JP2008505604A - 新規なｃｃ−ケモカイン結合タンパク質 - Google Patents

Abstract

新規CC-ケモカイン結合タンパク質は、クリイロコイタマダニ（Ｒｈｉｐｉｃｅｐｈａｌｕｓ ｓａｎｇｕｉｎｅｕｓ）の唾液から単離される。本発明によって調製される化合物は抗炎症性化合物として使用でき、且つCC-ケモカイン関連疾患の治療又は予防において使用することができる。

Description

本発明は、ＣＣ−ケモカインの新規なアンタゴニストおよび特に抗炎症性化合物としての、またＣＣ−ケモカイン関連疾患の治療または予防におけるそれらの使用に関する。

ケモカインは、白血球の血液から損傷部位への指向性の遊走を媒介する、小分子量の向炎症性分泌タンパク質である。このタンパク質ファミリーを特徴付ける保存されたシステインの位置によって、ケモカインファミリーは、構造上、一連の膜受容体と結合するＣ、ＣＣ、ＣＸＣおよびＣＸ₃Ｃケモカインに分類される（Ｂａｇｇｉｏｌｉｎｉ Ｍ ｅｔ ａｌ．，１９９７；Ｆｅｍａｎｄｅｚ ＥＪ ａｎｄ Ｌｏｌｉｓ Ｅ，２００２）。これらの膜受容体は全て七重らせん状のＧタンパク質共役受容体で、ケモカインにその生物活性を標的細胞へ発揮させるが、その状態および／または種類によって特定の受容体の組合せを示すことがある。ケモカインの生理的な影響は、同時に起こる相互作用をもつ複合体および統合された系に起因する。つまり、受容体は、重複するリガンド特異性を有することが多く、そのため単一の受容体は異なるケモカインと結合できる。同様に単一のケモカインも異なる受容体と結合できるのである。

構造と活性の関係に関する研究は、ケモカインが、柔軟性のあるアミノ末端領域と２番目のシステインの後の立体配置的に強固なループという、その受容体との相互作用の２つの主な部位を有することを示す。ケモカインは、ループ領域によって受容体と結合すると考えられ、この接触は、受容体活性化をもたらすアミノ末端領域の結合を促進すると考えられる。

通常、ケモカインは損傷部位で産生され、白血球の遊走および活性化をもたらし、炎症作用、免疫作用、恒常作用、造血作用、および脈管形成作用に基本的な役割を果たす。従って、これらの分子は、このような作用に関連する疾患における治療的介入の優れた標的候補であると考えられる。ケモカインの阻害、またはそれらの受容体の阻害は、白血球の成熟、補充および活性化、ならびに脈管形成または動脈硬化症に関連する他の病理過程を低下させることができる（Ｂａｇｇｉｏｌｉｎｉ Ｍ，２００１；Ｌｏｅｔｓｃｈｅｒ Ｐ ａｎｄ Ｃｌａｒｋ−Ｌｅｗｉｓ Ｉ，２００１；Ｇｏｄｅｓｓａｒｔ Ｎ ａｎｄ Ｋｕｎｋｅｌ ＳＬ，２００１）。

変異抑制性のケモカイン、抗体ならびに受容体を阻害するペプチドおよび小分子阻害剤に加えて、効果的なケモカインアンタゴニストの探索は、一連のウイルスおよび他の生物にまで及び、（それらは）ヒトまたは哺乳類宿主と接触すると、宿主に影響する強力な免疫調節活性を示す。

サイトカイン、ケモカイン、およびそれらの受容体のウイルス模倣性は、治療薬の開発のための免疫調節の戦略を示す可能性がある（Ａｌｃａｍｉ Ａ，２００３；Ｌｉｎｄｏｗ Ｍ ｅｔ ａｌ．，２００３）。近年、吸血性の節足動物（例えば蚊、サシチョウバエおよびダニ）によって発現した免疫調節因子が概説されている（Ｇｉｌｌｅｓｐｉｅ，ＲＤ ｅｔ ａｌ．，２０００；Ｎｕｔｔａｌｌ ＰＡ ｅｔ ａｌ．，２０００；Ｓｃｈｏｅｌｅｒ ＧＢ ａｎｄ Ｗｉｋｅｌ ＳＫ，２００１）。

特に、ダニの唾液腺は、特に、抗炎症性、抗止血活性および抗免疫活性を有する生理活性分子の複雑な混合物を産生する。これらには、ヒスタミンを制御する、免疫グロブリンと結合する、または代替的な補体カスケードもしくは他のプロテアーゼを阻害する、生理活性タンパク質が挙げられる。

これらの分子の効果は、おそらく、ダニと宿主の接触面で、通常の生得的および後天性の、感染と戦う宿主免疫機構からダニを保護する特権部位を提供し、摂食の成功を確実にすることであろう。

さらに、ダニの唾液腺はダニの有する病原体が摂食中に宿主に入る主要経路であると考えられる。それはダニがその唾液腺を過剰な流体およびイオンを宿主に戻すことによって血液の食事を濃縮する手段として用いているためで、おそらくこれらの腺に常在する病原体を伝染させていると思われる。実際、ダニに誘導される宿主免疫性の調節は、ダニの有する病原体の伝染の成功または確立の重要な因子として徐々に認識されてきている。

免疫調節活性は、ダニ唾液抽出物において特性決定されている（Ａｌａｒｃｏｎ−Ｃｈａｉｄｅｚ ＦＪ ｅｔ ａｌ．，２００３；Ｂｅｒｇｍａｎ ＤＫ ｅｔ ａｌ．，２０００；Ａｎｇｕｉｔａ Ｊ ｅｔ ａｌ．，２００２；Ｇｗａｋｉｓａ Ｐ ｅｔ ａｌ．，２００１；Ｌｅｂｏｕｌｌｅ Ｇ ｅｔ ａｌ．，２００２；Ｋｏｐｅｃｋｙ Ｊ ｅｔ ａｌ．，１９９９；Ｋｏｖａｒ Ｌ ｅｔ ａｌ．，２００２；Ｇｉｌｌｅｓｐｉｅ ＲＤ ｅｔ ａｌ．，２００１）。例えば、クリイロコイタマダニ（Ｒｈｉｐｉｃｅｐｈａｌｕｓ ｓａｎｇｕｉｎｅｕｓ）由来の唾液は、抗原に刺激される免疫グロブリンの産生およびＩＦＮ−γ、ＩＬ−２およびＩＬ−５の発現を用量依存的に阻害する（Ｍａｔｓｕｍｏｔｏ Ｋ ｅｔ ａｌ．，２００３）。

ＣＸＣ−ケモカイン結合活性、特にＣＸＣＬ８／インターロイキン８結合活性が、いくつかのマダニのダニ種（アメリカイヌカマクダニ（Ｄｅｒｍａｃｅｎｔｏｒ ｒｅｆｉｃｕｌａｔｕｓ）、アンブリオンマ・バリエガツム（Ａｍｂｌｙｏｍｍａ ｖａｒｉｅｇａｔｕｍ）、リピセファルス・アペンディキュラタス（Ｒｈｉｐｉｃｅｐｈａｌｕｓ ａｐｐｅｎｄｉｃｕｌａｔｕｓ）、ハエマフィサリス・イネルミス（Ｈａｅｍａｐｈｙｓａｌｉｓ ｉｎｅｒｍｉｓ）、イキソデス・リシヌス（Ｉｘｏｄｅｓ ｒｉｃｉｎｕｓ））から調製された唾液中に検出され（特定のタンパク質配列に関しては特性決定されていない）、検出可能なＩＬ−８のレベルの低下をさせること、およびヒト血液顆粒球のＩＬ−８に誘導される走化作用を阻害することを証明している（Ｈａｊｎｉｃｋａ Ｖ ｅｔ ａｌ．，２００１；Ｋｏｃａｋｏｖａ Ｐ ｅｔ ａｌ．，２００３；ＷＯ ０１／５８９４１；ＷＯ ０１／４８４８４）。

クリイロコイタマダニ（Ｒｈｉｐｉｃｅｐｈａｌｕｓ ｓａｎｇｕｉｎｅｕｓ）由来の抗原は、抵抗性のある動物では強力な細胞に媒介される免疫応答を誘起するが、感受性の高い動物では誘起しない。ダニの寄生中に導入された唾液は、感受性の高い動物宿主の、保護的な免疫応答を刺激するはずのダニ抗原に応答する能力を低下させる。結果として、その動物はダニ摂食部位への細胞遊走が妨害されたことを提示し、ダニに対する不十分な応答を示すといえる（Ｆｅｒｒｅｉｒａ ＢＲ ｅｔ ａｌ．，２００３）。

向炎症性サイトカインマクロファージ遊走阻害因子の同族体が、アメリカキララマダニ（Ａｍｂｌｙｏｍｍａ ａｍｅｒｉｃａｎｕｍ）というダニで検出されている。この配列は、インビトロ機能検定において組換え型ヒトＭＩＦと同程度にヒトマクロファージの遊走を阻害した（Ｊａｗｏｒｓｋｉ ＤＣ ｅｔ ａｌ．，２００１；ＷＯ ０１／７８７７０）。

膨大な量の文献にもかかわらず、ごくわずかな論文しか、種々のダニ組織および／またはダニ種から作成されたライブラリーのランダムシークエンシングおよびディファレンシャルスクリーニングによって同定されたｃＤＮＡ配列を列挙していない。異なる発生段階でのアメリカキララマダニおよびデルマセント・アンデルソニ（Ｄｅｒｍａｃｅｎｔｏｒ ａｎｄｅｒｓｏｎｉ）について公開されている（Ｈｉｌｌ ＣＡ ａｎｄ Ｇｕｔｉｅｒｒｅｚ ＪＡ，２０００）、摂食していない、および摂食した雄アメリカキララマダニの唾液腺（Ｂｉｏｒ ＡＤ ｅｔ ａｌ．，２００２）、交配する雄シカダニ（Ｉｘｏｄｅｓ ｓｃａｐｕｌａｒｉｓ）（Ｐａｃｋｉｌａ Ｍ ａｎｄ Ｇｕｉｌｆｏｉｌｅ ＰＧ，２００２）、アンブリオンマ・バリエガツム（Ｎｅｎｅ Ｖ ｅｔ ａｌ．，２００２）、リピセファルス・アペンディキュラタス（Ｎｅｎｅ Ｖ ｅｔ ａｌ．，２００４）、ならびにシカダニ（Ｖａｌｅｎｚｕｅｌａ ＪＧ ｅｔ ａｌ．，２００２ａ；Ｆｒａｎｃｉｓｃｈｅｔｔｉ ＩＭ ｅｔ ａｌ．，２００２）の唾液腺のｃＤＮＡ配列のリストが公開されている。

しかし、これらの配列の大多数は生化学的または機能的に特性決定されておらず、基本的な細胞機能、例えばダニ唾液腺において既に特性決定された酵素活性のための機能または抗体の応答を誘導する機能、に関与している既知タンパク質との配列類似性というだけで多くのアノテートが記入されている。特に、ＣＣ−ケモカイン結合タンパク質として作用するダニタンパク質の指摘はない。

驚くことに、クリイロコイタマダニ（犬ダニ）の唾液はＣＣ−ケモカイン結合活性を含むことが見出された。特に、ＣＣ−ケモカインと結合し、リポ多糖（ＬＰＳ）に誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出の産生を阻害できる、ｒｓＣｈＢＰ−１と呼ばれる新規なタンパク質は、現在クリイロコイタマダニｃＤＮＡライブラリーからクローニングされ、哺乳類細胞において発現している。このタンパク質、ならびにその誘導体、断片または模倣物は、例えば、炎症のモジュレーターとして、またはワクチン接種のための、ならびにダニの制御およびダニ媒介性病原体の制御のための標的として治療に用いることができる。

本発明の第一の目的は、ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列またはその断片もしくは類似体を含むポリペプチドに関する。本発明の好ましいポリペプチドはＣＣ−ケモカインと結合し、リポ多糖（ＬＰＳ）に誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出の産生を阻害できる。このようなポリペプチドの具体的な例は、ｒｓＣｈＢＰ−１またはその断片である。

本発明の第二の目的は、上記定義のようなポリペプチドをコードする核酸分子に関する。このような核酸には、それらから単離されたオリゴヌクレオチドおよび前記分子を含有するベクター、特に発現ベクターも含まれる。

本発明の第三の目的は、上記定義のようなポリペプチドを選択的に結合する抗体にある。

本発明の第四の目的は、上記定義のようなポリペプチドを発現する宿主細胞およびトランスジェニック非ヒト動物、ならびにこのような細胞およびトランスジェニック非ヒト動物を作製する方法に関する。

本発明の第五の目的は、一般に組換え技術を用いて上記定義のようなポリペプチドを調製するための方法である。

本発明の第六の目的は、上記定義のようなポリペプチドまたは核酸分子、および製薬上許容される担体またはビヒクルを含む医薬組成物（ワクチンまたは免疫原性組成物を含む）である。

本発明の第七の目的は、上記定義のようなポリペプチドまたは核酸分子の医薬としての使用、特に哺乳類において免疫反応または炎症反応を調節するための医薬の調製のための使用、ならびに対応する治療のための方法に関する。

本発明の他の特徴および利点は以下の詳細な説明で明らかとなる。

本発明は、炎症反応を調節するための新規な組成物および方法を提供する。より詳細には、本発明は、炎症反応を調節するために用いることのできるＣＣ−ケモカイン結合特性を有する新規なタンパク質を開示する。例では、ダニ唾液に由来するこのタンパク質は、組換え体で発現させ、精製することができ、かつ、ＣＣ−ケモカインと結合し、ＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出を阻害することを示す。

本発明の第一の目的は、ｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチド、すなわち、ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列あるいはその断片または類似体を含む任意のポリペプチドにある。本発明の好ましいポリペプチドは、ＣＣ−ケモカインと結合し、ＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出を阻害する。本発明の特定のポリペプチドは、
ａ）ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号４）を含むタンパク質；
ｂ）成熟ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号６）を含むタンパク質；
ｃ）ストリンジェント条件下で、ａ）またはｂ）のタンパク質をコードする核酸配列とハイブリダイゼーション可能な核酸分子によってコードされるタンパク質（前記核酸分子はＣＣ−ケモカインと結合し、ＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出を阻害するタンパク質をコードする）；
ｄ）ａ）、ｂ）、またはｃ）のタンパク質とアミノ酸配列が少なくとも約７０％同一であり、かつ、ＣＣ−ケモカインと結合し、ＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出を阻害するタンパク質；
ｅ）その断片がＣＣ−ケモカインと結合し、ＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出を阻害する、ａ）、ｂ）、ｃ）、またはｄ）のタンパク質の断片；ならびに
ｆ）その断片が免疫調節活性を有する、ａ）、ｂ）、ｃ）、ｄ）のタンパク質の断片、
からなる群から選択される。

さらに好ましい実施形態では、タンパク質は、
ａ）ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号４）を有するタンパク質；
ｂ）成熟ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号６）を有するタンパク質；
ｃ）その断片がＣＣ−ケモカインと結合し、ＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出を阻害する、ａ）またはｂ）のタンパク質の断片；
ｄ）その断片が哺乳類へ投与される場合に免疫化活性を有する、ａ）またはｂ）のタンパク質の断片；
ｅ）その変異体に１以上のアミノ酸残基が付加、欠失、または置換されており、前記変異体がＣＣ−ケモカインと結合し、ＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出を阻害する、ａ）またはｂ）のタンパク質の活性変異体；
ｆ）その融合タンパク質が、以下の、膜結合タンパク質の細胞外ドメイン、免疫グロブリンの定常領域、多量体化ドメイン、シグナルペプチド、移行シグナル、およびタグ配列から選択される１以上のアミノ酸配列と作動可能なように連結されるａ）、ｂ）、ｃ）、ｄ）またはｅ）のタンパク質を含み、前記融合タンパク質がケモカインと結合し、ＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出を阻害する、融合タンパク質
からなる群から選択される。

本発明のポリペプチドは、１以上の翻訳後修飾（例えば、グリコシル化、リン酸化、シグナルペプチドを排除するためのエンド／エキソペプチダーゼでの修飾）から、あるいは異種配列をコードする配列（例えば検出および／または精製を改良するタグまたはドメイン）のインフレーム付加から生じる、成熟した形態であり得る。

本発明のポリペプチドまたそれらに対応する核酸は、組換えまたは合成のポリペプチドおよび核酸をはじめ、単離された（例えば、それらの天然環境にない）形態であってよい。

実施例は、ｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチドがＣＣ−ケモカインと結合すること、およびＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出を阻害する（例えば、減少させる）ために用いることができることを示す。この特性決定は、放射性のＣＣ−ケモカインの使用、または細胞系アッセイを含む機能アッセイをはじめとする、一連の生化学アッセイを活用することによって実施された。実施例で証明されるように、ｒｓＣＨＢＰ−１ポリペプチドは特にＣＣ−ケモカイン、例えばＣＣＬ３／ＭＩＰ−１αと結合する。ｒｓＣｈＢＰ−１は、ＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出を阻害することが示され、これは免疫調節活性を示す。このような活性（すなわち、ケモカイン結合およびＬＰＳに誘導される、単球によるＴＮＦ−αの放出の阻害）のスペクトルは、以下に論じられる本発明のｒｓＣＨＢＰ−１ポリペプチドに広範な治療的有用性を付与するものである。

本発明の状況の範囲内で、ポリペプチドの断片とは、前記ポリペプチド配列の少なくとも５、６、７、８、９または１０個の連続したアミノ酸残基を含む任意の断片を意味する。本発明の特定の断片は、その中に開示されるように、ｒｓＣＨＢＰ−１タンパク質の１５、２０、２５以上のアミノ酸残基を含む。好ましい断片は、ケモカインとの結合能、および全長タンパク質の少なくとも１つの生物活性、例えば、免疫原活性または免疫調節活性を保持する。

この点について、本発明の状況の範囲内で、「免疫調節活性」は、陽性マーカーまたは陰性マーカーのいずれかで免疫応答に作用する、インビトロまたはインビボで検出される任意の活性を意味する。このような活性の例は免疫化活性、免疫抑制活性、抗炎症性活性、向／抗アポトーシス活性、または抗腫瘍活性である。

あるいは、断片を、哺乳類へ投与される場合に免疫化活性をもたらすとして同定することができる。これらの断片は、必要に応じて免疫応答を（例えば、ダニまたはダニ媒介性病原生物に対して）産生するための適当な抗原特性および免疫原特性を有しているはずである。文献は、このような機能的な配列をどのようにして候補ワクチン抗原として同定できるのか、ならびに最終的にアジュバントとともに投与される、かつ／または担体と架橋されるのかについて、多くの例を提供している（Ｍｕｌｅｎｇａ Ａ ｅｔ ａｌ．２０００；ＷＯ ０１／８０８８１；ＷＯ ０３／０３０９３１；ＷＯ ０１／８７２７０）。ｒｓＣｈＢＰ−１において同定された特異的抗原または抗原の群は、動物において外部寄生虫による感染または疾患を予防するまたは減少させるために用いることができ、外部寄生虫に対する動物の免疫性が外部寄生虫をもつ動物の天然の抗原投与により追加免疫される（ＷＯ ９５／２２６０３）。最後に、断片も、スクリーニングまたは診断適用のため、全タンパク質に対する抗体の産生のために用いることができる。

上記定義の、およびこの配列の組換え変異体を用いて本明細書に例示されるｒｓＣｈＢＰ−１の特性は、活性変異体において維持することができる、または増強されさえもする。この範疇の分子には前記配列の天然または合成類似体を含み、もし本発明で特性決定された同じ生物活性を、以下の実施例に開示される手段で測定して、匹敵するレベルまたは高いレベルで提示するならば、その１以上のアミノ酸残基が付加、欠失、または置換されている。

特に、用語「活性のある」または「生物学的に活性のある」とは、このような代替化合物が、ｒｓＣｈＢＰ−１のＣＣ−ケモカイン結合特性および免疫調節特性を維持する、または増強さえするはずであるということを意味する。

活性変異体分子は、ＤＮＡ配列をコードするレベルでのコンビナトリアル技術（例えばＤＮＡシャッフリング、ファージディスプレイ／選択）である、部位特異的突然変異誘発技術によって、あるいはコンピューターを使った設計研究またはその適した任意の他の既知技法によって作製することができ、それは変異したまたは短縮されたペプチドまたはポリペプチドに実質的に相当する限定されたセットを提供する。これらの代替分子は、先行技術および以下の実施例に示される教示を用いて当業者が日常的に取得し試験することができる。

本発明によれば、これらの活性変異体における好ましい変化は一般に「保存的な」または「安全な」置換として既知であり、非塩基性残基を含む。保存的なアミノ酸置換とは、分子の構造および生物学的機能を保存するために十分に類似する化学特性を有するアミノ酸を用いる置換である。アミノ酸の挿入および欠失も、特にもし挿入または欠失が少数、例えば１０個未満、および好ましくは、３個未満のアミノ酸しか関係せず、タンパク質またはペプチドの機能的な構造に重要なアミノ酸を除去または置換しないならば、それらの機能を変更することなく上記定義の配列中に作ることができることは明らかである。

文献には、天然のタンパク質の配列および／または構造についての統計学的および物理化学的研究に基づいて保存的アミノ酸置換の選択を行うことのできる多くのモデルが提供されている（Ｒｏｇｏｖ ＳＩ ａｎｄ Ｎｅｋｒａｓｏｖ ＡＮ，２００１）。タンパク質設計実験は、アミノ酸の特定のサブセットの使用が、折り畳み可能でかつ活性のあるタンパク質を産生することができることを示し、タンパク質構造においてより容易に収容することのできる、また機能的かつ構造的なｒｓＣＨＢＰ−１同族体およびパラログを検出するために使用することのできるアミノ酸の「同義的」置換の分類に役立つ（Ｍｕｒｐｈｙ ＬＲ ｅｔ ａｌ．，２０００）。置換のための同義的なアミノ酸群およびより好ましい同義的な群は、表１に明示されている。

ｒｓＣｈＢＰ−１の活性変異は、哺乳類へ投与される場合に前記ＣＣ−ケモカイン結合タンパク質の免疫原性を低下させる配列変更に起因している可能性がある。文献に、この範囲で設計および導入することのできる、または特にそれが非ヒト、非哺乳類、または非天然タンパク質である場合の治療タンパク質の安全かつ効果的な投与を可能にする他の機能的な最適化のための、これらの配列変更の多くの例が挙げられている（Ｓｃｈｅｌｌｅｋｅｎｓ Ｈ，２００２）。これらの分子を達成するための技術的なアプローチの例には、発展に向けられたもの（Ｖａｓｓｅｒｏｔ ＡＰ ｅｔ ａｌ．，２００３）、合理的な設計に向けられたもの（Ｍａｒｓｈａｌｌ ＳＡ ｅｔ ａｌ．，２００３）、生物情報科学に向けられたもの（Ｇｅｎｄｅｌ ＳＭ，２００２）、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープの同定および中性化に向けられたもの（ＷＯ ０３／１０４２６３；ＷＯ ０３／００６０４７；ＷＯ０２／９８４５４；ＷＯ ９８／５２９７６；ＷＯ ０１／４０２８１）、他のタンパク質配列との融合に向けられたもの（ＷＯ ０２／７９４１５；ＷＯ ９４／１１０２８）、または他の化合物との共役に向けられたもの（ＷＯ ９６／４０７９２）がある。

活性のあるｒｓＣｈＢＰ−１由来配列は、特に、他のダニ種、特にマダニ科に属するもの、ならびに特にクリイロコイタマダニの属するサブファミリー、リピセファリナ（Ｒｈｉｐｉｃｅｐｈａｌｉｎａｅ）に属するもの、同様にイキソジナ（Ｉｘｏｄｉｎａｅ）（シカダニおよびイキソデス・リシヌスを含む）またはアンブリオンミナ（Ａｍｂｌｙｏｍｍｉｎａｅ）（アンブリオンマ・バリエガツムおよびアメリカキララマダニを含む）などの他のサブファミリーに属するものから単離されてもよいｒｓＣｈＢＰ−１の天然の類似体またはオーソログであり得る。ｒｓＣｈＢＰ−１との何らかの相同性を分け合うポリペプチドをコードするｃＤＮＡ配列が、アンブリオンマ・バリエガツム（配列番号７）およびシカダニ（配列番号９）から同定されている。このようなｃＤＮＡ配列によりコードされるポリペプチドのアラインメントは、図５に示される。あるいは、哺乳類、例えばヒトおよびマウスにおいてオーソログを同定してもよい。

吸血性の節足動物のゲノムおよびトランスクリプトームについて利用可能な情報は限られており、その大部分はリボソームおよびミトコンドリアの配列に関連していて、それらは保存に基づいて系統学的関連を決定するために調査されたものである（Ｍｕｒｒｅｌｌ Ａ ｅｔ ａｌ．，２００１）。ダニゲノムデータは部分的にかつ予備的な形式でしか入手できない（Ｕｌｌｍａｎｎ ＡＪ ｅｔ ａｌ．，２００２）が、ＣＣ−ケモカイン結合タンパク質をコードするダニ遺伝子のさらなる分析は、特に、既に証明されているように、唾液腺タンパク質における任意の有意な遺伝子多型を検出するために（Ｗａｎｇ Ｈ ｅｔ ａｌ．，１９９９）、特定の方法および条件を適用することによりマダニ科のダニから抽出できるゲノムＤＮＡを用いて行うことができる（Ｈｉｌｌ ＣＡ ａｎｄ Ｇｕｔｉｅｒｒｅｚ，Ｊ Ａ ２００３）。これらの生物のゲノムおよびタンパク質配列は、それらの生理学および生物学を理解するために重要であり、従って宿主、寄生虫、および寄生虫の有する病原体との関連において本発明のタンパク質の役割を理解するために有用な情報を提供する（Ｖａｌｅｎｚｕｅｌａ ＪＧ，２００２ｂ）。

本発明においてｒｓＣｈＢＰ−１と相同なタンパク質に関して記載されるＣＣ−ケモカイン結合活性の生化学的および生理学的な特性決定は、ダニおよびダニの有する病原体の研究のために近年改良された技術、例えば二次元ゲル電気泳動（Ｍａｄｄｅｎ ＲＤ ｅｔ ａｌ．，２００４）またはＲＮＡ干渉（Ａｌｊａｍａｌｉ ＭＮ ｅｔ ａｌ，２００３）を適用することによって実施できる。さらに、さらなる研究を行って、これらのタンパク質上のＣＣ−ケモカイン認識部位およびＣＣ−ケモカイン拮抗作用の機構をマッピングする（Ｓｅｅｔ ＢＴ ｅｔ ａｌ．，２００１；Ｂｅｃｋ ＣＧ ｅｔ ａｌ．，２００１；Ｂｕｍｓ ＪＭ ｅｔ ａｌ．，２００２；Ｗｅｂｂ ＬＭ ｅｔ ａｌ．，２００４）、または関連性のある翻訳後修飾を同定する（Ａｌａｒｃｏｎ−Ｃｈａｉｄｅｚ ＦＪ ｅｔ ａｌ．，２００３）ことができる。

本発明の別の目的は、異種ドメイン、例えば、以下の、膜結合タンパク質の細胞外ドメイン、免疫グロブリンの定常領域（Ｆｃ領域）、多量体化ドメイン、移行シグナル、およびタグ配列（例えば親和性によって精製を助ける、ＨＡタグ、ヒスチジンタグ、ＧＳＴ、ＦＬＡＡＧペプチド、またはＭＢＰなど）から選択できる１以上のアミノ酸配列と作動可能なように連結されている上記定義のようなｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチドを含む融合タンパク質である。

融合タンパク質という状況において、「作動可能なように連結されている」という表現は、ｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチドと付加的なアミノ酸配列が直接的にまたはスペーサー残基（例えば、リンカー）を介してのいずれかでペプチド結合によって会合していることを示す。このように、融合タンパク質を組換えによって、以下に論じるようにそれをコードする核酸分子の宿主細胞での直接発現によって、産生することができる。また、必要であれば、融合タンパク質に含めた付加的なアミノ酸配列を、産生／精製プロセスの終わりに、またはインビボで、例えば以下に論じるように適当なエンドペプチダーゼ／エキソペプチダーゼによって除去することができる。異種部分は、ｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチドのＮ末端またはＣ末端部分のいずれかと作動可能なように連結されていてよい。

この部分および／またはリンカーの設計、ならびに、構築、精製、検出、成熟、および融合タンパク質の使用のための方法および戦略は文献で広く考察されている（Ｎｉｌｓｓｏｎ Ｊ ｅｔ ａｌ．，１９９７；「Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｃｈｉｍｅｒｉｃ ｇｅｎｅｓ ａｎｄ ｈｙｂｒｉｄ ｐｒｏｔｅｉｎｓ」Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．Ｖｏｌ．３２６−３２８，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，２０００）。概して、異種配列は、有効な方法で元のタンパク質の治療活性を損なうことなく付加的な特性（例えば、ＣＣ−ケモカイン結合）をもたらすよう意図されている。このような付加的特性の例は、より簡易な精製手順、より長期にわたる体液中の半減期、さらなる結合部分、細胞内タンパク質分解の消化による成熟、組換え体産生中の安定性、または細胞外局在性である。この後者の特徴は、これらのポリペプチドの単離および精製が促進され、かつＣＣ−ケモカインが通常活性である場所にポリペプチドを局在させるので、上記定義に含まれる特定の融合タンパク質またはキメラタンパク質の群を明確にするために特に重要である。

ｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチドと融合させる１以上のこれらの配列の選択は、前記タンパク質の組換えタンパク質としての特定の使用および／または精製プロトコールの役に立つ。これらの配列は、以下の３つの基本的な異種配列の群から選択できる。

このような配列の第一の群は、組換えＤＮＡ技術を用いるタンパク質の分泌および精製を助ける配列、例えば、シグナルペプチドおよび移行シグナル（Ｒａｐｏｐｏｒｔ ＴＡ ｅｔ ａｌ．，１９９６）、または親和性によって精製を助けるタグ配列（ＨＡタグ、ヒスチジンタグ、ＧＳＴ、ＦＬＡＧ、またはＭＢＰ）からなる。

異種配列からなる第二の群は、タンパク質のより優れた安定性および生物活性を可能にするものに代表される。

タンパク質の長期にわたる半減期を可能にする戦略の典型的な例は、ヒト血清アルブミンとの、または循環しているヒト血清アルブミンとの結合を可能にするペプチドおよび他の修飾された配列（例えば、ミリストイル化）との融合である（Ｃｈｕａｎｇ ＶＴ ｅｔ ａｌ．，２００２；Ｇｒａｓｌｕｎｄ Ｔ ｅｔ ａｌ．，１９９７；ＷＯ ０１／７７１３７）。あるいは、例えば脳において、さらなる配列によって特異的局在性への標的化を助けてもよい（ＷＯ ０３／３２９１３）。

組換えタンパク質の安定性を改良する別の方法は、被験体へ投与された場合に、二量体、三量体などの形成を可能とする他のタンパク質から単離された融合ドメインによるタンパク質の多量体を生成することである。本発明のポリペプチドの多量体化を可能とするタンパク質配列の例は、ｈＣＧ（ＷＯ ９７／３０１６１）、コラーゲンＸ（ＷＯ ０４／３３４８６）、Ｃ４ＢＰ（ＷＯ ０４／２０６３９）、Ｅｒｂタンパク質（ＷＯ ９８／０２５４０）、またはコイルドコイルペプチド（ＷＯ ０１／００８１４）などのタンパク質から単離されたドメインである。

このような融合タンパク質の周知の例は、ヒト免疫グロブリンタンパク質の定常／Ｆｃ領域に代表され、ヒト免疫グロブリンに共通の二量体形成を可能にする。治療タンパク質および免疫グロブリン断片を含む融合タンパク質を作製するための異なる戦略が文献に開示されている（ＷＯ ９１／０８２９８；ＷＯ ９６／０８５７０；ＷＯ ９３／２２３３２；ＷＯ ０４／０８５４７８；ＷＯ ０１／０３７３７，ＷＯ ０２／６６５１４）。例えば、成熟ＲＳＣＨＢＰ−１をコードする核酸配列を、元のｒｓＣｈＢＰ−１シグナル配列（または任意の他の適当なシグナル／移行配列）をコードする核酸配列と融合した発現ベクターにその５’末端で、およびヒト免疫グロブリンλ重鎖ＩｇＧ１の定常領域をコードする核酸配列（ＮＣＢＩアクセッション番号ＣＡＡ７５３０２；セグメント２４６〜４７７）にその３’末端でクローニングすることができる。生じるベクターを用いてＣＨＯまたはＨＥＫ２９３宿主細胞株を形質転換することができ、Ｎ末端にｒｓＣｈＢＰ−１およびＣ末端にＩｇＧ１配列を有する組換え融合タンパク質を安定して発現および分泌するクローンを選択することができる。次にこのクローンを、産生を拡大するため、および組換え融合タンパク質を培地から精製するために用いることができる。あるいは、ヒト免疫グロブリンλ重鎖ＩｇＧ１の定常領域をコードする核酸とｒｓＣｈＢＰ−１の位置を逆にすることができ、生じるタンパク質をさらにｒｓＣｈＢＰ−１の元のシグナル配列、または任意の他の適当なシグナル／移行配列を用いて発現させ、分泌させることができる。一方がｒｓＣｈＢＰ−１−Ｆｃ融合タンパク質を発現し、他方が異なるＦｃに基づく融合タンパク質（例えば別のＣＣ−ケモカイン結合タンパク質）を発現する２つの異なる構築物が同じ宿主細胞中に同時発現した場合（ＷＯ ００／１８９３２）、これらの技術を用いて、ヘテロ二量体を精製することも可能である。

さらなる異種配列の群は、ｒｓＣｈＢＰ−１に示される機能活性に相乗作用を与える、または増幅させる、さらなる機能活性を付加するものに代表される。膜結合タンパク質（例えばＣＣ−ケモカイン受容体）の細胞外ドメインから単離されているか、または分泌タンパク質に存在すると予想されるこれらの配列は、ＣＣ−ケモカインアンタゴニストと同様に活性があり、一般的に免疫調節活性を有するものと思われる。

前述のように、融合タンパク質に含めた付加的な配列を、例えば産生または精製プロセスの終わりに、または必要であればインビボで、例えば適当なエンドペプチダーゼ／エキソペプチダーゼによって除去してよい。例えば、組換えタンパク質に含めたリンカー配列は、インビボかインビトロのいずれかで異種配列から所望のタンパク質を酵素によって切断するために用いることのできる、エンドペプチダーゼ（例えばカスパーゼ）の認識部位を提示する可能性がある。あるいは、もし発現させるタンパク質配列が開始メチオニンを含まない場合（例えば、もし配列がシグナルペプチドを含まず、タンパク質の成熟配列だけをコードする場合）、本発明のタンパク質を、開始メチオニンを含む宿主細胞内で正確に発現させることができる。次にこの付加的なアミノ酸を、生じる組換えタンパク質中で維持するか、またはエキソペプチダーゼ、例えばメチオニンアミノペプチダーゼを用いて、文献中に開示される方法に従って除去してよい（Ｖａｎ Ｖａｌｋｅｎｂｕｒｇｈ ＨＡ ａｎｄ Ｋａｈｎ ＲＡ，２００２；Ｂｅｎ−ＢａｓｓａｔＡ，１９９１）。

本発明のポリペプチドのさらなる変異体または類似体は、ペプチドまたはポリペプチドの性質がアミノ酸側鎖、アミノ酸キラリティー、および／またはペプチド骨格のレベルで化学的に修飾されている、ペプチド模倣物（ペプチドミメティクスとも呼ばれる）の形態で得ることができる。これらの変更は、精製、有効性および／または薬物動態学的特徴の改良されたアンタゴニストを提供することを意図する。例えば、ペプチドがペプチダーゼによる切断に感受性が高く、その後の被験体への注射が問題である場合、特に感受性の高いペプチド結合を非開裂型のペプチド模倣物と置換することにより、ペプチドを一層安定させることができ、従って治療薬としてより有用にする。同様に、Ｌ−アミノ酸残基の置換は、ペプチドのタンパク質分解への感受性をより低くする標準的な方法であり、最終的に、ペプチド以外の有機化合物に一層類似する。また、アミノ末端保護基、例えばｔ−ブチルオキシカルボニル、アセチル、テイル（ｔｈｅｙｌ）、スクシニル、メトキシスクシニル、スベリル、アジピル、アゼライル（ａｚｅｌａｙｌ）、ダンシル、ベンジルオキシカルボニル、フルオレニルメトキシカルボニル、メトキシアゼライル（ｍｅｔｈｏｘｙａｚｅｌａｙｌ）、メトキシアジピル、メトキシスベリル、および２，４−ジニトロフェニルなども有用である。有効性を増加させ、活性を長期化させ、精製を容易にし、および／または半減期を増加させる他の多くの修飾が当分野で既知である（ＷＯ ０２／１０１９５；Ｖｉｌｌａｉｎ Ｍ ｅｔ ａｌ．，２００１）。ペプチド模倣物に含まれるアミノ酸誘導体の好ましい代替的「同義」群は、表ＩＩに明示されている。「アミノ酸誘導体」とは、遺伝子的にコードされた２０種類の天然に存在するアミノ酸の１つ以外のアミノ酸またはアミノ酸様化学物質を意図する。特に、アミノ酸誘導体は、直鎖状、分枝鎖状、または環状であり得る置換または非置換アルキル部分を含んでよく、１以上のヘテロ原子を含んでもよい。アミノ酸誘導体は新規に作成するか、または商業ソース（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ−Ｎｏｖａｂｉｏｃｈｅｍ ＡＧ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ；Ｂａｃｈｅｍ，ＵＳＡ）から入手することができる。ペプチド模倣物、ならびに非ペプチドミメティクスの合成および開発のための技術は、当分野で周知である（Ｈｒｕｂｙ ＶＪ ａｎｄ Ｂａｌｓｅ ＰＭ，２０００；Ｇｏｌｅｂｉｏｗｓｋｉ Ａ ｅｔ ａｌ．，２００１）。タンパク質構造および機能を調査かつ／または改良するため、インビトロおよびインビボ双方の翻訳系を用いて、非天然アミノ酸をタンパク質へ組み込むための種々の方法論も文献に開示されている（Ｄｏｕｇｈｅｒｔｙ ＤＡ，２０００）。

以下に論じるように、本発明のポリペプチドは、組換え技術および化学合成技術をはじめ、当分野で既知の任意の手順によって調製してよい。

本発明のさらなる目的は、上記定義のようなポリペプチド、すなわち、ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列またはその断片もしくは類似体を含むポリペプチド、をコードする核酸分子にある。本発明の特定の核酸分子は、
ａ）ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする核酸分子（配列番号３）；
ｂ）成熟ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする核酸分子（配列番号５）；
ｃ）ストリンジェント条件下で、ａ）またはｂ）の核酸分子とハイブリダイゼーション可能であって、ＣＣ−ケモカインと結合するタンパク質をコードする核酸分子；
ｄ）ａ）またはｂ）のタンパク質とアミノ酸配列が少なくとも約７０％同一であり、ＣＣ−ケモカインと結合するタンパク質をコードする核酸分子；
ｅ）ａ）またはｂ）の核酸分子によってコードされるタンパク質の、ＣＣ−ケモカインと結合する断片をコードする核酸分子；および
ｆ）ａ）、ｂ）、ｃ）、ｄ）、ｅ）の核酸分子の縮重変異体
からなる群から選択される。

特に、核酸分子は以下の
ａ）ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号４）を有するタンパク質；
ｂ）成熟ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号６）を有するタンパク質；
ｃ）ＣＣ−ケモカインと結合する、タンパク質ａ）、またはｂ）の断片；
ｄ）哺乳類へ投与される場合に免疫化活性を有する、ａ）またはｂ）のタンパク質の断片；
ｅ）その変異体に１以上のアミノ酸残基が付加、欠失、または置換されていて、その変異体がＣＣ−ケモカインと結合する、ａ）、ｂ）、ｃ）、またはｄ）のタンパク質の活性変異体；
ｆ）以下の、膜結合タンパク質の細胞外ドメイン、免疫グロブリンの定常領域、多量体化ドメイン、シグナルペプチド、移行シグナル、およびタグ配列から選択される１以上のアミノ酸配列と作動可能なように連結されるａ）、ｂ）、ｃ）、ｄ）またはｅ）のタンパク質を含む融合タンパク質
からなる群から選択されるタンパク質をコードする。

本発明の状況の範囲内で、「縮重変異体」とは、遺伝コードの縮重によって参照核酸と同じアミノ酸配列をコードする全ての核酸配列を意味する。

さらに、用語「核酸分子」は、核酸の全ての異なる種類を包含し、限定されるわけではないが、デオキシリボ核酸（例えば、ＤＮＡ、ｃＤＮＡ、ｇＤＮＡ、合成ＤＮＡなど）、リボ核酸（例えば、ＲＮＡ、ｍＲＮＡなど）およびペプチド核酸（ＰＮＡ）が挙げられる。好ましい実施形態では、核酸分子はＤＮＡ分子、例えば二本鎖ＤＮＡ分子であり、一般にはｃＤＮＡである。

もし主たる実施形態が、実施例に開示されるｒｓＣｈＢＰ−１のＤＮＡおよびタンパク質配列に向けられるならば、特定の実施形態には、一連のｒｓＣｈＢＰ−１に関連する配列、例えば中程度にストリンジェントな条件下（予洗溶液は５×ＳＳＣ、０．５％ ＳＤＳ、１．０ｍＭ ＥＤＴＡ（ｐＨ８．０）、およびハイブリダイゼーション条件は５０℃、５×ＳＳＧ、一晩）で、ｒｓＣｈＢＰ−１をコードするＤＮＡ配列とハイブリダイズ可能なＤＮＡまたはＲＮＡ配列、ならびにＣＣ−ケモカイン結合タンパク質をコードする配列が挙げられる。

例えば、本発明は、ｒｓＣＢＰ−１（配列番号３）を発現するクリイロコイタマダニのｃＤＮＡの配列を提供する。

他の好ましい実施形態では、ｒｓＣｈＢＰ−１関連配列は、ｒｓＣｈＢＰ−１とアミノ酸配列が少なくとも約７０％、好ましくは、８０％、および最も好ましくは９０％同一であるタンパク質をコードするＤＮＡ分子である。この値は、任意の専用プログラム、例えばＦＡＳＴＡ（Ｐｅａｒｓｏｎ ＷＲ，２０００）を用いて計算でき、断片または部分配列には、断片に存在するｒｓＣｈＢＰ−１の部分について計算される。

別の好ましい実施形態は、上記定義のような核酸分子の配列の断片を含む、または上記定義のような核酸分子の配列の一領域と特異的にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドである。このようなオリゴヌクレオチドは一般に５〜１００ヌクレオチド長を含み、例えば、少なくとも約２０ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチド、少なくとも約３０ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチド、および少なくとも約５０ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチドからなる群から選択され得る。これらのオリゴヌクレオチドは、ｒｓＣｈＢＰ−１をコードする転写物中の非／コード配列および試料中の関連する配列を（例えばＰＣＲまたはサザンブロット法によって）検出するために、またはｒｓＣｈＢＰ−１の組換え変異体を作製およびサブクローニングするために用いることができる。

さらなる実施形態では、上記定義のような核酸分子を、クローニングベクターまたは発現ベクターに含めることができる。この点で、本発明の特定の目的は、上記定義のような核酸分子と作動可能なように会合するプロモーター、特に組織特異的な、構成性プロモーターまたは制御された（例えば誘導性）プロモーターを含む発現ベクターにある。ベクターは、任意の付加的な調節エレメント、例えばターミネーター、エンハンサー、複製起点、選択マーカーなどを含んでよい。ベクターは、プラスミド、コスミド、ウイルスベクター、ファージ、人工染色体などであってよい。

特定の態様では、このベクターは、
ａ）本発明のＤＮＡ；および
ｂ）発現カセット；
を含み得、前記ＤＮＡ（ａ）は、配列（ｂ）に含まれる組織特異的な、構成性または誘導性プロモーターと作動可能なように会合する。

所望により、もしコーディング核酸（すなわち、配列（ａ））が開始メチオニンのコドンを含まない場合、（例えば、もしこの配列がシグナルペプチドを含まずにタンパク質の成熟配列のみをコードする場合）、ベクターまたは発現カセットも、開始メチオニンで正確に発現されるように、このような配列の５’でクローニングされるＡＴＧ配列を含んでよい。次にこの付加的アミノ酸を、生じる組換えタンパク質中で維持するか、または文献に開示される方法に従って、酵素、例えばメチオニンアミノペプチダーゼによって除去してよい（Ｖａｎ Ｖａｌｋｅｎｂｕｒｇｈ ＨＡ ａｎｄ Ｋａｈｎ ＲＡ，２００２；Ｂｅｎ−Ｂａｓｓａｔ Ａ，１９９１）。

このベクターは、本発明のタンパク質の発現を組織培養においてだけでなく、実験上または治療上の理由のため、インビボにおいても可能にさせ得る。例えば、本発明のタンパク質を過剰発現している細胞を動物モデルの中へ移して（例えばカプセル化して）、細胞をヒトへ適用する前にタンパク質の一定の投与の生理学的効果をチェックすることができる。あるいは、ベクターを、レトロウイルスに媒介される遺伝子導入、または動物において内因性プロモーターの制御下で、ベクターまたは単離されたＤＮＡコード配列の導入および発現を可能にする任意の他の技術に用いることができる。このアプローチは、本発明のタンパク質が構成的に、または制御された方法（例えば特定の組織において、および／または特定の化合物を用いる誘導に従って）で発現される、トランスジェニック非ヒト動物の作製を可能にする。類似のアプローチを他の非哺乳類ケモカイン結合タンパク質に適用したところ、種々の発展的かつ病理学的効果が示された（Ｊｅｎｓｅｎ ＫＫ ｅｔ ａｌ．，２００３；Ｐｙｏ Ｒ ｅｔ ａｌ．，２００４；Ｂｕｒｓｉｌｌ ＣＡ ｅｔ ａｌ．，２００４）。

本発明の別の目的は、上記に示したクローニングベクターまたは発現ベクターで形質転換またはトランスフェクトされた宿主細胞である。これらのベクターは、本発明のポリペプチドの調製のプロセスに用いることができる。この点に関して、本発明の目的は、ｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチドを発現および回収することを可能にするまたは促進する条件下で上記定義のような組換え細胞を培養することを含む、上記定義のようなｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチドを調製する方法である。ベクターが細胞外間隙に分泌されたタンパク質としてポリペプチドを発現する場合、タンパク質は、さらなるプロセシングを考慮して培養細胞から一層容易に回収および精製することができる。

多くの図書および概説、例えばＯｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ出版の「実践アプローチ」シリーズの何冊か（「ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ ２：Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍｓ」，１９９５；「ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ ４：Ｍａｍｍａｌｉａｎ Ｓｙｓｔｅｍｓ」，１９９６；「Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ」，１９９９；「Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ」，２００１）に、ベクターおよび原核生物または真核生物の宿主細胞を用いてどのようにクローニングし、組換えタンパク質を作製するのかについての教示が記載されている。特に、実施例は、ｒｓＣＨＢＰ−１をコードするＤＮＡ配列が、いったんクリイロコイタマダニｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることによって同定されると、どのようにしてＯＲＦを適合させ、修飾し、対応する組換えタンパク質を得るために発現ベクターへ挿入するかを示している。

概して、ベクターはエピソームの、または非／相同的な組み込みベクターであり得、それらを形質転換するための任意の適した手段（形質転換、トランスフェクション、接合、プロトプラスト融合、エレクトロポレーション、リン酸カルシウム沈殿、直接マイクロインジェクションなど）によって適当な宿主細胞内に導入することができる。特定のプラスミド、ウイルスベクター、またはレトロウイルスベクターを選択する際に重要な因子には、ベクターを含む受容細胞を認識し、ベクターを含まない受容細胞から選択する容易さ；特定の宿主に所望するベクターのコピー数；ならびに異なる種の宿主細胞間でベクターを「シャトル」可能なことが望ましいか否か、が挙げられる。ベクターは、適当な転写開始／終結調節配列の制御下で、前記細胞において恒常的に活性であるかまたは誘導性であるとして選択された本発明の単離されたタンパク質、または原核生物または真核生物の宿主細胞中にそれを含む融合タンパク質の発現を可能にするはずである。このような細胞中に実質的に濃縮された細胞株を、その後単離して安定した細胞株を準備することができる。

真核生物宿主細胞（例えば酵母、昆虫または哺乳類細胞）には、宿主の性質に応じて異なる転写および翻訳調節配列を用いてよい。それらはウイルス起源、例えばアデノウイルス、ウシパピローマウイルス、シミアンウイルスなど、調節シグナルが高レベルの発現を有する特定の遺伝子に関連する起源に由来してよい。その例はヘルペスウイルスのＴＫプロモーター、ＳＶ４０初期プロモーター、酵母ｇａｌ４遺伝子プロモーターなどである。抑制および活性化を可能にする転写開始調節シグナルを選択すると、遺伝子の発現を調節することができる。導入されたＤＮＡによって定常的に形質転換された細胞は、発現ベクターを含む宿主細胞の選択を可能とする１以上のマーカーをやはり導入することによって選択できる。また、マーカーは、栄養要求性（ａｕｘｏｔｒｏｐｉｃ）の宿主に対して光栄養、殺生物剤耐性、例えば抗生物質、または銅などの重金属を提供することができる。選択マーカー遺伝子は、発現させるＤＮＡ遺伝子配列に直接連結させるか、または同時トランスフェクションによって同一細胞内へ導入することができる。本発明のタンパク質の至適な合成には付加的要素も必要とされるであろう。

組換え産生のための宿主細胞は、原核生物かまたは真核細胞のいずれかであってよい。特に適した原核細胞としては、組換えバクテリオファージで形質転換された細菌（例えば枯草菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）または大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ））、プラスミドまたはコスミドＤＮＡ発現ベクターが挙げられる。好ましいのは、真核生物宿主細胞、例えば哺乳類細胞、例えばヒト、サル、マウス、およびチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である。それは、正確な折り畳みまたは正確な部位でのグリコシル化などの翻訳後修飾をタンパク質分子へもたらすからである。代替的な真核生物宿主細胞は、酵母発現ベクターで形質転換された酵母細胞である。酵母細胞もグリコシル化などの翻訳後ペプチド修飾を実行できる。酵母において所望のタンパク質の産生に利用することのできる、強力なプロモーター配列および高いコピー数のプラスミドを利用する多数の組換えＤＮＡ戦略が存在する。酵母はクローン化された哺乳類遺伝子産物中のリーダー配列を認識し、リーダー配列を有するペプチドを分泌する（すなわち、プレペプチド）。

長期間の、組換えポリペプチドの高収率産生のためには、安定発現が好ましい。例えば、注目されるポリペプチドを安定して発現する細胞株は、ウイルス起源の複製および／または内在性の発現要素、ならびに同一ベクター上または個別のベクター上の選択マーカー遺伝子を含むことができる発現ベクターを用いて形質転換することができる。ベクターの導入の後、細胞を選択培地に交換される前に濃縮培地中で１〜２日間増殖させる。選択マーカーの目的は選択に対する耐性を付与することであり、その存在によって、導入された配列を首尾よく発現する細胞の増殖および回収が可能となる。細胞種に適当な組織培養技術を用いて定常的に形質転換された細胞の耐性クローンを増殖させてもよい。このような細胞中に実質的に濃縮された細胞株を、その後単離して安定した細胞株を準備することができる。

本発明の組換えポリペプチドの高収率産生の特に好ましい方法は、米国特許第４，８８９，８０３号に記載のようにメトトレキサートのレベルを連続的に増加させて用いて、ジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）増幅をＤＨＦＲ欠損ＣＨＯ細胞において用いることである。得られたポリペプチドはグリコシル化された形態であり得る。

発現のための宿主として利用可能な哺乳類細胞株は、当分野で既知であり、限定されるものではないが、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）、ＨｅＬａ、ベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ）、サル腎臓（ＣＯＳ）、Ｃ１２７、３Ｔ３、ＢＨＫ、ＨＥＫ２９３、ボーズメラノーマおよびヒト肝細胞癌（例えばＨｅｐ Ｇ２）細胞および多数の他の細胞株をはじめ、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）から入手可能な多くの不死化した細胞株が挙げられる。バキュロウイルス系の中で、バキュロウイルス／昆虫細胞発現系のための材料はキットの形で、とりわけＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社から市販されている。

あるいは、本発明のポリペプチドを人工的な合成によって調製してよい。その際、化学合成技術の例は、固相合成および液相合成である。固相合成としては、例えば、合成させるペプチドのカルボキシ末端に対応するアミノ酸を有機溶媒に不溶性の支持体と結合させ、そのアミノ基および側鎖官能基を適当な保護基で保護したアミノ酸がカルボキシ末端からアミノ末端へ向かって順に一つ一つ縮合される反応と、樹脂またはペプチドのアミノ基の保護基と結合したアミノ酸が放出される反応を交互に繰り返すことによって、ペプチド鎖をこのように伸長させる。固相合成法は主として、用いる保護基の種類に応じてｔＢｏｃ法とＦｍｏｃ法とに分類されている。一般に用いられる保護基としては、アミノ基には、ｔＢｏｃ（ｔ−ブトキシカルボニル）、ＣＩ−Ｚ（２−クロロベンジルオキシカルボニル）、Ｂｒ−Ｚ（２−ブロモベンジルオキシカルボニル）、Ｂｚｌ（ベンジル）、Ｆｍｏｃ（９−フルオレニルメトキシカルボニル）、Ｍｂｈ（４，４’−ジメトキシジベンズヒドリル（ｄｉｍｅｔｈｏｘｙｄｉｂｅｎｚｈｙｄｒｙｌ））、Ｍｔｒ（４−メトキシ−２，３，６−トリメチルベンゼンスフホニル）、Ｔｒｔ（トリチル）、Ｔｏｓ（トシル）、Ｚ（ベンジルオキシカルボニル）およびＣｌ２−Ｂｚｌ（２，６−ジクロロベンジル）；グアニジノ基には、ＮＯ２（ニトロ）およびＰｍｃ（２，２，５，７，８−ペンタメチルクロマン−６−スルホニル）；およびヒドロキシル基には、ｔＢｕ（ｔ−ブチル）が挙げられる。所望のポリペプチドの合成の後、それを脱保護反応に付し、固相支持体から切り離す。このようなペプチドの切断反応は、Ｂｏｃ法にはフッ化水素またはトリフルオロメタンスルホン酸を用いて実施してよく、Ｆｍｏｃ法にはＴＦＡを用いて実施してよい。ｒｓＣＨＢＰ−１とサイズの匹敵する完全な合成タンパク質が文献に開示されている（Ｂｒｏｗｎ Ａ ｅｔ ａｌ．，１９９６）。

本発明のポリペプチドは、産生すること、処方すること、投与すること、または一般的に所望の使用方法および／または産生方法に従って選好され得る他の代替形で用いることができる。本発明のタンパク質は、例えば実施例に示されるようにグリコシル化によって、翻訳後に修飾することができる。

概して、本発明のタンパク質は、活性のある画分、前駆体、塩、誘導体、共役体または複合体の形態で提供され得る。

前述のとおり、用語「活性のある」または「生物学的に活性のある」とは、このような代替化合物が、ｒｓＣｈＢＰ−１のＣＣ−ケモカイン結合特性および／または免疫調節特性を維持する、または増強さえするはずであるということを意味する。

用語「画分」とは、単独または関連分子またはそれと結合した残基、例えば糖またはリン酸残基と組み合わせた、化合物自体のポリペプチド鎖の任意の断片を指す。このような分子もまた、通常一次配列を変更しない他の修飾、例えばペプチドのインビトロ化学誘導体化（アセチル化またはカルボキシル化）の結果として、ならびに、その合成および／またはさらなるプロセシング段階中に生じる、タンパク質翻訳後の修飾、例えばリン酸化（ホスホチロシン、ホスホセリン、またはホスホトレオニン残基の導入）による、またはグリコシル化（ペプチドをグリコシル化に作用する酵素、例えば、哺乳類のグリコシル化または脱グリコシル化酵素に曝露することによる）による修飾によって生じる。特に、ｒｓＣｈＢＰ−１はダニ唾液、および本明細書に開示される多少高度にグリコシル化されている両組換え体において特性決定された。この修飾は、適当な修飾酵素を用いてインビトロで、または組換え産生に適当な宿主細胞を選んでインビトロで実施してよい。

「前駆体」は、細胞を身体へ投与する前または後に代謝的および酵素的プロセシングにより本発明の化合物へと変換され得る化合物である。

本明細書において用語「塩」とは、本発明のペプチド、ポリペプチド、またはその類似体のカルボキシル基の塩およびアミノ基の酸付加塩の双方を指す。カルボキシル基の塩は当分野で既知の手段によって形成でき、無機塩、例えば、ナトリウム、カルシウム、アンモニウム、第二鉄または亜鉛塩など、および、形成時に有機塩基を含む、例えば、アミン、例えばトリエタノールアミン、アルギニンまたはリシン、ピペリジン、プロカインなどを含む塩が挙げられる。酸付加塩としては、例えば、無機酸、例えば塩酸または硫酸を含む塩、および、有機酸、例えば、酢酸またはシュウ酸を含む塩が挙げられる。このような塩はいずれも本発明のペプチドおよびポリペプチドまたはそれらの類似体と実質的に類似の活性を有するはずである。

本明細書において用語「誘導体」とは、既知の方法に従ってアミノ末端および／またはカルボキシ末端のアミノ酸部分の側鎖に存在する官能基から調製することのできる誘導体を指す。このような誘導体としては、例えばカルボキシル基のエステルまたは脂肪族アミドおよび遊離アミノ基のＮ−アシル誘導体または遊離ヒドロキシル基のＯ−アシル誘導体が挙げられ、例えばアルカノイル基またはアロイル基のようにアシル基で形成されている。

本発明のタンパク質は、放射性標識、ビオチン、蛍光標識、細胞傷害性薬剤、および薬剤送達物質から選択される分子を含む活性のある共役体または複合体の形態であり得る。様々な理由のために、例えばＣＣ−ケモカインまたは他のタンパク質（放射性標識または蛍光標識、ビオチン）との相互作用、治療効力（細胞傷害性薬剤）の検出を可能にするため、あるいは薬剤送達効果の点から、物質、例えばポリエチレングリコールおよび他の天然または合成ポリマーを改良するため、当分野で既知の分子および方法を用いて、有用な共役体または複合体を作製することができる。（Ｈａｒｒｉｓ ＪＭ ａｎｄ Ｃｈｅｓｓ ＲＢ，２００３；Ｇｒｅｅｎｗａｌｄ ＲＢ ｅｔ ａｌ．，２００３；Ｐｉｌｌａｉ Ｏ ａｎｄ Ｐａｎｃｈａｇｎｕｌａ Ｒ，２００１）。

これらのｒｓＣｈＢＰ−１に由来する化合物は、内部または末端の位置で適当な残基の部位特異的修飾を受けて作製することができる。残基は、もしそれらがポリマーの結合に従う側鎖を有する（すなわち、アミノ酸の側鎖が官能基、例えば、リシン、アスパラギン酸、グルタミン酸、システイン、ヒスチジンなどを有する）ならば、結合に使用できる。あるいは、これらの部位の残基を、ポリマーの結合に従う側鎖を有する異なるアミノ酸で置換してもよい。

例えば、直接ペグ化を可能にするさらなるシステインを、組換えＤＮＡ技術または酵素によって、成熟タンパク質配列のＮ末端またはＣ末端に添加することができる。あるいは、このシステインを、例えばグリコシル化部位に相当する、残基の置換によってタンパク質に含めてもよい。

さらに、遺伝子的にコードされたアミノ酸の側鎖をポリマー結合のために化学的に修飾することができる、あるいは適当な側鎖官能基を有する非天然アミノ酸を用いることができる。ポリマーは、アンタゴニストの特定の位置に天然に存在するアミノ酸の側鎖と、あるいはアンタゴニストの特定の位置に天然に存在するアミノ酸を置換する天然または非天然アミノ酸の側鎖と結合する可能性があるだけでなく、炭水化物または標的位置でアミノ酸の側鎖と結合している他の部分と結合する可能性もある。

これらの目的に適したポリマーは、生体適合性、つまり生態系に無毒であり、このようなポリマーが多く知られている。このようなポリマーは、本来疎水性または親水性であってよく、生分解性であってよく、非生分解性であってよく、またはその組合せであってよい。これらのポリマーとしては、天然ポリマー（例えばコラーゲン、ゼラチン、セルロース、ヒアルロン酸）、ならびに合成ポリマー（例えばポリエステル、ポリオルトエステル、ポリ無水物）が挙げられる。疎水性の非分解性ポリマーの例としては、ポリジメチルシロキサン、ポリウレタン、ポリテトラフルオロエチレン、ポリエチレン、ポリ塩化ビニル、およびポリメチルメタエリレート（ｍｅｔｈａｅｒｙｌａｔｅｓ）が挙げられる。親水性の非分解性ポリマーとしては、ポリ（メタクリル酸２−ヒドロキシエチル）、ポリビニルアルコール、ポリ（Ｎ−ビニルピロリドン）、ポリアルキレン、ポリアクリルアミド、およびその共重合体が挙げられる。好ましいポリマーは、連続的な繰り返し単位としてエチレンオキシド、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を含む。

好ましい結合方法には、ペプチド合成および化学的連結の組合せを用いる。水溶性ポリマーの結合は、特にタンパク質のアミノ末端領域で生分解性のリンカーによるものが有利であろう。このような修飾は、タンパク質を、リンカーの分解の際にポリマー修飾をせずにタンパク質を放出する、前駆体（または「プロドラッグ」）の形態でもたらす働きをする。

また、本発明は、本発明のタンパク質に免疫反応性であり、動物をこれらのタンパク質で免疫化して産生できる抗体、特にモノクローナル抗体を提供し、それは宿主細胞によって組換えタンパク質として発現された天然の起源から精製することができる、あるいは化学的に（完全なタンパク質として、またはタンパク質の特異的エピトープを模倣するペプチドとして）合成することができる。ｒｓＣｈＢＰ−１とｒｓＣｈＢＰ−１由来タンパク質を結合するこれらの抗体は、例えば、診断的適用（例えばダニ唾液と接触している動物を同定するため）に用いられ得る。文献中の教示に従って、動物を免疫化することおよびこれらの抗体を操作することによって、これらの動物の作製を実施することができる（Ｋｉｐｒｉｙａｎｏｖ ＳＭ ａｎｄ Ｌｅ Ｇａｌｌ Ｆ，２００４；Ｈｏｌｔ ＬＪ ｅｔ ａｌ．，２００３；Ｐｒｅｓｔａ Ｌ，２００３）。

本発明のタンパク質は、多少精製された形態で提供される。実施例は、組換えｒｓＣｈＢＰ−１を発現するために必要な核酸をどのようにクローニングするか、ＣＣ−ケモカインの親和性およびクロマトグラフ技術を用いて組換えまたは天然のｒｓＣｈＢＰ−１をどのように精製するか、ならびにＣＣ−ケモカイン結合活性を検出するためのアッセイによってこのタンパク質を正確に発現している細胞をどのように選択するかを示す。

特に、本発明の天然、合成または組換えアンタゴニストの精製は、この目的のために既知の方法、すなわち抽出、沈殿、クロマトグラフィー、電気泳動などを含む従来の手順のいずれか１つによって実施できる。本発明のタンパク質を精製するために好んで用いられるさらなる精製手順は、モノクローナル抗体または親和性基を用いるアフィニティークロマトグラフィーである。標的タンパク質と結合するモノクローナル抗体または親和性基は、作製されて、カラム内に含まれているゲルマトリックス上に固定化される。タンパク質を含有する不純な調製物をカラムに流す。タンパク質は、ヘパリンまたは特異的抗体によってカラムと結合するが、不純物はカラムを通過する。洗浄した後、タンパク質をｐＨまたはイオン強度の変化によってゲルから溶出する。あるいは、ＨＰＬＣ（高速液体クロマトグラフィー）を使用してもよい。溶出は通常タンパク質精製に用いられる水−アセトニトリル系溶媒を用いて実行できる。精製された本発明のタンパク質の調製物は、本明細書において前記タンパク質の少なくとも１％（乾物重量で）、および好ましくは少なくとも５％の調製物を指す。

本発明の別の目的は、有効成分として上記定義のようなｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチド（タンパク質の形態および上述のその代替形態で）、および適した希釈剤または担体を含む医薬組成物である。

本発明の別の目的は、上記定義のようなｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチドをコードする核酸分子、あるいは対応するベクターまたは組換え宿主細胞、および適した希釈剤または担体を含む医薬組成物である。

本発明のさらなる目的は、被験体において免疫応答を調節する際に使用するための医薬の製造のための、上記定義のようなｒｓＣｈＢＰ−１ポリペプチド、またはそれをコードする核酸の使用に関する。

これらの組成物は、特に哺乳類において免疫反応または炎症反応を調節するための医薬として、およびさらに特に抗炎症性化合物として使用できる。

概して、多くのヒトおよび獣医科の疾患にＣＣ−ケモカインが関与していると考えると、本発明のＣＣ−ケモカイン結合タンパク質は動物におけるＣＣ−ケモカイン関連疾患の治療または予防のためのＣＣ−ケモカインのアンタゴニスト（例えばＣＣＬ５／ＲＡＮＴＥＳ、ＣＣＬ３／ＭＩＰ−１α、またはＣＣＬ２／ＭＣＰ−１）として使用できる。ＣＣ−ケモカイン関連疾患の網羅的でないリストには、炎症性疾患、自己免疫疾患、免疫疾患、感染、アレルギー性疾患、心血管疾患、代謝性疾患、消化管疾患、神経疾患、敗血症、移植拒絶に関連する疾患、または線維性疾患が含まれる。これらの疾患の限定されない例は、次の、関節炎、リウマチ関節炎（ＲＡ）、乾癬の関節炎、乾癬、リウマチ関節炎、再狭窄、敗血症、変形性関節症、全身性紅斑性狼瘡（ＳＬＥ）、全身性硬化症、皮膚炎、多発性筋炎、糸球体腎炎、線維症、アレルギー性または過敏性疾患、皮膚炎、喘息、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）、炎症性腸疾患（ＩＢＤ）、クローン病、線維腫、潰瘍性大腸炎、多発性硬化症、敗血性ショック、ウイルス感染、癌、子宮内膜症、移植、移植片対宿主病（ＧＶＨＤ）、心臓および腎臓の再潅流傷害、ならびにアテローム性動脈硬化症である。

本発明のタンパク質、または特異的断片は、哺乳類において免疫反応または炎症反応を調節するための医薬組成物、例えば抗炎症性組成物の製造の際の有効成分として使用できる。あるいは、本発明のタンパク質、または特異的断片は、寄生虫、ウイルス、または細菌に対する哺乳類のワクチン接種のための医薬組成物の製造の際の有効成分として使用できる。このような医薬組成物の調製のための方法は、ｒｓＣｈＢＰ−１を製薬上許容される希釈剤または担体と結合させることを含む。

有効成分として本発明のタンパク質を含有する医薬組成物は、インビボでＣＣ−ケモカインを結合すること、ＣＣ−ケモカインと対応する細胞表面の受容体との結合を阻害すること、およびその結果として有望な治療効果、例えば抗炎症性効果を生み出すことに使用できる。また、有効成分として本発明のタンパク質を含有する医薬組成物を、ウイルス、細菌、または寄生虫に存在するＣＣ−ケモカイン類似体との結合に用いて前記ウイルス、細菌、または寄生虫の細胞への侵入を阻止することができる。寄生虫、ウイルス、または細菌に対する哺乳類のワクチン接種のための医薬組成物は、有効成分として本発明のタンパク質の断片を含み得る。上に示した組成物は、さらなる免疫抑制剤または抗炎症性物質をさらに含み得る。

医薬組成物は、有効成分としての本発明のタンパク質と組み合わせて、適した製薬上許容される希釈剤、担体、動物への投与に適した生物学的に適合するビヒクルおよび添加物（例えば、生理食塩水溶液）および、有効化合物の、最終的に薬剤的に使用できる調製物への加工を促進する助剤（賦形剤、安定剤、またはアジュバントなど）を含んでよい。医薬組成物は、投与様式の要求に適う許容される方法で処方することができる。例えば、薬剤送達のためのバイオマテリアルおよび他のポリマーの使用、ならびに特定の投与様式が有効であることを確認するための様々な技術およびモデルが文献に開示されている（Ｌｕｏ Ｂ ａｎｄ Ｐｒｅｓｔｗｉｃｈ ＧＤ，２００１；Ｃｌｅｌａｎｄ ＪＬ ｅｔ ａｌ．，２００１）。

「製薬上許容される」とは、それが投与される宿主に対して毒性を持たない、有効成分の生物活性の効果を妨げないどのような担体も抱合することを意味する。例えば、非経口投与には、上記有効成分をビヒクル、例えば生理食塩水、デキストロース液、血清アルブミンおよびリンゲル液中の注射用単位投与形で処方する。担体も、デンプン、セルロース、タルク、グルコース、ラクトース、スクロース、ゼラチン、モルト、米、小麦粉、チョーク、シリカゲル、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸ナトリウム、モノステアリン酸グリセロール、塩化ナトリウム、乾燥脱脂粉乳、グリセロール、プロピレングリコール、水、エタノール、および石油、動物、植物または合成由来のもの（ピーナツ油、ダイズ油、無機油、ゴマ油）をはじめとする、種々の油脂から選択できる。

許容される投与様式であればどれでも用いることができ、また有効成分の所望の血液レベルを実現するために当業者が投与様式を決定することができる。例えば、投与は、種々の非経口経路によって、例えば、皮下、静脈内、皮内、筋肉内、腹腔内、鼻腔内、経皮、直腸の、経口、または頬側の経路によってなされてよい。また、本発明の医薬組成物は、所定の割合でのポリペプチドの長期間の投与のために、デポー注射、浸透圧ポンプなどをはじめ、徐放性のまたは放出制御された投与形で、好ましくは、正確な用量の単回投与に適した単位投与形で投与することができる。

非経口投与は、ボーラス注射によって、または時間をかけた緩やかな灌流によってできる。非経口投与のための調製物としては、当分野で既知の助剤または賦形剤を含み得る滅菌の水性または非水性溶液、懸濁液、およびエマルジョンが挙げられ、日常的な方法に従って調製できる。さらに、有効化合物の懸濁液を適当な油性注射懸濁液として投与してもよい。適した親油性溶媒またはビヒクルとしては、脂肪油、例えば、ゴマ油、または合成脂肪酸エステル、例えば、オレイン酸エチルまたはトリグリセリドが挙げられる。懸濁液の粘度を増加させる物質を含み得る水性注射懸濁液としては、例えば、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ソルビトール、および／またはデキストランが挙げられる。所望により、懸濁液には安定剤を含めてもよい。医薬組成物には注射による投与に適した溶液が挙げられ、約０．０１〜９９．９９パーセント、好ましくは、約２０〜７５パーセントの有効化合物を賦形剤と共に含む。

当然のことながら、投与される薬用量は、受容者の年齢、性別、健康状態、および体重、同時に起こる治療の種類、もしあれば、治療頻度、ならびに所望の効果の性質に依存する。薬用量は、当業者が理解し決定できるように、個々の被験体に合わせて設定される。それぞれの治療に必要な総投与量は、複数回の投与によって、また単一回の用量で投与することができる。本発明の医薬組成物は、単独または症状を対象とする、または症状の他の徴候を対象とする他の治療薬と組み合わせて投与することができる。通常、有効成分の日用量は、１日体重１キログラムあたり０．０１〜１００ミリグラムを含む。通常、分割された用量でまたは徐放形態で１日１キログラムあたり１〜４０ミリグラムが所望の結果を得るために効果的である。第二のまたはその後の投与は、個体へ投与した初期または前回の用量と同じ、それよりも少ない、またはそれよりも多い用量で実施できる。

本発明の別の態様は、本発明のＤＮＡによりコードされるタンパク質の、特に哺乳類において免疫反応または炎症反応を調節するための組成物の調製の際の医薬としての使用である。

本発明のさらなる態様は、一時の間、前記免疫応答を調節するために十分な条件下で本発明のタンパク質を前記動物へ投与することを含む、吸血性の外部寄生虫に対して動物を免疫化するための、またはそれを必要とする動物において免疫または炎症反応を調節するための方法である。

本発明の別の目的は、有効量の本発明の化合物の投与を含む、ＣＣ−ケモカイン関連疾患を治療または予防するための方法である。

「有効量」とは、このような病理の減少または緩解をもたらす、疾患の経過および重篤度に作用するのに十分な有効成分の量を指す。有効量は投与経路および患者の症状に依存する。

「ＣＣ−ケモカイン関連疾患」という表現は、大量の単球／マクロファージ／好中球／Ｔ細胞浸潤をもたらす、過剰なまたは制御されないＣＣ−ケモカイン産生に起因し、ｒｓＣｈＢＰ−１の投与が有益な効果をもたらす可能性のある、いずれの疾患も表す。このような慢性、急性、または遺伝性疾患の網羅的でないリストは前記に提供されている。

本発明のＣＣ−ケモカインアンタゴニストおよび関連する試薬の治療適用を、哺乳類細胞、組織およびモデルを利用するインビボまたはインビトロアッセイによって（安全性、薬物動態および有効性の点から）評価することができる（Ｃｏｌｅｍａｎ Ｒ ｅｔ ａｌ．，２００１；Ｌｉ Ａ，２００１；Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ ｖｏｌ．１３８，「Ｃｈｅｍｏｋｉｎｅｓ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ」，ｅｄｉｔｅｄ ｂｙ Ｐｒｏｕｄｆｏｏｔ Ａ ｅｔ ａｌ．，Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ Ｉｎｃ．，２０００；Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ，ｖｏｌ．２８７ ａｎｄ ２８８，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，１９９７）。アッセイの限定されない例としては、カルシウム動員、脱顆粒、向炎症性サイトカインのアップレギュレーション、プロテアーゼのアップレギュレーション、インビトロおよびインビボでの細胞補充の阻害が挙げられる。

本発明のさらなる目的は、本発明のＣＣ−ケモカイン結合タンパク質に関連して開示された任意の化合物を含む試験キットである。例えば、試薬を検出することを含む、ＣＣ−ケモカインもしくは類似体、ＣＣ−ケモカイン結合タンパク質もしくは受容体、ＣＣ−ケモカインとＣＣ−ケモカイン結合タンパク質の相互作用、または前記相互作用のアンタゴニストもしくはアゴニストを検出するためのキット、ならびに、本発明のＣＣ−ケモカイン結合タンパク質に由来する、
ａ）核酸分子（例えば、ＤＮＡ）；
ｂ）オリゴヌクレオチド；
ｃ）タンパク質；および
ｄ）抗体
からなる群から選択される少なくとも１種類の化合物である。

これらのキットは、試料をこれらの化合物のうちの１種類と接触させる、インビトロまたはインビボで適用可能な方法で用いることができ、化合物は標識されているかまたは固相支持体上に固定化されていてよい。

本発明を特定の実施形態に関して説明したが、記載内容には本請求の意味および目的を超えて拡張されることなく当業者がもたらすことのできるあらゆる修飾および置換を含む。

これから本発明を以下の実施例によって説明するが、実施例は決して本発明を限定するものと解釈されるべきではない。実施例は、本明細書の下に明記される図を参照する。

実施例１：クリイロコイタマダニ（犬ダニ）の唾液におけるケモカイン結合活性の生化学的特性
クリイロコイタマダニというダニの唾液は、免疫調節活性を有する分子の同定に既に用いられているが（Ｍａｔｓｕｍｏｔｏ Ｋ ｅｔ ａｌ．，Ｊ Ｖｅｔ Ｍｅｄ Ｓｃｉ ２００３；Ｍａｔｓｕｍｏｔｏ Ｋ ｅｔ ａｌ．，２００１；Ｆｅｒｒｅｉｒａ ＢＲ ａｎｄ Ｓｉｌｖａ ＪＳ，１９９８）、具体的にＣＣ−ケモカインを対象とする結合または調節活性ではない。

粗クリイロコイタマダニダニ唾液を、公開されているプロトコール（Ｆｅｒｒｅｉｒａ ＢＲ ａｎｄ Ｓｉｌｖａ ＪＳ，１９９８）に従って得た。クリイロコイタマダニ唾液抽出物のアリコート（ｒｓＳＥ）を、結合特異性および用量反応効果を比較するために、陰性対照としてウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）および特異的にＣＣ−ケモカインと結合する陽性対照としてエクトロメリアウイルスタンパク質（ｖＣＣＩまたはｐ３５と呼ばれる）（Ｓｍｉｔｈ ＶＰ ａｎｄ Ａｌｃａｍｉ Ａ，２０００；Ａｌｃａｍｉ Ａ，２００３）を含む、異なるアッセイを用いて試験した。

最初のアッセイでは、異なる量のｒｓＳＥおよびｖＣＣＩをニトロセルロースフィルター上に平行してスポッティングし、各々を様々の放射性標識した組換えＣＣ−ケモカイン（ＣＣＬ／ＭＣＰ−１、ＣＣＬ３／ＭＩＰ−１α、およびＣＣＬ５／ＲＡＮＴＥＳ）またはＣＸＣ−ケモカイン（ＣＣＬ８／インターロイキン８）へ曝露した。ＢＳＡ結合はどの放射性標識されたケモカインにも見出されなかったが、ｖＣＣＩを用いて検出されたものに匹敵するＣＣ−ケモカイン特異的結合活性も任意のＣＣ−ケモカインでインキュベートしたフィルターに検出された。同時に、放射性標識したＣＸＣＬ／インターロイキン８でインキュベートした場合、ｒｓＳＥおよびｖＣＣＩをスポッティングしたどちらのフィルターに結合は見出されなかった（図１）。

２番目のアッセイでは、分子相互作用を非常に正確に測定することのできる、ビーズを基盤とした技術であるシンチレーション近接アッセイ（ＳＰＡ）を用いて、ｒｈＳＥおよびｖＣＣＩを特定のケモカイン／ケモカイン受容体対で暴露した。特に、ケモカイン／ケモカイン受容体相互作用を干渉している分子を検出するための特定のＳＰＡを計画した（Ａｌｏｕａｎｉ Ｓ，２０００）。小麦胚凝集素ＳＰＡビーズを、特異的ケモカイン受容体（例えばＣＣＲ１またはＣＸＣＲ２）を発現している、安定的にトランスフェクトされたＣＨＯ細胞から単離された細胞膜でコートし、その後放射性標識されたケモカイン単独で、天然のケモカインと組合せて、または異なる量のｒｈＳＥと組合せてインキュベートした。

このアッセイはＣＣ−ケモカイン間の相互作用が、特にＣＣＲ１（ＣＣＬ３／ＭＩＰ−１αおよびＣＣＬ５／ＲＡＮＴＥＳ）と結合するものに関して、用量依存的にｒｈＳＥに競合することを示した（図２）。同じアッセイをＣＸＣＲ２／ＣＸＣＬ８対に適用すると、スポッティングしたニトロセルロースフィルターでマイナスの結果が得られたことを確認した。

放射性標識したＣＣ−ケモカイン／ケモカイン受容体対の存在下で、ＣＸＣ−ケモカインと競合する物質を用いて交差阻害ＳＰＡ実験を実施し、その逆も行った。ＣＸＣ−ケモカイン（ＣＸＣＬ８／インターロイキン８）は放射性標識したＣＣ−ケモカイン（ＣＣＬ３／ＭＩＰ−１α）のＣＣＲ１／ＣＣＲ５との結合のｒｈＳＥに媒介される阻害を干渉せず、ｒｈＳＥにおいてＣＣ−ケモカインに対する結合活性の特異性を確認できた。

また、上述のアッセイでキララマダニ属のダニ種の唾液において類似のＣＣ−ケモカイン結合活性が検出され、他のダニ種がＣＣ−ケモカイン結合活性を発現することを示している。

さらに、ｒｈＳＥと放射性標識されたケモカインを用いる架橋実験は、架橋試薬（ビス（スルホスクシンイミジル）スベラートまたはＢＳ３）がＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離すると、外見上の総分子量約２０ｋＤａの分子種を生成することを示した。放射性標識したＣＣＬ３／ＭＩＰ−１αはＳＤＳ−ＰＡＧＥにおいて８ｋＤａタンパク質として遊走するので、ｒｈＳＥは分子量１０〜１５ｋＤａの範囲のＣＣ−ケモカイン結合タンパク質を発現する。

実施例２：クリイロコイタマダニｃＤＮＡライブラリーの構築およびスクリーニングならびにｒｓＣｈＢＰ−１の特性決定
次に、ｒｈＳＥにおいて同定されたＣＣ−ケモカイン結合活性をクリイロコイタマダニ唾液腺由来のｃＤＮＡライブラリーを生成することによってＤＮＡ／タンパク質配列のレベルで同定し、その後それを用いてこのようなｃＤＮＡを培地に分泌されたタンパク質として発現している哺乳類細胞のプールを作製した。

対照としてｖＣＣＩ発現細胞から得られた培地（または組換えｖＣＣＩで「スパイクされた」培地）で検出されたＣＣ−ケモカイン結合活性と比較することにより、これらの培地を次に放射性標識したＣＣ−ケモカイン（ＣＣＬ３／ＭＩＰ−１α）を用いてスクリーニングし、細胞のプールから開始して、単一のｃＤＮＡクローンを漸次減少させた。

ｖＣＣＩとクリイロコイタマダニ唾液腺由来のｃＤＮＡライブラリーの双方を発現させるために、ヒト胚腎臓細胞２９３（ＨＥＫ２９３細胞；ＡＴＣＣカタログ番号ＣＲＣ−１５７３；ＤＭＥＭ−Ｆ１２ Ｎｕｔ Ｍｉｘ、１０％熱失活ウシ胎児血清、２ｍＭ Ｌ−グルタミン、１００単位／ｍｌペニシリン−ストレプトマイシン溶液中で維持）を選択した。

ＨＥＫ２９３細胞由来の培地を、完全培地で増殖させた細胞から得た。３日間の培養後、調整された培地を回収し、遠心分離して架橋またはＳＰＡアッセイに用いた細胞片および上清を取り除いた。

平底９６ウェルプレート（Ｃｏｓｔａｒ）に移した試料についての架橋実験を実施した。放射性標識したＣＣ−ケモカイン（５０μｌの０．２３ｎＭ ¹²⁵Ｉ−ＣＣＬ３／ＭＩＰ−１α）を各試料に加え、それを次に室温にて２時間振盪しながらインキュベートした。次に、２５μｌのアリコートを各ウェルから別のウェルに移して０．５μｌの５０ｍＭ ＢＳ３（架橋試薬）含有とし、さらに振盪しながら２時間インキュベートした。この後、５μｌの１０×サンプルバッファー（０．１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ８および１０ｍＭ ＤＴＴ）を各ウェルに加えて架橋反応を停止させた。次に、試料を５分間煮沸し、１０％ Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルで電気泳動させた（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ ＮｕＰＡＧＥ、カタログ番号ＮＰ０３０１ＢＯＸ）。電気泳動後、ゲルをサランラップ（Ｓａｒａｎｗｒａｐ）（商標）で密封し、Ｋ型ストレージ・ホスフォイメージングスクリーン（Ｂｉｏｒａｄ）に８時間曝露した。イメージングスクリーンを、Ｂｉｏｒａｄ Ｐｅｒｓｏｎａｌ ＦＸホスホイメージャーを用いて解像度１００ｕｍでスキャンした。

クリイロコイタマダニｃＤＮＡライブラリーをｐＴｒｉｐｌＥｘ２（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）中に構築した。１００匹の成体クリイロコイタマダニから唾液腺を回収し、直ちに氷冷ＲＮＡｌａｔｅｒ溶液（Ａｍｂｉｏｎ）中で次の使用まで保存した。製造者の使用説明書に従って、ＴＲｌｚｏｌ法（Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ）を用いて全ＲＮＡを抽出し、ＳＭＡＲＴｃＤＮＡライブラリー構築キット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）および製造者の使用説明書に従って、ＣｈｒｏｍａＳｐｉｎ４００カラム（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）でサイズ画分されたｃＤＮＡを用いてｃＤＮＡライブラリーを構築した。クローン化されたｃＤＮＡ挿入断片のサイズは、挿入断片の８０％で約０．６ｋｂ〜１．５に及んだ。

対照タンパク質ｖＣＣＩ（配列番号２）をコードするＤＮＡ配列（配列番号１）およびクリイロコイタマダニ唾液腺由来のｃＤＮＡライブラリーの双方を、ｐＥＸＰ−ｌｉｂ発現プラスミド（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）にサブクローニングした。

ｐＥＸＰ−Ｌｉｂベクターは、ヒトサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、その主たる近隣に初期プロモーター／エンハンサー、その後にＳｆｉ ＩＡおよびＳｆｉ ＩＢ部位（内部のパリンドローム（ｉｎｔｅｒｐａｌｉｎｄｒｏｍｉｃ）配列の異なる２つの個別のＳｆｉ Ｉ部位）を含む多重クローニング部位、その後に１つのメッセンジャーＲＮＡから２つのオープンリーディングフレームの翻訳を可能にする、脳心筋炎ウイルス（ＥＣＭＶ）の内部リボソーム進入部位（ＩＲＥＳ）、その後にピューロマイシン耐性（ピューロマイシン−Ｎ−アセチル−トランスフェラーゼ）をコードする遺伝子、ならびにその後にウシ成長ホルモンのポリアデニル化シグナルを含む、発現カセットを含む。リボソームは、５’末端で注目される遺伝子を適当な配向で翻訳するか、またはＥＣＭＶ ＩＲＥＳで抗生物質耐性マーカーを翻訳するかのいずれかのためのバイシストロニックなｍＲＮＡに進入できる。ｐＥＸＰ−Ｌｉｂベクター形質転換細胞を培養する場合、抗生物質が全発現カセットに選択圧を及ぼす；従って、高用量の抗生物質（１０〜１００μｇ／ｍｌのピューロマイシン）は注目される遺伝子を高レベルで発現している細胞だけを選択する。この選択圧も、注目される遺伝子の発現が培養の際に経時的に安定することを保証する。

ＨＥＫ２９３細胞を、ＧｅｎｅＰｏｒｔｅｒ２トランスフェクションキット（Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ）を製造者のプロトコールに従って用いて、ｐＥＸＰ−Ｌｉｂプラスミドでトランスフェクトした。

ＢＳ３（架橋試薬）を用いて、¹²⁵Ｉ標識したＣＣＬ３／ＭＩＰ−１αを混合したＨＥＫ細胞の培地において、培地が組換えｖＣＣＩで「スパイクされた」場合と、培地がｖＣＣＩを発現するＨＥＫ２９３に由来する場合のどちらの場合も、ｖＣＣＩタンパク質配列（配列番号２）を検出した。架橋試薬の添加は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにおいて約４０〜４５ｋＤａで遊走するバンドとして分離された、放射性標識したＣＣ−ケモカイン複合体を含有するタンパク質複合体を生成する。この架橋方法は、ナノグラムの重量範囲の複合体でさえ検出できるので非常に感受性が高い（図３Ａ）。

この方法を、クリイロコイタマダニｃＤＮＡライブラリーで形質転換されたＨＥＫ２９３細胞へ適用すると、細胞のプールから開始して、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにおいて約２０ｋＤａのバンドとして遊走する放射性標識したＣＣＬ３／ＭＩＰ−１αを含む複合体を形成する、ＣＣ−ケモカイン結合タンパク質（ｒｓＣｈＢＰ−１として同定）を発現している単一のクローン（クローン２）をスクリーニングすることが可能であった（図３Ｂ）。ダニ唾液において検出された、同じ重量範囲の天然ＣＣ−ケモカイン結合活性を中心とするこのバンドは、おそらく異なるレベルのグリコシル化を有するイソ型の存在に起因してスメアのように見える。

クローン２によって発現されたｒｓＣｈＢＰ−１をコードするｃＤＮＡを配列決定した。この５８５ｂｐ長のｃＤＮＡ（配列番号３）は、１１１個のアミノ酸（配列番号４）をコードするオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）を含み、分泌される可能性があり、いずれの既知のＣＣ−ケモカイン結合タンパク質とも有意な相同性をもたない（図４）。分子量を考えると、このｒｓＣｈＢＰ−１配列は、ダニ唾液において同定されたＣＣ−ケモカイン結合活性の少なくとも１つに相当しているはずである。

ｒｓＣｈＢＰ−１の配列は、アンブリオンマ・バリエガツムの唾液腺から単離された（Ｎｅｎｅ Ｖ ｅｔ ａｌ．，２００２）、特性決定されていない５１５ｂｐ長のｃＤＮＡ（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＢＭ２８９６４３；配列番号７）中のＯＲＦ、およびシカダニの唾液腺から単離された（Ｖａｌｅｎｚｕｅｌａ ＪＧ ｅｔ ａｌ．，２００２）特性決定されていない３９６ｂｐ長のｃＤＮＡ（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＦ４８３７３８；配列番号９）中のＯＲＦにコードされるタンパク質配列とある種の類似性を有する。この２つのさらなるタンパク質配列（ａｖＣｈＢＰ−ＩおよびｉｓＣｈＢＰ−１と同定された；図５）は、数個の保存されたシステイン（ｒｓＣｈＢＰ−１中の残基４０、５９、６４、７６、８６、９８、および９９）を含み、タンパク質長（およそ１１０アミノ酸長）の点でスクリーニングされたクリイロコイタマダニ配列とも相同である。また、クローン２にコードされるタンパク質のＣＣ−ケモカイン結合特性も、ＳＰＡに基づくアプローチを用いて試験した。ｒｓＳＥについて示されるように（図２）、ｒｓＣｈＢＰ−１の存在下で測定されたＳＰＡシグナルは、放射性標識したＣＣＬ３／ＭＩＰ−１αとＳＰＡビーズとの結合への用量依存的な阻害効果とともに、試料を添加したＨＥＫ２９３−クローン２の培地の量に反比例する（図７）。

従って、ｒｓＣｈＢＰ−１、ａｖＣｈＢＰ−１、およびｉｓＣｈＢＰ−１は、ＣＣ−ケモカイン結合特性を有する新規なタンパク質ファミリーのメンバーである可能性があると結論付けられる。

実施例３：ｒｓＣｈＢＰ−１を特性決定する機能的アッセイ：
ＬＰＳに誘導される単球によるＴＮＦ−α放出
ｒｓＣｈＢＰ−１の生物活性を、ｒｓＣｈＢＰ−１タンパク質のＬＰＳに誘導される単球によるＴＮＦ−α放出を阻害する能力について試験するアッセイによって測定した。

単球細胞株、ＴＨＰ−１を、Ｔ２２５ｍｌフラスコに密度２．５×１０⁵細胞／ｍｌで増殖培地（１０％ＦＣＳ、１％ペニシリン−ストレプトマイシンを含有するＲＰＭＩ培地）に播種した。次に、細胞を８０ｎＭビタミンＤ３中で７２時間培養して分化させた。分化した細胞を、９６ウェルプレートにウェルあたり分化細胞１０⁵の密度で、１５０μｌの増殖培地にプレーティングした。ｒｓＣＨＢＰ−１タンパク質の連続希釈（図６に示される）を容量５０μｌで細胞へ添加し、試験タンパク質を含有する培地中で細胞を２４時間放置した。翌日、ＬＰＳを３．５時間細胞に添加して終濃度２．５ｎｇ／ｍｌとした。プレートを遠心分離し、培地をウェルから除去し、ＥＬＩＳＡを行う前に−８０℃で保存した。

ＴＮＦ−α ＥＬＩＳＡを、ＤｕｏＳｅｔヒトＴＮＦ−α ＥＬＩＳＡキット（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＤＹ２１０）を用いて製造者の指示に従って実施した。９６ウェルのＥＬＩＳＡプレートを、ＰＢＳ中４μｇ／ｍｌに希釈した１００μｌ捕獲抗体でコーティングした。このインキュベーション段階のため、プレートを一晩室温にて放置した。捕獲抗体溶液を除去し、ウェルをＰＢＳ中２００μｌの１０％ ＦＣＳで室温にて４５分間飽和させた。プレートを洗浄バッファー（０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０含有ＰＢＳ）で２回洗浄した。細胞から回収された培地１００μｌを各ウェルに加え、室温にて２．５時間インキュベートさせた。キットからの使用説明書に従って、組換えヒトＴＮＦ−αの希釈物を標品として用いた。インキュベーションの後、プレートを洗浄バッファーで３回洗浄し、ＰＢＳ中、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０に希釈した検出抗体３００ｎｇ／ｍｌでインキュベートした。プレートを洗浄バッファーで４回洗浄し、次にウェルあたり１００μｌのストレプトアビジン−ＨＲＰ（ＰＢＳ中０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０に１：１０，０００で希釈）で室温にて３０分間インキュベートした。インキュベーションの後、プレートを洗浄バッファーで３回洗浄し、製造者の使用説明書に従って、１００μｌ／ウェルのスーパーシグナル ＥＬＩＳＡ ピコ−化学発光基質（Ｐｉｅｒｃｅ，３７０７０）を用いて暗所で１０分間インキュベートした。Ａｓｃｅｎｔ Ｌｕｍｉｎｏｓｋａｎルミノメーターで化学発光のレベルを測定した。

結果：ｒｓＣｈＢＰ−１は、ＬＰＳに誘導される単球細胞株によるＴＮＦ−αの放出を阻害することを示し、ｒｓＣｈＢＰ−１が免疫調節剤として機能できることを示した。このアッセイでｒｓＣｈＢＰ−１タンパク質について得られたＩＣ₅₀は１μｇ／ｍｌであった。

放射性標識されたケモカインと、クリイロコイタマダニ唾液抽出物（ｒｓＳＥ）またはエクトロメリア・ウイルス（ｖＣＣＩ）由来のＣＣ−ケモカイン結合タンパク質との結合。抽出物およびタンパク質を、様々なニトロセルロースフィルター上に指示された量（表中左上のセル）で並行してスポッティングした、次に各フィルターを縦列（表右）の中に示された特定の放射性標識されたケモカインでインキュベートした。 シンチレーション近接アッセイ（ＳＰＡ）を用いる、クリイロコイタマダニの唾液におけるＣＣ−ケモカイン結合活性の生化学的特性。ＳＰＡビーズ上に固定化される放射性標識されたＣＣＬ／ＭＩＰ−１αとＣＣＲ１との間の相互作用を、競争相手なしで、天然の競争相手（ＭＩＰ−１α）と、またはダニ唾液タンパク質抽出物の２つの量で測定した。同一のＳＰＡビーズおよび放射性標識したまたは標識されていないＣＣＬ５／ＲＡＮＴＥＳを用いて、類似のプロフィールが得られた。 ＨＥＫ２９３培地におけるＣＣ−ケモカイン結合活性の、¹²⁵Ｉ−ＭＩＰ−１αとの化学架橋することによる検出。（Ａ）ＨＥＫ２９３培地に陽性対照の滴定（ウイルス性のＣＣ−ケモカイン結合タンパク質ｖＣＣＩ）を、示された量で架橋薬剤（ＢＳ³）の存在下で加えた。遊離型の放射性標識したＣＣ−ケモカインは８ｋＤａのバンドとして遊走する。ＣＣ−ケモカインおよびｖＣＣＩによって形成された放射性標識した架橋複合体は、３５〜４５ｋＤａのバンドとして遊走する。（Ｂ）ＨＥＫ２９３哺乳類細胞で発現したクリイロコイタマダニｃＤＮＡ発現ライブラリー由来の個々のクローンのスクリーニング。このｃＤＮＡライブラリーで形質転換された特定のＨＥＫ２９３クローン（クローン２）の培地を用いる架橋実験で観察されたシグナルを、架橋試薬（ＢＳ３）の存在下（レーン＋）または不在下（レーン−）で、ｖＣＣＩを含有するＨＥＫ２９３培地を用いて得たシグナルと比較する。遊離型の放射性標識したＣＣ−ケモカインおよび架橋された複合体（放射性標識したＣＣ−ケモカインとダニまたはウイルスのＣＣ−ケモカイン結合タンパク質間）が示される。 ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号４）をコードするＯＲＦを含む、クローン２のＤＮＡ配列（配列番号３）。ＤＮＡのコーディング部分とアミノ酸配列とのアラインメントを行っている。シグナル配列（アルゴリズムＳＩＧＮＡＬＪによって予測）に下線が引かれている。予測されたポリアデニル化部位は線で囲まれている。 ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号４）と、ａｖＣｈＢＰ−１（配列番号８）とｉｓＣｈＢＰ−１（配列番号１０）のアラインメント。この２つのタンパク質配列は、それぞれアノテートされていないアンブリオンマ・バリエガツムおよびシカダニのｃＤＮＡｓにおいて同定されたＯＲＦによりコードされる。付けられた番号は、それぞれのｃＤＮＡ配列、クローン２（配列番号３）、ＢＭ２８９６４３（配列番号７）、およびＡＦ４８３７３８（配列番号９）におけるヌクレオチドの位置に対応する。ｒｓＣｈＢＰ−１とａｖＣｈＢＰ−１との間、およびｒｓＣｈＢＰ−１とｉｓＣｈＢＰ−１との間の同一かつ保存された（＋で示されている）残基は太字で示されている。 ＬＰＳに誘導される単球によるＴＮＦ−α誘導の阻害−科学者からの説明待ち。 ＨＥＫ２９３培地で発現した組換えｒｓＣｈＢＰ−１のＣＣ−ケモカイン結合活性。放射性標識したＣＣＬ３／ＭＩＰ−１αとＣＣＲ１との間の相互作用を、天然の競合物質の有り無しで、または試料へ添加したｒｓＣｈＢＰ−１を発現するＨＥＫ２９３細胞由来の培地の量を増加させて実施した、シンチレーション近接アッセイで測定した。

Claims (39)

1. ａ）ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号４）を含むタンパク質；
   ｂ）成熟ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号６）を含むタンパク質；
   ｃ）ストリンジェント条件下で、ａ）またはｂ）のタンパク質をコードする核酸配列とハイブリダイゼーション可能な核酸分子によってコードされるタンパク質であって、前記核酸分子はＣＣ−ケモカインと結合するタンパク質をコードする；
   ｄ）ａ）、ｂ）、またはｃ）のタンパク質とアミノ酸配列が少なくとも約７０％同一であり、ＣＣ−ケモカインと結合するタンパク質；
   ｅ）その断片がＣＣ−ケモカインと結合する、ａ）、ｂ）、ｃ）、またはｄ）のタンパク質の断片；および
   ｆ）その断片またはタンパク質が免疫調節活性を有する、ａ）、ｂ）、ｃ）、またはｄ）のタンパク質の断片、
   からなる群から選択されるポリペプチド。
2. ａ）ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号４）を有するタンパク質；
   ｂ）成熟ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号６）を有するタンパク質；
   ｃ）その断片がＣＣ−ケモカインと結合する、ａ）、またはｂ）のタンパク質の断片；
   ｄ）その断片が哺乳類へ投与される場合に免疫化活性を有する、ａ）またはｂ）のタンパク質の断片；
   ｅ）その変異体に１以上のアミノ酸残基が付加、欠失、または置換され、かつその変異体がＣＣ−ケモカインと結合する、ａ）またはｂ）のタンパク質の活性変異体；
   ｆ）その融合タンパク質が、以下の、膜結合タンパク質の細胞外ドメイン、免疫グロブリンの定常領域、多量体化ドメイン、ヘテロ二量体タンパク質ホルモン、シグナルペプチド、移行シグナル、およびタグ配列から選択される１以上のアミノ酸配列と作動可能なように連結されるａ）、ｂ）、ｃ）、ｄ）、ｅ）またはｆ）のタンパク質を含む融合タンパク質
   からなる群から選択される、請求項１に記載のポリペプチド。
3. 哺乳類へ投与される場合に、アミノ酸付加、欠失、または置換が前記ポリペプチドの免疫原性を低下させる、請求項２に記載のタンパク質の活性変異体。
4. 前記ポリペプチドが翻訳後に修飾されることを特徴とする、請求項１〜４のいずれか一項に記載のタンパク質。
5. 前記タンパク質がグリコシル化されることを特徴とする、請求項４に記載のタンパク質。
6. 前記タンパク質が活性のある画分、前駆体、塩、誘導体、共役体、または複合体の形態であることを特徴とする、請求項１〜５のいずれか一項に記載のタンパク質。
7. 前記タンパク質がＰＥＧ化されることを特徴とする、請求項１〜６のいずれか一項に記載のタンパク質。
8. 請求項１〜５のいずれか一項に記載のポリペプチドをコードする核酸分子。
9. ａ）ｒｓＣＨＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号３）を含むタンパク質をコードする核酸分子；
   ｂ）成熟ｒｓＣＨＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号５）を含むタンパク質をコードする核酸分子；
   ｃ）ストリンジェント条件下で、ａ）またはｂ）の核酸分子とハイブリダイゼーション可能な核酸分子であり、ＣＣ−ケモカインと結合するタンパク質をコードする核酸分子；
   ｄ）ａ）、またはｂ）のタンパク質とアミノ酸配列が少なくとも約７０％同一であり、ＣＣ−ケモカインと結合するタンパク質をコードする核酸分子；
   ｅ）ａ）、ｂ）、ｃ）またはｄ）の核酸分子によりコードされるタンパク質の断片をコードする核酸分子であって、前記断片はＣＣ−ケモカインと結合し；および
   ｆ）ａ）、ｂ）、ｃ）、ｄ）またはｅ）の核酸分子の縮重変異体
   からなる群から選択される、請求項８に記載の核酸分子。
10. 前記核酸分子が、
    ａ）ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号４）を有するタンパク質；
    ｂ）成熟ｒｓＣｈＢＰ−１のアミノ酸配列（配列番号６）を有するタンパク質；
    ｃ）その断片がＣＣ−ケモカインと結合する、ａ）またはｂ）のタンパク質の断片；
    ｄ）その断片が哺乳類へ投与される場合に免疫化活性を有する、ａ）またはｂ）のタンパク質の断片；
    ｅ）その変異体に１以上のアミノ酸残基が付加、欠失、または置換され、かつその変異体がＣＣ−ケモカインと結合する、ａ）またはｂ）のタンパク質の活性変異体；および
    ｆ）その融合タンパク質が、以下の、膜結合タンパク質の細胞外ドメイン、免疫グロブリンの定常領域、多量体化ドメイン、シグナルペプチド、移行シグナル、およびタグ配列から選択される１以上のアミノ酸配列と作動可能なように連結されるａ）、ｂ）、ｃ）、ｄ）またはｅ）のタンパク質を含む融合タンパク質
    からなる群から選択されるタンパク質をコードする、請求項９に記載の核酸分子。
11. ＣＣ−ケモカインがＣＣＬ５／ＲＡＮＴＥＳ、ＣＣＬ３／ＭＩＰ−１α、および／またはＣＣＬ２／ＭＣＰ−１であることを特徴とする、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の核酸分子。
12. 前記分子がＤＮＡ分子、特にｃＤＮＡ分子である、請求項８〜１１のいずれか一項に記載の核酸分子。
13. 前記分子が配列番号３または５のＤＮＡ配列を含むかまたは配列番号３または５のＤＮＡ配列である、請求項８に記載の核酸分子。
14. 少なくとも約２０ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチド、少なくとも約３０ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチド、および少なくとも約５０ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチドからなる群から選択される、請求項９または１０に記載の核酸の断片を含むオリゴヌクレオチド。
15. 請求項８〜１３のいずれか一項に記載の核酸分子を含む、クローニングベクターまたは発現ベクター。
16. 前記核酸分子と作動可能なように会合するプロモーター、特に組織特異的な、構成性プロモーターまたは誘導性プロモーターをさらに含む、請求項１５に記載の発現ベクター。
17. 請求項１５または１６に記載の発現ベクターで形質転換またはトランスフェクトされた宿主細胞。
18. 遺伝的に改変されて請求項１〜６のいずれか一項に記載のタンパク質を産生する細胞。
19. 発現を可能とする、または促進する条件下で請求項１７に記載の宿主細胞を培養することを含む、ポリペプチドを調製するための方法。
20. タンパク質を精製することをさらに含む、請求項１８に記載の方法。
21. ヒト投与のためのタンパク質を処方することをさらに含む、請求項１８または１９に記載の方法。
22. ＣＣ−ケモカイン結合タンパク質を発現するトランスジェニック非ヒト動物であって、前記動物の細胞が、請求項８〜１３のいずれか一項の単離された核酸分子または組換え核酸分子、あるいは請求項１５または１６の発現ベクターを含むことを特徴とする、トランスジェニック非ヒト動物。
23. 請求項１〜７のいずれか一項に記載のポリペプチドに免疫反応性である抗体。
24. モノクローナル抗体である、請求項２３に記載の抗体。
25. キメラ抗体、ヒト化抗体またはヒト抗体である、請求項２３または２４に記載の抗体。
26. 請求項１〜７のいずれか一項に記載のポリペプチドまたは請求項８〜１６のいずれか一項に記載の核酸または請求項１７または１８に記載の細胞、および製薬上許容される希釈剤もしくは担体を含む、医薬組成物。
27. 医薬として使用するための、請求項１〜６のいずれか一項に記載のポリペプチド、または請求項２６に記載の組成物。
28. 哺乳類における免疫反応または炎症反応の治療または予防のための医薬の製造のための、請求項１〜６のいずれか一項に記載のポリペプチド、または請求項２２に記載の組成物の使用。
29. 動物におけるＣＣ−ケモカイン関連疾患の治療または予防のための使用のための、請求項１〜６のいずれか一項に記載のポリペプチド、または請求項２６に記載の組成物。
30. ＣＣ−ケモカインがＣＣＬ５／ＲＡＮＴＥＳ、ＣＣＬ３／ＭＩＰ−１α、またはＣＣＬ２／ＭＣＰ−１であることを特徴とする、請求項２９に記載の使用。
31. 疾患が、炎症性疾患、自己免疫疾患、免疫疾患、感染、アレルギー性疾患、心血管疾患、代謝性疾患、消化管疾患、神経疾患、敗血症、移植拒絶に関連する疾患、または線維性疾患である、請求項２９に記載の使用。
32. 寄生虫、ウイルス、または細菌に対する哺乳類のワクチン接種のための医薬の調製における、請求項１〜７のいずれか一項に記載のポリペプチドの使用。
33. 請求項８〜１３のいずれか一項に記載の核酸分子によりコードされるタンパク質の医薬としての使用。
34. 哺乳類において免疫反応または炎症反応を調節するための組成物の調製における、請求項８に記載の核酸分子の使用。
35. 吸血性の外部寄生虫に対して動物を免疫化するための方法であって、前記動物へ請求項１〜７のいずれか一項に記載のポリペプチドを投与することを含む、方法。
36. 治療有効量の、請求項１〜７のいずれか一項に記載のポリペプチドを前記動物へ投与することを含む、それを必要とする動物において免疫反応または炎症反応を調節する方法。
37. ＣＣ−ケモカイン関連疾患の治療または予防のための方法であって、それを必要とする被験体への有効量の、請求項１〜７のいずれか一項に記載のポリペプチドの投与を含む、方法。
38. ＣＣ−ケモカインまたは類似体、ＣＣ−ケモカイン結合タンパク質または受容体、ＣＣ−ケモカインおよびＣＣ−ケモカイン結合タンパク質の相互作用、あるいは前記相互作用のアンタゴニストまたはアゴニストを検出するためのキットであって、検出試薬および：
    ａ）請求項８の核酸分子；
    ｂ）請求項１４のオリゴヌクレオチド；
    ｃ）請求項１〜７のいずれか一項に記載のポリペプチド；および
    ｄ）請求項２３、２４または２５の抗体
    からなる群から選択される少なくとも１種類の化合物を含む、キット。
39. インビトロまたはインビボでＣＣ−ケモカインまたは類似体、ＣＣ−ケモカイン結合タンパク質または受容体、ＣＣ−ケモカインおよびＣＣ−ケモカイン結合タンパク質の相互作用、あるいは前記相互作用のアンタゴニストまたはアゴニストを検出するための方法であって、試料を、
    ａ）請求項８の核酸分子；
    ｂ）請求項１４のオリゴヌクレオチド；
    ｃ）請求項１〜７のいずれか一項に記載のポリペプチド；および
    ｄ）請求項２３、２４または２５の抗体
    からなる群から選択される１種類の化合物と接触させることを含む、方法。

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