JP2008182905A - ヒト由来プロレニン受容体の製造方法、ヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法、プロレニン濃度の測定方法及び抗ヒト由来プロレニン受容体抗体 - Google Patents
ヒト由来プロレニン受容体の製造方法、ヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法、プロレニン濃度の測定方法及び抗ヒト由来プロレニン受容体抗体 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2008182905A JP2008182905A JP2007016973A JP2007016973A JP2008182905A JP 2008182905 A JP2008182905 A JP 2008182905A JP 2007016973 A JP2007016973 A JP 2007016973A JP 2007016973 A JP2007016973 A JP 2007016973A JP 2008182905 A JP2008182905 A JP 2008182905A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- derived
- human
- prorenin
- prorenin receptor
- silkworm
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
【課題】ヒト由来プロレニン受容体を効率よく大量に製造可能な製造方法を提供する。
【解決手段】ｍｉｎｉＦレプリコンと、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡと、トランスポゾンの付着部位と、ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列と、を含むＢｍＮＰＶシャトルベクターを、カイコガ由来の細胞に導入することによってヒト由来プロレニン受容体を製造する。
【選択図】なし
【解決手段】ｍｉｎｉＦレプリコンと、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡと、トランスポゾンの付着部位と、ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列と、を含むＢｍＮＰＶシャトルベクターを、カイコガ由来の細胞に導入することによってヒト由来プロレニン受容体を製造する。
【選択図】なし
Description
本発明は、ヒト由来プロレニン受容体の製造方法及びヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法、プロレニン濃度の測定方法及び抗ヒト由来プロレニン受容体抗体に関する。
プロレニンは、本来レニン活性を示さないレニン前駆体物質であり、腎臓にのみ存在するレニン顆粒中で酵素分解を受けてレニンに変換されて、レニン活性を示すようになることが知られている。
近年、種々の細胞表面に存在し、プロレニンと結合することでレニン活性を示すプロレニン受容体が見出され、その機能が注目されている。例えば、糖尿病患者が合併症を併発すると血中のプロレニン濃度が上昇することが知られており、糖尿病におけるプロレニンとプロレニン受容体の役割について研究が進められている。従来、このようなプロレニン受容体は生物組織から単離、精製されて種々の研究に利用されているが、その機能を明らかにするのに十分な量を得ることは困難であった。
機能解析等に十分な量のタンパク質を得るために、タンパク質の発現には微生物発現系が広く用いられているが、プロレニン受容体の発現については、生物活性がほとんどないものしか得られていない。
近年、種々の細胞表面に存在し、プロレニンと結合することでレニン活性を示すプロレニン受容体が見出され、その機能が注目されている。例えば、糖尿病患者が合併症を併発すると血中のプロレニン濃度が上昇することが知られており、糖尿病におけるプロレニンとプロレニン受容体の役割について研究が進められている。従来、このようなプロレニン受容体は生物組織から単離、精製されて種々の研究に利用されているが、その機能を明らかにするのに十分な量を得ることは困難であった。
機能解析等に十分な量のタンパク質を得るために、タンパク質の発現には微生物発現系が広く用いられているが、プロレニン受容体の発現については、生物活性がほとんどないものしか得られていない。
バキュロウイルス遺伝子発現系は、真核生物である昆虫由来の培養細胞中で組換えタンパク質を生産するため、糖鎖付加、リン酸化などの翻訳後修飾が行われるため、活性を有する組換えタンパク質の大量生産に適している。
昆虫由来培養細胞を用いてプロレニン受容体を生産する方法としては、バキュロウイルスを昆虫由来の培養細胞に感染させて、ラット由来プロレニン受容体を生産する方法が知られている（例えば、非特許文献１参照）。
さらに効率よく組換え遺伝子の発現を行うために、カイコ発現系に利用されるカイコガ核多角体病ウイルス（ＢｍＮＰＶ）をＢＡＣ（Bacterial Artificial Choromosome）クローン化できるＢｍＮＰＶシャトルベクター（バクミド）が開発され、大腸菌体内でのクローニングや組換えウイルスの構築を迅速に行うことができるようになった（例えば、特許文献１参照）。
また、培養細胞を用いたプロレニン受容体の発現を検討した例として、ラット由来のプロレニン受容体を培養細胞に発現させてレニン活性について検討した研究例が知られている（例えば、非特許文献２参照）。
特開２００４−１７３５０７号公報
Int. J. Mol. Med., (2006) 18, p.483-488
J. Hypertens. (2005), 23(Suppl 2): S259
昆虫由来培養細胞を用いてプロレニン受容体を生産する方法としては、バキュロウイルスを昆虫由来の培養細胞に感染させて、ラット由来プロレニン受容体を生産する方法が知られている（例えば、非特許文献１参照）。
さらに効率よく組換え遺伝子の発現を行うために、カイコ発現系に利用されるカイコガ核多角体病ウイルス（ＢｍＮＰＶ）をＢＡＣ（Bacterial Artificial Choromosome）クローン化できるＢｍＮＰＶシャトルベクター（バクミド）が開発され、大腸菌体内でのクローニングや組換えウイルスの構築を迅速に行うことができるようになった（例えば、特許文献１参照）。
また、培養細胞を用いたプロレニン受容体の発現を検討した例として、ラット由来のプロレニン受容体を培養細胞に発現させてレニン活性について検討した研究例が知られている（例えば、非特許文献２参照）。
しかしながら、非特許文献１に記載の方法では、プロレニン受容体の機能を詳細に検討するのに十分な発現量を得ることは困難であった。
また、非特許文献２に記載のラット由来のプロレニン受容体の製造方法では、ラット由来のプロレニン受容体が得られるのみである。プロレニン受容体は種特異性が高いために、ヒト以外の種に由来するプロレニン受容体ではヒト由来プロレニンとの結合活性が不十分である可能性が高い。更に昆虫由来の培養細胞を用いた方法では、培養細胞の取り扱いに困難性があり、また、多くの夾雑物を含む培養細胞の細胞質から目的のプロレニン受容体を単離、精製する必要があり、大量生産性にも限界があった。
また、非特許文献２に記載のラット由来のプロレニン受容体の製造方法では、ラット由来のプロレニン受容体が得られるのみである。プロレニン受容体は種特異性が高いために、ヒト以外の種に由来するプロレニン受容体ではヒト由来プロレニンとの結合活性が不十分である可能性が高い。更に昆虫由来の培養細胞を用いた方法では、培養細胞の取り扱いに困難性があり、また、多くの夾雑物を含む培養細胞の細胞質から目的のプロレニン受容体を単離、精製する必要があり、大量生産性にも限界があった。
したがって、本発明は、ヒト由来プロレニン受容体を効率よく大量に生産することを目的とする。
前記課題を解決するための具体的手段は以下の通りである。
本発明の製造方法は、ｍｉｎｉＦレプリコンと、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡと、トランスポゾンの付着部位と、ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列と、を含むＢｍＮＰＶシャトルベクターを、カイコガ由来の細胞に導入する工程を含むヒト由来プロレニン受容体の製造方法である。
ここで、前記ＢｍＮＰＶシャトルベクターが、昆虫由来の分泌シグナル配列を更に含み、前記カイコガ由来の細胞が、カイコガの幼虫の細胞またはカイコガの蛹の細胞であって、カイコガの幼虫の体液またはカイコガの蛹から、ヒト由来プロレニン受容体を回収する回収工程を更に含むことが好ましい。
本発明の製造方法は、ｍｉｎｉＦレプリコンと、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡと、トランスポゾンの付着部位と、ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列と、を含むＢｍＮＰＶシャトルベクターを、カイコガ由来の細胞に導入する工程を含むヒト由来プロレニン受容体の製造方法である。
ここで、前記ＢｍＮＰＶシャトルベクターが、昆虫由来の分泌シグナル配列を更に含み、前記カイコガ由来の細胞が、カイコガの幼虫の細胞またはカイコガの蛹の細胞であって、カイコガの幼虫の体液またはカイコガの蛹から、ヒト由来プロレニン受容体を回収する回収工程を更に含むことが好ましい。
また、前記ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列が、配列番号１又は配列番号２で表されるポリヌクレオチド配列であることが好ましい。
また、前記ＢｍＮＰＶシャトルベクターがウイルス由来のプロテアーゼ遺伝子の少なくとも１種を欠損させたものであることが好ましく、精製用タグ、マーカー及びエンテロキナーゼ認識部位から選ばれるいずれかの精製用ペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を更に含むことがより好ましい。
更に、前記昆虫由来の分泌シグナル配列が、カイコガ脳神経ペプチドホルモンＢｏｍｂｙｘｉｎ由来の分泌シグナル配列ｂｘまたはフェノール酸化酵素前駆体活性化酵素由来の分泌シグナル配列ｐｐａｅのいずれかであることが好ましい。
また、前記ＢｍＮＰＶシャトルベクターがウイルス由来のプロテアーゼ遺伝子の少なくとも１種を欠損させたものであることが好ましく、精製用タグ、マーカー及びエンテロキナーゼ認識部位から選ばれるいずれかの精製用ペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を更に含むことがより好ましい。
更に、前記昆虫由来の分泌シグナル配列が、カイコガ脳神経ペプチドホルモンＢｏｍｂｙｘｉｎ由来の分泌シグナル配列ｂｘまたはフェノール酸化酵素前駆体活性化酵素由来の分泌シグナル配列ｐｐａｅのいずれかであることが好ましい。
また、本発明のスクリーニング方法は、本発明のヒト由来プロレニン受容体の製造方法によって製造されたヒト由来プロレニン受容体とプロレニン受容体阻害剤との結合活性を測定する工程を含むことを特徴とするプロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法である。
また、本発明のプロレニン濃度の測定方法は、本発明のヒト由来プロレニン受容体の製造方法によって製造されたヒト由来プロレニン受容体を用いて、プロレニンのレニン活性を測定する工程を含むことを特徴とするプロレニン濃度の測定方法である。
また、本発明の抗ヒト由来プロレニン抗体は、本発明のヒト由来プロレニン受容体の製造方法によって製造されたヒト由来プロレニン受容体と、特異的に結合することを特徴とする抗ヒト由来プロレニン受容体抗体である。
本発明によれば、ヒト由来プロレニン受容体を効率よく大量に生産することができる。
本発明のヒト由来プロレニン受容体の製造方法は、ｍｉｎｉＦレプリコンと、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡと、トランスポゾンの付着部位と、ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列と、を含むＢｍＮＰＶシャトルベクターを、カイコガ由来の細胞に導入する工程を含む。
ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列を含むＢｍＮＰＶシャトルベクターを用いることで、カイコガ由来の細胞中でヒト由来プロレニン受容体を効率よく大量に製造することができる。
ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列を含むＢｍＮＰＶシャトルベクターを用いることで、カイコガ由来の細胞中でヒト由来プロレニン受容体を効率よく大量に製造することができる。
まず、本発明におけるＢｍＮＰＶシャトルベクターについて説明する。
本発明におけるｍｉｎｉＦレプリコンは、大腸菌ＤＨ５αＦ’ＩＱより分離したプラスミド由来の配列であって複製に必要な領域を意味する。このｍｉｎｉＦレプリコンは、例えばＦ’レプリコンから得ることができる。このｍｉｎｉＦレプリコンの構造は、例えば特開２００４−１７３５０７号公報に開示されている。
本発明におけるｍｉｎｉＦレプリコンは、大腸菌ＤＨ５αＦ’ＩＱより分離したプラスミド由来の配列であって複製に必要な領域を意味する。このｍｉｎｉＦレプリコンは、例えばＦ’レプリコンから得ることができる。このｍｉｎｉＦレプリコンの構造は、例えば特開２００４−１７３５０７号公報に開示されている。
ＢｍＮＰＶは、カイコガの幼虫、カイコガの蛹およびカイコガ由来の培養細胞に感染して、感染細胞の核内に多角体をつくるカイコガ核多角体病ウイルス（Bombyx mori nucleopolyhedrovirus）を意味し、「ＢｍＮＰＶ ＤＮＡ」は、ＢｍＮＰＶのＤＮＡ配列を意味する。
トランスポゾン（Ｔｎ）の付着部位とは、ドナーベクター内のトランスポゼース認識配列に挟まれた外来遺伝子（発現目的遺伝子）を、転位酵素トランスポゼースによりシャトルベクター内の標的部位に挿入させるための配列である。トランスポゾンの付着部位としては、Ｔｎ７の付着部位ｍｉｎｉ−ａｔｔＴｎ７、Ｔｎ３の付着部位およびＴｎ４の付着部位などが挙げられる。このトランスポゾン（Ｔｎ）の付着部位は、例えば、ｌａｃＺ遺伝子（例えば、ｌａｃＺα遺伝子）に含まれている。
トランスポゾン（Ｔｎ）の付着部位とは、ドナーベクター内のトランスポゼース認識配列に挟まれた外来遺伝子（発現目的遺伝子）を、転位酵素トランスポゼースによりシャトルベクター内の標的部位に挿入させるための配列である。トランスポゾンの付着部位としては、Ｔｎ７の付着部位ｍｉｎｉ−ａｔｔＴｎ７、Ｔｎ３の付着部位およびＴｎ４の付着部位などが挙げられる。このトランスポゾン（Ｔｎ）の付着部位は、例えば、ｌａｃＺ遺伝子（例えば、ｌａｃＺα遺伝子）に含まれている。
この他、ベクターの構造の確認及び選別のために、種々のマーカー配列及び選択用配列等の補助配列を含んでもよい。外来遺伝子がシャトルベクター上に挿入されたことを確認するために利用されるマーカー配列としては、例えば、ＬａｃＺ遺伝子、ＧＦＰ遺伝子、薬剤耐性遺伝子、ルシフェラーゼ遺伝子等を挙げることができる。目的とする構造のベクターを選択するための選択用配列としては、薬剤耐性遺伝子、例えば、カナマイシン耐性遺伝子やアンピシリン耐性遺伝子などを挙げることができる。これらの補助配列は、当業者により適宜選択することができる。
ｍｉｎｉＦレプリコン、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡ及びトランスポゾンの付着部位から構成されたＢｍＮＰＶシャトルベクターの基本骨格は、公知の方法で作製することができ、例えば特開２００４−１７３５０７号公報や、Biochemical and Biophysica Research Communications 326 (2005) 564-9569などに記載されている。
本発明におけるヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列は、ヒト由来であってプロレニンと結合してレニン活性を発現するタンパク質をコードするものであればよいが、プロレニンとの結合活性の観点から、下記表１に示す配列番号１または配列番号２で表されるポリヌクレオチド配列であることが好ましい。
配列番号１で表されるポリヌクレオチド配列は、膜貫通領域を含まないヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列であり、配列番号２で表されるポリヌクレオチド配列は、膜貫通領域含むヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列である。配列番号２で表されるポリヌクレオチド配列から、膜貫通領域を欠損させたポリヌクレオチド配列が、配列番号１で表されるポリヌクレオチド配列に該当する。
本発明においては、ヒト由来プロレニン受容体の回収効率を向上させることができる点で、膜貫通領域を含まないヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列であることが好ましく、配列番号１で表されるポリヌクレオチド配列を用いることがより好ましい。
配列番号１で表されるポリヌクレオチド配列は、膜貫通領域を含まないヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列であり、配列番号２で表されるポリヌクレオチド配列は、膜貫通領域含むヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列である。配列番号２で表されるポリヌクレオチド配列から、膜貫通領域を欠損させたポリヌクレオチド配列が、配列番号１で表されるポリヌクレオチド配列に該当する。
本発明においては、ヒト由来プロレニン受容体の回収効率を向上させることができる点で、膜貫通領域を含まないヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列であることが好ましく、配列番号１で表されるポリヌクレオチド配列を用いることがより好ましい。
ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチドは、例えば、ヒト由来のｃＤＮＡライブラリ（例えば、ＡＦ２９１８１４）から取得することができる。また、プラスミドｐｃＤＮＡ３−ＦＬＡＧ−ｈＲＲｃを鋳型として下記表２に示すＰＣＲプライマーセット（配列番号３、４、５）を用いてＰＣＲによって取得することができる。例えば、配列番号３と配列番号４で表されるＰＣＲプライマーセットを用いることで、膜貫通領域を含むヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列を取得することができ、また、配列番号３と配列番号５で表されるＰＣＲプライマーセットを用いることで、膜貫通領域を含まないヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列を取得することができる。
本発明におけるＢｍＮＰＶシャトルベクターは、ｍｉｎｉＦレプリコン、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡ及びトランスポゾンの付着部位から構成されたＢｍＮＰＶシャトルベクターの基本骨格に対して、ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチドを含む挿入フラグメントを相同組換えして得ることができる。
前記挿入フラグメントは、前記ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチドを含んでいればよいが、昆虫由来の分泌シグナル配列を更に含んでいることが好ましい。これにより目的とするヒト由来プロレニン受容体をカイコ細胞外に分泌させることができる。
昆虫由来の分泌シグナル配列としては、公知の分泌シグナル配列を適宜選択して用いることができるが、分泌効率の観点から、下記表３に示すカイコ脳神経ペプチドホルモンＢｏｍｂｙｘｉｎ由来の分泌シグナル配列ｂｘ（例えば、配列番号５）、またはフェノール酸化酵素由来の分泌シグナル配列ｐｐａｅ（例えば、配列番号６）のいずれかであることが好ましく、分泌シグナル配列ｂｘであることがより好ましい。
昆虫由来の分泌シグナル配列としては、公知の分泌シグナル配列を適宜選択して用いることができるが、分泌効率の観点から、下記表３に示すカイコ脳神経ペプチドホルモンＢｏｍｂｙｘｉｎ由来の分泌シグナル配列ｂｘ（例えば、配列番号５）、またはフェノール酸化酵素由来の分泌シグナル配列ｐｐａｅ（例えば、配列番号６）のいずれかであることが好ましく、分泌シグナル配列ｂｘであることがより好ましい。
また、前記挿入フラグメントは、精製用タグ、マーカー及びエンテロキナーゼ認識部位から選ばれる精製用ペプチドをコードするポリヌクレオチド配列の少なくとも１種を、更に含むことが好ましい。これにより、目的とするヒト由来プロレニン受容体の精製が容易になる。
精製用タグとしては、公知のものを特に制限なく用いることができる。例えば、Ｆｌａｇタグ、Ｈｉｓタグ、Ｓタグ、Ｔｒｘタグ、ＣＢＤタグ、ＨＳＶタグ等を挙げることができ、回収率が高いことから、ＦｌａｇタグまたはＨｉｓタグが好ましい。
本発明においては、２種以上のタグを組合せて用いることもできる。これにより、発現したタンパク質の検出や同定がより容易になる。タグの組合せには、特に制限はないが、ＦｌａｇタグとＨｉｓタグを組合せて用いることが好ましい。
本発明においては、２種以上のタグを組合せて用いることもできる。これにより、発現したタンパク質の検出や同定がより容易になる。タグの組合せには、特に制限はないが、ＦｌａｇタグとＨｉｓタグを組合せて用いることが好ましい。
マーカーをコードするポリヌクレオチド配列としては、例えば、ＬａｃＺ遺伝子、ＧＦＰ遺伝子、ＧＦＰｕｖ遺伝子、薬剤耐性遺伝子、ルシフェラーゼ遺伝子等を挙げることができる。本発明においては、ヒト由来プロレニン受容体の発現を容易に検出できることから、ＧＦＰ遺伝子又はＧＦＰｕｖ遺伝子を用いることが好ましく、ＧＦＰｕｖ（特に緑色蛍光が強いタンパク質）の遺伝子を用いることがより好ましい。
前記挿入フラグメントは、エンテロキナーゼ認識部位（ＥＫ−ｓｉｔｅ）をコードするポリヌクレオチド配列を更に含んでいることが好ましい。これにより発現したタンパク質からヒト由来プロレニン受容体を切断して取り出すことが容易になる。
上記分泌シグナル配列、精製用ペプチドをコードするポリヌクレオチド配列は、当業界で既知の手法をそのまま用いることで、ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列に連結することができる。これにより、分泌シグナルペプチドと精製用ペプチドとヒト由来プロレニン受容体との融合タンパク質を製造することができる。
本発明において前記挿入フラグメントは、トランスポゾン（Ｔｎ）の両末端の配列を有するドナープラスミドに組み込み、λリコンビネーション系を用いた相同組換えによって、ｍｉｎｉＦレプリコン、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡ及びトランスポゾンの付着部位から構成されたＢｍＮＰＶシャトルベクターの基本骨格に組換えることが好ましい。これにより、本発明に用いるＢｍＮＰＶシャトルベクターを効率よく作製することができる。
本発明において利用されるλリコンビネーション系とは、Murphyの文献（J. Bacteriology, (1998) p.2063-2071）に記載されているものである。
このλリコンビネーション系とは、λバクテリオファージで機能するリコンビネーション系であり、大腸菌内で作用することが知られている。これは、ｇａｍ、ｂｅｔ、ｅｘｏで構成されており、Ｇａｍは、宿主のＲｅｃＢＣＤとエクソヌクレアーゼＶを阻害し、Ｂｅｔ及びＥｘｏがＤＮＡ末端に接近することができ、これら両者が相互作用することによって効率的な相同組換えが促進される。
Ｇａｍ、Ｂｅｔ、Ｅｘｏを発現させるために発現ベクターを用いてもよい。ここで使用される発現ベクターは、大腸菌において機能可能な発現系を有するものであればよく、例えば、アラビノースオペロン制御下で発現するようにクローン化されたプラスミドが用いられる。このようなプラスミドとしては、一般に使用されているものであればよく、例えばｐＵＣ１８等を挙げることができる。
このλリコンビネーション系とは、λバクテリオファージで機能するリコンビネーション系であり、大腸菌内で作用することが知られている。これは、ｇａｍ、ｂｅｔ、ｅｘｏで構成されており、Ｇａｍは、宿主のＲｅｃＢＣＤとエクソヌクレアーゼＶを阻害し、Ｂｅｔ及びＥｘｏがＤＮＡ末端に接近することができ、これら両者が相互作用することによって効率的な相同組換えが促進される。
Ｇａｍ、Ｂｅｔ、Ｅｘｏを発現させるために発現ベクターを用いてもよい。ここで使用される発現ベクターは、大腸菌において機能可能な発現系を有するものであればよく、例えば、アラビノースオペロン制御下で発現するようにクローン化されたプラスミドが用いられる。このようなプラスミドとしては、一般に使用されているものであればよく、例えばｐＵＣ１８等を挙げることができる。
上記プラスミド（ヘルパープラスミドともいう）は、当業界では既知であり、主としてトランスポゼース遺伝子配列と選択マーカー配列とを有するものである。目的タンパク質を発現するＢｍＮＰＶシャトルベクター作成のために使用されるトランスポゼースは、使用されるトランスポゾンの種類に応じて適宜選択可能である。このようなヘルパープラスミドは、例えばインビトロジェン社から購入することができる。
λリコンビネーションは、λリコンビネーション系が作用可能な大腸菌（コンピテントセル）内において行われる。このような大腸菌としては、ＤＨ１０Ｂ、ＤＨ５αなどを挙げることができる。これらのコンピテントセルには、予めトランスポゼースを発現するヘルパープラスミドが組み込まれているので、前記ドナープラスミドとＢｍＮＰＶシャトルベクターとをコンピテントセル内で共存させることで、ＢｍＮＰＶシャトルベクターにドナープラスミドからヒト由来プロレニン受容体を含む挿入フラグメントを、相同組換えによって挿入することができる。
また、相同組換えによって得られたＢｍＮＰＶシャトルベクターは、上記コンピテントセル内で増殖させることができる。
また、相同組換えによって得られたＢｍＮＰＶシャトルベクターは、上記コンピテントセル内で増殖させることができる。
コンピテントセルへの各種核酸の導入には、通常用いられる手段をそのまま適用することができ、例えばエレクトロポレーションなどの電気的手法や、塩化カルシウム法などの薬剤を用いた化学的手法を挙げることができる。このうち、導入効率の観点から電気的手法であることが好ましい。
相同組換えは、バクミド及び挿入フラグメントを含む細胞を、λリコンビナーゼが作用可能な条件下に供することによって容易に実行することができる。このような条件は、通常の酵素活性化条件でよく、例えば３７℃の温度で、１時間程度で行うことができる。
相同組換えは、バクミド及び挿入フラグメントを含む細胞を、λリコンビナーゼが作用可能な条件下に供することによって容易に実行することができる。このような条件は、通常の酵素活性化条件でよく、例えば３７℃の温度で、１時間程度で行うことができる。
本発明におけるＢｍＮＰＶシャトルベクターは、ウイルス由来のプロテアーゼ遺伝子の少なくとも１種を欠損していることが好ましい。これにより目的とするヒト由来プロレニン受容体をより効率よく生産することができる。前記ウイルス由来のプロテアーゼ遺伝子はＢｍＮＰＶ ＤＮＡ上に存在するプロテアーゼ遺伝子であることが好ましく、システインプロテアーゼ遺伝子であることがより好ましい。
このシステインプロテアーゼ遺伝子とは、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡ上に存在すると共に製造するタンパク質の分解及び組織等の液化を生じさせる原因プロテアーゼをコードする遺伝子を意味する。
このシステインプロテアーゼ遺伝子とは、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡ上に存在すると共に製造するタンパク質の分解及び組織等の液化を生じさせる原因プロテアーゼをコードする遺伝子を意味する。
ＢｍＮＰＶ ＤＮＡ上には、カテプシンＬに類似した特徴を有するプロテアーゼ遺伝子（v-cath）をコードするアミノ酸配列と相同性を有するシステインプロテアーゼの遺伝子がコードされている。ＢｍＮＰＶにおけるシステインプロテアーゼ遺伝子は、システインプロテアーゼのパパインファミリーの活性部位がよく保存されており、システインプロテアーゼ阻害剤のＥ６４によって阻害される。本発明において欠損の対象となるシステインプロテアーゼ遺伝子には、v-cathと相同性のある遺伝子、好ましくは９０％以上の相同性を有する遺伝子、更に好ましくは９６．３％の相同性を有する遺伝子（配列番号８）が該当する。
本発明において欠損の対象となるシステインプロテアーゼ遺伝子は、機能的に有効な酵素としてのシステインプロテアーゼを生成しないように欠損されていればよく、全長が欠損していてもよい。
本発明において欠損の対象となるシステインプロテアーゼ遺伝子は、機能的に有効な酵素としてのシステインプロテアーゼを生成しないように欠損されていればよく、全長が欠損していてもよい。
本発明において、ウイルス由来のプロテアーゼ遺伝子を欠損させたＢｍＮＰＶシャトルベクターは、例えば、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡ上に存在するシステインプロテアーゼ遺伝子の上流及び下流と相同性を有する一対の相同配列、並びに該相同配列間に配置された挿入配列から構成されているノックアウト用挿入フラグメントを相同組換えによって、システインプロテアーゼ遺伝子と組換えることで作製することができる。
相同組換えは、例えば、上述したλリコンビネーション系を用いて好適に行うことができる。
相同組換えは、例えば、上述したλリコンビネーション系を用いて好適に行うことができる。
前記ノックアウト用挿入フラグメントに含まれる一対の相同配列は、上記システインプロテアーゼ遺伝子と相同組換えを起こさせるために、この遺伝子の両端側のそれぞれ所定の領域の配列と相同性を有する配列である。相同配列は、システインプロテアーゼ遺伝子の両側に配置されて相同組換え可能な程度の長さがあればよく、例えば３０〜２００ｂｐの範囲で変更することができる。組換え精度の観点からは、１００〜２００ｂｐが好ましく、経済的な観点からは３０〜５０ｂｐが好ましい。これら双方の観点を考慮すれば、好ましくは５０〜７５ｂｐ、さらに好ましくは３６〜５０ｂｐの長さにすることができる。
この相同配列は、システインプロテアーゼ遺伝子に対して完全に相同組換えを起こさせるために、システインプロテアーゼ遺伝子のコード領域よりも外側にそれぞれ配置されていることが好ましく、特に、上流側に配置された相同配列については、システインプロテアーゼ遺伝子のプロモータ領域よりも上流側に配置されていることが特に好ましい。これにより、プロモータ配列を含む広範囲にわたって、確実にシステインプロテアーゼ遺伝子を欠損させることができる。
この相同配列は、システインプロテアーゼ遺伝子に対して完全に相同組換えを起こさせるために、システインプロテアーゼ遺伝子のコード領域よりも外側にそれぞれ配置されていることが好ましく、特に、上流側に配置された相同配列については、システインプロテアーゼ遺伝子のプロモータ領域よりも上流側に配置されていることが特に好ましい。これにより、プロモータ配列を含む広範囲にわたって、確実にシステインプロテアーゼ遺伝子を欠損させることができる。
システインプロテアーゼ遺伝子との相同組換えが可能であれば、一対の相同配列の位置は、限定されないが、システインプロテアーゼ遺伝子の上流側の場合には、システインプロテアーゼ遺伝子の開始コドンの上流３５〜５０ｂｐの位置から開始されていることが好ましく、確実にシステインプロテアーゼ遺伝子の相同組換えを起こさせるためには、開始コドンの上流４０〜５０ｂｐの位置からの配列と相同であることが好ましい。一方、下流側の場合には、システインプロテアーゼ遺伝子の停止コドンの下流４０〜５０ｂｐの範囲、確実にシステインプロテアーゼ遺伝子の相同組換えを起こさせるためには、停止コドンの下流３５〜５０ｂｐの範囲に存在する配列と相同であればよい。
なお相同配列における「相同」とは、本明細書では、対象となる配列に対して少なくとも７０％以上、好ましくは９０％以上の相同性を有する配列をいう。
なお相同配列における「相同」とは、本明細書では、対象となる配列に対して少なくとも７０％以上、好ましくは９０％以上の相同性を有する配列をいう。
前記ノックアウト用挿入フラグメントは、挿入可能な長さのものであればよく、例えば、１１００〜１３００ｂｐ、好ましくは１１００〜１２００ｂｐとすることができる。
前記ノックアウト用挿入フラグメントは挿入配列を含むが、挿入配列としては、マーカーをコードするポリヌクレオチド配列であることが好ましい。これにより、ウイルス由来のプロテアーゼ遺伝子のノックアウトを容易に確認することができる。マーカーをコードするポリヌクレオチド配列としては、既述のものを特に制限なく用いることができるが、薬剤耐性遺伝子であることが好ましい。薬剤耐性遺伝子としては、例えば、ＣＡＴ遺伝子（クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ）を挙げることができる。
前記ノックアウト用挿入フラグメントは挿入配列を含むが、挿入配列としては、マーカーをコードするポリヌクレオチド配列であることが好ましい。これにより、ウイルス由来のプロテアーゼ遺伝子のノックアウトを容易に確認することができる。マーカーをコードするポリヌクレオチド配列としては、既述のものを特に制限なく用いることができるが、薬剤耐性遺伝子であることが好ましい。薬剤耐性遺伝子としては、例えば、ＣＡＴ遺伝子（クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ）を挙げることができる。
また、本発明におけるＢｍＮＰＶシャトルベクターは、ウイルス由来のキチナーゼ遺伝子の少なくとも１種を欠損していてもよい。これにより目的とするヒト由来プロレニン受容体をより効率よく製造することができる。
ここでキチナーゼ遺伝子とは、ウイルスのＤＮＡ上に存在すると共にカイコガの個体を構成するキチンを溶解する原因キチナーゼをコードする遺伝子をいう。
ここでキチナーゼ遺伝子とは、ウイルスのＤＮＡ上に存在すると共にカイコガの個体を構成するキチンを溶解する原因キチナーゼをコードする遺伝子をいう。
本発明において欠損の対象となるキチナーゼ遺伝子には、好ましくはＢｍＮＰＶキチナーゼ、更に好ましくは配列番号９で表されるものが該当する。
また、本発明において欠損の対象となるキチナーゼ遺伝子は、機能的に有効な酵素としてのキチナーゼを生成しないように欠損されていればよく、全長が欠損していてもよい。
キチナーゼを欠損させる方法については、既述のシステインプロテーゼ遺伝子の欠損方法を適宜変更して適用することができる。
また、本発明において欠損の対象となるキチナーゼ遺伝子は、機能的に有効な酵素としてのキチナーゼを生成しないように欠損されていればよく、全長が欠損していてもよい。
キチナーゼを欠損させる方法については、既述のシステインプロテーゼ遺伝子の欠損方法を適宜変更して適用することができる。
上述の方法によって得られたＢｍＮＰＶシャトルベクターを用いて、所望のヒト由来プロレニン受容体を大量に効率よく生成することができる。
本発明においては、上記ＢｍＮＰＶシャトルベクター（目的タンパク質発現バクミド）を、カイコガ由来の細胞に導入する工程を含むことを特徴としている。
本発明においては、上記ＢｍＮＰＶシャトルベクター（目的タンパク質発現バクミド）を、カイコガ由来の細胞に導入する工程を含むことを特徴としている。
上記ＢｍＮＰＶシャトルベクターを導入（感染）するカイコガ由来の細胞としては、天然のカイコガの幼虫（カイコ）または蛹に含まれる細胞であればよく、カイコガの幼虫個体又は蛹個体であっても、カイコガの幼虫又は蛹から単離した細胞であってもよい。更に、カイコガの幼虫又は蛹から単離した細胞から確立した細胞株であってもよい。
本発明においては、ヒト由来プロレニン受容体を効率よく大量に生産できる点から、カイコガの幼虫個体もしくは蛹個体、または前記細胞株を用いることが好ましく、カイコガの幼虫個体又は蛹個体を用いることがより好ましく、カイコガの幼虫個体を用いることが更に好ましい。
本発明においては、カイコガの蛹を用いることもまた好ましい。蛹の組織はほとんど脂肪体で構成されており、カイコガ幼虫に比べて感染効率や目的タンパク質の発現効率が高く、また長期保存が可能である点で好ましい。その上、カイコガ由来のプロテアーゼやキチナーゼの発現が抑制された状態とすることができるので、より一層、効率よくヒト由来プロレニン受容体を得ることができる
本発明においては、カイコガの蛹を用いることもまた好ましい。蛹の組織はほとんど脂肪体で構成されており、カイコガ幼虫に比べて感染効率や目的タンパク質の発現効率が高く、また長期保存が可能である点で好ましい。その上、カイコガ由来のプロテアーゼやキチナーゼの発現が抑制された状態とすることができるので、より一層、効率よくヒト由来プロレニン受容体を得ることができる
カイコガの幼虫個体又は蛹個体としては、その品種は特に限定されず、公知の品種を好適に用いることができる。また、前記細胞株としては、例えば、Ｂｍ５、ＢｍＮ４等を挙げることができ、細胞の増殖の観点からＢｍ５であることが好ましい。
前記ＢｍＮＰＶシャトルベクターをカイコガ由来の細胞へ導入する方法としては、例えば、カイコガ幼虫個体（カイコ）への導入には、上記ＢｍＮＰＶシャトルベクターを含む溶液をカイコに直接接種してもよく、餌などに混ぜて摂取させてもよい。感染効率の観点からカイコへの直接接種することが好ましい。
また、カイコガ蛹個体への導入には、上記ＢｍＮＰＶシャトルベクターを含む溶液をカイコに直接接種することが好ましい。
更に前記ＢｍＮＰＶシャトルベクターをカイコガ由来の細胞に導入して得られたバキュロウイルスを、カイコガ幼虫個体又はカイコガ蛹個体に接種することもできる。
また、カイコガ蛹個体への導入には、上記ＢｍＮＰＶシャトルベクターを含む溶液をカイコに直接接種することが好ましい。
更に前記ＢｍＮＰＶシャトルベクターをカイコガ由来の細胞に導入して得られたバキュロウイルスを、カイコガ幼虫個体又はカイコガ蛹個体に接種することもできる。
本発明においては、カイコガ由来の細胞によって生成されたヒト由来プロレニン受容体を回収する回収工程を更に設けることが好ましい。
生成タンパク質の回収としては、カイコガ細胞、カイコガ幼虫個体の体液もしくは組織、またはカイコガ蛹の組織からの回収を挙げることができるが、実施が容易であることからカイコガ幼虫個体の体液もしくは組織、またはカイコガ蛹の組織からの回収が好ましい。
このような回収工程には、通常カイコ個体を用いた生成タンパク質の回収に用いられる手段であれば、いずれの方法も含むことができる。例えば、Ｈｉｓタグ及びＦｌａｇタグのようなタグや、発現タンパク質に対する抗体などを用いる方法や、イオン交換カラム及びアフィニティカラムなどによる精製方法など、公知の手段を用いることができる。
生成タンパク質の回収としては、カイコガ細胞、カイコガ幼虫個体の体液もしくは組織、またはカイコガ蛹の組織からの回収を挙げることができるが、実施が容易であることからカイコガ幼虫個体の体液もしくは組織、またはカイコガ蛹の組織からの回収が好ましい。
このような回収工程には、通常カイコ個体を用いた生成タンパク質の回収に用いられる手段であれば、いずれの方法も含むことができる。例えば、Ｈｉｓタグ及びＦｌａｇタグのようなタグや、発現タンパク質に対する抗体などを用いる方法や、イオン交換カラム及びアフィニティカラムなどによる精製方法など、公知の手段を用いることができる。
本発明のヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法は、本発明の製造法で製造されたヒト由来プロレニン受容体を用いて、ヒト由来プロレニン受容体との結合活性を測定する工程を含むことを特徴とする。本発明の製造方法により製造されたヒト由来プロレニン受容体を用いることで、種特異性の高い受容体阻害剤のスクリーニングを効率よく行うことができる。
ヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法としては、本発明の製造方法により製造されたヒト由来プロレニン受容体を用いること以外は、公知の方法をそのまま適用することができる。
ヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法としては、本発明の製造方法により製造されたヒト由来プロレニン受容体を用いること以外は、公知の方法をそのまま適用することができる。
ヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法としては、例えば以下の工程を含んでなることができる。
（ａ）１又は２以上の候補化合物と、本発明の製造方法で製造されたヒト由来プロレニン受容体とを接触させる接触工程、
（ｂ）前記接触工程後に、前記候補化合物とヒト由来プロレニン受容体との結合活性を測定する結合活性測定工程、
（ｃ）前記結合活性に基づいて、前記候補化合物からヒト由来プロレニン受容体阻害剤を選択する選択工程。
（ａ）１又は２以上の候補化合物と、本発明の製造方法で製造されたヒト由来プロレニン受容体とを接触させる接触工程、
（ｂ）前記接触工程後に、前記候補化合物とヒト由来プロレニン受容体との結合活性を測定する結合活性測定工程、
（ｃ）前記結合活性に基づいて、前記候補化合物からヒト由来プロレニン受容体阻害剤を選択する選択工程。
前記候補化合物は、天然由来の化合物（ヒト由来プロレニンを含む）、天然由来の化合物の誘導体、有機合成化合物等のいずれであってもよい。
また、結合活性の測定方法は、候補化合物とヒト由来プロレニン受容体との結合活性を測定できる方法であればいかなる方法も用いることができる。例えば、分光吸収の変化を用いる方法、蛍光性化合物を用いる方法、放射性化合物を用いる方法等を挙げることができる。
また、前記結合活性測定方法においては、候補化合物との接触に先立ってヒト由来プロレニン受容体にヒト由来プロレニンを結合させておいてもよい。
また、結合活性の測定方法は、候補化合物とヒト由来プロレニン受容体との結合活性を測定できる方法であればいかなる方法も用いることができる。例えば、分光吸収の変化を用いる方法、蛍光性化合物を用いる方法、放射性化合物を用いる方法等を挙げることができる。
また、前記結合活性測定方法においては、候補化合物との接触に先立ってヒト由来プロレニン受容体にヒト由来プロレニンを結合させておいてもよい。
本発明のスクリーニング方法により選択されるヒト由来プロレニン受容体阻害剤は、高い種特異性を有していることから、例えば、糖尿病性腎症の治療等に用いることができる。
本発明のプロレニン濃度の測定方法は、本発明の製造方法で製造されたヒト由来プロレニン受容体を用いてレニン活性を測定する工程を含むことを特徴とする。これにより、検体中のプロレニン濃度をより精度よく測定することができる。
レニン活性の測定方法としては、本発明の製造方法により製造されたヒト由来プロレニン受容体を用いること以外は、公知の方法をそのまま適用することができる。
レニン活性の測定方法としては、本発明の製造方法により製造されたヒト由来プロレニン受容体を用いること以外は、公知の方法をそのまま適用することができる。
本発明におけるプロレニン濃度の測定方法は、例えば以下の工程を含んでなることができる。
（ａ）検体と、本発明の製造方法で製造されたヒト由来プロレニン受容体とを接触させる接触工程、
（ｂ）前記接触工程後の検体のレニン活性を測定する測定工程、
（ｃ）前記測定工程で得られたレニン活性の測定値からプロレニン濃度を算出する工程。
（ａ）検体と、本発明の製造方法で製造されたヒト由来プロレニン受容体とを接触させる接触工程、
（ｂ）前記接触工程後の検体のレニン活性を測定する測定工程、
（ｃ）前記測定工程で得られたレニン活性の測定値からプロレニン濃度を算出する工程。
本発明のプロレニン濃度の測定方法は、例えば、血液中のプロレニン濃度の測定や、血中プロレニン濃度を測定することを特徴とする糖尿病及び／又はその合併症の診断に適用することができる。
本発明の抗ヒト由来プロレニン受容体抗体は、本発明のヒト由来プロレニン受容体の製造法によって製造されたヒト由来プロレニン受容体と特異的に結合することを特徴とする。これにより、特異性のより高い抗ヒト由来プロレニン受容体抗体を得ることが容易になる。
前記抗体を得る方法としては、公知の方法を特に制限なく用いることができる。
前記抗体を得る方法としては、公知の方法を特に制限なく用いることができる。
本発明の、抗ヒト由来プロレニン受容体抗体は、例えば、ヒト由来プロレニン受容体の検出や精製、ヒト由来プロレニン受容体の活性測定等に用いることができる。
以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。また、実施例中の％は特記しない限り、質量基準である。尚、市販のキットを使用した場合には、特記しない限り添付の取り扱い説明書にしたがって操作を行った。
（参考例）
＜システインプロテアーゼ欠損ＢｍＮＰＶシャトルベクターの構築＞
以下に示すように、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡゲノム上にコードされるシステインプロテアーゼ遺伝子の５’上流のプロモータ領域から３’下流域の全部をλリコンビナーゼによって欠損させた。
［１］プラスミドのクローニング
温度感受性レプリコンをもつと共にリコンビナーゼを発現するｐＫＤ４６（図１参照：エール大学（米）のMary K.B. Berlyn 博士から供与）を含む大腸菌を、アンピシリンＬＢ培地中で３０℃一晩培養して、ｐＫＤ４６をクローニングした。またテンプレートプラスミドであるｐＫＤ３（図１参照：エール大学（米）のMary K.B. Berlyn 博士から供与）を含む大腸菌を、アンピシリンＬＢ培地中で３７℃一晩培養し、ｐＫＤ３をクローニングした。
＜システインプロテアーゼ欠損ＢｍＮＰＶシャトルベクターの構築＞
以下に示すように、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡゲノム上にコードされるシステインプロテアーゼ遺伝子の５’上流のプロモータ領域から３’下流域の全部をλリコンビナーゼによって欠損させた。
［１］プラスミドのクローニング
温度感受性レプリコンをもつと共にリコンビナーゼを発現するｐＫＤ４６（図１参照：エール大学（米）のMary K.B. Berlyn 博士から供与）を含む大腸菌を、アンピシリンＬＢ培地中で３０℃一晩培養して、ｐＫＤ４６をクローニングした。またテンプレートプラスミドであるｐＫＤ３（図１参照：エール大学（米）のMary K.B. Berlyn 博士から供与）を含む大腸菌を、アンピシリンＬＢ培地中で３７℃一晩培養し、ｐＫＤ３をクローニングした。
［２］システインプロテアーゼ遺伝子欠損用フラグメントの作製
ｐＫＤ３と、下記表４に示すプライマーセットＢｍ９８７５８Ｆｃａｔ（配列番号１０）−Ｂｍ９９６８７Ｒｃａｔ（配列番号１１）とを用いてＰＣＲを行い、システインプロテアーゼ遺伝子欠損用フラグメントＣＰＤｃａｔを作製した（１．１ｋｂｐ）。ＰＣＲ条件は、ＫＯＤポリメラーゼ（ＴＯＹＯＢＯ社製）を利用し、９４℃３０秒、６０℃３０秒、７４℃４５秒を合計２８サイクル行った。ＣＰＤｃａｔフラグメントは、システインプロテアーゼ遺伝子の上流域５０ｂｐと下流域５０ｂｐの間にＣＡＴ遺伝子（クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ）がカセットされているフラグメントである。
ｐＫＤ３と、下記表４に示すプライマーセットＢｍ９８７５８Ｆｃａｔ（配列番号１０）−Ｂｍ９９６８７Ｒｃａｔ（配列番号１１）とを用いてＰＣＲを行い、システインプロテアーゼ遺伝子欠損用フラグメントＣＰＤｃａｔを作製した（１．１ｋｂｐ）。ＰＣＲ条件は、ＫＯＤポリメラーゼ（ＴＯＹＯＢＯ社製）を利用し、９４℃３０秒、６０℃３０秒、７４℃４５秒を合計２８サイクル行った。ＣＰＤｃａｔフラグメントは、システインプロテアーゼ遺伝子の上流域５０ｂｐと下流域５０ｂｐの間にＣＡＴ遺伝子（クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ）がカセットされているフラグメントである。
ＰＣＲ溶液の一部についてアガロースゲル電気泳動を行い、１．１ｋｂｐのフラグメントを確認した後、そのまま溶液をフェノール／クロロホルム抽出で精製し、微量に混入しているｐＫＤ３を除去するためにＤｐｎＩで制限酵素消化した。酵素消化後のＰＣＲ溶液全量をゲル精製し、純粋なＣＰＤｃａｔフラグメントを得た。
［３］ＢｍＮＰＶシャトルベクターのシステインプロテアーゼ欠損変異体の構築
特開２００４−１７３５０７公報を参考にして作製したＢｍＮＰＶシャトルベクターを含むＤＨ１０Ｂ（ＴＭ）コンピテントセル（Invitrogen社製）にRed recombinase plasmid ｐＫＤ４６をトランスフォーメーションし、Ｋａｎ／Ａｍｐ ＬＢプレート（カナマイシン、アンピシリン：各５０μｇ／ｍＬ）上で３０℃一晩培養した。生育したコロニーのうちＢｍＮＰＶシャトルベクターとｐＫＤ４６が含まれているものを選択し、０．２％−アラビノース存在下のＳＯＢ培地（カナマイシン、アンピシリン：各５０μｇ／ｍＬ）で再度３０℃一晩培養した培養液（Ｄ610の値が０．５〜０．６）に氷冷１０％グリセロールを加えて、エレクトロポレーション用のコンピテントセルを作製した。
特開２００４−１７３５０７公報を参考にして作製したＢｍＮＰＶシャトルベクターを含むＤＨ１０Ｂ（ＴＭ）コンピテントセル（Invitrogen社製）にRed recombinase plasmid ｐＫＤ４６をトランスフォーメーションし、Ｋａｎ／Ａｍｐ ＬＢプレート（カナマイシン、アンピシリン：各５０μｇ／ｍＬ）上で３０℃一晩培養した。生育したコロニーのうちＢｍＮＰＶシャトルベクターとｐＫＤ４６が含まれているものを選択し、０．２％−アラビノース存在下のＳＯＢ培地（カナマイシン、アンピシリン：各５０μｇ／ｍＬ）で再度３０℃一晩培養した培養液（Ｄ610の値が０．５〜０．６）に氷冷１０％グリセロールを加えて、エレクトロポレーション用のコンピテントセルを作製した。
作製したコンピテントセル５０μＬに５００ｎｇの精製ＣＰＤｃａｔフラグメントを常法に従ってヒートショックによってトランスフォーメーションし、５００μＬのＳＯＣを添加後に３７℃１時間培養した。前記コンピテントセルはλｒｅｄリコンビナーゼをコードするｐＫＤ４６を含んでいるので、アラビノースによって３種類のλリコンビナーゼ、ｇａｍ，ｂｅｔ，ｅｘｏが誘導される。Ｇａｍは相同組換えを阻害する宿主大腸菌のｒｅｃＢＣＤ遺伝子産物であるエキソヌクレアーゼＶを阻害するが、ＢｅｔとＥｘｏはＤＮＡ末端に接近して相同組換えを促進する。培養液をＣｍ／Ｋａｎ ＬＢプレート一枚に付き２５０μＬでプレーティング後、３７℃一晩培養した。ｐＫＤ４６プラスミドは温度感受性レプリコンをコードしているため、このときに自動的に除去される。形成されたコロニーを拾い、ＢｍＮＰＶシャトルベクターのシステインプロテアーゼ欠損変異体＝ＢｍＮＰＶ（ＣＰＤ）シャトルベクターを含む大腸菌を単離した。
（実施例１）
＜融合遺伝子の構築＞
ｐｃＤＮＡ３−ＦＬＡＧ−ｈＲＲｃ（配列番号１２）を鋳型とし、下記表５に示すプライマーセット（配列番号３及び５）と、ＫＯＤ ＰＬＵＳポリメラーゼ（ＴＯＹＯＢＯ社製）を用いて、９４℃１５秒、４８℃３０秒、６８℃６０秒の合計３５サイクルのＰＣＲを行った。
＜融合遺伝子の構築＞
ｐｃＤＮＡ３−ＦＬＡＧ−ｈＲＲｃ（配列番号１２）を鋳型とし、下記表５に示すプライマーセット（配列番号３及び５）と、ＫＯＤ ＰＬＵＳポリメラーゼ（ＴＯＹＯＢＯ社製）を用いて、９４℃１５秒、４８℃３０秒、６８℃６０秒の合計３５サイクルのＰＣＲを行った。
これにより、５’側にＰｓｔＩサイトと３’側にＥｃｏＲＩサイトとを付加し、膜貫通領域を削除したｈＲＲｃ−ｎｏＴＭ遺伝子を９０５ｂｐのポリヌクレチド（配列番号１３、表６）として得た。
次いで、ｐＢｌｕｅＢａｃＨｉｓ２（ｐＢＨ、Invitrogen社製）にＧＦＰｕｖ遺伝子を挿入したｐＢｌｕｅＢａｃＨｉｓ２／ＧＦＰｕｖ遺伝子と前記ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭ遺伝子とをそれぞれＰｓｔＩとＥｃｏＲＩで消化し、アガロースゲル電気泳動後、ゲルからバンドを切り出し精製した。ｐＢｌｕｅＢａｃＨｉｓ２／ＧＦＰｕｖ遺伝子とｈＲＲｃ−ｎｏＴＭ遺伝子について、ＤＮＡ Ｌｉｇａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＴＫＲ社製）を用いてライゲーションを行った。構築したプラスミドをｐＢＨ／ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭとし、これを用いてＥ.ＣｏｌｉＤＨ５αを形質転換後、ＬＢ培地（Ａｍｐ＋）を用いて３７℃で、一昼夜培養した。培養液から通常のアルカリ法によりプラスミドを抽出した。抽出した２つのプラスミドをＰｓｔＩとＥｃｏＲＩで消化し、アガロースゲル電気泳動を行って構築を確認した。
尚、ｐＢＨのマルチクローニングサイトの上流には６ｘヒスチジンタグ（Ｈｉｓタグ）、エンテロキナーゼ認識部位（ＥＫ−ｓｉｔｅ）の配列が存在する。
尚、ｐＢＨのマルチクローニングサイトの上流には６ｘヒスチジンタグ（Ｈｉｓタグ）、エンテロキナーゼ認識部位（ＥＫ−ｓｉｔｅ）の配列が存在する。
上記により構築したｐＢＨ／ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭを鋳型とし、５’側に塩基配列ＣＡＣＣとカイコ脳神経ペプチドホルモンＢｏｍｂｙｘｉｎ由来のシグナル配列遺伝子ｂｘとをコードするフォワ−ドプライマー（配列番号１４）とｐＢＨ／ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭ遺伝子のリバースプライマー（配列番号５）を用いてＰＣＲを行った。使用したＰＣＲプライマーセットの配列を下記表７に示す。またＰＣＲは、ＫＯＤ ＰＬＵＳポリメラーゼ（ＴＯＹＯＢＯ社製）を用いて、９５℃３０秒、４７℃４０秒、６８℃１５０秒の合計３５サイクルで行った
これによりｂｘシグナル配列を付加した融合タンパク質遺伝子ｂｘ‐ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭを構築した。アガロースゲル電気泳動にて構築を確認し、電気泳動後のゲルからバンドを切り出して、ｂｘ‐ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭ遺伝子を得た。
これによりｂｘシグナル配列を付加した融合タンパク質遺伝子ｂｘ‐ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭを構築した。アガロースゲル電気泳動にて構築を確認し、電気泳動後のゲルからバンドを切り出して、ｂｘ‐ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭ遺伝子を得た。
＜ＢｍＮＰＶシャトルベクターの製造＞
上記により得られたｂｘ‐ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭ遺伝子を、ｐＥＮＴＲ（ＴＭ）／Ｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ ＴＯＰＯ（Ｒ） Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔ（Invitrogen社製）を用いて、ＴＯＰＯ ｅｎｔｒｙ ｖｅｃｔｏｒ ｐＥＮＴＲ／Ｄ−ＴＯＰＯ（Ｒ）にクローニングした。構築したプラスミドをｐＥＮＴＲ／Ｄ／ｂｘ‐ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭとし、これらを用いてＥ.ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換させ、カナマイシン耐性の形質転換体を得た。形質転換体をカナマイシン存在下で培養し、アルカリ法によりプラスミドを抽出した。抽出したプラスミドをエントリーベクターとして用いることとした。
上記により得られたｂｘ‐ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭ遺伝子を、ｐＥＮＴＲ（ＴＭ）／Ｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ ＴＯＰＯ（Ｒ） Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔ（Invitrogen社製）を用いて、ＴＯＰＯ ｅｎｔｒｙ ｖｅｃｔｏｒ ｐＥＮＴＲ／Ｄ−ＴＯＰＯ（Ｒ）にクローニングした。構築したプラスミドをｐＥＮＴＲ／Ｄ／ｂｘ‐ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭとし、これらを用いてＥ.ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換させ、カナマイシン耐性の形質転換体を得た。形質転換体をカナマイシン存在下で培養し、アルカリ法によりプラスミドを抽出した。抽出したプラスミドをエントリーベクターとして用いることとした。
上記により構築したｅｎｔｒｙ ｖｅｃｔｏｒを用いて、Baculovirus Expression System with Gateway(R) Technology（Invitrogen社製）により、デスティネーションベクターであるｐＤＥＳＴ（ＴＭ）８に目的遺伝子をクローニングした。構築したプラスミドをｐＤＥＳＴ８／Ｄ／ｂｘ‐ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲＣ−ｎｏＴＭとし、これらを用いてＥ.ｃｏｌｉ ＤＨ５αを形質転換させた。形質転換体からアルカリ法によりプラスミドｐＤＥＳＴ８／Ｄ／ｂｘ‐ＧＦＰｕｖ-ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭを抽出した。
参考例のようにして構築したＢｍＮＰＶ（ＣＰＤ）シャトルベクターを含むＥ．ＣｏｌｉＤＨ１０Ｂを、上記により構築したプラスミドｐＤＥＳＴ８／Ｄ／ｂｘ‐ＧＦＰｕｖ-ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭを用いて、Ｂａｃ−Ｔｏ−Ｂａｃ（Ｒ） Ｓｙｓｔｅｍ（Invitrogen社製）により形質転換させ、白コロニーを形成したＢｍＮＰＶ（ＣＰＤ）シャトルベクターを含む形質転換大腸菌を得た。形質転換体からアルカリ法によってＢｍＮＰＶ（ＣＰＤ）シャトルベクター（バクミドＤＮＡ）を抽出した。
＜カイコを用いたヒト由来プロレニン受容体の製造＞
１．注射用バクミドの作製
５００ｍＬフラスコに、ＬＢ培地５０ｍＬと、カナマイシン５０μｇ／ｍＬと、ジェンタマイシン７μｇ／ｍＬと、テトラサイクリン１０μｇ／ｍＬとを添加し、３７℃、２００ｒｐｍの条件で、プレートから植菌した形質転換大腸菌を１昼夜培養した。培養終了後、培養液を４℃、９０００ｒｐｍの条件で１０分遠心した後、上清を除去し、菌体を得た。この菌体から、アルカリＳＤＳ法を用い、バクミドＤＮＡを抽出した。抽出したバクミドＤＮＡに５００μＬのミリＱ水を加え、ペレットを溶解した。この溶液をフェノール処理およびエタノール沈殿を行い、バクミドＤＮＡを精製した。その後、精製したバクミドＤＮＡに２００μＬのＰＢＳ（−）を加えて溶解した。得られたバクミドＤＮＡをカイコへの注射に用いることとし、４℃で保存した。
１．注射用バクミドの作製
５００ｍＬフラスコに、ＬＢ培地５０ｍＬと、カナマイシン５０μｇ／ｍＬと、ジェンタマイシン７μｇ／ｍＬと、テトラサイクリン１０μｇ／ｍＬとを添加し、３７℃、２００ｒｐｍの条件で、プレートから植菌した形質転換大腸菌を１昼夜培養した。培養終了後、培養液を４℃、９０００ｒｐｍの条件で１０分遠心した後、上清を除去し、菌体を得た。この菌体から、アルカリＳＤＳ法を用い、バクミドＤＮＡを抽出した。抽出したバクミドＤＮＡに５００μＬのミリＱ水を加え、ペレットを溶解した。この溶液をフェノール処理およびエタノール沈殿を行い、バクミドＤＮＡを精製した。その後、精製したバクミドＤＮＡに２００μＬのＰＢＳ（−）を加えて溶解した。得られたバクミドＤＮＡをカイコへの注射に用いることとし、４℃で保存した。
２．カイコへの注射
ＰＢＳ（−）を加えて、２８０ｎｇ／μＬになるようにバクミドＤＮＡ溶液を希釈した。バクミドＤＮＡ溶液４５μＬとＤＭＲＩＥ−Ｃ５μＬとを混合し、室温で４５分間インキュベートをした。この混合液４０μＬを、シリンジを用いて、1匹の５齢のカイコ幼虫に注射した。毎日カイコにＵＶ照射を行い観察したところ、５日目にＧＦＰｕｖの蛍光が観察された。ＧＦＰｕｖの蛍光が検出されたカイコから体液を回収した。回収は、氷上のチューブにカイコの体液０．８ｍＬを滴下することで行った。その際1‐フェニル−２−チオウレアを５ｍＭになるようにチューブに添加した。得られた体液は分注し−８０℃で保存した。
以上のようして膜貫通領域を含まないヒト由来プロレニン受容体を作製した。
ＰＢＳ（−）を加えて、２８０ｎｇ／μＬになるようにバクミドＤＮＡ溶液を希釈した。バクミドＤＮＡ溶液４５μＬとＤＭＲＩＥ−Ｃ５μＬとを混合し、室温で４５分間インキュベートをした。この混合液４０μＬを、シリンジを用いて、1匹の５齢のカイコ幼虫に注射した。毎日カイコにＵＶ照射を行い観察したところ、５日目にＧＦＰｕｖの蛍光が観察された。ＧＦＰｕｖの蛍光が検出されたカイコから体液を回収した。回収は、氷上のチューブにカイコの体液０．８ｍＬを滴下することで行った。その際1‐フェニル−２−チオウレアを５ｍＭになるようにチューブに添加した。得られた体液は分注し−８０℃で保存した。
以上のようして膜貫通領域を含まないヒト由来プロレニン受容体を作製した。
（実施例２）
実施例１の＜融合遺伝子の構築＞において、ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭ遺伝子の代わりに、下記表８に示すプライマーセット（配列番号３、４）を用いて作製した膜貫通領域を含むｈＲＲｃ−ｗＴＭ遺伝子（表９、配列番号１５、１０４６ｂｐ）を用いて、実施例１と同様にしてｐＢＨ／ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｗＴＭを構築した。
実施例１の＜融合遺伝子の構築＞において、ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭ遺伝子の代わりに、下記表８に示すプライマーセット（配列番号３、４）を用いて作製した膜貫通領域を含むｈＲＲｃ−ｗＴＭ遺伝子（表９、配列番号１５、１０４６ｂｐ）を用いて、実施例１と同様にしてｐＢＨ／ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｗＴＭを構築した。
次いで、下記表１０に示すＰＣＲプライマーセット（配列番号１４、４）を用いて、実施例１と同様にして、ｂｘシグナル配列を付加した融合タンパク質遺伝子ｂｘ−ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｗＴＭを構築した。実施例１における融合タンパク質遺伝子ｂｘ−ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｎｏＴＭの代わりに、融合タンパク質遺伝子ｂｘ−ＧＦＰｕｖ−ｈＲＲｃ−ｗＴＭを用いた以外は実施例１と同様にして膜貫通領域を含むヒト由来プロレニン受容体を作製した。
＜ヒト由来プロレニン受容体の発現確認＞
カイコ体液中におけるヒト由来プロレニン受容体の発現を、以下の手順によりウエスタンブロッティング法で確認した。
カイコの体液中のタンパク質量をプロテインアッセイ（Bio-Rad社製、Bradford法）で測定した後、５０ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ７．６）を用いて各サンプルが同じタンパク質量、同じ体積になるように調製し、５倍濃縮サンプルバッファーを加え、１０分間煮沸した。これをウエスタンブロッティングのサンプルとした。このサンプルについて電気泳動を行った後、トランスブロットＳＤセル（Bio-Rad社製）を用い、Ｈｙｂｏｎｄ-Ｐ膜（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス（株）製、ＰＶＤＦ膜）へのタンパク質の転写を、Ｔｏｗｂｉｎの転写バッファー（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ、１９２ｍＭ グリシン、２０％メタノール、ｐＨ８．３）を用いて、１５Ｖの定電圧で１時間行った。転写後、５％のスキムミルクを含むＴＢＳＴ（０．０５％ Ｔｗｅｅｎ（Ｒ）-２０を含むＴＢＳ）中で、１時間室温でブロッキングを行った。ＴＢＳＴで洗浄後、一次抗体としてＡｎｔｉ-Ｆｌａｇ抗体（ＳＩＧＭＡ社製)を用い、ＴＢＳＴで２１５０００倍希釈した溶液中で、室温で１時間穏やかに攪拌した。次いでＴＢＳＴで洗浄後、二次抗体として、Peroxidase labeled Anti-mouse抗体（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス（株）製）を用い、ＴＢＳＴで２００００倍希釈した溶液中で、室温で１時間穏やかに攪拌して、二次抗体のラベルを行った。再び、ＴＢＳＴで洗浄後、ECL Plus Western blotting detection reagents （ＧＥヘルスケアバイオサイエンス（株）製）のＡ液（ECL Plus substrate solution containing Tris buffer）とＢ液（Stock Acidan solution in dioxane and ethanol）を４０:１の割合で混合したものを、タンパク質を転写したＨｙｂｏｎｄ−Ｐ膜に添加し、５分間遮光して反応させた後、Ｆｌｕｏｒ-Ｓ/ＭＡＸ マルチイメージャー（Bio-Rad社製）を用いて検出した。尚、マーカーにはMagicMark XP Western Protein Standards(Invitrogen)を用いた。
一次抗体としてＡｎｔｉ-Ｈｉｓ抗体（ＳＩＧＭＡ社製)を用いた以外は、上記と同様にしてウエスタンブロッティングを行った。
カイコ体液中におけるヒト由来プロレニン受容体の発現を、以下の手順によりウエスタンブロッティング法で確認した。
カイコの体液中のタンパク質量をプロテインアッセイ（Bio-Rad社製、Bradford法）で測定した後、５０ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ７．６）を用いて各サンプルが同じタンパク質量、同じ体積になるように調製し、５倍濃縮サンプルバッファーを加え、１０分間煮沸した。これをウエスタンブロッティングのサンプルとした。このサンプルについて電気泳動を行った後、トランスブロットＳＤセル（Bio-Rad社製）を用い、Ｈｙｂｏｎｄ-Ｐ膜（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス（株）製、ＰＶＤＦ膜）へのタンパク質の転写を、Ｔｏｗｂｉｎの転写バッファー（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ、１９２ｍＭ グリシン、２０％メタノール、ｐＨ８．３）を用いて、１５Ｖの定電圧で１時間行った。転写後、５％のスキムミルクを含むＴＢＳＴ（０．０５％ Ｔｗｅｅｎ（Ｒ）-２０を含むＴＢＳ）中で、１時間室温でブロッキングを行った。ＴＢＳＴで洗浄後、一次抗体としてＡｎｔｉ-Ｆｌａｇ抗体（ＳＩＧＭＡ社製)を用い、ＴＢＳＴで２１５０００倍希釈した溶液中で、室温で１時間穏やかに攪拌した。次いでＴＢＳＴで洗浄後、二次抗体として、Peroxidase labeled Anti-mouse抗体（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス（株）製）を用い、ＴＢＳＴで２００００倍希釈した溶液中で、室温で１時間穏やかに攪拌して、二次抗体のラベルを行った。再び、ＴＢＳＴで洗浄後、ECL Plus Western blotting detection reagents （ＧＥヘルスケアバイオサイエンス（株）製）のＡ液（ECL Plus substrate solution containing Tris buffer）とＢ液（Stock Acidan solution in dioxane and ethanol）を４０:１の割合で混合したものを、タンパク質を転写したＨｙｂｏｎｄ−Ｐ膜に添加し、５分間遮光して反応させた後、Ｆｌｕｏｒ-Ｓ/ＭＡＸ マルチイメージャー（Bio-Rad社製）を用いて検出した。尚、マーカーにはMagicMark XP Western Protein Standards(Invitrogen)を用いた。
一次抗体としてＡｎｔｉ-Ｈｉｓ抗体（ＳＩＧＭＡ社製)を用いた以外は、上記と同様にしてウエスタンブロッティングを行った。
ウエスタンブロットの結果を図２に示す。図２（Ａ）は抗ＦＬＡＧタグ抗体による検出結果であり、図２（Ｂ）は抗Ｈｉｓタグ抗体による検出結果である。図２において、Ｗは膜貫通領域を有するヒト由来プロレニン受容体（実施例２）のレーンを表し、Ｗ／Ｏは膜貫通領域を含まないヒト由来プロレニン受容体（実施例１）のレーンを表す。また、Ｍは分子量マーカーのレーンを表す。
図２から、約６０ｋＤａの位置にヒト由来プロレニン受容体が発現していることが分かる。
図２から、約６０ｋＤａの位置にヒト由来プロレニン受容体が発現していることが分かる。
＜ヒト由来プロレニン受容体とヒトプロレニンの結合性＞
実施例１で得られたカイコの体液をＰＢＳで２０倍希釈し、ヒト由来プロレニン受容体溶液とした。この溶液２００μＬを９６ウエルのプレートの各ウエルに添加し、４℃で１５時間静置した。その後、ブロッキングバッファー（１％ Ｃａｓｉｎ）１５０μＬを各ウエルに添加して、全量を３５０μＬとして実験まで４℃で保存した。種々の濃度のヒト由来プロレニン溶液各２００μＬを、内容物を除去したウエルに添加し、ウエル壁面に吸着したプロレニン受容体とプロレニンの結合を４℃、３０分間反応させた。添加時のプロレニン濃度と遊離プロレニン濃度の差から、受容体に結合したプロレニン濃度を算出した。
尚、ブランクはヒト由来プロレニン受容体遺伝子を含まないＢｍＮＰＶシャトルベクターを導入したカイコの体液を用いて行った。
以上の結果を図３に示す。
実施例１で得られたカイコの体液をＰＢＳで２０倍希釈し、ヒト由来プロレニン受容体溶液とした。この溶液２００μＬを９６ウエルのプレートの各ウエルに添加し、４℃で１５時間静置した。その後、ブロッキングバッファー（１％ Ｃａｓｉｎ）１５０μＬを各ウエルに添加して、全量を３５０μＬとして実験まで４℃で保存した。種々の濃度のヒト由来プロレニン溶液各２００μＬを、内容物を除去したウエルに添加し、ウエル壁面に吸着したプロレニン受容体とプロレニンの結合を４℃、３０分間反応させた。添加時のプロレニン濃度と遊離プロレニン濃度の差から、受容体に結合したプロレニン濃度を算出した。
尚、ブランクはヒト由来プロレニン受容体遺伝子を含まないＢｍＮＰＶシャトルベクターを導入したカイコの体液を用いて行った。
以上の結果を図３に示す。
図３（Ｂ）から、本発明で製造されるヒト由来プロレニン受容体と、ヒト由来プロレニンとのＫｄは６．６ｎＭと算出され、本発明で製造されるヒト由来プロレニン受容体はヒト由来プロレニンとの結合活性を有することが分かる。
また、図３（Ａ）から、初期濃度４．８ｎＭプロレニンは約５０％が受容体に結合していることが分かる。この場合のレニン活性を測定したところ、添加したプロレニン濃度に対して約４０％のレニン活性が観察された。したがって、本発明で製造されたヒト由来プロレニン受容体に結合したほとんどのヒト由来プロレニンが活性化されたことが分かる。
また、図３（Ａ）から、初期濃度４．８ｎＭプロレニンは約５０％が受容体に結合していることが分かる。この場合のレニン活性を測定したところ、添加したプロレニン濃度に対して約４０％のレニン活性が観察された。したがって、本発明で製造されたヒト由来プロレニン受容体に結合したほとんどのヒト由来プロレニンが活性化されたことが分かる。
Claims (9)
- ｍｉｎｉＦレプリコンと、ＢｍＮＰＶ ＤＮＡと、トランスポゾンの付着部位と、ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列と、を含むＢｍＮＰＶシャトルベクターを、カイコガ由来の細胞に導入する工程を含むヒト由来プロレニン受容体の製造方法。
- 前記ＢｍＮＰＶシャトルベクターが、昆虫由来の分泌シグナル配列を更に含み、
前記カイコガ由来の細胞が、カイコガの幼虫の細胞またはカイコガの蛹の細胞であって、
カイコガの幼虫の体液またはカイコガの蛹から、ヒト由来プロレニン受容体を回収する回収工程を更に含むことを特徴とする請求項１に記載のヒト由来プロレニン受容体の製造方法。 - 前記ヒト由来プロレニン受容体をコードするポリヌクレオチド配列が、配列番号１または配列番号２で表されることを特徴とする請求項１または請求項２に記載のヒト由来プロレニン受容体の製造方法。
- 前記ＢｍＮＰＶシャトルベクターが、ウイルス由来のプロテアーゼ遺伝子の少なくとも１種を欠損していることを特徴とする請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載のヒト由来プロレニン受容体の製造方法。
- 前記ＢｍＮＰＶシャトルベクターが、精製用タグ、マーカー及びエンテロキナーゼ認識部位から選ばれるいずれかの精製用ペプチドをコードするポリヌクレオチド配列の少なくとも１種を更に含有することを特徴とする請求項１〜請求項４のいずれか１項に記載のヒト由来プロレニン受容体の製造方法。
- 前記昆虫由来の分泌シグナル配列が、カイコ脳神経ペプチドホルモンＢｏｍｂｙｘｉｎ由来の分泌シグナル配列ｂｘ、またはフェノール酸化酵素前駆体活性化酵素由来の分泌シグナル配列ｐｐａｅであることを特徴とする請求項２〜請求項５のいずれか1項に記載のヒト由来プロレニン受容体の製造方法。
- 請求項１〜請求項６のいずれか１項に記載の製造方法により得られたヒト由来プロレニン受容体とプロレニン受容体阻害剤との結合活性を測定する工程を含むプロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法。
- 請求項１〜請求項６のいずれか１項に記載の製造方法により得られたヒト由来プロレニン受容体を用いて、プロレニンのレニン活性を測定する工程を含むプロレニン濃度の測定方法。
- 請求項１〜請求項６のいずれか1項に記載の製造方法により得られたヒト由来プロレニン受容体と特異的に結合する抗ヒト由来プロレニン受容体抗体。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2007016973A JP2008182905A (ja) | 2007-01-26 | 2007-01-26 | ヒト由来プロレニン受容体の製造方法、ヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法、プロレニン濃度の測定方法及び抗ヒト由来プロレニン受容体抗体 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2007016973A JP2008182905A (ja) | 2007-01-26 | 2007-01-26 | ヒト由来プロレニン受容体の製造方法、ヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法、プロレニン濃度の測定方法及び抗ヒト由来プロレニン受容体抗体 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2008182905A true JP2008182905A (ja) | 2008-08-14 |
Family
ID=39726354
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2007016973A Pending JP2008182905A (ja) | 2007-01-26 | 2007-01-26 | ヒト由来プロレニン受容体の製造方法、ヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法、プロレニン濃度の測定方法及び抗ヒト由来プロレニン受容体抗体 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2008182905A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2013084504A1 (ja) * | 2011-12-08 | 2013-06-13 | 株式会社免疫生物研究所 | 高血圧症の予知方法 |
| WO2014042148A1 (ja) * | 2012-09-11 | 2014-03-20 | 国立大学法人香川大学 | がんマーカーおよびその用途 |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2004173507A (ja) * | 2002-11-22 | 2004-06-24 | Hamamatsu Kagaku Gijutsu Kenkyu Shinkokai | ＢｍＮＰＶシャトルベクター |
-
2007
- 2007-01-26 JP JP2007016973A patent/JP2008182905A/ja active Pending
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2004173507A (ja) * | 2002-11-22 | 2004-06-24 | Hamamatsu Kagaku Gijutsu Kenkyu Shinkokai | ＢｍＮＰＶシャトルベクター |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2013084504A1 (ja) * | 2011-12-08 | 2013-06-13 | 株式会社免疫生物研究所 | 高血圧症の予知方法 |
| WO2014042148A1 (ja) * | 2012-09-11 | 2014-03-20 | 国立大学法人香川大学 | がんマーカーおよびその用途 |
| JPWO2014042148A1 (ja) * | 2012-09-11 | 2016-08-18 | 国立大学法人 香川大学 | がんマーカーおよびその用途 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP6626174B2 (ja) | 新規組換えファクターｃ、その製造法、およびエンドトキシンの測定法 | |
| CN109321480B (zh) | 用于控制重组胶原羟基化的酵母菌株和方法 | |
| KR20190002363A (ko) | 콜라겐을 생산하기 위한 효모 균주 및 방법 | |
| KR20170028383A (ko) | Rna 전사물 변이체의 정량분석을 위한 방법 및 생성물 | |
| Shi et al. | A novel firefly luciferase biosensor enhances the detection of apoptosis induced by ESAT-6 family proteins of Mycobacterium tuberculosis | |
| Jin et al. | Cleavage activation and functional comparison of Manduca sexta serine protease homologs SPH1a, SPH1b, SPH4, and SPH101 in conjunction with SPH2 | |
| RU2601161C2 (ru) | БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫЙ РАДИОАКТИВНО-МЕЧЕНЫЙ Cry1Fa И СПОСОБЫ ПРОВЕДЕНИЯ ЭКСПЕРИМЕНТОВ СВЯЗЫВАНИЯ С РЕЦЕПТОРОМ | |
| JP2008182905A (ja) | ヒト由来プロレニン受容体の製造方法、ヒト由来プロレニン受容体阻害剤のスクリーニング方法、プロレニン濃度の測定方法及び抗ヒト由来プロレニン受容体抗体 | |
| JP6216647B2 (ja) | 組換え型プロトロンビンの製造方法およびその利用 | |
| JP6667897B2 (ja) | 蛍光特性を示すポリペプチド、およびその利用 | |
| JP2005519620A (ja) | 遺伝子操作したバキュロウィルスおよびその使用 | |
| JP2007228814A (ja) | 外来タンパク質の発現用遺伝子カセットおよび外来タンパク質の製造方法 | |
| Golas et al. | Modulating the expression strength of the baculovirus/insect cell expression system: a toolbox applied to the human tumor suppressor SMARCB1/SNF5 | |
| US9828611B2 (en) | Exogenous gene expression vector, transformant discrimination marker, and transformant | |
| JP6824594B2 (ja) | 合成遺伝子の設計方法 | |
| US10273487B2 (en) | Transfection vector for pathogenic amoebae and uses thereof | |
| JP3811733B2 (ja) | Ｄｎアーゼ活性を有する蛋白質 | |
| SG174348A1 (en) | Fusion proteins the process to preparation and utilization in expression systems of recombinant proteins | |
| US20190241629A1 (en) | Recombinant proteins derived from genus limulus, and dna molecules encoding same | |
| KR101067328B1 (ko) | 분열효모용 발현벡터, 분열효모용 게이트웨이 발현벡터 및 그 제조방법 | |
| WO2015115610A1 (ja) | 発現カセット | |
| JP2004242583A (ja) | 外来挿入断片選択マーカー | |
| JP2011101639A (ja) | タンパク質低発現化ペプチドをコードする遺伝子およびその使用方法 | |
| JP2008086239A (ja) | バクミド変異体及びその製造方法、並びにこれを用いた目的タンパク質の製造方法 | |
| WO2013154429A1 (en) | Multiplex reporter assays for monitoring multiple variables |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20090914 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20120131 |
|
| A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20120529 |