であれば明白であろう。
(参考文献)
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ヒトPSAのcDNA、アカゲザル(Macaca mulatta)の非ヒト霊長類PSAのcDNA、及びカニクイザル(Macaca fasicularis)の非ヒト霊長類PSAのcDNA間における、従来技術由来のcDNAの比較を示す図である。 ヒトPSAのcDNA、アカゲザル(Macaca mulatta)の非ヒト霊長類PSAのcDNA、及びカニクイザル(Macaca fasicularis)の非ヒト霊長類PSAのcDNA間における、従来技術由来のcDNAの比較を示す図である。 ヒトPSAのcDNA、アカゲザル(Macaca mulatta)の非ヒト霊長類PSAのcDNA、及びカニクイザル(Macaca fasicularis)の非ヒト霊長類PSAのcDNA間における、従来技術由来のcDNAの比較を示す図である。 ヒトPSAが、アミノ酸261個の配列を備え(第1セクション「huPSA」中)、アカゲザルPSAが、アミノ酸261個の配列を備える(第1セクション「rhPSA」中)ことを示す図である。図2は、ヒトPSAのDNA配列が、ヌクレオチド786個の配列を備え(第2セクション「huPSA」中にあって、Genebank受入番号X73560)、アカゲザルPSAのDNA配列が、786個の配列を備える(第2セクション「rhPSA」中にあって、Genebank受入番号X07730)ことも示す。 pVAX/rhPSA(アカゲザルPSAを発現するプラスミド)及び対照プラスミド(pVAX)を形質移入したヒト樹状細胞における、アカゲザルPSAの発現を示す図である。 pVAX/rhPSAをトランスフェクトした単球由来のヒト樹状細胞による刺激に対する、ヒトT細胞の応答を示す図である。

Claims (25)

  1. 非ヒト霊長類PSAと、人間に投与するための医薬として許容可能な担体とを含む物質組成物。
  2. 非ヒト霊長類PSAと、人間に投与するための医薬として許容可能な担体とを含む、人間のためのワクチンである、請求項1に記載の物質組成物。
  3. 前記物質組成物がワクチンであり、非ヒト霊長類PSAが、ヒトPSAに対して抗体を産生するヒト免疫応答を誘発する、請求項1に記載の物質組成物。
  4. 前記物質組成物がワクチンであり、ヒト免疫応答が、ヒトPSAに対する抗体の産生を生じる、請求項1に記載の物質組成物。
  5. 前記物質組成物がワクチンであり、ヒト免疫応答が、ヒトPSAを含有するヒト細胞に対して、細胞傷害性細胞性免疫を生じる、請求項1に記載の物質組成物。
  6. ヒトPSAに対する免疫応答を与えることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するための、非ヒト霊長類PSAの使用。
  7. 人間において抗原に対する免疫応答を与えることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するための、抗原に対する非ヒト霊長類DNA配列の使用。
  8. ヒトPSAに対する免疫応答を与えることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するための、PSAに対する非ヒト霊長類DNA配列の使用。
  9. 人に非ヒト霊長類PSAを供与するために、前記人に非ヒト霊長類DNA配列を導入するステップを含む、人間を治療する方法。
  10. ヒト免疫応答を誘発するために、人に非ヒト霊長類PSAを導入するステップを含む、人間において前立腺癌を治療する方法。
  11. 人に非ヒト霊長類PSAを導入するステップを含み、ヒト免疫応答が、ヒトPSAに対する抗体の産生を生じる、人間において前立腺癌を治療する請求項10に記載の方法。
  12. ヒトPSAを含有する細胞に対する細胞傷害性細胞性免疫を含む、免疫応答を誘発するために、人に非ヒト霊長類PSAを導入するステップを含む、人間において前立腺癌を治療する請求項10に記載の方法。
  13. 人に非ヒト霊長類PSAを導入するステップを含み、ヒト免疫応答が、ヒトPSAを含有する細胞に対して、細胞傷害性細胞性免疫を生じる、人間において前立腺癌を治療する請求項10に記載の方法。
  14. 非ヒト霊長類抗原を発現する核酸ワクチンをヒト細胞中に送達する方法であって、
    核酸ワクチンのある量をヒト組織に投与するステップ、及び
    電界をヒト組織に印加するステップ、
    を含み、それにより、非ヒト霊長類抗原を発現する核酸ワクチンが、ヒト組織における細胞中に送達される方法。
  15. 非ヒト霊長類PSAを発現する核酸ワクチンをヒト細胞中に送達する方法であって、
    核酸ワクチンのある量をヒト組織に投与するステップ、及び
    電界をヒト組織に印加するステップ、
    を含み、それにより、非ヒト霊長類PSAを発現する核酸ワクチンが、ヒト組織における細胞中に送達される方法。
  16. 非ヒト霊長類PSAの遺伝子由来の遺伝子配列を含む、人間のためのDNAワクチン。
  17. 人間においてヒトPSAに対する免疫応答を誘発する方法であって、人に非ヒトPSAを導入するステップを含み、非ヒトPSAが、ヒトPSAと88%以上で98%以下の範囲にあるアミノ酸相同性を備える方法。
  18. 人間においてヒトPSAに対する免疫応答を誘発する方法であって、非ヒトPSAの遺伝子由来の遺伝子配列を人に導入するステップを含み、前記非ヒトPSA遺伝子配列は、人において非ヒトPSAとして発現され、導入される前記非ヒト遺伝子配列は、ヒトPSAの遺伝子由来の遺伝子配列と塩基対相同性を備え、前記相同性は、88%以上で98%以下の範囲にある方法。
  19. 相同性が、92%以上で99%以下の範囲にある、請求項18に記載の方法。
  20. ヒト抗原に対する免疫応答を与えることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するために、非ヒト霊長類抗原を発現するベクターの使用。
  21. 前記ベクターがDNAベクターである、請求項20に記載のベクターの使用。
  22. 前記ベクターがRNAベクターである、請求項20に記載のベクターの使用。
  23. ヒトPSAに対する免疫応答を与えることを目的として、人間に投与するワクチンを調製するために、非ヒト霊長類PSAを発現するベクターの使用。
  24. 前記ベクターがDNAベクターである、請求項23に記載のベクターの使用。
  25. 前記ベクターがRNAベクターである、請求項23に記載のベクターの使用。
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